Изучение антигенной структуры различных серовариантов возбудителя псевдотуберкулеза с использованием поли- и моноклональных антител тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.07, кандидат биологических наук Самелия, Жанна Гурамовна

• Самелия, Жанна Гурамовна
• кандидат биологических наук
• 2002

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Самелия, Жанна Гурамовна

ВВЕДЕНИЕ.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

ГЛАВА 1. ПРИНЦИПЫ СЕРОТИПИРОВАНИЯ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ БАКТЕРИАЛЬНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ.

ГЛАВА 2. АНТИГЕННАЯ СТРУКТУРА ИЕРСИНИЙ.

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

ГЛАВА 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

3.1. Бактериальные штаммы.

3.2. Антигены.

3.3. Клеточные линии.

3.4. Культуральные среды.

3.5. Реактивы и растворы.

3.6. Оборудование и приборы.

3.7. Методы иммуноанализа.

3.7.1. Непрямой твердофазный иммуноферментный анализ (ТИФА).

3.7.2. Эпитопный анализ.

3.7.3. Конкурентный ТИФА.

3.7.4. Сэндвич-ТИФА.

3.7.5. ДОТ - иммуноанализ (ДИА).

3.7.6. Иммуноблот.

3.8. Электрофорез.

3.9. Лабораторные животные.

3.10. Статистические методы.

ГЛАВА 4. ПОЛУЧЕНИЕ И ХАРАКТЕРИСТИКА ПОЛИКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ К ОТДЕЛЬНЫМ СЕРОВ АРИАНТ AM Y.pseudotuberculosis.

4.1. Применение биомоделей определенного генотипа.

4.2. Индукция направленной толерантности при неонатальной иммунизации лабораторных мышей.

ГЛАВА 5. ГИБРИДОМЫ - ПРОДУЦЕНТЫ МКА К АНТИГЕНАМ Y.pseudotuberculosis.

5.1. Оптимизация условий культивирования гибридом.

5.2. Клонирование и особенности скрининга позитивных клонов.

5.3. Изучение стабильности антителопродуцирующейактивности гибридом

ГЛАВА 6. ИММУНОХИМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА АНТИГЕНОВ. ОПРЕДЕЛЯЮЩИХ ДИФФЕРЕНЦИАЦИЮ БАКТЕРИЙ У,pseudotuberculosis НА ОТДЕЛЬНЫЕ СЕРОВАРИАНТЫ.

6.1. Эпитопный анализ.

6.2. Молекулярная организация и природа эпитопов, взаимодействующих с МКА.

6.3. Специфичность МКА и иммунохимические свойства узнаваемых ими компл ементарных л иган д ов.

6.4. Сравнительная иммунореактивность некоторых белков Y'.pseudotuberculosis со сходной электрофоретической подвижностью.

ГЛАВА 7. ИЗУЧЕНИЕ АКТИВНОСТИ И СПЕЦИФИЧНОСТИ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ ИММУНОГЛОБУЛИНОВ В ТИФА ПРИ ВЗАИМОДЕЙСТВИИ С ВОЗБУДИТЕЛЯМИ ИЕРСИНИОЗОВ И ДРУГИМИ МИКРООРГАНИЗМАМИ.

7.1. Подбор компонентов для конструирования экспериментальной иммуноферментной моноклональной тест-системы.

7.2. Применение экспериментальной иммуноферментной моноклональной тест-системы для иммунохимической характеристики и определения сероваропринадлежности «свежевыделенных» штаммов Y.pseudotuberculosis

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Изучение антигенной структуры различных серовариантов возбудителя псевдотуберкулеза с использованием поли- и моноклональных антител»

АКТУАЛЬНОСТЬ ПРОБЛЕМЫ. Псевдотуберкулез привлекает к себе внимание исследователей в связи с ростом заболеваемости (47, 64, 90, 129) и все более широким его распространением (67, 129, 138, 225, 274). Клинические проявления этой инфекции отличаются полиморфизмом и сходны с симптомами целого ряда других заболеваний (129, 225), что значительно затрудняет диагноз, для подтверждения которого необходимы результаты бактериологического и серологического анализов.

Бактериологические методы трудоемки, длительны и малорезультативны. Положительные находки регистрируются в 26-79% случаев во время эпидемических вспышек и в 10-15% случаев при спорадических заболеваниях (129. 162).

Значительно более эффективными являются различные методы серодиагностики: реакция непрямой гемагглютинации (20, 56, 63, 158); реакция торможения непрямой гемагглютинации (84, 127, 159); реакция коагглютинации (18, 81, 161); метод флуоресцирующих антител (19, 34, 35, 36, 57, 137, 159).

В последние годы разработаны иммуноферментные тест-системы, обладающие более высокой чувствительностью, однако диапазон их диап-ioci ическон значимости ограничен определением только одного из серовариантов возбудителя (хотя и наиболее часто встречающегося) (7, 53, 82, 123, 125, 147, 160) или относительно невысокой активностью за счет использования адсорбированных поликлональных антител (147). Из коммерческих препаратов для выявления псевдотуберкулеза в настоящее время нам известен только латексный диагностикум, реализуемый предприятием «Биолот» (Санкт-Петербург). Для серотипирования возбудителя псевдотуберкулеза, имеющего весьма существенное значение для эпидемического надзора и анализа путей передачи инфекции и источника инфицирования, современные тест-системы для этих целей отсутствуют.

Сложности разработки препаратов для диагностики псевдотуберкулеза связаны прежде всего с необходимостью получения новых уточненных научно-обоснованных экспериментальных данных об антигенной структуре Y.pseudotuberculosis с учетом последних достижений иммунологии, иммунохимии, биотехнологии. Проведение таких исследований с получением результатов, имеющих как фундаментальное, так и прикладное значение весьма актуально и возможно лишь с привлечением комплекса современных методических подходов, включающих использование биомоделей определенного генотипа, направленного иммуногенеза, связанного с толерогенным эффектом конкретных антигенов, и гибридомной технологией.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ - выявление и иммунохимическая характеристика видо- и серовароспецифических антигенов возбудителя псевдотуберкулеза с помощью поли-, моноклональных и моноспецифических антител и экспериментальное обоснование возможности их практического применения.

ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ

1. Разработать эффективные схемы и способы иммунизации биомоделей для получения моноспецифических сывороток к отдельным серовариангам возбудителя псевдотуберкулеза.

2. Получить панель антителопродуцирующих гибридом-продуцентов МКА к видо- и серовароспецифическим антигенам/эпитопам псевдотуберкулезных бактерий, изучить стабильность и особенность пролиферации клеточных линий in vitro и in vivo.

3. На основании результатов анализа продуктов гибридизации определить антигены возбудителя псевдотуберкулеза, обеспечивающие клональное доминирование в иммунном ответе у линейных животных, после введения им микробных взвесей отдельных сероваров ^pseudotuberculosis. 4. С помощью набора разноэпитопных МКА выявить антигены Y.pseudotuberculosis, ответственные за его дифференциацию на отдельные сероварианты, а также изучить особенности их экспрессии бактериями псевдотуберкулеза.

5. С использованием современных методов иммунохимического анализа исследовать природу и молекулярную организацию комплементарных МКА лигандов.

6. На основе МКА сконструировать и апробировать в лабораторных условиях экспериментальную моноклональную иммуноферментную тест-систему для обнаружения и серотипирования Y.pseudotuberculosis.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА. Впервые продемонстрирована принципиальная возможность манипуляции иммунным ответом биомоделей, позволяющая варьировать специфичность синтезируемых животными антител в заданном направлении по .принципу «управляемого» иммунногенеза при получении антисывороток к отдельным сероварам Y.pseudotuberculosis. Впервые с помощью гибридомной биотехнологии генерирована панель разноэпитопных МКА к видо- и серовароспецифическим детерминантам возбудителя псевдотуберкулеза. Впервые проведен анализ иммунного ответа у лабораторных животных, иммунизированных бактериальными клетками Y.pseudotuberculosis I-VI сероваров, по сравнительному изучению специфической активности поликлональных сингенных антисывороток, полученных с применением различных схем обработки биомоделей, включая неонатальное введение толерогенов, а также клонального потомства спленоцитов мышей BALB/c, иммунных к серологически активным антигенам отдельных серогрупп микроорганизма. Получены приоритетные данные о синтезе бактериями псевдотуберкулеза специфических полипептидов, детерминирующих видо- и сероваропринадлежность штаммов Y.pseudotuberculosis, имеющие важное теоретико-экспериментальное значение для совершенствования внутривидовой классификации псевдотуберкулезных микробов и их дифференциации с другими патогенными иерсиниями. Новыми являются сведения о взаимосвязи серологической иммунореактивности термостабильных О-антигенов возбудителя псевдотуберкулеза с их белковыми компонентами, а также пол и д етерми н a tit н о vi характере специфичности псевдотуберкулезных микробов.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ РАБОТЫ заключается в конструировании экспериментальных моноклональных иммуноферментных тестсистем для идентификации и серотипирования штаммов Y'.pseudotuberculosis. Получен оригинальный набор стабильных гибридных клеточных линий, секретирующих МКА к видо- и серовароспецифическим эпитопам Y.pseudotuberculosis, которые могут быть использованы в качестве инструмента при изучении структурно-функциональной и молекулярной организации серологически активных антигенов Y.pseudotuberculosis.

Впервые с помощью индукции серологической толерантности к неспецифическим для псевдотуберкулезных бактерий эпитопам получены поликлональные моноспецифические сыворотки к отдельным серовариантам возбудителя псевдотуберкулеза, не нуждающиеся в проведении дополнительной адсорбции, а указанный методический прием может быть перспективным для изучения иммуно- и патогенеза псевдотуберкулезной инфекции.

Оптимизированы отдельные этапы технологии создания антителопродуцирующих гибридом, позволяющие значительно увеличить количество выживающих клонов-продуцентов МКА.

По материалам диссертации составлены «Методические рекомендации «Получение моноклональных антител для серотипирования штаммов Yersinia pseudotuberculosis в иммуноферментном анализе», которые одобрены Ученым советом РосНИПЧИ «Микроб» (Протокол № 6 от 06.07.2001 г.) и утверждены директором института (06.07.2001 г.).

Материалы диссертации используются при чтении лекций по иммунологии и лабораторной диагностике инфекционных заболеваний на курсах специализации врачей и биологов по особо опасным инфекциям и курсах усовершенствования врачей по бактериологии, иммунологии и эпидемиологии при РосНИПЧИ «Микроб».

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ:

1. Получение поликлональных моноспецифических антисывороток, взаимодействующих в ТИФА с отдельными (II, III, IV) сероварами Y.pseudotuberculosis, возможно при неонатальной обработке по определенной схеме биомоделей микробными взвесями Y.pestis EV.

2. Комплементарные МКА видо- и серовароспецифические секвенциальные (линейные) эпитопы возбудителя псевдотуберкулеза локализованы на термостабильных сложноорганизованных полипептидах, которые имеют преимущественно термоиндуцибельный характер синтеза и представляют собой белковые компоненты термостабильных О-антигенов, детерминируя их серологическую иммунореактивность.

3. Внутривидовая классификация, а также дифференциация Y'.pseudotuberculosis от других патогенных иерсиний, возможна на основе способности бактерий синтезировать серовароспецифические белки.

4. Антигены белковой природы, экспрессируемые разными сероварами бактерий псевдотуберкулеза и обладающие сходной электрофоретической подвижностью могут быть иммунохимически неидентичными.

5. Сконструированные на основе МКА экспериментальные иммуноферментные тест-системы позволяют идентифицировать от 7,6-104 до 3,Ы0Э - 6Л-103 м.кл./мл штаммов Y.pseudotuberculosis, в зависимости от сероваропринадлежности, и проводить их серотипирование.

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ. Материалы диссертации были представлены на:

- Юбилейной научно-практической конференции, посвященной 70-летию НИИ микробиологии МО РФ, Киров, 1998 г.;

- Международном симпозиуме по стратегии в борьбе с чумой, Китайская Народная Республика, Байчен, 1999 г.;

- Российской научно-практической конференции, посвященной 75-летию со дня рождения член-корр. АМН СССР профессора Н.Р. Иванова. Саратов.

2000 г.;

- Международной конференции «Современная этиотропная терапия инфекционных болезней человека», Гомель, Республика Беларусь, 2000 г.;

- Научно-практической конференции, посвященной 10-летию суверенитета Республики Казахстан и 50-летию Талдыкорганской противочумной службе,

2001 г.;

10

- Российской научно-практической конференции, посвященной 100-летию Астраханской противочумной станции МЗ РФ, Астрахань, 2001 г.;

- итоговых научных конференциях РосНИПЧИ «Микроб», Саратов, 2000, 2001, 2002 г.

Настоящая работа поддержана грантами РФФИ «Теоретико-экспериментальное исследование структурно-функциональной организации и иммунобиологических свойств видо- и серовароспецифических детерминантов Yersinia pseudotuberculosis и их вклад в индукцию иммунного ответа» № 01-04-48048 и № 02-04-06637.

ПУБЛИКАЦИИ. По теме диссертации опубликовано 10 работ.

ОБЪЕМ И СТРУКТУРА РАБОТЫ. Диссертация состоит из введения, обзора литературы (2 главы), собственных исследований (5 глав), заключения, выводов и списка литературы, включающего 290 источников, из них зарубежных - 124. Объем диссертации составляет 158 страниц машинописи, включая 27 рисунков и 12 таблиц.

Заключение диссертации по теме «Микробиология», Самелия, Жанна Гурамовна

выводы

1. Разработаны схемы неонатальной иммунизации и реиммунизации патогенными иерсиниями и некоторыми другими микроорганизмами аутбредных и инбредных мышей линии BALB/c для индукции направленной иммунологической толерантности к неспецифическим для Y.pseudotuberculosis антигенам/эпитопам. позволяющие получать моноспецифические антисыворотки с высокими титрами антител к отдельным (II, III, IV) серовариантам возбудителя псевдотуберкулеза без дополнительной адсорбции.

2. Повышена эффективность гибридизации миеломных клеток и иммунных спленоцитов за счет внесения изменений в состав селективной среды и подбора оптимальных образцов фетальной сыворотки. Получена панель стабильных гибридных линий, продуцирующих МКА к видо- и серовароспецифическим детерминантам Y.pseudotuberculosis, изучены иммунохимические свойства моноклональных иммуноглобулинов, а также природа и молекулярная организация соответствующих комплементарных лигандов.

3. С помощью набора разноэпитопных МКА в иммуноферментном анализе и иммуноблотгинге выявлена способность бактерий псевдотуберкулеза экспрессировать термостабильные видо- и серовароспецифические полипептиды, которые состоят из одной, двух или трех субъединиц, стабилизированных в зрелой молекуле дисульфидными связями, и формируют в ряде случаев различающиеся по специфичности антигенные детерминанты, имеющие преимущественно термоиндуцибельный характер синтеза.

4. В термостабильных О-антигенах псевдотуберкулезных микробов обнаружены, идентифицированы и частично охарактеризованы белковые компоненты, обеспечивающие их серологическую иммунореактивность, а также бактерий Y.pseudotuberculosis в целом.

5. Доказана серологическая и иммунохимическая неидентичность некоторых белков со сходной электрофоретической подвижностью, принадлежащих к разным сероварам Y.pseudotuberculosis.

6. На основе видо- и серовароспецифических МКА сконструирована и успешно апробирована в лабораторных условиях экспериментальная иммуноглобулиновая иммуноферментная тест-система (сэндвич-ТИФА) для выявления и серотипирования от 7,6-104 до 3,1-105 - 6, МО5 м.кл./мл бактерий Y.pseudotuberculosis.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Псевдотуберкулез встречается преимущественно в районах Дальнего Востока и поэтому зачастую рассматривается как природно-очаговая инфекция (64, 90, 129). Однако в последние годы спорадические случаи этого заболевания регистрируются также в отдельных регионах Европейской части России (Воронежской, Липецкой, Ленинградской областях, Ставропольском крае) (47, 129). Учитывая полиморфизм клинических проявлений (127, 129), неуклонный рост заболеваемости (47, 129), а также серологическое родство с другими патогенными для человека иерсиниями (127, 129), чрезвычайно важным для эффективного эпидемиологического мониторинга этой инфекции является не только своевременное выявление возбудителя и его дифференциация с близкородственными микроорганизмами, но и определение сероваропринадлежности выделенных штаммов. С этой целью ранее была предложена реакция агглютинации на стекле или ее объемный вариант с гипериммунными * сыворотками кроликов, иммунизированными убитыми кипячением микробными клетками Y.pseudotuberculosis (162, 163). В последние годы предпринимались отдельные попытки конструирования новых высокочувствительных современных иммуноглобулиновых тест-систем для обнаружения возбудителя псевдотуберкулеза на основе поликлональных адсорбированных антител (7, 147, 160). Однако они не нашли широкого применения в лабораторной диагностике псевдотуберкулеза из-за относительно низкой активности и нестандартности поликлональных реагентов, которые к тому же оказались малопригодными для серотипирования штаммов Y.pseudotuberculosis.

Современное состояние иммунологии позволяет подойти к решению проблемы получения специфических антител, в том числе имеющих диагностическое значение, с помощью таких методических подходов как использование для иммунизации биомоделей определенного генотипа, направленного иммуногенеза и гибридомной биотехнологии. В последнем случае помимо строгой специфичности, обеспечивается такой важный показатель как стандартность. Кроме того, разноэпитопная направленность и уникальная специфичность моноклональных антител дает возможность изучить на современном молекулярном уровне антигенную структуру Y.pseudotuberculosis.

В связи с этим на первом этапе исследований была предпринята попытка использования в качестве биопродуцентов специфических антител мышей определенного генотипа Ь, с, h-2d (BALB/c). Выбор этой линии животных связан с данными ряда авторов (23, 190, 194, 257) о преимущественной выработке у них антител к ограниченному спектру антигенов, а также возможности получения антител в препаративном количестве за счет индукции асцитообразования известными и доступными плазмацитомами. В результате действительно удалось значительно сузить круг антигенов вызывающих антительный ответ у мышей определенного генотипа. Причем иммунодоминантным антигеном микробных клеток псевдотуберкулезного микроба независимо от их сероваропринадлежности оказался белок с м.м. 38,0±2 kDa, который содержал как видоспецифические, так и гетерогенные антигенные детерминанты, обуславливающие наряду с некоторыми компонентами ЛПС кросс-реактивные реакции со всеми сероварами псевдотуберкулезного микроба и ряда других близкородственных в антигенном отношении бактерий.

Более успешные результаты принес второй методический подход, связанный с индукцией направленной толерантности при неонатальной иммунизации лабораторных мышей.

В качестве толерогенов были выбраны взвеси микробных клеток S.typhi. S.paratyphi и Y.pestis EY, т.е. тех микроорганизмов, которые используются в качестве адсорбентов для удаления кросс-реактивных антител при получении псевдотуберкулезных поливалентных иммуноглобулинов (147). Последующая реиммунизация 4-недельных мышей клетками Y.pseudotuberculosis II серогруппы приводила к образованию сывороточных антител в высоких титрах к видоспецифическим антигенам возбудителя псевдотуберкулеза и их отсутствию к гетерогенным близкородственным в антигенном отношении микроорганизмам, использованным для неонатальной инъекции.

Индукция толерантности при обработке мышей отдельными видами микроорганизмов (S.typhi, S.paratyphi, Y.pestis EY) не всегда приводила к желаемому эффекту и зависела от схемы и дозы введения толерогена. В частности, инъекция новорожденным животным МО3"4 м.кл. Y.pestis EY полностью ингибировала антителообразование как к толерогену, так и к другим микроорганизмам, в том числе возбудителю псевдотуберкулеза. В то же время увеличение дозы чумного микроба в 2,5-10 раз позволило получить специфичекие антитела к отдельным (II, III, IV) сероварам Y.pseudotuberculosis. Моноспецифичность поликлональных псевдотуберкулезных иммуноглобулинов была подтверждена в иммуноблоте с электрофоретически разделенными лизатами бактерий Y.pseudotuberculosis соответствующих сероваров.

Как уже отмечалось, МКА являются эффективным инструментом при проведении научных исследований фундаментального и прикладного плана в биологии и медицине.

В связи с вышеизложенным, одной из главных задач настоящей работы явилось получение панели разноэпитопных МКА для изучения антигенной структуры Y.pseudotuberculosis и последующего конструирования на их основе экспериментальной иммуноферментной тест-системы для детекции и серотипирования бактерий псевдотуберкулеза.

Как известно, эффективность гибридизации во многом определяется правильностью подбора условий слияния и культивирования растущих гибридом, поскольку различные серии ингредиентов, входящих в состав селективной среды, значительно варъируют по качеству (94, 97, 98, 107, 116, 121, 149). Поэтому в предварительных экспериментах были испытаны несколько образцов FCS - одного из основных компонентов культуральных сред, а также исследована возможность исключения из состава среды на начальных этапах после фузии аминоптерина. Сравнительная оценка проводилась по количеству выживших гибридом и их способности к продукции МКА. Оказалось, что оба оценочных параметра значительно возрастали в случае отсутствия аминоптерина в среде культивирования и использования FCS фирмы «Flow Laboratories», причем по темпам роста гибридные клетки, выращенные в этих условиях также значительно опережали остальные испытанные варианты.

Оптимизация стадии культивирования гибридом in vitro позволила перейти непосредственно к получению гибридом-продуцентов МКА к антигенам возбудителя псевдотуберкулеза. С этой целью было проведено 5 гибридизаций спленоцитов мышей BALB/c, иммунизированных клетками Y.pseudotuberculosis отдельных сероваров, и сингенной плазмацитомы Sp. 2/0-Ag.8, в результате которых, после клонирования (97, 98, 116, 121, 149), было отобрано 19 стабильных клеточных линий. МКА 15 из них реагировали в ТИФА исключительно со штаммами конкретного серовара, т.е. узнавали серовароспецифические детерминанты, МКА двух гибридом взаимодействовали с бактериями Y.pseudotuberculosis независимо от их сероваропринадлежности, т.е. были направлены к видоспецифическому эпитопу возбудителя псевдотуберкулеза, а МКА двух клонов давали положительные реакции с клетками двух серогрупп, т.е. оказались кросс-реактивными. Последующее тестирование специфической активности на большом количестве штаммов (74) микроорганизмов семейства Enterobacteriaceae, в том числе Y.pseudotuberculosis, подтвердило направленность МКА соответствующих гибридом именно к видо- или серовароспецифическим эпитопам указанного возбудителя.

На следующем этапе образцы наиболее активных моноклональных иммуноглобулинов были использованы для конструирования сэндвич-варианта экспериментальной иммуноферментной тест-системы.

Каждая из серий конъюгатов сероваро- и видоспецифических МКА с ферментом (пероксидазой), являющихся основой этого варианта ТИФА, имела рабочее разведение не менее чем 1:1000 и сохраняла исходную активность при температуре хранения -20°С в течении 2,5 лет (срок наблюдения). Чувствительность тест-системы как при обнаружении, так и серотипировании Y'pseudotuberculosis. варьировала в зависимости от сероваропринадлежности тестируемых штаммов от 7,6-104 м.кл./мл до'3,1-105 - 6,1-Ю5 м.кл./мл, соответственно степени экспрессии узнаваемых моноклональными антителами конкретных антигенных детерминант. Успешные испытания иммуноферментной тест-системы на референтных и природных штаммах известных по паспортным данным серотипов Y.pseudotuberculosis, полученных из ГКПМ РосНИПЧИ «Микроб», позволили ее применить для серотипирования впервые изолированных на территории Саратовской области от сельскохозяйственных животных 6 штаммов возбудителя псевдотуберкулеза. В результате было установлено, что 4 штамма относятся к наиболее распространенному в природе I сероварианту, и по одному - к III и VI сероварам Y.pseudotuberculosis.

Как известно, огромный диапазон специфичности, а также антигенсвязывающие свойства антител предопределили их широкое применение для изучения структуры и функций антигенов микроорганизмов - идентификации иммуногенных молекул, выяснения их локализации в микробной клетке (5, 51, 141-144, 146, 197, 198), оценки количествами особенностей экспрессии, топографического анализа (40, 94), особенностей посттрансляционной модификации продуктов разных генов (131), участия в формировании специфических эпитопов зрелых сложноорганизованных субстанций, очистки и т.д. (11, 94, 113, 116, 122). Во многом это стало возможным благодаря целому спектру появившихся в последние десятилетия новых высокочувствительных методов молекулярной иммунологии (62) - ТИФА, ДИА, иммуноблота и т.д. (11, 68, 78, 97, 98, 122, 149), основанных на принципе взаимной комплементарности конфигурации антигенного детерминанта и антигенсвязывающего участка гипервариабельной области иммуноглобулина (11. 94, 113, 116, 122). При этом в некоторых случаях поликлональные антитела могут быть предпочтительнее, поскольку они узнают более одного эпитопа на изучаемой молекуле антигена (146), однако гетерогенность таких сывороток ограничивает области применения и зачастую делает невозможным их использование для изучения антигенов бактерий на уровне индивидуального эпитопа. Эти проблемы могут быть решены с помощью МКА, которые являются тонким современным инструментом молекулярной иммунологии при исследовании структурно-функциональных особенностей и иммунобиологической активности конкретных антигенных детерминантов патогенных микроорганизмов, в том числе, ответственных за серологическую специфичность грамотрицательных бактерий (6, 51, 52, 77, 144, 192, 197, 239, 263, 278). Генерирование панели разноэпитопных МКА в настоящей работе и их применение для выяснения молекулярной организации и иммунохимических свойств серологически активных антигенов псевдотуберкулезных бактерий позволило на качественно новом уровне изучить антигенную структуру 7'.pseudotuberculosis. Так, была установлена способность бактерий псевдотуберкулеза синтезировать общие и специфические для каждого из шести классических серовариантов белки, что открывает перспективы их применения для внутривидовой классификации микробов Y.pseudotuberculosis аналогично другим грамотрицательным микроорганизмам (129, 200, 225, 288), а также дифференциации псевдотуберкулезных бактерий от других патогенных иерсиний. Интересно, что у одного из них - Y.pestis давно обнаружены видоспецифические полипептиды - FI, фибринолизин, мышиный токсин (58, 143, 144, 198, 248). К тому же недавние исследования Е.В. Иващенко (67), выполненные на модели Y.pseudotuberculosis, также показали возможность использования белков внешней мембраны для разработки диагностических препаратов, что косвенно предполагает их участие в обеспечении серологической специфичности бактерий псевдотуберкулеза -и согласуется с результатами настоящей работы. Проведенное нами исследование природы и особенностей нативной конформации узнаваемых МКА детерминантов в различных вариантах ТИФА, а также специфичности моноклональных иммуноглобулинов в иммуноблоте, продемонстрировало их направленность к секвенциальным (линейным) эпитопам, локализованным на сложноорганизованных полипептидах, состоящих из одной, двух или трех субъединиц и имеющих преимущественно термоиндуцибельный характер синтеза. Причем указанные белковые молекулы оказались стабилизированы дисульфидными связями, экспрессировали в ряде случаев несколько различающихся по специфичности антигенных детерминантов и представляли собой белковые "компоненты термостабильных О-антигенов, детерминируя, вероятно, серологическую иммунореактивность последних. Следовательно, указанные антигены определяют дифференциацию штаммов псевдотуберкулеза на отдельные сероварианты. К тому же, судя по результатам анализа продуктов гибридизации соматических клеток, именно они обеспечивают клональное доминирование в иммунном ответе мышей BALB/c на введение взвесей микробных клеток Y.pseudotuberculosis и, соответственно, принимают непосредственное участие в презентации клеткам иммунной системы использованных в настоящей работе биомоделей. Обращает на себя внимание также то, что при применении принципиально другого методического приема, основанного на индукции направленной толерантности к неспецифическим для микробов псевдотуберкулеза антигенам или ассоциированным с последними отдельным эпитопам, были получены практически идентичные результаты как в ТИФА, так и в иммуноблоте, что убедительно свидетельствует о корректности экспериментальных данных диссертации и правомерности сделанных на их

129 основании выводов и предположений. Более того, это открывает перспективы дальнейших научных разработок, в том числе, и на других бактериальных моделях, в новом направлении фундаментальной иммунологии, условно обозначенным «управляемый» иммунный ответ, поскольку позволяет в краткие сроки получать моноспецифические сыворотки без проведения дополнительной адсорбции, варьируя специфичность сывороточных антител по желанию исследователя.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Самелия, Жанна Гурамовна, 2002 год

1. Адамов А.К., Наумшина М.С. Холерные вибрионы. Саратов: Изд-во Саратовского ун-та; 1984.-328С.

2. Акатов А.К., Зуева B.C. Стафилококки. М.: Медицина, 1983. 255 С.

3. Актуальные вопросы эпидемиологии и клиники иерсиниоза (Медицина и здравоохранение. Серия «Эпидемиология, вирусология и инф. заболевания» Вып.4. //Под. Ред. В .И. Покровского. М., 1984. - 53 С.

4. Алексеева Л.П. Моноклональные антитела к липополисахариду в иммунологии и диагностике холеры //Дисс. док. биол. наук. Ростов-на-Дону, 1993.

5. Алексеева Л.П., Фецайлова О.П., Бичуль O.K., Гвозденко Н.И. Обнаружение фракции I чумного микроба при помощи моноклональных антител //Тез. обл. конф. «Пробл. мед. и сан. микробиол. города», 4 мая. Ростов-н/Дону, 1987. - С. 17-18.

6. Амброзиус X. Получение антисывороток от различных животных //В кн.: Иммунологические методы. М.: Медицина, 1987. С. 472.

7. Андреева И.П., Дертева И.И., Веренков М.С. Ускоренный метод выявления особенностей структуры липополисахаридов у бактерий чумы и псевдотуберкулеза //7-я Всесоюз. конф. химии и биохимии углеводов. Тез. докл. Пущино, 1982. - С. 115-116.

8. Анисимов П.И., Сердобинцев Л.Н., Иванов Ю.В. и др. Некоторые физико-химические особенности капсульного белка чумного микроба //Мол. генет., микр. и вирусол., 1987. N 2. - С. 24-26.

9. Антитела. Методы //Под ред. Кэтти Д. М.: Мир. Т. 2. - 1991. - С. 392.

10. Ашмарин И.А., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. JL: Медгиз. 1986. 180 С.

11. Бахрах Е.Э. О структуре соматических антигенов чумного микроба //Вест. Акад. мед. наук СССР. М.: Медицина, 1973. -N 11. - С. 71-76.

12. Безрукова Г.А. Дифференциация чумного и псевдотуберкулезного микробов по способности фосфорилировать галактозу //Болезни с природной очаговостью на Кавказе: Тез. докл. краев, научн. конф., поев. 60-летию образования СССР. -Ставрополь, 1982. С. 14.

13. Бекина К.Е. Ферментативная характеристика и антигенная структура энтеропатогенных кишечных палочек серологических групп 026В6 и 044L74 //Автореф. дис. канд. биол. наук. Горький, 1972. - 13 С.

14. Белая О.С. Новые серологические типы кишечной палочки и их роль в этиологии острых кишечных заболеваний //Автореф. дис. докт. мед. наук. -Харьков, 1968. 29 С.

15. Белая О.Ю., Бунин К.В., Ценева Г.Я., Денисова Н.А. Определение антигенов иерсиний в реакции коагглютинации при острых кишечных инфекционных заболеваниях у взрослых //Респ. сб. науч. тр. Ленинград, 1984. - Вып. 8. - С. 119121.

16. Беседнова Н.Н. Применение метода флюоресцирующих антител с целью выявления возбудителя псевдотуберкулеза //ЖМЭИ, 1973. N 3. - С. 28-32.

17. Беседнова Н.Н., Дзадзиева М.Ф., Сомов Р.П. Сухой эритроцитарный диагностикум//ЖМЭИ, 1978.-N 5.-С. 145-148.

18. Беседнов А. Л., Недашковская Е.П., Тимченко Н.Ф. Разработка видоспецифических диагностических препаратов на основе термостабильного токсина Yersinia pseudotuberculosis //ЖМЭИ, 1997. N 5. - С. 52-54.

19. Бландова З.К., Душкин В.А., Малашенко A.M., Шмидт Е.Ф. Линии лабораторных животных для медикобиологических исследований. М.: Наука, 1983. С.180.

20. Бондаренко В.М. Генетический контроль синтеза полисахаридов О-антигена шигелл Флекснера и значение отдельных его компонентов для вирулентности дизентерийных бактерий //Автореф. дис. докт. мед. наук. М., 1976. - 42 С.

21. Боровикова Т.П. Характеристика специфических полисахаридосодержащих комплексов субкультур штамма ЕВ чумного микроба //Автореф. дис. канд. биол. наук. Саратов, 1972. - 16 С.

22. Булгакова Е.Г. Функциональное картирование плазмиды пестициногенности чумного микроба//Дисс. канд. мед. наук. Саратов, 1991.

23. Бургасова О.А., Кулешова Л.Б., Ценева Г.Я., Ющук Н.Д., Кухтевич Е.В., Кузнецов В.Ф., Бондаренко М. Сравнительная оценка различных иммунологических реакций в диагностике псевдотуберкулеза //Микробиол., 1996. -N2.-С. 48-51.

24. Вейнблат В.И. Антигены Yersinia pestis (биохимические и иммунологические аспекты) //Автореф. дис. докт. мед. наук. Саратов. - 1974. - С. 36.

25. Вейнблат В.И., Вельская Н.А., Митина B.C. К вопросу о структуре и биогенезе капсульного антигена возбудителя чумы //Всесоюз. биохим. съезд: Тез. науч. сообщ. М. - 1979. - Т. 2. - С. 3-4.

26. Вейнблат В.И., Вельская Н.А., Митина Г.С. К вопросу о четвертичной структуре капсульного антигена чумного микроба //Проблемы ООИ, 4-1 Всесоюз. биохим. съезда. Саратов. - 1973. - Вып. 2(30). - С. 92-96.

27. Вейнблат В.И., Палагин А.Ю., Булгакова Е.Г., Попов Ю.А. Выделение и очистка фибринолизина возбудителя чумы //Микробиол., биохим. и специф. профилакг. карантинных инф. Саратов. - 1990. - С. 44-48.

28. Вейнблат В.И., Тараненко Т.М., Наумов А.В. Антигены возбудителя чумы: функция, выделение, структура //Актуал. пробл. и задачи биохим. диагн. и иммунопрофил. ООИ. Саратов. - 1991. - С. 3-11.

29. Веренков М.С., Сидорова Н.К., Лисичкина М.С., Дертева И.И. Антигенное родство возбудителей чумы, псевдотуберкулеза и некоторых видов бактерий семействаEnterobacteriaceae //Профилактика ООИ. 1977. - Вып. 3. - С. 90-93.

30. Гинцбург А.А., Шубин Ф.Н., Шовадаева Г.А., Куличенко А.Н., Янишевский Н.В., Смирнов Г.Б. Новый признак патогенности кодируемый плазмидой pVM82 Yersinia pseudotuberculosis //Генетика, 1988. Т. 24. - N 9. - С. 1562-1571.

31. Гладилин А.К., Левашов А.В. Стабильность ферментов в системах с органическими растворителями (обзор) //Биохимия, М. 1998. - Т. - 63. - Вып. 3. -С. 408-421.

32. Гловер Д. Новое в клонировании ДНК. Методы. М.: Мир, 1989. 368 С.

33. Голубева И.В., Килесо В.А., Киселева Б.С. Энтеробактерии (Рук-во для врачей) М.: Медицина, 1985.-321 С.

34. Гонтарь И.П., Ефременко В.И., Фабер С.М. Антигенная общность возбудителей чумы, холеры, псевдотуберкулеза, туляремии, бруцеллеза, сапа, мелиоидоза //Иммунол. иммунопрофилактика чумы и холеры. Саратов. - 1980. - С. 27-28.

35. Горшкова Р.П., Зубков В.А., Исаков В.В., Оводов Ю.С. Структура О-специфического полисахарида из липополисахарида Yersinia pseudotuberculosis VI серовара. //Биоорг. химия, 1983. Т. 9. - N 8. - С. 1068-1073.

36. Грашкин В. А. Эффективность использования различных вариантов иммуноферментного анализа для диагностики гонореи и трихомониаза //Дисс. канд. мед. наук. Саратов, 2000.

37. Гурлева Г.Г. Упрощенный способ определения серологических вариантов Yersinia enterocolitica //Лаб. дело, 1989. N 7. - С. 70-72.

38. Гурлева Г.Г., Смоликова Л.М., Варивода А.Г. Новые серологические варианты Yersinia enterocolitica и Yersinia kristensenii //ЖМЭИ, 1997. N 5. - С. 117-120.

39. Дайтер А.Б., Волкова Г.В., Степанова Г.С., Вишневская Т.К. Иерсиниозы в Ленинграде //Иерсиниозы (Микроб., эпидемиол., клиника, патогенез, лаб диагностика): Тез. Всесоюзн. научн,- практ.конф. (12-13 сентября, 1989). -Владивосток, 1989. Ч. I - С. 78-80.

40. Дальвадянц С.М. Характеристика соматических антигенов чумного микроба, изолированных по.методу Буавена и Вействаля-Людерица //Автореф. дис. канд. мед. наук. Саратов, 1968. - 16 С.

41. Дальвадянц С.М., Пономарев Н.Г., Зубова М.В. Некоторые данные родства основного соматического антигена R-форм бактерий чумы и псевдотуберкулеза //Проблемы ООИ, 1971.-Вып. 3 (19). С. 81-84 (б).

42. Дальвадянц С.М., Филиппов А.Ф., Белобородое Р.А., Огарев Н.Н. Эффективность сочетанной иммунизации морских свинок против чумы препаратами фракции I и «основного» соматического антигена //Профилактика ООН. Саратов, 1977. - Вып. 3. - С. 105-112 (б).

43. Девдариани 3.JI. Научно-методические основы конструирования чумных моноклональных иммуноглобулиновых реагентов с использованием гибридомной биотехнологии //Автореф. дис. докт. мед. наук. Саратов, 1993. - 52 С.

44. Девдариани З.Л., Федорова В. А. Значение серологических методов исследования на основе поли- и моноклональных антител в лабораторной диагностике чумы //Проблемы ООП, 1995. N 1 (77). - С. 77-90.

45. Дертева И.М., Веренков М.С., Кочетов А.Х., Зарецкая Г.В., Журова Р.С., Лисичкина М.С. Метод получения сывороток диагностических псевдотуберкулезных к I, II, III, IV и VI сероварам //Инф. бюл. изобретений и рацпредл. Саратов, 1981. -N 13.-С. 6-7.

46. Дерябин Д.Г. Стафилококки: Экология и патогенность. Екатеринбург. 2000. -239 С.

47. Дзанзиева М.Ф. Антигены псевдотуберкулезного микроба (теоретические и практические аспекты) //Автореф. дис. докт. биол. наук. М., 1981. - 38 С.

48. Дзюбак В.Ф., Веренков М.С. Применение люминесцирующей псевдотуберкулезной сыворотки для идентификации возбудителя псевдотуберкулеза IIПробл. ООН., 1978. Вып. 1 (59). - С. 74-75.

49. Домарадский И.В. Чума. М.: Медицина, 1998. 175 С.

50. Домарадский И.В., Колесник Р.С., Нечецкая P.M. Экспериментальные данные о прививке против чумы псевдотуберкулезными микробами //Изв. Иркутского Госуд. научн.-иссл. противочумного инст. Сибири и Дальнего Востока. 1962. - Т. 24. - С. 170-177(a).

51. Дробков В.И., Маракулин И.В., Погорельский И.П., Дармов И.В. Смирнов Е.В. Спектр антител при введении чувствительным животным бактерий Yersinia pestis //Журн. Микробиол, 1996. N 2. - С. 81-85.

52. Езепчук Ю.В. Биомолекулярные основы патогенности бактерий. М.: Наука, 1977. 85 С.

53. Елинов Н.П. Химическая микробиология. М.: «Высшая школа», 1989. 448 С.

54. Ерохина Е.П., Гурлева Г.Г., Домарадский И.В., Рассудов С.М., Пушница Н.П. Типизация возбудителя псевдотуберкулеза при помощи реакции непрямой гемагглютинации //ЖМЭИ, 1974. N 7. - С. 143-144.

55. Знаменский В. А. Дальневосточная скарлатиноподобная лихорадка (псевдотуберкулез) //Природноочаговые болезни в Приморском крае. Владивосток, 1975.-С. 136-160.

56. Зубков В.А., Горшкова Р.П., Исаков В.В., Оводов Ю.С. Иерсиниозный разветвленный моносахарид //7-я Всесоюз.конф. по химии и биохимии углеводов. Тез. докл. Пущино, 1982. - С. 88

57. Иващенко Е.В. Выявление и циркуляция Y.pseudotuberculosis среди сельскохозяйственных животных в Саратовской области и создание диагностических препаратов на основе мембранных белков //Автореф. дис. кан. биол. наук. Саратов, 2000. - 16 С.

58. Иммуноферментный анализ //Под ред. Нго Т.Т., Ленхоффа Г. М.: Мир, 1988. -444 С.

59. Иннокентьева Т.И. Повышение вирулентности и изменение других свойств чумного микроба при пассировании его через организм монгольских пищух горного Алтая //Автореф. дис. канд. мед. наук. Иркутск, 1969. - 22 С.

60. Исаков В.В., Командрова Н.А., Горшкова Р.П., Оводов Ю.С. ьС-ЯМР-спектр-0 специфического полисахарида из липополисахарида Yersinia pseudotuberculosis серовара III //Биоорг. химия, 1983. -Т. 9. N 11. - С.1565-1567.

61. Карагулова С.Т. Ускоренный метод выявления сальмонелл по их специфическим термостабильным О-антигенам у людей и из объектов внешней среды //Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 1985. - 19 С.

62. Кириллина B.C., Шишкина О.Г., Попов Ю.А. Получение полной геномной библиотеки ДНК плазмиды pFra, исследование экспрессии в рекомбинантных клонах //Микробиол., лаб. диагн., спец. проф. карант. инф. Саратов, 1989. - С. 4044.

63. Ключева В.В. Выделение и иммунохимическое изучение Ви-антигенов брюшнотифозных и кишечных палочек //Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 1967. -26 С.

64. Книрель Ю.А., Кочетков Н.К. Строение липополисахаридов грамотрицательных бактерий. 1. Общая характеристика липополисахаридов и структура липида А (Обзор) //Биохимия, 1993. Т. 58. - Вып. 2,- С.166-181.

65. Книрель Ю.А., Кочетков Н.К. Строение липополисахаридов грамотрицательных бактерий. II. Структура кора (Обзор) //Биохимия, 1993. Т. 58. -Вып. 2.-С. 182-201.

66. Кокушкин А.М. Социальные и биологические аспекты эпидемиологии чумы //Автореф. дис. докт. мед. наук. Саратов, 1995. -46 С.

67. Колганова Е.В. Моноклональные антитела к отдельным антигенам чумного микроба //Эпидем.,микробиол. и иммунол. бакт. и вирусных инф.: Тез. докл. обл. науч. конф. молодых ученых, (17-20 октября 1989) Ростов-н/Д., 1989. - С. 74-76.

68. Коллинз У.П. Новые методы иммуноанализа. М.: Мир, 1991. 279 С.

69. Командрова Н.А., Горшкова Р.П., Зубков В.А., Оводов Ю.С. Строение О-специфической полисахаридной цепи липополисахарида Yersinia pseudotuberculosis серовара VII//Биоорг. химия, 1989.-Т. 15.-N1.-C. 104-110.

70. Коробкова Е.И., Котельников Т.Ф., Урода JI.A., Быстренин А.И. О полном антигене чумного и псевдотуберкулезного микробов //ЖМЭИ, 1944. N 12. - С. 2228.

71. Королюк A.M. Применение реакции коагглютинации для обнаружения и быстрой идентификации возбудителей кишечного иерсиниоза и псевдотуберкулеза //Лаб. дело, 1984. N 4. - С. 250-252.

72. Королюк A.M., Иванов К.С., Сбойчаков В.Б. Диагностическая ценность иммуноферментного анализа при псевдотуберкулезе //Воен.-мед. журн., 1989. N 12.-С. 42-43.

73. Королюк A.M., Сбойчаков В.Б. Иммуноферментная диагностика инфекционных болезней //Военно-мед. журн., 1982. N 2. - С. 37-39.

74. Королюк A.M., Сомов Г.П. Оценка серологических методов диагностики псевдотуберкулеза //Тез. докл. I межобл. науч.-практ. конф. по псевдотуберкулезу человека (ДСЛ). Владивосток, 1970. - С. 33-35.

75. Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология. Санкт-Петербург, 2000. 591 С.

76. Корчагина Н.И., Горшкова Р.П. Исследование липополисахаридов Y.pseudotuberculosis //7-я Всесоюз. конф. по химии и биохимии углеводов. Тез. докл. Пущино, 1982. - С. 82-88.

77. Коссе Л.В. Характеристика препаратов капсульных антигенов чумного микроба, выделенных из генетически различающихся штаммов продуцентов //Автореф. дис. канд. биол. наук. Саратов, 1992. - 18 С.

78. Краткий определитель бактерий Берджи //Под ред. акад. РАН Г.А. Заварзина М.: Мир 1997. - Т. 1. - 432 С.

79. Куляшова Л.Б., Ценева Г.Я., Буйневич Ю.Б. Роль антигенов наружной мембраны Yersinia pseudotuberculosis в патогенезе и диагностике псевдотуберкулеза //ЖМЭИ, 1997. N 1. - С. 14-18.

80. Кутырев В.В. Генетический анализ факторов вирулентности возбудителя чумы //Дис. докт. мед. наук. Саратов, 1992.

81. Кутырев В.В., Попов Ю.А., Проценко О.А. Плазмиды патогенности чумного микроба (обзор) //Мол. генет., микр. и вирусол., 1986. N 6. - С. 3-11.

82. Кэтти Д. Препараты клеток для окрашивания поверхностных компонентов //В кн.: Антитела. Методы. /Под. ред. Д.Кетти. М.: Мир, 1991. - С. 287.

83. Лебедева М.Н. Микробиология. М.: Медицина, 1969. - 392 С.

84. Ленинджер А. Основы биохимии. М.: Мир, 1985. -Т. 1. 367 С.

85. Лефковитс И. Иммунологические методы исследований. М.: Мир, 1983. 348 С.

86. Лефковитс И. Иммунологические методы исследований. М.: Мир, 1988. 350 С.

87. Львов В.Л. Структура антигенных полисахаридов бактерий Shigella dysenteriae тип 3 иЕ. coli 0124 //Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 1996. - 22 С.

88. Маянский А.Н. Микробиология для врачей (Очерки патогенетической микробиологии). Нижний Новгород. 1999. С. 400.

89. Мецлер Д. Биохимия. М.: Мир. 1980. Т. 1. -407 С.

90. Микеров А.Н. Белки внешней мембраны иерсиний, кодируемые плазмидой вирулентности (обзор) //ЖМЭИ, 1997. N 3. - 3-10 С.

91. Мишанькин М.Б. Структурно-функциональная характеристика «мышиного» токсина чумного микроба //Дисс. канд. мед. наук. Ростов-на-Дону, 1997.

92. Михайлов Л.М. Получение, характеристика и применение моноклональных антител к антигенам Brucella abortus 19ВА //Автореф. дис. канд. мед. наук. -Саратов, 1999.-26 С.

93. Мокренко А.И. Иммунологическая характеристика поверхностных полисахаридов менингококков серогрупп А и С и оценка иммуногенности менингококковых полисахаридных вакцин в опытах на мышах //Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 1981. - 24 С.

94. Мотавкина Н.С., Малый В.П., Туркутюков В.Б. Иммуногенетические исследования при псевдотуберкулезе (дальневосточной скарлатиноподобнойлихорадке). Дальневосточная скарлатиноподобная лихорадка. (Псевдотуберкулез человека). Л., 1978. - С. 122-127.

95. Моул С.Е., Лейн Д.П. Получение моноклональных антител к гибридным белкам, продуцируемым в клетках E.coli //В кн.: Д. Гловера. Новое в клонировании

96. ДНК. Методы. М.: Мир, 1989. С.368 . +

97. Недашковская Е.П., Тимченко Н.Ф., Беседнов А.Л., Вертиев Ю.В. Термостабильный токсин Yersinia pseudotuberculosis: выделение, очистка, характеристика свойств //Микробиология, 1995. N 4. - С. 5-9.

98. Новикова О.Д., Вострикова О.П., Порнягина О.Ю., Хоменко В.А. Соловьева Т.Ф., Оводов Ю.С. Антигенные свойства поринов наружной мембраны рода иерсиний //БЭБМ, 1996. N 6. - С. 657-660.

99. Оводов Ю.С., Горшкова Р.П. Липополисахариды псевдотуберкулезного микроба//Химия природных соединений. 1988.-N2. С.163-171

100. Овчинников Ю.А. Биоорганическая химия. М.: Медицина, 1989. 503 С.

101. Петровских. В.П. Серологическая индикация и дифференциация ботулинических токсинов анатоксинов типов А, В и Е //Автореф. дис. канд. биол. наук. - Пермь, 1998. - 24 С.

102. Плейфэр Д. Наглядная иммунология. М.: ГЭОТАР «МЕДИЦИНА». 1998. 96 С.

103. Покровский В.И., Поздеев O.K. Медицинская микробиология. М.: ГЭОТАР. «МЕДИЦИНА», 1999. 1200 С.

104. Пол У. Иммунология. М.: Мир, 1987. Т. 1. - 476 С.

105. Пол У. Иммунология. М.: Мир, 1987. Т. 3. - 360 С.

106. Попов Ю.А. Конструирование и использование ДНК-зондов на представителях рода Yersinia //Генетика, микробиология и совершенствование лаб. диагн. ООИ, Саратов. 1991. - С. 3-13.

107. Проценко О.А., Анисимов П.И., Можаров О.Т. Выявление и характеристика плазмид чумного микроба, детерминирующих синтез пестицина 1, антигена FI. экзотоксина «мышиного» токсина //Генетика, 1983. Т. 19. - N 7. - С. 1081-1090.

108. Проценко О.А., Филиппов А.А., Кутырев В.В. Гетерогенность популяций штаммов возбудителя чумы по плазмидному составу //Мол. генет., микр., и вирусол, 1992 N 3-4. С. 20-24.

109. Ратинер Ю.А., Бондаренко В.М., Siitonen А. Энтерогеморрагичеекие кишечные палочки и вызываемые ими заболевания //ЖМЭИ, 1998. N 5. - С. 87-96.

110. РингерцН, СэвиджР. Гибридные клетки. М.: Мир, 1979. 415 С.

111. Ройт А., Бростофф Дж., Меил Д. Иммунологии. М.: Мир, 2000. 581 С.

112. Сбойчаков В.Б., Королюк A.M., Вербов В.Н., Дзантиев Б.Б., Егоров A.M., Пасхина М.Н. Применение твердофазного иммуноферментного анализа для серодиагностики псевдотуберкулеза //ЖМЭИ, 1986. N 7. - С. 83-86.

113. Северин С.Е., Соловьева Г.А. Практикум по биохимии. М.: Изд-во МГУ, 1989. -509 С.

114. Сидорова В.Е., Багрянцев В.Н., Шубин Ф.Н., Варвашевич Т.Н. Подбор антигенов для конструирования тест-систем иммуноферментного анализа при псевдотуберкулезе //Лаб. дело, 1987. N 5. - С. 371-374.

115. Соколова Н.Н. Получение очищенных Н-антигенов сальмонелл и антисывороток с моноантигенной специфичностью антител без препарирования (адсорбции) //Тр. ГКИМБП, 1971. Т. 1. - С. 13.

116. Сомов Г.П. Дальневосточная скарлатинообразная лихорадка. М.: Медицина. 1979.-182 С.

117. Сомов Г.П., Беседнова Н.Н., Дзадзиева М.Ф., Тимченко Н.Ф. Иммунология псевдотуберкулеза. Новосибирск: «Наука», 1985. 183 С.

118. Сомов Г.П., Покровский В.И., Беседнова Н.Н. Псевдотуберкулез. М. 1990. -36 С.

119. Степанов В.М. Молекулярная биология. Структура и функции белков. М.: «Высшая школа», 1996. 335 С.

120. Тараненко Т.М. Углеводосодержащие антигены чумного и псевдотуберкулезного микробов. Теоретические и прикладные аспекты //Автореф. дис. док. биол. наук. Саратов, 1988. - 41 С.

121. Тимаков В.Д., Левашев B.C., Борисов Л.Б. Микробиология. М.: Медицина, 1983.- 512 С.

122. Тимченко Н.Ф., Рожкова Л.П. Бактериологический и иммунофлюоресцентный методы диагностики дальневосточной скарлатиноподобной лихорадки //Киш. забол. и инвазии в прир.-климат. усл. Приморья. Владивосток, 1977. - С. 117-119.

123. Тихонов В.К. Иерсиниозы животных в центральном правобережном агрорайоне нижегородской области //Автореф. дис. канд. вет. наук,- Санкт-Петербург, 1999. 17 С.

124. Томшич С.В., Горшкова Р.П., Елькин Ю.Н., Оводов Ю.С. Структурное исследование липополисахарида Yersinia pseudotuberculosis IB типа //Химия природных соединений, 1975. N 5. - С. 563.

125. Федорова В.А. Получение и научно-прикладное значение моноклональных антител к липополисахариду Yersinia pestis //Автореф. дис. канд. мед. наук. -Саратов, 1994.- 23 С.

126. Федорова ВА., Девдариани 3.J1. Изучение антигенных детерминантов липополисахарида Yersinia pestis с помощью МКА //Мол. генет., микр. и вирусол. 1998.-N3.-С. 22-26.

127. Федорова В.А., Девдариани 3.J1. Иммунохимическая характеристика фракции штаммов Yersinia pestis, дефектных по гену caflM //Мол. генет., микр. и вирусол., 2002.-N 1.-С. 11-17.

128. Федорова В.А., Девдариани 3.JI. Характеристика фибринолизина чумного микроба с помощью моноклональных антител //Мол. генет., микр. и вирусол., 1999. -N3.-C. 21-26.

129. Федорова В.А., Девдариани 3.JI. Изучение продуктов белковой и углеводной природы, синтезируемых Yetsinia pestis в условиях имитирующих внутреннюю среду фаголизосом млекопитающих //Мол. генет., микр. и вирусол, 2001. № 4. -С. 22-37.

130. Финдлей Д., Эванз У. Биологические мембраны. Методы. М.:Мир, 1990. 424 С.

131. Фомичева О.А. Разработка иммуноферментного анализа для лабораторной диагностики псевдотуберкулеза //Автореф. дис. кан. биол. наук. Саратов, 1996. -20 С.

132. Фомичева О.А., Федорова В.А., Девдариани 3.J1. Идентификация видо- и серовароспецифических антигенов Yersinia pseudotuberculosis с помощью иммуноблотга //Тез. докл. к междунар. конф. «Гомеостаз и инфекционный процесс», Саратов. 1996. - С. 271.

133. Фримель Г. Иммунологические методы. М.: «Медицина», 1987. 472 С.

134. Фролова Г.М., Горшкова Р.П., Калмыкова Е.Н. Иммунохимическое изучение липополисахаридов Yersinia enterocolitica сероваров 0:5 и 0:5,27 //ЖМЭИ. 1988. -N 12.-С. 90-94.

135. Фролов А.Ф., Рубан Н.М., Васюренко З.П. Жирно-кислотный состав липополисахаридов штаммов различных видов иерсиний //Журн. гигиены, эпидемиол., микробиол. и иммунол. Прага, 1989. - Т. 33. - N 1. - С. 55-61.

136. Хоменко В.А., Новикова О.Д., Тимченко Н.Ф. Психрофильность патогенных микроорганизмов. Новосибирск, 1986. С. 46-50.

137. Хусаинова С.А. К вопросу о контроле активности сальмонеллезных О-монодиагностикумов //Тр. ГКИМБП. 1971. - Т. 1. - С. 14-15.

138. Хусаинова С.А., Богоявленская Л.Б. Опыт получения Н-специфических сальмонеллезных неадсорбированных сывороток //Тр. ГКИМБП. 1971. - Т. 1. - С. 63

139. Черепанов П.А., Михайлова Т.Г., Каримова Г.А., Захарова Н.М., Ершов Ю.В., Волкова К.И. Клонирование и детальное картирование Fra-Ymt области плазмиды pFra Yersinia pestis //Мол. генет., микр. и вирусол., 1991. - N 12. - С. 1925.

140. Чернявская Е.Г., Васюренко З.П. Жирнокислотный состав липополисахаридов бактерий рода Escherichia, Shigella и Salmonella как таксономический признак //ЖМЭИ, 1983. N 7. - С. 35-38.

141. Чумаченко В.Д. Биологическая активность антигенов, изолированных из чумного микроба по методу Уокера//Проблемы ООИ. 1969. - Вып. 6. - С. 98-103 (а).

142. Ценева Г.Я., Баяр Г. А., Мессором В.Г. Разработка и испытания иммуноглобулинового эритроцитарного диагностикума для выявления возбудителя псевдотуберкулеза и антител к нему IIВ кн.: Реакция непрямой гемагглютинации. Л., 1981.-С. 71-74.

143. Ценева Г.Я., Дайтер А.Б., Носков Ф.С. Лабораторная диагностика псевдотуберкулеза//Сов. Медицина, 1984.-N 1,-С. 98-102.

144. Ценева Г.Я., Куляшова Л.Б., Белая Ю.А., Быстрова С.М. Применение псевдотуберкулезного коагглютинирующего антительного диагностикума в лабораторной практике //Лаб. дело, 1985. N 9. - С. 111-113.

145. Шарапова Т.А., Борисова М.А., Королюк A.M. Клинико-серологические параллели при псевдотуберкулезе (ДСЛ) //Прир.-очаг. болезни Урала, Сибири и Дальнего Востока. Свердловск, 1969. - С. 172-173.

146. Шашаев Л.Н., Грибоедов А.В. Химические основы серологической специфичности псевдотуберкулезного микроба //ЖМЭИ, 1977. N 3. - С. 26-31.

147. Ющенко Г.В., Дунаев В.И. Об антигенном родстве Y.enterocolitica с представителями рода Brucella //Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол., 1980.-N3.-С. 48-51.

148. Янике Р. Что можно узнать о стабилизации белка из исследований ультрастабильных глобулярных белков (обзор) //Биохимия, 1998. Вып. - N 3. - Т. 63. - С. 370-380.

149. Achtman М., Zurth К., Morelli G., Torrea G., Guiyole A., Carniel E. Yersinia pestis the cause of plague is a recently emerged clone of Yersinia' pseudotuberculosis //Proc.Natl. Acad.Sci USA. 96: 1999.-P. 14043-14048.

150. Albizo J.M., Surgalla M.J. Isolation and biological characterization of Pasteurellci pestis endotoxin //Infect. Immun. 1970. - V. 2. - P. 229-236.

151. Aleksic S., Bockemuhl J. Proposed revision on the Wauters et al antigenic scheme for serotyping of Yersinia enterocolitica //J. Clin. Microbiol. 1984. - V. 20. - N 1. - P. 99-102.

152. Aleksic S., Bockemuhl J. Diagnostic importance of H-antigens in Yersinia enterocolitica and other Yersinia species //Contribs. Microbiol, and Immunol. 1987. -V. 9.-P. 279-284.

153. Aleksic S., Bockemuhl J., Lande F. Studies on the serology of flagellar antigens of Yersinia enterocolitica and related Yersinia species //Zbl. Bakt. Hyg. А. 1986. - Bd. 261.-S. 299-310.

154. Aronson M. J., Bichowsky-Siomnicki L. Temperature and pH-dependent changes of electrophoretic mobility of Pasteurella pestis //J. Bacterid. 1960. - V. 79. - P. 734740.

155. Beher M.G., Schnaitman C.A., Pugsley A.P. Major heatmodifiable outer membrane protein in gram-negative bacteria: comparison with the OmpA protein of Escherichia coll //J. Bacteriol. 1984. -V. 143. - P. 906.

156. Belaya I.A., Tseneva G.I., Sergeeva N.S., Petrukchin V.G. Immunoelectrophoretic analysis of the antigenic composition of Yersinia //Zh. Microbiol. Epidemiol. Immunobiol. 1989. - V. 8. - P. 21-24.

157. Ben-Efraim S., Aronson M., Bichowsky-Somnicki L. New antigenic component of Pasteurella. pestis formed under specified conditions of pH and temperature //J. Bacteriol 1961,-V. 81.-N 5.-P. 704-714.

158. Bengoechea J.A., Diaz R., Moriyon J. Outer membrane differences between pathogenic and environmental Y.enterocolitica biogroups probed with hydrophobic permeants and polycationic peptides //Infect. Immun.-1996. V. 64. - N 12. - P. 48914899.

159. Bennet L.G., Tornabene T.G. Characterization of the antigenic subunits on the envelope protein of Yersinia pestis //J. Bacteriol. 1974. - V. 117. - P. 48-55.

160. Bercovier H.,* Mollaret H.H. Yersinia //In: Bergey's Manual of Systematic bacteriology, (N.R. Krieg and J.G. Holt, eds.) Baltimore: Williams and Wilkins company. 1984.-V. 1,-P. 498-506.

161. Bolin J., Norlander L., Wolf-Watz H. Temperature-inducible outer membrane protein of Yersinia pseudotuberculosis and Yersinia enterocolitica is associated with the virulence plasmid //Infect. Immun. 1982. - V. 37. - P. 506-512.

162. Brockhaus M., Magnani J.L., Blaszczyk M., Steplewski Z., Koprowski H., Karlsson K.A., Larson G., Ginsburg V. //J. Biol. Chem. 1981. - V. 256. - P. 13223-13225.

163. Brubaker R.R. Factors promoting acute and chronic diseases caused by Yersinia //Clin. Microb. Rev. 1991. - V. 4. -N 3. - P. 309-324.

164. Brubaker R.R. Yersinia pestis and bubonic plague //In: The prokaryotes (Dworkin M., ed). Michigan State University, 2000.

165. Carvalho B.T.S., Carneiro-Samalo M.M., Sole D., Naspitz C., Leiva L.E., Sorensen R.U. Transplacental transmission of serotype-specific pneumococcal antibodies in a Brazilian population //Clin. Diagn. Lab. Immunol. 1999. - V. 6. - P. 50-54.

166. Cellular and molecular aspects of endotoxin reactions. Nowotny A. Spitser J.Т. Ziegler E.J., eds. Amsterdam: Elsevier, 1990.

167. Charnetzky W:T., Shuford W.W. Survival and growth of Yersinia pestis within macrophages and an affect of the loss of the 47-megadalton plasmid on growth in macrophages //Infect. Immun. 1985. - V. 47. - P. 234-241

168. Cornelis G.R., Boland A., Boyd A.P., Geuijen C., Iriarte M., Neyt C., Sory M. -P., Stainier I. The virulence plasmid of Yersinia, an antihost genome //Microbiol, and Mol. Biol. Rev. 1998. -V. 62. - P. 1315-13152.

169. Cramer M., Braun D.G. Genetic of restricted antibodies to streptococcal group polysaccharides in mice //J. Exp. Med. 1974. -V. 139. -P.1513-1528.

170. Davies D.A.L. Dideoxysugars of Pasteurella pseudotuberculosis specific polysaccharides and the occurrence of oscarilose //Nature. - 1961. - V. 191. - P. 43-44.

171. Dillard J.P., Vandersea M.W., Yother J. Characterization of the cassette containing genes for type 3 capsular polysaccharide biosynthesis in Streptococcus pneumoniae Hi. Exp. Med. 1995.-V. 181.-P. 973-983.

172. Di Pauli R. Genetics of the immune response. I. Differences in the specificity of antibodies to lipopolysaccharides among different strains of mice //Immunol. 1972. -V. 109.-P. 394-400.

173. Faruque S.M., Albert M.J., Mekalanos J.J. Epidemiology, genetics and ecology of toxigenic Vibrio cholerae //Microbiol, and Molecul. Biol. Rev. 1998. - V. 62. - P. 1301-1314.

174. Feodorova V.A., Devdariani Z.L. Expression of acid-stable proteins and modified lipopolysaccharide of Yersinia pestis in acidic growth medium //J. Med. Microbiol. -2001.-V. 50.-P. 979-985.

175. Feodorova V.A., Devdariani Z.L. Immunogeneity and structural organisation of some pLCR-coded proteins of Yersinia pestis //J. Med. Microbiol. 2000. - V. 50. - N 1. -P.-13-22.

176. Feodorova V.A., Devdariani Z.L. New genes involved in Yersinia pestis fraction I biosynthesis //J. Med. Microbiol. -2001. V. 50. -N 11. - P. 979-985.

177. Frach C.T., Chapman S.S. Classification of Neisseria meningitidis group В into disinct serotypes I. Serological typing by a microbactericidal method //Infect. Immun. -1972.-V. 5.-P. 98-102.

178. Galanos C., Luderitz O., Rietschel E.T., Westphal O. A new method for the extraction of R lipopolysaccarides //Int. Rev. Biochem. 1977. - V. 14. - P. 239-335.

179. Gearhart P.J., Jonson N.D., Douglas R., Hood I. IgG antibodies to phosphorylcholine exhibit more diversity than their IgM counterparts //Nature. 1981. -V. 291. - P. 29-34.

180. Geslin P., Fremaux A., Sissia G., Spicq C. Streptococcus pneumoniae: serotypes, invasive and antibiotic resistant strains. Current situation in France //Press Med. 1998. -V. 27.-P. 21-27.

181. Glosnicka R. Studies on Yersinia antigenes //Bull. Inst. Marit. Trop. Med. Gdynia. -1980.-V. 31.-N1.-P. 93-95.

182. Glosnicka R., Gruzckiewicz E. Chemical composition and biological activity of the Yersiniapestis envelope substance //Infect. Immun. 1980. - V. 30. - N 2. - P. 506-512.

183. Hamrick T.S., Havell E.A., Horton J.R., Orndorff P.E. Host and bacterial factors involved in the innate ability of mouse macrophages to eliminate internalized unopsonized Escherichia coli //Infect. Immun. 2000. - P. 125-132.

184. Handbook of endotoxin. Proctor A., ed.Amsterdam: Elsevier, 1984. V. I. Chemistry of endotoxin, 1985. - V. II. Pathophysiology of endotoxin. 1985. - V. III. Cellular biology of endotoxin, 1986.

185. Hancock G.E., Schaedler R.V., MacDonald T.T. Yersinia enterocolitica infection in resistant and susceptible strains of mice //Infect. Immun. 1986. - V. 53. - P. 26-3 1.

186. Hartland E.L., Bordun A.-M., Robins-Browne R.M. Contribution of уор В to virulence of Y.enterocolitica //Infect. Immun. 1996. - V. 64. - N 6. - P. 2308-2314.

187. Hartly J., Adams G.A.,Tornabene T.G. Chemical and physical properties of lipopolysaccarides of Yersinia pestis/!J. Bacteriol. 1974. - V. 118. - P. 848-854.

188. Haseley R., Hoist O., Brade H. Structural and serological characterisation of the O-antigenic polysaccharide of the lipopolysaccharide from Acinetobacter strain 90 belonging to DNA group 10 //Eur. J.Biochem. 1997. - V. 245. - P. 470-476.

189. Higgins R., Gottschalk M. Disrtibution of Streptococcus suis capsular types in 1999. Can. Vet. J. - 2000. - V. 41. - N 5. - P. 414.

190. Hitchcok P.J., Brawn T.M. Morphological heterogeneity among Salmonella lipopolysaccharide chemotypes in silver-stained polyacrylamide gels //J. Bacteriol. -1983. -V. 154. P. 269-277.

191. Hoist O. Chemical structure of the core region of lipopolysaccharides. In: Endotoxin in health and disease (Brade H., Homison D.C., Opal S., Vogel S., eds.) Manel Dekkev Inc., New York, 1999. P. 115-154.

192. Hoorfar Y., Swallow C., Holmoig C.B.F. Evaluation of an antigen-ELISA for detection of all pathogenic serotypes of Y.enterocolitica //Medische Microbiologic: 7lh International Congress on Yersinia. 1998. - Suppl. II, V. 6. - P. 40-41.

193. Inoe M., Eifucu-Koreeda H., Kitada K., Takamatsu-Matsushita N., Okada Y. Osano E. Serotyp variation, in Streptococcus anginosus, S. constellatus and S.intermedins //J. Med. Microbiol. 1998. - V. 47. -N 5. - P. 435-439.

194. Iriate M., Vanooteghem J.С., Delor I. The Myf fibriallae of Yersinia enterocolitica //Molec. Microbiol. 1993,-V. 9.-P. 507-520.

195. Ishikawa E., Imagawa V., Yashids S., Yoshitake S., Hamaguchi Y., Ueno T. Enzyme labeling of antibodies and their fragments for enzyme immunoassay immunohistochemical staining //J. Immunoassay. 1983. - V. 4. - P. 109-127.

196. Janeway C.A., Travers P.O. Immunobiology. The immune system in health and disease. Current Biol. Ltd., London, UK, 1997.

197. Jann K., Westphal O. Microbial polysaccharides.//In: The Antigens (M. Sela, ed). N.Y.: Acad. Press, 1975. V. 3. - P. 1-125.

198. Kado C.I., Liu S.-T. Rapid procedure for detection and isolation of large and small plasmids //J. Bacteriol. 1981. - V. 145.-P. 1365-1373.

199. Kaper J.B., Morris J.G., Levine M.M. Cholera//Clin. Microbiol. Rev. 1995. - V. 8.-P. 48-86.

200. Kapperud G., Vardund T. Detection of pathogenic Y.enterocolitica in food, water, and faeces by nested polimerase chain reaction //6th Int. Symp. on Yersinia. 26-28 Sept. 1994. Romo, Italy. - 1994. - P. 40.

201. Kenne L., Lindberg B. The Polysaccharides. N.Y.:Acad. Press, 1983. V. 2. - P. 287-363.

202. Knapp W., Weber A. Yersinia pseudotuberculosis //Handbuch der bakteriellen. Infectionen bei Tieren. Berlin, 1982. Bd 4. - S. 466-518.

203. Knutsson R., Blixt Y., Lantz P. Detection of pathogenic Y.enterocolitica in enrichment media by a multiplex PCR //Nederlandes Tijdschridt voor Medische Microbiologi: 7 Int. Congress on Yersinia. Nijmegen, June 14-16, 1998. Suppl. II, V. 6. —P. 39.

204. Kovarik J. Immunity in early life //Immunol Today. 1998. - Vol. 19. - N 4. - P. 150-152.

205. Kwaga J., Iversen J.O., Misra V. Detection of pathogenic Y.enterocolitica by polymerase chain reaction and digoxigenin-labeled polynucleotide probes //J. Clin. Microbiol. 1992. -V. 30. - N 10. - P. 2668-2673.

206. Lambert PH. Science, medicine, and the future vaccines and vaccination //BMJ. -1997.-Dec. V. 7122.-P. 1595-1598.

207. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 //Nature. 1970. - V. 227. - P. 680-685.

208. Linnerberg M., Weintraub A., Widmalm G. Structural studies of the O-antigen polysaccharide from the enteroinvasive Escherichia coli 0173 //Carbohydr Res. 1999. -V. 320 (3-4).-P. 200-208.

209. Linnerberg M., Wollin R., Widmalm G. Structural studies of the O-antigenic polysaccharide from Escherichia coli 0167 //Eur. J. Biochem. 1997. - V. 246. - N 2. -P. 565-573.

210. Luderitz O., Freudenberg M.A., Galanos Ch., LermannV., Rietschel E.Th. Shaw D.H. Lipopolysaccharides of gramnegative bacteria //Current topics in membranes and transport. N.Y.: Acad. Press., 1982. V.17. - P. 79-151.

211. Martinez R.L. Plasmid-mediated and temperature regulated surface properties of Yersinia enterocolitica //Infect. Immun. - 1983. -V. 41. - P. 921-930.

212. McDonough K.A., Falkow S. A Yersinia pesto-specific DNA fragment encodes temperature-dependent coagulase and fibrinolysin-associated phenotypes //Mol. Microbiol. 1989. - V. 3. - P. 767-775.

213. Montie T.C., Montie D.C. Protein toxins of Pasteurella pestis. Subunit composition and acid binding //Biochemistry. 1971. - V. 10. - P. 2094-2100.

214. Nakamura K., Mizushima S. Effects of heating in dodecyl sulfate solutions on the confirmation and electrophoretic mobility of isolated major outer membrane proteins from Escherichia coli К 12//J. Biochem. 1976. -V. 80.-P. 1411.

215. Nakane P.K., Kawaoi A. Peroxidase-labelled antibody: a new method of conjugation//G. Histochem. cytochem. 1974. - V. 22. - P. 1084 -1091.

216. Nandy B. Rapid method for species-specific identification of Vibrio cholerae using primers targeted to the gene of outer membrane protein OmpW //J. Clin. Microbiol. -2000.-V. 38.-P. 4145-4151.

217. Ogasawara M., Kobayashi S., Arai S., Laheji K., Hill J.L., Kono D.H. A heat-modifiable outer membrane protein carries an antigen specific for the species Y.enterocolitica and Y.pseudotuberculosis //J. Immunol. 1985. - V. 135. - N 2. - P. 1430-1436.

218. Ovodov Y.S., Gorshkova RP, Tomshich SV et al. Chemical and immunochemical studies on lipopolysaccharides of some Yersinia species a review of some recent investigations //J. CaYbohydr Chem. - 1992. - V. 11. - N 2. - P. 21-35.

219. Pepe J. C., Miller V. L. The biological role of invasin during a Yersinia enterocolitica infection //Infect. Agents Diseases. 1993. - V. 2. - N 4. - P. 236-241.

220. Perry R., Fetherston J. Yersinia pestis etiologic agent of plague //Clin. Microbiol. Rev. - 1997.-P. 35-66.

221. Perry R.D., Straley S.C., Fetherston J.D., Rose D.J., Cregor J., Blattner F.R. DNA sequencing and analysis of the low-Ca -response plasmid of Yersinia pestis KIMS //Infect. Immun. 1998. -V. 66. - P. 4611-4623.

222. Popoff M.Y., BockemuhlJ., Brenner F.W. Supplement 1997 (no. 41) to the Kauffmann-White scheme //Res. Microbiol. 1998. - V. 149. - N 8. - P. 601-604.

223. Popoff M.Y./BockemuhlJ., Brenner F.W. Supplement 1998 (no. 42) to the Kauffmann-White scheme //Res. Microbiol. 2000. - V. 151. - N 1. - P. 63-65.

224. Portnoy D. A., Wolf-Wats H., Bolin I. Characterization of common virulence plasmids in Yersinia*species and their role in the expression of outer membrane proteins //Infect. Immun. 1984. - V. 43. - P. 108-114.

225. Price S.B., Freeman M.D., Yen K.S. Transcriptional analysis of the Yersinia pestis pH6 antigen gene //J. Bacteriol. 1995. - V. 177. - N 20. - P. 5997-6000.

226. Raginskaia V.P., Baturo A.P., Lifshits M.B. Diagnostic pneumococcal sera and the serological typing of Streptococcus pneumoniae //Zh. Microbiol. Epidemiol. Immunobiol. 1984. -N. 3. - P. 44 - 46.

227. Raetz C.R.H. Biochemistry of endotoxins //Annu Rev Biochem. 1990. - V. 59. - P. 129-170.

228. Rietschel E.T., Brade L., Hoist O. Cellular and molecular aspects of endotoxin reactions (Nowotny A., Spitser J.J., Ziegler E.J., Eds.) Amsterdam: Elsevier, 1990. P. 15-32.

229. Rudbach J.A., Reed N. Immunological responses of mice to lipopolysaccharide: lack of secondary responsiveness by C3H/Hel mice //Infect. Immun. 1977. - V. 16. - P. 513-517.

230. Samuelsson R., Lindberg В., Brubaker R.R. Structure of O-specific side chains of lipopolysaccharides from Yersinia pseudotuberculosis //J. Bact. 1974. - V. 117. - P. 1010-1016.

231. Shilling J., Clevinger В., Davie J.M., Hood L. Amino acid sequence of homogeneous antibodies to dextran and DNA arrangement in heavy chain V region segments //Nature. 1980. - V. 283. - P. 35-40.

232. Shimada Т., Arakawa E., Iton K., Okitsu Т., Matsushima A., Asai Y., Yamai S. Nakajato Т., Nair G.B., Albert M.J., Takeda Y. Extended serotyping schemc for Vibrio cholerae //Curr. Microbiol. 1994. - V. 28. - P. 175-178.

233. Skurnik M. Mplecular genetics of Yersinia lipopolysaccharide //In: Genetics of Bacterial Polysaccharides (J.B. Goldberg, ed.) CRC Press LLG, 1999. P. 23-47.

234. Skurnik M., Toivanen P. Yersinia enterocolitica lipopolysaccharide: genetics and virulence//Trends. Microbiol. 1993.-V. 1. -N4.-P. 148-152.

235. Skurnik M., Zhang L. Molecular genetics and biochemistry of Yersinia lipopolysaccharide //APMIS. 1996. - V. 104. - N 12. - P. 849-872.

236. Sodeinde O.A., Goguen J.D. Genetic analysis of the 9.5-kilobase virulence plasmid of Yersinia pestis //Infect. Immun. 1988. - V. 56. - P. 2743-2748.

237. Sodeinde O.A., Goguen J.D. Nucleotide sequence of the plasminogen activator gene of Yersinia pestis: relationship to ompT of Eshcerichia coli and gene E of Salmonella typhimurium //Infect. Immun. 1989. - V. 57. - P. 1517-1523.

238. Sodeinde O.A., Sample A.K., Brubaker R.R., Goguen J.D. Plasminogen activator/coagulase gene of Yersinia pestis is responsible for degradation of plasmid-encoded outer membrane proteins //Infect. Immun. 1988. - V. 56. - P. 2749-2752.

239. Thai E. Untersuchungen uber Pasterrella pseudotuberculosis unter besonderer beruckischhigung ihres immunologischen verhaltens //These vet. 1954. - Bd. 1. - S. 169.

240. Tsai C.M., Frasch C.F. A sensitive silver stain for detecting lipopolysaccharides in polyacrylamide gels//Anal. Biochem. 1982.-V. 119. - P. 115-119.

241. Tsubocura M., Aleksis S. A simplified antigenic scheme for serotyping of Yersinia pseudotuberculosis: phenotypic characterization of reference strains and preparation of О and H factor sera //Contrib. Microbiol. Immunol. 1995. -V. 13. - P. 99-105.

242. Tsubocura M., Otsuki K., Kawaoka Y., Fukushima H., Ikemura K. Kanazawa Y. Addition of new serogroups and improvement of the antigenic desings of Y.pseudotuberculosis //Curr. Microbiol. 1984. - V. 11. - P. 89.

243. Tsubocura M., Otsuki К., Sato К., Tanaka M., Hongo Т., Eukushima H., Maruyama Т., Inoe M. Special features of distribution of Yersinia pseudotuberculosis in Japan //J. Clin. Microbiol. 1989. - V. 27. - P. 790.

244. Une Т., Brubaker R.R. Roles of V antigen in promoting virulence and immunity in Yersiniae //J. Immunol. 1984. -V. 133. - P. 2226-2230.

245. Vaudaux B. What is the future of vaccines IIRev. Med. Suisse Romande. 1998. -V. 118.-N 4.-P. 299.

246. Viser L.G., Hiemstra P.S., van den Barselaar M.T. Role of yadA in resistance to killing of Y.enterocolitica by antimicrobial polypeptides of human granulocytes //Infect. Immun. 1996. -V. 64.-N5.-P. 1653-1658.

247. Wachter E., Brade V. Influence of surface modulation by enzymes and monoclonal antibodies on alternative complement pathway activation by Y.enterocolitica //Infect. Immun. 1989. - V. 57. - N 7. - P. 1984-1989.

248. Wauters G. Antigens of Yersinia enterocolitica //In: Yersinia enterocolitica. (Bottone S. I., ed.) CRC Press. Luc., Boca Raton, E. L. A., 1981. P. 41 - 53.

249. Wauters G., Aleksic S., Charlier J., Schulier J., Schulze G. Somatic and flagellar antigens of Yersinia enterocolitica and related species //Contrib. Microb. Immunol. -1991.-V. 12.-P. 239-243.

250. Wauters G., Le Minor L., Chalon A.M. M Antigenes somatigues flagellairis des Yersinia enterocolitica //Ann. Inst. Pasteur. (Paris). 1971. - V. 120. - N 5. - P. 631 -642.

251. Wauters G., Le Minor L., Chalon A.M., Lassen J. Supplement au schema anti genigue de Jersinia enterocolitica //Ann. Inat. Pasteur (Paris). 1972. - V. 122. - P. 951956.

252. Weninger J., Wartenberg K., Rollinghoff M. Immuunological characterization of Yersinia enterocolitica 0:9 and 0:3 LPS antigens by monoclonal antibodies //Zbl. Bacterid., Microbiol, and Hyg. 1988. - B. 269. - N 3. - S. 298-313.158

253. Westphal О., Luderitz О., Bister F. Ueber di von Barterien mit Phenol-Wasser //Z. Naturforsh. 1952.-B.7.-S. 148-155.

254. Williams R.S., Gewurz H.O. Effects of fraction I from Yersinia pestis on phagocytosis in vitro //I Infect. Diseases. 1972. - V. 126. - P. 235-241.

255. Winblad S. Studies on O-antigen factors of Yersinia enterocolitica //Progr. Immunol. Standard. 1968. - V. 9. - P. 337-342.

256. Zollinjer W.D, Mandrell R.E. /Лп£ Immun. 1980. -V. 28. - P. 451-458.

257. Zsigray R.M., Hopper J.B., Zukowsky R., Chesbpo W.R. Integration of the Vwa plasmid into the chromosome of Yersinia pestis strains harboring F' plasmid of

258. Escherichia coli //Infect. Immun. 1985. - V. 47. - P. 670-673. >