Протеомный анализ околоплодных вод при физиологической и осложненной беременности тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.04, кандидат биологических наук Гунько, Виктория Олеговна

  • Гунько, Виктория Олеговна
  • кандидат биологических науккандидат биологических наук
  • 2012, Ростов-на-Дону
  • Специальность ВАК РФ03.01.04
  • Количество страниц 157
Гунько, Виктория Олеговна. Протеомный анализ околоплодных вод при физиологической и осложненной беременности: дис. кандидат биологических наук: 03.01.04 - Биохимия. Ростов-на-Дону. 2012. 157 с.

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Гунько, Виктория Олеговна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Околоплодные воды: функции, источники поступления, белковый состав.

1.2. Протеомные технологии и их применение в биомедицинских исследованиях.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Определение содержания белка по методу Брэдфорда.

2.2. Подготовка образцов околоплодных вод для проведения электрофоретических исследований.

2.3. Фракционирование белков двумерным электрофорезом.

2.3.1. Изоэлектрофокусирование в иммобилизованном градиенте рН (Об

§ А. 1995).

2.3.2. Электрофорез белков в градиенте полиакриламидного геля в присутствии ДДС-Иа.

2.4. Окраска белков в гелях азотнокислым серебром.

2.5. Масс-спектрометрическая идентификация белков.

2.6. Определение содержания цинк-а-2-гликопротеина в околоплодных водах.

2.7. Определение содержания супрессора метастазирования рака молочной железы-1 в околоплодных водах.

2.8. Определение ДНК-связывающей активности субъединицы р65 транскрипционного фактора ОТ-кВ в околоплодных водах.

2.9. Определение содержания цинка в околоплодных водах.

2.10. Определение содержания меди в околоплодных водах.

2.11. Статистическая обработка данных.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ.

ЗЛ. Анализ протеомного спектра околоплодных вод в разные периоды физиологически протекающей беременности.

3.2. Сравнительный анализ протеомного спектра околоплодных вод при физиологической беременности и осложненной задержкой роста плода.

3.3. Сравнительный анализ протеомного спектра околоплодных вод при физиологической беременности и осложненной гестозом.

3.4. Сравнительный анализ протеомного профиля околоплодных вод при разных акушерских патологиях.

3.5. Количественная оценка белков-маркеров осложненной беременности методами иммуноферментного анализа.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Биохимия», 03.01.04 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Протеомный анализ околоплодных вод при физиологической и осложненной беременности»

Актуальность исследования. В настоящее время не вызывает сомнения, что для наиболее успешного решения биомедицинских проблем необходимо привлечение современных методических подходов молекулярной биологии, в частности постгеномных технологий (Шишкин С.С., 2002, Арчаков А.И., 2004) . К таким технологиям относятся протеомные исследования, ознаменовавшие качественно новый этап в развитии системного анализа белковых молекул на рубеже XX и XXI веков. Эти исследования дают представление о совокупности белков, экспрессируемых геномом - протеоме исследуемого объекта (Говорун В.М. и др., 2002; Lottspeich F., 1999; Williams K.L., 1999, Dongre A.R. et al., 2001; Kalia A. et al., 2005).

Применение протеомных технологий является весьма перспективным для выяснения ранее неизвестных механизмов нарушения молекулярных процессов на протяжении внутриутробного развития организма, во многом определяющего последующие этапы постнатального онтогенеза. Нормальное течение внутриутробного периода зависит от сбалансированного функционирования системы мать-плацента-плод, важную роль в которой играют околоплодные воды. Способность околоплодных вод быстро реагировать модификацией своего состава на все изменения, возникающие в указанной системе, позволяет использовать изучение протеомного спектра этой биологической жидкости для получения объективной информации о характере течения гестации и состоянии плода.

Белки, реализуя информационную программу клеток, играют ключевую роль в многочисленных процессах, происходящих на молекулярном уровне в фетоплацентарной системе (трофика плода, активный фетоплацентарный транспорт, антигенные взаимодействия между организмами матери и плода, межклеточные контакты, рецепция сигнальных биомолекул, ферментативные процессы, антиоксидантная защита плода и др.). Физиологическое развитие беременности характеризуется определенной динамикой белкового состава, необходимой для поддержания нормального обеспечения функций всех звеньев этой системы. При срыве гомеостатических механизмов и развитии акушерской патологии наступают вначале обратимые, а затем и необратимые нарушения, которые проявляются изменением спектра и структурно-функционального состояния белков. Эти отклонения могут выражаться в появлении или исчезновении отдельных белковых фракций (белков отличия), что обусловлено модификацией их продукции в организмах матери и плода, а также в плаценте.

На протяжении последних десятилетий среди осложнений гестации, приводящих к перинатальной заболеваемости и смертности, важное место занимают задержка роста плода (ЗРП) и гестоз.

ЗРП в структуре причин перинатальной заболеваемости занимает третье место. Частота этой патологии, по данным литературы, колеблется от 4,5% до 30% (Игнатко И.В. и др., 2006; Макаров О.В. и др., 2003; Стрижаков А.Н. и др., 2003). Патогенетически ЗРП чаще всего обусловлена плацентарной недостаточностью (Радзинский В.Е. и др., 2001; Сидорова И.С. и др., 2005).

Гестоз относится к числу наиболее серьезных осложнений беременности и родов. Частота гестоза в последние годы не только не имеет тенденции к снижению, но и неуклонно растет и составляет, по данным разных авторов, от 7 до 40 % от числа родов. Высокая частота встречаемости гестоза выводит его на второе место в структуре причин материнской и перинатальной смертности (Макаров О.В. и др., 2006; Айламазян Э.К. и др., 2008, БЛшВ. е1а1., 2005).

Однако, несмотря на большое число проведенных исследований, в настоящее время отсутствуют достаточные знания о биохимических и, особенно, молекулярных механизмах развития ЗРП и гестоза, что ограничивает возможности проведения научно-обоснованных терапевтических мероприятий и реальную профилактику данных заболеваний. В этой связи чрезвычайно актуальным остается поиск объективных маркеров для своевременной диагностики и мониторинга указанных акушерских патологий.

Цель исследования. Установление взаимосвязи между особенностями динамики протеомного спектра околоплодных вод и характером течения гестации.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Провести протеомный анализ околоплодных вод в разные сроки физиологической гестации.

2. Охарактеризовать динамику протеомного профиля околоплодных вод при гестации, осложненной ЗРП на фоне плацентарной недостаточности, выявить и идентифицировать белки отличия, появляющиеся или отсутствующие при данной патологии.

3. Изучить протеомный профиль околоплодных вод при гестозе и провести идентификацию белков отличия.

4. Сопоставить результаты протеомного анализа околоплодных вод при ЗРП и гестозе, выявить специфические белки отличия между их протеомными спектрами.

5. Провести количественную оценку информативных белков-маркеров в околоплодных водах методом иммуноферментного анализа при различных вариантах течения гестации.

Научная новизна работы. С помощью протеомного анализа получены новые данные об особенностях белкового состава околоплодных вод в разные сроки (23-24 и 39-40 недель) физиологической и осложненной (ЗРП и гестоз) беременности. Впервые выявлены и проанализированы в сравнительном аспекте общие закономерности и специфические изменения протеомного спектра околоплодных вод при различных вариантах течения гестации. Методом времяпролетной масс-спектрометрии идентифицированы обнаруженные белки отличия. Впервые в качестве информативных маркеров ЗРП и гестоза предложены, соответственно, цинк-а-2-гликопротеин и супрессор метастазирования рака молочной железы 1.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Динамика протеомного профиля околоплодных вод при физиологическом течении беременности характеризуется появлением в III триместре белков, функционально связанных с регуляцией родовой деятельности и процессами адаптации плода к внеутробному существованию.

2. В протеомном спектре околоплодных вод при ЗРП и гестозе имеют место значительные изменения, характеризующиеся как отсутствием ряда белков, так и появлением дополнительных белков по сравнению с физиологической беременностью. Белки отличия, характерные для ЗРП, участвуют в регуляции процессов трофики, роста и развития плода, про- и антиоксидантных процессах, транспортных механизмах. Основные функции белков отличия при гестозе связаны с регуляцией процессов апоптоза, ангиогенеза, функционированием эндотелия сосудов, защитой от окислительного и карбонильного стрессов.

3. Отклонения в протеомных профилях околоплодных вод при ЗРП и гестозе имеют как неспецифический, так и специфический характер, проявляющийся особенностями динамики спектра белков отличия.

4. Модификация протеомного спектра при изученных осложнениях беременности, наряду с негативными последствиями, в ряде случаев может носить компенсаторный характер, направленный на пролонгирование гестации.

Теоретическое и практическое значение работы. Результаты работы имеют большое значение для понимания молекулярных механизмов развития осложненной гестации. Проведенные исследования свидетельствуют о том, что модификация продукции белков может служить одним из инициирующих факторов в сложной цепи специфических нарушений, приводящих к формированию ЗРП и гестоза.

Полученные результаты создают предпосылки для использования в практическом здравоохранении белков отличия в качестве специфических маркеров осложненной беременности с целью ее диагностики, что позволит оптимизировать комплекс терапевтических мероприятий, направленных на улучшение перинатальных исходов.

По результатам исследования разработан информативный способ диагностики плацентарной недостаточности (заявка на изобретение № 2011133109 от 05.08.2011 г.), а также найдены протеомные маркеры прогнозирования церебральных поражений у новорожденных (патент № 2414715 от 11.11.2009 г.). Разработанные способы внедрены в работу отделения патологии беременности и родильного отделения ФГБУ «РНИИАП» Минздравсоцразвития России.

Материалы диссертации используются в лекциях и семинарах по повышению квалификации врачей ЮФО и СКФО, а также при проведении занятий с клиническими ординаторами и аспирантами ФГБУ «РНИИАП» Минздравсоцразвития России.

Апробация работы. Основные положения работы доложены и обсуждены на следующих научных форумах: III и IV международных научно-практических конференциях «Актуальные проблемы биологии, нанотехнологии и медицины» (г. Ростов-на-Дону, 2009, 2011), Всероссийском конгрессе «Современные технологии в эндокринологии» (г. Москва, 2009), X и XI Всероссийских научных форумах «Мать и дитя» (г. Москва, 2009, 2010), IV Международной конференции по акушерству, перинатологии и неонатологии «Здоровая женщина - здоровый новорожденный» (г. Санкт-Петербург, 2009), IX межвузовской конференции с международным участием «Обмен веществ при адаптации и повреждении» (г. Ростов-на-Дону, 2010), Российском конгрессе с международным участием «Молекулярные основы клинической медицины - возможное и реальное» (г. Санкт-Петербург, 2010), Региональном научном форуме «Мать и дитя» (г. Екатеринбург, 2010), Международном конгрессе по репродуктивной медицине (г. Москва, 2010).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 15 научных работ, в том числе 5 статей в изданиях, рекомендованных ВАК. Общий объем публикаций составляет 1,8 пл., личный вклад - 82,6%.

Похожие диссертационные работы по специальности «Биохимия», 03.01.04 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Биохимия», Гунько, Виктория Олеговна

выводы

1. Динамика протеомного спектра околоплодных вод при физиологической гестации характеризуется появлением в III триместре 3 белков, а именно, транстиретина, кальгранулинов А и В, не обнаруживаемых во II триместре.

2. Протеомный профиль околоплодных вод при ЗРП независимо от срока беременности характеризуется отсутствием 6 белков (эпидермального белка, связывающего жирные кислоты, белка-1, связывающего ИПФР, плацентарного лактогена, гаптоглобина, ретинол-связывающего белка 4 и пероксиредоксина-2) и появлением 5 белков отличия (|3-цепи фибриногена, цинк-а-2-гликопротеина, фрагмента ИПФРСБ-1, СОС37-подобного белка и ШХт20 лиганда 2). Во II триместре беременности, осложненной ЗРП, идентифицированы специфические для него белки отличия: гипокальцин-подобный белок 1 и белок-предшественник альфа-1-микроглобулина/бикунина.

3. Протеомный спектр околоплодных вод при беременности, осложнившейся гестозом, по сравнению с физиологической беременностью, характеризуется отсутствием 8 белков (НАДФН-зависимой карбонилредуктазы 3, белка-1, связывающего ИПФР, эпидермального белка, связывающего жирные кислоты, гаптоглобина, плацентарного лактогена, ретинол-связывающего белка 4, кальгранулинов А и В) и появлением 3 белков (С-участка каппа цепи иммуноглобулина, супрессора метастазирования рака молочной железы 1, у-глутаминциклотрансферазы).

4. Независимо от характера течения осложненной беременности (как при ЗРП, так и при гестозе) имеет место ряд аналогичных изменений в протеомном спектре околоплодных вод: отсутствие эпидермального белка, связывающего жирные кислоты, гаптоглобина, плацентарного лактогена, белка 1, связывающего ИПФР, ретинол-связывающего белка 4, кальгранулинов А и В. В то же время, между протеомными спектрами околоплодных вод при ЗРП и гестозе наблюдаются определенные отличия: при ЗРП отсутствуют пероксиредоксин 2, транстиретин и присутствуют цинк-а-2-гликопротеин, NKG2D лиганд 2, СОС37-подобный белок. В свою очередь, при гестозе, в отличие от ЗРП, не обнаруживается НАДФН-зависимая карбонилредуктаза 3 и появляются супрессор метастазирования рака молочной железы 1 и у-глутамилциклотрансфераза.

5. Повышение содержания супрессора метастазирования рака молочной железы 1 в околоплодных водах при беременности, осложненной гестозом, и повышение содержания цинк-а-2-гликопротеина - при ЗРП являются специфическими критериями развития этих осложнений беременности и могут быть использованы для их диагностики.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Пренатальный период развития, занимающий важное место в онтогенезе, связан с глубокими биохимическими преобразованиями в системе мать-плацента-околоплодная среда-плод, немаловажное значение в которой принадлежит околоплодным водам. Гомеостаз этой биологически активной среды, внешней по отношению к плоду, обеспечивает благоприятные условия для его развития на всем протяжении внутриутробного периода.

Воздействие неблагоприятных факторов во время гестации может оказывать влияние не только на течение пре- и перинатального периодов, последствия этих воздействий могут обнаруживаться даже в отдаленные этапы постнатального онтогенеза (Барашнев Ю.М., 2002). Сегодня с уверенностью можно сказать, что большинство хронических заболеваний взрослых и основная часть болезней детского возраста связаны с изменениями, происходившими в течение внутриутробного периода развития (Цирельников Н.И., 2005; Орлов В.И. и др., 2007).

В последние годы, несмотря на снижение материнской и перинатальной заболеваемости и смертности, отмечена довольно постоянная тенденция к увеличению числа заболеваний, детерминированных морфофунк-циональными изменениями в фетоплацентарной системе (Игнатко А.Л., 2008). Формирование нарушений в течение пренатального периода зачастую обусловлено срывом гомеостатических механизмов в ответ на неблагоприятные факторы окружающей среды. При этом повреждение того или иного звена этих механизмов, вызванное экзо- или эндогенными факторами, имеет вполне конкретные последствия в развивающихся органах и тканях плода.

Ведущими акушерскими причинами, приводящими к пренатальной патологии, являются гестоз и ЗРП, молекулярные механизмы формирования и развития которых до настоящего времени остаются недостаточно изученными.

Наиболее существенным из метаболических изменений в системе мать-плацента-околоплодная среда-плод, возникающих в результате действия патогенетических факторов является модификация состава и свойств ее белков. Регуляция пренатального онтогенеза в значительной степени осуществляется белками, которым принадлежит одна из ведущих ролей в процессах развития всех тканей организма, в том числе и гестационных (Погорелова Т.Н., 1984). Белковый профиль биологического объекта является информативным критерием экспрессии генов, характерным для того или иного процесса (физиологического или патологического) и позволяющим судить о механизмах, контролирующих эту экспрессию (Anderson N.L., Anderson N.G. 1998).

Значительные успехи молекулярной биологии и медицины, достигнутые с использованием современных высокотехнологичных подходов геномики и сформировавшейся в последние годы на ее основе протеомики, оценивающей совокупность белков, позволили по-новому взглянуть на причины возникновения различных патологических состояний организма, в том числе и осложненной гестации.

Динамика протеомного спектра околоплодных вод при патологической беременности является следствием реакции на негативные воздействия во время ее течения, что выражается в модификации экспрессии генов на транскрипционном, трансляционном и посттрансляционном уровнях, а также в изменении секреции и активности разнообразных белков. Все эти процессы предопределяют возникновение метаболического дисбаланса в фетоплацентарной системе.

Отклонения, происходящие в любом элементе системы мать- плацента-околоплодная среда-плод, неизбежно приводят к развитию ответной реакции во всех взаимодействующих компонентах этой системы.

В околоплодных водах при осложненной гестации отмечено изменение продукции белков, участвующих в регуляции апоптоза, клеточной дифференцировки и пролиферации, мембранного транспорта, поддержании про- и антиоксидантного баланса и других важных биологических процессах. Среди идентифицированных белков околоплодных вод около 65 % являются секретируемыми белками, выполняющими свои функции во внеклеточном пространстве, остальные белки относятся к цитоплазматическим или ядерным.

Причины модификации протеомного спектра в исследуемых условиях могут быть различны. Появление в околоплодных водах определенных белков вызвано, по-видимому, усилением их продукции и/или транспорта. Так, при хронической гипоксии возникает компенсаторная реакция в виде уменьшения толщины эпителия хориона, повышения проницаемости фетоплацентарного барьера в связи с необходимостью улучшения питания развивающегося плода (Шестопалов A.B., 20096).

Очевидно, что отсутствие при патологической беременности тех или иных белков может быть связано с подавлением синтеза и нарушением перехода данных белков в околоплодные воды через различные мембраны (амниотическую, хориальную), а также с повышением протеолиза этих белковых молекул в синтезирующих их тканях.

Причем, если оценивать последствия обнаруженного нами отсутствия белков при осложненной беременности, то они в подавляющем большинстве имеют отрицательный характер, что обусловлено выполнением этими белками важных функций в обеспечении нормального функционирования системы мать-плацента-околоплодная среда-плод, а именно, процессов связывания и транспорта разнообразных лигандов, поддержания баланса про-и антиоксидантов.

Обращает на себя внимание, что наряду с явно негативными последствиями модификации белкового состава при изученных акушерских патологиях, в ряде случаев может иметь место компенсаторный характер некоторых изменений, направленных на пролонгирование гестации. Это выражается в появлении ряда белков, адаптационные функции которых заключаются в защите плода от неблагоприятных внутриутробных условий (обеспечение правильного фолдинга белков, подавление апоптоза, антиоксидантной защите).

Имеющиеся в литературе данные о продукции выявленных белков отличия позволяют сделать вывод, что основным источником их синтеза является плацента, которой отводится важная системообразующая роль в реализации как адаптивных, так и патологических (внутриутробно формирующихся) реакций. Белковый состав плаценты в значительной степени определяет особенности ее развития и функционирования, что в свою очередь оказывает непосредственное влияние на процессы роста и развития плода (Погорелова Т.Н. и др., 1997).

В формировании и развитии ЗРП и гестоза можно выделить общую стадию, которая характеризуется плацентарной ишемией, вызванной нарушением инвазии трофобласта, с последующим развитием окислительного стресса (Kaufmann Р. et al., 2003; Tjoa M.L. et al., 2004; Kadyrov M. et al., 2006; Ness R.B. et al., 2006). В данных условиях изменяется экспрессия целого ряда генов, работа множества сигнальных каскадов, нарушается проницаемость клеточных мембран. Это находит отражение в модификации спектра белков при обеих акушерских патологиях (отсутствии эпидермального белка, связывающего жирные кислоты, гаптоглобина, плацентарного лактогена, белка 1, связывающего ИПФР, ретинол-связывающего белка 4, кальгранулинов А и В), которые обеспечивают транспорт к плоду различных лигандов (ЖК, ретиноидов, факторов роста, арахидоновой кислоты), оказывающих влияние на разнообразные внутриклеточные процессы, в том числе и регуляцию активности транскрипционных факторов.

На определенном этапе гестации развитие этих акушерских патологий расходится и носит уже специфичный характер, связанный с реализацией патологических эффектов при ЗРП - преимущественно в организме плода и при гестозе - в организме матери. В основе различных клинических проявлений этих осложнений беременности, по-видимому, лежат нарушения компенсаторно-приспособительных реакций. При нормальной адаптационной способности матери и плода даже отсутствие физиологических изменений спиральных артерий и гиперфузия плаценты не трансформируется в гестоз или ЗРП (Поздняков И.М. и др., 2008).

В условиях гипоксии при ЗРП, по-видимому, могут развиться компенсаторно-приспособительные механизмы, направленные на выживание плода. К таким механизмам, помимо централизации кровообращения плода, можно отнести усиление продукции при ЗРП гипокальцин-подобного белка 1 и СОС37-подобного белка. Кроме того, компенсаторный характер, очевидно, носит и протеолиз ИПФРСБ-1 (о чем свидетельствует обнаружение в околоплодных водах при ЗРП, в отличие от гестоза, фрагмента этого белка с Мт=16 кДа). Можно полагать, что защитным механизмом, направленным на поддержание плодово-материнской толерантности в неблагоприятных условиях является также появление в околоплодных водах при указанной патологии ККХйБ лиганда 2.

В то же время, выявленное нами появление в околоплодных водах при ЗРП цинк-а-2-гликопротеина, непосредственно влияющего на продукцию митохондриальных разобщающих белков, имеет патогенетическое значение в развитии этого осложнения беременности. Об ухудшении метаболических процессов при ЗРП, в частности о нарушении баланса про- и антиоксидантов, свидетельствует отсутствие в околоплодных водах пероксиредоксина-2. К отрицательным последствиям для развития плода приводит и отсутствие при данной патологи транстиретина, участвующего в транспорте ретинола и тиреоидных гормонов.

Что касается гестоза, то в настоящее время он рассматривается как тяжелое осложнение беременности, обусловленное несоответствием возможностей адаптационных систем матери адекватно обеспечивать потребности развивающегося плода (Торчинов A.M. и др., 2010).

Специфические отличия в протеомном спектре околоплодных вод при гестозе, в определенной мере отражающие особенности нарушения молекулярных процессов в фетоплацентарной системе при этой акушерской патологии, находят свое отражение в отсутствии НАДФН-зависимой карбонилредуктазы 3, появлении гамма-глутамилциклотрансферазы и супрессора метастазирования рака молочной железы 1. Отсутствие первого из перечисленных белков, приводит к накоплению цитотоксических карбонильных продуктов свободнорадикального окисления, тем самым, способствуя развитию карбонильного стресса.

В отличие от негативных последствий динамики НАДФН-зависимой карбонилредуктазы 3, появление гамма-глутамилциклотрансферазы, очевидно, может иметь компенсаторное значение, т.к. катализируемая этим ферментом реакция приводит к повышению количества глутатиона, необходимого плоду для полноценного развития. По-видимому, повышение продукции гамма-глутамилциклотрансферазы в фетоплацентарном комплексе, сопровождающееся ее появлением в амниотической жидкости в некоторой степени «смягчает» последствия окислительного и карбонильного стрессов, развивающихся при гестозе. Следует подчеркнуть, что у всех обследованных нами женщин не было тяжелой степени этого осложнения беременности.

Важную роль в развитии метаболических нарушений при гестозе играет модификация плацентарной продукции супрессора метастазирования рака молочной железы 1, выполняющего многочисленные риуляторные функции, наиболее значимой среди которых является угнетение активности NF-kB. Супрессия NF-kB сопровождается снижением его антиапоптозных, ангиогенных, антиоксидантных функций и, как следствие, развитием эндотелиальной дисфункции.

Сравнительный анализ основных функций специфических белков отличия позволил выявить по одному из них, наиболее перспективному для использования в качестве маркеров изученных нами осложнений беременности: для ЗРП это цинк-а-2-гликопротеин и для гестоза - супрессор метастазирования рака молочной железы 1. Определение их содержания в околоплодных водах с помощью метода иммуноферментного анализа может быть рекомендовано в клиническую практику для прогнозирования и диагностики соответствующей акушерской патологии.

Итоги протеомных исследований околоплодных вод представлены нами в виде схемы (рис.11) возможного участия белков отличия в развитии осложнений беременности.

Резюмируя полученные нами данные, можно заключить, что модификация продукции белков в фетоплацентарной системе, которая находит отражение в протеомном спектре околоплодных вод, является одним из начальных повреждений, приводящих к дальнейшим метаболическим и функциональным нарушениям в организмах матери и плода. Изменение протеомного спектра может иметь или неспецифический характер и обнаруживаться при различных вариантах течения беременности или служить специфическим механизмом для формирования и развития определенного осложнения гестации.

Выявленные изменения в протеомном профиле околоплодных вод при осложненной беременности являются теоретическим основанием для проведения дополнительных лечебных мероприятий, направленных на нормализацию обменных процессов в фетоплацентарной системе и своевременную реабилитацию плода.

Рис.11. Влияние иротеомного дисбаланса в околоплодных водах на развитие метаболических и функциональных нарушений ЗРП на фоне плацентарной недостаточности.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Гунько, Виктория Олеговна, 2012 год

1. Авцын А.П., Жаворонков A.A., Риш М.А., Строчкова Л.С. Микроэлементозы человека. М.: Медицина, 1991. - 496 с.

2. Азимова Ш.С., Петров О.С., Абдуракимова А. О природе рецепторов тиреоидных гормонов. Роль тироксинсвязывающего преальбумина сыворотки крови в реализации гормонального эффекта // Биохимия-1985.~T.50, N 1. СЛ14-121.

3. Айламазян Э.К., Мозговая Е.В. Гестоз: теория и практика. М.: МЕДпресс-информ, 2008. - 272 с.

4. Анастасьева В.Г. Задержка внутриутробного развития плода. -Новосибирск, 1996. -162 с.

5. Анастасьева В.Г. Морфофункциональные нарушения фетоплацентарного комплекса при плацентарной недостаточности. -Новосибирск, 1997. 506 с.

6. Арчаков А.И. Постгеномные технологии и молекулярная медицина // Вест. РАН.-2004.-Т.74, N 5,- С.423^28.

7. Барашнев Ю.И., Бубнова H.H., Сорокина З.Х. и др. Перинатальная патология головного мозга: предел безопасности, ближайший и отдаленный прогноз // Рос. вест, перинатол. и педиатр,- 1998.-N 4. С. 6-12.

8. Бычкова А.Б., Радзинский В.Е. Интранатальное состояние плода с задержкой внутриутробного развития // Трудный пациент.-2006-N 2-С. 18-24.

9. Ванько Л.В., Сафронова В.Г., Матвеева Н.К., Сухих Г.Т. Оксидативный стресс в генезе акушерских осложнений. М.: ГЭОТАР Медиа, 2010. -264 с.

10. Говорун В.М., Арчаков А.И. Протеомные технологии в современной биомедицинской науке// Биохимия.-2002.-Т.67, N 10.-Р.1341-1359.

11. П.Горин B.C., Зорина P.M., Зорин H.A. Белки амниотической жидкости при физиологической беременности // Акуш. и гин.-1987-N 6. -С. 1214.

12. Громов П.С., Целис Х.Э. От геномики к протеомике // Мол.биол-2000.-Т.34, N 4.-С.597-611.

13. Давыдова Д. А., Воротеляк Е.А., Смиронова Ю.А. и др. Характеристика фенотипа клеток из амниотической жидкости человека // Acta Naturae. -2009. -N 2.-С.112-119.

14. Н.Доброхотова Ю.Э., Иванова Т.А., Гуляева Н.В. и др. Окислительный стресс в плаценте при физиологической и патологически протекающей беременности // Рос. вестн. акуш. гин. -2008. -N 6 - С. 33-36.

15. Дуда В.И., Дуда В.И., Дуда И.В. Плацентарный лактоген в диагностике акушерской патологии // Охрана материнства и детства. -2010.-N2.-С.4-7.

16. Игнатко И.В., Давыдов А.И. Профилактика репродуктивных потерь при привычном невынашивании беременности // Вопр. гин. акуш. и перинатол. 2008. -Т.7, N 2. - С. 40-46.

17. Игнатко И.В., Давыдов А.И., Рыбин М.В. Принципы терапии плацентарной недостаточности и синдрома задержки роста плода // Вопр. гин. акуш. и перинатол. 2006. -Т.5, N 6. - С. 68-74.

18. Калинина Е.В., Чернов H.H., Саприн А.Н. Участие тио-, перокси- и глутаредоксинов в клеточных редокс-зависимых процессах // Успехи биол. хим. 2008,- Т. 48. - С. 319-358.

19. Кеворков H.H., Шилов Ю.И., Ширшев C.B., Черешнев В.А. Гормоны репродукции и регуляции процессов иммунитета- Екатеринбург: Наука, 1993.- 172 с.

20. Ковалев Л.И., Шишкин С.С, Иволгина Г.Л., Громов П.С, Шандала A.M. Выявление межлинейного полиморфизма белков сердечной мышцы мышей методом двумерного электрофореза. // Биохимия. 1986. -Т.51, N 6 - С.896-908.

21. Кононенко И.В., Смирнова О.М. PPAR-y -представитель семейства ядерных стероидных рецепторов // Сахарный диабет. -2005. -N 2-С.74-77.

22. Кулинский В.И., Колисниченко JT.C. Глутатион ядра клетки и его функции // Вопр. биол. мед. и фарм. химии. -2010. -N 5. -С. 3-5.

23. Лаврова А.Е. Биологическая роль цинка в норме и при заболеваниях // Рос. педиатр, журн. 2000,- N 3. - С.42-47.

24. Макаров О.В., Козлов П.В., Насырова Д.В. Синдром задержки развития плода: современные подходы к фармакотерапии // Рос. вестн. акуш. -гинек. 2003. - N 6. - С. 18-22.

25. Макаров О.В., Николаев H.H., Волкова Е.В. Артериальная гипертензия у беременных. Только ли гестоз? М.: ГЭОТАР-МедиаДООб. -176 с.

26. Макаров И.О., Шеманаева Т.В., Гасанова С.Р. Значение эндотелиоза в развитии гестоза // Рос. вестн. акуш.-гин. 2010.-N 2.-С. 16-19.

27. Медведев М.В., Юдина Е.В. Задержка внутриутробного развития плода. М., РАВУЗДПГ, 1998. - 208 с.

28. Милованов А.П. Патология системы мать-плацента-плод: Руководство для врачей М.: Медицина, 1999. - 448 с.

29. Милованов А.П., Радзинский В.Е., Болтовская М.Н. и др. Роль микроокружения в жизнеобеспечении эмбриона человека // Акуш. и гин. 2004.-N 4,-С. 15-18.

30. Милованов А.П., Савельева C.B. Внутриутробное развитие человека. Руководство для врачей. М.: МВД, 2006 384 с.

31. ЗЬМурашко Л.Е., Мельниченко Г.А.б Клименко Н.И. и др. Щитовидная железа и беременность // Пробл. беременности. -2000.-N 1.-С.4-10.

32. Орлов В.И., Орлов A.B., Авруцкая В.В., Заманская Т.А. Механизмы формирования перинатальной патологии и заболеваемости взрослых // Казанск. мед. журн.- 2007,- Т. 88, N 2.- С. 117-121.

33. Зб.Охапкин М.Б., Хитров М.В. Внутриутробная задержка роста плода // АГ-инфо.-2008-N 3.-С.29-33.

34. Погорелова Т.Н. Особенности аминокислотного и белкового обменов гемохориальной плаценты человека и животных в процессе ее развития: Автореф. дис. . докт. биол. наук. М., 1984 - 36 с.

35. Погорелова Т.Н., Орлов В.И., Друккер H.A. и др. Молекулярные аспекты плацентарной недостаточности. Ростов-на-Дону, Изд-во Рост, ун-та, 1997.-176 с.

36. Поздняков И.М., Юкляева Н.В., Гуляева Л.Ф. и др. Инвазия трофобласта и ее роль в патогенезе гестоза // Акуш. и гин. -2008. N 6,- С.3-6.

37. Поленок Е.Г., Кузнецов П.В., Зинчук С.Ф. Тироксинсвязывающие белки: характеристика и современные методы хроматографического выделения и очистки (обзор) // Вопр. биол. мед. и фарм. химии. -2010. -N7.-C. 3-13.

38. Прокопенко В.М. Роль окислительного стресса в патогенезе гестоза // Журн. акуш. и женск. бол. -2007. -N 4. С. 31-36.

39. Радзинский В.Е., Кондратьева E.H., Милованов А.П. Патология околоплодной среды. Киев: «Здоров'я», 1993.-126 с.

40. Радзинский В.Е., Милованов А.П. Экстраэмбриональные и околоплодные структуры при нормальной и осложненной беременности. М.:МИА, 2004. -350 с.

41. Радзинский В.Е., Смалько П.Я. Биохимия плацентарной недостаточности. М.: РУДН, 2001. -273 с.

42. Савельева Г.М., Федорова М.В., Клименко П.А. и др. Плацентарная недостаточность-М.: Медицина, 1991.-276 с.

43. Савельева Г.М., Шалина Р.И. Современные проблемы патогенеза, терапии и профилактики гестоза // Акуш. и гин. -1998 N 5 - С.6-9.

44. Сарвилина И.В., Каркищенко В.Н., Горшкова Ю.В. Междисциплинарные исследования в медицине. М.: Техносфера, 2007. - 368 с.

45. Свиридов О.В. Белки, связывающие тиреоидные гормоны и их физиологическая роль // Пробл. эндокрин. 1994 - N 6. -С.57-63.

46. Сидельникова В.М. Привычная потеря беременности. — М.: Триада-Х, 2005.-308 с.

47. Сидорова И.С. Гестоз.-М.: Медицина, 2003.-416 с.

48. Сидорова И.С., Боровкова Е.И., Мартынова И.В. и др. Роль окислительного стресса в патогенезе гестоза // Акуш. и гин. 2007. -N З.-С.З-Ю.

49. Сидорова И.С., Макаров И.О. Клинико-диагностические аспекты фетоплацентарной недостаточности. М.: МИА, 2005.-296 с.

50. Соколов Д.И. Васкулогенез и ангиогенез в развитии плаценты // Журн. акуш. и женск. бол.-2007,-N 3. С. 129-133.

51. Соколов Д.И. Роль гуморальных и клеточных факторов иммунной системы в контроле развития плаценты в норме и при гестозе: Автореф. дис. . докт. биол. наук. СПб., 2009 - 39 с.

52. Стрижаков А.Н., Волощук И.Н., Тимохина Е.В. и др. Морфофункциональные изменения в плаценте при плацентарной недостаточности различной степени тяжести // Вопр. гин. акуш. и перинатол,- 2010. Т.9, N 2. - С.5-11.

53. Стрижаков А.Н., Тимохина Т.Ф., Баев О.Р. Фетоплацентарная недостаточность: патогенез, диагностика, лечение // Вопр. гин. акуш. и перинатол. 2003. - Т.2, N 2. - С. 53-64.

54. Таракулов Я.Х., Саатов Т.С., Гулямова Ф.Я. Мембранная рецепция тиреоидных гормонов // Биохимия. 1991. -Т.56, N 5. - С.839-845.

55. Татаринов Ю.С. Трофобластический бета-1-гликопротеид // Успехи соврем, биол. -1983.-Т.95, N 1.- С.57-64.

56. Токова 3.3. Гестоз, нерешенные вопросы (обзор литературы) // Пробл. репрод. 2004. - N 2. - С.46-51.

57. Торчинов A.M., Цахилова С.Г., Сарахова Д.Х. и др. Актуальность преэклампсии (гестоза) в современном акушерстве. Проблемы и решения (обзор литературы) // Пробл. репрод. 2010. - N 3. - 87-91.

58. Тришкин А.Г., Артымук Н.В., Николаева Л.Б. Функциональная диагностика фетоплацентарной недостаточности // Рос. вестн. акуш. -гинек. 2009. - N 2. - С. 83-86.

59. Федорова М.В. Плацентарная недостаточность // Акуш. и гин.-1997. -N 5 С.40-43.

60. Федорова М.В., Калашникова Е.П. Плацента и ее роль при беременности. М.: Медицина, 1986. - 256 с.

61. Цапок П.И., Дроздов В.Н. Околоплодные воды в системе "мать-плацента-плод". Кемерово, 1986.—104с.

62. Цапок П.И., Дроздов В.Н. Гипотрофия плода и новорожденного и биохимия околоплодных вод Кемерово, 1989 - 150 с.

63. Шестопалов A.B., Арутюнян A.B., Акуева М. Окислительный стресс в патологии плацентации // Журн. акуш. и женск. бол. 2009а. - N 1. - С. 94-98.

64. Шестопалов A.B., Микашинович 3. И., Буштырева И. О. и др. Роль апоптоза в развитии плаценты // Журн. акуш. и женск. бол. 20096. - N 2. - С. 72-80.

65. Шишкин С.С. От структурной геномики к функциональной: теоретические и прикладные аспекты // Вестн. РАМН. -2002.-N 4-С.11-16.

66. Шишкин С.С, Ковалев Л.И., Ковалева М.А. Протеомные исследования мышечных белков человека и некоторых других позвоночных. // Биохимия. 2004. -T.69,N 11. -Р. 1574- 1591.

67. Шмагель К.В., Черешнев В.А. Плацентарный лактоген: функции, клиническое значение // Акуш. и гин. 2003. - N 3. - С. 6-9.

68. Abrahams V.M., Straszewski-Chavez S.L., Guller S.et al. First trimester trophoblast cells secrete Fas ligand which induces immune cell apoptosis // Mol. Hum. Reprod. 2004.-Vol.10. - P.55-63.

69. Abu Shehab M., Khosravi J., Han V.K. et al. Site-specific IGFBP-1 hyper-phosphorylation in fetal growth restriction: clinical and functional relevance // J. Proteome Res. 2010.-Vol.9, N 4. - P. 1873-1881.

70. Ahn K.S., Sethi G., Aggarwal B.B. Nuclear factor-kappa B: from clone to clinic // Curr. Mol. Med. 2007.-Vol.7, N 7. - P.619-637.

71. Akerstrom В., Logdberg L. An intriguing member of the lipocalin protein family: a 1-microglobulin // Trends Biochem. Sei. 1990.-Vol.15. - P.240-243.

72. Allaire A.D., Ballenger K.A., Wells S.R. et al. Placental apoptosis in preeclampsia // Obstet. Gynecol. -2000. -Vol. 96, N 2. -P.271-276.

73. Allhorn M., Berggard J., Nordberg J. et al. Processing of the lipocalin al-microglobulin by hemoglobin induces heme-binding and heme-degradation properties // Blood. 2002.-Vol.99. - P. 1894-1901.

74. Amoresano A., Minchiotti L., Cosulich M.E. et al. Structural characterization of the oligosaccharide chains of human alpha 1-microglobulin from urine and amniotic fluid // Eur. J. Biochem. 2000-Vol.267, N 7. -P.2105-2112.

75. Anderson N.G., Anderson N.L. The human protein index // Clin. Chem. -1982.-Vol.28. P.739-748.

76. Anderson N.L., Anderson N.G. Proteome and proteomics: new technologies, new concepts, and new words // Electrophoresis. -1998. Vol.19. - P. 18531861.

77. Antunes F., Han D. Redox regulation of NF-kappaB: from basic to clinical research // Antioxid. Redox. Signal. 2009.-Vol.l 1, N 9. - P.2055-2056.

78. Apps R., Gardner L., Traherne J. et al. Natural-killer cell ligands at the maternal-fetal interface: UL-16 binding proteins, MHC class-I chain related molecules, HLA-F and CD48 // Hum. Reprod. 2008.-Vol.23, N 11. -P.2535-2548.

79. Asvold B.O., Eslcild A., Jenum P.A. et al. Maternal concentrations of insulin-like growth factor I and insulin-like growth factor binding protein 1 during pregnancy and birth weight of offspring // Am. J. Epidemiol. -2011.-Vol. 174, N2.-P. 129-135.

80. Band L., Bertini I., Cantini F. et al. Cellular copper distribution: a mechanistic systems biology approach // Cell Mol. Life. Sei. 2010-Vol.67, N 15. - P.2563-2589.

81. Baschat A.A. Fetal responses to placental insufficiency: an update // BJOG-2004.-Vol.111, N 10. P.1031-1041.

82. Basso A.D., Solit D.B., Chiosis G. et al. Akt forms an intracellular complex with heat shock protein 90 (Hsp90) and Cdc37 and is destabilized by inhibitors of Hsp90 function // J. Biol. Chem. 2002.-Vol.277. - P.39858-39866.

83. Bayer-Zwirello L.A., Jertson J., Rosenbaum J. et al. Amniotic fluid surfactant-albumin ratio as a screening test for fetal lung maturity. Two years of clinical experience // J. Perinat. -1993.-Vol.13, N 5. P.354-360.

84. Ben Lagha N., Seurin D., Le Bouc Y. et al. Insulin-like growth factor binding protein (IGFBP-1) involvement in intrauterine growth retardation: study on IGFBP-1 overexpressing transgenic mice // Endocrinology. 2006. -Vol.147, N 10. - P. 4730-4737.

85. Berggärd T., Enghild J.J., Badve S. et al. Histologic distribution and biochemical properties of alpha 1 -microglobulin in human placenta // Am. J. Reprod. Immunol. 1999.-Vol.41, N 1. - P.52-60.

86. Berkova N., Lemay A., Dresser D.W. et al. Haptoglobin is present in human endometrium and shows elevated levels in the decidua during pregnancy // Mol. Hum. Reprod. 2001.-Vol.7, N 8. - P.747-754.

87. Bhat-Nakshatri P., Sweeney C.J., Nakshatri H. Identification of signal transduction pathways involved in constitutive NF-kappaB activation in breast cancer cells // Oncogene. -2002.-Vol.21, N 13. -P.2066-2078.

88. Biesalski H.K., Frank J., Beck S.C. et al. Biochemical but not clinical vitamin A deficiency results from mutations in the gene for retinol binding protein // Am. J. Clin. Nutr. 1999.-Vol.69, N 5. - P.931-936.

89. Bing C., Mracek T., Gao D. et al. Zinc-a2-glycoprotein: an adipokine modulator of body fat mass? // Int. J. Obes. (Lond). 2010.-Vol.34, N11.-P.1559-1565.

90. Bing C., Russell S.T., Beckett E.E. et al. Expression of uncoupling proteins-1, -2 and -3 mRNA is induced by an adenocarcinoma-derived lipid-mobilizing factor// Br. J. Cancer. 2002.-Vol.86, N 4. - P.612-618.

91. Biri A., Bozkurt N., Turp A. et al. Role of oxidative stress in intrauterine growth restriction // Gynecol. Obstet. Invest. -2007. -Vol.64, N 4. -P. 187— 192.

92. Biron-Shental T., Schaiff W.T., Ratajczak C.K. et al. Hypoxia regulates the expression of fatty acid-binding proteins in primary term human trophoblasts // Am. J. Obstet. Gynecol. 2007.-Vol.197, N 5. - P.516.el-6.'

93. Blake C.A. Physiological proteomics: cells, organs, biological fluids, and biomarkers // Exp. Biol. Med. 2005. - Vol.230, N11.- P.785-786.

94. Borchers T., Spener F. Fatty acid-binding proteins // Curr. Top. Membr. 1994.-Vol.40. - P.261-294.

95. Borella P., Szilagyi A., Than G. et al. Maternal plasma concentrations of magnesium, calcium, zinc and copper in normal and pathological pregnancies // Sei. Total Environ. 1990.-Vol.99, N 1-2. - P.67-76.

96. Bowen J.M., Chamley L., Mitchell M.D. et al. Cytokines of the placenta and extra-placental membranes: biosynthesis, secretion and roles in establishment of pregnancy in women // Placenta. -2002.-Vol.23, N 4. -P.239-256.

97. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding // Anal. Biochem. -1976. Vol.72. -P. 248-254.

98. Braunewell K.H., Klein-Szanto A.J. Visinin-like proteins (VSNLs): interaction partners and emerging functions in signal transduction of a subfamily of neuronal Ca2+ -sensor proteins // Cell Tissue Res. 2009-Vol.335, N 2. - P.301-316.

99. Buhimschi I.A., Zhao G., Rosenberg V.A. Multidimensional proteomics analysis of amniotic fluid to provide insight into the mechanisms of idiopathic preterm birth // PLoS One. -2008.-Vol.3, N4. P. 1-10.

100. Bujold E., Romero R., Kusanovic J.P. et al. Proteomic profiling of amniotic fluid in preterm labor using two-dimensional liquid separation and mass spectrometry // J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2008. Vol.21, N 10. -P. 697-713.

101. Burgoyne R.D., Weiss J.L. The neuronal calcium sensor family of Ca2+-binding proteins // Biochem. J. 2001.-Vol.353, Pt. 1. - P. 1-12.

102. Campbell J., Wathen N., Macintosh M. et al. Biochemical composition of amniotic fluid and extraembryonic coelomic fluid in the first trimester of pregnancy // Br. J. Obstet. Gynecol. 1992-Vol. 99, N 7. -P.563-565.

103. Cao W., Xi X., Wang Z. et al. Four novel ULBP splice variants are ligands for human NKG2D // Int. Immunol. 2008.-Vol.20, N 8. - P.981-991.

104. Casey B.M., Dash J.S., Wells C. et al. Subclinical hypothyroidism and pregnancy outcomes // Obst. Gyn. -2005. -Vol. 105. -P. 239-244.

105. Celis J.E., Bravo R. et al. Two-Dimensional Gel Electrophoresis of Proteins: Methods and Applications. -N.Y.: Academic Press, 1984. 478 p.

106. Cerwenka A. New twist on the regulation of NKG2D ligand expression // J. Exp. Med. 2009.-Vol.206, N 2. - P.265-268.

107. Champsaur M., Lanier L.L. Effect of NKG2D ligand expression on host immune responses // Immunol. Rev. 2010.-Vol.235, N 1. - P.267-285.

108. Chan T.F., Su J.H., Chung Y.F. et al. Elevated amniotic fluid leptin levels in pregnant women who are destined to develop preeclampsia // Acta Obstet. Gynecol. Scand. -2006. -Vol.85, N 2. -P. 171-174.

109. Chatzakis K., Wathen N., Campbell J. et al. Dramatic in crease in levels of placental protein 14 in amniotic fluid at 10-15 weeks' pregnancy // Early Human Develop. 1994. - Vol.36, N 2. - P.113-116.

110. Chen F., Castranova V., Shi X. New insights into the role of nuclear factor-kappaB in cell growth regulation // Am. J. Pathol. 2001.-Vol. 159, N 2. - P.387-397.

111. Chmurzynska A. The multigene family of fatty acid-binding proteins (FABPs): function, structure and polymorphism // J. Appl. Genet. 2006-Vol.47, N 1. - P.39-48.

112. Cho C.K., Shan S.J., Winsor E.J. et al. Proteomics analysis of human amniotic fluid // Mol. Cell Proteomics. -2007. Vol.6, N 8. -P. 1406-1415.

113. Cicek M., Fulcuyama R., Welch D.R. et al. Breast cancer metastasis suppressor 1 inhibits gene expression by targeting nuclear factor-kappaB activity // Cancer Res. 2005.-Vol.65. - P.3586-3595.

114. Clapp C., Thebault S., Jeziorski M.C. et al. Peptide hormone regulation of angiogenesis // Physiol. Rev. 2009.-Vol.89, N 4. - P.1177-1215.

115. Coleman R.A. The role of the placenta in lipid metabolism and transport // Semin. Perinatol. 1989.-Vol. 13. - P. 180-191.

116. Constancia M., Hemberger M., Hughes J. et al. Placental-specific IGF-II is a major modulator of placental and fetal growth // Nature (Lond.). 2002.-Vol.417. - P.945-948.

117. Cookson V.J., Chapman N.R. NF-kappaB function in the human myometrium during pregnancy and parturition // Histol. Histopathol. -2010.-Vol.25, N 7. P.945-956.

118. Cramer M., Nagy I., Murphy B.J. et al. NF-kappaB contributes to transcription of placenta growth factor and interacts with metal responsive transcription factor-1 in hypoxic human cells // Biol. Chem. 2005-Vol.386, N 9. - P.865-872.

119. Crossey P.A., Pillai C.C., Miell J.P. Altered placental development and intrauterine growth restriction in IGF binding protein-1 transgenic mice // J. Clin. Invest. -2002-Vol.l 10, N 3. -P.411-418.

120. Dancis J., Levitz M., Katz J. et al. Transfer and metabolism of retinol by the perfused human placenta // Pediatr. Res. 1992.-Vol.32. - P. 195199.

121. Dawson E.B., Evans D.R., Nosovitch J. Third-trimester amniotic fluid metal levels associated with preeclampsia // Arch. Environ. Health. 1999-Vol.54, N 6. - P.412-415.

122. Delaria K.A., Muller D.K., Marlor C.W. et al. Characterization of placental bikunin, a novel human serine protease inhibitor // J. Biol. Chem.1997.-Vol.272, N 18. P.12209-12214.

123. Denison F.C., Kelly R.W., Calder A.A. et al. Cytokine secretion by human fetal membranes, decidua and placenta at term // Hum Reprod.1998.-Vol.13, N 12.-P.3560-3565.

124. Desvergne B., Wahli W. Peroxisome proliferator-activated receptors: nuclear control of metabolism // Endocr. Rev. 1999.-Vol.20. - P.649-688.

125. Dilger I., Schwedler G., Dudenhausen J.W. Determination of the pulmonary surfactant-associated protein SP-B in amniotic fluid with a competition ELISA // Gynec. Obstet. Invest. -1994. -Vol.38, N 1. P.24-27.

126. Ding M., Umetsu K., Nakayashiki N. et al. Distribution of human Zn-a-2-glycoprotein types in Chinese and Korean populations // Hum. Hered. -1990.-Vol.40.-P.311-312.

127. Dobreva M.P., Pereira P.N., Deprest J. et al. On the origin of amniotic stem cells: of mice and men // Int. J. Dev. Biol.-2010.-Vol.54, N 5. P. 761-777.

128. Dolcini L., Sala A., Campagnoli M. et al. Identification of the amniotic fluid insulin-like growth factor binding protein-1 phosphorylation sites and propensity to proteolysis of the isoforms // FEBS J. 2009-Vol.276, N 20. - P.6033-6046.

129. Donato R. Intracellular and extracellular roles of SI00 proteins // Microsc. Res. Tech. 2003.-Vol.60. - P.540-551.

130. Dongre A.R., Opiteck G., Cosand W.L. et al. Proteomics in the postgenome age // Biopolymers. -2001.-Vol.60, N 3. P.206-211.

131. Dreyer C., Keller H., Mahfoudi A. et al. Positive regulation of the peroxisomal beta-oxidation pathway by fatty acids through activation of peroxisome proliferator-activated receptors (PPAR) // Biol. Cell. 1993 -Vol.77, N 1. - P.67-76.

132. Drohse H., Christensen H., Myrhoj V. et al. Characterisation of non-maternal serum proteins in amniotic fluid at weeks 16 to 18 of gestation // Clin. Chim. Acta. -1998.-Vol.276, N 2. P. 109-120.

133. Dundar O., Yoruk P., Tutuncu L. et al. Second trimester amniotic fluid annexin A5 levels and subsequent development of intrauterine growth restriction // J. Prenat. Diagn. 2008. -Vol.28, N 10. - P. 887-891.

134. Dunn M.J., Hochstrasser D., Pallini V., Bini L. Editoral // Electrophoresis. 1995. -Vol.16. - P.7.

135. Ebert B., Kisiela M., Malätkovä P. et al. Regulation of human carbonyl reductase 3 (CBR3; SDR21C2) expression by Nrf2 in cultured cancer cells // Biochemistry. 2010.-Vol.49, N 39. - P.8499-8511.

136. El Maradny E., Kanayama N., Halim A. et al. Effects of urinary trypsin inhibitor on myometrial contraction in term and preterm deliveries // Gynecol. Obstet. Invest. 1996.-Vol.41. - P.96-102.

137. Eschke U., Richter D.U., Reimer T. et al. Glycodelin A and differentiation of first trimester trophoblast cells in vitro // Arch. Gynecol. Obstet. -2005. Vol.272, N 2. - P. 151-159.

138. Fano G., Biocca S., Fülle S., Mariggio M.A., Belia S., Calissano P. The S-100: A protein family in search of a function // Prog. Neurobiol. -1995.-Vol.46. P.71-82.

139. Favier A.E. The role of zinc in reproduction. Hormonal mechanisms // Biol. Trace Elem. Res. 1992.-Vol.32. - P.363-382.

140. Favier M., Hininger-Favier I. Zinc and pregnancy // Gynecol. Obstet. Fertil. 2005.-Vol.33, N 4. - P.253-258.

141. Fialova L., Malbohan I.M. Pregnancy-associated plasma protein A (PAPP-A): theoretical and clinical aspects // Bratisl. Lek. Listy. -2002-Vol.103, N 6.-P.194-205.

142. Fink M.L., Chung S.I., Folk J.E. Gamma-glutamylamine cyclotransferase: specificity toward epsilon-(L-gamma-glutamyl)-L-lysine and related compounds // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1980.-Vol.77, N 8. - P.4564-4568.

143. Fisher D.A. Maternal-fetal thyroid function in pregnancy // Clinics in Perinatology. -1983. -Vol.10. -P. 615-626.

144. Florianczyk B., Baranowski W., Marciniak B. et al. Zinc and copper in the human placenta membranes // Ann. Univ. Mariae Curie Sklodowska Med. 2002.-Vol.57, N 2. -P.387-391.

145. Flower D.R. The lipocalin protein family: structure and function // Biochem. J. 1996.-Vol.318. - P.l-14.

146. Ford D. Intestinal and placental zinc transport pathways // Proc. Nutr. Soc.-2004.-Vol.63, N 1. -P.21-29.

147. Formigli L., Papucci L., Tani A. et al. Aponecrosis: morphological and biochemical exploration of a syncretic process of cell death sharing apoptosis and necrosis // J. Cell Physiol.-2000.-Vol.182, N 1. P.41-49.

148. Fulcada T., Yamasaki S., Nishida K. et al. Zinc homeostasis and signaling in health and diseases: Zinc signaling // J. Biol. Inorg. Chem. -2011.-Vol.16, N 7. P.l 123-1134.

149. Gaiser A.M., Kretzschmar A., Richter K. Cdc37-Hsp90 complexes are responsive to nucleotide-induced conformational changes and binding of further cofactors // J. Biol. Chem. 2010.-Vol.285, N 52. - P.40921-40932.

150. Gasser S., Orsulic S., Brown E.J. et al. The DNA damage pathway regulates innate immune system ligands of the NKG2D receptor // Nature. -2005.-Vol.436. P.l 186 -1190.

151. Gerard-Monnier D., Chaudiere J. Metabolism and antioxidant function of glutathione // Pathol. Biol. (Paris). -1996. -Vol.44, N 1. -P.77-85.

152. Giacomozzi C., Ghirri P., Lapolla R. et al. Retinol-binding protein 4 in neonates born small for gestational age // J. Endocrinol. Invest. 2010-Vol.33, N 4.-P218-221.

153. Gibson J.M., Aplin J.D., White A. et al. Regulation of IGF bioavailability in pregnancy // Mol. Hum. Reprod. 2001.-Vol.7, N 1. -P.79-87.

154. Giilmezoglu A.M., Oosthuizen M.M.J., Hofmeyr G.J. Placental malondialdehyde and glutathione levels in a controlled trial of antioxidant treatment in severe preeclampsia // Hypertens. Pregnancy. 1996.-Vol.15. -P.287-295.

155. Gilfillan S., Ho E.L., Cella M. et al. NKG2D recruits two distinct adapters to trigger NK cell activation and costimulation // Nat. Immunol. -2002.-Vol.3.-P. 1150-1155.

156. Goldenberg R.L., Mercer B.M., Meis P.J. et al. The preterm prediction study: fetal fibronectin testing and spontaneous preterm birth. NICHD maternal fetal medicine units network // J. Obstet. Gynec. 1996. -Vol.87, N 5. - P.643-648.

157. Goldman-Wohl D., Yagel S. Regulation of trophoblast invasion: from normal implantation to pre-eclampsia // Mol. Cell Endocrinol. -2002-Vol.187, N 1-2. -P.233-238.

158. Gong F.Y., Zhang S.J., Deng J.Y. et al. Zinc-alpha2-glycoprotein is involved in regulation of body weight through inhibition of lipogenic enzymes in adipose tissue // Int. J. Obes. (Lond). 2009.-Vol.33, N 9. -P.1023-1030.

159. Gootwine E. Placental hormones and fetal-placental development // Anim. Reprod. Sci. 2004.-Vol.82-83. - P.551-566.

160. Gratton R.J., Asano H., Han V.K. The regional expression of insulinlike growth factor II (IGF-II) and insulin-like growth factor binding protein-1 (IGFBP-1) in the placentae of women with pre-eclampsia // Placenta. -2002.-Vol.23, N 4. P.303-310.

161. Gray P.J. Jr., Stevenson M.A., Calderwood S.K. Targeting Cdc37 inhibits multiple signaling pathways and induces growth arrest in prostate cancer cells // Cancer Res. 2007.-Vol.67, N 24. - P. 11942-11950.

162. Grewal J.S., Tsai J.Y., Khan S.R. Oxalate-inducible AMBP gene and its regulatory mechanism in renal tubular epithelial cells // Biochem. J. -2005.-Vol.387, Pt. 3. P.609-616.

163. Gulbis B., Gervy C., Jauniaux E. Amniotic fluid biochemistry in second-trimester trisomic pregnancies: relationships to fetal organ maturation and dysfunction // J.Early Hum. Dev. -1998. Vol. 52, N 3. - P. 211-219.

164. Giinyeli I., Zergeroglu S., Dani§man N. et al. The diagnostic significance of hCG and hPL via immunohistochemistry of placental tissuesin pregnancies diagnosed with IUGR and IUD // J. Obstet. Gynaecol. -2009.-Vol.29, N 6. P.521-525.

165. Hanash S. HUPO initiatives relevant to clinical proteomics // Mol. Cell Proteomics. 2004.-Vol.3, N 4. - P.298-301.

166. Handwerger S. Clinical counterpoint: the physiology of placental lactogen in human pregnancy // Endocr. Rev. 1991.-Vol. 12, N 4. - P.329-336.

167. Handwerger S., Freemark M. The roles of placental growth hormone and placental lactogen in the regulation of human fetal growth and development // J. Pediatr. Endocrinol. Metab. 2000-Vol.13, N 4. - P.343-356.

168. Hanna L.A., Clegg M.S., Ellis-Hutchings R.G. et al. The influence of gestational zinc deficiency on the fetal insulin-like growth factor axis in the rat // Exp. Biol. Med. 2010.-Vol.235, N 2. - P.206-214.

169. Haram K., Augensen K., Elsayed S. Serum protein pattern in normal pregnancy with special reference to acute-phase reactants // Br. J. Obstet. Gynaecol. 1983.-Vol.90, N 2. - P.139-145.

170. Harris M.B., Bartoli M., Sood S.G. et al. Direct interaction of the cell division cycle 37 homolog inhibits endothelial nitric oxide synthase activity // Circ. Res. 2006.-Vol.98, N 3. - P.335-341.

171. Hassan M.I., Waheed A., Yadav S. et al. Zinc alpha 2-glycoprotein: a multidisciplinary protein // Mol. Cancer Res. 2008.-Vol.6, N 6. - P.892-906.

172. Hayden M.S., Ghosh S. Signaling to NF-kB // Genes Dev. 2004.-Vol. 18.-P.2195-2224.

173. He N., Brysk H., Tyring S.K. et al. Zinc-a(2)-glycoprotein hinders cell proliferation and reduces Cdc2 expression // J. Cell Biochem. 2001 -Vol.81. - P.162-169.

174. Hedlund M., Stenqvist A.C., Nagaeva O. et al. Human placenta expresses and secretes NKG2D ligands via exosomes that down-modulatethe cognate receptor expression: evidence for immunosuppressive function // J. Immunol. 2009.-Vol.183, N 1. - P.340-351.

175. Hettinger A.M., Allen M.R., Zhang B.R. et al. Presence of the acute phase protein, bikunin, in the endometrium of gilts during estrous cycle and early pregnancy // Biol. Reprod. 2001.-Vol.65, N 2. - P.507-513.

176. Hinz M., Broemer M., Arslan S.C. et al. Signal responsiveness of IkappaB kinases is determined by Cdc37-assisted transient interaction with Hsp90 // J. Biol. Chem. 2007.-Vol.282, N 44. - P.32311-32319.

177. Hofmann B., Hecht H.-J., Flohe L. Peroxiredoxins // J. Biol. Chem. -2002.-Vol.383. P.347-364.

178. Holmes R.P., Holly J.M., Soothill P.W. Maternal insulin-like growth factor binding protein-1, body mass index, and fetal growth // Arch. Dis. Child. Fetal Neonatal Ed. 2000.-Vol.82, N 2. - P. 113-117.

179. Hsu K., Passey R.J., Endoh Y. et al. Regulation of S100A8 by glucocorticoids // J. Immunol. 2005.-Vol. 174, N 4. - P.2318-2326.

180. Hu R., Jin H., Zhou S. et al. Proteomic analysis of hypoxia-induced responses in the syncytialization of human placental cell line BeWo // Placenta. 2007.-Vol.28, N 5-6. -P. 399-407.

181. Hu S., Loo J.A., Wong D.T. Human body fluid proteome analysis // Proteomics. 2006. - Vol. 6, N 23. - P. 6326-6353.

182. Huang S.T., Vo K.C., Lyell D.J. et al. Developmental response to hypoxia // FASEB J. 2004.-Vol.18, N 12. - P.1348-1365.

183. Hull K.L., Harvey S. Growth hormone: roles in female reproduction // J. Endocrinol. -2001. -Vol. 168. P. 1-23.

184. Hung T.H., Skepper J.N., Charnock-Jones D.S. et al. Hypoxia-reoxigenation: a potent inducer of apoptotic changes in the human placentaand possible etiological factor in preeclampsia // Circ. Res. -2002. -Vol. 90, N 12.-P. 1274-1281.

185. Inoue S., Talcamoto N., Akahori Y. et al. Elevated level of serum retinol-binding protein 4 in pregnancy-induced hypertension // J. Obstet. Gynaecol. Res. 2009.-Vol.35, N 2. - P.293-300.

186. Insausti C.L., Blanquer M., Bleda P. The amniotic membrane as a source of stem cells // Histol. Histopathol. -2010.- Vol.25, N 1.-P.91-98.

187. Issaq H.J., Xiao Z., Veenstra T.D. Serum and plasma proteomics // Chem. Rev. 2007. - Vol.107, N 8. - P.3601-3620.

188. Itoh Y., Enomoto H., Kawai T. et al. Human alpha 1-microglobulin in normal pregnancy. Studies on human alpha 1-microglobulin // J. Rinsho Byori. 1983.-Vol.31, N 4. - P. 405-408.

189. Ivings L., Pennington S.R., Jenkins R. et al. Identification of Ca2+-dependent binding partners for the neuronal calcium sensor protein neurocalcin delta: interaction with actin, clathrin and tubulin // Biochem. J. -2002.-Vol.363, Pt. 3. P.599-608.

190. Jalanko H., Rapola J., Lehtonen E. Particulate fraction in amniotic fluid at second trimester // J. Clin. Pathol. -1985.-Vol.38, N 9. -P. 10651072.

191. Janneau J.L., Maldonado-Estrada J., Tachdjian G. et al. Transcriptional expression of genes involved in cell invasion and migration by normal and tumoral trophoblast cells // J. Clin. Endocrinol. Metab. -2002.-Vol.87, N 11. -P. 5336-5339.

192. Jauniaux E., Gulbis B., Jurkovic D. et al. Relationship between protein concentrations in embryological fluids and maternal serum and yolk sac size during human early pregnancy // J. Human Reprod. 1994.-Vol.9, N 1. -P.161-166.

193. Jirka ML, Blanicky P. Polymorphism of human serum Zn-alpha 2-glycoprotein and its behaviour during ontogenesis using quantitative crossed starch gel immunoelectrophoresis // Clin. Chim. Acta. 1980.-Yol.103, N 1.-P.61-66.

194. Johansson S., Gustafson A.L., Donovan M. et al. Retinoid binding proteins-expression patterns in the human placenta // Placenta. 1999-Vol.20. - P.459-465.

195. Jugovic D., Tumbri J., Medic M. et al. New Doppler index for prediction of perinatal brain damage in growth-restricted and hypoxic fetuses // Ultrasound Obsted. Gynecol. 2007. - Vol.30. - P.300-311.

196. Jung H.S., Yoon B.H., Jun J.K. et al. Differential activation of mitogen activated protein kinases and nuclear factor-kappaB in lipopolysaccharide-treated term and preterm amnion cells // Virchows Arch. 2005.-Vol.447, N 1. - P.45-52.

197. Kaczmarczyk A., Blom A.M., Alston-Smith J. et al. Plasma bikunin: half-life and tissue uptake // Mol. Cell Biochem. 2005.-Vol.271, N 1-2. -P.61-67.

198. Kalia A., Gupta R.P. Proteomics: a paradigm shift // Crit. Rev. Biotechnol.-2005.-Vol.25, N 4.-P. 173-198.

199. Kallchoven E., Wissink S., van der Saag P.T. et al. Negative interaction between the RelA(p65) subunit of NF-kB and the progesterone receptor // J. Biol. Chem. 1996.-Vol.271. - P.6217-6224.

200. Karabulut A.K., Layfield R., Pratten M.K. Growth promoting effects of human placental lactogen during early organogenesis: a link to insulinlike growth factors // J. Anat. -2001.-Vol. 198, N 6. P.651-662.

201. Katz Y., Gur S., Aladjem M. et al. Synthesis of complement proteins in amnion // J. Clin. Endocrinol. Metab. -1995.-Vol.80, N 7. P.2027-2032.

202. Kaufmann P., Black S., Huppertz B. Endovascular trophoblast invasion: implications for the pathogenesis of intrauterine growth retardation and preeclampsia // Biol. Reprod. 2003. Vol. 69, N 1. -P. 1-7.

203. Keen C.L., Uriu-Hare J.Y., Hawk S.N. et al. Effect of copper deficiency on prenatal development and pregnancy outcome // Am. J. Clin. Nutr. 1998.-Vol.67, N 5. - P. 1003-1011.

204. Kelner M.J., Estes L., Rutherford M. et al. Heterologous expression of carbonyl reductase: demonstration of prostaglandin 9- ketoreductase activity and paraquat resistance // Life Sci. 1997-Vol.61. - P.2317-2322.

205. Kent A.S., Sullivan M.H., Elder M.G. Transfer of cytokines through human fetal membranes // J. Reprod. Fertil. -1994.-Vol.100, N 1. P.81-84.

206. Kerkhoff C., Klempt M., Kaever V. et al The two calcium-binding proteins, S100A8 and S100A9, are involved in the metabolism of arachidonic acid in human neutrophils // J. Biol. Chem. 1999.-Vol.274, N 46. - P.32672-32679.

207. Khurana D., Arneson L.N., Schoon R.A. et al. Differential regulation of human NK cell-mediated cytotoxicity by the tyrosine kinase Itk // J. Immunol. 2007.-Vol.178, N 6. - P.3575-3582.

208. Kim S.Y., Ryu H.M., Yang J.H. et al. Maternal serum and amniotic fluid inhibin A levels in women who subsequently develop severe preeclampsia // J. Korean Med. Sci. -2006,-Vol. 21, N 3. P. 452-456.

209. King A.E., Critchley H.O., Kelly R.W. The NF-kappaB pathway in human endometrium and first trimester decidua // Mol. Hum. Reprod. -2001.-Vol.7, N 2. P.175-183.

210. King J.C. Zinc: an essential but elusive nutrient // Am. J. Clin. Nutr. -2011 .-Vol.94 N 2. P.679-684.

211. Kirkegaard I., Uldbjerg N., Oxvig C. Biology of pregnancy-associated plasma protein-A in relation to prenatal diagnostics: an overview // Acta Obstet. Gynecol. Scand. -2010,-Vol. 89, N 9. P.l 118-1125.

212. Kishi K., Hirashiba M., Hasegawa Y. Gestational profiles of rat placental lactogen-II (rPL-II) and growth hormone (GH) in maternal and fetal serum, amniotic fluid, and placental tissue // Endocrinol. Jpn. 1991-Vol.38, N 6. - P.589-595.

213. Klose J. Systematic analysis of the total proteins of a mammalian organism: principles, problems and implications for sequencing the human genome // Electrophoresis. 1989. -Vol.10. - P.140-152.

214. Knapen M.F., Peters W.H., Mulder T.P. et al. Glutathione and glutathione-related enzymes in decidua and placenta of controls and women with pre-eclampsia // Placenta. 1999.-Vol.20, N 7. - P.541-546.

215. Kobayashi H., Naruse K., Sado T. et al. Search for amniotic fluid-specific markers: novel biomarker candidates for amniotic fluid embolism // The Open Women's Health Journal. -2011.-Vol. 5. P.7-15.

216. Kobayashi H., Sun G.W., Terao T. Urinary trypsin inhibitor downregulates hyaluronic acid fragment-induced prostanoid release in cultured human amnion cells by inhibiting cyclo-oxygenase-2 expression // Mol. Hum. Reprod. 1999.-Vol.5. - P.662-667.

217. Krauss M.R., Collins P.J., Blose S.H. A two-dimensional acrylamide gel electrophoresis/ computer software approach to decoding the human genome // Biotechniques. 1990. -Vol.8. - P.218-223.

218. Kudo J., Okubo H., Ikita T. et al. Interaction of acute phase reactive (APR) proteins with lectins: its relationship to lymphocyte transformation // Biomed. Res.- 1982. -N 3. -P.417-421.

219. Kulms D., Schwarz T. NF-kappaB and cytokines // Vitam. Horm. -2006.-Vol.74. P.283-300.

220. Kumar A., Takada Y., Boriek A.M. et al. Nuclear factor-kappaB: its role in health and disease // J. Mol. Med. (Berl). 2004.-Vol.82, N 7. -P.434-448.

221. Kutsulcake M., Ishihara R., Yoshie M. et al. Involvement of insulinlike growth factor-binding protein-related protein 1 in decidualization of human endometrial stromal cells // Mol. Hum. Reprod. 2007.-Vol.13, N 10. - P.737-743.

222. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 // Nature. 1970. -Vol. 227. - P. 680-685.

223. Landers K.A., McKinnon B.D., Li H., et al. Carrier-mediated thyroid hormone transport into placenta by placental transthyretin // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2009.-Vol.94, N 7. - 2610-2616.

224. Langford K., Nicolaides K., Miell J.P. Maternal and fetal insulin-like growth factors and their binding proteins in the second and third trimesters of human pregnancy // Hum. Reprod. 1998.Vol.13, N 5. - P.1389-1393.

225. Lappas M., Rice G.E. The role and regulation of the nuclear factor kappa B signalling pathway in human labour // Placenta. 2007.-Vol.28, N 5-6. - P.543-556.

226. Lappas M., Yee K., Permezel M. et al. Lipopolysaccharide and TNF-alpha activate the nuclear factor kappa B pathway in the human placental JEG-3 cells // Placenta. 2006.-Vol.27, N 6-7. - P.568-575.

227. Lavee M., Goldman S., Daniel-Spiegel E. et al. Matrix metalloproteinase-2 is elevated in midtrimester amniotic fluid prior to the development of preeclampsia // Reprod. Biol. Endocrinol. 2009. - Vol.7, N 85.-P.1-6.

228. Lee K.W., Lee D.J., Lee J.Y. et al. Peroxiredoxin II restrains DNA damage-induced death in cancer cells by positively regulating JNK-dependent DNA repair // J. Biol. Chem. 2011.-Vol.286, N 10. - P.8394-8404.

229. Lee P.D., Giudice L.C., Conover C.A. et al. Insulin-like growth factor binding protein-1: recent findings and new directions // Proc. Soc. Exp. Biol. Med.-l997.-Vol.216, N 3. P.319-357.

230. Lei G., Arany I., Tyring S.K. et al. Zinc-alpha 2-glycoprotein has ribonuclease activity // Arch. Biochem. Biophys. 1998.-Vol.355, N 2. -P. 160-164.

231. Lim S.Y., Raftery M.J., Goyette J. et al. Oxidative modifications of SI00 proteins: functional regulation by redox // J. Leukoc. Biol. 2009-Vol.86, N 3. - P.577-587.

232. Linnala A., von Koskull H., Virtanen I. Isoforms of cellular fibronectin and tenascin in amniotic fluid // FEBS Letters. 1994.-Vol.337, N 2. - P.167-170.

233. Liu A.X., Jin F., Zhang W.W., et al. Proteomic analysis on the alteration of protein expression in the placental villous tissue of early pregnancy loss // Biol. Reprod. 2006.-Vol.75. -P.414-420.

234. Liu Y., Smith P.W., Jones D.R. Breast cancer metastasis suppressor 1 functions as a corepressor by enhancing histone deacetylase 1-mediated deacetylation of RelA/p65 and promoting apoptosis // Mol. Cell. Biol. -2006.-Vol.26, N 23. P.8683-8696.

235. Logdberg L.E., Akerstrom B., Badve S. Tissue distribution of the lipocalin alpha-1 microglobulin in the developing human fetus // J. Histochem. Cytochem. 2000.-Vol48, N 11. - P.l 545-1552.

236. Lolce Y.W., King A. Immunological aspects of human implantation // J. Reprod. Fértil. -2000.-Vol.55.- P.55-63.

237. Lopez-Boado Y.S., Diez-Itza I., Tolivia J. et al. Glucocorticoids and androgens up-regulate the Zn-a2-glycoprotein messenger RNA in human breast cancer cells // Breast Cancer Res. Treat. 1994.-Vol.29. - P.247-258.

238. Lottspeich F. Proteome Analysis: A Pathway to the Functional Analysis of Proteins // Angew. Chem. Int. Ed. Engl.-1999.-Vol. 38. -P.2476-2492.

239. Loudon J.A., Elliott C.L., Hills F. et al. Progesterone represses interleukin-8 and cyclo-oxygenase-2 in human lower segment fibroblast cells and amnion epithelial cells // Biology of Reproduction. 2003,-Vol.69.-P.331-337.

240. Low F.M., Hampton M.B., Peskin A.V. et al. Peroxiredoxin 2 functions as a noncatalytic scavenger of low-level hydrogen peroxide in the erythrocyte // Blood. 2007.-Vol.109, N 6. - P.2611-2617.

241. Lutsenko S. Human copper homeostasis: a network of interconnected pathways // Curr. Opin. Chem. Biol. 2010.-Vol.14, N 2. - P.211-217.

242. Lyall F. Mechanisms regulating cytotrophoblast invasion in normal pregnancy and pre-eclampsia // Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. 2006. -Vol.46, N4.-P.266-273.

243. Ma X., Ren X., Han P. et al. SiRNA against Fabp5 induces 3T3-L1 cells apoptosis during adipocytic induction // Mol. Biol. Rep. 2010-Vol.37, N 8. - P.4003-4011.

244. MacLean M., Picard D. Cdc37 goes beyond Hsp90 and kinases // Cell Stress Chaperones. 2003.-Vol.8, N 2. - P. 114-119.

245. Makrigiannis A.P., Anderson S.K. Regulation of natural killer cell function // Cancer Biol. Ther. 2003.-Vol.2, N 6. - P.610-616.

246. Malátlcová P., Maser E., Wsól V. Human carbonyl reductases // Curr. Drug. Metab. 2010.-Vol.l 1, N 8. - P.639-658.

247. Malek A., Sager R., Willi A. et al. Production of protein hormones by cultured trophoblast cells isolated from term and early placentae // Am. J. Reprod. Immunol. 2000.-Vol.43, N 5. - P.278-284.

248. Mandal A.K., Lee P., Chen J.A. et al. Cdc37 has distinct roles in protein kinase quality control that protect nascent chains from degradation and promote posttranslational maturation // J. Cell. Biol. 2007.-Vol.176, N 3.-P.319-328.

249. Marceau G., Gallot D., Lemery D. et al. Metabolism of retinol during mammalian placental and embryonic development // Vitam. Horm. 2007-Vol.75.-P.97-l 15.

250. Marchini G., Hagenas L., Kocoska-Maras L. et al. Insulin-like growth factor binding protein-1 and interleukin-6 are markers of fetal stress during parturition at term gestation // J. Pediatr. Endocrinol. Metab. 2005-Vol.18, N 8. - P.777-783.

251. Marvin K.W., Keelan J.A., Eykholt R.L. et al. Expression of angiogenic and neurotrophic factors in the human amnion and choriodecidua // Am. J. Obstet. Gynecol. -2002.-Vol.187, N 3,- P.728-734.

252. Maser E. Xenobiotic carbonyl reduction and physiological steroid oxidoreduction. The pluripotency of several hydroxysteroid dehydrogenases // Biochem. Pharmacol. 1995.-Vol.49. - P.421-440.

253. Masouye I., Hagens G., Van Kuppevelt T.H.et al. Endothelial cells of the human microvasculature express epidermal fatty acid-binding protein // Circ. Res. 1997.-Vol.81, N 3. - P297-303.

254. Masuyama H., Inoue S., Hiramatsu Y. Retinol-binding protein 4 and insulin resistance in preeclampsia // Endocr. J. 2011 .-Vol.58, N 1. - P.47-53.

255. McArdle H.J., Andersen H.S., Jones H. et al. Copper and iron transport across the placenta: regulation and interactions // J. Neuroendocrinol. 2008.-Vol.20, N 4. - P.427-431.

256. McKinnon B., Li H., Richard K., et al. Synthesis of thyroid hormone binding proteins transthyretin and albumin by human trophoblast // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2005. - Vol.90, N 12. - P.6714-6720.

257. Merril C., Harrington M.G. Two-dimensional electrophoresis and ultrasensitive silver staining of cerebrospinal fluid proteins in neurological disease // Clin. Chem. 1984.-Vol.30, N 12. - P.1933-1937.

258. Mirlesse V., Frankenne F., Alsat E. et al. Placental growth hormone levels in normal pregnancy and in pregnancies with intrauterine growth retardation // Pediatr. Res. -1993.-Vol.34. P.439-442.

259. Miyamura K., Malhotra R., Hoppe H.J. et al. Surfactant proteins A (SP-A) and D (SP-D): levels in human amniotic fluid and localization in the fetal membranes // Bioch. Bioph. Acta. 1994. -Vol.1210, N 3. - P. 303307.

260. Modena A.B., Fieni S. Amniotic fluid dynamic // Acta Biomed. -2004. -Vol.75, N l.-P.l 1-13.

261. Moffett-King A. Natural killer cells and pregnancy // Nat. Rev. Immunol. 2002.-Vol.2, N 9. - P.656-663.

262. Monaco H.L. The transthyretin-retinol-binding protein complex // Biochim. Biophys. Acta. 2000. - Vol.1482. - P.65-72.

263. Moretta L., Moretta A. Unravelling natural killer cell function: triggering and inhibitory human NK receptors // EMBO J. 2004.-Vol.23, N 2. - P.255-259.

264. Morrison J., Naef R.W.- 3rd., Fottj J.J. et al. Prediction of spontaneous preterm birth by fetal fibronectin and uterine activity // J. Obstet. Gynec. -1996. -Vol.87, N 5. P.649-655.

265. Murisier-Petetin G., Gremiich S., Damnon F. et al. Amniotic fluid insulin-like growth factor binding protein 3 concentration as early indicator of fetal growth restriction // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. -2009. -Vol.144, N 1.- P. 15-20.

266. Mracek T., Gao D., Tzanavari T. et al. Downregulation of zinc-{alpha} 2-glycoprotein in adipose tissue and liver of obese ob/ob mice and by tumour necrosis factor-alpha in adipocytes // J. Endocrinol. 2010-Vol.204, N 2. - P. 165-72.

267. Nacken W., Roth J., Sorg C. et al S100A9/S100A8: myeloid representatives of the SI00 protein family as prominent players in innate immunity // Microsc. Res. Tech. 2003.-Vol.60. -P.569.

268. Ness R.B., Sibai B.M. Shared and disparate components of the pathophysiologies of fetal growth restriction and preeclampsia // Am. J. Obstet. Gynecol. -2006. Vol.195, N 1. - P. 40-49.

269. Newbern D., Freemark M. Placental hormones and the control of maternal metabolism and fetal growth // Curr. Opin. Endocrinol. Diabetes Obes. 2011 .-Vol. 18, N 6. - P.409-416.

270. Oakley A. J., Coggan M., Board P.G. Identification and characterization of gamma-glutamylamine cyclotransferase, an enzymeresponsible for gamma-glutamyl-epsilon-lysine catabolism // J. Biol. Chem. 2010.-Vol.285, N 13. - P.9642-9648.

271. Oakley A.J., Yamada T., Liu D. et al. The identification and structural characterization of C7orf24 as gamma-glutamyl cyclotransferase. An essential enzyme in the gamma-glutamyl cycle // J. Biol. Chem. 2008-Vol.283, N 32. - P.22031-22042.

272. O'Callaghan D.W., Ivings L., Weiss J.L. et al. Differential use of myristoyl groups on neuronal calcium sensor proteins as a determinant of spatio-temporal aspects of Ca2+ signal transduction // J. Biol. Chem. -2002.-Vol.277, N 16. P.14227-14237.

273. O'Farrell P.H. Hight resolution two-dimensional electrophoresis of proteins // J. Biol. Chem. 1975.-Vol.250, N 10. - P.4007^021.

274. Oh S.K., Pavlotsy N., Tauber A.I. Specific binding of haptoglobin to human neutrophils and its functional consequences // J. Leulcoc. Biol. -1990. -Vol.47, N2.-P.142-148.

275. Oikawa K., Kimura S., Aoki N. et al. Neuronal calcium sensor protein visinin-like protein-3 interacts with microsomal cytochrome b5 in a Ca2+-dependent manner // J. Biol. Chem. 2004.-Vol.279, N 15. - P.15142-15152.

276. Olahova M., Taylor S.R., Khazaipoul S. et al. A redox-sensitive peroxiredoxin that is important for longevity has tissue- and stress-specific roles in stress resistance // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008.-Vol.105, N 50. - P.19839-19844.

277. Ozdemir U., Gulturk S., Aker A. et al. Correlation between birth weight, leptin, zinc and copper levels in maternal and cord blood // J. Physiol. Biochem. 2007.-Vol.63, N 2. - P. 121-128.

278. Park J.S., Oh K.J., Norwitz E.R. et al. Identification of proteomic biomarkers of preeclampsia in amniotic fluid using SELDI-TOF mass spectrometry // J. Reprod. Sci. -2008. Vol.15, N 5. - P. 457^68.

279. Passey R.J., Williams E., Lichanska A.M. et al. A null mutation in the inflammation-associated SI 00 protein S100A8 causes early resorption of the mouse embryo // J. Immunol. 1999a.-Vol.163, N 4. - P.2209-2216.

280. Passey R.J., Xu K., Hume D.A. et al. S100A8: emerging functions and regulation // J. Leukoc. Biol. 1999b.-Vol.66, N 4. - P.549-556.

281. Pathak P., Kapil U. Role of trace elements zinc, copper and magnesium during pregnancy and its outcome // Indian J. Pediatr. 2004,-Vol.71, N 11. - P.1003-1005.

282. Patterson S.D., Aebersold R. Mass spectrometric approaches for the identification of gel-separated proteins // Electrophoresis. 1995.-Vol.16, N 10. - P.1791-1814.

283. Monteoliva L., Albar P. Differential proteomics: an overview of gel and nongel based approaches // Brief Funct. Genomic Proteomic. 2004-Vol.3, N 3. - P.220-239.

284. Pearl L.H. Hsp90and Cdc37 a chaperone cancer conspiracy // Curr. Opin. Genet. Dev. - 2005.-Vol.15. - P.55-61.

285. Phadke P.A., Vaidya K.S., Nash K.T. et al. BRMS1 suppresses breast cancer experimental metastasis to multiple organs by inhibiting several steps of the metastatic process // Am. J. Pathol. 2008.-Vol.172, N 3. - P.809-817.

286. Phalen T.J., Weirather K., Deming P.B. et al. Oxidation state governs structural transitions in peroxiredoxin II that correlate with cell cycle arrest and recovery // J. Cell. Biol. 2006.-Vol.175, N 5. - P.779-789.

287. Piva R., Belardo G., Santoro M.G. NF-kappaB: a stress-regulated switch for cell survival // Antioxid. Redox. Signal. 2006.-Vol.8, N 3-4. -P.478-486.

288. Plum L.M., Rink L., Haase H. The essential toxin: impact of zinc on human health // Int. J. Environ. Res. Public. Health. 2010.-Vol.7, N 4. -P.1342-1365.

289. Pompella A., Visvikis A., Paolicchi A. et al. The changing faces of glutathione, a cellular protagonist // Biochem. Pharmacol. 2003. -Vol.66, N8.-P. 1499-1503.

290. Potier M., Cousineau J., Michaud L. et al. Fetal intestinal microvilli in human amniotic fluid // Prenat. Diagn. -1986. -Vol.6, N 6. P.429-436.

291. Prasad A.S. Zinc: role in immunity, oxidative stress and chronic inflammation // Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2009.-Vol. 12, N 6. -P.646-652.

292. Price K.M., Silman R., Armstrong P. et al. The typing of fetal antigen 2 in human amniotic fluid // Clin. Chim. Acta. 1995.-Vol.236, N 2. -P.181-194.

293. Prusa A-R., Hengstschlager M. Amniotic fluid cells and human stem cell research -a new connection // Med. Sci. Monit-2002. -Vol. 8, N 1 l.-P. 253-257.

294. Puzanowska-Tarasiewicz H., Kuzmicka L., Tarasiewicz M. Biological function of some elements and their compounds. III. Zinc component and activator of enzymes // Pol. Merkur. Lekarski. - 2009.-Vol.27, N 161. -P.419-422.

295. Raijmalcers M.T., Roes E.M., te Morsche R.H. et al. Haptoglobin and its association with the HELLP syndrome // J. Med. Genet. 2003.-Vol.40, N 3. - P.214-216.

296. Redline R.W., Patterson P. Pre-eclampsia is associated with an excess of proliferative immature intermediate trophoblast // Hum. Pathol. 1995 -Vol.26, N 6. - P.594-600.

297. Redman C.W., Sarrgent I.L. Pathogenesis of pre-eclampsia // Gynecol. Obstet. Fertil. -2001.-Vol.29, N 7-8. P.518-522.

298. Redman C.W.G., Sargent I.L. Microparticles and immunomodulation in pregnancy and pre-eclampsia // J. Reprod. Immunol. 2007.-Vol.76. -P.61-67.

299. Reinstein N.H., Lonnerdal B., Keen C.L. et al. Zinc-copper interactions in the pregnant rat: fetal outcome and maternal and fetal zinc, copper and iron // J. Nutr. 1984.-Vol.l 14, N 7. - P.1266-1279.

300. Richardson S.J. Cell and molecular biology of transthyretin and thyroid hormones // Int. Rev. Cytol. 2007.-Vol.258 - P.137-193.

301. Robbins J. Thyroxine transport and the free hirmine hypothesis // Endocrinology. -1992. -Vol. 132, N 2.-P. 546-547.

302. Roberts J.M. Oxidative stress in preeclampsia. / J.M. Roberts, C.A. Hubel // Am. J. Obstet. Gynecol. 2004. -Vol. 190, N. 5. P. 1177-1178.

303. Rolli V., Radosavljevic M., Astier V. et al. Lipolysis is altered in MHC class I zinc-a(2)-glycoprotein deficient mice // FEBS Lett. 2007-Vol.581. -P.394-400.

304. Russell S.T., Tisdale M.J. Effect of eicosapentaenoic acid (EPA) on expression of a lipid mobilizing factor in adipose tissue in cancer cachexia // Prostaglandins Leukot. Essent. Fatty Acids. 2005.-Vol.72. - P.409-414.

305. Russell S.T., Zimmerman T.P., Domin B.A. et al. Induction of lipolysis in vitro and loss of body fat in vivo by zinc-a2-glycoprotein // Biochim. Biophys. Acta. 2004.-Vol.1636. - P.59-68.

306. Ruz M. Zinc supplementation and growth // Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 2006.-Vol.9, N 6. - P.757-762.

307. Sabapatha A., Gercel-Taylor C., Taylor D.D. Specific isolation of placenta-derived exosomes from the circulation of pregnant women andtheir immunoregulatory consequences // Am. J. Reprod. Immunol. 20061. Vol.56. P.345-355.

308. Saccani S., Pantano S., Natoli G. Modulation of NF-kB activity by exchange of dimmers // Mol. Cell. 2003.-Vol.11. - P. 1563-1574.

309. Salafia C.M. Placental pathology of fetal growth restriction //J. Clin.Obstet. Gynecol.-1997.-Vol. 4.-P.740-749.

310. Samant R.S., Clark D.W., Fillmore R.A. et al. Breast cancer metastasis suppressor 1 (BRMS1) inhibits osteopontin transcription by abrogating NF-kappaB activation // Mol. Cancer. 2007.-Vol.6. - P.6.

311. Sanchez D., Martinez S., Lindqvist A. et al. Expression of the AMBP gene transcript and its two protein products, alpha(l ^microglobulin and bikunin, in mouse embryogenesis // Mech. Dev. 2002.-Vol.117. - P.293-298.

312. Sapin V., Alexandre M.C., Chaib S. et al. Effect of vitamin A status at the end of term pregnancy on the saturation of retinol binding protein with retinol // Am. J. Clin. Nutr. 2000.-Vol.71, N 2. - P.537-543.

313. Sarandalcou A., Kassanos D., Phocas I. et al. Amniotic fluid hormone profiles during normal and abnormal pregnancy // Clin. Exp. Obstet. Gynecol. 1992.-Vol.19, N 3. - P.180-188.

314. Sato N., Isono K., Ishiwata I. et al. Tissue expression of the SI00 protein family-related MRP8 gene in human chorionic villi by in situ hybridization techniques // Okajimas Folia Anat. Jpn. 1999.-Vol.76, N 23. - P.123-129.

315. Saunders M.M., Seraj M.J., Li Z. et al. Breast cancer metastatic potential correlates with a breakdown in homospecific and heterospecificgap junctional intercellular communication // Cancer Res. 2001 .-Vol.61. -P.1765-1767.

316. Schieber A., Frank R.W., Ghisla S. Purification and properties of prostaglandin 9-ketoreductase from pig and human kidney. Identity with human carbonyl reductase // Eur. J. Biochem. 1992.-Vol.206. - P.491-502.

317. Schlafke S., Lantz K.C., King B.F. et al. Ultrastructural localization of pregnancy-specific beta 1-glycoprotein (SP1) and cathepsin B in villi of early placenta of the macaque // Placenta. -1992.-Vol.13, N 5. P.417-423.

318. Schmidt, W. The amniotic fluid compartment: the fetal habitat //Adv. Anat. Embryol. Cell Biol. 1992.-Vol.127. - P. 1-100.

319. Schulz M., Waclcer J., Bastert G. Glutathione levels and antioxidative status in pre-eclampsia // Int. J. Gynaecol. Obstet. -2002 Vol. 78, N 2. -P. 157-158.

320. Seeds A.E. Current concepts of amniotic fluid dynamics // Am. J. Obstet. Gynec. -1980,-Vol. 113. -P. 575-586

321. Sen R., Baltimore D. Multiple nuclear factors interact with the immunoglobulin enhancer sequences // Cell. -1986. -Vol. 46, N 5. P. 705716.

322. Seol H.J., Kim J.W., Kim H.J. Retinol-binding protein-4 is decreased in patients with preeclampsia in comparison with normal pregnant women // J. Perinat. Med. 2011. -Vol.39, N 3. -P. 287-289.

323. Seppala M., Koistinen H., Kostinen R. et al. Glycosylation related actions of glycodelin: gamete, cumulus cells, immune cells and clinical associations // Hum. Reprod. Update. -2007,-Vol. 13. P. 275-287.

324. Shah D., Sachdev H.P. Zinc deficiency in pregnancy and fetal outcome // Nutr. Rev. 2006.-Vol.64, N 1. - P. 15-30.

325. Shevchenko A., Wilm M., Vorm O. et al. Mass spectrometric sequencing of proteins from silver stained Polyacrylamide gels // Anal. Chem.-1996.-Vol. 68.-P. 850-858.

326. Shibuya HL, Sakai K., Kabir-Salmani M. et al. Polymerization of insulin-like growth factor-binding protein-1 (IGFBP-1) potentiates IGF-I actions in placenta // J. Cell Physiol. 2011 .-Vol.226, N 2. - P.434-439.

327. Shin J.C., Lee J.H., Yang D.E. et al. Expression of insulin-like growth factor-II and insulin-like growth factor binding protein-1 in the placental basal plate from pre-eclamptic pregnancies // Int. J. Gynaecol. Obstet. -2003.-Vol.81, N 3. P.273-280.

328. Sibai B., Dekker G., Kupfermine M. Pre-eclampsia // Lancet. 2005. -Vol. 365. -P.785-799.

329. Sierra-Rivera E., Meredith M.J., Voorhees G.J. et al. Synthesis of heat shock proteins following oxidative challenge: role of glutathione // Int. J. Hyperthermia. 1994.-Vol.10, N 4. -P. 573-586.

330. Siligardi G., Panaretou B., Meyer P. et al. Regulation of Hsp90 ATPase activity by the co-chaperone Cdc37p/p50cdc37 // J. Biol. Chem. -2002.-Vol.277. P.20151-20159.

331. Skjaerbaek C., Frystyk J., Orskov H. et al. Free IGF-I, IGFBP-1, and the binary complex of IGFBP-1 and IGF-I are increased during human pregnancy // Horm. Res. 2004.-Vol.62, N 5. - P.215-220.

332. Sklan D., Shalit I., Lasebnik N. et al. Retinol transport proteins and concentrations in human amniotic fluid, placenta, and fetal and maternal sera // British Journal of Nutrition. 1985.-Vol.54. - P.577-583.

333. Smith J.R., Clarke P.A., de Billy E. et al. Silencing the cochaperone CDC37 destabilizes kinase clients and sensitizes cancer cells to HSP90 inhibitors // Oncogene. 2009.-Vol.28, N 2. - P. 157-169.

334. Soloff M.S., Cook Jr. D.L., Jeng Y.J. et al. In situ analysis of interleukin-1-induced transcription of COX-2 and IL-8 in cultured human myometrial cells // Endocrinology. 2004.-Vol.145. - P. 1248-1254.

335. Sorensen S. Isolation of amniotic fluid proteins of non-maternal serum origin by negative immuno-affmity chromatography // Clin. Chim. Acta. -1991 .-Vol.202, N 3. P. 199-209.

336. Staff A.C., Braekke K., Johnsen G.M. et al. Circulating concentrations of soluble endoglin (CD 105) in fetal and maternal serum and in amniotic fluid in preeclampsia // Am. J. Obstet. Gynecol. 2007. -Vol.197, N 2.-P.176.el-6.

337. Steeg P.S., Ouatas T., Halverson D. et al. Metastasis suppressor genes: basic biology and potential clinical use // Clin. Breast. Cancer. 2003-Vol.4, N 1. - P.51-62.

338. Stepanova L., Leng X., Parker S.B. et al. Mammalian p50Cdc37 is a protein kinase-targeting subunit of Hsp90 that binds and stabilizes Cdk4 // Genes Dev. 1996.-Vol.10. - P.1491-1502.

339. Stewart C. J., lies R. K., Perrett D. The analysis of human amniotic fluid using capillary electrophoresis // Electrophoresis. 2001.-Vol.22. -P.l 136-1142.

340. Street M.E., Seghini P., Fieni S. et al. Changes in interleukin-6 and IGF system and their relationships in placenta and cord blood in newbornswith fetal growth restriction compared with controls // Eur. J. Endocrinol. -2006.-Vol.155, N 4. P.567-574.

341. Sundaram M., van Aalten D.M., Findlay J.B. et al. The transfer of transthyretin and receptor-binding properties from the plasma retinol-binding protein to the epididymal retinoic acid-binding protein // Biochem. J. 2002.-Vol.362, N 2. - P.265-271.

342. Sutcliffe R. Protein in human amniotic fluid. In: Amniotic Fluid and Its Clinical Significance (Sandler M., ed.). NY: M. Dekker, 1981. - P. 129-167.

343. Sutherland C.L., Chalupny N.J., Cosman D. The UL16-binding proteins, a novel family of MHC class I-related ligands for NKG2D, activate natural killer cell functions // Immunol. Rev. 2001.-Vol. 181. - P. 185-192.

344. Szabo R., Hobson J.P., Christoph K. et al. Regulation of cell surface protease matriptase by HAI2 is essential for placental development, neural tube closure and embryonic survival in mice // Development. 2009.-Vol.136, N 15. - P.2653-2663.

345. Tada T., Ohkubo I., Niwa M. et al. Immunohistochemical localization of Zn-A2-glycoprotein in normal human tissues // J. Histochem. Cytochem. 1991.-Vol.39. - P.1221-1226.

346. Takagi K., Kin K., Itoh Y. et al. Human alpha 1-microglobulin levels in various body fluids // J. Clin. Pathol. 1980. - Vol.33, N 8. - P. 786-791.

347. Takenaka K., Ogawa E., Oyanagi H. et al. Carbonyl reductase expression and its clinical significance in non-small-cell lung cancer // Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 2005.-Vol.14, N 8. - P.1972-1975.

348. Tan N.S., Shaw N.S., Vinckenbosch N. et al. Selective cooperation between fatty acid binding proteins and peroxisome proliferator-activated receptors in regulating transcription // Mol. Cell. Biol. 2002.-Vol.14. -P.5114-5127.

349. Tatebe H., Shiozaki K. Identification of Cdc37 as a novel regulator of the stress-responsive mitogen-activated protein kinase // Mol. Cell. Biol. -2003.-Vol.23, N 15. P.5132-5142.

350. Taylor C.T., Cummins E.P. The role of NF-kappaB in hypoxia-induced gene expression // Ann. NY Acad. Sci. 2009.-Vol.l 177. - P. 178184.

351. Taylor D.D., Akyol S., Gercel-Taylor C. Pregnancy-associated exosomes and their modulation of T cell signaling // J. Immunol. 2006-Vol.176. - P.1534-1542.

352. Terasawa K., Minami Y. A client-binding site of Cdc37 // FEBS J. -2005.-Vol.272, N 18. P.4684-4690.

353. Textor S., Fiegler N., Arnold A. et al. Human NK cells are alerted to induction of p53 in cancer cells by upregulation of the NKG2D ligands ULBP1 and ULBP2//Cancer Res.-2011.-Vol.71, N 18,-P.5998-6009.

354. Thamsen M., Kumsta C., Li F. et al. Is overoxidation of peroxiredoxin physiologically significant? // Antioxid. Redox. Signal. 2011.-Vol. 14, N 4. - P.725-730.

355. Thorpe-Beeston J.G., Nicolaides K.H., Snijders R.J. et al. Thyroid function in small to gestational age fetuses // Obst. Gyn. -1991. -Vol. 77. -P. 701-705.

356. Tisi D.K., Emard J.J., Koski K.G. Total protein concentration in human amniotic fluid is negatively associated with infant birth weight // J. Nutr. 2004.-Vol.134, N 7. - P.1754-1758.

357. Tisi D.K., Liu X.J., Wykes L.J. et al. Insulin-like growth factor II and binding proteins 1 and 3 from second trimester human amniotic fluid are associated with infant birth weight // J. Nutr. 2005.-Vol.135, N 7. -P. 1667-1672.

358. Tjoa M.L., Oudejans C.B., van Vugt J.M. et al. Markers for presymptomatic prediction of preeclampsia and intrauterine growth restriction // Hypertens. Pregnancy. 2004. -Vol.23, N 2. -P. 171-189.

359. Torma H., Vahlquist A. Uptake of vitamin A and retinol-binding protein by human placenta in vitro // Placenta. 1986.-Vol.7, N 4. - P.295-305.

360. Tsai M.-S., Lee J.-L., Chang Y.-J. et al. Isolation of human multipotent mesenchymal stem cells from second-trimester amniotic fluid using a novel two-stage culture protocol // Hum. Reprod. -2004.-Vol.19, N 6. P.1450-1456.

361. Tsangaris G., Weitzdorfer R., Pollak D. et al. The amniotic fluid cell proteome // Electrophoresis. 2005. -Vol.26.-P. 1168-1173.

362. Turski M.L., Thiele D.J. New roles for copper metabolism in cell proliferation, signaling, and disease // J. Biol. Chem. 2009.-Vol.284, N 2. -P.717-721.

363. Tzanavari T., Bing C., Trayhurn P. Postnatal expression of zinc-a(2)-glycoprotein in rat white and brown adipose tissue // Mol. Cell Endocrinol. -2007.-Vol.279. P.26-33.

364. Ueland T., Dalsoren T., Voldner N. et al. Retinol-binding protein-4 is not strongly associated with insulin sensitivity in normal pregnancies // Eur. J. Endocrinol. 2008.-Vol.159, N 1. - P.49-54.

365. Uriu-Adams J.Y., Keen C.L. Zinc and reproduction: effects of zinc deficiency on prenatal and early postnatal development // Birth Defects Res. B. Dev. Reprod. Toxicol. 2010.-Vol.89, N 4. - P.313-325.

366. Uszynski W., Zekanowska E., Uszynslci M. et al. Concentration of annexin V in gestational tissues: placenta, fetal membranes, myometrium and amniotic fluid // J. Ginekol. Pol. -2006. Vol.77, N 8. - P. 603-609.

367. Vaidya K.S., Harihar S., Phadke P.A. et al. Breast cancer metastasis suppressor-1 differentially modulates growth factor signaling // J. Biol. Chem. 2008.-Vol.283, N 42. - P.28354-28360.

368. Vaisbuch E., Mazaki-Tovi S., Kusanovic J.P. et al. Retinol binding protein 4: an adipokine associated with intra-amniotic infection/inflammation // J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2010.-Vol.23, N 2. -P.111-119.

369. Van Eerden P., Wu X.X., Chazotte C. et al. Annexin A5 levels in midtrimester amniotic fluid: association with intrauterine growth restriction // Am. J. Obstet. Gynec. 2006.-Vol.194, N 5. - P. 1371-1376.

370. Varambally S., Yu P., Laxman B., Rhodes D.R. et al. Integrative genomic and proteomic analysis of prostate cancer reveals signatures of metastatic progression // Cancer Cell. 2005.-Vol.8, N 5. - P.393^106.

371. Vargas Zapata C.L., Trugo N.M., Donangelo C.M. Zinc uptake by human placental microvillous membrane vesicles: effects of gestational age and maternal serum zinc levels // Biol. Trace Elem. Res. 2000.-Vol.73, N 2. - P.127-137.

372. Vascotto C., Salzano A.M., D'Ambrosio C. et al. Oxidized transthyretin in amniotic fluid as an early marker of preeclampsia // J. Proteome Res. 2007. -Vol.6, N 1. - P. 160-170.

373. Vatten L.J., Nilsen T.I., Juul A. et al. Changes in circulating level of IGF-I and IGF-binding protein-1 from the first to second trimester as predictors of preeclampsia // Eur. J. Endocrinol. 2008.-Vol.158, N 1. -P.101-105.

374. Veerkamp J.H. Fatty acid transport and fatty acid-binding proteins // Proc. Nutr. Soc. 1995.-Vol.54. - P.23-37.

375. Veerkamp J.H., van Kuppeveit T.H.M.S.M., Maatman R.G.H.J. et al. Structural and functional aspects of cytosolic fatty acid-binding proteins // Prostaglandins Leukot. Essent. Fatty Acids. 1993.-Vol.49. - P.887-906.

376. Vermeulen L., De Wilde G., Notebaert S. et al. Regulation of the transcriptional activity of the nuclear factor-kappaB p65 subunit // Biochem. Pharmacol. 2002.-Vol.64, N 5-6. - P.963-970.

377. Villa Elizaga I., da Cunha Ferreira R.M. Zinc, pregnancy and parturition // Acta. Paediatr. Scand. Suppl. 1985.-Vol.319. - P. 150-157.

378. Villanueva L.A., Pedernera E., Garcia-Lara E. Physiopathologie bases for preeclampsia: a hypothesis // Ginecol. Obstet. Mex. 1999.-Vol.67. -P.246-252.

379. Vincens P., Tarroux P. Two-dimensional electrophoresis computerized processing // Int. J. Biochem. 1988.-Vol.20, N 5. - P.499-509.

380. Vorbroker D.K., Profitt S.A., Nogee L.M. et al. Aberrant processing of surfactant protein C in hereditary SP-B deficiency // Amer. J. Phys. -1995.-Vol.268, N 4, Pt. l.-P. 647-656.

381. Vuorela P., Helslce S., Hornig C. et al. Amniotic fluid -soluble vascular endothelial growth factor receptor-1 in preeclampsia // Obstet. Gynecol. -2000.-Vol.95, N 3. -P.353-357.

382. Wagner J.M. Bartemes K., Vernof K.K. et al. Analysis of pregnancy-associated major basic protein levels throughout gestation // Placenta. -1993.-Vol.14, N 6. P. 671-681.

383. Wagner J.M., Hustin J., Bonno M. Pregnancy-associated major basic protein: deposition of protein and expression of mRNA at the maternal-fetal junction in early and late gestation // Placenta. -1994.-Vol.15, N 6. P.625-640.

384. Walker L.R., Rattigan M., Canterino J. A Case of isolated elevated copper levels during pregnancy // J. Pregnancy. 2011. - Article ID 385767.

385. Wallingford J.C., Milunsky A., Underwood B.A. Vitamin A and retinol-binding protein in amniotic fluid // Am. J. Clin. Nutr. 1983-Vol.38, N 3. - P.377-381.

386. Wang Y.Y., Sui K.X., Li H. et al. The effects of lead exposure on placental NF-lcappaB expression and the consequences for gestation // Reprod. Toxicol. 2009.-Vol.27, N 2. - P.190-195.

387. Weier J.F., Weier H.U., Jung C.J. et al. Human cytotrophoblasts acquire aneuploidies as they differentiate to an invasive phenotype // Dev. Biol. 2005.-Vol.279. - P.420^32.

388. Wellinghausen N. Immunobiology of gestational zinc deficiency // Br. J. Nutr. 2001.-Vol.85, N 2. - P.81-86.

389. Wermuth B., Platts K.L., Seidel A. et al. Carbonyl reductase provides the enzymatic basis of quinone detoxication in man // Biochem. Pharmacol. 1986.-Vol.35. - P.1277-1282.

390. Wester L., Fast J., Labuda T. et al. Carbohydrate groups of alphal-microglobulin are important for secretion and tissue localization but not for immunological properties // Glycobiology. 2000.-Vol.10. - P.891-900.

391. Westwood M. Role of insulin-like growth factor binding protein 1 in human pregnancy // Rev. Reprod. 1999.-Vol.4, N 3. - P. 160-167.

392. Wheatcroft S.B., Kearney M.T. IGF-dependent and IGF-independent actions of IGF-binding protein-1 and -2: implications for metabolichomeostasis 11 Trends Endocrinol. Metab. 2009.-Vol.20, N 4. - P. 153162.

393. Wilkins M.R., Williams K.L., Appel R.D. et al. Proteomic research: new frontiers in functional genomics (principle and practice). Berlin: Springer, 1997.-464 p.

394. Williams K.L. Genomes and proteomes: towards a multidimensional view of biology // Electrophoresis.-1999.-Vol.20. P.678-688.

395. Wong E.T., Tergaonkar V. Roles of NF-kappaB in health and disease: mechanisms and therapeutic potential // Clin. Sci. (Lond). 2009.-Vol.116, N 6. - P.451-465.

396. Wood Z.A., Schroder E., Robin Harris J. et al. Structure, mechanism and regulation of peroxiredoxins // Trends Biochem. Sci. 2003.-Vol.28, N 1. - P.32-40.

397. Yan X., Sun M., Gibb W. Localization of nuclear factor-kappa B (NF kappa B) and inhibitory factor-kappa B (I kappa B) in human fetal membranes and decidua at term and preterm delivery // Placenta. 2002-Vol.23, N 4. - P.288-293.

398. Yang J.P., Hori M., Sanda T. et al. Identification of a novel inhibitor of nuclear factor-kappaB, RelA-associated inhibitor // J. Biol. Chem. -1999.-Vol.274, N 22. P. 15662-15670.

399. Yang Q., Graham T.E., Mody N. et al. Serum retinol binding protein 4 contributes to insulin resistance in obesity and type 2 diabetes // Nature. -2005.-Vol.436. P.356-362.

400. Yang S., Luo A., Hao X. et al. Peroxiredoxin 2 Inhibits Granulosa Cell Apoptosis During Follicle Atresia Through the NFKB Pathway in Mice // Biol. Reprod. 2011 .-Vol.84, N 6. - P. 1182-1189.

401. Yin G., Li C., Shan B. et al. Insufficient peroxiredoxin-2 expression in uterine NK cells obtained from a murine model of abortion // J. Cell. Biochem. 2011 .-Vol. 112, N 3. - P.773-781.

402. Yui S., Nakatani Y., Hunter M.J. et al. Implication of extracellular zinc exclusion by recombinant human calprotectin (MRP8 and MRP 14) from target cells in its apoptosis-inducing activity // Mediators Inflamm. -2002,-Vol.l 1, N 3. P. 165-172.

403. Zadrozna M., Gawlik M., Nowak B. et al. Antioxidants activities and concentration of selenium, zinc and copper in preterm and IUGR human placentas // J. Trace Elem. Med. Biol. 2009.-Yol.23, N 2. - P. 144-148.

404. Zhang Z., Su T., He L. et al. Identification and functional analysis of ligands for natural killer cell activating receptors in colon carcinoma // Tohoku J. Exp. Med. 2012.-Vol.226, N 1. - P.59-68.

405. Zhou Y., Eppenberger-Castori S., Eppenberger U. et al. The NFlcappaB pathway and endocrine-resistant breast cancer // Endocr. Relat. Cancer. -2005. -Vol. 12, N l.-P. S37-S46.

406. Zile M.H. Vitamin A and embryonic development: an overview // J. Nutr. 1998.-Vol.128, N 2. - P.455-458.

407. Zingarelli B. Nuclear factor-kappaB // Crit. Care Med. 2005,-Vol.33, N 12. - P.414-416.

408. Zusterzeel P.L., Mulder T.P., Peters W.H. et al. Plasma protein carbonyls in nonpregnant, healthy pregnant and preeclamptic women // Free Radic. Res. -2000. -Vol. 33, N 5. -P.471-476.

409. Zusterzeel P.L., Rütten H., Roelofs H.M. et al. Protein carbonyls in decidua and placenta of pre-eclamptic women as markers for oxidative stress // Placenta. 2001. - Vol. 22. - P.213-219.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.