Эндокринная функция скелетных мышц: регуляторная роль и механизмы продукции миокинов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, доктор наук Захарова Анна Николаевна

• Захарова Анна Николаевна
• доктор наук
• 2024

Оглавление диссертации доктор наук Захарова Анна Николаевна

Введение

1 Обзор литературы

1.1 Миокины как компонент системной регуляции физиологических функций при физических нагрузках

1.1.1 Эндокринная функция скелетных мышц

1.1.2 Мышечное сокращение - главный регулятор продукции миокинов

1.1.3 Физиологическое значение миокинов

1.2. Внутриклеточные механизмы регуляции транскрипции и продукции

миокинов

1.2.1 Са2+ - зависимые процессы

1.2.2 Снижение парциального давления кислорода (гипоксия)

1.2.3 Фосфорилирование и соотношение АТФ/АДФ

1.3 Вовлечение миокинов в патогенетические механизмы и их роль в терапевтических и профилактических эффектах физических упражнений

1.4 Краткое заключение по главе

2 Методы и организация исследования

2.1 Методы и организация исследования с участием волонтеров

2.1.1 Контингент испытуемых

2.1.2 Организация исследования с участием волонтеров

2.1.3 Методы исследования с участием волонтеров

2.2 Методы и организация исследования на лабораторных животных

2.2.1 Объект, материалы и организация исследования на лабораторных животных

2.2.2 Методы исследования в эксперименте на лабораторных животных

2.3 Методы и организация исследования на лабораторных животных при метаболических нарушениях

2.3.1 Объект, материалы и организация исследования на лабораторных животных при метаболических нарушениях

2.3.2 Методы исследования в эксперименте на лабораторных животных при метаболических нарушениях

2.4 Методы и организация исследования на культуре клеток С2С12

2.4.1 Объект, материалы и организация исследования на культуре клеток С2С12

2.4.2 Методы исследования в эксперименте на культуре клеток С2С12

3 Особенности изменения концентрации миокинов в плазме крови у мужчин

3.1 Изменение концентрации 1Ь-6 в плазме крови у мужчин после статической и динамической нагрузки

3.2 Изменение концентрации 1Ь-8 в плазме крови у мужчин после статической и динамической нагрузки

3.3 Изменение концентрации 1Ь-15 в плазме крови у мужчин после статической и динамической нагрузки

3.4 Изменение концентрации LIF в плазме крови у мужчин после статической и динамической нагрузки

3.5 Изменение концентрации eNOS в плазме крови у мужчин после статической и динамической нагрузки

3.6 Краткое заключение по главе

4 Особенности продукции миокинов и механизмы ее регуляции у лабораторных животных

4.1 Влияние физической нагрузки на концентрацию миокинов и показатели метаболизма в мышечной ткани

4.1.1 Изменение содержания миокинов в скелетной мышечной ткани мышей после физической нагрузки

4.1.2 Изменение содержания лактата в мышечной ткани мышей после физической нагрузки

4.1.3 Изменение содержания гликогена в мышечной ткани мышей после физической нагрузки

4.1.4 Изменение содержания одновалентных катионов №+ и К+ в мышечной ткани мышей после физической нагрузки

4.1.5 Изменение содержания цитратсинтазы в мышечной ткани мышей после физической нагрузки

4.2 Взаимосвязь между концентрацией миокинов и показателями метаболизма в скелетной мышечной ткани мышей

4.3 Краткое заключение по главе

5 Особенности продукции миокинов у лабораторных животных на фоне метаболических нарушений

5.1 Изменение содержания 1Ь-6 в мышечной ткани мышей после физической нагрузки на фоне метаболических нарушений

5.2 Изменение содержания ГЬ-15 в мышечной ткани мышей после физической нагрузки на фоне метаболических нарушений

5.3 Изменение содержания LIF в мышечной ткани мышей после физической нагрузки на фоне метаболических нарушений

5.4 Изменение содержания СХСЬ1 в мышечной ткани мышей после физической нагрузки на фоне метаболических нарушений

5.5 Краткое заключение по главе

6 Регуляция экспрессии генов миокинов при электростимуляции миобластов в культуре

6.1 Влияние электростимуляции на фосфорилирование регуляторных каскадов в миобластах

6.2 Влияние одновалентных катионов на транскрипцию генов при электростимуляции миобластов

6.3 Краткое заключение по главе

7 Обсуждение результатов

7.1 Влияние характера, интенсивности нагрузок и предварительной тренированности на продукцию миокинов

7.2 Механизмы влияния физических нагрузок на продукцию миокинов

7.3 Миокины как фактор физиологического воспаления

7.4 Краткое заключение по главе

Заключение

Список сокращений и условных обозначений

Список использованных источников и литературы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Эндокринная функция скелетных мышц: регуляторная роль и механизмы продукции миокинов»

Введение

Актуальность темы исследования. В настоящее время установлено, что скелетная мышца является эндокринным органом [262]. Физиологически активные вещества, секретируемые скелетными мышцами, называются миокинами [322]. Миокины оказывают аутокринное, паракринное или эндокринное действие на органы-мишени [178]. В современной литературе идентифицировано более 3000 миокинов и продолжают выявляться новые [75].

Установлено, что выработка миокинов неодинакова при различных физических нагрузках [10, 25, 28, 30, 39]. На продукцию миокинов оказывает влияние режим и тип физической нагрузки, так как морфологические и химические изменения в мышечных волокнах зависят от частоты стимуляции мышцы [89, 129, 142]. Не исключено влияние других факторов, условий и параметров физических упражнений на эндокринную функцию скелетных мышц. Поэтому изучение продукции миокинов в зависимости от характера нагрузки, ее длительности, наличия или отсутствия интервалов отдыха, уровня тренированности представляется актуальным и перспективным направлением.

Кроме того, остаются нераскрытыми некоторые механизмы продукции миокинов в мышечных клетках. Доказано, что синтез миокинов осуществляется через Са2+-зависимые сигнальные пути. Показана способность ионов кальция стимулировать процессы транскрипции целого ряда миокинов - LIF [140, 239], СХСЬ1 [85], 1Ь6 [153], eNOS [181]. Однако роль Са2+-независимых механизмов изучена в меньшей степени. Существует гипотеза влияния изменения соотношения натрия/калия во время сокращения мышц на процессы синтеза миокинов [328, 354, 361], но эта гипотеза нуждается в подтверждении.

В литературе много исследований посвящено изучению метаболических эффектов миокинов [41, 64, 240, 255, 262]. Доказано, что 1Ь-6, 1Ь-15 оказывают влияние на метаболизм [193, 258], стимулируют поглощение глюкозы мышечными клетками, усиливают окисление жирных кислот. LIF стимулирует поглощение глюкозы и гипертрофию мышц [112, 234], СХСЬ! усиливает

энергетический обмен в мышечной ткани и стимулирует регенерацию мышц [100, 252]. Описанные эффекты раскрывает перспективы для использования миокинов в различных областях в качестве мишеней для коррекции функционального состояния. В спорте миокины могут быть использованы для оптимизации тренировочного процесса и повышения эффективности адаптации организма к физическим нагрузка. В медицине миокины могут применяться для коррекции функционального состояния при таких заболеваниях, как сахарный диабет 2 типа, ожирение и метаболические нарушения.

Знания о закономерностях продукции миокинов раскроют возможности целенаправленной коррекции физиологических функций за счет режимов двигательной активности. Для того чтобы успешно применять физические упражнения для решения различных задач, необходимо иметь четкие представления о механизмах их влияния на организм.

Степень разработанности темы исследования. Изучение миокинов представляет значительный интерес для исследователей и в настоящее время активно продолжается. В системе РиЬМеё за период с 2019-2024 гг. 14286 статей посвящено изучению продукции миокинов и их влияния на организм. В большей части статей рассмотрен ограниченный спектр режимов физических нагрузок (как правило, 2-3), и авторы заключают, что необходимым является рассмотрение других режимов.

Известные в настоящее время данные о продукции миокинов основаны преимущественно на исследованиях, проведенных с использованием циклических упражнений [62, 103, 120, 137, 140, 199, 257, 259, 310, 363]. При этом изучение продукции миокинов при изометрической нагрузке ограничивается несколькими исследованиями [267, 349]. Кроме того, в анализируемых источниках не встречается сравнительной оценки влияния динамических, статических и иных видов нагрузок и режимов мышечного сокращения на продукцию миокинов. Также неизвестным остается вопрос, зависит ли продукция миокинов от исходного уровня тренированности.

В современных исследованиях наиболее изученным миокином является 1Ь-6. По данным РиЬМеё за период с 2019-2024 гг. 1Ь-6 посвящено около шести тысяч статей. 1Ь-8 за этот же период посвящено около 1300 статей, 1Ь-15 - около 200 статей, СХСЬ1 - около 200 статей, ЬШ - около 300 статей. В настоящее время исследователи продолжают идентифицировать новые миокины. Практически все исследования рассматривают каждый миокин в отдельности. В единичных исследованиях уже сделаны попытки провести комплексный анализ продукции нескольких миокинов, но только после однократной динамической нагрузки [253]. Сохраняется актуальность изучения миокинов как целой системы, действующей в организме на фоне физических нагрузок.

Значительное внимание исследователей отводится изучению продукции миокинов при заболеваниях. За последние пять лет в 9402 статьях рассмотрены эффекты миокинов при различных заболеваниях. Эффекты миокинов при метаболических нарушениях представлены в 218 статьях. Как правило, диабет и другие метаболические нарушения провоцируют развитие целого ряда сопутствующих патологий. В условиях, когда особую актуальность приобретает вопрос немедикаментозного лечения заболеваний, например, при наличии противопоказаний к применению фармакологических препаратов, важным представляется вопрос дальнейшего изучения роли миокинов при дисфункциях организма, в частности при метаболических нарушениях.

Интерес для исследователей представляет анализ механизмов продукции миокинов. В системе РиЬМеё за период с 2019-2024 гг. этому вопросу посвящено 15047 статей. Рассмотрение гипотезы о влиянии одновалентных ионов №+, К+ на процессы синтеза миокинов представлено в единичных статьях [118], поэтому требует дальнейшего изучения.

В современной литературе продукция миокинов в разное время суток изучена недостаточно [358]. В системе РиЬМеё за последние 5 лет этой теме посвящено 4 статьи. Среди тренеров и специалистов в области физической культуры и спорта нет однозначного мнения по поводу того, в какое время суток оптимально организовывать тренировочный процесс. Поэтому актуальным

представляется изучение эндокринной функции скелетных мышц с учетом времени суток.

Таким образом, в настоящее время активно продолжается изучение эндокринной функции скелетных мышц, однако остается много вопросов, требующих дальнейшего рассмотрения.

Цель исследования: изучить закономерности выработки миокинов при физических нагрузках, их регуляторную роль и механизмы продукции.

Задачи:

1. Изучить особенности изменения концентрации миокинов в плазме крови у мужчин при физических нагрузках различной направленности.

2. Выявить влияние физической нагрузки различного характера на продукцию миокинов, показатели метаболизма и концентрацию одновалентных катионов в мышечной ткани у мышей.

3. Изучить особенности продукции миокинов в мышечной ткани мышей на фоне метаболических нарушений при принудительных физических нагрузках в разное время суток.

4. Исследовать влияние изменения [Ыа+]/[К+] на регуляцию экспрессии генов миокинов при электростимуляции миобластов в культуре.

5. Изучить закономерности продукции миокинов с учетом предварительных тренировок и вида физической нагрузки.

Научная новизна исследования. Впервые проведено комплексное исследование, в котором изучены особенности продукции миокинов в плазме крови у мужчин, в мышечной ткани мышей и мышечных клетках линии С2С12.

Впервые показано, что на изменение концентрации миокинов в плазме крови у мужчин оказывает влияние не только вид физической нагрузки, но и ее интенсивность и уровень предварительной физической подготовленности. Показано, что влияние статических и динамических упражнений на содержание в плазме миокинов значительно отличается. Физическая нагрузка циклического характера приводит к увеличению содержания 1Ь-6 и 1Ь-8, eNOS в плазме у спортсменов, не оказывая влияния на содержание LIF. В то же время нагрузка

статического характера приводит к снижению концентрации еКОБ в плазме и к увеличению концентрации ГЬ-15 и LIF у тяжелоатлетов.

Впервые показано, что на изменение уровня миокинов в мышечной ткани мышей оказывает влияние характер, интенсивность нагрузки, а также уровень предварительной тренированности. Динамическая нагрузка в целом оказывает более значительное влияние на уровень миокинов в мышцах, чем статическая. Предварительные тренировки снижают продукцию СХСЬ1 и ЬШ увеличивают -1Ь-15 и 1Ь-6 в ответ на физическую нагрузку.

Впервые показано, что метаболические расстройства оказывают влияние на содержание миокинов в мышечной ткани мышей. Содержание 1Ь-6, 1Ь-15, СХСЬ1 снижается на фоне метаболических нарушений, при этом уровень ЬШ увеличивается. Наиболее выраженный эффект физической нагрузки на концентрацию миокинов в мышечной ткани выявлен при использовании физических нагрузок в вечернее время и при смене режимов (воздействие физической нагрузки утром в течение 1 недели, затем воздействие физической нагрузки вечером в течение 1 недели).

Впервые показано, что экспрессия генов миокинов 1Ь-6 и СХСЬ1 стимулируется увеличением [№+У[К+] в культуре мышечных клеток С2С12.

Впервые сформулирована гипотеза о роли миокинов как факторов физиологического воспаления. Эффекты, которые вызывают миокины, обеспечивают адаптационные изменения для поддержания гомеостаза и могут характеризоваться как физиологическое воспаление.

Теоретическая и практическая значимость исследования. Разработана новая концепция, описывающая закономерности и механизмы изменения продукции миокинов на разных уровнях: на системной, на тканевом и на клеточном. Полученные знания фундаментального характера раскрывают целый ряд механизмов и факторов, оказывающих влияние на продукцию миокинов в различных условиях здорового организма и при наличии метаболических нарушений.

Новые знания о механизмах, с помощью которых регулярные физические упражнения обеспечивают защиту от заболеваний, могут служить основой для разработки рекомендаций в отношении физических упражнений.

Разработана концепция, рассматривающая миокины, как компонент физиологического воспаления. Идентификация миокинов как факторов физиологического воспаления позволяет рассматривать их в качестве средства для коррекции метаболических нарушений и других заболеваний. Знание механизмов выработки миокинов и влияние различных условий на их продукцию является важным аспектом в разработке немедикаментозных средств коррекции и лечения многих заболеваний средствами физической культуры.

Результаты диссертационного исследования внедрены в учебный процесс кафедр факультета физической культуры Томского государственного университета - кафедры физической культуры и спорта и кафедры спортивно -оздоровительного туризма, спортивной физиологии и медицины, в том числе используются при чтении лекционного курса и проведении практических занятий по дисциплинам «Физиология человека», «Спортивная физиология» и «Спортивная медицина» (программы 49.03.01 «Физическая культура» и 49.03.03 «Рекреация и спортивно-оздоровительный туризм»), «Мониторинг физического состояния человека» (программа 49.04.01 «Физическая культура»), «Практическая подготовка» (программа аспирантуры по научному направлению 1.5.5. Физиология человека и животных, осуществляемая на факультете физической культуры).

Методология и методы исследования. Методология диссертационного исследования опиралась на системный подход, в частности на современные представления о цитокиновой регуляции физиологических функций и на представления об эндокринной функции скелетных мышц, обозначенные Pedersen B. K. (2008); на современный подход к понятию «воспаления», обозначенный Harrison D. G. (2011), рассматривающий воспалительные реакции не только как способ устранения вредоносного фактора, но и как средство адаптации и поддержания гомеостаза.

Были использованы общенаучные и специальные методы исследования: иммуноферментный анализ, вестерн-блот анализ, лактатометрия, пламенная атомно-абсорбционная спектрометрия и методы математической статистики. В работе с испытуемыми строго соблюдались этические принципы, изложенные в ст. 24 Конституции РФ и Хельсинской Декларации Всемирной Медицинской Ассоциации (изменения: Форталеза, Бразилия, октябрь 2013 г.). Исследование на животных проводилось в соответствии с принципами Базельской декларации и было одобрено комиссией по биоэтике Биологического института Томского государственного университета (протокол № 32 от 02.12.2019).

Положения, выносимые на защиту:

1. Динамика содержания миокинов в плазме у людей и мышечной ткани мышей зависит от характера и интенсивности нагрузки, а также от уровня предварительной тренированности. Различия в продукции миокинов при разных физических нагрузках обусловлены различными биоэнергетическими механизмами, количеством вовлеченных в работу мышц, активацией различных сигнальных путей на фоне разных режимов мышечного сокращения.

2. Метаболические изменения модифицируют эндокринный ответ мышечной ткани у мышей. На миокиновую продукцию оказывает влияние изменение метаболизма, изменение состава мышечных волокон и транскрипционных механизмов на фоне метаболических нарушений. Миокины обеспечивают системные противовоспалительные реакции и регуляцию энергетического обмена.

3. Наибольшие изменения эндокринной функции скелетных мышц у мышей отмечаются при использовании физических нагрузок в вечернее время и при попеременном режиме (1 неделя тренировка утром, 1 неделя тренировка вечером), что подтверждает важность учета времени суток при построении процесса тренировки и подборе оптимальных режимов выполнения физических нагрузок. Изменение эндокринного ответа мышечной ткани обусловлено тем, что в разное время суток происходят изменения метаболизма клеток, и меняется синтез белков циркадных ритмов.

4. Увеличение [Na+]i/[K+]i стимулирует экспрессию генов миокинов, что подчеркивает роль данного фактора, как сигнального пути при мышечном сокращении.

Степень достоверности полученных результатов. Достоверность полученных результатов подтверждена высоким методическим уровнем исследования, объемом собранного фактического материала, использованием современных методов сбора информации и применением адекватных методов статистической обработки данных.

Апробация результатов исследования. Материалы исследования докладывались и обсуждались на заседаниях кафедры, методических семинарах, международных конгрессах «Нейронаука для медицины и психологии», г. Судак (2018); «Олимпийский спорт и спорт для всех», г. Тбилиси, Грузия (2018); «8th International Congress of Pathophysiology», г. Братислава, Словакия (2018); «Skeletal Muscle Research - from Cell to Human», г. Любляна, Словения (2019)); «Нейронаука для медицины и психологии», г. Судак (2023); «Нейронаука для медицины и психологии», г. Судак (2024); «9th international congress of pathophysiology and 5th congress of physiological science», г. Белград, Сербия (2023), международных конференциях «Рецепторы и внутриклеточная сигнализация», г. Пущино (2017); «Рецепторы и внутриклеточная сигнализация», г. Пущино (2023), всероссийских конференциях с международным участием IX Российская, с международным участием, конференция по управлению движением, посвященной 95-летию со дня рождения И. Б. Козловской, г. Казань (2022); XI Всероссийская с международным участием школа-конференция по физиологии мышц и мышечной деятельности, посвященная 70-летию открытия механизма мышечного сокращения, г. Москва (2024), всероссийских научно-практических конференциях «Инновационные преобразования в сфере физической культуры, спорта и туризма» г. Ростов-на-Дону - п. Новомихайловский (2019); «Инновационные преобразования в сфере физической культуры, спорта и туризма» г. Ростов-на-Дону - п. Новомихайловский (2022);

«XXIV Съезд физиологического общества им. И. П. Павлова» г. Санкт-Петербург (2023).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 36 работ, в том числе 16 статей в журналах, включенных в Перечень рецензируемых научных изданий, в которых должны быть опубликованы основные научные результаты диссертаций на соискание ученой степени кандидата наук, на соискание ученой степени доктора наук (из них 4 статьи в зарубежных научных журналах, входящих в Web of Science и / или Scopus, 7 статей в российских научных журналах, переводная версия которых входит в Web of Science и / или Scopus, 5 статей в российских научных журналах, входящих в Web of Science и / или Scopus), 1 публикация в сборнике материалов конференции, представленном в издании, входящем в Web of Science, 2 монографии, 1 статья в прочем научном журнале, 16 публикаций в сборниках материалов международных и всероссийских (в том числе с международным участием) научно-практических, научных, междисциплинарных конференций, конгрессов, съезда.

Финансовая поддержка исследования. Исследование миокинов в плазме крови у мужчин и эксперименты на клетках проводилась в рамках гранта РНФ № 16-15-10026 («Скелетные мышцы как эндокринный орган: роль натрий-калий опосредованного механизма регуляции транскрипции» (2016 - 2020 гг.)); исследование миокинов в мышечной ткани мышей проводилась в рамках гранта РНФ № 19-15-00118 («Механизмы метаболического контроля в скелетных мышцах: новые пути коррекции метаболического синдрома» (2019 - 2023 гг.)).

Личный вклад автора. Автором самостоятельно проведен анализ литературы по профилю диссертационного исследования, определены направления исследования, формулированы цель и задачи, разработан дизайн исследования. В составе научного коллектива получены первичные данные, которые в дальнейшем были проанализированы непосредственно автором (статистическая обработка данных и обсуждение полученных результатов). Самостоятельно сформулированы положения, выносимые на защиту, научная

новизна исследования, теоретическая и практическая значимость, заключение и выводы.

Структура и объем диссертации. Диссертация состоит из введения, семи глав, заключения, списка сокращений и условных обозначений, списка использованных источников и литературы (368 источников, из них 328 на иностранном языке). В работе содержится 17 таблиц и 73 рисунка. Объем диссертации составляет 250 страниц.

Благодарности. Автор благодарит своего научного консультанта доктора медицинских наук, профессора Капилевича Леонида Владимировича, руководителя гранта РНФ доктора биологических наук, профессора

Орлова Сергея Николаевича!, кандидата биологических наук Чибалина

Александра Валерьевича, а также коллективы кафедры спортивно-оздоровительного туризма, спортивной физиологии и медицины факультета физической культуры и лаборатории менеджмента здоровья и физической активности Научного управления Национального исследовательского Томского государственного университета за помощь в организации исследования, при подготовке и написании диссертации.

1 Обзор литературы

1.1 Миокины как компонент системной регуляции физиологических функций при физических нагрузках

1.1.1 Эндокринная функция скелетных мышц

Скелетные мышцы человека являются активной частью опорно-двигательного аппарата. Масса мышц намного больше, чем других органов, и составляет 40-50% массы тела [34]. Мышечная ткань является высокоорганизованной тканью, обладающей свойствами возбудимости и сократимости. Сокращение скелетной мускулатуры влияет на метаболизм всего организма, улучшает энергетический обмен. Однако в последнее время представления о функции мышц несколько расширились. В работах ряда ученых было доказано, что мышцы при сокращении способны секретировать различные белки и иные биологически активные молекулы, названные миокинами [99, 140, 252, 257, 334, 341, 363]. Миокины - это молекулы, экспрессируемые, продуцируемые и высвобождаемые мышечными клетками, обладающие аутокринными, паракринными или эндокринными эффектами [25, 314].

Первым идентифицированным миокином, полученным из мышцы, был миостатин [256, 277]. В 2000 году 1Ь-6 был определен как миокин, высвобождающийся в кровоток при мышечном сокращении [293]. В эксперименте было зафиксировано экспоненциальное увеличение концентрации этого интерлейкина пропорционально продолжительности сокращения и количеству мышечной массы, вовлеченной в него [277]. В настоящее время известно множество миокинов [35, 183, 184], относящихся к различным структурно-функциональным группам [26]. Показано, что ключевым фактором экспрессии и продукции миокинов является физическая нагрузка. Например, уровень экспрессии 1Ь-6 зависит от количества мышечной массы, вовлеченной в работу [276].

1.1.2 Мышечное сокращение - главный регулятор продукции миокинов

Анализ литературы свидетельствует, что большинство авторов для исследования закономерностей продукции миокинов используют в эксперименте длительные динамические нагрузки - беговые тренировки, велотренировки, плавание. Изменение концентрации некоторых миокинов при предъявлении физических нагрузок различного характера представлено в таблице 1.

Таблица 1 - Изменение концентрации миокинов при мышечном сокращении в различных режимах ____

Миокины/ белки Динамичес -кая нагрузка Упражнения с преодолением сопротивления Электричес кая стимуляция Механическое растяжение Статическая нагрузка

ш | в мышце И Г1401 | в мышце И [239] | в мышце И [239] -- --

СХСЬ1 | в плазме т [259] | в мышце т [85] | в мышце т [85] --

| в мышце И П04] --

вЫ08 | в мышце г Г3101 -- -- --

РОЕ2 | в мышце И [62, 199] | в мышце h [199] -- -- Без изменений в мышце И твд

Миостати н (ОБЕ-8) | в мышце т [257] X в мышце И [366] Без изменений в мышце г [335] Без изменений в мышце г [335]

С0Х2 | в мышце г [120] | в мышце h [341] | в мышце г [362] -- --

1Ь6 | в мышце И [103, 137] | в мышце h [108] | в мышце т [84] -- --

1Ь8 | в мышце И [103] | в мышце h [108] | в мышце h [104] -- --

И15 Без изменений ГЬ-15 тЯКЛ в мышце И [349] | ГЬ-15 тЯКЛ в мышце И, Без изменений ГЬ-15 в мышце И [150] -- -- --

| в плазме И [363] -- -- -- --

Примечание - И - человек; г - крыса; т - мышь; | - повышение, [ - снижение; -- не найдено данных.

Показано, что длительные циклические нагрузки стимулируют экспрессию IL-6 [322], IL-8 [103], IL-15 [363], PGE2 [199]. Концентрация миостатина в мышечных клетках мышей уменьшается после беговой нагрузки, тем самым, стимулируя процесс роста и дифференцировки сателлитных клеток [10, 257].

Использование статических нагрузок при исследовании продукции миокинов встречается в единичных работах. Так, Ochi E. с соавт. сообщают, что повторные серии силовых упражнений на 20 день приводят к увеличению концентрации IL-6, фоллистатина, фосфо-БТАТ-З и снижению миостатина. Предполагается, что IL-6, миостатин, фосфо-БТАТ-З и фоллистатин вовлекаются именно в механизмы, связанные с повторными тренировками, и обеспечивают мышечную гипертрофию [267].

Trappe Т.А. с соавт. показали, что прием ингибиторов COX ацетаминофена и ибупрофена потенциирует рост мышечной массы при тренировках с отягощениями у пожилых людей [294]. Физические нагрузки субмаксимальной мощности не приводят к изменению концентрации eNOS, а тренировки на выносливость способствуют его увеличению [135]. Позднее было показано, что интервальные тренировки увеличивают концентрацию eNOS в большей степени [334].

Увеличение концентрации некоторых миокинов происходит в период восстановления - так, к примеру, повышение COX-1 и COX-2 зарегистрировано после выполнения силовых упражнений [341]. Для выработки CXCL1 достаточным является предъявление однократной физической нагрузки циклического характера [252], в то время как для увеличения концентрации белка LIF в мышцах необходимо его накопление, вследствие повторяющихся циклических нагрузок [140]. Однако в результате выполнения силовых упражнений на мышцы ног концентрация LIF mRNA увеличилась в 9 раз в течение 6 часов после тренировки [239].

Для моделирования физической нагрузки в экспериментальных исследованиях на культурах мышечных клеток используют электрическую импульсную стимуляцию и механическое растяжение. В экспериментах с

использованием электростимуляции различной мощности и частоты стимуляции зарегистрировано увеличение миокинов LIF и СХСЬ1 (культура мышечных клеток человека) [104, 239], СХСЬ1 и 1Ь6 (культура мышечных клеток линии С2С12 мышей) [84, 85], СОХ 2 (культура мышечных клеток линии Ь6 крыс) [362].

Морфологические и химические изменения в мышечных волокнах зависят от частоты стимуляции мышцы. Кроме того, существуют свидетельства, что на выделение некоторых белков оказывает влияние сдвиг ламинарного напряжения, тангенциальные усилия, оказываемые потоками по поверхности эндотелия [308]. Так как при различных физических нагрузках происходит изменение не только системного, но и регионарного кровотока, этот механизм так же может быть задействован в регуляции эндокринной функции скелетных мышц. Поэтому изучение продукции миокинов в зависимости от характера нагрузки, ее длительности, наличия или отсутствия интервалов отдыха, уровня тренированности (степень адаптации к нагрузкам различного характера) представляется актуальным и перспективным направлением.

1.1.3 Физиологическое значение миокинов

Физические нагрузки разной интенсивности приводят к запуску большого количества биохимических, молекулярных и генетических механизмов, лежащих в основе адаптационных реакций организма на физиологический стресс [89]. Процессы адаптации организма к физическим нагрузкам различного характера связаны с изменениями нервной и гуморальной регуляции, адекватной перестройкой центральной и периферической гемодинамики и пр. Таким образом, физическая нагрузка оказывает системное воздействие на организм, что во многом опосредовано продукцией миокинов. Эти молекулы вовлечены в межклеточную коммуникацию и выполняют разнообразные роли, например:

Список литературы диссертационного исследования доктор наук Захарова Анна Николаевна, 2024 год

Список использованных источников и литературы

1. Влияние динамических и статических нагрузок на концентрацию миокинов в плазме и на содержание натрия и калия в скелетных мышцах мышей / Т. А. Кироненко, К. Г. Милованова, А. Н. Захарова [и др.]. - DOI: 10.31857/S0320972521030118 // Биохимия. - 2021. - Т. 86, № 3. - С. 431-442.

- URL: https://sciencejournals.ru/cgi/getPDF.pl?jid=biokhsm&year=2021&vol=86&iss=3 &file=BioKhsm_2103011Kironenko.pdf (дата обращения: 17.09.2024).

2. Влияние динамических и статических нагрузок на содержание натрия и калия в скелетных мышцах мыши / Л. В. Капилевич, К. Г. Милованова, С. В. Сидоренко [и др.] // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2020. - Т. 169, № 1. - С. 4-7.

3. Влияние принудительных беговых нагрузок на содержание изоформ №+/К+-АТФазы и одновалентных катионов в скелетных мышцах мышей с моделью сахарного диабета II типа / А. Н. Захарова, К. Г. Милованова, А. А. Орлова [и др.] // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. -2023. - Т. 109, № 12. - С. 1920-1934.

4. Влияние принудительных беговых нагрузок на содержание миокинов в скелетных мышцах мышей / А. Н. Захарова, Т. А. Кироненко, К. Г. Милованова [и др.] // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. - 2021. - Т. 107, № 6. - С. 1-11.

5. Влияние физической нагрузки на концентрацию эндотелиальной NO-синтазы и фактора активации тромбоцитов в плазме у спортсменов / Л. В. Капилевич, В. В. Кологривова, К. Г. Милованова, А. Н. Захарова. - DOI: 10.20538/1682-0363-2021-1-45-49 // Бюллетень сибирской медицины. - 2021.

- Т. 20, № 1. - С. 45-49. - URL: https://bulletin.ssmu.ru/jour/article/view/4275/2932 (дата обращения: 17.09.2024).

6. Влияние физической нагрузки на показатели энергетического

метаболизма, содержание миокинов и одновалентных катионов натрия и калия в скелетных мышцах мышей / А. Н. Захарова, К. Г. Милованова, О. В. Коллантай [и др.] // Motor Control 2022 : сборник тезисов IX Российской, с международным участием, конференции по управлению движением, посвященной 95-летию со дня рождения И. Б. Козловской. Казань, 02-04 июня 2022 г. - Казань. 2022. - С. 57.

7. Двигательная активность и когнитивная деятельность: особенности взаимодействия и механизмы влияния / А. В. Кабачкова, А. Н. Захарова, С. Г. Кривощеков, Л. В. Капилевич. - DOI: 10.31857/S0131164622700102 // Физиология человека. - 2022. - Т. 48, № 5. - С. 126-136. - URL: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=49319591 (дата обращения: 17.09.2024). -Режим доступа: для зарегистр. пользо вателей.

8. Движение и воспаление - молекулярные механизмы и терапевтические перспективы / Л. В. Капилевич, А. Н. Захарова, К. Г. Милованова [и др.] // Нейронаука для медицины и психологии : материалы XX Международного междисциплинарного конгресса. Судак, 30 мая - 10 июня 2024 г. - Москва, 2024. - С. 141-142. - DOI: 10.29003/m3915.sudak.ns2024-20/141-142.

9. Егоров А. М. Теория и практика иммуноферментного анализа / А. М. Егоров, А. П. Осипов, Б. Б. Дзантиев. - М. : Высшая школа, 1991. - 288 с.

10. Захарова А. Н. Особенности церебральной гемодинамики и продукция миокинов при физических нагрузках различной направленности : дис. ... канд. биол. наук / А. Н. Захарова. - Томск, 2017. - 171 с.

11. Захарова А. Н. Регуляция продукции миокинов при различных физических нагрузках : магистерская дис. ... 06.04.01 - Биология / А. Н. Захарова. - Томск, 2022. - 29 с. - URL: https://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/vital: 15894 (дата обращения: 17.09.2024).

12. Захарова А. Н. Влияние различных факторов на продукцию IL-6 / А. Н. Захарова, Л. В. Капилевич, О. В. Коллантай // Материалы XI Всероссийской с международным участием школы-конференции по

физиологии мышц и мышечной деятельности, посвященной 70-летию открытия механизма мышечного сокращения : тезисы докладов. Москва, 2225 апреля 2024 г. - Москва, 2024. - С. 148.

13. Захарова А. Н. Особенности церебральной гемодинамики и продукция миокинов при физических нагрузках различной направленности / А. Н. Захарова, А. В. Кабачкова // Нейронаука для медицины и психологии : материалы XIV Международного междисциплинарного конгресса. Судак, 30 мая - 10 июня 2018 г. - Москва, 2018. - С. 210-211.

14. Карпман В. Л. Тестирование в спортивной медицине / В. Л. Карпман, З. Б. Белоцерковский, И. А. Гудков. - М. : Физкультура и спорт, 1988. - 208 с.

15. Круглов С. В. Основы метода иммуноферментного анализа / С. В. Круглов. - М. : Московский государственный медико-стоматологический университет, 2010. - 58 с.

16. Малашенкова И. К. Интерлейкин-15: строение, сигналинг и роль в иммунной защите / И. К. Малашенкова, Г. В. Казанова, Н. А. Дидковский // Молекулярная медицина. - 2014. - № 3. - С. 9-20. - URL: https://cyberleninka.ru/article/n/interleykin-15-stroenie-signaling-i-rol-v-immunnoy-zaschite (дата обращения: 17.01.2024).

17. Молекулярно-клеточные механизмы воздействия сократительной активности на углеводный обмен и чувствительность к инсулину миобластов в культуре / Л. В. Капилевич, Е. Ю. Дьякова, А. Н. Захарова, К. Г. Милованова // Нейронаука для медицины и психологии : материалы XIX Международного междисциплинарного конгресса. Судак, 30 мая - 10 июня 2023 года. - Москва, 2023. - С. 138-139. - DOI: 10.29003/m3254.sudak.ns2023-19/138-139.

18. Нарольский Н. В. Особенности продукции миокинов у мышей предстарческого возраста / Н. В. Нарольский, И. А. Попкова, А. Н. Захарова // Материалы Международной научно-практической конференции «Современная наука и образование: актуальные вопросы теории и практики»,

Пенза, 5 марта 2023 г. - Пенза : МЦНС «Наука и Просвещение», 2023. - С. 122-127.

19. Орлов С. Н. Котранспортеры катионов и хлора: регуляция, физиологическое значение и роль в патогенезе артериальной гипертензии // Успехи биологической химии. - 2014. - Т. 54. - C. 267-298.

20. Продукция миокинов при ожирении / А. Н. Захарова, Н. В. Нарольский, И. А. Попкова [и др.] // Инновационные преобразования в сфере физической культуры, спорта и туризма : сборник материалов XXV Всероссийской научно-практической конференции. Новомихайловский, 26 сентября - 01 октября 2022 г. - Ростов-на-Дону, 2022. - С. 247-253.

21. Продукция миокинов при физических нагрузках различной направленности / Л. В. Капилевич, А. Н. Захарова, А. В. Кабачкова [и др.] // Нейронаука для медицины и психологии : материалы XIV Международного междисциплинарного конгресса. Судак, 30 мая - 10 июня 2018 г. - Москва, 2018. - С. 239.

22. Реброва О. Ю. Статистический анализ медицинских данных / О. Ю. Реброва. - М. : МедиаСфера, 2002. - 312 с.

23. Регуляция натрий-калиевой АТФазы в скелетных мышцах / А. В. Чибалин, А. Н. Захарова, И. И. Кривой, Л. В. Капилевич. - Томск : Издательский Дом Томского государственного университета, 2023. - 150 с.

24. Роль белков mrp 8 (s100a8) и mrp 14 (s100a9) в развитии критического состояния у больных пневмонией на фоне гриппа a/h1n1 / А. В. Малярчиков, К. Г. Шаповалов, С. А. Лукьянов, Л. С. Казанцева. - DOI: 10.29413/ABS. 2021-6.3.7 // Acta biomedica scientifica. - 2021. - Т. 6, № 3. - С. 70-76. - URL: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/2848/2168 (дата обращения: 17.09.2024).

25. Секреторная функция скелетных мышц: механизмы продукции и физиологические эффекты миокинов / Л. В. Капилевич, А. В. Кабачкова, А. Н. Захарова [и др.] //Успехи физиологических наук. - 2016. - Т. 47, № 2. - С. 7-26.

26. Симбирцев А. С. Цитокины: классификация и биологические функции // Цитокины и воспаление. - 2004. - № 3. - С. 16-22.

27. Скелетные мышцы как эндокринный орган / С. Н. Орлов, Л. В. Капилевич, Е. Ю. Дьякова [и др.]. - Томск : Издательский Дом Томского государственного университета, 2018. - 200 с.

28. Содержание интерлейкинов 6 и 15 в плазме крови мышей после принудительного плавания / Л. В. Капилевич, Т. А. Кироненко, А. Н. Захарова [и др.] // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. -2017. - Т. 163, № 1. - С. 14-17.

29. Содержание интерлейкинов 6 и 15 в плазме у мышей после физической нагрузки / Л. В. Капилевич, Т А. Кироненко, А. Н. Захарова [и др.] // Рецепторы и внутриклеточная сигнализация : международная конференция. Пущино, 22-25 мая 2017 г. - Пущино, 2017. - С. 737-742.

30. Содержание миокинов в плазме крови после физических нагрузок различного характера у спортсменов и нетренированных лиц / Л. В. Капилевич, А. Н. Захарова, А. В. Кабачкова [и др.] // Физиология человека. -2017. - Т. 43, № 3. - С. 87-95.

31. Содержание эндотелиальной синтазы оксида азота в плазме после физических нагрузок различного характера / Е. Ю. Дьякова, Л. В. Капилевич, А. Н. Захарова [и др.] // Бюллетень сибирской медицины. - 2017. - Т. 16, № 1. - С. 20-26.

32. Физическая активность как основной фактор продукции миокинов / К. Г. Милованова, Л. В. Капилевич, А. Н. Захарова [и др.] // Инновационные преобразования в сфере физической культуры, спорта и туризма : сборник материалов XXII Всероссийской научно-практической конференции. Новомихайловский, 23-28 сентября 2019 г. - Ростов-на-Дону, 2019. - С. 316321.

33. Шварц В. Регуляция метаболических процессов интерлейкином 6 // Цитокины и воспаление. - 2009. - Т. 3, № 8. - С. 3-10.

34. Шмидт Т. Г. Физиология человека : в 3 т. / Т. Г. Шмидт, Г. Тевс. -М. : Мир, 1996. - Т. 1. - 323 с.

35. Щербаков В. И. Роль миокинов в регуляции энергетического обмена / В. И. Щербаков, Г. А. Скосырева, Т. И. Рябиченко // Бюллетень сибирской медицины. - 2012. - № 3. - С. 173-178.

36. Экспериментальная модель сахарного диабета II типа у мышей на основе диеты с высоким содержанием жиров / Л. В. Капилевич, А. Н. Захарова, Е. Ю. Дьякова [и др.] // Бюллетень сибирской медицины. -2019. - Т. 18, № 3. - С. 53-61. - DOI: 10.20538/1682-0363-2019-3-53-61.

37. Экспериментальное моделирование циклических физических нагрузок / А. Н. Захарова, Ю. Г. Калинникова, Е. С. Негоденко [и др.] // Теория и практика физической культуры. - 2020. - № 10. - С. 26-27.

38. Эндокринная функция скелетных мышц при метаболических нарушениях / А. Н. Захарова, К. Г. Милованова, А. А. Орлова [и др.] // Рецепторы и внутриклеточная сигнализация : сборник статей по материалам международной конференции. Пущино, 22-26 мая 2023 г. - Серпухов, 2023. -Т. 1. - С. 211-214.

39. Энергетический обмен в мышечной ткани при статических и динамических нагрузках (экспериментальное исследование) / А. Н. Захарова, К. Г. Милованова, О. В. Коллантай [и др.]. - DOI: 10.14529/hsm230210 // Человек. Спорт. Медицина. - 2023. - Т. 23, № 2. - С. 77-90. - URL: https://hsm.susu.ru/hsm/article/view/2123/748 (дата обращения: 17.09.2024).

40. Эффекты принудительных беговых нагрузок у мышей с моделью сахарного диабета II типа / Л. В. Капилевич, А. Н. Захарова, К. Г. Милованова [и др.] // Сборник тезисов XXIV Съезда физиологического общества им. И. П. Павлова. Санкт-Петербург, 11-15 сентября 2023 г. -Санкт-Петербург, 2023. - С. 594.

41. A Focused Review of Myokines as a Potential Contributor to Muscle Hypertrophy from Resistance-Based Exercise / S. M. Cornish, E. M. Bugera, T. A.

Duhamel [et al.] // European Journal of Applied Physiology. - 2020. - Vol. 120. -P. 941-959.

42. A physiological drop in pH decreases mitochondrial respiration, and HDAC and Akt signaling, in L6 myocytes / A. J. Genders, S. D. Martin, S. L. McGee, D. Bishop. - DOI: 10.1152/ajpcell.00214.2018 // American Journal of Physiology-Cell Physiology. - 2019. - Vol. 316. - P. C404-C414. - URL: https://journals.physiology.org/doi/epdf/10.1152/ajpcell.00214.2018 (access date: 17.09.2024).

43. A Review of CXCL1 in Cardiac Fibrosis / C. L. Wu, R. Yin, S. N. Wang, R. Ying // Frontiers in Cardiovascular Medicine. - 2021. - Vol. 8. - P. 1-8.

44. A single bout of exercise increases the expression of glucose but not fatty acid transporters in skeletal muscle of IL-6 KO mice / B. Lukaszuk, I. Bialuk, J. Gorski [et al.] // Lipids. - 2012. - Vol. 47. - P. 763-772.

45. Activation of AMP-activated protein kinase by interleukin-6 in rat skeletal muscle: association with changes in cAMP, energy state, and endogenous fuel mobilization / M. Kelly, M. S. Gauthier, A. K. Saha, N. B. Ruderman. - DOI: 10.2337/db08-1293 // Diabetes. - 2009. - Vol. 58, № 9. - P. 1953-1960. - URL: https://diabetesjournals.org/diabetes/article-

pdf/58/9/1953/393927/zdb00909001953.pdf (access date: 17.09.2024).

46. Activation of AMP-activated protein kinase leads to the phosphorylation of elongation factor 2 and an inhibition of protein synthesis / S. Horman, G. Browne, U. Krause [et al.] // Current Biology. - 2002. - Vol. 12, № 16. - P. 14191423.

47. Activation of the AMPK-FOXO3 pathway reduces fatty acid-induced increase in intracellular reactive oxygen species by upregulating thioredoxin / X. N. Li, J. Song, L. Zhang [et al.] // Diabetes. - 2009. - Vol. 58, № 10. - P. 22462257.

48. Adiponectin deficiency exacerbates cardiac dysfunction following pressure overload through disruption of an AMPK-dependent angiogenic response

/ M. Shimano, N. Ouchi, R. Shibata [et al.] // Journal of Molecular and Cellular Cardiology. - 2010. - Vol. 49. № 2. - P. 210-220.

49. Adipose tissue insulin action and IL-6 signaling after exercise in obese mice / R. E. Macpherson, J. S. Huber, S. Frendo-Cumbo [et al.]. - DOI: 10.1249/MSS.00000000000006602015 // Medicine & Science in Sports & Exercise. - 2015. - Vol. 47. - P. 2034-2042. - URL: https: //j ournals.lww.com/acsm-

msse/_layouts/15/oaks.journals/downloadpdf.aspx?trckng_src_pg=ArticleViewer& an=00005768-201510000-00004 (access date: 17.09.2024).

50. Ahn N. Effects of Aerobic and Resistance Exercise on Myokines in High Fat Diet-Induced Middle-Aged Obese Rats / N. Ahn, K. Kim // International Journal of Environmental Research and Public Health. - 2020. - Vol. 17, № 8. - P. 1-11.

51. AICA riboside increases AMP-activated protein kinase, fatty acid oxidation, and glucose uptake in rat muscle / G. F. Merrill, E. J. Kurth, D. G. Hardie [et al.] // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 1997. - Vol. 273, № 6. - P. 1107-1112.

52. Akira S. Interleukin-6 in biology and medicine / S. Akira, T. Taga, T. Kishimoto // Advances in Immunology. - 1993. - Vol. 54. - P. 1-78.

53. Akt/mTOR pathway is a crucial regulator of skeletal muscle hypertrophy and can prevent muscle atrophy in vivo / S. C. Bodine, T. N. Stitt, M. Gonzalez [et al.] // Nature Cell Biology. - 2001. - Vol. 3, № 11. - P. 1014-1019.

54. Alterations in the expression of leukemia inhibitory factor following exercise: comparisons between wild-type and mdx muscles / L. C. Hunt, C. A. Coles, C. M. Gorman [et al.] // PLOS Currents. - 2011. - Vol. 22, № 3. - P. 1-28.

55. AMP-activated protein kinase (AMPK) action in skeletal muscle via direct phosphorylation of PGC-1alpha / S. Jäger, C. Handschin, J. St-Pierre [et al.] // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2007. - Vol. 104, № 29. - P. 12017-12022.

56. AMP-activated protein kinase mediates VEGF-stimulated endothelial NO production / J. A. Reihill, M. A. Ewart, D. G. Hardie [et al.] // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 2007. - Vol. 354, № 4. - P. 10841088.

57. AMP-activated protein kinase phosphorylates and desensitizes smooth muscle myosin light chain kinase / S. Horman, N. Morel, D. Vertommen [et al.] // Journal of Biological Chemistry. - 2008. - Vol. 283, № 27. - P. 18505-18512.

58. AMP-activated protein kinase phosphorylation of endothelial NO synthase / Z. P. Chen, K. I. Mitchelhill, B. J. Michell [et al.] // FEBS Letters. -1999. - Vol. 443, № 3. - P. 285-289.

59. AMPK in skeletal muscle function and metabolism / R. Kjobsted, J. R. Hingst, J. Fentz [et al.] // FASEB Journal. - 2018. - Vol. 32, № 4. - P. 1741-1777.

60. AMPK phosphorylation of raptor mediates a metabolic checkpoint / D. M. Gwinn, D. B. Shackelford, D. F. Egan [et al.] // Molecular Cell. - 2009. - Vol. 30, № 2. - P. 214-226.

61. Amyloid load and clinical outcome in AA amyloidosis in relation to circulating concentration of serum amyloid A protein / J. D. Gillmore, L. B. Lovat, M. R. Persey [et al.] // Lancet. - 2001. - Vol. 358. - P. 24-29.

62. An exploratory microdialysis study investigating the effect of repeated application of a diclofenac epolamine medicated plaster on prostaglandin concentrations in skeletal muscle after standardized physical exercise / A. Burian, V. Frangione, S. Rovati [et al.] // British Journal of Clinical Pharmacology. - 2013. - Vol. 76, № 6. - P. 880-887.

63. Angiopoietin-like 4 stimulates STAT3-mediated iNOS expression and enhances angiogenesis to accelerate wound healing in diabetic mice / H. C. Chong, J. S. K. Chan, C. Q. Goh [et al.] // Molecular Therapy. - 2014. - Vol. 22, № 9. - P. 1593-1604.

64. Antioxidant Effect of Human Placenta Hydrolysate against Oxidative Stress on Muscle Atrophy / D.-H. Bak, J. Na, S. I. Im [et al.]. - DOI: 10.1002/jcp.27034 // Journal of Cellular Physiology. - 2019. - Vol. 234. - P.

1643-1658. - URL: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1002/jcp.27034 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

65. Argiles J. M. Anti-inflammatory therapies in cancer cachexia / J. M. Argiles, S. Busquets, F. J. Lopez-Soriano // European Journal of Pharmacology. -2011. - Vol. 668. - P. 81-86.

66. Argiles J. M. Counteracting Inflammation: A Promising Therapy in Cachexia / J. M. Argiles, F. J. Lopez-Soriano, S. Busquets // Critical Reviews in Oncogenesis. - 2012. - Vol. 17. - P. 253-262.

67. Argiles J. M. Therapeutic potential of interleukin-15: a myokine involved in muscle wasting and adiposity / J. M. Argiles, F. J. Lopez-Soriano, S. Busquets // Drug Discovery Today. - 2009. - Vol. 14. - P. 208-213.

68. Arrick D. M. Influence of exercise training on ischemic brain injury in type 1 diabetic rats / D. M. Arrick, H. Sun, W. G. Mayhan // Journal of Applied Physiology. - 2012. - Vol. 113, № 7. - P. 1121-1127.

69. Athletes' physical working capacity / R. A. Svannshvili, Z. G. Sopromadze, Z. G. Kakhabrishvili [et al.] // Georgian medical news. - 2009. - Vol. 166. - P. 68-73.

70. Autophagic Flux and Oxidative Capacity of Skeletal Muscles during Acute Starvation / M. Mofarrahi, Y. Guo, J. A. Haspel [et al.]. - DOI: 10.4161/auto.25955 // Autophagy. - 2013. - Vol. 9. - P. 1604-1620. - URL: https://www.tandfonline.com/doi/full/10.4161/auto.25955 (access date: 17.09.2024).

71. Benatti F. Exercise as an anti-inflammatory therapy for rheumatic diseases - myokine regulation / F. Benatti, B. Pedersen // Nature Reviews Rheumatology. - 2015. - Vol. 11. - P. 86-97.

72. Berger S. L. Metabolic signaling to chromatin / S. L. Berger, P. Sassone-Corsi // Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. - 2016. - Vol. 8. - P. 1-23.

73. Bergstrom J. Energy rich phosphagens in dynamic and static work / J. Bergstrom, R. C. Harris, E. Hultman // Muscle Metabolism During Exercise. -1971. - Vol. 11. - P. 341-355.

74. Beyaert R. Tumor necrosis factor and lymphotoxin / R. Beyaert, W. Fiers // Cytokines. - 2 ed. - Blanche Lane : Academic Press, 1999. - P. 335-345.

75. Biological Aspects of Selected Myokines in Skeletal Muscle: Focus on Aging / R. Mancinelli, F. Checcaglini, F. Coscia [et al.] // International journal of molecular sciences. - 2021. - Vol. 22, № 16. - P. 1-23.

76. Brechard S. Interleukin-8 Primes Oxidative Burst in Neutrophil-like HL-60 through Changes in Cytosolic Calcium / S. Brechard, J.-L. Bueb, E. J. Tschirhart // Cell Calcium. - 2005. - Vol. 37. - P. 531-540.

77. Brestoff J. R. Immune regulation of metabolic homeostasis in health and disease / J. R. Brestoff, D. Artis // Cell. - 2015. - Vol. 161. - P. 146-160.

78. Brinkmann C. Physical activity and endothelial dysfunction in type 2 diabetic patients: the role of nitric oxide and oxidative stress / C. Brinkmann, R. H. Schwinger, K. Brixius // Wiener Medizinische Wochenschrift. - 2011. - Vol. 161, № 11-12. - P. 305-314.

79. Broholm C. Leukaemia inhibitory factor - An exercise-induced myokine / C. Broholm, B. K. Pedersen // Exercise Immunology Review. - 2010. - Vol. 16, № 7. - P. 77-85.

80. Bruce C. R. Cytokine regulation of skeletal muscle fatty acid metabolism: effect of interleukin-6 and tumor necrosis factor / C. R. Bruce, D. J. Dyck. - DOI: 10.1152/ajpendo.00150 // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2004. - Vol. 287. - P. 616-621. - URL: https://journals.physiology.org/doi/epdf/10.1152/ajpendo.00150.2004 (access date: 17.09.2024).

81. Buford T. W. Resistance exercise-induced changes of inflammatory gene expression within human skeletal muscle / T. W. Buford, M. B. Cooke, D. S. Willoughby // European Journal of Applied Physiology. - 2009. - Vol. 107. - P. 463-471.

82. Cancer cachexia: understanding the molecular basis / J. M. Argiles, S. Busquets, B. J. Stemmler [et al.] // Nature Reviews Cancer. - 2014. - Vol. 14. - P. 754-762.

83. Carbohydrate ingestion attenuates the increase in plasma interleukin-6, but not skeletal muscle interleukin-6 mRNA, during exercise in humans / R. L. Starkie, M. J. Arkinstall, I. Koukoulas [et al.]. - D0I:10.1111/j.1469-7793.2001.0585a.x // Journal of Physiology. - 2001. - Vol. 533. - P. 585-591. -URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2278645/pdf/tjp0533-0585.pdf (access date: 17.09.2024).

84. Changes of myogenic reactive oxygen species and interleukin-6 in contracting skeletal muscle cells / H. Pan, X. Xu, X. Hao [et al.] // Oxidative Medicine and Cellular Longevity. - 2012. - Vol. 2012. - P. 1-6.

85. Characterization of contraction-inducible CXC chemokines and their roles in C2C12 myocytes / T. Nedachi, H. Hatakeyama, T. Kono [et al.] // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2009. - Vol. 297. - P. 866-878.

86. Chemokine (C-X-C motif) ligand 1 is a myokine induced by palmitate and is required for myogenesis in mouse satellite cells / S. Masuda, M. Tanaka, T. Inoue [et al.]. - DOI: 10.1111/apha.12975 // Acta Physiologica. - 2018. - Vol. 222, № 3. - P. 1-12. - URL: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1111/apha. 12975 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

87. Circulating levels of irisin in middle-aged first-degree relatives of type 2 diabetes mellitus - correlation with pancreatic P-cell function / M. Yang, P. Chen, H. Jin [et al.] // Diabetology & Metabolic Syndrome. - 2014. - Vol. 6, № 1. - P. 133-139.

88. Circulating monocyes are not the source of elevations in plasma IL-6 and TNF-alpha levels after prolonged running / R. L. Starkie, J. Rolland, D. J. Angus [et al.] // American Journal of Physiology-Cell Physiology. - 2001. - Vol. 280. - C769-C774.

89. Coffey V. G. The molecular bases of training adaptation / V. G. Coffey, J. A. Hawley // Sports Medicine. - 2007. - Vol. 37, № 9. - P. 737-763.

90. Comparative Analysis of Skeletal Muscle Transcriptional Signatures Associated With Aerobic Exercise Capacity or Response to Training in Humans and Rats / Y. Kelahmetoglu, P. R. Jannig, I. Cervenka [et al.]. - DOI: 10.3389/fendo.2020.591476 // Frontiers in Endocrinology. - 2020. - Vol. 26, № 11. - P. 1-12. - URL: https: //www.frontiersin. org/j ournal s/endocrinology/articles/10.33 89/fendo .2020.59 1476/pdf?isPublishedV2=false (access date: 17.09.2024).

91. Contactile activity-specific transcriptome response to acute endurance exercise and training in human skeletal muscle / D. V. Popov, P. A. Makhnovskii, E. I. Shagimardanova, M. A. Volodina // American Journal of Physiology -Endocrinology and Metabolism. - 2019. - Vol. 316. - E604-E614.

92. Contraction and AICAR stimulate IL-6 vesicle depletion from skeletal muscle fibers in vivo / H. P. Lauritzen, J. Brandauer, P. Schjerling [et al.]. - DOI: 10.2337/db12-1261 // Diabetes. - 2013. - Vol. 62. - P. 3081-3092. - URL: https://diabetesjournals.org/diabetes/article-pdf/62/9/3081/571100/3081.pdf (access date: 17.09.2024).

93. Contraction-induced changes in acetyl-CoA carboxylase and 5'-AMP-activated kinase in skeletal muscle / D. Vavvas, A. Apazidis, A. K. Saha [et al.] // Journal of Biological Chemistry. - 1997. - Vol. 272, № 20. - P. 13255-13261.

94. Contraction-induced interleukin-6 gene transcription in skeletal muscle is regulated by c-Jun terminal kinase/activator protein-1 / M. Whitham, M. H. Chan, M. Pal, [et al.] // Journal of Biological Chemistry. - 2012. - Vol. 287. - P. 10771-10779.

95. Core circadian protein CLOCK is a positive regulator of NF-kB-mediated transcription / M. L. Spengler, K. K. Kuropatwinski, M. Comas [et al.]. -DOI: 10.1073/pnas.1206274109 // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2012. - Vol. 109. - P. 14736-14737. -URL: https://www.pnas.org/doi/reader/10.1073/pnas.1206274109 (access date: 17.09.2024).

96. Corre I. Interleukin-8: An Autocrine/Paracrine Growth Factor for Human Hematopoietic Progenitors Acting in Synergy with Colony Stimulating Factor-1 to Promote Monocyte-Macrophage Growth and Differentiation / I. Corre, D. Pineau, S. Hermouet // Experimental Hematology. - 1999. - Vol. 27. - P. 2836.

97. Cox K. H. Circadian clock genes and the transcriptional architecture of the clock mechanism / K. H. Cox, J. S. Takahashi. - DOI: 10.1530/JME-19-0153 // Journal of Molecular Endocrinology. - 2019. - Vol. 63, № 4. - P. R93-R102. -URL: https: //j me.bioscientifica.com/downloadpdf/view/j ournals/j me/63/4/JME-19-0153.pdf (access date: 17.09.2024).

98. Critical role of the a1-Na+,K+-ATPase subunit in insensitivity of rodent cells to cytotoxic action of ouabain / O. A. Akimova, A. M. Tverskoi, L. V. Smolyaninova [et al.] // Apoptosis. - 2015. - Vol. 20. - P. 1200-1210.

99. Cross-talk between skeletal muscle and adipose tissue: a link with obesity? / J. M. Argiles, J. Lopez-Soriano, V. Almendro [et al.] // Medicinal Research Reviews. - 2005. - Vol. 25, № 1. - P. 49-65.

100. CXCL1: Gene, Promoter, Regulation of Expression, mRNA Stability, Regulation of Activity in the Intercellular Space / J. Korbecki, K. Barczak, I. Gutowska [et al.]. - DOI: 10.3390/ijms23020792 // International Journal of Molecular Sciences. - 2022. - Vol. 23, № 2. - P. 1-25. - URL: https://www.mdpi.com/1422-0067/23/2/792/pdf?version=1641977273 (access date: 17.09.2024).

101. CXCL6 antibody neutralization prevents lung inflammation and fibrosis in mice in the bleomycin model / A. G. Besnard, S. Struyf, R. Guabiraba [et al.]. - DOI: 10.1189/jlb.0313140 // Journal of Leukocyte Biology. - 2013. -Vol. 94. - P. 1317-1323. - URL: https://jlb.onlinelibrary.wiley.com/doi/pdf/10.1189/jlb.0313140 (access date: 17.09.2024).

102. Cytokine expression and secretion by skeletal muscle cells: regulatory mechanisms and exercise effects / J. M. Peake, P. D. Gatta, K. Suzuki, D. C. Nieman // Exercise Immunology Review. - 2015. - Vol. 21. - P. 8-25.

103. Cytokine gene expression in human skeletal muscle during concentric contraction: evidence that IL-8, like IL-6, is influenced by glycogen availability / M. H. S. Chan, A. L. Carey, M. J. Watt [et al.] // American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. - 2004. - Vol. 287, № 2. - P. 322-327.

104. Cytokine response of primary human myotubes in an in vitro exercise model / M. Scheler, M. Irmler, S. Lehr [et al.] // American Journal of Physiology-Cell Physiology. - 2013. - Vol. 305, № 8. - P. 877-886.

105. Damas F. The Development of Skeletal Muscle Hypertrophy through Resistance Training: The Role of Muscle Damage and Muscle Protein Synthesis / F. Damas, C. A. Libardi, C. Ugrinowitsch. - DOI: 10.1007/s00421-017-3792-9 // European Journal of Applied Physiology. - 2018. - Vol. 118. - P. 485-500. -URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s00421-017-3792-9 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

106. DAMP molecule S100A9 acts as a molecular pattern to enhance inflammation during influenza A virus infection: role of DDX21-TRIF-TLR4-MyD88 pathway / S. Y. Tsai, J. A. Segovia, T. H. Chang [et al.]. - DOI: 10.1371/journal. ppat. 1003848// PLOS Pathogens. - 2014. - Vol. 10, № 1. - P. 120. - URL: https://journals.plos.org/plospathogens/article/file?id=10.1371/journal.ppat.100384 8&type=printable (access date: 17.09.2024).

107. Datta N. S. Muscle-bone and fat-bone interactions in regulating bone mass: do PTH and PTHrP play any role? // Endocrine. - 2014. - Vol. 47. - P. 389400.

108. Della Gatta P. A. Acute resistance exercise increases the expression of chemotactic factors within skeletal muscle / P. A. Della Gatta, D. Cameron-Smith,

J. M. Peake // European Journal of Applied Physiology. - 2014. - Vol. 114, № 10. - P. 2157-2167.

109. Development of technique of assessment of physical endurance of small laboratory ani mals for investigation of adaptogenic activity of some therapeutic drugs / V. N. Karkishchenko, G. D. Kapanadze, S. E. Dengina, N. V. Stankova // Biomeditsina. - 2011. - Vol. 1. - P. 72-74.

110. Diet-supported aerobic exercise reduces blood endothelin-1 and nitric oxide levels in individuals with impaired glucose tolerance / O. Kasmay, N. Ergen, S. Bilsel [et al.] // Journal of Clinical Lipidology. - 2010. - Vol. 4, № 5. - P. 427434.

111. Different impact of physical activity on plasma myokines content in athletes and untrained volunteers / L. Kapilevich, A. Zakharova, A. Kabachkova [et al.] // FEBS Journal. - 2017. - Vol. 284, № S1. - P. 370-373.

112. Differential adaptation of growth and differentiation factor 8/myo statin, fibroblast growth factor 6 and leukemia inhibitory factor in overloaded, regenerating and denervated rat muscles / K. Sakuma, K. Watanabe, M. Sano [et al.] // Biochimica et Biophysica Acta - Molecular Cell Research. - 2000. - Vol. 1497, № 1. - P. 77-88.

113. Differential expression of nitric oxide synthases (NOS 1-3) in human skeletal muscle following exercise countermeasure during 12 weeks of bed rest / J. Rudnick, B. Puttmann, P. A. Tesch [et al.] // FASEB Journal. - 2004. - Vol. 18, № 11. - P. 1228-1230.

114. Distinctive exercise-induced inflammatory response and exerkine induction in skeletal muscle of people with type 2 diabetes / N. J. Pillon, J. A. B. Smith, P. S. Alm [et al.] // Science Advances. - 2022. - Vol. 8, № 36. - P. 1-14.

115. Duncan M. R. Stimulation of collagen and glycosaminoglycan production in cultured human adult dermal fibroblasts by recombinant human interleukin 6 / M. R. Duncan, B. Berman // Journal of Investigative Dermatology. -1991. - Vol. 97. - P. 686-692.

116. Dynamic and static exercises differentially affect plasma cytokine content in elite endurance- and strength-trained athletes and untrained volunteers / L. V. Kapilevich, A. N. Zakharova, A. V. Kabachkova [et al.] // Frontiers in Physiology. - 2017. - Vol. 8. - P. 1-10.

117. Eccentric exercise induces nitric oxide synthase expression through nuclear factor-kappaB modulation in rat skeletal muscle / E. Lima-Cabello, M. J. Cuevas, N. Garatachea [et al.] // Journal of Applied Physiology. - 2010. - Vol. 108, № 3. - P. 575-583.

118. Effect of Dynamic and Static Load on the Concentration of Myokines in the Blood Plasma and Content of Sodium and Potassium in Mouse Skeletal Muscles / T. A. Kironenko, K. G. Milovanova, A. N. Zakharova [et al.] // Biochemistry (Moscow). - 2021. - Vol. 86, № 3. - P. 370-381.

119. Effect of endurance training on skeletal muscle myokine expression in obese men: identification of apelin as a novel myokine / A. Besse-Patin, E. Montastier, C. Vinel, [et al.] // International Journal of Obesity. - 2014. - Vol. 38. - P. 707-713.

120. Effect of exercise training of different intensities on anti-inflammatory reaction in streptozotocin-induced diabetic rats / J. S. Kim, Y. H. Lee, J. C. Kim [et al.] // Biology of Sport. - 2014. - Vol. 31, № 1. - P. 73-79.

121. Effect of Forced Treadmill Running on Skeletal Muscle Myokine Levels in Mice with a Model of Type II Diabetes Mellitus / A. N. Zakharova, T. A. Kironenko, K. G. Milovanova [et al.] // Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology. - 2021. - Vol. 57, № 4. - P. 904-912.

122. Effect of myostatin on chemokine expression in regenerating skeletal muscle cells / S. Iwasaki, M. Miyake, S. Hayashi [et al.] // Cells Tissues Organs. -2013. - Vol. 198. - P. 66-74.

123. Effects of a 1-year exercise and lifestyle intervention on irisin, adipokines, and inflammatory markers in obese children / S. Blüher, G. Panagiotou, D. Petroff [et al.] // Obesity. - 2014. - Vol. 22, № 7. - P. 1701-1708.

124. Effects of decreased lactate accumulation after dichloroacetate administration on exercise training-induced mitochondrial adaptations in mouse skeletal muscle / D. Hoshino, Y. Tamura, H. Masuda [et al.]. - DOI: 10.14814/phy2.12555 // Physiological Reports. - 2015. - Vol. 3, № 9. - P. 1-11. -URL: https://physoc.onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.14814/phy2.12555 (access date: 17.09.2024).

125. Effects of electrical stimulation in C2C12 muscle constructs / H. Park, R. Bhalla, R. Saigal [et al.] // Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. - 2008. - Vol. 2. - P. 279-287.

126. Effects of training and nitric oxide on diabetic nephropathy progression in type I diabetic rats / A. M. Rodrigues, C. T. Bergamaschi, R. C. Araújo [et al.] // Experimental biology and medicine (Maywood, NJ). - 2011. - Vol. 236, № 10. -P. 1180-1187.

127. Effects of treadmill running at different light cycles in mice with metabolic disorders / A. N. Zakharova, K. G. Milovanova, A. A. Orlova [et al.] // International Journal of Molecular Sciences. - 2023. - Vol. 24, № 20. - 1-20.

128. Effects of whole-boody heat accilimation on cell injury and cytokine responses in perpheral blood mononuclear cells / F. Amorium, P. Yamada, R. Robergs [et al.] // European Journal of Applied Physiology. - 2011. - Vol. 111 (8).

- P. 1609-1618.

129. Egan B. Exercise metabolism and the molecular regulation of skeletal muscle adaptation / B. Egan, J. R. Zierath // Cell Metabolism. - 2013. - Vol. 17. -P. 162-184.

130. Electric pulse stimulation of cultured murine muscle cells reproduces gene expression changes of trained mouse muscle / N. Burch, A. S. Arnold, F. Item [et al.] // PLoS One - 2010. - Vol. 5. - P. 1-11.

131. Electrical pulse stimulation decreases electrochemical Na+ and K+ gradients in C2C12 myotubes / K. Danilov, S. V. Sidorenko, K. Milovanova, [et al.] // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 2017. - Vol. 493.

- P. 875-878.

132. Electrical pulse stimulation of cultured human skeletal muscle cells as an in vitro model of exercise / N. Nikolic, S. S. Bakke, E. T. Kase, [et al.] // PLoS One. - 2012. - Vol. 7. - P. 1-10.

133. Elevated constitutive IkappaB kinase activity and IkappaB-alpha phosphorylation in Hs294T melanoma cells lead to increased basal MGSA/GRO-alpha transcription / M. N. Devalaraja, D. Z. Wang, D. W. Ballard, A. Richmond // Cancer Research. - 1999. - Vol. 59. - P. 1372-1377.

134. Elevation of body temperature is an essential factor for exercise-incrased extracellular heat shock protein 72 level in rat plasma / Y. Ogura, H. Naito, S. Akin [et al.] // American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. - 2008. - Vol. 294. - P. R1600-R1607.

135. Endurance training does not alter the level of neuronal nitric oxide synthase in human skeletal muscle / U. Frandsen, L. Hoffner, A. Betak [et al.] // Journal of Applied Physiology. - 2000. - Vol. 89, № 3. - P. 1033-1038.

136. Evidence that interleukin-6 is produced in human skeletal muscle during prolonged running / K. Ostrowski, T. Rohde, M. Zacho [et al.] // Journal of Physiology. - 1998. - Vol. 508, Pt. 3. - P. 949-953.

137. Evidence that interleukin-6 is produced in human skeletal muscle during prolonged running / K. Ostrowski, T. Rohde, M. Zacho [et al.] // Journal of Physiology. - 2018. - Vol. 508. - P. 949-953.

138. Exercise and caloric restriction alter the immune system of mice submitted to a high-fat diet / F. Wasinski, R. F. Bacurau, M. R. Moraes [et al.] // Mediators of Inflammation. - 2013. - Vol. 2013. - P. 1-8.

139. Exercise as a Peripheral Circadian Clock Resynchronizer in Vascular and Skeletal Muscle Aging / B. S. d. A. Silva, J. S. Uzeloto, F. S. Lira [et al.]. -DOI: 10.3390/ ijerph182412949 // International Journal of Environmental Research and Public Health. - 2021. - Vol. 18. - P. 1-15. - URL: https://www.mdpi.com/1660-4601/18/24/12949/pdf?version=1638962840 (access date: 17.09.2024).

140. Exercise induces expression of leukaemia inhibitory factor in human skeletal muscle / C. Broholm, O. H. Mortensen, S. Nielsen [et al.] // Journal of Physiology. - 2008. - Vol. 586, № 8. - P. 2195-2201.

141. Exercise induces interleukin-8 receptor (CXCR2) expression in human skeletal muscle / L. Frydelund-Larsen, M. Penkowa, T. Akerstrom [et al.] // Experimental Physiology. - 2007. - Vol. 92. - P. 233-240.

142. Exercise metabolism and adaptation in skeletal muscle / J. A. B. Smith, K. A. Murach, K. A. Dyar [et al.]. - DOI: 10.1038/s41580-023-00606-x // Nature Reviews Molecular Cell Biology. - 2023. - Vol. 24. - P. 607-632. - URL: https://www.nature.com/articles/s41580-023-00606-x (access date: 17.09.2024). -Access mode: for registered users.

143. Exercise stimulates the mitogen-activated protein kinase pathway in human skeletal muscle / D. Aronson, M. A. Violan, S. D. Dufresne [et al.] // Journal of Clinical Investigation. - 1997. - Vol. 99, № 6. - P. 1251-1257.

144. Exercise training changes IL-10/TNF-alpha ratio in the skeletal muscle of post-MI rats / M. L. Jr. Batista, J. C. Rosa, R. D. Lopes [et al.]. - DOI: 10.1016/j.cyto.2009.10.007 // Cytokine. - 2010. - Vol. 49. - P. 102-108. - URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1043466609008618 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

145. Exercise training improves endothelial function via adiponectin-dependent and independent pathways in type 2 diabetic mice / S. Lee, Y. Park, K. C. Dellsperger [et al.] // American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. - 2011. - Vol. 301. - P. 306-314.

146. Exercise training normalizes impaired NOS-dependent responses of cerebral arterioles in type 1 diabetic rats / W. G. Mayhan, D. M. Arrick, K. P. Patel [et al.] // American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. -2011. - Vol. 300. - P. 1013-1020.

147. Exercise-induced increase in IL-6 level enhances GLUT4 expression and insulin sensitivity in mouse skeletal muscle / S. Ikeda, Y. Tamura, S. Kakehi, H. Sanada. - DOI: 10.1016/j.bbrc.2016.03.159 // Biochemical and Biophysical

Research Communications. - 2016. - Vol. 473, № 4. - P. 947-952. - URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0006291X1630479X?via% 3Dihub (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

148. Exercise-induced liver chemokine CXCL-1 expression is linked to muscle-derived interleukin-6 expression / L. Pedersen, H. Pilegaard, J. Hansen [et al.]. - DOI : 10.1113/jphysiol.2010.200733 // Journal of Physiology. - 2011. -Vol. 589, № 6. - P. 1409-1420. - URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3082100/pdf/tjp0589-1409.pdf (access date: 17.09.2024).

149. Exercise-stimulated interleukin-15 is controlled by AMPK and regulates skin metabolism and aging / J. D. Crane, L. G. MacNeil, J. S. Lally [et al.] // Aging Cell. - 2015. - Vol. 14, № 4. - P. 625-634.

150. Expression of interleukin-15 in human skeletal muscle effect of exercise and muscle fibre type composition / A. R. Nielsen, R. Mounier, P. Plomgaard [et al.] // Journal of Physiology. - 2007. - Vol. 584, № 1. - P. 305-312.

151. Faquin W. C. Effect of inflammatory cytokines on hypoxia-induced erythropoietin production / W. C. Faquin, T. J. Schneider, M. A. Goldberg // Blood. - 1992. - Vol. 79. - P. 1987-1994.

152. Fatty acid-inducible ANGPTL4 governs lipid metabolic response to exercise / M. Catoire, S. Alex, N. Paraskevopulos [et al.] // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2014. - Vol. 111. - P. 1043-1052.

153. Febbraio M. A. Muscle-derived interleukin-6: mechanisms for activation and possible biological roles / M. A. Febbraio, B. K. Pedersen // FASEB Journal. - 2002. - Vol. 16, № 11. - P. 1335-1347.

154. Fehniger T. A. Interleukin 15: biology and relevance to human disease / T. A. Fehniger, M. A. Caligiuri // Blood. - 2001. - Vol. 97, № 1. - P. 14-32.

155. Fiers W. Tumor necrosis factor. Characterization at the molecular, cellular and in vivo level // FEBS Letters. - 1991. - Vol. 285. - P. 199-212.

156. Fisher C. P. Interleikin-6 in acute exercise and training: what is the bilogical relevance? // Exercise Immunology Review. - 2006. - Vol. 12. - P. 6-33.

157. Fitts R. H. Muscle mechanics: adaptations with exercise-training / R. H. Fitts, J. J. Widrick // Exercise and Sport Sciences Reviews. - 1996. - Vol. 24. -P. 427-473.

158. 5' AMP-activated protein kinase activation causes GLUT4 translocation in skeletal muscle / E. J. Kurth-kraczek, M. F. Hirshman, L. J. Goodyear [et al.] // Diabetes. - 1999. - Vol. 48, № 8. - P. 1667-1671.

159. Frequency of exacerbations in patients with chronic obstructive pulmonary disease: An analysis of the SPIROMICS cohort / M. K. Han, P. M. Quibrera, E. E. Carretta [et al.] // Lancet Respiratory Medicine. - 2017. - Vol. 5. -P. 619-626.

160. Fujita H. Accelerated de novo sarcomere assembly by electric pulse stimulation in C2C12 myotubes / H. Fujita, T. Nedachi, M. Kanzaki // Experimental Cell Research. - 2007. - Vol. 313. - P. 1853-1865.

161. Furmanczyk P. S. Interleukin-15 increases myosin accretion in human skeletal myogenic cultures / P. S. Furmanczyk, L. S. Quinn. - DOI: 10.1016/S1065-6995(03)00172-0 // Cell Biology International. - 2003. - Vol. 27.

- P. 845-851. - URL: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1016/S1065-6995%2803%2900172-0 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

162. Furrer R. The molecular athlete: exercise physiology from mechanisms to medals / R. Furrer, J. A. Hawley, C. Handschin // Physiological reviews. - 2023.

- Vol. 103, № 3. - P. 1693-1787.

163. G^siorowski A. Comprehensive rehabilitation in chronic heart failure / A. G^siorowski, J. Dutkiewicz // Annals of Agricultural and Environmental Medicine. - 2013. - Vol. 20. - P. 606-612.

164. Gene expression is differentally regulated in skeletal muscle and circulating immune cells in response to an acute bout of high-load strength

exercise / G. O. Gjevestad, H. Hamarsland, T. Raastad [et al.] // Genes & Nutrition. - 2017. - Vol. 12, № 8. - P. 1-11.

165. Global mRNA sequencing of human skeletal muscle: search for novel exercise-regulated myokines / S. Pourteymour, K. Eckardt, T. Holen [et al.] // Molecular Metabolism. - 2017. - Vol. 29. - P. 352-365.

166. Glucose uptake in rat skeletal muscle L6 cells is increased by low-intensity electrical current through the activation of the phosphatidylinositol-3-OH kinase (PI-3K)/Akt pathways / S. Yano, S. Morino-Koga, T. Kondo [et al.] // Journal of Pharmacological Sciences. - 2010. - Vol. 115. - P. 94-98.

167. Glycogen Assay Kit II (Colorimetric) (ab169558) : product overview // Abcam. - Cambridge, 2020. - 67 p.

168. Gomarasca M. Myokines: The endocrine coupling of skeletal muscle and bone / M. Gomarasca, G. Banfi, G. Lombardi. - DOI: 10.1016/bs.acc.2019.07.010 // Advances in Clinical Chemistry. - 2020. - Vol. 94. - P. 155-218. - URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0065242319300678 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

169. Graham D. Point:Counterpoint: Lactic acid accumulation is an advantage/disadvantage during muscle activity / D. Graham, D. Lamb, G. Stephenson. - DOI:10.1152/japplphysiol.00023.2006J // Journal of Applied Physiology. - 2006. - Vol. 100, № 4. - P. 1410-1412. - URL: https://journals.physiology.org/doi/epdf/10.1152/japplphysiol.00023.2006 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

170. Group 2 innate lymphoid cells promote beiging of white adipose tissue and limit obesity / J. R. Brestoff, B. S. Kim, S. A. Saenz [et al.] // Nature. - 2015. -Vol. 519. - P. 242-246.

171. Hardie D. G. AMP-activated protein kinase as a drug target // Annual Review of Pharmacology and Toxicology. - 2007. - Vol. 47. - P. 185-210.

172. Hardie D. G. AMP-activated/SNFl protein kinases: conserved guardians of cellular energy // Nature Reviews Molecular Cell Biology. - 2007. -Vol. 8. - P. 774-785.

173. Hardie D. G. AMPK: a key sensor of fuel and energy status in skeletal muscle / D. G. Hardie, K. Sakamoto // Physiology (Bethesda). - 2006. - Vol. 21. -P. 48-60.

174. Hawke T. J. Myogenic satellite cells: physiology to molecular biology / T. J. Hawke, D. J. Garry. - DOI: 10.1152/jappl.2001.91.2.534J // Journal of Applied Physiology. - 2001. - Vol. 91. - P. 534-551. - URL: https://joumals.physiology.org/doi/epdf/10.1152/jappl.2001.9L2.534 (access date: 17.09.2024).

175. Heinrich P. C. Interleukin-6 and the acute phase response / P. C. Heinrich, J. V. Castell, T. Andus // Biochemical Journal. - 1990. - Vol. 265. - P. 621-636.

176. Henriksen T. Myokines in myogenesis and health / T. Henriksen, C. Green, B. K. Pedersen // Recent Patents on Biotechnology. - 2012. - Vol. 6, № 3. - P. 167-171.

177. High-intensity endurance training results in faster vessel-specific rate of vasorelaxation in type 1 diabetic rats / J. M. Murias, A. Dey, O. A. Campos [et al.] // PLoS One. - 2013. - Vol. 8, № 3. - P. 1-9.

178. Hoffmann Ch. Skeletal Muscle as an Endocrine Organ: The Role of Myokines in Exercise Adaptations / Ch. Hoffmann, C. Weigert. - DOI: 10.1101/cshperspect.a029793 // Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. -2017. - Vol. 7, № 11. - P. 1-22. - URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5666622/pdf/cshperspectmed-BEX-a029793.pdf (access date: 17.09.2024).

179. Hue L. The AMP-activated protein kinase: more than an energy sensor / L. Hue, M. H. Rider // Essays in Biochemistry. - 2007. - Vol. 43. - P. 121-137.

180. Hurley J. V. Acute inflammation / J. V. Hurley. - Edinburgh, London : Churchill Livingstone, 1972. - 157 p.

181. Hypoxia-augmented constriction of deep femoral artery mediated by inhibition of eNOS in smooth muscle / J. A. Han, E. Y. Seo, H. J. Kim [et al.] // American Journal of Physiology-Cell Physiology. - 2013. - Vol. 304, № 1. - P. 78-88.

182. Hypoxic activation of AMPK is dependent on mitochondrial ROS but independent of an increase in AMP/ATP ratio / B. M. Emerling, F. Weinberg, C. Snyder [et al.] // Free Radical Biology and Medicine. - 2009. - Vol. 46, № 10. - P. 1386-1391.

183. Identification and validation of novel contraction-regulated myokines released from primary human skeletal muscle cells / S. Raschke, K. Eckardt, K. Bjorklund Holven [et al.] // PLoS One. - 2013. - Vol. 8, № 4. - P. 1-12.

184. Identification of human exercise-induced myokines using secretome analysis / M. Catoire, M. Mensink, E. Kalkhoven [et al.] // Physiological Genomics. - 2014. - Vol. 46. - P. 256-267.

185. Iizuka K. Skeletal muscle is an endocrine organ / K. Iizuka, T. Machida, M. Hirafuji // Journal of Pharmacological Sciences. - 2014. - Vol. 125, № 2. - P. 125-131.

186. IL-15Ralpha recycles and presents IL-15 In trans to neighboring cells / S. Dubois, J. Mariner, T. A. Waldmann, Y. Tagaya // Immunity. - 2002. - Vol. 17, № 5. - P. 537-547.

187. IL-17 and Th17 cells / T. Korn, E. Bettelli, M. Oukka, V. K. Kuchroo // Annual Review of Immunology. - 2009. - Vol. 27. - P. 485-517.

188. IL-6 and IL-8: An Overview of Their Roles in Healthy and Pathological Pregnancies / A. Vilotic, M. Nacka-Aleksic, A. Pirkovic [et al.] // International Journal of Molecular Sciences. - 2022. - Vol. 23, № 23. - P. 1-32.

189. IL-6 enhances plasma IL-1ra, IL-10, and cortisol in humans / A. Steensberg, C. P. Fischer, C. Keller [et al.]. - DOI: 10.1152/ajpendo.00074.2003 // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2003. - Vol. 285. - E433-E437. - URL:

https://journals.physiology.org/doi/epdf/10.1152/ajpendo.00074.2003 (access date: 17.09.2024).

190. IL-6 mediates hypoferremia of inflammation by inducing the synthesis of the iron regulatory hormone hepcidin / E. Nemeth, S. Rivera, V. Gabayan [et al.] // Journal of Clinical Investigation. - 2004. - Vol. 113. - P. 1271-1276.

191. IL-6 release from muscles during exercise is stimulated by lactate-dependent protease activity / P. Hojman, C. Brolin, N. N0rgaard-Christensen [et al.]. - DOI: 10.1152/ajpendo.00414.2018 // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2019. - Vol. 316, № 5. - P. E940-E947. -URL: https://journals.physiology.org/doi/epdf/10.1152/ajpendo.00414.2018 (access date: 17.09.2024).

192. IL-6 selectively stimulates fat metabolism in human skeletal muscle / E. Wolsk, H. Mygind, T. S. Grendahl [et al.]. - DOI: 10.1152/AJPENDO.00328.2010 // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2010. - Vol. 299, № 5. - P. 832-840. - URL: https://journals.physiology.org/doi/epdf/10.1152/ajpendo.00328.2010 (access date: 17.09.2024).

193. IL-6 signaling in acute exercise and chronic training: Potential consequences for health and athletic performance / D. Nash, M. G. Hughes, L. Butcher [et al.]. - DOI: 10.1111/sms.14241 // Scandinavian Journal of Medicine & Science in Sports. - 2023. - Vol. 33. - P. 4-19. - URL: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1111/sms.14241 (access date: 17.09.2024).

194. IL-6/BSF-2 functions as a killer helper factor in the in vitro induction of cytotoxic T cells / M. Okada, M. Kitahara, S. Kishimoto [et al.] // Journal of Immunology. - 1988. - Vol. 141. - P. 1543-1549.

195. IL-6/sIL-6R trans-signalling, but not TNF-a induced angiogenesis in a HUVEC and synovial cell co-culture system / M. Hashizume, N. Hayakawa, M. Suzuki, M. Mihara // Rheumatology International. - 2009. - Vol. 29. - P. 14491454.

196. IL-8 Directly Enhanced Endothelial Cell Survival, Proliferation, and Matrix Metalloproteinases Production and Regulated Angiogenesis / A. Li, S. Dubey, M. L. Varney [et al.] // Journal of Immunology. - 2003. - Vol. 170. - P. 3369-3376.

197. Imaging and quantifying solute transport across periosteum: implications for muscle-bone crosstalk / X. Lai, C. Price, X. L. Lu [et al.] // Bone. - 2014. - Vol. 66. - P. 82-89.

198. Improvement in the anti-inflammatory profile with lifelong physical exercise is related to clock genes expression in effector-memory CD4+ T cells in master athletes / A. A. de Souza Teixeira, L. G. Minuzzi, F. S. Lira [et al.] // Exercise Immunology Review. - 2021. - Vol. 27. - P. 67-83.

199. In situ microdialysis of intramuscular prostaglandin and thromboxane in contracting skeletal muscle in humans / M. Karamouzis, H. Langberg, D. Skovgaard [et al.] // Acta Physiologica Scandinavica. - 2001. - Vol. 171, № 1. - P. 71-76.

200. In vivo evidence for a dependence on interleukin 15 for survival of natural killer cells / M. A. Cooper, J. E. Bush, T. A. Fehniger [et al.] // Blood. -2002. - Vol. 100, № 10. - P. 3633-3638.

201. Increased levels of leukemia inhibitory factor mRNA in muscular dystrophy and human muscle trauma / K. A. Reardon, R. M. Kapsa, J. Davis [et al.] // Muscle Nerve. - 2000. - Vol. 23, № 6. - P. 962-966.

202. Inflammation, physical activity, and chronic disease: An evolutionary perspective / R. C. Burini, E. Anderson, J. L. Durstine, J. A. Carson // Sports Medicine and Health Science. - 2020. - Vol. 2, № 1. - P. 1-6.

203. Influence of intermittent hypoxia interval training on exercise-dependent erythrocyte NOS activation and blood pressure in diabetic patients / D. Ladage, C. Braunroth, E. Lenzen [et al.] // Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. - 2012. - Vol. 90, № 12. - P. 1591-1598.

204. Influence of light stress on the metabolic effects of runing loads in mice with a model of diabetes mellitus type II / A. N. Zakharova, K. G. Milovanova, A.

A. Orlova [et al.] // Journal of Stress Physiology & Biochemistry. - 2023. - Vol. 19, № 3. - P. 152-159. - URL:

http://www.jspb.ru/issues/2023/N3/JSPB_2023_3_152-159.html (access date: 17.09.2024).

205. Instruction manual enzyme-linked immunosorbent assay kit for human Nitric Oxide Synthase 3 // Cloud-clone corp. - Katy, 2013. - 9 p. - URL: https://www.cloud-clone.com/manual/ELISA-Kit-for-Nitric-Oxide-Synthase-3--Endothelial-(NOS3)-SEA868Hu.pdf (access date: 17.09.2024).

206. Insulin signalling in the heart / L. Bertrand, S. Horman, C. Beauloye [et al.] // Cardiovascular Research. - 2008. - Vol. 79, № 2. - P. 238-248.

207. Intensity-dependent gene expression after aerobic exercise in endurance-trained skeletal muscle / D. V. Popov, P. A. Makhnovskii, N. S. Kurochkina [et al.]. - DOI: 10.5114/biolsport.2018.77828 // Biology of Sport. -2018. - Vol. 35. - P. 277-289. - URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6224845/pdf/JBS-35-77828.pdf (access date: 17.09.2024).

208. Interleukin 6 induces the expression of vascular endothelial growth factor / T. Cohen, D. Nahari, L. W. Cerem [et al.] // Journal of Biological Chemistry. - 1996. - Vol. 271, № 2 - P. 736-741.

209. Interleukin-15 facilitates muscle regeneration through modulation of fibro/adipogenic progenitors // X. Kang, M. Y. Yang, Y. X. Shi [et al.] // Cell Communication and Signaling. - 2018. - Vol. 16, № 1. - P. 1-12.

210. Interleukin-15 in obesity and metabolic dysfunction: current understanding and future perspectives / Y. Duan, F. Li, W. Wang [et al.]. - DOI: 10.1111/obr.12567 // Obesity Reviews. - 2017. - Vol. 18, № 10. - P. 1147-1158. - URL: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1111/obr.12567 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

211. Interleukin-15 increases glucose uptake in skeletal muscle. An antidiabetogenic effect of the cytokine / S. Busquets, M. Figueras, V. Almendro [et al.]. - DOI: 10.1016/j.bbagen.2006.09.001 // Biochimica et Biophysica Acta. -

2006. - Vol. 1760. - P. 1613-1617. - URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0304416506002571 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

212. Interleukin-6 and associated cytokine responses to an acute bout of high-intensity interval exercise: the effect of exercise intensity and volume / T. Cullen, A. W. Thomas, R. Webb, M. G. Hughes. - DOI: 10.1139/apnm-2015-0640 // Applied Physiology, Nutrition, and Metabolism. - 2016. - Vol. 41, № 8. - P. 803-808. - URL: https://cdnsciencepub.com/doi/abs/10.1139/apnm-2015-0640?journalCode=apnm (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

213. Interleukin-6 and soluble interleukin-6 receptors in the synovial fluids from rheumatoid arthritis patients are responsible for osteoclast-like cell formation / S. Kotake, K. Sato, K. J. Kim [et al.] // Journal of Bone and Mineral Research. -1996. - Vol. 11. - P. 88-95.

214. Interleukin-6 deficient mice are protected from bone loss caused by estrogen depletion / V. Poli, R. Balena, E. Fattori [et al.] // EMBO Journal. - 1994. - Vol. 13. - P. 1189-1196.

215. Interleukin-6 delays gastric emptying in humans with direct effects on glycemic control / L. L. Lehrskov, M. P. Lyngbaek, L. Soederlund [et al.]. - DOI: 10.1016/j.cmet.2018.04.008 // Cell Metabolism. - 2018. - Vol. 27, № 6. - P. 1201-1211. - URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1550413118302511/pdf^?md5 =59ba55c 170935b142b915e4469d97144&pid= 1-s2.0-S1550413118302511-main.pdf (access date: 17.09.2024).

216. Interleukin-6 increases insulin-stimulated glucose disposal in humans and glucose uptake and fatty acid oxidation in vitro via AMP-activated protein kinase / A. L. Carey, G. R. Steinberg, S. L. Macaulay [et al.] // Diabetes - 2006. -Vol. 55. - P. 2688-2697.

217. Interleukin-6 is a potent thrombopoietic factor in vivo in mice / T. Ishibashi, H. Kimura, Y. Shikama [et al.] // Blood. - 1989. - Vol. 74. - P. 12411244.

218. Interleukin-6 production in contracting human skeletal muscle is influenced by pre-exercise muscle glycogen content / A. Steensberg, M. A. Febbraio, T. Osada [et al.] // Journal of Physiology. - 2001. - Vol. 537. - P. 633639.

219. Interleukin-6 regulates the zinc transporter Zip14 in liver and contributes to the hypozincemia of the acute-phase response / J. P. Liuzzi, L. A. Lichten, S. Rivera [et al.] // Proceedings of the National Academy of Sciences. -2005. - Vol. 102. - P. 6843-6848.

220. Interleukin-6 stimulates lipolysis and fat oxidation in humans / H. G. Van, A. Steensberg, M. Sacchetti [et al.]. - DOI: 10.1210/jc.2002-021687 // Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. - 2003. - Vol. 88, № 7. - P. 3005-3010. - URL: https://academic.oup.com/jcem/article-pdf/88/7/3005/9148845/jcem3005.pdf (access date: 17.09.2024).

221. Interleukin-6-mediated signaling in adrenal medullary chromaffin cells / D. E. Jenkins, D. Sreenivasan, F. Carman [et al.]. - DOI: 10.1111/jnc.13870 // Journal of Neurochemistry. - 2016. - Vol. 139, № 6. - P. 1138-1150. - URL: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1111/jnc.13870 (access date: 17.09.2024).

222. Investigation of the Almar Blue (resazurin) fluorescent dye for the assessment of mammalian cell cytotoxicity / J. O'Brien, I. Wilson, T. Orton, F. Pognan // FEBS Journal. - 2000. - Vol. 267. - P. 5421-5426.

223. Irisin in response to exercise in humans with and without metabolic syndrome / J. Y. Huh, A. Siopi, V. Mougios [et al.] // Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. - 2015. - Vol. 100. - P. 453-457.

224. Jovasevic V. Formation of memory assemblies through the DNA-sensing TLR9 pathway / V. Jovasevic, E. M. Wood, A. Cicvaric // Nature. - 2024. - Vol. 628, № 8006. - P. 145-153.

225. Kalinkovich A. Sarcopenic obesity or obese sarcopenia: a cross talk between age-associated adipose tissue and skeletal muscle inflammation as a main mechanism of the pathogenesis / A. Kalinkovich, G. Livshits // Ageing Research Reviews. - 2017. - Vol. 35. - P. 200-221.

226. Kapilevich L. Effects of forced running in mice with type II diabetes mellitus model / L. Kapilevich, A. Zakharova, K. Milovanova, A. Orlova, O. Kollantay, I. Shuvalov // 9th International Congress of pathophysiology and 5th Congress of physiological science of Serbia : final program and abstract book. Belgrade, Serbia, July 04-06 2023. - Belgrade, 2023. - P. 127.

227. Kapilevich L. V. Characteristic of the plasma levels of cytokines after physical exercises in athletes and untrained volunteers / L. V. Kapilevich, A. N. Zakharova, A. V. Kabachkova, T. A. Kironenko, E. Yu. Dyakova, K. G. Milovanova, S. N. Orlov // Olympic sport and sport for all : proceedings of the XXII International Scientific Congress. Tbilisi, Georgia, October 25-28, 2018. - Tbilisi, 2018.

228. Kapilevich L. V. General trends of myokines production under physical exercises of a different types and intensity / L. V. Kapilevich, A. N. Zakharova, T. A. Kironenko, K. G. Milovanova, A. V. Kabachkova, S. N. Orlov // Abstracts of the 8th International congress of pathophysiology. Bratislava, Slovakia, September 05-08, 2018. - Bratislava, 2018. - P. 91-92.

229. Kapilevich L. V. Physical activity as major factor of myokines producing: regulation mechanisms / L. V. Kapilevich, A. N. Zakharova, E. Y. Dyakova, Y. G. Kalinnikova, T. A. Kironenko, K. G. Milovanova, A. A. Orlova, A. V. Chibalin, S. N. Orlov // Skeletal muscle research - from cell to human 2019 : book of abstracts. Ljubljana, Slovenia, May 26-28, 2019. -Ljubljana, 2019. - P. 30-31.

230. Lactate as a myokine and exerkine: drivers and signals of physiology and metabolism / G. A. Brooks, A. D. Osmond, J. A. Arevalo [et al.] // Journal of Applied Physiology. - 2023. - Vol. 134, № 3. - P. 1-20.

231. Lara-Castillo N. Bone-Muscle Mutual Interactions / N. Lara-Castillo, M. L. Johnson. - DOI: 10.1007/s11914-020-00602-6 // Current Osteoporosis Reports. - 2020. - Vol. 18. - P. 408-421. - URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s11914-020-00602-6 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

232. Leal L. G. Physical Exercise-Induced Myokines and Muscle-Adipose Tissue Crosstalk: A Review of Current Knowledge and the Implications for Health and Metabolic Diseases / L. G. Leal, M. A. Lopes, M. L. Batista Jr. -DOI: 10.3389/fphys.2018.01307 // Frontiers in Physiology. - 2018. - Vol. 9. - P. 1 -17. - URL: https://www.frontiersin.org/journals/physiology/articles/10.3389/fphys.2018.01307 /pdf?isPublishedV2=false (access date: 17.09.2024).

233. Leucocytes, cytokines and satellite cells: What role do they play in muscle damage and regeneration following eccentric exercise? / G. Paulsen, U. R. Mikkelsen, T. Raastad, J. M. Peake // Exercise Immunology Review. - 2012. -Vol. 18. - P. 42-97.

234. Leukemia inhibitory factor increases glucose uptake in mouse skeletal muscle / N. Brandt, H. M. O'Neill, M. Kleinert [et al.]. - DOI: 10.1152/ajpendo.00313.2014 // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2015. - Vol. 309, № 2. - P. E142-E153. - URL: https://journals.physiology.org/doi/epdf/10.1152/ajpendo.00313.2014 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

235. Leukemia inhibitory factor is linked to regulatory transplantation tolerance / S. M. Metcalfe, T. J. Watson, S. Shurey [et al.]. - DOI: 10.1097/01.TP.0000149324.42994.38 // Transplantation. - 2005. - Vol. 79. - P. 726-730. - URL: https://journals.lww.com/transplantjournal/fulltext/2005/03270/leukemia_inhibitor y_factor_is_linked_to_regulatory.20.aspx (access date: 17.09.2024).

236. Leukemia inhibitory factor protects cholangiocarcinoma cells from drug-induced apoptosis via a PI3K/AKT-dependent Mcl-1 activation / S. D.

Morton, M. Cadamuro, S. Brivio [et al.] // Oncotarget - 2015. - Vol. 6. - P. 26052-26064.

237. Leukemia Inhibitory Factor: A Potential Biomarker and Therapeutic Target in Pancreatic Cancer / E. Wrona, P. Potemski, F. Sclafani, M. Borowiec // Archivum Immunologiae et Therapiae Experimentalis (Warsz). - 2021. - Vol. 69, № 1. - P. 1-8.

238. LIF is a contraction-induced myokine stimulating human myocyte proliferation / C. Broholm, M. J. Laye, C. Brandt [et al.] // Journal of Applied Physiology. - 2011. - Vol. 111, № 1. - P. 251-259.

239. LIF is a contraction-induced myokine stimulating human myocyte proliferation / C. Broholm, M. J. Laye, C. Brandt [et al.] // Journal of Applied Physiology. - 2011. - Vol. 111, № 1. - P. 251-259.

240. Llanos P. Reactive Oxygen and Nitrogen Species (RONS) and Cytokines-Myokines Involved in Glucose Uptake and Insulin Resistance in Skeletal Muscle / P. Llanos, J. Palomero. - DOI:10.3390/cells11244008 // Cells. -2022. - Vol. 11, № 24. - P. 1-19. - URL: https://www.mdpi.com/2073-4409/11/24/4008/pdf?version=1671507661 (access date: 17.09.2024).

241. Mansingh S. Time to train: the involvement of the molecular clock in exercise adaptation of skeletal muscle / S. Mansingh, C. Handschin. - DOI: 10.3389/fphys.2022.902031 // Frontiers in Physiology. - 2022. - Vol. 13. - P. 1-8. - URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC9081842/pdf/fphys-13-902031.pdf (access date: 17.09.2024).

242. Marathon running transiently increases c-Jun NH2-terminal kinase and p38 activities in human skeletal muscle / M. D. Boppart, S. Asp, F. P. Wojtaszewski Jorgen [et al.] // Journal of Physiology. - 2000. - Vol. 526, № 3. -P. 663-669.

243. Matsushima K. Interleukin-8: An evolving chemokine / K. Matsushima, D. Yang, J. J. Oppenheim. - DOI: 10.1016/j.cyto.2022.155828 // Cytokine. - 2022. - Vol. 153. - P. 1-11. - URL:

https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1043466622000370 (access date: 17.09.2024).

244. Mechanically loaded myotubes affect osteoclast formation / P. Juffer, R. T. Jaspers, J. Klein-Nulend, A. D. Bakker // Calcified Tissue International. -2014. - Vol. 94, № 3. - P. 319-326.

245. Medzhitov R. The spectrum of inflammatory responses. - DOI: 10.1126/science.abi5200 // Science. - 2021. - Vol. 374, № 6571. - P. 1070-1075. - URL: https://www.science.org/doi/10.! 126/science.abi5200?url_ver=Z39.88-2003&rfr_id=ori:rid:crossref.org&rfr_dat=cr_pub%20%200pubmed (access date: 17.09.2024).

246. Metabolic Adaptation in Obesity and Type II Diabetes: Myokines, Adipokines and Hepatokines / K. J. Oh, D. S. Lee, W. K. Kim [et al.] // International journal of molecular sciences. - 2016. - Vol. 18, № 1. - P. 1-31.

247. Metabolic and mitogenic signal transduction in human skeletal muscle after intense cycling exercise / M. Yu, N. K. Stepto, A. V. Chibalin [et al.] // Journal of Physiology. - 2003. - Vol. 546, № 2. - P. 327-335.

248. Metformin reduces intracellular reactive oxygen species levels by upregulating expression of the antioxidant thioredoxin via the AMPK-FOXO3 pathway / X. Hou, J. Song, X. N. Li [et al.] // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 2010. - Vol. 396, № 2. - P. 199-205.

249. Minke B. TRP channel proteins signal transduction / B. Minke, B. Cook // Physiological Reviews. - 2002. - Vol. 82. - P. 429-472.

250. Miyatake S. Contracting C2C12 myotubes releas CCL2 in an NF-kB-dependent manner to induce monocyte chemoattraction / S. Miyatake, P. J. Bilan, N. J. Pillon // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. -2016. - Vol. 310, № 2. - P. E160-E170.

251. Moderate-intensity exercise alters markers of alternative activation in circulating monocytes in females- a putative role for PPARgama / J. S. Ruffino, N. A. Davies, K. Morris [et al.] // European Journal of Applied Physiology. - 2016. -Vol. 116, № 9. - P. 1671-1682.

252. Muscle-derived expression of the chemokine CXCL1 attenuates diet-induced obesity and improves fatty acid oxidation in the muscle / L. Pedersen, C. H. Olsen, B. K. Pedersen [et al.] // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2012. - Vol. 302, № 7. - P. 831-840.

253. Myokine expression in muscle and myotubes in response to exercise stimulation / J. D. Covington, C. S. Tam, S. Bajpeyi [et al.] // Medicine & Science in Sports & Exercise. - 2015. - Vol. 48, № 3. - P. 384-390.

254. Myokine IL-15 regulates the crosstalk of co-cultured porcine skeletal muscle satellite cells and preadipocytes / Y. Li, F. Li, B. Lin [et al.] // Molecular Biology Reports. - 2014. - Vol. 41, № 11. - P. 7543-7553.

255. Myokines and Resistance Training: A Narrative Review / B. E. M. Zunner, N. B. Wachsmuth, M. L. Eckstein [et al.] // International Journal of Molecular Sciences. - 2022. - Vol. 23. - P. 1-23.

256. Myostatin, activin receptor lib, and follistatin-like-3 gene expression are altered in adipose tissue and skeletal muscle of obese mice / D. L. Allen, A. S. Cleary, K. J. Speaker [et al.] // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2008. - Vol. 294. - P. 918-927.

257. Myostatin/activin blocking combined with exercise reconditions skeletal muscle expression profile of mdx mice / H. Kainulainen, K. G. Papaioannou, M. Silvennoinen [et al.] // Molecular and Cellular Endocrinology. -2014. - Vol. 399. - P. 131-142.

258. Nadeau L. Interleukin-15 as a myokine: mechanistic insight into its effect on skeletal muscle metabolism / L. Nadeau, C. Aguer. - DOI: 10.1139/apnm-2018-0022 // Applied Physiology, Nutrition, and Metabolism. -2019. - Vol. 44, № 3. - P. 229- 238. - URL: https://cdnsciencepub.com/doi/10.1139/apnm-2018-0022 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

259. Nedachi T. Contractile C2C12 myotube model for studying exercise-inducible responses in skeletal muscle / T. Nedachi, H. Fujita, Kanzak // American

Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2008. - Vol. 295, № 5 -P. E1191-E1204.

260. NFkappaB1 is a suppressor of neutrophil-driven hepatocellular carcinoma / C. L. Wilson, D. Jurk, N. Fullard [et al.]. - DOI: 10.1038/ncomms7818 // Nature Communications. - 2015. - Vol. 6. - P. 1-15. -URL: https://www.nature.com/articles/ncomms7818.pdf (access date: 17.09.2024).

261. Nicola N. A. Leukemia inhibitory factor (LIF) / N. A. Nicola, J. J. Babon // Cytokine & Growth Factor Reviews. - 2015. - Vol. 26. - P. 533-544.

262. Nishii K. Review of the health-promoting effects of exercise and the involvement of myokines / K. Nishii, N. Aizu, K. Yamada // Fujita medical journal. - 2023. - Vol. 9, № 3. - P. 171-178.

263. Nitric oxide production is a proximal signaling event controlling exercise-induced mRNA expression in human skeletal muscle / A. Steensberg, C. Keller, T. Hillig [et al.] // FASEB Journal. - 2007. - Vol. 21, № 11. - P. 26832694.

264. Nitrite reduces ischemia/reperfusion-induced muscle damage and improves survival rates in rat crush injury model / I. Murata, R. Nozaki, K. Ooi [et al.] // Journal of Trauma and Acute Care Surgery. - 2012. - Vol. 72, № 6. - P. 1548-1554.

265. NKCC1 and NKCC2: The pathogenetic role of cation-chloride cotransporters in hypertension / S. N. Orlov, S. V. Koltsova, L. V. Kapilevich [et al.] // Genes & Diseases. - 2015. - Vol. 2, № 2. - P. 186-196.

266. Norrby K. Interleukin-8 and de novo mammalian angiogenesis // Cell Proliferation. - 1996. - Vol. 29. - P. 315-323.

267. Ochi E. Muscular hypertrophy and changes in cytokine production after eccentric training in the rat skeletal muscle / E. Ochi, K. Nakazato, N. Ishii // Journal of Strength and Conditioning Research. - 2011. - Vol. 25, № 8. - P. 22832292.

268. Olefsky J. M. Macrophages, Inflammation, and Insulin Resistance / J. M. Olefsky, C. K. Glass. - DOI: 10.1146/ANNUREV-PHYSIOL-021909-135846

// Annual Review of Physiology. - 2010. - Vol. 72. - P. 219-246. - URL: https://www.annualreviews.0rg/c0ntent/j oumals/10.1146/annurev-physiol-021909-135846 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

269. Origin and function of stress-induced IL-6 in murine models / H. Qing, R. Desrouleaux, K. Israni-Winger [et al.] // Cell. - 2020. - Vol. 182. - P. 372-387.

270. Orlov S. N. Salt and gene expression: evidence for [Na+]i/[K+]i-mediated signaling pathways / S. N. Orlov, P. Hamet // Pflügers Archiv European Journal of Physiology. - 2015. - Vol. 467. - P. 489-498.

271. Ostrowski K. Physical activity and plasma interleukin-6 in humans -effect of intensity of exercise / K. Ostrowski, P. Schjerling, B. K. Pedersen // European Journal of Applied Physiology. - 2000. - Vol. 83, № 6. - P. 512-515.

272. Otis J. S. Stretch-induced myoblast proliferation is dependent on the COX2 pathway / J. S. Otis, T. J. Burkholder, G. K. Pavlath // Experimental Cell Research. - 2005. - Vol. 310, № 2. - P. 417-425.

273. Pan X. Effects of Tai Chi exercise on blood pressure and plasma levels of nitric oxide, carbon monoxide and hydrogen sulfide in real-world patients with essential hypertension / X. Pan, Y. Zhang, S. Tao // Clinical and Experimental Hypertension. - 2014. - Vol. 37, № 1. - P. 8-14.

274. Patidar M. Interleukin 15: A key cytokine for immunotherapy / M. Patidar, N. Yadav, S. K. Dalai // Cytokine & Growth Factor Reviews. - 2016. -Vol. 31. - P. 49-59.

275. Pedersen B. K. Adolph distinguished lecture: muscle as an endocrine organ: IL-6 and other myokines / B. K. Pedersen, F. Edward // Journal of Applied Physiology. - 2009. - Vol. 107, № 4. - P. 1006-1014.

276. Pedersen B. K. Muscle as a secretory organ // Comprehensive Physiology. - 2013. - Vol. 3., № 3 - P. 1337-1362.

277. Pedersen B. K. Muscle as an endocrine organ: focus on muscle-derived interleukin-6 / B. K. Pedersen, M. Febbraio // Physiological Reviews. - 2008. -Vol. 88, № 4. - P. 1379-1406.

278. Pedersen B. K. Muscles, exercise and obesity: skeletal muscle as a secretory organ / B. K. Pedersen, M. A. Febbraio // Nature Reviews Endocrinology. - 2012. - Vol. 8, № 8. - P. 457-465.

279. Periodization of carbohydrate intake: short-term effect on performance / L. A. Marquet, C. Hausswirth, O. Molle [et al.]. - DOI: 10.3390/nu8120755 // Nutrients. - 2016. - Vol. 8. - P. 1-13. - URL: https://www.mdpi.com/2072-6643/8/12/755/pdf?version=1480067835 (access date: 17.09.2024).

280. Petersen A. M. W. The anti-inflammatory effect of exercise / A. M. W. Petersen, B. K. Pedersen. - DOI: 10.1152/japplphysiol.00164.2004J // Journal of Applied Physiology. - 2005. - Vol. 98. - P. 1154-1162. - URL: https://journals.physiology.org/doi/epdf/10.1152/japplphysiol.00164.2004 (access date: 17.09.2024).

281. Physiological and Molecular Dissection of Daily Variance in Exercise Capacity / S. Ezagouri, Z. Zwighaft, J. Sobel [et al.]. - DOI: 10.1016/j.cmet.2019.03.012 // Cell Metabolism. - 2019. - Vol. 30, № 1. - P. 7891. - URL: https://weizmann.elsevierpure.com/ws/portalfiles/portal/24794073/ga_CellMetabol ism_PhysiologicalandMolecularDissection_suppinfo_AM2019.pdf (access date: 17.09.2024).

282. Pierce J. R. IL-15 concentrations in skeletal muscle and subcutaneous adipose tissue in lean and obese humans: local effects of IL-15 on adipose tissue lipolysis / J. R. Pierce, J. M. Maples, R. C. Hickner // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2015. - Vol. 308, № 12. - P. 11311139.

283. Post-exercise Endothelium-Dependent Vasodilation Is Dependent on Training Status / L. V. Kapilevich, V. V. Kologrivova, A. N. Zakharova, L. Mourot // Frontiers in Physiology. - 2020. - Vol. 11. - P. 1-8.

284. Powers S. K. Exercise-induced oxidative stress: cellular mechanisms and impact on muscle force production / S. K. Powers, M. J. Jackson // Physiological Reviews. - 2008. - Vol. 88, № 4. - P. 1243-1276.

285. Priming mobilized peripheral blood mononuclear cells with the "activated platelet supernatant" enhances the efficacy of cell therapy for myocardial infarction of rats / J. Kang, J. Hur, J. A. Kang [et al.]. - DOI: 10.1111/1755-5922.12194 // Cardiovascular Therapeutics. - 2016. - Vol. 34. - P. 245-253. - URL: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1111/1755-5922.12194 (access date: 17.09.2024).

286. Proand anti-inflammatory cytokine balance in strenuous exercise in humans / K. Ostrowski, T. Rohde, S. Asp [et al.] // Journal of Physiology. - 1999. - Vol. 515. - P. 287-291.

287. Product information and manual Human IL-6 Platinum ELISA// eBioscience. - [S. l.], 2014. - 34 p.

288. Product information and manual Human IL-8/NAP-1 Platinum ELISA // eBioscience. - [S. l.], 2014. - 91 p.

289. Product information and manual Human LIF Platinum ELISA // eBioscience. - [S. l.], 2014. - 32 p.

290. Product information and manual Mouse CXCL-1 Platinum ELISA // eBioscience. - [S. l.], 2014. - 91 p.

291. Product information and manual Mouse IL-6 Platinum ELISA // eBioscience. - [S. l.], 2014. - 34 p.

292. Product information and manual Mouse LIF Platinum ELISA // eBioscience. - [S. l.], 2014. - 32 p.

293. Production of interleukin-6 in contracting human skeletal muscles can account for the exercise-induced increase in plasma interleukin-6 / A. Steensberg, G. Van Hall, T. Osada [et al.] // Journal of Physiology. - 2000. - Vol. 15. - P. 237-242.

294. Prostaglandin and myokine involvement in the cyclooxygenase-inhibiting drug enhancement of skeletal muscle adaptations to resistance exercise in older adults / T. A. Trappe, R. A. Standley, B. Jemiolo [et al.] // American Journal of Physiology - Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. -2013. - Vol. 304. - P. 198-205.

295. Prostaglandin E2 induces transcription of skeletal muscle mass regulators interleukin-6 and muscle RING finger-1 in humans / R. A. Standley, S. Z. Liu, B. Jemiolo, [et al.] // Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids. - 2013. - Vol. 88. - P. 361-364.

296. Protective effect of myokine IL-15 against H2O2-mediated oxidative stress in skeletal muscle cells / F. Li, Y. Li, Y. Tang [et al.] // Molecular Biology Reports. - 2014. - Vol. 41, № 11. - P. 7715-7722.

297. Protective effect of myokine IL-15 against H2O2-mediated oxidative stress in skeletal muscle cells / F. Li, Y. Li, Y. Tang [et al.] // Molecular Biology Reports. - 2014. - Vol. 41, № 11. - P. 7715-7722.

298. Protein measurement with the Folin phenol reagent / O. H. Lowry, N. J. Rosebrough, A. Farr, R. J. Randall // Journal of Biological Chemistry. - 1951. -Vol. 193. - P. 265-275.

299. Protein-tyrosine kinase Pyk2 mediates endothelin-induced p38 MAPK activation in glomerular mesangial cells / A. Sorokin, P. Kozlowski, L. Graves [et al.] // Journal of Biological Chemistry. - 2001. - Vol. 276, № 24. - P. 2152121528.

300. Proteomics. Tissue-based map of the human proteome / M. Uhlen, L. Fagerberg, B. M. Hallstrom [et al.] // Science. - 2015. - P. 1-11.

301. Proud C. G. Signalling to translation: how signal transduction pathways control the protein synthetic machinery // Biochemical Journal. - 2007. - Vol. 403, № 2. - P. 217-234.

302. Quinn L. S. Interleukin-15: A novel anabolic cytokine for skeletal muscle / L. S. Quinn, K. L. Haugk, K. H. Grabstein // Endocrinology. - 1995. -Vol. 136, № 6. - P. 3669-3672.

303. Rankin L. C. Beyond host defense: Emerging functions of the immune system in regulating complex tissue physiology / L. C. Rankin, D. Artis // Cell. -2018. - Vol. 173. - P. 554-567.

304. Rask-Madsen C. Tissue-specific insulin signaling, metabolic syndrome, and cardiovascular disease / C. Rask-Madsen, C. R. Kahn. - DOI:

10.1161/ATVBAHA.111.241919 // Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. - 2012. - Vol. 32. - P. 2052-2059.

305. RayBio Human IL-15 ELISA : user manual // RayBiotech. - [S. l.], 2012. - 14 p.

306. Reduction of AMP-activated protein kinase alpha2 increases endoplasmic reticulum stress and atherosclerosis in vivo / Y. Dong, M. Zhang, B. Liang [et al.] // Circulation. - 2010. - Vol. 121, № 6. - P. 792-803.

307. Regulation of angiopoietin-like protein 4 during and after exercise / F. Northeim, M. Hjorth, T. M. Langieite [et al.] // Physiological Reports. - 2014. -Vol. 2, № 8. - P. 1-12.

308. Regulation of inducible nitric oxide synthase (iNOS) and its potential role in insulin resistance, diabetes and heart failure / S. S. Soskic, B. D. Dobutovic, E. M. Sudar [et al.] // Open Cardiovascular Medicine Journal. - 2011. - Vol. 5. -P. 153-163.

309. Regulation of Muscle Glycogen Metabolism during Exercise: Implications for Endurance Performance and Training Adaptations / M. Hearris, K. Hammond, J. Fell, J. Morton. - DOI: 10.3390/nu10030298 // Nutrients. - 2018. -Vol. 10, № 3. - P 1-21. - URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5872716/pdf/nutrients-10-00298.pdf (access date: 17.09.2024).

310. Regulation of nitric oxide production in limb and ventilatory muscles during chronic exercise training / T. Vassilakopoulos, G. Deckman, M. Kebbewar [et al.] // American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. - 2003. - Vol. 284, № 3. - P. 452-457.

311. Repeated transient mRNA bursts precede increases in transcriptional and mitochondrial proteins during training in human skeletal muscle / Ch. G. R. Perry, J. Lally, G. P. Holloway [et al.]. - DOI:10.1113/jphysiol.2010.199448 // Journal of Physiology. - 2010. - Vol. 588, № 23. - P. 4795-4810. - URL: https://physoc.onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1113/jphysiol.2010.199448 (access date: 17.09.2024).

312. Resistance exercise and cyclooxygenase (COX) expression in human skeletal muscle: implications for COX-inhibiting drugs and protein synthesis / E. M. Weinheimer, B. Jemiolo, C. C. Carroll [et al.] // American Journal of Physiology - Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. - 2007. - Vol. 292. - P. R2241-R2248.

313. Rheb GTPase is a direct target of TSC2 GAP activity and regulates mTOR signaling / K. Inoki, Y. Li, T. Xu [et al.] // Genes & Development. - 2003.

- Vol. 17, № 15. - P. 1829-1834.

314. Role of myokines in exercise and metabolism / B. K. Pedersen, T. C. A. Akerstrom, A. R. Nielsen [et al.] // Journal of Applied Physiology. - 2007. - Vol. 103, № 3. - P. 1093-1098.

315. Role of the nitric oxide pathway in AMPK-mediated glucose uptake and GLUT4 translocation in heart muscle / J. Li, X. Hu, P. Selvakumar [et al.] // American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. - 2004. - Vol. 287, № 5. - P. 834-841.

316. Rose-John S. Interleukin-6 Family Cytokines // Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. - 2018. - Vol. 10. - P. 1-17.

317. Rosiglitazone reduces glucose-induced oxidative stress mediated by NAD(P)H oxidase via AMPK-dependent mechanism / G. Ceolotto, A. Gallo, I. Papparella [et al.] // Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. - 2007. -Vol. 27, № 12. - P. 2627-2633.

318. Sanderson J. B. A system of Surgery / J. B. Sanderson. - 2nd ed. -London : Longmans , Green and Co, 1871. - 230 p.

319. Scheele C. ROS and myokines promote muscle adaptation to exercise / C. Scheele, S. Nielsen, B. K. Pedersen // Trends in Endocrinology & Metabolism.

- 2009. - Vol. 20. - P. 95-99.

320. Schoenfeld B. J. The Mechanisms of Muscle Hypertrophy and Their Application to Resistance Training. - DOI: 10.1519/JSC.0b013e3181e840f3 // The Journal of Strength and Conditioning Research. - 2010. - Vol. 24. - P. 2857-2872.

- URL: https://journals.lww.com/nsca-

jscr/_layouts/15/oaks.journals/downloadpdf.aspx

?trckng_src_pg=ArticleViewer&an=00124278-201010000-00040 (access date: 17.09.2024).

321. Schoner W. Endogenous and exogenous cardiac glycosides: their role in hypertension, salt metabolism, and cell growth / W. Schoner, G. Scheiner-Bobis // American Journal of Physiology-Cell Physiology. - 2007. - Vol. 293. - P. C509-C536.

322. Searching for the exercise factor: is IL-6 a candidate ? / B. K. Pedersen, A. Steensberg, C. Fischer [et al.] // Journal of Muscle Research and Cell Motility. - 2003. - Vol. 24, № 2-3. - P. 113-119.

323. Severinsen M. C. K. Muscle-organ crosstalk: the emerging roles of myokines / M. C. K. Severinsen, B. K. Pedersen. - DOI: 10.1210/endrev/bnaa016 // Endocrine Reviews. - 2020. - Vol. 41, № 4. - P. 594-609. - URL: https://academic.oup.com/edrv/article-pdf/41/4/594/41724064/bnaa016.pdf (access date: 17.09.2024).

324. Sharples A. P. Exercise and DNA methylation in skeletal muscle / A. P. Sharples, R. A. Seaborne // Sports, Exercise, and Nutritional Genomics: Current Status and Future Directions. - London : Academic Press, 2019. - P. 211-229.

325. Signaling kinase AMPK activates stress-promoted transcription via histone H2B phosphorylation / D. Bungard, B. J. Fuerth, P. Zeng [et al.] // Science. - 2010. - Vol. 329, № 5996. - P. 1201-1205.

326. Signals from the Niche: Insights into the Role of IGF-1 and IL-6 in Modulating Skeletal Muscle Fibrosis / L. Forcina, C. Miano, B. Scicchitano, A. Musaro. - DOI: 10.3390/cells8030232 // Cells. - 2019. - Vol. 8. - P. 1-18. -URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6468756/pdf/cells-08-00232.pdf (access date: 17.09.2024).

327. Silver J. S. gp130 at the nexus of inflammation, autoimmunity, and cancer / J. S. Silver, C. A. Hunter. - DOI: 10.1189/jlb.0410217 // Journal of Leukocyte Biology. - 2010. - Vol. 88. - P. 1145-1156. - URL:

https://academic.oup.com/jleukbio/article-abstract/88/6/1145/6959848 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

328. Skeletal muscle as an endocrine organ: Role of [Na+]i/[K+]i-mediated excitation-transcription coupling / L. V. Kapilevich, T. A. Kironenko, A. N. Zaharova [et al.] // Genes & Diseases. - 2015. - Vol. 2, № 4. - P. 328-336.

329. Skeletal muscle as potential central link between sarcopenia and immune senescence / C. Nelke, R. Dziewas, J. Minnerup [et al.]. - DOI: 10.1016/j.ebiom.2019.10.034 // EBioMedicine. - 2019. - Vol. 49. - P. 381-388. -URL: https://www.thelancet.com/action/showPdf?pii=S2352-3964%2819%2930704-2 (access date: 17.09.2024).

330. Skeletal muscle cell contraction reduces a novel myokine, chemokine (C-X-C motif) ligand 10 (CXCL10): Potential roles in exercise-regulated angiogenesis / Y. Ishiuchi, H. Sato, K. Tsujimura [et al.] // Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. - 2018. - Vol. 82. - P. 97-105.

331. Skeletal muscle secretion of IL-6 is muscle type specific: ex vivo evidence / A. P. Liang, A. T. Drazick, H. Gao, Y. Li. - DOI: 10.1016/J.BBRC.2018.09.042 // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 2018. - Vol. 505, № 1. - P. 146-150. - URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6185768/pdf/nihms-1507336.pdf (access date: 17.09.2024).

332. Skeletal myocytes are a source of interleukin-6 mRNA expression and protein release during contraction: evidence of fiber type specificity / N. Hiscock, M. H. S. Chan, T. Bisucci [et al.] // FASEB Journal. - 2004. - Vol. 18, № 9. - P. 992-994.

333. Spangenburg E. E. Multiple signaling pathways mediate LIF-induced skeletal muscle satellite cell proliferation / E. E. Spangenburg, F. W. Booth // American Journal of Physiology-Cell Physiology. - 2002. - Vol. 283, № 1. - P. 204-211.

334. Sprint interval and endurance training are equally effective in increasing muscle microvascular density and eNOS content in sedentary males /

M. Cocks, C. S. Shaw, S. O. Shepherd [et al.] // Journal of Physiology. - 2013. -Vol. 591, № 3. - P. 641-656.

335. Stretching and electrical stimulation reduce the accumulation of MyoD, myostatin and atrogin-1 in denervated rat skeletal muscle / T. L. Russo, S. M. Peviani, J. L. Durigan [et al.] // Journal of Muscle Research and Cell Motility. -2010. - Vol. 31, № 1. - P. 45-57.

336. Systems level understanding of circadian integration with cell physiology / A. R. Morris, D. L. Stanton, D. Roman, A. C. Liu. - DOI: 10.1016/j.jmb.2020.02.002 // Journal of Molecular Biology. - 2020. - Vol. 432. -P. 3547-3564. - URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC8934204/pdf/nihms-1788504.pdf (access date: 17.09.2024).

337. T cell activationassociated hepatic injury: mediation by tumor necrosis factors and protection by interleukin 6 / H. Mizuhara, E. O'Neill, N. Seki [et al.] // Journal of Experimental Medicine. - 1994. - Vol. 179. - P. 1529-1537.

338. Tanaka T. IL-6 in inflammation, immunity, and disease / T. Tanaka, M. Narazaki, T. Kishimoto // Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. - 2014. -Vol. 6, № 10. - P. 1-16.

339. The aging clock and circadian control of metabolism and genome stability / V. P. Belancio, D. E. Blask, P. Deininger [et al.] // Frontiers in Genetics. - 2015. - Vol. 5. - P. 1-7.

340. The effect of diabetes on endothelin, interleukin-8 and vascular endothelial growth factor-mediated angiogenesis in rats / E. L. Bek, M. A. McMillen, P. Scott [et al.] // Clinical Science. - 2002. - Vol. 103, Suppl 48. - P. 424S-429S.

341. The influence of acute resistance exercise on cyclooxygenase-1 and -2 activity and protein levels in human skeletal muscle / C. C. Carroll, D. T. O'Connor, R. Steinmeyer [et al.] // American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. - 2013. - Vol. 305, № 1. - P. 24-30.

342. The influence of fenibut and its salt with succinic acid on animals' resistance to forced dynamic and static physical loads / V. V. Bagmetova, A. N. Krivitskaya, I. N. Tyurenkov [et al.] // Fundamental Research. - 2012. - Vol. 4. -P. 243-246.

343. The leukemia inhibitory factor (LIF) and p21 mediate the TGFp tumor suppressive effects in human cutaneous melanoma / L. Humbert, M. Ghozlan, L. Canaff [et al.] // BMC Cancer. - 2015. - Vol. 15. - P. 1-16.

344. The origins, function, and regulation of T follicular helper cells / C. S. Ma, E. K. Deenick, M. Batten, S. G. Tangye // Journal of Experimental Medicine. - 2012. - Vol. 209. - P. 1241-1253.

345. The Physiopathologic Role of Oxidative Stress in Skeletal Muscle / B. M. Scicchitano, L. Pelosi, G. Sica, A. Musaro. - DOI: 10.1016/j.mad.2017.08.009 // Mechanisms of Ageing and Development. - 2018. - Vol. 170. - P. 37-44. -URL:

https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0047637417300581?via%3 Dihub (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.

346. The regulation of AMP-activated protein kinase by H(2)O(2) / S. L. Choi, S. J. Kim, K. T. Lee [et al.] // Biochemical and Biophysical Research Communications. - 2001. Vol. 287, № 1. - P. 92-97.

347. The role of IL-15 in gastrointestinal diseases: a bridge between innate and adaptive immune response / D. Pagliari, R. Cianci, S. Frosali [et al.] // Cytokine & Growth Factor Reviews. - 2013. - Vol. 24, № 5. - P. 455-466.

348. Time- and exercise-dependent gene regulation in human skeletal muscle / A. C. Zambon, E. L. McDearmon, N. Salomonis [et al.] // Genome Biology. - 2003. - Vol. 4. - P. 1-12.

349. Time course of proteolytic, cytokine, and myostatin gene expression after acute exercise in human skeletal muscle / E. Louis, U. Raue, Y. Yang [et al.] // Journal of Applied Physiology. - 2007. - Vol. 103. - P. 1744-1751.

350. Time course-dependent changes in the transcriptome of human skeletal muscle during recovery from endurance exercise: From inflammation to adaptive

remodeling / O. Neubauer, S. Sabapathy, K. J. Ashton [et al.] // Journal of Applied Physiology. - 2014. - Vol. 116. - P. 274-287.

351. Time of Exercise Specifies the Impact on Muscle Metabolic Pathways and Systemic Energy Homeostasis / S. Shogo, L. B. Astrid, S. Milena [et al.] // Cell Metabolism. - 2019. - Vol. 30, № 1. - P. 92-110.

352. Transcriptomic changes in C2C12 myotubes triggered by electrical stimulation: role of Ca2+i-mediated and Ca2+i-independent signaling and elevated [Na+]i/[K+]i ratio / S. V. Sidorenko, E. A. Klimanova, K. Milovanova [et al.] // Cell Calcium. - 2018. - Vol. 76. - P. 72-86.

353. Transcriptomic changes in Ca2+-depleted cells: role of elevated intracellular [Na+]/[K+] ratio / S. V. Koltsova, J. Tremblay, P. Hamet, S. N. Orlov // Cell Calcium. - 2015. - Vol. 58. - P. 317-324.

354. Transcriptomic changes triggered by hypoxia: evidence for HIF-la-independent, [Na+]i/[K+]i-mediated, excitation-transcription coupling / S. V. Koltsova, B. Shilov, J. G. Birulina [et al.] // PLoS One. - 2014. - Vol. 9, № 11. -P. 1-20.

355. Transcriptomic profiling of skeletal muscle adaptations to exercise and inactivity / N. J. Pillon, B. M. Gabriel, L. Dollet [et al.]. - DOI: 10.1038/s41467-019-13869-w // Nature Communications. - 2020. - Vol. 11. - P. 1-15. - URL: https://www.nature.com/articles/s41467-019-13869-w.pdf (access date: 17.09.2024).

356. Transcriptomic signature of resistance exercise adaptations: mixed muscle and fiber type specific profiles in young and old adults / U. Raue, T. A. Trappe, S. T. Estrem, [et al.] // Journal of Applied Physiology. - 2012. - Vol. 112. - P. 1625-1636.

357. Treadmill exercise promotes interleukin 15 expression in skeletal muscle and interleukin 15 receptor alpha expression in adipose tissue of high-fat diet rats / H. Yang, J. Chang, W. Chen [et al.] // Endocrine. - 2013. - Vol. 43. - P. 579-585.

358. Treadmill training effect on the myokines content in skeletal muscles of mice with a metabolic disorder model / A. N. Zakharova, T. A. Kironenko, K. G. Milovanova, [et al.] // Frontiers in Psychology. - 2021. - Vol. 12. - Article number 709039. - 13 p. - URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34858197 (access date: 18.09.2024). - DOI: 10.3389/fphys.2021.709039.

359. Treg versus Th17 lymphocyte lineages are cross-regulated by LIF versus IL-6 / W. Gao, L. Thompson, Q. Zhou [et al.]. - DOI: 10.4161/cc.8.9.8348 // Cell Cycle. - 2009. - Vol. 8. - P. 1444-1450. - URL: https://www.tandfonline.com/doi/epdf/10.4161/cc.8.9.8348?needAccess=true (access date: 17.09.2024).

360. Tricarboxylic acid cycle intermediate pool size and estimated cycle flux in human muscle during exercise / M. J. Gibala, D. A. MacLean, T. E. Graham [et al.] // American Journal of Physiology. - 1998. - Vol. 275, №. 2. - P. 235-242.

361. Ubiquitous [Na+]i/[K+]i-sensitive transcriptome in mammalian cells: evidence for Ca(2+)i-independent excitation-transcription coupling / S. V. Koltsova, Y. Trushina, M. Haloui [et al.] // PLoS One. - 2012. - Vol. 7, № 5. - P. 1-27.

362. Upregulated glial cell line-derived neurotrophic factor through cyclooxygenase-2 activation in the muscle is required for mechanical hyperalgesia after exercise in rats / S. Murase, E. Terazawa, K. Hirate [et al.] // Journal of Physiology. - 2013. - Vol. 591, № 12. - P. 3035-3048.

363. Upregulation of circulating IL-15 by treadmill running in healthy individuals: is IL-15 an endocrine mediator of the beneficial effects of endurance exercise? / Y. Tamura, K. Watanabe, T. Kantani [et al.] // Endocrine Journal. -2011. - Vol. 58. - P. 211-215.

364. Vargas N. A neuroinflammatory model for acute fatigue during exercise / N. Vargas, F. Marino. - DOI: 10.1007/s40279-014-0232-4 // Sports Medicine. - 2014. - Vol. 44, № 11. - P. 1479-1487. - URL: https://link.springer.com/article/10.1007/s40279-014-0232-4 (access date: 17.09.2024). - Access mode: for registered users.