Иммунофизиологическое и микробиологическое обоснование применения пчелиного подмора при выращивании перепелов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.01, кандидат наук Иссе Мохамед Яссин

• Иссе Мохамед Яссин
• кандидат наук
• 2019

Оглавление диссертации кандидат наук Иссе Мохамед Яссин

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Биологические особенности перепелов

1.2 Биологическая активность пчелиного подмора 19 ГЛАВА II . МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 28 ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1 Влияние экстракта пчелиного подмора на гематологические показатели перепелов

3.1.1 Влияние разных доз ЭПП на динамику показателей гемопоэза

в организме перепелов

3.1.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику лейкопоэза

в организме перепелов

3.2 Влияние экстракта пчелиного подмора на состояние иммунной системы и показатели иммунного ответа в организме перепелов

3.2.1 Влияние разных доз ЭПП на динамику показателей естественной резистентности и фагоцитоза перепелов

3.2.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику показателей в миело-грамме перепелов

3.2.3 Влияние разных доз ЭПП на морфофункциональные реакции в

сумке Фабрициуса перепелов

3.2.3.1 Динамика морфометрических показателей сумки Фабрициуса и

его иммунокомпетентных структурных компонентов

3.2.3.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику массы сумки Фабрициуса перепелов

3.2.4 Влияние ЭПП на морфофункциональные реакции в тимусе

3.2.4.1 Динамика морфометрических показателей тимуса и его иммуно-компетентных структурных компонентов

3.2.4.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику массы тимуса перепелов

3.2.5 Влияние разных ЭПП на иммуноморфологические реакции в селезенке перепелов

3.2.5.1 Динамика иммуноморфологических изменений в структурных компонентах селезенки под влиянием разных доз ЭПП

3.2.5.2 Динамика иммуноцитологических реакций в селезенке под влиянием разных доз ЭПП

3.2.5.3 Влияние разных ЭПП на динамику массы селезенки перепелов

3.3 Влияние ЭПП на состояние естественного микробиоценза

желудка и кишечника перепелов

3.3.1.1 Влияние разных доз ЭПП на динамику Bifidobacterium spp.

в железистом и мышечном отделах желудка перепелов

3.3.1.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику Bifidobacterium spp.

в тонком и толстом отделах кишечника перепелов

3.3.2.1 Влияние разных доз ЭПП на динамику Lactobacillus spp.

в железистом и мышечном отделах желудка перепелов

3.3.2.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику Lactobacillus spp.

в тонком и толстом отделах кишечника перепелов

3.3.3.1 Влияние разных доз ЭПП на динамику Enterococcus faecalis в железистом и мышечном отделах желудка перепелов

3.3.3.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику Enterococcus faecalis в тонком и толстом отделах кишечника перепелов

3.3.4.1 Влияние разных доз ЭПП на динамику Enterococcus faecium в железистом и мышечном отделах желудка перепелов

3.3.4.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику Enterococcus faecium в тонком и толстом отделах кишечника перепелов

3.3.5.1 Влияние разных доз ЭПП на динамику Staphylococcus aureus в железистом и мышечном отделах желудка перепелов

3.3.5.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику Staphylococcus aureus в тонком и толстом отделах кишечника перепелов

3.3.6.1 Влияние разных доз ЭПП на динамику Escherichiae coli в железистом и мышечном отделах желудка перепелов

3.3.6.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику Escherichiae coli в

в тонком и толстом отделах кишечника перепелов

3.3.7.1 Влияние разных доз ЭПП на динамику микрогрибов Candida albicans в железистом и мышечном отделах желудка перепелов

3.3.7.2 Влияние разных доз ЭПП на динамику микрогрибов Candida albicans в тонком и толстом отделах кишечника перепелов 128 4.0 Влияние разных доз ЭПП на продуктивные показатели перепелов

и биохимические показатели качества мяса

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Библиографический список

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Иммунофизиологическое и микробиологическое обоснование применения пчелиного подмора при выращивании перепелов»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность и степень разработанности темы исследования

Большое внимание исследователей привлекает подмор пчел. В нем присутствуют компоненты мёда, маточного молочка, пыльцы, яда, прополиса, воска, что определяет его разнообразный богатый химический состав и биологическую активность. В хитозановом комплексе хитинового покрова присутствуют: гепарин, глюкозамины, меланин, пчелиный яд, уксусная кислота. Водорастворимый полимер меланин поглощает различные радикалы и служит сильнейшим антиоксидан-том, генным и фотопротектором, антимутагеном. В пчелином подморе обнаружены: 27 микроэлементов (в т.ч. Ca, Cr, Al, Cu, Mg, P, Zn, Si, Ag, Мо, Fe), витамины (Е, К, D, P, С), белки, аминокислоты, пищевые волокна, жир (Д.В. Герасименко, 2005; Н.В. Погарская, 2008; Л.Р. Алиева, 2010; А.В. Бакулин, 2011; Л.А. Скребне-ва, 2012; Ф.Ф. Шарнина, 2012; Г.В. Кашина 2014, I.I. Asarko, 2009, 2010; A.V. Ba-kulin, 2011).

Исследования пчелиного подмора в основном касаются применения его при разных патологических состояниях в медицине, в косметологии, биотехнологии. Благодаря уникальному химическому составу получены хорошие результаты и предложено применение его в виде настоек, экстрактов, мазей, порошка и в на-тивном высушенном виде (З.К. Берикашвили, 2009, 2010; Н.И. Шрам, 2014; О.В. Алексеева, 2015; Л.А. Салтыкова, 2018; Д.В Митрофанова, 2018; R. Patil, 2015; N.S. Sambudi, 2015). Антибактериальные свойства в отношении C.albicans, S.aureus, Kl.pneumoniae описаны в работах А.И. Албулова, 2004; Н.В. Погар-ской,2008; М.И. Селионовой, 2010 и др. На мышах, крысах установлено стимулирующее действие пчелиного подмора на гематологические показатели, на сердечную и скелетную мускулатуру, выносливость при предельной физической нагрузке, в условиях недостатка кислорода и избытка углекислого газа (Н.В. Погарская, 2008; Е.А. Дунаева, Д.А. Арешидзе, 2009; М.И. Селионова, 2010; Д.В. Бакулин с соавт., 2011).

Исследования перепелов являются достаточно обширными. Они касаются вопросов роста и развития, воспроизводства, повышения мясной продуктивности, яйценоскости и изучению их химического состава; улучшения кормления и содержания, влияния разных биологических добавок на организм птиц, генетического улучшения продуктивных признаков и др. (Л.И. Лисунова, 2006; З.И. Коче-това, 2006; Г.Д. Афанасьев, 2006, 2013, 2014, 2015; А.В. Макарова, 2007; В.И. Фи-синин, 2010; М.Ю. Сычева, 2010; Л.Г. Коршунова, 2011, 2016; И.А. Алексеев, 2011; Г.В. Кобыляцкий, 2013; С.В. Хусид, 2015; Е.В. Толпышева, 2016; Р.Б. Ти-мираева, 2016). Работы Е.А. Мансуровой, 2009; Е. М. Ленченко, 2012 посвящены изучению гематологических, биохимических и морфометрических изменений в организме на фоне экспериментального эшерихиоза у перепелов.

Однако в литературе отсутствуют комплексные исследования по изучению влияния пчелиного подмора на организм животных и птиц, в частности на организм перепелов.

Цель и задачи исследования. Целью исследования явилось - разработать научно-обоснованную схему применения ЭПП для повышения биологически заложенных потенциальных возможностей организма перепелов в развитии функциональных механизмов иммунного ответа, микробиологического гомеостаза желудочно- кишечного тракта и увеличения продуктивности птиц.

Задачи исследования:

1. Изучить влияние разных доз ЭПП на гематологические показатели, состояние естественной резистентности и фагоцитоза перепелов.

2. Установить влияние ЭПП на формирование зрелых ростков иммуноком-петентных клеток в красном костном мозге.

3. Определить влияние ЭПП на морфофункциональные реакции в иммуно-компетентных структурах сумки Фабрициуса и тимуса перепелов.

4. Изучить морфофункциональные перестройки в структурах селезенки с учетом динамики иммуноцитологических реакций под влиянием ЭПП.

5. Установить степень влияния разных доз ЭПП на динамику взаимодействий автохтонной микрофлоры в осуществлении ассоциативного симбиоза в мышечном и железистом отделах желудка перепелов.

6. Определить влияние разных доз ЭПП на колонизационную резистентность, осуществляемую доминантными и ассоциативными микросимбионтами в тонком и толстом отделах кишечника перепелов.

7. Оценить влияние разных доз ЭПП на биохимические показатели качества мяса, продуктивность и сохранность перепелов.

Научная новизна. Впервые проведены комплексные исследования по изучению влияния разных доз ЭПП на биологические и продуктивные показатели перепелов и установлена оптимальная доза их применения. Впервые установлено, что разные дозы ЭПП оказывают не идентичное воздействие на биологические и продуктивные показатели перепелов. Низкие дозы вызывают умеренные гемостимулирующие, иммуностимулирующие, восстанавливающие естественный микробиоценоз реакции в организме птиц; средние дозы способствуют значительной активизации процессов кроветворения, повышению иммунного статуса, восстановлению микробного биоценоза желудочно- кишечного тракта; высокие дозы проявляют иммуносупрессивное воздействие на организм перепелов.

Впервые установлена эффективность и высокая степень биологического воздействия ЭПП в оптимальных средних дозах на показатели гемопоэза и лей-копоэза, естественной резистентности и фагоцитоза. Впервые определены характер и степень морфофункциональных перестроек в структурах центральных и периферических органов иммунитета и изучены цитологические реакции в них.

Впервые разработана научная концепция восстановления под влиянием ЭПП естественного микробиоценоза мышечного и железистого отделов желудка и колонизационной резистентности тонкого и толстого отделов кишечника перепелов.

Разработана эффективная схема применения ЭПП для повышения сохранности поголовья и прироста живой массы перепелов, для улучшения биохимических показателей качества мяса.

Теоретическая и практическая значимость.

Полученные результаты исследований уточняют и дополняют литературные сведения по научному обоснованию применения пчелиного подмора в ветеринарии, биологии и медицине. На основании полученных данных о влиянии ЭПП на показатели гемо- и эритропоэза, естественной резистентности, фагоцитоза, иммунного статуса, естественного микробиоценоза желудочно- кишечного тракта теоретически и практически обоснована необходимость применения в перепе-ловодстве ЭПП, как средства, обладающего гемостимулирующими и иммуностимулирующими свойствами, способствующими созданию в организме перепелов прочного иммунного баланса, восстановлению микробной ассоциации мышечного и железистого отделов желудка, колонизационной резистентности тонкого и толстого отделов кишечника. Полученные результаты позволяют рекомендовать применение пчелиного подмора промышленному и частному перепело-водству, как эффективное средство для стимуляции роста и развития, улучшения качества перепелиного мяса и яиц. Материалы используются в учебном процессе на кафедрах микробиологии и иммунологии, аквакультуры и пчеловодства, частной зоотехнии ФГБОУ ВО РГАУ- МСХА имени К.А. Тимирязева.

Методология и методы исследований. Основные методологические принципы, лежащие в основе диссертационной работы, базируются на научных принципах и положениях российских и зарубежных ученых в области ветеринарной медицины, физиологии, иммунологии и микробиологии. Объектом количественных и качественных, гематологических, физиологических, иммунологических, микробиологических исследований были перепела мясной французской породы. В диссертации использованы методы теоретического уровня исследований: анализ, синтез, аналогия, обобщение, моделирование; методы эмпирического уровня познания: эксперимент, наблюдение. Фактологический и цифровой материал получен использованием в работе физиологических, микробиологических, иммунологических, морфометрических, цитологических, гематологических методов исследования.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Влияние разных доз ЭПП на активизацию в организме перепелов процессов и показателей гемо- и лейкопоэза;

2. Состояние естественной резистентности и фагоцитоза в организме перепелов под влиянием разных доз ЭПП;

3. Иммуноцитологические реакции красного костного мозга перепелов на разные дозы ЭПП;

4. Морфофункциональные и иммуноморфологические реакции в иммуно-компетентных структурах сумки Фабрициуса и тимуса перепелов.

5. Влияние разных доз ЭПП на морфофункциональные и иммуноморфоло-гические перестройки в структурах селезенки;

6. Влияние разных доз ЭПП на микробно- микологическую экологию (Bifidobacterium spp., Lactobacillus spp., Enterococcus faecalis, Enterococcus faeci-um, Staphylococcus aureus , Escherichiae coli, Candida albicans) мышечного и желудочного отделов желудка перепелов.

7. Влияние разных доз ЭПП на микробно- микологическую экологию тонкого и толстого отделов кишечника перепелов.

8. Влияние разных доз ЭПП на сохранность, продуктивные показатели, эффективность применения пчелиного подмора при выращивании перепелов.

Степень достоверности. Работа выполнена с использованием сертифицированного оборудования и приборов, прошедших поверку средств измерений, согласно ГОСТ 8.513-84. Достоверность данных подтверждена изучением большого объема фактического материала, на большой выборке животных. Цифровой материал подвергался статистической обработке по критериям Стьюдента с использованием программ Statistica 6.1 и Excel из пакета MS Office 2007.

Апробация работы. Основные результаты исследований доложены на ежегодных научно-практических конференциях ФГБОУ ВО РГАУ -МСХА, 20162018 г.г; на Международной научно- практической конф. «Современные проблемы пчеловодства и пути их решения» (Москва, 2016); на Международной научно-

практической конф. «Состояние и перспективы увеличения производства высококачественной продукции сельского хозяйства» (Уфа, 2017), на Конгрессе Международной ассоциации морфологов (Астрахань, 2018), на XXII Международном конгрессе «Апиславия» (Москва, 2018), на Международной конф., посвященной 120 - летию создания кафедры микробиологии и 150- летию профессора Н.Н. Худякова (Москва, 2018); 2 статьи приняты для доклада на VIII съезде научного медицинского общества анатомов, гистологов и эмбриологов (Воронеж, май 2019).

Публикации. По теме диссертационного исследования опубликовано 10 научных работ, в том числе 3 статьи в ведущих рецензируемых журналах, утвержденных ВАК РФ, включая 1 статью из МБД Scopus, а также 4 работы находятся в печати.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 161 странице компьютерного текста. Включает: введение, обзор литературы, материалы и методы, результаты собственных исследований, заключение, выводы и практические предложения. Библиографический список включает 149 источников, в том числе 58 зарубежных. Работа иллюстрирована 2 схемами, 35 таблицами, 25 рисунками в виде графиков и диаграмм и микрофотографий.

Личный вклад автора. На всех этапах выполнения диссертации (в постановке цели, разработке задач, плана проведения экспериментальных исследований, их выполнения, обработке, анализе и интерпретации полученного материала) автор принимал личное участие.

Благодарность. Автор выражает благодарность зав. кафедрой частной зоотехнии, д.с/х. наук, проф. Афанасьеву Г.Д. и к.с.-х.н., Комарчеву А.С. за помощь, консультации в инкубировании и выведении в условиях птичника перепелят, в организации и проведении опытов; зав. кафедрой аквакультуры и пчеловодства д.б.н., проф. Маннапову А.Г., зав. кафедрой физиологии, этологии и биохимии животных д.б.н., проф. Иванову А.А., проф. кафедры ветеринарии ВГБОУ ВО «МГУПП», д.б.н. Ленченко Е.М., за консультации и помощь в овладении методами исследований, использованных в работе и предоставление оборудований.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Биологические особенности перепелов

Перепеловодство хорошо окупается. Перепелки скороспелые. Цикл, от закладки яиц в инкубатор до появления перепелки составляет 52-66. дней. В 10 дней перепелка начинает менять перо, в 25 - оперяется, в 30 -становится взрослой, в 40-45 дней начинает откладывать яйца. Затраты корма для получения 1 кг мяса составляют 3,5-3,6 кг, 1 кг яичной массы - 2,6 кг. Соотношение массы снесенных яиц перепелкой за год в 24 раза превышает массу тела (для сравнения у кур в 8 раз) тогда как у кур это соотношение 1:8. Способ содержания перепелов - клеточный. Они достаточно устойчивы к инфекционным заболеваниям. Также устойчивы к микробам перепелиные яйца, что позволяет их длительное хранение. В перепелиных яйцах большое содержание калия, фосфора, железа, витаминов В1 и В2. Перепелиное мясо является сочной, нежной и считается диетическим. Перепелки несутся яйца после полудня, поздно вечером, иногда ночью с интервалом примерно до 30 часов. Оплодотворённость достигает 70-85%; выводимость происходит на 17 -18 день и достигает до 80 - 95%. Сохранность в первый месяц составляет до 90 -95%, во второй - до 98%. Живут перепела в клетке до 10 лет. За год от перепелов получают 5 и более поколений. Сегодня насчитывается 34 линии перепелов с различными мутациями ( белая окраска яичной скорлупы, разные окраски яиц и оперенья, разная структура пера, изабелловая окраска и др.). При этом эти мутации не оказывают влияния на продуктивные показатели перепелов. Только у перепелов с белым оперением незначительно меньше скорость роста. В России чаще используют яичную японскую и мясную породу фараон и помеси от их скрещивания (московская популяция японских перепелов). У этой помеси более крупнее тушка —120-125 г и хорошая яйценоскость - до 280-290 яиц в год. (Х. Тикк,2004; Ю. Харчук, 2005; Л.А. Задорожная, 2005; Г.Д. Афанасьев с соавт., 2006; 2013; Б.В. Коваленко, 2008; И.А. Егоров с соавт., 2009; И.И. Голубов с соавт. 2012; И.И. Голубов, 2013, 2014; М.С. Орда, 2017; Я. Кагаре1уап, 2003; Е. ОаБраппо е!а!., 2012). Вопросы кормления и составления рационов для перепелов

разных возрастных категорий изучены и описаны в работах Н. Буряковой, 1998; Е. Варигиной, 2008; Задорожной Л.А, 2005; Егорова И.А., 2009; Джой И., 2012; Петенко А.И. с соавт. (2012); Ратошного, А.Н. (2012); Кырылиева Б.Я. с соавт. (2017); D.Sharma et al.,2000; E.M. Sorrell, 2007).

Повышению показателей роста и развития перепелов, их продуктивности и сохранности, улучшению воспроизводительных показателей снижению себестоимости продукции на фоне применения биологически активных препаратов: про-биотиков, антиоксидантов, сырого жира, сапропеля и др. посвящены исследования З.И. Кочетова, с соавт. 2000, 2006; М.Ю. Сычева,2010; А.И. Петенко с со-авт.,2012; Г.В. Кобыляцкой с соавт., 2013; Ю.А. Лысенко с соавт., 2013; О.В. Кощаева с соавт., 2015; С.В. Хусид с соавт., 2015; Е.В Толпышева с соавт. 2016; Р.Б. Тимираева с соавт., 2017; O.H. Garrido, 2001; V.Gushchin et al., 2003; N. Danilevskaya, 2005; I. Golubov, 2011)

В работах В. Удода (2000), А.И. Рахманова (2004), Ю. Харчука (2005), Т.Н. Столляра (2006), А.И. Серебрякова (2010) представлены данные по улучшению содержания и разведения перепелов.

Арестова Н.Е. (2006) исследовала продуктивность перепелов в зависимости от выбраковки. Установлена связь времени выбраковки молодняка перепелов с их последующей яичной продуктивностью. При выращивании ремонтного молодняка перепелов мясо-яичного направления продуктивности авторы рекомендуют выбраковывать слабых и отстающих в росте перепелов в возрасте 3 недели, что способствует повышению яичной продуктивности перепелов (интенсивность яйценоскости достигает 88%). В этих группах половая зрелость перепелов наступает в 54 и 55 дней. При выбраковке перепелов в более раннем возрасте (1 или 2 недели) яйценоскость равную 50% птица достигла на 8 - 7 дней позже. Морфологические качества яиц, полученных от перепелов разных групп, не зависят от возраста выбраковки. Интенсивное половое развитие самок начинается с 4-недельного возраста и влияет на живую массу птиц и выход потрошеных тушек. Максимальная масса потрошеной тушки у самок регистрируется в 5-недельном возрасте, у сам-

цов - в 6 недель. Внутренние органы у перепелов развиваются неравномерно. Выбраковка слабых перепелов в возрасте 3 недели в привела к увеличению интенсивности яйценоскости на 8,5% и сохранности поголовья за 4 месяца на 4%.

Лисунова Л.И. с соавт. (2006, 2007) исследовали химический состав мяса перепелов. Исследования проведены на перепелах японской породы с суточного до 60-дневного возраста. Кормили птицу в соответствии с нормами для разных возрастных групп. Наибольшая скорость роста регистрирована у птиц в возрасте от 20 до 30 суток, наименьшая — в первую неделю жизни. За время наблюдения масса тела птицы увеличилась в 26,6 раза. При изучении минерального состава авторы уделили особое внимание обмену кальция и фосфора. Установлено увеличение концентрации кальция в 1,12 , фосфора 11,75 раза. В соответствии с этим снижается кальциево-фосфорное отношение. Количество воды в мясе животных и птицы разной упитанности зависит от содержания жира: чем больше жира в мясе, тем меньше влаги. Содержание воды в мышцах взрослых перепелов на 6,0% было выше, чем у молодняка. Жиры представляют собой высококонцентрированную форму обменной энергии и участвуют в обмене веществ. Установлено, что у перепелят мышечная ткань в 3,7 раза более жирная, чем у взрослой птицы. Важной составной частью организма являются белки, содержание которых составляет 20% от массы сырой ткани. Содержание белков в мышечной ткани перепелов не имело больших различий и составило всего 2,9% в пользу молодняка. С возрастом у исследуемой птицы произошло увеличение метионина, изолейцина и фенилаланина в 9,3, 2,9 и 1,54 раза, что свидетельствует о повышении диетических свойств мяса перепелов т. к. метионин помогает переработке жиров, предотвращая их отложение в печени и на стенках артерий и обеспечивает дезинтокси-кационные процессы в организме; изолейцин необходим для синтеза гемоглобина, он стабилизирует и регулирует уровень сахара в крови; фенилаланин в организме превращается в тирозин, который используется в синтезе нейромедиаторов. У суточных перепелят содержание лизина, аргинина, валина, лейцина и триптофана выше, чем у взрослых, но это не снижает ценности мяса взрослых перепе-

лов. Изучению вопросов повышения пищевой и биологической ценности перепелиного мяса посвящены работы И. Стефановой с соавт., 2006; А.В. Макарова с соавт. 2007; Л.И. Лисуновой с соавт.,2007; Г.Д. Афанасьева с соавт., 2015, перепелиных яиц - Г.Н. Ольшанской с соавт.,2004; З.И. Кочетовой 2000, 2006.

Е.А. Мансурова с соавт. (2009), Е.М Ленченко с соавт. (2012) изучали экспериментальный эшерихиоз у перепелок. Установлена, что динамика патологических процессов при остром течении болезни характеризуется септицемией, при подостром - энтеротоксемией. Ииграция и интерстициальная инфильтрация псевдоэозинофилов, развиваются через 4-6 ч, моноцитов - через 7-8 ч после заражения E. coli. Количество энтеробактерий в слепых отростках кишечника перепелов 4,19±0,15 - 6,88±0,21 (КОЕ lg/г) индекс колонизации (ИК) эшерихий у 10-ти суточных перепелов - 0,766; 20-ти суточных - 0,797; 30-ти суточных - 0,837. Зона задержки роста E. coli к действию желчи составляет 11,9-17,6 мм.

Коршунова Л.Г.(2011, 2016) на большом объективном материале исследований установили возможность объективной характеристики поголовья перепелов эстонской породы по массе яиц и проведение целенаправленного отбора перепёлок без длительной ежедневной оценки птицы (с 7-50-недельного возраста) для комплектования промышленных и племенных стад, обеспечивая повышение массы яиц у перепёлок-дочерей на 3,2-3,5 процента.

Вопросы генетического улучшения продуктивных признаков перепелов представлены в работах В.И. Фисинина с соавт., 2010; Л.Г. Коршуновой с со-авт.,2009; 2011,2016; Л.Г. Коршуновой с соавт.2013 // Вестник РАСХН. 2009. № 3. С. 72-73.

И.А. Алексеев с соавт. (2011), Р.Н. Иванова с соавт. ( 2012а, 2012б) изучали влияние пробиотиков «Бацелл» и «Биоспорин» на продуктивные показатели молодняка перепелов. Авторы рекомендуют вводить в основной рацион молодняка перепелов в 1-30-суточном возрасте пробиотики «Бацелл» в количестве 0,2 % от массы сухого комбикорма (2 кг на 1 т) и «Биоспорин» - 0,05 мл расчете на одну голову. Это способствует активному росту птиц : длина туловища, ширина и об-

хват груди, ширина таза были выше по сравнению с контрольной группой на 0,16 - 2,54 % (Р<0,05), среднесуточный прирост живой массы перепелов на 14 сутки наблюдения увеличивается на 5,17 и 4,76 % (Р<0,01), на 56 сутки - на 6,31 и 5,89 % (Р<0,01). Предубойная масса повышается, по сравнению с контрольными цифрами, на 6,45 и 6,08 % (Р<0,01), масса потрошенной тушки - на 8,78 и 6,68 % (Р<0,01), убойный выход - на 2,18 и 0,56 % (Р<0,05), увеличивается масса внутренних органов птиц: сердца - на 6,46 и 6,03 % (Р<0,05), печени - на 6,73 и 7,21 % (Р<0,05), легких - на 5,77 и 4,81 % (Р<0,05), почек - на 6,66 и 4,76 % (Р<0,05), селезенки - на 6,67 и 5,71 % (Р<0,055. Пробиотики «Бацелл» и «Биоспорин» способствовали повышению показателей естественной резистентности перепелок: бактерицидной активности сыворотки крови на 1,16 - 8,12 % и 0,97 - 7,33 % (Р<0,01), лизоцимной - на 1,10 - 6,45 и 0,86 - 5,21 % (Р<0,01), фагоцитарной активности крови - на 1,66 - 8,38 и 1,59 - 7,14 % (Р<0,001).

Шмидт Г.С. с соавт. (2012) установили, что основными представителями условно-патогенной микрофлоры толстого кишечника у перепелят являются энтерококки, эшерихии, стафилококки, дрожжеподобные грибы. При дисбактерио-зе появляются еще бактерии родов Proteus и Salmonella. Авторы исследовали биохимическую активность различных представителей микрофлоры толстого отдела кишечника. У здоровых перепелят и птенцов с признаками дисбактериоза значительного изменения ферментативной активности у схожих видов микроорганизмов не замечано. Отмечается повышение вирулентности культур, выделенных от перепелов с явлениями дисбактериозов, при постановке биопробы на лабораторных мышах

Афанасьев Г.Д. с соавт. (2014 а, 2014 б), Попова Л.А. с соавт. (2014) применяли каротиносодержащие препараты «Биофон желтый» и «Биофон красный», которые способствовали повышению уровня каротиноидов в перепелиных яйцах. Установили, что изменение концентрации и соотношения препаратов, определение оптимальных их доз позволяют управлять интенсивностью цвета желтка, уровня каратиноидов в яйцах, а также способствуют улучшению воспроизводи-

тельных качеств, результатов инкубации и сохранности молодняка. Препарат «Биофон желтый» способствует улучшению сохранности инкубационных яиц и их выводимости. Положительных тенденций в отношении мясных по- казателей перепелов под влиянием изученных препаратов не установлено.

На повышение продуктивности перепелов яичной породы при использовании разных источников каротиноидов указывает в своей работе Л. Беляева (2011).

М.В. Заболотных с соавт (2015) изучали продуктивные показатели мясной и яичной продуктивности перепелов породы фараон под влиянием сапропеля. Птенцам корм добавляли сапропелевую минеральную добавку в расчете 3 г/гол в сутки. Сорбционную активность сапропеля оценивали по критерию практического коэффициента полезного действия (КПД). Установлено, что включение сапропелевой минеральной добавки, как сорбента микотоксинов, эффективно вследствие высокого сорбционного свойства добавки, КПД составила 86,2%. Также отмечено повышение сохранности поголовья на 2,5%, увеличение интенсивности среднесуточного прироста живой массы перепелов на 7,4%, увеличение средней массы перепелиного яйца на 6,89%.

Бидеев Б. А. с соавт ( 2014; 2015 ), Гогаев О.К с соавт (2016 а, 2016 б) исследовали продуктивные качества и биологические особенности перепелов английской белой породы, пород эстонская, фараон, маньчжурская, смокинговая. Они установили лучшие породы для производства мяса птицы и яиц и разработали рецептуру приготовления из них сырокопченой колбасы. При этом при одинаковых условиях содержания и кормления сохранность перепелов английской белой породы за период исследований составила 94%, породы фараон - 93%, маньчжурской - 92%, смокинговой - 94%, эстонской - 93%. К 60-суточному возрасту в сыворотке крови перепелов всех изучаемых пород, достоверно повышается содержание общего белка на 25,92 - 37,78% (Р>0,999), билирубина - 20,0046,15% (Р>0,999), мочевины - 3,80 - 15,35%, фосфора - 32,59 - 45,67% (Р>0,999), калия - 4,66 - 7,37% (Р>0,95), натрия - 63,07-66,85% (Р>0,999) и уменьшается содержание холестерина на 7,46 - 14,35% (Р>0,95. В процессе эксперимента по по-

казателям роста и развития доминировали перепелята английской белой породы. На 50 сутки живая масса перепелят этой породы была равна 242,8 г и оказалась выше, чем у эстонской породы на 11,99 % (Р>0,99); маньчжурской - 18,90 % (Р>0,999); смокинговой - 16,67 % (Р>0,999); породы фараон - 4,07 %.Самое высокое значение массы потрошеной тушки регистрировалась у английской белой породы - 183,4 г, с убойным выходом 79,97%. У других пород значения были ниже и составили: у фараона - 178,5 г и 77,87%; у смокинговой породы - 171,9 г и 77,92%; эстонской - 172,7 г и 76,61%; маньчжурской - 167,3 г и 76,2%. Яйценоскость на среднюю несушку маньчжурской породы составила - 108,3 шт., что было выше, чем у английской белой породы на 12,3% (Р>0,99), породы фараон - 7,9% (Р>0,95), смокинговой - 4,5%, эстонской - 2,7%. Самая низкая яйценоскость на среднюю несушку была у английской белой породы и составила 96,4 яйца. Но масса яиц английской белой породы была выше. Меньше масса яйц была у перепелов эстонской породы - 13,34 г, что было ниже, чем у породы фараон на 3,5%, маньчжурской - 1,4%. При этом яйца перепелов английской белой породы по массе белка и желтка также превосходили показатели других пород: породу фараон на 2,0 и 3,6%; эстонскую - 0,5 и 5,9%; смокинговую - 1,8 и 2,9%; маньчжурскую породу на 0,08 и 0,27 г, или на 0,9 и 6,2%,соответственно. Исходя из полученных данных, авторы рекомендуют использовать для производства мяса английскую белую породу, а для производства яиц - маньчжурскую породу

Толпышев Е.В. с соавт.(2016) исследовали влияние сапропеля на микробиологические показатели мяса перепелов. Опытная группа была разбита на 4 подгруппы, две из них получали 1 и 2 % ЭС, две остальные - 1 % ЭС + 5 мл/л «Байтрила» и 2 % ЭС + 10 мл/л «Байтрила» в сутки. Микробная обсемененность по КМАФАнМ, при отсутствии достоверных изменений в контрольной, в 1, 2 и 4 -й опытных группах было ниже на 39,9; 54,5; 37,9 % (Р < 0,001). При этом в образцах мяса птиц опытных групп отсутствовали условно- патогенные и патогенные микроорганизмы. На 10-е сутки содержание КМАФАнМ было ниже на 61,69 %. На 42-е сутки общая бактериальная обсемененность мяса была выше в 1,46-

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Иссе Мохамед Яссин, 2019 год

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК

1. Албулов, А.И. Перспективы применения низкомолекулярных хитозанов в производстве БАД/ А.И. Албулов, А.Я. Самуйленко, В.И. Еремец, М.А. Фролова, С.М. Шинкарев, A.C. Фоменко, И.Д. Авдиенко, Д.В. Герасименко, C.B. Немцев, В.П. Варламов // Материалы 5-ой Международной научной конф. «Фитотерапия, биологически активные вещества естественного происхождения». Черноголовка. -2004.-С.312-317.

2. Алексеев, И.А. Влияние пробиотиков «Бацелл» и «Биоспорин» на неспецифическую резистентность организма перепелов и морфологические показатели яиц / И.А. Алексеев, Р.Н. Иванова //Мат. всерос. науч.-практ. конф. посвещ. 80-летию ФГБОУ ВПО ЧГСХА. - Чебоксары, 2011.- Ч.1.- С.285 - 287.

3. Алиева, Л.Р. Особенности взаимодействия хитозанов с белками молочной сыворотки И Инновационные технологии и оборудование в молочной промышленности / Л.Р Алиева, А.В. Бакулин, В.П. Варламов, Н.В. Гавриленко, Е.М. Червяковский, В.П. Курченко// Мат. научно-практической конф. Воронеж, 2010. С. 145.

4. Арестова, Н.Е. Выращивание ремонтных перепелят при разных сроках выбраковки // Сборник статей международной научной конференции молодых ученых «Приоритетный национальный проект «Развитие АПК» - новые возможности для молодых ученых» - М, 2006 г-с - 213-216

5. Афанасьев Г.Д., Попова Л.А., Саиду С.Ш., Комарчев А.С. Сравнительная оценка мясной продуктивности перепелов разного происхождения // Птицеводство. 2015. № 4. С.31-35.

6. Афанасьев, Г.Д. Использование каратиносодержащего препарата растительного происхождения в кормлении перепелов / Г.Д. Афанасьев, Л.А. Попова, А.С. Комарчев, Ж.Г. Трепак // Птица и птицепродукты.-2014.-№5.-С.62-64.

7. Афанасьев, Г.Д. Использование каратиносодержащих препаратов для получения обогащенных перепелиных яиц / Афанасьев, Л.А. Попова, А.С. Комарчев, Ж.Г. Трепак // Птицеводство.-2014.-№11.- С.7-10.

8. Афанасьев, Г.Д. Мясные качества перепелов бройлерного типа в различные сроки выращивания / Г.Д. Афанасьев, Л.А. Попова, Н.Е. Арестова, А.В. Комарчев // Птицеводство. - 2013. - № 4. - С. 30-32.

9. Афанасьев, Г.Д. Перепеловодство: Маленькое тело - большое яйцо / Г Д. Афанасьев // Птица и птицепродукты. - 2006. - №2. - С. 31.

10. Бакулин, А.В. Получение хитин-меланиновых комплексов из Apis melífera и изучение возможности их использования в качестве сорбентов радиуклидов / А.В. Бакулин, И.Е. Велешко, Е.В. Румянцева, А.Н. Левов, Л.А. Бурмистрова, В.П. Курченко, Р.Г. Хисматуллин, В.П. Варламов, Н.И. Кривцов// Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук.- 2011.-№5.- С.48-51.

11. Белякова, Л. Продуктивность перепелов яичной породы при использовании разных источников каротиноидов / Л. Белякова, Т. Окунева // Птицеводческое хозяйство. Птицефабрика. - 2011. - № 6. - С. 30.

12. Берикашвили, З.Н. Антибактериальная активность экстрактов пчелиного подмора / З.Н. Берикашвили, И.В. Боер // Вестник КрасГАУ . 2009. №3. С.197-199.

13. Берикашвили, З.Н. Оценка влияния факторов окружающей среды на стоматологический статус детей дошкольного возраста проживающих в Ленинском районе города Красноярска / З.Н. Берикашвили, Е.В. Лис // Вестник КрасГАУ. - 2010. - № 1 . - С. 109-111

14. Бидеев, Б.А. Рост и развитие перепелов разных пород / Б.А. Бидеев. О.К. Гога-ев // Вестник научных трудов молодых ученых, аспирантов и магистрантов ФГБОУ ВПО «Горский государственный аграрный университет», Владикавказ, 2014, В. 51. - С. 97-99.

15. Бидеев, Б.А. Яичная продуктивность перепелов разных пород / Б.А. Бидеев // Известия Горского государственного аграрного университета. Владикавказ.

2015 . Том: 52, №4. - С. 106-109.

16. Бурякова, Н. Продуктивность перепелов и использование ими веществ из влажных и консервированных кормов / Н. Бурякова, М, Бурякова, Г. Афанасьев, В. Утробин // Научн. - производительный опыт в птицеводстве: экспресс информ. сб. мат. Всерос. науч.-исслед. и технол. институт птицеводства. -1998. - № 4. - С. 9-13.

17. Варигина, Е. Уровень сырого протеина в комбикормах для перепелов мясных пород / Е. Варигина // Конференция молодых ученых и аспирантов по птицеводству: сб. мат.- Сергиев Пасад, 2008. - С. 9-12.

18. Герасименко, Д.В. Ферментативное получение низкомолекулярного хитозана и изучение его антибактериальных свойств / Г.Е Банникова., И.Д. Авдиенко, В.П. Варламов // Материалы XIII Международной научной конференции «Ферменты микроорганизмов: структура, функции, применение». Казань. 2005. С. 22-24.

19. Гогаев, О.К. Сравнительная характеристика мясной продуктивности перепелов разных пород / О.К. Гогаев, Б.А. Бидеев, А.Р. Демурова, Л.Н. Гутиева // Известия Горского государственного аграрного университета. Владикавказ.

2016 а Том: 53, №1. - С. 25-30.

20. Гогаев. О.К. Показатели яичной продуктивности перепелов разных пород / О.К. Гогаев, Б.А. Бидеев, А.Р. Демурова, Р.Д. Бестаева // Молодой ученый: Вызовы и перспективы: сб. ст. по материалам XVIII Международной научно-практической конференции «Молодой ученый: Вызовы и перспективы». - № 16(18). - М., Изд. «Интернаука», 2016 б - С.59-64.

21. Голубов, И.И. Инновации в формировании ассортимента перепелиной продукции / И.И Голубов // Птицеводство. - 2013. - № 3. - С. 29-33.

22. Голубов, И.И. Промышленное перепеловодство / И. И. Голубов. - Москва: Лика.- 2014. - 349 с.

23. Голубов, И.И. Развивать отечественное перепеловодство / И.И. Голубов, Г.В. Красноярцев // Птица и птицепродукты. - 2012. - №5. - 454 с.

24. Гущин В.В. Перепеловодство должно развиваться / В.В. Гущин, Л.В. Кроик// Птицеводство. 2003. - N° 6. - С. 22-23.

25. Данилевская Н. Пробиотик: действие на перепелов разных пород / Н.Данилевская, В. Субботин [и др.] // Птицеводство. 2005. - N° 8. - С. 14-15.

26. Джой, И. Продуктивные и воспроизводительные показатели перепелов при разных способах содержания / И. Джой // Птицеводство. - 2012. - № 7. - С. 1218.

27. Дунаева, Е.А. О результатах испытания на безвредность экстракта из подмора пчел / Е.А. Дунаева, Д.А. Арешидзе //Вестник МГОУ. Серия «Естественные науки». - 2009. № 1. - М.: Изд-во МГОУ. - 93-95 с.

28. Егоров, И.А. Кормление и содержание перепелов / И. А. Егоров, Л.С. Белякова // Птицеводство. - 2009. - № 4. - С. 32.

29. Заболотных, М.В. Исследования сорбционной активности сапропелевой минеральной добавки при микотоксикозах у перепелов / М.В. Заболотных, Е.В. Толпышев // Вестник Омского государственного аграрного университета.-3 (19).-2015.- С.-41-44.

30. Задорожная, Л.А. Перепеловодство / Л. А. Задорожная. - М.: АСТ; Донецк: Сталкер, 2005. - 93 с.

31. Зибров, С. Н. Выращивание ремонтного молодняка перепелов с использованием голозерного овса / С. Н. Зибров. А. Н. Ратошный // Материалы региональной конференции молодых ученых учреждений 30 июня 2010. "Научное решение актуальных проблем производства, качества и безопасности сельхозпродукции" - Краснодар. 2010. - С. 142 - 144.

32. Зибров, С. Н. Мясная продуктивность перепелов при разном уровне голозерного овса в комбикормах / С. Н.Зибров. А. Н. Ратошный//Эффективное животноводство. 2011. - N° 5. - С. 58

33. Иванова, Р.Н. Влияние пробиотика Биоспорина на рост, развитие и продуктивность молодняка перепелов / Р.Н. Иванова, Н.К. Кириллов, И.А. Алексеев // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана. - Казань, 2012.- Т.209.- С.123 - 128

34. Иванова, Р.Н. Морфология, биохимические показатели крови, продуктивность и сохранность перепелов при использовании пробиотической добавки к корму «Бацелл» /Р.Н. Иванова, И.А. Алексеев // Российский журнал «Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии» /Зоогигиена. - М.: ГНУ ВНИИВСГЗ РАСХН, 2012а. - №7. - С.92 - 94.

35. Ильина, А. В. Получение и исследование моносахаридных производных низкомолекулярного хитозана / А. В. Ильина, С. Н. Куликов, Г. И. Чаленко, Н. Г. Герасимова, В. П. Варламов // Прикладная биохимия и микробиология. -2008. - Т. 44, № 5. - P. 606 - 614.

36. Карапетян, Р. Биологические и продуктивные качества перепелов. / Р. Карапе-тян // Птицеводство. -2003. - № 8. - С. 29.

37. Кашина Г.В. Биологически активные вещества из подмора пчел / Г.В. Кашина, В.Г. Шелепов, И.А. Фефелова Биологически активные вещества из подмора пчел [Текст] // Пчеловодство. - 2014. - № 8. - С. 58-59.

38. Кашина, Г.В. Инновация в технологии производства супрамолекулярных комплексов производных полисахаридов (арабиногалактана и хитозана) [Текст] / Г.В. Кашина, В.А. Мельников, А.С. Кашин // Вестник Краснодарского государственного аграрного университета.-2015, №4.-С.

39. Кобыляцкая, Г.В. Микробиоценоз пищеварительного тракта перепелов и его коррекция пробиотиками / Г. В. Кобыляцкая, Е. И. Мигина, О. В. Кощаева, А. Г. Кощаев // Ветеринария Кубани.-2013.-№3.-С.6-9.

40. Коваленко, Б.В. Энциклопедия перепеловода / Б.В. Коваленко: вып. 2. - Ростов-на-Дону: «Феникс», 2008. -С. 6.

41. Коршунова, Л. Г. Возраст оценки перепёлок по массе яиц / Л.Г. Коршунова, Р.В. Карапетян, О.Ф. Зиадинова// Птицеводство. - 2016. - № 4. - С. 11-14.

42. Коршунова, Л.Г. Методы генетической модификации и селекция сельскохозяйственной птицы / Р.В. Карапетян, В.И. Фисинин // Сельскохозяйственная биология. 2013. № 6. С. 3-15.

43. Коршунова, Л.Г. Способ генетического улучшения продуктивных признаков птицы // Вестник РАСХН. 2009. № 3. С.72-73.

44. Коршунова, Л.Г. Фенотипическая характеристика перепелов эстонской породы. / Л.Г. Коршунова / Птица и птицепродукты. - 2011. - № 3. - С. 43-47.

45. Кочетова, З. И. Влияние различных технологических приемов на рост и развитие перепелов / З.И. Кочетова, Л.С. Белякова // Сборник научных трудов ВНИТИП. - Т. 74. - Сергиев Посад, 2000. - С. 102-107.

46. Кочетова, З.И. Перепелиное яйцо - залог здоровья и долголетия / З.И. Кочетова, Л.С. Белякова // Птица и птицепродукты. - 2006. - № 2. - С. 51.

47. Кощаева, О.В. Влияние пробиотиков на сохранность, рост, развитие и продуктивность перепелов / О.В. Кощаева, Г.В. Фисенко, С.С. Хатхакумов // Молодой ученый. - 2015. - № 8. - С. 394-397.

48. Крыжановская, Е. В. Изучение влияния хитозана на микроорганизмы / Е. В. Крыжановская, С. М. Шинкарев, М. А. Фролова, Н. К. Еремец и др. // Достижения науки и техники в АПК. - 2008. - № 11. - С. 45 - 46.

49. Кузнецов, П. А. Изучение иммуномодулирующих свойств сукцинатахитозана / П. А. Кузнецов, А. И Албулов, В. И. Клюкина, С. А. Гринь и др. // Ветеринария и кормление. М., 2007. - № 5. - С. 12 - 13.

50. Куликов, С. Н. Антибактериальное действие низкомолекулярного хитозана в отношении Escherichia coli / С. Н. Куликов, Д. Р. Оберемок, Е. А. Безродных // Ученые записки Казанского университета. Серия Естественные науки. - 2013. - Т. 155, № 3. - С. 27 - 39.

51. Куликов, С. Н. Природные поликатионы как средство повышения эффективности антибактериальных белков / С. Н. Куликов // Вестник Казанского технологического университета. - 2014. - Т. 17, № 23. - С. 224 - 226.

52. Кырылив, Б.Я. Влияние биологически активных добавок на производительность перепелов и качество продукции //Б.Я. Кырылив, А.В. Гунчак, Я.Н. Сирко

53. Ленченко, Е.М. Гистохимические исследования при заражении птиц токси-геннымиэшерихиями / Е.М. Ленченко, Е.А. Мансурова // Аграрная наука. -2012.- №4.- С.29-30.

54. Лисунова, Л.И. Влияние ионов кадмия на химический состав мяса перепелов/ Л.И. Лисунова, В. С. Токарев, В. Ларин, А. Астахова, С. Котлова С. // Птицеводство. 2006а. № 12. С. 25-25.

55. Лисунова, Л.И. Минеральный и аминокислотный состав мяса перепелов./ Л.И. Лисунова, В.С. Токарев. // Зооиндустрия. - 2007. - №1. - с. 10-11

56. Лысенко, Ю.А. Разработка и использование новой пробиотической кормовой добавки на основе функциональной микрофлоры в рецептуре комбикормов для перепелов / Ю. А. Лысенко, А. А. Ширина // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. - 2013. - № 91. - С. 1097-1116.

57. Макаров, А.В. Пищевая и биологическая ценность перепелиного мяса / А.В. Макарова, Л.В. Антипова // Мясная индустрия. - 2007. - № 1. - С. 55-56.

58. Мансурова, Е.А. Структурно-функциональная характеристика органов пищеварения птиц при экспериментальном моделировании инфекционного процесса // Экологически безопасные ресурсосберегающие технологии и средства переработки сельскохозяйственного сырья и производства продуктов питания: Материалы международной научной конференции студентов и молодых ученых. - М.: МГУПБ, 2009.- С.288-289.

59. Митрофанова Д.В. с соавт. Хитин-хитозан-меланиновый комплекс -новый продукт пчеловодства / Д.В. Митрофанова, Е.П. Латынина, О.В. Серебрякова, Н.В. Будникова, Г.К. Степанцева // Материалы ХХП Международного конгресса «Апиславия» . -Россия -Москва.- 2018.-С. 68-71.

60. Ольшанская, Г.Н. Яичная продуктивность перепелов на кормосмесях в зависимости от дозы и техники скармливания / Г.Н. Одьшанская // Птицеводство. -2004. - № 6. - С. 21-22.

61. Орда, М.С. Перепеловодство - перспективная отрасль животноводства. Проблемы патологии / М.С. Орда, Ю.О. Ляднович // Ветеринарный журнал Беларуси.- 2017 .-№ 2(7) .- С. 81-83.

62. Патент 2402209 Россия. Способ отбора перепёлок по массе яиц/ Фисинин В.И., Коршунова Л.Г., Карапетян Р.В., Коршунов К.Р., Чинцова А.И., Зиади-нова О.Ф., Серикова В.А., Петрина З.А. - заявл. 12.05.2009; опубл. 27.10.2010. Бюл. № 30.

63. Петенко, А. И. Повышение биологического потенциала перепелок-несушек при использовании пробиотических кормовых добавок / А. И. Петенко, Ю. А. Лысенко // Ветеринария Кубани. - 2012. - № 5. - С. 5-7.

64. Петенко, А.И. Кормовые добавки в рационах перепелов / А.И Петенко, Ю.А. Лысенко // Птицеводство. 2012. № 9. С. 36-38.

65. Петрович, Ю. А. Хитозан: структура и свойства. Использование в медицине / Ю. А. Петрович, Л. А. Григорьянц, А. Н. Гурин, Н. А. Гурин // Стоматология. -2008. - Т. 87. - С. 72 - 77.

66. Погарская, Н.В. Получение хитозан-меланинового комплекса из подмора пчёл и его использование для профилактики дисбактериоза молодняка животных / Н.В. Погарская, М.И. Селионова // Изд-во ВНИРО/VNIRO Publishing, 2008.

67. Подольская, В.С. Биорезонансная технология в перепеловодстве / В.С. Подольская, А.Г. Авакова // Птицеводство. - 2008. - № 1. - С. 39-40

68. Попова, Л.А. Как сохранить инкубационные качества перепелиных яиц / Л.А. Попова, А.С. Комарчев // Птицеводство. - 2014. - № 2. - С. 10-13.

69. Постряков, А.В. Иммуностимулирующее действие хитозана при нозематозе у медоносной пчелы (Apis millifera L.) / А.В. Постряков, А.Г. Николенко // Материалы XXII Международного конгресса «Апиславия» . - Россия -Москва. -2018.-С.92-94.

70. Ратошный, А.Н. Кормление ремонтного молодняка перепелов и перепелок -несушек / А.Н. Ратошный, С.Н. Зибров // Эффективное животноводство. -2012. - № 3. - С. 28-30.

71. Рахманов, А.И. Разведение домашних и экзотических перепелов / А. И. Рахманов//- М.: ООО «Аквариум принт», 2004. - 64 с.

72. Салтыкова Е.С. Иммуностимулирующее действие хитозана при нозематозе у медоносной пчелы (Apis millifera L.) / Е.С. Салтыкова, Л.Р. Гайфуллина, М.Д. Каскинова, А.В. Постряков, А.Г. Николенко // Материалы XXII Международного конгресса «Апиславия» . - Россия -Москва.- 2018.-С.92-94.

73. Селионова, М. И. Использование хитозан-меланинового комплекса и препарата на его основе при выращивании козлят / М.И. Селионова, Н.В. Погарская // Сборник научных трудов ГНУ СНИИЖК . 2010. №1. С.62-65.

74. Серебряков, А.И. Перепела: содержание, кормление, разведение / А.И Серебряков. - Россия: Пензенская область, 2010. - С. 12, С. 21, С. 79.

75. Скребнева, Л. А. Особенности аккумуляции тяжелых металлов в медоносных пчелах различных временных генераций / Л.А. Скребнева, Ф.С. Билалов, И.С. Григорьева // Ученые записки Казанского университета естественных наук -2012. - Т. кн. 1. - С.133-145.

76. Скрябин, А.К. Хитозан — полимер с уникальными свойствами / А.К. Скрябин, И. Тихонович, В.П. Варламов // «Наука в России» № 6 (203). М., 2014

77. Стефанова, И. Качественные показатели перепелиного мяса. / И. Стефанова, М. Кретов, И. Юхина // Птицефабрика. - 2006. - № 11. - С. 44-45.

78. Сычев, М.Ю. Продуктивность яичных перепелов при разных уровнях сырого жира в комбикормах / М.Ю. Сычев // Повышение интенсивности и конкурентоспособности отраслей животноводства: сб. тезис. Междунар. науч.-пр. конф. - Жодино, 2010. - С. 164.

79. Темираев Р.Б Эффективности применения антиоксиданта в рационах Перепелов / Р.Б. Темираев, Е.С. Титаренко, М.З. Фарышева // Научные основы по-

вышения продуктивности сельскохозяйственных животных. Сборник научных трудов СКНИИЖ.- Краснодар, 2017. - Т. 2. - № 6.-278-282 с.

80. Технология содержания перепелов в фермерских хозяйствах: методич. реко-мен. под общ.ред. Т. А. Столляра - Сергиев Посад, 2006. - 56 с.

81. Тикк Х. Перепелийное хозяйство /Х. Тикк, В.Тикк, В. Непс //Птицеводство.-2004.- С.30-32.

82. Толпышев Е.В. Микробиологический анализ мяса перепелов после добавления экстракта сапропеля / Е.В. Толпышев, М.В. Заболотных // Журнал: Вестник Омского государственного аграрного университета - 3(23).-2016.- С.-56-60.

83. Удод, В. Перепелов может разводить каждый / В. Удод // Наша дача. - 2000. -№ 23. - С. 14-17.

84. Фассахов, Р. С. Антибактериальная и антимикотическая активность хитозана: механизмы действия и роль структуры / Р. С. Фассахов, В. П. Варламов, Ю. А. Тюрин, С. Н. Куликов // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2009. - № 5. - С. 91 - 97.

85. Филатов А. В., Сапожников А. Ф. Биоресурсный потенциал перепелов японской породы // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии .- 2014 .-№3 .- С. 158-162

86. Харчук, Ю. Разведение и содержание перепелов. / Ю. Харчук//- Ростов-на-Дону: Феникс. - 2005. - 96 с.

87. Хусид, С. Б. Влияние пробиотиков на организм перепелов / С. Б. Хусид, В. В. Борисенко, В. И. Николаенко // Молодой ученый. — 2015—№5.1. — С. 23-25.

88. Шарнина, Ф.Ф. Хитин подмора пчел и хитин-глюкановый комплекс высших грибов, произрастающих в республике Марий-Эл - как возможный источник получения Э(+) - глюкозамина гидрохлорида / Ф.Ф. Шарнина // Вестник Марийского государственного университета. 2012. №8. С.32-38

89. Шиповская, А. Б. Биологическая активность олигомеров хитозана/ А. Б. Шиповская, В. И. Фомина, М. Н. Киреев, Е. С. Казакова, И. А. Касьян//

Известия Саратовск. ун-та. Новая серия. Сер. Химия. Биология. Экология. -

2008. - Т. 8, № 2. - С. 46 - 49.

90. Шмидт ГС. Плешакова ГО. Биологические свойства микроорганизмов, выделенных из толстого кишечника перепелов в норме и при дисбактериозе // Ветеринарная патология. 2012. №1. С.61-63.

91. Шрамм, Н. И. Разработка и исследование спиртовых извлечений из пчелиного подмора и личинок восковой моли / Н.И. Шрамм, Л.К. Бабиян, В.И. Трухина,

B.Д. Белоногова, А.А. Гилева // Фундаментальные исследования. 2014. №6-5.

C.956-958.

92. Aho, Paul Chicken to fare better Шал other meats / Paul Aho // Poultry USA. -

2009. - Vol. 10. - № 2. - P. 16.

93. Azarko I.I. Paramagnetic properties of melanin pigments and their compounds with chitosan / I. I. Azarko, A.V. Bakulin , E.I. Kozlova, V.P. Kurchenko , L.V. Aja-yeva L.V. // Proc. 6 Int. conf. NEET. Zakopane, Poland, 2009. P. 101.

94. Azarko I.I. Melanin complexes as a radiation bioprotector / I. I. Azarko, A.V. Bakulin , E.I. Kozlova, V.P. Kurchenko , L.V. Ajayeva L.V. // Proc. YIII Int. conf. ION. Kazimierz Dolny, Poland, 2010. P. 118.

95. Babaei, S. Effects of propolis, royal jelly, honey and bee pollen on growth performance and immune system of Japanese quails / S. Babaei, S. Rahimi, M.A Karimi Torshizi, G. Tahmasebi, S.N. Khaleghi Miran// Veterinary Research Forum, vol. 7.1 (2016), 13-20.

96. Bakulin А. V. Construction of chitosan-melanin complexes and investigation of their properties / A.V. Bakulin, V.P. Kurchenko, I.E. Veleshko, E.V. Rumyantse-va, V.P. Varlamov // Proc. 10"' Int. Conf. of the European Chitin Society EUCHIS41. St-Peterburg, 2011. P. 19.

97. Barzegar, H. Investigation of the possible use of chitosan as a natural Preservative in mayonnaise sauce / H. Barzegar, A. Karbassi, J. Jamalian, M. Aminlari // J. Sci. Technol. Agric. Natur. Resour. - 2008. - Vol. 12. - P. 371 - 375.

98. Berikashvili Z.N. Prevalence and intensity of caries in children of preschool institutions of Krasnoyarsk / Z.N. Berikashvili, R.G. Buyankina // JRMI. The eleventh international sysposium of the Japan-Russia Medical Exchange / Japan, Niagata, 2004. - S.95.

99. Bonferoni, M. C. Ionic polymeric micelles based on chitosan and fatty acids and intended for wound healing. Comparison of linoleic and oleic acid / M. C. Bonferoni, G. Sandri, E. Dellera, S. Rossi, F. Ferrari, M. Mori, C. Caramella / Europ. J. Pharmaceutics and Biopharmaceutics. - 2014. - Vol. 87. № 1. - P. 101 - 106.

100. Canali, M. Signals elicited at the intestinal epithelium upon chitosan feeding contribute to immunomodulatory activity and biocompatibility of the polysaccharide / M. Canali, C. Porporatto, M. Aoki, I. D. Bianco, S. G. Correa // Vaccine. - 2010. -Vol. 28, № 35. - P. 5718 - 5724.

101. Casettari, L. Chitosan in nasal delivery systems for therapeutic drugs / L. Casettari, L. Illum / J. Control. Release. - 2014. - Vol. 190. - P. 189 - 200.

102. Danilevskaya N. Probiotik: deystvie na perepelov raznykh porod [Probiotics: effects on different species of quails] / N Danilevskaya, V Subbotin // Poultry -2005: pp. 14-15.

103. Eaton, P. Atomic force microscopy study of the antibacterial effects of chitosans on Escherichia coli and Staphylococcus aureus / P. Eaton, J. C. Fernandes,

E. Pereira, M. E. Pintado, F. X. Malcata // Ultramicroscopy. - 2008 - Vol. 108, № 10. - P. 1128 - 1134.

104. Evans, Terry. Global recession hits demand, output, trade / Terry Evans // Poultry International. - 2009. - Vol. 48. - № 8. - P. 18, 20.

105. Ferreira, I. C. F. R. Chemical features of Ganoderma polysaccharides with antioxidant, antitumor and antimicrobial activities / I. C. F. R. Ferreira, S. A. Heleno,

F. S. Reis, D. Stojkovic, M. J. R. P. Queiroz, M. H. Vasconcelos, M. Sokovic // Phytochemistry. - 2014. - № 114. - P. 38 - 55.

106. Fong, D. Biodegradable chitosan microparticles induce delayed STAT-1 activation and lead to distinct cytokine responses in differentially polarized human macro-

phages in vitro / D. Fong, M. B. Ariganello, J. Girard-Lauziere, C.D. Hoemann // ActaBiomater. - 2015. - Vol. 12. - P. 183 - 194.

107. Garrido, O.H. Species limits within grey-headed quail-dove Geotrygon caniceps and implications for the conservation of a globally threatened species / O.H. Garrido, G.M. Kirwan, D.R. Capper // Bird Conservation International. - 2001. - T. 12. - № 2. - P. 169-187.

108. Gasparino E. The effects of glycerol on MRNA expression of growth hormone, insulin-like growth factor, and mitochondrial breast muscle genes of Japanese quail / E. Gasparino [et al.] // British Poultry Sciences. - 2012. - T. 53. - № 4. - P. 497507.

109. Gerasimenko, D.V. Research of Antibacterial Properties of Low-Molecular Weight Water-Soluble chitosans/ I.D. Avdienko, G.E. Bannikova, O.Yu. Zyeva, V.P. Var-lamov // The 6-th Asia-Pacific Chitin and Chitosan Symposium. 23-26 may 2004. National University of Singapore, Singapore. P. 41.

110. Ghosh, T. Focus on anti-virally active sulfated polysaccharides: From structure-activity analysis to clinical evaluation / T. Ghosh, K. Chattopadhyay, M. Marschall, P. Karmakar, P. Mandal, B. Ray / Glycobiology. - 2009. - Vol. 19, № 1. - P. 2 - 15.

111. Golubov I. Rezervy rosta proizvoditelnosti truda pri obsluzhivanii perepelov [Potential for growth of labor productivity in service of quails]./V. Golubov// Poultry-2011: pp. 7-9.

112. Gushchin V. Perepelovodstvo dolzhno razvivatsya [Breeding of quails must be developed] / V. Gushchin, L. Kroik // Poultry- 2003: pp. 22-23.

113. Guzman-Morales, J. Biodegradable chitosan particles induce chemokine release and negligible arginase-1 activity compared to IL-4 in murine bone marrow-derived macrophages / J. Guzman-Morales, M. Ariganello, I. Hammami, M. Thibault, M. Jolicoeur, C. D. Hoemann // Biochem. Biophys. Res. Commun. -2011. - Vol. 405, № 4. - P. 538 - 544.

114. Huang, Y. Degradation of chitosan by hydrodynamic cavitation / Y. Huang, Y. Wu, W. Huang, F. Yang, X. Ren // Polym. Degrad. Stab. - 2013. - Vol. 98, № 3. - P. 37 - 43.

115. Karam, G. Antibiotic strategies in the era of multidrug resistance / G. Karam, J. Chastre, M. H. Wilcox, J.-L. Vincent // Critical Care. - 2016. - № 20. - P. 136.

116. Karapetyan R. Biologicheskie i produktivnye kachestva perepelov [Biological and productive qualities of quails]/R. Karapetyan//Bird.— 2003: pp. 29-30.

117. Koekkoek, W. A. Antioxidant vitamins and trace elements in critical illness / W. A. Koekkoek, A. R. van Zanten // NutrClinPract. - 2016. - Vol. 31, № 4. -P. 457 - 474.

118. Kong, M. Antimicrobial properties of chitosan and mode of action: A state of the art review / M. Kong, X. G. Chen, K. Xing, H. J. Park // Int. J. Food Microbiol. -2010. - № 144. - P. 51 - 63.

119. Lanoie N. Naked oat response to soil type and herbicides applied at growing stages / N. Lanoie [et al.] // Plant Sci. - 2010. - Vol. 90. - № 3. - P. 247-255.

120. Li, K. Composite mesoporous silica nanoparticle/chitosan nanofibers for bone tissue engineering / K. Li, H. Sun, H. Sui, Y. Zhang, H. Liang, X. Wu, Q. Zhao //RSC Adv. - 2015. - Vol. 5, № 23. - P. 17541 - 17549.

121. Li, S. Antioxidant and antibacterial activities of exopolysaccharides from Bifidobacterium bifidum WBIN03 and Lactobacillus plantarum R315 / S. Li, R. Huang, N. P. Shah, X. Tao, Y. Xiong, H. Wei // J. Dairy Sci. - 2014. - № 97. -P. 7334 - 7343.

122. Lin, G.-Q. Overview of chirality and chiral drugs / G.-Q. Lin, J.-G. Zhang, J.-F. Cheng. // In book: Chiral Drugs: Chemistry and Biological Action. - 2011. -P. 3 - 28.

123. Liu, H. Chitosan kills bacteria through cell membrane damage / H. Liu, Y. Du, X. Wang, L. Sun / Int. J. Food Microbiol. - 2004. - №. 95. - P. 147 - 155.

124. Masson, M. Antimicrobial activity of piperazine derivatives of chitosan / M. Masson, J. Holappa, M. Hjalmarsdottir, Ö. V. Rûnarsson, T. Nevalainen, T. Järvinen // Carbohyd.Polym. - 2008. - Vol. 74. - P. 566 - 571.

125. Miyoshi, Y. HPLC analysis of naturally occurring free D-amino acids in mammals / Y. Miyoshi, R. Koga, T. Oyama, H. Han, K. Ueno, K. Masuyama, Y. Itoh, K. Hamase // J Pharm Biomed Anal. - 2012. - Vol. 69. - P. 42 - 49.

126. Moon, J. S. The antibacterial and immunostimulative effect of chitosan-oligosaccharides against infection by Staphylococcus aureus isolated from bovine mastitis / J. S. Moon, H. K. Kim, H. C. Koo, Y. S. Joo et al. // Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2007. - Vol. 75, № 5. - P. 989 - 998.

127. Muzzarelli, R. A. A. Chitosan composites with inorganics, morphogenetic proteins and stem cells for bone regeneration. Review Article / R. A. A. Muzzarelli // Carbohydrate Polym. - 2011. - Vol. 83, № 4. - P. 1433 - 1445.

128. Orhan C. The effects of cirsium arvense extract on antioxidant status in quail. / C. Orhan [et al.] // British Poultry Science. - 2013. - T. 54 - №5. - P. 620-626.

129. Qiao, Y. Chitosan oligosaccharides protect mice from LPS challenge by attenuation of inflammation and oxidative stress / Y. Qiao, X. Bai, Y. Du // Int. Im-munopharmacol. - 2011. - Vol. 11, № 1. - P. 121 - 127.

130. Raafat, D. Development of in vitro resistance to chitosan is related to changes in cell envelope structure of Staphylococcus aureus / D. Raafat, N. Leib, M. Wilmes, P. François, J. Schrenzel, H. G. Sahl // CarbohydrPolym. - 2017 - Vol. 157. -P. 146 - 155.

131. Schraufstatter, I. U. The chemokine CCL18 causes maturation of cultured monocytes to macrophages in the M2 spectrum / I. U. Schraufstatter, M. Zhao, S. K. Khaldoyanidi, R. G. Discipio // Immunology. - 2012. - Vol. 135, № 4. -P. 287 - 298.

132. Sharma, D., Measurement of within and between population genetic variability in quails / D. Sharma, K.B.C. AppaRao, S.M. Totley // British Poultry Science. -2000. - № 41. - P. 29-32.

133. Simunek, J. Effect of chitosan on the growth of human colonic bacteria / J. Simunek, G. Tishchenko, B. Hodrova, H. Bartonova // Folia Mocrobiol. - 2006.

- Vol. 51, № 4. - P. 306 - 308.

134. Skyrzypczak, G. Ocena skutecznosci chwastobojczej herbicydow w uprawie owsa nagiego (Avena sativa var. nuda) / G. Skyrzypczak, J. Pudelko // Progress in plant protection. - Poznan, 2001. - Vol. 41. - № 2. - P. 910-912.

135. Sorrell, E.M. Adaptation of influenza A/Mallard/Potsdam/ 178-4/83 H2N2 virus in Japanese quail leads to infection and transmission in chickens. \ E. M. Sorrell, D. R.Perez // Avian Diseases. - 2007. - T. 51. - Supple 1. - P. 264-268.

136. Sterba, Z. Vlivgenotypu a prostredinav ybranekvalitativ nizna kynaheho ovsa / Z. Sterba, J. Moudry, A. Raus // Coll. Ofsci. Papers, Fac. Of agriculture in Ceske Budejovice. Ser. For crop science / Jihoceska univ. Zemed. Fak. - 2000. - Vol. 17.

- № 2. - P. 93-97.

137. Stopinsek, S. Fungal cell wall agents suppress the innate inflammatory cytokine responses of human peripheral blood mononuclear cells challenged with lipopoly-saccharide in vitro / S. Stopinsek, A. Ihan, B. Wraber, M. Tercelj, B. Salobir, R. Rylander, S. Simcic // Int. Immunopharmacol. - 2011. - Vol. 11, № 8. -P. 939 - 947.

138. Sun, Z. Synthesis, characterization, and antimicrobial activities of sulfonat-ed chitosan / Z. Sun, C. Shi, X. Wang, Q. Fang, J. Huang // CarbohydrPolym. -2017. - Vol. 155. - P. 321 - 328.

139. Szczepanik, A. Wartosc dietetycna mleka koziego / A. Szczepanik, Z. Libudzisz // Przem. Spozywczy, 2000, - T. 54. - № 11. - S. 25-27, 44.

140. Tan, H. Quaternized chitosan as an antimicrobial agent: antimicrobial activity, mechanism of action and biomedical applications in orthopedics / H. Tan, R. Ma, C. Lin, Z. Liu, T. Tang // Int. J. Mol. Sci. - 2013. - № 14. - P. 1854 - 1869.

141. Tang, F. Preparation and characterization of N-chitosan as a wound healing accelerator / F. Tang, L. Lv, F. Lu, B. Rong, Z. Li et al.// International Journal of Biological Macromolecules. - 2016.

142. Tao, Y. Effect of chitosan on membrane permeability and cell morphology of Pseudomonas aeruginosa and Staphylococcus aureus / Y. Tao, L.-H. Qian, J. Xie // Carbohyd. Polym. - 2011. - Vol. 86, № 2. - P. 969 - 974.

143. Tokura, S. Molecular weight dependent antimicrobial activity by chitosan / S. Tokura, K. Ueno, S. Miyazaki, N. Nishi // MacromolSymp. - 1997. - Vol. 120. -P. 1 - 9.

144. Tona, K. Effects of broiler breeder's age on egg weight loss and embryonic mortality / K. Tona, F. Bamelis, V. Bruggeman, E. Decuypera // Int. Hatchery Pract. -2000. - Vol. 15. - № 2. - P. 23.

145. Van Borm S. Rapid detection of Eurasian and American H7 subtype influenza a viruses using a single TAQMANMGB real-time RT-PCR. / S. Van Borm [et al.] // Avian Diseases. - 2010. - T. 54 № Supple 1. - P. 632-638.

146. Villasenor Mir Hector Eduardo Turguesa, nueva variedad de avenapara la produccion de grano y forrajeen Mexico / Mir Hector Eduardo Villasenor et all // Agr. Tech. Mex. - 2009. - № 4 - P. 487-492.

147. Wang ,Y. Low molecular weight chitosan is an effective antifungal agent against Botryosphaeria sp. and preservative agent for pear (Pyrus) fruits / Y. Wang, B. Li, X. Zhang, N. Peng, Y. Mei, Y. Liang // Int J BiolMacromol. - 2017. - Vol. 95. -P. 1135 - 1143.

148. Wu, F. Antibiotic-loaded chitosan hydrogel with superior dual functions: antibacterial efficacy and osteoblastic cell responses / F. Wu, G. Meng, J. He, Y. Wu, Z. Gu // ACS Appl. Mater. Interfaces. - 2014. - Vol. 6, № 13. - P. 10005 - 10013.

149. Zhang, M. Chiral biointerface materials / M. Zhang, G. Qing, T. Sun // ChemSoc Rev. - 2012. - Vol. 41, № 5. - P. 1972 - 1984.