Распределение и генетическое разнообразие массовых видов мезопланктона в проливе Дрейка тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.10, кандидат биологических наук Ступникова, Александра Николаевна

  • Ступникова, Александра Николаевна
  • кандидат биологических науккандидат биологических наук
  • 2012, Москва
  • Специальность ВАК РФ03.02.10
  • Количество страниц 156
Ступникова, Александра Николаевна. Распределение и генетическое разнообразие массовых видов мезопланктона в проливе Дрейка: дис. кандидат биологических наук: 03.02.10 - Гидробиология. Москва. 2012. 156 с.

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Ступникова, Александра Николаевна

Введение.

Глава 1. Обзор литературы.

1.1. Гидрологические особенности Южного океана.

1.2. Распределение мезопланктона в Южном океане.

1.3. Изучение генетического биоразнообразия в морской среде.

Глава 2. Материалы и методы.

2.1. Сбор материала для количественного учета мезопланктона.

2.2. Лабораторная обработка количественных проб мезопланктона.

2.3. Отбор массовых видов мезопланктона для молекулярно-генетического анализа.

2.4. Молекулярно-генетические методы.

2.5. Ограничения метода.

Глава 3. Особенности района исследования в период отбора проб.

3.1. 25-йрейс НИС «Академик Сергей Вавилов», 2008 г.

3.2. 30-йрейс НИС «Академик Иоффе», 2009-2010 гг.

3.3. 31-й рейс НИС «Академик Сергей Вавилов», 2010 г.

3.4. 36-йрейс НИС «Академик Иоффе», 2011 г.

Глава 4. Распределение общей биомассы мезопланктона.

4.1. Распределение общей биомассы мезопланктона в 2008 г.

4.2. Распределение общей биомассы мезопланктона в 2010 г.

4.3. Распределение общей биомассы мезопланктона в 2011 г.

4.4. Обобщение результатов.

Глава 5. Таксономический состав зоопланктона в проливе Дрейка.

5.1. Таксономический состав зоопланктона антарктической весной

2008 г.

5.2. Распространение массовых видов на разрезах 2010 и 2011 гг.

Глава 6. Влияние Полярного фронта на структуру сообществ мезопланктона.

Глава 7. Генетическое разнообразие массовых видов мезопланктона Южного океана.

7.1. Генетический полиморфизм мелких копепод.

7.2. Генетический полиморфизм крупных копепод.

7.3. Молекулярно-генетическое и морфологическое исследования вида Metridia lucens Boeck, 1865.

7.4. Молекулярно-генетические исследования популяции Eukrohnia hamata (Möbius, 1875).

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Гидробиология», 03.02.10 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Распределение и генетическое разнообразие массовых видов мезопланктона в проливе Дрейка»

Оценка биомассы мезопланктона и пространственной неоднородности его распределения необходимы для понимания общих закономерностей влияния факторов среды на распределение планктонных сообществ. Южный океан является уникальным регионом с разнообразными по своей структуре и продуктивности планктонными сообществами. Предшествующие исследования в Южном океане [Флинт и др., 1988; РакЪошоу, Мс(3иа1с1, 1996] показали возникновение областей повышенной биомассы мезопланктона в зонах гидрологических фронтов Антарктического Циркумполярного течения (АЦТ) на общем фоне относительно низких значений биомассы [ЕггЫГ & а1., 1997], причем повышение биомассы может достигать двух порядков величин [Воронина, 1984; Флинт и др., 1988; Васильев, 1991].

Настоящее исследование направлено на оценку влияния океанических фронтов на суммарную биомассу мезопланктона и изменение его видового состава в проливе Дрейка. Высокое для открытых районов океана пространственное разрешение (10 миль) и сопровождение исследований современной гидрологической съемкой позволяет обнаружить новые связи между характеристиками планктонных сообществ и факторами среды.

Исследование сообществ мезопланктона в Южном океане обычно сосредоточено на гидрологически спокойных районах, где хорошо выражены океанические фронты с широкими межфронтальными зонами. В этой работе внимание сосредоточено на динамически активном районе Южного океана - проливе Дрейка. Пролив Дрейка является зоной контакта между Атлантическим и Тихим океанами, что сказывается на распределении водных масс и, возможно, - на распределении фауны. За счет сужения потока АЦТ и сложного донного рельефа в проливе Дрейка повышается образование вихрей и меандров, а межфронтальные зоны могут исчезать совсем [Olbers et al., 2004; Голивец, Кошляков, 2009]. Следовательно, может нарушаться широтная зональность в распределении мезопланктонных организмов, описанная для других секторов Южного океана [Fransz, Gonzales, 1997; Atkinson, Sinclair, 2000; Воронина, 2002; Bernard, Froneman, 2002].

Основное внимание в работе уделяется массовым видам копепод, которые составляют 80% биомассы и 90% численности мезопланктона Южного океана. Копеподы являются главными потребителями фитопланктона и важнейшим источником пищи для молоди промысловых рыб и беспозвоночных [Turner, 1984, 2004].

Цель работы - выявить особенности состава, количественного распределения массовых видов мезопланктона и их вклад в формирование общей биомассы сообщества в проливе Дрейка; оценить генетическое разнообразие массовых видов мезопланктона и его связь с гидрологической структурой Южного океана.

Для выполнения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать горизонтальное и вертикальное распределение общей биомассы мезопланктона в слое 0-300 м в проливе Дрейка в весенний период.

2. Проанализировать и сравнить мезомасштабную (10 миль) и макромасштабную (100 и более миль) изменчивость в распределении общей биомассы мезопланктона в проливе Дрейка.

3. Исследовать состав мезопланктона в проливе Дрейка в весенний период и выделить массовые виды.

4. Исследовать распределение массовых видов и их вклад в общую биомассу мезопланктона в разных частях исследуемого района.

5. Проанализировать структуру мезопланктонных сообществ и распределение массовых видов в зависимости от гидрологической структуры района; оценить роль океанических фронтов как биогеографических границ для массовых видов мезопланктона.

6. Оценить степень генетического полиморфизма в популяциях массовых видов зоопланктона в разных гидрологических зонах Атлантического сектора Южного океана (на примере пролива Дрейка и восточной части Атлантического сектора Южного океана).

Научная новизна. Впервые дана оценка мезомасштабной изменчивости биомассы мезопланктона пролива Дрейка, полученная с пространственным разрешением 10 миль. Оценена степень генетического полиморфизма популяций массовых видов мезопланктона из разных гидрологических зон. С помощью молекулярно-генетических методов вид Еикгокта ката(а разделен на 3 генетически дифференцированные группировки, а группа МеМсНа 1исет - на 2 вида. Описана связь южной границы одного из видов М 1исет с температурой.

Теоретическая и практическая значимость работы. Понимание механизмов поддержания генетической изоляции в водной среде необходимо для описания скрытого биоразнообразия (проявляющегося не во внешней морфологии, а только в различающемся генотипе), позволяет проводить поиск видов-индикаторов состояния экосистем и прогнозировать развитие биоты морских экосистем в условиях изменяющихся факторов среды. Проблема видообразования и эволюции является одной из центральных в биологии. При изучении механизмов видообразования и эволюции в океане в связи с сильной подвижностью водной среды на больших акваториях возникает проблема определения и значимости пространственной изоляции.

Похожие диссертационные работы по специальности «Гидробиология», 03.02.10 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Гидробиология», Ступникова, Александра Николаевна

Выводы

1. В весенний период (конец октября - начало ноября) в проливе Дрейка более 80% общей биомассы мезопланктона содержится в верхнем 300-метровом слое. В гидрологических зонах к югу и северу от Полярного фронта общая биомасса мезопланктона в слое 0-300 м в весенний период достоверно различается в 2,5 раза. В одни и те же календарные сроки биомасса к югу от Полярного фронта может быть как выше, так и ниже биомассы в зоне к северу от Полярного фронта, что вероятно связано с особенностями хода сезонных процессов в разные годы.

2. В проливе Дрейка не выявлено повышения общей биомассы мезопланктона в зоне Полярного фронта, характерного для других районов Южного океана.

3. Мезомасштабная изменчивость (пространственный масштаб 20 км) общей биомассы мезопланктона в проливе Дрейка достигает 20-50 раз, что существенно выше различий между средними для гидрологических зон показателями общей биомассы (масштаб 200 км и более).

4. Изменение общей биомассы мезопланктона в зоне Полярного фронта связано с областью максимальных горизонтальных градиентов температуры (с северной границей Южного Полярного течения). Изменение структуры мезопланктонного сообщества в зоне Полярного фронта связано с областью максимальных горизонтальных градиентов скоростей течений (с южной границей Южного Полярного течения).

5. Во всех гидрологических зонах пролива Дрейка в весенний период до 95 % биомассы формируют доминирующие виды копепод: Calanus simillimus, Calanoides acutus, Rhincalanus gigas, Metridia lucens. Субантарктический и Полярный фронты не ограничивают широтное распространение этих видов в весенний период.

6. В Атлантическом секторе Южного океана в зоне между Субтропическим фронтом и Южной границей Антарктического циркумполярного течения в популяциях калянид Ctenocalanus citer, Scolecitricella minor, Clausocalanus laticeps, Rhincalanus gigas, Calanoides acutus, Calanus simillimus, C. propinquus степень генетического полиморфизма по фрагменту гена mtCOl составляет 1,5-2%. Океанические фронты Южного океана не формируют генетическую дифференциацию этих видов.

7. Для массовых видов-космополитов Eukrohnia hamata и Metridia lucens показано наличие генетически различных группировок, приуроченных к разным гидрологическим зонам Южного океана. Для северной группировки M. lucens показана связь южной границы распространения с температурой. Эта связь прослеживается в сезоны с различными температурными условиями и не ассоциирована с конкретным фронтом.

7.5. Заключение

С помощью молекулярно-генетических методов проведен анализ барьерной и биогеографической ролей крупных океанических фронтов в изоляции популяций мезопланктона на меридиональных разрезах SR-2 и в проливе Дрейка в Южной Атлантике.

Исследования популяций массовых видов мезопланктона на двух меридиональных разрезах Атлантического сектора Антарктики генетическими методами позволили установить, что для большинства изученных видов (Calanus simillimus, С. propinquus, Calanoides acutus, Rhincalanus gigas, Ctenocalanus citer, Clausocalanus laticeps и Scolecitricella minor) в пределах изученной акватории гидрологические фронты не обеспечивают долгосрочную изоляцию популяций и генетическую дифференциацию видов. Внутривидовой полиморфизм митохондриальной ДНК для массовых видов копепод Южного океана составляет 1,5-2% нуклеотидных замен.

Для хетогнаты Eukrohnia hamata впервые выделено три обособленных популяции в пределах Южной Атлантики: Субтропическая, Субантарктическая и Антарктическая. Границей между Субантарктической и Антарктической популяциями служит Южный полярный фронт (ЮПФ). Установлено, что хетогнаты Антарктической популяции могут проникать сквозь Полярный фронт на север, что говорит о полупроницаемости в направлении с юга на север фронтальной границы, связанной с Полярным фронтом.

Распределение видов комплекса Metridia lucens MLN (M lucens North) и MLS (M lucens South) соотносится с представлениями о подразделении Южного океана на биогеографические провинции Субантарктику и Антарктику [Longhurst, 1998], при условии, что границей между ними является Полярная Фронтальная зона.

Благодаря активному трансфронтальному переносу океанические фронты проницаемы для видов MLN и MLS. Наиболее вероятным фактором, определяющим границы распространения этих видов, является температура.

На основе анализа полученных данных составлена гипотетическая схема формирования генетических особенностей популяций массовых видов мезопланктона в Атлантическом секторе Южного океана (рис. 7.18). Большинство массовых видов копепод представлены едиными популяциями, не отличающимися по обе стороны фронта. Копеподы М. lucens представлены двумя группами, разделенными ПФЗ. Наконец, хетогнаты Е. hamata представлены тремя группами, разделенными ПФЗ и Субтропическим фронтом.

Другие группы планктона также продемонстрировали разные варианты генетической структуры видов. В частности, изучение генетического полиморфизма популяций антарктического криля Euphausia superba показало высокую степень генетической изменчивости аллельных частот в популяциях этого вида [Fevolden, 1986, Fevolden, Schneppenheim, 1989], но не показало четкой генетической дифференциации популяций в зависимости от географического положения [Batta-Lona et al., 2011].

Обобщая приведенный пример для антарктического криля Е. superba и полученные нами данные о массовых видах копепод, можно утверждать, что в пределах Южного океана для части планктонных видов океанические фронты являются границами распространения генетически дифференцированных форм. При этом океанические фронты не являются механической преградой для потока генов между популяциями по обе стороны фронта, но в то же время связанный с фронтом градиент экологических условий может формировать границы ареалов для форм с различным экологическим оптимумом.

Субтроп ическая

Субантарктическая группа

САФ

Антарктическая гоуппа

-ЮФ АЦТ-4—---

Антарктическая фуппа

-ЮФ АЦТ-4------1

ПФЗ копеподы копепода хетогната

Calanus simillimus Metridia lucens Eukrohnia hamata

С. propinquus

Calanoides acutus

Rhincalanus gigas

Ctenocalanus citer

Clausocalanus laticeps

Scolecltricella minor

Рис. 7.18. Гипотетическая схема формирования генетических особенностей популяций копепод Calanus simillimus, С. propinquus, Calanoides acutus, Rhincalanus gigas, Ctenocalanus citer, Clausocalanus laticeps, Scolecitricella minor и Metridia lucens и хетогнаты Eukrohnia hamata в Атлантическом секторе Южного океана. СТФ — Субтропический фронт, СрСАФ - Средняя струя Субантарктического фронта, ЮСАФ - Южная струя Субантарктического фронта, ПФЗ -Полярная фронтальная зона, ЮФ АЦТ - Южный фронт Антарктического циркумполярного течения.

Известно, что некоторые океанические виды демонстрируют генетическую дифференциацию в пределах своего ареала [Goetze Е. 2005, 2011], в том числе отмечают наличие большого числа криптических видов среди планктонных оранизмов [Knowlton, 1993].

Несмотря на большие расстояния (в 1000 и более км), разделяющие популяции на открытых акваториях, для большинства голопланктонных организмов - копепод Calanus finmarchicus [Bucklin, Kocher, 1996; Bucklin et al., 2000], Nannocalanus minor [Bucklin et al., 1996], Pseudocalanus acuspes [Holmborn et al., 2011], эуфаузиид

Meganyctiphanes norvegica [Bucklin et al., 1997], Euphausia superba [Zane, Patarnello, 2000], Euphausia crystallorophias [Jarman et al., 2002] - не показано генетической дифференциации внутри видов. Наши данные показали схожие результаты для большинства массовых видов копепод Южного океана.

С другой стороны, виды-космополиты копеподы Pleuromamma xiphias (Goetze, 2011), Eucalanus hyalinus (Goetze, 2005), а также, по нашим данным, копепода Metridia lucens и хетогната Eukrohnia hamata, показали разделение на генетически дифференциацированные группы, наблюдаемое даже в пределах акватории одного океана.

Для Centropages typicus и Eucalanus hyalinus показаны разные популяции из Средиземного моря и Северной Атлантики, тогда как на всей акватории Северной Атлантики находится панмиксная популяция [Goetze, 2005, Castellani et al., 2012].

Таким образом, схожие градиенты среды в океане могут ограничивать поток генов между популяциями одних видов и не ограничивать - для других, даже близких, видов. То есть физические процессы, ассоциированные с фронтом, не являются фактором, поддерживающим генетическую изоляцию между популяциями мезопланктона. В то же время связанный с фронтом градиент экологических условий может формировать границы ареалов для видов и популяций с различным экологическим оптимумом.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Ступникова, Александра Николаевна, 2012 год

1. Банникова A.A. Молекулярные маркеры и современная филогенетика млекопитающих // Журнал Общей биологии. 2004. Т. 65. № 4. С. 278-305.

2. Белкин И.М. Главные гидрологические особенности центральной части Южного Тихого океана / Экосистемы Субантарктической зоны Тихого океана. М.: Наука, 1988. С. 21-28.

3. Белкин И.М. Горизонтальная структура фронтов Южного океана//Антарктика. 1993. № 31. С. 109-127.

4. Белошапкин С. П., Гончарова Н. Г., Гриценко В. В. и др. / Словарь-справочник энтомолога. М: Нива России, 1992. 334 с.

5. Беклемишев К.В. Экология и биогеография пелагиали. М.: Наука, 1969. 291 с.

6. Бондаренко М.В. Распеределение планктона в ЮПФЗ Атлантического океана / Электрона карлсберга в Южной полярной фронтальной зоне. Т.2. Биологические аспекты существования и распределения. М., 1991. С. 12-20.

7. Бородин П.М., Рогачева М.Б. Домовая землеройка на пути к видообразованию // Российская наука: Природой здесь нам суждено. М.: Октопус, 2003. С. 160-173.

8. Ботников В.Н. Сезонные и многолетние колебания зоны Антарктической конвергенции // Информационный бюллетень Советской Антарктической экспедиции. 1964. № 45. С. 17-22.

9. Бурков В.А. Антарктические струи // Океанология. 1994. Т. 34. №2. С. 169-177.

10. Бурков В.А. Водные массы Атлантического сектора Южного океана / Экосистемы пелагиали Атлантического сектора Антарктики;под ред. Л.А. Пономаревой. М.: Институт океанологии им П.П. Ширшова РАН, 1995. С. 14-23.

11. Васильев В.И. Сезонные изменения мезозоопланктона в ЮПТЗ Атлантического океана / Электрона карлсберга в Южной полярной фронтальной зоне. Т.2. Биологические аспекты существования и распределения. М., 1991. С. 20-34.

12. Виноградов М.Е. Вертикальное распределение океанического зоопланктона. М.: Наука, 1968. 320 с.

13. Виноградов М.Е., Федоров К.Н. Фронтальные зоны юго-восточной части Тихого океана. М.: Наука, 1984. 336 с.

14. Виноградов М.Е., Шушкина Э.А. Сукцессия морских планктонных сообществ // Океанология. 1983. Т. 23. №. 4. С. 633-638.

15. Владимирская Е.В. Возрастной состав популяции массовых видов копепод зимой в Южной части моря Скотия // Океанология. 1978. Т.28. №. 2. С. 307-311.

16. Владимирская Е.В., Полонский В.Е., Попков В.В., Спиридонов В.А. Распределение и сезонные особенности планктона в связи с гидрологическими условиями в северной части моря Амундсена осенью 1982 г. //Антарктика. 1985. № 24. С. 143-157.

17. Воронина Н.М. Сообщества умеренных и холодных вод южного полушария // Биология океана. Т.2; под ред. М.Е. Виноградова. М.: Наука, 1977. С. 68-90.

18. Воронина Н.М. Вертикальное распределение и сезонные миграции массовых популяций копепод тихоокеанского сектора

19. Антарктики в зависимости от факторов среды // Океанология. 1999. Т. 39. № 3. С. 395-405.

20. Воронина Н.М. Особенности антарктического мезопланктона в разных типах вод тихоокеанского сектора // Океанология. 2002. Т. 42. № 1. С. 76-84.

21. Воронина Н.М. Экосистемы пелагиали Южного океана. М.: Наука, 1984. 208 с.

22. Воронина Н.М., Колосова Е.Г., Флинт М.В. Распределение и биология массовых видов мезопланктона / Экосистемы субантарктической зоны тихого океана. М.: Наука, 1988. С. 197-209.

23. Воронина Н.М., Масленников В.В. Планктон как индикатор переноса вод в Антарктике // Океанология. 1993. Т. 33. № 5. С. 717720.

24. Воронина Н.М., Меншуткин В.В., Цейтлин В.Б. Математическое моделирование пространственно-временного распределения и возрастной структуры популяции антарктических копепод//Океанология. 1979. Т. 19. № 1. С. 122-131.

25. Воронина Н.М., Меншуткин В.В., Цейтлин В.Б. Модельные исследования годового цикла популяции массового вида копепод Шипса1апш и оценка ее продукции в Антарктике // Океанология. 1980. Т. 20. № 6. С. 1079-1086.

26. Воронина Н.М., Наумов А.Г. Количественное распределение и состав мезопланктона Южного океана // Океанология. 1968. Т. 8. № 6. С. 1059-1065.

27. Воронина Н.М. Годовой цикл планктона в Антарктике / Основы биологической продуктивности океана и ее использование. М.: Наука, 1970. С. 64-70.

28. Голивец С.В., Кошляков М.Н. Вихреобразование на субантарктическом фронте по данным спутниковых наблюдений иформирование Антарктической промежуточной воды // Океанология. 2004. Т. 44. № 4. С. 485-494.

29. Голивец C.B., Кошляков М.Н. Циклонические вихри Субантарктического фронта и образование Антарктической промежуточной воды // Океанология. 2003. Т. 43. № 3. С. 325-338.

30. Голивец C.B., Кошляков М.Н. Синоптические вихри Субантарктического и Агульясского фронтов и формирование Антарктической промежуточной воды в Атлантическом океане // Океанология. 2009. Т. 49. № 2. С. 165-180.

31. Демидов А.Б., Мошаров С.А., Гагарин В.И., Романова Н.Д. Пространственная изменчивость первичной продукции и хлорофилла "А" в проливе Дрейка в весенний сезон // Океанология. 2011. Т. 51. № 2. С. 293-306.

32. Кошляков М.Н., Гладышев C.B., Тараканов Р.Ю., Рыжиков Н.И. Глубинные течения в центральной части пролива Дрейка по данным съемки 2008 г. // Океанология. 2010. Т. 50. № 6. С. 869-876.

33. Кошляков М.Н., Гладышев C.B., Тараканов Р.Ю., Федоров Д.А. Течения в западной части пролива Дрейка по данным наблюдений в январе 2010 г. // Океанология. 2011. Т.51. № 2. С. 197-209.

34. Кошляков M. Н., Лисина И. И., Морозов Е. Г., Тараканов Р. Ю. Абсолютные геострофические течения в проливе Дрейка по наблюдениям 2003 и 2005 гг. // Океанология. 2007. Т. 47. № 4. С. 487500.

35. Кошляков М.Н., Сажина Т.Г. Меридиональный перенос воды и тепла крупномасштабными геострофическими течениями в тихоокеанском секторе Антарктики // Океанология. 1995. Т. 35. № 6. С. 842-853.

36. Кулагин Д.Н. Мезомасштабное распределение щетинкочелюстных в проливе Дрейка в весенний период 2008 г. // Океанология. 2010. Т. 50. № 4. С. 548-555.

37. Масленников В.В. Дифференциация вод Антарктики с учетом их воздействия на распределение некоторых видов планктона и рыб // Антарктика. 1994. № 33. С. 43-54.

38. Масленников В.В., Солянкин Е.В. Океанологические фронты в Южном океане как основные места скоплений миктофид и криля // Антарктика. 1993. № 32. С. 87-93.

39. Пастернак А.Ф. Эколого-физиологические основы формирования жизненных циклов планктонных копепод высоких широт: Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук. М.: 2009. 50с.

40. Тараканов Р.Ю., Гриценко A.M. Структура фронтов в районе к югу от Африки по данным разреза SR02 в декабре 2009 г. и спутниковой альтиметрии // Электронный научный журн. «Исследовано в России». 2010. № 53. С. 672-684.

41. Флинт М.В., Воронина Н.М., Колосова Е.Г. Распределение мезопланктона в районе субтропической фронтальной зоны / Экосистемы субантарктической зоны Тихого океана. М.: Наука, 1988. С. 221-227.

42. Численко JI.JI. Монограммы для определения веса водных организмов по размерам и форме тела. Ленинград: Наука, 1968. 73 с.

43. Atkinson A. Life cycle strategies of epipelagic copepods in the Southern Ocean // Journal of Marine Systems. 1998. V. 15. P. 289-311.

44. Atkinson A. Life cycles of Calanoides acutus, Calanus simillimus and Rhincalanus gigas (Copepoda: Calanoida) within the Scotia Sea // Mar. Biol. 1991. V. 109. P. 79-91.

45. Atkinson A., Pakhomov E. A., Shreeve R.S., et al. Zooplankton response to a phytoplankton bloom near South Georgia, Antarctica // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1996. V. 144. P. 195-210.

46. Atkinson A., Peck J.M. A Summer-Winter Comparison of Zooplankton in the Oceanic Area Around South Georgia // Polar Biol., 1988. V. 8. P. 463-473.

47. Atkinson A., Schnack-Schiel S.B., Ward P., Marin V. Regional differences in the life cycle of Calanoides acutus (Copepoda: Calanoida) within the Atlantic sector of the Southern Ocean // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1997. V. 150. P. 99-111.

48. Atkinson A., Sinclair J.D. Zonal distribution and seasonal vertical migration of copepod assemblages in the Scotia Sea // Polar Biol. 2000. V. 23. P. 46-58.

49. Atkinson A., Ward P. Summer-winter differences in copepod distribution around South Georgia // Hydrobiologia. 1988. V. 167-168. № l.P. 325-334.

50. Atkinson A., Ward P., Murphy EJ. Diel periodicity of Subantarctic copepods: relationships between vertical migration, gut fullness and gut evacuation rate // Journal of Plankton Research. 1996. V.18. P. 1387-1405.

51. Atkinson A., Whitehouse M.J., Priddle J., et al. South Georgia Antarctica: a productive, cold water, pelagic ecosystem // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2001. V. 216. P. 279-308.

52. Avise J.C. Phylogeography: Thie History and Formation of Species. Cambridge, MA: Harvard University Press, 2000. 447 pp.

53. Baker J.M. Adaptive speciation: The role of natural selection in mechanisms of geographic and non-geographic speciation // Studies in History and Philosophy of Biological and Biomedical Sciences. 2005. V. 36. № 2. P. 303-326.

54. Bernard K.S., Froneman P.W. Trophodynamics of selected mesozooplankton in the west Indian sector of the Polar Frontal Zone, Southern Ocean // Polar Biol. 2005. V. 28. P. 594-606.

55. Bernard K.S., Froneman P.W. Mesozooplankton community structure and grazing impact in the Polar Frontal Zone of the south Indian Ocean during austral autumn 2002 // Polar Biol. 2003. V. 26. P. 268-275.

56. Bloom M.V., Freyer G.A., Micklos D.A. Laboratory DNA Science: An Introduction to Recombinant DNA Techniques and Methods of Genome Analysis. Menlo Park, CA: Addison-Wesley, 1996.

57. Bradford-Grieve J.M., Boxshall G.A., Ahyong S.T., Ohtsuka S. Cladistic analysis of the calanoid Copepoda // Invertebr. Syst. 2010. V. 24. № 3. P. 291-321.

58. Bradford-Grieve J.M., Markhaseva E.L., Rocha C.E.F., Abiahy B. Copepoda. South Atlantic Zooplankton / Ed. Boltovskoy D. Leiden: Backhuys Publishers, 1999. P. 869-1098.

59. Brandt. S.B., Wadley V.A. Thermal fronts as ecotones and zoogeographic barriers in marine and freshwater systems // Proc. Ecol. Soc. A. 1981. V. 11. P. 13-26.

60. Bray J.R., Curtis J.T. An ordination of upland forest communities of southern Wisconsin // Ecological Monographs. 1957. V. 27. P. 325-349.

61. Bucklin A. Methods for population genetic analysis of zooplankton // ICES Zooplankton Methodology Manual. London: Academic Press, 2000. P. 533-570.

62. Bucklin A., Bentley A.M., Franzen S.P. Distribution and relative abundance of the copepods, Pseudocalanus moultoni and P. newmani, on Georges Bank based on molecular identification of sibling species // Mar. Biol. 1998. V. 132. P. 97-106.

63. Bucklin A., Frost B.W. Morphological and molecular phylogenetic analysis of evolutionary lineages within Clausocalanus (Crustacea, Copepoda, Calanoida) // J. Crust. Biol. 2009. V. 29. P. 111-120.

64. Bucklin A., Frost B.W., Bradford Grieve J., et al. Molecular systematic assessment of thirty-four calanoid copepod species of the Calanidae and Clausocalanidae using DNA sequences of mtCOI and nuclear 18S rRNA // Mar. Biol. 2003. V. 142. P. 333-343.

65. Bucklin A., Hopcrofit R.R., Kosobokova K.N., et al. DNA barcoding of Arctic Ocean holozooplankton for species identification and recognition // Deep-Sea Res. II. 2010. V. 57. P. 40-48.

66. Bucklin A., Kocher T.D. Source regions for recruitment of Calanus finmarchicus to Georges Bank: evidence from molecular population genetic analysis of mtDNA // Deep-Sea Res. 1996. V. 43. P. 1665-1682.

67. Bucklin A., Ortman B.D., Jennings R.M., et al. A "Rosetta Stone" for metazoan Zooplankton: DNA barcode analysis of species diversity of the Sargasso Sea (Northwest Atlantic Ocean) // Deep-Sea Res. II. 2010. V. 57. P. 2234-2247.

68. Bucklin A., Sundt R.C., Dahle G. The population genetics of Calanus finmarchicus in the North Atlantic // Ophelia. 1996. V. 44. P. 2945.

69. Bucklin A., Wiebe P.H., Smolenack S.B., et al. DNA barcodes for species identification of euphausiids (Euphausiacea, Crustacea) // J. Plank. Res. 2007. V. 29. P. 483-493.

70. Bucklin A., Wiebe P.H., Frost B.W., Fogarty M.J. ZooGene, a DNA sequence database for calanoid copepods and euphausiids: an OBIS tool for uniform standards of species identification // NSF Final Project Report for Award No. OCE-0003884. 2005. 13 p.

71. Castellani C., Lindley A.J., Wootton M., et al. Morphological and genetic variation in the North Atlantic copepod, Centropages typicus II J. Mar. Biol. Ass. 2012. V. 92. № 1. P. 99-106.

72. Chiba S., Ishimaru T., Hosie G. W., Fukuchi M. Spatio-temporal variability of Zooplankton community structure of east Antarctica (90 to 160 E) II Mar. Ecol. Prog. Ser. 2001. V. 216. P. 95-108.

73. Clarke K.R., Warwick R.M. Changes in marine communities: an approach to statistical analysis and interpretation, 2nd edition, PRIMERV6: Plymouth. 2001.

74. Costa F.O., deWaard J.R., Boutillier J., et al. Biological identifications through DNA barcodes: the case of the Crustacea // Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Science. 2007. V. 64. P. 272295.

75. Currie R. Environmental features in the ecology of Antarctic sea / In: Holdgate M.W., Prévost J. (eds) Biologie Antarctique. Paris: Herman, 1964. P. 87-94.

76. David P.M. The Chaetognatha of the Southern Ocean / In: J. Van Mieghem, P. van Oye (eds.). Biogeography and ecology in Antarctica. Hague: Junk Press, 1965. P. 296-323.

77. Deacon G.E.R. The hydrology of the Southern Ocean // Discovery Reports. 1937. V. 15. P. 1-124.

78. Dubischar C.D., Lopes R.M., Bathmann U.V. High summer abundances of small pelagic copepods at the Antarctic Polar Front— implications for ecosystem dynamics // Deep-Sea Res. II. 2002. V. 49. P. 3871-3887.

79. Eden B.R., Steinberg D.K., Goldthwait S.A., McGillicuddy D.J. Zooplankton community structure in a cyclonic and mode-water eddy in the Sargasso Sea//Deep Sea Res. I. 2009. V. 56. № 10. P. 1757-1776.

80. Errhif A., Razouls C., Mayzaud P. Composition and community structure of pelagic copepods in the Indian sector of the Antarctic Ocean during the end of the austral summer // Polar Biol. 1997. V. 17. № 5. P. 418-430.

81. Fach B.A., Hofmann E.E., Murphy EJ. Modeling studies of Antarctic krill Euphausia superba survival during transport across the Scotia Sea // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2002. V. 231. P. 187-203.

82. Felsenstein J. Confidence limits on phylogenies: An approach using the bootstrap // Evolution. 1985. V. 39. P. 783-791.

83. Ferrada S., C.B. Canales-Aguirre, R. Galleguillos, et al. Development of microsatellite markers in the copepod, Caligus rogercresseyi Boxshall & Bravo, 2000 (Copepoda, Caligidae) // Crustaceana. 2011. V. 84. № 3. P. 375-381.

84. Fevolden S.E. Genetic variation of Euphausia superba Dana in the Antarctic Peninsula waters // Sarsia. 1986. V. 71. P. 169-175.

85. Fevolden S.E., Schneppenheim R. Genetic homogeneity of krill {Euphausia superba Dana) in the Southern Ocean // Polar Biol. 1989. V. 9. P. 533-539.

86. Folmer O., Black M., Hoeh W., Lutz R., Vrijenhoek R. 1994. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome с oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates // Molecular Marine Biology and Biotechnology. V. 3. № 5. P. 294-299.

87. Foster T.D., Middleton J.H. The oceanographic structure of the Eastern Scotia Sea. I. Physical oceanography // Deep-Sea Res. A. 1984. V. 31. P. 529-550.

88. Fransz H.G., Gonzales S.R. Latitudinal metazoan plankton zones in the Antarctic Circumpolar Current along 6°W during austral spring 1992 // Deep-Sea Res. II. 1997. V. 44. № 1-2. P. 395-414.

89. Froneman P.W., Ansorge I.J., Pakhomov E.A., Lutjeharms J.R.E. Plankton community structure in the physical environment surrounding the Prince Edward Islands (Southern Ocean) // Polar Biol. 1999. V. 22. P. 145155.

90. Gallienne C.P., Robins D.B. Is Oithona the most important copepod in the world's oceans? // J. Plankt. Res. 2001. V. 23. № 12. P. 1421-1432.

91. Gardes M., Bruns T.D. ITS primers with enhanced specificity for basidiomycetes application to the identification of mycorrhizae and rusts // Mol. Ecol. 1993. V. 2. P. 113-118.

92. Genomic DNA purification (Technical hints, applications and protocols). Quiagen, 2000. P. 1-32.

93. Glorioso P.D., Piola A.R., Leben R.R. Mesoscale eddies in the Subantarctic Front—Southwest Atlantic // Sci. Mar. 2005. V. 69. № 2. P. 2-15.

94. Goetze E. Global population genetic structure and biogeography of the oceanic copepods Eucalanus hyalinus and E. spinifer II Evolution.2005. V. 59. № 11. P. 2378-2398.

95. Goetze E. Population Differentiation in the Open Sea: Insights from the Pelagic Copepod Pleuromamma xiphias II Integrative and Comparative Biol. 2011. V. 51. № 4. P. 580-597.

96. Gordon A.L. Structure of Antarctic Waters between 20°W and 170°W / Antarctic Map Folio Series, V.C. Bushell, ed. New York: American Geographic Society, 1967. Folio 6. P. 1-10.

97. Grant S., Constable A., Raymond B., Doust S. Bioregionalisation of the Southern Ocean / Report of experts workshop, Hobart, September2006. WWF Australia and ACE CRC.

98. Hanawa K., Talley L. Mode waters / Ocean circulation and climate, G. Siedler, J. Church, eds. New York: Academic Press, 2001. P. 373-386.

99. Harris R.P., Weibe P.H., Lenz J., Skjoldal H.R., Huntley M. (eds.) ICES Zooplankton Methodology Manual. London: Academic Press, 2000. 684 p.

100. Haury L.R., McGowan J.S., Wiebe P. Patterns and processes in the time-space scales of plankton distributions / In Steele, J.H. (ed.) Spatial pattern in plankton communities. New York, Plenum. 1978. V. 3. P. 277327.

101. Haury L.R., McGowan J.S. Time-space scales in marine biogeography. Paris: IOC, 1998. P. 163-170.

102. Hebert P.D., Cywinska A., Ball S.L., deWaard J.R. Biological identifications through DNA barcodes // Proc. Biol. Sci. 2003. V. 270. № 1512. P. 313-321.

103. Hempel G. On the biology of polar seas, particularly the Southern Ocean / In: Gray JS, Christiansen ME (eds). Marine biology of polar regions and effects of stress on marine organisms. Wiley, Chichester, 1985. P. 3-33.

104. Hempel G. Antarctic marine biology two centuries of research // Antarctic Sci. 2007. V. 19. P. 195-203.

105. Hewitt G.M. Speciation, hybrid zones and phylogeography or seeing genes in space and time // Mol. Ecol. 2001. V. 10. P. 537-549.

106. Hill R., Allen L., Bucklin A. Multiplexed species-specific PCR protocol to discriminate four N. Atlantic Calanus species, with an mtCOI gene tree for ten Calanus species // Mar. Biol. 2001. V. 139. № 2. P. 279287.

107. Hofmann E.E., Klinck J.M., Lascara C.M., Smith D.A. Water mass distribution and circulation west of the Antarctic Peninsula and including Bransfield Strait // In: Foundations for Ecological Research West of the

108. Antarctic Peninsula, Antarctic Research Series 70 / Eds. Ross R.M., Hofmann E.E., Quetin L.B. Washington DC: AGU, 1996. P. 61-80.

109. Holdgate M.W. The Antarctic ecosystem // Philos. Trans. R. Soc. Lond. Ser. B. 1967. V. 152. P. 363-383.

110. Holmborn T., Goetze E., PSllupuu M., Pollumae A. Genetic species identification and low genetic diversity in Pseudocalanus acuspes of the Baltic Sea//J. Plank. Res. 2011. V. 33. № 3. P. 507-515.

111. Homma T., Yamaguchi A. Vertical changes in abundance, biomass and community structure of copepods down to 3000 m in the southern Bering Sea // Deep-Sea Res. I. 2010. V. 57. P. 965-977.

112. Hong X.-Y., Goton T., Noda H. Sensitivity comparison of PCR primers for detecting Wolbachia in spider mites // Appl. Entomol. Zool.2002. V. 37. №3. P. 379-383.

113. Hopkins T.L. The Zooplankton Community of Croker Passage, Antarctic Peninsula // Polar Biol. 1985. V.4. P.161-170.121. http://copepodes.obs-banyuls.fr/ by Claude Razouls.

114. Hunt B., Hosie G.W. The Continuous Plankton Recorder in the Southern Ocean: a comparative analysis of zooplankton communities sampled by the CPR and vertical net hauls along 140°E. // J. Plank. Res.2003. V. 25. № 12. P. 1561-1579.

115. Hunt B., Hosie G.W. The seasonal succession of zooplankton in the Southern Ocean south of Australia, part II: The Sub-Antarctic to Polar Frontal Zones // Deep-Sea Res. I. 2006. V. 1. № 53. P. 1203-1223.

116. Hunt B., Hosie G.W. Zonal structure of zooplankton communities in the Southern Ocean South of Australia: results from a 2150 km continuous plankton recorder transect // Deep-Sea Res. I. 2005. V. 52. № 7. P. 12411271.

117. Jarman S.N., Elliott N.G., Nicol S., McMinn A. Genetic differentiation in the Antarctic coastal krill Euphausia crystallorophias // Heredity. 2002. V. 88. P. 280-287.

118. Jaspers C., Torkel G.N., Carstensen J., et al. Metazooplankton distribution across the Southern Indian Ocean with emphasis on the role of Larvaceans // J. Plank. Res. 2009. V. 31. № 5. P. 525-540.

119. Jennings R.M., Bucklin A., Pierrot-Bults A. 2010. Barcoding of arrow worms (Phylum Chaetognatha) from three jceans: genetic diversity and evolution within an enigmatic phylum // PLoS ONE. V.5. № 4. P. 1-7.

120. Kahru M., Savchuk O.P., Elmgren R. 2007. Satellite measurements of cyanobacterial bloom frequency in the Baltic Sea: interannual and spatial variability // Mar. Ecol. Progr. Ser. V. 343. P. 15-23.

121. KannL.M., Wishner K. Genetic population structure of the copepod Calanus finmarchicus in the Gulf of Maine: allozyme and amplified mitochondrial DNA variation // Mar. Biol. 1996. V. 125. № 1. P. 65-75.

122. Knowlton N. Sibling species in the sea // Annual Review of Ecology and Systematics. 1993. V. 24. P. 189-216.

123. Knox G.A. Antarctic marine ecosystems / In: Holdgate MW (ed) Antarctic ecology. V.l. London: Academic Press, 1970. P. 69-96.

124. Knox G.A. The living resources of the Southern Ocean: a scientific overview / In: Vicuna F.O. (ed) Antarctic resources policy: Scientific, legal and political issues. Cambridge UK: Cambridge University Press, 1983. P. 21-60.

125. Lee C.E. Global phylogeography of a cryptic copepod species complex and reproductive isolation betveen genetically proximate «populations» //Evolution. 2000. V. 54. № 6. P. 2014-2027.

126. Longhurst A. Ecological geography of the sea. San Diego: Academic Press, 1998. 542 p.

127. Mackas D.L., Denman K.L., Abbott M.R. Plankton patchiness: biology in the physical vernacular // Bull. Mar. Sci. 1985. V. 37. P. 652674.

128. Marin V.M., Schnack-Schiel S.B. The occurrence of Rhincalanus gigas, Calanoides acutus and Calanus propinquus (Copepoda: Calanoida) in late May in the area of the Antarctic Peninsula // Polar Biol. 1993. V. 13. P. 35-40.

129. Marrari M., Daly K.L, Timonin A., Semenova T. The zooplankton of Marguerite Bay, western Antarctic Peninsula Part II: Vertical distribution and habitat partitioning // Deep-Sea Research II. 2011. V. 58. P. 1614-1629.

130. McGillicuddy D.J.Jr., Bucklin A. Intermingling of two Pseudocalanus species on Georges Bank // J. Mar. Res. 2002. V. 60. P. 583-604.

131. McQuaid C.D., Froneman P.W. The Southern Ocean Group at Rhodes University: seventeen years of biological oceanography in the Southern Ocean reviewed // South African Journal of Science. 2004. V. 100. P. 571-577.

132. McManus M.A., Cheriton O.M., Holliday D.V., Greenlaw C.F., Drake P. Effects of physical processes on structure and transport of thinzooplankton layers in the coastal ocean // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2005. V.301.P. 199-215.

133. Moffat C., Beardsley R.C., Owens W.B., et al. A first description of the Antarctic Peninsula Coastal Current, 277-293 // Deep-Sea Res. II. 2008. V. 55. P. 3-4.

134. Moulton, M.J., Song, H., and Whiting, M.F. Assessing the effects of primer specificity on eliminating numt co-amplification in DNA barcoding: a case study from Orthoptera (Arthropoda: Insecta) // Mol Ecol Resour. 2010. V. 10. № 4. P. 615-627.

135. Olbers D., Borowski D., Volker C., Wolff J. The dynamical balance, transport and circulation of the Antarctic Circumpolar Current // Antarct. Sci. 2004. V. 16. № 4. P. 439-470.

136. Orsi A.H., Whitworth T., Nowlin Jr. W.D. On the meridional extent and fronts of the Antarctic Circumpolar Current // Deep-Sea Res. I. 1995. V. 42. P. 641-673.

137. Ortman, B. D., A. Bucklin, F. Pages, and M. Youngbluth. 2010. DNA barcoding of the Medusozoa. Deep-Sea Res. II. V. 57. P. 2148-2156.

138. Pakhomov E.A., Froneman P.W. Zooplankton dynamics in the eastern Atlantic sector of the Southern Ocean during the austral summer 1997/1998 Part 1: Community structure // Deep Sea Research Part II. 2004. V. 51. P. 2599-2616.

139. Pakhomov A., Perissinotto R., McQuaid C.D. Comparative structure of the macrozooplankton/micronekton communities of the Subtropical and Antarctic Polar Fronts // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1994. V. 111. P. 155-169.

140. Pakhomov E. A., Voronina N. M., Kosobokova K. N. Composition and biomass of summer metazoan plankton in the 0-200 m layer of the Atlantic sector of the Antarctic. // Polar Biol. 1994. V.14. P. 91-95.

141. Pakhomov E.A., McQuaid C.D. Distribution of surface zooplankton and seabirds across the Southern Ocean // Polar Biology. 1996. V. 16. №4. P.271-286.

142. Palumbi S.R. Marine speciation on a small planet // Trends Ecol. EV. 1992. V. 7. № 4. P. 114-118.

143. Palumbi S.R., Cipriano F., Hare M.P. Predicting nuclear gene coalescence from mitochondrial data: the three-times rule // Evolution. 2001. V. 55. №5. P. 859-868.

144. Patterson S.L., Whitworth T. Physical Oceanography. Antarctic Sector of the Pacific // Elsevier Oceanography Series. 1989. V. 51. P.55-93.

145. Piatkowski U. Macroplankton communities in Antarctic surface waters: spatial changes related to hydrography // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1989. №55. P. 251-259.

146. Pierrot-Bults A.C. Biological diversity in oceanic macrozooplankton: more than counting species. Marine Biodiversity: Patterns and Processes / Eds. Ormond R.F.G., Gage J.D., Angel J.D. New York: Cambridge University Press. 1997. P. 69-93.

147. Pond D.W., Ward P. Importance of diatoms for Oithona in Antarctic waters // Journal of plankton research, 2011. V. 33. P. 105-118.

148. Razouls S., Razouls C., De Bovee F. 2000. Biodiversity and biogeography of Antarctic copepods // Antarctic Science. V. 12. № 3. P. 343-362.

149. Read J., Pollard R., Bathmann U. Physical and biological patchiness of an upper ocean transect from South Africa to the ice edge near the Greenwich Meridian // Deep-Sea Research II. V. 49. 2002. № 18. P. 37133733.

150. Riccardi N. Selectivity of plankton nets over mesozooplankton taxa: implications for abundance, biomass and diversity estimation // J.Jimnol. 2010. V. 69. № 2. P. 287-296.

151. Saitou N., Nei M. The neighbor-joining method: A new method for reconstructing phylogenetic trees // Mol. Biol. EV. 1987. V. 4. P. 406-425.

152. Schnack-Schiel S., Mizdalski E. Seasonal variations in distribution and population structure of Microcalanus pygmaeus and Ctenocalanus citer (Copepoda: Calanoida) in the eastern Weddell Sea, Antarctica // Marine Biology, 1994. V. 119. P. 357-366.

153. Schnack-Schiel S.B., Hagen W., Mizdalski E. Seasonal comparison of Calanoides acutus and Calanus propinquus (Copepoda: Calanoida) in the southeastern Weddell Sea // Antarctica Mar. Ecol. Prog. Ser. 1991. V. 70. P. 17-27.

154. Smith D.A., Hofmann E.E., Klink J.M., Lascara C.M. Hydrography and circulation of the west Antarctic Peninsula continental shelf // Deep-SeaRes. I. 1999. V. 46. P. 925-949.

155. Sokolov S., Rintoul S.R. Circumpolar structure and distribution of the Antarctic Circumpolar Current fronts: 1. Mean circumpolar paths // J. Geophys. Res. 2009. V. 114. P. 1-19.

156. Sokolov S., Rintoul S.R. Circumpolar structure and distribution of the Antarctic Circumpolar Current fronts: 2. Variability and relationship to sea surface height. J. Geophys. Res. 2009. V. 114, p. 19-29.

157. Sokolov S., Rintoul S.R. Multiple Jets of the Antarctic Circumpolar Current South of Australia // Journal of Physical Oceanography. 2007. V. 37. P. 1394-1412.

158. Sokolov S., Rintoul S.R. Structure of Southern ocean fronts at 140°E //Journal of Marine Systems. 2002. V. 37. P. 151-184.

159. South Atlantic Zooplankton / edited by D. Boltovskoy. The Netherlands: Backhuys Publishers. 1999. 1098 p.

160. Spalding M.D., Agostini V.N., Rice J., Grant S.M. Pelagic provinces of the world: A biogeographic classification of the world's surface pelagic waters // Ocean & Coastal Management. 2012. V. 60. P. 19-30.

161. Sprintall J. Long term trends and interannual variability of temperatures in Drake Passage // Prog. Oceanogr. 2008. V. 77. P. 316-330.

162. Sprintall J. Seasonal to interannual upper-ocean variability in the Drake Passage // J. Mar. Res. 2003. V. 61. P. 27-57.

163. Takahashi K.T., Tanimura A., Fukuchi M. Long-term observation of zooplankton biomass in the Indian Ocean sector of the Southern Ocean. Memoirs of the National Institute of Polar Research. 1998. P. 52. P. 209219.

164. Takahashi K.T, Hosie G.W., McLeod D.J., Kitchener J.A. Surface zooplankton distribution patterns during austral summer in the Indian sector of the Southern Ocean, south of Australia // Polar Science. 2011. V. 5.P. 134-145.

165. Tsujimoto M, Takahashi K.T., Hirawake T., Fukuchi M. 2006. Distribution of Copepoda along 140°E in the Indian sector of the Southern Ocean//PolarBiosci. V. 20. P. 140-146.

166. Turner J.T. The Importance of Small Planktonic Copepods and Their Roles in Pelagic Marine Food Webs // Zoological Studies. 2004. V. 43. №2. P. 255-266.

167. Vanin E.F. Processed pseudogenes: characteristics and evolution //Annu. Rev. Genet. London: 1977. V. 19. P. 253-272.

168. Vervoort W. 1965. Notes on the biogeography and ecology of free-living marine copepoda. // Biogeography and ecology in Antarctica. V. 11. P. 381-400.

169. Voronina N.M., Kosobokova K.N., Pakhomov E.A. Composition and biomass of summer metazoan plankton in the 0-200 m layer of the Atlantic sector of the Antarctic // Polar Biol., 1994. V. 14. P. 91-95.

170. Wang L., Jiang T. On the complexity of multiple sequence alignment//J. Comput. Biol. 1994. V. 1. P. 337-348.

171. Ward P., Shreeve R.S. The spring mesozooplankton community at South Georgia: a comparison of shelf and oceanic sites // Polar Biol., 1999. V. 22. P. 289-301.

172. Waugh J. DNA barcoding in animal species: progress, potential and pitfalls //BioEssays. 2007. V. 29. P. 188-197.

173. Zane L., Patarnello T. Krill: a possible model for investigating the effects of ocean currents on the genetic structure of a pelagic invertebrate // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2000. V. 57. P. 1-8.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.