ДИКИЕ КЛУБНЕНОСНЫЕ ВИДЫ РОДА SOLANUM L. И ПЕРСПЕКТИВЫ ИХ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ В СЕЛЕКЦИИ КАРТОФЕЛЯ НА УСТОЙЧИВОСТЬ К ПАТОГЕНАМ тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.05, доктор биологических наук Рогозина, Елена Вячеславовна

• Рогозина, Елена Вячеславовна
• доктор биологических наук
• 2012

Оглавление диссертации доктор биологических наук Рогозина, Елена Вячеславовна

ВВЕДЕНИЕ

1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2. ИСТОРИЯ ИЗУЧЕНИЯ ДИКИХ КЛУБНЕНОСНЫХ ВИДОВ РОДА SOLANUM L. И ИХ РОЛЬ В СЕЛЕКЦИИ КАРТОФЕЛЯ

2.1. Интродукция картофеля в Европу и Россию и селекция в период 19-20 веков

2.2. Межвидовая гибридизация - основной метод селекции картофеля

2.3. Проблемы и перспективы развития новых методов селекции. MAS - технология

3. ОСОБЕННОСТИ БИОЛОГИИ ДИКИХ КЛУБНЕНОСНЫХ ВИДОВ РОДА SOLANUM.

3.1. Система и ареал диких клубненосных видов рода Solanum

3.1.1. Классификация рода Solanum секции Petota

3.1.2. Ареал диких клубненосных видов рода Solanum

3.1.2.1. Распространение диких видов картофеля в Северной и Южной Америке

3.1.2.2. Вертикальная зональность и условия произрастания диких видов картофеля

3.1.2.3. Связь местообитания диких видов картофеля с устойчивостью к патогенам

3.2. Вегетативное и генеративное размножение диких видов картофеля в местах естественного обитания и ex situ.

3.2.1. Цветение и клубнеобразование

3.2.2. Влияние внешних факторов на онтогенез сеянцев

3.2.3. Особенности роста и развития диких видов картофеля в умеренных широтах восточного полушария

3.2.4. Системы полового размножения и генетическая структура популяций дикого картофеля

3.3. Скрещиваемость диких клубненосных видов рода Solanum

3.3.1. Гибридизация диких видов в естественных условиях

3.3.2. Скрещиваемость видов картофеля разных серий

3.4. Иммунологическая характеристика диких клубненосных видов рода Solanum

3.4.1. Взаимодействие с Phythophtora infestans (Mont.) de Вагу - возбудителем фитофтороза картофеля

3.4.1.1. Биология развития и вредоносность P. infestans на картофеле

3.4.1.2. Взаимодействие возбудителя фитофтороза и растения картофеля

3.4.1.3. Генетика устойчивости картофеля к фитофторозу

3.4.1.4. Генотипический потенциал диких видов картофеля по устойчивости к фитофторозу

3.4.2. Взаимодействие с фитопатогенными вирусами

3.4.2.1. Биология и вредоносность фитопатогенных вирусов, особенности

X и Y-вирусов картофеля

3.4.2.2. Генетика устойчивости картофеля к вирусам

3.4.2.3. Генотипический потенциал диких видов картофеля по устойчивости к ХВК, YBK

3.4.3. Поражаемость видов картофеля раком

3.4.3.1. Биология и вредоносность Synchytrium endobioticum (Schilb.) Percival

- возбудителя рака картофеля

3.4.3.2. Встречаемость устойчивых к раку форм среди диких видов картофеля

3.4.4. Взаимодействие растений картофеля с цистообразующими нематодами. 3.4.4.1. Биология и вредоносность золотистой картофельной нематоды

Globodera rostochiensis Woll.

3.4.4.2.Генетика устойчивости картофеля к золотистой картофельной нематоде и встречаемость резистентных форм среди диких видов картофеля

4. СОЗДАНИЕ ИСХОДНОГО МАТЕРИАЛА ДЛЯ СЕЛЕКЦИИ УСТОЙЧИВОГО К ПАТОГЕНАМ КАРТОФЕЛЯ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ГЕНЕТИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА ДИКИХ КЛУБНЕНОСНЫХ ВИДОВ SOLANUM

4.1. Ценность для селекции диких видов картофеля из разных центров происхождения

4.1.1. S. demissum, S. stoloniferum и другие североамериканские виды картофеля как источники устойчивости к фитофторозу

4.1.2. Значение видов южноамериканского происхождения для селекции картофеля

4.1.3. Селекционный потенциал видов серии Bukasoviana - S. alandiae, S. avilesii, S. doddsii,

S. hondelmannii, S. multidissectum, S. okadae, серии Simpliciora-S. gandarillasii

4.2. Характеристика первого поколения межвидовых гибридов от скрещивания видов серий Bukasoviana, Simpliciora с дигаплоидами сортов и видом - посредником

4.2.1. Морфологические признаки и способность сеянцев формировать клубни 191 4.2.2.Закономерности наследования межвидовыми гибридами картофеля устойчивости к патогенам

4.2.2.1 .Устойчивость к фитофторозу

4.2.2.2.Устойчивость к нематоде патотипа Ro

4.2.2.3.Устойчивость к мозаичным вирусам

4.2.2.4. Устойчивость к возбудителю рака картофеля

4.3. Стратегия поиска среди диких клубненосных видов Solanum генетических источников и создания исходного материала для селекции картофеля устойчивого к патогенам

5. МЕЖВИДОВЫЕ ГИБРИДЫ КАРТОФЕЛЯ КАК ИСТОЧНИКИ И ДОНОРЫ УСТОЙЧИВОСТИ К ПАТОГЕНАМ

5.1. Клоны межвидовых гибридов картофеля устойчивые к фитофторозу, вирусам, золотистой картофельной нематоде патотипа Rol, возбудителю рака картофеля и с групповой устойчивостью к вредным организмам

5.2. Наследование устойчивости к фитофторозу, золотистой картофельной нематоде и Y-вирусу в генеративном потомстве межвидовых гибридов картофеля

5.3. Использование ДНК-маркеров в селекционно-генетических исследованиях культуры картофеля

5.3.1. Генетика устойчивости межвидовых гибридов картофеля к нематоде патотипа Rol

5.3.2. Генетика устойчивости межвидовых гибридов картофеля к фитофторозу

5.4. Селекционная ценность созданных доноров устойчивости картофеля к патогенам

5.4.1. Экологическое испытание клонов межвидовых гибридов картофеля

5.4.2. Применение доноров в селекционных программах России и стран ближнего зарубежья (Белоруссия, Казахстан)

ВЫВОДЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «ДИКИЕ КЛУБНЕНОСНЫЕ ВИДЫ РОДА SOLANUM L. И ПЕРСПЕКТИВЫ ИХ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ В СЕЛЕКЦИИ КАРТОФЕЛЯ НА УСТОЙЧИВОСТЬ К ПАТОГЕНАМ»

Актуальность исследований. Картофель - одна из ведущих культур в аграрном секторе: по объему производимой продукции занимает в мировом земледелии пятое место после сахарного тростника, кукурузы, пшеницы и риса. Валовой сбор картофеля в 2010 г в мире составил более 324 млн. т., в России - более 21 млн. т. (faostat.fao.org). Актуальными задачами картофелеводства в нашей стране являются повышение урожайности до 20 т/га и переход на современные технологии возделывания высокопродуктивных сортов, устойчивых к неблагоприятным абиотическим и биотическим факторам среды (Симаков и др. 2008).

Наиболее опасные патогены картофеля: возбудитель фитофтороза - оомицет Phytophthora infestons (Mont.) de Вагу, и вирусы, из которых повсеместно распространен Y вирус. Потери урожая восприимчивых сортов в годы эпифитотий фитофтороза могут достигать 50-70% (Филиппов и др., 2005). Для защиты от Y вируса, особенно в семеноводстве, необходимы большие дополнительные затраты (Шпаар, 2004). Объектами карантинного надзора на территории России являются возбудитель рака картофеля (Synchylrium endobioticum (Schilb.) Percival) и золотистая картофельная нематода патотип Rol {Globodera rostochiensis (Woll.) Behrens.). Эти почвообитающие патогены даже в отсутствии растения-хозяина, не утрачивают инфекционности несколько десятилетий. Выращивание картофеля на инфицированном участке приводит к потерям от 50-70% урожая до полной гибели культуры (Ермакова и др., 2006; Baayen et al. 2006).

Мировое сельскохозяйственное производство испытывает серьезное влияние изменяющегося климата: усилилась нестабильность температурного режима и осадков, изменился характер распространения вредителей и патогенов. Изменения фитосанитарной ситуации отмечены в российском аграрном секторе (Павлюшин, 2011), в том числе в картофелеводстве (Elansky et al., 2001; Патрикеева и др., 2010; Гуськова, 2005; Зейрук и др. 2008). Источником устойчивости картофеля к широкому кругу вредных организмов являются дикие клубненосные виды рода Solanum L, но в селекции использовано небольшое число источников ценных признаков и идентифицированных генов устойчивости (Будин, 1998). Известно, что генетическая однородность культуры приводит к нарушениям популяционного гомеостаза фитопатогенов и способствует массовому размножению вредных организмов (Дьяков, 1977; Балашова, 1988). Дальнейшее развитие селекции должно быть связано с расширением генетического разнообразия исходного материала и систематическим его обновлением.

Коллекция картофеля ВИР в конце 20 века благодаря экспедиционным сборам и взаимному обмену с зарубежными странами пополнилась новым исходным материалом, в iом числе образцами диких видов из стран Южной Америки (Горбатенко, 2006). До наших исследований биология многих интродуцированных видов, их селекционная значимость не были изучены. В литературе недостаточно сведений о характере наследования и генетическом контроле устойчивости диких видов картофеля к фитофторозу, вирусным болезням, золотистой нематоде.

В связи с этим возникла необходимость целенаправленного изучения диких клубненосных видов, поиска источников эффективных генов, контролирующих устойчивость к наиболее вредоносным организмам, и создания исходного материала пригодного для использования в селекции, в том числе с помощью современных методов ДНК-маркирования.

Цель исследования:

Цель настоящей работы - провести комплексное изучение генетического разнообразия диких клубненосных видов рода Solanum L. и разработать стратегию их использования в селекции картофеля на устойчивость к патогенам.

Задачи исследования:

• изучить способность к генеративному и вегетативному размножению диких видов картофеля в условиях ex situ;

• оценить скрещиваемость диких видов с культурным картофелем;

• провести скрининг образцов коллекции диких видов по устойчивости к возбудителям фитофтороза и вирусных болезней;

• оценить эффективность ДНК маркеров /?-генов как инструмента исследования генетического разнообразия дикого картофеля;

• разработать стратегию создания на основе диких видов исходного материала для селекции картофеля на устойчивость к патогенам;

• установить закономерности наследования межвидовыми гибридами картофеля признаков устойчивости к патогенам;

• определить источники и создать доноры устойчивости картофеля к фитофторозу, вирусу Y, возбудителю рака и золотистой нематоде, в том числе, с групповой устойчивостью к изучаемым патогенам.

Научная новизна

Впервые в условиях умеренных широт восточного полушария изучены южноамериканские дикие виды картофеля серий:

• Piurana S acroglossum Juz., S paucissectum Ochoa, S piurae Bitt., 5 solisu Hawkes:

• Minutifoliola S cajamarquense Ochoa;

• Conicibaccata: S. paucijugum Bitt, S. violaceimarmoratum Bitt.;

• Megistacroloba: S. dolichocremastrum Bitt.;

• Bukasoviana: S. abancayense Ochoa, S. alandiae Card., S. acroscopicum Ochoa, S. ambosinum Ochoa, S. avilesii Hawkes et Hjerting, S. chancayense Ochoa, S. x doddsii Corr., S. hondelmannii Hawkes et Hjerting, S. incamayoense Okadae et Clausen, S. marinasense Vargas, S. okadae Hawkes et Hjerting, S. multiinterruptum Bitt., S. pampasense Hawkes, S. x rechei Hawkes et Hjerting, S. * sucrense Hawkes, S. velardei Ochoa, S. venturii Hawkes et Hjerting, S. vidaurrei Card., S. ugentii Hawkes et Okada, S. weberbaueri Bitt.;

• Simpliciora: S. gandarillasii Card.

Показаны различия видов в способности к генеративному и вегетативному размножению в условиях умеренных широт восточного полушария. Охарактеризована внутривидовая изменчивость северо- и южноамериканских диких видов картофеля по устойчивости к фитофторозу. Определена методом ИФА зараженность коллекции Х-. Y-вирусами.

Впервые ДНК-маркеры в сочетании с фитопатологической оценкой использованы для характеристики разнообразия диких клубненосных видов рода Solanum. Выявлена гомология сайтов, ассоциированных с генами:

R1 (вида S. demissum) у видов серий Demissa, Longipedicellala, Tarijensia. Simpliciora',

R3 (вида S. demissum) у видов серий Demisso, LongipediceHata, Cardiophylla, Bulbocastana, Simpliciora;

RB (вида S. bulbocastanum) у видов серий Demissa, Longipedicellata, Cardiophylla, Pinnalisecla, Polyadenia;

Ry and У видов S. andigenum, S. pinnatisectum и S. stoloniferum.

Изучена скрещиваемость 19 южноамериканских диких видов: S. abancayense, S. alandiae, S. ambosinum, S. avilesii, S. doddsii, S. famatinae, S. hondelmannii, S. incamayoense, S marínaseme, S. multidissectum, S. multiinterruptum, S. okadae, S. oplocense, S. pampasense, S. sucrense, S. vidaurrei, S. ugentii, S. venturii (серия Bukasoviana) и S. gandarillasii (серия Simpliciora) с дигаплоидами сортов картофеля и видом S. chacoense. Показана возможность использования вида S. chacoense в качестве посредника для интрогрессии генетического материала нескрещиваемых с культурным картофелем видов S. multiinterruptum. S. okadae.

Впервые с участием видов S. alandiae, S. okadae созданы доноры устойчивости картофеля к нематоде и фитофторозу. Показано, что устойчивость к нематоде у гибридов. производных дикого вида S. alandiae, детерминируют два гена, один из которых обладает структурным сходством с геном HI культурного вида S. andigenum.

Теоретическая и практическая значимость

Стратегия использования эндемичных южноамериканских диких видов картофеля в качестве источников устойчивости к патогенам является конкретизацией тезиса Н.И. Вавилова о перспективности для селекции оригинальных, эндемичных видов, сосредоточенных в высокогорьях Перу, Боливии и Эквадора (Вавилов, 1966). Разработанная стратегия заключается:

- в привлечении генетического материала эндемичных видов способных размножаться в регионе, где проводится селекционная работа;

- в использовании видов полиморфных или форм созданных на их основе в качестве партнера для скрещивания с эндемичным видом;

- в изучении генетического контроля устойчивости селекционного материала к патогенам с помощью фитопатологического, гибридологического и маркерного анализов.

В результате проведенных исследований получены новые знания о разнообразии генофондов диких видов картофеля. Созданная клоновая коллекция диких видов и межвидовых гибридов, охарактеризованных по устойчивости к фитофторозу, Y-вирусу, золотистой нематоде и наличию ДНК-маркеров соответствующих У?-генов, является основой для дальнейших исследований в области сравнительной и функциональной геномики и интрогрессивной селекции картофеля.

Корреляция между устойчивостью к фитофторозу и наличием SCAR-маркера R1-1205 в геномах диких видов и клонов межвидовых гибридов разного происхождения подтверждает диагностическую ценность маркера R1-1205. Установлена пригодность SCAR-маркера RYSC3 гена Ry ac/g и неэффективность CAPS маркера GP122/EcoRV406 гена Ry то для выявления устойчивых к Y-вирусу форм.

Практическим результатом проведенных исследований является создание источников и доноров для селекции картофеля, в том числе с групповой устойчивостью к патогенам.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту

1. Южноамериканские эндемичные дикие клубненосные виды, способные размножаться в условиях умеренных широт восточного полушария, необходимо привлекать в качестве источников новых генов при создании исходного материала для селекции картофеля.

2. Виды S. alandiae, S. avilesii, S. doddsii, S. okadae (серии Bukasoviana), S. gandarillasii (серии Simpliciora) перспективны для селекции картофеля на устойчивость к фитофторозу, золотистой нематоде патотипа Rol.

3. Создана клоновая коллекция североамериканских видов и межвидовых гибридов от скрещивания диких видов с культурным картофелем, охарактеризованная по устойчивости к патогенам и наличию ДНК-маркеров 7?-генов.

4. SCAR-маркеры, разработанные на основе Л-генов устойчивости, в сочетании с фитопатологическим и гибридологическим анализом являются полезным инструментом для изучения генетического разнообразия и селекционной ценности диких родичей.

Конкурсная поддержка работы. Исследования частично поддержаны грантами MHTU-ISTC 3714р и 3329р, а также грантом РФФИ 08-04-13747.

Апробация работы. Основные результаты представлены на I, II Всероссийских съездах по защите растений (Санкт-Петербург 1995, 2005); II, III, V Съездах ВОГиС (Санкт-Петербург 2000, Москва 2004, 2009); Международном конгрессе «Картофель, Россия-2007» (Москва 2007); научно-практических конференциях, посвященных 75-летию Института картофелеводства HAH Беларуси (Минск 2003), 40-тию РУП "Институт защиты растений" (Минск 2011); международных конференциях Global Initiative Late Blight GILB'02 Conference (Hamburg, Germany 2002), European Association Potato Research (EAPR), Section of Breeding and Varietal Assessment (Oulu, Finland 2003), 18th Triennial Conference of the EAPR (Oulu, Finland 2011), 12th EAPR Virology Section Meeting (Rennes, France 2004). 2nd International Symposium Genomics of Plant Genetic Resources (Bologna. Italy 2010), 12th, 13th EuroBlight Workshops (Arras, France 2010, St-Petersburg, Russia 2011).

Публикация результатов исследования. По теме диссертации опубликовано 56 печатных работ, из которых 13 работ - в журналах, соответствующих перечню ВАК Министерства образования и науки РФ.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 315 стр., состоит из введения, пяти глав, выводов, рекомендаций для селекционной практики, списка литературы. Библиографический указатель включает 559 источников, из них 198 -публикации в отечественной литературе, 361 - в зарубежной печати. Диссертация содержит 41 таблицу, 54 рисунка, 3 приложения.

Заключение диссертации по теме «Селекция и семеноводство», Рогозина, Елена Вячеславовна

ВЫВОДЫ

1. В диссертационной работе впервые представлены сведения о пригодности южноамериканских диких клубненосных видов серий: Piurana: S. acroglossum, S. paucissectum, S. piurae, S. solisii; Minutifoliola: S. cajamarquense; Conicibaccata: S. paucijugum, S. violaceimarmoratum; Megistacroloba: S. dolichocremastrum; Bukasoviana: S. abancayense, S. alandiae, S. acroscopicum, S. ambosinum, S. avilesii, S. chancayense, S. x doddsii, S. hondelmannii, S. incamayoense, S. marinasense, S. okadae, S. multiinterruptum, S. pampasense, S. rechei, S. x sucrense, S. velardei, S. venturii, S. vidaurrei, S. ugentii, S. weberbaueri; Simpliciora: S. gandarillasii для селекции картофеля.

2. Дикие виды картофеля различаются по способности к размножению в условиях умеренных широт восточного полушария. Продолжительность периода от посева до цветения в оранжерее и число клубней у растений сеянцев южноамериканских видов картофеля коррелируют отрицательно (г=-0,47). Виды S. alandiae, S. chancayense, S. doddsii, S. sparsipilum, S. sucrense, S. pampasense, S. venturii, S. hondelmannii, S. okadae, S. gandarillasii пригодны для интрогрессивной селекции. Специфические требования в отношении температурного и светового режима видов серии Piurana: S. acroglossum, S. paucissectum, S. piurae, серии Minutifoliola: S. cajamarquense, серии Conicibaccata: S. paucijugum, S. violaceimarmoratum, серии Bukasoviana: S. acroscopicum, S. hypacrarthrum, S. immite делают их мало доступными для использования в качестве источников селекционно-ценных признаков.

3. Виды S. alandiae, S. * doddsii, S. hondelmannii, S. incamayoense, S. miltidissectum, S. vidaurrei скрещиваются с дигаплоидами S. tuberosum (коэффициент скрещиваемости 1028). Трудно скрещивается с культурным картофелем вид S. okadae и не скрещивается вид S. multiinterruptum. Для интрогрессии генетического материала этих видов целесообразно использовать вид S. chacoense в качестве посредника.

4. Дикие виды картофеля в коллекции ВИР представлены образцами разной структуры по степени поражения фитофторозом. Образцы гомогенные слабо поражаемые составляют меньшую часть (8-23 %) изученной выборки диких видов. Около трети (36 %) изученной выборки гетерогенно по реакции на фитофтороз. Показатели устойчивости к фитофторозу образцов североамериканских видов картофеля, установленные в результате ранее проведенных исследований и при повторной оценке в современных эпидемиологических условиях, значимо коррелируют (г=0,65).

5. Первое поколение гибридов диких видов и дигаплоидов культурного картофеля характеризуется разнообразием генотипов с широким спектром ответных реакций на фитофтороз: от восприимчивых до слабо поражаемых. В гибридном потомстве видов S. avilesii, S. alandiae, S. incamayoense, S. multidissectum, S. marinasense, S. hondelmannii с S. tuberosum появляются генотипы, которые превосходят по уровню устойчивости своих родителей. Частота появления таких форм варьирует от 7-8 до 50-55 %.

6. Дикие виды картофеля в условиях естественного инфекционного фона слабо поражаются Х-вирусом (0-11 % пораженных образцов), более восприимчивы к Y-вирусу (26-52 % пораженных образцов). Чувствительность растений дикого картофеля к YBK зависит от происхождения: чаще поражаются образцы южноамериканских, чем североамериканских видов - 64 и 40 % образцов, соответственно. Крайнюю устойчивость растений S. stoloniferum и S. pinnatisectum к YBK детерминируют разные гены.

7. Устойчивые к нематоде патотипа Rol клоны F] гибридов являются производными видов: S. abancayense, S. alandiae, S. ambosinum, S. doddsii, S. famatinae, S. gandarillasii, S. okadae, S vidaurrei. Устойчивость к нематоде гибридов картофеля, производных вида S. alandiae, детерминируют два гена, один из которых обладает структурным сходством с геном HI тетраплоидного культурного вида S. andigenum.

8. Стратегия создания исходного материала для селекции картофеля на устойчивость к патогенам заключается в привлечении эндемичных южноамериканских диких видов, их скрещивании с полиморфными неродственными видами и использовании фитопатологического, гибридологического и маркерного анализов для изучения генетического контроля устойчивости созданного селекционного материала.

9. У северо- и южноамериканских видов серий: Demissa. Longipedicellata, Bulbocastana, Cardiophylla, Pinnatisecta, Polyadenia, Simpliciora (S. microdontum), Tarijensia (S. berthaultii) существует гомология сайтов ассоциированных с генами устойчивости к фитофторозу Rl, R3 и RB/Rpi-blbl. У южноамериканского культурного вида S. andigenum и североамериканских диких видов S. stoloniferum, S. pinnatisectum существует гомология сайтов ассоциированных с геном устойчивости к вирусу У - Ryadg ■

10. SCAR-маркер R-1205 пригоден для отбора гибридных генотипов устойчивых к фитофторозу, SCAR-маркер RYSC3 пригоден для отбора генотипов S. stoloniferum устойчивых к вирусу Y.

СЕЛЕКЦИОННЫМ УЧРЕЖДЕНИЯМ РЕКОМЕНДУЕТСЯ:

• использовать в качестве источников устойчивости к фитофторозу и нематоде патотипа Rol образцы видов S. alandiae (к-19956, 21240), S. doddsii (к-20709), S. okadae (к-20921); устойчивости к фитофторозу - S. avilesii (к-20884, 20158); устойчивости к вирусу Y - S. doddsii (к-20704); устойчивости к нематоде патотипа Rol -S. gandarillasii (к-20698), S. vidaurrei (к-22574);

• для привлечения в селекцию диких видов, не скрещивающихся с культурным картофелем, проводить их предварительные скрещивания с видом S. chacoense;

• образцы из клоновой коллекции, охарактеризованные по устойчивости к патогенам и наличию ДНК-маркеров соответствующих /?-генов, применять в интрогресивной селекции основанной на технологии MAS;

• использовать в качестве родительских форм доноры устойчивости к фитофторозу и Y-вирусу - клоны 97-155-1, 97-159-3; донор устойчивости к фитофторозу и нематоде патотипа Rol - клон 24-1; донор устойчивости к Y-вирусу и нематоде патотипа Rol - клон 99-6-6; доноры устойчивости к фитофторозу - клоны 159-1, 97-162-5; доноры устойчивости к Y-вирусу - клоны 8-1(137), 99-6-1, 99-6-2, 996-5; доноры устойчивости к нематоде патотипа Rol - клоны 99-6-10, 24-2, 117-5.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Рогозина, Елена Вячеславовна, 2012 год

1. Амбросов А.Л. Вирусные болезни картофеля и меры борьбы с ними. Минск, 1975.

2. Ананьева И.Н., Портянкин Д.Е. Новые источники устойчивости к золотистой картофельной нематоде патотипа Rol среди диких и примитивных видов картофеля. В сб. Фитосанитарное оздоровление экосистем. СПб, 2005: 389.

3. Аношкина Л.С. Изучение и использование генофонда в создании сортов картофеля в Кузбассе. В сб. Использование мировых генетических ресурсов ВИР в создании сортов картофеля нового поколения. СПб, 2009: 125-130.

4. Антонов И.И. Устойчивость к различным расам фитофторы диких и культурных видов и межвидовых гибридов картофеля. Канд. дис. Л., 1974.

5. Антонова О.Ю. Полиморфизм органельных ДНК у сортов картофеля, видов рода Solanum секции Petota и межвидовых соматических гибридов. Канд. дис. СПб, 2006.

6. Асеева Т.В., Николаева Н.В. Генетическая природа окраски клубней, ростков и цветков у картофеля. Труды ин-та картофеля. М, 1935 (9): 107.

7. Атлас карантинных вредителей, возбудителей болезней растений, сорняков, имеющих карантинное значение для Российской Федерации. Краснодар. Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору, 2012.

8. Балашова H.H. Генетические аспекты эволюции растений и селекция на устойчивость к патогенам. Вестн. с.-х. науки. М, 1988 (3): 79 83.

9. Банадысев С.А., Иванюк В.Г., Журомский Г.К. Фитосанитарное состояние картофеля в Беларуси и пути его улучшения. Минск, 2003.

10. Бекетова М. В., Хавкин Э. Е. Ген R1 устойчивости к фитофторозу у восприимчивых и устойчивых сортов картофеля. С.-х. биология, 2006 (3): 109-114.

11. Блоцкая Ж. В. Методы селекции картофеля на устойчивость к вирусным болезням. Минск, 1984.

12. Будин К. 3. Генетические основы селекции картофеля. JI, 1986.

13. Будин К. 3. Генетические основы создания доноров картофеля. СПб, 1997.

14. Будин К.З. Генетика картофеля. В кн.: Генетика культурных растений (лен, картофель, морковь, зеленные культуры, гладиолус, яблоня, люцерна). СПб, 1998: 53-96.

15. Будин К.З. Внутривидовая изменчивость и генцентры формирования фитофтороустойчивых видов рода Solanum секции Petota. С.-х. биология, 1999 (5): 9-14.

16. Будин К.З., Брокш B.JI., Хромцова М.М. Фитофтороустойчивость гибридов от скрещиваний дигаплоидов S. tuberosum L. с дикими и культурными формами Solanum. Тр. по прикл. бот. ген. и сел. Т. 62, вып.1, JI, 1978: 132-138.

17. Будин К.З., Горбатенко JI.E. , Турулева JI.M. Виды картофеля Мексики и их значение для селекции. Каталог мировой коллекции ВИР, вып. 439, JT, 1989 (а)

18. Будин К. 3., Еремин Г.В., Пивоваров В.Ф. и др. Паспорта доноров хозяйственно ценных признаков с.-х. культур, созданных в 1993 году. СПб, 1994.

19. Будин К. 3., Житлова Н. А., Соболева Т. И. Межвидовые гибриды картофеля -генетические источники и доноры устойчивости к патогенам. Каталог мировой коллекции ВИР, вып. 447, Л, 1989 (Ь).

20. Будин К.З., Камераз А.Я., Бавыко Н.Ф. и др. Изучение и поддержание образцов мировой коллекции картофеля. Методические указания. Л, 1986.

21. Будин К.З., Константинова А.И. Само-и перекрестная совместимость у некоторых диплоидных видов Solanum L. Бюллетень ВНИИР. Л, 1980 (105): 31-34.

22. Будин К. 3., Рогозина Е. В. Доноры и источники устойчивости к патогенам картофеля. Каталог мировой коллекции ВИР, вып 691, СПб, 1998.

23. Будин К.З., Соболева Т.И. Гибриды дигаплоидов S1. andigenum с диплоидными видами Solanum. Генетика, 1970. Т. 6 (8): 5-11.

24. Букасов С.М. Революция в селекции картофеля. Л, 1933.

25. Букасов С.М. Систематика видов картофеля секции Tuberarium (Dun.) Buk. рода Solanum. Тр по прикл. бот., ген. и сел. Т.46, вып. 1, Л, 1971: 3-44 (а)

26. Букасов С.М. Особенности биологии картофеля. В кн. Культурная флора СССР, Том IX. Л, 1971:407-408 (Ь)

27. Букасов С.М. Исходный материал для межвидовой гибридизации картофеля. Бюлл. ВИР, вып. 35, Л, 1973: 51-56.

28. Букасов С.М. Принципы систематики картофеля. Тр. по прикл. бот., ген. и сел. Т.62, вып.1, Л, 1978: 3-35.

29. Букасов С.М. Обзор таксономии видов картофеля секции Tuberarium (Dun.) Buk. Бюлл. ВИР, вып 105, Л, 1980: 6-9 (а)

30. Букасов С.М. Центры происхождения видов картофеля секции Tuberarium (Dun.) Buk. Бюлл. ВИР, вып. 105, Л, 1980: С. 3-6 (Ь)

31. Букасов С.М., Камераз А.Я. Селекция и семеноводство картофеля. Л., 1972.

32. Вавилов Н.И. Мировые очаги (Центры происхождения) важнейших культурных растений. Ботанико-географические основы селекции. Избр. соч. Т.1. М, 1966.

33. Вавилов Н. И. Учение об иммунитете растений к инфекционным заболеваниям. Избр. произв. в 2-х т. Т.2. Л, 1967.

34. Вавилова М.А. Использование диких морозостойких видов картофеля S. commersonii Dun. и S. chomatophilum Bitt. в межвидовой гибриизации. Тр. по прикл. бот., ген. и сел. Т.62, вып.1, Л, 1978: 123-131.

35. Ван дер Планк. Генетические и молекулярные основы патогенеза у растений, пер. с англ., М, 1981.

36. Веденяпина Е.Г., Зотеева Н.М., Патрикеева M.B. Phytophthora infestans в Ленинградской области: гены вирулентности, типы совместимости и жизнеспособность ооспор. Микология и фитопатология, Т.36, вып 6. 2002: 77-85.

37. Воловик A.C., Трофимец Л.Н., Долягин А.Б. и др. Методика исследований по защите картофеля от болезней, вредителей, сорняков и иммунитету. М, 1995.

38. Галанова Ц.С. Распространение и вредоносность возбудителя рака картофеля. В сб. Рак картофеля и меры борьбы с ним. Л, 1964.

39. Гнутова Р. В.Иммунологические исследования в вирусологии. М,1985.

40. Горбатенко Л. Е. Южноамериканские виды картофеля (секция Petota Dumort. рода Solanum L.). Каталог мировой коллекции ВИР, вып 569, Л, 1990.

41. Горбатенко Л. Е. Виды картофеля Южной Америки (Экология, география, интродукция, систематика, селекционная значимость). СПб, 2006.

42. Горковенко М.Н., Рогозина Е.В., Дергачева Н.В. Результаты экологического изучения межвидовых гибридов картофеля. В сб.: Картофелеводство. Т. 14, Минск, 2008: 166-173

43. Грант. В Эволюционный процесс. Критический обзор эволюционной теории. М, 1991.

44. Гуськова JI.A. Болезни, вызываемые нематодами (нематодозы). В сб.: Болезни культурных растений. СПб, 2005: 204-215

45. Гуськова JI.A., Маковская С.А. Результаты изучения популяций картофельной нематоды из северо-западного района Нечерноземья. В сб. Биологические основы борьбы с нематодами. Л, 1982: 58-68.

46. Гуськова Л. А., Маковская С. А. К вопросу о методике определения эффективности мероприятий по борьбе с цистообразующими нематодами. В сб. Нематодные болезни растений, Кишинев, 1991.

47. Деккер X. Нематоды растений и борьба с ними (фитонематология). М, 1972.

48. Джонгиров Д.О. Биологические особенности диких видов, межвидовых гибридов и сортов картофеля в горных районах Западного Памира. Канд. дис. Душанбе, 1995.

49. Дорожкин H.A., Вельская С.И. Болезни картофеля. Минск, 1979.

50. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М, 1979.

51. Дунин М.С., Попова Н.М. Капельный метод анализа вирусов в растениеводстве. М.: Сельхозгиз. 1937, вып. 13.

52. Дьяков Ю.Т. Тенденции в современной селекции растений и проблемы селекции на иммунитет. В сб.: Генетические основы болезнеустойчивости полевых культур. Рига, 1977: 1-7.

53. Евдокимова 3.3. Перспективы создания сортов картофеля нового поколения с широким адаптационным потенциалом. В сб. Использование мировых генетических ресурсов ВИР в создании сортов картофеля нового поколения. СПб, 2009: 186-193.

54. Ермакова Л.В., Сорочкин И.Н., Пименова И.М. Эффективность препарата перкальцит для борьбы с золотистой картофельной нематодой. В сб.: Картофелеводство в регионах России: актуал. пробл. науки и практики. М. 2006: 119-123.

55. Ермишин А.П., Воронкова Е.В., Савчук A.B. и др. Оценка исходного материала картофеля для селекции на устойчивость к болезням и вредителям с помощью специфических ПЦР-маркеров: методические рекомендации. Минск, 2010.

56. Есипова З.И. Селекционная характеристика межвидовых гибридов картофеля с полиплоидами Solanum megistacrolobum Bitt. В сб.: Исследования по генетике и селекции картофеля и пшеницы. Т. 151 (2), Л, 1971: 3-17.

57. Есипова З.И. Использование морозостойкого вида Solanum megistacrolobum Bitt в селекции картофеля. В сб.: Генетические основы межсортовой и межвидовой гибридизации картофеля и пшеницы. Т. 295, JI, 1976: 39-46.

58. Жарова В.А., Склярова Н.П., Белов Г.Л. Использование исходного материала ВИР в селекции картофеля. В сб.: Картофелеводство. М, 2011.

59. Житлова H.A. Использование экспериментальной полиплоидии при межвиовой гибридизации картофеля. Генетика. Т.5 (11), 1969: 40-44.

60. Житлова H.A., Котова К.А. Solanum polytrichon Rydb.-донор фитофтороустойчивости. Бюл. ВИР, вып. 145, Л, 1984: 24-30.

61. Житлова, Н. А., Трускинов Э. В. Об устойчивости к вирусу М дикого вида картофеля Solanum gourlayi Hawk, и характере ее наследования. Генетика. Т. 20 (3), 1984: 463-468.

62. Жученко A.A. Экологическая генетика культурных растений и проблемы агросферы (теория и практика). Т. 1, М, 2004.

63. Зейрук В.Н., Овэс Е.В., Абашкин О.В. и др. Изменение видового состава переносчиков вирусов картофеля по итогам многолетнего мониторинга. В сб.: Картофелеводство: Т. 14, Минск, 2008: 391-396.

64. Зотеева Н.М. Выделение источников устойчивости к фитофторозу из коллекционных образцов северо- и южно-американских дикорастущих видов картофеля. В сб.: Актуальные проблемы современного картофелеводства. Минск, 1997: 51-53.

65. Зотеева Н.М., Хжановска М., Евстратова Л.П. и др. Устойчивость образцов диких видов картофеля к болезням и вредителям. Каталог мировой коллекции ВИР, вып. 761. СПб, 2004.

66. Зотеева Н.М. Виды рода Solanum L. секции Pelota Dumort. как источники обогащения генофонда культурного картофеля. Докт. дис. СПб, 2005.

67. Зыкин А.Г. Тли переносчики вирусов картофеля. Л, 1970.

68. Иванова В. Н. Выделение образцов картофеля, устойчивых к мозаичным вирусам, и использование их в межвидовой гибридизации. Канд. дис. Л, 1972.

69. Иванова O.A. Особенности развития и клубнеобразования культурных и диких видов картофеля в условиях разной длины дня и температуры. Тр. по прикл. бот., ген. и сел., Т 53 (1), Л, 1974: 148-162.

70. Иванова O.A. Влияние фотопериода и ночной температуры на развитие некоторых видов картофеля. Бюлл. ВИР, вып. 56. Л, 1975: 36-41.

71. Ивановская Е.В. Гаплоидное растение Solanum tuberosum Доклады АН СССР. Т. 24(5), 1939: 488-491.

72. Иванюк В. Мониторинг фитопатологической ситуации в Белоруссии. В сб. Фитосанитарное оздоровление экосистем. СПб, 2005: 38-40.

73. Камераз А.Я. Устойчивость к раку межвидовых гибридов картофеля. Вестник сельскохозяйственной науки. М.1957.

74. Камераз А.Я. Мировая коллекция картофеля на службе социалистического сельскохозяйственного производства. Тр. по прикл. бот., ген и сел. Т. 39 (1), JI, 1968: 241.

75. Камераз А.Я. Межвидовая гибридизация в селекции картофеля. С.-х. биология. Т. 8 (5), 1973: 643-651.

76. Камераз А. Я., Вавилова М. А., Житлова Н. А. и др. Межвидовая гибридизация картофеля с участием видов серий Transaequatorialia Buk. и Simpliciora Buk.Tp. по прикл. бот., ген. и сел. Т. 53 (1), Л, 1974: 170-193.

77. Камераз А. Я., Вавилова М. А., Житлова Н. А. и др. Межвидовая гибридизация картофеля с участием диких видов серии Acaulia Juz. Тр. по прикл. бот., ген. и сел. Т. 62 (1), Л, 1978: 92-109. (а)

78. Камераз А.Я., Житлова H.A., Иванова В.Н. Использование в межвидовой гибридизации дикого диплоидного вида картофеля S. chacoense Bitt. Тр. по прикл. бот., ген. и сел. Т. 62 (1), Л,1978: 110-122 (Ь)

79. Камераз А. Я., Иванова В. Н. Селекция картофеля на устойчивость к мозаичным вирусам. Тр. по приклад, бот., ген. и селекции. Т.44 (1), Л, 1971: 116-143.

80. Камераз А.Я., Патрикеева М.В. Фитофтороустойчивость межвидовых гибридов картофеля. Бюл. ВНИИР, вып. 105, Л, 1980: 38-41.

81. Камераз А.Я., Понин И.Я. Исходный материал и перспективы его использования в селекции картофеля на устойчивость к картофельной нематоде Heterodera rostochiensis Woll. Тр.по прикл. бот., ген. и сел. Т. 53 (1), Л, 1974: 199-215.

82. Камераз А. Я., Яшина И. М., Склярова Н.П. Генетика устойчивости картофеля к патогенам. В сб. Генетика картофеля М, 1973: 175-233.

83. Кеглер X., Кляйнхемпель X., Эртель К. и др. Борьба с вирусными болезнями растений. М, 1986.

84. Кирсанова Э.В., Паламарчук Т.Ю. Использование диплоидных видов картофеля в межвидовой гибридизации. Бюл. ВИР, вып.145, Л, 1984: 18-23.

85. Кирьянова Е.С., Кралль Э.Л. Паразитические нематоды растений и меры борьбы с ними. Т.2. Л, 1971.

86. Киселев Е.П., Новоселов А.К. Селекция и семеноводство картофеля на Дальнем Востоке. Хабаровск, 2001.

87. Киселев И.И. Выделение исходного материала для селекции картофеля на устойчивость к специализированным расам фитофторы. Канд. дис. Д., 1968.

88. Козлов В.А. Создание исходного материала картофеля для селекции сортов устойчивых к фитофторозу с повышенным содержанием крахмала на основе дигаплоидов диких и культурных видов. Канд. дис., Самохваловичи, 2002.

89. Колобаев В.А. Межвидовые гибриды картофеля, подавляющие размножение фитофторы. В сб.: Использование мировых генетических ресурсов ВИР в создании сортов картофеля нового поколения. СПб, 2009: 50-59.

90. Колобаев В.А. Принципы и методы создания высокоэффективных доноров горизонтальной устойчивости картофеля к фитофторозу. СПб, 2001.

91. Королева JI.B. Выделение исходного материала для селекции картофеля на основе генеалогии и анализа потомств от самоопыления: Канд. дис. СПб, 2000.

92. Костина Л.И. Об объеме вида Solanum tuberosum. Тр. по прикл. бот., ген и сел. Т. 139, СПб, 1991: 58-64.

93. Костина Л.И. Выделение исходного материала для селекции картофеля на основе генеалогии. Методические указания, СПб, 1992.

94. Костина Л.И., Фомина В.Е. Сорта картофеля, устойчивые к картофельной нематоде Globodera rostochiensis Woll.H Globodera pallida. Каталог мировой коллекции ВИР, вып. 695, СПб, 1998.

95. Котова К.А. Межвидовая гибридизация в селекции картофеля на устойчивость к фитофторе, вирусу У и продуктивность./ В сб.: Генетические основы межсортовой и межвидовой гибридизации картофеля и пшеницы. Т. 295, Л, 1976: 33-39.

96. Кругер А.И. Самофертильность и скрещиваемость диплоидных и тетраплоидных культурных южноамериканских видов картофеля. Тр. по прикл. бот., ген. и сел. Т. 53 (1) JI, 1974: 247-258.

97. Лакин Г.Ф. Биометрия. М, 1990.

98. Лаптев Ю.П. Межвидовая гибридизация, экспериментальная полиплоидия и гаплоидия картофеля. Канд. дис. М, 1974.

99. Лаптев Ю.П. Гетероплоидия в селекции растений. М, 1984.

100. Лебедева В.А. Селекция картофеля. СПб, 2010.

101. Лебедева Н.А. Получение полиплоидов у некоторых диких видов картофеля. Ботанический журнал. Т. XL, 1955: 575-583.

102. Лехнович B.C. Краткая история культурного картофеля. В сб.: Генетика картофеля. М, 1973: 3-14.

103. Лиманцева Л.А. Золотистая картофельная нематода Globodera rostochiensis в Северо-Западном регионе РФ: состав популяции, источники и доноры устойчивости. Канд. дис. СПб, 2010.

104. Лиманцева Л.А., Гуськова Л.А., Рогозина Е.В. Новые источники устойчивости картофеля к Globodera rostochiensis Woll., Rol. В сб. Нематоды естественных и трансформированных экосистем. Петрозаводск, 2007: 58-60.

105. Логинов И.Я., Анисимова Г.Л., Ламеев А.И. Результаты селекционной работы по созданию нематодоустойчивых сортов картофеля. В сб.: Селекция, семеноводство и биотехнология картофеля. М, 1989: 48-53.

106. Майр Э. Популяции, виды и эволюция. М, 1974.

107. Маковская С.А. Анализ популяций гетеродеры картофеля в Северо-Западном районе Нечерноземной зоны РСФСР. В сб.: Восьмое Всесоюзное совещание по нематодным болезням сельскохозяйственных культур. Кишинёв, 1976: 56.

108. Мэтьюз Р. Вирусы растений. М, 1973.

109. Мюнтцинг А. Генетика. М, 1967.

110. Найданова Г. М. Устойчивость к штаммам вируса Y у диких видов и межвидовых гибридов картофеля. Науч.-техн. бюл., вып 1, Новосибирск, 1980: 12-19.

111. Незаконова Л.В. Селекция нематодоустойчивых сортов в Беларуси. В сб.: Материалы Межд. науч. практ. конф., посвященной 75-тилетию Института картофелеводства НАН Беларуси. Минск, 2003: 46-56.

112. Незаконова Л.В., Колядко И.И., Пискун Г.И. и др. Результаты селекции нематодоустойчивых и фитофтороустойчивых сортов в Беларуси. В сб.: Вопросы картофелеводства. М, 2002: 41-47.

113. Николаева Н.В. Особенности наследования у гибридов фитофтороустойчивого вида Solanum demissum Lindl. х Solanum tuberosum L. Докл. ВАСХНИЛ. T 1-2 (10-11), 1938.

114. Нурмисте Б. X. Оценка методов борьбы с вырождением картофеля. М, 1958.

115. Овчинникова А.Б. Дифференциация культурных видов картофеля на основе полиморфизма ядерных микросателлитных локусов и изменчивости морфологических признаков. Канд. дис. СПб, 2011.

116. Осипова Е. А., Евдокимова 3. 3. Исходный материал для селекции картофеля на устойчивость к картофельной нематоде. Бюл ВНИИР, вып. 105, Л, 1980: 20-23.

117. Павлюшин В.А. Проблемы фитосанитарного оздоровления агроэкосистем. Вестник защиты растений. 2011 (2): 3-9.

118. Палеха С. В., Рогозина Е. В. Новый исходный материал для селекции картофеля на устойчивость к вирусным болезням. В сб. Совершенствование технологии возделывания картофеля. Пенза, 2000: 58 60.

119. Парашкина Л.И. Некоторые морфологические и биологические особенности семенного потомства диких мексиканских видов картофеля, интродуцированных в ВИР в 1968 году. Канд. дис. Л, 1973.

120. Патрикеева М.В., Харитонова З.М. Комплексная устойчивость перспективных сортов и гибридов картофеля к раку и фитофторозу. Труды ВИЗР, вып. 49, Л, 1976: 18-22.

121. Перлова Р.Л. Картофель в высокогорных районах Памира. Доклады ВАСХНИЛ, 1939 (20): 10-13.

122. Подгаецкий А.А. Перспективность межвидовой гибридизации для практической селекции картофеля. В сб.: Использование мировых генетических ресурсов ВИР в создании сортов картофеля нового поколения. СПб, 2009: 23-31.

123. Положение о порядке испытания картофеля на устойчивость к возбудителю рака картофеля (патотип I) и золотистой картофельной цистообразующей нематоде (патотип Rol), М, 1993.

124. Понин И.Я. Исходный материал и его использование при выведении сортов картофеля, устойчивых к картофельной нематоде. Канд. дис. JI, 1968.

125. Понин И.Я. Нематодоустойчивость картофеля и томатов, выведение резистентных сортов и пути их использования в борьбе с картофельной нематодой. Докт. дис. J1, 1977.

126. Разумов В.И. Влияние переменной продолжительности дня на клубнеобразование. Тр. по прикл. бот., ген. и сел. Т. 27 (5), JI, 1931.

127. Разумов В.И., Лимарь Р.С., Кошкин В. А. Видовая чувствительность южноамериканского дикого картофеля к различной температуре ночи в условиях короткого дня. Вестн.с.-х. науки 1974 (11): 37-42.

128. Рогозина Е.В. Устойчивость дикорастущих видов картофеля к Y-вирусу. С.-х. биология, 2002(3): 114-116.

129. Рогозина Е.В. Межвидовые гибриды картофеля доноры устойчивости к фитофторозу. Докл. РАСХН, 2003 (2): 8-11.

130. Рогозина Е. В. Южноамериканские дикорастущие виды картофеля: особенности онтогенеза и перспективы использования в селекции. С.-х. биология. 2005 (5).

131. Рогозина Е.В. Создание доноров устойчивости картофеля к фитофторозу как развитие творческих идей академика К.З. Будина. В сб.: Использование мировых генетических ресурсов ВИР в создании сортов картофеля нового поколения. СПб, 2009: 104-110.

132. Рогозина Е.В. Молекулярно-генетические взаимодействия в системе «патоген-хозяин» при фитофторозе картофеля и современные стратегии селекции (обзор). С.-х. биология, 2011 (5): 17-30.

133. Рогозина Е.В., Бекетова М.П., Хавкин Э.Е. Генетически различные устойчивые к фитофторозу гибриды картофеля ценный исходный материал для селекции. К 80-летию мировой коллекции картофеля ВИР. Тр. по прикл. бот., ген. и сел. Т. 163, СПб, 2007: 99109 (Ь).

134. Рогозина Е. В., Горбатенко Л. Е., Палеха С. В. Межвидовая гибридизация картофеля с участием дикорастущих видов серии Bukasoviana Gorbat. В сб.: Отдаленная гибридизация. Современное состояние и перспективы развития. М, 2003: 212-216.

135. Рогозина Е.В., Гуськова J1, А., Лиманцева JI.A. и др. Использование коллекции диких видов картофеля ГНЦ РФ ВИР для расширения генетической базы селекции. В сб.: Научное обеспечение и инновационное развитие картофелеводства. М, 2008: 64-72 (а)

136. Рогозина Е. В., Киру С. Д. Доноры устойчивости картофеля к патогенам и качества продукции. В сб.: Идентифицированный генофонд растений и селекция. СПб, 2005: 443470.

137. Рогозина Е.В., Лиманцева Л.А., Гуськова Л.А. Новые источники и донор устойчивости картофеля к золотистой картофельной нематоде Globodera rostochiensis Woll., патотип Rol. Вестник защиты растений, 2008 (1): 39-44 (Ь)

138. Рогозина Е.В., Лиманцева Л.А., Хютти A.B. Исходный материал для селекции сортов картофеля с групповой устойчивостью к патогенам. Вестник защиты растений, 2008 (4): 62-64 (с).

139. Рогозина Е.В., Патрикеева М.В., Маковская С.А. и др. Новые ценные для селекции межвидовые гибриды картофеля. В сб.: Материалы межд. науч.-практ. конф., посвящ. 75-тилетию Института картофелеводства HAH Беларуси. Минск, 2003: 215-221

140. Рогозина Е.В., Чалая Н.А, Лиманцева Л.П. и др. Использование генотипического потенциала дикорастущих видов рода Solanum секции Petota для решения приоритетных задач селекции. Известия СПГАУ. СПб, 2011 (22): 37-40.

141. Романова Л.В., Ткаченко В.Н. Гормональная активность видов картофеля и других растений в разных фотопериодических и температурных условиях. Тр. по прикл. бот., ген. и сел. Т. 53 (1), Л, 1974: 132-147.

142. Росс X. Селекция картофеля проблемы и перспективы. М,1989.

143. Рыбин В.А. Результаты цитологического исследования южноамериканских культурных и диких картофелей и их значение для селекции. Тр. по прикл. бот., ген. и сел. 1933. серия II, 3.

144. Седова Т.С. Межвидовая гибридизация некоторых южноамериканских диплоидных диких и культурных видов картофеля. Бюл. ВНИИР, вып. 105, JI, 1980: 34-37.

145. Серегина Н. И. Скрещиваемость дикорастущих видов картофеля с формами Solanum tuberosum L. В сб.: Генетически изученные источники признаков для селекции важнейших сельскохозяйственных культур в Нечерноземной зоне РСФСР. JI, 1991: 68-73.

146. Симаков Е.А. , Анисимов Б.В., Яшина И.М. и др. Российские сорта картофеля (каталог). М, 2005.

147. Симаков Е.А., Анисимов Б.В., Чугунов B.C. и др. Производство и рынок картофеля в России: состояние, тенденции, перспективные направления. В сб. Картофелеводство: результаты исследований, инновации, практический опыт. М, 2008: 5-12.

148. Симаков Е.А., Анисимов Б.В., Еланский С.Н. и др. Сорта картофеля, возделываемые в России. М, 2010.

149. Симаков Е.А., Склярова Н.П., Яшина И.М. Методические указания по технологии селекционного процесса картофеля. М, 2006.

150. Симаков Е.А., Яшина И.М., Склярова Н.П.и др. Создание нового исходного материала для наиболее важных направлений селекции картофеля. В сб.: Использование мировых генетических ресурсов ВИР в создании сортов картофеля нового поколения. СПб, 2009: 15-22.

151. Синельникова В.Н. Влияние длины дня на рост, цветение и клубнеобразование различных видов картофеля. Канд. дис. JI, 1966.

152. Синельникова В.Н. Некоторые физиологические особенности видов картофеля. В сб.: Культурная флора СССР. Т.9, Л, 1971: 409-416.

153. Синская E.H. Проблема популяций у высших растений. Л, 1963.

154. Синцова Н.Ф. Выделение исходного материала для селекции картофеля на устойчивость к фитофторозу к вирусам X и Y. Канд. дис. Киров, 1999.

155. Синцова Н.Ф., Сергеева З.Ф. Оценка коллекционного фонда картофеля в условиях Фаленской селекционной станции и результаты его использования. В сб.:

156. Использование мировых генетических ресурсов ВИР в создании сортов картофеля нового поколения. СПб, 2009: 204-209.

157. Склярова Н. П., Логинов И.Я. Селекция картофеля на устойчивость к картофельной нематоде. В сб.: Селекция картофеля на иммунитет и защита от болезней и вредителей. М, 1986: 24-35.

158. Склярова Н.П., Яшина И.М. Наследование устойчивости к вирусу Y у диких видов картофеля Solanum chacoense Bitt. и Solanum commersonii Dun. Цитология и генетика. Т. 7 (2), 1973: 132-135.

159. Соболева Т.И. Гибридизация дигаплоидов друг с другом и с диплоидными видами. Бюл ВИР, вып. 145, Л, 1984: 14-18.

160. Созонов А.Н. Вирус Y картофеля в Северо-Западном регионе РФ: распространение, штаммовый состав и профилактика вызываемых им заболеваний. Канд. дис. СПб, 2005.

161. Соколова Е.А., Рогозина Е.В., Хавкин Э.Е. Маркеры R генов устойчивости к фитофторозу у дикорастущих сородичей картофеля. В сб.: Использование мировых генетических ресурсов ВИР в создании сортов картофеля нового поколения. СПб, 2009: 255-259.

162. Тихомиров Ф.К. Ботаника. М, 1978.

163. Трускинов Э. В. Поражение мировой коллекции картофеля мозаичными вирусами и перспективы селекции на устойчивость к вирусу М. Канд. дис. Л, 1972.

164. Трускинов Э.В., Рогозина Е.В. Оздоровление клоновой коллекции картофеля r культуре ткани. Физиология растений, Т 44 (3), 1997: 432-439.

165. Турко С.А., Иванюк В.Г., Ильяшенко Д.А. и др. Атлас болезней и вредитилей картофеля. Минск, 2008.

166. Федотова Т.И., Патрикеева М.В. Фитопатологические работы при селекции картофеля на устойчивость к фитофторе. Методические указания. Л, 1977.

167. Филиппов A.B., Рогожина А.Н., Кузнецова М.А. и др. Защита картофеля от фитофтороза. Картофелевод. 2005 (3): 4-10.

168. Хютти A.B. Мониторинг популяций возбудителя рака картофеля и выявление источников устойчивости. Канд. дис. СПб, 2008.

169. Шанина Е. П. Оценка сортообразцов ВИР в условиях Среднего Урала. В сб.: Использование мировых генетических ресурсов ВИР в создании сортов картофеля нового поколения. СПб, 2009: 130-133.

170. Шелабина Т.А. Устойчивость к вирусам районированных сортов картофеля и особенности защиты их в Северо-Западном регионе Нечерноземья: Канд. дис. Л, 1989.

171. Шелабина Т.А., Колобаев В.А., Ефимова Г.Г. Два штамма вируса картофеля. Защита растений. 1985 (2): 53.

172. Широкий унифицированный классификатор СЭВ и международный классификатор СЭВ видов картофеля секции Tuberarium (Dun.) Buk. рода Solanum L. Jl, 1997.

173. Шпаар Д. (ред.) Картофель. Возделывание, уборка и хранение. Минск, 2004.

174. Щербакова Н.М., Смородина М.М. передача вирусов мозаичной группы S, M, Y настоящими семенами картофеля. В сб. Вирусные болезни сельскохозяйственных растений и меры борьбы с ними. М, 1978: 70-71.

175. Юзепчук C.B., Букасов С.М. К вопросу о происхождении картофеля. Труды Всесоюзного съезда по генетике, селекции, семеноводству и племенному животноводству. Т.З. Л, 1929: 593-611.

176. Яковлева В.И. Использование диких и культурных видов при выведении ракоустойчивх сортов картофеля. В сб. Рак картофеля и меры борьбы с ним. Л, 1964: 6277.

177. Яковлева В.И., Салтыкова Л.П. Лабораторная диагностика ракоустойчивости картофеля методом заражения ростков от свежих раковых наростов: Методические указания. М, 1979.

178. Яковлева Г.А., Дубинич В.Л. Устойчивость к фитофторозу образцов коллекции диких и примитивных видов картофеля, депонируемых in vitro. В сб.: Картофелеводство, вып. 10, Минск, 2000: 155-162.

179. Яковлева Г.А., Семанюк Т.В., Бекетова М.П. и др. Связь стабильной устойчивости к фитофторозу у гибридов картофеля с Solanum bulbocastanum с присутствием генов устойчивости R1 и RB. В сб.: Картофелеводство, вып. 12, Минск, 2007: 81-93.

180. Яшина И.М. Генетико-цитологические особенности клубнеобразующих видов Solanum. В сб.: Картофель, М, 1970: 59-62.

181. Яшина И. М. Создание и генетическая оценка нового исходного материала картофеля и эффективные пути его использования в селекции: Док. дис. М, 2000.

182. Яшина И.М., Букетова M. М. Мейоз у видов картофеля разной плоидности. В кн. Генетика картофеля. М, 1973: 34-68.

183. Яшина И.М., Коновалова Л.Н., Деревягина М.К. Генетическая природа горизонтальной устойчивости картофеля к фитофторе и методы создания устойчивых сортов. Методические рекомендации. М, 2004.

184. Яшина И.М., Симаков Е.А., Склярова Н.П. и др. Молекулярные маркеры генома Solanum demissum как предикторы устойчивости картофеля к фитофторозу. В сб.:

185. Картофелеводство: Результаты исследований, инновации, практический опыт. T.l, М, 2008:84-100.

186. Яшина И.М., Симаков Е.А., Морозова Н.Н. и др. Доноры и генетические источники для использования в селекционном процессе картофеля. Каталог. М, 2010.

187. Яшина И.М., Склярова Н.П. Генетика полиплоидных видов картофеля. В кн. Генетика картофеля. М, 1973: 82-103.

188. Яшина И.М., Склярова Н.П., Симаков Е.А. Результаты использования генетических источников из коллекции ВИР в селекции картофеля на устойчивость к болезням и вредителям. Тр. по прикл. бот., ген. и сел., вып. 163, СПб, 2007:118-136.

189. Abbink Т. Е. М., Tjernberg P. A., Bol J. F. et al. Tobacco mosaic virus helicase domain induces necrosis in N gene-carrying tobacco in the absence of virus replication. Mol. Plant-Microbe Interact., 1998 (11): 1242-1246.

190. Abdalla M., Hermsen J. An evaluation of Solarium verrucosum Schlechtd. for its possible use in potato breeding. Euphytica, 1973 (22): 19-27.

191. Adams S.E., Jones, R.A.C., Coutts R.H.A. Infection of protoplasts derived from potato shoot cultures with potato virus X. J. Gen. Virol., 1985 (66):1341-1346.

192. Alvarez N., Peralta I., Salas A.et al. A morphological study of species boundaries of the wild potato Solarium brevicaule complex: replicated field trials in Peru. Plant Syst. Evol., 2008 (274):37^5.

193. Austin S., Helgeson J. Interspecific somatic fusions between Solarium brevidens and S. tuberosum. In: D. von Wettestein and N.-H. Chua (eds.). Plant Molecular Biology, 1987: 209222.

194. Baayen R.P., Cochius G., Hendriks H. et al. History of potato wart disease in Europe a proposal for harmonization in defining pathotypes. Europ. Journ. of Plant Pathology, 2006 (116): 21-31.

195. Baker B., Zambryski P., Staskawicz B. et al. Signaling in plant-microbe interaction. Science, 1997 (276): 726-733.

196. Bakker E., Borm T., Prins P. et al. A genome-wide genetic map of NB-LRR disease resistance loci in potato. Theor. Appl. Genet. 2011 (123):493-508.

197. Bakker E., Achenbach U., Bakker J. et al. A high-resolution map of the HI locus harbouring resistance to the potato cyst nematode Globodera rostochiensis. Theor Appl Genet., 2004 (109): 146- 152

198. Balcombe D. RNA as a target and an initiator of post-transcriptional gene silencing in transgenic plants. Plant Mol. Biol., 1996, 32(l-2):79-88.

199. Ballvora A., Hesselbach J., Niewohner J. et al. Marker enrichment and high-resolution map of the segment of potato chromosome VII harbouring the nematode resistance gene Grol. Molecular and General Genetics, 1995 (249): 82-90.

200. Ballvora A., Ercolano M.R., Weiss J. et al. The R1 gene for potato resistance to late blight (Phytophthora infestans) belongs to the leucine zipper/NBS/LRR class of plant resistance genes. Plant J., 2002 (30): 361-371.

201. Bamberg J., Martin M., Schartner J. Elite Selections of Tuber-bearing Solanum Species Germplam. Sturgeon Bay, USA. 1994.

202. Bamberg J., Martin M., Schartner J. Inventory of Tuber-bearing Solanum species. Catalog of Potato Germpasm. Sturgeon Bay, USA. 1996.

203. Bamberg J., Rio A. Genetic Heterogeneity Rstimated by RAPD Polymorphism of Four Tuber-bearing Potato Species Differing by Breeding System. Amer. J. Potato Res. 2004 (81): 377-383.

204. Bamberg J., Rio A. Seedling Transplant Selection Does Not Cause Genetic Shifts in Genebank Populations of Inbred Potato Species. Crop Science, 2006 (46): 424-427.

205. Bamberg J., Rio A., Moreyra R. Genetic Consequences of Clonal Versus Seed Sampling in Model Populations of Two Wild Potato Species Indigenous to the USA. Amer. J. Potato Res. , 2009 ( 86): 367-372.

206. Bamberg J., Hanneman R. Allelism of endosperm balance number (EBN) in Mexican tuber-bearing Solanum species. Theor. Appl. Genet., 1990 (80): 161-166.

207. Barker H. Multiple components of the resistance of potato leafroll virus. Ann. Appl. Biol., 1987 (111): 641-648.

208. Barnett O.W. A summary of potyvirus taxonomy and definitions. Potyvirus Taxonomy. New York, 1992.

209. Batten J. S., Yoshinari S., Hemenway C. Potato virus X: a model system for virus replication, movement and gene expression. Mol. Plant. Pathol. 2003 (4): 125-131.

210. Beczner L., Horvath J., Romhanyi I. et al. Studies on the etiology of tuber necrotic ringspot disease in potato. Potato Res., 1984 (27): 339-352.

211. Beketova M.P., Biryukova V.A., Velishaeva N.S. et al. DNA markers for introgressing resistance to potato late blight. In: Biotechnology, agriculture and the food industry (G.E. Zaikov, ed.), Nova Science Publishers, New York, 2006: 240-245.

212. Beketova M.P., Drobyazina P.E., Sokolova E.A. et al. DNA markers for potato introgression breeding, In: Potato production and innovative technologies (Haverkort A.J. and Anisimov B.V., eds.), Wageningen Acad. Publ., 2007: 397-404.

213. Bendahmane A., Kohm B., Dedi C. et al. The coat protein of potato virus X is a strain-specific elicitor of Rxl-mediated virus resistance in potato. Plant J., 1995 (8): 933-941.

214. Bendahmane A., Kanyuka K., Baulcombe D. High-resolution genetical and physical mapping of the Rx gene for extreme resistance to potato virus X in tetraploid potato. Theor. Appl. Genet., 1997 (95): 153-162.

215. Bendahmane A., Kanyuka K., Baulcombe D. C. The i?x-gene from potato controls separate virus resistance and cell death responses. PI. Cell. , 1999 (11):781—791.

216. Bendahmane A., Querci M., Kanyuca K. et al. Agrobacterium transient expression system as a tool for the isolation of disease resistance genes: application to the Rx2 locus in potato. Plant J., 2000 (21):73-81.

217. Biryukova V., Zhuravlev A., Abrosimova S. et al. Use of molecular markers of potato golden nematode resistance genes HI and Grol Rus. Agric. Sciences, 2008 (34): 365-368.

218. Black W. Studies on the inheritance of resistance to wart disease {Synchytrium endobioticum (Schil.) Perc.) in potatoes. J. Genet., 1935 (30); 127.

219. Black W. The nature and inheritance of field resistance to late blight {Phytophthora infestans) in potatoes. Am. Potato J., 1970 (47): 279-288.

220. Black W, Gallegly M. Screening of Solanum species for resistance to physiologic races of Phytophthora infestans. Am. Potato J., 1957 (34): 273-281.

221. Black W., Mastenbroek C., Mills W. et al. A proposal for an international nomenclature of races of Phytophthora infestans and genes controlling immunity in Solanum demissum derivatives. Euphytica, 1953 (2):173-179.

222. Boonekamp P., Haverkort A., Hutten R. et al. Durable resistance against Phytophthora in potato through cisgenic marker-free modification. Wageningen. 2010.

223. Bormann C.A., Rickert A.M., Ruiz R.A. et al. Tagging quantitative trait loci for maturity-corrected late blight resistance in tetraploid potato with PCR-based candidate gene markers. Mol. Plant Microbe Interact. 2004 (17):1126-1138.

224. Bouwmeester K., van Poppel P.M., Govers F. Genome biology cracks enigmas of oomycete plant pathogens. In: Molecular aspects of plant disease resistance, J.E. Parker, ed. (Oxford, United Kindom: Willey-Blackwell), 2009: 102-134.

225. Bradshaw J. Progress and prospects for knowledge based potato breeding. In: Potatoes Today and Tomorrow. Proc. 15 thTriennal conference of the EAPR. Germany. Hamburg. 2002: 47.

226. Bradshaw J. Potato Breeding at the Scottish Plant Breeding Station and the Scottish Crop Research Institute: 1920-2008. Potato Research, 2009 (52): 141-172.

227. Bradshaw J., Bryan G., Lees A. et al. Mapping the R10 and R11 genes for resistance to late blight {Phytophthora infestans) present in the potato {Solanum tuberosum) i?-gene differentials of Black. Theor. Appl. Genet., 2006 (112):744-751 (a).

228. Bradshaw J., Bryan G., Ramsay G. Genetic resources (including wild and cultivated Solanum species) and progress in utilization. Potato Research, 2006 (49): 49-65 (b)

229. Brigneti G., Garcia-Mas J., Baulcombe D. C. Molecular mapping of the potato virus Y resistance gene Ryst0 in potato. Theor. Appl. Gen., 1997 (94): 198-203.

230. Brodie B. Classical and molecular approaches for managing nematodes affecting potato. Canad. Journ. Plant Pathol. 1999 (21): 222-230.

231. Brown C. Outcrossing rate in cultivated autotetraploid potato. Am. Potato J., 1993 (70): 725-734.

232. Brown C. R., Fernandez-Northcote E. N., Jayasinghe U. et al. Breeding virus-resistant potato cultivars for developing countries. CIP Circular. 1984. (1):1^1.

233. Brown C. R., Thomas P. E. Resistance to potato leafroll virus derived from Solanum chacoense, characterization and inheritance. Euphytica, 1994 (74): 5-57.

234. Brugmans B., Hutten R., Nico A. et al. Exploitation of a marker dense linkage map of potato for positional cloning of a wart disease resistance gene. Theor. Appl. Genet., 2006 (112): 269-277.

235. Buck R. Male sterility in interspecific hybrids of Solanum. J. Hered. , 1960 (512): 13-14.

236. Bukasov S. The problems of potato breeding. Am. Pot. J., 1936, 13 (9): 235-252.

237. Cadman C. Autotetraploid inheritance in the potato. J. Gen., 1942 (44): P.33-52.

238. Cai X., Spooner D., Jansky S. A Test of Taxonomic and Biogeographic Predictivity: Resistance to Potato virus Y in Wild Relatives of the Cultivated Potato. Phytopathology, 2011, 101 (9): 1074-1080.

239. Campbell C., Madden L. Introduction to plant disease epidemiology. Wiley, New York, USA. 1990.

240. Castelli L., Ramsay G., Bryan G. et al. New sources of resistance to the potato cyst nematodes Globodera pallida and G. rostochiensis in the Commonwealth Potato Collection. Euphytica, 2003 (129): 377-386.

241. Celebi-Toprak F., Slack S., Jahn M. A new gene, Nytbr, for hypersensitivity to Potato Virus Y from Solanum tuberosum Maps to Chromosome IV. Theor. Appl. Genet., 2002 (104): 669-674.

242. Cellis C., Hutten R., Jacobsen E. et al. QTL effects on the epidemics of Phytophthora infestans in a diploid population of potato. Late blight managing the global threat. Hamburg. Germany, 2002: 143

243. Champouret N. Functional genomics of Phytophthora infestans effectors and Solanum resistance genes. PhD thesis. Wageningen Univ. 2010.

244. Champouret N., Bouwmeester K., Rietman H. et al. Phytophthora infestans Isolates Lacking Class 1 ipiO Variants Are Virulent on Rpi-blb 1 Potato. Mol. Plant Microbe Interact. 2009 (22): 1535-1545.

245. Chase S. Analytical breeding of Solanum tuberosum. Can. J. Gen. Cyt., 1963 (5): 359363.1. Ar

246. Chrzanowska M. New isolates of the necrotic strain of Potato virus Y (PVY ) found recently in Poland. Potato Res., 1991 (34): 179-182.

247. Chrzanowska M. Differentiation of potato virus Y (PVY) isolates. Phytopath. Polonica Poznan 1994, 8 (XX): 15-20.94.

248. Chrzanowska M., Sieczka M., Zagorska H. Resistance to PVM in potato parental lines bred in Mlochow research center, IHAR. Plant breeding and seed science. 2002 (46): 57-65.

249. CIP (International Potato Center). Procedures for standard evaluation trials of advanced potato clones. An International Cooperators' Guide. Peru. 2007.

250. Clark M., Adams A. Characteristics of the microplate methods of enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of plant viruses. J. Gen. Virol., 1977 (34): 475-483.

251. Cockerham G. Genetical studies on resistance to potato viruses X and Y. Heredity, 1970 (25): 309-348.

252. Cole C. S., Howard H.W. The Genetic of resistance to potato root eelworm of Solanum tuberosum ssp. andigenum, clone C.P.C. 1690. Euphytica, 1957 (6): 242-246.

253. Collins A., Milbourne D., Ramsay L. et al. QTL for field resistance to late blight in potato is strongly correlated with maturity and vigor. Molec. Breed. 1999 (5): 387-398.

254. Colon L. Resistance to Phytophthora infestans in Solanum tuberosum and wild Solanum species. Thesis Wageningen. 1994.

255. Colon L., Bent J. Nielsen, Ulrich Darsow. Eucablight protocol Detached leaf test for foliage blight resistance. 2004. www.euroblight.net.

256. Colon L.T., Budding D.J. Resistance to late blight (Phytophthora infestans) in ten wild Solanum species. Euphytica, 1988. S: 77-86.

257. Colton L.M., H.I. Groza, S.M. Wielgus et al. Marker-assisted selection for the broad spectrum potato late blight resistance conferred by gene RB derived from a wild potato species. Crop Science, 2006 (46): 589-594.

258. Cooper J. I., Jones A. T. Responses of plants to viruses, proposals for the use of terms. Phytopath. , 1983 (73): 127-128.

259. Correll D.S. The potato and its wild relatives. 1962. Texas Research Foundation.

260. Culver J. N. Viral avirulence genes. In: Plant-Microbe Interact. N.-Y., 1997 (1): 196-219.

261. D'Arcy W. G. Solanaceae studies II: typification of subdivisions of Solanum. Ann. Missouri Bot. Gard., 1972 (59): 262-278.

262. Danan S., Veyrieras J.-B., Lefebvre V. Construction of a potato consensus map and QTL meta-analysis offer new insights into the genetic architecture of late blight resistance and plant maturity traits. BMC Plant Biology. 2011 (11): 16.

263. Dangle J., Jones J. Plant pathogens and integrated defence responses to infection. Nature, 2001 (411): 826-833.

264. Davidson T. M. Breeding for resistance to virus disease of the potato (Solanum tuberosum) at the Scottish Plant Breeding Station. Ann. Report. Edinburgh, 1980: 100-108.

265. Davies H., Bryan G., Taylor M. Advances in Functional Genomics and Genetic Modification of Potato. Potato Research, 2008 (51):283-299.

266. Deahl K., Cantelo W., Sinden S. et al. The effect of light intensity on Colorado potato beetle resistance and foliar glycoalkaloid concentration of four Solanum chacoense clones. Am Potato J. 1991 (68):659-666.

267. De Jong W., Forsyth A., Leister D. et al. A potato hypersensitive resistance gene against potato virus X maps to a resistance gene claster on chromosome 5. Theor. Appl. Genet., 1997 (95): 246-252.

268. Dionne L. Studies on the use of Solanum acaule as a bridge between Solanum tuberosum and species in the series Bulbocastana, Cardiophylla and Pinnatisecta. Eupjytica, 1963 (12): 263-269.

269. Dyakov Yu. Late Blight of Potato and its Control in Russia. Pesticide Outlook. 2000: 230-232.

270. Elansky S., Smirnov A., Dyakov Y. et al. Genotypic Analysis of Russian isolates of Phytophthora infestans from the Moscow Region, Siberia and Far East. J. Phytopathology. 2001 (149): 605-611.

271. Ellenby C. Resistance to potato root eelworm (Heterodera rostochiensis Wollenweber). Nature, 1952 (170): 1016.

272. Ellis S., Boehm M., Rhodes L. Nematode Diseases of Plants. In: Agriculture and Natural resources. Fact Sheet 2008. The Ohio State University. PP 401.08.

273. Estrada R. La biodiversidad en el mejoramento genetico de la papa. CIP. Proinpa.1999.

274. Ewing E., Simko I., Smart C. et al. Genetic mapping from field tests of qualitative and quantitative resistance to Phytophthora infestans in a population derived from Solanum tuberosum and Solanum berthaultii. Mol.Breed., 2000 (6): 25-36.

275. Fernandez-Northcote E. N. Variability of PVX and PVY and its relationship to genetic resistance. Intern. Potato Center. Lima, 1990: 131-139.

276. Flanders K., Hawkes J., Radcliffe E. et al. Insect resistance in potatoes: sources, evolutionary relationships, morphological and chemical defenses, and ecogeographical associations. Euphytica, 1992 (61):83-111.

277. Flor H. Current Status of the Gene-For-Gene Concept. Annual Review of Phytopathology, 1971 ( 9): 275-296

278. Foster S., Park T., Pel M. et al. Rpi-vnt-1.1, a Tm-22 homolog from Solanum venturii, cofrs resistance to potato late blight. Mol. Plant-Micr. Interact. 2009 (22): 589-600.

279. Fribourg C. Studies on potato virus X strains isolated from Peruvian potatoes. Potato Research, 1975 (18):216-226.

280. Fry W. Late Blight of Potatoes and Tomatoes. Vegetable Crops. Cornell Cooperative Extension. Ithaca, USA. 1998: 726.

281. Gajendran K., Gonzales M. Farmer A. et al. Phytophthora functional genomics database (PFGD): functional genomics of phytophthora-plant interactions. Nucleic Acids Research, 2006 (34): 465^170.

282. Galvez R„ Brown C. Inheritance of extreme resistance to PVY derived from Solanum tuberosum ssp. andigena. Am. Potato J., 1980 (57) : 476-477.

283. Garbachevska G., Chrzanowska M., Kerlan K. Ultrastructural studies of Nicotiana clevelandii and potato plants infected with PVY N™. Ann. Warsaw Agricult. Univ. Agriculture, 1996 (31): 15-22.

284. Garry G., Forbes G., Salas A. et al. Genetic diversity and host differentiation among isolates of Phytophthora infestans from cultivated potato and wild solanaceous hosts in Peru. Plant Pathology, 2005 (54): 740-748.

285. Gebhardt C. Genetic Analysis of Quantitative and Qualitative Resistance to Late Blight Using DNA-markers: The State of the Art. GILB Newsletter. 1999 (9): 1-2.

286. Gebhardt C., Bellin D., Henselewski H.et al. Marker-assisted combination of major genes for pathogen resistance in potato. Theor. Appl. Genet., 2006 (112): 1458-1464.

287. Gebhardt C., Mugniery D., Ritter E. et al. Identification of RFLP markers closely linked to the HI gene conferring resistance to Globodera rostochiensis in potato. Theor. Appl. Genet., 1993(85): 541-544.

288. Gebhardt C., Ritter E., Barone A. et al. RFLP maps of potato and their alignment with the homoeologous tomato genome. Theor. Appl. Genet., 1991 (83): 49-57.

289. Gebhardt C., Valkonen J. Organization of genes controlling diseases resistance in the potato genome. Ann. Rev. Phytopath., 2001 (39): 79-102.

290. Ghislain O., Trognitz B., Herrera M. et al. Genetic loci associated with field resistance to late blight in offspring of Solanum phureja and S. tuberosum grown under short-day conditions. Theor. Appl. Genet., 2001 (103): 433-442.

291. Gianessi L., Sankula S., Reigner N. Executive Summary. Plant Biotechnology: Potential Impact or Improving Pest Management in European Agriculture. Potato Case Study. Washington. USA. 2003.

292. Gibson R. The resistance of three Solanum species to Myzus persicae, Macrosiphum euphorboiae and Aulacorthum solani (Aphididae: Homoptera). Ann. Appl. Biol., 1971 (88):245-251

293. Gibson R., Pickett J. Wild potato repels aphids by release of alarm pheromones. Nature, 1983 (302):608-609

294. Glais L., Kerlan C., Robaglia C. Variability and Evolution of Potato Virus Y., the Type Species of Potyvirus Genus. In: Plant Viruses as Molecular Pathogenes. eds. J. Khan, J. Dijkstra. 2002: 225-253.

295. Glais L., Tribodet M., Kerlan C. Genomic variability in potato potyvirus PVY: evidence that PVYnW and PVYN™ variants are single to multiple recombinants between PVY° and PVYN isolates. Arch. Virol., 2002 (147): 363-378.

296. Glendinnings D. Potato introductions and breeding up to the early 20th century. New Phytol. 1983 (94): 479-505.

297. Gomez-Alpizar L., Carbone I., Ristaino J. B. An Andean origin of Phytophthora infestans inferred from mitochondrial and nuclear gene genealogies. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 2007(104): 3306-3311.

298. Goodwin S. The Population Genetics of Phytophthora. Phytopathology, 1997 (87): 462473.

299. Grun P., Aubertin M. The inheritance and expression of unilateral incompatibility in Solanum. Heredity, 1966 (21): 131-138.

300. Grunwald N., Hinojosa C., Covarrubias R. et al. Potato cultivars from the Mexican national program: sources and durability of resistance against late blight. Phytopathology, 2002 (92): 688-693.

301. Haas B., Kamoun S., Zody. M. et al. Genome sequence and comparative analysis of the Irish potato famine pathogen Phytophthora infestans. Nature, 2009 (461): 393-398.

302. Hamalainen J. Molecular mapping of potyvirus resistance genes in diploid potatoes. Doctor's dissert. Sweden, Uppsala, 1999.

303. Hamalainen J., Kekarainen T., Watanabe K. et al. Recessive and dominant gene interfere with the vascular transport of potato virus A in diploid potatoes. Mol. Plant-Microbe Interact. 2000 (13): 402-414.

304. Hamalainen J., Sorri V., Watanabe K. et al. Molecular examination of a chromosome region that controls resistance to potato Y and A potyviruses in potato. Theor. Appl. Gen., 1998 (96): 1036-1043.

305. Hamalainen J., Watanabe K., Valkonen J. et al. Mapping and marker-assisted selection for a gene forextreme resistance to potato virus Y. Theor. Appl. Gen., 1997 (94): 192-197.

306. Hamilton A., Balcombe D. A species of small antisense RNA in posttranscriptional gene silencing in plants. Science, 1999. 286 (5441):950-2.

307. Hammond-Kosack K., Atkinson H., Bowles D. Systemic accumulation of novel proteins in the apoplast of the leaves of potato plants following root invasion by the cyst-nematode Globodera rostochiensis. Physiol. MOI. Plant Pathol., 1989 (35): 495-506.

308. Hampson M. Infection of additional hosts of Synchytrium endobioticum, the causal agent of potato wart disease: 2. Tomato, tobacco and species of Capsicastrum, Datura, Physalis and Schizanthus. Canadian Plant Disease Survey, 1979. Vol. 59 (1): 1-18.

309. Hampson M. History, biology and control of potato wart disease in Canada. Canadian Journal of Plant Pathology. 1993. Vol. 15(4):223-316.

310. Hanneman R. Assignment of Endosperm Balance Numbers to the tuber-bearing Solanums and their close non-tuber-bearing relatives. Euphytica, 1994 (74): 19-25.

311. Hanneman R. The reproductive biology of the potato and its implication for breeding. Potato Research, 1999 (42): 283-312.

312. Hanneman R., Bamberg J. Inventory of Tuber-bearing Solanum species. 1986. USA. Madison, WI. Bulletin 533.

313. Haverkort A., Struik P., Visser R. Applied Biotechnology to Combat Late Blight in Potato Caused by Phytophthora infestans. Potato Research, 2009 (52): 249-264.

314. Hawkes J. Genetic poverty of the potato in Europe. In: Proc. Conf. Broadening Genet. Base Crops, Wageningen, 1978. Pudoc, Wageningen. 1979: 19-27.

315. Hawkes J. The Potato, Evolution, Biodiversity and Genetic Resources. London: Belhaven Press; 1990.

316. Hawkes J., Fransisco-Ortega J. The early history of the potato in Europe. Euphytica. 1993 (70): 1-7.

317. Hawkes J., Hjerting J. The potatoes of Argentina, Brazil, Paraguay, and Uruguay: A biosystematic study. Clarendon P. (Oxford). 1969.

318. Hawkes J., Hjerting J. The potatoes of Bolivia: Their breeding value and evolutionary relationships. Clarendon Press (Oxford England and New York). 1989.

319. Haydock P., Evans K. Management of potato cyst nematodes in the UK: an integrated approach. Outlook Agr., 1998 (27): 253-260.

320. Hehl R., Faurie E., Hesselbach J. et al. TMV resistance gene N homologues are linked to Synchytrium endobioticum resistance in potato. Theor. Appl. Genet., 1999 (98):379-386.

321. Hein I., Birch P., Danan S. et al. Progress in Mapping and Cloning Qualitative and quantitative Resistance Against Phytophthora infestans in Potato and Its Wild Relatives. Potato Research, 2009 (52): 215-227.

322. Hein I., McLean K., Chalhoub B. Generation and screening of a BAC library from a diploid potat clone to unravel durable resistance on linkage group IV. Int.J.Plant Genomics, 2007: 51421.

323. Heldak J., Bezo M., Stefunova V. et al. Selection of DNA Markers for Detection of Extreme Resistance to Potato Virus Y in Tetraploid Potato (Solanum tuberosum L.) F1 Progenies. Czech J. Genet. Plant Breed., 43, 2007 (4): 125-134.

324. Helgeson J., Pohlman J., Austin S. et al. Somatic hybrids between Solanum bulbocastanum and potato: a new source of resistance to late blight. Theor. Appl. Gen., 1998 (96): 738-742.

325. Hermsen J. Introgression of genes from wild species, including molecular and cellular approaches. In: J. Bradshaw and G. Mackay (eds.). Potato Genetics, 1994. CAB International, Wallingford, Oxon, UK: 515-538.

326. Hermundstad S., Peloquin S. Tuber yield and tuber traits of haploid-wild F1 species hybrids. Potato Res., 1986 (29):287-297.

327. Hermundstad S., Peloquin S. The production of new potato varieties: technological advances. Cambridge University Press, 1987: 197-210.

328. Hijmans. Diversity and ecology of the potato: the use of spatial analysis in crop science. Ph.D. Thesis. Wageningen University.2002.

329. Hoekstra R. Exploring the Natural Biodiversity of Potato for Late Blight Resistance Potato Research, 2009 (52): 237-244.

330. Hoekstra R., Seidewitz L. Evoluation Data on Tuber-bearing Solanum species Institut fur Pflanzenbau and Pflanzenzüchtung Bundeschweig- Völkenrode. 1987.

331. Hoekstra R., Bamberg J., Haman Z. A case study on merging evaluation data from different genebanks: the Inter-genebank Potato Database. In: Central Crop Databases: Tools for Plant Genetic Resources management. 1996. Budapest, Hungary. IPGRI/CGN: 69-71

332. Hogenhout S., Van der Hoorn R., Terauchi R. et al. Emerging concepts in effector biology of plant-associated organisms. Mol. Plant Microbe Interact., 2009 (22): 115-122.

333. Hosaka K., Hanneman R. Genetics of self-compatibility in a self-incompatible wild diploid potato species Solanum chacoense. 2. Localization of an S locus inhibitor (Sli) gene on the potato genome using DNA markers. Euphytica, 1998 (103): 265-271.

334. Hougas R., Ross R. The use of foreign introductions in breeding American potato varieties. American Potato Journal, 1956 (33): 328-339.

335. Howard H., Cole C., Fuller J. Further sources of resistance to Heterodera rostochiensis Woll. In the Andigena Potatoes. Euphytica, 1970 (19): 210-216.

336. Howard H., Fuller J. Resistance to the cream and white potato cyst nematode. Plant Path., 1971 (20): 32-35.

337. Huaman Z., Ross R. Updated listing of potato species names, abbreviations and Taxonomic status. Am. Potato J. 1985 (62): 629-641.

338. Huang S., Vleeshouwers V., Werij J. et al. The R3 resistance to Phytophthora infestans in potato is conferred by two closely linked R genes with distinct specificities. Mol. Plant-Microbe Interact., 2004 (17): 428-435.

339. Huang S., Vossen E., Kuang H. et al. Comparative genomics enabled the isolation of the R3a late blight resistance gene in potato. Plant J., 2005 (42): 251-261.

340. Huitema E., Bos J., Tian M. et al. Linking sequence to phenotype in Phytophthora -plant interactions. Trends Microbiol. 2004 (12): 193-200.

341. Huitema E., Vleeshouwers V., Francis D. et al. Active defence responses associated with non-host resistance of Arabidopsis thaliana to oomycete pathogen Phytophthora infestans. Molecular Plant Pathology, 2003, 4(6): 487-500.

342. Huijsman C. Some data on the resistance against the potato root eelworm. {Heterodera rostochiensis Woll.) in Solanum kurtzianum. Euphytica, 1960 (9): 158-190.

343. Huijsman C. Reports of tests on S. acaule, S. gourlayi, S. oplocense, S. sparsipilum and S. spegazzinii. In Genebank Informationdiens Braunschweig. 1978.

344. Hutton E. Possible genotypes conditioning virus resistance in the potato and tomato. J. Aust. Inst. Agric. Sei., 1951 (17): 132-138.

345. International Potato Center. Potatoes for the Developing World. Lima. Peru. 1984.

346. Jackson S., Hanneman R. Crossability between cultivated and wild tuber-and non-tuber-bearing Solanums. Euphytica, 1999 (109):51-67.

347. Jacobs J., Eck H., Horsman K. et al Mapping of resistance to the potato cyst nematode Globodera rostochiensis from the wild potato species Solanum vernei. Molec. Breed. 1996 (2): 51-60.

348. Jacobs M., Smulders M., van den Berg R. et al. What's in a name: Genetic structure in Solanum section Petota studied using population-genetic tools. BMC Evolutionary Biology, 2011 (11): 42.

349. Jacobs M., Vosman B., Vleeshouwers V. et al. A novel approach to locate Phytophthora infestans resistance genes on the potato genetic map. Theor. Appl. Genet., 2010 (120):785-796.

350. Jansky S. Overcoming hybridization barriers in potato. Plant Breed. 2006 (125):1-12.

351. Jansky S., Jin L., Xie K. et al. Potato production and Breeding in China. Potato Research, 2009 (52): 57-65.

352. Jansky S., Simon R., Spooner D. A test of taxonomic predictivity: resistance to white mold in wild relatives of cultivated potato. Crop Science, 2006 (46):2561-2570.

353. Jansky S., Simon R., Spooner D. A test of taxonomic predictivity: resistance to early blight in wild relatives of cultivated potato. Phytopathology, 2008 (98): 680-687.

354. Janssen R., Bakker J., Gommers F. Mendelian proof for a gene-for-gene relationship between virulence of Globodera rostochiensis and the HI resistance gene in Solanum tuberosum ssp. andigena CPC 1673. Rev. Nematol., 199 (14): 213-219.

355. Jeffries C. Technical Guidelines for the Safe Movement of Germplasm, Potato. Rome: IPGRI, 1998. No 19.

356. Johnston S., Hanneman R. Support of the Endosperm Balance Number hypothesis utilizing some tuber-bearing Solanum species. Am. Potato J. 1980 (57): 7-14.

357. Johnston S., Hanneman R. Manipulations of endosperm balance number overcome crossing barriers between diploid Solanum species. Science. 1982 (217): 446-448.

358. Jones R., Charkowski A., Fribourg, C. et al. Potato Virus and Virus-like Diseases. In: Virus Diseases of Plants: Grape, Potato, and Wheat Image Collection and Teaching Resource CD-Rom. 2009. APS Press, St. Paul, MN 55121.

359. Jones P., Tylka G., Perry R. Hatching. In The Physiology and Biochemistry of Free-Living and Plant-Parasitic Nematodes (Perry, R.N. and Wright, D.J., eds), Oxford: CABI Publishing. 1998: 181-212.

360. Jones R. Strain group specific and virus specific hypersensitive reaction to infection with potyviruses in potato cultivars. Ann. Appl. Biol. 1990 (117): 93-105.

361. Judelson H., Randall Т. Families of repeated DNA in the oomycete Phytophthora infestans and their distribution within the genus. Genome. 1998 (41): 605-615.

362. Kamoun S. Nonhost resistance to Phytophthora'. novel prospects for a classical problem. Current Opinion in Plant Biology, 2001 (4): 295-300.

363. Kamoun S. Groovy times: Filamentous pathogen effectors revealed. Current Opinion in Plant Biology, 2007 (10): 358-365.

364. Kamoun S. Molecular Genetics of Pathogenic Oomycetes. Eukaryotic Cell. 2003: 191199.

365. Kamoun S., Huitema E., Vleeshouwers V. Resistance to oomycetes: A general role for the hypersensitive response. Trends Pant Sci., 1999 (4): 196-200.

366. Kang В., Yeam I., Jahn M. Genetics of plant virus resistance. Annu. Rev. Phytopathol., 2005 (43):581—621

367. Kasai K., Morikawa Y., Sorri V. et al. Development of SCAR markers to the PVY resistance gene Ry adg based on a common feature of plant disease resistance genes. Genome, 2000 (43): 1-8.

368. Kerlan C. Evolution in potato virus Y: from recombination in the genome to emergence and spreading of variants. 12th EAPR Virology Section Meeting, Rennes, France, 2004.

369. Khavkin E., Sokolova E., Beketova M. et al. Potato resistance to late blight as related to the R1 and R3 genes introgressed from Solanum demissum./ PPO-Special Report , 2010 (14): 231 -238.

370. Kirch H., Uhrig H., Lottspeich F. et al. Characterization of proteins associated with self-incompatibility in Solanum tuberosum. Theor. Appl. Genet., 1989 (78): 581-588.

371. Koopel M., Tsahkna A. Breeding of potato varieties for quality and disease resistance at Jogeva Plant Breeding Institute. В сб.: Материалы межд. науч.-практ. конф., посвящ. 75-тилетию Института картофелеводства НАН Беларуси. Минск, 2003: 70-76.

372. Kotzampigikis A., Hristova D., Tasheva-Terzieva Е. Virus-vector relationship between potato virus Y- PVY and Myzus persicae Sulzer. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 2009. 15 (6): 557-565.

373. Kreike C., Kok-Westeneng A., Vinke J. et al. Mapping of QTLs involved in nematode resistance, tuber yield and root development in Solanum sp. Theor. Appl. Gen., 1996 (92): 463470.

374. Kuang H., Wei F., Marano M. et al. The R1 resistance gene cluster contains three groups of independently evolving, type I R1 homologues and shows substantial structural variation among haplotypes of Solanum demissum. Plant Journal, 2005 (44):37-51.

375. Kuhl J., Hanneman R., Havey M. Characterization and mapping of Rpil, a late blight resistance locus from diploid (1EBN) Mexican Solanum pinnatisectum. Mol. Genet. Genomics, 2001 (265):977-985.

376. Kwang-Ryong Jo, Arens M., Kim T-Y. et al. Mapping of the S. demissum late blight resistance gene R8 to a new locus on chromosome IX. Theor Appl Genet., 2011, 123(8): 13311340.

377. Laidlaw W. A method for the detection of the resting sporangia of potato wart disease (Synchytrium endobioticum) in the soil of old outbreak sites. Potato Research, 1985 (28): 223232.

378. Landeo J. Durable resistance: Quantitative\qualitative resistance. In: Late Blight: Managing the Global Threat. Proc. the Global Initiative on Late Blight Conference, Hamburg, Germany, 2002: 29-36.

379. Le Romancer M., Kerlan C., Nedellec M. Biological characterization of various geographical isolates of potato virus Y inducing superficial necrosis on potato tubers. Plant Pathology, 1994 (43): 138-144.

380. Leonards-Schippers C., Gieffers W., Salamini F. et al. The R1 gene conferring race specific resistance to Phytophthora infestans in potato is located on potato chromosome V. Mol. Gen. Genet. 1992 (233):278-283.

381. Leonards-Schippers C., Gieffers W., Schafer-Pregl R. et al. Quantitative resistance to Phytophthora infestans in potato: A case study for QTL mapping in an allogamous plant species. Genetics, 1993 (137): 67-77.

382. Li X., Van Eck H., Van der Voort J. et al. Autotetraploids and genetic mapping using common AFLP markers: the R2 allele conferring resistance to Phytophthora infestans mapped on potato chromosome 4. Theor. Appl. Genet. , 1998 (96):1121-1128.

383. Lilley C., Atkinson H., Urwin P. Pathogene profile. Molecular aspects of cist nematodes. Molecular Plant pathology, 2005(6): 577-588.

384. Lilley C., Devlin P., Urwin P. Parasitic Nematodes, Proteinases and Transgenic Plants. Parasitology Today, 1999. 15 (10): 414-417.

385. Liu Z., Halterman D. Identification and characterization of /?5-ortologous genes from the late blight resistant wild potato species Solanum verrucosum. Physiological and Molecular Plant Pathology, 2006 (69): 230-239.

386. Loebenstein G., Berger P., Brunt A. et al. Virus and virus-like diseases of potatoes and production of seed-potatoes. Dordrecht et al., 2000.

387. Lokossou A., Park T., van Arkel G. et al. Exploiting knowledge of R/Avr genes to rapidly clone a New LZ-NBS-LRR family of late blight resistance genes from potato linkage group IV. Mol. Plant Microbe Interact., 2009 (22): 630-641.

388. Lokossou A., Rietman H., Wang M. Diversity, Distribution, and Evolution of Solanum bulbocastanum Late Blight Resistance Genes. MPMI, 2010. Vol 23 (9): 1206-1216

389. Longley A., Clark C. Chromosome behaviour and pollen production in the potato. J. Agric. Res. 1930.41: 867.

390. Lunden A. Undersokelset over reaksjon mot kreft (Synchytrium endobioticum) hos potet.-1950. Meld. Norges Landbrukshogskole, 137.

391. Major Potato Diseases, Insects, and Nematodes. International Potato Center, Peru, Lima, 1996.

392. Malcolmson J., Black W. New R-genes in Solanum demissum Lindl. and their complementary races of Phytophthora infestans (Mont.) de Bary. Euphytica, 1966 (15): 199-203.

393. Marczewski W., Hennig J., Gebhardt C. The potato virus S resistance gene Ns maps to potato chromosome VIII. Theor. Appl. Gen., 2002, (105): 564-567.

394. Masuelli R., Camadro E. Crossability relationships among wild potato species with different ploidies and Endosperm Balance Numbers (EBN). Euphytica. 1997 (94): 228-235.

395. Matsubayashi M. Phylogenetic relationships in the potato and its related species. Chromosome engineering in plants: genetics, breeding, evolution. Amsterdam, 1991: 93-118.

396. Maule A., Caranta C., Boulton M. Sources of natural resistance to plant viruses: status and prospects. Molec. Plant. Pathol. 2007. 8 (2): 223-231.

397. McGregor C., van Treuren, Hoekstra R. Analysis of the wild potato germplasm of the series Acaulia with AFLPs: implications for ex situ conservation. Theor. Appl. Gen., 2002 (104): 146-156.

398. McKee R. Identification of i?-genes in Solanum stoloniferum. Euphytica, 1962 (11): 4246.

399. Mestre P., Brigneti G., Durrant M. et al. Potato virus Y Nla protease activity is not sufficient for elicitation of ^-mediated disease resistance in potato. Plant Journal, 2003 (36):755-761.

400. Micheletto S., Boland R., Huarte M. Argentinian wild diploid Solanum species as sources of quantitative late blight resistance. Theor. Appl. Genet., 2000 (101): 902-906.

401. Michelmore R., Meyers B. Clusters of Resistance Genes in Plants Evolve by Divergent Selection and a Birth-and-Death Process. Genome Res., 1998 (8): 1113-1130.

402. Milbourne D., Meyer R., Collins A. et al. Isolation, characterisation and mapping of simple sequence repeat loci in potato. Mol. Gen. Genet., 1998, 259(3):233-245.

403. Milbourne D., Pande B., Bryan G. et al. In book: Genome Mapping and Molecular Breeding in Plants, Volume 3. Pulses, Sugar and Tuber Crops. 2007: 205-236.

404. Milczarek D., Flis B., Przetakiewicz A. Suitability of molecular markers for selection of potatoes resistant to Globodera spp. Am. J. Pot. Res., 2011 (88): 245-255.

405. Mills W. Inheritance of immunity to potato virus X. Am. Potato J., 1965 (42): 294-295.

406. Minnis S., Haydock P., Ibrahim S. et al. Potato cyst nematodes in England and Wales— occurrence and distribution. Ann. Appl. Biol., 2002 (140): 187-195.

407. Moreau L., Charcosset A., Hospital F. et al. Marker-Assisted Selection Efficiency in Populations of Finite Size. Genetics, 1998 (148): 1353-1365

408. Morozov S., Dolja V., Atabekov G. Probable reassortment of genomic elements among elongated RNA-containing plant viruses. J. Mol. Evol., 1989 (29): 52-62.

409. Morozov S., Miroslinichenko N., Fedorkin O. et al. Expression strategy of the potato virus X triple gene block. Journal of General Virology, 1991 (72): 2039-2042.

410. Mosquera T., Fernandez C., Martinez L. Genetics of the Solanum tuberosum pathogen resistance. State of research. Agronomía Colombiana, 2008, 26(1): 7-15.

411. Muñoz F., Plaisted R., Thurston H. Resistance to potato virus Y in Solanum tuberosum subsp. andigena. Am. Potato J., 1975 (52): 107-115.

412. Murphy A., Jong H., Proudfoot K. A multiple disease resistant potato clone developed with classical breeding methodology. Can. J. Plant Pathol. 1999 (21): 207-212.

413. Naess S., Bradeen J., Wielgus S. et al. Resistance to late blight in Solanum bulbocastanum is mapped to chromosome 8. Theor. Appl. Genet., 2000 (101): 697-704.

414. Niebel A., Heungens K., Barthels N. et al. Characterization of a pathogen-induced potato catalase and its systemic expression upon nematode and bacterial infection. MOI. Plant-Microbe Interact., 1995 (8): 371-378.

415. Niederhauser J. Cervantes J., Servin L. Late blight in Mexico and its implications. Phytopathology, 1954 (44): 406-408.

416. Niewohner J., Salamini F., Gebhardt C. Development of PCR assays diagnostic for RFLP marker alleles closely linked to alleles Grol and HI, conferring resistance to the root cyst nematode Globodera rostochiensis in potato. Mol. Breed., 1995 (1): 67-78.

417. Novy R., Hanneman R. Hybridization between gr. Tuberosum haploids and 1EBN wild potato species. Am. Potato J., 1991 (68): 151-169.

418. Nunziata A., Ruggieri V., Greco N. et al. Genetic Diversity within Wild Potato Species (.Solanum spp.) Revealed by AFLP and SCAR Markers. American Journal of Plant Sciences, 2010(1): 95-103.

419. Oberhagemann P., Chatot-Balandras C., Schafer-Pregl R. et al. A genetic analysis of quantitative resistance to late blight in potato: towards marker-assisted selection. Мої. Breed. 1999 (5):399—415.

420. Ochoa C. The Potatoes of South America: Bolivia. Cambridge University Press. 1990.

421. Ochoa C. The Potatoes of South America: Peru. International Potato Center. 2004.

422. Oerke E., Dehne H., Schonbeck F. et al. Crop production and crop protection: estimated losses in major food and cash crops. Elsevier Science B.V, Amsterdam 1994.

423. OEPP/EPPO. Data sheets on quarantine organisms. No. 125, Globodera rostochiensis. Bulletin OEPP/EPPO 1981, 11 (1).

424. Okada K., Clausen A. Solanum incamayoense: A new tuberous species of Argentina. Am. Potato J., 1983 (60): 433-439.

425. Oosumi T., Rockhold D., Maccree M. et al. Gene Rpi-btl from Solanum bulbocastanum Confers Resistance to Late Blight in Transgenic Potatoes. Am. J. Pot Res. 2009 (86): 456-465.

426. Otulak K., Garbaczewska G. Ultrastructural events during hypersensitive response of potato cv. Rywal infected with necrotic strains of potato virus Y. Acta Physiologiae Plantarum. 2010. 32 (44): 635-644.

427. Paal J. , Henselewski H. , Muth J. et al. Molecular cloning of the potato Grol-4 gene conferring resistance to pathotype Rol of the root cyst nematode Globodera rostochiensis, based on a candidate gene approach. Plant J., 2004 (38): 285 297

428. Pankin A. , Sokolova E., Rogozina E. et al. Searching among wild Solanum species for homologues of RB/Rpi-blbl gene conferring durable late blight resistance. PPO-Special Report, 2010 (14): 277-284.

429. Pankin A., Sokolova E., Rogozina E. et al. Allele mining in the gene pool of wild Solanum species for homologues of late blight resistance gene RB/Rpi-blbl. Plant Genetic Resources: Characterization and Utilization, 2011. 9(2): 305-308.

430. Park T.-H., Gros A., Sikkema A. et al. The late blight resistance locus Rpi-blb3 from Solanum bulbocastanum belongs to a major late blight R gene cluster on chromosome 4 of potato. Мої. Plant. Microbe Interact. 2005 (18):722-729 (a).

431. Park T.-H., Vleeshouwers V., Hutten R. et al. High resolution mapping and analysis of the resistance locus Rpi-abpt against Phytophthora infestans in potato. Mol. Breed. 2005 (16):33—43 (b).

432. Park T.-H., Vleeshouwers V., Huigen D. et al. Characterization and high-resolution mapping of a late bight resistance locus similar to R2 in potato. Theor. Appl. Genet., 2005 (111): 591-597 (c).

433. Park T-Ho., Foster S., Brigneti G. et al. Two distinct potato late blight resistance genes from Solanum berthaultii are located on chromosome 10. Euphytica, 2009 (165):269-278.

434. Pel M., Foster S., Park T. et al. Mapping and cloning of late blight resistance gene from Solanum venturii using an interspecific candidate gene approach. Mol. Plant-Micr. interact, 2009 (22): 601-615.

435. Phillips M., Dale M. Assessing seedling progenies for resistance to the white potato cyst nematode. J. Agric. Sci., 1982 (99): 67-70.

436. Pineda O., Bonierbale M., Plaisted R. et al. Identification of RFLP markers linked to the HI gene conferring resistance to the potato cyst nematode Globodera rostochiensis. Genome, 1993 (36): 152- 156

437. Plaisted R., Harrison M., Peterson L. A genetic model to describe the inheritance of resistance to type golden nematode Heterodera rostochiensis Woll. found in Solanum vernei. Am. Potato J., 1962 (39): 418-435.

438. Plaisted R., Hoopes R. The past record and future prospects for the use of exotic potato germplasm. Am. Pot. J., 1989 (66): 603-627.

439. Plaisted R., Tingey W., Steffens C. The germplasm release of NYL 235-4, a clone with resistance to the Colorado potato beetle. Am Potato J., 1992 (69):843-846.

440. Prada D. Molecular population genetics and agronomic alleles in seed banks: searching for a needle in a haystack? Journal of Experimental Botany. 2009 (60): 2541-2552.

441. Provan J., Powell W., Dewar H. et al. An extreme cytoplasmic bottleneck in the modern European cultivated potato (Solanum tuberosum) is not reflected in decreased levels of nuclear diversity. Proc. R. Soc. Lond. B. 1999 (266): 633-639.

442. Querci M., Baulcombe D., Goldbach et al. Analysis of the Resistance-Breaking Determinants of Potato Virus X (PVX) Strain HB on Different Genotypes Expressing Extreme Resistance to PVX. Phytopathology, 1995 (85): 1003-1010.

443. Rauscher G., Smart C., Simko I. et al. Characterization and mapping of Rpi-ber, a novel potato late blight resistance gene from Solanum berthaultii. Theor. Appl. Genet., 2006 (112):674—687.

444. Rio A., Bamberg J. RAPD markers efficiently distinguish heterogenous populations of wild potato {Solanum). Genetic Resources and Crop Evolution, 2000 (47): 115-121.

445. Rio A., Bamberg J. Geographical Parameters and Proximity to Related Species Predict Genetic Variation in the Inbred Potato Species Solanum verrucosum Schlechtd. Crop Science, 2004 (44): 1170-1177.

446. Rios D., Ghislain M., Rodriguez F. et al. What Is the Origin of the European Potato? Evidence from Canary Island Landraces. Crop Science, 2007 (47): 1271-1280.

447. Ritter E., Debener T., Barone A. et al. RFLP mapping on potato chromosomes of two genes controlling extreme resistance to potato virus X (PVX). Molecular and General Genetics, 1991 (227): 81-85.

448. Rivera-Pena A. Wild tuber-bearing species of Solanum and incidence of Phytophthora infestans (Mont.) de Bary on the Western slopes of the volcano Nevado de Toluca. 5. Type of resistance to P. infestans. Potato Research, 1990 (33): 479-486

449. Rogozina E., Kuznetsova M., Patrikeyeva M. et al. Late blight-resistant tuber-bearing Solanum species in field and laboratory trials. PPO-Special Report, 2010 (14): 239-246.

450. Rogozina E., Patrikeyeva M. Resistance of potato tubers to Phytophthora infestans evaluated in laboratory tests and field trials. Plant Breeding and Seed Science. Poland. Radzikow. 2004 (50): 147-154.

451. Ross H. Der Vererbung der Imunität gegen das Xßvirus in tetraploidem Solanum acaule// In: Proceed, of the 9th Internat. Congr. of Genetics. Caryologia, Bellagio, 1954 (6): 1128-1132.

452. Ross H. Inheritance of extreme resistance to virus Y in Solanum stoloniferum and its hybrids with Solanum tuberosum. Proc. 3-rd Conf. Potato Virus Diseases, Lisse-Wageningen, 1958:204.

453. Ross H. The use of wild Solanum species in German potato breeding of the past and today. Am. Pot. J., 1966 (43): 63-80.

454. Ross H. Uber die Vererbung der Resistenz gegen den Kartoffelnematoden (Heterodera rostochiensis Woll.) in Kreuzungen von S. famatinae Bitt. and Wittm. mit S. tuberosum and S. chacoense Bitt. Der Zuchter. 1966 (32): 74-80.

455. Ruiz de Arcaute, Isla S., Carrasco A. New strategies on breeding for PVY resistance. In: Abstracts of Papers and Posters of 15th EAPR Conf. Potato Today and Tomorrow, Hamburg, 2002:176.

456. Ruiz de Galarreta, Carrasco A., Salazar A. et al. Wild Solanum species as resistance sources against different pathogens of potato. Potato Research, 1998 (41): 57-68.

457. Salaman R. Abnormal segregation in families arising from the cross S. utile xS. tuberosum. Z. Induct. Abstammungs-und Verebungslehre. Suppl. 1928. Bd.2, 1230.

458. Salaman R. 1949. The history and social influence of the potato. 2nd edition, edited by J.G. Hawkes 1985. Cambridge University Press.

459. Salaman R., Lesley J. Genetic studies in potatoes; the inheritance of immunity to wart disease. J. Genet., 1923 (13): 177.

460. Salazar L. Main Virus Diseases of Potato. In:International Potato Center (CIP). Control of Virus and Virus-like Diseases of Potato and Sweet Potato. Report of the 3 Planning Conference, Lima, Peru, 20-22 Nov. 1989. Lima, CIP. 1990: 9-12.

461. Salazar L. (Apr 2006) Virus Diseases of Potatoes. In: eLS. John Wiley & Sons Ltd, Chichester, http://www.els.net

462. Santala J., Samuilova O., Hannukkala A. et al. Detection, distribution and control of Potato mop-top virus, a soil-borne virus, in northern Europe. Ann Appl Biol., 2010 (157): 163178.

463. Sato M., Nishikawa K., Komura K. et al. Potato virus Y resistance gene, Rychc, mapped to the distal end of potato chromosome 9. Euphytica, 2006 (149): 367-372.

464. Schnell L. A study of meiosis in the microsporocytes of interspecific hybrids of Solanum demissum xSolanum tuberosum carried through four backcrosses. J. Agric. Res., 1948 (76), no 9/10:185.

465. Schornack S., Huitema E., Cano L. et al. Ten things to know about oomycete effectors. Molecular Plant Pathology, 2009. 10(6): 795-803.

466. Schiiler K. Institut für Pflanzengenetik und Kulturpflanzenforschung Gatersleben-Genbank Außenstelle Nord. Groß Lüsewitz. 1994.

467. Scurrah M., Carolina C., Chumbiauca S. et al. Hybridization between wild and cultivated potato species in the Peruvian Andes and biosafety implications for deployment of GM potatoes. Euphytica, 2008 (164): 881-892.

468. Scurrah M., Plaisted R., Harrison M. Resistance to the potato nematode Heterodera rostochiensis Woll. in clones derived from Solanum vernei. Am. Potato J., 1973 (50): 9-18.

469. Shaw D., Wattier R. Evolution of Phytophthora infestans: A global overview. In: Late Blight: Managing the Global Threat. Proceedings of the Global Initiative on Late Blight Conference, Hamburg, Germany, 2002: 23-27.

470. Simko I., Jansky S., Stephenson S. et al. Genetics of Resistance to Pests and Disease. In: Potato Biology and Biotechnology Advances and Perspectives. Oxford, UK. 2007: 117-155.

471. Singh M., Singh R., Somerville T. Evaluation of tuber-beating Solanum species for symptomology, as diagnostic hosts and sources of immunity to potato virus Y necrotic strain (PVYn). Am. Pot. J., 1994 (71): 567-579.

472. Singsit C., Hanneman R. Rescuing abortive inter-EBN potato hybrids through double pollinations and embryo culture. Plant Cell Rep., 1991 (9): 475-478.

473. Skryabin K., Kraev A., Morozov Yu. et al. The nucleotide sequence of potato virus X RNA. Nucl. Acids Res., 1988 (16):10929-10930.

474. Sliwka J. Genetic factors encoding resistance to late blight caused by Phytophthora infestans (Mont.) de Bary on the potato genetic map. Cellular &Molecular Biology Letters. 2004 (9): 855-867.

475. Sliwka J., Jakuczun H., Lebecka R. et al. A novel late blight resistance gene Rpi-phul mapped to potato chromosome IX is not related to long vegetation period. Theor. Appl. Genet. , 2006 (113):685—695

476. Sliwka J., Jakuczun H., Lebecka R. et al.Tagging QTLs for late blight resistance and plant maturity from diploid wild relatives in a cultivated potato {Solanum tuberosum) background Theor. Appl. Genet., 2007 (115): 101-112.

477. Sliwka J., Jakuczun H., Chmielarz M. et al. A resistance gene against potato late blight originating from Solanum x michoacanum maps to potato chromosome VII. Theor Appl Genet. , 2012.124(2): 397-406

478. Smilde W., Brigneti G., Jagger L. et al. Solanum mochiquense chromosome IX carries a novel late blight resistance gene Rpi-mocl. Theor. Appl. Genet., 2005 (110):252-258.

479. Smith H. Chromosome counts in the varieties of S. tuberosum and allied wild species. Genetics, 1927 (12): 84.

480. Smith K. On the composite nature of certain potato virus diseases of the mosaic group as revealed by the use of plant indicators. Proc London B. 1931 (109): 251-267.

481. Sokolova E., Pankin A., Beketova M. et al. SCAR markers of the i?-genes and germplasm of wild Solanum species for breeding late blight-resistant potato cultivars Plant Genetic Resources: Characterization and Utilization, 2011. 9(2): 309-312.

482. Solomon-Blackburn R., Barker H. Breeding virus resistant potatoes {Solanum tuberosum): a review of traditional and molecular approaches. Heredity, 2001(86): 17-35 (a).

483. Solomon-Blackburn R., Barker H. A review of host major-gene resistance to potato viruses X, Y, A and V in potato: genes, genetics and mapped locations. Heredity, 2001 (86): 8-16(b).

484. Song J., Bradeen J., Naess S. et al. Gene RB cloned from Solanum bulbocastanum confers broad spectrum resistance to potato late blight PNAS.2003. V.100 (16): 9128-9133.

485. Song Y.-S., Heptin G., Schweizer G. et al. Mapping of extreme resistance to PVY (Rysto) on chromosome XII using anther-culture-derived primary dihaploid potato lines. Theor. Appl. Genet., 2005 (111): 879-887.

486. Spooner D. DNA barcoding will frequently fail in complicated groups: an example in wild potatoes. American Journal of Botany, 2009. 96(6): 1177-1189.

487. Spooner D., Jansky S., Simon R. Tests of Taxonomic and Biogeographic Predictivity: Resistance to Disease and Insect Pests in Wild Relatives of Cultivated Potato. Crop Science, 2009 (49): 1367-1376.

488. Spooner D., Salas A. Structure, biosystematics and genetic resources. In Handbook of Potato, ptoduction, improvement and postharvest management, ed. By Gopal J., Khurana SMP. New York: The Haworth Press, 2006: 1-39.

489. Spooner D., Van den Berg R., Rodriguez A.et al. Wild potatoes {Solanum, section Petota) of North and Central America. Syst. Bot. Monogr., 2004 (68).

490. Stange C. Plant-virus interactions during the infective process. Cien. Inv. Agr., 2006. 33(1): 1-18.

491. Stewart H., Bradshaw J., Pande B. The effect of the presence of i?-genes for resistance to late blight {Phytophthora infestans) of potato {Solanum tuberosum) on the underlying level of fied resistance. Plant Pathol., 2003 (52): 193-198

492. Swiezynski K. M. Inheritance of resistance to viruses. Potato genetics, 1994: 229-363.

493. Tan M., Hutten R., Celis C. et al. The Rpi-mcdl Locus from Solanum microdontum Involved in Resistance to Phytophthora infestans, Causing a Delay in Infection, Maps on Potato Chromosome 4 in a Cluster of NBS-LRR Genes. MPMI. 2008 (21): 909-918.

494. Tan M., Hutten R., Visser R. et al. The effect of pyramiding Phytophthora infestans resistance genes Rpi-mcdl and Rpi-ber in potato. Theor. Appl. Genet., 2010 (121): 117—125.

495. Tanksley S., Ganal M., Prince J. et al. High density molecular linkage maps of the tomato and potato genomes. Genetics, 1992, 132(4):1141-1160.

496. The potato Genome Sequencing Consortium. Genome sequence and analysis of the tuber crop potato. Nature, 2011 (475): 189-197.

497. Tommiska T., Hämäläinen J., Watanabe K. et al. Mapping of gene Nxp)m that controls hypersensitive resistance to potato virus X in Solanum phureja IvP35. Theor. Appl. Genet., 1998 (9): 840-843.

498. Toxopeus H., Huijsman C. Genotypical background of resistance Heterodera rostochiensis in Solanum tuberosum ssp. andigenum. Nature, 1952 (170): 1016.

499. Trognitz В. Inheritance of resistance in potato to lesion expansion and sporulation by Phytophthora infestans. Plant Pathology, 1998 (47): 712-722.

500. Trognitz F„ Manosalva P., Giysin R. et al. Plant defense genes associated with quantitative resistance to potato late blight in Solanum phureja^S. tuberosum hybrids. Mol. Plant-Micr. Interact. 2002. 15 (6):587-597.

501. Turkensteen L., Flier W. Late blight: its global status in 2002 and beyond. Proc. of the Global Initiative on Late Blight Conference. Hamburg, 2002:1-9.

502. Turner S. New sources of resistance to potato cyst-nematodes in the Commonwealth Potato Collection. Euphytica, 1989 (42): 45 -153.

503. Uhrig H., Wenzel G. Solanum gourlayi Hawkes as a source of resistance against the white cyst nematode Globodera pallida Z. Pflanzenzuchtung. 1981 (86): 148-157.

504. Valkonen J. Natural genes and mechanisms for resistance to viruses in cultivated and wild potato species. Plant Breed. 1994 (12): 1-16.

505. Valkonen J., Brigneti G., Pehu E. Resistance to Myzuspersicae (Suls.) in wild potatoes of the series Etuberosa. Acta Agric. Scand., 1992 (42): 118-127.

506. Valkonen J., Jones R., Slak S. et al. Resistance specificities to viruses in potato: Standardization of nomenclature. Plant Breed., 1996 (115): 433-438.

507. Valkonen J., Slack S., Plaisted R. et al. Extreme resistance is epistatic to hypersensitive resistance to Potato virus Y° in a Solanum tuberosum subsp. andigena-derived potato genotype. Plant Dis., 1994 (78): 1177-1180.

508. Van den Berg R., Miller J., Ugarte M. et al. Collapse of morphological species in the wild potato Solano brevicaule complex (Solanaceae: sect. Petota). American Journal of Botany, 1998. 85(1): 92-109.

509. Van der Hoorn R., Kamoun S. From Guard to Decoy: A New Model for Perception of Plant Pathogen Effectors. The Plant Cell, 2008 (20): 2009-2017.

510. Van der Lee T., Robold A., Testa A. et al. Mapping of Avirulence Genes in Phytophthora infestans With Amplified Fragment Length Polymorphism Markers Selected by Bulked Segregant Analysis. Genetics, 2001 (157): 949-956.

511. Van der Voort J., Wolters P., Folkertsma R. et al. Mapping of the cyst nematode resistance locus Gpa 2 in potato using a strategy based on comigrating AFLP-markers. Theor. Appl. Genet., 1997 (95): 874-880.

512. Van der Vossen E., Gros J., Sikkema A. et al. The Rpi-blb2 gene from Solanum bulbocastanum is an Mi-1 gene homolog conferring broad-spectrum late blight resistance in potato. Plant Journal, 2005 (44):208-222.

513. Van der Vossen E., Rouppe van der Voort J., Kanyuca K. et al. Homologues of a single resistance gene cluster in potato confers resistance to distinct pathogens: a virus and a nematode. Plant J., 2000 (23): 567-576.

514. Van Soest L. Evaluation and distribution of important properties in the GermanNetherlands potato collection. Potato Research. 1983 (26): 109-121.

515. Van Soest L., Schöber B., Tazelaar M. Resistance to Phytophthora infestans in tuber-bearing species of Solanum and its geographical distribution. Potato Research, 1984 (27):393-411.

516. Verzaux E. Resistance and susceptibility to late blight in Solanum: gene mapping, cloning and stacking. Thesis, Wageningen University, Wageningen, NL. 2010.

517. Villamon F., Spooner D., Orrillo M. Late light resistance linkages in a novel cross of the wild potato specis Solanum paucssectum (series Piurana). Theor. Appl. Genet. 2005 (111): 1201-1214.

518. Visker M., Keizer L., van Eck H. et al. Can the QTL for late blight resistance on potato chromosome 5 be attributed to foliage maturity type? Theor. Appl. Genet., 2003 (106):317—325.

519. Vleeshouwers V., Rietman H., Krenek P. et al. Effector genomics accelerates discovery and functional profiling of potato disease resistance and Phytophthora infestans avirulence genes. 2008. PLoS ONE 3, e2875.

520. Vleeshouwers V., van Dooijeweert W., Govers F. et al. The hypersensitive response is associated with host and nonhost resistance to Phytophthora infestans. Planta, 2000 (210): 853864

521. Wang M., Allefs S., van den Berg R. et al. Allele mining in Solanum: conserved homologues of Rpi-blbl are identified in Solanum stoloniferum. Theor. Appl. Genet., 2008 (116):933—943

522. Was M., Dziewonska M., Ostrowska K. Further characteristics of reaction to potato virus M (PVM) in hybrids between Solanum gourlayi Hawk, and S. tuberosum. Plant Virol., Brno, 1981: 201-203.

523. Watanabe K., Orrillo M., Vega S. et al. Overcoming crossing barriers between nontuber-bearing and tuber-bearing Solanum species: towards potato germplasm enhancement with a broad spectrum of solanaceous genetic resources. Genome, 1995 (38): 27-35.

524. Whitham S., Dinesh-Kumar S., Choi D. et al. The product of the tobacco mosaic virus resistance gene N: similarity to Toll and the interleukin-1 receptor. Plant Cell., 1994 (78):1101-1115.

525. Williamson V., Hussey R. Nematode pathogenesis and resistance in plants. Plant Cell., 1996 (8): 1735—1745.

526. Witek K., Strzelczyk-Zyta D., Hennig J. et al. A multiplex PCR approach to simultaneously genotype potato towards the resistance alleles Ry-fsto and Ns. Molecular Breeding, 2006 (18): 273-275

527. Yang Y., Ding B., Baulcombe D. Cell-to-cell movement of the 25K protein of potato virus X is regulated by three other viral proteins. MPMI. 2000. V.13 (6): 599-605.

528. Zadoks J. The Potato Murrain on the European Continent and the Revolutions of 1848. Potato Research, 2008 (51): 5-45.

529. Zimnoch-Guzowska E., Flis B. Evaluation of resistance to Phytophthora infestans: A survey. Late Blight: Managing the Global Threat. Hamburg. 2002: 37-47.

530. Серия Вид Год описания * Плоид-ность, 2 n Страна произрастания Номер образца по каталогу ВИР1 2 л j 4 5 6

531. Verrucosa Buk. S verrucosum Schlechtd. 1841 24 Мексика 4220,21695,22574, 23015, 23760, 24312.24313,24427

532. Demissa Buk. S brachycarpum Corr. 1952 72 Мексика 2830, 23140, 24192, 24193, 24194,24196, 24362

533. S demissum Lindl. 1848 72 Мексика, Гватемала 15173, 18521, 19997, 19998, 18521,21371,23306, 23315, 23316,20000,21359

534. S hougasu Corr. 1958 72 Мексика 8818.24226, 24389,1.ngipedicellata Buk. S fendleri A. Gray 1856 48 США Мексика 5671, 5747, 5751, 12158, 18242, 18243,20011,21391, 22947, 23841,24218, 24221.

535. S hjertingu Hawk. 1963 48 Мексика 5338, 15194, 19276,21407, 21408,21409, 23366, 24223, 24387.

536. S papita Rydb. 1924 48 Мексика 15240, 16889, 18909, 24417

537. S polytrichon Rydb. 1924 48 Мексика 7423,7426, 8815, 16905, 18141,20086, 20932,21587, 23555,23556,23559,23561, 24298, 24410, 24411,24463

538. S stolomferum Schlechtd. 1833 48 Мексика 2534, 2536,3335,3336, 3360, 3533, 8416, 8475, 17011, 17152, 18925, 19196, 20106, 20994,21547,21616, 21618,21622, 23646,23652, 24263, 24420

539. Borealia Corr. S wightianum Rydb. 1924 48 США Мексика 24250

540. Polyadenia Buk S polyademum Greenm. 1903 24 Мексика 23546,23547, 23553, 24408

541. Trifida Corr trifldum Cnrr J -- 1950 24 ЛЛвіу-^ііч-о 1 Т П ІХС4 24258, 24309, 24423, 24424

542. Pinnatisecta Rydb. S brachistotrichum (Bitt.) Rydb. 1924 24 Мексика 21254, 22919, 23196, 23200, 23201,24197, 24369, 24370

543. S jamesu Torr. 1828 24, 36 США Мексика 9155, 15203,21456, 22589, 22619, 23397, 23398, 23399, 23400, 23843, 24229, 24395, 24396, 24397

544. S nayantense (Bitt.) Rydb. 1924 ? Мексика 23907, 23908

545. S pinnatisectum Dun. 1852 24 Мексика 4213,4459,9152, 15254, 16901, 16902, 19157, 19327, 19328,20977,21954,21955, 22617,23568,23570, 24239, 24243,24414, 24415

546. S stenophyllidium Bitt. 1913 24 Мексика 18429,24255

547. S tarnu Hawkes et Hjerting 1988 24 Мексика 23936, 23937, 24982

548. Cardiophylla Buk. S cardiophyllum Lindl. 1848 24,36 Мексика 3319, 4464, 16827, 16828, 18224, 19061, 19257, 21300,21302,21836, 22684, 23030, 23277, 23278, 23279, 24203,24375

549. S ehrenbergu (Bitt.) Rydb. 1924 24 Мексика 18086, 18224, 18225,21301, 23276, 24373, 24572

550. Bulbocastana Rydb S bulbocastanum Dun. 1813 24, 36 Мексика Гватемала 19981,21266,21268,21274, 23165,23169, 23174, 23181

551. Piurana Hawkes S acroglossum Juz. 1937 24 Перу 24526

552. S paucissectum Ochoa 1960 24 Перу 24946,24947

553. S piurae Bitt. 1916 24 Перу 24954

554. S solisu Hawkes 1944 24? Эквадор 245391 2 3 4 5 6

555. Minutifoliola Corr. S cajamarquense Ochoa 1959 ? Перу 24565

556. Conicibaccata Bitt. S huancabambense Ochoa 1959 24 Перу 24914,24915,24916

557. S paucijugum Bitt. 1912 48 Эквадор 23915,24616

558. S violaceimarmoratum Bitt. 1912 24 Боливия 16601,24593

559. Commersoniana Buk. S. commersonii Dun. ex Poir. in Lam. 1814 24,36 Парагвай Аргентина Уругвай Бразилия 18975,18978,21355

560. Acaulia Juz. S acaule Bitt. 1912 48 Перу Боливия Аргентина 4253,4263, 7385, 9784, 9787, 9789, 9794, 9795, 12257, 18004, 18021, 18522, 20778,21209,21211,21213, 21221,21228,21233,23004

561. S albicans Ochoa 1983 72 Перу 9813,9814

562. Megistacroloba Card, et Hawkes S bohviense Dun.in DC 1852 24 Боливия Аргентина 19809,23188, 23189

563. S dolichocremastrum Bitt. 1913 24 Перу 24571

564. S megistacrolobum Bitt. 1912 24 Перу Боливия Аргентина 12516, 12534, 23459, 24289, 24291

565. S sogarandinum Ochoa 1954 24 Перу 21601,24538

566. Cuneolata Hawkes S infundibuliforme Phil. 1891 24 Боливия, Чили, Аргентина 11393, 12424,12449

567. Bukasoviana Gorbat. Angustisecta Buk. et Gorbat. S acroscopicum Ochoa 1953 24 Перу 23870,2^527

568. S spegazzinu Bitt. 1913 24 Аргентина 7405,9746, 11422, 11975, 12619, 12688, 15278, 15280, 19182, 20999,21610,21613, 24307, 24308

569. S vidaurrei Card 1956 24 Боливия Аргентина 21027, 22754, 229611.tisecta Buk. et Gorbat S ambosmum Ochoa 1974 24 Перу 9700, 24533

570. S x rechei Hawkes et Hjerting 1963 36 Аргентина 24033,24596

571. S sparsipilum (Bitt.) Juz. et Buk. 1937 24 Перу Боливия 8812,9798,9808, 10705, 11282, 12204, 19178, 19343, 19344, 20096, 20694, 20813

572. S x sucrense Hawkes 1944 48 Боливия 9753, 18531,20114, 20115, 21627,22970

573. Regularifolia Gorbat. 5 x doddsu Corr. 1961 24 Боливия 18240, 19817, 20704, 20709

574. S famatmae Bitt. et Wittm. 1914 24 Боливия Аргентина 4439,9748, 23060,23061

575. S hondelmannu Hawkes et Hjerting 1985 24 Боливия 20023,20160, 20161,20162, 20415,20723,20768,21410, 21411,23360

576. S mcamayoense Okada et Clausen 1982 24 Аргентина 19825,21413,21444,21445, 227001 2 3 4 5 65. киПгшпит В ¡и. е1 1914 24 Аргентина 12464, 12465, 12469, 12477,

577. Wittrn. 12494, 16862, 19286, 19288,20035,20040,21456,21465,21892,22714, 22715,23415,241705 тагтаьете Уагцав 1954 24 Перу 18500,246055 уегпе1 В ¡И. е1 WittIn. ех 1914 24 Аргентина 3392,5428, 10554, 1 1447,1. Engl. 20328, 22045

578. МиШсНввесЛа Вик. й 1963 24 Перу 180641. ОогЬа!:. 5 аЬапсауете ОсЬоа

579. ЪгеуюаЫе В10. 1912 24 Боливия 9705,21755,22675,231921. Аргентина

580. Аргентина 19144, 20924,21535,217565 ратразете Hawkes 1944 24 Перу 246155 ugentll На\¥кез е1 Окаёа 1988 48 Боливия 23491,23942

581. У^иИопа Вик. е! ОогЬа1. 1956 24 Боливия 18757, 19443, 19956,20408,5 а1апс1ше Саге). 21240,217159 /г\:/1 / На«'кев с! 1983 ¿.-г иилпопл ОЛ1 со ЛЛЛ1Л ллоо-1 ¿иио, ^ич 1 и, ¿иооч1. Hjerting

582. Иурасгаг1кгит В1и. 1912 24 Перу 245805 окас1ае Hawkes е1 1983 24 Боливия, 20171,20172, 20174, 20175,

583. ЬЦегйг^ Аргентина 20177, 209215 уе1агс1е1 ОсЬоа 1963 24 Перу 245915 уепШги На\¥кез е1 1960 24, 36 Аргентина 12659,21008, 245921. Hjerting 5 у^икогит (В1п.) Сагс1. 1945 24 Боливия 3954е1 Hawkes

584. Тагуепзт Согг Тагуегыа (Согг.) СогЬа!. 1944 24 Боливия 7642, 15302, 15303, 17498,5 /агуеюе На\¥кез Аргентина 22015,22018, 22962, 23034,23670,23672

585. ВеПЬаиШапа (Вик.) ОоЛш. 1944 24 Боливия 7635, 8511, 17365, 19244,

586. ЬепИаики НахукеБ 19965,20727, 23145,23147,23150, 23154, 24269, 24270

587. БтрПсюга (Вик.) 5 gandanllasll Сагс1. 1956 24 Боливия 20042,20698, 245761. ОогЬаГ. 5 т1сгос1опШт В1п 1912 24 Боливия 9726, 11417, 16799, 18126,

588. Аргентина 21500,23435,23436обозначены виды дикого картофеля, описанные во второй половине XX века

589. Название культуры Межвидовой гибрид картофеля

590. Номер по каталогу ВИР к-245193. Название донора 97-162-5

591. По какому признаку является донором

592. Устойчивость к фитофторозу ботвы

593. Каким методом, где и кем донор создан

594. Число генов, контролирующих признак, по которому донор создан

595. Горизонтальную устойчивость к фитофторозу контролируют полигены

596. Перечень положительных и отрицательных характеристик

597. Отрицательные: позднеспелость и поражаемость вирусными заболеваниями

598. Рекомендации по использованию донора в селекции

599. Следует использовать в селекции на устойчивость к фитофторозу, вовлекая в скрещивания со скороспелыми, устойчивыми к вирусным заболеваниям сортами

600. Название культуры Межвидовой гибрид картофеля

601. Номер по каталогу ВИР к-245233. Название донора 159-1

602. По какому признаку является донором

603. Устойчивость к фитофторозу ботвы

604. Каким методом, где и кем донор создан

605. Метод межвидовой гибридизации с последующим отбором. Гибридная формула: Г2 / {Рптегоза х (5. andigenum 1793 х 5. гуЫпи к-2890-4). х

606. Бита х 5. йШот/егит к-2490-5)} х С1Р-1035 /

607. ГНУ РФ ВИР, отдел генетических ресурсов картофеля, Рогозина Е.В.

608. Число генов, контролирующих признак, по которому донор создан

609. Горизонтальную устойчивость к фитофторозу контролируют полигены.

610. Перечень положительных и отрицательных характеристик

611. Положительные: среднеспелость, продуктивность 2,8-3,2 кг/м", устойчивость к вирусу У. Клубни красные, округло-овальные, глазки мелкие, мякоть желтая Отрицательные: мелкие клубни

612. Рекомендации по использованию донора в селекции

613. Следует использовать в селекции на устойчивость к фитофторозу, скрещивая с крупноклубневыми сортами картофеля

614. Номер по каталогу ВИР к-245181. Название донора 97-155-1

615. По какому признаку является донором

616. Устойчивость к фитофторозу ботвы, устойчивость к вирусу Y

617. Каким методом, где и кем донор создан

618. Горизонтальную устойчивость к фитофторозу контролируют полигены, устойчивость к вирусу Y один доминантный ген Перечень положительных и отрицательных характеристик

619. Рекомендуется использовать для создания сортов картофеля, устойчивых к фитофторозу и вирусу Y, скрещивая с устойчивыми к вирусам S, М сортами

620. Название культуры Межвидовой гибрид картофеля

621. Номер по каталогу ВИР к-245213 Название донора 90-7-74 1 lo какому признаку является донором

622. Устойчивость клубней к фитофторозу

623. Каким методом, где и кем донор создан

624. Метод межвидовой гибридизации с последующим отбором Гибриднаяформула {Primerosa х (S andigenum US-W 1793 х S rybinu k-2890-4). х (Sumaх 5 stolomferum k-2490-5)} x Ы035

625. ГНУ РФ ВИР, отдел генетических ресурсов картофеля1. Будин К 3 , Рогозина Е В

626. Число генов, контролирующих признак, по которому донор создан

627. Горизонтальную устойчивость к фитофторозу контролируют полигены

628. Перечень положительных и отрицательных характеристик

629. Положительные устойчивость к фитофторозу листьев. золотистой картофельной нематоде и вирусу Y Продуктивность 2.4 кг / м2 содержание крахмала 16 %, вкус удовлетворительный

630. Отрицательные позднеспелость, невысокая товарность (72 %) и масса клубня (76 г)

631. Рекомендации по использованию донора в селекции

632. Рекомендуется использовать для создания сортов картофеля устойчивых к фитофторозу, скрещивая с раннеспелыми сортами

633. Номер по каталогу ВИР к-245173. Название донора 97-159-3

634. По какому признаку является донором

635. Устойчивость к фитофторозу листьев и клубней, устойчивость к вирусу Y

636. Каким методом, где и кем донор создан

637. ГНУ РФ ВИР, отдел генетических ресурсов картофеля Будин К.З., Рогозина Е.В.

638. Число генов, контролирующих признак, по которому донор создан

639. Горизонтальную устойчивость к фитофторозу контролируют полигены, устойчивость к вирусу Y один доминантный ген

640. Перечень положительных и отрицательных характеристик

641. Рекомендации по использованию донора в селекции

642. Рекомендуется использовать для создания сортов картофеля, устойчивых к фитофторозу и вирусу Y, скрещивая с крупноклубневыми, устойчивыми к вирусам S, М сортами

643. Название культуры Межвидовой гибрид картофеля

644. Номер по каталогу ВИР к-245223. Название донора 99-6-10

645. По какому признаку является донором

646. Устойчивость к золотистой картофельной нематоде, патотип Ro 1

647. Каким методом, где и кем донор создан

648. Метод межвидовой гибридизации с последующим отбором. Гибридная формула: {F2 Wilja х (S. andigenum US-W 1793 х S. rybinii k-2890-4). x CIP-1039} x Hertha

649. ГНУ РФ ВИР, Рогозина Е.В., ГНУ ВИЗР, Маковская С.А.

650. Число генов, контролирующих признак, по которому донор создан

651. Устойчивость к нематоде контролируют полигены

652. Перечень положительных и отрицательных характеристик

653. Положительные: среднеспелость, продуктивность 2,8-2,9 кг/м", товарность 82 %, содержание крахмала 14-15 %, вкус хороший. Устойчивость к вирусу Y. Клубни белые, округло-овальные

654. Отрицательные: мелкие клубни (65 г), восприимчивость к ризоктониозу и парше

655. Рекомендации по использованию донора в селекции

656. Следует использовать для создания нематодоустойчивых сортов картофеля, вовлекая в скрещивания с крупноклубневыми сортами, устойчивыми к ризоктониозу и парше

657. Название культуры Межвидовой гибрид картофеля2. Номер по каталогу ВИР3. Название донора 99-6-1

658. По какому признаку является донором

659. Крайняя устойчивость (иммунитет) к вирусу Y

660. Каким методом, где и кем донор создан

661. Методом межвидовой гибридизации и отбора. Гибридная формула: Fl (90-6-2 х Hertha).

662. ГНУ РФ ВИР Е В Рогозина, ГНУ ВИЗР Л П Козчов, Т А Якуткина

663. Число генов, контролирующих признак, по которому донор создан

664. Устойчивость к вирусу Y контролирует один доминантный ген

665. Перечень положительных и отрицательных характеристик

666. Рекомендации по использованию донора в селекции

667. Рекомендуется использовать для создания сортов картофеля, устойчивых к вирусу Y, скрещивая с крупноклубневыми, раннеспелыми сортами

668. Название культуры Межвидовой гибрид картофеля2 Номер по каталогу ВИР3 Название донора 24-2

669. По какому признаку является донором

670. Устойчивость к золотистой картофельной нематоде, патотип Ro 1

671. Каким методом, где и кем донор создан

672. Число генов, контролирующих признак, по которому донор создан1. Доминантный ген

673. Перечень положительных и отрицательных характеристик

674. Положительные признаки: устойчивость к фитофторозу, средняя группа спелости. Клубни белые, округло- овальные, глазки мелкие, мякоть кремовая. Цветение продолжительное.

675. Отрицательные признаки: восприимчивость к вирусу М 8 Рекомендации по использованию донора в селекции

676. Донор может быть использован для создания нематодоустойчивых сортов картофеля в скрещиваниях с сортами устойчивыми к вирусу М.2. Номер по каталогу ВИР

677. Название донора 8-1-2004 (137)

678. По какому признаку является донором

679. Устойчивость к Y вирусу картофеля

680. Каким методом, где и кем донор создан

681. Число генов, контролирующих признак, по которому донор создан1. Доминантный ген Ry ehe

682. Перечень положительных и отрицательных характеристик

683. Рекомендации по использованию донора в селекции

684. Донор рекомендуется для создания сортов картофеля устойчивых к вирусу Y и нематоде патотипа Rol. Может использоваться в скрещиваниях в качестве как материнской, так и отцовской формы.

685. Название культуры Межвидовой гибрид картофеля2. Номер по каталогу ВИР3. Название донора 99-6-6

686. По какому признаку является донором

687. Устойчивость к цистообразующей нематоде патотип Ro 1

688. Каким методом, где и кем донор создан

689. Число генов, контролирующих признак, по которому донор создан1. Пол и гены

690. Перечень положительных и отрицательных характеристик

691. Рекомендации по использованию донора в селекции

692. Следует использовать для создания нематодоустойчивых сортов картофеля, вовлекая в скрещивания с крупноклубневыми сортами, устойчивыми к макроспориозу.