Системные механизмы регуляции уровня кортикостерона в крови при нарушениях углеводного обмена в эксперименте тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.03.03, доктор биологических наук Черкасова, Ольга Павловна

  • Черкасова, Ольга Павловна
  • доктор биологических наукдоктор биологических наук
  • 2013, Новосибирск
  • Специальность ВАК РФ14.03.03
  • Количество страниц 220
Черкасова, Ольга Павловна. Системные механизмы регуляции уровня кортикостерона в крови при нарушениях углеводного обмена в эксперименте: дис. доктор биологических наук: 14.03.03 - Патологическая физиология. Новосибирск. 2013. 220 с.

Оглавление диссертации доктор биологических наук Черкасова, Ольга Павловна

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Синтез кортикостероидных гормонов

1.2. Секреция кортикостероидных гормонов в кровь

1.3. Регуляция синтеза кортикостероидных гормонов

1.4. Рецепторы глюкокортикоидных гормонов в тканях-мишенях

1.5. Пререцепторный метаболизм глюкокортикоидных гормонов ферментом 113-гидроксистероиддегидрогеназой

1.6. Эффекты глюкокортикоидных гормонов

1.6.1. Ангиотензинпревращающий фермент, ключевой фермент ренин-

ангиотензиновой системы

1.7. Функциональное состояние адренокортикальной системы при экспериментальном моделировании патологических процессов

1.7.1. Моделирование нарушений углеводного обмена

1.7.2. Моделирование гранулематозного воспаления

1.8. Анализ имеющихся литературных данных с позиции теории функциональных систем

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1. Экспериментальные животные

2.2. Экспериментальное моделирование патологических процессов

2.3. Забор анализируемого материала

2.4. Определение биохимических и гормональных параметров

2.5. Реактивы и препараты для проведения хроматографического анализа

2.6. Определение кортикостероидных гормонов в плазме крови и надпочечниках

2.6.1. Общие принципы метода

2.6.2. Обработка плазмы крови

2.6.3. Построение калибровочных графиков

2

2.6.4. Обработка надпочечников

2.7. Определение активности 11 (3-гидроксистероиддегидрогеназы

2.8. Определение активности ангиотензинпревращающего фермента

2.9. Определение активности ренина

2.10. Статистическая обработка результатов

ГЛАВА 3. ХАРАКТЕРИСТИКА ФУНКЦИОНАЛЬНОЙ СИСТЕМЫ

ПОДДЕРЖАНИЯ КОНЦЕНТРАЦИИ КОРТИКОСТЕРОНА В КРОВИ

И ТКАНЯХ-МИШЕНЯХ ПРИ НОРМОГЛИКЕМИИ

ГЛАВА 4. ХАРАКТЕРИСТИКА ФУНКЦИОНАЛЬНОЙ СИСТЕМЫ ПОДДЕРЖАНИЯ КОНЦЕНТРАЦИИ КОРТИКОСТЕРОНА В КРОВИ И ТКАНЯХ-МИШЕНЯХ ПРИ АЛЛОКСАНОВОМ ДИАБЕТЕ

4.1. Гормонально-метаболические показатели при аллоксановом диабете

4.2. Синтез и пререцепторный метаболизм кортикостерона

4.3. Активность АПФ при аллоксановом диабете

4.4. Коореляционный и факторный анализ

Глава 5. ХАРАКТЕРИСТИКА ФУНКЦИОНАЛЬНОЙ СИСТЕМЫ

ПОДДЕРЖАНИЯ КОНЦЕНТРАЦИИ КОРТИКОСТЕРОНА В КРОВИ И ТКАНЯХ-МИШЕНЯХ ПРИ ГРАНУ ЛЕМАТОЗНОМ ВОСПАЛЕНИИ, ИНДУЦИРОВАННОМ ВВЕДЕНИЕМ ДИОКСИДА

КРЕМНИЯ

^ 5.1. Показатели метаболизма при воспалении, индуцированном диоксидом

кремния

ч 5.2. Синтез и пререцепторный метаболизм кортикостерона в динамике

воспаления, индуцированного диоксидом кремния

5.3. Активность ангиотензинпревращающего фермента в динамике

^ воспаления, индуцированного диоксидом кремния

5.4. Коореляционный и факторный анализ

Глава 6. ХАРАКТЕРИСТИКА ФУНКЦИОНАЛЬНОЙ СИСТЕМЫ ПОДДЕРЖАНИЯ КОНЦЕНТРАЦИИ КОРТИКОСТЕРОНА В КРОВИ И ТКАНЯХ-МИШЕНЯХ ПРИ ГРАНУЛЕМАТОЗНОМ

3

ВОСПАЛЕНИИ, ИНДУЦИРОВАННОМ ДИОКСИДОМ КРЕМНИЯ НА ФОНЕ АЛЛОКСАНОВОГО ДИАБЕТА

6.1. Гормонально-метаболические показатели при сочетании аллоксанового диабета и гранулематозного воспаления

6.2. Синтез и пререцепторный метаболизм кортикостерона при сочетании аллоксанового диабета и гранулематозного воспаления

6.3. Активность ангиотензинпревращающего фермента при сочетании аллоксанового диабета и воспаления, индуцированного диоксидом кремния

6.4. Коореляционный и факторный анализ

ГЛАВА 7. СИНТЕЗ И ПРЕРЕЦЕПТОРНЫЙ МЕТАБОЛИЗМ

КОРТИКОСТЕРОНА У ЖИВОТНЫХ С ИНДУЦИРОВАННОЙ СТРЕССОМ АРТЕРИАЛЬНОЙ ГИПЕРТЕНЗИЕЙ И ГЕНЕТИЧЕСКИ ОБУСЛОВЛЕННЫМИ НАРУШЕНИЯМИ УГЛЕВОДНОГО ОБМЕНА

7.1. Синтез и пререцепторный метаболизм кортикостерона при острых

воздействиях

7.2. Активность ферментов ренин-ангиотензиновой системы крыс линии

НИСАГ при острых воздействиях

ОБСУЖДЕНИЕ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Патологическая физиология», 14.03.03 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Системные механизмы регуляции уровня кортикостерона в крови при нарушениях углеводного обмена в эксперименте»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность проблемы. По прогнозам ВОЗ в мире к 2030 г. будет около 435 млн. больных сахарным диабетом (СД) и их лечение уже сейчас представляет серьезную экономическую проблему (Дедов И.И., 2010; Дедов И.И. и др., 2012; Roger V.L. et al., 2011). Нарушения углеводного обмена (НУО) являются общим патогенетическим звеном развития СД как 1, так и 2 типов, и лежат в основе развития осложнений этого заболевания (Балаболкин М.И., 2000; Дедов И.И., Шестакова М.В., 2011; Battiprolu P.K. et.al., 2010). Так, в одном из самых масштабных и значимых исследований в области диабета UKPDS (United Kingdom Prospective Diabetes Study, 1998) доказано наличие прямой зависимости между уровнем гликемического контроля и вероятностью развития осложнений СД.

Гипергликемия при СД является следствием абсолютной или относительной недостаточности инсулина при 1 и 2 типах заболевания. В этой связи тактика лечения СД включает использование природных или синтетических препаратов инсулина (Ковельман И.З. и др., 2002; Кураева Т.Д., 2010). В последние годы разрабатывают способы обеспечения организма инсулином с использованием клеточных технологий (Burns C.J., et.al., 2004; Возианов А.Ф., 2006; Skyler J.S. 2007; Phadnis S.M. et.al., 2009). Широко применяют препараты, способные повысить чувствительность тканей к инсулину и увеличить утилизацию глюкозы клетками периферических тканей (Артюкова М.М., 2007; Балаболкин М.И. и др., 2008). Разрабатывают новые принципы лечения гипергликемии путем стимуляции глюкозурии (Шварц В.Я., 2012).

Исследованию других гормональных механизмов, также способствующих формированию гипергликемии при СД, уделяют значительно меньше внимания. К ним, в частности, относится усиление активности глюкокортикоидного звена адренокортикальной системы при СД, которое наблюдали как в клинических, так и в экспериментальных

исследованиях (Баранов В.Г. и др., 1983; Мазурина Н.К., 2007; Chan О. et.al., 2002; Selyatitskaya V.G. et.al., 2012). Участие глюкокортикоидных гормонов в патогенезе СД обусловлено индукцией этими гормонами в гепатоцитах синтеза мРНК ключевых ферментов глюконеогенеза, ферментов переаминирования аминокислот и включения их в глюконеогенез, что в итоге приводит к усилению продукции глюкозы печенью (Мертвецов Н.П., 1986; Kotelevtsev Y. et.al, 1997). В условиях гипоинсулинемии или инсулинорезистентности усиление глюконеогенеза можно расценить как компенсаторную реакцию на недостаток глюкозы в клетках (Roberge С. et.al., 2007; Sowers J.R. et.al., 2009), но, с другой стороны, эта же реакция способствует усугублению симптоматики СД и препятствует коррекции гипергликемии с использованием фармацевтических препаратов.

По мнению некоторых исследователей (Rosmond R., Bjorntorp P., 2000; Vicennati V., Pasquali R., 2000) СД 2 типа можно определить как заболевание, в основе которого лежит неадекватная или избыточная продукция глюкокортикоидных гормонов. Инсулинорезистентность, которую рассматривают как ведущее патогенетическое звено СД 2 типа, с этих позиций является лишь приспособительной реакцией, предназначенной для перераспределения потоков энергетических субстратов в клетки. Подтверждением важной роли глюкокортикоидных гормонов в механизмах формирования НУО служит также индуцированный стероидами диабет (Селятицкая В.Г. и др., 2002; Бабаджанова Г.Ю., 2003; Arnaldi G. et.al., 2003).

Несмотря на имеющийся экспериментальный и клинический материал, механизмы увеличения содержания глюкокортикоидных гормонов в крови при НУО до настоящего времени окончательно не выяснены. Повышение концентрации основного глюкокортикоидного гормона кортизола (или кортикостерона у крыс) в крови может быть связано с изменением биосинтеза этого гормона в коре надпочечников. Однако активность каких этапов синтеза глюкокортикоидных гормонов изменяется при НУО, неизвестно, поскольку регуляции могут подвергаться как ранние, так и

поздние этапы этого процесса (Ehrhart-Bornstein М. et. al., 1998; Miller W. L., Auchus R.J., 2011).

Механизмы регуляции концентрации глюкокортикоидных гормонов в крови включают также реакции взаимного превращения физиологически активного гормона и его неактивной формы с помощью ключевого фермента пререцепторного метаболизма глюкокортикоидных гормонов 11(3-гидроксистероиддегидрогеназы (11|3-ГСД). Этот фермент проявляет активность в самом надпочечнике и в тканях (Shimojo М. et.al.,1996; Chapman К.Е., et.al., 2009). Первая изоформа фермента (11(3-ГСД-1) сопряжена с глюкокортикоидными рецепторами и осуществляет реакцию восстановления неактивного кортизона у человека (11-дегидрокортикостерона у крыс) в кортизол (кортикостерон) (Brem A.S. et.al., 1995; Napolitano A. et.al., 1998; Walker B.R., 2007). Увеличение активности 11 (3-ГСД-І в печени способствует локальному повышению содержания активных глюкокортикоидов в гепатоцитах и усилению процессов глюконеогенеза (Aoki К. et.al., 2001; Masuzaki Н. et.al.,2001; Whorwood С.В. et.al., 2002; Liu Y. et.al., 2005; Draper N., Stewart P.M., 2005). Показано, что вклад llp-ГСД-І во вненадпочечниковый синтез кортизола составляет до 30% от его синтеза в надпочечнике здорового человека (Basu R. et.al., 2004).

Вторая изоформа фермента (11(3-ГСД-П) солокализована с минералокортикоидными рецепторами, осуществляет превращение активных глюкокортикоидных гормонов в неактивные метаболиты в тканях-мишенях альдостерона, обеспечивая тем самым селективность рецепторов (Slight S.H. et.al., 1996; Qin W. et.al., 2003; Lauterburg M. et.al., 2012). Так, основное количество неактивного кортизона у человека производится в почках (Whitworth J.A., 1989). Какой вклад дают изоформы фермента 11|ЗГСД во вненадпочечниковый синтез глюкокортикоидных гормонов при нарушениях углеводного обмена неизвестно. Решение этого вопроса требует специального исследования.

Глюкокортикоидные гормоны оказывают множественные эффекты на

8

функциональное состояние регуляторных систем организма (Reddy Т.Е. et.al., 2010). Так, известно их модулирующее влияние на активность ренин-ангиотензиновой системы, которую глюкокортикоидные гормоны осуществляют, действуя как через системную циркуляцию (Corvol Р., Jeunemaitre X., 1997; Shelat S.G. et.al., 1999), так и паракринно, образуясь в тканях из своих обратимых метаболитов с помощью 11(3-ГСД-1 (Penning Т.М., 2011). Важнейшим элементом ренин-ангиотензиновой системы является ангиотензинпревращающий фермент (АПФ), играющий ведущую роль в развитии и прогрессировании артериальной гипертензии и сосудистых осложнений при сахарном диабете (Григорьев Ю.В. и др., 2005; Дедов И.И., Шестакова М.В., 2011; Hayden M.R. et.al, 2011). Активация глюкокортикоидного звена адренокортикальной системы приводит к изменению активности АПФ, что позволяет рассматривать этот фермент как показатель тканевых эффектов глюкокортикоидных гормонов при СД, однако сведения об активности АПФ при НУО отсутствуют.

Цель исследования: изучить активность и взаимоотношения синтеза и пререцепторного метаболизма кортикостерона, как основных системных механизмов регуляции его уровня в крови, при экспериментальных острых и хронических воздействиях, модулирующих углеводный обмен.

Задачи исследования

1. Охарактеризовать выраженность нарушений углеводного обмена по содержанию в крови глюкозы и иммунореактивного инсулина у крыс при экспериментальных воздействиях: введение аллоксана (моделирование аллоксанового диабета), введение диоксида кремния здоровым крысам (моделирование хронического гранулематозного воспаления) или животным с аллоксановым диабетом (моделирование сочетания патологических процессов).

2. Изучить содержание кортикостероидных гормонов в крови и активность путей стероидогенеза в надпочечниках крыс в динамике развития

аллоксанового диабета, хронического гранулематозного воспаления, индуцированного введением диоксида кремния, и при их сочетании.

3. Исследовать активность изоформ 11 Р-гидроксистероиддегидрогеназы в надпочечниках, крови, печени и почках крыс в динамике развития аллоксанового диабета, хронического гранулематозного воспаления и при их сочетании.

4. Изучить активность аминотрансфераз в печени и активность ангиотензинпревращающего фермента в крови, легких, печени и почках крыс в динамике развития аллоксанового диабета, хронического гранулематозного воспаления и при их сочетании.

5. Описать полученные результаты исследования синтеза, пререцепторного метаболизма и эффектов кортикостерона в тканях у крыс при экспериментальных острых и хронических воздействиях, модулирующих углеводный обмен, с позиций теории функциональных систем, используя методы корреляционного и факторного анализов.

6. Определить состояние исполнительных механизмов функциональной системы поддержания концентрации кортикостерона в крови и тканях-мишенях (синтез в надпочечниках и пререцепторный метаболизм) у крыс с наследственной индуцированной стрессом артериальной гипертензией и нарушениями углеводного обмена.

Научная новизна работы. Впервые к описанию механизмов, обеспечивающих сохранение адекватной условиям жизнедеятельности концентрации кортикостерона в крови, применен подход, использующий основные принципы построения функциональных систем по П.К. Анохину. Функциональная система поддержания концентрации кортикостерона в крови и тканях-мишенях представлена звеньями: полезный приспособительный результат - концентрация кортикостерона в крови; акцепторы результата действия - эффекты кортикостерона в тканях-мишенях, в частности, активности АПФ и ферментов переаминирования аминокислот;

исполнительные механизмы - синтез кортикостероидных гормонов в надпочечниках и пререцепторный метаболизм в тканях ферментом 11 р-ГСД.

С использованием корреляционного и факторного анализов выявлены изменения функциональной системы, характерные для нарушений углеводного обмена. При нормогликемии функциональная система характеризуется наличием устойчивых корреляционных взаимосвязей, а в четыре основных фактора, наиболее значимо влияющих на величины анализируемых переменных, входят в основном показатели синтеза кортикостероидов в надпочечниках и активность АПФ в крови и тканях. При аллоксановом диабете с гипергликемией и гипоинсулинемией функциональная система характеризуется резким снижением числа корреляционных связей и изменением структуры основных факторов. Первым и наиболее значимым становится фактор, в который входят показатели метаболизма и активности АПФ в легких, т.е. звено эффектов функциональной системы.

При гранулематозном воспалении с нормогликемией число корреляционных связей снижено, но в меньшей степени, чем при аллоксановом диабете, а основные факторы функциональной системы содержат показатели синтеза и циркуляции кортикостероидов. При гранулематозном воспалении на фоне аллоксанового диабета стабильность функциональной системы восстанавливается, усиливается

взаимозависимость ее параметров, первый и третий факторы аналогичны таковым при нормогликемии, а второй - при аллоксановом диабете с гипергликемией.

Впервые раскрыт реализуемый через функциональную систему поддержания концентрации кортикостерона в крови и тканях-мишенях патофизиологический механизм сохранения гипергликемии при длительном течении аллоксанового диабета с гипоинсулинемией. Он представлен увеличением активности первой изоформы 11Р-ГСД-1 в печени, что способствует локальному повышению содержания кортикостерона в

гепатоцитах и обеспечивает усиление его активирующего влияния на глюконеогенез.

Эти же реакции активируются при хроническом гранулематозном воспалении, но в условиях нормоинсулинемии эффекты кортикостерона в печени направлены на поддержание нормогликемии на фоне резкого ингибирования синтеза кортикостерона в надпочечниках. Однако на длительных сроках хронического гранулематозного воспаления, развивающегося на фоне аллоксанового диабета, снижение синтеза кортикостерона в надпочечниках не сопровождается повышением активности 11 (3-ГСД-1 в печени, что, в свою очередь, приводит к снижению выраженности гипергликемии.

Впервые показано, что у крыс с наследственной индуцированной стрессом артериальной гипертензией при эмоциональном стрессе одновременно активируются синтез кортикостерона в надпочечниках и локальное образование этого гормона в тканях ферментом 11(3-ГСД-1, что может являться одним из механизмов патогенеза ассоциированных со стресс-индуцируемой артериальной гипертензией нарушений углеводного обмена.

Теоретическая и практическая значимость работы. По результатам диссертационной работы предложена концепция функциональной системы поддержания концентрации кортикостерона в крови и тканях-мишенях, которая позволяет обеспечивать эффекты этого гормона при изменениях его синтеза в надпочечниках. Система включает два основных исполнительных механизма - синтез гормона в надпочечниках и его пререцепторный метаболизм в тканях, которые, взаимодействуя между собой, обеспечивают адекватный запросам организма уровень гормона в крови и тканях. Структура основных факторов, характеризующих деятельность функциональной системы, меняется в зависимости от выраженности нарушений гомеостатических параметров, в частности нарушений углеводного обмена. Сформулированная концепция позволила выявить и доказать важный вклад пререцепторного метаболизма кортикостерона в

регуляцию уровня этого гормона в крови и осуществление его эффектов в тканях при гипергликемии, охарактеризовать роль высокой активности 1113-ГСД-1 в сохранении гипергликемии при снижении продукции кортикостерона в надпочечниках. Полученные результаты расширяют современные представления о механизмах развития стойких нарушений углеводного обмена при сахарном диабете и могут служить научно-методической базой дальнейших исследований, включая поиск новых более эффективных подходов к коррекции гипергликемии при сахарном диабете.

Использование микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии при исследовании функционального состояния адренокортикальной системы позволяет оценить спектр гормонов, синтезируемых в надпочечнике, одновременно в одной пробе. Данный метод служит удобным инструментом для дифференциальной диагностики нарушений как биосинтеза гормонов в надпочечниках, так и их тканевого метаболизма. Так, с использованием метода микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии в плазме крови женщин с ожирением были одновременно определены корти^ол, кортизон, 11-дезоксикортизол, кортикостерон и 17а-гидроксипрогестерон, что позволило установить взаимосвязь тяжести нарушений углеводного обмена с уменьшением в крови концентрации 11 -дезоксикортизола.

Разработанный метод определения активности

ангиотензинпревращающего фермента в крови и тканях с использованием микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии позволил провести комплексный анализ активности фермента в динамике развития нарушений углеводного обмена у экспериментальных животных, а также при наследственной индуцированной стрессом артериальной гипертензии.

Методы определения кортикостероидных гормонов и активности ангиотензинпревращающего фермента в плазме крови человека с использованием микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии были предложены для клинического применения и

утверждены Министерством здравоохранения СССР в качестве методических рекомендаций (решение №10-11/37 от 01.04.1991 г.)

Диссертационное исследование выполнено в рамках темы НИР лаборатории эндокринологии ФГБУ «НЦКЭМ» СО РАМН «Изучить реактивность интегративных систем организма при функциональных нарушениях инсулярного аппарата поджелудочной железы, обусловленных воздействиями повреждающих факторов экзогенной и эндогенной природы, разработать подходы к коррекции инсулинорезистентности и гипоинсулинемии», № гос. регистрации 01200955649.

Положения, выносимые на защиту

1. Уровень кортикостерона в крови и его эффекты в тканях регулируются функциональной системой поддержания концентрации кортикостерона в крови и тканях-мишенях, включающей в качестве полезного приспособительного результата концентрацию кортикостерона в крови; в качестве акцептора результата действия системы - эффекты кортикостерона в тканях, а исполнительных механизмов - синтез кортикостерона в надпочечниках и его пререцепторный метаболизм в тканях ферментом 11 (3-ГСД.

2. При аллоксановом диабете на фоне гипоинсулинемии в динамике развития патологического процесса изменение активности исполнительных механизмов функциональной системы направлено на сохранение гипер гликемии. Так, начальный период заболевания сопровождается увеличением активности всех этапов синтеза стероидов в надпочечниках и высоким уровнем кортикостерона в крови, что способствует повышению активности ангиотензинпревращающего фермента в легких и ферментов переаминирования аминокислот в печени. На длительных сроках содержание глюкокортикоидных гормонов в крови и надпочечниках снижается относительно начала эксперимента, при этом увеличивается активность 11Р-ГСД-1 в печени, что локально повышает содержание кортикостерона и

активность аминотрансфераз, способствуя тем самым поддержанию гипергликемии.

3. Активность исполнительных механизмов функциональной системы при гранулематозном воспалении, индуцированном введением диоксида кремния, в условиях нормогликемии носит фазный характер ответа на стрессорное воздействие. Так, в первые сутки после индукции воспаления повышается синтез кортикостерона из имевшихся в надпочечниках предшественников, что приводит к значительному увеличению содержания этого гормона в крови. Начальная фаза гиперактивности меняется к 14 суткам на фазу ингибирования конечных этапов синтеза кортикостероидных гормонов - кортикостерона и альдостерона, в надпочечниках. При этом поддержание концентрации кортикостерона в крови осуществляется за счет активации первой изоформы 11 р-ГСД-1 в надпочечниках и печени, а также ингибирования второй изоформы 11Р-ГСД-П в почках, превращающей кортикостерон в его неактивный метаболит 11-дегидрокортикостерон.

4. Активность исполнительных механизмов функциональной системы при индукции гранулематозного воспаления у крыс на фоне аллоксанового диабета с гипергликемией и гипоинсулинемией на начальных сроках воспаления соответствует таковой у крыс только с аллоксановым диабетом. На отдаленных сроках проявляется модулирующее влияние гранулематозного воспаления, проявляющееся уменьшением содержания кортикостерона в надпочечниках и крови, снижением выраженности гипергликемии и активности аминотрасфераз в печени.

5. У крыс с наследственной индуцированной стрессом артериальной гипертензией и нарушениями углеводного обмена стойкие изменения активности исполнительных механизмов функциональной системы затрагивают, в основном, активность пререцепторного метаболизма кортикостерона и проявляются в условиях острого стрессорного воздействия.

Апробация результатов исследования. Результаты, полученные при выполнении диссертационного исследования, обсуждены на: XVII International Congress of Clinical Chemistry and Laboratory Medicine (Firenze, Italy, 1999); VI конференции "Аналитика Сибири и Дальнего Востока" (Новосибирск, 2000); IY Съезде физиологов Сибири (Новосибирск, 2002); Второй научной конференции с международным участием, посвященной 80-летию со дня рождения профессора М.Г. Колпакова "Эндокринная регуляция физиологических функций в норме и патологии" (Новосибирск, 2002); Всероссийском симпозиуме "Хроматография и хроматографические приборы" (Москва, 2004); VII конференции "Аналитика Сибири и Дальнего Востока" (Новосибирск, 2004); Второй Всероссийской конференции "Компенсаторно-приспособительные процессы: фундаментальные, экологические и клинические аспекты" (Новосибирск, 2004); XIII Международном совещании и VI школе по эволюционной физиологии (Санкт-Петербург, 2006); 20 Съезде физиологического общества им. И.П.Павлова (Москва, 2007); YI Сибирском физиологическом съезде (Барнаул, 2008); Четвертой Всероссийской научно-практической конференции с международным участием "Фундаментальные аспекты компенсаторно-приспособительных процессов" (Новосибирск, 2009); II Всероссийской научно-практической конференции с международным участием "Вопросы патогенеза типовых патологических процессов" (Новосибирск, 2010); III Всероссийской научной конференции с международным участием "Вопросы патогенеза типовых патологических процессов" (Новосибирск, 2011); Пятой Всероссийской научно-практической конференции с международным участием "Фундаментальные аспекты компенсаторно-приспособительных процессов" (Новосибирск, 2011); VII Съезде физиологов Сибири (Красноярск, 2012), Шестой Всероссийской научно-практической конференции с международным участием "Фундаментальные аспекты компенсаторно-приспособительных процессов" (Новосибирск, 2013)

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 56 научных работ, из них 22 статьи в журналах, рекомендованных Высшей аттестационной комиссией Министерства образования и науки Российской Федерации для публикации результатов исследований, проведенных в рамках выполнения диссертационных работ.

Похожие диссертационные работы по специальности «Патологическая физиология», 14.03.03 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Патологическая физиология», Черкасова, Ольга Павловна

выводы

1. В функциональной системе поддержания концентрации кортикостерона в крови и тканях-мишенях полезным приспособительным результатом является концентрация кортикостерона в крови, акцептором результата действия - эффекты кортикостерона в тканях-мишенях, в частности, активность АПФ и ферментов переаминирования аминокислот, исполнительными механизмами - синтез кортикостерона в надпочечниках и его пререцепторный метаболизм в тканях ферментом 11Р-ГСД.

2. Изменения активности исполнительных механизмов функциональной системы имеют определенную специфику, зависящую от степени и выраженности нарушений углеводного обмена.

3. Начальный период развития гипоинсулинемии и гипергликемии при аллоксановом диабете сопровождается высоким уровнем в крови кортикостерона, что обусловлено активацией всех этапов синтеза кортикостероидов в надпочечниках; этот период характеризуется высокой активностью ферментов, индуцируемых кортикостероном: АПФ в легких и ферментов переаминирования аминокислот в печени.

4. При длительном развитии аллоксанового диабета содержание кортикостерона в надпочечниках и крови снижается, но увеличение активности первой изоформы 11 р-ГСД-1 в печени способствует локальному повышению содержания активного гормона в гепатоцитах, что обеспечивает сохранение его активирующего влияния на глюконеогенез.

5. Функциональная система поддержания концентрации кортикостерона в крови при гипергликемии характеризуется уменьшением в 2 раза числа корреляционных связей, а в структуре факторов, характеризующих состояние системы, наиболее значимым становится фактор, объединяющий показатели содержания глюкозы в крови и активности АПФ в легких, т.е. эффектов кортикостерона.

6. Гранулематозное воспаление, индуцированное введением диоксида кремния здоровым животным, оказывает выраженное влияние на синтез и пререцепторный метаболизм кортикостерона: в начальный период после индукции воспаления наблюдается увеличение синтеза кортикостерона и его метаболита в надпочечниках более чем в два раза; через две недели после введения диоксида кремния наблюдается ингибирование конечного этапа синтеза кортикостерона и уменьшение его образования из 11-дегидрокортикостерона в надпочечниках, при этом снижается активность 11Р-ГСД-П в почках и увеличивается активность 11(3-ГСД-1 в печени.

7. При гранулематозном воспалении с нормогликемией число корреляционных связей между изученными показателями снижено, но в меньшей степени, чем при аллоксановом диабете, а основные факторы функциональной системы содержат только показатели синтеза и циркуляции кортикостероидов.

8. Модулирующее влияние гранулематозного воспаления на адренокортикальную систему при аллоксановом диабете, проявляющееся уменьшением содержания кортикостерона в надпочечниках, снижением активности аминотрасфераз в печени и степени гипергликемии, реализуется только на отдаленных сроках воспаления, при этом восстанавливается стабильность функциональной системы, усиливается взаимозависимость ее параметров.

9. У крыс с наследственной индуцированной стрессом артериальной гипертензией и нарушениями углеводного обмена функциональная система характеризуется низкой активностью 11 (З-ГСД-1 в печени и высокой активностью ПР-ГСД-П в почках по сравнению с нормотензивными животными, что приводит к снижению величины отношения концентраций кортикостерона к 11 -дегидрокортикостерону в крови и снижению выраженности эффектов кортикостерона в тканях, включая низкую активность АПФ в крови.

10. При эмоциональном стрессе у крыс с наследственной индуцированной стрессом артериальной гипертензией одновременно активируются синтез кортикостерона в надпочечниках и локальное образование этого гормона в тканях ферментом 11 (З-ГСД-1, что может быть одним из механизмов патогенеза нарушений углеводного обмена у этих животных.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Черкасова, Ольга Павловна, 2013 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Альтшулер Б.Ю., Ройтман А.П., Долгов В.В. Клинико-диагностическое значение определения сывороточной активности

ангиотензинпревращающего фермента // Клиническая лабораторная диагностика. - 2001. - N 7. - С. 9-13.

Альтшулер Б.Ю., Ройтман А.П., Долгов В.В. Яровая Г.А., Нешкова Е.А., Федорова Т.А. Изменение активности ангиотензинпревращающего фермента у больных пневмониями и хроническими обструктивными заболеваниями легких // Клиническая лабораторная диагностика. - 2002. - N 1. - С. 10-15. Анохин П.К. Узловые вопросы теории функциональной системы. - М.: Наука, 1980.

Антонов А.Р., Хидирова Л.Д., Летягина В.В., Якобсон Г.С. Нарушения содержания альдостерона и инсулина при ишемическом повреждении миокарда в эксперименте // Успехи современного естествознания. - 2009. - N 9.-С. 189-190

Антонов Е.В., Морева Т.А., Черкасова О.П., Гилинский М.А., Маркель А.Л., Якобсон Г.С. Изучение секреторной активности коры надпочечника у гипертензивных крыс линии НИСАГ // Бюллетень СО РАМН. - 2010. - Т. 30, N4.-С. 68-75.

Ануфриенко Е.В. Черкасова О.П., Селятицкая В.Г. Кортикостероидный профиль сыворотки крови женщин с ожирением и нарушениями углеводного обмена // Бюллетень СО РАМН. - 2010. - Т. 30, № 5. - С. 137. Артюкова М.М. Исследование раздельных и сочетанных эффектов актовегина, инфезола и мексидола при моделировании нарушений углеводного и липидного обмена в эксперименте : автореф. дис. на соиск. учен. степ. канд. мед. наук: 14.00.25. - пос. Старая Купавна, 2007. - 21 с. Бабаджанова Г.Ю. Инсулинрезистентность и сахарный диабет как результат лечения глюкокортикостероидами // Терапевтический архив. - 2005.- N 3.- С. 93-96.

Байкова Л.А., Федоров В.И., Черкасова О.П. Анализ кортикостероидов плазмы крови методом микроколоночной жидкостной хроматографии // Лабораторное дело. - 1989. - N 5. - С. 57-60.

Балаболкин М.И., Клебанова Е.М., Креминская В.М. Возможна ли патогенетическая терапия сахарного диабета // Проблемы эндокринологии. -2008.-T.54,N5.-C. 50-56.

Балаболкин М.И., Клебанова Е.М., Креминская В.М. Новая классификация, критерии диагностики и компенсации сахарного диабета // Consilium Medicum. - 2000. - Т. 2, N 5. - С. 33-36.

Баранов В.Г., Соколоверова И.М., Гаспарян Э.Г. и др. Экспериментальный сахарный диабет. Роль в клинической диабетологии - Л.: Наука, 1983. - 240 с. Бирюкова Е.В., Гарбузова М.А. Эффективный и безопасный контроль гликемии с помощью инсулина Апидра - залог успешной профилактики сосудистых осложнений сахарного диабета // Сахарный диабет. - 2010. - N 3. - С. 72-77.

Великанова Л.И., Шафигуллина З.Р., Ворохобина Н.В., Сильницкий П.А., Бессонова Е.А. Диагностическое значение высокоэффективной жидкостной хроматографии кортикостероидов при заболеваниях гипофизарно-надпочечниковой системы // Проблемы эндокринологии. - 2005. - Т. 51, N 6. -С. 9-11.

Возианов А.Ф., Тронько Н.Д., Ефимов А.С., Пастер И.П. Использование стволовых клеток для лечения сахарного диабета (обзор литературы) // Журнал Академії медичних наук України. - 2006. - Т.12, N 2. - С. 269-281. Гомазков О.А. Функциональная биохимия регуляторных пептидов. - М.: Наука, 1993.- 159 с.

Гомазков О.А., Калинина Е.В. Ангиотензин-превращающий фермент: бинарная активность, ингибиторы и функциональная роль кининового звена // Успехи современной биологии. - 1997. - Т. 117, N 2. - С. 172-184. Гончаров Н.П., Колесникова Г.С. Кортикостероиды: метаболизм, механизм действия и клиническое применение. М. 2002. 320 с.

Гончаров Н.П., Колесникова Г.С. Параметры надпочечникового стероидогенеза у женщин репродуктивного возраста, страдающих ожирением // Проблемы эндокринологии. - 2008. Т.54, N 6. - С. 16-21. Горизонтов П.Д., Протасова Т.Н. Роль АКТГ и кортикостероидов в патологии (к проблеме стресса) - М.: Медицина, 1968. - 335 с. Григорьев Ю.В., Нероев В.В., Охоцимская Т.Д. Роль тканевого ангиотензинпревращающего фермента в развитии сердечно-сосудистых заболеваний // Российские медицинские вести. - 2005. - N 1. - С. 4-11. Гринштейн C.B., Кост O.A. Структурно-функциональные особенности мембранных белков // Успехи биологической химии. - 2001. - Т.41. - С. 77104.

Дедов И. И. Эндокринология: учебник: [для медицинских вузов] / И. И. Дедов, Г. А. Мельниченко, В. В. Фадеев. - 2-е изд., доп. и перераб. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2012. - 422 с.

Дедов И.И. Сахарный диабет: развитие технологий в диагностике, лечении и профилактике // Сахарный диабет. - 2010. - N 3. - С. 6-13. Дедов И.И., Шестакова М.В. Сахарный диабет: острые и хронические осложнения. - М.: ООО «Издательство «Медицинское информационное агенство», 2011. - 480 с.

Духанин A.C., Огурцов С.Н. Влияние гидрокортизона на активность ангиотензинпревращающего фермента в легких крыс // Проблемы эндокринологии. - 1991. - T.37,N 5. - С. 50-51.

Дыгай A.M., Клименко H.A. Воспаление и гемопоэз - Томск: Изд-во Том. унта, 1992.-276 с.

Елисеева Ю.Е. Ангиотензин-превращающий фермент, его физиологическая роль // Вопросы медицинской химии. - 2001. - Т.47, N 1. - С. 43-54. Елисеева Ю.Е. Структурно-функциональные особенности

ангиотензинпревращающего фермента / Биоорганическая химия. - 1998. -Т.24, N 4. -С. 262-270.

Елисеева Ю.Е., Кугаевская Е.В. Структура и физиологическое значение

доменов ангиотензин-превращающего фермента // Биомедицинская химия. -2009.-Т.55,N4.-С. 397-414.

Измеров Н.Ф., Кузьмина Л.П., Попкова A.M., Ханыкина О.В. Сосотояние протеазно-ингибиторной системы у больных сахарным диабетом 2-го типа в сочетании с хронической обструктивной болезнью легких // Вестник Российской АМН. - 2006. - N 3. - С. 15-18.

Карцова Л.А., Бессонова Е.А., Великанова Л.И., Павлова Е.Г.Изучение особенностей стероидогенеза больных с различными заболеваниями коры надпочечников методами обращенофазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии // Журнал аналитической химии. - 2004. - Т. 59, N 10. - С. 1081-1095.

Коваренко М.А., Руяткина Л.А., Петрищева М.С., Бодавели О.В.Лептин: физиологические и патологические аспекты действия // Вестник НГУ. Серия: Биология, клиническая медицина. - 2003. - Т.1, N 1. - С. 59-74. Ковельман И.Р., Точилкин А.И., Беляева Н.Ф., Городецкий В.Г., Княжев В.А., Ткаченко С.Б., Семенов Л.Л., Семенова Н.В..Современные подходы к фармакотерапии сахарного диабета 2 типа // Вопросы медицинской химии. -2002. - Т. 48, N 4. - С. 337-352.

Колесник Ю.М., Камышный A.M., Абрамов A.B., Ганчева О.В., Любомирская В.А. Множественные иммунорегуляторные нарушения у потомства крыс с экспериментальным гестационным диабетом // Проблемы эндокринологи. - 2010. - N 2. - С. 36-41.

Кологривова E.H., Кухарев Я. В., Шишкин Д. А., Стахеева М.Н., Заподовникови С.К. Анализ корреляционных связей показателей иммунограммы и адаптационного индекса у больных раком различной локализации и здоровых доноров // Сибирский онкологический журнал. -2005.-№2(14).-С. 30-33.

Колпаков М.Г. Механизмы кортикостероидной регуляции функций организма. - Новосибирск: Наука, 1978. - 199 с.

Комиссарова Н.В., Гомазков O.A.. Карпицкий В.В. Активность

ангиотензинпревращающего фермента в сыворотке крови и легочной ткани у крыс с наследственно обусловленной гипертонией // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 1983. - Т. 46, N 12. - С.30-32. Кузнецова Н.В., Пальчикова Н.А., Селятицкая В.Г., Шкурупий В.А. Реакция адренокортикальной системы на индукцию воспаления диоксидом кремния у крыс с аллоксановым диабетом // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2010. - Т. 149, N6.-0. 631-634.

Кузьмин О.Б., Пугаева М.О., Бучнева Н.В. Почечные механизмы нефрогенной артериальной гипертониии // Нефрология. - 2008. - Т.12, N 2. -С. 39-46.

Кураева Т.Л. Аналоги инсулина в достижении компенсации и улучшении качества жизни детей и подростков с сахарным диабетом 1 типа // Сахарный диабет. - 2010. - N 3. - С. 147-152.

Лавин Н. Эндокринология: пер. с англ. / под ред. Н. Лавина. - М.: Практика, 1999.- 1128 с.

Ланин Д.В. Анализ корегуляции иммунной и нейроэндокринной систем в условиях воздействия факторов риска // Анализ риска здоровью. - 2013. - N

1.-С. 73-80.

Ланин Д.В., Зайцева Н.В., Долгих О.В. Молекулярные основы действия и иммуномодулирующие эффекты глюкокортикоидных гормонов // Иммунология. - 2010. - N 6. - С. 334-337.

Мазурина Н.К. Нарушения гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы при сахарном диабете // Проблемы эндокринологии. - 2007. - Т.53, N

2. - С. 29-34.

Макарова О.П. Саперова М.А., Шкурупий В.А. Перекисное окисление липидов в печени и легких при 8Ю2 - гранулематозе // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2010. - Т. 149, N6.-0. 640-643. Маркель А.Л. Генетическая модель индуцированной стрессом артериальной гипертонии // Известия АН СССР: Серия биологических наук. - 1985. - N. 3. - С. 466-469.

Маркель A.JI., Дымшиц Г.М., Шмерлинг М.Д., Якобсон Г.С. Гены, стресс, гипертония // Бюллетень СО РАМН. - 2002. - N 2(104). - С. 35-40. Маянский Д. Н. Хроническое воспаление: монография / Д.Н. Маянский. - М. : Медицина, 1991.-272 с.

Меньшикова Е.Б., Зенков Н.К., Ланкин В.З., Бондарь И.А., Труфакин В.А. Окислительный стресс: Патологические состояния и заболевания -Новосибирск: Арта, 2008. - 248 с.

Мертвецов Н.П. Гормональная регуляция экспрессии генов - М.: Наука, 1986. - 206 с.

Новикова М.С., Потапова О.В., Шкурупий В.А. Цитоморфологическое исследование развития фибротических осложнений при хроническом Si02-гранулематозе в печени под воздействием радона // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2008. - Т. 146, N 9. - С. 250-253. Пальчикова H.A., Кузьминова О.И.,Уткина Н.В., Селятицкая В.Г., Шкурупий В.А. Содержание стероидных гормонов в крови и надпочечниках мышей в динамике БЦЖ и Si02-индуцированного гранулематозного воспаления // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2008, прил. N 1. - С. 20-22.

Пальчикова H.A., Лутов Ю.В., Обухова Л.А., Селятицкая В.Г. Особенности течения экспериментального сахарного диабета при введении в рацион животных природного инулинового комплекса // Бюллетень СО РАМН. -2007.-N 2.-С. 114-118.

Панин Л.Е. Биохимические механизмы стресса. - Новосибирск: Наука, 1983. -233 с.

Панин Л.Е. Транспотные формы стероидных гормонов в крови, их связь с развитием некоторых физиологических и патологических процессов // Бюллетень СО РАМН. -2012. -T.32,N 1. - С. 31-37.

Панин Л.Е. Энергетические аспекты адаптации. - Л.: Медицина, 1978. - 192 с. Панин Л.Е., Поляков Л.М. Изучение взаимоотношений между глюкокортикоидной функцией коры надпочечников и липопротеинами

сыворотки крови // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -1976.-N 10.-С. 1202-1204.

Панков. Ю.А. Жировая ткань как эндокринный орган, регулирующий рост, половое созревание и другие физиологические функции // Биохимия. - 1999. - Т. 64, вып. 6. - С. 725-734.

Пивоварова E.H., Душкин М.И., Перепечаева M.JL, Кобзев В.Ф., Труфакин В. А., Маркель A.JI. Все признаки метаболического синдрома у гипертензивной линии крыс НИСАГ ассоциируются с повышенной активностью факторов транскрипции PPAR, LXR, PXR И CAR в печени // Биомедицинская Химия. - 2011. - Т. 57, вып. 4. - С. 435-445. Приставка A.A., Надеев А.П., Травин М.А., Шкурупий В.А. Терапевтическая эффективность амфотерицина В с диальдегиддекстраном при поражении почек у мышей разных линий с системным кандидозом // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2008, прил. N 1. - С. 76-79. Протасова C.B. Особенности обмена гликозаминогликанов в коже и печени крыс с различной устойчивостью к стрессу: автореф. дис. на соиск. учен, степ. канд. биол. наук: 03.01.04. - Казань, 2010. - 23 с.

Пшенникова М.Г. Феномен стресса. Эмоциональный стресс и его роль в патологии. // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. -2000.-N 2.-С. 24-31.

Пыцкий В.И. Кортикостероиды и аллергические процессы. - М. Медицина, 1976.- 174 с.

Резников А.Г. Методы определения гормонов. - Киев: Наукова думка, 1980. -400 с.

Розен В.Б. Основы эндокринологии. - 3-е изд., перераб. и доп. - М.: Изд-во МГУ, 1994.-384 с.

Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме: Пер. с англ. - М.: Медгиз, 1960.-254 с.

Селятицкая В.Г. Глюкокортикоидные гормоны: от процессов адаптации к экологическим факторам Севера до метаболических нарушений при диабете

// Бюллетень СО РАМН. - 2012. - Т.32, N 1. - С. 13-20.

Селятицкая В.Г., Кузьминова О.И., Одинцов C.B. Динамика формирования инсулинорезистентности у экспериментальных животных при длительном введении глюкокортикоидных гормонов // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2002. -N 4. - С. 394-396.

Селятицкая В.Г., Обухова JI.A. Эндокринно-лимфоидные отношения в динамике адаптивных процессов. - Новосибирск: СО РАМН, 2001. - 169 с. Селятицкая В.Г., Пальчикова Н.П., Шкурупий В.А. Функциональное состояние коры надпочечников у мышей оппозитных линий в динамике кандидоза // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2005. -Т. 140,N4.-С. 179-181.

Сергеев П.В. Стероидные гормоны. - М.: Наука, 1984. - 240 с.

Соффер Л. Дорфман Р., Гебрилав Л. Надпочечниковые железы человека - М.:

Медицина, 1966. - 499 с.

Судаков К.В. Основы физиологии функциональных систем. / Под. ред. К.В. Судакова. - М.:Медицина, 1983. - 272 с.

Судаков К.В. Системная интеграция функций человека: новые подходы к диагностике и коррекции стрессорных состояний // Вестник Российской Академии Медицинских наук. - 1996. -N 6. - С. 15-25.

Теппермен Дж. Теппермен X. Физиология обмена веществ и эндокринной системы. Вводный курс; пер. с англ. - М.: Мир, 1989. - 656 с. Титов В.Н. Роль макрофагов в становлении воспаления, действие интерлейкина-1, интерлейкина-6 и активность гипоталамо-гипофизарной системы // Клиническая лабораторная диагностика. - 2003. - N 12. - С. 3-10. Титова Е.А. Сахарный диабет и болезни органов дыхания // Пульмонология. -2003.-N3.-С. 101-104.

Трошина Е.А., Бельцевич Д.Г., Молашенко Н.В. Первичный гиперальдостеронизм // Проблемы эндокринологии. - 2008. - Т.54, N 6. - С. 43-52.

Ушкалова Е.А. Комментарии к результатам исследования ADOPT //

Проблемы эндокринологии. - 2008. - Т. 54, N 3. - С. 7-11. Федоров В.И. Классификация управляющих систем организма, дополнение к теории функциональной системы П.К.Анохина // Успехи современной биологии. -2000. - Т. 120, № 1.-С. 3-11

Федоров В.И. Принципы организации и функционирования живых систем: учеб. пособие. - Новосибирск: Изд-во НГТУ, 2003. - 143 С. Федоров В.П., Черкасова О.П. Влияние стабильного аналога ацетилхолина на активность ангиотензинпревращающего фермента легкого, почки и плазмы артериальной крови у крыс с повышенной симпатической // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. - 1997. - Т.83, N 10. - С. 76-83. Федоров В.И., Черкасова О.П. Недостаточность и дисбаланс кортикоидной системы как факторы риска бесплодия и дисфункции яичников // Клиническая лабораторная диагностика. - 2000. - N 6. - С. 7-10. Федосеева JI.A., Рязанова М.А., Антонов Е.В., Дымшиц Г.М., Маркель A.JI. Renin-angiotensin system gene expression in the kidney and in the heart in hypertensive ISIAH rats // Биомедицинская химия. - 2011. - Т. 57, N 4. - C.410-419.

Хайдарлиу С.Х. Функциональная биохимия адаптации. - Кишинев: Штиинца, 1984.-272 с.

Хворостова Ю.В., Калашникова Е.В., Федосеева JI.A., Черкасова О.П., Дымшиц Г.М., Маркель A.J1. Особенности экспрессии гена глюкокортикоидного рецептора у гипертензивных крыс линии НИСАГ // Российский физиологический журнал им. И.М.Сеченова. - 2003. - Т. 89, № 12.-С. 1523-1528.

Черкасова О.П., Федоров В.И. Разработка метода определения активности ренина плазмы крови с помощью нового флюоресцентного субстрата ренина // Клиническая лабораторная диагностика. - 2001. - N 5. - С. 33-35. Чернышева М.П. Гормоны животных. Введение в физиологическую эндокринологию. - СПб.: Глагол, 1995. - 295 с.

Шварц В.Я. Новый принцип лечения сахарного диабета 2-го типа путем

стимуляции глюкозурии // Проблемы эндокринологии. - 2012. - № 4. - С. 5458.

Шварц Я.Ш., Зубахин A.A., Устинов A.C. Душкин М.И., Рагино Ю.И. Формирование 8Ю2-индуцированных гранулем у мышей разных линий // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2000. - Т.129, N 1. -С. 20-24.

Шестакова М.В. Ренин-ангиотензин-альдостероновая система: эволюция

представлений от открытия ренина до наших дней. Перспективы ее

терапевтической блокады // Терапевтический архив. - 2011. - N 4. - С. 71-77.

Шестакова М.В. Роль тканевой ренин-ангиотензин-альдостероновой системы

в развитии метаболического синдрома, сахарного диабета и его сосудистых

осложнений // Сахарный диабет. - 2010. - N 3. - С. 14-19.

Шишкова В.Н. Диабетон MB в лечении сахарного диабета 2-го типа //

Проблемы эндокринологию - 2008. - Т. 54, N 3. - С. 3-7.

Шкурупий В.А. Лизосомотропизм - проблемы клеточной физиологии и

медицины / Шкурупий В.А., Курунов Ю.Н., Яковченко H.H. - Новосибирск:

НГМА, 1999. - 290 с.

Шкурупий В.А. Туберкулезный гранулематоз. Цитофизиология и адресная терапия. - М.: Издательство РАМН, 2007. - 536 с.

Шкурупий В. А., Селятицкая В.Г., Пальчикова H.A., Курилин В.В., Цырендоржиев Д.Д., Травин М.А., Надеев А.П. Структурные изменения в печени, содержание стероидных гормонов в крови и надпочечниках мышей с системным кандидозом при их лечении композицией амфотерицина В с диальдегиддекстраном // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2008, прил. N 1. - С. 16-19.

Шмерлинг М.Д., Антонов А.Р., Коростышевская И.М.,Маркель A.JL, Максимов В.Ф., Филюшина Е.Е., Якобсон Г.С. Состояние миокарда у крыс новой гипертензивной линии // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 1996. - Т. 122, N 9. - С. 271-273.

Шорин Ю.П., Маркель A.JL, Селятицкая В.Г., Пальчикова H.A. Эндокринно-

метаболические отношения у крыс с генетически обусловленной артериальной гипертензией // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 1990. - Т. 109, N 6. - С. 575-576.

Юдаев Н.А., Афиногенова С.А., Булатов А.А. и др. Биохимия гормонов и гормональной регуляции - М.: Наука, 1976. - 380 с.

Abbott A.N., Welsh K.J., Hwang, S.-A., Ploszaj P., Choudhury Т., Boyd S., Blackburn M.R., Hunter Jr.R.L., Actor J.K. IL-6 Mediates 11J3HSD Type 2 to Effect Progression of the Mycobacterial Cord Factor Trehalose 6,6'-Dimycolate-Induced Granulomatous Response // Neuroimmunomodulation. - 2011. - V. 18, N 4.-P. 212-225.

Abbott A.N., Guidry T.V., Welsh K.J., Thomas A.M., Kling M.A., Hunter R.L., Actor J.K. 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenases are regulated during the pulmonary granulomatous response to the mycobacterial glycolipid trehalose-6,6'-dimycolate //Neuroimmunomodulation. - 2009. - V. 16, N 3. - P. 147-154. Abou Samra A.B., Dechaud H., Estour В., Chalendar D., Fevre-Montange M., Pugeat M., Tourniaire J. Beta-lipotropin and Cortisol responses to an intravenous infusion dexamethasone suppression test in Cushing's syndrome and obesity // The Journal of clinical endocrinology and metabolism. - 1985. - V.61, N 1. - P. 116119.

Ackermann A., Fernández-Alfonso M.S., Sánchez de Rojas R, Ortega Т., Paul M., González С. Modulation of angiotensin-converting enzyme by nitric oxide // British Journal of Pharmacology. - 1998. - V. 124. - P. 291-298. Adler G.K., Chen R., Menachery A.I., Braley L.M., Williams G.H. Sodium restriction increases aldosterone biosynthesis by increasing late pathway, but not early pathway, messenger ribonucleic acid levels and enzyme activity in normotensive rats // Endocrinology. - 1993. - V.133, N 5. - P. 2235-2240. Agarwal A.K. Expression of HSD11K (NAD dependent 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenase) promoter constructs in renal cell lines // Endocrine Research. -2000. - V.26, N 2. - P. 289-302.

Agarwal A.K., Mune Т., Monder C., White P.C. Mutations in putative

glycosylation sites of rat 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase affect enzymatic activity // Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Protein Structure and Molecular Enzymology. - 1995. - V.1248, N 1. - P. 70-74.

Agarwal A.K., Mune T., Monder C., White P.C. NAD(+)-dependent isoform of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase. Cloning and characterization of cDNA from sheep kidney // Journal of Biological Chemistry. - 1994. - V. 269, N 42. - P. 25959-25962.

Agarwal A.K., Tusie-Luna M.T., Monder C., White P.C. Expression of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase using recombinant vaccinia virus // Molecular Endocrinology. - 1990. - V.l, N 12. - P. 1827-1832.

Aguilera G. Factors controlling steroid biosynthesis in the zona glomerulosa of the adrenal // The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. - 1993. - V. 45, N 1-3. - P. 147-151.

Ainscough J.F., Drinkhill M.J., Sedo A., Turner N.A., Brooke D.A., Balmforth A.J., Ball S.G. Angiotensin II type-1 receptor activation in the adult heart causes blood pressure-independent hypertrophy and cardiac dysfunction // Cardiovascular Research. - 2009. - V.81, N 3. - P. 592-600.

Alberti L., Girola A., Gilardini L., Conti A., Cattaldo S., Micheletto G., Invitti C. Type 2 diabetes and metabolic syndrome are associated with increased expression of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase 1 in obese subjects // International Journal of Obesity (Lond). - 2007. - V. 31, N 12. - P. 1826-1831. Albiston A.L., McDowall S. G. , Matsacos D., Sim P., Clune E., Mustafa T., Lee J., Mendelsohn F. A. O., Simpson R.J., Connolly L.M., Chai S.Y. Evidence that the angiotensin IV (AT(4)) receptor is the enzyme insulin-regulated aminopeptidase // Journal of Biological Chemistry. - 2001. - V. 276, N 52. - P. 48623-48626.

Alfaidy N., Blot-Chabaud M., Robic D., Kenouch S., Bourbouze R., Bonvalet J.P., Farman N. Characteristics and regulation of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase of proximal and distal nephron // Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects. - 1995. - V.1243, N 3. - P. 461-468.

Allen A.M., Zhuo J., Mendelsohn F.A. Localisation and function of angiotensin ATI receptors // American Journal of Hypertension. - 2000. - V.13, N 1, Pt.2. - P. 31S-38S.

al-Saadi N., Diederich S., Oelkers W. A very high dose dexamethasone suppression test for differential diagnosis of Cushing's syndrome // Clinical Endocrinology (Oxf). - 1998. - V.48, N 1. - P. 45-51.

Altuna M.E., Lelli S.M., San Martin de Viale L.C., Damasco M.C. Effect of stress on hepatic 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase activity and its influence on carbohydrate metabolism // Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. -2006. - V. 84, N 10. - P. 977-984.

Anagnostis P., Athyros V.G., Tziomalos K., Karagiannis A., Mikhailidis D.P. The pathogenetic role of Cortisol in the metabolic syndrome: A hypothesis // Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. - 2009. - V. 94, N 8. - P. 2692-2701. Anderson S. Physiologic actions and molecular expression of the renin-angiotensin system in the diabetic rat // Mineral and Electrolyte Metabolism. - 1998. - V. 24, N 6. .p. 406-411.

Anderson S. Role of local and systemic angiotensin in diabetic renal disease //

Kidney International, Supplement. - 1997. - V. 63. - P. S107-S110.

Anderson S., Jung F.F., Ingelfinger J.R. Renal renin-angiotensin system in

diabetes. Functional, immunohistochemical and molecular biological correlations //

American Journal of Physiology - Renal Physiology. - 1993. - V. 265, N 4. - P.

F477-F486.

Andrew R., Westerbacka J., Wahren J., Yki-Jarvinen H., Walker B.R. The contribution of visceral adipose tissue to splanchnic Cortisol production in healthy humans // Diabetes. - 2005. - V. 54. - P. 1364-1370.

Aoki K., Homma M., HiranoT.,Oka K., Satoh S., Mukasa K., Ito S., Sekihara H. MRNA and enzyme activity of hepatic 11 b-hydroxysteroiddehydrogenase type 1 are elevated in C57BL/Ks J-db/db mice // Life Sciences. - 2001. - V.69, N 21. - P. 2543-2549.

Apostolova G., Roberto A. S. Schweizer R.A.S., Balazs Z., Kostadinova R.M.,

Odermattet A. Dehydroepiandrosterone inhibits the amplification of glucocorticoid action in adipose tissue // American Journal of Physiology - Endocrinology and Metabolism. - 2005. V. 288. - P. E957-E964.

Arakawa K. Serine protease angiotensin II systems // Journal of Hypertension. -1996. - V.14, N 5 (Suppl.). - P. S3-S7.

Arnaldi G., Angeli A., Atkinson A.B., Bertagna X., Cavagnini F., Chrousos G.P., Fava G.A., Findling J.W., Gaillard R.C., Grossman A.B., Kola B., Lacroix A., Mancini T., Mantero F., Newell-Price J., Nieman L.K., Sonino N., Vance M.L., Giustina A., Boscaro M. Diagnosis and complications of Cushing's syndrome: a consensus statement // The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. -2003. - V. 88, N 12. - P. 5593-602.

Arukwe A. Steroidogenic acute regulatory (StAR) protein and cholesterol side-chain cleavage (P450scc)-regulated steroidogenesis as an organ-specific molecular and cellular target for endocrine disrupting chemicals in fish // Cell Biology and Toxicology. - 2008. - V.24, N 6. - P. 527-540.

Atanasov A.G., Nashev L.G., Gelman L., Legeza B., Sack R., Portmann R., Odermatt A. Direct protein-protein interaction of 11 |3-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 and hexose-6-phosphate dehydrogenase in the endoplasmic reticulum lumen // Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Cell Research. - 2008. - V. 1783, N 8. - P. 1536-1543.

Baba K., Doi Y., Yamaguchi T., Yano K., Hashiba K. Production of active and inactive renin by adrenal explant cultures and the existence of a prorenin activating enzyme in the adrenal gland // Japanese Heart Journal. - 1992. - V. 33, N 4. - P. 465-476.

Barthel A., Schmoll D., Novel concepts in insulin regulation of hepatic gluconeogenesis // Am J Physiol Endocrinol Metab. - 2003. - V. 285. - P. E685-E692.

Balachandran A., Guan H., Sellan M., Stan van Uum, Yang K. Insulin and dexamethasone dynamically regulate adipocyte 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 // Endocrinology. - 2008. - V.149, N 8. - P. 4069-4079.

Balyasnikova I.V., Karran E.H., Albrecht R.F., Danilov S.M. Epitope-specific antibody-induced cleavage of angiotensin-converting enzyme from the cell surface // Biochemical Journal. - 2002. - V.362, N 3. - P.585-595.

Banhegyi G., Benedetti A., Fulceri R., Senesi S. Cooperativity between 11(3-Hydroxysteroid Dehydrogenase Type 1 and Hexose-6-phosphate Dehydrogenase in the Lumen of the Endoplasmic Reticulum // The Journal of Biological Chemistry. - 2004. - V. 279. - P. 27017-27021.

Barreto-Chaves M.L., Aneas I., Krieger J.E. Glucocorticoid regulation of angiotensin-converting enzyme in primary culture of adult cardiac fibroblasts // American Journal of Physiology - Regulatory Integrative and Comparative Physiology. - 2001. - V.280, N 1. - P. R25-R32.

Bassett M.H., White P.C., Rainey W.E. The regulation of aldosterone synthase expression // Molecular and Cellular Endocrinology. - 2004. - V.217, N 1-2. - P. 67-74.

Basu R., Singh R.J., Basu A., Chittilapilly E.G., Johnson C.M., Toffolo G., Cobelli C., Rizza R.A. Splanchnic Cortisol production occurs in humans: evidence for conversion of cortisone to Cortisol via the 11 -beta hydroxysteroid dehydrogenase (1 lbeta-hsd) type 1 pathway // Diabetes. - 2004. - V. 53, N 8. - P. 2051-2059. Basu R., Edgerton D.S., Singh R.J., Cherrington A., Rizza R.A. Splanchnic Cortisol Production in Dogs Occurs Primarily in the Liver. Evidence for Substantial Hepatic Specific 11 |3-Hydroxysteroid Dehydrogenase Type 1 Activity // Diabetes. - 2006. -V. 55. - P. 3013-3019.

Basu R., Basu A., Grudzien M., Jung P., Jacobson P., Johnson M., Singh R., Sarr M., Rizza R.A. Liver Is the Site of Splanchnic Cortisol Production in Obese Nondiabetic Humans // Diabetes. - 2009. - V. 58. - P. 39-45. Battiprolu P.K., Gillette T.G., Wang Z.V., Lavandero S., Hill J.A. Diabetic cardiomyopathy: mechanisms and therapeutic targets // Drug Discovery Today: Disease Mechanisms. - 2010. - V. 7, N 2. - P. el35-el43.

Battiprolu PK, Hojayev B, Jiang N, Wang Z.V., Luo X., Iglewski M., Shelton J.M., Gerard R.D., Rothermel B.A., Gillette T.A., Lavandero S., Hill J.A.

Metabolic stress-induced activation of FoxOl triggers diabetic cardiomyopathy in mice // The Journal of Clinical Investigation. - 2012. - V. 122. - P. 1109-1118. Beck I.M.E., Berghe W.V., Vermeulen L., Yamamoto K.R., Haegeman G., De Bosscherar K. Crosstalk in inflammation: the interplay of glucocorticoid receptor-based mechanisms and kinases and phosphatases // Endocrine Reviews. - 2009. -V. 30,N7.-P. 830-882.

Bell J.B., Gould R.P., Hyatt P.J., Tait J.F., Tait S.A. Properties of rat adrenal zona reticularis cells: production and stimulation of certain steroids // Journal of Endocrinology. - 1979. - V.83, N 3. - P. 435-447.

Bertram C., Trowern A.R., Copin N., Jackson A.A., Whorwood C.B. The maternal diet during pregnancy programs altered expression of the glucocorticoid receptor and type 2 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenase: potential molecular mechanisms underlying the programming of hypertension in utero // Endocrinology. - 2001. -V.142,N7. -P. 2841-2853.

Binevski P.V., Sizova E.A., Pozdnev V.F., Kost O.A. Evidence for the negative cooperativity of the two active sites within bovine somatic angiotensin-converting enzyme // FEBS Letters. - 2003. - V. 550, N 1-3. - P. 84-88. Blackford J.A. Jr., Jones W., Dey R.D., Castranova V. Comparison of inducible nitric oxide synthase gene expression and lung inflammation following intratracheal instillation of silica, coal, carbonyl iron, or titanium dioxide in rats // Journal of Toxicology and Environmental Health. - 1997. - V. 51, N 3. - P. 203218.

Blouin K., Nadeau M., Mailloux J., Daris M., Lebel S., Luu-The V., Tchernof A. Pathways of adipose tissue androgen metabolism in women: depot differences and modulation by adipogenesis // American Journal of Physiology - Endocrinology and Metabolism. - 2009. - V.296, N 2. - P. 244-255.

Boddi M., Poggesi L., Coppo M., Zarone N.,Sacchi S., Tania C, Serneri G.G.N. Human vascular renin-angiotensin system and its functional changes in relation to different sodium intakes // Hypertension. - 1998. - V.31, N 3. - P. 836-842. Bornstein S.R., Uhlmann K., Haidan A., Ehrhart-Bornstein M., Scherbaum WA.

175

Evidence for a novel peripheral action of leptin as a metabolic signal to the adrenal gland: leptin inhibits Cortisol release directly // Diabetes. - 1997. - V.46, N 7. - P. 1235-1238.

Bostanjoglo M., Reeves W.B., Reilly R.F.,Velazquez H.,Robertson N., Litwack G., Morsing P., Dorup J., Bachmann S., Ellison D.H. llBeta-hydroxysteroiddehydrogenase, mineralocorticoid receptor,and thiazide-sensitive Na-Cl cotransporter expression by distal tubules // Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 1998. - V. 9, N 8. - P. 1347-1358.

Bougarne N., Paumelle R., Caron S., Hennuyer N., Mansouri R., Gervois P., Staels B., Haegeman G., De Bosschera K. PPARa blocks glucocorticoid receptor a-mediated trans activation but cooperates with the activated glucocorticoid receptor a for transrepression on NF-kB // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2009. - V. 106, N 18. - P. 7397-7402. Brem A.S., Bina R.B., King T., Morris D.J. Bidirectional activity of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in vascular smooth muscle cells // Steroids. - 1995. - V.60,N5.-P. 406-410.

Brem A.S., Bina R.B., King T., Morris D.J. Localization of 11 beta-OH steroid dehydrogenase isoforms in aortic endothelial cells // Hypertension. - 1998. - V.31, N 1, Pt.2. - P. 459-462.

Brereton P.S., Driel R.R., Suhaimi F.B.H., Koyama K., Dilley R., Krozowski Z. Light and electron microscopy localization of the. 1 lfi-hydroxysteroid dehydrogenase type I enzyme in the rat // Endocrinology. - 2001. - V. 142, N 4. -P. 1644-1651.

Breuner C.W., Orchinik M. Plasma binding proteins as mediators of corticosteroid action in vertebrates // Journal of Endocrinology. - 2002. - V. 175, N 1. - P. 99112.

Shapiro B.A., Olala L., Arun S.N., Parker P.M., George M.V., Bollag W.B. Angiotensin Il-activated protein kinase D mediates acute aldosterone secretion // Molecular and Cellular Endocrinology. - 2010. - V. 317, N 1-2. - P. 99-105. Brice E.A.W., Friedlander W., Baterman E.D., Kirsch R.E. Serum angiotensin-

converting enzyme activity, concentration, and specific activity in granulomatous interstitial lung disease, tuberculosis, and CORD // CHEST. - 1995. - V. 107, N 3. -P. 706-710.

Briet M., Schiffrin E.L. Aldosterone: effects on the kidney and cardiovascular system //Nature Reviews Nephrology. - 2010. - V. 6, N 5. - P. 261-73. Brown R.S., Munday D. E., Sawicka V.M., Wagner J. C. Angiotensin converting enzyme in the serum of rats with experimental silicosis // British Journal of Experimental Pathology. - 1983. - V. 64, N 3. - P. 286-292.

Bujalska I.J., Kumar S., Hewison M., Stewart P.M. Differentiation of adipose stromal cells: the roles of glucocorticoids and 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase //Endocrinology. - 1999. - V.140,N7. - P. 3188-3196.

Bujalska I.J., Walker E.A., Hewison M., Stewart P.M. A switch in dehydrogenase

to reductase activity of 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 upon

differentiation of human omental adipose stromal cells // Journal of Clinical

Endocrinology and Metabolism. - 2002. - V. 87, N 3. - P. 1205-1210.

Burns C.J., Persaud S.J., Jones P. M. Stem cell therapy for diabetes: do we need to

make beta cells // Journal of Endocrinology. - 2004. - V. 183, N 3. - P. 437-443.

Burns K.D. Angiotensin II and its receptors in the diabetic kidney // American

Journal of Kidney Diseases. - 2000. - V.36, N 3. - P. 449-467.

Burton J., Quinn T. The amino-acid residues on the C-terminal side of the cleavage

site of angiotensinogen influence the species specificity of reaction with renin //

Biochimica et Biophysica Acta. - 1988. - V.952, N 1. - P. 8-12.

Burton P.J., Waddell B.J. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase in the rat

placenta: developmental changes and the effects of altered glucocorticoid exposure

//Journal of Endocrinology. - 1994. - V. 143, N 3. - P. 505-513.

Cameron O.G., Kronfol Z., Greden J.F., Garroll B.J. Hypothalamic-pituitary-

adrenocortical activity in patients with diabetes mellitus // Archives of General

Psychiatry. - 1984. - V .41, N 11. - P. 1090-1095.

Campbell D.J., Habener J.F. Hybridization in situ studies of angiotensinogen gene expression in rat adrenal and lung // Endocrinology. - 1989. - V. 124, N 1. - P. 218177

Carey R.M., Siragy H.M. Newly Recognized Components of the Renin-Angiotensin System: Potential Roles in Cardiovascular and Renal Regulation // Endocrine Reviews. - 2003. - V.24, N 3. - P. 261-271.

Carey R.M., Wang Z.Q., Siragy H.M. Update: role of the angiotensin type-2 (AT(2)) receptor in blood pressure regulation // Current Hypertension Reports. -2000.-V. 2,N2.-P. 198-201.

Cascieri M.A., Bull H.G., Mumford R.A., Patchett A.A., Thornberry N.A., Liang T. Carboxyl-terminal tripeptidyl hydrolysis of substance P by purified rabbit lung angiotensin-converting enzyme and the potentiation of substance P activity in vivo by captopril and MK-422 // Molecular Pharmacology. - 1984. - V. 25, N 2. - P. 287-93.

Castranova V. Signaling Pathways Controlling The Production Of Inflammatory Mediators in Response To Crystalline Silica Exposure: Role Of Reactive Oxygen/Nitrogen Species // Free Radical Biology and Medicine. - 2004. - V. 37, Issue 7.-P. 916-925.

Chan O., Chan S., Inouye K.,Vranic M., Matthews S.G. Molecular regulation of hypothalamo-pituitary-adrenocortical axis in streptozotocin-induced diabetes: effects of insulin treatment // Endocrinology. - 2001. - V. 142, N 11. - P. 48724879.

Chan O., Inouye K., Akirav E.M., Park E.K., Riddell M.C., Matthews S.G., Vranic M. Hyperglycemia does not increase basal hypothalamo-pituitary-adrenal (HPA) activity in diabetes, but it does impair the HPA response to insulin-induced hypoglycemia // American Journal of Physiology - Regulatory Integrative and Comparative Physiology. - 2005. - V. 289, N 1. - P. R235-R246. Chan O., Inouye K., Riddell M.C., Vranic M., Matthews S.G.Diabetes and the hypothalamic-pituitary-adrenal (HPA) axis // Minerva Endocrinología. - 2003. - V. 28, N2. - P. 87-102.

Chan O., Inouye K., Vranic M., Matthews S.G. Hyperactivation of the hypothalamic-pituitary-adrenal (HPA) axis in STZ-diabetes is associated with

reduced stress responsiveness and decreased pituitary and adrenal sensitivity // Endocrinology. - 2002. - V.143, N 5. - P. 1761-1768.

Chang T.Y., Chang C.C., Ohgami N., Yamauchi Y. Cholesterol sensing, trafficking, and esterification // Annual Review of Cell and Developmental Biology. - 2006. - V.22. - P. 129-157.

Chapman K., Coutinho A. , Gray M., Gilmour J.S., Savill J.S., Seckl J.R. Local amplification of glucocorticoids by 11 -hydroxysteroid dehydrogenase type 1 and its role in the inflammatory response. Neuroendocrine and immune crosstalk // Annals of the New York Academy of Sciences. - 2006. - V.1088. - P. 265-273. Chapman K.E., Coutinho A.E., Gray M., Gilmour J.S., Savill J.S., Seckl J.R.The role and regulation of 11 ß-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 in the inflammatory response // Molecular and Cellular Endocrinology. - 2009. - V.301, N 1-2.-P. 123-131.

Chapman K., Holmes M., Seckl J. 11 ß-Hydroxysteroid Dehydrogenases: Intracellular Gate-Keepers of Tissue Glucocorticoid Action // Physiological Reviews. - 2013. - V. 93, N 3. - P. 1139-1206.

Chattopadhyay S., Karan G., Sen I., Sen G.C. A small region in the Angiotensin-Converting Enzyme distal ectodomain is required for cleavage-secretion of the protein at the plasma membrane // Biochemistry. - 2008. - V. 47, N 32. - P. 83358341.

Chawla T., Sharma D., Singh A. Role of the renin angiotensin system in diabetic nephropathy // World Journal of Diabetes. - 2010. - V.l, N 5. - P. 141-145. Cherkasova O.P. Activity of 11 b-Hydroxysteroid Dehydrogenase of Rat Kidney and Liver in Inherited Stress-Induced Arterial Hypertension // Biochemistry (Moscow). - 2007. - Vol. 1, № 2. - P. 172-175.

Chrousos G.P. Stress and disorders of the stress system // Nature Reviews Endocrinology. - 2009. - V. 5, N 7. - P. 374-381.

Chrousos G.P., Kino T. Intracellular glucocorticoid signaling: A formerly simple system turns stochastic // Science's STKE . - 2005. - Vol. 2005, N 304. - P. pe48. Chubb A.J., Schwager S.L., van der Merwe E., Ehlers M.R., Sturrock E.D.

Deletion of the cytoplasmic domain increases basal shedding of angiotensin-converting enzyme // Biochemical and Biophysical Research Communications. -2004. - V. 314, N 4. - P. 971-975.

Chung C.C., Shimmin L., Natarajan S., Hanis C.L., Boerwinkle E., Hixson J.E. Glucocorticoid receptor gene variant in the 3' untranslated region is associated with multiple measures of blood pressure // Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. - 2009. - V.94, N 1. - P. 268-276.

Cnop M., Foufelle F., Velloso L.A. Endoplasmic reticulum stress, obesity and diabetes // Trends in Molecular Medicine. - 2012. - V. 18, N 1. - P. 59-68. Compagnone N.A., Bulfone A., Rubenstein J.L., Mellon S.H.Expression of the steroidogenic enzyme P450scc in the central and peripheral nervous systems during rodent embryogenesis // Endocrinology. - 1995. - V.136, N 6. - P. 26892696.

Cooper M.S., Stewart P.M. 11 (3-Hydroxysteroid Dehydrogenase Type 1 and Its Role in the Hypothalamus-Pituitary-Adrenal Axis, Metabolic Syndrome, and Inflammation // Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. - 2009. - V. 94,N 12.-P. 4645-4654.

Cooper M.S., Stewart P.M. Adrenal insufficiency in critical illness // Journal of Intensive Care Medicine. - 2007. - V. 22, N 6. - P. 348-362. Corvol P., Williams T. A., Soubrier F. Peptidyl dipeptidase A: angiotensin I-converting enzyme // Methods in Enzymology. - 1995. - V.248. - P. 283-305. Corvol P., Jeunemaitre X. Molecular genetics of human hypertension: role of angiotensinogen // Endocrine Reviews. - 1997. - V.18, N 5. - P.662-677. Cottrell E.C., Seckl J.R. Prenatal stress, glucocorticoids and the programming of adult disease // Frontiers in Behavioral Neuroscience. - 2009. - V.3. - Art. 19 (1-9). Coutinho A.E., Chapman K.E. The anti-inflammatory and immunosuppressive effects of glucocorticoids, recent developments and mechanistic insights // Molecular and Cellular Endocrinology. - 2011. - V. 335, N 1. - P. 2-13. Coutinho A.E., Gray M., Brownstein D.G., Salter D.M., Sawatzky D.A., Clay S., Gilmour J.S., Seckl J.R., Savill J.S., Chapman K.E. 11 (3-Hydroxysteroid

dehydrogenase type 1, but not type 2, deficiency worsens acute inflammation and experimental arthritis in mice // Endocrinology. - 2012. - V. 153, N 1. - P. 234-240. Cox L.A. An exposure-response threshold for lung diseases and lung cancer caused by crystalline silica//Risk Analysis. -2011. -V. 31, N 10. - P. 1543-1560. Cunha TM, Verri WA Jr, Fukada SY, Guerrero AT, Santodomingo-Garzón T, Poole S, Parada CA, Ferreira SH, Cunha FQ. TNF-alpha and IL-lbeta mediate inflammatory hypernociception in mice triggered by B1 but not B2 kinin receptor // European Journal of Pharmacology. - 2007. - V. 573, N 1-3. - P. 221-229. Danilov S.M., Kalinin S. , Chen Z. , Vinokour E.I., Nesterovitch A.B., Gribouval O., Gubler M.C., Minshall R.D., Schwartz D.E. Angiotensin I-converting enzyme Glnl069Arg mutation impairs trafficking to the cell surface resulting in selective denaturation of the C-domain // PLoS ONE. - 2010. - V. 5, N 5. - P. 1-15. Davies E., Edwards C.R.W., Williams B.C. Serotonin stimulates calcium influx in isolated rat adrenal zona glomerulosa cells // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 1991. - V. 179, N 2. - P. 979-984. De Kloet E.R., Vreugdenhil E., Oitzl M.S., Joels M. Brain corticosteroid reseptor balance in health and disease // Endocrine Reviews. - 1998. - V. 19, N 3. - P.269-301.

De Bosscher K., Haegeman G. Minireview: latest perspectives on antiinflammatory actions of glucocorticoids // Molecular Endocrinology. - 2009. -V. 23, N3. - P. 281-291.

De Bosscher K., Vanden Berghe W., Vermeulen L., Plaisance S., Boone E., Haegeman G. Glucocorticoids repress NF-kappaB-driven genes by disturbing the interaction of p65 with the basal transcription machinery, irrespective of coactivator levels in the cell // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2000. - V. 97, N 8. - P. 3919-3924. De Rekeneire N., Peila R., Ding J., Colbert L.H., Visser M., Shorr R.I., Kritchevsky S.B., Kuller L.H., Strotmeyer E.S., Schwartz A.V., Vellas B., Harris T.B. Diabetes, hyperglycemia, and inflammation in older individuals: the health, aging and body composition study // Diabetes Care. - 2006. - V. 29, N 8. - P.

1902-1908.

De Luca L.A. Jr., Xu Z., Schoorlemmer G.H., Thunhorst R.L., Beltz T.G. Water deprivation-induced sodium appetite: humoral and cardiovascular mediators and immediate early genes // Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. - 2002. - V. 282 (2). - P. R552-9.

Deddish P.A., Wang J., Michel B., Morris P.W, Davidson N.O., Skidgel R.A., Erdos E.G. Naturally occurring active N-domain of human angiotensin I-converting enzyme // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 1994. - V.91, N 16. - P. 7807-7811. Delia Bruna R., Ries S., Himmelstoss C., Kurtz A. Expression of cardiac angiotensin II ATI receptor genes in rat hearts is regulated by steroids but not by angiotensin II // Journal of Hypertension. 1995. - V. 13, N 7. - P. 763-769. Denver R.J. Structural and Functional Evolution of Vertebrate Neuroendocrine Stress Systems // Annals of the New York Academy of Sciences. - 2009. - V.l 163. -P. 1-16.

Diaz R., Brown R. W., Seckl J. R. Distinct ontogeny of glucocorticoid and mineralocorticoid receptor and 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenase types I and II mRNAs in the fetal rat brain suggest a complex control of glucocorticoid actions //Journal ofNeuroscience. - 1998. - V.l 8, N 7. - P. 2570-2580. Dodic M., May N., Wintour E.M., Coghlan J.P. An early prenatal exposure to excess glucocorticoid leads to hypertensive offspring in sheep // Clinical Science. -1998.- V.94,N2. -P. 149-155.

Dovio A., Roveda E., Sciolla C., Montaruli A., Raffaelli A., Saba A., Calogiuri G., De Francia S., Borrione P., Salvadori P., Carandente F., Angeliet A. Intense physical exercise increases systemic 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 activity in healthy adult subjects // European Journal of Applied Physiology. -2010. - V. 108, Issue 4. - P. 681-687.

Draper N., Stewart P.M. 11 (3-Hydroxysteroid dehydrogenase and the pre-receptor regulation of corticosteroid hormone action // Journal of Endocrinology. - 2005. -V.l86, N 2. - P. 251-271.

Duchene J., Lecomte F., Ahmed S.,Cayla C., Pesquero J., Bader M., Perretti M., Ahluwalia A. A novel inflammatory pathway involved in leukocyte recruitment: role for the kinin B1 receptor and the chemokine CXCL5 // Journal of Immunology. - 2007. - V. 179, N 7. - P. 4849-4856.

Dzau V.J., Ellison K.E., Brody T., Ingelfinger J., Pratt R.E. A comparative study of the distributions of renin and angiotensinogen messenger ribonucleic acids in rat and mouse tissues // Endocrinology. - 1987. - V. 120, N 6. - P. 2334-2338. Dzau V.J. Evolving concepts of the renin-angiotensin system. Focus on renal and vascular mechanisms // American Journal of Hypertension. - 1988. - V.l, N 4(Pt.2). - P. 334S-337S.

Edwards C.R. Renal 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase: a mechanism ensuring mineralocorticoid specifity // Hormone Research. - 1990. - V.34, N 3-4. -P. 114-117.

Edwards C.R., Benediktsson R., Lindsay R.S., Seckl J.R. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenases: key enzymes in determining tissue-specific glucocorticoid effects // Steroids. - 1996. - V.61, N 4. - P. 263-269.

Edwards C.R., Stewart P.M., Burt D., Brett L., Mclntyre M.A., Sutanto W.S., de Kloet E.R., Monder C. Localisation of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase -tissue specific protector of the mineralocorticoid receptor // Lancet. - 1988. - V.2, N8618.-P. 986-989.

Egido J., Ruiz-Ortega M. Anti-inflammatory actions of quinapril // Cardiovascular Drugs and Therapy. - 2007. - V. 21, N 3. - P. 211-220.

Ehlers M. R. W., Fox E. A., Strydom D. J., Riordan J. F. Molecular cloning of human testicular angiotensin-converting enzyme: the testis isozyme is identical to the C-terminal half of endothelial angiotensin-converting enzyme // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 1989. - V. 86, N20. - P. 7741-7745.

Ehlers M.R., Schwager S.L., Chubb A.J., Scholle R.R., Brandt W.F., Riordan J.F. Proteolytic release of membrane proteins: studies on a membrane-protein-solubilizing activity in CHO cells // Immunopharmacology. - 1997. - V.36, N 2-3. -

P. 271-278.

Ehlers M.R.W., Riordan J.F. Angiotensin-converting enzyme: new concepts concerning its biological role // Biochemistry. - 1989. - V.28, N 13. - P.5312-5317. Ehrhart-Bornstein M., Hinson J.P., Bornstein S.R., Scherbaum W.A., Vinson G.P. Intraadrenal Interactions in the Regulation of Adrenocortical Steroidogenesis // Endocrine Reviews. - 1998. - V.19, N 2. - P.101-143.

Engeli S., Negrel R., Sharma A.M. Physiology and pathophysiology of the adipose tissue renin-angiotensin system // Hypertension. - 2000. - V.35, N 6. - P. 12701277.

Epel E.S. Psychological and metabolic stress: a recipe for accelerated cellular aging? // Hormones. - 2009. - V.8, N 1. - P. 7-22.

Erdos E.G., Skidgel R.A. Structure and functions of human angiotensin I converting enzyme (kininase II) // Biochemical society transactions. - 1985. - V.13, N 1. -P.42-44.

Esther C. R., Marino E. M., HowardT. E., Michaud A., Corvol P. The critical role of tissue angiotensin-converting enzyme as revealed by gene targeting in mice // Journal of Clinical Investigation. - 1997. - V. 99, N 10. - P. 2375-2385. Etuk E.U. Animals models for studying diabetes mellitus // Agriculture and biology journal of North America. - 2010. - V. 1(2). - P. 130-134. Fajer A.B., Holzbauer M., Newport H.M. The contribution of the adrenal gland to the total of amount progesterone produced in the female rat // Journal of Physiology. - 1971. - V. 214, N 1. - P. 115-126.

Fernando H.A., Chin H-F., Ton S.H., Kadir K.A. Stress and Its Effects on Glucose Metabolism and 11 /?-HSD Activities in Rats Fed on a Combination of High-Fat and High-Sucrose Diet with Glycyrrhizic Acid // Journal of Diabetes Research. -2013.-V. 2013.-Article ID 190395.- 18 pages.

Fedoseeva L.A., Ryazanova M.A., Antonov E.V., Dymshits G.M., Markel A.L. Expression of the Renin Angiotensin System Genes in the Kidney and Heart of ISIAH Hypertensive Rats // Biochemistry (Moscow) Supplement Series B: Biomedical Chemistry. - 2011. V. 5, N 1. - P. 37^13.

Ferrari P., Sansonnens A., Dick B., Frey F.J. In vivo llbeta-HSD-2 activity: variability, salt-sensitivity, and effect of licorice // Hypertension. - 2001. - V. 38, N 6.-P. 1330-1336.

Ferrario C.M. New physiological concepts of the renin-angiotensin system from the investigation of precursors and products of angiotensin I metabolism // Hypertension. - 2010. - V.55, N 2. - P.445-452.

Fiore C., Nardi A., Dalla Valle L., Pellati D., Krozowski Z., Colombo L.,

Armanini D. Identification of the 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase type 1

mRNA and protein in human mononuclear leukocytes // Experimental and Clinical

Endocrinology and Diabetes. - 2009. - V. 117, N 9. - P. 514-518.

Fishel R.S., Eisenberg S., Shai S.Y., Redden R.A., Bernstein K.E., Berk B.C.

Glucocorticoids induce angiotensin-converting enzyme expression in vascular

smooth muscle // Hypertension. - 1995. - V.25, N 3. - P. 343-349.

Fleming I. Signaling by the angiotensin-converting enzyme // Circulation

Research. - 2006. - V.98, N 7. - P. 887-896.

Forhead A.J., Fowden A.L. Effects of thyroid hormones on pulmonary and renal angiotensin-converting enzyme concentrations in fetal sheep near term // Journal of Endocrinology. - 2002. - V. 173, N 1. - P. 143-150.

Fowden A.L., Forhead A.J. Hormones as epigenetic signals in developmental programming // Experimental Physiology. - 2009. - V.94, N 6. - P. 607-625. Freeman L., Hewison M., Hughes S.V., Evans K.N., Hardie D., Means T.K., Chakraverty R. Expression of 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 permits regulation of glucocorticoid bioavailability by human dendritic cells // Blood. -2005. - V. 106, N 6. - P. 2042-2049.

Friedland J.C., Setton C., Silverstein E. Angiotensin converting enzyme: induction by steroids in rabbit alveolar macrophages in culture // Science. - 1977. - V. 197, N 4298. - P. 64-65.

Friedberg M., Zoumakis E., Hiroi N., Bader T., Chrousos G.P., Hochberg Z. Modulation of 11 (3-Hydroxysteroid Dehydrogenase Type 1 in Mature Human Subcutaneous Adipocytes by Hypothalamic Messengers // The Journal of Clinical

Endocrinology & Metabolism. - 2003. - V. 88, N 1. - P. 385-393.

Fyhrquist F., Saijonmaa O. Renin-angiotensin system revisited // Journal of

Internal Medicine. - 2008. - V. 264, N 3. - P. 224-236.

Fruehwald-Schultes B, Kern W., Born J., HL Fehm H.L., Peters A. Hyperinsulinemia causes activation of the hypothalamus-pituitary-adrenal axis in humans // International Journal of Obesity. - 2001. - V. 25, Suppl. 1. - P. S38-S40.

Galigniana M.D., Vicent G.P., Burton G., Lantos C.P. Features of the shuttle pair 11 beta-hydroxyprogesterone-11-ketoprogesterone // Steroids. - 1997. - V.62, N 4. -P. 358-364.

Gallo-Paye N., Lucie Chouinard L., Balestre M-N., Guillon G. Dual effects of dopamine in rat adrenal glomerulosa cells // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 1990. - V. 172, N 3. - P. 1100-1108. Gambineri A., Tomassoni F., Munarini A., Stimson R.H., Mioni R., Pagotto U., Chapman K.E., Andrew R., Mantovani V., Pasquali R., Walker B.R. A combination of polymorphisms in HSD11B1 associates with in vivo llb-HSDl activity and metabolic syndrome in women with and without polycystic ovary syndrome // European Journal of Endocrinology. - 2011. - V. 165. - P. 283-292. Gangulya A., Chioua S., Westa L.A, Davisa J.S. Atrial natriuretic factor inhibits angiotensin-induced aldosterone secretion: Not through cGMP or interference with phospholipase C // Biochemical and Biophysical Research Communications. -1989.-V.159,N l.-P. 148-154.

Gardner D.S., Jackson A.A., Langley-Evans S.C. Maintenance of maternal diet-induced hypertension in the rat is dependent on glucocorticoids // Hypertension. -1997. - V.30, N 6. - P. 1525-1530.

Ge R, Huang Y, Liang G, Li X. 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 inhibitors as promising therapeutic drugs for diabetes: status and development // Curr Med Chem. - 2010. - V. 17, N 5. - P. 412-22.

Giacchetti G., Sechi L.A., Rilli S., Carey R.M. The renin-angiotensin-aldosterone system, glucose metabolism and diabetes // Trends in Endocrinology and

Metabolism. - 2005. - V.16, N 3. - P. 120-126.

Gilmour J.S., Coutinho A.E., Cailhier J.F., Man T.Y., Clay M., Thomas G., Harris H.J., Mullins J.J., Seckl J.R., Savill J.S., Chapman K.E. Local amplification of glucocorticoids by 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 promotes macrophage phagocytosis of apoptotic leukocytes // Journal of Immunology. -2006. - V. 176, N 12. - P. 7605-7611.

Goleva E., Li L.B., Eves P.T., Strand M.J., Martin R.J., Leung D.Y. Increased glucocorticoid receptor p alters steroid response in glucocorticoid-insensitive asthma // American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. - 2006. -V.173, N 6. - P. 607-616.

Gomez-Sanchez E.P., Gomez-Sanchez C.M., Plonczynski M., Gomez-Sanchez C.E. Aldosterone synthesis in the brain contributes to Dahl salt-sensitiverathypertension // Experimental Physiology. - 2010. - V.95, N 1. - P. 120130.

Gomez-Sanchez C.E., Zhou M.Y., Cozza E.N., Morita H., Eddleman F.C., Gomez-Sanchez E.P. Corticosteroid synthesis in the central nervous system // Endocr. Res. 1996. V. 22. N4. P. 463-470.

Gonzalez N.C., Allen J., Schmidt E.J. Casillan A.J., Orth T., Wood J.G. Role of the renin-angiotensin system in the systemic microvascular inflammation of alveolar hypoxia // American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. - 2007. - V. 292, N 5. - P. H2285-H2294.

Gover D.V. The biosynthesis of steroid hormones: an up-date // Hormones and their Action: Part 1/ Eds.: Cooke B.A., King R.J.B., Van der Molen H.J. -Amsterdam: Elsevier, 1988. - P. 3-28.

Griendling K.K., Murphy T.J., Alexander R.W. Molecular biology of the renin-angiotensin system // Circulation. - 1993. - V.87, N 6. - P. 1816-1828. Grunstein H.S., James D.E., Storlien L.H., Smythe G.A., Kraegen E.W. Hyperinsulinemia suppresses glucose utilization in specific brain regions: in vivo studies using the euglycemic clamp in the rat // Endocrinology. - 1985. - V. 116(2).-P. 604-610.

Gulumian M., Borm P. J. A., Vallyathan V., Castranova V., Donaldson K., Nelson G., Murray J. Mechanistically identified suitable biomarkers of exposure, effect, and susceptibility for silicosis and coal-worker's pneumoconiosis: a comprehensive review // Journal of Toxicology and Environmental Health, Part B. -2006.-V. 9,N5.-P. 357-395.

Gwynne J.T. Esterification of cholesterol in high density lipoprotein decreases its ability to support ACTH-stimulated steroidogenesis by rat adrenocortical cells / Gwynne J.T., Mahaffee D.D. // The Journal of Biological Chemistry. - 1987. - V. 262,N34.-P. 16349-16356.

Hagendorf A., Koper J.W., de Jong F.H., Brinkmann A.O., Lamberts S.W.J., Feelders R. A. Expression of the human glucocorticoid receptor splice variants alpha, beta, and P in peripheral blood mononuclear leukocytes in healthy controls and in patients with hyper- and hypocortisolism // The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. - 2005. - V.90, N 11. - P. 6237-6243. Hagiwara H., Wakita K., Inada Y., Hirose S. Fucosterol decreases angiotensin converting enzyme levels with reduction of glucocorticoid receptors in endothelial cells // Biochem Biophys Res Commun. - 1986. - V. 139. - P. 348-352. Hammami M.M., Siiteri P.K. Regulation of 11 |3-hydroxysteroid dehydrogenase activity in human skin fibroblasts: enzymatic modulation of glucocorticoid action // Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. - 1991. - V.73, N 2. - P. 326334.

Hammond G.L. Molecular properties of corticosteroid binding globulin and the sex-steroid binding proteins // Endocrine Reviews. - 1990. - V.l 1, N 1. - P. 65-79. Hanafusa J., Mune T., Tanahashi T., Isomura Y., Suwa T., Isaji M., Daido H., Morita H., Murayama M., Yasuda K. Altered corticosteroid metabolism differentially affects pituitary corticotropin response // American Journal of Physiology - Endocrinology and Metabolism. - 2002. - V. 282, N 2. - P. E466-E473.

Hayden M.R., Sowers K.M., Pulakat L., Krueger B., Whaley-Connell A., Joginpally T., Sowers J.R. Possible Mechanisms of Local Tissue Renin-

Angiotensin System Activation in the Cardiorenal Metabolie Syndrome and Type 2 Diabetes Mellitus // Cardiorenal medicine. - 2011. - V.l, N 3. - P. 193-210. Heilmann P., Heide J., Hundertmark S., Schöneshöfer M. Administration of glycyrrhetinic acid: significant correlation between serum levels and the cortisol/cortisone-ratio in serum and urine // Experimental and Clinical Endocrinology and Diabetes. - 1999. - V. 107, N 6. - P. 370-378. Heiman M.L., Ahima R.S., Craft L.S., Schoner B., Stephens T.W., Flier J.S. Leptin inhibition of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis in response to stress // Endocrinology. - 1997. - V.138, N 9. - P. 3859-3863.

Hermans J.J.R., Fischer M.A., Schiffers P.M., Struijker-Boudier H.A. Effect of angiotensin II on rat renal cortical 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenase // Endocrine. - 2000. - V. 13, N 3. - P. 393-399.

Herrmann N., Schölmerich J., Straub R.H. Influence of cytokines and growth factors on distinct steroidogenic enzymes in vitro: a short tabular data collection // Annals of the New York Academy of Sciences. - 2002. - V. 966. - P. 166-186. Higashino H., Kumode M., Suzuki A. Age-related changes in serum and tissue angiotensin converting enzyme activities in SHRSP and WKY // Acta medica Kinki University. - 1987. - V. 12, N 1. - P.63-66.

Hillmeister P., Gatzke N., Dulsner A., Bader M., Schadock I., Hoefer I.,Hamann I., Infante-Duarte C., Jung G., Troidl K., Urban D., Stawowy P., Frentsch M., Li M., Nagorka S., Wang H., Shi Y., le Noble F., Buschmann I. Arteriogenesis is modulated by bradykinin receptor signaling // Circulation Research. - 2011. - V. 109, N5. - P. 524-533.

Hindawi R.K., Al-Dujaili E.A.S., Padfield P.L. The role of prostaglandins in aldosterone and corticosterone secretion by isolated perfused rat zona glomerulosa cells // Prostaglandins, Leukotrienes and Medicine. - 1985. - V. 20, N 2. - P. 121128.

Scavenger receptor class B type I-mediated uptake of serum cholesterol is essential for optimal adrenal glucocorticoid production / Hoekstra M., Ye D., Hildebrand R.B, Zhao Y, Lammers B., Stitzinger M., Kuiper J, Van Berkel T. J. C., Van Eck

M. // Journal of Lipid Research. - 2009. - 50, N 6. - P. 1039-1046. Angiotensin increases aldosterone synthase mRNA levels in human NCI-H295 cells / Holland O.B., Mathis J.M., Bird I.M., Rainey W.E. // Molecular and Cellular Endocrinology. - 1993. - V.94, N 2. - P. R9-R13.

Homma M., Onodera T., Hirabatake M., Oka K., Kanazawa M., Miwa T., Hayashi T. Activation of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase by dehydroepiandrosterone sulphate as an anti-hypertensive agent in spontaneously hypertensive rats // Journal of Pharmacy and Pharmacology. - 1998. - V.50, N 10. - P. 1139-1145. Homma M., Tanaka A., Hino K. Takamura H., Hirano T., Oka K., Kanazawa M., Miwa T., Notoya Y., Niitsuma T., Hayashi T. Assessing systemic llbeta-hydroxysteroid dehydrogenase with serum cortisone/cortisol ratios in healthy subjects and patients with diabetes mellitus and chronic renal failure // Metabolism. - 2001. - V. 50, N 7. - P. 801-804.

Hooper N.M. Families of zinc metalloproteases // FEBS Letters. - 1994. - V.354, N l.-P. 1-6.

Hornsby P.J. Physiological and pathological effects of steroids on the function of the adrenal cortex // Journal of Steroid Biochemistry. - 1987. - V.27, N 4-6. - P. 1161-1171.

Horrocks P.M., Jones A.F., Ratcliffe W.A., Holder G., White A., Holder R., Ratcliffe J.G., London D.R. Patterns of ACTH and Cortisol pulsatility over twenty-four hours in normal males and females // Clinical Endocrinology (Oxf). - 1990. -V.32, N 1. - P. 127-134.

i Hubert C., Houot A.-M., Corvol P., Soubrier F. Structure of the angiotensin I-

converting enzyme gene. Two alternate promoters correspond to evolutionary steps of a duplicated gene // Journal of Biological Chemistry. - 1991. - V.266, N 23. - P. 15377-15383.

Hughes K.A., Reynolds R.M., Andrew R., Critchley H.O.D., Walker B.R. Glucocorticoids Turn Over Slowly in Human Adipose Tissue in Vivo // J Clin Endocrinol Metab. - 2010. - V. 95. - P. 4696-4702.

Hundertmark S., Buhler H., Ragosch V., Dinkelborg L., Arabin B., Weitzel H.K.

Correlation of surfactant phosphatidylcholine synthesis and 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in the fetal lung // Endocrinology. - 1995. - V. 136, N 6. - P.2573-2578.

Ialenti A., Calignano A., Carnuccio R., Di Rosa M. Glucocorticoid induction of angiotensin converting enzyme // Agents Actions. - 1986. - V. 17, N 3-4. - P.294-295.

Idrus R.B., Mohamad N.B., Morat P.B., Saim A., Abdul Kadir K.B. Differential effect of adrenocorticosteroids on 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase bioactivity at the anterior pituitary and hypothalamus in rats // Steroids. - 1996. -V.61, N 8. - P.448-452.

Igic R., Behnia R. Properties and distribution of angiotensin I converting enzyme //

Current Pharmaceutical Design. - 2003. - V.9, N 9. - P.697-706.

Ishigai Y., Mori T., Ikeda T., Fukuzawa A.,Shibano T. Role of bradykinin-NO

pathway in prevention of cardiac hypertrophy by ACE inhibitor in rat

cardiomyocytes // American Journal of Physiology - Heart and Circulatory

Physiology. - 1997. - V. 273, N 6, Pt.2 . - P. H2659-H2663.

Israel A., Stromberg C., Tsutsumi K., Garrido M.R., Torres M., Saavedra J.M.

Angiotensin II receptor subtypes and phosphoinositide hydrolysis in rat adrenal

medulla // Brain Research Bulletin. - 1995. - V. 38, N 5. - P. 441-446.

Jamieson J., Chapman K.E., Edwards C.R., Seckl J.R. 11 beta-hydroxysteroid

dehydrogenase is an exclusive 11 beta- reductase in primary cultures of rat

hepatocytes: effect of physicochemical and hormonal manipulations //

Endocrinology. - 1995. - V. 136, N 11. - P. 4754-4761.

Jang C., Obeyesekere V.R., Dilley R.J., Krozowski Z., Inder W.J., Alford F. P. Altered activity of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase types 1 and 2 in skeletal muscle confers metabolic protection in subjects with type 2 diabetes // The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. - 2007. - V. 92, N 8. - P. 3314-3320. Jaspard E., Wei L., Alhenc-Gelas F. Differences in the properties and enzymatic specificities of the two active sites of angiotensin I-converting enzyme (kininase II). Studies with bradykinin and other natural peptides // Journal of Biological

Chemistry. - 1993. - V.268, N 13. - P. 9496-9503.

Jellinck P.H., Dhabhar F.S., Sakai R.R., McEwen B.S. Long-term corticosteroid treatment but not chronic stress affects 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase type

I activity in rat brain and peripheral tissues // Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. - 1997. - V.60, N 5-6. - P. 319-323.

Jellinck P.H., Monder C., McEwen B.S., Sacai R.R. Differential inhibition of

II beta-hydroxysteroid dehydrogenase by carbenoxolone in rat brain regions and peripheral tissues // Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. -1993.-V. 46, N2. - P. 209-213.

Johnston C. Tissue angiotensin converting enzyme in cardiac and vascular hypertrophy, repair, and remodeling // Hypertension. - 1994. - V.23, N 2. - P. 258268.

Kannisto K., Pietilainen K.H., Ehrenborg E., Rissanen A., Kaprio J., Hamsten A., Yki-Jarvinen H. Overexpression of 1 ip-hydroxysteroid dehydrogenase-1 in ^ adipose tissue is associated with acquired obesity and features of insulin resistance:

studies in young adult monozygotic twins // J Clin Endocrinol Metab. - 2004. - V. 89.-P. 4414-4421.

Kardon T., Senesi S., Marcolongo P., Legeza B., Banhegyi G., Mandl J., Fulceri R., Benedetti A. Maintenance of luminal NADPH in the endoplasmic reticulum promotes the survival of human neutrophil granulocytes // FEBS Letters. - 2008. -V. 582,N 13.-P. 1809-1815.

Kartsova A.A., Velikanova L.I., Pavlova E.G., Bessonova E.A. Steroidogenesis in ^ patients with various adrenal cortex diseases as studied by reversed-phase high-

performance liquid chromatography // Journal of Analytical Chemistry. - 2004. -V. 59, N10.-P. 976-982.

Kayes-Wandover K.M., White P.C. Steroidogenic enzyme gene expression in the human heart // Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. - 2000. - V.85, N7.-P. 2519-2525.

" Kenouch S., Coutry N., Farman N., Bonvalet J.P. Multiple patterns of 11 beta-

hydroxysteroid dehydrogenase catalytic activity along the mammalian nephron //

Kidney International. - 1992. - V.42, N 1. - P. 56-60.

King E.M., Holden N.S., Gong W., Rider C.F., Newton R. Inhibition of NF-kB-dependent transcription by MKP-1 transcriptional repression by glucocorticoids occurring via P38 MAPK // Journal of Biological Chemistry. - 2009. - V. 284, N 39.-P. 26803-26815.

King G.L. The role of inflammatory cytokines in diabetes and its complications //

Journal of Periodontology. - 2008. - V. 79, Suppl.8. - P. 1527-1534.

Kizaki T., Ookawara T., Iwabuchi K., Onoo K., Day N.K., Good R.A., Maruyama

N., Haga S., Matsuura N., Ohira Y., Ohno H. Age-associated increase of basal

corticosterone levels decreases ED2 high, NF-kB high activated macrophages //

Journal of Leukocyte Biology. - 2000. - V. 68, N 1. - P. 21-30.

Koga Y., Matsuzaki A., Suminoe A., Hattori H., Kanemitsu S., Hara T.

Differential mRNA expression of glucocorticoid receptor a and (3 is associated

with glucocorticoid sensitivity of acute lymphoblastic leukemia in children //

Pediatric Blood and Cancer. - 2005. - V.45, N 2. - P. 121-127.

Kohlstedt K., Shoghi F., Muller-Esterl W., Busse R., Fleming I. CK2

phosphorylates the angiotensin-converting enzyme and regulates its retention in the

endothelial cell plasma membrane // Circulation Research. - 2002. - V.91, N 8. -

P.749-756.

Koldzic-Zivanovic N., Huolin Tu , Terry L. Juelich, Peter L. Rady, Stephen K. Tyring,S. David Hudnall, Eric M. Smith, Hughes T. K. Regulation of adrenal glucocorticoid synthesis by interleukin-10: A preponderance of IL-10 receptor in the adrenal zona fasciculata // Brain, Behavior, and Immunity. - 2006. - V. 20, N 5. - P. 460-468.

Kotelevtsev Y., Holmes M.C., Burchell A., Houston P.M., Schmoll D., Jamieson P., Best R., Brown R., Edwards C.R.W., Seckl J.R., Mullins J.J. 11b-Hydroxysteroid dehydrogenase type 1 knockout mice show attenuated glucocorticoid-inducible responses and resist hyperglycemia on obesity or stress // Proc. Natl. Acad. Sci. - 1997. - V. 94. - P. - 14924-14929.

Kristiansen S.B., Endoh A., Casson P.R., Buster J.E., Hornsby P.J. Induction of

steroidogenic enzyme genes by insulin and IGF-I in cultured adult human adrenocortical cells // Steroids. - 1997. - V.62, N 2. - P. 258-265. Krulewitz A.H., Baur W.E., Fanburg B.L. Hormonal influence on endothelial cell angiotensin-converting enzyme // American Journal of Physiology - Cell Physiology. - 1984. - V.247, N 3, Pt.l. - P. C163-C168.

Kyrou I., Chrousos G.P., Tsigos C. Stress, visceral obesity, and metabolic complications // Annals of the New York Academy of Sciences. - 2006. - V.1083. -P. 77-110.

Lakshmi V., Sakai R.R., McEwen B.S., Monder C. Regional distribution of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in rat brain // Endocrinology. - 1991. - V. 128, N4. - P. 1741-1748.

Lanz B., Kadereit B., Ernst S., Shojaati K., Causevic M., Frey B.M., Frey F.J., Mohaupt M.G. Angiotensin II regulates 11 -hydroxysteroid dehydrogenase type 2 via AT2 receptors // Kidney International. - 2003. - V.64, N 3. - P. 970-977. LaSala D. Coexpression of CYP11B2 or CYP11B1 with adrenodoxin and adrenodoxin reductase for assessing the potency and selectivity of aldosterone synthase inhibitors // Analytical Biochemistry. - 2009. - V. 394, N 1. - P. 56-61 Lauterburg M., Escher G., Dick B., Ackermann D., Frey F. Uninephrectomy reduces 11 p-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 and type 2 concomitantly with an increase in blood pressure in rats // Journal of Endocrinology. - 2012. - V. 214, N3.-P. 373-380.

Lavery G.G., Ronconi V., Draper N., Rabbitt E.H., Lyons V., Chapman K.E., Walker E.A., McTernan C.L., Giacchetti G., Mantero F., Seckl J.R., Edwards C.R., Connell J.M., Hewison M., Stewart P.M. Late-onset apparent mineralocorticoid excess caused by novel compound heterozygous mutations in the HSD11B2 gene // Hypertension. - 2003. - V.42, N 2. - P. 123-129.

Lavery G.G., Zielinska A.E., Gathercole L.L., Hughes B., Semjonous N., Guest P., Saqib K., Sherlock M., Reynolds G., Morgan S.A., Tomlinson J.W., Walker E.A.,. Rabbitt E.H., Stewart P.M. Lack of Significant Metabolic Abnormalities in Mice with Liver-Specific Disruption of 11-Hydroxysteroid Dehydrogenase Type 1 //

Endocrinology. -2012. - V. 153.-P. 3236-3248.

Lavrentyev E.N., Estes A.M., Malik K.U. Mechanism of high glucose induced angiotensin II production in rat vascular smooth muscle cells // Circulation Research. - 2007. - V.101, N 5. - P. 455-464.

Le M.T., Vanderheyden P. M. L., Szaszak M., Hunyady L., Vauquelin G. Angiotensin IV is a potent agonist for constitutive active human ATI receptors. Distinct roles of the N-and C-terminal residues of angiotensin II during ATI receptor activation // Journal of Biological Chemistry. - 2002. - V. 277, N 26. - P. 23107-23110.

Lefebvre P., Chinetti G., Fruchart J.-C., Staels B. Sorting out the roles of PPARa in energy metabolism and vascular homeostasis // The Journal of Clinical Investigation. - 2006. - V. 116, N 3. - P. 571-580.

Leeb-Lundberg L.M., Marceau F., Muller-Esterl W., Pettibone D.J., Zuraw B.L. International union of pharmacology. XLV. Classification of the kinin receptor family: from molecular mechanisms to pathophysiological consequences // Pharmacological Reviews. - 2005. - V. 57, N 1. - P. 27-77.

Lenzen S. Oxidative stress: the vulnerable beta-cell // Biochemical Society Transactions. - 2008. - V.36, Pt. 3. - P. 343-347.

Leung P.S. The physiology of a local renin-angiotensin system in the pancreas // Journal of Physiology. - 2007. - V.580, Pt.l. - P. 31-37.

Lewis J.G., Elder P.A. Corticosteroid-binding globulin reactive centre loop antibodies recognise only the intact natured protein: Elastase cleaved and uncleaved CBG may coexist in circulation // Journal of Steroid Biochemistry & Molecular Biology. - 2011. - V.127, N 3-5. - P. 289-294.

Lewis J.G., Bagley C.J., Elder P.A., Bachmann A.W., Torpy D.J. Plasma free Cortisol fraction reflects levels of functioning corticosteroid-binding globulin // Clinica Chimica Acta. - 2005. - V.359, N 1-2. - P. 189-194.

Li K.X., Obeyesekere V.R., Krozowski Z.S., Ferrari P. Oxoreductase and dehydrogenase activities of the human and rat 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase type 2 enzyme // Endocrinology. - 1997. - V.138, N 7. - P. 2948195

2952.

Lisurek M., Bernhardt R. Modulation of aldosterone and Cortisol synthesis on the molecular level // Molecular and Cellular Endocrinology. - 2004. - V.215, N 1-2. -P. 149-159.

Liu Y., NakagawaY., Wang Y., Sakurai R., Tripathi P.V., Lutfy K., Friedman T.C.

Increased glucocorticoid receptor and llb-hydroxysteroiddehydrogenase type 1

expression in hepatocytes may contribute to the phenotype of type 2 diabetes in

db/db mice // Diabetes. - 2005. - V.54, N 1. - P. 32-40.

Lloyd-MacGilp S.A., Nelson S.M., Florin M., Lo M., McKinnell J., Sassard J.,

Kenyon C.J. 11 (3-Hydroxysteroid dehydrogenase and corticosteroid action in Lyon

hypertensive rats // Hypertension. - 1999. - V. 34. - P. 1123-1128.

Low S.C., Chapman K.E., Edwards C.R., Wells T., Robinson I.C., Seckl J.R.

Sexual dimorphism of hepatic 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in rat: the

role of growth hormone patterns // Journal of Endocrinology. - 1994. - V.143, N 3.

-P. 541-548.

Lubel J.S., Herath C.B., Burrell L.M., Angus P.W. Liver disease and the renin-angiotensin system: recent discoveries and clinical implications // Journal of Gastroenterology and Hepatology. - 2008. - V.23, N 9. - P.1327-1338. Magarinos A.M., McEwen B.S. Experimental diabetes in rats causes hippocampal dendritic and synaptic reorganization and increased glucocorticoid reactivity to stress // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2000. - V. 97, N 20. - P. 11056-11061.

Malfroy B., Schwartz J.C. Comparison of dipeptidyl carboxypeptidase and endopeptidase activities in the three enkephalin-hydrolizing metallopeptidases: "angiotensin-converting enzyme", termolisin and "enkephalinase" // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 1985. - V.130, N 1. - P. 372-378. Mandl J., Meszaros T., Banhegyi G., Csala M. Minireview: Endoplasmic Reticulum Stress: Control in Protein, Lipid, and Signal Homeostasis // Molecular Endocrinology. - 2013. - V. 27. P. 384-393.

Mantzoros C. S., Magkos F., Brinkoetter M., Sienkiewicz E., Dardeno T. A., Kim

196

S-Y, Hamnvik O-P. R., Koniaris A. Leptin in human physiology and pathophysiology // American Journal of Physiology - Endocrinology and Metabolism. - 2011. - V. 30, N 4. - P. E567-E584.

Marceau F., Regoli D. Bradykinin receptor ligands: therapeutic perspectives //

Nature Reviews Drug Discovery. - 2004. - V .3, N 10. - P. 845-852.

Marceau F., Hess J.F., Bachvarov D.R. The Bi receptors for kinins //

Pharmacological Reviews. - 1998. - V. 50, N 3. - P. 357-386.

Markel A. Development of new strain with inherited stress induced arterial

hypertension // Genetic Hypertension / Sassard J., ed. - London: John Libbey

eurotext Ltd., 1992. - V.218: Colloque INSERM. - P. 405-407.

Markel A.L., Redina O.E., Gilinsky M.A., Dymshits G.M., Kalashnikova E.V.,

Khvorostova Y.V., Fedoseeva L.A., Jacobson G.S. Neuroendocrine profiling in

inherited stress-induced arterial hypertension rat strain with stress-sensitive arterial

hypertension // Journal of Endocrinology. - 2007. - V. 195, N 3. - P. 439-450.

Marcolongo P., Piccirella S., Senesi S., Wunderlich L., Gerin I., Mandl J., Fulceri

R., Bânhegyi G., Benedetti A. The Glucose-6-Phosphate Transporter-Hexose-6-

Phosphate Dehydrogenase-11 (3-Hydroxysteroid Dehydrogenase Type 1 System of

the Adipose Tissue // Endocrinology. - 2007. - V. 148. - P. 2487-2495

Martinez F.O., Gordon S., Locati M., Mantovani A. Transcriptional profiling of the

human monocyte-to-macrophage differentiation and polarization: new molecules

and patterns of gene expression // Journal of Immunology. - 2006. - V. 177, N 10. -

P. 7303-7311.

Masuzaki H., Paterson J., Shinyama H., Morton N.M., Mullins J.J., Seckl J.R., Flier J.S. A transgenic model of visceral obesity and the metabolic syndrome // Science. - 2001. - V.294, N 5549. - P. 2166-2170.

Masuzaki H., Yamamoto H., Kenyon C.J., Elmquist J.K., Morton N.M., Paterson J., Shinyama H., Sharp M.G.F., Fleming S., Mullins J.J., Seckl J.R., Flier J.S. Transgenic amplification of glucocorticoid action in adipose tissue causes high blood pressure in mice // Journal of Clinical Investigation. - 2003. - V. 112, N 1. -P. 83-90.

Mazzocchi G., Malendowicz L.K., Aragona F., Tortorella C., Gottardo L., Nussdorfer G.G. 1 lbeta-Hydroxysteroid dehydrogenase types 1 and 2 are up- and downregulated in cortisol-secreting adrenal adenomas // Journal of Investigative Medicine. - 2002. - V.50, N 4,- P. 288-292.

Mazzocchi G., Rebuffat P., Nussdorfer G.G. Atrial natriuretic factor (ANF) inhibits the growth and the secretory activity of rat adrenal zona glomerulosa in vivo // Journal of Steroid Biochemistry. - 1987. - V.28, N 6. - P. 643-646. McEwen B.S. Physiology and neurobiology of stress and adaptation: central role of the brain // Physiological Reviews. - 2007. - V. 87, N 3. - P. 873-904. McKinley M.J., Albiston A.L., Allen A.M., Mathai M.L., May C.N., McAllen R.M., Oldfield B.J., Mendelsohn F.A.O., Chai S.Y. The brain renin-angiotensin system: location and physiological roles // International Journal of Biochemistry & Cell Biology. - 2003. - V.35, N 6. - P. 901-918.

Mehta P.K., Griendling K.K. Angiotensin II cell signaling: physiological and pathological effects in the cardiovascular system // American Journal of Physiology - Cell Physiology. - 2006. - V.292, N 1. - P. C82-C97. Mendelsohn F.A.O., Kachel L.C., Funder J.W. Induction by glucocorticoids of angiotensin-converting enzyme production from bovine endothelial cells in culture and rat lung in vivo // Journal of Clinical Investigation. - 1982. - V.70, N 3. - P. 684-692.

Metsarinne K.P., Helin K.H., Saijonmaa O., Stewen P., Sirvio M.L., Fyhrquist F.Y. Tissue-specific regulation of angiotensin-converting enzyme by angiotensin

II and losartan in the rat // Blood Press. - 1996. - V.5, N 6. - P. 363-370.

Metzger R., Franke F.F., Bohle R-M., Alhenc-Gelas F., Danilov S.M. Heterogeneous distribution of Angiotensin I-converting enzyme (CD 143) in the human and rat vascular systems: vessels, organs and species specificity // Microvascular Research. - 2005. - V. 81, N 2. - P. 206-215.

Miller W.L. The molecular biology, biochemistry, and physiology of human steroidogenesis and its disorders / Miller W.L., Auchus R.J. // Endocrine Reviews.

- 2011. - V.32, N 1. - P. 81-151.

Miyata M., Park F., Li X.F., Cowley A.W. Distribution of angiotensin ATI and AT2 receptor subtypes in the rat kidney // American Journal of Physiology - Renal Fluid and Electrolyte Physiology. - 1999. - V.277, N 3, Pt.2. - P. F437-F446. Miyazaki M., Takai S. Tissue angiotensin II generating system by angiotensin-converting enzyme and chymase // Journal of Pharmacological Sciences. - 2006. -V.100,N5.-P. 391-397.

Moisan M.P., Seckl J.R., Edwards C.R. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase bioactivity and messenger RNA expression in rat forebrain: localization in hypothalamus, hippocampus, and cortex // Endocrinology. - 1990. - V.127, N 3. -P. 1450-1455.

Monder C., Miroff Y., Marandici A., Hardy M.P. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase alleviates glucocorticoid-mediated inhibition of steroidogenesis in rat Leydig cells // Endocrinology. - 1994. - V.134, N 3. - P. 1199-1204. Monder C., Stewart P.M., Lakshmi V., Valentino R., Burt D., Edwards C.R. Licorice inhibits corticosteroid 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase of rat kidney and liver: in vivo and in vitro studies // Endocrinology. - 1989. - V.125, N 2.-P. 1046-1053.

Monteiro A.C., Schmitz V., Svensjo E., Gazzinelli R.T., Almeida I.C., Todorov A., de Arruda L.B., Torrecilhas A.C., Pesquero J.B., Morrot A., Bouskela E., Bonomo A., Lima A.P., Miiller-Esterl W., Scharfstein J. Cooperative activation of TLR2 and bradykinin B2 receptor is required for induction of type 1 immunity in a mouse model of subcutaneous infection by Trypanosoma cruzi // Journal of Immunology. - 2006. - V. 177, N 9. - P.6325-6335.

Morita H., Cozza E.N., Zhou M.Y., Gomez-Sanchez E.P., Romero D.G.,Gomez-Sanchez C.E. Regulation of the 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in the rat adrenal. Decrease enzymatic activity induced by ACTH // Endocrine. - 1997. - V.7, N3.-P. 331-335.

Morita H., Zhou M., Foecking M.F., Gomez-Sanchez E.P., Cozza E.N., Gomez-Sanchez C.E. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase type 2 complementary

deoxyribonucleic acid stably transfected into Chinese hamster ovary cells: specific inhibition by 11 alpha-hydroxyprogesterone // Endocrinology. - 1996. - V.137, N 6.-P. 2308-2314.

Morton N., Seckl J. 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 and obesity //

Frontiers of Hormone Research. - 2008. - V.36. - P. 146-164.

Mukherjee J.J., Khoo C.M., Thai A.C., Chionh S.B., Pin L., Lee K.O. Type 2

diabetic patients with resistant hypertension should be screened for primary

aldosteronism // Diabetes and Vascular Disease Research. - 2010. - V.7, N 1. - P.

6-13.

Müller H., Kröger J., Jöhren O., Szymczak S., Bader M., Dominiak P., Raasch W. Stress sensitivity is increased in transgenic rats with low brain angiotensinogen // Journal of Endocrinology. - 2010. - V.204, N 1. - P. 85-92.

Müller H., Schweitzer N., Jöhren O., Dominiak P., Raasch W. Angiotensin II stimulates the reactivity of the pituitary-adrenal axis in leptin-resistant Zucker rats, thereby influencing the glucose utilization // American Journal of Physiology -Endocrinology and Metabolism. - 2007. - V.293, N 3. - P. E802-E810. Müller J. Aldosterone: The minority hormone of the adrenal cortex // Steroids. -1995.-V.60,N l.-P. 2-9.

Müller J. Final steps of aldosterone biosynthesis: Molecular solution of a physiological problem // Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. -1993. - V.45, N 1-3. - P. 153-159.

Müller J., Meuli C., Schmid C., Lauber M. Adaptation of aldosterone biosynthesis to sodium and potassium intake in the rat // Journal of Steroid Biochemistry. -1989. - V.34, N 1-6. - P. 271-277.

Mulloy B., Rider C.C. Cytokines and proteoglycans. An introductory overview // Biochemical Society Transactions. - 2006. - V.34, Pt.3. - P. 409-413. Mulrow P.J. Angiotensin II and aldosterone regulation // Regulatory Peptides. -1999.-V. 80,N 1-2.-P. 27-32.

Mulrow P.J. Adrenal renin: regulation and function // Frontiers in Neuroendocrinology. - 1992. - V. 13. - P. 47-60.

Musajo F., Neri G., Tortorella C., Mazzocchi G., Nussdorfer G.G. Intra-adrenal 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase plays a role in the regulation of corticosteroid secretion: an in vitro study in the rat // Life Sciences. - 1996. - V.59, N 17. - P. 1401-1406.

Muzikar K.A., Nickols N.G., Dervan P.B. Repression of DNA-binding dependent glucocorticoid receptor-mediated gene expression // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2009. - V.106, N 39. -P.16598-16603.

Nacharaju V.L., Muneyyirci-Delale O., Khan N. Presence of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in human semen: evidence of correlation with semen characteristics // Steroids. - 1997. - V.62, N 3. - P. 311-314. Napolitano A., Voice M.W., Edwards C.R., Chapman K.E. 11 Beta-hydroxysteroid dehydrogenase 1 in adipocytes: expression is differentiation-dependent and hormonally regulated // Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. -1998. - V.64, N 5-6. - P. 251-260.

Naqvi N., Liu K., Graham R.M., Husain A. Molecular basis of exopeptidase activity in the C-terminal domain of human angiotensin I-converting enzyme: insights into the origins of its exopeptidase activity // Journal of Biological Chemistry. - 2005. - V. 280, N 8. - P. 6669-6675.

Naray-Fejes-Toth A., Watlington C.O., Fejes-Toth G. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase activity in the renal target cells of aldosterone // Endocrinology. -1991. - V.129, N 1. - P. 17-21.

Nesterovitch A.B., Hogarth K.D., Adarichev V.A., Vinokour E.I., Schwartz D.E., Solway J., Danilov S.M. Angiotensin I-converting enzyme mutation (Trpl 197Stop) causes a dramatic increase in blood ACE // PLoS ONE. - 2009. - V. 4, N 12. - e8282.

Ngarmukos C., Grekin R.J. Nontraditional aspects of aldosterone physiology // American Journal of Physiology - Endocrinology and Metabolism. 2001. - V.281, N 6. - P. El 122-E1127.

Nimkarn S., New M.I. Steroid 1 lbeta-hydroxylase deficiency congenital adrenal

hyperplasia // Trends in Endocrinology and Metabolism. - 2008. - V. 19, N 3. - P. 96-99.

Nogueira E.F., Xing Y., Morris C.A.V., Rainey W.E. Role of angiotensin II-induced rapid response genes in the regulation of enzymes needed for aldosterone synthesis // Journal of Molecular Endocrinology. - 2009. - V.42, N 4. - P. 319-330. Novikova L.A., Faletrov Y.V., Kovaleva I.E., Mauersberger S., Luzikov V.N., Shkumatov V.M. From structure and functions of steroidogenic enzymes to new technologies of gene engineering // Biochemistry (Mosc). - 2009. - V.74, N 13. - P. 1482-1504.

Nyrienda M.J., Lindsay R.S., Kenyon C.J., Burchell A., Seckl J.R. Glucocorticoid exposure in late gestation permanently programs rat hepatic phosphoenolpyruvate carboxykinase and glucocorticoid receptor expression and causes glucose intolerance in adult offspring // Journal of Clinical Investigation. - 1998. - V.101, N 10.-P.2174-2181.

Oakley R.H., Cidlowski J.A. Cellular processing of the glucocorticoid receptor gene and protein: new mechanisms for generating tissue-specific actions of glucocorticoids // The Journal of Biological Chemistry. - 2011. - V.286, N 5. - P. 3177-3184.

Obut T.A., Ovsyukova M.V., Dement'eva T.Yu., Cherkasova O. P., Saryg S. K., Grigor'eva T.A. Effects of Dehydroepiandrosterone Sulfate on the Conversion of Corticosterone into 11-Dehydrocorticosterone in Stress: A Regulatory Scheme // Neuroscience and Behavioral Physiology. - 2009. - V. 39, № 7. - P. 695-699. Oda H., Lotshaw D.P., Franco Saenz R., Mulrow P.J. Local generation of angiotensin II as a mechanism of aldosterone secretion in rat adrenal capsules // Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. - 1991. - V. 196,N2.-P. 175-177.

Odermatt A., Arnold P., Stauffer A., Frey B.M., Frey F.J. The N-terminal anchor sequences of 1 lB-hydroxysteroiddehydrogenases determine their orientation in the endoplasmic reticulum membrane // Journal of Biological Chemistry. - 1999. -V.274, N 40. - P. 28762-28770.

Ortsater H., Alberts P., Warpman U., Engblom L.O., Abrahmsen L., Bergsten P. Regulation of 1 lbeta-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 and glucose-stimulated insulin secretion in pancreatic islets of Langerhans // Diabetes/Metabolism Research and Reviews. - 2005. - V.21, N 4. - P. 359-366.

Oschilewski U., Kiesel U., Kolb H. Administration of silica prevents diabetes in BB-rats // Diabetes. - 1985. - V. 34, N 2. - P.197-199.

Oster M.H., Castonguay T.W., Keen C.L., Stern J.S. Circadian rhythm of corticosterone in diabetic rats // Life Sciences. - 1988. - V.43, N 20. - P. 16431645.

Ottlecz A., Bensaoula T., Eichberg J., Peterson R.G. Angiotensin-converting enzyme activity in retinas of streptozotocin-induced and Zucker diabetic rats. The effect of angiotensin II on Na+,K(+)-ATPase activity // Investigative Ophthalmology and Visual Science. - 1996. - V. 37, N 11. - P. 2157-2164. Pacha J., Miksik I. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase in developing rat intestine // Journal of Endocrinology. - 1996. - V.148, N 3. - P.561-566. Pacha J., Miksik I. Distribution of 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase along the rat intestine // Life Sciences. - 1994. - V.54, N 11. - P.745-749. Padia S.H., Kemp B.A., Howell N.L., Fournie-Zaluski M.C., Roques B.P., Carey R.M. Conversion of renal angiotensin II to angiotensin III is critical for AT2 receptor-mediated natriuresis in rats // Hypertension. - 2008. - V.51, N 2. - P. 460465.

Parkin E.T., Turner A.J., Hooper N.M. Secretase-mediated cell surface shedding of the angiotensin-converting enzyme // Protein and Peptide Letters. - 2004. - V. 11, N 5. - P.423-432.

Parvathy S., Oppong S.Y., Karran E.H., Buckle D.R., Turner A.J., Hooper N.M. Angiotensin-converting enzyme secretase is inhibited by zincmetalloprotease inhibitors and requires its substrate to be inserted in a lipid bilayer // Biochemical Journal. - 1997. - V. 327 (Pt.l). - P. 37-43.

Passier R.C., Smits J.F., Verluyten M.J., Studer R., Drexler H., Daemen M.J. Activation of angiotensin-converting enzyme expression in infarct zone following

myocardial infarction // American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. - 1995. - V.269, N 4 (Pt.2). - P. H1268-H1276.

Paulsen S.K., Pedersen S.B., Fisker S., Richelsen B. 11[3-HSD type 1 expression in human adipose tissue: impact of gender, obesity, and fat localization // Obesity (Silver Spring).-2007.-V. 15.-P. 1954-1960.

Battiprolu P.K., Hojayev B., Jiang N., Wang Z.V., Luo X., Iglewski M., Shelton J.M., Gerard R.D., Rothermel B.A., Gillette T.G., Lavandero S., Hill J.A. Metabolic stress-induced activation of FoxOl triggers diabetic cardiomyopathy in mice // Journal of Clinical Investigation. - 2012. - V. 122, N 3. - P. 1109-1118. Peach M.J. Renin-angiotensin system, biochemistry and mechanism of action // Physiological Reviews. - 1977. - V.57, N 2. - P.313-370.

Penning T.M. Human hydroxysteroid dehydrogenases and pre-receptor regulation: insights into inhibitor design and evaluation // Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. -2011. -V. 125, N 1-2. - P. 46-56.

Penning T.M., Adamski J. Integration of steroid research: perspectives on environment factors, homeostasis in health, and disease treatment // Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. - 2011. - V. 126, Suppl.l. - P. el-e4. Pereira C.D., Azevedo I., Monteiro R., Martins M.J. 11 (3-Hydroxysteroid dehydrogenase type 1: relevance of its modulation in the pathophysiology of obesity, the metabolic syndrome and type 2 diabetes mellitus // Diabetes, Obesity and Metabolism. - 2012. - V. 14, N 10. - P. 869-881.

Pernis B. Silica and the immune system // Acta Biomedica de l'Ateneo Parmense. -2005,-Suppl. 2.-P. 38-44.

Peters J., Ganten D. Adrenal renin expression and its role in ren-2 transgenic rats TGR(mREN2)27 // Hormone and Metabolic Research. - 1998. - V.30, N 6-7. - P. 350-354.

Mesenchymal stem cells derived from bone marrow of diabetic patients portrait unique markers influenced by the diabetic microenvironment / Phadnis S.M., Ghaskadbi S.M., Hardikar A.A., Bhonde R.R. // Review of Diabetic Studies. -2009. - V.6, N 4. - P. 260-270.

Pham-Huu-Trunga M.T., Villette J.M., Bogyo A., Duclos J.M., Fiet J., Binouxa M. Effects of insulin-like growth factor I (IGF-I) on enzymatic activity in human adrenocortical cells. Interactions with ACTH // The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. - 1991. - V.39, N 6. - P. 903-909. Рое M., Wu J.K., Lin T.-Y., Hoogsteen K., Bull H.G., Slater E.E. Renin cleavage of a human kidney rennin substrate analogous to human angiotensinogen, H-Asp-Arg-Val-Tyr-Ile-His-Pro-Phe-His-Leu-Val-Ile-His-Ser-OH, that is human renin specific and is resistant to cathepsin D // Analytical Biochemistry. - 1984. - V.140, N2.-P. 459-467.

Prader A. Hereditary defects of adrenal cortical steroid biosynthesis // Progress in Clinical and Biological Research. - 1985. - V.200. - P. 219-231. Pralong F.P., Roduit R. L., Waeber G., Castillo E., Mosimann E., Thorens В., Gaillard L.C. Leptin inhibits directly glucocorticoid secretion by normal human and rat adrenal gland // Endocrinology. - 1998. - V.139, N 10. - P. 4264-4268. Pratt W.B., Morishima Y., Murphy M., Harrell M. Chaperoning of glucocorticoid receptors // Handbook of experimental pharmacology. - 2006. - V.259. - P.1161-1165.

Qi D., Rodrigues B. Glucocorticoids produce whole body insulin resistance with changes in cardiac metabolism // American Journal of Physiology - Endocrinology and Metabolism. - 2007. - V.292, N 3. - P. E654-E667.

Qi W.W., Zhong L.Y., Li X.R., Li G., Liu Z.X., Hu J.F., Chen N.H. Hyperglycemia induces the variations of 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 and peroxisome proliferator-activated receptor-y expression in hippocampus and hypothalamus of diabetic rats // Exp Diabetes Res. - 2012. - V. 2012. - Article ID 107130, 9 pages. - doi:10.1155/2012/107130:107130. Найти места в обсуждении, НИСАГ

Qin W., Rudolph A.E., Bond B.R., Rocha R., Blomme E.A., Goellner J.J., Funder J.W., McMahon E.G. Transgenic model of aldosterone-driven cardiac hypertrophy and heart failure // Circulation Research. - 2003. - V.93, N 1. - P.69-76. Quinkler M. Troeger H., Eigendorff E., Maser-Gluth C., Stiglic A., Oelkers W. V

Bahr V., Diederich S. Enhanced 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 activity in stress adaptation in the guinea pig // Journal of Endocrinology. - 2003. - V. 176. -P. 185-192.

Quirk S.J., Slattery J.A., Funder J.W. Epithelial and adipose cells isolated from mammary glands of pregnant and lactating rats differ in 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase activity // Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. - 1990. - V.37, N 4. - P. 529-534.

Rajan V., Edwards C.R., Seckl J.R. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase in cultured hippocampal cells reactivates inert 11 -dehydrocorticosterone, potentiating neurotoxicity// Journal ofNeuroscience. - 1996. - V.16, N 1. - P. 65-70. Ramchandran R., Kasturi S., Douglas J.G., Sen I. Metalloprotease-mediated cleavage secretion of pulmonary ACE by vascular endothelial and kidney epithelial cells // American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. -1996. - V. 271, N 2 (Pt.2). - P. H744-751.

Ramos-Nino M.E., Blumen S.R. Benefits of ACE inhibitors in diabetes // Clinical Medicine: Therapeutics. - 2009. - V. 1. - P. 1041-1051.

Rao K.M.K., Porter D.W., Meighan T., Castranova V. The sources of inflammatory mediators in the lung after silica exposure // Environmental Health Perspectives. - 2004. - V. 112, N 17. - P. 1679-1685.

Raza K., Hardy R., Cooper M.S. The 1 lb-hydroxysteroid dehydrogenase enzymes—arbiters of the effects of glucocorticoids in synovium and bone // Rheumatology. - 2010. - V.49, N 11. - P. 2016-2023.

Redekopp C., Irvine C.H., Donald R.A., Livesey J.H., Sadler W., Nicholls M.G., Alexander S.L., Evans M.J. Spontaneous and stimulated adrenocorticotropin and vasopressin pulsatile secretion in the pituitary venous effluent of the horse // Endocrinology. - 1990.-V.118,N4.-P. 1410-1416.

Reddy T.E., Pauli F., Sprouse R.O., Neff N.F., Newberry K.M., Garabedian M.J., Myers R.M. Genomic determination of the glucocorticoid response reveals unexpected mechanisms of gene regulation // Genome Research. - 2009. - V. 19, N 12. - P. 2163-2171.

Ricketts M.L., Shoesmith K.J., Hewison M., A Strain A., Eggo M.C., Stewart P.M. Regulation of 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase type 1 in primary cultures of rat and human hepatocytes // Journal of Endocrinology. - 1998. - V. 156, N 1. - P. 159168.

Riddle M.C., McDaniel P.A. Renal 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase activity is enhanced by ramipril and captopril // Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. - 1994. - V.78, N 4. - P. 830-834.

Riedemann T., Patchev A.V., Cho K, Almeida O. F.X. Corticosteroids: way upstream // Molecular Brain. - 2010. - V.3, N 2. - P. 2-20.

Ripka J.E., Ryan J.W., Valido F.A., Chung A.Y.K., Peterson C.M., Urry R.L. N-glycosylation of forms of angiotensin converting enzyme from four mammalian spesies // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 1993. -V.196, N 2. - P. 503-508.

Roberge C., Carpentier A.C., Langlois M.F., Baillargeon J.P., Ardilouze J.L., Maheux P., Gallo-Payet N. Adrenocortical dysregulation as a major player in insulin resistance and onset of obesity // American Journal of Physiology -Endocrinology and Metabolism. - 2007. - V.293, N 6. - P. E1465-E1478. Roelfsema F., Keenan D.M., Veldhuis J.D. Endogenous ACTH concentration-cortisol secretion dose analysis unmasks decreased ACTH potency in Cushing's disease with restoration after successful pituitary adenomectomy // Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. - 2011. - V.96, N 12. - P. 3768-3774. Roger V.L., Go A.S., Lloyd-Jones D.M. Heart disease and stroke statistics—2011 update: a report from the American Heart Association // Circulation. - 2011. -V.123, N 4. - P. el8-e209.

Roks A., Buikema H., Pinto Y.M., van Gilst W.H. The renin-angiotensin system and vascular function. The role of angiotensin II, angiotensin-converting enzyme, and alternative conversion of angiotensin I // Heart and Vessels. - 1997. - Suppl 12. -P. 119-214.

Roland B.L., Funder J.W. Localization of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase type 2 in rat tissues: in situ studies // Endocrinology. - 1996. - V.137, N 3. - P.

1123-1128.

Rom W.N. Role of oxidants in interstitial lung diseases: pneumoconioses, constrictive bronchiolitis, and chronic tropical pulmonary eosinophilia // Mediators of Inflammation. 2011. - V. 2011. - Article ID 407657, 5 pages. -http://dx.doi.Org/10.l 155/2011/407657.

Romero D.G., Gomez-Sanchez E.P., Gomez-Sanchez C.E. Angiotensin Deregulated transcription regulatory genes in adrenal steroidogenesis // Physiological Genomics. - 2010. - V.42A, N 4. - P. 259-266.

Romero D.G., Rill S., Plonczynski M.W., Yanes L.L., Zhou M.Y., Gomez-Sanchez E.P., Gomez-Sanchez C.E. Adrenal transcription regulatory genes modulated by angiotensin II and their role in steroidogenesis // Physiological Genomics. - 2007. - V.30, N 1. - P. 26-34.

Ross J.T., McMillen I.C., Adams M.B., Coulteret C.L. A premature increase in circulating Cortisol suppresses expression of 1 lbeta hydroxy steroid dehydrogenase type 2 messenger ribonucleic acid in the adrenal of the fetal sheep // Biology of reproduction. - 2000. - V.62, N 5. - P. 1297-1302.

Rosmond R, Bjorntorp P. The hypothalamic-pituitary-adrenal axis activity as a predictor of cardiovascular disease, type 2 diabetes and stroke // Journal of Internal Medicine. - 2000. - V. 247, N 2. - P. 188-197.

Rossi G.P., Sacchetto A., Cesari M., Pessina A.C. Interactions between endothelin-1 and the renin-angiotensin-aldosterone system // Cardiovascular Research. - 1999. - V.43, N 2. - P. 300-307.

Riister C., Wolf G. Renin-angiotensin-aldosterone system and progression of renal disease // Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 2006. - V.17, N 11. - P. 2985-2991.

Rusvai E., Naray-Fejes-Toth A. A new isoform of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in aldosterone target cells // Journal of Biological Chemistry. -1993. - V.268, N 15. - P. 10717-10720.

Sadhukhan R., Sen G.C., Ramachandran R., Sen I. The distal ectodomain of angiotensin-converting enzyme regulates its cleavage-secretion from the cell

surface // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 1998. - V.95, N 1. - P. 138-143.

Saijonmaa O., Nyman T., Fyhrquist F. Downregulation of angiotensin-converting enzyme by tumor necrosis factor-alpha and interleukin-lbeta in cultured human endothelial cells // Journal of Vascular Research. - 2001. - V. 38 - P. 370-378. Sakai M., Biwa T., Matsumura T., Takemura T., Matsuda H., Anami Y., Sasahara T., Kobori S., Shichiri M. Glucocorticoid inhibits oxidized LDL-induced macrophage growth by suppressing the expression of granulocyte/macrophage colony-stimulating factor // Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. -1999. - V. 19, N 7. - P. 1726-1733.

Sanderson J.T. The steroid hormone biosynthesis pathway as a target for endocrine-disrupting chemicals // Toxicological Sciences. - 2006. - V.94, N 1. - P. 3-21.

Sarzani R., Fallo F., Dessi Fulgheri P., Pistorello M., Lanari A., Paci V.M., Mantero F., Rappelli A. Local renin-angiotensin system in human adrenals and aldosteronomas // Hypertension. - 1992. - V. 19, N 6 (Pt.2). - P. 702-707. Sato A., Suzuki H., Murakami M., Nakazoto Y., Iwaita Y., Saruta T. Glucocorticoid increases angiotensin II type 1 receptor and its gene expression // Hypertension. - 1994. - V.23,N 1. - P. 25-30.

Sayes C.M., Reed K.L., Warheit D.B. Assessing toxicity of fine and nanoparticles: comparing in vitro measurements to in vivo pulmonary toxicity profiles // Toxicological Sciences. - 2007. - V. 97, N 1. - P. 163-180.

Schacke H. Mechanisms involved in the side effects of glucocorticoids / Schacke

H., Docke W.D., Asadullah K. // Pharmacology & Therapeutics. - 2002. - V.96, N

I. - P. 23-43.

Scholzen T.E., Luger T.A. Neutral endopeptidase and angiotensin-converting enzyme - key enzymes terminating the action of neuroendocrine mediators // Experimental Dermatology. - 2004. - V. 3, N 4. - P. 22-26.

Schroth M., Plank C., Rauh M., Dorr H.G., Rascher W., Dotsch J. Pediatric renal allograft transplantation does not normalize the increased cortisol/cortisone ratios

of chronic renal failure // European Journal of Endocrinology. - 2006. - V. 154, N 4.-P. 555-561.

Seckl J.R. 11 P-Hydroxysteroid Dehydrogenase in the Brain: A Novel Regulator of Glucocorticoid Action? // Frontiers in Neuroendocrinology. - 1997. - V.18, N 1. -P. 49-99.

Seckl J.R., Walker B.R. Minireview: 11 P-Hydroxysteroid Dehydrogenase Type 1— A Tissue-Specific Amplifier of Glucocorticoid Action // Endocrinology. -2001. - V.142, N 4. - P. 1371-1376.

Selyatitskaya V.G., Palchikova N.A., Kuznetsova N.V. Adrenocortical system activity in alloxan-resistant and alloxan-susceptible Wistar rats // Journal of Diabetes Mellitus. - 2012. - Vol.2, N 2. - P. 165-169.

Tripathi S.S., Pandey H.P., Paul B. Overview of cytokines and receptors in Silicosis // Journal of Applied Pharmaceutical Science. - 2011. - V. 1, N 5. - P. 1-5. Shapiro A., Matheny M., Zhang Y., Turner N., Cheng K.Y., Rogrigues E., Zolotukhin S., Scarpace P.J. Synergy between leptin therapy and a seemingly negligible amount of voluntary wheel running prevents progression of dietary obesity in leptin-resistant rats // Diabetes. - 2008. - V.57, N 3. - P. 614-622. Shkurupiy V.A, Palchikova N.A., Selyatitskaya V.G., Makarova O.P., Kuznetsova N.V., Kuzminova O.I. Silica inflammation modulate lipoperoxide and thiobarbituric acid reactive sybstances levels in liver and glucose concentration in blood of alloxan diabetic rats // Modern Research in Inflammation. - 2012. - Vol. 1, No.2. - P.19-25.

Shelat S.G., Flanagan-Cato L.M., Fluharty S.J. Glucocorticoid and mineralocorticoid regulation of angiotensin II type 1 receptor binding and inositol triphosphate formation in WB cells // Journal of Endocrinology. - 1999. - V.162, N 3. - P. 381-391.

Shimojo M., Whorwood C.B., Stewart P.M. 11 beta-Hydroxy steroid dehydrogenase in the rat adrenal // Journal of Molecular Endocrinology. - 1996. -V.17, N 2. - P. 121-130.

Skirgello O.E., Binevski P.V., Pozdnev V.F., Kost O.A. Kinetic probes for inter-

domain co-operation in human somatic angiotensin-converting enzyme // Biochemical Journal. - 2005. - V. 391 (Pt. 3). - P. 641-647.

Skyler J.S. Cellular therapy for type 1 diabetes: has the time come? // JAMA. -2007. - V. 297, N 14. - P. 1599-1600.

Sladek C.D., Chen Y-H., Aravich P.F., Blair M.L. Osmotic regulation of vasopressin and rennin in spontaneously hypertensive rats // Hypertension.- 1987.-V. 10.-P. 476-483.

Slight S.H., Ganjam V.K., Gomez-Sanchez C.E., Zhou M.Y., Weber K.T. High affinity NAD(+)-dependent 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in the human heart // Journal of Molecular and Cellular Cardiology. - 1996. - V.28, N 4. - P. 781-787.

So A.Y.-L., Bernal T.U., Pillsbury M.L., Yamamoto K.R, Feldman B.J. Glucocorticoid regulation of the circadian clock modulates glucose homeostasis // PNAS. - 2009. - V.106, N 41. - P.17582-17587.

Sorrells S.F., Caso J.R., Munhoz C.D., Sapolsky R.M. The stressed CNS: when glucocorticoids aggravate inflammation //Neuron. - 2009. - V. 64, N 1. - P. 33-39. Sowers J.R., Whaley-Connell A., Murray E. Narrative review: the emerging clinical implications of the role of aldosterone in the metabolic syndrome and resistant hypertension // Annals of Internal Medicine. - 2009. - V.150, N 11. - P. 776-783.

Spillantini M.G., Panconesi A., Del Bianco P.L., Sicuteri F. Enkephalinase and angiotensin converting enzyme activities in human venous and arterial plasma // Neuropeptides. - 1986. - V.8, N 2. - P. 111-117.

Stellato C. Post-transcriptional and nongenomic effects of glucocorticoids // Proceedings of the American Thoracic Society. - 2004. - V. 1, N 3. - P. 255-263. Sternberg E.M. Neuroendocrine regulation of autoimmune/inflammatory disease // Journal of Endocrinology. - 2001. - V. 169, N 3. - P. 429-435. Stewart P.M., Whorwood C.B., Barber P., Gregory J., Monder C., Franklyn J.A., Sheppard M.C. Localization of renal 11 beta-dehydrogenase by in situ hybridization: autocrine not paracrine protector of the mineralocorticoid receptor //

Endocrinology. - 1991. - V. 128, N4. - P. 2129-2135.

Stewart P.M., Whorwood C.B., Mason J.I. Type 2 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in foetal and adult life // Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. - 1995. - V.55, N 5-6. - P. 465-471.

Stranahan A.M., Arumugam T.V., Cutler R.G., Lee K., Egan J.M., Mattson M.P. Diabetes impairs hippocampal function through glucocorticoid-mediated effects on new and mature neurons // Nature Neuroscience. - 2008. - V. 11, N 3. - P. 309-317. Strawn W.B., Richmond R.S., Ann Tallant E., Gallagher P.E., Ferrario C.M. Renin-angiotensin system expression in rat bone marrow haematopoietic and stromal cells // British Journal of Haematology. - 2004. - V.126, N 1. - P. 120-126. Lee S.H., Yoo T.H., Nam B.Y., Kim D.K., Li J.J., Jung D.S., Kwak S.J., Ryu D.R., Han S.H., Lee J.E., Moon S.J., Han D.S., Kang S.W. Activation of local aldosterone system within podocyte is involved in apoptosis under diabetic conditions // American Journal of Physiology - Renal Fluid and Electrolyte Physiology. - 2009. - V. 297, N 5. - P. F1381-F1390.

Suzuki Y., Ruiz-Ortega M., Lorenzo O., Ruperez M., Esteban V., Egido J. Inflammation and angiotensin II // International Journal of Biochemistry & Cell Biology. - 2003. - V. 35, N 6. - P. 881-900.

Syed A.A., Weaver J.U. Glucocorticoid Sensitivity: The Hypothalamic-Pituitary-Adrenal-Tissue Axis // Obesity Research. - 2005. - V. 13, Issue 7. - P. 1131— 1133.

Szkudelski T. The mechanism of alloxan and streptozotocin action in B cells of the rat pancreas // Physiol Res. - 2001. - V. 50(6). - P. 537-46.

Takeda R., Takeda Y. 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase and steroid receptors // Nippon Naibunpi Gakkai Zasshi. - 1992. - V. 68, N 7. - P. 658-664. Thiel G., Rossler O.G. Immediate-early transcriptional response to angiotensin II in human adrenocortical cells // Endocrinology. - 2011. - V. 152, N 11. - P. 42114223.

Thieme K., Eguti D.M., Mello-Aires M., Oliveira-Souza M. The effect of angiotensin II on intracellular pH is mediated byATl receptor translocation //

American Journal of Physiology - Cell Physiology. - 2008. - V.295, N 1. - P. C138-C145.

Thieringer R., Le Grand C.B., Carbin L., Cai T.Q., Wong B., Wright S.D., Hermanowski-Vosatka A. 11 (3-Hydroxysteroid dehydrogenase type 1 is induced in human monocytes upon differentiation to macrophages // Journal of Immunology. -2001.-V. 167, N 1.-P. 30-35.

Tiwari R.R., Karnik A.B., Sharma Y.K. Silica exposure and serum angiotensin converting enzyme activity // International Journal of Occupational and Environmental Medicine. - 2010. - V. 1, N 1. - P. 21-28.

Toogood A.A., Taylor N.F., Shalet S.M., Monson J.P. Modulation of Cortisol metabolism by low-dose growth hormone replacement in elderly hypopituitary patients // Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. - 2000. - V. 85, N 4. -P. 1727-1730.

Torres A., Iniguez G., Ferrario M., Mericq V. Differences in Expression, Content, and Activity of 11(3-HSD1 in Adipose Tissue between Obese Men and Women // International Scholarly Research Network Endocrinology. - 2012. - V. 2012. -Article ID 787201, 8 pages. - doi: 10.5402/2012/787201

Tomlinson J.W., Walker E.A., Bujalska I.J., Draper N., Lavery G.G., Cooper M.S., Hewison M., Stewart P.M. 1 l|3-Hydroxysteroid Dehydrogenase Type 1: A Tissue-Specific Regulator of Glucocorticoid Response // Endocrine Reviews. - 2004. - V. 25, N5.-P. 831-866.

Trifanescu R-A., Poiana C. Update in endocrinology - primary hyperaldosteronism

- from secondary hypertension towards metabolic syndrome and beyond // Maedica-A Journal of Clinical Medicine. - 2012. - V.7, N 1. -P. 90-91.

Ueshiba H., Shimizu Y., Hiroi N., Yakushiji F., Shimojo M., Tsuboi K., Miyachi Y. Decreased steroidogenic enzyme 17,20-lyase and increased 17-hydroxylase activities in type 2 diabetes mellitus // European Journal of Endocrinology. - 2002.

- V. 146, N3.-P. 375-380.

Peripheral benzodiazepine receptor in cholesterol transport and steroidogenesis / Papadopoulos V., Amri H., Boujrad N., Cascio C., Culty M., Gamier M.,

Hardwick M., Li H., Vidic B., Brown A.S., Reversa J.L., Bernassau J.M., Drieu K. // Steroids. - 1997. - V.62,N 1.- P. 21-28.

van Berlo D., Knaapen A.M., van Schooten F.J., Schins R.P., Albrecht C. NF-kB dependent and independent mechanisms of quartz-induced proinflammatory activation of lung epithelial cells // Particle and Fibre Toxicology. - 2010. - V. 7. -P. 13-20.

van den Akker E.L., Koper J.W., van Rossum E.F., Dekker M.J., Russcher H., de Jong F.H., Uitterlinden A.G., Hofman A., Pols H.A., Witteman J.C., Lamberts S.W. Glucocorticoid receptor gene and risk of cardiovascular disease // Archives of Internal Medicine. - 2008. - V. 168, N 1. - P. 33-39.

van Haarst A.D., Welberg L.A., Sutanto W., Oitzl M.S., de Kloet E. 11 beta-Hydroxysteroid dehydrogenase activity in the hippocampus: implications for in vivo corticosterone receptor binding and cell nuclear retention // Journal of Neuroendocrinology. - 1996. - V.8, N 8. - P. 595-600.

Vauquelin G., Michotte Y., Smolders I, Sarre S., Ebinger G., Dupont A., Vanderheyden P. Cellular targets for angiotensin II fragments: pharmacological and molecular evidence // Journal of the Renin-Angiotensin-Aldosterone System. -2002. - V.3,N4. - P. 195-204.

Velletri P.A. Testicular angiotensin-converting enzyme (E.C. 3.4.15.1) // Life Sciences. - 1985. - V.36, N 17. - P. 1597-1608.

Vihma V., Tikkanen M.J. Fatty acid esters of steroids: Synthesis and metabolism in lipoproteins and adipose // Journal of Steroid Biochemistry & Molecular Biology. - 2011. - V.124, N 3-5. - P. 65-76.

Vicennati V., Pasquali R. Abnormalities of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis in nondepressed women with abdominal obesity and relations with insulin resistance: evidence for a central and a peripheral alteration // The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. - 2000. - V. 85, N 11. - P. 4093-4098. Vinson G.P., Whitehouse B.J., Thody A.J. a-MSH at physiological concentrations stimulates "Late pathway" steroid products in adrenal zona glomerulosa cells from sodium restricted rats//Peptides. 1981. - V.2, N 2. - P. 141-144.

Vinson G.P. Angiotensin II, corticosteroids, type II diabetes and the metabolic syndrome // Medical Hypotheses. - 2007. - V.68, N 6. - P. 1200-1207. Vogeser M., Zachoval R., Felbinger T.W., Jacob K. Increased ratio of serum Cortisol to cortisone in acute-phase response // Hormone Research. - 2002. - V. 58, N4.-P. 172-175.

Voice M.W., Seckl J.R., Edwards C.R.W., Chapman K.E. 11 |3-Hydroxysteroid dehydrogenase type 1 expression in 2S FAZA hepatoma cells is hormonally regulated: a model system for the study of hepatic glucocorticoid metabolism // Biochemical Journal. - 1996. - V.317 (Pt.2). - P. 621-625.

Volin P. High-performance liquid chromatographic analysis of corticosteroids // Journal of Chromatography B: Biomedical Applications. - 1995. - V. 671, N 1-2. -P. 319-340.

Vranic M. Odyssey between Scylla and Charybdis through storms of carbohydrate metabolism and diabetes: a career retrospective // Am J Physiol Endocrinol Metab. - 2010. - V. 299. - P. E849-E867.

Walker B.R. Glucocorticoids and cardiovascular disease // European Journal of Endocrinology. - 2007. - V.157, N 5. - P. 545-559.

Walker B.R. Extra-adrenal regeneration of glucocorticoids by 1 lb-hydroxysteroid dehydrogenase type 1: physiological regulator and pharmacological target for energy partitioning // Proceedings of the Nutrition Society. - 2007. - V. 66. - P. 18.

Walker E.A., Ahmed A., Lavery G.G., Tomlinson J.W., Kim S.Y., Cooper M.S., Ride J.P., Hughes B.A., Shackleton C.H., McKiernan P., Elias E., Chou J.Y., Stewart P.M. 1 lbeta-Hydroxysteroid Dehydrogenase Type 1 Regulation by Intracellular Glucose 6-Phosphate Provides Evidence for a Novel Link between Glucose Metabolism and Hypothalamo-Pituitary-Adrenal Axis Function // Journal of Biological Chemistry. - 2007. - V.282, N 37. - P. 27030-27036. Wang M. The role of glucocorticoid action in the pathophysiology of the Metabolic Syndrome // Nutrition & Metabolism. - 2005. - V. 2 (3). - P. 1-

14. - doi: 10.1186/1743-7075-2-3

Warnerf J., Lubel J.S., Mccaughan G.W., Angus P.W. Liver fibrosis: a balance of ACEs? // Clinical Science. - 2007. - V. 113, N 3. - P. 109-118. Watts L.M., Manchem V.P., Leedom T.A., Rivard A.L., McKay R.A., Bao D., Neroladakis T., Monia B.P., Bodenmiller D.M., Cao J.X., Zhang H.Y., Cox A.L., Jacobs S.J., Michael M.D., Sloop K.W., Bhanot S. Reduction of hepatic and adipose tissue glucocorticoid receptor expression with antisense oligonucleotides improves hyperglycemia and hyperlipidemia in diabetic rodents without causing systemic glucocorticoid antagonism // Diabetes. - 2005. - V.54, N 6. - P. 18461853.

Webster Marketon J.I., Glaser R. Stress hormones and immune function // Cell Immunol. - 2008. - V. 252, N 1-2. - P. 16-26.

Wehbi G.J., Zimpelmann J., Carey R.M., Levine D.Z., Burns K.D. Early streptozotocin-diabetes mellitus downregulates rat kidney AT2 receptors // American Journal of Physiology - Renal Fluid and Electrolyte Physiology. - 2001. -V. 280, N2. - P. F254-F265.

Wei L., Alhenc-Gelas F., Corvol P., Clauser E. The two homologous domains of human angiotensin I-converting enzyme are both catalytically active // Journal of Biological Chemistry. - 1991. - V.266,N 14. - P. 9002-9008. Wake D.J., Homer N.Z.M., Andrew R., Walker B.R. Acute In Vivo Regulation of 11 p-Hydroxysteroid Dehydrogenase Type 1 Activity by Insulin and Intralipid Infusions in Humans // The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. -2006. - V. 91(11). P. 4682^4688.

Welham S.J.M. Programmed repression of tubular 11(3-HSD2—a novel form of AME? //Nephrol Dial Transplant. - 2010. - V. 25. - P. 3136-3138. White P.C., Mune T., Agarwal A.K. 11 P-Hydroxysteroid Dehydrogenase and the Syndrome of Apparent Mineralocorticoid Excess // Endocrine Reviews. - 1997. -V. 18, N 1. - P. 135-156.

White P.C., Rogoff D., McMillan D.R., Lavery G.G. Hexose 6-phosphate

dehydrogenase (H6PD) and corticosteroid metabolism // Molecular and Cellular Endocrinology. - 2007. - V. 265-266. - P. 89-92.

Whitworth J.A., Stewart P.M., Burt D., Atherden S.M., Edwards C.R. The kidney is the major site of cortisone production in man // Clin Endocrinol. - 1989. - V. 31. -P. 335-361.

Whorwood C.B., Barber P.C., Gregory J., Sheppard M.C. Stewart P.M. 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase and corticosteroid hormone receptors in rat colon // American Journal of Physiology. - 1993. - V.264, N 6 (Pt.l). - P. E951-E957. Whorwood C.B., Donovan S.J., Flanagan D., Phillips D.I., Byrne C.D. Increased glucocorticoid receptor expression in human skeletal muscle cells may contribute to the pathogenesis of the metabolic syndrome // Diabetes. - 2002. - V.51, N 4. - P. 1066-1075.

Whorwood C.B., Donovan S.J., Wood P.J., Phillips D.I. Regulation of glucocorticoid receptor a and (3 isoforms and type I 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase expression in human skeletal muscle cells: a key role in the pathogenesis of insulin resistance? // Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. - 2001. - V.86, N 5. - P. 2296-2308.

Whorwood C.B., Franklyn J.A., Sheppard M.C. Stewart P.M. Tissue localization of 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase and its relationship to the glucocorticoid receptor // Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. - 1992. - V.41, N 1. - P. 21-28.

Whorwood C.B., Firth K.M., Budge H., Symonds M.E. Maternal Undernutrition during Early to Midgestation Programs Tissue-Specific Alterations in the Expression of the Glucocorticoid Receptor, 1113-Hydroxysteroid Dehydrogenase Isoforms, and Type 1 Angiotensin II Receptor in Neonatal Sheep // Endocrinology. - 2001. - V.142, N 7. - P. 2854-2864.

Whorwood C.B., Ricketts M.L., Stewart P.M. Epithelial cell localization of type 2 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase in rat and human colon // Endocrinology. -1994. - V.135, N 6. - P. 2533-2541.

Rainey W.E. Adrenal zonation: clues from 1 lb-hydroxylase and aldosterone

217

synthase // Molecular and Cellular Endocrinology. - 1999. - V.l51, N 1-2. - P. 151160.

UK Prospective Diabetes Study (UKPDS) Group. Intensive blood-glucose control with sulphonylureas or insulin compared with conventional treatment and risk of complications in patients with type 2 diabetes (UKPDS 33) // Lancet. - 1998. - V. 352.-P. 837-853.

Williams A.O., Knapton A.D. Hepatic silicosis, cirrhosis, and liver tumors in mice and hamsters: studies of transforming growth factor beta expression // Hepatology. - 1996. - V .23, N 5. - P. 1268-1275.

Williams G.H. Aldosterone biosynthesis, regulation, and classical mechanism of action // Heart Failure Reviews. - 2005. - V.l0, N 1. - P. 7-13. Williams J.S., Williams G.H. 50th Anniversary of Aldosterone // Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. - 2003. - V.88, N 6. - P. 2364-2372. Williams K.J., Liu M.L., Zhu Y., Xu X., Davidson W.R., McCue P., Sharma K. Loss of heparan N-sulfotransferase in diabetic liver: role of angiotensin II // Diabetes. - 2005. - V.54, N 4. - P. 1116-1122.

Winnick J.J., Ramnanan C.J., Saraswathi V., Roop J., Scott M., Jacobson P., Jung P., Basu R., Cherrington A.D., Edgerton D.S. Effects of 11 (3-hydroxysteroid dehydrogenase-1 inhibition on hepatic glycogenolysis and gluconeogenesis // American Journal of Physiology - Endocrinology and Metabolism. - 2013. - V. 304, N 7. - P. E747-E756.

Witteles R.M., Fowler M.B. Insulin-resistant cardiomyopathy clinical evidence, mechanisms, and treatment options // Journal of the American College of Cardiology. - 2008. - V.51, N 2. - P. 93-102. (HHCAT)

Woodman Z.L., Oppong S.Y., Cook S., Hooper N.M., Schwager S.L., Brandt W.F., Ehlers M.R., Sturrock E.D. Shedding of somatic angiotensin-converting enzyme (ACE) is inefficient compared with testis ACE despite cleavage at identical stalk sites // Biochemical Journal. - 2000. - V. 347 (Pt.3). - P. 711-718. Woods A.M., Judd A.M. Interleukin-4 increases Cortisol release and decreases adrenal androgen release from bovine adrenal cells // Domestic Animal

Endocrinology. - 2008. - V. 34, N 4. - P. 372-382.

Wysocki J., Ye M., Soler M.J., Gurley S.B., Xiao H.D., Bernstein K.E., Coffman T.M., Chen S., Batlle D. ACE and ACE2 activity in diabetic mice // Diabetes. -2006. - V.55, N 7. - P.2132-2139.

Xing Y., Rainey W.E., Apolzan J. W., Francone O. L., Harris R. B. S., Bollag W. B. Adrenal cell aldosterone production is stimulated by very-low-density lipoprotein (VLDL) // Endocrinology. - 2012. - V. 153, N. 2. - P. 721-731. Yao B., Harris R.C., Zhang M.Z. Interactions between 11-hydroxysteroid dehydrogenase and COX-2 in kidney // American Journal of Physiology -Regulatory Integrative and Comparative Physiology. - 2005. - V.288, N 6. - P. R1767-R1773.

Yau J.L., Van Haarst A.D., Moisan M.P., Fleming S., Edwards C.R., Seckl J.R. 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase mRNA expression in rat kidney // American Journal of Physiology. - 1991. - V.260, N 5 (Pt.2). - P. F764-F767. Ye M., Wysocki J., Naaz P., Salabat M.R., LaPointe M.S., Batlle D. Increased ACE 2 and decreased ACE protein in renal tubules from diabetic mice: a renoprotective combination? // Hypertension. - 2004. - V.43, N 5. - P.1120-1125. Yehuda R., Seckl J. Minireview: Stress-Related Psychiatric Disorders with Low Cortisol Levels: A Metabolic Hypothesis // Endocrinology. - 2011. - V. 152. - P. 4496-4503.

Yoshimoto T., Hirata Y., Aldosterone as cardiovascular risk hormone // Endocrine Journal. - 2007. - V. 54, N 3. - 339-370.

Yu L., Zheng M., Wang W., Rozanski G.J., Zucker I.H., Gao L. Developmental changes in ATI and AT2 receptor-protein expression in rats // Journal of Renin-Angiotensin-Aldosterone System. - 2010. - V.l 1, N 4. - P. 214-221. Zhuo J., Moeller I., Jenkins T., Chai S.Y., Allen A.M., Ohishi M., Mendelsohn F.A. Mapping tissue angiotensin-converting enzyme and angiotensin ATI, AT2 and AT4 receptors // Journal of Hypertension. - 1998. - V.12 (Pt.2). - P. 20272037.

Zimpelmann J., Kumar D., Levine D.Z., Wehbi G., Imig J.D., Navar L.G., Burns

K.D. Early diabetes mellitus stimulates proximal tubule renin mRNA expression in the rat // Kidney International. - 2000. - V. 58, N 6. - P. 2320-2330. Zhou M.Y., Gomez-Sanchez E.P., Cox D.L., Cosby D., Gomez-Sanchez C.E. Cloning, expression, and tissue distribution of the rat nicotinamide adenine dinucleotide-dependent 11 beta-hydroxysteroid dehydrogenase // Endocrinology. 1995. V. 136. N 9. P. 3729-3734. .

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.