Компоненты серотонинергической системы и их функциональная взаимосвязь в раннем развитии моллюсков и костистых рыб тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.01, кандидат биологических наук Ивашкин, Евгений Геннадьевич

  • Ивашкин, Евгений Геннадьевич
  • кандидат биологических науккандидат биологических наук
  • 2013, Москва
  • Специальность ВАК РФ03.03.01
  • Количество страниц 121
Ивашкин, Евгений Геннадьевич. Компоненты серотонинергической системы и их функциональная взаимосвязь в раннем развитии моллюсков и костистых рыб: дис. кандидат биологических наук: 03.03.01 - Физиология. Москва. 2013. 121 с.

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Ивашкин, Евгений Геннадьевич

ГЛАВА 1. ВВЕДЕНИЕ.

1.1 Актуальность проблемы.

1.2 Цель и задачи исследования.

1.3 Научная новизна работы.

1.4 Научно-практическая ценность.

1.5 Апробация работы.

ГЛАВА 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2.1 Серотонинергическая система.

2.1.1 Общие сведения о серотонине.

2.1.2 Синтез серотонина.

2.1.3 Метаболизм серотонина.

2.1.3.1Метаболизм серотонина у позвоночных животных.

2.1.3.2 Метаболизм серотонина у беспозвоночных животных.

2.1.3.3 Метаболизм серотонина у моллюсков.

2.1.3.4 у-глутамил конъюгация и активность трансглутаминаз.

2.1.4 Серотониновые транспортеры.

2.1.4.1 Мембранный серотониновый транспортер.

2.1.4.2 Везикулярный моноаминовый транспортер.

2.1.5 Рецепторы серотонина.

2.1.5.1 Типы рецепторов.

2.1.5.2 Сигнальные механизмы.

2.1.6 Серотонилирование.

2.2 Серотонин в раннем развитии.

2.2.1 Серотонин в половой систем самок и созревание ооцитов.

2.2.1.1 Немертины.

2.2.1.2 Полихеты.

2.2.1.3 Моллюски.

2.2.1.4 Иглокожие.

2.2.1.5 Костистые рыбы.

2.2.1.6 Амфибии.

2.2.1.7 Млекопитающие.

2.2.2 Серотонин в зародышах на стадиях дробления и гаструляции.

2.2.2.1 Изменение уровня серотонина в клетках зародышей в ходе развития.

2.2.2.2 Локализация серотонина в зародышах на ранних стадиях развития.

2.2.2.3 Роль серотонина в регуляции процессов дробления и гаструляции

2.2.2.3.1 Первичноротые.

2.2.2.3.2 Вторичноротые.

ГЛАВА 3. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3.1 Метод имму но цитохимического окрашивания.

3.2 Метод обратной транскрипции и полимеразной цепной реакции.

3.3 Метод Вестерн блот анализа.

3.4 Трансмиссионная электронная миксроскопия.

3.5 In situ гибридизация.

3.6 Статистическая обработка.

ГЛАВА 4. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.

4.1 5-НТ в нормальном развитии.

4.1.1 Распределение 5-НТ в дробящихся зародышах мидии.

4.1.2 Распределение 5-НТ в дробящихся зародышах большого прудовика.

4.1.3 Распределение 5-НТ в дробящихся зародышах данио

4.1.4 Обсуждение.

4.2 Синтез и транспорт 5-НТ в клетках дробящихся зародышей.

4.2.1 Синтез и транспорт 5-НТ в дробящихся зародышах мидии.

4.2.2 Синтез и транспорт 5-НТ в дробящихся зародышах большого прудовика.

4.2.3 Выброс 5-НТ из клеток дробящихся зародышей большого прудовика

4.2.4 Синтез и транспорт 5-НТ в дробящихся зародышах данио.

4.2.5 Обсуждение.

4.3 Экспрессия компонентов серотонинергической системы в развитии данио.

4.3.1 Исследование экспрессии компонентов серотонинергической системы на уровне синтеза мРНК.

4.3.2 Экспрессия рецептора 5-НТ 1Аа в развитии данио.

4.3.3 Обсуждение.

4.4 Нарушения развития. вызванные фармакологической модуляцией компонентов серотонинергической системы.

4.4.1 5-НТР-индуцированная экзогаструляция у большого прудовика.

4.4.2 Сезонное изменение чувствительности зародышей большого прудовика к 5-НТР.

4.4.3 Нарушения развития, вызванные фармакологической модуляцией компонентов серотонинергической системы в дроблении костистых рыб.

4.4.3.1 Данио.

4.4.3.2 Обыкновенный вьюн.

4.4.4 Действие хлорпромазина на организацию мембранного трафика в бластомерах вьюна и большого прудовика.

4.4.4.1 Большой прудовик.

4.4.4.2 Обыкновенный вьюн.

4.4.43 Обсуждение.

4.4.5 Обсуждение.

4.5 Анализ функциональных взаимосвязей между компонентами серотонинергической системы в раннем развитии большого прудовика.

4.5.1 Экспериментальные данные.

4.5.1 Обсуждение.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Физиология», 03.03.01 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Компоненты серотонинергической системы и их функциональная взаимосвязь в раннем развитии моллюсков и костистых рыб»

1.1 Актуальность проблемы. Каждый год выходит огромное количество работ, посвященных регуляторным функциям моноаминов, ферментов их синтеза и деградации, транспортеров и рецепторов. Была показана роль серотонина и дофамина не только как классических нейромедиаторов, но и как факторов, участвующих в регуляции развития (Voronezhskaya et al., 2004; Lauder and Krebs, 2010), а также гуморальных факторов, регулирующих течение самых разных процессов, начиная с ранних стадий органогенеза (Pino et al., 2004; Levin ei al., 2006) и заканчивая нормальными и патологическими процессами во взрослых организмах (Berger et al., 2009).

Одним из наиболее изученных мояоаминов является серотонин (5-гидрокеигрипгамин, 5-hydroxytryptamine, 5-НТ). Известно, что 5-НТ широко распространён среди эукариот: выполняет регуляторные функции у растений (Muich et al., 2001), одноклеточных простейших (McGowan et al., 1985) и примитивных многоклеточных животных, не имеющих нервной системы (Czakei, 2006).

В конце 50-х - начале 60-х годов было впервые обнаружено, что некоторые моноамины и другие низкомолекулярные вещества, являющиеся нейромедиаторами, присутствую! на стадиях раннего развития задолго до появления нервной системы (Numanoi, 1955; Бузников, Манухин, 1961). В дальнейшем было показано, что 5-НТ содержится в ооцитах и дробящихся эмбрионах животых самой разной систематической принадлежности: полихет (Emanuelsson, 1974), яемертиь, (Buznikov et al., 1964) голожаберных моллюсков (Buzrukov ei al., 2003); головохордовых (Candiani et al., 2001), иглокожих (Buznikov et al., 1964;, амфибий (Fukumoro et al., 2005a), птиц (Emanuelsson, 1988) и млекопитающих (Basu ei al., 2008).

В экспериментальных работах было продемонстрировано, что 5-НТ вовлечён в регуляцию широкого спектра процессов на донервных стадиях развития у самых разных животных. В половой системе взрослых беспозвоночных и позвоночных через серотонинергическую систему происходит модуляция процесса созревания ооцитов (Stricker and Smythe, 2000; Lawrence and Soame, 2009; Buznikov et al., 1993; Cerda et al., 1995) и сперматозоидов (Dufau et al., 1993), а также стимуляция подвижности сперматозоидов при оплодотворении (Fujinoki, 2011). В дроблении у морских ежей (Buznikov et al., 2005) и голожаберных моллюсков (Buznikov et al., 2003) нарушение нормальной работы ранней серотонинергической системы приводит к остановке делений дробления. 5-НТ задействован в установлении право-левой полярности у зародышей амфибий (Fukumoto et al., 2005а, 2005b; Beyer et al., 2012). Несмотря на растущее количество экспериментальных фактов, многие аспекты и механизмы функционирования серотонинергической системы на раиних, донервных стадиях развития, остаются практически неисследованными.

Большинство работ, лосзящённых 5-НТ, выполняется преимущественно в рамках парадигмы рецепторкого действия моноаминов. Однако, в последние десятилетия было показано, чю механизмы действия 5-НТ также включают в себя сложные многокомпонентные системы, в которых важную роль играет баланс 5-НТ внутри и снаружи клеток (Waither, 2006; Duerschmied and Bode, 2009). Такие системы могут существовать как в пределах единичных клеток, так и быть разнесены на тканевом, органном и даже организменном уровне (Paulrnariii ti al., 2009), позволяя говорить о 5-НТ как о системном интегративьом модуляторе (Sakharov, 1990). Такие идеи высказывались и раньше для нейральных процессов (Сахаров, 1990; Сахаров, 2012), однако именно сейчас они получают всё больше экспериментальных подтверждений и распространяются также на процессы, реализующиеся вне нервной системы. В этом контексте, развитие является одним из ключевых моментов реализации подобных системных регуляций.

Больше ¿сето данных в литературе имеется о ранней серотонинергической сисхеме млекопитающих (Burden and Lawrence, 1973; Neiison et al., 2000; ll'kova et al., 2004; Amireaali and Dube, 2005a; Hinckley et al.,

2005; Basu et al., 2008). Однако анцестральным для высших многоклеточных животных является развитие зародышей вне материнского организма. Исследование именно таких животных представляется нам ключевым для комплексного понимания роли серотонинергической системы в развитии.

В качестве объектов исследования нами были выбраны удобные для работы и потл горные в биологии развития модели: пресноводный брюхоногий моллюск большой прудовик, костистые рыбы данио и обыкновенный вьюн. Для зти< животных хорошо изучены особенности раннего развития, существу юг методики эффективной работы в условиях лаборатории. В дополнение, кал здин из самых легкодос гу иных объектов среди двустворчатых моллюсков, нами была использована тихоокеанская мидия.

Моллюски являются старейшим объектом исследований физиологической роли моноаминов (Sakharov, 1994), начиная с изучения нейротрансмиггерной функции серотонина (S.-Rozsa and Graul, 1964; Gerschciii'öid and Siefani, 1 >"ó¿) и заканчивая ролью 5-НТ в процессах обучения и памяти (Squire and Kandel, 2008). Функциональное значение серотонина в регуляции локомоции на ранних стадиях развития зародышей было впервые показано на голожаберных моллюсках (Koshioyants et al., 1961). В последующих работах по изучению функциональной роли 5-НТ на донервных стадии к развишя использовались главным образом также представители голожаберных моллюсков (Бузников, Манухин, 1961). Систематические исследования компонентов серотонинергической системы, в частности, присутствия самого 5-КГ на донервных стдиях развития, функционирования ферментов ею синтеза и транспортеров, у представителей других групп моллюсков г

Похожие диссертационные работы по специальности «Физиология», 03.03.01 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Физиология», Ивашкин, Евгений Геннадьевич

ГЛАВА 6. ВЫВОДЫ

1. 5-НТ присутствует в дробящихся зародышах морского двустворчатого моллюска тихоокеанской мидии, пресноводного брюхоногого моллюска большого прудовика, а также костистой рыбы данио. У моллюсков и данио 5-НТ равномерно распределён между дробящимися бластомерами в пределах зародыша. У данио 5-НТ преимущественно содержится в дробящейся части зародыша, в желтке 5-НТ отсутствует.

2. Все клетки дробящихся зародышей исследованных животных способны синтезировать 5-НТ из непосредственного биохимического предшественника 5-НТР. Возможность синтеза 5-НТ из триптофана у зародышей значительно варьирует, однако у всех исследованных животных подобный синтез представлен на ранних стадиях развития. У данио синтез 5-НТ, локализован в дробящейся части зародыша, но не в желтке.

3. Исследованные животные существенно отличаются по способности к захвату 5-НТ отдельными клетками зародыша. Однако функционирование мембранного транспортера в большей или меньшей степени представлено на ранних стадиях у всех исследованных животных.

4. Молекулярно-биологические данные по экспрессии генов, кодирующих ферменты синтеза, транспорта и деградации 5-НТ, а также рецептора 5-НТ 1Аа подтверждают эксперименты по анализу функциональной активности этих компонентов серотонинергической системы у костистых рыб.

5. Несмотря на активность систем синтеза и транспорта 5-НТ, а также экспрессию генов, кодирующих соответствующие белки, нами не были выявлены значительные специфические нарушения в раннем развитии исследованных костистых рыб, связанные со специфическим модулированием компонентов серотонинергической системы.

6. На основе разработанной модели 5-НТР индуцированной экзогаструляции исследованы взаимосвязи между компонентами серотонинергической системы в раннем развитии большого прудовика. Высказана гипотеза о роли баланса уровня 5-НТ внутри и снаружи клеток. Предложен молекулярный механизм, лежащий в основе долговременных отставленных эффектов 5-НТ. 7. Анализ полученных нами данных о физиологии ранней серотонинергической системы позволяет сделать вывод о модуляторной роли 5-НТ на ранних донервных стадиях развития у исследованных нами моллюсков и костистых рыб.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ СОКРАЩЕНИЙ

5-НТ - серотонин, 5-гидрокситриптамин (5-hydroxytryptamine);

5-НТР - 5-гидрокситриптофан (5-hydroxytryptophan), непосредственный биохимический предшественник серотонина;

VMAT - везикулярный моноаминовый транспортер;

SERT - мембранный серотониновый транспортер;

МАО - моноаминоксидаза;

ТРН - триптофангидроксилаза; сАМР, цАМФ - циклический аденозинмонофосфат;

ЭГ - экзогаструляция; a.u. - arbitrary units, относительные единицы интенсивности флуоресценции.

ГЛАВА 5. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Раннее развитие является важнейшей частью жизненного цикла, во время которого определяются координации между многими важными физиологическими процессами, происходящими в организме в течение всей его дальнейшей жизни. Серотонинергическая система (и ранние донервные нейромедиаторные системы в целом) является одним из возможных кандидатов на роль подобного интегративного регулятора. В этом контексте, безусловно, важным является детальное изучение донервного 5-НТ в развитии разных животных и дальнейший сравнительный анализ, как путь к пониманию интегративных механизмов в развитии.

В рамках данной работы нами были получены данные о присутствии и распределении 5-НТ в дроблении морского двустворчатого моллюска, пресноводного брюхоногого моллюска, а также костистой рыбы. Было проведено исследование функционирования ферментов синтеза 5-НТ, мембранного и внутриклеточного транспортера на последовательных стадиях донервного развития исследованных животных. Сравнительный анализ показал наличие значительного разнообразия как в распределении самого 5-НТ, так и в функционировании ранних систем синтеза и транспорта 5-НТ у разных животных. Подобные детальные исследования ранее не проводились.

Молекулярно-биологическое исследование экспрессии компонентов серотонинергической системы в зародышах костистой рыбы на ранних стадиях развития позволило сделать вывод о сходстве ранней серотонинергической системы рыб с другими позвоночными и беспозвоночными животными. Кроме этого, были обнаружены черты, характерные только для рыб. Эксперименты по фармакологической модуляции серотонинергической системы у костистых рыб показали отсутствие нарушений, сходных с выявленными у других животных при аналогичных воздействиях.

В процессе проведения фармакологического анализа было описано действие амфифильного вещества (хлорпромазина) как активатора эндоцитоза в бластомерах брюхоногого моллюска и костистой рыбы.

У брюхоногих моллюсков была обнаружена чувствительность ранних зародышей к повышению уровня 5-НТ на строго определённых стадиях развития, установлен сезонный характер выявленной чувствительности. На основе обнаруженного феномена была разработана экспериментальная модель 5-НТР индуцированной экзогаструляции, давшая возможность исследовать существующие функциональные взаимосвязи между различными компонентами серотонинергической системы у брюхоногого моллюска. Анализ проведённых на основе этой модели экспериментов позволил выдвинуть гипотезу о роли баланса уровня 5-НТ внутри и снаружи клеток, как регуляторного механизма на ранних стадиях развития.

В сумме, полученные нами данные о физиологии ранней серотонинергической системы позволяют сделать вывод о её модуляторной (т.е., не критической для морфологического или функционального развития частей зародыша, основных органов и их систем) роли на донервных стадиях эмбрионального развития исследованных животных. Нами была предложена и обоснована физиологическая роль 5-НТ, как регулятора долговременных, отсроченных процессов в развитии.

Полученные результаты могут являться основой для дальнейших исследований с целью понимания особенностей функционирования и эволюции ранней донервной серотонинергической системы, её связи с 5-НТ в центральной нервной системе, роли биогенных аминов как интеграторов не только на уровне нервной системы, но и жизненного цикла животных.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Ивашкин, Евгений Геннадьевич, 2013 год

1. Бузников Г.А. Низкомолекулярные регуляторы зародышевого развития// М.: Наука, 1967.

2. Бузников Г.А., Манухин Б.Н. Серотонин-подобные вещества в эмбриогенезе некоторых брюхоногих моллюсков // Журн. общ биол. -1961.- №22-С. 223-229.

3. Воронежская Е. Е., Ивашкин Е. Г. Пионерные нейроны: основа или ограничивающий фактор разнообразия нервных систем Lophotrochozoa? // Онтогенез. 2010. - Т.41 № 6. - С. 403-413.

4. Воронежская Е.Е., Хабарова М.Ю., Незлин Л.П. Ранняя активация серотониновых рецепторов вызывает МАРК-опосредованную экзогаструляцию // Клеточные, молекулярные и эволюционные аспекты морфогенеза. 2007. - М., под ред. Л.В. Белоусова, - С. 25-27.

5. Ивашкин Е.Г., Воронежская Е.Е. Действие хлорпромазина на эндоцитоз в бластомерах зародышей большого прудовика Lymnaea stagnalis L. и вьюна Misgurnus fossilis L. // Биологические мембраны. 2011. - Т.28 № 4. - С. 290-297.

6. Ивашкин Е.Г., Черданцев В.Г. Морфогенетические последствия частичного удаления цитоплазмы бластомеров в раннем эмбриогенезе вьюна Misgurnus fossilis L. // Онтогенез. 2012. - Т.43 №3. - С. 172-180.

7. Костомарова, A.A. Вьюн Misgurnus fossilis L. / Под ред. Астаурова Б.Л. // Объекты биологии развития: справ.-метод. пособие М.: Наука. - 1975. -С. 308-323.

8. Малахов В.В, Медведева Л.А. Эмбриональное и раннее личиночное развитие двустворчатого моллюска Mytilus edulis (Mytilida, Mytilidae) // Зоол. Журн. -1985. № 64 - С. 1808-1815.

9. Манухин Б.Н., Бузников Г.А. Серотонин в эмбриогенезе морских беспозвоночных // Ж. Общ. Биол. 1963. - № 24. - С. 23-29.

10. Маркова Л. Н., Садыкова К.А., Сахарова Н.Ю. Действие антагонистов биогенных моноаминов на развитие ранних зародышей мыши,культивированных in vitro // Ж. Эвол. Биохим. Физиол. 1990. - Т. 26 №5. - С. 726-732.

11. Мещеряков, В.Н. Прудовик Lymnaea stagnalis L. / Под ред. Астаурова Б.Л. // Объекты биологии развития: справ.-метод. пособие М.: Наука. - 1975. - С. 53-94.

12. Никитина J1. А., Мальченко J1.A., Теплиц Н.А., Бузников Г.А. Действие серотонина и его аналогов на созревание ооцитов земноводных in vitro // Онтогенез. 1988. - Т.19 №5. - С. 499-507.

13. Сахаров Д.А. Биологический субстрат генерации поведенческих актов // Ж. Общ. Биол. 2012. - Т. 73 №5. - С. 334-348.

14. Сахаров Д.А. Множественность нейротрансмиттеров: функциональное значение // Журн. Эвол. Биохим. Физиол. 1990. - №26. -С. 733-740.

15. Хожай Л.И., Пучков В.Ф., Отеллин В.А. Влияние недостатка серотонина на эмбриональное развитие млекопитающих // Онтогенез. -1995. Т. 26 №5. - С. 350-355.

16. Abidi S. M. A., Nizami W. A. Monoamine oxidase in amphistomes and its role in worm motility // J Helminthol. 2000. - №74. - P. 283-8.

17. Ahern G. P. 5-HT and the immune system. // Curr Opin Pharmacol. -2011,- 11(1).-P. 29-33.

18. Akkoyunlu G., Ustiinel I., Demir R. The distribution of transglutaminase in the rat oocytes and embryos // Theriogenology. 2007. - 68(6). - P. 834-41.

19. Albert P.R., Sajedi N., Lemonde S., Ghahremani M.H. Constitutive Gi2 dependentactivation of adenylyl cyclase type II by the 5-HT 1A receptor.1.hibition by anxiolytic partial agonists // J Biol Chem. 1999. - №274. - P. 35469-35474.

20. Alvarado-Alvarez R., Gould M.C., Stephano J.L. Spawning, in vitro Maturation, and Changes in Oocyte Electrophysiology Induced by Serotonin in Tivela stultorum // Biol Bull. 1996. - №190. - P. 322-328.

21. Amireault P., Dubé F. Intracellular cAMP and calcium signaling by serotonin in mouse cumulus-oocyte complexes // Mol Pharm. 2005b. - 68(6). -P. 1678-1687.

22. Amireault P., Dubé F. Serotonin and its antidepressant-sensitive transport in mouse cumulus-oocyte complexes and early embryos // Biol Reprod. 2005a. - 73(2). - P. 358-365.

23. Amireault P., Sibon D., Côté F. Life without peripheral serotonin: insights from tryptophan hydroxylase 1 knockout mice reveal the existence of paracrine/autocrine serotonergic networks. // ACS Chem Neurosci. 2013. -4(1).-P. 64-71.

24. Bader M. Serotonin // Cardiovascular Hormone Systems / Ed. Bader M. Weinheim. Wiley-VCH Verlag. 2008. - P. 211-231.

25. Baganz N. L., Blakely R. D. A dialogue between the immune system and brain, spoken in the language of serotonin. // ACS Chem Neurosci. 2013. -4(1).-P. 48-63.

26. Barnes N.M. and Sharp T. A review of central 5-HT receptors and their function // Neuropharmacology. 1999. - №38. - P. 1083 - 1152. . ,

27. Barnes N.M., Sharp T., A review of central 5-HT receptors and their function.// Neuropharmacology.- 1999.- V.38, №8,- P.1083-152.

28. Bashammakh S. The Developmental Role of the Serotonin System // Berlin Free University. 2007. - PhD thesis. - 127 P.

29. Basu B., Desai R., Balaji J., Chaerkady R., Sriram V., Maiti S., Panicker M. M. Serotonin in pre-implantation mouse embryos is localized to the mitochondria and can modulate mitochondrial potential // Reproduction. 2008. -135(5).-P. 657-69.

30. Battelle B. A., Edwards S. C., Kass L„ Maresch H.M., Pierce S.K., Wishart A. Identification and functions of octopamine and tyramine conjugates in the Limulus visual system // J Neurochem. 1988. - №51. - P. 1240-51.

31. Berger M., Gray J.A., Roth B.L. The expanded biology of serotonin // Annu Rev Med. 2009. - №60. - P. 355-66.

32. Bianchi P., Pimentel D.R., Murphy M. P., Colucci W. S., Parini A. A new hypertrophic mechanism of serotonin in cardiac myocytes: receptor-independent ROS generation // FASEB J. 2005. -19(6). -P. 641-3.

33. Bohlen und Halbach O. and Dermietzel R. Neurotransmitters and Neuromodulators: Handbook of Receptors and Biological Effects // Weinheim. Wiley-VCH Verlag. 2006.

34. Burden H. W., Lawrence I. E. Jr. Presence of biogenic amines in early rat development//Am J Anat. 1973,- 136(2). - P. 251-257.

35. Burger, K., Gimpl, G., and Fahrenholz, F., Regulation of receptor functions by cholesterol. // Cell. Mol. Life Sci.- 2000.- №57,- P. 1577-1592.

36. Buznikov G. A., Chudakova I. V., Zvezdina N. D. The role of neurohumours in early embryogenesis. I. Serotonin content of developing embryos of sea urchin and loach // J Embr Exp Morph. 1964. - 12(4). - P. 563573.

37. Buznikov G. A., Nikitina L. A., Galanov A. Yu., Malchenko L. A., Trubnikova O. B. The control of oocyte maturation in the starfish and amphibians by serotonin and its antagonists // Int J Dev Biol. 1993. - 37(2). - P. 363-364.

38. Buznikov G. A., Peterson R. E., Nikitina L. A., Bezuglov V. V., Lauder J. M. The pre-nervous serotonergic system of developing sea urchin embryos and larvae: pharmacologic and immunocytochemical evidence // Neurochem Res. -2005.-№30.-P. 825-837.

39. Cadogan A. K., Kendall D. A., Marsden C. A. Serotonin 5-HT1A receptor activation increases cyclicAMP formation in the rat hippocampus in vivo //J Neurochem. 1994. - №62. - P. 1816-1821.

40. Cameron R. A., Smith L. C., Britten R. J., Davidson E. H. Ligand-dependent stimulation of introduced mammalian brain receptors alters spicule symmetry and other morphogenetic events in sea urchin embryos // Mech Dev. -1994.-45(1).-P. 31-47.

41. Candiani S., Augello A., Oliveri D., Passalacqua M., Pennati R., De Bernardi F., Pestarino M. Immunocytochemical localiza-tion of serotonin in embryos, larvae and adults of the lancelet, Branchiostoma floridae // Histochem J.- 2001.-№33.- P. 413-420

42. Cardot J. La monoamine oxidaze chez le Mollusque Helix pomatia: activité sur quatre substrates // Comp Rend Soc Biol Paris. 1966. - №160. - P. 1264-1268.

43. Carneiro A. M., Cook E. H., Murphy D. L., Blakely R. D. Interactions between integrin alphallbbeta3 and the serotonin transporter regulate serotonin transport and platelet aggregation in mice and humans // J Clin Invest. 2008. -№118,- P. 1544-1552.

44. Cerdà J., Petrino T. R., Greenberg M. J., Wallace R. A. Pharmacology of the serotonergic inhibition of steroid-induced reinitiation of oocyte meiosis in the teleost Fundulus heteroclitus // Mol Reprod Dev. 1997. - №48. - P. 282-291.

45. Cerdà J., Petrino T. R., Lin Y.-W. P., Wallace R. A. Inhibition of Fundulus heteroclitus oocyte maturation in vitro by serotonin (5-hydroxytryptamine) // J. Exp. Zool. 1995. - №273. - P. 224-233.

46. Cerdà J., Reich G., Wallace R. A., Selman K. Serotonin inhibition of steroid-induced meiotic maturation in the teleost Fundulus heteroclitus: role of cyclic AMP and protein kinases // Mol Reprod Dev. 1998a. - 49(3). - P. 33341.

47. Cerdà J., Subhedar N., Reich G., Wallace R. A., Selman K. Oocyte sensitivity to serotonergic regulation during the follicular cycle of the teleost Fundulus heteroclitus // Biol Reprod. 1998b. - 59(1). - P. 53-61.

48. Chabbi-Achengli Y., Coudert A. E„ Callebert J., Geoffroy V., Côté.F., Collet C., de Vernejoul M.C. Decreased osteoclastogenesis in serotonin-deficient mice. // Proc Natl Acad Sci USA.- 2012. 109(7) - P. 2567-72.

49. Chen J.Y., Brunauer L.S., Chu F.C., Helsel C.M., Gedde M.M., Huestis W.H. Selective amphipathic nature of chlorpromazine binding to plasma membrane bilayers //Biochim. Biophys. Acta. 2003. - 1616(1). - P. 95-105.

50. Cikos S., Fabian D., Makarevich A. V., Chrenek P., Koppel J. Biogenic monoamines in preimplantation development // Hum Reprod. 2011. - 26(9). -P. 2296-305.

51. Cohen G., Farooqui R., Kesler N. Parkinson disease: a new link between monoamine oxidase and mitochondrial electron flow // Proc Natl Acad Sci USA.- 1997.-94(10).-P. 4890-4.

52. Colas J. F., Launay J. M., Kellermann O., Rosay P., Maroteaux L. Drosophila 5-HT2 serotonin receptor: coexpression with fushi-tarazu during segmentation // Proc Natl Acad Sci USA. 1995. - №92. - P. 5441-5445.

53. Colas J. F., Launay J. M., Maroteaux L. Maternal and zygotic control of serotonin biosynthesis are both necessary for Drosophila germband extension // Mech Dev. 1999a. - №87. - P. 67-76.

54. Colas J. F., Launay J. M., Vonesch J.-L., Hickel P., Maroteaux L. Serotonin synchronizes convergent extension of ectoderm with morphogenetic gastrulation movements in Drosophila // Mech Dev. 1999b. - №87. - P. 77-91.

55. Côté F., Fligny C, Bayard E„ Launay J. M., Gershon M. D., Mallet J., Vodjdani G. Maternal serotonin is crucial for murine embryonic development // Proc Natl Acad Sci USA. 2007. - 104(1). - P. 329-334.

56. Czaker R. Serotonin immunoreactivity in a highly enigmatic metazoan phylum, the pre-nervous Dicyemid // Cell Tiss Res. 2006. - 326(3 ). - P. 843850.

57. Dachary-Prigent J., Dufourcq J., Lussan C., Boisseau M. Propranolol, chlorpromazine and platelet membrane: a fluorescence study of the drug-membrane interaction // Thromb. Res. 1979. - 14(1). - P. 15-22.

58. Deeb S. S. Inhibition of cleavage and hatching of sea urchin embryos by serotonin // J Exp Zool. 1972. - №181. - P. 79-86.

59. Dempsie Y. and MacLean M. R. Role of the Serotonin Transporter in Pulmonary Arterial Hypertension // Exp Rev Clin Pharm. 2008. - 1(6). - P. 749-757.

60. Diaz P. M., Ngai S. N., Costa E. Factors modulating brain serotonin turnover // Advances in Pharmacology. 1968. - 6(B) - P. 75-92.

61. Dubbles R., Elofsson R. N-Acetylation of arylalkylamines (serotonin and tryptamine) in the crayfish brain // Comp Biochem Physiol C. 1989. - №93. -P. 307-312.

62. Dubé F., Amireault P. Local serotonergic signaling in mammalian follicles, oocytes and early embryos // Life Sciences. 2007. - №81. - P. 16271637.

63. Duerschmied D. and Bode C. The role of serotonin in haemostasis // Hamostaseologie. 2009. - 29(4). - P. 356-359.

64. Dufau M. L., Tinajero J. C., Fabbri A. Corticotropin-releasing factor: an antireproductive hormone of the testis // FASEB J. 1993. - 7(2). - P. 299-307.

65. Dyachuk V., Odintsova N. Development of the larval muscle system in the mussel Mytilus trossulus (Mollusca, Bivalvia) // Dev Growth. Differ. 2009. -51(2).-P. 69-79.

66. Elferink J.G.R. Fluorescence studies of membrane interactions of chlorpromazine and chlorimipramine // Biochem. Pharmacol. 1977. - №26. - P. 511-515.

67. Emanuelsson H. Autoradiographic localization in polychaete embryos of tritiated mesulergine, a selective antagonist of serotonin receptors that inhibits early polychaete development // Int J Dev Biol. 1992. - 36(2). - P. 293-302.

68. Emanuelsson H. Localization of serotonin in cleavage embryos of Ophryotrocha labronica // Wilhelm Roux' Archiv. 1974. - №175. - P. 253-271.

69. Emanuelsson H., Carlberg M., Lowkvist B. Presence of serotonin in early chick embryos // Cell Differ. 1988. - №24. - P. 191-199.

70. Epand, R. M., Maekawa, S., Yip, C. M., and Epand, R. F., Protein-induced formation of cholesterol-rich domains. // Biochemistry.- 2001.- №40.-P.10514-10521.

71. Erspamer V. and Asero B. Identification of enteramine, specific hormone of enterochromaffin cells, as 5-hydroxytryptamine // Nature. 1952. -№169.-P. 800-801.

72. Fadool D. A., Cobb S. J., Kass-Simon G. Liquid chromatographic procedures for the analysis of compounds in the serotonergic and octopamine pathways of lobster haemolymph // J Chromatogr. 1988. - №452. - P. 491-501.

73. Fargin A., Raymond J. R., Regan J. W., Cotecchia S., Lefkowitz R. J., Caron M. G. Effector coupling mechanisms of the cloned 5-HT1A receptor // J Biol Chem. 1989. - №264. - P. 14848-14852.

74. Feng B., Schwarz H., Jesuthasan S. Furrow-specific endocytosis during cytokinesis of zebrafish blastomeres // Exp. Cell. Res. 2002. - 279(1). - P. 1420.

75. Fiorica-Howells E„ Hen R., Gingrich J., Li Z., Gershon M. D. 5-HT(2A) receptors: location and functional analysis in intestines of wild-type and 5

76. HT(2A) knockout mice // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2002. -282(5).-P. 877-893.

77. Fong P. P., Deguchi R., Kyozuka K. Serotonergic Ligands Induce Spawning but not Oocyte Maturation in the Bivalve Mactra chinensis from Central Japan // Biol Bull. 1996. - 191(1). - P. 27-32.

78. Fong P. P., Kyozuka K., Abdelghani H., Hardege J. D., Ram J. L. In vivo and in vitro induction of germinal vesicle breakdown in a freshwater bivalve, the zebra mussel Dreissena polymorpha (Pallas) // J Exp Zool. 1994. -269(5). -P. 467- 474.

79. Fujiwara T., Nakada K., Shirakawa H., and Miyazaki S. Development of inositol trisphosphate-induced calcium release mechanism during maturation of hamster oocytes // Dev Biol. 1993. - №156. - P. 69-79.

80. Fukumoto T., Blakely R. D., Levin M. Serotonin transporter function is a novel element of left-right patterning // J Dev Neurosci. 2005a. - №27. - P. 349-363.

81. Fukumoto T., Kema I. P., Levin M. Serotonin signaling is a very early step in patterning of the left-right axis in chick and frog embryos // Curr Biol. -2005b. №15. - P. 794-803.

82. Gerhardt C. C„ Leysen J. E., Planta R. J., Vreugdenhil E., Van Heerikhuizen H. Functional characterisation of a 5-HT2 receptor cDNA cloned from Lymnaea stagnalis. // Eur J Pharmacol. 1996. - 311(2-3). - P. 249-58.

83. Gerschenfeld H. M., Stefani E. 5-Hydroxytryptamine receptors and synaptic transmission in molluscan neurons // Nature. 1965. - №205. - P. 1216-1218.

84. Gobet I., Durocher Y., Leclerc C., Moreau M. and Guerrier P. Reception and transduction of the serotonin signal responsible for meiosis reinitiation in oocytes of the Japanese clam Ruditapes philippinarum // Dev. Biol. 1994. -№164. - P. 540-549.

85. Goldman J. E., Schwartz J. H. Metabolism of (3H)serotonin in the marine mollusc, Aplysia californica // Brain Res. 1977. - №136. - P. 77-88.

86. Grailhe R., Grabtree G. W., Hen R. Human 5-HT(5) receptors: the 5-HT(5A) receptor is functional but the 5-HT(5B) receptor was lost during mammalian evolution // Eur J Pharmacol. 2001. - 418(3). - P. 157-67.

87. Guerrier P., Durocher Y., Gobet I., Leclerc C., Moreau M. Reception and transduction of the serotonin signal responsible for oocyte meiosis reinitiation in bivalves // Invert Reprod Dev. 1996. - 30(1-3). - P. 39^15.

88. Guerrier P., Ledlerc-David C., Moreau M. Evidence for the involvement of internal calcium stores during serotonin-induced meiosis reinitiation in oocytes of the bivalve mollusc Ruditapes philippinarum // Dev Biol. 1993. - №159. - P. 474-484.

89. Guilluy C., Rolli-Derkinderen M„ Tharaux P. L., Melino G., Pacaud P., Loirand G. Transglutaminase-dependent RhoA activation and depletion by serotonin in vascular smooth muscle cells // J Biol Chem. 2007. -282(5). - P. 2918-2928.

90. Guthrie P. B., Neuhoff V., Osborne N. N. Monoamine oxidase activity in Helix pomatia // Experimentia. 1975. - №31. - P. 775-776.

91. Hamalainen M., Kohonen J. Studies on the effect of monoamine antagonists on the morphogenesis of the newt // International J Dev Biol. -1989. -№33.-P. 157-164.

92. Hamdan F. F., Ungrin M. D., Abramovitz M., Ribeiro P. Characterization of a novel serotonin receptor from Caenorhabditis elegans:cloning and expression of two splice variants // J Neurochem. 1999. - №72. -P.1372-1383.

93. Hayashi S., Murdock L. L., Florey E. Octopamine metabolism in invertebrates (Locusta, Astacus, Helix): evidence for N-acetylation in arthropod tissues // Comp Biochem Physiol C. 1977. - №58. -P. 183-91.

94. Hekmatpanah C. R., Peroutka S. J. 5-Hydroxytryptamine uptake blockers attenuate the 5-hydroxytryptamine-releasing effect of 3,4-methylenedioxymethamphetamine and related agents // Eur J Pharmacol. 1990. - 177(1-2).-P. 95-98.

95. Hinckley M., Vaccari S., Horner K., Chen R., Conti M. The G-protein-coupled receptors GPR3 and GPR12 are involved in cAMP signaling and maintenance of meiotic arrest in rodent oocytes // Devel Biol. 2005. - 287 (2). -P. 249-261.

96. Hirai S., Kishimoto T., Kadam A. L., Kanatani H., Koide S.S. Induction of spawning and oocyte maturation by 5-hydroxytryptamine in the surf clam // J Exp Zool. 1988. - №245. - P. 318-321.

97. Hiripi L., Salanki J. The role of monoamine oxidase in the inactivation of serotonin in the nervous system and other tissues of Anodonta cygnea L // Biol Tihany. 1971. - №38. - P. 31-38.

98. Il'kova G., Rehak P., Vesela J., Cikos S„ Fabian D., Czikkova S., Koppel J. Serotonin localization and its functional significance during mouse preimplantation embryo development // Zygote. 2004. - 12(3). - P. 205-213.

99. Isaac R. E., Muimo R., MacGregor A. N. N-Acetylation of serotonin, octopamine and dopamine by adult Brugia pahangi // Mol Biochem Parasitol. -1990.-№43.-P. 193-8.

100. Ivanenkov V.V., Meshcheryakov V.N., Martynova L.E. Surface polarization in loach eggs and two-cell embryos: correlations between surface relief, endocytosis and cortex contractility // Int. J. Dev. Biol. 1990. - 34(3). -P. 337-349.

101. Ivashkin E., Khabarova M., Voronezhskaya E. Serotonin transport and synthesis systems in invertebrate early development: functional analysis on Bivalve model // Acta Biologica Hungarica. 2012. - №63 (Suppl. 2). - P. 341344.

102. Iwamatsu T., Toya Y., Sakai N., Terada Y., Nagata R., and Nagahama Y. Effect of 5-hydroxytryptamine on steroidogenesis and oocyte maturation in pre-ovulatory follicles in the medaka Oryzias latipes // Dev Growth Diff. 1993. - №36. - P. 625-630.

103. Jeitner T. M., Matson W. R., Folk J. E., Blass J. P., Cooper A. J. L. Increased levels of gamma-glutamylamines in Huntington disease CSF // Journal of Neurochem. 2008. - 106(1). - P. 37-44.

104. Johansson C., Smedh C., Partonen T., Pekkarinen P., Paunio T., Ekholm J., Peltonen L., Lichtermann D., Palmgren J., Adolfsson R., Schalling M. . Seasonal affective disorder and serotonin-related polymorphisms. // Neurobiol Dis. 2001. - 8(2)-P. 351-7.

105. Juorio A. V., Killick S. W. Monoamines and their metabolism in some mollusks // Comp Gen Pharmacol. 1972. - №3. - P. 283-295.

106. Kaufman W. R., Sloley B. D. Metabolism of dopamine by the ixodid tick, Amblyomma hebraeum: a monoamine oxidase (MAO)-mediated inactivation // Insect Biochem Mol Biol. 1996. - №26. - P. 101-109.

107. Kennedy M. B. Products of biogenic amine metabolism in the lobster: sulfate conjugates // J Neurochem. 1978. - №30. - P. 315-320.

108. Khan I.A, Thomas P. Seasonal and daily variations in the plasma gonadotropin II response to a LHRH analog and serotonin in Atlantic croaker (Micropogonias undulatus): evidence for mediation by 5-HT2 receptors. // J Exp Zool -1994.-269(6)-P. 531-7.

109. Kim S. W„ Lee Z. W„ Lee C„ Im K. S„ Ha K. S. The role of tissue transglutaminase in the germinal vesicle breakdown of mouse oocytes // Biochem Biophys Res Commun. 2001. - 286(2). - 229-34.

110. Koshtoyants K. S., Buznikov G. A., Manukhin B. N. The possible role of 5-hydroxytryptamine in the motor activity of embryos of some marine gastropods // Comp. Biochem. Physiol. 1961. - №3. - P. 20-6.

111. Krantic S., Dube F., Quirion R., Guerrier P. Pharmacology of the serotonin-induced meiosis reinitiation in Spisula solidissima oocytes // Dev. Biol. — 1991. — №146.-P. 491^198.

112. Krantic S., Guerrier P., Dube F. Meiosis reinitiation in surf clam oocytes is mediated via a 5-hydroxytryptamine serotonin membrane receptor and a vitellin envelope-associated high affinity binding site // J. Biol. Chem. 1993. - №268. - P. 7983-7989.

113. Kyozuka K., Deguchi R., Yoshida N. and Yamashita M. Change in intracellular Ca2+ is not involved in serotonin-induced meiosis reinitiation from the first prophase in oocytes of the marine bivalve Crassostrea gigas // Dev. Biol. 1997. -№182.-P. 33-41.

114. Lanfumey L. and Hamon M. 5-HT1 receptors // Curr Drug Targets CNS Neurol Disord. 2004. - 3(1). - P. 1-10.

115. Launay J. M., Birraux G., Bondoux D., Callebert J., Choi D.-S., Loric S., Maroteaux L. Ras involvement in signal transduction by the serotonin 5-HT2B receptor //J.Biol. Chem.- 1996. №271. - P. 3141-3147.

116. Lawrence A. J. and Soame J. M. The endocrine control of reproduction in Nereidae: a new multi-hormonal model with implications for their functional role in a changing environment // Phil. Trans. R. Soc. B. 2009. - 364(1534). - P. 3363-3376.

117. Lenglet S., Louiset E., Delarue C., Vaudry H., Contesse V. Involvement of T-type calcium channels in the mechanism of action of 5-HT in rat glomerulosa cells: a novel signaling pathway for the 5-HT7 receptor // Endocr Res. 2002. - №28. - P. 651-655.

118. Levin M., Buznikov G. A., Lauder J. M. Of minds and embryos: left-right asymmetry and the serotonergic controls of pre-neural morphogenesis // Dev Neurosci. 2006. - 28(3). - P. 171-185.

119. Liu Y. L., Suzuki Y. J., Day R. M., Fanburg B. L. Rho kinase-induced nuclear translocation of ERK1/ERK2 in smooth muscle cell mitogenesis caused by serotonin // Circ. Res. 2004. - 95(6). - P. 579-586.

120. Loric S., Maroteaux L., Kellermann O., Launay J. M. Functionnal serotonin-2B receptors are expressed by a teratocarcinoma-derived cell line during serotoninergic differentiation // Mol. Pharmacol. 1995. - №47. - P. 458-466.

121. Lovenberg W., Jequier E., Sjoerdsma A. Tryptophan hydroxylation: measurement in pineal gland, brainstem and carcinoid tumor // Science. 1967. -№155.-P. 217-219.

122. Mair K. M., MacLean M. R., Morecroft I., Dempsie Y., Palmer T. M. Novel interactions between the 5-HT transporter, 5-HT1B receptors and Rho kinase in vivo and in pulmonary fibroblasts // Br J Pharmacol. 2008. -155(4). - P. 606-16.

123. Malikina K. D., Shishov V. A., Chuvelev D. I., Kudrin V. S., Oleskin A. V. Regulatory role of monoamine neurotransmitters in Saccharomyces cerevisiae cells. // Applied Biochemistry and Microbiology. 2010. - 46(6). - P. 620-625.

124. Manivet P., Mouillet-Richard S., Callebert J., Nebigil C. G., Maroteaux L„ Hosoda S., Kellermann O., Launay J. M. PDZ-dependent activation of nitric-oxide synthases by the serotonin 2B receptor // J Biol Chem. 2000. - №275. - P. 93249331.

125. Manukhin B. N., Buznikov G. A. A new biological method of quantitative determination of serotonin // Sechenov J Physiol. 1960. - №46. - P. 1357-1361.

126. Maricq, A.V., Peterson, A.S., Brake, A.J., et al., Primary structure and functional expression of the 5-HT3 receptor, a serotonin-gated ion channel. // Science. 1991,- №254.- P. 432-437.

127. Marin P., Chanrion B., Bockaert J. Quand deux molécules impliquées dans la régulation de l'humeur se rencontrent. Modulation réciproque du transporteur de la sérotonine et de la NO-synthase neuronale // Medecine/Sciences. 2007. - №23. - P. 554-555.

128. Mayorova T. D., Kach J., Kosevich I. A. Pattern of serotonin-like immunoreactive cells in scyphozoan and hydrozoan planulae and their relation to settlement // Acta Zoologica. Epub: 2013 Feb 14. DOI: 10.1111/azo. 12023

129. Mayorova T. D., Kosevich I. A. Serotonin-immunoreactive neural system and contractile system in the hydroid Cladonema (Cnidaria, Hydrozoa) // Invert Neurosci. -Epub: 2013 Mar 21. DOI: 10.1007/s 10158-013-0152-2

130. Mayorova T.D., Kosevich I.A., Melekhova O.P. On some features of embryonic development and metamorphosis of Aurelia aurita (Cnidaria, Scyphozoa) // Russ. J. Dev. Biol. 2012. - 43(5). - P. 271-85.

131. McCaman M. W., Stetzler J., Clark B. Synthesis of y-glutamyldopamine and other peptidoamines in the nervous system of Aplysia californica // J Neurochem. — 1985.-№45.-P. 1828-35.

132. McCaman R. E., Dewhurst S. A. Metabolism of putative transmitters in individual neurons of Aplysia californica. Acetylcholinesterase and catechol-O-methyl transferase // J Neurochem. 1971. - №18. - P. 1329-1335.

133. McGowan K., Guerina V., Wicks J., Donowitz M. Secretory hormones of Entamoeba histolytica // Ciba Found Symp. 1985. - №112. - P. 139-54.

134. Miyazaki S., Katayama Y., Swann K. Synergistic activation by serotonin and GTP analogue and inhibition by phorbol ester of cyclic Ca2+ rises in hamster eggs // J Physiol. 1990. - 426(1). - P. 209-227.

135. Morecroft I., Dempsie Y., Bader M., Walther D. J., Kotnik K., Loughlin L., Nilsen M., MacLean M. R. Effect of tryptophan hydroxylase 1 deficiency on the development of hypoxia-induced pulmonary hypertension // Hypertension. 2007. -49(1).-P. 232-236.

136. Murphy D. L., Lerner A., Rudnick G., Lesch K. P. Serotonin transporter: gene, genetic disorders, and pharmacogenetics // Mol. Interv. 2004. - 4(2). - P. 109-123.

137. Nagy T., Elekes K. Ultrastructure of neuromuscular contacts in the embryonic pond snail Lymnaea stagnalis L // Acta. Biol. Hung. 2002. - 53(1-2). - P. 125-139.

138. Nebigil C.G., Launay J.-M., Hickel P., Tournois C., Maroteaux L. 5-Hydroxytryptamine 2B receptor regulates cell-cycle progression: cross talk with tyrosine kinase pathways // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. - 97 (6). - P. 25912596.

139. Neilson L., Andalibi A., Kang D., Coutifaris C., Strauss 3rd J. F., Stanton J. A., Green D. P. Molecular phenotype of the human oocyte by PCR-SAGE // Genomics. 2000. - 63(1). - P. 13-24.

140. Nelson D. L. 5-HT5 receptors //Curr Drug Targets CNS Neurol Disord. -2004. 3(1). - P. 53-68.

141. Nichols E. D. Hallucinogens // Pharmacology & Therapeutics. 2004. -№101.-P. 131- 181.

142. Nicotra A. A radiochemical evaluation of mitochondrial monoamine oxidase activity towards serotonin in sea urchin eggs and embryos // Int J Invert Reprod. 1982. - №5. - P. 101-105.

143. Nicotra A., Pierucci F., Parvez H., Senatori O. Monoamine oxidase expression during development and aging // Neurotoxicology. 2004. - 25(1-2). - P. 155-65.

144. Nicotra A., Senatori O. Occurrence of type A and type B monoamine oxidase activities in toad egg mitochondria // Comp Biochem Physiol C. 1984. - 78(2). — P. 353-6.

145. Nicotra A., Senatori O. Some characteristics of mitochondrial monoamine oxidase activity in eggs of carp (Cyprinus carpio) and rainbow trout (Salmo gairdneri) // Comp Biochem Physiol C. 1989. - 92(2). - P. 401-4.

146. Nicotra A., Serafino A. L., Senatori O. Monoamine oxidase activity in tissues of the starfish Marthasterias glacialis // Comp Biochem Physiol C. 1986. - №84. - P. 195-197.

147. Nicotra A., Serafino A., Arizzi M. Deprenyl, an inhibitor of monoamine oxidase B, delays the first two mitotic cycles of sea urchin eggs // Dev Growth Differ. -1989.-№31.-P. 17-21.

148. Nikishin D. A., Kremnyov S. V., Konduktorova V. V., Shmukler Y. B. Expression of serotonergic system components during early Xenopus embryogenesis // Int J Dev Biol. 2012b. - 56(5). - P. 385-91.

149. Nikishin D.A., Semenova M.N., Shmukler Yu. B. Expression of transmitter receptor genes in early development of sea urchin Paracentrotus lividus // Rus. J. Dev. Biol.-2012a. -43(3). -P. 181-184

150. Numanoi N. Studies on the fertilization substance. V. Distribution of acetycholine esterase in egg particles of the sea urchin, Hemicentrotus pulcherrhimus // Scient. Papers Coll. Gen. Educ. Univ. Tokyo. 1955. - №5. - P. 37-41.

151. Osada M., Nakata A., Matsumoto T., Mori K. Pharmacological characterization of serotonin receptor in the oocyte membrane of bivalve molluscs and its formation during oogenesis // J Exp Zool. 1998. - №281. -P. 124-131.

152. Osanai K. and Kuraishi R. Response of oocytes to meiosis-inducing agents in pelecypods // Bull Mar Biol Stn Asamushi, Tohoku Univ. 1988. -№18. - P. 45-56.

153. Osanai K. In vitro induction of germinal vesicle breakdown in oyster oocytes // Bull Mar Biol Stn Asamushi, Tohoku Univ. 1985. - №18. - P. 1-9.

154. Osborne N. N., Cottrell G. A. Occurrence of noradrenaline and metabolites of primary catecholamines in the brain and heart of Helix // Comp Gen Pharmacol. -1970.-№1.-P. 1-10.

155. Pani A. K., Anctil M. Quantitative survey of biogenic amines, their precursors and metabolites in the coelenterate Renilla koellikeri // Biogenic Amines. 1994. -№10.-P. 161-180.

156. Pani A. K., Croll R. P. Pharmacological analysis of monoamine synthesis and catabolism in the scallop, Placopecten magellanicus // Gen Pharmacol. 1998. - №31. - P. 67-73.

157. Pennati R., Groppelli S., Sotgia C., Candiani S., Pestarino M., De Bernardi F. Serotonin localization in Phallusia mammillata larvae and effects of 5-HT antagonists during larval development // Dev Growth Differ. 2001. - 43(6). - P. 647-56.

158. Pfannenstiel H.-D., Schlawny A., Hamann T„ Muller M„ Rhode B„ Spiehl D. Dopamine and male/female differentiation in a hermaphroditic polychaete (Ophryotrocha puerlisis) // Prog Clin Biol Res. 1990. - №342. - P. 219-25.

159. Piesiewicz A., Kedzierska U., Podobas E., Adamska I., Zuzewicz K., Majewski P. M. Season-dependent postembryonic maturation of the diurnal rhythm of melatonin biosynthesis in the chicken pineal gland. // Chronobiol Int. 2012. - 29(9). -P. 1227-38.

160. Pintar J. E., Maxwell G. D., Breakefield X. O. Characterization of monoamine oxidase activity during early stages of quail embryogenesis // Int. J. Dev. Neurosc. -1983,- 1(1). -P. 49-57.

161. Praschak-Rieder N., Willeit M. Imaging of seasonal affective disorder and seasonality effects on serotonin and dopamine function in the human brain. // Curr Top Behav Neurosci. 2012. - №l 1 - P. 149-67.

162. Ramamoorthy S., Samuvel D. I., Buck E. R., Rudnick G., Jayanthi L. D. Phosphorylation of threonine residue 276 is required for acute regulation of serotonin transporter by cyclic GMP // J Biol Chem. 2007. - №282. - P. 11639-11647.

163. Rodgers W., Glaser M. Characterization of lipid domains in erythrocyte membranes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. - 88(4). - P. 1364-1368.

164. Rothman R. B., Baumann M. H. Therapeutic and adverse actions of serotonin transporter substrates // Pharmacol Ther. 2002. - 95(1). - P. 73-88.

165. S.-Rozsa K., Graul C. Is serotonin responsiblefor the stimulative effect of the extracardiac nerve in Helix pomatia? // Ann. Biol. Tihany. 1964. - №31. -P. 85-96.

166. Sakharov D. A. Integrative function of serotonin common to distantly related invertebrate animals / Early Brain. // Ed. by Gustafsson M, Reuter M. Abo, Abo Akademi Press, 1990. - P. 73-88.

167. Sakharov D. A. The long path of the snail // Neurosc. Behav. Physiol. 1994. -24(1).-P. 1-4.

168. Sakharov D. A. Use of transmitter precursors in gastropod neuroethology / Ed. by Kits KS, Boer HH, Joose J. // Molluscan neurobiology. Proc 3rd Symp Mollusc Neurobiol. Amsterdam, North-Holland. 1991. - P. 236-242.

169. Saudou F, Hen R. 5-Hydroxytryptamine receptor subtypes in vertebrates and invertebrates.// Neurochem Int.- 1994,- V.25, №6.- P.503-32.

170. Schaeffer H. J., Sirotkin A. V. Melatonin and serotonin regulate the release of insulin-like growth factor-I, oxytocin and progesterone by cultured human granulosa cells // Exp Clin Endocrinol Diabetes. 1997. - 105(2). -P. 109-12.

171. Schaerlinger B., Launay J. M., Vonesch J. L., Maroteaux L. Gain of affinity point mutation in the serotonin receptor gene 5-HT2Dro accelerates germband extension movements during Drosophila gastrulation // Dev Dyn. 2007. - 236(4). - P. 991-999.

172. Schnaitman C., Erwin V. G., Greenawalt J. W. The submitochondrial localization of monoamine oxidase. An enzymatic marker for the outer membrane of rat liver mitochondria // J Cell Biol. 1967. - 32(3). - P. 719-35.

173. Senatori O., Nicotra A. Mitochondrial monoamine oxidase activity during preneural developmental stages of Bufo bufo // Comp Biochem Physiol C. 1985. — 81(2).-P. 319-21.

174. Senatori O., Nicotra A., Scopelliti R. Monoamine oxidase activity in embryos of pike (Esox lucius) // Comp Biochem Physiol C. 1990. - 96(1). - P. 87-90.

175. Shenker A., Maayani S., Weinstein H., Green J. P. Pharmacological characterization of two 5-hydroxytryptamine receptors coupled to adenylate cyclase in guinea pig hippocampal membranes // Mol Pharmacol. 1987. - №31. — P. 357-367.

176. Shilling F., Mandel G., Jaffe L. A. Activation by serotonin of starfish eggs expressing the rat serotonin lc receptor // Cell Regul. 1990. - 1(6). -P. 465-469.

177. Shishov V. A., Kirovskaya T. A., Kudrin V. S., Oleskin A. V. Amine neuromediators, their precursors, and oxidation products in the culture of Escherichia coli K-12. // Applied Biochemistry and Microbiology. 2009. - 45(5). - P. 494-497.

178. Sirotkin A. V., Schaeffer H. J. Direct regulation of mammalian reproductive organs by serotonin and melatonin // J Endocrinol. 1997. -154(1). - P. 1-5.

179. Sloley B. D. Metabolism of Monoamines in Invertebrates: The Relative Importance of Monoamine Oxidase in Different Phyla // NeuroToxicology. 2004. -25(1-2).-P. 175-183.

180. Sloley B. D. y-Glutamyl conjugation of 5-hydroxytryptamine (serotonin) in the earthworm (Lumbricus terrestris) // Neurochem Res. 1994. - №19. - P. 217-222.

181. Sloley B. D., Goldberg J. I. Determination of y-glutamyl conjugates of monoamines by means of high-performance liquid chromatography with electrochemical detection and application to gastropod tissues // J Chromatogr. — 1991.- №567. P. 49-56.

182. Sloley B. D., Juorio A. V., Durden D. A. High performance liquid chromatographic analysis of monoamines and their y-glutamyl conjugates in the brain and other tissues of Helix aspersa (Gastropoda) // Cell Mol Neurobiol. 1990. - №10.- P. 175-92.

183. Squire L. R., Kandel E. R. Memory: From Mind to Molecules. Roberts & Co. Greenwood Village, 2008. P. 256.

184. Strieker S. A., Smythe T. L. 5-HT causes an increase in cAMP that stimulates, rather than inhibits, oocyte maturation in marine nemertean worms // Development. -2001. №128. - P. 1415-1427.

185. Strieker S. A., Smythe T. L. Multiple Triggers of Oocyte Maturation in Nemertean Worms: The Roles of Calcium and Serotonin // J Exp Zool. — 2000. -№287.-P. 243-261.

186. Szasz R., Dale G. L. Thrombospondin and fibrinogen bind serotonin-derivatized proteins on COAT-platelets // Blood. 2002. - 100(8). - P. 2827-2831.

187. Thomas D. R. and Hagen J. J. 5-HT7 receptors // Curr Drug Targets CNS Neurol Disord. 2004. - 3(1) - P. 81-90.

188. Tilakaratne N., Friedman E. Genomic responses to 5-HT1A or 5-HT2A/2C receptor activation is differentially regulated in four regions of rat brain // Eur J Pharmacol. 1996. - №307. - P. 211 -217.

189. Toneby M. Functional Aspects of 5-Hydroxytryptamine in Early Embryogenesis of the Sea Urchin Paracentrotus lividus // Wilhelm Roux's Archives. -1977. №181. - P. 247-259.

190. Torres G. E., Gainetdinov R. R., Caron M. G. Plasma membrane monoamine transporters: structure, regulation and function // Nat. Rev. Neurosci. — 2003. — 4(1). -P.13-25.

191. Tournois C., Mutel V., Manivet P., Launay J. M., Kellermann O. Cross-talk between 5-hydroxytryptamine receptors in aserotonergic cell line. Involvement of arachidonic acid metabolism // J Biol Chem. 1998. - 273(28). - P. 17498-17503.

192. Twarog B. M., Page I. C. H. Serotonin content of some mammalian tissues and urine and a method for its determination // Am J Physiol. 1953. —175(1). — P. 157-61.

193. Vekhova E., Ivashkin E., Yurchenko O., Chaban A., Dyachuk V., Khabarova M., Voronezhskaya E. Modulation of Mytilus trossulus (Bivalvia: Mollusca) larval survival and growth in culture // Acta Biologica Hungarica. — 2012. №63(Suppl. 2). - P. 354-358.

194. Vesela J., Rehak P., Mihalik J., Czikkova S., Pokorny J., Koppel J. Expression of serotonin receptors in mouse oocytes and preimplantation embryos // Physiol. Res. -2003. 52(2). - P. 223-228.

195. Voronezhskaya E. E., Khabarova M. Y., Nezlin L. P. Serotonin overproduction induces exogastrulation in both invertebrate and vertebrate embryos // 30th Gottingen Neurobiology Conference. 2005. - 279B.

196. Voronezhskaya E., Khabarova M., Ivashkin E. Delayed action of serotonin in molluscan development // Acta Biologica Hungarica. 2012. -№63(Suppl. 2). - P. 336-340.

197. Walentek P., Beyer T., Thumberger T„ Schweickert A., Blum M. ATP4a is required for Wnt-dependent Foxjl expression and leftward flow in Xenopus left-right development // Cell Rep. 2012. - 1(5). - P. 516-27.

198. Wallace J. A. Monoamines in the early chick embryo: demonstration of serotonin synthesis and the regional distribution of serotonin-concentrating cells during morphogenesis // Am J Anat. 1982. - 165(3). - P. 261-76.

199. Wang C. C„ Billett E., Borchert A., Kuhn H., Ufer C. Monoamine oxidases in development. // Cell Mol Life Sci. 2013. - 70(4). - P. 599-630.

200. Wang L. H., Rothberg K. G., Anderson R. G. Mis-assembly of clathrin lattices on endosomes reveals a regulatory switch for coated pit formation // J. Cell. Biol. 1993. - 123(5). - P. 1107-1117.

201. Watts S. W., Priestley J. R., Thompson J. M. Serotonylation of vascular proteins important to contraction // PLoS One. 2009. - 4(5):e5682.

202. Westerfield M. The zebrafish book. A guide for the laboratory use of zebrafish. Eugene. University of Oregon Press. 2007.

203. Westermann B., Schipp R. Cytological and enzyme-histochemical investigations on the digestive organs of Nautilus pompilius (Cephalopoda, tetrabranchiata) // Cell Tiss Res. 1998. - №293. - P. 327-336.

204. Woolley M. L., Marsden C. A., Fone K. C. 5-HT6 receptors // Curr Drug Targets CNS Neurol Disord. 2004. - 3(1). - P. 59-79.

205. Young R. T. Stimulation of spawning in the mussel (Mytilus californianus) // Ecology. 1945. - 26(1). - P. 58-69.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.