Антиоксидантный комплекс арктических бурых водорослей тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Маматмуродов Хуршед Бегмахмадович
Маматмуродов Хуршед Бегмахмадович
кандидат наук
2025
- Специальность ВАК РФ00.00.00
- Количество страниц 201
Оглавление диссертации кандидат наук Маматмуродов Хуршед Бегмахмадович
Введение
1. Состав, функциональная природа и биологическая активность
КОМПОНЕНТОВ БУРЫХ ВОДОРОСЛЕЙ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
1.1. Характеристика фракционного состава органической компоненты морских макрофитов
1.1.1. Азотсодержащие компоненты
1.1.2. Углеводные компоненты
1.1.2.1. Структурные углеводы
1.1.2.2. Запасные углеводы
1.1.3. Липофильные компоненты
1.1.4. Фенольная фракция
1.2. Способы извлечения антиоксидантного комплекса из растительного сырья
1.2.1. Факторы, определяющие эффективность экстракционного процесса
1.2.2. Методы активации экстракционных процессов
1.3. Основные направления использования биологически активных веществ водорослей
1.4. Выводы. Цели и задачи исследования
2. Характеристика объектов и методов исследования (методическая часть)
2.1. Объекты исследования
2.2. Реагенты и оборудование
2.3. Методика экстракции биологически активных компонентов из биомассы бурых водорослей
2.3.1. Получение экстрактов биологически активных компонентов бурых водорослей
2.3.2. Исследование динамики набухания массы водорослей
2.3.3. Методы предварительной активации водорослевой матрицы
2.4. Анализ компонентов химического состава биомассы и экстрактов бурых водорослей
2.4.1. Определение содержания пигментов
2.4.2. Определение жирнокислотного состава
2.4.3. Определение содержания полифенолов
2.3.4. Определение содержания маннита
2.4.5. Определение содержания легкогидролизуемых поли-сахаридов
2.4.6. Определение содержания альгинатов
2.4.7. Определение содержания белка
2.4.8. Определение пористости
2.5. Анализ биологической активности экстрактов
2.5.1. Антирадикальная, железо-восстанавливающая и железо-хелатирующая активность
2.5.2. Оценка фитостимулирующей способности биологически активных веществ
2.5.3. Бактериостатическая и фунгистатическая активность
3. Состав, свойства, применение антиоксидантного комплекса
АРКТИЧЕСКИХ БУРЫХ ВОДОРОСЛЕЙ (ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ)
3.1. Исследование формирования компонентного состава макрофитов Белого моря как биокомпозитов
3.1.1. Динамика зольности
3.1.2. Динамика содержания белков
3.1.3. Динамика содержания липофильной фракции
3.1.4. Динамика содержания полифенолов
3.1.4. Динамика содержания углеводов
3.1.5. Анализ влияния основных абиотических факторов на состав комплекса биоактивных веществ
3.2. Разработка способов эффективного экстракционного извлечения биологически активного комплекса компонентов
3.2.1. Влияние химической природы растворителя и состава бинарной системы на эффективность извлечения биологически активных веществ
3.2.1.1. Исследование влияние природы растворителей на эффективность экстракции БАВ
3.2.1.2. Исследование влияния изменения состава бинарного растворителя на эффективность экстракции БАВ
3.2.2. Характеристика сольватационных процессов в экстракции БАВ
3.2.2.1 Сольватохромные параметры бинарных растворителей
3.2.2.2. Корреляционные зависимости сольватахромных параметров и состава экстрактов БАВ
3.2.3. Оценка влияния способа активации полимерной биоматрицы на эффективность экстракции БАВ
3.2.3.1. Исследование влияния набухания
3.2.3.2. Капиллярно-пористая структура водорослей
3.2.3.3. Исследование влияния ультразвуковой обработки биомассы водорослей
3.2.3.4. Исследование влияния микроволновой обработки
3.2.3.5. Исследование эффективности выделения БАВ при комбинированных методах активации биомассы
3.2.4. Характеристика антирадикальной, железо-восстанавливающей и железо-хелатирующей активности полифенольного комплекса
3.2.5. Способ получения биологически активных экстрактов
3.3. Оценка биоактивных свойств экстрактов бурых водорослей
3.3.1. Фитоактивность
3.3.2. Бактериостатическая и фунгистатическая активность
Выводы
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЕ А
ПРИЛОЖЕНИЕ Б
ПРИЛОЖЕНИЕ В1
ПРИЛОЖЕНИЕ В2
ПРИЛОЖЕНИЕ В3
ПРИЛОЖЕНИЕ В4
ПРИЛОЖЕНИЕ В5
ПРИЛОЖЕНИЕ В6
ПРИЛОЖЕНИЕ В7
ПРИЛОЖЕНИЕ В8
ПРИЛОЖЕНИЕ В9
ПРИЛОЖЕНИЕ В10
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Другие cпециальности», 00.00.00 шифр ВАК
Флоротаннины арктических бурых водорослей2019 год, кандидат наук Дружинина Анна Сергеевна
Особенности химического компонентного состава, структуры и свойств биомассы арктических бурых водорослей2017 год, кандидат наук Каплицин Платон Александрович
Физикохимические свойства целлюлозного комплекса бурых водорослей2022 год, кандидат наук Паршина Анастасия Эдуардовна
Высокопористые полиэлектролитные аэрогели на основе альгината бурых водорослей2020 год, кандидат наук Горшкова Наталья Александровна
Полисахариды и низкомолекулярные метаболиты некоторых массовых видов бурых водорослей морей Дальнего Востока России. Способ комплексной переработки водорослей2010 год, кандидат химических наук Имбс, Татьяна Игоревна
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Антиоксидантный комплекс арктических бурых водорослей»
ВВЕДЕНИЕ
В настоящее время возрастает мировая потребность в поиске новых природных источников субстанций, обладающих биологической активностью для использования в сельском хозяйстве, а также для медицинских и фармакологических целей. При этом, особое внимание исследователей обращается к морским аквакультурам - в частности, к бурым водорослям.
Польза морских водорослей известна уже не первое столетие, и они традиционно являются важным звеном в культуре питания множества стран и народов. Однако, обоснование этой питательной ценности, биомедицинской значимости, и, по возможности, их усиление путем получения и использования концентратов БАВ вызывают большой интерес.
Морские водоросли, благодаря своим физиологическим особенностям, приспособились к произрастанию в акваториях, отличающихся тяжелыми климато-гидрологическими условиями. Так, морские макрофиты распространены в морях Арктики, однако как природный возобновляемый ресурс в данном регионе они используются недостаточно.
При этом существует ряд исследований, подтверждающих, что подобные жёсткие условия позволяют арктическим водорослям синтезировать соединения, характеризующиеся более высокой биоактивностью, чем макрофиты умеренных и тропических регионов. Одной из групп таких соединений является антиоксидантный комплекс арктических бурых водорослей, включающий в себя полифенолы, пигменты, маннит и полисахариды, исследованию которого в мировом масштабе уделено недостаточно внимания. Вместе с тем, данные вещества обладают выраженной биологической активностью, мощными антиоксидантными свойствами и способны защищать клетки организма от воздействия свободных радикалов, предотвращая развитие различных заболеваний, включая онкологические.
Сельское хозяйство является отраслью, где использование антиоксидантного комплекса имеет большое значение. Компоненты, входящие в состав комплекса, могут быть использованы для повышения урожайности, улучшения качества продукции, защиты растений от болезней и вредителей. Кроме того, они играют важную роль в жизнедеятельности растений, обеспечивая растения необходимыми питательными веществами, защищают их от вредоносных воздействий окружающей среды, что способствует иммунитету растений и увеличению устойчивости растений к стрессовым условиям.
Несмотря на очевидные преимущества потребительских свойств полифенольных комплексов морских водорослей, широкое их использование ограничено рядом причин. Прежде всего они связаны с недостаточными данными по характеристике функциональной природы отдельных компонентов и комплекса, их физико - химических свойств, химической и биологической активности. Это определяет актуальность проведения дальнейших исследований для полного понимания потенциала и механизмов действия антиоксидантных комплексов и эффективных способов его извлечения из биомассы водорослей с сохранением его природной активности, что позволит снизить затраты на производство и повысить эффективность его использования.
Исходя из вышесказанного, целью исследования является получение новых фундаментальных данных по характеристике состава и свойств биологически активного антиоксидантного комплекса арктических бурых водорослей, способам его эффективного выделения из биомассы и приоритетным направлениям практического использования
Научная новизна. Выявлены особенности формирования компонентного состава органической фракции морских бурых водорослей как биокомпозита в климатических условиях высоких широт Белого моря. Изучены процессы сольватационных взаимодействий компонентов антиоксидантного комплекса (АОК) в системе: компоненты АОК -
протонные (этиловый и изопропиловый спирт), апротонные (ацетон и диметилсульфоксид) и бинарные (органический растворитель-вода) растворители. Определены сольватохромные параметры бинарных растворителей (энергии сольватации Димрота-Райхардта Ет, параметров Камлета-Тафта (поляризуемости (п*), основности (в), кислотности (а)), установлены функциональная зависимость по коэффициенту Пирсона эффективности экстракции фракций биологически активных веществ биомассы от поляризуемости и кислотно-основных свойств экстрагента. Установлено, что большинство соединений обладают умеренно - полярными свойствами; эффективным экстрагентом для их извлечения из биомассы является 40% водный раствор изопропилового спирта. Выявлено активационное воздействие на капиллярно-пористую структуру промышленных видов бурых водорослей обработки методами набухания, ультразвукового и микроволнового воздействия. Удельная поверхности образцов при обработке в оптимальных условиях увеличивается на 33,66% -59,30%, относительная доля мезопор на 2,9 - 3,3 раз. Выделенный экстракционный комплекс обладает выраженной антирадикальной, железо -восстанавливающей и железо - хелатирующей способностью, а также фитоактивностью, бактериостатическими и фунгистатическими свойствами.
Практическая значимость. Разработаны и запатентованы (патент №2803597, №2834311) способы выделения биологически активных экстрактов арктических бурых водорослей, основным компонентом которых является антиоксидантный комплекс. В лабораторных и опытных испытаниях показана высокая эффективность их применения в качестве фитостимуляторов роста овощных и травянистых растений (овес, кресс-салат, баклажан, сладкий перец, томат, огурец, капуста цветная, горох, пшеница, ячмень) и антисептиков (обладают бактериостатическими и фунгистатическими свойствами).
1. СОСТАВ, ФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ПРИРОДА И БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ КОМПОНЕНТОВ БУРЫХ ВОДОРОСЛЕЙ (ОБЗОР
ЛИТЕРАТУРЫ)
Морские макроводоросли - возобновляемое растительное сырье, распространённое в морях по всему миру. Благодаря уникальной способности к быстрому росту, низким требованиям к условиям выращивания, высокой продуктивности биомассы уже многие годы наблюдается глобальный тренд наращивания объёмов производства и потребления морских водорослей. что подтверждает интерес и растущий запрос со стороны промышленности и потребителей.
За последние несколько десятилетий наблюдается прирост мировой добычи морских водорослей: с 0,65 млн тонн в 1950 году до 38 млн тонн (в сырой массе) в 2022 году [1, 2]. При этом большую её часть (97 %) составляют культивируемые водоросли. Основная часть макроводорослей производится в странах Восточной и Юго-Восточной Азии: в Китае производится 60 %, в Индонезии - 25 %, в Южной Корее - 5 %, в Филиппинах - 4 %, в других странах - 3 % [2]. На рисунке 1.2 и в таблице 1.1 приведены мировые центры по исследованию водорослей, а также характеристика химического состава макроводорослей.
В настоящее время не только в странах Азии, но и во всём мире наблюдается активный рост как рынка самих водорослей (рисунок 1.1) [3], так и продуктов их переработки - в частности, прогнозируются высокие темпы роста рынка экстрактов из морских водорослей, в том числе из бурых водорослей, таких как фукусовые (рисунок1.2) [4, 5].
Рисунок 1.1- Динамика и прогноз роста рынка водорослей в мире и по регионам [3]
1
Global Seaweed Extracts Biostimulant Market is Expected to Account for USD 2.94 Billion by 2031
Global Seaweed Extracts Biostimulant Market, By Regions, 2024 to 2031
. . ■ ■ ¡III
e
DATA BRIDGE MARKET RESEARCH
2024 2025 2026 2027 2028 2029 2030 2031 ■ North America ■ Europe ■ Asia Pacific South America ■ Middle East and Africa
DMCA Protected S Diu Bride* Maricet Research- All Rights Reserved Source: Data Bridge Mafcct Research Market Analysis Study 2024
Рисунок 1.2- Прогноз роста рынка биостимулирующих экстрактов из морских
водорослей в мире и по регионам [4, 5]
Из трёх основных групп макрофитов (красные, бурые и зеленые водоросли) именно морские бурые водоросли (76 %) являются самыми распространёнными в мире, несмотря на то что в последнее время набирает обороты культивирование красных водорослей [6]. Ценность бурых водорослей обусловлена их способностью синтезировать широкий спектр биологически активных соединений, некоторые из которых характерны лишь для данной группы растений, что делает её поистине уникальным сырьём.
На территории Российской Федерации морские макроводоросли добываются не столь активно, несмотря на то что Россия обладает значительными их запасами благодаря протяжённой береговой линии. При этом промышленная заготовка ведется лишь в Белом, Баренцевом морях и на Дальнем Востоке - преимущественно в южном Приморье (Южные Курилы и Сахалин) [6]. Согласно государственному докладу «О состоянии и об охране окружающей среды Российской Федерации в 2020 году» суммарный запас морских водорослей в Белом море превышает 600 тыс. тонн, а добыча остается на небольшом уровне - 2 % от допустимого. При этом именно арктические водоросли, приспособившись к тяжёлым климато-географическим условиям, оказались способны синтезировать соединения, отличающиеся большей биоактивностью, чем у макрофитов умеренных и тропических регионов. Низкий вылов макрофитов эксперты связывают с неразвитой инфраструктурой побережий, которая не в состоянии обеспечить эффективную заготовку и переработку сырья, способного конкурировать с более дешевыми импортными аналогами [7].
Рисунок 1.3 - Мировые исследовательские центры
Таблица 1.1 - Химический состав бурых водорослей, % с.в. [6]
Вид Маннит Альгинаты Целлюлоза Белок Липиды Зола Углеводы ПФ Место сбора Ссылка
A. esculenta - - - 9,11 1,50 24,56 - - Соммарёй, Норвегия, Норвежское море [8]
L. digitata - - - 5,31 1,13 24,43 - -
L. hyperborean - - - 5,02 1,42 28,75 - -
F. vesiculosus - - - 6,11 3,51 20,92 - -
P. canaliculata - - - 5,72 5,81 21,24 - -
L. digitata - - - 3,45 0,77 - - - Ханстхольм, Дания, Северное море [9]
L. saccharina - - - 11,0 0,394 33,0 44,03 1,19 Швеция, Северное море [10]
A. nodosum 8,8 - - 5,9 - 20,2 31,7 - Швеция, Северное море [11]
F. vesiculosus 8,1 - - 7,1 - 24,4 26,6 -
L. digitata 12,7 - - 6,6 - 16,8 51,9 -
L. saccharina 8,6 - - 6,9 - 11,8 55,7 -
C. filum 8,0 - - 6,3 - 39,0 29,2 -
D. aculeata 5,8 - - 11,5 - 25,4 30,1 -
F. serratus 11,2 - - 7,1 - 20,3 28,7 -
H. siliquosa 19,7 - - 7,9 - 17,6 23,7 -
S. cirrosa 2,4 - - 12,0 - 28,8 26,7 -
A. nodosum - - - 8,2 8,6 24,9 56,1 58,7* Новая Шотландия, Канада, Атлантический океан [12]
L. saccharina - - - 8,1 5,5 24,5 59,8 11,1*
F. vesiculosus - - - 12,2 8,4 22,5 53,7 46,7*
L. hyperborea 34,34 - - - - - - - Финаварра, Ирландия, Атлантический океан [13]
L. saccharina 27,06 - - - - - - -
F. serratus 13,27 - - - - - - -
F. vesiculosus 20,06 - - - - - - -
F. spiralis 9,18 - - - - - - -
H. elongata 4,57 - - - - - - -
A. nodosum 9,47 - - - - - - -
H. siliquosa 11,53 - - - - - - -
L. digitata 24,18 - - - - - - - Хельголанд, Северное море, Германия
L. saccharina 21,8 24,45 - 7,5 - 25,4 76,0 - Дания, пролив Каттегат [14]
L.digitata 23,4 23,35 - 5,1 - 37,1 90,6 -
U. pinnatifida - 51 - - - - - - Залив Петра Великого, Россия, Японское море [15]
U. pinnatifida - - 45,9' 19,8 4,52 - - - Китай, Япония, Корея [16]
L. digitata - - 36,0' 7,5 1,02 - - -
H. fusifirme - - 62,3J 11,6 1,42 - - -
P. pavonia 9,47 - - - - - - - Которский залив, Черногория, Адриатическое море [17]
S. subrepandum - - 7,0 3,2 3,61 29,49 - - Египет, Суэцкий залив [15]
C. barbata - 18,3-26,6 - 1,26-2,56 0,64-1,032 2,6-16,2 - 1,43-6,69 Варна, Болгария, Черное море [19]
C. compressa - - - 8,91 1,83 32,04 39,62 - Оран, Алжир, Средиземное море [20]
C. stricta - - - 14,1 2,71 24,61 35,45 -
S. linifolium - - - 14,89 2,16 - 25,03 10,35* Александрия, Египет, Средиземное море [21]
S. polycystum - - - 5,85 0,45 - 90,01 - Хургада, Египет, Красное море [22]
C. myrica - - - 10,35 - - 78,7 -
T. ornata 7,57 20,54 - - - - - 2,90 Таити, Тихий океан [23]
S. mangarevense 14,01 11,26 - - - - - 4,52
N. zanardinii - - 5,18 3,18 0,41 15,84 29,10 3,37** о. Кешм, Иран, Персидский залив [24]
I. stellata - - 4,68 8,16 0,27 33,68 34,80 1,22 **
Продолжение таблицы 1.1
S. wightii - - - 15,10 0,21 - 40,21 20,0* Мандапам, Индия, Маннарский залив [25]
P. tetrastromatica - - - 11,39 0,55 - 59,30 12,38*
C. minima - - - 7,11 0,45 - 42,98 14,66*
H. triquetra - - - 15,34 0,11 - 49,06 19,6*
D. dichotoma - - 9,5 - - - - - Индия, Лаккадивское море [26]
D. bartayresiana - - 9,3 - - - - -
S. tenerrimum - - 10 - - - - - Индия, Аравийское море
I. stellata - - 9,2 - - - - -
C. lentifera - - 8,5* 14,4 0,85 41,85 32,95 - Южный Сулавеси, Макасарский пролив [27]
S. baccularia - 26,7 - - - 11,6 - - Порт Диксон, Малаккский пролив, Малайзия [28]
S. binderi - 38,7 - - - 14,3 - -
S. siliquosum - 49,9 - - - 14,6 - -
T. conoides - 41,4 - - - 16,7 - -
S. linearifolium - - 19,971 6,93 1,42 26,86 27,82 - Красное море, Эритрея [29]
не определяли, 'клетчатка, 2жиры, 3моносахариды+маннит, 4сумма жирных кислот, 5мономеры альгинатов,*мг галловой кислоты г-1 с.в., **мг галловой кислоты г-1 экстракта, синим выделены виды Арктической зоны, зеленым -умеренной, красным - тропической
В общих чертах состав бурых водорослей может быть представлен двумя группами соединений: органическими и неорганическими (минеральные компоненты, зола). Органическая фракция отличается большим разнообразием и включает группы азотсодержащих компонентов (белки, свободные аминокислоты), липофильных (жирные кислоты, пигменты), фенольную фракции и углеводы. В свою очередь, углеводный комплекс характеризуется двумя подгруппами компонентов: структурными (целлюлоза, альгинаты, фукоидан) и запасными (ламинаран, маннит). Общий химический состав бурых водорослей и содержание компонентов в массовых процентах приведены на рисунке 1.4.
Рисунок 1.4 - Общий химический состав бурых водорослей
Рассмотрим химический состав бурых макрофитов как источника биологически активных соединений.
1.1. Характеристика фракционного состава органической
компоненты морских макрофитов
1.1.1. Азотсодержащие компоненты
Группа компонентов, которая редко становится объектом исследований и тем более промышленной переработки - азотсодержащие вещества: аминокислоты и белки. Ситуация обусловлена низким содержанием белка в массе бурых водорослей (3-15 %), которые значительно уступают по данному показателю красным (до 50 %) и зелёным (до 30 %) макрофитам [30, 31].
В литературе представлено большое количество исследований аминокислотного состава водорослей. Известно, что большинство видов содержат все незаменимые аминокислоты (НЗАК), которые не синтезируются в организме человека и должны поступать в него с пищей [32].
Являясь источником всех незаменимых аминокислот, бурые водоросли способны восполнять их недостаток. Несмотря на то, что белки не являются наиболее значимым компонентом биомассы бурых водорослей, их аминокислотный состав выгодно отличается наличием всех незаменимых аминокислот, среди которых наибольшая доля приходится на аспарагиновую, глутаминовую кислоты (до 30 % суммы аминокислот), а также аланин [33].
По показателю питательной ценности аминокислотный комплекс бурых водорослей сравним с традиционными источниками белка - яйцами и бобовыми культурами [34, 35]. При этом качество белка бурых водорослей выше, чем у красных и зелёных водорослей, считающихся более богатыми его источниками [36].
1.1.2. Углеводные компоненты
Углеводы, как правило, составляют подавляющую часть биомассы бурых водорослей. Они выполняют две важнейшие функции в клетке -структурную и запасную. Клеточная стенка бурых водорослей отличается своей сложностью и химической устойчивостью благодаря наличию целлюлозы, альгинатов и фукоиданов [37]. Низкомолекулярные углеводы, такие как маннит, выполняют роль осмолитиков [38]. Полисахариды -наиболее практически используемая фракция бурых водорослей, переработка которых многие десятилетия ориентирована на извлечение альгинатов, фукоидана и маннита. Их эффективность как сорбционных, антибактериальных, противовоспалительных, противоопухолевых препаратов показана во множестве исследований [39-45].
1.1.2.1. Структурные углеводы
Альгинаты
Альгиновые кислоты - группа полисахаридов, образованных остатками P-D-маннуроновой и a-L-гулуроновой кислот, которые формируют соответственно М- и G-блоки (рисунок 1.5), соотношение между которыми часто 1:1, однако, имеются исключения [46]. Именно благодаря наличию G-блоков и их специфической конформации, альгиновые кислоты способны к формированию гелей, в частности, с ионами кальция, формируя прочные структуры типа egg-box. В зависимости от соотношения двух типов блоков можно получать материалы с различными свойствами [47-49]. Содержание альгинатов (солей альгиновых кислот) может достигать 50 % массы водоросли.
Рисунок 1.5 - Структурная формула фрагмента альгиновой кислоты
Определяющими свойствами альгинатов являются структурные и сорбционные, что определило их практическое применение в качестве сорбентов и функциональных материалов для различных сфер. Благодаря таким свойствам, как способность к гелеобразованию, высокое влагоудержание, сорбционная емкость, биоразлагаемость, безопасность для организма, биологически активные свойства, альгинаты нашли широкое применение в современной медицине, косметологии, инженерии, пищевой промышленности [50-53].
Целлюлоза
Целлюлоза является одним из наиболее распространенных природных линейных полисахаридов, присутствующих в различных классах морских водорослей, которые содержат более 1000 Р-(1 ^ 4)-связанных остатков Э-глюкозы (рисунок 1.6). Содержание целлюлозы в морских водорослях сильно варьируется в зависимости от вида и, как сообщается, составляет от 2 до 17% [53].
Для медицины морские водоросли предпочтительнее использовать в качестве источника целлюлозы (альгулёза), чем наземные растения, поскольку растительная целлюлоза содержит лигнин, который влияет на стоимость ее переработки, тогда как большинство видов морских водорослей не содержат настоящего лигнина, что приводит к образованию метастабильной кристаллической фракции 1а - целлюлозы [55-57]. Более того, целлюлоза морских водорослей содержит губчатую сетку, которая значительно отличается от сетки растительной целлюлозы [58, 59].
Рисунок 1.6 - Структурная формула целлюлозы
Кроме того, у морских водорослей есть несколько преимуществ по сравнению с наземными растениями, включая недорогой источник биомассы, который быстро растёт, несколько вариантов сбора урожая в год и высокое содержание целлюлозы, при этом процесс выращивания не требует пахотных земель, удобрений или пестицидов [60]. Более того, экстракцию и выделение целлюлозы морских водорослей можно проводить в более мягких условиях по сравнению с условиями получения растительной целлюлозы, содержащей лигнин [57, 58, 61]. Поэтому в последнее время всё шире используется целлюлоза и её производные из морских водорослей в качестве сырья в таких областях применения, как бумажная, пищевая, текстильная и фармацевтическая промышленность [62].
Фукоиданы
Фукоиданы - группа сульфатированных структурных полисахаридов морских водорослей (рисунок 1.7). По химическому составу это очень разнообразная группа гетерополимеров, состоящая примерно на 50 % из L-фукозы, остальная часть приходится на D-галактозу, D-ксилозу и др [63].
/
о
Рисунок 1.7 - Фрагмент структуры фукоидана Молекулярная масса данной группы полисахаридов варьируется в широких диапазонах: от нескольких кДа до 1600 кДа. Свойства фукоиданов, в том числе молекулярная масса и содержание сульфатов сильно зависят от метода, применяемого для их экстракции [64].
Ввиду большого структурного разнообразия и высокой биологической активности встаёт вопрос о фундаментальной связи между структурой и
активностью. На биологическую активность будут оказывать влияние такие факторы, как чистота получаемого продукта (присутствие полифенолов), степень сульфатирования и молекулярная масса [65, 66].
Из всего многообразия проявляемых биологически активных эффектов фукоиданов особенно можно выделить его антиоксидантные свойства, противовоспалительные, анти-пролиферативные, иммуностимулирующие, антисептические [40, 42, 67-73, 74].
Биоактивное действие фукоидана нельзя свести к единому механизму активности и выделить один фактор, определяющий его свойства. Поэтому при исследовании данной группы соединений требуется тщательная характеристика получаемого материала, а также всестороннее изучение его влияния на различные системы (клеточные, молекулярные и т.д.) [65].
1.1.2.2. Запасные углеводы
Ламинаран
Ламинаран является полимером, построенным из остатков Р-О-глюкопиранозы, соединённых 1^3 связями. В своей структуре ламинараны могут содержать остатки ковалентно связанного маннита - подобные полимеры выделяют в подгруппу ламинаранов М-типа. Вторая подгруппа -О-тип, характеризуется наличием только звеньев глюкопиранозы [74] (рисунок 1.8). Как и для большинства полисахаридов, для ламинарана его активность обусловлена в том числе величиной молекулярной массы или степенью полимеризации.
Рисунок 1.8 - Фрагменты структуры М- (вверху) и О-ламинаранов (внизу)
Степень полимеризации и молекулярные массы ламинаранов существенно варьируются, что во многом зависит от вида водоросли: для вида Laminaria hyperborea 3-5 кДа, для Fucus spp. 3-6 кДа, Ascophyllum nodosum - 500 Да - 2 кДа, Pelvetia canaliculata - 3-4 кДа [75].
Биологическая активность ламинарана, как и многих других водорослевых компонентов отличается большим разнообразием. Они известны своими антиоксидантными, иммуностимулирующими и противоопухолевыми свойствами, нейропротекторной,
противовоспалительной, гипогликемической и антибактериальной активностью [76-81].
Полимерная структура ламинарана делает возможным использование его в качестве основы для производства функциональных материалов, как, например, гидрогелей для биомедицинских целей [82, 83]. Помимо трехмерных гелевых структур исследователи обращают внимание на синтез микро- и наногелей, которые обладают хорошей биосовместимостью с кровью [84], наночастиц серебра, золота с включением ламинарана. Такие частицы проявляют антиоксидантные, антибактериальные свойства, также способны вызывать гибель раковых клеток [85-87].
Маннит
Другой компонент биомассы водорослей, на производство которого ориентировано множество промышленных технологий, - маннит (рисунок 1.9).
Рисунок 1.9 - Структура маннита
Содержание маннита в морских макрофитах максимально в летние месяцы и, как сообщается, может достигать до 15,3 %масс.
В водоросли маннит выполняет функцию запасного вещества, наиболее активно синтезируемого макрофитом в ответ на стрессовые условия
окружающей среды: низкая температура воды - в таком случае маннит выполняет роль криопротектора, при повышении солёности -осморегуляторную роль [88]. Также маннит играет важную роль в фотосинтетической системе водорослей [89].
Он хорошо известен своими осмолитическими свойствами, что обусловило его широкое распространение в виде препарата для инъекций и инфузий, а также в ряде других медико-биологических областей [90]. Его осмолитические свойства позволяют применять его в качестве терапии синдромов воспаления периферических нервов [91,92]. Нейропротекторная активность маннита, которая также связана с его способностью вызывать отток воды и ионов хлора, продемонстрирована в статье [93].
Действие маннита проявляется также в снижении эпилептиформной активности и усилении действия лекарственных средств (бензодиазепина). R. Serafini в своей работе исследовал противосудорожное действие маннита, которое оказалось сопоставимо с действием фармацевтического препарата фенитоина [94]. Снижение нейровоспалительных процессов в ответ на введение маннита продемонстрировано в статье [95].
Маннит усиливает катаболизм липидов, поддерживает энергетический гомеостаз и инициирует производство бурых адипоцитов, что является терапевтической стратегией для борьбы с ожирением [96].
Антигипергликемический эффект маннита продемонстрирован в статье [97] как потенциальная добавка к средствам для контроля сахарного диабета II типа. Авторы установили, что маннит уменьшает всасывание глюкозы в кишечнике, в том числе, вероятно, благодаря своим вязкостным характеристикам.
1.1.3. Липофильные компоненты
Липофильные компоненты бурых водорослей - довольно разнообразная группа соединений, в которой основными подгруппами,
обладающими выраженной биологической активностью, являются пигменты (хлорофиллы и каротиноиды) и жирные кислоты (ЖК).
Пигменты морских водорослей в целом считаются липофильными соединениями, то есть преимущественно экстрагируемыми неполярными органическими сольвентами. Однако, молекулы пигментов помимо длинных алкильных неполярных цепочек содержат и многочисленные полярные группы, что придает им способность растворяться в умеренно полярных средах.
Липофильная фракция бурых водорослей содержит разнообразные пигменты: каротиноиды (фукоксантин, зеаксантин и др.), хлорофиллы (a, c), а также токоферолы в количествах, превышающих их содержание в красных и зелёных водорослях [98, 99].
При оценке накопления пигментов установлено, что наибольшее влияние оказывает не место произрастания макрофита, а его принадлежность к определенному типу (красные, зеленые или бурые водоросли). В среднем, содержание хлорофиллов, феофитина, фукоксантина и зеаксантина выше в бурых водорослях, каротиноидов - в зеленых [100].
При исследовании пигментов морских макрофитов важным аспектом является оценка их стабильности. Пигменты (в частности, каротиноиды) очень чувствительны к условиям окружающей среды: высокие температуры, воздействие света, повышенная кислотность среды приводят к их деградации, изомеризации и потере активных свойств [101] - в частности, при нагреве свыше 50 °С [102].
Относительно фотосинтетических пигментов (например, хлорофиллов), существует мнение, что они практически не усваиваются организмом и, следовательно, не способны оказывать благоприятные эффекты. Коллектив авторов в работах [103, 104] оценивали степень доступности пигментов и усваиваемости в условиях in vitro. Результаты показали, что уровень абсорбции хлорофилла водорослей находится в пределах 3-8 %, что согласуется с результатами для других растительных источников. Однако,
осложняет биодоступность пигментов в бурых водорослях жесткая клеточная стенка, что делает приоритетным получение чистых пигментных вытяжек из биомассы макрофитов для непосредственного применения.
В морских водорослях содержание пигментов невелико, суммарно составляют 0,07 % (0,045 % хлорофиллы и 0,025 % каротиноиды) [54]. Несмотря на малое количество в биомассе макрофитов, они обладают хорошими антиоксидантными свойствами. Присутствие в их молекулах сопряженных двойных связей делает их эффективными молекулами для тушения синглетного кислорода - особой формы активных кислородных радикалов [105] путем диссипации избыточной энергии в виде тепла. Фукоксантин демонстрирует синергический эффект совместно с полифенолами, образуя комплекс активных антиоксидантов, содержание которых напрямую коррелирует с биологической активностью экстрактов [106].
Похожие диссертационные работы по специальности «Другие cпециальности», 00.00.00 шифр ВАК
Структура и противоопухолевая активность фукоиданов бурых водорослей морей Дальнего Востока России2012 год, кандидат химических наук Вищук, Олеся Сергеевна
Новые подходы в биотехнологии при производстве продуктов для диетического питания из бурых морских водорослей2016 год, кандидат наук Одинец Алексей Глебович
Особенности накопления элементных токсикантов в слоевищах ламинарии LAMINARIAE THALLI различного происхождения и продуктах на их основе2024 год, кандидат наук Щукин Виктор Михайлович
Биологическая активность липидов и фотосинтетических пигментов водорослей дальневосточных морей2012 год, кандидат биологических наук Мартыяс, Екатерина Александровна
Ферменты, катализирующие трансформацию полисахаридов бурых водорослей2017 год, кандидат наук Кусайкин, Михаил Игоревич
Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Маматмуродов Хуршед Бегмахмадович, 2025 год
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Park, E. Seaweed metabolomics: A review on its nutrients, bioactive compounds and changes in climate change / Park E. [et al.] //Food Research International. - 2023. - V. 163. - Article 112221.
2. ФАО. Состояние мирового рыболовства и аквакультуры - 2024. "Голубая трансформация" в действии. - Рим. - 2024. - 264 с.
3. Commercial seaweed market size, analysis, forecast 2024-2032. Polaris Market Research. - 2024. - 105 p.
4. Sharma, A. A. K. Brown Seaweed Biomass as Potential Raw Material for Biorefinery / A. A. K. Sharma, R. S. Baghel // Recent Advances in Seaweed Biotechnology: Biomass, Emerging Applications and Bioeconomy. - Singapore: Springer Nature Singapore. - 2025. - P. 283-309.
5. Global Seaweed Extracts Biostimulant Market- Industry Trends and Forecast to 2031. Data Bridge Market research. - 2024. - 350 p.
6. Паршина А.Э. Физикохимические свойства целлюлозного комплекса бурых водорослей: дис. ...канд. хим. наук: 05.21.03; 02.00.04 / Паршина Анастасия Эдуардовна. - Архангельск: Изд-во САФУ. - 2022. - 163 с.
7. О состоянии и об охране окружающей среды Российской Федерации в 2020 году. Государственный доклад. — М.: Минприроды России; МГУ имени М.В. Ломоносова, 2021. - 864 с.
8. M^hre, H.K. Characterization of protein, lipid and mineral contents in common Norwegian seaweeds and evaluation of their potential as food and feed / H.K. M^hre [et al.] // Journal of the Science of Food and Agriculture. - 2014. - V. 94. - P. 3281-3290.
9. Alvarado-Morales, M. Laminaria digitata as a potential carbon source for succinic acid and bioenergy production in a biorefinery perspective / M. Alvarado- Morales [et al.] // Algal Research. - 2015. - V. 9. - P. 126-132.
10. Vilg, J.V. Seasonal and spatial variation in biochemical composition of Saccharina latissima during a potential harvesting season for Western Sweden / J.V. Vilg [et al.] // Botanica Marina. - 2015. - V. 58, No. 6. - P. 435-447.
11. Olsson, J. Biochemical composition of red, green and brown seaweeds on the Swedish west coast / J. Olson, G.B. Toth, E. Albers // Journal of Applied Phycology. - 2020. - V. 32, No. 5. - P. 3305-3317.
12. Tibbetts, S.M. Nutritional quality of some wild and cultivated seaweeds: Nutrient composition, total phenolic content and in vitro digestibility / S.M. Tibbetts, J.E. Milley, S.P. Lall // Journal of Applied Phycology. - 2016. - V. 28, No. 6. - P. 3575-3585.
13. Graiff, A. Chemical characterization and quantification of the brown algal storage compound laminarin — A new methodological approach / A. Graiff [et al.] // Journal of Applied Phycology. - 2016. - V. 28, No. 1. - P. 533-543.
14. Nielsen, M.M. Variation in biochemical composition of Saccharina latissima and Laminaria digitata along an estuarine salinity gradient in inner Danish waters / M.M. Nielsen [et al.] // Algal Researh. - 2016. - V. 13. - P. 235245.
15. Skriptsova, A. Seasonal changes in growth rate, morphology and alginate content in Undaria pinnatifida at the northern limit in the Sea of Japan (Russia) / A. Skriptsova, V. Khomenko, V. Isakov // Journal of Applied Phycology. - 2004. - V. 16, - No. 1. - P. 17-21.
16. Dawczynski, C. Amino acids, fatty acids, and dietary fibre in edible seaweed products / C. Dawczynski, R. Schubert, G. Jahreis // Food Chemistry. -2007. - V. 103, - No. 3. - P. 891-899.
17. Kamenarska, Z. Chemical composition of the brown alga Padina pavonia (L.) Gaill. from the Adriatic sea / Z. Kamenarska [et al.] // Botanica Marina. - 2002. - V. 45, No. 4. - P. 339-345.
18. Abou-El-Wafa, G.S.E. Bioactive constituents and biochemical composition of the egyptian brown alga Sargassum Subrepandum (Forsk) / G.S.E.
Abou-El-Wafa [et al.] // Revista Latinoamericana de Química. - 2011. - V. 39, No. 1. - P. 62-74.
19. Manev, Z. Chemical characterization of brown seaweed - Cystoseira barbata / Z. Manev, A. Iliev, V. Vachkova // Bulgarian Journal of Agricultural Science. - 2013. - V. 19. - P. 12-15.
20. Ito, M. Analysis of functional components and radical scavenging activity of 21 algae species collected from the Japanese coast / M. Ito [et al.] // Food Chemistry. - 2018. - V. 255. - P. 147-156.
21. Oucif, H. Chemical composition and nutritional value of different seaweeds from the west Algerian coast / H. Oucif [et al.] // Journal of Aquatic Food Product Technology. - 2020. - V. 29, No. 1. - P. 90-104.
22. Alwaleed, E.A. Biochemical composition and nutraceutical perspectives red sea seaweeds / E.A. Alwaleed [et al.] // American Journal of Applied Sciences. - 2019. - V. 16, No. 12. - P. 346-354.
23. Zubia, M. Alginate, mannitol, phenolic compounds and biological activities of two range-extending brown algae, Sargassum mangarevense and Turbinaria ornata (Phaeophyta: Fucales), from Tahiti (French Polynesia) / M. Zubia, C. Payri, E. Deslandes // Journal of Applied Phycology. - 2008. - V. 20, No. 6. - P. 1033-1043.
24. Mohammadi, E. Chemical composition and functional properties of two brown seaweeds from the Qeshm Island, Iran / E. Mohammadi, B. Shabanpourh, M. Kordjazi // Iranian Journal of Fisheries Sciences. - 2020. - V. 19, No. 1. - P. 85-98.
25. Kokilam, G. Biochemical composition, alginic acid yield and antioxidant activity of brown seaweeds from Mandapam region, Gulf of Mannar / G. Kokilam, S. Vasuki, N. Sajitha // Journal of Applied Pharmaceutical Science. -2013. - V. 3, No. 11. - P. 99-104.
26. Siddhanta, A.K. Profiling of cellulose content in Indian seaweed species / A.K. Siddhanta [et al.] // Bioresource Technology. - 2009. - V. 100, No. 24. - P. 6669- 6673.
27. Sinurat, E. The chemical properties of seaweed Caulerpa lentifera from Takalar, South Sulawesi / E. Sinurat, S. Fadjriah // IOP Conference Series: Materials Science and Engineering. - 2019. - V. 546, No. 4. - P. 1-6.
28. Chee, S.Y. Extraction and characterisation of alginate from brown seaweeds (Fucales, Phaeophyceae) collected from Port Dickson, Peninsular Malaysia / S.Y. Chee, P.K. Wong, C.L. Wong // Journal of Applied Phycology. -2011. - V. 23, No. 2. - P. 191- 196.
29. Kasimala, M.B. Proximate composition of three abundant species of seaweeds from red sea coast in Massawa, Eritrea / M.B. Kasimala [et al.] // Journal of Algal Biomass Utilization. - 2017. - V. 8, No. 2. - P. 44-49.
30. Harnedy P.A., Fitzgerald R.J. Bioactive proteins, peptides, and amino acids from macroalgae / P.A. Harnedy, R.J Fitzgerald // Journal of Phycology. - 2011. - V. 47, No. 2. - P. 218-232.
31. Pangestuti, R. Kim S. Seaweed proteins, peptides, and amino acids / R. Pangestuti, S. Kim // Seaweed Sustainability. San Diego: Academic Press. -2015. - P. 125-140.
32. Bogolitsyn, K.G. Amino-Acid Composition of Arctic Brown Algae / K.G. Bogolitsyn, P.A Kaplitsin, A.S. Pochtovalova // Chemistry of natural compounds. - 2014. - V. 49, No. 6. - P. 1110-1113.
33. Biancarosa, I. Amino acid composition, protein content, and nitrogen-to-protein conversion factors of 21 seaweed species from Norwegian waters / I. Biancarosa [et al.] // Journal of Applied Phycology. - 2017. - V. 29, No. 2. - P. 1001-1009.
34. Shuuluka. D. Protein content, amino acid composition and nitrogen-to-protein conversion factors of Ulva rigida and Ulva capensis from natural populations and Ulva lactuca from an aquaculture system, in South Africa / D. Shuuluka, J.J. Bolton, R.J. Anderson // Journal of Applied Phycology. - 2013. - V. 25, No. 2. - P. 677-685.
35. Dawczynski, Amino acids, fatty acids, and dietary fibre in edible seaweed products / C. Dawczynski, R. Schubert, G. Jahreis // Food Chemistry. -2007. - V. 103, No. 3. - P. 891-899.
36. Astorga-España, M.S. Amino acid content in seaweeds from the Magellan Straits (Chile) / M.S. Astorga-España [et al.] // Journal of Food Composition and Analysis. - 2016. - V. 53. - Article 77-84.
37. Archibald, J.M. Handbook of the protists / J.M. Archibald, A.G.B. Simpson, C.H. Slamovits// Handbook of the Protists: Second Edition. - Cham: Springer International Publishing, - 2017. - Article 1662.
38. Nielsen, M.M. Variation in biochemical composition of Saccharina latissima and Laminaria digitata along an estuarine salinity gradient in inner Danish waters / Nielsen M.M. [et al.] // Algal Research. - 2016. - V. 13. - P. 235245.
39. Liu, X. Extraction, fractionation, and chemical characterisation of fucoidans from the brown seaweed Sargassum pallidum / Liu X. [et al.] // Czech Journal of Food Sciences. - 2016. - V. 34, No. 5. - P. 406-413.
40. Jayawardena, T.U. Isolation and purification of fucoidan fraction in Turbinaria ornata from the Maldives; Inflammation inhibitory potential under LPS stimulated conditions in in-vitro and in-vivo models / T.U. Jayawardena [et al.] // International Journal of Biological Macromolecules. - 2019. - V. 131. - P. 614623.
41. Wu, G.J. Anti-inflammatory activity of a sulfated polysaccharide from the brown alga Sargassum cristaefolium / G.J. Wu [[et al.]] // Food Hydrocolloids. - 2016. - V. 53. - P. 16-23.
42. Leal, D. [et al.] Chemical structure and biological properties of sulfated fucan from the sequential extraction of subAntarctic Lessonia sp (Phaeophyceae) / D. Leal [et al.] // Carbohydrate Polymers. - 2018. - V. 199. - P. 304-313.
43. Prabhu, A.A. A two-step optimization approach for maximizing biosorption of hexavalent chromium ions (Cr (VI)) using alginate immobilized
Sargassum sp in a packed bed column / A.A. Prabhu [[et al.]] // Separation Science and Technology. - 2021. - V. 56, No. 1. - P. 90-106.
44. Barquilha, C.E.R. Biosorption of nickel (II) and copper (II) ions from synthetic and real effluents by alginate-based biosorbent produced from seaweed Sargassum sp. / C.E.R. Barquilha [et al.] // Environmental Science and Pollution Research. - 2019. - V. 26, No. 11. - P. 11100-11112.
45. Alp Anci. T. Biosorption characteristics of Cu(II) and Cd(II) ions by modified alginate / T. Alp Arici, A.S. Ozcan, A. Ozcan // Journal of Polymers and the Environment. - 2020. - V. 28, No. 12. - P. 3221-3234.
46. Rioux, L. Seaweed carbohydrates / L. Rioux, S.L. Turgeon // Seaweed sustainability: food and non-food applications. - Elsevier Inc., 2015. - P. 141-192.
47. Yang, X. Effects of M/G ratios of sodium alginate on physicochemical stability and calcium release behavior of pickering emulsion stabilized by calcium carbonate/ X. Yang [et al.] // Frontiers in Nutrition. - 2022. - V. 8. - Article 818290.
48. Ramos, P.E. Effect of alginate molecular weight and M/G ratio in beads properties foreseeing the protection of probiotics / P.E. Ramos [et al.] // Food Hydrocolloids. - 2018. - V. 77. - P. 8-16.
49. Jiao, W. Effects of molecular weight and guluronic acid/mannuronic acid ratio on the rheological behavior and stabilizing property of sodium alginate / W. Jiao [et al.] // Molecules. - 2019. - V. 24, No. 23. - P. 1-12.
50. Labowska, M.B. Methods of extraction, physicochemical properties of alginates and their applications in biomedical field - A review / M.B. Labowska, I. Michalak, J. Detyna // Open Chemistry. - 2019. - V. 17, No. 1. - P. 738-762.
51. Janarthanan, M. Extraction of alginate from brown seaweeds and evolution of bioactive alginate film coated textile fabrics for wound healing application / M. Janarthanan, M. Senthil Kumar // Journal of Industrial Textiles. -2019. - V. 49, No. 3. - P. 328-351.
52. Saberian, M. Fabrication and characterization of alginate/chitosan hydrogel combined with honey and aloe vera for wound dressing applications / M.
Saberian [et al.] // Journal of Applied Polymer Science. - 2021. - V. 138, No 47. -P. 1-15.
53. Gorshkova, N. Formation of supramolecular structure in alginate/chitosan aerogel materials during sol-gel synthesis / N. Gorshkova [et al.] // Journal of Sol-Gel Science and Technology. - 2020. - V. 95, No. 1. - P. 101108.
54. Каплицин, П. А. Особенности химического компонентного состава, структуры и свойств биомассы арктических бурых водорослей: дис. ...канд. хим. наук: 05.21.03 / Каплицин Платон Александрович. -Архангельск: Изд-во САФУ. - 2017. - 150 с.
55. Stramme, M. What to do with all these algae? / M. Stromme, A. Mihranyan, R. Ek // Materials Letters. - 2002. - V. 57, No. 3. - P. 569-572.
56. Bogolitsyn, K. Structural features of brown algae cellulose / K. Bogolitsyn, A. Parshina, L. Aleshina // Cellulose. - 2020. - V. 27. - P. 9787-9800.
57. Боголицын, К. Г. Влияние вида сушки на структурно-поверхностные характеристики целлюлозы бурых водорослей / К. Г. Боголицын [и др.] // Сверхкритические флюиды: теория и практика. - 2021. -Т. 16, № 2. - С. 110-130.
58. Salem, D. M. S. A. Characterization of cellulose and cellulose nanofibers isolated from various seaweed species / D. M. S. A. Salem, M. M. Ismail //Egyptian Journal of Aquatic Research. - 2022. - V. 48, No. 4. - P. 307313.
59. Bogolitsyn K. G. Isolation and structural characterization of cellulose from arctic brown algae / K. G. Bogolitsyn [et al.] //Chemistry of Natural Compounds. - 2017. - V. 53. - P. 533-537.
60. Trivedi, N. Enzymatic hydrolysis and production of bioethanol from common macrophytic green alga Ulva fasciata Delile / N. Trivedi [et al.] //Bioresource technology. - 2013. - V. 150. - P. 106-112.
61. Bogolitsyn, K. Nanocrystalline cellulose from Arctic brown algae Laminaria digitata and Saccharina latissima / K. Bogolitsyn [et al.] //Bioactive Carbohydrates and Dietary Fibre. - 2024. - V. 31. - P. 100416
62. He, Q. Highly crystalline cellulose from brown seaweed Saccharina japonica: isolation, characterization and microcrystallization / He Q. [et al.] //Cellulose. - 2018. - V. 25. - P. 5523-5533.
63. Rioux, L.E. Characterization of polysaccharides extracted from brown seaweeds / L.E. Rioux, S.L. Turgeon, M. Beaulieu // Carbohydrate Polymers. -2007. - V. 69, No. 3. - P. 530-537.
64. January, G.G. Assessing methodologies for fucoidan extraction from South African brown algae / January G.G. [et al.] // Algal Research. - 2019. - V. 40. - P. 1-8.
65. Pozharitskaya, O.N. Mechanisms of bioactivities of fucoidan from the brown seaweed Fucus vesiculosus L. of the Barents Sea / O.N. Pozharitskaya, E.D. Obluchinskaya, A.N. Shikov // Marine Drugs. - 2020. - V. 18, No. 5. - P. 275.
66. Ayrapetyan, O.N. Antibacterial properties of fucoidans from the brown algae Fucus vesiculosus L. of the Barents sea / O.N. Ayrapetyan [et al.] // Biology (Basel). - 2021. - V. 10, No. 1. - P. 1-17.
67. Peng, Y. In vitro and in vivo immunomodulatory effects of fucoidan compound agents / Y. Peng [et al.]// International Journal of Biological Macromolecules. - 2019. - V. 127. - P. 48-56.
68. Obluchinskaya, E.D. Formulation, optimization and in vivo evaluation of fucoidan-based cream with anti-inflammatory properties / E.D. Obluchinskaya [et al.] // Marine Drugs. - 2021. - V. 19, No. 11. - P. 643.
69. Alboofetileh, M. Effect of different non-conventional extraction methods on the antibacterial and antiviral activity of fucoidans extracted from Nizamuddinia zanardinii / M. Alboofetileh [et al.] // International Journal of Biological Macromolecules. - 2019. - V. 124. - P. 131-137.
70. Malyarenko, O.S. Fucoidan from brown algae Fucus evanescens potentiates the anti-proliferative efficacy of asterosaponins from starfish Asteropsis
carinifera in 2D and 3D models of melanoma cells / O.S. Malyarenko [et al.] // International Journal of Biological Macromolecules. - 2021. - V. 185. - P. 31-39.
71. Rasin, A.B. Enzymatic transformation and anti-tumor activity of Sargassum horneri fucoidan / A.B. Rasin [et al.] // Carbohydrate Polymers. - 2020. - V. 246. - P. 116635.
72. Kim, Y.I. Anti-photoaging effects of low molecular-weight fucoidan on ultraviolet B-irradiated mice / Y.I. Kim [et al.] // Marine Drugs. - 2018. - V. 16, No. 8. - P. 1-13.
73. Jose, G.M. Sulfated polysaccharides from Padina tetrastromatica induce apoptosis in HeLa cells through ROS triggered mitochondrial pathway / G.M. Jose, M. Raghavankutty, G.M. Kurup // Process Biochemistry. - 2018. - V. 68. - P. 197-204.
74. Kadam, S.U. Extraction, structure and biofunctional activities of laminarin from brown algae / S.U. Kadam, B.K. Tiwari, C.P. O'Donnell // International Journal of Food Science and Technology. - 2015. - V. 50, No. 1. - P. 24-31.
75. Spicer, S.E. Novel rapid method for the characterisation of polymeric sugars from macroalgae / S.E. Spicer [et al.] // Journal of Applied Phycology. -2017. - V. 29, No. 3. - P. 1507-1513.
76. Park, J.H. Laminarin pretreatment provides neuroprotection against forebrain ischemia/reperfusion injury by reducing oxidative stress and neuroinflammation in aged gerbils / J.H. Park [et al.] // Marine Drugs. - 2020. - V. 18, No. 4. - P. 1-14.
77. Kim J.H. [et al.] Laminarin from Salicornia herbacea stimulates glucose uptake through AMPK-p38 MAPK pathways in L6 muscle cells / J.H. Kim [et al.] // Natural Product Communications. - 2020. - V. 15, No. 3. - Article 1934578X20901409.
78. Kadam, S.U. Laminarin from Irish brown seaweeds Ascophyllum nodosum and Laminaria hyperborea: Ultrasound assisted extraction,
characterization and bioactivity / S.U. Kadam [et al.] // Marine Drugs. - 2015. - V. 13, No. 7. - P. 4270-4280.
79. Shang, H.S. Laminarin promotes immune responses and normalizes glutamic oxaloacetic transaminase and glutamic pyruvic transaminase levels in leukemic mice in vivo / H.S. Shang [et al.] // In Vivo (Brooklyn). - 2018. - V. 32, No. 4. - P. 783-790.
80. Malyarenko, O.S. Laminaran from brown alga Dictyota dichotoma and its sulfated derivative as radioprotectors and radiosensitizers in melanoma therapy / O.S. Malyarenko [et al.] // Carbohydrate Polymes. - 2019. - V. 206. - P. 539-547.
81. Liu, X. Laminarin protects against hydrogen peroxide-induced oxidative damage in MRC-5 cells possibly via regulating NRF2 / X. Liu [et al.] // PeerJ. - 2017. - V. 2017, No. 7. - P. 1-18.
82. Erden, S.T. Preparation and in vitro characterization of laminarin based hydrogels / S.T. Erden [et al.] // Journal of Research in Pharmacy. - 2021. -V. 25, No. 2. - P. 164-172.
83. Custodio, C.A. Photocrosslinked laminarin-based hydrogels for biomedical applications / C.A. Custodio, R.L. Reis, J.F. Mano // Biomacromolecules. - 2016. - V. 17, No. 5. - P. 1602-1609.
84. Can, M. A facile one-pot synthesis of microgels and nanogels of laminarin for biomedical applications / M. Can, N. Sahiner // Journal of Colloid and Interface Science. - 2021. - V. 588. - P. 40-49.
85. Remya, R.R. Laminarin based AgNPs using brown seaweed Turbinaria ornata and its induction of apoptosis in human retinoblastoma Y79 cancer cell lines / R.R. Remya [et al.] // Materials Research Express. - 2018. - V. 5, No. 3. - P. 035403.
86. Vijayakumar, S. Antibacterial and antibiofilm activities of marine polysaccharide laminarin formulated gold nanoparticles: An ecotoxicity and cytotoxicity assessment / S. Vijayakumar [et al.] // Journal of Environmental Chemical Engineering. - 2021. - V. 9, No. 4. - P. 0-1.
S7. Renuka, R.R. In vivo toxicity assessment of laminarin based silver nanoparticles from Turbinaria ornata in adult zebrafish (Danio rerio) / R.R. Renuka [et al.] // Journal of Cluster Science. - 2020. - V. 31, No. 1. - P. 1S5-195.
SS. Klindukh, M.P. Seasonal changes in the mannitol and proline contents of the brown alga Fucus vesiculosus L. on the Murman coast of the Barents Sea / M.P. Klindukh, E.D. Obluchinskaya, G.G. Matishov // Doklady Biological Sciences. - 2011. - V. 441, No. 1. - P. 373-376.
S9. Du, G. Discrepancy in photosynthetic responses of the red alga Pyropia yezoensis to dehydration stresses under exposure to desiccation, high salinity, and high mannitol concentration / G. Du [et al.] // Marine Life Science & Technology. - 2022. - V. 4, No. 1. - P. 10-17.
90. Oreskovic, D. New insight into the mechanism of mannitol effects on cerebrospinal fluid pressure decrease and craniospinal fluid redistribution / D. Oreskovic [et al.] // Neuroscience. - 201S. - V. 392. - P. 164-171.
91. Huang, Z.F. Effect of mannitol plus vitamins B in the management of patients with piriformis syndrome / Z.F. Huang [et al.] // Journal of Back and Musculoskeletal Rehabilitation. - 2019. - V. 32, No. 2. - P. 329-337.
92. Bertrand, H. Topical mannitol reduces capsaicin-induced pain: results of a pilot-level, double-blind, randomized controlled trial / H. Bertrand [et al.] // PM&R. - 2015. - V. 7, No. 11. - P. 1111-1117.
93. Glykys, J. Mannitol decreases neocortical epileptiform activity during early brain development via cotransport of chloride and water / J. Glykys [et al.] // Neurobiology of Disease. - 2019. - V. 125. - P. 163-175.
94. Serafini, R. A comparison of anticonvulsant efficacy and action mechanism of mannitol vs phenytoin in adult rat neocortical slices / R. Serafini // IBRO Reports. - 2017. - V. 3. - P. 55-64.
95. Schreibman, D.L. Mannitol and hypertonic daline reduce swelling and modulate inflammatory markers in a rat model of intracerebral hemorrhage / D.L. Schreibman [et al.] // Neurocritical Care. - 201S. - V. 29, No. 2. - P. 253-263.
96. Jeon, H.J. D-mannitol induces a brown fat-like phenotype via a p3-adrenergic receptor-dependent mechanism / H.J. Jeon [et al.] // Cells. - 2021. - V.
10, No. 4. - Article 768.
97. Chukwuma, C.I. D-mannitol modulates glucose uptake ex vivo; suppresses intestinal glucose absorption in normal and type 2 diabetic rats / C.I. Chukwuma [et al.] // Food Bioscience. - 2019. - V. 29. - P. 30-36.
98. Ito, M. Analysis of functional components and radical scavenging activity of 21 algae species collected from the Japanese coast / M. Ito [et al.] // Food Chemistry. - 2018. - V. 255. - P. 147-156.
99. Syad, A.N. Seaweeds as nutritional supplements: analysis of nutritional profile, physicochemical properties and proximate composition of G. acerosa and S. wightii / A.N. Syad, K.P. Shunmugiah, P.D. Kasi // Biomedicine & Preventive Nutrition. - 2013. - V. 3, No. 2. - P. 139-144.
100. Susanto, E. Variation in lipid components from 15 species of tropical and temperate seaweeds / E. Susanto [et al.] // Marine Drugs. - 2019. - V. 17, No.
11. - P. 1-21.
101. Yip, W.H. Characterisation and stability of pigments extracted from Sargassum binderi obtained from Semporna, Sabah / W.H. Yip [et al.] // Sains Malaysiana. - 2014. - V. 43, No. 9. - P. 1345-1354.
102. Zhu, Z. Multistage recovery process of seaweed pigments: Investigation of ultrasound assisted extraction and ultra-filtration performances / Z. Zhu [et al.] // Food and Bioproducts Processing. - 2017. - V. 104. - P. 40-47.
103. Chen, K. In vitro digestion of chlorophyll pigments from edible seaweeds / K. Chen, M. Roca // Journal of Functional Foods. - 2018. - V. 40. - P. 400-407.
104. Chen K., Roca M. In vitro bioavailability of chlorophyll pigments from edible seaweeds // Journal of Functional Foods. - 2018. - V. 41. - P. 25-33.
105. Rajauria, G. Characterization of dietary fucoxanthin from Himanthalia elongata brown seaweed / G. Rajauria, B. Foley, N. Abu-Ghannam // Food Research International. - 2017. - V. 99. - P. 995-1001.
106. Fariman, G.A. Seasonal variation of total lipid, fatty acids, fucoxanthin content, and antioxidant properties of two tropical brown algae (Nizamuddinia zanardinii and Cystoseira indica) from Iran / G.A. Fariman, S.J. Shastan, M.M. Zahedi // Journal of Applied Phycology. - 2016. - V. 28, No. 2. -P. 1323-1331.
107. Komba, S. Degradation of fucoxanthin to elucidate the relationship between the fucoxanthin molecular structure and its antiproliferative effect on caco-2 cells / S. Komba, E. Kotake-Nara, W. Tsuzuki // Marine Drugs. - 2018. -V. 16, No. 8. - P. 275.
108. Jang, H. Fucoxanthin exerts anti-tumor activity on canine mammary tumor cells via tumor cell apoptosis induction and angiogenesis inhibition / H. Jang [et al.] // Animals. - 2021. - V. 11, No. 6. - C. 1512.
109. Garcia-Vaquero, M. Seasonal variation of the proximate composition, mineral content, fatty acid profiles and other phytochemical constituents of selected brown macroalgae / M. Garcia-Vaquero [et al.] // Marine Drugs. - 2021. -V. 19, No. 4. - P. 204.
110. Grozdanic, N. Seasonal variation in biopharmaceutical activity and fatty acid content of endemic Fucus virsoides algae from Adriatic sea / N. Grozdanic [et al.] // Acta Poloniae Pharmaceutica - Drug Research. - 2019. - V. 76, No. 5. - P. 833-844.
111. Verma, P. Multivariate analysis of fatty acid and biochemical constitutes of seaweeds to characterize their potential as bioresource for biofuel and fine chemicals / Verma P. [et al.] // Bioresource Technology. - 2017. - V. 226. - P. 132-144.
112. Bogolitsyn, K.G. Fatty acid composition and biological activity of supercritical extracts from Arctic brown algae Fucus vesiculosus / K.G. Bogolitsyn [et al.] // Russian Journal of Physical Chemistry B. - 2017. - V. 11, No. 7. - P. 19.
113. Salehi, B. Current trends on seaweeds: looking at chemical composition, phytopharmacology, and cosmetic applications / B. Salehi [et al.] // Molecules. - 2019. - V. 24, No. 22. - P. 1-50.
114. Angell A.R. Seaweeds as an alternative crop for the production of protein. PhD Thesis. James Cook University, - 2016. - 237 p.
115. Monteiro, J.P. The unique lipidomic signatures of Saccharina latissima can be used to pinpoint their geographic origin / J.P. Monteiro [et al.] // Biomolecules. - 2020. - V. 10, No. 1. - P. 1-15.
116. Susanto, E. Variation in lipid components from 15 species of tropical and temperate seaweeds / E. Susanto [et al.] // Marine Drugs. - 2019. - V. 17, № 11. - P. 1-21.
117. Matsuda, O. A temperature-sensitive mechanism that regulates post-translational stability of a plastidial ®-3 fatty acid desaturase (FAD8) in Arabidopsis leaf tissues / O. Matsuda [et al.] // Journal of Biological Chemistry. -2005. - V. 280, No. 5. - P. 3597-3604.
118. El-Shenody, R.A. Evaluating the chemical composition and antioxidant activity of three Egyptian seaweeds: Dictyota dichotoma, Turbinaria decurrens, and Laurencia obtusa // R.A. El-Shenody, M. Ashour, M.M.E. Ghobara / Brazilian Journal of Food Technology. - 2019. - V. 22. - P. 1-15.
119. Sánchez-Machado, D.I. Fatty acids, total lipid, protein and ash contents of processed edible seaweeds / D.I. Sánchez-Machado [et al.] // Food Chemistry. - 2004. - V. 85, No. 3. - P. 439-444.
120. Zhao, Z. Fatty Acid composition of macroalgae from Nao Zhou Island / Z. Zhao, S. Zhang, L.Zhao // Revista Brasileira de Farmacognosia. - 2021. - V. 31, No. 4. - P. 477-480.
121. Chaudhary, V. Omega 3 PUFA / V. Chaudhary [et al.] // Naturally Occurring Chemicals Against Alzheimer's Disease. Academic Press. - 2021. - P. 65-82.
122. Gerasimenko, N. Seasonal composition of lipids, fatty acids pigments in the brown alga Sargassum pallidum: the potential for health / N. Gerasimenko,
S. Logvinov // Open Journal of Marine Science. - 2016. -V. 6, No. 4. - P. 498523.
123. Imchen, T. Nutritional value of seaweeds and their potential to serve as nutraceutical supplements / T. Imchen // Phycologia. - 2021. - V. 60, No. 6. - P . 534-546.
124. Schmid, M. Southern Australian seaweeds: a promising resource for omega-3 fatty acids / M. Schmid [et al.] // Food Chemistry. - 2018. - V. 265. - P. 70-77.
125. Guseva, E. V. Biological value of berry polyphenols and prospects for supercritical extraction application for their isolation: A review/ E. V. Guseva [et al.] // Foods and Raw Materials. - 2026. - V. 14, No.1. - P. 1 - 13.
126. Cotas, J. Seaweed phenolics: from extraction to applications / J. Cotas [et al.] // Marine Drugs. - 2020. - V. 18, No. 8. - P. 384.
127. Gumu§ Yilmaz, G. Comparison of extraction techniques and surfactants for the isolation of total polyphenols and phlorotannins from the brown algae Lobophora variegate/ G. Gumu§ Yilmaz [et al.] // Analytical Letters. - 2019. - V. 52, No. 17. - P. 2724-2740.
128. Боголицын, К. Г. Полифенолы бурых водорослей / К. Г. Боголицын [и др.] //Химия растительного сырья. - 2018. - № 3. - С. 5-21.
129. Боголицын, К. Г. [и др.] Полифенолы арктических бурых водорослей: выделение, полимолекулярный состав / К. Г. Боголицын [и др.] //Химия растительного сырья. - 2019. - № 4. - С. 65-75.
130. Tierney, M.S. Influence of pressurised liquid extraction and solidliquid extraction methods on the phenolic content and antioxidant activities of Irish macroalgae/ M.S. Tierney [et al.] // International Journal of Food Science and Technology. - 2013. - V. 48, No. 4. - P. 860-869.
131. Kumar, S. Assessment of nutritional value in a brown seaweed Sargassum wightii and their seasonal variations / S. Kumar, D. Sahoo, I. Levine // Algal Research. - 2015. - V. 9. - P. 117-125.
132. Ford, L. Polyphenols from brown seaweeds as a potential antimicrobial agent in animal feeds / L. Ford [et al.] // ACS Omega. - 2020. - V. 5, No. 16. - P. 9093-9103.
133. Boisvert, C. Assessment of the antioxidant and antibacterial activities of three species of edible seaweeds / C. Boisvert [et al.] // Journal of Food Biochemistry. - 2015. - V. 39, No. 4. - P. 377-387.
134. Schiener. P. The seasonal variation in the chemical composition of the kelp species Laminaria digitata, Laminaria hyperborea, Saccharina latissima and Alaria esculenta / P. Schiener [et al.] // Journal of Applied Phycology. - 2015. -V. 27, No. 1. - P. 363-373.
135. Cajnko M.M., Novak U., Likozar B. Cascade valorization process of brown alga seaweed Laminaria hyperborea by isolation of polyphenols and alginate / M.M. Cajnko, U. Novak, B. Likozar // Journal of Applied Phycology. -2019. - V. 31, No. 6. - P. 3915-3924.
136. Bogolitsyn, K. Biological activity of a polyphenolic complex of Arctic brown algae / K. Bogolitsyn [et al.] //Journal of Applied Phycology. - 2019. - V. 31. - P. 3341-3348.
137. Bogolitsyn, K. In vitro and in vivo activities of polyphenol extracts from Arctic brown alga Fucus vesiculosus / K. Bogolitsyn [et al.] //Journal of Applied Phycology. - 2021. - V. 33. - P. 2597-2608.
138. Leiro, J.M. The anti-inflammatory activity of the polyphenol resveratrol may be partially related to inhibition of tumour necrosis factor-a (TNF-a) pre-mRNA splicing / J.M. Leiro [et al.] // Molecular Immunology. - 2010. - V. 47, № 5. - P. 1114-1120.
139. Güner, A. Apoptosis-inducing activities of Halopteris scoparia L. Sauvageau (brown algae) on cancer cells and its biosafety and antioxidant properties / A. Güner [et al.] // Cytotechnology. - 2019. - V. 71, No. 3. - P. 687704.
140. Herath, K.H.I.N.M. Sargassum horneri (Turner) C. Agardh containing polyphenols attenuates particulate matter-induced inflammatory response by
blocking TLR-mediated MYD88-dependent MAPK signaling pathway in MLE-12 cells / K.H.I.N.M. Herath [et al.] // Journal of Ethnopharmacology. - 2021. - V. 265. - P. 1-13.
141. Breton, F. Distribution and radical scavenging activity of phenols in Ascophyllum nodosum (Phaeophyceae) / F. Breton, S. Cerantola, E. Ar Gall // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. - 2011. - V. 399, No. 2. -P. 167-172.
142. Xu, J.W. Marine bioactive compound dieckol induces apoptosis and inhibits the growth of human pancreatic cancer cells PANC-1 / J.W. Xu [et al.] // Journal of Biochemical and Molecular Toxicology. - 2021. - V. 35, No. 2. - P. 110.
143. Seong, S.H. Probing multi-target action of phlorotannins as new monoamine oxidase inhibitors and dopaminergic receptor modulators with the potential for treatment of neuronal disorders / S.H. Seong [et al.] // Marine Drugs. - 2019. - V. 17, No. 6. - P. 1-16.
144. Erpel, F. Phlorotannins: from isolation and structural characterization, to the evaluation of their antidiabetic and anticancer potential / F. Erpel [et al.] // Food Research International. - 2020. - V. 137. - P. 1-16.
145. Li, Y. Anti-allergic effects of phlorotannins on histamine release via binding inhibition between IgE and FcsRI / Y. Li [et al.] // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2008. - V. 56, No. 24. - P. 12073-12080.
146. Dahri, M. Biomaterial-based delivery platforms for transdermal immunotherapy / M. Dahri [et al.] // Biomedicine & Pharmacotherapy. - 2023. -V. 165. - Article 115048.
147. Bogolitsyn, K. In vitro Immunostimulant Activity of the Polyphenolic Extract from the Arctic Brown Algae Fucus vesiculosus / K. Bogolitsyn [et al.] //Plant Foods for Human Nutrition. - 2024. - V. 79. - No. 2. - P. 511-517.
148. Kumari, P. Comparative evaluation and selection of a method for lipid and fatty acid extraction from macroalgae / P. Kumari, C.R.K. Reddy, B. Jha // Analytical Biochemistry. - 2011. - V. 415, No. 2. - P. 134-144.
149. Pardilho, S.L. Marine macroalgae waste from Northern Portugal: a potential source of natural pigments? / S.L. Pardilho [et al.] // Waste and Biomass Valorization. - 2021. - V. 12, No. 1. - P. 239-249.
150. El-Sheekh, M.M. Lipid extraction from some seaweeds and evaluation of its biodiesel production / M.M. El-Sheekh [et al.] // Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. - 2021. - V. 35. - P. 1-8.
151. Cvitkovic, D. The effect of solvent and extraction method on the recovery of lipid fraction from Adriatic Sea macroalgae / D. Cvitkovic [et al.] // Algal Research. - 2021. - V. 56. - P. 1-9.
152. Minicante, S. A. Development of an eco-protocol for seaweed chlorophylls extraction and possible applications in dye sensitized solar cells / S. A. Minicante [et al.] // Journal of Physics D: Applied Physics. - 2016. - V. 49, No. 29. - Article 295601.
153. Bordoloi, A. Green and integrated processing approaches for the recovery of high-value compounds from brown seaweeds / A. Bordoloi, N. Goosen // Advances in Botanical Research. - 2020. - V. 95. - P. 369-413.
154. Cid, U. Extraction of fatty acids and phenolics from Mastocarpus stellatus using pressurized green solvents / U. Cid [et al.] // Marine Drugs. - 2021. - V. 19, No. 8. - P. 453.
155. Schmid, M. Evaluation of food grade solvents for lipid extraction and impact of storage temperature on fatty acid composition of edible seaweeds Laminaria digitata (Phaeophyceae) and Palmaria palmata (Rhodophyta) / M. Schmid, F. Guiheneuf, D.B. Stengel // Food Chemistry. - 2016. - V. 208. - P. 161-168.
156. Патент № 2676271 C1 Российская Федерация, МПК A61K 36/03, C08B 37/00, C08B 37/18. Способ комплексной переработки бурых водорослей / К. Г. Боголицын, П. А. Каплицин, А. С. Дружинина [и др.]; заявитель Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Северный (Арктический) федеральный университет
имени М.В. Ломоносова". № 2018109052 : заявл. 14.03.2018: опубл. 27.12.2018
157. Оборудование перерабатывающих производств. Растительное сырье: учебник для академического бакалавриата / А. А. Курочкин, Г. В. Шабурова, С. В. Байкин, О. Н. Кухарев ; под общ. ред. А. А. Курочкина. — 2-е изд., испр. и доп. — М.: Издательство Юрайт. - 2018. — 446 с.
158. Richter, B.E. Accelerated solvent extraction (ASE) and high-temperature water extraction / B.E. Richter, D. Raynie // Comprehensive Sampling and Sample Preparation: Analytical Techniques for Scientists. - 2012. - V. 2. - P. 105-115.
159. Чуешов, В.И. Технология лекарств промышленного производства / В.И. Чуешов [и др.] // Винница: Нова Книга. - 2014. - 696 с.
160. Zhang, Q.W. Techniques for extraction and isolation of natural products: A comprehensive review / Q.W. Zhang, L.G. Lin, W.C. Ye // Chinese Medicine (United Kingdom). - 2018. - V. 13, No. 1. - P. 1-26.
161. Osmic S. [et al.] Effect of solvent and extraction conditions on antioxidative activity of sage (Salvia officinalis L.) extracts obtained by maceration // Technologica Acta. - 2019. - V. 11, № 2. - P. 1-8.
162. Гаврилов, С. В. Экстракция гуминовых кислот из торфа в электрохимической ячейке с электромагнитным перемешиванием / С. В. Гаврилов [и др.] // Вестник Казанского технологического университета. -2015. - Т. 18. - №. 2. - С. 144-146.
163. Терлецкая, В. А. Влияние технологических факторов на процесс экстракции плодов рябины черноплодной / В. А. Терлецкая, Е. В. Рубанка, И. Н. Зинченко //Техника и технология пищевых производств. - 2013. - No. 4 (31). - С. 127-131.
164. Kumoro, A.C. Effects of solvent properties on the Soxhlet extraction of diterpenoid lactones from Andrographis paniculata leaves / A.C. Kumoro, M. Hasan, H. Singh // ScienceAsia. - 2009. - V. 35, No. 3. - P. 306-309.
165. Пальм, В.А. Основы количественной теории органических реакций. Ленинград: Химия. - 1977. - 359 с.
166. Llor J.A. Correlation between solvatochromic solvent polarity parameters and the ionization constants of various phenols in 1,4-dioxane-water mixtures / J.A. Llor // Journal of Solution Chemistry. - 1999. No. 28. - P. 1-20.
167. Измайлов, Н.А. Влияние растворителей на свойства электролитов / Н.А. Измайлов // Труды Совещания по влиянию растворителей на свойства электролитов. Харьков: Издательство ХГУ. - 1960. - C. 77-94.
168. Комплексообразование в неводных растворах / [Г.А. Крестов, В.Н. Афанасьев, А.В. Агафонов и др.]; Отв. ред. Г.А. Крестов, АН СССР, Инт химии невод. растворов. — М.: Наука, 1989. — 255, [1] с. ил.; 22. — (Проблемы химии растворов).
169. Dimroth, K. Über pyridinium-N-phenol-betaine und ihre Verwendung zur Charakterisierung der polarität von lösungsmitteln / K. Dimroth [et al.] // Justus Liebigs Annalen der Chemie. - 1963. - V. 661, No. 1. - P. 1-37.
170. Reichardt, C. Solvatochromic dyes as solvent polarity indicators / Reichardt C. // Chemical Reviews. - 1994. - V. 94, No. 8. - P. 2319-2358.
171. Kamlet, M.J. The solvatochromic comparison method. I. The beta-scale of solvent hydrogen-bond acceptor (HBA) basicities / M.J. Kamlet, R.W. Taft // Journal of the American Chemical Society. - 1976. - V. 98, No. 2. - P. 377-383.
172. Taft, R.W. The solvatochromic comparison method. 2. The alpha-scale of solvent hydrogen-bond donor (HBD) acidities / R.W. Taft, M.J. Kamlet // Journal of the American Chemical Society. - 1976. - V. 98, No. 10. - P. 28862894.
173. Kamlet, M.J. Linear solvation energy relationships. 23. A comprehensive collection of the solvatochromic parameters, .pi.*, .alpha., and .beta., and some methods for simplifying the generalized solvatochromic equation / M.J. Kamlet [et al.] // The Journal of Organic Chemistry. - 1983. - V. 48, No. 17. - P. 2877-2887.
174. Gutmann, V. Empirical parameters for donor and acceptor properties of solvents / V. Gutmann // Electrochimica Acta. - 1976. - V. 21, No. 9. - P. 661— 670.
175. Gutmann, V. The donor-acceptor approach to molecular interactions. - New York: Springer New York, NY. - 1978. - 279 p.
176. Hansen, C.M. Hansen solubility parameters: A user's handbook. 2nd ed. Florida: CRC Press; Boca Raton FL. - 2007. - 544 p.
177. Yara-Varón, E. Is it possible to substitute hexane with green solvents for extraction of carotenoids? A theoretical versus experimental solubility study / E. Yara-Varón [et al.] // RSC Advances. - 2016. - V. 6, No. 33. - P. 27750-27759.
178. Silva, A. Macroalgae as a source of valuable antimicrobial compounds: extraction and applications / A. Silva [et al.] // Antibiotics. - 2020. -V. 9, No. 10. - P. 1-41.
179. Бычков А.Л. Механохимическая обработка природных полимеров и её технологическое применение / дисс. на соиск. цч. степ. докт. хим. наук: 02.00.21 / Бычков Алексей Леонидович. - Институт химии твердого тела и механохимии СО РАН. - 2020. - 301 p.
180. Ummat, V. Optimisation of ultrasound frequency, extraction time and solvent for the recovery of polyphenols, phlorotannins and associated antioxidant activity from brown seaweeds / V. Ummat [et al.] // Marine Drugs. - 2020. - V. 18, No. 5. - P. 250.
181. Vázquez-Rodríguez, B. Ultrasound-assisted extraction of phlorotannins and polysaccharides from Silvetia compressa (Phaeophyceae) / B. Vázquez-Rodríguez [et al.] // Journal of Applied Phycology. - 2020. - V. 32, No. 2. - P. 1441-1453.
182. Garcia-Vaquero, M. Evaluation of ultrasound, microwave, ultrasound-microwave, hydrothermal and high pressure assisted extraction technologies for the recovery of phytochemicals and antioxidants from brown macroalgae / M. Garcia-Vaquero [et al.] // Marine Drugs. - 2021. - V. 19, No. 6. -С. 309.
183. Carrera, C. Ultrasound assisted extraction of phenolic compounds from grapes / C. Carrera [et al.] // Analytica Chimica Acta. - 2012. - V. 732. - P. 100-104.
184. Carreira-Casais, A. Benefits and drawbacks of ultrasound-assisted extraction for the recovery of bioactive compounds from marine algae / A. Carreira-Casais [et al.] // International Journal of Environmental Research and Public Health. - 2021. - V. 18, No. 17. - Article 9153.
185. Santos-Zea, L. Effect of solvent composition on ultrasound-generated intensity and its influence on the ultrasonically assisted extraction of bioactives from agave bagasse (Agave salmiana) / L. Santos-Zea, J.A. Gutierrez-Uribe, J. Benedito // Food Engineering Reviews. - 2021. - V. 13, No. 3. - P. 713-725
186. Selvakumar, P. Enhancement of ultrasound assisted aqueous extraction of polyphenols from waste fruit peel using dimethyl sulfoxide as surfactant: assessment of kinetic models / P. Selvakumar [et al.] // Chemosphere. -2021. - V. 263. - Article 128071.
187. Sari, B.L. Ultrasound-assisted extraction using response surface methodology for extracting flavonoids from Padina australis / B.L. Sari [et al.] // Sains Malaysiana. - 2021. - V. 50, No. 5. - P. 1321-1328.
188. Oliyaei, N. Ultrasound-assisted extraction of fucoxanthin from Sargassum angustifolium and Cystoseira indica brown algae / N. Oliyaei, M. Moosavi-Nasab // Journal of Food Processing and Preservation. - 2021. - V. 45, No. 11. - P. 1-10.
189. Garriga, M. Determination of reducing sugars in extracts of Undaria pinnatifida (Harvey) algae by UV-visible spectrophotometry (DNS method) / M. Garriga, M. Almaraz, A. Marchiaro // Actas de Ingeniería. - 2017. - V. 3. - P. 173-179.
190. Mirzadeh, M. Plant/algal polysaccharides extracted by microwave: A review on hypoglycemic, hypolipidemic, prebiotic, and immune-stimulatory effect / M. Mirzadeh, A. K Lelekami, L. Khedmat // Carbohydrate Polymers. - 2021. -V. 266. - Article 118134.
191. Pham, T.N. Effects of process parameters in microwave-assisted extraction on the anthocyanin-enriched extract from Rhodomyrtus tomentosa (Ait.) Hassk and its storage conditions on the kinetic degradation of anthocyanins in the extract / T.N. Pham // Heliyon. - 2022. - V. 8, No. 6. - P. e09518.
192. Izza, H.F. Performance of microwave-assisted extraction of proanthocyanidins from red sorghum grain in various power and citric acid concentration / H.F. Izza [et al.] // Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences. - 2023. - V. 22, No. 7. - P. 480-492.
193. Артемкина, Ю.М. Особенности полглощения микроволновой энергии некоторыми полярными растворителями на частоте 2455 МГц / Ю.М. Артемкина [и др.] // Химия и химическая технология. - 2015. - Т. 58, № 3. - С. 35-38.
194. Подкорытова, А.В. Морские бурые водоросли-перспективный источник БАВ для медицинского, фармацевтического и пищевого применения / А.В. Подкорытова, А.Н. Рощина //Труды ВНИРО. - 2021. - Т. 186. - С. 156-172.
195. Lee, J.B. Novel antiviral fucoidan from sporophyll of Undaria pinnatifida (Mekabu) / J.B. Lee [et al.] // Chemical and Pharmaceutical Bulletin. -2004. - V. 52, No. 9. - P. 1091-1094.
196. Amano, H. Effect of a seaweed mixture on serum lipid level and platelet aggregation in rats / H. Amano [et al.] // Fisheries Science. - 2005. - V. 71. - P. 1160-1166.
197. Athukorala, Y. Anticoagulant activity of marine green and brown algae collected from Jeju Island in Korea / Y. Athukorala [et al.] // Bioresource technology. - 2007. - V. 98, No. 9. - P. 1711-1716.
198. Murata, M. Production and use of marine algae in Japan / M. Murata, J. Nakazoe // Japan Agricultural Research Quarterly. - 2001. - V. 35, No.4. - P. 281-290.
199. Garbisa, S. Tumor gelatinases and invasion inhibited by the green tea flavanol epigallocatechin-3-gallate / S. Garbisa [et al.] // Cancer. - 2001. - V. 91, No. 4. - P. 822-832.
200. Maliakal, P.P. Tea consumption modulates hepatic drug metabolizing enzymes in Wistar rats / P.P. Maliakal, P.F. Coville, S. Wanwimolruk //Journal of pharmacy and pharmacology. - 2001. - V. 53, No. 4. - P. 569-577.
201. Kang, K. Antioxidative properties of brown algae polyphenolics and their perpectives as chemopreventive agents against vascular risk factors / K. Kang [et al.] // Archives of pharmacal research. - 2003. - V. 26. - P. 286-293.
202. Li, Y. Chemical components and its antioxidant properties in vitro: an edible marine brown alga, Ecklonia cava / Y. Li [et al.] // Bioorganic & medicinal chemistry. - 2009. - V. 17, No. 5. - P. 1963-1973.
203. Zubia, M. Alginate, mannitol, phenolic compounds and biological activities of two range-extending brown algae, Sargassum mangarevense and Turbinaria ornata (Phaeophyta: Fucales), from tahiti (French Polynesia) / M. Zubia, C. Payri, E. Deslandes // Journal Applied Phycology. - 2008. - V. 20. - P. 1033-1043.
204. Sailler, B. Phlorethols and fucophlorethols from the brown alga Cystophora retroflexa / B. Sailler, K.W. Glombitza // Phytochemisty. - 1999. - V. 50, No. 5. - P. 869-881.
205. Khan, W. Seaweed extracts as biostimulants of plant growth and development / W. Khan [et al.] //Journal of plant growth regulation. - 2009. - V. 28. - P. 386-399.
206. Rayorath, P. Rapid bioassays to evaluate the plant growth promoting activity of Ascophyllum nodosum (L.) Le Jol. using a model plant, Arabidopsis thaliana (L.) Heynh / P. Rayorath [et al.] //Journal of applied phycology. - 2008. -V. 20. - P. 423-429.
207. Crouch, I.J. Effect of seaweed concentrate on the establishment and yield of greenhouse tomato plants / I.J. Crouch, J. Van Staden // Journal of Applied Phycology. - 1992. - V. 4. - P. 291-296.
208. Atzmon N., van Staden J. The effect of seaweed concentrates on the growth of Pinus pinea seedlings / N. Atzmon, J. Van Staden // New Forest. - 1994. - V. 8. - P. 279-288.
209. Kowalski, B. The effect of a seaweed concentrates on the in vitro growth and acclimatization of potato plantlets / B. Kowalski, A.K. Jager, J. Van Staden // Potato research. -1999. -V. 42. - P. 131-139.
210. Arthur, G.D. Effect of a seaweed concentrate on the growth and yield of three varieties of Capsicum annuum / G.D. Arthur [et al.] //South African journal of botany. - 2003. - V. 69, No. 2. - P. 207-211.
211. Leclerc, M. Effect of plant growth regulators on propagule formation in Hemerocallis spp. and Hosta spp / M. Leclerc [et al.] //HortScience. - 2006. - T. 41, No. 3. - P. 651-653.
212. Jeannin, I. The effects of aqueous seaweed sprays on the growth of maize / I. Jeannin, J.C. Lescure, J.F. Morot-Gaudry // Botanica Marina. -1991. -V. 34. -P. 469-473.
213. Aldworth, S.J. The effect of seaweed concentrates on seedling transplants / S.J. Aldworth, J. Van Staden // South African Journal of Botany. -1987. - V. 53, No. 3. - P. 187-189.
214. Finnie J.F., Van Staden J. Effect of seaweed concentrate and applied hormones on in vitro cultured tomato roots / J.F. Finnie, J. Van Staden // Journal of Plant Physiology. - 1985. - V. 120, No. 3. - P. 215-222.
215. Thompson, B. Five years of Irish trials on biostimulants: the conversion of a skeptic / B. Thompson // USDA Forest Service Proceedings. -2004. - V. 33. - P. 72-79.
216. Slavik, M. Production of Norway spruce (Picea abies [L.] Karst.) seedlings on substrate mixes using growth stimulants / M. Slavik [et al.] //Journal of Forest Science. - 2005. - V. 51, No. 1. - P. 15-23.
217. Mancuso, S. Marine bioactive substances (IPA extract) improve ion fluxes and water stress tolerance in potted Vitis vinifera plants / S. Mancuso [et al.] // Advances in horticultural science. -2006. -V. 20. -P. 156-161.
218. Panda D., Pramanik K., Nayak B.R. Use of seaweed extracts as plant growth regulators for sustainable agriculture / D. Panda, K. Pramanik, B.R. Nayak // International journal of Bio-resource and Stress Management. -2012. -V. 3, No. 3 -P. 404-411.
219. Crouch, I.J. Identification of auxins in a commercial seaweed concentrate / I.J. Crouch [et al.]//Journal of plant physiology. - 1992. - V. 139, No. 5. - P. 590-594.
220. Ismail, G.A. Biochemical composition of some Egyptian seaweeds with potent nutritive and antioxidant properties G.A. / Ismail // Journal of Food Science and Technology. - 2017. - V. 37, No. 2. - P. 294-302.
221. Wang, T. Antioxidant capacities of phlorotannins extracted from the brown algae Fucus vesiculosus / T. Wang [et al.] // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2012. - V. 60, No. 23. - P. 5874-5883.
222. Облучинская, Е.Д. Сравнительное исследование бурых водорослей Баренцева моря / Е.Д. Облучинская //Прикладная биохимия и микробиология. - 2008. - Т. 44. - №. 3. - С. 337-342.
223. Bogolitsyn, K.G. Isolation and structural characterization of cellulose from Arctic brown algae / K.G. Bogolitsyn [et al.] // Chemistry of Natural Compounds. - 2017. -V. 53, No. 3. - P. 533-537.
224. Reichardt, C. Solvatochromic dyes as solvent polarity indicators / C. Reichardt // Chemical reviews. - 1994. - V. 94, No. 8. - P. 2319-2358.
225. Marcus, Y. The properties of solvents / Y. Marcus; Hebrew University Department of Chemistry - Wiley, 1998. - 239 p.
226. Salari, H. Preferential solvation and behavior of solvatochromic indicators in mixtures of an ionic liquid with some molecular solvents / H. Salari [et al.] // The Journal of Physical Chemistry B. - 2010. - V. 114, No. 29. - P. 9586-9593.
227. Rosés M. Solute-solvent and solvent-solvent interactions in binary solvent mixtures. Part 6. A quantitative measurement of the enhancement of the water structure in 2-methylpropan-2-ol-water and propan-2-ol-water mixtures by
solvatochromic indicators / M. Rosés [et al.] // Journal of the Chemical Society, Perkin Transactions 2. - 1997. - No. 7. - P. 1341-1348.
228. I§il Berker, K. Total antioxidant capacity assay using optimized ferricyanide/Prussian blue method / K. I§il Berker [et al.] // Food Analytical Methods. - 2010. - V. 3, No. 3. - P. 154-168.
229. Santos, J.S. High-throughput assay comparison and standardization for metal chelating capacity screening: A proposal and application / J.S. Santos, V.R.A. Brizola, D. Granato // Food Chemistry. - 2017. - V. 214. - P. 515-522.
230. OmettoM F. Seasonal variation of elements composition and biomethane in brown macroalgae / F. Ometto [et al.] //Biomass and Bioenergy. -2018. - V. 109. - P. 31-38.
231. Mohy El-Din, S. M. Temporal variation in chemical composition of Ulva lactuca and Corallina mediterranea / S. M. Mohy El-Din //International journal of environmental science and technology. - 2019. - V. 16, No. 10. - P. 5783-5796.
232. Ansari, A.A. Growth attributes and biochemical composition of Padina pavonica (L.) from the Red Sea, in response to seasonal alterations of Tabuk, Saudi Arabia / A.A. Ansari, S.M. Ghanem //The Egyptian Journal of Aquatic Research. - 2019. - V. 45, No. 2. - P. 139-144.
233. Karkhaneh Yousefi, M. Seasonal variation of fucoxanthin content in four species of brown seaweeds from Qeshm Island, Persian Gulf and evaluation of their antibacterial and antioxidant activities / M. Karkhaneh Yousefi [et al.] //Iranian Journal of Fisheries Sciences. - 2020. - V. 19, No. 5. - P. 2394-2408.
234. Heavisides, E. Seasonal variations in the metabolome and bioactivity profile of Fucus vesiculosus extracted by an optimised, pressurised liquid extraction protocol / E. Heavisides [et al.] // Marine Drugs. - 2018. - V. 16, No. 12. - P. 1-28.
235. Marins, B.V. Seasonal changes in population structure of the tropical deep-water kelp Laminaria abyssalis / B.V. Marins [et al.] // Phycological Research. - 2014. - V. 62, No. 1. - P. 55-62.
236. Sappati, P.K. Combined effects of seasonal variation and drying methods on the physicochemical properties and antioxidant activity of sugar kelp (Saccharina latissima) / P.K. Sappati [et al.] // Journal of Applied Phycology. -2019. - V. 31, No. 2. - P. 1311-1332.
237. Paiva, L. Seasonal variability of the biochemical composition and antioxidant properties of Fucus spiralis at two Azorean Islands / L. Paiva [et al.] // Marine Drugs. - 2018. - V. 16, No. 8. - Article 248.
238. Sugiura, Y. Correlation between the seasonal variations in phlorotannin content and the antiallergic effects of the brown alga Ecklonia cava subsp. stolonifera / Y. Sugiura [et al.] //Algal Research. - 2021. - V. 58. - Article 102398.
239. Jégou, C. Étude du genre Cystoseira des côtes bretonnes: taxinomie, écologie et caractérisation de substances naturelles: Diss. - Université de Bretagne Occidentale. - 2011.
240. Gager, L. Active phlorotannins from seven brown seaweeds commercially harvested in Brittany (France) detected by 1 H NMR and in vitro assays: Temporal variation and potential valorization in cosmetic applications / L. Gager [et al.] //Journal of Applied Phycology. - 2020. - V. 32. - P. 2375-2386.
241. Watanabe, K. Haplotypic differentiation between seasonal populations of Sargassum horneri (Fucales, Phaeophyceae) in Japan / K. Watanabe [et al.] //Phycological Research. - 2019. - V. 67, No. 1. - P. 59-64.
242. Manns, D. Compositional variations of brown seaweeds Laminaria digitata and Saccharina latissima in Danish waters / D. Manns [et al.] //Journal of applied phycology. - 2017. - V. 29. - P. 1493-1506.
243. Qu, Y. Monthly variations of fucoidan content and its composition in the farmed brown alga Saccharina sculpera (Laminariales, Phaeophyceae) / Y. Qu [et al.] //Journal of Applied Phycology. - 2019. - V. 31, No. 4. - P. 2623-2628.
244. Bruhn, A. Crude fucoidan content in two North Atlantic kelp species, Saccharina latissima and Laminaria digitata—seasonal variation and impact of
environmental factors / A. Bruhn [et al.] // Journal of applied phycology. - 2017. -V. 29. - P. 3121-3137.
245. Konstantin, B. Seasonal variations in the chemical composition of Arctic brown macroalgae / B. Konstantin [et al.] //Algal Research. - 2023. - V. 72. - Article 103112.
246. Макаров, М.В. Влияние освещения и температуры на макроводоросли Баренцева моря / М.В. Макаров, Г.М. Воскобойников // Вопросы современной альгологии. - 2017. - Т. 14. - №. 3. - С. 2-2.
247. Aroyehun, A.Q. Effects of seasonal variability on the physicochemical, biochemical, and nutritional composition of Western Peninsular Malaysia Gracilaria manilaensis / A.Q. Aroyehun [et al.] //Molecules. - 2019. - V. 24, No. 1S. - Article 329S.
24S. Afonso, C. Seasonal changes in the nutritional composition of Agarophyton vermiculophyllum (Rhodophyta, Gracilariales) from the center of Portugal / C. Afonso [et al.] //Foods. - 2021. - V. 10, No. 5. - Article 1145.
249. Marinho-Soriano, E. Seasonal variation in the chemical composition of two tropical seaweeds / E. Marinho-Soriano [et al.] //Bioresource technology. -2006. - V. 97, No. 1S. - P. 2402-2406.
250. Klindukh, M.P. A comparative study of free amino acids of the brown alga fucus vesiculosus linnaeus, 1753 from the intertidal zone of the Murman shore, Barents Sea / M.P. Klindukh, E.D. Obluchinskaya //Russian Journal of Marine Biology. - 201S. - V. 44. - P. 232-239.
251. Cotas, J. The effect of salinity on Fucus ceranoides (Ochrophyta, Phaeophyceae) in the Mondego River (Portugal) / J. Cotas [et al.] //Journal of Oceanology and Limnology. - 2019. - V. 37. - P. SS1-S91.
252. Cagalj, M. Variations in the composition, antioxidant and antimicrobial activities of Cystoseira compressa during seasonal growth // M. Cagalj [et al.] /Marine drugs. - 2022. - V. 20, No. 1. - P. 64.
253. Ojeda, J. Seasonal changes of macroalgae assemblages on the rocky shores of the Cape Horn Biosphere Reserve, Sub-Antarctic Channels, Chile / J. Ojeda [et al.] //Aquatic Botany. - 2019. - V. 157. - P. 33-41.
254. Vinuganesh, A. Seasonal changes in the biochemical constituents of green seaweed Chaetomorpha antennina from Covelong, India / A. Vinuganesh [et al.] //Biomolecules. - 2022. - V. 12, No. 10. - P. 1475.
255. Органические растворители: Физ. свойства и методы очистки / А. Вайсбергер, Э. Проскауэр, Дж. Риддик, Э. Тупс; Пер. с англ. канд. хим. наук Н. Н. Тихомировой; Под ред. д-ра хим. наук Я. М. Варшавского. - Москва: Изд-во иностр. лит., 1958. - 519 с.
256. Курс современной органической химии: учебное пособие для студентов вузов, обучающихся по химико - технологическим специальностям / Б. Д. Березин, Д. Б. Березин. - Москва: Высшая школа. - 1999. - 767 с.
257. Справочник химика / под ред. Никольского Б.П. Москва: Химия, - 1982. - 1071 с.
258. 186. Lide D.R. Handbook of chemistry and physics. CRC Press, -
2004. - 2712 p.
259. McLain, S.E. Investigations on the structure of dimethyl sulfoxide and acetone in aqueous solution / S.E. McLain, A.K. Soper, A. Luzar // The Journal of Chemical Physics. - 2007. - V. 127, No. 17.
260. Wang, W.J. Isolation of fucoxanthin from the rhizoid of Laminaria japonica Aresch / W.J. Wang [et al.] // Journal of Integrative Plant Biology. -
2005. - V. 47, No. 8. - P. 1009-1015.
261. Garcia-Perez, P. Pigment composition of nine brown algae from the Iberian northwestern coastline: influence of the extraction solvent / P. Garcia-Perez [et al.] // Marine Drugs. - 2022. - V. 20, No. 2. - Р. 113.
262. Lefebvre, T. Selective extraction of bioactive compounds from plants using recent extraction techniques: A review / T. Lefebvre, E. Destandau, E. Lesellier // Journal of Chromatography A. - 2021. - V. 1635. - Article 461770.
263. Dianursanti, A.R. The effects of solvents and solid-to-solvent ratios on ultrasound-assisted extraction of carotenoids from Chlorella vulgaris / A.R. Dianursanti [et al.] // International Journal of Technology. - 2020. - V. 11, No. 5. - P. 941-950.
264. Martins, M. Recovery of chlorophyll a derivative from Spirulina maxima: its purification and photosensitizing potential / M. Martins [et al.] // ACS Sustainable Chemistry & Engineering. - 2021. - V. 9, No. 4. - P. 1772-1780.
265. Chee, S.Y. Extraction and characterisation of alginate from brown seaweeds (Fucales, Phaeophyceae) collected from Port Dickson, Peninsular Malaysia / S.Y. Chee, P.K. Wong, C.L. Wong // Journal of Applied Phycology. -2011. - V. 23, No. 2. - P. 191-196.
266. LeBel, R.G. Density, viscosity, refractive index, and hydroscopicity of mixtures of water and dimethylsolfoxide / R.G. LeBel, D.A.I. Goring // Journal of Chemical & Engineering Data. - 1962. - V. 7, No. 1. - P. 100-101.
267. Bosch, E. Solute-solvent and solvent-solvent interactions in binary solvent mixtures. 2. Effect of temperature on the ET(30) polarity parameter of dipolar hydrogen bond acceptor- hydrogen bond donor mixtures / E. Bosch [et al.] // Journal of physical organic chemistry. - 1996. - V. 9. - No. 6. - P. 403-410.
268. Migron, Y. Polarity and hydrogen-bonding ability of some binary aqueous-organic mixtures / Y. Migron, Y. Marcus // Journal of the Chemical Society, Faraday Transactions. - 1991. - V. 87. - No. 9. - P. 1339-1343.
269. Kazemi, M. Optimization of pulsed ultrasound-assisted technique for extraction of phenolics from pomegranate peel of Malas variety: Punicalagin and hydroxybenzoic acids / M. Kazemi [et al.] // Food Chemistry. - 2016. - V. 206. -P. 156-166.
270. Farvin, K.H.S. Phenolic compounds and antioxidant activities of selected species of seaweeds from Danish coast / K.H.S. Farvin, C. Jacobsen // Food Chemistry. - 2013. - V. 138, No. 2-3. - P. 1670-1681.
271. Brglez Mojzer, E. Polyphenols: Extraction methods, antioxidative action, bioavailability and anticarcinogenic effects / E. Brglez Mojzer [et al.] // Molecules. - 2016. - V. 21, No. 7. -901 р.
272. Onumaegbu, C. Modelling and optimization of wet microalgae Scenedesmus quadricauda lipid extraction using microwave pre-treatment method and response surface methodology / C. Onumaegbu [et al.] // Renewable Energy. -2019. - V. 132. - P. 1323-1331.
273. Klejdus, B. Development of new efficient method for isolation of phenolics from sea algae prior to their rapid resolution liquid chromatographic-tandem mass spectrometric determination / B. Klejdus [et al.] // Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. - 2017. - V. 135. - P. 87-96.
274. Garcia-Vaquero, M. Enhancing the extraction of polysaccharides and antioxidants from macroalgae using sequential hydrothermal-assisted extraction followed by ultrasound and thermal technologies / M. Garcia-Vaquero [et al.] // Marine Drugs. - 2019. - V. 17, No. 8. - P. 457.
275. Chan, P.T. Antioxidant activities and polyphenolics of various solvent extracts of red seaweed, Gracilaria changii / P.T. Chan [et al.] // Journal of Applied Phycology. - 2015. - V. 27, No. 6. - P. 2377-2386.
276. Golan, D. E. Principles of pharmacology: The pathophysiologic basis of drug therapy / D. E. Golan, A. H. Tashjian, E. J. Armstrong. - Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins. - 2011. - 1024 p
277. Paterson, D.L. Resistance in Gram-negative bacteria: enterobacteriaceae / D.L. Paterson // American Journal of Medicine. - 2006. - V. 119. - P. 20-28
278. Lopes, G., Can phlorotannins purified extracts constitute a novel pharmacological alternative for microbial infections with associated inflammatory conditions? / G. Lopes [et al.] // Public Library of Science ONE. - 2012. - Vol. 7, No. 2. - P. 1-9
279. Wisespongpand, P. Bioactive phloroglucinols from the brown alga Zonaria diesingiana / P. Wisespongpand, M. Kuniyoshi // Journal of Applied Phycology. - 2003. - V. 15, No. 2. - P.225-228
280. Eom, S.-H. Antimicrobial effect of phlorotannins from marine brown algae / S.-H. Eom, Y.-M. Kim, S.-K. Kim // Food and Chemical Toxicology. -2012. - V. 50. - P. 3251-3255
281. Heldt, H.-W. Plant Biochemistry / H.-W. Heldt, B. Piechulla. - 4th edition. - San Diego: Academic Press. - 2010. - 656 p
282. Wang, Y. Sensitivity of Escherichia coli to seaweed (Ascophyllum nodosum) phlorotannins and terrestrial tannins / Y. Wang [et al.] // Journal of Animal Science. - 2009. - V. 22. - P. 238-245
283. Nagayama, N. Bactericidal activity of phlorotannins from the brown alga Ecklonia kurome / N. Nagayama [et al.] // Journal of Antimicrobial Chemotherapy. - 2002. - V. 50, No. 6. - P. 889-893
Врио дире)
-/5"»
УТВЕРЖДАЮ ра ФГБУ СЛС «Архангельская» Е. Н. Косарева
2024 г.
^ X/
Протокол (Акт) испытаний экстрактов биологически активных веществ (БЛВ) бурых водорослей вида Ascophyllum nodosum на биостимулируюшие свойства. ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ СТАНЦИЯ АГРОХИМИЧЕСКОЙ СЛУЖБЫ «АРХАНГЕЛЬСКАЯ»
Характеристика образцов экстрактов:
Даты проведения испытаний: Используемые тест -объекты:
Образцы экстрактов БАВ выделены в Северном (Арктическом) федератьном университете из бурых водорослей Белого моря вида Ascophyllum nodosum методом мацерации и предоставлены в виде сухих водорастворимых препаратов [1].
1.07.2024 - 1.10.2024
Кресс-салат сорт «Дукат» раннеспелый сорт, период от полных всходов до начала хозяйственной годности 18 дней. Розетка листьев полуприподнятая, высотой 20 см. диаметром 18 см. Листовая пластинка цельная, зеленая, яйцевидная, по краю слабоволнистая, длиной до 12 см, шириной 3 см. Вкусовые качества хорошие. Масса однош растения 15-20 г.
Овес сорт «Яков»: куст промежуточный, соломина прочная средней высоты, листовые влагалища, края листьев и верхний стеблевой узел не опушены; растение среднерослое. Метелка двухсторонняя, расположение ветвей полунриподнятое - горизонтальное. Колоски пониклые. Колосковая чешуя длинная, со слабым - средним восковым налетом. Нижняя цветковая чешуя белая, средней длины - длинная, со слабым - средним восковым налетом.
Остистость средняя. У первой зерновки опушение основания среднее. Зерновка крупная.
Схема экспериментальных исследований: Рассада, выращенная в контролируемых условиях, была обработана методом корневой и некорневой подкормки в процессе вегетации, 3-4 раза (интервал 5-7 дней) водными растворами экстрактов водорослей в концентрации 30,60 и 3 3 120 мг/дм (некорневая) и 150,300 и 500 мг/дм (корневая).
Контролируемые параметры: Высота каждого растения, вес, количество листьев. Массовая доля сухого вещества определялась согласно ГОСТ 31640-2012.
Результаты испытаний: Приложение: таблицы 1-4.
Заключение: Овес. Выявлен дозозависимый положительный эффект при некорневой подкормке овса. Наибольший эффект увеличения биомассы (3,9 %) составил при использовании экстракта концентрацией 120 мг/дм ; при корневой подкормке овса прирост биомассы в 15,4 % достигнут при применении раствора 500 мг/дм3. Кресс-салат. Наиболее эффективной концентрацией при некорневой подкормке кресс-салата оказалась 60 мг/дм3, которая обеспечила прирост биомассы в размере 8 %. При корневой подкормке кресс-салата наблюдалось снижение массы растений при всех концентрациях растворов. Вывод. Бурые арктические водоросли вида Ascophyllum nodosum являются перспективным сырьем для создания экологически чистых и эффективных удобрений, которые могут значительно улучшить урожайность и качество сельскохозяйственных культур. Для выработки более точных рекомендаций необходимы дополнительные исследования с использованием разных способов применения, различных концентраций и разнообразных видов растений.
Исполнители: Начальник отдела мониторинга плодородия земель Шабанова Е.Н. Ведущий агрохимик лаборатории токсикологии Кошуняев М.Д.
Руководитель работ:
Врио директора ФГБУ САС «Архангельская» Косарева Е.Н.
[1] - Пат. 2803597 Российская Федерация, МПК А 23 Ь 17/60, А 01 С 1/06. Способ получения экстрактов Арктических бурых водорослей, обладающих фитоактивными свойствами / Боголицын К.Г., Паршина А.Э., Одинцова А.В., Семушина М.П., Скребец Т.Э., Маматмуродов Х.Б.; заявитель и патентообладатель "САФУ имени М.В. Ломоносова". № 2022133497; заявл. 20.12.2022; опубл. 18.09.2023; Бюл. № 26.
Таблица 1 - Параметры кресс-салата при некорневой подкормке удобрениями из экстракта морских водорослей концентрацией 0, 30, 60 и 120
мг/дм3
Кресс-салат
Кресс-салат, контроль Кресс-салат, 30 мг/дм3 Кресс-салат, 60 мг/дм3 Кресс-салат, 120 мг/дм3
Вес 1 растения, г 1,12 1,17 (4,5 %)* 1,21 (8,0 %)* 1,16 (3,6 %)*
НСР05 0,05
Средняя высота, см 12,4 12,4 (0 %)* 12,0 (-3,2 %)* 12,4 (0 %)*
Кол-во листьев, шт 9 9 9 9
Массовая доля сухого вещества, % 5,8 ± 0,9 5,7 ± 0,9 (-1,7 %)* 6,0 ± 0,9 (3,4 %)* 6,3 ± 1,0 (8,6 %)*
* - по сравнению с контролем
Таблица 2 - Параметры кресс-салата при корневой подкормке удобрениями
-5
из экстракта морских водорослей концентрацией 0, 150, 300 и 500 мг/дм
Кресс-салат
Кресс-салат, контроль Кресс-салат, 150 мг/дм3 Кресс-салат, 300 мг/дм3 Кресс-салат, 500 мг/дм3
Вес 1 растения, г 1,12 1,04 (-7,1 %)* 1,01 (-9,8 %)* 0,97 (-13,4 %)*
НСР05 0,04
Средняя высота, см 11,9 11,8 (-0,8 %)* 11,8 (-0,8 %) 11,7 (-1,7 %)*
Кол-во листьев, шт 8 8 8 8
Массовая доля сухого вещества, % 6,3 ± 1,0 6,8 ± 1,0 (7,9 %)* 6,8 ± 1,0 (7,9 %)* 6,6 ± 1,0 (4,8 %)*
* - по сравнению с контролем Таблица 3 - Параметры овса при некорневой подкормке удобрениями из -5 экстракта морских водорослей концентрацией 0, 30, 60 и 120 мг/дм
Овес
Овес, контроль Овес, 30 мг/дм Овес, 60 мг/дм Овес, 120 мг/дм
Вес 1 растения, г 2,59 2,63 (1,5 %)* 2,67 (3,1 %)* 2,69 (3,9 %)*
НСР05 0,03
Средняя высота, см 55,4 55,3 (-0,2 %)* 56,0 (1,1 %)* 55,7 (0,5 %)*
Кол-во листьев, шт 5 5 5 5
Массовая доля сухого вещества, % 8,0 ± 1,0 7,9 ± 1,0 (-1,3 %)* 8,4 ± 1,1 (5 %)* 8,4 ± 1,1 (5 %)*
* - по сравнению с контролем
Таблица 4 - Параметры овса при корневой подкормке удобрениями из
-5
экстракта морских водорослей концентрацией 0, 150, 300 и 500 мг/дм
Овес
Овес, контроль Овес, 150 мг/дм3 Овес, 300 мг/дм3 Овес, 500 мг/дм
Вес 1 растения, г 2,46 2,63 (6,9 %)* 2,71 (10,2 %)* 2,84 (15,4 %)*
НСР05 0,08
Средняя высота, см 57,6 56,6 (-1,7 %)* 56,8 (-1,4 %)* 57,5 (-0,2 %)*
Кол-во листьев, шт 5 5 5 6
Массовая доля сухого вещества, % 9,3 ± 1,1 8,5 ± 1,1 (-8,6 %)* 8,5 ± 1,1 (-8,6 %)* 8,6 ± 1,1 (-7,5 %)*
* - по сравнению с контролем
«Утверждаю»: Директор I ии КарНЦ РАН д.б.н. П.В, Ильмаст
"18" марта 2024 г.
М II
Протокол (Акт) испытаний
экстрактов биологически активных веществ (ВДВ) бурых водорослей на биостимулируюшие и немагицидные свойства.
Инстнтут биологии Карельского НЦ РАН
Протокол испытании №1 от 1.09.2023 г .
Характеристика образцов экстрактов: - Образцы экстрактов ВДВ выделены из бурых водорослей Белого моря видов Ascophyllum nodosum, Fucus vesiculosa*. Luminaria digilala и Saccharina latissimi методом мацерации. - 'Экстракты выделены в Северном (Арктическом) федеральном университете и предоставлены в виде 4 сухих водорастворимых препаратов в количестве 5 грамм каждый.
Даты проведения испытаний: 1.04.2023 - 1.09.2023
Используемые тест -объекты: Баклажан Solanum melongena L. с. Алмаз; сладкий перец Capsicum аппиит L. с. Нежность: томат Solanum ¡ycopersicum L. с. Верлиока плюс, огурец Cucumis salhms L.. с. Кураж, капуста цветная Brassica oleraceae 1 . botmis L. с. Снежный шар
Схема экспериментальных исследований: Рассада, выращенная в контролируемых условиях, была обработана (опрыскивание листьев) растворами экстрактов 4 видов водорослей в концентрации 300 и 600 мг л трехкратно с интервалом в две недели (27.04.23. 10.05.23, 23.05.23). Вторая обработка проведена в день высадки рассады в теплицу. Растении выращивали в обогреваемой теплице н весенне-летнем обороте.
Контролируемые параметры: Содержание хлорофилла (ед. SPAD). потенциальный квантовый выход фотохимической активности фотосистемы II (Fv/Fm). сырая и сухая биомасса растений. LMA (удельный вес листа, мп'см2). ранняя и общая урожайность (кг/м). I
- - Рез\льтаты испытаний: Приложение: таблицы 1-4.
Зак1ючение: Показано положительное влияние трехкратного опрыскивания (с двухнедельным интервалом» же трактами A. nodosum, F. vesiculosa. L digitata и V laiissima в концентрации 600 мг/л на обшую урожайность. Наибольший эффект выявлен для экстракта A. nodosum. выделенного по способу [ 1 ]. для баклажана (85%), цветной капусты (80%), сладкого перца (29%). томата (23%) и огурца (18%).
Исполнители: к.б.н. Шсруднло Е.Г.. к.б.н. Матвеева Е.М.. Рубаева А.А.. Левкин И. А.. Пулкачева F..А.. Исаков А.В.. Алексеева Т Ф.
Руководитель работ: Л.6.Н. Шибаева Т.Г. f
[1] - Пат. 2803597 Российская Федерация. МПК А 23 L 17/60. А 01 С 1 06. Способ получения экстрактов Арктических б\рых волорослей. обладающих фитоактивными свойствами Боголииын К.Г.. Паршина А.').. Один но на А.Н.. Семушина М.П.. Скребец Т.Э.. Маматмуролов Х.Б.: заявитель и патентообладатель "САФУ имени М.В. Ломоносова". № 2022133497: таявл. 20.12.2022: опубл. 18.09.2023: Бюл. Jfe 26.
Приложение к протоколу испытании ЛЫ от 1.09.2023
Таблица 1 - Относительное содержание хлорофилла в листьях сладкого перца и баклажана, обработанных экстрактами водорослей A nodosum (Э1). F vesiculasus <Э2). L. digiiata (ЭЗ) и S. latissima (34) н разных концентрациях
Вариан! Концентрация экстракта, мг л
300 1 600 300 600
Баклажан
5-6 лист 7-8 лист
К 50.68 50.68 49.37 49.37
Л! 50.68 46.63 53.75 48.70
Э2 50.53 55.85 46.84 53.34
ЭЗ 41.18 51.88 48.89 51.10
Э4 45.07 50.35 52.32 52.30
Перец
К 49.93 50.68 56.18 56.18
Э1 59.75» 55.42* 56.13 53.39
Э2 54.80* 51.57 51.43* 52.10
ЭЗ 52.55 55.32* 56.52 55.97
Э4 59.12* 57.30* 55.58 53.78
Таблица 2 - Потенциальный квантовый выход фотохимической активности фотосистемы II 4Fv Fm> растений сладкого перца и баклажана, обработанных экстрактами водорослей A. nodosum <Э1). h vesiculosa* (Э2). L digitata (ЭЗ) и S. latissima (Э4> в ратных концентрациях
Концент рация экстрактов, мг/л
300 600
К Э1 | Э2 | ЭЗ ; Э4 К | Э1 Э2 ЭЗ Э4
Баклажан
0.806 | 0.817* 0.821* 0.843* 0.815* 0.806 0.833* 0.824* 0.828* 0.828*
Hei оец
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.