Экспериментальное исследование роли эпифиза в регуляции сперматогенеза тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.23, кандидат биологических наук Индрякова, Ольга Анатольевна

• Индрякова, Ольга Анатольевна
• кандидат биологических наук
• 1999

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Индрякова, Ольга Анатольевна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Биологические ритмы.

1.2. Роль эпифиза в регуляции репродуктивной активности.

1.3. Регуляция сперматогенеза.

1.4. Реципрокные взаимоотношения эпифиза и семенников.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Семенники после эпифизэктомии и введения эпиталамина.

3.1.1. Динамика массы семенников и морфологических параметров семенных канальцев. . ! .

3.1.2. Цитологический профиль сперматогенеза.

3.1.3. Суточная динамика митотического индекса сперматого

3.2. Временная динамика частоты встречаемости стадий цикла сперматогенеза.

3.3. Временная динамика параметров клеток Лейдига.

ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ СОБСТВЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Экспериментальное исследование роли эпифиза в регуляции сперматогенеза»

Размножение является фундаментальным свойством живого, а обеспечивающие его процессы и функции лежат в основе жизнедеятельности и развития организмов. В связи с этим регуляция репродуктивной функции организма обоснованно рассматривается актуальной проблемой современной экспериментальной биологии (Бабичев В.Н., 1998; Никитин А.И., 1998; Reiter R.J., 1998).

Репродуктивная функция организма, наряду с другими физиологическими функциями, характеризуется скоординированностью с периодическими процессами абиотического и биотического окружения живых организмов. Наиболее изучена сезонная ритмичность репродуктивной функции животных, направленная на выбор благоприятного сезона для проявления репродуктивной активности и являющаяся примером важнейшей адаптивной стратегии, отклонение от которой элиминировалось в ходе эволюции естественным отбором (ШортР.В., 1987).

Большинству функций живого организма свойственны суточные изменения, навязываемые им внешними временными сигналами (Хал-берг Ф., 1964; Хелимский A.M., 1969; Чазов Е.И., Исаченков В.А., 1974; Соколов В.Е., Кузнецов Г.В., 1978; Деряпа Н.Р. и др., 1985; Берне Дж.Т., Мошкин М.П., 1998; Luboshitzky R. et al., 1997; Parisi G., 1997; Reinstein S. et al., 1998). При этом посредником между внешней и внутренней средой является эпифиз, который воспринимает информацию об уровне освещенности, поступающую к нему от зрительного рецептора, и преобразует ее в эндокринные сигналы (Арушанян Э.Б., Ованесов К.Б., 1995; Анисимов В.Н., 1997; Этингоф Р.Н., 1997; Reiter R.J., 1974; Reiter R.J. et al., 1981; Pevet P. et al., 1989; Vivien-Roels В., 1989). Наиболее изученным гормоном является мелатонин, посредством которого эпифиз оказывает модулирующее влияние на активность структур мозга, обладающих мелатониновыми рецепторами (Герман C.B., 1993; Cardinali D.P., 1981b; Stankov В., Reiter R.J., 1990; Vivien-Roels В., 1991; Arendt J, 1995; Kripke D.F. et al., 1998; Sliochat T. et al., 1998). Кроме того, эпифиз продуцирует целый ряд биологически активных веществ, обладающих широким спектром действия (Benson В., 1977; Blask D.E. et al., 1983). Хорошей экспериментальной моделью для изучения возможных эффектов эпифизарных гормонов является введение эпифизэк-томированным животным пептидного экстракта эпифиза - эпиталамина (Хавинсон В.Х., Морозов В.Г., 1992). Такая модель не требует дополнительного контроля влияния эпиталамина на интактных животных.

Известно, что эпифиз принимает участие в регуляции репродуктивной функции животных посредством гипоталамо-гипофизарной системы, с которой он связан функционально (Herbert J. et al., 1986). Несмотря на то, что отмечена связь между функционированием эпифиза и репродуктивной функцией животных, к настоящему времени вопросы эпифизарной регуляции суточных репродуктивных ритмов изучены крайне недостаточно (Fu Z. et al., 1997).

Функционированию любой системы клеток свойственны периодические колебания, что проявляется в существовании их биологических ритмов. Примером этого может рассматриваться процесс сперматогенеза, характеризующийся определенной видоспецифичной продолжительностью, наличием цикла и волны эпителиосперматогенного слоя (Isliizaka К., Oshima H., 1997). Основной характеристикой временной организации сперматогенной ткани является цикл ее развития. Понятие цикла включает совокупность сменяющих друг друга стадий в данном участке семенного канальца. Весь процесс сперматогенеза объединяет несколько циклов, каждый из которых состоит из ряда стадий (у крыс различают 14 стадий) (Leblond P., Clermont Y., 1952). Каждая из стадий характеризуется качественными и количественными параметрами, изменения характеристик которых свидетельствуют о нарушении течения сперматогенеза.

Совокупность биологических ритмов, обеспечивающих сперматогенез, упорядоченно и согласованно осуществляющихся во времени, формирует временную организацию эпителиосперматогенного слоя. Подобная иерархическая организация позволяет точно выявить циклические изменения сперматогенеза.

Несмотря на широкое признание роли эпифиза в формировании сезонных ритмов репродуктивной активности и суточных ритмов многих физиологических функций организма, проблема регуляции эпифизом сперматогенеза остается нерешенной.

Цель и задачи исследования. Целью настоящего исследования явилось изучение роли эпифиза в регуляции биологических ритмов сперматогенеза.

Достижение указанной цели основывалось на постановке и решении следующих задач:

1) изучить суточную динамику стадий цикла сперматогенеза, ее цитологического профиля, а также морфологических параметров семенников интактных животных;

2) исследовать влияние эпифизэктомии на суточную динамику морфологических параметров семенников;

3) изучить влияние эпиталамина на суточные изменения морфологических параметров семенников эпифизэктомированных животных;

4) изучить состояние эндокринной ткани семенников после эпифизэктомии и при введении эпиталамина эпифизэктомированным животным.

Научная новизна. Впервые изучена биологическая ритмичность стадий цикла сперматогенеза. В работе представлены новые данные об иерархии биологических ритмов сперматогенеза, расширяющие и углубляющие существующие представления о его временной организации. Впервые установлено существование суточного ритма процесса сперматогенеза у животных, а также выявлена его зависимость от регу-ляторных влияний эпифиза. Показано, что влияние эпифиза на формирование суточного ритма сперматогенеза осуществляется посредством его пептидов и сопровождается изменением функциональной активности эндокринной ткани семенников.

Научно-практическая ценность исследования. Результаты исследования раскрывают взаимодействие двух эндокринных органов -эпифиза и семенников, а также углубляют и расширяют представления о функциональной роли эпифиза в регуляции биологических ритмов и его месте в системе нейроэндокринной регуляции.

Установлена зависимость суточного ритма стадий цикла сперматогенеза от влияния эпифиза, что позволяет определить дальнейшие направления изучения взаимодействия в системе эпифиз-семенники.

Полученные новые данные о роли пептидов эпифиза в регуляции временной динамики процессов сперматогенеза являются основанием для рекомендации о целесообразности расширения спектра терапевтического применения пептидного экстракта эпифиза в медицинской практике.

Апробация материалов диссертации. Материалы диссертации докладывались на ежегодных научно-практических конференциях Ульяновского государственного университета (Ульяновск, 1996, 1997, 1998, 1999), научной конференции Ульяновского государственного педагогического университета (1998), IV съезде российских морфологов

Ижевск, 1999). Материалы исследований представлены и обсуждены на заседании Ульяновского отделения ВНО АГЭ (1998).

Положения, выносимые на защиту:

1) Стадии цикла сперматогенеза характеризуются суточной ритмичностью, опосредованной регуляторным действием эпифиза.

2) Для активности клеток Лейдига, составляющих промежуточное звено в регуляции сперматогенеза, свойственны суточные ритмы, зависящие от эпифиза.

3) Эпиталамин препятствует нарушению у эпифизэктомирован-ных животных суточной динамики стадий цикла сперматогенеза и морфологических параметров эндокринной ткани семенников.

Внедрения. Результаты диссертационного исследования используются в учебном процессе по дисциплинам «Медицинская биология, генетика и паразитология» и «Гистология, эмбриология, цитология» при изучении тем «Половая система», «Индивидуальное развитие организмов» на кафедре общей биологии и гистологии Ульяновского государственного университета, на кафедре гистологии Казанского государственного медицинского университета, а также в научно-исследовательской работе учебно-научно-исследовательской лаборатории Ульяновского государственного университета.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 8 печатных работ.

Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, результатов собственных исследований, их обсуждения, выводов, библиографического списка и приложения.

Заключение диссертации по теме «Гистология, цитология, эмбриология», Индрякова, Ольга Анатольевна

ВЫВОДЫ

1. Сперматогенез обладает системой биоритмов, включающих находящиеся под контролем эпифиза суточные ритмы.

2. Введение комплекса пептидов эпифиза (эпиталамина) обусловливает восстановление фазовой структуры и периода суточной ритмичности сперматогенеза у эпифизэктомированных животных.

3. Эпифиз подавляет пролиферативную активность сперматого-ний, но не изменяет ее ритмичность, а эпифизэктомия обусловливает увеличение митотического индекса и не оказывает влияния на продолжительность периода.

4. Морфологические параметры клеток Лейдига циклически изменяются в течение суток, в том числе, под воздействием эпифиза.

5. Эпифизэктомия изменяет суточный ритм морфологических параметров клеток Лейдига, который восстанавливается к 20му дню под влиянием ежедневных инъекций эпиталамина.

6. Изменения абсолютной массы, диаметра семенных канальцев и толщины эпителиосперматогенного слоя лишены суточной ритмичности. Цитологический профиль стадий цикла сперматогенеза не изменяется после эпифизэктомии и стабилен в пределах каждой стадии.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Индрякова, Ольга Анатольевна, 1999 год

1. Автандилов Г.Г. Морфометрия в патологии. М.: Медицина, 1973.

2. Анисимов В.Н. Физиологические функции эпифиза (геронтологи-ческий аспект) // Росс, физиологич. журнал им.И.М.Сеченова. -1997. Т.83, № 8. - С.1-13.

3. Анисимов В.Н., Хавинсон В.Х. Влияние полипептидного препарата эпифиза на продолжительность жизни и частоту спонтанных опухолей у старых самок крыс // Докл. АН СССР. 1991. - Т.319, № 1.-С.250-253.

4. Ашисимов В.Н., Хавинсон В.Х., Морозов В.Г., Дилман В.М. Снижение порога чувствительности гипоталамо-гипофизарной системы к действию эстрогенов под влиянием экстракта эпифиза у старых самок крыс // Докл. АН СССР. 1973. - Т.213. - С.483-486.

5. Анисимов В.Н., Хавинсон В.Х., Морозов В.Г. Роль пептидов эпифиза в регуляции гомеостаза: 20-летний опыт исследования // Успехи соврем. биологии. 1993. - Т.113. - С.752-762.

6. Антонов A.C., Бакалкин Г.Я., Кривошеев О.Г. и др. Взаимосвязь пинеальной железы с гипоталамо-гипофизарным комплексом. III. Возможная роль ЛГ-рилизинг гормона в обратных связях гипоталамус-эпифиз // Пробл. эндокринологии. 1977. -№ 5. - С.51-56.

7. Антонов A.C., Сюткин Е.А., Кривошеев Д.Г. Влияние пинеалэкто-мии на продукцию тестостерона у односторонне кастрированных ослепленных крыс / Гистофизиология и регуляция функции репродуктивной системы: Сб.тр. М., 1978. - С.45-49.

8. Арушанян Э.Б., Арушанян Л.Г. Модуляторные свойства эпифи-зарного мелатонина // Пробл. эндокринологии. 1991. - Т.37, № 3. - С.65.

9. Арушанян Э.Б., Ованесов К.Б. Эпифиз в системе зрительного анализатора // Успехи физиол. наук. 1995. - Т.26, № 3. - С.25-39.

10. Астраханцев А.Ф. Структура мужских половых желез в постна-тальном онтогенезе: Автореф. дисс. . д.м.н. Рязань, 1996. -48 с.

11. Бабичев В.Н. Нейроэндокринология репродуктивной системы (состояние физиологических исследований и перспективы их применения в клинической практике // Пробл. эндокринологии. 1998. -Т.44, № 1. - С.3-12.

12. Берне Дж.Т., Мошкин М.П. Внутренняя координация циркадных ритмов и временной синергизм в приспособительных реакциях животных // Журн. общ. биол. 1998. - Т.59, № 4. - С.377-399.

13. Бондаренко JI.A. Сезонные ритмы содержания индоламинов в эпифизе крыс // Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1985. - Т. 100, № 8. - С.137-139.

14. Бондаренко JI.A. Биохимические основы участия эпифиза в регуляции сезонных ритмов у млекопитающих / Научно-технический прогресс в медицине и фундаментальные проблемы биологии: Сб. докл. Харьков, 1987. - С.270-272.

15. Бондаренко JI.A. Некоторые биохимические аспекты функционирования пинеальной железы крысы в онтогенезе // Онтогенез. -1991. Т.22, № 1. - С.57-62.

16. Бондаренко JI.A. Сезонные особенности влияния эпиталамина на формирование ночного пика мелатонина у старых крыс // Пробл. старения и долголетия. 1993. - Т.З, № 2. - С.97-100.

17. Бондаренко JI.A., Анисимов В.Н. Влияние пептидного препарата эпифиза эпиталамина на метаболизм серотонина в шишковидной железе у крыс // Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1990. - Т.110, № 8. - С.150-151.

18. Бондаренко JI.A., Анисимов В.Н. Возрастные особенности влияния эпиталамина на метаболизм серотонина в шишковидной железе у крыс // Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1992. - Т. 113, № 2. -С.194-195.

19. Бродский В.Я. Околочасовые ритмы в клеточной популяции. Проблема синхронизации // Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1997. -Т. 124, № 12. - С.604-609.

20. Владимиров C.B., Угрюмов М.В. Супрахиазматическое ядро гипоталамуса: роль в регуляции циркадианных ритмов, строение, нервные связи, развитие в онтогенезе // Успехи соврем, биол. 1995. -Т.115, 2. - С.185-197.

21. Волкова О.В., Тарабрин С.Б., Сухоруков B.C., Шамшад Д.А. Локальные взаимоотношения между соматическими элементами мужской гонады // Морфология. 1992. - Т.103, вып.9-10. - С.7-20.

22. Герман C.B. Мелатонин у человека // Клинич. медицина. 1993. -Т.71, № 3. - С.22-30.

23. Грачев И.И., Селиверстов Ю.А., Усанова Р.И., Сабанин В.Н. Влияние эпифиза на фолликулостимулирующую функцию гипофиза // Физиол. журн. СССР. 1973. - № 4. - С.647-651.

24. Грачев И.И., Усанова Р.И. Влияние эпифизарных полипептидов на соматотропную функцию гипофиза / Тез.докл. I Всесоюзн. конф. по нейроэндокринологии. Л. - 1974. - С.44-45.

25. Грачев И.И., Усанова Р.И., Селиверстов Ю.А. Влияние эпифиза на соматотропную функцию гипофиза // Физиол. журн. СССР. -1985. Т.31, № 3. - С.356-366.

26. Дедов И.И., Дедов В.И. Биоритмы гормонов. М.: Медицина, 1992.-256 с.

27. Деряпа Н.Р., Мошкин М.П., Поеный B.C. Проблемы медицинской биоритмологии. -М.: Медицина, 1985.

28. Дженкинс Г., Ватте Д. Спектральный анализ и его приложения. -М.: Мир. 1972.

29. Дмитриев А.Д., Савелова Н.В., Исаченков В.А. Фактор из пине-альных желез органов крыс и крупного рогатого скота, иммуноло-гически и биологически родственных люлиберину // Пробл. эн-докрин. 1980. - Т.27, № 1. - С.47-52.

30. Добровольский Г.А. Планирование медико-морфологического эксперимента. Саратов: Изд-во Саратовского ун-та, 1984. - 128 с.

31. Дубров А.П. Симметрия биоритмов и реактивности. М.: Медицина, 1987.

32. Исаченков В.П., Нагорная Л.В., Бадосов Е.П. и др. Лактотропин из эпифиза быка, биологически и иммунологически родственных пролактину гипофиза // Пробл. эндокрин. 1981. - Т.28, № 1. -С.71-76.

33. Карш Ф.Д. Гипоталамус и передняя доля гипофиза / Гормональная регуляция размножения у млекопитающих: Пер. с англ. Под ред. К.Остина и Р.Шорта. М.: Мир, 1987. - С.8-31.

34. Коваленко Р.И., Загустина Л.А., Степанова H.A. О механизмах ан-тигонадотропного действия полипептидов эпифиза / Вопр. нейро-эндокр. (нервная система). Вып.25. МежВУЗовский сб. - Л.: Изд-во ЛГУ. - 1983. -С.46-52.

35. Колесникова Л.А. Об участии эпифиза в регуляции сезонной динамики тестостерона в крови белых крыс // Изв. Сиб. отд-ние АН СССР, сер.биол.наук. 1984. - № 6, вып.1. - С.117-120.

36. Колесникова JI.А. Особенности суточного ритма биосинтетической активности эпифиза у относительно диких и доместицируе-мых серебристо-черных лисиц // Генетика. 1997. - Т.ЗЗ, № 8. -С.1144-1149.

37. Комаров Ф.И., Романов Ю.А., Моисеева Н.И. Хрономедицина -новое направление в медико-биологической науке и практике / Хронобиология и хрономедицина. М., 1989. - С.5-17.

38. Кондратенко В.Г., Ганзенко Л.Ф., Стаканов В.А. Цитофизиологи-ческие корреляции инкреторной и репродуктивной систем семенника / Гистофизиология и регуляция функции репродуктивной системы. -М. 1978. - С. 16-21.

39. Къянчева Л. Паракринни контролни механизми в тестиса на бо-зайници // Природа (Бьлг.). 1995. - Т.42, № 3. - С.67-72.

40. ЛакинГ.Д. Биометрия. -М. 1990.

41. Мамина В.П. Роль половых гормонов в регуляции процесса сперматогенеза у мышей разных линий, облученных в малых дозах у-квантами // Радиац. биол. радиоэкол. 1994. - Т.34, № 6. - С.774-781.

42. Моисеев Н.И., Сысуев В.М. Временная среда и биологические ритмы. Л.: Наука, 1981. - 128 с.

43. Морозов В.Г., Хавинсон В.Х. Пептидные биорегуляторы (25-летний опыт экспериментального и клинического изучения). СПб: Наука, 1996.

44. Никитин А.И. Факторы среды и репродуктивная система человека //Морфология. 1998. - Т. 114, № 6. -С.7-16.

45. Отнес Р., Эноксон Л. Прикладной анализ временных рядов: Осн. методы. М.: Мир, 1982. - 428 с.

46. Оттер М.Л., Нурманд Л.Б. Сезонные колебания содержания кате-холаминов в мозге белых крыс // Бюлл. эксперим. биол. и мед. -1980. № 2. - С.215-217.

47. Петров Ю.А., Вишняков Г.И. Об участии эпифизарных полипептидов в регуляции гонадотропной функции / Вопросы нейроэн-докринологии. МежВУЗовский сб. Нервная система. Вып.24. Л.: Изд-во ЛГУ, 1983. - С.40-46.

48. Поздеев Н.В., Этингоф Р.Н. Биосинтез мелатонина в эпифизе в раннем постнатальном онтогенезе у здоровых и больных наследственной дегенерацией сетчатки крыс // Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1997. - Т.123, № 2. - С.131-134.

49. Райцина С.С. Травма семенника и аутоиммунитет. М.: Медицина, 1970.

50. Райцина С.С. Иммунологические и гормональные факторы в регуляции сперматогенеза у млекопитающих / Сб.тр.: Гистофизиоло-гия и регуляция функции репродуктивной системы. М., 1978. -С.9-16.

51. Райцина С.С. Сперматогенез и структурные основы его регуляции. М.: Наука, 1985.

52. Романов Ю.А. Временная организация биологических систем / Биологические ритмы. -М., 1980. С.10-56.

53. Романов Ю.А. Междисциплинарный характер исследований временной организации биологических систем и их значение для медицины / Биология и медицина. М., 1985. - С.90-103.

54. Романов Ю.А., Филиппович С.С., Кузин С.М., Рыбаков В.П. Анализ временных параметров деления клеток при изменении фотопериодичности / Способы регенерации и клеточного деления. М.: Наука, 1979<я. - С.44-53.

55. Романов Ю.А., Филиппович С.С., Степанова Л.И. и др. Исследование суточных ритмов репродукции клеток у крыс в условиях гипокинезии / Проблемы временной организации живых систем. М. -19795. - С.121-135.

56. Ром-Богуславская Е.С., Щербакова B.C., Комарова И.В. Модифицирующее влияние пинеальных гормонов пептидной природы на реактивность щитовидной железы белых крыс к холодовому воздействию // Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1997. - Т. 124, № 12. -С.652-654.

57. Рыбаков В.П. Клеточно-популяционные закономерности механизма формирования суточного ритма репродукции клеток: Автореф. дис. . д.м.н. -М. 1991.

58. Рузец-Ранге Э. Сперматогенез у животных. -М.: Мир, 1980.

59. Светикова К.М., Катинас Г.С. Сезонные изменения суточной ритмики митотической активности в эпителии крипт прямой кишки крыс // Архив анат., гистол., эмбриол. 1974. - М.67, № 7. - С.62-68.

60. Слепушкин В.Д., Мордовии В.Ф., Золоев Г.К. и др. Влияние препарата из эпифиза эпиталамина на гонадотропную функцию гипофиза // Пробл. эндокринол. 1983. - Т.29, № 6. - С.51-54.

61. Слепушкин В.Д., Анисимов В.Н., Хавинсон В.Х. и др. Эпифиз, иммунитет и рак (теоретические и клинические аспекты). Томск: Изд-во Томского ун-та, 1990.

62. Соколов В.Е., Кузнецов Г.В. Суточные ритмы активности млекопитающих. -М.: Наука, 1978.

63. Степанова С.И. Биоритмологические аспекты проблемы адаптации. М.: Наука, 1986.

64. Ухов Ю.И., Астраханцев А.Ф. Морфометрические методы в оценке функционального состояния семенников // Арх. анат., гистол., эмбриол. 1983. - Т.84, № 3. - С.66-72.

65. Францкевич H.H., Рябков К.П. Морфометрическая и цитологическая характеристика клеток Лейдига семенников растущих кроликов / Дифференцировка клеток в гисто- и органогенезах. Мат-лы III Всес. симпозиума (Киев, 1975). Киев. - 1975. - С. 199-203.

66. Хавинсон В.Х., Морозов В.Г. Препараты эпифиза и тимуса в геронтологии. С.-Петербург, 1992.

67. Халберг Ф. Временная координация физиологических функций / Биологические часы. -М.: Мир, 1964. С.475-509.

68. Хелимский А.И. Эпифиз. -М.: Медицина, 1969.

69. Хесин Я.Е. Размеры ядер и функциональное состояние клеток. -М.: Медицина, 1967.

70. Хмельницкий O.K., Ступина A.C. Функциональная морфология эндокринной системы при атеросклерозе. Л.: Медицина, 1989.

71. Чазов Е.И., Исаченков В.А. Эпифиз: место и роль в системе нейро-эндокринной регуляции. -М.: Наука, 1974.

72. Шевлюк H.H. Морфофункциональная характеристика интерстици-альной ткани семенников представителей различных классов позвоночных // Морфология. 1998а. - Т.113, № 3. - С.133.

73. Шевлюк H.H. Морфофункциональная характеристика интерстици-альных эндокриноцитов семенников суслика рыжеватого в условиях сезонного изменения репродуктивной активности // Морфология. 19986. - М. 114, № 4. - С.88-93.

74. Шорт Р.В. Сезонность размножения / Гормональная регуляция размножения млекопитающих. -М.: Мир, 1987. С.178-183.

75. Этингоф Р.Н. Свет как важнейший фактор эволюции: некоторые молекулярные аспекты // Ж.эволюц. биохимии и физиол. 1997. -Т.33, № 4-5. - С.556-569.

76. Albertazzi Е., Barbanti S.C., Trentini G.P., Botticelli A. Influence de l'epiphysectomie et du traitement avec la 5-hydroxytryptamine sur le cycle oestral de la ratte albinos // Ann. Endocr. 1966. - V.27. - P.93-100.

77. Anton-Tay F., Wurtman R.J. Regional uptake of H -melatonin from blood or cerebrospinal fluid by rat brain // Nature. 1969. - V.221. -P.474-475.

78. Arendt J. Role of the pineal gland and melatonin in seasonal reproductive function in mammals / Oxford Reviews of Reproductive Biology. -Vol.8. -Ed.G.R.Clarke. Clarendon Press, Oxford. 1986. -P.266-320.

79. Arendt J. Melatonin and the mammalian pineal gland. London: Chapman & Hall- 1995.

80. Armstrong S.M. Melatonin and circadian control in mammals // Experientia. 1989. - V.45, № 10. - P.932-938.

81. Arrau J., Bustos-Obregon E., Cabello R. Inhibition of growth and dif-ferentation of fetal hamster gonads grafted into the adult testis // Int. J. Androl. 1988. - V.ll, № 4. - P.327-338.

82. Bartness T.J., Goldman B.D. Mammalian pineal melatonin: A clock for all seasons //Experientia. 1989. - V.45. - P.939-945.

83. Bathgate R.A.D., Sernia C. Characterization and localization of oxytocin receptors in the rat testis // J. Endocrinol. 1994. - V.141, № 2. -P.343-352.

84. Benson B. Current status of pineal peptides // Neuroendocrinology. -1977.-V.24.-P.241-248.

85. Benson В., Mattews J., Rodin A.E. Studies on a non-melatonin pineal antigonadotropin // Acta endocr., Copenh. 1972. - V.69. - P.257-264.

86. Bianchini P., Osima B. Studi su di un probabile ormone della pineale: L'anestrina // Boll. Soc. Ital. Biol. Sper. 1960. - V.36. -P.1674-1677.

87. Bittman E.L., Karsch F.L. Hightly duration of pineal melatonin secretion determing the reproductive response to inhibitory day-length in the ewe // Biol. Reprod. 1984. - V.30. - P.585-593.

88. Blask D.E., Vaughan M.K., Reiter R.J. et al. Pro! actin-rel easing and release-inhibiting factor activities in the bovine, rat and human pineal // Endocrinology. 1976. - V.99. - P.152-161.

89. Blask D.E., Vaughan M.K., Reiter R.J. Pineal peptides and reproduction / The pineal gland. Ed. by R.Relkin. N.Y., Amsterdam: Oxford, 1983. -P.201-223.

90. Boitani C., Politi M.G., Menna T. Spermatogonia! cell proliferation in organ culture of immature rat testis // Biol. Reprod. 1993. - V.48, № 4. - P.761-767.

91. Boujrad N., Hochereau-de Reviers M.T., Carreau S. Evidence for germ cell control of Sertoli cell function in three models of germ cell depletion in adult rat //Biol. Reprod. 1995. - V.53, № 6. - P.1345-1352.

92. Bustos-Obregon E. Gi spermatogonia! chalone // Arch. Biol. Med. Exp. (Santiago). 1989. - V.22, № 1. - P.15-23.

93. Calb M., Goldstein R., Pavel S. Diurnal rhythm of vasotocin in the pineal of the male rat // Acta endocr., Copenh. 1977. - V.84. - P.523-526.

94. Cardinali D.P. Nuclear receptor estrogen complex in the pineal gland. Modulation by sympathetic nerves // Neuroendocrinology. 1977. -V.24. - P.336-346.

95. Cardinali D.P. Hormone effects on the pineal gland / The Pineal Gland, Vol.1, Anatomy and Biochemistry, R.J.Reiter (ed.), CRC Press, Boca Raton. 1981a. - P.243-272.

96. Cardinali D.P. Melatonin. A mammalian pineal hormone // Endocr. Rev. 1981 b. - № 2. - P.327-346.

97. Cardinali D.P., Nagle C.A., Rosner J.M. Effects of estradiol on melatonin and protein synthesis in the rat pineal organ // Horm. Res. (Basel). 1974. - V.5, № 5. - P.304-310.

98. Cardinali D.P., Nagle C.A., Rosner J.M. Gonadal steroids as modulates of the function of the pineal gland // Gen. cornp. Endocr. 1975. -V.26, № 1. - P.50-58.

99. Cardinali D.P., Ritta M.N. The role of prostaglandins in neuroendocrine junctions: studies in the pineal gland and the hypothalamus // Neuroendocrinology. 1983. - V.36, № 2. - P. 152-160.

100. Cardinali D.P., Vacas M.I. Feedback control of pineal function by reproductive hormones a neuroendocrine paradigm // J. Neural Transm. Suppl. - 1978. -Xo 13. -P.175-201.

101. Carreau S., Foucault P., Drosdowsky M.A. Sertoli cells. Functional aspects compared in rats, pigs and man // Ann. Endocr. (Paris). 1994. -V.55, № 6. -P.203-220.

102. Carter D.A., Dyer R.G. Inhibition by pentobarbitone and urethane on the adenohypophysis to luteinizing hormone releasing hormone in male rats //Br. J. Pharmacol. 1979. - V.67. -P.277-281.

103. Carter D.S., Goldman B.D. Antigonadal effects of timed melatonin infusion in pinealectomized male djungarian hamsters (Phodopus sun-gorus sungorus): duration is the critical parameter // Endocrinology. -1983. V.113. - № 1261-1267.

104. Cassone V.M., Lane R.F., Menaker M. Daily rhythms of melatonin metabolism in the medial hypothalamus of the chicken: effects of pine-alectomy and exogenous melatonin // Brain Res. 1983. - V.289. -P.129-134.

105. Chazov Y.I., Isachenkov V.A., Krivosheyev O.G. et al. A factor from the pineal body inhibiting the ovulation induced by luteinizing hormones // Dokl. Akad. Nauk SSSR. 1972. - V.27. - P.246-248.

106. Clementi F., Fraschini F., Muller E., Zanoboni A. The pineal gland and the control of electrolyte balance and of gonadotropin secretion: functional and morphological observations // Progr. Brain Res. 1965. -V.10. -P.583-603.

107. Clermont Y., Leblond C.P., Messier B. Duree du cycle de I'epithelium seminal du rat // Arch. Anat. microsc. et morphol. exptl. 1959. - № 48. -P.37-55.

108. Clermont Y., Mauger A. Existence of spennatogonial chalone in the rat testis // Cell Tissue Kinet. 1978. - V.7. -P.165-173.

109. Clermont Y., Perey B. The stage of the cycle of the seminiferous epithelium of the rat: practical definitions in PA-Scbiff-hematoxylin and hematoxylin-eosin stained sections // Rev. Canad. Biol. 1957. -V.16. -P.451-526.

110. Conti M., Iona S., Cuomo M. et al. Characterization of a hormone-inducible, high affinity adenosine 3'-5'-cyclic monophosphate phosphodiesterase from the rat Sertoli cell // Biochemistry. 1995. - V.34, № 25. - P.7979-7987.

111. Covarrubias L., Redondo J.L., Vargas M.A. et al. In vitro TRH release from hypothalamus slices varies during the diurnal cycle // Neurochem. Res. 1994. - V.19, № 7. -P.845-850.

112. Damian E. Antigonadotropic action of pineal extracts // Studii Cere. Endocr. 1973.-V.24.-P.31-38.

113. Damian E. Studies on the antigonadotropic activity of the pineal gland //Endocrinology. 1979a. - V.17, № 1. -P.3-15.

114. Damian E. The pineal gland as a source of releasing hormones // Endocrinology. \919b. - V.17, № 2. - P.137-138.

115. Damian E. Studies on the hormonal and metabolic effects of pinealec-tomy in the rat // Rev. Roum. Med-Endocrinol. 1980. - V.18, № 1. -P.3-14.

116. Damian E. Melatonin-free pineal substance, an equilibrating hormone? // Endocrinologie. 1985. - V.23, № 2. - P.91-96.

117. Damian E., Ianas O. Urinary excretion of gonadotrophins in rabbits // Revue roum. Endocr. 1972. - V.9. -P.183-187.

118. Damian E., Ianas O., Badescu I., Oprescu M. Anti-LH and FSH activity of melatonin-free pineal extract // Nenroendocrinology. 1978. -V.26. -P.325-332.

119. Dattatreyamurty B., Smith R.A., Zhang S.-B. et al. The size of the mature membrane receptor for follicle-stimulating hormone is larger than that predicted from its cDNA // J. Mol. Endocrinol. 1992. - V.9, № 2. -P.115-121.

120. De Fronzo R., Roth W. Lack of effect of pinealectomy on ovarian function: evidence for a time-dependent action // Proc. Soc. exp. biol. (N.Y.) 1971. - V.138, № 3. -P.1058-1061.

121. Demoulin A., Franchimont P. Paracrin regulation of testicular function //Acta Urol.Belg. 1989. - V.57, № 1. -P.47-58.

122. De Rooij D.G., Van Dissel-Emiliani F.M., Van Pelt A.M. Regulation of spermatogonialproliferation// Ann. N.Y. Acad. Sei. 1989. - V.564. -P.140-153.

123. Dilman V.M., Anisimov V.N., Ostroumova M.N. et al. Increase in life span of rats following polypeptide pineal extract treatment // Exp. Pathol. V.17. - 1979. - P.539-545.

124. Dowell S.F., Lynch G.R. Duration of the melatonin puis in the hypothalamus controls testicular function in pmealectomized mice (Peromyscus leucopus) //Biol. Reprod. 1987. - V.36. - P. 1095-1101.

125. Dubocovich M.L. Pharmacology and function of melatonin receptors // FASEB J. 1988. - V.2. - P.2765-2773.

126. Duncan M.J., Takahashi J.S., Dubocovich M.L. 212:>I. iodomelatonin binding sites in hamster brain membranes: pharmacological characteristics and regional distribution // Endocrinology. 1988. - V.122. -P.1825-1833.

127. Duraiswami P., Franchimont D., Boucher M., Thieblot M. Immunore-active luteinizing hormone-releasing hormone (LH-RH) in the bovine pineal gland // Horm. Metab. Res. 1976. - V.8. - P.232-233.

128. Franschini F., Mees B., Martini L. Pineal gland melatonin and the control of luteinizing hormone secretion // Endocrinology. 1968. -V.82. - P.919-924.

129. Fraschini F., Collu R., Martini L. Antigonadal effects of melatonin / The pineal gland. Wolstenholme GEW, Knight J. (Eds.). Edinburgh, 1971. - P.214-219.

130. Fritz I.B. Somatic cell-germ cell relationships in mammalian testes during development and spermatogenesis // Ciba Found. Symp. -1994. V.182. - P.271-274.

131. Glass J.D., Dolan P.L. Melatonin acts in the brain to mediate seasonal steroid inhibition of luteinizing hormone secretion in the white-footed mouse (Peromyscus leucopus) //Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1988. -V.188, № 3. - P.375-380.

132. Glass J.D., Knotts L.K. A brain site for the antigonadal action of melatonin in the white-footed mouse (Peromyscus leucopus): involvement of the immunoreactive GnRH neuronal system // Neuroendocrinol-ogy. 1987. - V.46, № 1. - P.48-55.

133. Glass I.D., Lynch G.R. Melatonin: identification of sites of antigonadal action in mouse brain // Science. 1981. - V.214. - P.821-823.

134. Glass J.D., Lynch G.R. Diurnal rhythm of response to chronic intrahy-pothalamic melatonin injections in the white-footed mouse, Peromys-cus leucopus II Neuroendocrinology. 1982. - V.35. - P.l 17-122.

135. Goldman B.D., Darrow J.M. The pineal gland and mammalian photo-periodism//Neuroendocrinology. 1983. - V.37. -P.386-396.

136. Goldman B., Hall V., Hollister C. et al. Diurnal changes in pineal melatonin content in four rodent species: relationship to photoperi-odism//Biol. Reprod. 1981. - V.24. - P.778-783.

137. Goldman B.D., Darrow J.M., Yogev L. Effects of timed melatonin in fusions on reproductive development in the Djungarian hamster (Pho-dopus sungorus) II Endocrinology. 1984. - V.l. 14. - P.2074-2083.

138. Goldstein R. Arginine-vasotocin (AVT) a pineal hormone in mammals // Rom. J. Endocrinol. - 1992. - V.30, № 1-2. - P.21-44.

139. Gondos B. Cellular interrelationships in the human fetal ovary and testis // Prog. Clin. Biol. Res. 1981. - V.598. - P.373-381.

140. Griswold M.D., Mably E.R., Fritz I.B. FSH stimulation of DNA synthesis in Sertoli cells in culture // Mol. Cell Endocrinol. 1976. - V.4. - P.139-149.

141. Gupta D., Haldar C., Coeleveld M., Roth J. Ontogeny, circadian rhythm pattern and hormonal modulation of 5-a-dihydrotestosterone receptors in the rat pineal // Neuroendocrinology. 1993. - V.57, № 1. - P.45-53.

142. Guraya S.S. The comparative cell biology of accessory somatic (or Sertoli) cells in the animal testis // Int. Rev. Cytol. 1995. - V.160. -P.163-220.

143. Gusek W., Buss H. Morphologische und histochemische Veränderungen der Zirbeldruse unter dem Einfluss von Prolan und nach Ovariek-tomie // Frankfurt. Z. Path. 1966. - V.75. - P. 172-186.

144. Hacker-Klom U.B. Diurnal changes in murine spermatogenesis // Z. Naturforsch. C. 1994. - V.49, № 7-8. - P.522-525.

145. Hagen S.C., Asher J.H.Jr. Effects of pinealectomy on reproduction in the Syrian hamster mutant anophtalmic white (wh) // Am. J. Anat. -1983. V.167, № 4. - P.523-538.

146. Haldar-Misra C., Pevet P. Influence of melatonin on the process of protein and/or peptide secretion in the pineal gland of the rat and hamster: An in vitro study // Cell Tiss. Res. 1983«. - V.231. - P.78-83.

147. Haldar-Misra C., Pevet P. Influence of testosterone on protein/peptide secretion as characterized by the formation of granular vesicles in rat and mouse pinealocytes. An in vitro study // J. Neural Transm. -19836. V.57, № 1/2. -P.lll-120.

148. Haneji T., Nishimune Y. Hormones and the differentiation of type A spermatogonia in mouse cryptorchid testis incubated in vitro II J. Endocrinol. 1982. - V.94, № 1. - P.43-50.

149. Heckert L., Griswold M.D. Expression of the FSH receptor in the testis // Recent Prog. Horm. Res. 1993. - V.48. - P.61-77.

150. Heindel J.J., Jackson F.L., Berkowitz A.S. Role of the pineal in the alteration of hamster Sertoli cell responsiveness to FSH during testicular regression//J.Androl. 1984. - V.5,№ 3. -P.211-215.

151. Herbert J., Hastings M.H., Juss T., Walker A.P. Pineal-brain interactions // J. Endocrinol. 1986. - V.l 11, Suppl. - P.5.

152. Hofman M.A., Skene D.J., Swaab D.F. Effect of pbotoperiod on the diurnal melatonin and 5-methoxytryptophol rhythms in the human pineal gland // Brain Res. 1995. - V.671, № 2. - P.254-260.

153. Hofman M.A., Swaab D.F. Diurnal and seasonal rhythms in the supra-chiasmatic nucleus of humans: Pap. World Conf. Hronobiol. and Chronother., Ferrara, Sept. 6-10, 1995 // Biol. Rhythm Res. 1995. -V.26, № 4. - P.401-402.

154. Hollander C.S., Prasad R., Richardson S. et al. Melatonin modulates hormonal release from organ cultures of rat hypothalamus // J. Neural Transm. Suppl. 1978. - V.13. -P.369.

155. Humlova M., Illnerova H. Melatonin entrains the circadian rhythm in the rat pineal N-acetyltransferose activity // Neuroendocrinology. -1990. V.52,№ 2. -P. 106-109.

156. Illnerova H., Hoffman K., Vanecek J. Adjustment of pineal melatonin and N-acetyltransferase rhythms to change from long to short photo-period in the Djungarian hamster (Phodopus sungorus) II Neuroendocrinology. 1984. - V.38. - P.226-231.

157. Ishizaka K., Oshima H. Organization and regulation of spermatogenesis // Nippon Rinsho. 1997. - V.55, № 11. - P.2816-2821.

158. Isobe Y., Nakajima K., Nisliino H. Arg-vasopressin content in the su-prachiasmatic nucleus of rat pups: Circadian rhythm and its development//Dev. Brain Res. 1995. - V.85, № 1. -P.58-63.

159. Izawa Y. The effect of pinealectomy at 20 days of age on the growth of the reproductive system of the male and female albino rat // Trans. Soc. Path. jap. 1926. - V.16. - P.72-78.

160. Jarrige J.F., Boucher D., Grizard G., Andre M. Effect of foetal pinealectomy on the pituitary gonadal axis in male rats // J. Physiol. (Paris). 1981. - V.77, № 8. - P.877-882.

161. Jayatilak P.G., Sheth A.R. Rhythmicity in rat testicular response to hCG in vitro: Effect of adrenalectomy or pinealectomy // Indian J. of Experim. biology. 1980. - V.18. -P.568-570.

162. Jeyakumar M., Suresh R., Krishnamurthy H.N., Moudgal N.R. Changes in testicular function following specific deprivation of LH in the adult male rabbit // J. Endocrinol. 1995. - V.147, № 1. - P. 111-120.

163. Johnson L.Y., Reiter R.J. The pineal gland and its effects on mammalian reproduction // Progr. Reprod. Biol. 1978. - V.4. - P.l 16-156.

164. Johnson L.Y., Vaughan M.K., Reiter R.J. et al. Acute effects of argin-ine-vasotocin on plasma and pituitary levels of prolactin in the male rat: influence of urethane anesthesia // Horm. Res. 1980b. - V.13. -P.109-120.

165. Kaipia A., Toppari J., Huhtaniemi I., Paranko J. Sex difference in the action of activin-A on cell proliferation of differentiating rat gonad // Endocrinology. 1994. - V.134, № 5. -P.2165-2170.

166. Kamberi I.A., Mical R.S., Porter J.C. Effect of anterior pituitary perfusion and intraventricular injection of catecholamines and indolamines on LH release //Endocrinology. 1970. - V.87. - P. 1.-12.

167. Kamberi I.A., Mical R.S., Porter J.C. Effect of melatonin and serotonin on the release of FSH and prolactin // Endocrinology. 1971. - V.88. -P.1288-1293.

168. Kanematsu N., Honma S., Katsuno Y., Honma K.-I. Immediate response to light of rat pineal melatonin rhythm: Analysis by in vivo mi-crodialysis // Amer. J. Physiol. 1994. - V.266, № 6, Pt.2. - P.R1849-R1855.

169. Kano T., Miyachi Y. Direct action of melatonin on testosterone and cyclic GMP production using rat testis tissue in vitro II Biochem. Bio-phys. Res. Common. 1976. - V.72. -P.969-975.

170. Kappers J.A. Melatonin, a pineal compound. Preliminary investigations on its function in the rat II Gen. comp. Endocrinol. 1962. - V.2. -P.610-611.

171. Karasek M. Ultrastructure of the epiphysis in white rats under normal conditions and after hypophysectomy // Pol. Endocrinol. 1971. -V.22. -P.13-26.

172. Karasek M. Quantitative changes in number of «synaptic» ribbons in rat pinealocytes after orchidectomy and in organ culture // J. Neural Transm. 1976. - V.38. -P.149-157.

173. Karasek M. Pineal-adenohypophysial relationships in the rate. An ultrastructural contribution //Endokrynol. Pol. 1978. - V.29. - P.371-379.

174. Karasek M. Ultrastructural study of the pineal-adenohypophysial relationships in rats // Progr. Brain Res. 1979. - V.52. - P. 195-198.

175. Karasek M., Marek K. Influence of estradiol on the ultrastructure of rat pineal gland // Acta Med. Pol. 1980a. - V.21. - P.355-356.

176. Karasek M., Marek K. Ultrastructure of the rat pineal gland after testosterone administration // Acta Med. Pol. 1980/?. - V.21. - P.349-350.

177. Karasek M., Pawlikowski M., Kappers J.A., Stepien H. Influence of castration followed by administration of LH-RH on the ultrastructure of rat pinealocytes // Cell Tissue Res. 1976. - V.167. - P.325-339.

178. Karasek M., Marek K., Kunert-Radek J. Ultrastructure of rat pinealocytes in vitro: influence of gonadotropic hormones and LH-RH // Cell Tissue Res. 1978. - V.195. - P.547-556.

179. Karasek M., Lewinski A., Hansen J.T., Reiter R.J. Influence of hy-pophysectomy and prolactin on the rat pinealocyte: a quantitative ultrastructural study // Reprod. Nutr. Develop. 1982a. - V.22. - P.785-792.

180. Karasek M., Bartke A., King T.S. et al. Effects of hereditary hypopituitarism and ectopic pituitary transplants on pinealocytes of the mouse: a quantitative ultrastructural study // Endocrinology. 1982b. -V.110.-P.2183-2185.

181. Karasek M., Bartke A., Hansen J.T. Influence of prolactin on pinealocytes of the mouse with hereditary hypopituitarism: a quantitative ultrastructural study //Mol. Cell. Endocrinol. 1983. - V.29. - P.101-108.

182. Keeney D.S., Ewing L.L. Effects of hypophysectomy and alteration in spermato genie function on Ley dig cell volume, number, and proliferation in adult rats // J. Androl. 1990. - V.ll, № 4. - P.367-378.

183. Kelly K.K., Goldman B.D., Zucker I. Gonadal growth and hormone concentrations in photoregressed Siberian hamsters: Pinealectomy var-sus photostimulation // Biol. Reprod. 1994. - V.51, № 5. - P.1046-1050.

184. Kennaway D.J., Sanford L.M., Godfrey B., Friesen H.G. Patterns of progesterone, melatonin and prolactin secretion in ewes maintained in four different photoperiods // J. Endocrinol. 1983. - V.97. - P.220-242.

185. Kinson G.A. Pineal factors in the control of testicular function // Adv. Sex. Horm. Res. 1976. - V.2. - P.87-139.

186. Kinson G.A., McDonald N.E., Lin C.C. The effect of pineal melatonin and serotonin on blood flow fractions and testosterone metabolism in cerebral organs of the male rats // Canad. J. Pharmacol. 1973. -V.51. -P.313-318.

187. Kitay J.I. Effects of pinealectomy on in ovary weight immature rats // Endocrinology. 1954. - V.54. - P. 114-116.

188. Kripke D.F., Elliott J.A., Youngstedt S.D., Smith J.S. Melatonin: Marvel or marker? // Ann. Med. 1998. - V.30, № 1. - P.81-87.

189. Kormano M., Penttila A. Distribution of endogenous and admistered 5-hydroxytryptamine in the rat testis and epididymis // Annls Med. exp. Biol. Fenn. 1968. - V.46. - P.468-473.

190. Kosaras B., Welker H.A., Vollrath L. Pineal «synaptic» ribbons and spherules during the estrous cycle in rats // Anat. Embryol. 1983b. -V.166. -P.219-227.

191. Laitinen J.T., Saavedra J.M. Putative melatonin receptors in the biological clock // 31 Int.Congr.Physiol.Sei., Helsinki, 9-14 July, 1989: Abstr.-Oulu, 1989.-P.466.

192. Lamb D.J. Genes involved in testicular development and function // World J. Urol. 1995. - V.13, № 5. - P.277-284.

193. Leadem C.A., Blask D.E. Evidence for an inhibitory influence of the pineal on prolactin in the female rat // Neuroendocrinology. 1981. -V.33. - P.268-275.

194. Leadem C. A., Blask D.E. Immmiocytochemical and ultrastructural correlates of the pineal inhibition of prolactin cell activity in blind-anosmic female rats // Cell Tissue Res. 1982a. - V.227. - P.343-350.

195. Leadem C.A., Blask D.E. A comparative study of the effects of the pineal gland on prolactin synthesis, storage and release in male and female blind-anosmic rats // Biol. Reprod. 19826. - V.26. - P.413-421.

196. Leblond C.P., Clermont Y. Spermatogenesis in rat, mouse, hamster and guinea pig as revealed by the periodic acid-Schiff-fuchsin sulfureus acid technique // Amer. J. Anat. 1952. - V.90. - P. 167-215.

197. Leway A., Brouillette A., Denizeau F., Lavoie M. Melatonin- and serotonin-stimulated release of vasopressin from rat neurohypophysis perifused in vitro / Progr. 61st Ann. Mtg. Endocrinol. Soc., St.Louis, Mo., 1979.-P.161.

198. Lin H.S., Wing T.Y. The influence of activation, removal or denervation of the pineal on the fine structure of the Leydig cell and seminal vesicle epithelium in golden hamsters // Cell Tissue Res. 1978. -V.191, № 3. - P.367-378.

199. Loir M., Le Gac F. Insulin-like growth factor-I and -II binding and action on DNA synthesis in rainbow trout spermatogonia and spermatocytes//Biol. Reprod. 1994. - V.51, № 6. - P. 1154-1163.

200. Luboshitzky R., Dharan M., Goldman D. et al. Seasonal variation of gonadotropins and gonadal steroids receptors in the human pineal gland //BrainRes. Bull. 1997. - V.44, № 6. -P.665-670.

201. Maddocks S., Parvinen M., Soder O. et al. Regulation of the testis // J. Reprod. Immunol. 1990. - V.18, № 1. - P.33-50.

202. Magueresse-Battistoni B.L., Morera A.M., Benahmed M. In vitro regulation of rat Sertoli cell inhibin messenger RNA levels by transforming growth factor-Pi and tumour necrosis factor a // J. Endocrinol. 1995. - V.146, № 3. - P.501-508.

203. Malmnas C.O. Monoamine precursors and copulatory behavior in the male rat // Acta physiol. scand., Supp. 1973. - V.395. - P.47-68.

204. Masquilier D., Foulkes N.S., Schlotter F. et al. La voie de l'AMPe lors de la spermatogenese: Role clef du gene CREM // M/S: Med. sci. -1995. V.ll, № 4. -P.616-620.

205. McLachlan R.I., Wreford N.G., Meachem S.J. et at. Effects of testosterone on spermatogenic cell populations in the adult rat // Biol. Re-prod. 1994. - V.51, № 5. - P.945-955.

206. Mess B., Tima L., Trentini G.P. The role of pineal principles in ovulation//Progr. Brain Res. 1973. - V.39. - P.251-259.

207. Mess B., Trentinin G.P., Timg L. Role of the pineal gland in the regulation of ovulation. Budapest: Acad.Kiado, 1978. - 104 p.

208. Meyerson B.J. Drags and sexual motivation in the female rat / Sandler and Gessa «Sexual behavior: pharmacology and biochemistry». N.Y.: Raven Press, 1975 - P.21-31.

209. Meyerson B.J., Sawyer Ch.H. Monoamines and ovulation in the rat // Endocrinology. 1968. - V.83. -P.170-176.

210. Miguez J.M., Martin F.J., Aldegunde M. Effect of single doses and daily melatonin treatments on serotonin metabolism in rat brain regions // J. Pineal Res. 1994. - V.17, № 4. - P.170-176.

211. Milcu S.M., Damian E., Ianas O. et al. Decrease in serum and testicular testosterone after administration of pineal polypeptides to rats // En-docr. exp. 1975. - V.9.-P.259-262.

212. Millar R.P., Aehnelt C., Rossier G. Higher molecular weight immu-noreactive species of luteinizing hormone releasing hormone: possible precursors of the hormone // Biochem. Biophys. Res. Comm. 1977. -V.74. - P.720-731.

213. Monesi V. Chromosome activities during meiosis and spermiogenesis // J. Reprod. Fertil. 1971. - V. 13. - P. 1-14.

214. Morgan P.J., Williams L.M. Central melatonin receptors: implication for a mode of action // Experientia. 1989. - V.45. - P.955-965.

215. Moszkowska A., Chitharel A., L'Heritier A. et al. Some new aspects of a sheep pineal gonadotropic inhibiting activity in in vitro experiments // Experientia. 1974. - V.30. - P.964-965.

216. Motta M., Fraschini F., Martini L. Endocrine effects of pineal gland and of melatonin // Proc. Soc. exptl. Biol. Med. 1967. - V.126. -P.431-435.

217. Murthy G., Melber A., Roginsky M.S. Sex steroid receptor activity in rat pineal // J. Neural Transm. -1978.-V.13.-P.384.

218. Naumenko E.V., Serova L.I. Diencephalic dopamine receptors and regulation of pituitary-testicular system// Brain Res. 1976. - V. 110. -P.537-545.

219. Neascu C. The mechanism of antigonadotropic activity of a polypeptide extracted from a bovine pineal gland // Rev. Roum. Physiol. 1972. -V.9. - P.161-169.

220. Oakberg E.F., Gosslee D.G., Huskins C., Cummings C.C. Do sperma-togolial stem cells have a circadian rhythm? // Cell Tissue Kinet. -1986. V.19, № 4. -P.367-375.

221. Oris R.J., Benson B., Cook B.F. Some antigonadotrophic effects of melatonin-free bovine pineal extracts in rats // Acta endocr. Copenh. -1974. V.76. - P.438-448.

222. Osman P., Wefsclien R.W., Moli J. Anti-gonadotropic and anti-growth effects of the pineal gland in immature female rats // Neuroendocrmol-ogy. (Basel). 1972. - V.10, № 2. -P.121-128.

223. Ota M., Hsieh K.S., Horiuchi S., Obara K. Isolation of nonmelatonin antigonadotropic substanses from bovine pineal powder // 5th int. Congr. of Endocr., Hamburg (Abstr.762). 1976.

224. Pangerl B., Pangerl A., Reiter R.J. Circadian variations of adrenergic receptors in the mammalian pineal gland: a review // J. Neural Transm. Gen. Sect. 1990. - V.81,№ 1. -P.17-29.

225. Pangerl A., Reiter R.J. Circadian variation of adrenoreceptors in the pineal gland of the Syrian hamster // J. Interdiscip. Cycle Res. 1991. -V.22, № 2. - P.165.

226. Parisi G. Ritmi biologici nell'uomo // Biol. ital. 1997. - V.27, № 4. -P.42-44.

227. Park M.K., Kogo H., Kawashima S., Wakabayashi K. Characterization of gonadotropin-releasing hormone (GnRH) immunoreactive protein in the rat pineal gland // J. Neurosci. Res. 1995. - V.41, № 3. - P.386-393.

228. Pavel S. Arginine vasotocin as a pineal hormone // J. Neural Transm. Suppl. 1978. - V.3. -P.135-155.

229. Pavel S. The mechanism of action of vasotocin in the mammalian brain/ The Pineal of Vertebrates Including Man, eds. J.Ariens-Kappers, P.Pevet. Amsterdam: Elsevier North-Holland, 1979. -P.445-458.

230. Pavel S., Goldstein R. Further evidence that melatonin represents the releasing hormone for pineal vasotocine // J. Endocrinol. 1979. -V.82, № 1. -P.l-6.

231. Petterborg L.J., Reiter R.J. Effect of photoperiod and pineal indoles on the reproductive system of young female white-footed mice // J. Neural Transm. 1982. - V.55. - P. 149-155.

232. Pevet P., Dogterom J., Buijs R.M. et al. Presence of a-MSH, AVT-, and LHRH-like compounds in the mammalian pineal and subcommissural organ and their relationship with the UM05R pineal fraction // Xth Conf. Europ. Comp. Endocr. Sorrento. 1979. - P.21.

233. Pevet P., Ebels I., Swaab D.F. et al. Presence of AVT-, a-MSH-, LHRH- and somatostatin-like compounds in the rat pineal fraction. An immunocytochemical study // Cell Tissue Res. 1980. - V.206. -P.341-353.

234. Pevet P., Masson-Pevet M., Hermes M.L.H.J. et al. How the pineal times the different seasonal functions //31 hit. Congr. Physiol. Sci., Helsinki, 9-14 July, 1989: Abstr. Oulu, 1989. - P.466.

235. Peyrat J.P., Neusy-Desole N., Gamier J. Changes in Ley dig cells and luteinizing hormone receptors in porcine testis during postnatal development // Endocrinology. 1981. - V.108, № 2. - P.625-631.

236. Piekut D., Knigge K.M. Immunohistochemical analysis of the rat pineal gland using antisera generated against luteinizing hormone-releasing hormone (LHRH) // J. Histochem. Cytochem. 1981. - V.29. - P.616-622.

237. Piekut D., Knigge K.M. Immunohistochemical analysis of the rat pineal gland using antisera generated against analogs of luteinizing hormone-releasing hormone (LHRH) // J. Histochem. Cytochem. 1982. -V.30.-P.106-110.

238. Pluciennik F., Joffre M., Doleze J. Follicle-stimulating hormone increases gap junction communication in Sertoli cells from immature rat testis in primary culture // J. Membrane Biol. 1994. - V.139, № 2. -P.81-96.

239. Redding T.W., Schally A.V. The distribution, halflife and excretion of tritiated luteinizing hormone-releasing hormone (LHRH) in rate // Life Sci.- 1973,-V.12.-P.23-25.

240. Reinstein S., Dotan A., Avivi L., Ashkenazi I. Daily rhythms in male mice meiosis // Chronobiol. Int. 1998. - V.15, № 1. - P. 13-20.

241. Reiter R.J. Effects of the pineal gland on reproductive organ growth and fertility in dual sensory deprived female rats // Endocr. exp. -1972. -V.6,№ 1.-P.3-10.

242. Reiter R.J. Circannual reproductive rhythm in mammals related to photoperiod and pineal function: a review // Chronobiologia. 1974. -V.l. -P.365-395.

243. Reiter R.J. Melatonin and human reproduction // Ann. Med. 1998. V.30, № 1. -P.103-108.

244. Reiter R.J., Richardson B.A., Vaughan M.K., Johnson L.Y. Pineal actions and mechanisms in reproductive physiology // Jikeikai Med. J. -1981. V.28 (Suppl.l). - P.31-46.

245. Robinson J.M., Botros M. The effect of 5-hydroxytryptamine and of monoamine oxidase inhibitors on sexual maturity // J. Endocrinol. -1961. V.22. - P. 165-176.

246. Ronin C. Gonadotropin receptors // Am. Endocr. (Paris). 1989. -V.50, № 5. - P.388-398.

247. Ruiz-Navarro A., Bianco-Rodriguez A., Gazquez-Qrtiz A., Jover-Moyano A. Synaptic ribbons in pinealocytes of castrated rats and rats treated with estradiol // Cell Biol. Int. Rep. 1982. - V.6. - P.629-633.

248. Saez J.M., Avallet O., Lejeune H., Chatelain P.G. Cell-cell communication in the testis II Horm. Res. 1991. - V.36, № 3-4. - P.104-115.

249. Sartin J., Bruot B., Orts R.J. Blinding induced alterations in pineal gland arginine vasotocin and pituitary and plasma LH, FSH and prolactin // Fed. Proc. 1978. - V.37. - P.437.

250. Sartin J.L., Bruot B.C., Oris R.J. Neurotransmitter regulation of argin-ine vasotocin release from rat pineal glands in vitro II Acta Endocr. -1979. V.91. - P.571-576.

251. Sharpe R.M. Paracrine control of the testis // Clin. Endocrinol. Metab. -1986. V.15, № 1. - P.185-207.

252. Sharpe R.M., Maddocks S., Kerr J.B. Cell-cell interactions in the control of spermatogenesis as studied using Leydig cell destruction and testosterone replacement // Am. J. Anat. 1990. - V.188, № 1. - P.3-20.

253. Shiotani Y. Interactions between the pineal gland and the hypothalamo-adenohypophysial system. An ultrastructural study // Jikeikai Med. J. -1981. V.28 (Suppl.l). - P.53-64.

254. Shochat T., Haimov I., Lavie P. Melatonin the key to the gate of sleep // Ann. Med. - 1998. - V.30, № 1. - P. 109-114.

255. Simonnet H., Thieblot L., Segal V., Melik T. Modifications du tractus genital femelle consecutives a repiphysectomie // J. Physiol. (Paris). -1951. V.43. -P.864-866.

256. Skinner M.K., McLachlan R.I., Bremner W.J. Stimulation of Sertoli cell inhibin secretion by the testicular paracrine factor PModS // Mol. Cell Endocrinol. 1989. - V.66, № 2. - P.239-249.

257. Skinner M.K., Norton J.N., Mullaney B.P. et al. Cell-cell interactions and the regulation of testis function // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1991. -V.637. - P.354-363.

258. Skinner D.C., Robinson J.E. Melatonin binds to the zona tuberalis, and not the pars distalis, of the ovine pituitary gland: Abstr. Sci.Meet. Physiol. Soc., Cambridge, 6-8 July, 1994 // J. Physiol. Proc. 1994. -V.480.-P.131.

259. Sollars P.J., Kimble D.P., Pickard G.E. Restoration of circadian behavior by anterior hypothalamic heterografts // J. Neurosci. 1995. -V.15, № 3, Pt.2. - P.2109-2122.

260. Stankov B., Fraschmi F., Reiter R.J. Melatonin binding sites in the central nervous system // Brain Res. Rev. 1991. - V.16, № 3. -P.245-256.

261. Stankov B., Reiter R.J. Melatonin receptors: Current status, facts, and hypotheses // Life Sci. 1990. - V.46, № 14. - P.971-982.

262. Starkey S.J., Walker M.P., Beresford I.J.M., Hagan R.M. Modulation of the rat suprachiasmatic circadian clock by melatonin in vitro II NeuroReport. -1995. V.6, № 14. - P. 1947-1951.

263. Siunova A., Vanecek J. Melatonin inhibits GnRH-induced increase of cFOS immunoreactivity in neonatal rat pituitary // J. Neuroendocri-nol. 1997. - V.9, № 2. - C.135-139.

264. Sutcliffe J.G., Carson M., Lecea L.de et al. Serotonin receptors and cir-cadian rhythms // J. Neurochem. 1995. - V.64. - P.875.

265. Tahka K.M. Local control mechanisms in the testis // Int.J.Dev.Biol. -1989. V.33,№ 1. - P.141-148.

266. Takeo Y., Anazawa M., Shirama K. et al. Pinealectomy and sexual rhythm in female rats // Endocr.jap. 1975. - V.22. - P.219-224.

267. Tamai K.T., Monaco L., Alastalo T.P. et al. Hormonal and developmental regulation of DAX-1 expression in Sertoli cells // Mol . Endocrinol. 1996. - V.10, № 12. - P.1561-1569.

268. Tamarkin L., Baird C.J., Almeida O.F.X. Melatonin: a coordinating signal for mammalian reproduction? // Science. 1985. - V.227. -P.714-719.

269. Thieblot L., Blaise S. Influence de la glande pineale sur la sphere genitale // Prog.Brain Res. 1965. - V.10. - P.577-584.

270. Thieblot L., Boucher D., Franchimont P. et al. Influence of two polypeptide fractions of pineal extract, separated by chromatography in pituitary and plasma gonadotrophins // 5th int. Congr. of Endocr., Hamburg (Abstr., 16). 1976.

271. Thumann A., Bustos-Obregon E. An «in vitro» system for the study of rat spermatogonial proliferative control // Andrologia. 1978. - V.10, № 1. - P.22-25.

272. Thumann A., Bustos-Obregon E. «In vitro» assay of rat spermatogonial chalone in prepubertal seminiferous tubules // Andrologia. 1982. -V.14, № 1. - P.34-42.

273. Tio S., Koppenaal D., Bardin W.C., Cheng C.Y. Purification of gonadotropin surge-inhibiting factor from Sertoli cell-enriched culture medium//Biochem. andBiophys. Res. Commun. 1994. - V.199, № 3. -P.1229-1236.

274. Trentini G.P., Tima L., Mess B. Effect of bilateral cervical sympathectomy on ovulation and fertility of rats bearing frontal hypothalamic de-afferentation and anovulatory syndrome // Horm. Res. 1973. - V.4. -P.349-359.

275. Trentini G.P., Botticelli A.R., Sannicola Botticelli C., Barbanti Silva C. Decreased ovarian LH incorporation after melatonin treatment // Horm. Metab. Res. 1976a. - V.8. -P.234-236.

276. Trentini G.P., De Gaetani C.F., Martini L., Mess B. Effect of pinealec-tomy and bilateral cervical ganglionectomy on serum LH levels in constant estrous-anovulatory rats // Proc. Soc. exptl. Biol. Med. 19765. -V.153. - P.490-494.

277. Troiano L., Fustini M.F., Lovato S. et al. Apoptosis and spermatogenesis: Evidence from an in vivo model of testosterone withdrawal in the adult rat // Biochem. and Biophys. Res. Com num. 1994. - V.202, № 3. — P. 1315-1321.

278. Vacas M.I., Cardinali D.P. Diurnal changes in melatonin binding sites of hamster and rat brains. Correlation with neuroendocrine responsiveness to melatonin // Neurosci. Lett. 1979a. - V.15. - P.259-263

279. Vacas M.I., Cardinali D.P. Effect of castration and reproductive hormones on pineal serotonin metabolism in rats // Neuioendocrinology. -1979b. V.28.-P.187-192.

280. Vacas M.I., Lowenstein P.R., Cardinali D.P. Characterization of a cyto-zol progesterone receptor in bovine pineal gland // Neuroendocrinol-ogy. 1979.-P.84-92.

281. Vanecek J., Vollrath L. Developmental changes and daily rhythm in melatonin induced inhibition of 3'-5'-cyclic AMP accumulation in the rat pituitary // Endocrinology. 1989. - V.126, № 3. - 1\ 1509-1513.

282. Vanecek J., Pavlik A., Illnerova H. Hypothalamic melatonin receptor sites revealed by autoradiography // Brain Res. 1987. - V.433. -P.359-363.

283. Vaskovsky B.V., Kishinevsky R.N., Mikhaleva I.I. et al. Bioactive peptides from bovine pineal gland and bone marrow extracts/ Chemistry of peptides and proteins. Vol.5/6. - Pt.B.Aachen. DWI Reports, 1993.

284. Vaughan M.K. Arginine vasotocin in vertebrate reproduction/ The pineal gland. Vol.2. Reproductive effects. Ed. R.J.Reiter. CRC Press, Boca Raton, Florida, 1982. - P.125-164.

285. Vaughan M.K., Reiter R.J. Transient hypertrophy of the ventral prostate and coagulating glands and accelerated thymic involution following pinealectomy in the mouse // Tex. Rep. Biol. Med. 1972. -V.29. - P.579-586.

286. Vaughan M.K., Benson B., Morris J.T. Inhibition of compensatory ovarian hypertrophy in mice by 5-hydroxytryptamine and melatonin // J. Endocrinol. 1970. - V.47. -P.397-398.

287. Vaughan M.K., Reiter R.J., McKinney T., Vaughan G.M. Inhibition of growth of gonadal dependent structures by arginine vasotocin and purified bovine pineal fractions in immature mice and hamsters // Int. J. Fertil. 1974. - V.19. -P.103-106.

288. Verhoeven G. Paracrine interactions between the interstitial and the tubular compartment of the testis // Bull. Assoc. Anat. (Nancy). 1991. -V.75, № 228. - P.167-169.

289. Vihko K.K. LaPolt P.S., Nishimori K., Hsueh A.J. Stimulatory effects of recombinant follicle-stimulating hormone on Leydig cell function and spermatogenesis in immature hypophysectomized rats // Endocrinology. 1991. - V.129, № 4. - P.1926-1932.

290. Vivien-Roels B. Role of the pineal gland in the environmental control of seasonal reproduction in vertebrates // Gen. and Comp. Endocrinol. -1989. V.74, № 2. - P.239.

291. Vivien-Roels B. Melatonine et photoperiodism: Rapp. Reun.Annu. Soc. ecophysiol. et Roun.Assoc.physiol., Roscoff, 27-28 Sept., 1991 // Bull. Soc. ecophysiol. 1991. - V.16, № 1-2. -P.27-34.

292. Vornberger W., Prins G., Musto N.A., Suarez-Quian C.A. Androgen receptors distribution in rat testis: New im.plica.tons for androgen regulation of spermatogenesis // Endocrinology. 1994. - V.134, № 5. -P.2307-2316.

293. Weinbauer G.F., Nieschlag E. Gonadotroph in control of testicular germ cell development// Adv. Exp. Med. Biol. 1995. - V.377. -P.55-65.

294. Weissbach L., Ibach B. Quantitative parameters for light inikroscopic assessment of the tubuli seminiferi // Fertil. Steril. 1976. - V.27, № 7. - P.836-847.

295. Wheaton J.E. Immunoreactive luteinizing hormone-releasing hormone (LHRH) in ovine pineal glands // Horm. Metab. Res. 1980. - V.12. -P.314-317.167

296. White W.F., Hedlund M.T., Weber G.F. et al. The pineal gland: a supplemental source of hypothalamic-releasing hormones // Endocrinology. 1974. - V.94. - P.1422-1426.

297. Wolgemuth D.J., Rhee K., Ravnik S.E. Controle genetique de la différenciation et de la proliferation cellulaire pendant la gametogenese chez las mammifères // Contracept.-fertil.-sex. 1994. - V.22, № 10. -P.623-626.

298. Wurtman R.J., Axelrod J., Chu E.W. Melatonin, a pineal substance effect on the rat ovary // Science. 1963. - V.141. - P.277-278.

299. Yellou S.M., Bittman E.L., Lehman M.N. et al. Importance of duration of nocturnal melatonin secretion in determining the reproductive response to inductive photoperiod in the ewe // Biol. Reprod. 1985. -V.32. - P.525-529.

300. Ying C., Zhang Z., Ying S.-Y. Expression and localization of activin (3A-subunit and activin receptors in TM3, a mouse ley dig cell line // Endocrine Res. 1995. - V.21, № 4. - P.815-824.

301. Yoshida K., Oshima H. The regulation of testicular function by paracrine mechanism. jap // Nippon Naibunpi Gakkoi Zasshi. -1994. V.70, № 10. - P.1047-1054.

302. Zong S.D., Zhu L.J., Grima J. et al. Cyclic and postnatal developmental changes of testis in the rat seminiferous epithelium an immunohisto-chemical study // Biol. Reprod. - 1994. - V.51, № 5. - P.843-851.