Функциональное состояние тромбоцитов, вышедших из криоанабиоза (-40[О]С) тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.13, кандидат биологических наук Яленский, Андрей Юрьевич

  • Яленский, Андрей Юрьевич
  • кандидат биологических науккандидат биологических наук
  • 0,
  • Специальность ВАК РФ03.00.13
  • Количество страниц 128
Яленский, Андрей Юрьевич. Функциональное состояние тромбоцитов, вышедших из криоанабиоза (-40[О]С): дис. кандидат биологических наук: 03.00.13 - Физиология. . 0. 128 с.

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Яленский, Андрей Юрьевич

Список использованных сокращений.

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. Современное состояние вопроса о введении тромбоцитов в криоанабиоз при -40°С. Обзор литературы.

ГЛАВА 2. Материалы и методы исследований.

ГЛАВА 3. Результаты экспериментальных исследований.

3.1. Разработка лекарственной формы нового хладоограждающего раствора для введения тромбоцитов в криоанабиоз при -40°С.

3.2. Влияние нового ограждающего раствора на сохранность и функциональное состояние тромбоцитов при комнатной температуре.

3.3. Изучение функциональной полноценности и сохранности тромбоцитов, криоконсервированных с различными вариантами нового хладоограждающего раствора.

3.4. Определение эффективного режима охлаждения кровяных пластинок с оптимальным хладоограждающим раствором.

3.5. Изучение сохранности функциональных свойств тромбоцитов, введённых в криоанабиоз по разработанному методу.

3.6. Исследование в опытах на животных «острой» и «хронической» токсичности разработанного хладоограждающего раствора.

3.6.1. Изучение «острой» токсичности разработанного хладоограждающего раствора.

3.6.2. Изучение «хронической» токсичности разработанного хладоограждающего раствора.

3.6.2.1. Определение «хронической» токсичности разработанного криозащитного раствора при многократном внутривенном введении белым мышам.

3.6.2.2. Влияние длительного введения разработанного криозащитного раствора на общее состояние и массу тела животных.

3.6.2.3. Влияние разработанного криозащитного раствора на центральную нервную систему при многократном внутривенном введении.

3.6.2.4. Влияние длительного введения разработанного криозащитного раствора на сердечно-сосудистую систему.

3.6.2.5. Влияние длительного введения разработанного криозащитного раствора на показатели периферической крови.

3.6.2.6. Влияние многократного внутривенного введения разработанного криозащитного раствора на функции печени.

3.6.2.7. Влияние введения криозащитного раствора на почки.

3.6.2.8. Определение влияния длительного введения разработанного криозащитного раствора на эндокринные железы животных.

3.6.3. Изучение переносимости трансфузий аутологичных тромбоцитных концентратов, замороженных с разработанным криозащитным раствором.

3.6.4. Изучение пирогенности разработанного криозащитного раствора.

3.6.5. Изучение гемолитических свойств разработанного криозащитного раствора.

3.7. Изучение стабильности разработанного хладоограждающего раствора для тромбоцитов при длительном хранении.

ГЛАВА 4. Обсуждение результатов экспериментальных исследований.

ВЫВОДЫ.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Физиология», 03.00.13 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Функциональное состояние тромбоцитов, вышедших из криоанабиоза (-40[О]С)»

Актуальность темы

Глубокому исследованию проблемы влияния холодового анабиоза на биологические объекты посвящены десятилетия (Голдовский A.M., 1986; Лозина-Лозинский Л.К., 1972; Ре Л., 1962; Сведенцов Е.П., Кузнецов К.В., Утёмов С.В. и др. 2006). Интерес к этой проблеме обусловлен тем, что в состоянии холодового анабиоза в живых системах обратимо подавляются или частично затормаживаются метаболические и физиологические процессы (Белоус А.М, Грищенко В.И., 1994), что способствует долгосрочному хранению клеточных суспензий в жизнеспособном состоянии и реализации их запасов на практике в связи с возникающими потребностями (Сведенцов Е.П., 1999;ЦуцаеваА.А, 1983).

Успехи в современной клинической трансфузиологии обусловили возрастание потребности в применении компонента крови - тромбоцитного концентрата (ТК) (Аграненко В.А. и соавт, 1995; Компаниец A.M., 1992; Мельникова В.Н. и соавт, 2003; Rebulla Р., 1993). ТК используется для профилактики и лечения угрожающей жизни тромбоцитопенической кровоточивости, обусловленной современными протоколами высокодозной химиотерапии больных с гематологическими и онкологическими заболеваниями, радиационным облучением, воздействием миелотоксических средств, повышенным разрушением тромбоцитов при экстракорпоральном кровообращении или повышенным потреблением кровяных пластинок при синдроме диссеминированного внутрисосудистого свертывания (Абдулкадыров К.М., 1994, 2005; Ковалева Л.Г., 1990; Сведенцов Е.П., 1999; Brand A. et al., 2006; Owens М. et al., 1994; Petz L.,1996).

Возрастающая потребность в ТК, особенно в экстренных случаях, требует создание их полноценных запасов. Поэтому большую актуальность в последние годы приобрёл вопрос долговременного хранения тромбоцитов, который ещё далёк от окончательного разрешения.

По данным литературы (Kaplan С., 1993), известно, что в кровяном русле тромбоциты обладают коротким периодом жизни (8-10,5 дней). Существующие способы консервирования кровяных пластинок при положительных температурах позволяют сохранять клетки в биологически полноценном состоянии крайне непродолжительный срок - 3-5 суток (Балезина JI.B., 1991; Компаниец A.M., 1992; Holme S. et. al., 1994; Meer P. et. al., 2005; Vucetic D. et. al., 2000).

Наиболее перспективным для осуществления длительного хранения тромбоцитов является использование методов их консервирования с помощью применения криоанабиоза (Белоус А.М, Грищенко В.И., 1994).

Использование жидкоазотных технологий с введением тромбоцитов в глубокий криоанабиоз (-1360О-196°С), при котором останавливается внутриклеточный метаболизм и все фракции воды полностью замерзают, но; сохраняются орбитальные переходы электронов в атомах молекул биообъекта (Сведенцов Е.П., 2004; Цуцаева А.А., 1983;), ввиду высокой дороговизны не нашло широкого применения и востребовано лишь в некоторых крупных медицинских центрах. '

Совершенствование методов длительного хранения выделенных тромбоцитов при отрицательных температурах в физиологически сохранном состоянии в значительной степени зависит от успехов в создании криозащитных сред и экономичного электрорефрижераторного оборудования, доступного для широкого круга учреждений физиологического, биологического и медицинского профиля. Все это обуславливает необходимость поиска эффективного, вместе с тем простого и надежного метода введения тромбоцитов в криоанабиоз, обеспечивающего щадящие режимы замораживания, морфологическую сохранность, биологическую и физиологическую полноценность кровяных пластинок под защитой хладоограждающего раствора, исключающего его отмывание после оттаивания. Этим требованиям отвечает охлаждение ТК при умеренно-низкой температуре (-40°С), при которой внеклеточная, свободная и частично связанная внутриклеточные фракции воды замерзают, а фиксированная фракция воды остаётся в незамёрзшем состоянии, и метаболизм в клетках замедлен (Сведенцов Е.П., 2004). Данный метод осуществляют в электрических морозильниках с применением нетоксичного криозащитного раствора,; что может быть подтверждено физиологическими экспериментами на животных (определение веса тела, температуры тела, общего поведенческого состояния, явлений отражающих общее физиологическое состояние животных) при переливании тромбоцитов, вышедших из криоанабиоза. *

Сведений об устойчивости тромбоцитов; к повреждающим условиям криоанабиоза при -40°С в научной литературе не обнаружено.

Цель исследования - определить устойчивость к холодовому стресс-воздействию и физиологические особенности тромбоцитов; перенёсших криоанабиоз при умеренно-низкой температуре (-40°С), введение в: который-проводится по экспоненциальной программе под защитой нового хладоограждающего раствора; не требующего отмывания; исследовать влияние вышедших из криоанабиоза аутологичных тромбоцитов на организм экспериментальных животных.

Задачи исследования:,

1. Оценить в сравнительных исследованиях хладоограждающие свойства 4-х вариантов разработанного раствора, ингредиентами которого являются гексаметиленбистетраоксиэтилмочевина (ГМБТОЭМ), натрия фумарат, кислота лимонная и остальное бидистиллированная вода, и предназначенных для создания функциональной и морфологической устойчивости тромбоцитов к холодовому стресс-воздействию, для определения оптимального его варианта, сохраняющего наибольшее количество функционально активных кровяных пластинок в условиях криоанабиоза (-40°С) в течение 1 суток. Изучить сроки сохранности хладоограждающих свойств оптимального варианта данного раствора.

2. Определить устойчивость к холодовому стресс-воздействию и физиологические свойства тромбоцитов, введённых в криоанабиоз по экспоненциальной программе замораживания с применением оптимального варианта хладоограждающего раствора и хранившихся при -40°С в течение 1210 суток; особенно исследовать реакцию на гипотонический шок тромбоцитов после выхода из криоанабиоза, которая определяет приживляемость тромбоцитов после их введения в сосудистое русло.

3. Исследовать в экспериментах на животных «острую», «хроническую» токсичность и пирогенность оптимального варианта хладоограждающего раствора и определить влияние размороженных аутологичных тромбоцитов, хранившихся в состоянии криоанабиоза (-40°С) с данным раствором в течение 24 часов, на организм экспериментальных животных (собак).

Научная новизна

В экспериментальном исследовании впервые изучена физиологическая активность (адгезия, агрегация, реакция на гипотонический шок) тромбоцитов, перенёсших криоанабиоз при -40°С, введение в который проводилось по экспоненциальной программе охлаждения и с использованием нового хладоограждающего раствора (патент №2230454 от 20.06.2004), включающего в конечной концентрации 5% ГМБТОЭМ, 0,95% натрия фумарата, 0,5% кислоты лимонной и бидистиллированную воду. Впервые показано, что применение экспоненциальной программы . и данного оригинального раствора позволяет предупредить криоповреждение их мембран и денатурацию внутриклеточных белков, приспособить кровяные пластинки к условиям криоанабиоза и сохранить на высоком уровне физиологические и морфологические свойства тромбоцитов, хранившихся 120 суток в условиях холодового стресс-воздействия при -40°С. Полученные результаты расширяют представление о механизмах криозащиты на клеточном уровне.

Установлено, что переливание аутологичных тромбоцитов, вышедших из криоанабиоза (-40°С) с разработанным оптимальным вариантом хладоограждающего раствора, экспериментальные животные (собаки) переносят без возникновения каких-либо нарушений их исходного физиологического состояния: не изменяется температура тела, поведение животных, отсутствуют явления, определяющие посттрансфузионные реакции и осложнения;

Теоретическая и практическая значимость работы

Получены доказательства и дано научное обоснование криозащитных свойств; разработанного хладоограждающего раствора для тромбоцитов. Данный раствор, ингредиентами в который включены, вещества только отечественного производства: ГМБТОЭМ - криопротектор с экзо- и эндоцеллюлярным действием, , натрия фумарат - антигипоксант биоэнергетической направленности,, кислота лимонная - антикоагулянт, является нетоксичным, апирогенным, при внутривенном введении с тромбоцитами его хорошо переносят экспериментальные животные, что свидетельствует о сохранности функциональных свойств тромбоцитов, вышедших из криоанабиоза при -40°С.

Установлено, что по сравнению с линейной (принудительной) более предпочтительной и доступной является экспоненциальная (щадящая) программа замораживания тромбоцитов, при которой в отличие от линейной программы не наблюдается выброса кристаллизационного тепла и как следствие не возникает рекристаллизации во вне- и внутриклеточной? воде, отрицательно влияющей на биообъект при введении его в криоанабиоз.

Полученные данные о сохранении физиологических свойств тромбоцитов крови человека, благоприятно перенёсших холодовое стресс-воздействие при замораживании до -40°С, свидетельствуют о том, что создан экономичный, доступный и эффективный метод (оптимальный вариант хладоограждающего раствора и экспоненциальная программа охлаждения) введения кровяных пластинок в криоанабиоз с целью их 120 суточного хранения в функционально полноценном состоянии.

Это дало возможность прогнозировать теоретически и осуществлять практически хранение тромбоцитов в физиологически полноценном состоянии при охлаждении до -40°С в течении 4-х месяцев с разработанным хладоограждающим раствором (вариант №3).

На основании положительных данных, полученных в экспериментальных исследованиях по5 изучению «острой» и «хронической» токсичности, пирогенности разработанного хладоограждающего раствора (вариант №3), физиологической и морфологической полноценности кровяных пластинок, замороженных с ним, их благоприятной переносимости опытными; животными, дано заключение о возможности применения созданного метода криоконсервирования тромбоцитов в научных лабораториях криофизиологического, медицинского и биологического профиля.

Основные положения, выносимые на защиту:

1 Разработан хладоограждающий раствор (вариант №3) для введения в криоанабиоз тромбоцитов, содержащий ГМБТОЭМ, натрия фумарат, кислоту лимонную и бидистиллированную воду, который нетоксичен, апирогенен и не требует отмывания перед внутривенным введением, размороженного тромбоцитного концентрата.

2 Тромбоциты, введённые в криоанабиоз при -40°G по экспоненциальной программе с предложенным хладоограждающим;раствором (вариант №3), сохраняют на высоком уровне свои физиологические свойства после перенесённого холодового стресс-воздействия в течение 4 месяцев.

3. Переливание ТК, замороженных с разработанным криозащитным раствором, благоприятно переносят в эксперименте крупные животные (собаки), что позволяет рекомендовать данный ограждающий раствор и экспоненциальную программу охлаждения кровяных пластинок для применения в научных лабораториях криофизиологического, медицинского и биологического профиля.

Апробация работы и публикации

Основные результаты и положения диссертационной работы доложены и обсуждены на научно-практической конференции, посвященной современным проблемам гематологии и трансфузиологии (Киров, 2002), областном научном обществе гематологов и трансфузиологов (Киров, 2002), научно-практической конференции «Актуальные вопросы современной медицины. Епифановские чтения» (Киров, 2003), Российской научно-практической конференции «Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии» (Санкт-Петербург, 2004). Диссертация апробирована на заседаниях Проблемной комиссии и Ученого Совета Федерального государственного учреждения «Кировский научно-исследовательский институт гематологии и переливания крови Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию» (Киров, 2003) и объединённом заседании Кировского отделения Физиологического общества им. И.П.Павлова и областного научного общества гематологов и трансфузиологов (Киров, 2007).

Публикации материалов исследования

По материалам диссертации опубликовано 8 печатных работ, из них 1 в рецензируемом журнале. Получен патент на изобретение № 2230454 (РФ) от 20.06.2004 г.

Личное участие автора в получении результатов

Автором разработан новый хладоограждающий раствор, определена морфологическая и функциональная сохранность клеток до замораживания и после оттаивания, исследована «острая» токсичность на лабораторных мышах, «хроническая» токсичность на лабораторных мышах и кроликах, на собаках изучена переносимость трансфузий размороженных аутологичных тромбоцитных концентратов, перенёсших криоанабиоз при -40°С под защитой разработанного криозащитного раствора (вариант №3), проведён анализ и статистическая обработка полученных результатов.

Объём и структура работы

Диссертация изложена на 128 страницах компьютерного текста и состоит из введения, обзора литературы, главы с описанием материалов и методов исследования, главы с изложением результатов собственных исследований, главы, где обсуждаются результаты экспериментальных исследований, выводов, практических рекомендаций для научной работы, списка использованной литературы, который включает 304 источника (128 отечественных и 176 зарубежных) и списка работ, опубликованных по теме диссертации. В диссертации 24 таблицы, 7 рисунков.

Похожие диссертационные работы по специальности «Физиология», 03.00.13 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Физиология», Яленский, Андрей Юрьевич

ВЫВОДЫ

1. Оптимальным хладоограждающим раствором для создания устойчивости тромбоцитов к холодовому стресс-воздействию и сохранению физиологических и морфологических свойств кровяных пластинок является вариант раствора №3, содержащий в конечной концентрации 5% ГМБТОЭМ, 0,95% натрия фумарата и 0,5% кислоты лимонной, остальное бидистиллированную воду. При его применении через 24 часа холодового стресс-воздействия сохраняется 88,6% тромбоцитов, их физиологические свойства составляют: адгезивность 26,6±0,6% (92,8±1,19% от исходного уровня), агрегация АДФ-индуцированная 38,1 ±1,5% (80,1±1,74% от исходного уровня), агрегация ристомицин-индуцированная 40,4+1,4% (81,9±1,91% от исходного уровня), реакция на гипотонический шок 28,7±1,5% (53,6±1,81% от исходного уровня). Хладоограждающие свойства данного раствора сохраняются при +60°С в течение 45 суток, что соответствует 2 годам хранения при +4°С. .

2. Оптимальный срок сохранения на высоком уровне физиологической активности тромбоцитов, подвергнутых криоанабиозу при -40°С под защитой оптимального варианта (№3) хладоограждающего раствора, составляет 4 месяца. К этому времени сохраняется в функционально активном состоянии 87,4% кровяных пластинок, их адгезивность составляет 91,3% от исходного, АДФ-индуцированная агрегация - 78,8% от исходного, ристомицин-индуцированная агрегация - 80,7% от исходного, реакция на гипотонический шок - 52,4% от исходного уровня, проявляя этим выраженную устойчивость к холодовому стресс-воздействию.

3. Эффективной и физиологически щадящей (обеспечивающей устойчивость к повреждающему действию отрицательных температур) программой введения тромбоцитов в холодовой анабиоз при умеренно-низкой температуре является экспоненциальная, при которой не происходит выброса кристаллизационного тепла при эвтектической температуре и рекристаллизации,, что предотвращает образование крупных кристаллов во внутри- и внеклеточной водной среде, не происходит разрушения органелл и цитоплазматической мембраны, что позволяет сохранить ультраструктуру и функциональную активность у выраженного большинства кровяных пластинок после выхода из криоанабиоза (-40°С).

4. Переливания аутологичных тромбоцитов, вышедших из криоанабиоза (-40°С) с разработанным хладоограждающим раствором, экспериментальные животные (собаки) переносят без возникновения каких-либо нарушений их исходного физиологического состояния, что свидетельствует о возможности его применения в научных лабораториях криофизиологического, медицинского и биологического профиля.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Разработанный хладоограждающий раствор для тромбоцитов (патент № 2230454 (РФ) от 20:06.2004 г.) и экспоненциальная программа охлаждения до, -40°С, позволяющие сохранить 87,4% кровяных пластинок в физиологически полноценном состоянии в течение 4 месяцев, рекомендуются для применения: с научной целью в работе лабораторий криофизиологического, медицинского и биологического профиля.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Яленский, Андрей Юрьевич, 0 год

1. Абдиев К.М. Оптимизация тактики трансфузий концентратов тромбоцитов у больных с амегакариоцитарными тромбоцитопениями: Автореф. дис. . канд. мед. наук. М., 1991. - 22 с.

2. Абдулкадыров К.М. Гемокомпонентная терапия при заболеваниях системы крови // Клинич. медицина. 1994. - Т. 72, № 2. - С. 10-13.

3. Абдулкадыров К.М. Гематология: Новейший справочник. — С-Пб: Изд-во Совет; М.: Изд-воЭКСМО, 2005. - 928 с.

4. Автандилов Г.Г. Морфометрия в патологии. — М.: Медицина, 1973.248 с.

5. Аграненко В.А. Тромбоцитотерапия // Актуальные вопросы службы крови и трансфузиологии : Тез. докл. Рос. конф. СПб., 1995. - С.431.

6. Аграненко В.А., Бахрамов С.М., Жеребцов Л.А. Компонентная гемотерапия.- Ташкент, 1995. 279 с.

7. Аграненко В.А., Тибилова Н.Н. Консервирующие растворы для крови и её компонентов // Кровезаменители, консерванты крови и костного мозга. Справочник.-М.: Медицина, 1997.-С. 120-161.

8. Аграненко В.А., Файенштейн Ф.Э., Голубева В.Л. и др. Криоконсервированные тромбоциты и их клиническая эффективность // Гематология и трансфузиология. 1987. - № 5. - С. 8-12.

9. Азовская С.А. Криоконсервирование тромбоцитов // Гематология и трансфузиология. 1995. - Т. 40, № 1. - С. 22-24.

10. Азовская С.А., Волкова Р.И., Сокольцов В.Ф. Криоконсервирование тромбоцитов и их функциональная полноценность // Гематология и трансфузиология. 1995. - Т. 40, № 5. - С. 44-47.

11. Актуальные проблемы криобиологии / Под ред. Н.С. Пушкаря. -Киев: Наукова думка, 1981. 605 с.

12. Актуальные проблемы криобиохимии //Криобиология и криомедицина / A.M. Белоус, В.И. Луговой, А.К. Гулевский. Киев, 1975. -С.8-15.

13. Балезина Л.В. Выделение и консервирование концентратов тромбоцитов из отдельных доз донорской крови: Автореф. дис. . канд. мед. наук.-М., 1991.-28 с.

14. Барышев Б.А. Кровезаменители. Справочник для врачей. СПб.: Человек, 2001.-96 с.

15. Белоус A.M., Бондаренко В.А., Бондаренко Т.П. Влияние замораживания оттаивания на липидный состав митохондрий // Биохимия. -1978. - Т. 43, №12. - С. 2175-2182.

16. Белоус A.M., Гордиенко Е.М., Розанов Л.Ф. Замораживание и криопротекция.-М.: Высш. шк., 1987.-80 с.

17. Белоус A.M., Грищенко В.И. Криобиология. Киев: Наукова,думка, 1994.-431 с.

18. Биохимия (учебник для вузов) / Под ред. Е.С. Северина. М.: ГЭОТАР-МЕД, 2003. - 925 с.

19. Биохимия мембран: Кн. 3. Замораживание и криопротекция (Учеб. пособие для биол. и мед. спец. вузов) / Под ред. А.А. Болдырева. М.: Высш. шк., 1987. - 81 с.

20. Быков В.Л. Цитология и общая гистология (функциональная морфология клеток и тканей человека). СПб.: СОТИС, 1998. - 520 с.

21. Вашкинель В.К., Петров М.Н. Ультраструктура и функция тромбоцитов человека. Л.: Наука, 1982. - 88 с.

22. Владимиров Ю.В., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. - 345 с.

23. Волков Н.Н., Горшкова Н.Н., Крючков М.И., Петренко Л.И. Реальные потребности в компонентах крови в клинической практике // Терапевт, архив. 1989. - Т. 61, № 7. - С. 121-123.

24. Волкова Р.И: Консервирование концентрата тромбоцитов, выделенных из обогащенной; тромбоцитами плазмы // Гематология и трансфузиология.- 1992,-№4.т G.32.

25. Волкова Р.И!, Балезина Л:В., Аграненко В.А. и др. Косервирование концентратов, тромбоцитов, выделенных из обогащенной: тромбоцитами плазмы донорской крови // Гематология и трансфузиология. 1992. - № 4. - С. 32-35.

26. Воробьев А.И. . Новый? этап в развитии службы крови страны // Пробл. гематологии и перел. крови. 1995; - Т. 1, №1.- G. 3-6.

27. Воробьев А.И., Городецкий В.М., Крючков М.И. Получение, тромбоцитной массы и ее применение в терапии; лейкозов // Плазмаферез и гравитационная хирургия крови. Ереван, 1981. - С. 94-98.

28. Воробьёва Г.С., Компаниец• A.M., Ивашков В.И-, Разработка метода1 криоконсервирования тромбоцитов с ДМАЦ для клинических целей' // Консервирование крови и её компонентов. М., 1981.- С.77-78.

29. Временная инструкция по проведению работ с целью определения сроков годности лекарственных средств на основе метода ускоренного старения при повышенной температуре. МЗ CGCP. М;, 1979. - 7 с.

30. Гаврилов O.K., Кавешникова Б.Ф., Калинин Н.Н. Аппаратура и методы гравитационной' хирургии крови // Гравитационная хирургия крови / Под ред. О.К.Гаврилова. М;: Медицина, 1984. - С. 52-84.

31. Гланц С. Медико-биологическая статистика. — М.: Практика, 1998459 с.

32. Голдовский A.M. Анабиоз и его практическое применение. Л.: Наука, 1986.-167 с.

33. Головкина Л.Л. Значение антигенов тромбоцитов:в трансфузиологиии педиатрии // Новое в трансфузиологии.- 2000:- Вып. 25.- С.93-101.

34. Головкина Л.Л., Зотиков Е.А., Красникова Н.А. и др. Значение антигенов тромбоцитов систем HLA и НРА в трансфузиологии // Пробл. гематологии и переливания крови.-2003.-№1.- 41с.

35. Гордиенко Е.А., Осяцкий А.И:, Розанов Л.Ф. Научное обоснование способов низкотемпературного консервирования; клеточных суспензий // Пробл. криобиологии. 1997. - №1. - С. 67-71.

36. Гордиенко Е.А., Пушкарь H.G. Физические основы низкотемпературного;консервирования клеточных суспензий;- Киев: Наукова думка, 1994.- 144 с.

37. Городецкий В.М. Получение тромбоцитов от одного донора методом прерывистого тромбоцитафереза и их применение при амегакариоцитарной тромбоцитопении : Автореф. дис. канд. мед. наук. .--Mi, 1981. 30;с:

38. Городецкий В.М., Воробьев А.И. Получение лечебной дозы тромбоцитов от одного донора // Гравитационная хирургия крови /, Под ред. О.К.Гаврилова. М.: Медицина, 1983. - С. 153-154.

39. Еосударственная фармакопея СССР: Вып. 2. Общие методы анализа, лекарственное растительное сырьё / 11-е изд. М.: Медицина, 1990. — С.182-185;

40. Государственная фармакопея СССР. / 10-е изд. М.: Медицина, 1968.- 1079 с.

41. Гравитационная хирургия, крови / Под ред. O.K. Гаврилова. Mi: Медицина, 1984.-304 с.

42. Данилова А.В., Андожская И.В., Стерлин В.М. Заготовка и применение концентрата тромбоцитов* в отделении переливания, крови // Пробл. гематологии и переливания крови. 2000. - №2. - С. 19.

43. Данильченко В.В1 Разработка и обоснование принципов организации донорства в вооруженных силах Российской; Федерации : Автореф. дис. . д-ра мед. наук. СПб., 1996. - 28 с.

44. Данильченко В.В., Сидоркевич С.В., Калеко С.П. и др. Организация банков низкотемпературного консервирования клеток крови и костного мозга //Актуальные вопросы службы крови и трансфузиологии : Тез. докл. СПб., 1995.-С. 56.

45. Данильченко В:В;, Тюрин Р.В., Богданов А;Н. и др. Гемокомпонентная терапия у больных после; аутомиелотрансплантации // Актуальные вопросы гематологии : Тез. докл. Всеарм. науч. конф. СПб., 1995.-С. 67.

46. Дегтярева И.Н. Разработка эффективного метода получения лечебных доз тромбоцитов от минимального количества доноров, обеспечивающих проведение курса гемокомпонентной терапии : Автореф. дис. канд. мед. наук. Л., 1986. - 20 с.

47. Джумабаева Б.Т., Васильев С.А., Городецкий В.М., Воробьёв А.И. Способ хранения тромбоцитов. А.с. №1526697 от 7.12.89т. •

48. Дуткевич И.Г. Варианты аутогемотрансфузий в хирургической практике : Автореф. дис. . д-ра мед. наук.- Л;, 1987.-34 с.

49. Жибурт Е.Б. Трансфузиология. СПб.: Питер, 2002 - 736 с.

50. Журавлёв В.В. Получение лечебной . дозы тромбоцитного концентрата от одного донора с применением полимерных контейнеров кп км «600/400/400»: Автореф. дис.канд. мед. наук. СПб., 2005. - 20 с.

51. Журавлёв В.В., Сведенцов Е.П., Югов Ю.И. Опыт клинического применения трёхкратного тромбоцитафереза // Четвертая конференция. Московского общества гемафереза: Тез. докл. М., 1996.- С. 128.

52. Заготовка в полимерных контейнерах концентрата тромбоцитов и концентрата лейкоцитов из лейкотромбоцитарного слоя консервированной крови: (Метод: рекомендации). Mi, 1984. - 10 с.

53. Заготовка концентрата тромбоцитов методом двойного плазмацитафереза; с последующим криоконсервированием: (Метод, рекомендации). Киров, 1991. - 8 с.

54. Зайцева Г.А., Бутила Б.В., Карпов Д.А. и др. Актуальные проблемы гематологии и; переливания крови// V съезд гематологов и трансфузиологов Республики Беларусь: Тез. докл.- Минск, 2003.- Т.З.- G. 65.

55. Захаров В В. Консервирование тромбоцитов замораживанием при -80°С под защитой диметилацетамида: Автореф. дис. . канд. мед. наук. -СПб., 1996.-22 с.

56. Ивашков В .И., Рыбак А.Б., Федорова Л.И. О нахождении оптимального температурного режима криоконсервирования биологических объектов //Гематология и трансфузиология.- 1983.- №1.- С. 21-26.

57. Инструкция по заготовке тррмбоцитов от одного донора методом прерывистого тромбоцитафереза; с; применением, полимерных контейнеров.,. МЗ РФ от 29.05.1995г. М., 1995.- 15 с.

58. Инструкция по клиническому изучению концентратов тромбоцитов, замороженных с раствором «тромбокриодмац». М.,1979. - 9 с.

59. Инструкция по контролю стерильности консервированной: крови, ее компонентов, препаратов; консервированного костного мозга, кровезаменителей и консервирующих растворов. МЗ и МП РФ от 29.05.1995г.-М., 1995.- 11 с.

60. Инструкция по криоконсервированию клеток крови. МЗ РФ от 29.05.1995г.-М., 1995.-44 с.

61. Калинин Н.Н. Современное состояние проблемы плазмацитафереза //Гематология и трансфузиология. 1995.- №2.- С. 46-48.

62. Клестова В.И., Шабанова Л.И., Рябов Н.В., Ипатов С.Г. Получение чистой фракции тромбоцитов, из периферической крови доноров //Гравитационная хирургия крови / Под ред. O.K. Гаврилова. М.: Медицина,1983.-С. 154-155.

63. Ковалева Л.Г. Острые лейкозы / 2-е изд., перераб. и доп.- М.: Медицина, 1990.-272 с.

64. Колб В.Г., Камышников B.C. Клиническая биохимия. Минск: Беларусь, 1976. - 311 с.

65. Компаниец A.M. Консервирование концентратов тромбоцитов и их клиническая эффективность : Автореф. дис. . д-ра мед. наук. М., 1992. - 52 с.

66. Компаниец A.M. Функциональная полноценность тромбоцитов, сохраняемых при различных температурных режимах : Автореф. дис. . канд. мед. наук. М., 1980. - 19 с.

67. Компаниец A.M., Аграненко В.А., Файнштейн Ф.Э. Трансфузии консервированных концентратов тромбоцитов показания, дозировка,, лечебная эффективность // III-й Всесоюз. съезд гематологов и трансфузиологов : Тез. докл. Т. 1. - Киров, 1991. - С. 433-434.

68. Компаниец A.M., Аграненко В.А., Хан Чер, Полянская A.M. Лечебная эффективность консервированных концентратов тромбоцитов // Клинич. медицина. 1989. - N12. - С. 74-80.

69. Компаниец A.M., Николенко А.В., Луговой В.И. Криоконсервирование тромбоцитов с веществами ряда полиолов // П-я Международная конференция по криобиологии : Тез. докл. Харьков, 1992. -С. 86.

70. Костяев А.А., Сведенцов Е.П., Утёмов С.В. и др. Оценка опыта применения электроморозильника «Криостат» для быстрого двухступенчатого замораживания клеточных суспензий // Мат-лы научн. сессии Пермской гос. мед. академии.-Пермь, 2001.-С. 154.

71. Криоконсервирование клеточных суспензий / Под общ. ред. А.А.Цуцаевой. Киев: Наукова думка, 1983. - 240 с.

72. Кровезаменители, консерванты крови и костного мозга : Справочник

73. Под ред. проф. Г.Н.Хлябича. -М.: Медицина, 1997. 192 с.

74. Кузнецов К.В. Консервирование тромбоцитов замораживанием при -80°С по экспоненциальной программе: Автореф. дис. канд. мед. наук. — СПб., 2006. 23 с.

75. Лабораторные методы исследования в клинике : Справочник / Под ред. проф. В.В.Меньшикова. М.: Медицина, 1987. - 368 с.

76. Лисовская И.Л., Аграненко В.А. Новый метод приготовления функционально активных концентратов тромбоцитов из консервированной крови 1-5 дней хранения//Гематология и трансфузиология. 1983. - № 10. - С. 55-58.

77. Лозина-Лозинский Л.К. Очерки по криобиологии. Адаптация и устойчивость организмов и клеток к низким и сверхнизким температурам. -Л.: Наука, 1972.-288 с.

78. Лобовская Л.В. Морфология поверхности свежевыделенных и консервированных тромбоцитов // П-й Всесоюзный съезд гематологов и трансфузиологов : Тез. докл. М., 1985. - С. 51.

79. Лобовская Л.В. Поверхностная архитектоника и электрофоретическая подвижность интактных и консервированных тромбоцитов: Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 1985. - 25 с.

80. Лыткин М.И., Шевченко Ю.Л., Матвеев С.А. Применение криоконсервированных аутотромбоцитов в кардиохирургии // Грудная и сердечно-сосудистая хирургия. -1990. № 10. - С. 37-39.

81. Масчан А.А., Самочатова Е.В., Крыжановский О.И. Тактика сопроводительной терапии при лечении острого лимфобластного лейкоза по программе БФМ // Педиатрия. 1992. - N2. - С. 68-78.

82. Матвеев С.А. Изменение функциональных свойств тромбоцитов при хирургической инфекции и пути их коррекции // Вестн. хирургии им. И.М. Грекова. 1987. - Т. 138, № 6. - С. 142-145.

83. Матвеев С.А. Состояние тромбоцитарного гемостаза и егокоррекция при кардиохирургических операциях в условиях искусственного кровообращения : Дисканд. мед. наук. Л., 1988. - 195 с.

84. Механизмы индукции и репарации нелетальных криоповреждений / А.А. Цуцаева, А.О. Котляров, О.В. Кудокоцева и др. // Цитология. 2004. -Т. 46, №9: - С. 879;

85. Мигунов В.Н., Селиванов Е.А., Сведенцов Е.П. и др. Разработка отраслевого классификатора крови, инфузионных и трансфузионных сред // «Актуальные проблемы гематологии: и: трансфузиологии: Сб. научн. тр. — СПб., 2002. С. 233-234.

86. Мовшев Б.Е., Витвицкий В.М., Лисовская И.Л. и др. Трансфузионные среды: прикладные и фундаментальные1 аспекты // Гематология и трансфузиология.- 2001.- №3. С. 74-82.

87. Молекулярные механизмы криоповреждения мембранных структур / A.M. Белоус, Т.П. Бондаренко, В.А. Бондаренко //Криобиология и криомедицина. 1979. - № 5. - С. 3-13.

88. Никитин И.К., Козинец Г .И. Кровь, компоненты крови: хранение, фракционирование, качество и стандарты // Гематология: и трансфузиология.-2002.- Т.47, №4. С. 36-40.

89. Николаев AJL Биологическая химия: Учебник, для мед. спец. вузов.-М.: Высш. шк, 1989. 495 с.

90. Николенко А.В. Криопротекторные свойства полиолов и их производных при замораживании тромбоцитов: Автореф. дис. . канд. мед. наук. Харьков, 1991. - 18 с.

91. Николенко А.В. Низкотемпературное консервирование тромбоцитов под защитой соединений ряда амидов // Криобиология. — 1985. №3. - С. 51.

92. Об утверждении инструкции по применению компонентов крови. Приказ МЗ РФ №363 от 25.11.2002г.-М., 2002. 29 с.

93. Осташко В.Ф., Осташко Ф.И. Температурный шок клеток как гидравлический удар в резонансной системе // Цитология. 2004. - Т. 46, №9.-С. 831-832.

94. Патент на изобретение №2049391 (РФ). Средство для криоконсервирования костного мозга / Е.П. Сведенцов, В.П. Архиреев, Д.С. Симкин, Е.В. Кузнецов. Опубл. 10.12.1995.

95. Петров М.М., Федорова Л.Н., Кураева Ю.И. и др. Донорский тромбоцитаферез на новом фракционаторе крови «Amicus» фирмы «Baxter» // Пробл. гематологии и переливания крови.-2002.-№1. 68 с.

96. Поздеев Н.М., Федоровская Н.А., Югов Ю.И. и др. Трансфузиологическое и гормональное обеспечение спленэктомий у больных апластической анемией // Актуальные вопросы трансфузиологии и клинической медицины: Мат-лы научн. конф. Киров, 1993. - С. 15-16.

97. Пушкарь Н.С., Белоус A.M. Введение в криобиологию.- Киев: Наукова думка, 1975.- 344 с.

98. Ре Луи Консервация жизни холодом. М.: Мир, 1962. - 155 с.

99. Руководство по общей и клинической трансфузиологии. / Ю.Л. Шевченко, В.Н. Шабалин, М.Ф. Заривчацкий, Е.А Селиванов.- СПб.: Фолиант, 2003.-608 с.

100. Руководство по трансфузионной медицине / Под ред. Е.П. Сведенцова. Киров, 1999. - 716 с.

101. Румянцев А.Г., Аграненко В.А. Клиническая трансфузиология.- М.: ГЭОТАР МЕДИЦИНА, 1997.-575 с.

102. Рутберг Р.А., Маллер А.Р., Терентьева Э.И., Козинец Г.И. Получение больших количеств физиологически полноценной тромбоцитарной массы // Функциональные свойства тромбоцитов в норме и при патологических состояниях. Обнинск, 1975. - С. 71.

103. Рыжко В.В. Переливание тромбоцитной массы // Новое в трансфузиологии.- 1994.-Вып. 6.-С. 13-17.

104. Сведенцов Е.П., Костин А.И., Селезнёва О.М.| Аутодонорство тромбоцитов у онкогематологических больных // Вест, службы крови России. 1998. - №2.-С. 17-19.

105. Сведенцов Е.П., Кузнецов К.В., Утёмов С.В. и др. Криоконсервирование тромбоцитов при -80°С //Вестник службы крови России. 2006. - №2. - С.3-5.

106. Сведенцов Е.П., Рахматуллаев А.Р., Сахибов Я.Д. Заготовка и консервирование тромбоцитов для клинического применения. Ташкент: Абу Али ибн Сина, 1996. - 73 с.

107. Сведенцов Е.П., Селезнёва О.М.|, Симкин Д.С., (Новосадов1 В.М.

108. Водный раствор для криоконсервирования тромбоцитов. 1993. - Патент № 1561227 (Роспатент) от 12.04.1993г.

109. Селезнёва О.М.| Криоконсервирование тромбоцитов с применением нового хладоограждающего; раствора: Автореф: дис: . канд. биол. наук. -СПб., 1996.-21 с.

110. Серова Л.Д. Аллосенсибилизация к антигенам клеток и белков плазмы крови у гематологических больных // Гемокомпонентная инфузионная терапия и парентеральное питание : Сб. науч. тр. Л;, 1983. - С. 37-441.

111. Синицын П.Д., Волкова В.II. Переливание крови и ее компонентов. Челябинск: Челяб. мед. ин-т, 1988. - 118 с.

112. Скопина С.Б., Виноград-Финкель Ф.Р., Полушина Т.В: и др: Изыскание эффективных ограждающих растворов для криоконсервирования; тромбоцитов // Пробл. гематологии и переливания крови.- 1975.-№9.- С. 17211

113. Суворов А.Н., Poop О.А. Эффективность трансфузий концентратов тромбоцитов при лечении острых лейкозов: // Проблемы гематологии и переливания крови. 2003. - №1. - С. 57.

114. Фефелова И.В., Мхеидзе Д.М., Селидовкин Т.Д. и др. Криоконсервирование тромбоцитов с диметилсульфоксидом // Гематология и трансфузиология. 1991. - № 6. - С. 30-32.

115. Хейхоу Ф.Г.Дж., Кваглино Д. Гематологическая цитохимия. М.: Медицина, 1983. - 320 с.

116. Шабалин- В.Н., Серова О.Д., Абдулкадыров К.М. и др. Иммунологическое обеспечение компонентной гемотрансфузионной терапии // Проблемы гематологии и переливания крови. 1978. - № 8. - С. 3-7.

117. Шарова Ю.А., Аграненко В.А., Самсонова Н:Н. Клиническоеприменение тромбоцитоконцентрата в сердечно-сосудистой хирургии // Гематология и трансфузиология. 1989. - Т. 32, № 5. - С. 12-14.

118. Шевченко Ю.Л., Чечеткин А.В., Журавлев Ю.Н. и др. Принципы трансфузионной терапии при операциях на сердце // Актуальные вопросы службы крови и трансфузиологии: Тез. докл. Рос. конф. СПб., 1995. - С. 331.

119. Шитикова А.С. Тромбоцитарный гемостаз. СПб: Издательство СПб ГМУ, 2000.-227 с.

120. Шраго М.И., Гучок М.М., Калугин Ю.В. и др. О некоторых путях создания криопротекторов // Пробл. гематологии и переливания крови,- 1981.-№6.-С. 3-6.

121. Шраго М.И., Козлова В.Ф. Токсико-фармакологические исследования в криобиологии // Криобиология. 1987. - N1. - С. 5-10.

122. Щеглова О.О. Функциональное состояние лейкоцитов после выхода из холодового анабиоза при умеренно-низкой температуре: Автореф. дис. канд. биол. наук. Киров, 2005. - 20 с.

123. Adams J.A., Gordon А.А., Jiang Y.Z. et al. Thrombocytopenia after bone marrow transplantation for leukemia: Changes in megakaryocyte growth and growth-promoting activity // Br. J. Haematol. 1990. - Vol. 75, № 2. - p. 195-201.

124. Aisner J., Schiffer C.A., Wolff J.H., Wiernik P.H. A Standardized Technique for Efficient Platelet and Leukocyte Collection Using the Model 30 Blood Processor // Transfusion. 1976. - Vol. 16, № 5. - P. 437-445.

125. Alder S.P. Transfusion-Transmitted CMV-Infections. Clinical Importance and Means of Prevention // Vox. Sang. 1984. - Vol. 46, № 6. - P. 387414.

126. Angelini A., Dragani A., Berardi A. et al. Evalution of Four Different Methods for Platelet Freezing I I Vox. Sang. 1992. - Vol. 62, № 1. - P. 146-151.

127. Archer G.T., Grimsley P.O., Lindra J. et al. Survival of Transfused Platelets-Collected into New Formulation Plastic packs // Vox. Sang. 1982. - Vol. 43, № 4. - P.223-230.

128. Arnaud F.G., Pegg D.E. Cryopreservation of human platelets with 1.4M glycerol at -196 degrees С // Thromb. Res.- 1989.- Vol.53, №6.- P. 585-594.

129. Ashwood-Smith M.G. Low temperature preservation. of mouse lymphocytes with DMSO // Blood; 1964. Vol.23, №3. -P. 494-499.

130. AuBuchon JP, Taylor II, Holme S, Nelson E. In vitro and in vivo evaluation of leukoreduced platelets stored for 7 days in CLX containers. //Transfusion. — 2005. Vol. 45, №8. - P. 1356-61.

131. Badlou B:A. IJseldijk MJ.W. Smidt W.M. Prolonged platelet, preservation by transient metabolic suppression // Transfusion. 2005. - Vol. 45. -P.214.

132. Bannai M., Mazda Т., Sasakawa S. The effect of pH and agitation on platelet preservation //Transfusion. 1985. - Vol: 25, №1. - P. 57-59;

133. Beanjean F;, beforestier C., MannonUP^ Functional and clinical studibs-of Platelets frozen with 5% DMSO : Congress of the international society of Blood Transfusion. Abstracts (II), 27-28. Paris, 1978. - T.i. 319.

134. Benjamin R.J, Rojas P., Christmas S. Plateletpheresis efficiency: a comparison of the Spectra LRS and AMICUS separators //Transfusion. 1999; -Vol. 39.-P. 895.

135. Berndsen G. Zur. Trombozytenflussiglagerung // Folia Haematol. 1989. -Bd. 116, №2. - S. 227-234.

136. Besa E.C., Catalano P.M., Kant J.A. et al. Hematology. Philadelphia e.a.: Harwal Publ. - 1992. - P. 83.

137. Blajchman M.A., Goldman M., Baeza F. Improving the bacteriological safety of platelet transfusions // Transfus. Med. Rev. -2004. Vol.18. - P. 11-24.

138. Bock M, Greither L, Heim MU. Morphologic andafunctional changes in thrombocytes after deep freezing with DMSO"// Infusionsther Transfiisionsmed. -1996. -Vol. 23, №2. P. 76-79.

139. Bock M., Rotrig S., Kunz D. et al. Platelet concentrates derived from buffy coat and apheresis: biochemical and functional differences // Transfusion Medicine. 2002.- Vol: 12, №5. -P. 317.

140. Воск M.M., Schleuning M.U., Heim- P. and Mempol W. Cryoprcscrvation of human platelets with dimethyl sulfoxide: changes in biochemistry and cell function//Transfusion. 1995. - Vol.35. - P. 921-924.

141. Born G.V.R. Aggregation of blood platelets by adenosine diphosphate: and its reversal //Nature. 1962. - Vol. 194, №4832. - P. 927-929.

142. Brand A, Novotny V, Tomson B. Platelet transfusion therapy: from 1973 to 2005 // HumiImmunol;- 2006.- Vol:67, №6. P:413-418.

143. Brands A., Vam Eeeuwen A., Eemisse J:G., Van Rood J.J. Platelet Transfusion Therapy. Optimal donor Selection with a Combination of Lymphocytoxicity and Platelet Fluorescence Test // Bloodi 1978. - Vol. 51, № 5. - -P. 781-788.

144. Brodthagen U.A., Armitage W.J., Parmar N. Platelet Cryopreservation with Glicerol, Dextran and Mannitol: Recovery of 5-Hydroxytryptamine Uptake and Hypotonic Stress Response // Cryobiology. 1985. - Vol. 22, № 1. - P. 1-9:

145. Car R., Mutton J.L., Jenkins J.A. et al. Transfusion of ABO-mismatched platelets leads to early platelet refractoriness // Br. J. Haematol. 1990. - Vol. 75, № 3. - P. 408-413.

146. Chao F.C., Tullis .JiE.,. Tinch R.J. et al. Plateletpheresis by Discontinuous Centrifugation: Effect of Collecting Method on the in vitro Function of platelets // Brit.J.Haematol. 1979. - Vol. 39, № 2. - P. 177-187.

147. Clarke J.A., Salsbury J. Surface ultrastructure of human blood cells // Nature.- 1967. № 215. - P. 402-404.

148. Coffe C., Couteret Y., Pouthier F., Peters A. Prevention of Platelet

149. Alloimmunization//Transfus. Sci. 1990. - Vol.11, №2. - P. 133-139.

150. Daly P.A., Schiffer C.A., Aisner J., Wiernik P.H. Successful Transfusion of Platelets Cryopreserved for More Then 3 Years // Blood. 1979. -Vol.54.-P. 1023-1027.

151. Day H.J., Holmzen H., Zucker M.B. Methods for separating platelets from blood and plasms // Thromb. et diath Haemorr. 1975. - Vol.33, № 3. - p. 648-676.

152. Dayian G., Harris H.L., Vlahides G.D., Pert J.H. Improved Procedure for Platelet Freezing // Vox.Sang. 1986. - Vol.51, № 2. - P. 292-298. .

153. Dayian G., Pert J.H. A Simplified Method for Freezing Human Blood Platelets in Glycerol-Glucose Using a Statically Controlled Cooling Rate Device // Transfusion. 1979. - Vol.19, № 3. - P. 255-260.

154. Dayian G.M., Rowe A.W. Cryopreservation of human platelets for transfusion // Ciyobiology.- 1976.- Vol.13- P. 1-8.

155. Djerassi I., Roy A., Kim J., Cavins J. Dimethylacetamide, a New Cryoprotective Agent for Platelets // Transfusion. 1971. - Vol.11, № 2. - P. 72-75.

156. Fabris F., Belloni M., Casonato A. et al. Girolami A. Improvement of Platelet Aggregation Abnormalities in Thrombocytosis after Thrombocytopheresis // Folia Haematologica. 1981. - Vol.108, № 6. - P. 853-862.

157. Fabris F., Randi M., Casonato A. et al. The Significance of Plasma and (or) Platelet Activated Products After Apheresis Procedures // Thromb. Haemostas.- Stuttgart. 1983. - Vol.50, № 2. - P. 620-623.

158. Fiala J. Trombocytafereza // Vnitrni lekarstvi. Praha. - 1981. - Vol.27, № 12.-P. 1217-1222.

159. Fijnheer R., Pietersz R.N.I., Korte D.De, Roos D. Monitoring of platelet morphology during storage of platelet concentrates // Transfusion. 1989. - Vol. 29, №1.- P. 36-40.

160. Filip D.J., Duquesnoy R.I., Aster R.H. Predictive Value of Crossmatching for Transfusion of Platelet Concentrates to Alloimmunizid Recipients // Amer. J. Hemat. 1976. - Vol.1, № 4. - P. 471-479.

161. Fuller BJ. Cryoprotectants: the essential antifreezes to protect life in the frozen state // Cryo Letters. 2004 - Vol.25, №6. - P. 375-88.

162. Fuller В., Lane N., Benson E. Life in the frozen state. London, New York, Washington: CRS Press. - 2004. - P. 672.

163. Gardner F.H. Use of Platelet Transfusion // Brit. J. Haemotology. -1974. Vol.27, № 4. - P. 537-543.

164. Gascon P., Zoumbos N.C., Young N.S. Immunologic Abnormalities in Patients Receving Multiple Blood Transfusions // Ann. Intern. Med. 1984. - Vol. 100,№ 2.-P. 173-177.

165. Gilcher R.O. Blood and Apheresis Productes: Usage in Modern Transfusion Therapy // Plasma Ther. 1982. - Vol. 3, № 1. - P. 27-44.

166. Gmur J. Die Stellung der Thrombozyten und Granulozytentransfusion in der heutigen Spitalmedizin // Ther. Umsch. - 1982. - Vol. 39, № 7. - P. 515-518.

167. Gordone B.C., Coliano F.R., Tuttle S.A., Ervin T.J. A quick and efficient way to pool platelets // Transfusion. 1983. - Vol. 23, № 1. - P. 70-71.

168. Gottschall J.L., Johnston V.L., Rzad L. etal. Importance of white blood cells in platelet storage // Vox. Sang. 1984. - Vol. 47, № 2. - P. 101-107.

169. Gunson H.H., Makar I.F., Fletcher S., Merry A.H. Five day storage of platelet concentrates // Brit. J. Haematol. 1982. - Vol. 52, № 1. - P. 141.

170. Haddad SA, Lichtiger B, Klein HG. In vivo efficacy of shipped HLAmatched platelets // Transfusion. 2006. - Aug;Vol.46, №8. - P. 1306-1310.

171. Handin R.I., Fortier NX., Valeri C.R. Platelet respons to hypotonic stress after storage // Transfusion. 1970. - Vol. 10, N6. - P. 305-309.

172. Hattory A. S. Scanning electron microscopy of human peripheral blood cells//Acta haematol. jap. 1972.-№ 32. - P. 457-482.

173. Hattory A.S., Ito S., Sugawara A., Matsuoka M. Studies on fixation and drying of blood cells for scanning electron microscopic observation // Acta haematol. jap. 1975.-№ 38.-P. 86-95.

174. Hay S.H., Brecher M.E. Validation of pH and glucose determination for bacteria detection screening in platelet concentrates stored in the Terumo Teruflex XT612 platelet container//Transfusion.-2004.-Vol.44.-P. 1395.

175. Heal I.M., Bailey G., Helphingstine C. et al. Non-centrifugal plasma collection using cross-flow membrane plasmapheresis // Vox. Sang. 1983.- Vol. 44, № 3. - P. 156-166.

176. Heal I.M., Horan P.K., Schmitt T.C. et al. Long-Term Follow-up of Donors Gytapheresed More Then 50 Times // Vox. Sang. 1983. - Vol. 45, № 1. -P. 14-24.

177. Heaton W.A., Holme S., Keegan T. Development of a combined storage medium for 7-day storage of platelet concen trates and 420-day storage of red concentrates //Br. J.Haematol. - 1990. - Vol. 75, №3. - P. 400-407.

178. Herve P. Le piastrine in terapia transfusionale // Clin. Ter. 1984. - Vol. 109, №5.- P. 405-416.

179. Herve P, Potron G, Droule C, Beduchaud MP, Masse M, Coffe C, Bosset JF, Peters A. Human platelets frozen with glycerol in liquid nitrogen: biological and clinical aspects // Transfusion. 1981. - Vol.21, №4. - P. 384-90.

180. Herzig R.H., Herzig G.P., Bull M.J. et al. Correction of poor platelets transfusion responses concentrates // Blood. 1975. - Vol. 46, № 5. - P. 743-750.

181. Hester D., White D. Effect of plasmacytopheresis on the ultrastructure of platelets // Гематология и трансфузиология. 1985; - № 1. - С. 39-41.

182. Hogge D.E. Dutcher J.P., Aisner J., Schiffer C.A. Lymphocytoxic antibody is a predictor of response to random donor platelet transfusion // Amer. J. Hematol. 1983. - Vol. 14, № 4. - P. 363-369.

183. Hogg D.E., Thompson B.W., Schiffer C.A. Platelet storage for 7 days in second-generation blood bags // Transfusion. 1986. - Vol. 26, N2. - P. 131-135.

184. Hogman C.F. New Trends in Blood Component Therapy // Haematologia. 1983. - Vol. 16, № 1. - P. 23-38.

185. Holme S., Storage and quality assessment of platelets // Vox Sang. — 1998. Vol. 74, №2. - P. 207-216.

186. Holme S., Heaton W.A., Courtright M. Platelet storage lesion in second-generation containers: Correlation with platelet ATP levels // Vox Sang. 1987. -Vol. 53, №4.-P. 214-220.

187. Holme S., Heaton W.A., Moroff G. Evaluation of platelet concentrates stored for 5 days with reduced plasma volume // Transfusion. 1994. - Vol. 34, №1. - P. 39-43.

188. Huestis D.W., Feltcher J.L., White R.F., Price MJ. Citrate Anticoagulants for Plateletpheresis // Transfusion. 1977. - Vol. 17, № 2. - P. 151.155.

189. Hunderford D.A. Leucocytes cultured from smale inocula of whole blood and the preparation of metaphase chromosomes by treatment with hypotonic KC1 // Stain. Techn. 1965. - Vol. 40. - P. 333-338.

190. Ishikawa Y., Honda K., Sasakawa S., Hatada K. Prevention of Leakage of Di-2-ethylhexyl-phthalate from Blood Bags by Glow Discharge Treatment and Its Effect on Aggregability of Stored Platelets // Vox. Sang. 1983. - Vol. 45, № 1. -P. 68-76.

191. Jacobson M.S., Kevy S.V., Parkman R., Wesolowski J.S. An in vitro evaluation of a new plasticezer for polyvinylchloride medical devices // Transfusion. -1981.- Vol. 20, № 4. P. 443-447.

192. Kao K.J. Stability of platelet and plasma HLA concentarions in healthyadults or random-donor platelet concentrates // Transfusion. 1989. - Vol. 29, № 4. - 328-331.

193. Kahn R.A., Staggs S.D., Phillips G.L. Recovery, Life Span, and Function of stored plateletpheresis Units // Vox. Sang. 1981. - Vol. 40, № 4. - P. 253-259.

194. Kakaiya R.M., Katz AJ. Platelet preservation in lange containers // Vox. Sang. 1984. - Vol. 46, № 2. - P.l 11-118.

195. Kelton J.G., Smith J.W., Horsawood P. et al. Gov3715 alloantigen system on human platelets//Blood.- 1990. Vol. 75, № 11. - P. 2172-2176.

196. Kaplan С. Platelet transfusion therapy and management of refractoriness //In: ESTM. Current problems of transfusion medicine in clinical practice. St.Petersburg (Russia). 1993.- P.125-127.

197. Kenney D.M., Peterson I.I., Smith I.W. Extended storage , of single-donor apheresis platelets in CLX blood bags: Effect of storage on platelet morphology, viability and in vitro function //Vox Sang. 1988. - Vol. 54,. №1. - P. 24-33.

198. Kickler I.S., Ness P.M., Braine H.G. et al. The expression of IgG allotypes on platelets and immunization to IgG allotypes in multitransfused thrombocytopenic patients // Blood. 1990. - Vol. 76, № 4. - P. 849-852.

199. Kilkson H., Holme S., Murphy S. Platelet metabolism during storage of platelet concentrates at 22°C // Blood. 1984. - Vol. 64, N2. - P. 406-414.

200. Kim B.K., Baldini M.G. The Platelet Response to Hypotonic Shock.Its Value as an Indicator of Platelet Viability After Storage // Transfusion. 1974. -Vol. 14, №2. - P. 130-138.

201. Klein Ch.A., Blajchman M.A. Alloantibodies and Platelet Destruction // Seminars Thromb. Hemost. 1982. - Vol. 8, № 2. - P. 105-115.

202. Koerner K. Platelet Function after Shipment of Room Temperature Platelet Concentrates //Vox. Sang. 1983. - Vol. 44, № I. p. 37-41.

203. Kotelba-Witkowska В., Schiffer C.A. Cryopreservation of plateletconcentrates using glycerol-glucose // Transfusion. 1982. - Vol. 22, № 2. - P. 121124.

204. Kurtz S.R., McMican A., Carciero R. et al. Plateletpheresis experience with the haemonetics blood» processor 30, the IBM blood processor 2997, and the Fenwal GS-3000 blood processor // Vox. Sang. 1981. - Vol. 41, № 4. - P. 212-218.

205. Kutlay S., Ilhan J., Arslan O. Influence of storage time on activation of platelets collected with CS 3000 Plus and Cobe Spectra using platelet storage containers//Terapeutic Apheresis.-2002.-Vol.6.- P. 82.

206. Kutti L, Laroulis C.G., Dinsmore R.E. et al. A prospective study of platelet-transfusion therapy administered to patients with acute leukemia // Transfusion. 1982. - Vol. 22,.№1. - P. 44-47. .

207. Larsson S, Sandgren P, Sjodin A, Vesterinen M, Gulliksson H. Automated preparation, of platelet concentrates from pooled buffy coats: in vitro studies and experiences with the OrbiSac system // Transfusion. 2005. - Vol. 45, №5.-P. 743-751.

208. Lazarus H.M., Kaniechi-green E.A., Warm L.E. Therapeutic effectiveness of frozen platelet concentrates for transfusion // Blood; 1981.- Vol; 57, j\o 2. - P. 243-249.

209. Lee E.J., Schiffer C.A., Tomiyasu Т., Testa J.R. Clinical and; cytogenetic correlations of abnormal megakaiyocytopoiesis in patients with acute leukemia and chronic myelogenous leukemia in blast:crisis;// Leukemia. 1990; -Vol. 4, №5.-P. 350-353. .

210. Marino.; I.R., Weber Т., Esquivel G.O. et al. Intraoperative blood transfusion requirements and deficient hemostasis in hightly alloimmunized patients undergoing liver transplantation // Transplant proc. 1988. - Vol. 20, №6. - P. 1087

211. Marx R., Derlath S. Never eine Method zur vergleichend quantitativen Bestimmung der thrombocytenadhasivitat an blutfremden overflachen // Blut. -1957.-№3.-S. 247-254.

212. Mazur P. Cryobiology. The freezing of biological systems // Science. -1970. Vol. 169, № 5135. - P. 939-949.

213. Mazur P., Fuller B.J, Lane N. et al. Principles of cryobiology // Life in the frozen state.- New York.-2004.- P. 3-65.

214. McLeod B.C., Sassetti R.J., Weens J.H., Vaithianthan T. Haematolytic Transfusion Reaction Due to ABO Incompatible Plasma in a Platelet Consentrare // Scand. J. Haematol. 1982. - Vol. 28, № 3. - P. 193-196.

215. McShine R.L., Weggemans M., Das P.C. et al. The Use of Fresh Plasma and a Plasma-free Medium to Enhance the Aggregation Response of Stored Platelets // Platelets. 1993. - № 4. - P. 338-340.

216. Meer P., Pietersz R, Reesink H. Leucoreduced platelet concentrates in additive solution: an evaluation of filters and storage containers // Vox Sang.- 2001-Vol.81.-P. 102-107.

217. Meer P., Vrielink H., Pietersz Ruby N.I. Preparation and storage of white blood cell-reduced split apheresis platelet concentrates for pediatric use //Transfusion. 2005. - Vol.45. - P. 223.

218. Melaragno A.J. Abdu W.A., Katchis R.J. et al. Cryopreservation of platelets isolated with the IBM 2997 Blood Cell Separator:A rapid and simplified approach // Vox Sang.- 1982.- Vol.43.- P. 321-326.

219. Melaragno A., Carciero R., Feingold H., et al. Cryopreservation of human platelets using 6% dimethylsulfoxide and storage at -80°C. Effects of 2 years of frozen storage at -80°C and transportation in dry ice // Vox Sang.- 1985.-Vol.49.- P. 245-258.

220. Menitov I.E., Aster R.H. Transfusion of Platelets and Plasma Products //Clin. Haemotol. 1983. - Vol. 12, № 1. - P. 239-266.

221. Menitov I.E., Frenzke M., Aster R.H. Use of prostacyclin to inhibit activation of platelets during preparation of platelet concentrates 7/ Transfusion. -1984. Vol. 2, №6. - P. 528-531.

222. Meryman H.T. Freezing injure and its prevention in living cells // Annu. Rev. Biophys. andBioeng. 1974. - № 3. - P. 341-363.

223. Mrowiec L., Skzeczkowska E., Kotelba-Witkowska B. et al. Przechowywanie koncentratow krwinek plytkowych w temperaturze -80°C. Ocena in vivo // Acta haematol. pol. 1986. - Vol. 17, №1-2. - S. 2-16.

224. Mueller-Eckhardt C., Mersch-Baumert K. The Problem of Platelet Autoantibodies. I. Evaluation // Vox. Sang. 1977. - Vol. 33, № 4. - P. 221-233.

225. Murphy M.E., Pullon H.W.H., Metcalfe P. et al. Menagement of fetal aHoimmune thrombocytopenia by weekly in utero platelet transfusions // Vox Sang. 1990. - Vol. 58, №1. - P. 45-49.

226. Murphy S., Litwin S., Herrinf L.M. et al. Indication for platelet transfusion in children with acute leukemia // Amer. J. Hematol. 1982. - Vol. 12, №4.-P. 347-356.

227. Nusbacher J., Scher M.L., MacPherson J.L. Plateletpheresis using the Haemonetics Model 30 cell Separator // Vox. Sang. 1977. - Vol. 33, № 1. - P. 915.

228. Odink J., de Wit J.J., Janssen C.L., Prins H.K. Platelet Preservation Preparation and Cryopreservation of Platelet Concentrates from Fresh and Overnight stored Human Blood // Transfusion. - 1978. - Vol. 18, № 1. - P. 21-28.

229. Owens M., Cimino C., Donelly I. Cryopreserved platelets have decreased adhesive capacity // Transfusion. 1991. - Vol. 31, №2. - P. 160-163.

230. Owens M., Werner E., Holme S., Afflerbach C. Membrane

231. Glycoproteins in Cryopreserved Platelets I I Vox. Sang. 1994. - Vol. 64, № 1. - P. 28-31.

232. Packham M.A., Mustard J.F. // Progress in hemostasis and thrombosis. V.7 / Ed T.H.Spaet. New York, 1984.-P. 211-288.

233. Patel I.P., Ambinder E., Holland J.F., Aledort L.M. In vitro and in vivo Comparison of Single Donor Platelets and Multipledonor Pooled Platelets Transfusions in Leukemic Patients // Transfusion. 1978. - Vol. 18, № 1. - P. 116119.

234. Perseghin P., Mascaretti L., Speranza Т., et al. Platelet activation during plasma-reduced multicomponent PLT collection: a comparison between СОВЕ Trima and Spectra LRS turbo cell separators //Transfusion. 2004. - Vol.44. - P. 125

235. Petz L. Platelet transfusions //L. Petz et al. (ed.), Clinical practice of transfusion medicine. 1996. - Ch. 16 - P. 359-412.

236. Pietercz R.N.I., Loos J.A., Reesink H.W. Platelet concentrates stored in plasma for 72 hours at 22°C prepared from buffycoats collected in a quadruplebag saline-adenin-glucose-mannitol system // Vox Sang. 1985. - Vol. 49, №2. - P. 8185.

237. Pietersz R.N.I., Reesink H.W., Huijgens P.S., Van Oers M.H.I. Preparation of leucocyte-poor platelet concentrates from buffy coats. IV. Clinical evaluation/// Vox Sang. 1988. - Vol. 55, №3. - P. 129-132.

238. Pushkar N.S., Itkin Yu.A., Bronshtein V.L. et al. On the problem of dehydration and intracellular crystallization during freezing of cell suspension // Cryobiology 1976. - Vol. 13, № 2. - P. 147-152.

239. Racz L., Hasko F. Room temperature storage of pooled platelet concentrates in gas-permeable plastic bags for five days // Haematologia. 1989. -Vol.22, №2. - P. 89-96.

240. Ramphilon D.H., Potter M., Cutts M. et al. Platelet concentrates irradiated with ultraviolet ligth retain satisfactory in vitro storage characteristics andin vivo survival // Br. J. Haematol. 1990. - Vol. 75, № 2. - P. 240-244.

241. Reali G., Avanzi G., Bacigalupo A. et al. HLA-matched Platelets from Unrelated Donore in the Supportive Therapy of Patients Undergoing Intensive Haemotologic Treatment // Haematologica. 1978. - Vol. 63, № 5. - P. 575-585.

242. Rebulla P. Platelet support of patients with hematological malignancy //In: ESTM. Current problems of transfusion medicine in clinical practice. StPetersburg (Russia). 1993. - P.95-104.

243. Redmond J.M., Bolin R.B., Cheney B.A. Glycerol-glucose cryopreservation of platelets. In vivo and in vitro observations // Transfusion.-1983.-Vol.23, №3.-P.213-214.

244. Ridgway R.L., Usry R.T. Cryopreservation of Platelets Simplified: A Modified Glycerol-Glucose Method // Transfusion. 1980. - Vol. 20, № 4. - P. 427432.

245. Rock G., Scerring V.A., Tittley P.A. Five-day storage of platelet concentrates // Transfusion. 1984. - Vol. 24, № 2. - P. 147-152.

246. Rock G., Titley P.A. A comparison of results obtained by two different chromium-51 methods of deteminind platelet survival and recovery // Transfusion. -1990. Vol. 30, № 5. - P. 407-410.

247. Rock G., Tittley P., McCombie N. 5-day storage of single-donor platelets obtained using a blood cell separator // Transfusion. 1989. - Vol. 29, №4. -P. 288-291. ,

248. Rozenstein R., Zacharski L.R., Allen R.D. Quantitation of human platelet transformation on siliconized glass: Comparison of «normal» and «abnormal» platelets // Thromb.Haemost. -1981.- Vol. 46, № 2. P. 521-524.

249. Sadani DT, Urbaniak SJ, Bruce M, Tighe JE. Repeat ABO-incompatible platelet transfusions leading to haemolytic transfusion reaction // Transfus Med. 2006,-Vol. 16, №5. -P. 375-379.

250. Saito. S., Ota. S., Seshimo. H., et al. Platelet transfusion refractoriness caused by a mismatch in HLA-C antigens. // Transfusion. 2002. - Vol.42, №3. —1. P. 302-308.

251. Santoso S., Lohmeyer J., Rennich H. et al. Platelet surface antigens: Analysis by monoclonal antibodies. I. Immunological and biochemical studies // Blut. 1984. - Vol. 48, № 3. - P. 161-170.

252. Schiffer C.A., Anderson K.C., Bennett C.L. Platelet transfusion for patients with cancer: Clinical practice guidelines of the American Society of Clinical Oncology//J. Clin. Oncol. -2001. -Vol.19. -P. 1519-1538.

253. Schiffer C.A., Jiseph Aisner, Wiernik P.H. Clinical Experience with Transfusion of Cryopreserved Platelets // Br. J. Haematol. 1976. - Vol. 34, № 3. -P. 377-385.

254. Schiffer C.A., Jiseph Aisner, Wiernik P.H. Frozen autologous platelet transfusion for patients with leukemia// N. Engl. J. Med. 1978. - Vol. 299, № 1. -. P. 7-12.

255. Schiffer C.A., Lee E.I., Ness P.M., Reilly G. Clinical evaluation of platelet concentrates stored for one to five days // Blood. 1986. - Vol.67, №6. - P. 1591-1594.

256. Schmidt K.G., Rasmussen J. W. Preparation of Platelet Suspensions from Whole Blood in Buffer. Description of a metod which gives a large platelet,yield // Scand. J. Haematol. 1979. - Vol. 23, № 2. -P. 88-96.

257. Schneider W., Frohling Ch., McCarty L.J. Blood Component Preparation in Single Plastic Bags // Blut. 1974. - Vol. 29, № 1. - P. 1-12.

258. Schoendorfer D.W., Hansen L.E., Kenney D.M. The surge technique: A metod to increase purity of platelet concentrates obtained by centrifugal apheresis // Transfusion. 1983. - Vol. 23, № 3. - P. 182-189.

259. Shah G.A., Lenferink I.C.M. Extension of platelet concentrate storage by addition of sodium bicarbonate // Transfusion. 1985. - Vol. 25, № 2. - P. 162164.

260. Shimada K., Asahia E. Vizualization of intracellular ice crystals formed in very rapidly frozen cells at -27°C // Cryobiology 1975. - Vol. 12, № 3. - P. 209

261. Shimizu Т., Kouketsu К., Morishima Y. et al. A new polyvinylchloride blood bag plasticized with less-lachable phthalate ester analogue, di-n-decyl phthalate, for storage of platelets // Transfusion. 1989. - Vol. 29, № 4. - P. 292297.

262. Simon T.L., Neison E.I., Carmen R., Murphy S. Extension of platelet concentrate storage // Transfusion. 1983. - Vol. 23, №3. - P. 207-212.

263. Singh H, Chaudhary R, Ray V. Evaluation of platelet storage lesions in platelet concentrates stored for seven days // Indian J. Med. Res. 2003. - Vol. 118. -P. 243-246.

264. Slichter SJ. Efficacy of Platelet Collected by Semi-continuous Flow Centrifugation (Haemonetics Model 30) // Brit.J.Haematol. 1978. - Vol. 38, № 1. -P. 131-140. ,:

265. Slichter S.I. Poststorage platelet viability in thrombocytopenic recipients is reliable measured by radiochromium-lebeled platelet recovery and survival measurements in normal volunteers // Transfusion. 1986. - Vol. 26, №1. - P. 8-13.

266. Slichter S.J., Harker L.A. Preservation and Storage of Platelet Concentrates // Transfusion. 1976. - Vol. 16, № 1. - P. 8-12.

267. Smit Sibinga C. Th. Platelets for transfusion: Collection, processing and preservation aspects // Blut. 1987. - Vol. 55, №6. - P. 475-482.

268. Snyder E.L., Bookbinder M., Kakaiya R. et al. 5-Day storage of platelet concentrates in CLX containers: effect of type of agitation // Vox Sang. 1983. -Vol.45, N6. - P.432-437.

269. Snyder E.L., Hezzey A., Katz A.J., Bock J. Occurrence of the Release Reaction during Preparation and Storage of Platelet Concentrates // Vox. Sang. -1981. Vol. 41, № 2. - P. 172-177.

270. Snyder E.L., Korner T.A.W., Kakaiya R. et al. Effect of mode of agitation on storage of platelet concentrates in PL-732 Containers for 5 days //Vox Sang. 1983. - Vol. 44, №5. - P. 300-304.

271. Spector J.I., Flor W.J;, Valeri G.R. Ultrastructural Alterations and Phagocytic Function of Cryopreserved Platelets // Transfusion. 1979. - Vol. 19, № 2.-P. 307-312.

272. Spector J.I., Skrabut E.M., Valeri G.R. Oxygen Consumption, Platelet Aggregation and: Release Reactions in Platelets Freeze Preserved with Dimethylsulfoxide//Transfusion.- 1977.- Vol: 17, № 2. - P. 99-109:

273. Sturk A., Burt L.M., I lakvoort M. et al. The effect of storage on platelet morphology // Transfusion. 1982. - Vol. 22, № 2. - P. 115-120.

274. Towell В., Levine S., Knight W., Anderson J. A comparison of frozen and fresh platelet concentrates in. the support of thrombocytopenic patients // Transfusion.- 1986.- Vol.26, №6.- P. 525-530.

275. Turner R.H., Green C.D. Preparation of biological material for scanning electron microscopy by critical point drying from water miscible solvents // J. Microscopy. 1973. - № 97. - P. 357-363.

276. Turpin F., Tubiana-Hulin M., Meens E. et aK Accidents de le chimiotherapie antitumorale et antileucemique // Sem. Hop. Paris. 1982. - Vol; 58, №38.-P. 2175-2184.

277. Valery C.R. An integrated Liquid-Frozen Blood Banking System // Vox. Sang. 1983. - Vol. 45, № 1. - P. 25-39.

278. Valery C.R., Feingold H., Marchioni L.D. A Simple Method for

279. Freezing Human Platelets Using 6 % Dimethylsulfoxide and Storage- at -80°C //Blood. 1974. - Vol. 43, №1.-P. 131-136.

280. Valeri CR, Srey R, Lane JP, Ragno G. Effect of WBC reduction and storage temperature on PLTs frozen with 6 percent DMSO for as long as 3 years. // Transfusion. 2003. - Vol. 43, №8. - P. 1162-1167.

281. Van Prooijen H.C., Van Heugten J.G., Mommerteeg M.E., Akkerman J.W.N. Acquired secretion defect in platelets after cryopreservation in dimethylsulfoxide // Transfusion. -1986. Vol: 26, № 4. - P. 358-363.

282. Vecchione J., Melaragno A., Hollander A. et al Circulation and function of human platelets isolated from units> of CPDA-1, GPDAr2 and CPDA-3 anticoagulated blood and frozen with DMSO // Transfusion.- 1982.- Vol.22, №3.-P. 206-209.

283. Vezon G., Conte P.H., Lauroua Pi, Moulinier J. Transfusions de plaquettes // Bordeaux Med. 1978 - Vol: 11, № 24. - P. 2239-2245.

284. Vucetic D., Balint В., Taseski J. et al. Biochemical changes in thrombocyte concentrates stored for 5 days.//Vojnosamit Pregl.- 2000.— Vol.57. — P. 29-36.

285. Walker E.M., Cannon A., Mitchum E.N. Current status of leukocyte and platelet administration in cancer therapy // Ann. Clin. Lab. Sci. 1983. - Vol. 13, №6.-P. 453-473.

286. Wallvik I., Akerblom O. The platelet storage capability of different plastic containers // Vox Sang. 1990. - Vol. 58, №1. - P. 40-44.

287. Washitani Y., Irita Y., Yamamoto K. et al. Prevention of acquired defects in platelet function during blood processing // Transfusion. 1988. - Vol. 28, №6. -P. 571-575.

288. Waters A.H., Minchinton R.M., Bell R. et al. A cross-matching procedurs for the selection of: platelet donors for alloimmunized patients V/ Brit. J. Haematol. -1981. Vol. 41, № 1. - P. 59-68.

289. Wautier J.L. Safety and usefulness of autologous cryopreserved platelets // Lancet. 2002. - Vol.22. - P. 2145-2152.

290. Wildt-Eggen J, Schrijver JG, Bouter-Valk HJ, Fijnheer R, Bins M, van Prooijen HC. Improvement of platelet storage conditions by using new polyolefin containers. // Transfusion. 1997. - Vol. 37, №5. - P. 476-481.

291. Wirman J.A., Ruder E.A., Smith R.T., Tsao С Functional and ultrastructural status of platelets prepared by the Celltrifuge // Transfusion. 1975 . -Vol. 15, № 6. - P. 614-619.

292. Witzig Т.Е., Ducatman B.S., Wick M.R. et al. Platelet transfusion therapy in acute leukemia; lack of effect of splenomegaly on transfusion requirements and risk of hemorrage // Amer. J. Hematol. 1985. - Vol. 18, №4. - P. 345-350. .

293. Xiao H, Harvey K, Labarrere CA, Kovacs R. Platelet ci-yopreservation using a combination of epinephrine and dimethyl sulfoxide as. cryoprotectants. //Cryobiology.- 2000. Vol. 41, №2. - P. 97-105.

294. Zaroulis C.G., Spector I.J., Emerson G.P., Valeri G.R. Haemostatic effectiveness of previously frozen washed human platelet transfusions //Congress of The International Society of Blood Transfusion; Abstracts (II), 27-28. Paris, 1978. - T.i. 319. .

295. СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

296. Яленский А.Ю., Сведенцов Е.П., Утёмов С.В., Костяев А.А. Криоконсервирование тромбоцитов при — 40° С// В сб.: Материалы научной сессии Кировского филиала Академии Естествознания. Киров, 2001. - С. 142.

297. Яленский А.Ю., Сведенцов Е.П. Новый метод криоконсервирования тромбоцитов при температуре -40°С// Пермский медицинский журнал (рецензируемый).-2003.-Том 20, №2.-С. 197-199.

298. Сведенцов Е.П., Яленский А.Ю. Морфофункциональные особенности тромбоцитов через разные сроки хранения при -40°С// В сб.: Материалы

299. Российской научно-практической конференции «Актуальные вопросы гематологии и трансфузиологии». Санкт-Петербург, 2004. - С. 161-162.

300. Патент РФ № 2230454 Хладоограждающий раствор для замораживания тромбоцитов при умеренно-низкой температуре / Е.П.Сведенцов, А.Ю.Яленский, С.В.Утёмов, А.А.Костяев. Заявлено 24.05.2002; Опубл. 20.06.2004, Бюл.17.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.