Агонист-индуцированный и депо-управляемый вход кальция в клетки А431 тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.25, кандидат биологических наук Гусев, Константин Олегович

• Гусев, Константин Олегович
• кандидат биологических наук
• 2003

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Гусев, Константин Олегович

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИИ.

ВВЕДЕНИЕ.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Глава 1. Регуляция концентрации свободных ионов кальция в цитоплазме.

Поддержание [Са2+]^ на низком уровне.

Агонист-чувствительные Са2+-депо.

Кальций и митохондрии.

Кальций и ядро.

Глава 2. Р1Р2 как модулятор активности ионных каналов и переносчиков. Метаболизм 1Р3. Рецептор 1Р3.

Наработка Р1Р2 и его роль в регуляции ионных каналов и переносчиков.

Метаболизм 1Рз.

Рецептор 1Р^ эндоплазматического ретикулума.

Глава 3. Вход Са2+ из внеклеточной среды в ответ на опустошение внутриклеточных Са2+-депо.

ОМС-каналы.

Другие БОС-каналы.

Регуляция БОС-каналов.

Глава 4. Семейство ТКР-каналов.

ТЯР- и ТЯРЬ-каналы ВгозоркИа melanogaster.

ТЯР-семейство каналов в клетках млекопитающих.

Глава 5. Механизмы активации 80С-каналов.;.

Глава 6. Миниатюрные кальциевые каналы клеток А431.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Агонист-индуцированный и депо-управляемый вход кальция в клетки А431»

Одним из основных способов передачи сигнала от рецепторов плазматической мембраны к внутриклеточным структурам является повышение концентрации свободных ионов кальция в цитоплазме ([Ca2+]j). За счет регулируемых изменений [Са ]{ клетки способны контролировать различные процессы, такие как секреция, сокращение, пролиферация и регуляция экспрессии генов. В невозбудимых клетках рецептор-индуцированные изменения [Са2+], обычно включают две составляющие: быстрое, кратковременное высвобождение Са2+ из Са2+-депо (представленных, по-видимому, эндоплазматическим ретикулумом (ЭР) или его субкомпартментами) и последующий медленный, но продолжительный вход внеклеточного Са2+. Стимуляция рецепторов, сопряженных с G-белками или тирозиновыми киназами приводит к активации PLC и гидролизу фосфатидилинозитол-4,5-бисфосфата (Р1Р2) до инозитол-1,4,5-трисфосфата (1Р3) и диацилглицерина (DAG). Связывание 1Р3 со своим рецептором (IP3R), являющимся катионным каналом эндоплазматического ретикулума, приводит к высвобождению Са2+ из внутриклеточных депо. В результате опустошения Са -депо, начинают активироваться депо-управляемые катионные (SOC) каналы, обеспечивающие вход Са2+ в клетку. Благодаря входу Са2+, его концентрация в цитоплазме поддерживается длительное время на высоком уровне, что приводит к запуску Са2+-зависимых сигнальных каскадов и к восстановлению запасов Са2+ в депо.

На текущий момент, наиболее исследованным депо-управляемым путем входа Са2+ является высокоселективный для Са2+ ток через CRAC-каналы. Многочисленные данные говорят и о наличии в клетках менее селективных для Са SOC-каналов. Однако депо-управляемые каналы до сих пор не определены на молекулярном уровне, а также не выявлено их специфического ингибитора, что затрудняет их исследования.

В данной работе мы исследовали депо-управляемый вход Са2+ в клетки А431. Мы показали, что как при действии. агониста, функционально сопряженного с фосфолипазой С, так и при пассивном опустошении Са2+ депо в клетках А431 развивается два типа токов - первый имеет характерную для CRAC-каналов форму вольтамперной кривой и высоко селективен для Са2+, в то время как второй, менее селективный ток, был нами сопоставлен с активацией Imin-каналов, описанных нами ранее. Также был зарегистрирован ток, не зависящий от опустошения Са2+-депо, опосредованный, по-видимому, активацией М1С-каналов.

Также мы показали, что PIP2 модулирует активность 1т;п-каналов в физиологических условиях. При этом активация PLC и гидролиз Р1Р2 приводит к синергичному эффекту - повышению чувствительности комплекса IP3R-Imin-канал к 1Р3, и одновременному увеличению концентрации 1Р3 в цитоплазме. Пассивное опустошение Са2+-депо вызывает активность 1т1П-каналов, несмотря на переход комплексов 1Р311-1т;п-канал в связанное с Р1Р2 состояние, в котором они не чувствительны к 1Р3.

Обзор Литературных Данных

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРНЫХ ДАННЫХ

Заключение диссертации по теме «Гистология, цитология, клеточная биология», Гусев, Константин Олегович

ВЫВОДЫ

1. В клетках А431 агонист-индуцируемые кальциевые каналы низкой проводимости (1т|п) ответственны за вход кальция в ответ на пассивное опустошение Са2+-депо, что позволяет отнести 1т;п-каналы к классу депо-управляемых каналов.

2. Фосфатидилинозитол-4,5-бисфосфат (Р1Р2) участвует в модулировании активности 1т;п-каналов. В нестимулированных клетках часть комплексов 1Р311-1т1П-канал связана с Р1Р2. Активация фосфолипазы С и последующий гидролиз Р1Р2 приводят к двум синергичным процессам - повышению чувствительности комплекса 1РзЯ-1т|п-канал к 1Р3 и одновременному увеличению концентрации 1Р3. В результате резко возрастает 1Р3-индуцированная активность 1т!п-каналов и увеличивается поступление Са2+ в цитоплазму клеток. При пассивном опустошении Са -депо комплексы 1Р311-1тт-канал переходят в связанное с Р1Р2 состояние. Это препятствует активации 1т)П-каналов в ответ на 1Р3, но. не препятствует активации каналов, вызванной понижением концентрации Са2+ в депо.

3. Интегральный ток через плазматическую мембрану целой клетки,

Л I вызванный опустошением Са -депо, включает в себя две компоненты: 1сяас и Ьоо

4. За развитие тока через умеренно селективные для двухвалентных катионов каналы (^ос) в клетках А431 ответственны 1тщ-каналы.

Выражаю благодарность моей научной руководительнице, Елене Валентиновне Казначеевой, за участие и живой интерес на всех этапах работы. Я благодарен колегам по работе за их помощь и доброжелательность. Выражаю искренную признательность Галине Николаевне Можаевой, неутомимо возглавляющую нашу лабораторию, за ее помощь в обработке и обсуждении полученных данных.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

Статьи:

1. Kaznacheyeva Е., Zubov A., Gusev К., Bezprozvanny I., Mozhayeva G. (2001) Activation of Ca2+ entry in human carcinoma A431 cells by Ca2+ store depletion and phospholipase С - dependent mechanisms converges on Icrac -like channels. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 98: 148-153.

2. Казначеева E.B., Зубов A.H., Гусев К.О.,Можаева Г.Н. (2002) Фосфатидил-инозитол 4,5-бифосфат модулирует активность каналов рецептор-индуцированного кальциевого входа в клетках А431. Биол. мембраны. 19: 5-13. •

3. Алексеенко В.А., Гусев К.О., Казначеева Е.В. (2003) Влияние перестроек актинового цитоскелета на активацию каналов, кальциевого входа у клеток А431. Цитология. 45(2): 143-148.

4. Gusev К., Glouchankova L., Zubov A., Kaznacheyeva Е., Wang Z., Bezprozvanny I., Mozhayeva G. N. (2003) . Store-operated calcium entry pathways in human carcinoma A431 cells: functional properties and activation mechanisms J. Gen. Physiol. 122(1): 81-94.

5. Гусев K.O., Зубов A.H., Казначеева E.B., -Можаева Г.Н. (2004) Два типа депо-управляемых каналов в клетках А431. Цитология. 46(1): 16-25 (в печати).

Тезисы:

6. Gusev К.О., Kaznacheyeva E.V., Zubov A.N., Mozhayeva G.N. (2000) Regulation of calcium channels Imii/IcRACL activity of human epidermal carcinoma A431 cells. Neurophysiology. 32: 193-194.

7. Гусев K.O., Казначеева E.B., Зубов A.H., Можаева Г.Н. (2000) Регуляция активности кальциевых каналов низкой проводимости, сопряженных с фосфолипазой С. Конференция «Человек и его здоровье», Санкт-Петербург, с. 55-56.

8. Казначеева Е.В., Зубов А.Н., Гусев К.О., Можаева Г.Н. (2001) Рецептор-управляемые кальциевые каналы в клетках карциномы: механизмы их активации как путем опустошения Са2+-депо, так и взаимодействием с

Список работ, опубликованных по теме диссертации рецептором инозитолтрифосфата; модуляция их активности фосфатидилинозитол-бифосфатом. XVIII Съезд физиологического общества им. И.П. Павлова, Казань, с. 106-107.

9. Kaznacheyeva Е., Zubov A., Gusev К., Bezprozvanny I., Mozhayeva G. (2001) Activation of Imjn/ICRAC-like channels in human carcinoma A431 cells by store operated and phospholipase С - dependent mechanisms. 45-й съезд американского биофизического общества . Biophys. J. 80: А618.

10. Гусев К.О., Казначеева Е.В. (2001) Влияние кортикального слоя актиновых филаментов на активность кальциевых каналов Imin/Icracl. Конференция «Человек и его здоровье», Санкт-Петербург, с. 81-82.

11. Гусев К.О., Алексеенко В.А., Казначеева Е.В., Можаева Г.Н. (2002) Влияние перестроек актинового цитоскелета на активность депо-управляемых кальциевых каналов. Конференция «Биология - наука XXI века», Пущино, т.1, с. 10-11.

12. Gusev К.О., Glouchankova L., Zubov A., Kaznacheyeva E., Mozhayeva G.N. (2003) Store-operated calcium channels in A431. cells. Конференция "Receptors and cell signaling in oxidative stress", Будапешт, Венгрия, с. 33.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Гусев, Константин Олегович, 2003 год

1. Авдонин П.В., Ткачук В.А. (1994) Рецепторы и внутриклеточный кальций. М.: «Наука». 288 с.

2. Aimers W., McCleskey E.W., Palade Р.Т. (1984) A non-selective cation conductance in frog muscle membrane blocked by micromolar external calcium ions. J. Physiol. 353: 565-583.

3. Arnon A., Hamlyn J.M., Blauster M.P. (2000) Na+ entry via store-operated channels modulates Ca2+ signalling in arterial myocytes. Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 278: CI63-173. .„ : .

4. Bakowski D., Parekh A.B. (2001) Sarcoplasmic/endoplasmic-reticulum-Cau ф

5. ATPase-mediated Ca reuptake, and not Ins(l,4,5)P3 receptor inactivation, prevents the activation of macroscopic Ca release-activated Ca current in the presence of physiological Ca2+ buffer in rat basophilic leukemia-1 cells. Biochem. J. 353:561-567.

6. Bakowski D., Parekh A.B. (2002) Voltage-dependent conductance changes in the store-operated Ca current Icrac in rat basophilic leukaemia cells. J. Phys. 529(2): 295-306.4 .

7. Barritt G.J. (1999) Receptor-activated Ca inflow in animal cells: a variety ofy Ipathways tailored to meet different intracellular Ca signalling requirements. Biochem. J. 337: 153-169.

8. Barry P.H. (1994) JPCalc, a software package for calculating liquid junction potential corrections in patch-clamp, intracellular, epithelial and bilayer measurements and for correcting junction potential mesurements. J Neurosci. Methods. 51: 107-116.

9. Berridge M.J. (1993) Inositol trisphosphate and calcium signaling. Nature. 361: 315-325.

10. Berridge M.J. (1995) Capacitative calcium entry. Biochem. J. 312: 1-11.

11. Berridge M.J., Irvine R.F. (1989) Inositol phosphates and cell signalling. Nature. 341:197-205.

12. Bezprozvanny I.B., Ehrlich B.E. (1994) Inositol (l,4,5)-trisphosphate (InsP3)-gated Ca Channels from Cerebellum: Conduction Properties for Divalent Cations and Regulation by Intraluminal Cal-cium. J. Gen. Physiol. 104: 821 -856.

13. Bezprozvanny I., Watras J., Ehrlich B.E. (1991) Bell-shaped calcium-response curves of Ins(l,4,5)P3- and calcium-gated channels from endoplasmic reticulum of cerebellum. Nature. 351: 751-754.

14. Birchwood C.J., Saba J.D., Dickson R.C., Cunningham K.W. (2001) Calcium influx and signaling in yeast stimulated by intracellular sphingosine 1-phosphate accumulation. JSC. 276(15): 11712-11718. . .

15. Bootman M.D., Berridge M.J., Roderick H.L. (2002) Activating calcium release through inositol 1,4,5,-trisphosphate receptors without inositol 1,4,5-trisphosphate. PNAS. 99(11): 7320-7322.

16. Bootman M.D., Collins T.J., Peppiatt C.M., Prothero L.S., MacKenzie L., De Smet P., Travers M., Tovey S.C., Seo J.Y., Berridge M.J., Ciccolini F., Lipp P. (2001). Calcium signalling an overview. Cell and Develop. Biol. 12: 3-10.

17. Braun F.J., Broad L.M., Armstrong D.L., Putney J.W., Jr. (2001) Stable activation of single CRAC-channels in divalent cation-free solutions. JBC. 276: 1063-1070.

18. Broad L.M., Armstrong D.L., Putney J.W., Jr. (1999) Role of the inositol 1,4,5-trisphosphate receptor in Ca feedback inhibition of release-activated calcium current (Icrac). JBC. 274(46): 32881-32888.

19. Carafoli E. (2002). Calcium signaling: a tale for all seasons. PNAS. 99(3): 11151122.

20. Carafoli E., Brini M. (2000) Calcium pumps: structural basis for and mechanism of calcium transmembrane transport. Curr. Opin. Chem. Biol. 4: 152-161.

21. Clapham D.E. (1995) Repleshing the stores. Nature. 375: 634-635.

22. CIapham D.E. (2002) Sorting out MIC, TRP, and CRAC Ion Channels. J. Gen. Physiol. 120: 217-220.

23. Clapham D.E., Runnels L.W., Strubing C. (2001) The TRP ion channel family. Nature Reviews. 2: 387-396.

24. Christian E.P., Spence K.T., Togo J.A., Dargis P.G., Patei J. (1996) Calcium-dependent enhancement of depletion-activated calcium current in Jurkat T lymphocytes. J. Membrane Biol. 150: 63-71.

25. Chyb S., Raghu P., Hardie R.C. (1999) Polyunsaturated fatty acids activate the Drosophila light-sensitive channels TRP and TRPL. Nature. 397: 255-259.

26. Davies C.W. (1962) Ion Association. Butterworth, London. 190 c.

27. Duchen M.R. (2000). Mitochondria and calcium: from cell signalling to cell death. J. Physiol. 529(1): 57-68.

28. Ehrlich B.E., Watras J. (1988) Inositol 1,4,5-trisphosphate activates a channel from smooth muscle sarcoplasmic reticulum. Nature. 336: 583-586.

29. Estación M., Sinkins W.G., Schilling W.P. (2001) Regulation of Drosophila TrpL channels by phospholipase C-dependent mechanisms. J. Physiol. 530: 1-19.

30. Fiero L., Parekh A.B. (1999) On the characterisation of the mechanism underlying passive activation of the Ca release-activated Ca current Icrac in rat basophylic leukemia cells. J.Physiol. 520(2): 407-416.

31. Fiero L., Parekh A.B. (2000) Substantial depletion of the intracellular Ca2+ stores is required for macroscopic activation of the Ca2+. release-activated Ca2+ current in rat basophilic leukemia cells. J. Physiol 522(2): 247-257.

32. Ferris C.D., Snyder S.H. (1992) Inositol 1,4,5-trisphosphate-activated calcium channels. Annu. Rev. Physiol. 54: 469-487. .

33. Fomina A.F., Fanger C.M., Kozak J.A., Cahalan M.D. (2000) Single channel properties and regulated expression of Ca2+ release-activated Ca2+ (CRAC) channels in human T cells. J. of Cell Biology. 150(6):. 1435-1444.

34. Gamberucci A. Innocenti B., Felceri R., Bfnhegyi G., Giunti R., Pozzan T., Benedetti A. (1994) Modulation of Ca2+ influx dependent on store depletion by intracellular adenine-guanine nucleotide levels. JBC. 269(38): 23597-23602.

35. GiIon P., Bird G.St.J., Bian X., Yakel J.L., Putney J.W., Jr. (1995) The Ca2+-mobilizing actions of a Jurkat cell extract on mammalian cells and Xenopus laevis oocytes. JBC. 270(14): 8050-8055.1. Список Литературы

36. Glitsch M.D., Parekh А.В. (2000) Са2+ store dynamics determines the pattern of activation of the store-operated Ca2+ current ICrac in response to InsP3 in rat basophilic leukemia cells. J. Physiol. 523(2): 283-290.

37. Hardie R.C. (2001) Phototransduction in Drosophila melanogaster. J. Exp. Biol. 204: 3403-3409.

38. Hardie R.C., Minke B. (1992) The trp gene is essential for a light-activated Ca2+ channel in Drosophila photoreceptors. Neuron. 8: 643-651.

39. Harteneck C., Plant T.D., Schultz G. (2000) From worm to man: three subfamilies of TRP channels. Trends Neuroscience. 23: 159-166.

40. Hermosura M.C., Monteilh-Zoller M.K., Scharenberg A.M., PennerR., Fleig A. (2002) Dissociation of the store-operated calcium current Icrac and the Mg -nucleotide-regulated metal ion current MagNuM. J. Physiol. 539(2): 445-456.

41. Hess P., Tsien R.W. (1984) Mechanism of ion permeation through calcium channels. Nature. 309: 453-456.

42. Hildebrandt J.-P., Hildebrandt P. (1997) Lysophosphatic acid depletes intracellular calcium stores different from those mediating capacitative calcium entry in C6 rat glioma cells. Glia. 19: 67-73.

43. HiIgemann D.W., Ball R. (1996) Regulation of cardiac Na+, Ca2+ exchange and Кдтр potassium channels by PIP2. Science. 273: 956-959.

44. Hilgemann DW, Feng S, Nasuhoglu C. (2001) The complex and intriguing lives of PIP2 with ion channels and transporters. Sci STKE 111: RE19.

45. Hille B. (2001) Ionic Channels of Excitable Membranes, 3rd edn. Sinauer Associates, Sunderland, MA. 814 c.

46. Hofer A.M., Fasolato C., Pozzan T. (1998) Capacitative Ca2+ entry is closely linked to the filling state of internal Ca2+ stores: • a study using simultaneous measurements of ICrac and intraluminal Ca2+. J. of Cell Biology. 140(2): 325-334.

47. Hoth M. (1995) Calcium and barium permeation through calcium release-activated calcium (CRAC) channels. Pflugers Arch. 430: 315-322.1. Список Литературы

48. Hoth М., Button D.C., Lewis R.S. (2000) Mitochondrial control of calcium-channel gating: a mechanism for sustained signaling and transcriptional activation in T lymphocytes. PNAS. 97(19): 10607-10612.

49. Hoth M., Fanger C.M., Lewis R.S. (1997) Mitochondrial regulation of store-operated calcium signaling in T lymphocytes. J. Cell Biol. 137(3): 633-648.

50. Hoth M., Penner R. (1992) Depletion of intracellular calcium stores activates a calcium current in mast cells. Nature. 355: 353-356.

51. Hoth M., Penner R. (1993) Calcium release-activated calcium current in rat mast cells. J. Physiol. 465: 359-386. .

52. Jackson P.S., Strange K. (1995) Single-channel properties of a volume-sensitive anion conductance: current activation occurs by abrupt switching of closed channels to an open state. J. Gen. Physiol. 105: 643-660.

53. Janmey P.A. (1995) Protein regulation by phosphatidylinositol lipids. Chem. Biol. 2: 61-65.

54. Jouaville L.S., Pinton P., Bastianutto C., Rutter G.A., Rizzuto R. (1999) Regulation of mitochondrial ATP synthesis by calcium: evidence for a long-term metabolic priming. PNAS. 96(24): 13807-13812.

55. Kerschbaum H.H., Cahalan M.D. (1998) Monovalent permeability, rectification, and ionic block of store-operated calcium channels in Jurkat T lymphocytes. J. Gen. Physiol. 111:521-537.

56. Kerschbaum H.H., Cahalan M.D. (1999) Single-channel recording of a store7 4operated Ca channel in Jurkat T lymphocytes. Science. 283: 836-839.

57. KiseIyov K.I., Mamin A.G., Semyonova S.B., Mozhayeva G.N. (1997) Low-conductance high selective inositol (l,4,5)-trisphosphate activated Ca2+ channels in plasma membrane of A431 carcinoma cells. FEBSLett. 407(3): 309-312.

58. Kiselyov K.I., Mamin A.G., Semyonova S.B., Mozhayeva G.N. (1999) Miniature Ca2+ channels in excised plasma-membrane patches: activation by IP3. PJlugers Arch. 437(2): 305-314.

59. Kiselyov K.I., Mignery G.A., Zhu M.X., Muallem S. (1999) The N-terminal domain of the IP3 receptor gates store-operated hTrp3 channels. Mol. Cell. 4: 423429.

60. Kiselyov K.I., Shin D.M., Wang Y., Pessah I.N., Allen P.D., Muallem S. (2000) Gating of store-operated channels by conformational coupling to ryanodine receptors. Mol. Cell. 6: 421 -431.

61. Kiselyov K.I., Xu X., Mozhayeva G., Kuo T., Pessah I., Mignery G., Zhu X., Birnbaumer L., Muallem S. (1998) Functional interaction between InsP3 receptors and store-operated Htrp3 channels. Nature. 396: 478-482.

62. Kozak J.A., Kerschbaum H.H., Cahalan M.D. (2002) Distinct properties of CRAC and MIC channels in RBL cells. J. Gen. Physiol. 120: 221-235.

63. Krause E., Pfeiffer F., Schmid A., Schulz I. (1996) Depletion of intracellular calcium stores activates a calcium conducting nonselective cation current in mouse pancreatic acinar cells. JBC. 271(51): 32523-32528.

64. Krause E., Schmid A., Gonzalez A., Schulz I. (1999) Low cytoplasmic Ca2+.Lactivates Icrac independently of global Ca store depletion in RBL-1 cells. JBC. 274(52): 36957-36962.

65. Lee H.C. (2000) Multiple calcium stores: separate but interacting. Sci. STKE. 40: PE1.

66. Lee C.-H., Poburko D., Kuo K.-H., Seow C.Y., van Breemen C. (2002) Ca2+ oscillations, gradients, and homeostasis in vascular smooth muscle. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol 282: H1571-H1583.

67. Lepple-Wienhues A., Cahalan M.D. (1996) Conductance and permeation of monovalent cations through depletion-activated Ca2+ channels (Icrac) ¡n Jurkat T cells. Biophys. J. 71: 787-794.1. Список Литературы•у .

68. Lewis R.S., Cahalan M.D. (1989) Mitogen-induced oscillations of cytosolic Ca and transmembrane Ca2+ current in human leukemic T cells. Cell Regul. 1: 99-112.

69. Liu X., Ambdukar I.S. (2001) Characteristics of a store-operated calcium-permeable channel. Sarcoendoplasmic reticulum calcium pump function controls channel gating. JBC. 276(32): 29891-29898.

70. Liu J., Oh P., Horner Т., Rogers R.A., Schnitzer J.E. (1997) Organized endothelial cell surface signal transduction in caveolae distinct from glycosylphosphatidylinositol-anchored protein microdomains. JBC. 272(11): 72117222.

71. Luckhoff A., Clapham D.E. (1992) Inositol 1,3,4,5-tetrakisphosphate activates an endothelial Ca -permeable channel. Nature. 355: 356-358.

72. Lupu V.D., Kaznacheyeva E.V., Krishna U.M., Falck J.R., Bezprozvanny I. (1998) Functional coupling of phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate to inositol 1,4,5-trisphosphate receptor. JBC. 273(23): 14067-14070.

73. Ma H.-T., Patterson R.L., van Rossum D.B., Birnbaumer L., Mikoshiba K., Gill D.L. (2000) Requirement of the inositol trisphosphate receptor for activation of store-operated Ca channels. Science. 287: 1647-1651.

74. MackrilI J.J. (1999). Protein-protein interactions in intracellular ca-release channel function. Biochem. J. 337: 345-361.

75. Martin T.F.J. (2001) PI(4,5)P2 regulation of surface membrane traffic.Curr. Opin. in Cell Biol. 13: 493-499.

76. Meldolesi J., Madeddu L., Pozzan T. (1990) Intracellular Ca2+ storage organelles in nonmuscle cells: heterogeneity and functional assigment. Biochim. Biophys. Acta.\Q55: 130-140.

77. Meldolesi J., Pozzan T. (1998) The endoplasmic reticulum Ca2+ store: a view from the lumen. TIBS. 23: 10-14.1. Список Литературы

78. Michikawa Т., Miyawaki A., Furuichi Т., Mikoshiba К. (1996) Inositol 1,4,5-trisphosphate receptors and calcium signalling. Critical Review in Neurobiology. 10(1): 39-55.

79. Missiaen L., Taylor C.W., Berridge M.J. (1991) Spontaneous calcium release from inositol trisphosphate-sensitive calcium stores. Nature. 352: 241-244.

80. Missiaen L., DeSmedt H., Parys J.S., Casteels R. (1994) Co-activation of inositol trisphosphate-induced Ca2+ release by cytosolic Ca2+ is loading-dependent. JBC. 269(10): 7238-7242.

81. Missiaen L., DeSmedt H., Parys J., Sienaert I., Vanlingen S., Casteels R. (1996) Threshold for inositol 1,4,5-trisphosphate action. JBC. 271(21): 1228712293.

82. Montel C., Birnbaumer L., Flockerzi V. (2002) The TRP channels, a remarkably functional family. Cell. 108: 595-598.

83. Niemeyer B.A., Suzuki E., Scott K., Jalink K., Zuker C.S. (1996) The Drosophila light-activated conductance is composed of the two channels TRP and TRPL. Cell. 85: 651-659.

84. Nilius В., Droogmans G. (2001) Ion channels and their functional role in vascular endothelium. Physiol. Review. 81(4): 1415-1459.

85. Pake L.J., Casey L. (1996) Localization and turnover of phosphatydilinositol 4,5-bisphosphate in caveolin-enriched domains. JSC. 271(43): 26453-26456.

86. Parekh A.B. (1998) Slow feedback inhibition of calcium release-activated calcium current by calcium entry. JBC. 273(24): 14925-14932.

87. Parekh A.B., Fleig A., Penner R. (1997) The store-operated calcium current Icrac: Nonlinear activation by InsP3 and dissociation from calcium release. Cell. 89: 973-980.

88. Parekh A.B., Penner R. (1997) Store depletion and calcium influx. Physiological Review. 77: 901-930.

89. Parys J.B., Missiaen L., DeSmedt H., Casteels R.;(1993) Loading dependence of inositol 1,4,5-tnsphosphate-induced Ca release;in the clonal cell line A7r5. Implication for the mechanism of quantal Ca2+ release. JBC. 268(33): 2520625212.

90. Parys J.B., Missiaen L., DeSmedt H., Sienaert I., Casteels R. (1996)л .

91. Mechanisms responsible for quantal Ca release from inositol trisphosphate-sensitive calcium stores. Pflugers Arch-Eur. J. Physiol 432(3):359-367.

92. Patterson R.L., van RossumN.B., Gill D.L. (1999) Store-operated Ca2+ entry: evidence for a secretion-like coupling model. Cell. 98: 487-499.

93. Penner R, Matthews G., Neher E. (1988) Regulation of calcium influx by second messengers in rat mast cells. Nature. 334: 499-504.

94. Pike L.J., Casey L. (1996) Localization and turnover of phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate in caveolin-enriched membrane domains. JSC. 271: 26453-26456.

95. Pike L.J., Miller J.M. (1998) Cholesterol depletion delocalizes phosphatidylinositol bisphosphate and , i. ; inhibits hormon-stimulated phosphatidylinsitol turnover. JBC. 273: 22298-22304.

96. Prakriya M., Lewis R.S. (2002) Separation and characterization of currentsIthrough store-operated CRAC channels and Mg -inhibited cation (MIC) channels. J. Gen. Physiol. 119:487-507.

97. Premack B.A., McDonald T.V., Gardner P. (1994) Activation of Ca2+ current•J, Л Iin Jurkat T cells following the depletion of Ca stores by microsomal Ca -ATPase inhibitors. J. Immunology. 152: 5226-5240.

98. Putney J.W., Jr. (1999) "Kissin' cousins': intimate plasma membrane-ER interactions underlie capacitative calcium entry. Cell. 99: 5-8.

99. Putney J.W.Jr. Bird G.St.J. (1993) The inositol phosphate-calcium signaling system in nonexcitable cells. Endocrine Review. 14(5): 610-631.

100. Putney J.W., Jr, Broad L.M., Braun F.-J., Lievermont J.-P., Bird G.St.J. (2002) Mechanisms of capacitative calcium entry. J. of Cell Science. 114(12): 2223-2229.

101. Putney J.W., Jr., McKay R.R. (1999) Capacitative calcium entry channels. BioEssays, 21(1): 38-46.

102. Randriamampita C., Tsien R.Y. (1993) Empting of intracellular calcium stores release a novel small messenger that stimulates calcium influx. Nature. 364: 809-814. • :

103. Raucher D., Stauffer T., Chen W., Shen K., Guo S., York J.D., Sheetx M.P. Meyer T. (2000) Phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate functions as a second1. Список Литературыmessenger that regulates cytoskeleton-plasma membrane adhesion. Cell. 100: 221228.

104. Rebechi M.J., Pentyala S.N. (2000) Structure, function, and control of phoshpoinositide-specifec phospholipase C. Physiol. Reviews. 80(4): 1291-1335.

105. Reuss H., Mojet M.H., Chyb S., Hardie R.C. (1997) In vivo analysis of the Drosophila light-activated channels, TRP and TRPL. Neuron. 19: 1249-1259.

106. Rizzuto R., Bernardi P., Pozzan T. (2000) Mitochondria as all-round players of the calcium game. J. Physiol 529(1): 37-49.

107. Rosado J.A., Sage S.O. (2000) The actin cytoskeleton in store-mediated calcium entry. J. of Physiology. 526(2): 221-229.

108. Rutter G.A., Fasolato C., Rizzuto R. (1998) Calcium and organelles: a two-sided story. BBRC. 253: 549-557.

109. Schilling W.P., Cabello O.A., Pajon L. (1992) Depletion of the inositol 1,4,5-trisphosphate-sensitive intracellular Ca store in vascular endothelial cells activates the agonist sensitive Ca2+-influx pathway. Biochem. J. 284: 521-530.

110. Schnitzer J.E., Oh F., Jacobson B.S., Dvorak A.M. (1995) Caveolae from luminal plasmalemma of rat lung endothelium:microdomains enriched in caveolin, Ca2+-ATPase, and inositol trisphosphate receptor. Proc. Natl. Acad. Sci. 92: 17591763.

111. Trepakova E.S., Csutora P., Hunton D.L., Marchase R.B., Cohen R.A., Bolotina V.M. (2000) Calcium influx factor directly activates store-operated cation channels in vascular smooth muscle cells. JBC. 275 (34): 26158-26163.

112. Trepakova E.S., Gericke M., Hirakawa Y., Weisbrod R.M., Cohen R.A., Bolotina V.M. (2001) Properties of a native cation channels activated by Ca2+ store depletion in vascular smooth muscle cells. JBC. 276(11): 7782-7790.

113. Vaca L., Sampieri A. (2002) Calmodulin modulates the delay period between release of calcium from internal stores and activation of calcium inflox via endogenous TPC1 channels. JBC. 44: 42178-42187.

114. Venkatachalam K., van Rossum D.B., Patterson R.L., Ma H.-T., Gill D.L. (2002) The cellular and molecular basis of store-operated calcium entry. Nature Cell Biol. 4: E263-E272.

115. Voets T., Prenen J., Fleig A., Vennekens R., Watanabe H., Hoenderop J.G.J., Bindels R.J.M., Droogmans G., Penner R., Nilius B. (2001) CaTl and the calcium release-activated calcium channel manifest distinct pore properties. JBC. 276(51): 47767-47770.

116. Wu X., Babnigg G., Zagranichnaya T., Villereal M.L. (2002) The role of endogenous human Trp4 in regulating carbachol-induced calcium oscillations in HEK-293 cells. JBC. 277(16): 13597-13608.

117. Xu X.Z.S., Chien F., Butler A. Salkoff L., Montell C. (2000) TRP gamma, a Drosophila TRP-related subunit, forms a regulated cation channel with TRPL. Neuron. 26: 647-657.

118. Xu X.Z.S., Li H.S., Gugino W.B., Montell C. (1997) Coassembly of TRP and TRPL produces a distinct store-operated conductance. Cell. 89: 1155-1164.

119. Yao Y., Ferrer-Montiel A.V., Montal M., Tsien R.Y. (1999) Activation of store-operated Ca current in Xenopus oocytes requires SNAP-25 but not a diffusible messenger. Cell 98 475-485.

120. Yao Y., Tsien R.Y. (1997) Calcium current activated by depletion of calcium stores in Xenopus oocytes. J.Gen.Physiol., v. 109, 703-715.

121. Yoshida Y., Imai S. (1997) Structural and function of inositol 1,4,5-trisphosphate receptor. Jpn. J. Pharmacol. 74: 125-137.

122. Young K.W., Bootman M.D., Channing D.R., Lipp P., Maycox P.R., Meakin J., Challiss R.A.J., Nahorski S.R. (2000) Lysophosphatic acid-induced Ca mobilization requires intracellular sphingosine 1-phosphate production. JBC. 275(49): 38532-38539.

123. Yue L., Peng J.-B., Hediger M.A., Clapham D.E. (2001) CaTl manifests the pore properties of the calcium-release-activated calcium channel. Nature. 410: 705709.

124. Zhang L., McCloskey M.A. (1995) Immunoglobulin E receptor-activated calcium conductance in rat mast cells. J.Physiol. 483: 59-66.

125. Zhu X., Birnbaumer L. (1998) Calcium channels formed by mammalian Trp homologues. News Physiol. Sci. 13:211-217.

126. Zubov A.N., Kaznacheeva E.V., Nikolaev A.V., Alexeenko V.A., Kiselyov

127. K., Muallem S., Mozhayeva G.N. (1999) Regulation of the miniature plasma2+ 0 # membrane Ca channel Imin by inositol 1,4,5-trisphosphate receptors. JBC.274(37): 25983-25985. . .

128. Zweifach A., Lewis R.S. (1993) Mitogen-regulated Ca2+ current of T lymphocytes is activated by depletion of intracellular Ca2+ stores. Proc. Natl. Acad. Sci. 90: 6295-6299.

129. Zweifach A., Lewis R.S. (1995) Rapid inactivation of depletion-activated calcium current (/crac) due to local calcium feedback. J. Gen. Physiol. 105: 209226.

130. Zweifach A., Lewis R.S. (1995) Slow calcium-dependent inactivation of depletion-activated calcium current. Store-dependent and -independent mechanisms. JBC. 270(24): 14445-14451.