Физиологические эффекты узкополосного красно-синего освещения растений: на примере китайской капусты Brassica chinensis L. тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.05, кандидат биологических наук Аверчева, Ольга Владимировна

• Аверчева, Ольга Владимировна
• кандидат биологических наук
• 2010

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Аверчева, Ольга Владимировна

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. ВЛИЯНИЕ СВЕТА НА СТРУКТУРНУЮ ОРГАНИЗАЦИЮ И

АКТИВНОСТЬ ФОТОСИНТЕТИЧЕСКОГО АППАРАТА.

1.2. ВЛИЯНИЕ СВЕТА НА РОСТ И РАЗВИТИЕ РАСТЕНИЙ.

1.3. ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ ДЕЙСТВИЕ УЗКОПОЛОСНОГО СПЕКТРА

ОБЛУЧЕНИЯ.

Глава 2. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Объект исследования и условия выращивания растений.

2.2. Методы исследования.

Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. ХАРАКТЕРИСТИКА РОСТА И СОСТОЯНИЯ ФСА РАСТЕНИЙ

ПРИ ПЛОТНОСТИ ПОТОКА ФОТОНОВ 400 мкмоль/(м2 с).

3.2. ХАРАКТЕРИСТИКА РОСТА И СОСТОЯНИЯ ФСА РАСТЕНИЙ

ПРИ ПЛОТНОСТИ ПОТОКА КВАНТОВ 100 мкмоль/(м2 с).

3.3. АДАПТАЦИЯ РАСТЕНИЙ К УВЕЛИЧЕНИЮ ПЛОТНОСТИ

ПОТОКА ФОТОНОВ В ХОДЕ ВЕГЕТАЦИИ (ПЕРЕМЕННЫЙ УРОВЕНЬ ОСВЕЩЕНИЯ).

Глава 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Аверчева, Ольга Владимировна

выводы

1. Выращивание растений китайской капусты (Brassica chinensis L.) при освещении источником с узкополосным спектром испускания в красной (650 нм) и синей (470 нм) областях при соотношении красных и синих л кванюв 7:1 и плотности их потока 400 мкмоль/(м с) приводит к значительным изменениям параметров роста и морфогенеза, донорно-акцепторных отношений в растении, по сравнению с наблюдаемыми при выращивании на белом свету, и к ингибированию генеративного развития на стадии его индукции.

2. Фотосинтегический аппарат при облучении растений узкополосным сине-красным спектром с плотностью потока квантов 400 мкмоль/(м2 с) не претерпевает существенных изменений на уровне структурной организации (мезосгруктура листа и ультраструктура хлоропластов). содержания пигментов и фотохимической активности хлоропластов. Наибольшие изменения под воздействием узкополосного спектра облучения происходят в сопрягающей системе хлоропластов, что проявляется в снижении активности фотофосфорилирования и степени сопряженности транспорта электронов с синтезом АТФ, а также в изменении функциональных свойств сопрягающих белков хлоропластов.

3. Выращивание растений под источником с узкополосным сине-красным спектром испускания не приводит к индукции формирования активных форм кислорода в хлоропластах и не вызывает окислительный стресс в растении.

4. Использование светильника с узкополосным спектром при выращивании растений отражается на характере изменений мезоструктуры листа, содержании пигментов и фосфорилирующей активности хлоропластов в ответ на снижение плотности потока квантов. При плотности потока квантов 100 мкмоль/(м с) под светодиодами мезоструктура листа

108 приобретает анатомические признаки «световых» листьев, а также увеличивается доля нерастворимых сахаров в общем количестве сахаров, снижается содержание хлорофиллов и каротиноидов, при неизменном их соотношении. Активность нециклического фотофосфорилирования и степень сопряжения потока электронов в ЭТЦ с синтезом АТФ в хлоропластах значительно возрастаю г.

5. Увеличение плотности потока квантов со 100 мкмоль/(м2 с) до 400 мкмоль/(м с) в ходе вегетации, при освещении белым светом обеспечивает кратковременную стимуляцию вегетативного роста побегов и возможность перехода к генеративной стадии развития в дальнейшем. Такой же режим при освещении растений узкополосным красно-синим светом не вызывает стимуляции вегетативного роста в системе целого растения, а также индукции цветения. Освещение растений красно-синим узкополосным спектром приводит к снижению скорости адаптации растений к повышению потока квантов в ходе вегетации и делает ее менее выраженной, антиоксидантные системы растений быстрее реагируют на изменение светового режима, но с увеличением возраста растений их защитная функция оказывается менее эффективной.

6. Физиологические эффекты, вызванные длительным освещением растений светильником с узкополосным спектром испускания в синей и красной областях, имеют системный характер. Вследствие этого для конструирования светильников для светокультуры растений на основе светодиодов требуются дополнительные физиологические исследования. При этом необходимо учитывать не только энергетическую, по и регуляторную роль спектральных составляющих освещения, видовые и сортовые особенности реакций растений на спектральный состав освещения.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Аверчева, Ольга Владимировна, 2010 год

1. Аверчева О.В., Беркович Ю.А., Ерохин А.Н., Жигалова Т.В., Погосян С.И., Смолянина С.О. Особенности роста и фотосинтеза растений китайской капусты при выращивании под светодиодными светильниками // Физиология растений. 2009. Т. 56. С. 17-26.

2. Бассарская Е.М., Гавриленко В.Ф. Действие предварительного освещения, дитиотрейтола и аскорбиновой кислоты на фотоэнергетические реакции хлоропластов с различной активностью синтеза АТФ // Вестн. Моск. Ун-та. Сер. 16. Биология. 2005. №2. С. 12-19.

3. Бекина P.M., Лебедева А.Ф. Изучение реакций поглощения кислорода (реакций Мелера) в хлоропластах в присутствии кремниевомолибденовой кислоты // Биохимия. 1977. Т. 42. С. 693-699.

4. Бекина P.M., Лебедева А.Ф., Рубин Б.А. О локализации реакции Мелера с этанолкаталазной ловушкой в цепи фотоспнтетического транспорта электронов//Биохимия. 1976. Т. 41. С. 815-821.

5. Березина H.A., Афанасьева Н.Б. Экология растений. М.: Издательский центр «Академия», 2009. 400 с.

6. Беркович Ю.А., Кривобок Н.М., Смолянина С.О., Ерохин А.Н. Космические оранжереи: настоящее и будущее. М.: Фирма «Слово», 2005. 368 с.

7. Булычёв A.A., Безменов H.H., Рубин А.Б. Влияние электрохимического градиента протонов на перенос электронов в фотосистеме I листьев гороха // Физиол. раст. 2008. Т. 55. С. 483-491.

8. Бухов Н.Г. Динамическая световая регуляция фотосинтеза // Физиол. раст.2004. Т. 51. С. 825-837.

9. Власова Т.А., Гавриленко В.Ф., Ермаков И.П., Жигалова Т.В., Маркарова Е.Н., Матвеева Н.П., Тукеева М.И., Харитонашвили Е.В. Малый практикумпо физиологии растений. Под ред. А.Т. Мокроносова. М.: Изд-во МГУ, 1994. 184 с.

10. Воскресенская Н.П. Фотосинтез и спектральный состав света. М.: Наука, 1965.312 с.

11. Воскресенская Н.П. Принципы фоторегулирования метаболизма растений и регуляторное действие красного и синего света на фотосинтез // в сб. Фоторегуляция метаболизма и морфогенеза растений. Под ред. А.Л. Курсанова и Н.П. Воскресенской. М.: «Наука», 1975.

12. Воскресенская Н.П. Фоторегуляторные реакции и активность фотосинтетического аппарата// Физиология растений 1987. Т. 34. С. 669-684.

13. Гавриленко В.Ф., Жигалова Т.В. Большой практикум по фотосинтезу. М.: Академия, 2003. 256 с.

14. Гавриленко В.Ф., Жигалова Т.В., Агафодорова М.Н. Изучение свойств сопрягающих белков хлоропластов пшеницы различной продуктивности // Биологические пауки. 1977. №5. С. 99-108.

15. Гавриленко В.Ф., Жигалова Т.В. Бассарская Е.М. Активность фотоэнергетических реакций и продуктивность растений // Физиология и биохимия культурных растений. 1985. Т. 17. С. 375-378.

16. Головацкая И.Ф. Роль криптохрома 1 и фигохромов в регуляции фотоморфогенетических реакций растений па зелёном свету // Физиология растений. 2005. Т. 52. №6. С. 822-829.

17. Егорова Е.А., Бухов Н.Г. Механизмы и функции альтернативных путей переноса электронов в хлоропласте, связанных с фотосистемой I // Физиология растений. 2006. Т. 53. С. 645-657.

18. Егорова E.A., Дроздова И.С., Бухов Н.Г. Индуцированные дальним красным светом модуляции активности альтернативных путей электронного транспорта, связанных с фотосистемой I // Физиология растений. 2005. Т. 52. С. 805-813.

19. Ермаков А.И., Арасимович В.Е., Смирнова-Иконникова М.И., Ярош Н.П., Луковникова Г.А. Методы биохимического исследования растений. Изд. 2-е, перераб. и доп. Под ред. д-ра биол. наук А.И. Ермакова // Л., «Колос», Ленингр. отд-ние, 1972. 456 с.

20. Ермаков А.И., Арасимович В.E., Ярош Н.П., Перуанский Ю.В., Луковникова Г.А., Иконникова М.И. Методы биохимического исследования растений. Под ред. А.И. Ермакова. Изд. 3-е, перераб. и доп. Л.: Агропромиздат. Ленингр. отд-ние, 1987. 430 с.

21. Иванов Б.Н. Кооперация фотосистемы 1 и пула пластохиннонов в восстановлении кислорода в хлоропластах высших растений // Биохимия. 2008. Т. 73. С. 137-144.

22. Иванова Л.И., Пьянков В.И. Структурная адаптация мезофилла листа к затенению // Физиология растений. 2002. Т. 49. С. 467-480.

23. Клячко-Гурвич Г.Д., Пронина H.A., Ладыгин В.Г., Цоглин Л.H., Семененко

24. В.Е. Разобщённое функционирование отдельных фотосистем. I. Особенности и роль десатурации жирных кислот // Физиология растений.2000. Т. 47. С. 688-698.

25. Лархер В. Экология растений. М.: «Мир», 1978. 384 с.

26. Любименко В.Н. Фотосинтез и хемосинтез в растительном мире. Л.: Сельхозгиз. 1935. 322 с.

27. Мерзляк М. Н. Активированный кислород и окислительные процессы в мембранах растительной клетки // Итоги науки и техники. Сер. Физиология растений. М: ВИНИТИ, 1989. Т. 6. С. 1 167.

28. Мокроносов А.Т. Онтогенетические аспекты фотосинтеза. М.: Наука, 1981. 196 с.

29. Мокроносов А.Т., Борзенкова P.A. Методика количественной оценки структуры и функциональной активности фотосинтезирующих тканей и органов // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 1978. Т. 61. Вып. 3. С. 119-133.

30. Негрецкий В.А., Ложникова В.М., Каневский В.А. Влияние зелёного света различной спектральной длины на цветение короткодневного растения мари красной (Chenopodium rubrum L.) // Доклады АН СССР. 1990. Т. 314. С. 1016-1018.

31. Николаева М.К. Влияние кратковременного повышения интенсивности света на активность ферредоксин-НАДФ+ оксидоредуктазы // Вестник Башкирского университета. 2001. №2. С. 97-99.

32. Николаева М.К., Бухов Н.Г., Егорова Е.А. Активность нециклического и альтернативных путей фотосинтетического транспорта электронов у листьевбобов, выращенных при различных интенсивностях света // Физиология растений. 2005. Т. 52. С. 485-491.

33. Николаева М.К., Осипова О.П. Функциональная активность хлоропластов бобов, выращенных при разных интенсивностях света // Физиология растений. 1979. Т. 26. С. 799-807.

34. Ничипорович A.A. Физиология фотосинтеза. М.: Наука, 1982. 108 с.

35. Полесская О.Г. Растительная клетка и активные формы кислорода. М.: КДУ, 2007. 140 с.

36. Протасова H.H. Применение искусственных источников свега при выращивании рассады овощных культур // В сб. Овощеводство защищённого грунта. М.: Сельхозгиз. 1958. С. 64.

37. Птушенко В.В. Исследование электронного и протонного транспорта в фотосинтетических системах оксигенного типа с помощью спиновых меток: Автореферат дисс. канд. биол. наук. М.: МГУ, 2006. 22 с.

38. Рубин А.Б., Кренделева Т.Е. Регуляция первычных процессов фотосинтеза // Успехи биологической химии. 2003. Т. 43. С. 225-266.

39. Соловченко А.Е., Мерзляк М.Н. Экранирование видимого и УФ излучения как фотозащитный механизм растений // Физиология растений. 2008. Т. 55.1. С. 455-462.

40. Степанова А.М., Никифорова Л.Ф. Методика выделения латентной Са2+-зависимой АТФазы из хлоропластов гороха // В сб. Методы биохимического анализа растений. Под ред. Полевого В.В., Максимова Г.Б. Л.: Изд-во ЛГУ,1978. С. 62-66.

41. Стриж И.Г. Лысенко Г.Г., Неверов К.В. Фотовосстановление молекулярного кислорода в препаратах фотосистемы II в условиях фотоингибирования// Физиология растений. 2005. Т. 52. С. 814-821.

42. Тараканов И.Г. Современное состояние и перспективы развития светокультуры растений // Гавриш. 2005. №6. С. 34-38.

43. Тихомиров А.А., Золотухин И.Г., Лисовский Г.М., Сидько Ф.Я. Специфика реакций растений разных видов на спектральный состав ФАР при искусственном освещении // Физиология растений. 1987. Т. 34. С. 774-785.

44. Тихомиров А.А., Лисовский Г.М., Сидько Ф.Я. Спектральный состав света и продуктивность растений. Новосибирск: Наука, Сибирское отделение, 1991. 168 с.

45. Тихомиров А.А., Шарупич В.П., Лисовский Г.М. Светокультура растений: биофизические и биотехнологические основы. Новосибирск: Изд-во СО РАН, 2000. 213 с.

46. Уикли Б. Электронная микроскопия для начинающих. М.: Мир, 1975. 324 с.

47. Хит О. Фотосинтез (физиологические аспекты) // Из-во «Мир», Москва 1972, 315 с.

48. Цельникер Ю.Л. Физиологические основы теневыносливости древесных растений. М.: Наука, 1978. 215 с.

49. Чиков В.И. Эволюция представлений о связи фотосинтеза с продуктивностью растений // Физиология растений. 2008. Т. 55. С. 140-154.

50. Юрина Н.П., Одинцова М.С. Сигнальные системы растении. Пластидные сигналы и их роль в экспрессии ядерных генов // Физиология растений.2007. Т. 54. С. 485-495.

51. Adamska I. Regulation of Early Light-Inducible Protein Gene Expression by Blue and Red Light in Etiolated Seedlings Involves Nuclear and Plastid Factors // Plant Physiol. 1995. V. 107. P. 1167-1175.

52. Ahmad М., Cashmore A.R. HY4 gene of A. thaliana encodes a protein with characteristics of a blue-light photoreceptor // Nature. 1993. V. 366. P. 162-166.

53. Allen J.F., Bennett J., Steinback K.E., Arntzen C.J. Chloroplast protein phosphorylation couples plastoquinone redox state to distribution of excitation energy between photosystems // Nature. V. 291. P. 25-29.

54. Allen J.F. Protein phosphorylation carburetor of photosynthesis? // Trends in Biochemical Sciences. 1983. V. 8. P. 369-373.115

55. Allen J.F. How does protein phosphorylation regulate photosynthesis? // Trends in Biochemical Sciences. 1992. V. 17. P. 12-17.

56. Albertsson P.-Â. A quantitative model of the domain structure of the photosynthetic membrane // Trends in Plant Science. 2001. V. 6. P. 349-354.

57. Allen J.F., Forsberg J. Molecular recognition in thylakoid structure and function // Trends in Plant Science. 2001. V. 6. P. 317-326.

58. Ananyev A., Renger G., Wacker U., Klimov V. The photoproduction of superoxide radicals and the superoxide dismutase activity of photosystem II. The possible involvement of cytochrome b559 // Photosynth. Res. 1994. V. 41. P. 327338.

59. Anderson J. M. Photoregulation of Composition, Function, and Structure of Thylakoid Membranes // Annual Reviews of Plant Physiology. 1986. V. 37. P. 93136.

60. Arora A., Sairam R.K., Srivastava G.C. Oxidative stress and antioxidative system in plants // Current Science. 2002. V. 82. P. 1227-1238.

61. Arnon D.I., Chain R.K. Regulation of ferredoxin-catalyzed photosynthetic phosphorylations // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1975. V. 72. P. 4961-4965.

62. Asada K., Kiso K., Yoshikawa K. Univalent reaction of molecular oxygen by spinach chloroplast on illumination // Journal of Biological Chemistry. 1974. V.249. P. 2175-2181.

63. Audran C., Borei C., Frey A., Sotta B., Meyer C., Sinonneau T., Marion-Poll A. Expression studies of the zeaxanthin epoxidase gene in Nicotiana plumbaginifolia //PlantPhysiol. 1998. V. 118. P. 1021-1028.

64. Badger M.R. Photosynthetic oxygen exchange // Annual Reviews of Plant Physiology. 1985. V. 36. P. 27-53.

65. Barth C., Krause G.H. Study of Tobacco Transformants to Assess the Role of Chloroplastic NAD(P)H Dehydrogenase in Photoprotection of Photosystems I and1. // Planta. 2002. V. 216. P. 273-279.

66. Beck Ch.F. Signaling Pathway from the Chloroplast to the Nucleus // Planta.2005. V. 222. P. 743-756.

67. Bennett J. Regulation of photosynthesis by reversible phosphorylation of the light-harvesting chlorophyll a/b protein // Biochem. J. 1983. V. 212. P. 1-13.

68. Bennett J. Protein Phosphorylation in Green Plant Chloroplast // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1991. V. 42. P. 281-311.

69. Borowski E., Kozlowska L. The influence of light color on the rooting of ‘Horim Golden’ Chrysanthemum cuttings // Acta Agrobotanica. 1986. V. 39. P. 47-57.

70. Bradbeer J.W., Atkinson Y.A., Bomer T., Hagemann R. Cytoplasmic Synthesis of Plastid Polypeptide May Be Controlled by Plastid-Synthesized RNA // Nature. 1979. V. 279. P. 816-817.

71. Breitholtz PI.-L., Srivastava R., Tyystjarvi E., Rintamaki E. LHC II protein phosphorylation in leaves of Arabidopsis thaliana mutants deficient in nonphotochemical quenching // Photosynthesis research. 2005. V. 84. P. 217-223.

72. Briggs W.R., Christie J.M. Phototropins 1 and 2: versatile plant blue-light receptors // Trends Plant Sci. 2002. V.7. P. 204-210.

73. Brosche M., Strid A. Molecular events following perception of ultraviolet-B radiation in plants // Physiol. Plant. 2003. V. 117. P. 1-10.

74. Brown C.S., Schuerger A.C., Sager J.C. Growth and photomorphogenesis of pepper plants under red light-emitting diodes with supplemental blue or far-red lighting//American Society for Horticultural Science. 1995. V. 120. P. 808-813.

75. Brown E.C., Somanchi A., Mayfield S.P. Interorganellar Crosstalk: New Perspectives on Signaling from Chloroplast to the Nucleus // Genome Biol. 2001. V.2.P. 1-4.

76. Bruce D., Samson G., Carpenter C. The Origins of Non-Photochemical Quenching of Chlorophyll Fluorescence in Photosynthesis: Direct Quenching by P680+ in Photosystem II Enriched Membranes at Low pH // Biochemistry. 1997. V. 36. P. 749-755.

77. Brudler R., Hitomi K., Daiyasu H., Toh H., Kucho K., Ishiura M., Kanehisa M., Roberts V., Todo T., Tainer J. Identification of a new cryptochrome class. Structure, function and evolution // Mol. Cell. 2003. V. 11. P. 59-67.

78. Bula R.J., Morrow R.C., Tibbitts T.W., Barta D.J., Ignatius R.W. Martin T.S. Light-emitting Diodes as a Radiation Source for Plants // HortScience. 1991. №26. P. 203-205.

79. Buschmann C., Lichtenthaler H.K. Hill-activity and P700 concentration in of chloroplasts isolated from radich seedlings treated with P-indoleacetic acid, kinetin or gibberellic acid // Z. Naturforsch. 1977. V. 32c. P. 798-802.

80. Buschmann C., Meier D., Kleudgen H.K., Lichtenthaler H.K. Regulation of chloroplast development by bed and blue light // Photochem. And Photobiol. 1978. V. 27. P. 195-198.

81. Cadenas E. Biochemistry of Oxygen Toxicity // Annu. Rev. Biochem. 1989. V. 58. P. 79-110.

82. Canvin D.T., Berry J.A., Badger M.R., Fock H., Osmond C.B. Oxygen exchange in leaves in the light // Plant Physiol. 1980. V. 66. P. 302-307.

83. Casal J.J. Phytochromes, cryptochromes, phototropin: photoreceptor interactions in plants // Photochem. Photobiol. 2000. V. 71. P. 1-11.

84. Casal J.J., Luccioni L.G., Oliverio K.A., Boccalandro H.E. Light, phytochrome signaling and photomorphogenesis in Arabidopsis // Photochem. Photobiol. Sci.2003. V. 2. P. 625-636.

85. Casal J.J., Sanchez R.A. Phytochromes and seed germination // Seed Sci. Res. 1998. V. 8. P. 317-329.

86. Chen M., Chory J., Fankhauser C. Light Signal Transduction in Higher Plants // Annu. Rev. Gen. 2004. №38. P. 87-117.

87. Chen Y.B., Dumford D.G., Koblizek M., Falkowski P.G. Plastid Regulation of Lhcbl Transcription in the Chlorophyte Alga Dunaliella (ertiolecta II Plant Physiol. 2004. V. 136. P. 3737-3750.

88. Chitnis P.R. Photosystem I: function and physiology // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 2001. V. 52. P. 593-626.

89. Creissen G., Reynolds FI., Xue Y.B., Mullineaux P. Simultaneous targeting of pea glutathione reductase and of a bacterial fusion protein to chloroplasts and mitochondria in transgenic tobacco // Plant J. 1995. V. 8. P. 167-175.

90. Crofts A., YerkesC.T. A Molecular Mechanism for qE-quenching // FEBS Lett.1994. V. 352. P. 265-270.

91. Cuello J., Quilles M.J., Albacete M.E., Sabater B. Properties of a large complex with NADH dehydrogenase activity from barley thylakoids // Plant Cell Physiol.1995. V. 36. P. 265-271.

92. Cummings I.J., Reid J.B., Koutoulis A. Red to far-red ratio correction in plant growth chambers growth responses and influence of thermal load on garden pea //Physiologia Plantarum. 2007. V. 131. P. 171-179.

93. Dat J., Vandenabeele S., Vranova E., Van Montagu M., Inze D., Van Breusegem F. Dual action of the active oxygen species during plant stress responses // Cellular and Molecular Life Sciences. 2000. V. 157. P. 779-795.

94. Dau H. Short-term adaptation of plants to changing light intensities and its relation to photosystem II photochemistry and fluorescence emission // J. Photochem. Photobiol. 1994. V. 60. P. 3-27.

95. Demmig-Adams B., Adams W.W. The role of xanthophyll cycle caroteniods in the protection of photosynthesis // Trends in Plant Science. 1996. V. 1. P. 21-26.

96. Devlin P.F., Kay S.A. Cryptochromes are required for phytochrome signaling to the circadian clock but not for rhythmicity // Plant Cell. 2000. V. 12. P. 24992510.

97. Devlin P.F., Yanovsky M.J., Kay S.A. A genomic analysis of the shade avoidance response in Arabidopsis // Plant Physiol. 2003. V. 133. P. 1617-1629.

98. Dewir Y.H., Chakrabarty D., Hahn E.-J., Paek K.-Y. Flowering of Euphorbia millii plantlets in vitro as affected by paclobutrazol, light emitting diodes (LEDs) and sucrose // Acta Hort. (ISHS). 2007. V. 764. P. 169-174.

99. Dougher T.A.O., Bugbee B. Differences in the Response of Wheat, Soybean and Lettuce to Reduced Blue Radiation // Photochemistry and Photobiology. 2001. V. 73. P. 199-207.

100. Durnford D.G., Falkowski P.G. Chloroplast Redox Regulation of Nuclear Gene Transcription during Photoacclimation // Photosynth. Res. 1997. V. 53. P. 229241.

101. Egneus H., Heber U., Matthiesen U., Kirk M. Reduction of oxygen by the electron transport chain of chloroplasts during assimilation of carbon dioxide // Biochim. Biophys. Acta. 1975. V. 408. P. 252-268.120

102. Elstner E.F., Wagner G.A., Schutz W. Activated oxygen in green plants in relation to stress situations // Curr. Topics Plant Biochem. Physiol. 1988. V. 7. P. 159-187.

103. Endo T., Shikanai T., Takabayashi A., Asada K,m Sato F. The role of chloroplastic NAD(P)H dehydrogenase in photoprotection // FEBS Lett. 1999. V. 457. P. 5-8.

104. Escoubas J.M., Lomas M., LaRoche J., Falkowski P.G. Light Intensity Regulation of cab Gene Transcription Is Signaled by the Redox State of the Plastoquinone Pool //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 10237-10241.

105. Fankhauser C. Phytochromes as light-modulated protein kinases // Semin. Cell Dev. Biol. 2000. V. 11. P. 467-473.

106. Fine P.L., Frasch W.D. The oxygen-evolving complex requires chloride to prevent hydrogen peroxide formation // Biochemistry. 1992. V. 31. P. 1220412210.

107. Folta K.M. Green Light Stimulates Early Stem Elongation, Antagonizing Light-Mediated Growth Inhibition // Plant Physiology. 2004. V. 35. P. 1407-1416.

108. Folta K.M., Maruhnich S.A. Green light: a signal to slow down or stop // Journal of Experimental Botany. 2007. V. 58. P. 3099-3111.

109. Folta K.M., Spalding E.P. Unexpected roles for cryptochrome 2 and phototropin revealed by high-resolution analysis of blue light-mediated hypocotyls growth inhibition // Plant J. 2001. V. 26. P. 471-478.

110. Forti G., Elli G. The Function of Ascorbic Acid in Photosynthetic Phosphorylation// Plant Physiol. 1995. V. 109. P. 1207-1211.

111. Foyer C.H., Lelandais M., Kunert K.J. Photooxidative stress in plants // Physiologia Plantarum. 1994. V. 92. P. 696-717.

112. Foyer C.H., Noctor G. Oxygen processing in photosynthesis: regulation and signaling // New Phytol. 2000. V. 146. P. 359-388.

113. Fryer M.J. The antioxidant effects of thylakoid vitamin E (a-tocopherol) // Plant. Cell and Environment. 1992. V. 15. P. 381-392.

114. Fukuda N., Nishimura S., Nogi M. Effects of localized light quality from light emitting diodes on geranium peduncle elongation // Acta Hort. (ISIIS). 2002. V. 580. P. 151-156.

115. Furbank T.R., Badger M.R. Oxygen exchange associated with electron transport and photophosphorylation in spinach thylakoids // Biochimica et Biobhysica Acta. 1983. V. 723. P. 400-409.

116. Furuya M. Phytochromes: their molecular species, gene family and functions // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993. V. 44. P. 617-645.

117. Giannopolitis C., Ries S. Superoxide Dismutase. 1.Occurrence in Higher Plants //Plant Physiology. 1977. V.59. P.309-314.

118. Gilmore A., Yamamoto H.Y. Linear Model Relating Xanthophylls and Lumen Acidity to Non-Photochemical Quenching: Evidence that Antheraxanthin Explains Zeaxanthin-Independent Quenching // Photosynth. Res. 1993. V. 35. P. 67-78.

119. Giovanni B., Byrdin M., Ahmad M., Brettel K. Light-induced electron transfer in a cryptochrome blue-light photoreceptor // Nat. Struct. Biol. 2003. V. 10. P. 489-490.

120. Goins G.D., Yorio N.C., Sanwo M.M., Brown C.S. Photomorphogenesis, photosynthesis, and seed yield of wheat plants grown under red light-emitting diodes (LEDs) with and without supplemental blue lighting // J. Exp. Bot. 1997, V. 48. P. 1407-1413.

121. Grace S.C., Logan B.A. Acclimation of foliar antioxidant systems to growth irradiance in three broad-leaved evergreen species // Plant Physiol. 1996. V. 112. P. 1631-1640.

122. Grace S., Pace R., Wydrzynski T. Formation and decay of monodehydroascorbate radicals in illuminated thylakoids as determined by EPR spectroscopy // Biochim. Biophys. Acta. 1995. V. 1229. P. 155-165.

123. Hahn E.-J., Kozai T., Paek K.-Y. Blue and Red Light-Emitting Diodes with or without Sucrose and Ventilation Affect in Vitro Growth of Rehmannia glutinosa Plantlets // Journal of Plant Biology. 2000. V. 43. P. 247-250.

124. Harbinson J., Foyer C.H. Relationships between the efficiencies of photosystems I and II and stromal redox state in C02-free air. Evidence for cyclic electron flow in vivo II Plant Physiol. 1991. V. 97. P. 41-49.

125. Heber U. Irrungen, Wirrungen? The Mehler reaction in relation to cyclic electron transport in C3 plants // Photosynthesis research. 2002. V. 73. P. 223231.

126. Heber U., Egneus H., Hanck U., Jensen M., Köster S. Regulation of photosynthetic electron transport and photophosphorylation in intact chloroplasts abd leaves of Spinacia oleracea L. // Planta. 1978. V. 143. P. 41-49.

127. Heber U., Walker D. Concerning a dual function of coupled cyclic electron transport in leaves // Plamt Physiol. 1992. V. 100. P. 1621-1626.

128. Hennig L., Schafer E. Both subunits of the dimeric plant photoreceptor phytochrome require chromophore for stability of the far-red light absorbing form 1/3. Biol. Chem. 2001. V. 276. P. 7913-7918.

129. Herbert S.K., Samson G., Fork D.C., Laudenbach D.E. Characterization of damage to photosystem I and photosystem II in a cyanobacterium lacking123detectable iron superoxide dismutase activity // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1992. V. 89. P.8716-8720.

130. Hess W.R., Muller A., Nagy F., Börner T. Ribosome-Deficient Plastids Affect transcription of Light-Induced Nuclear Genes: Genetic Evidence for a Plastid-Derived Signal // Mol. Gen. Genet. 1994. V. 242. P. 305-312.

131. Hirai T., Amaki W., Watanabe H. Action of blue or red monochromatic light on stem intemodal growth depends on plant species // Acta Hort. (ISHS). 2006. V. 711. P. 345-350.

132. Hoenecke M.E., Bula R.J., Tibbitts T.W. Importance of‘blue’ photon levels for lettuce seedlings grown under red light-emitting diodes // HortScience. 1992. No.27. P. 427-430.

133. Hogewoning S.W., Trouwborst G., Engbers G.J., Harbinson J., van Ieperen W., Ruijsch J., van Kooten O. Plant Physiological Acclimation to Irradiation by Light-Emittitn Diodes (LEDs) // Acta Hort. (ISHS). 2007. V. 761. P. 183-192.

134. Huala E., Oeller P.W., Lioscum E., Han I.S., Larsen E., Briggs W.R. Arabidopsis NPH1: a protein kinase with a putative redox-sensing domain // Science. 1997. V. 278. P. 2120-2123.

135. Huffaker R. C., Obendorf R. L., Keller C. J., Kleinkopf G. E. Effects of Light Intensity on Photosynthetic Carboxylative Phase Enzymes and Chlorophyll Synthesis in Greening Leaves of Hordeum vulgare L. // Plant Physiol. 1966. V.41. P. 913-918.

136. Jakob B., Heber U. Photoproduction and detoxification of hydroxyl radicals in chloroplasts and leaves and relation to photoinactivationof photosystems I and II // Plant Cell Physiology. 1996. V. 37. P. 629-635.

137. Jiao S., Hilarie E., Guikema J.A. Identification and Differential Accumulation of Two Isoforms of the CFi-ß Subunit under High Light Stress in Brassica Rapa // Plant Physiol. Biochem. 2004. V. 42. P. 883-890.

138. Johanningmeier U. Possible Control of Transcript Levels by Chlorophyll Precursors in Chlamydomonas // Eur. J. Biochem. 1998. V. 177. P. 417-424.124

139. Joyard J., Teyssier E., Micge C., Bemy-Seigneurin D., Maréchal E., Block M.A., Dome A.-J., Rolland N., Ajlani G., Douce R. The biochemical machinery of plastid envelope membrains // Plant Physiol. 1998. V. 118. P. 715-723.

140. Karpinski S., Reynolds H., Kakpinska B., Wingsle G., Creissen G., Mullineaux P. Systemic Signalling and Acclimation in Response to Excess Excitation Energy in Arabidopsis II Science. 1999. V. 284. P. 654-657.

141. Khorobrykh S., Mubarakshina M., Ivanov B. Photosystem I Is Not Solely Responsible for Oxygen Reduction in Isolated Thylakoids // Biochim. Biophys. Acta. 2004. V. 1657. P. 164-167.

142. Kim H.-H., Goins G.D., Wheeler R.M., Sager J.C. Green-light Supplementation for Enhanced Lettuce Growth under Red- and Blue-light-emitting Diodes // HortScience. 2004. V. 39. P. 1617-1622.

143. Kim H.-H., Goins G.D., Wheeler R.M., Sager J.C. Stomatal Conductance of Lettuce grown Under or Exposed to Different Light Qualities // Annals of Botany. 2004. V. 94. P. 691-697.

144. Kirk J.T.O., Tilney-Basset R.A.E. The Plastids: Their Chemistry, Structure, Growth and Inheritance. 2-nd edition. Elsevier, 1978.

145. Knox J.P., Dodge A.D. Singlet Oxygen and Plants // Phytochemistry. 1985. V. 24. P. 889-896.

146. Kolber Z., Zehr J., Falkowski P.G. Effects of growth irradiance and nitrogen limitation on photosynthetic energy conversion in Photosystem II // Plant Physiol. 1988 V. 88. P. 923-929.

147. Krieger A., Weis E. Energy-Dependent Quenching of Chlorophyll-a-Fluorescence, the Involvement of Proton-Calcium Exchange at Photosystem II // Photosynthetica. 1992. V. 27. P. 89-98.

148. Kropat J., Oster U., Rudiger W., Beck C.F. Chloroplast Signaling in the Light Induction of Nuclear HSP70 Genes Requires the Accumulation of Chlorophyll Precursors and their Accessibility th Cytoplasm/Nucleus // Plant J. 2000. V. 24. P. 523-531.

149. Laloi C., Apel K., Danon A. Reactive oxygen signalling: the latest news // Current Opinion in Plant Biology. 2004. V. 7. P. 323-328.

150. Larkin R.M. Alonso J.M., Ecker J.R., Chory J. GUN4, a Regulator of

151. Chlorophyll Synthesis and Intracellular Signaling // Science. 2003. V. 299. P. 902-906.

152. Lee W.-J., Whitmarsh J. Photosynthetic Apparatus of Thylakoid Membranes. Response to Growth Light Intensity // Plant Physiol. 1989. V. 89. P. 932-940

153. Leong T.Y., Anderson J.M. Adaptation of Thylakoid Membranes of Pea

154. Chloroplasts to Light Intensities. I. Study on the distribution of chlorophyllprotein complexes // Photosynth. Res. 1984a. V. 5. P. 105-115.

155. Leong T.Y., Anderson J.M. Adaptation of Thylakoid Membranes of Pea Chloroplasts to Light Intensities. II. Regulation of Electron Transport Capacities,

156. Electron Carriers, Coupling Factor (CFO Activity and Rates Photosynthesis // Photosynth. Res. 1984b. V. 5. P. 117-128.

157. Leong T.Y., Goodchild D.J., Anderson J.M. Effect of Light Quality on the Composition, Function, and Structure of Photosynthetic Thylakoid Membranes of Asplenium australasicum (Sm.) Hook // Plant Physiology. 1985. V. 78. P. 561567.

158. Lian M.-L., Murthy H.N., Paek K.-Y. Effects of light-emitting diodes (LEDs) on the in vitro induction and growth of bulblets of Lilium oriental hybrid ‘Pesaro’ // Scientia Horticulturae. 2002. V. 94. P. 365-370.

159. Lichtenthaler H.K. Chlorophyll and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes//Meth. Enzym. 1987. V. 148. P. 331-382.

160. Liere K., Bomer T. 2006. Transcription of plastid genes: In Regulation of transcription in plants. Grasser K.D. (ed.) Oxford: Blackwell, 2006. P. 184-224.

161. Lin C. Blue light receptors and signal transduction // Plant Cell. 2002. V. 14. P. S207-S225.

162. Lin C., Shalitin D. Cryptochrome ctructure and signal transduction // Annu. Rev. Plant Biol. 2003. V. 54. P. 469-496.

163. Lin C., Yang H., Guo H., Mockler T., Chen J., Cashmore A.R. Enhancement of blue-light sensitivity of Arabidopsis seedlings by a blue light receptor cryptochrome 2 // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1998. V. 95. P. 2686-2690.

164. Liscum E., Briggs W.R. Mutations in the NPH1 Locus of Arabidopsis Disrupt the Perception of Phototropic Stimuli // The Plant Cell 1995, Vol. 7, P. 473-485.

165. Lowry O., Rosenbrought N., Farr A., Randall R. Protein measurement with Folin phenol reagent//J. Biol. Chem., 1951. V. 193. N. l.P. 265-275.

166. Mano J., Hideg E., Asada K. Ascorbate in thylakoid lumen functions as an127alternative electron donor to photosystem II and photosystem I // Archives of Biochemistry and Biophysics. 2004. V. 429. P. 71-80.

167. Martinsuo P., Pursiheimo S., Aro E.-A., Rintamäki E. Dithiol Oxidant and Disulfide Reductant Dynamically Regulate the Photophosphorylation of Light-Harvesting Complex II Proteins in Thylakoid Membranes // Plant Physiology. 2003. V. 133. P. 37-46.

168. Mazzella M.A., Casal J.J. Interactive signaling by phytochromes and cryptochromes generates de-etiolation homeostasis in Arabidopsis // Plant Cell Environ. 2001. V. 24. P. 155-162.

169. Mazzella M.A., Cerdan P.D., Staneloni R.J., Casal J.J. Hierarchical coupling of phytochroes and cryptochromes reconciles stability and light modulation of Arabidopsis development// Development. 2001.V. 128. P. 2291-2299.

170. Meier D., Lightenthaler H.K. Ultrastructural development of chloroplasts in radish seedlings grown at high and low-light conditions and in the presence of the herbicide bentazon//Protoplasma. 1981. V. 107. P. 195-207.

171. Mehler A.H. Studies on Reactions of Illuminated Chloroplasts. I. Mechanism of the Reduction of Oxygen and Other Hill Reagents // Arch. Biochem. Biophys. 1951. V. 33. P. 65-77

172. Miller N.J., Sampson J., Candeias L.P., Bramley P.M., Rice-Evans C.A. Antioxidant activities of carotenes and xanthophylls // FEBS Lett. 1996. V. 384. P. 240-242.

173. Mittler R. Oxidative stress, antioxidants and and stress tolerance // Trends in Plant Science. 2002. V. 7. P. 405-410.

174. Miyake C., Asada K. Thylakoid-bound ascorbate peroxidase in spinach chloroplasts and photoregeneration of its primary oxidation product128monodehydroascorbate radicals in thylakoids // Plant Cell Physiol. 1992. V. 33. P. 541-553.

175. Miyake C., Asada K. Ferredoxin-dependent photoreduction of the monodehydroascorbate radical in spinach thylakoids // Plant Cell Physiol. 1994. V. 35. P. 539-549.

176. Mockler T.C., Guo H., Yang H., Duong H., Lin C. Antagonistic actions of Arabidopsis cryptochromes and phytochrome B in the regulation of* floral induction//Development. 1999. V. 126. P. 2073-2082.

177. Mubarakshina M., Khorobrykh S., Ivanov B. Oxygen reduction in chloroplast thylakoids results in production of hydrogen peroxide inside the membrane // Biochim. Biophys. Acta. 2006. V. 1757. P. 1496-1503.

178. Nagy F., Schafer E. Phytochromes control photomorphogenesis by differentially regulated, interacting signaling pathways in higher plants // Annu. Rev. Plant Biol. 2002. V. 53. P. 329-355.

179. Nakano Y., Asada K. Flydrogen peroxide scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplasts // Plant Cell Physiol. 1981. V. 22. 867-880.

180. Neff M.M., Chory J. Genetic interactions between phytochrome A, phytochrome B, and cryptochrome 1 during Arabidopsis development // Plant Physiol. 1998. V. 118. P. 27-35.

181. Neff M.M., Fankhauser C., Chory J. Light: an indicator of time and place // Genes Dev. 2000. V. 14. P. 257-271.

182. Neill S., Desikan R., Hancock J., Flydrogen peroxide signaling // Current Opinion in Plant Biology. 2002. V. 5. P. 388-395.

183. Neubauer C., Schreiber U. Photochemical and non-photochemical quenching of chlorophyll fluorescence induced by hydrogen peroxide // Zeitschrift lur Naturforschung. 1989. V. 44c. P. 262-270.

184. Neubauer C., Yamamoto H.Y. Mehler-peroxidase reaction mediates zeaxanthin formation and zeaxantion-related fluorescence quenching in intact chloroplasts II Plant Physiology. 1992. V. 99. P. 1354-1361.

185. Nott A., Jung H.-S., Koussevitzky S., Chory J. Plastid-to-Nucleus Retrograde Signaling //Annu. Rev. Plant Biol. 2006. V. 57. P. 739-759.

186. Oelmiiller R., Levitan I., Bergfeld R., Rajasekhar V.K., Mohr R. Expression of Nuclear Genes as Affected by Treatments Acting on the Plastids // Planta. 1986. V. 168. P. 482-492.

187. Oguchi R., Hikosaka K., Hirose T. Does the Photosynthetic Light-Aclimation Need Change in Leaf Anatomy? // Plant, Cell and Environment. 2003. V. 26. P. 505-512.

188. Ohashi-Kaneko K., Takase M., Kon N., Fujiwara K., Kurata K. Effect of Light Quality on Growth and Vegetable quality in Leaf Lettuce, Spinach and Komatsuna//Environ. Control Biol. 2007. V. 45. P. 189-198.

189. Ohgishi M., Saji K., Okada K., Sakai T. Functional analysis of each blue light receptor, cryl, cry2, photl, and phot2, by using combinatorial multiple mutants in Arabidopsis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. V. 101. P. 2223-2228.

190. Oster U., Brunner FI., Rüdiger W. The Greening Process of Cress Seedlings.

191. V. Possible Interference of Chlorophyll Precursors, Accumulated after Thujaplicin Treatment, with Light-Regulated Expression of Lhc Genes // J. Photochem. Photobiol. B. 1996. V. 36. P. 255-261. '

192. Pfannschmidt T., Nilsson A., Allen J.F. Photosynthetic Control of Chloroplast Gene Expression II Nature. 1999. V. 397. P. 625-628.

193. Pfannschmidt T., Liere K. Redox Regulation and Modification of Proteins Controlling Chloroplast Gene Expression // Antioxidants Redox Signal. 2005. V.7. P. 607-618.

194. Piippo M., Allahverdiyeva Y., Paakkarincn V., Suoranta U.-M., Battichkova N., Aro E.-M. Chloroplast-Mediated Regulation of Nuclear Genes in Arabidopsis thaliana in the Absence of Light Stress // Physiol. Genomics. 2006. V. 25. P. 142152.

195. Portis A.R. The regulation of Rubisco by Rubisco activase // Journal of Experimental Botany. 1995. V. 46. P. 1285-1291.

196. Poudel P.R., Kataoka I., Mochioka R. Effect of red- and blue-light-emitting diodes on growth and morphogenesis of grapes // Plant Cell Tiss Organ Cult.2008. V. 92. P. 147-153.

197. Powles S.B. Photoinhibition of phorosynthesis induced by visible light // Annual Review of Plant Physiology. 1984. V. 35. P. 15-44.

198. Quail P.H. An emerging molecular map of the phytochromes // Plant Cell Environ. 1997. V. 20. P. 657-666.

199. Quail P.H. Phytochrome photosensory signaling networks // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2002.V. 3. P. 85-93.

200. Rajagopal S., Egorova E.A., Bukhov N.G., Carpentier R. Quenching of Excited States of Chlorophyll Molecules in Submembrane Fractions of Photosystem I by Exogenous Quinones // Biochim. Biophys. Acta. 2003. V. 1606. P. 147-152.

201. Reiter R.S., Coomber S. A., Bourett T. M., Bartley G. E., Scolnik P. A. Control of leaf and chloroplast development by the Arabidopsis gene pale cress // Plant Cell. 1994. V. 6. P. 1253-1264.

202. Richly E., Dietzmann A., Biehl A., Kurth J., Laloi C., Apel K., Salamini F., Leister D. Covariations in the Nuclear Chloroplast Transcriptome Reveal a Regulatory Master-Switch // EMBO Rep. 2003. V. 4. P. 491-498.

203. Rintamaki E., Martinsuo P., Pursiheimo S., Aro E.-M. Cooperative regulation of light-harvesting complex II phosphorylation via the plastoquinol and ferredoxin-thioredoxin system in chloroplasts // PNAS. 2000. V. 97. P. 11644-11649.

204. Robinson J.M. Does 02 Photoreduction Occur within Chloroplasts In Vivo // Physiol. Plant. 1988. V. 72. P. 666-680.

205. Rodermel S. Subunit control of Rubisco biosynthesis a relic of a symbiotic past? // Photosynth. Res. 1999. V. 59. P. 105-123.

206. Rodermel S. Pathways of plastid-to-nucleus signaling // Trends in Plant Science.2001. V. 6. P. 471-478.

207. Rudiger W. Last steps in chlorophyll biosynthesis: esterification and insertion into the membrane // Regulation of Chloroplast Biogenesis. 1992. Plenum Press, New York.

208. Sancar A. Structure and function of DNA photolyase and cryptochrome blue-light photoreceptors // Chem. Rev. 2003. V. 103. P. 2203-2237.

209. Sarafis V. Chloroplasts: a Structural Approach // J. Plant Physiol. 1998. V.152. P. 248-264.

210. Scandalios J.G. Oxygen stress and superoxide dismutase // Plant Physiol. 1993. V. 101. P. 7-12.

211. Scheibe R. Redox-Modulation of Chloroplast Enzymes // Plant Physiol. 1991. V. 96. P. 1-3.

212. Schuerger A.C., Brown C.S., Stryjewski E.C. Anatomical Features of Pepper Plants (Capiscum annuum L.) Grown under Red Light-emitting Diodes Supplemented with Blue or Far-red Light // Annals of Botany. 1997. V. 79. P. 273-282.

213. Shalitin D., Yu X., Maymon M., Mockler T., Lin C. Blue light-dependent in vivo and in vitro phosphoryation of Arabidopsis cryptochrome 1 // Plant Cell. 2003. V. 15. P. 2421-2429.

214. Sharrock R.A., Clack T. Patterns of expression and normalized levels of the five Arabidopsis phytochromes // Plant Physiol. 2002. V. 130. P. 442-456.

215. Sharrock R.A., Quail P.H. Novel phytochrome sequences in Arabidopsis thaliana: structure, evolution, and differential expression of a plant regulatory photoreceptor family // Genes Dev. 1989. V. 3. P. 1745-1757.

216. Shinomura T., Uchida K., Furuya M. Elementary Processes of Photoperception by Phytochrome A for High-Irradiance Response of Hypocotyl Elongation in Arabidopsis // Plant Physiology. 2000. V. 122. P. 147-156.

217. Sonoike K. Degradation of psaB gene product, the reaction center subunit of photosystem I, is causcd during photoinhibition of photosystem I: possible involvement of active oxygen species // Plant Science. 1996. V. 115. P. 157-164.

218. Sullivan J.A., Gray J.C. Plastid Translation Is Required for the Expression of Nuclear Photosynthesis Genes in the Dark and in Roots of the Pea lipl Mutant // Plant Cell. 1999. V. 11. P. 901-910.

219. Sullivan J.A., Gray J.C. Multiple Plastid Signals Regulate the Expression of the Pea Plastocyanin Gene in Pea and Transgenic Tobacco Plants // Plant J. 2002. V.32. P. 631-639.

220. Tagawa K., Tsujimoto H.Y., Amon D.I. Role of chloroplast ferredoxin in the energy conversion process of photosynthesis // PNAS. 1963. V. 49. P. 567-572.

221. Tamulaitis G., Duchovskis P., Bliznikas Z., Brazaityte A., Novickovas A., Zukauskas A. High-power light-emitting diode based facility for plant cultivation //J. Phys. D: Appl. Physics. 2005. V. 38. P. 3182-3187.

222. Teicher H.B., Scheller H.V. The NAD(P)H in barley thylakoids is photoactivable and uses NADPH as well as NADFI // Plant physiol. 1998. V. 117. P. 525-532.

223. Tennessen D.J, Singsaas E.L., Sharkey T.D. Light-emitting diodes as a light source for photosynthesis research // Photosynthesis Research. 1994. V. 39. P. 8592.

224. Terzagi W.B., Cashmore A.R. Light-Regulated Transcription // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1995. V. 46. P. 445-474.

225. Thomas D.J., Thomas J., Youderin P.A., Herbert S. Photoinhibition and light-induced cyclic electron transport in ndhB~ and psaK mutants of Synechocystis sp. PCC6803 // Plant Cell Physiol. 2001. V. 42. P. 803-812.

226. Topchiy N.M., Sytnik S.K., Syvash O.O., Zolotareva O.K. The effect of additional red irradiation on the photosynthetic apparatus of Pisum sativum // Photosynthetica. 2005. V. 43. P. 451-456

227. Trubitsin V.B., Tikhonov A.N. Determination of a transmembrane pH difference in chloroplasts with a spin label tempamine // Journal of Magnetic Resonance. 2003. V 163. P. 257-269.

228. Tscherisch H., Ohmann E. Photoinhibition in Euglena gracilis: involvement of reactive oxygen species // Planta. 1993. V. 191. P. 316-323.

229. Wada M., Kagawa T., Sato Y. Chloroplast movement. Annu. Rev. Plant Biol. 2003. V. 54. P. 455-468.

230. Wagner D., Przybyla D., op den Camp R., Kim C., Landgraf F., Lee K.P., Wurseh M., Laloi C., Nater M., Hideg E., Apel K. The Genetic Basis of Singlet Oxygen-Induced Stress Responses of Arabidopsis thaliana // Science. 2004. V. 306. P. 1183-1185.

231. Weston E., Thorogood K., Vinti G., Lopez-Jues E. Light Quantity Controls Leaf-Cell and Chloroplast Development in Arabidopsis thaliana Wild Type and Blue-Light-Perception Mutants // Planta. 2000. V. 211. P. 807-815.

232. Whippo CW., Hangarter R.P. Second positive phototropism resultsfrom coordinated co-action of the phototropins and cryptochromes // Plant Physiol. 2003. V. 132. P. 1499-1507.

233. Woitsch S., Romer S. Expression of Xanthophyll Biosynthetic Genes during1.ght-Dependent Chloroplast Differentiation // Plant Physiology. 2003. V. 132. P. 1508-1517. •

234. Wu M.-C., Hou C.-Y., Jiang C.-M., Wang U.-T., Wang C.-U., Chen H.-H., Chang H.-M. A novel approach of LED light radiation improves the antioxidant activity of pea seedlings // Food Chemistry. 2007. V. 101. P. 1753-1758.

235. Yanovsky M.J., Kay S.A. Living by the calendar: how plants know when to flower // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2003. V. 4. P. 265-275.

236. Yordanov I., Velikova V. Photoinhibition of photosystem I // Bulg. J. Plant Physiol. 2000. V. 26. P. 70-92.

237. Yorio N.C., Goins G.D., Kagie H.K., Wheeler R.M., Sager J.C. Improving Spinach, Radish, and Lettuce Growth under Red Light-emitting Diodes (LEDs) with Blue Light Supplementation // Hort. Science. 2001. V. 36. P. 380-383.

238. Zhang N., Kallis R.P., Ewy R.G., Portis A.R. Light modulation of Rubisco in Arabidopsis requires a capacity for redox regulation of the larger Rubisco activase isoform // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. V. 99. P. 3330-3334.

239. Zubo Y.O., Yamburenko M.V. Selivankina S.Y., Shakirova F.M., Avalbaev135

240. A.M., Kudryakova N.V., Zubkova N.K., Liere K., Kulaeva O.N., Kusnetsov V.V., Borner T. Cytokinin Stimulates Chloroplast Transcription in Detached Barley Leaves //Plant Physiol. 2008. V. 148. P. 1082-1093.