Морфофункциональные показатели печени нутрий в постнатальном онтогенезе тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.02, кандидат биологических наук Слинько, Марина Сергеевна

  • Слинько, Марина Сергеевна
  • кандидат биологических науккандидат биологических наук
  • 2007, Ставрополь
  • Специальность ВАК РФ16.00.02
  • Количество страниц 166
Слинько, Марина Сергеевна. Морфофункциональные показатели печени нутрий в постнатальном онтогенезе: дис. кандидат биологических наук: 16.00.02 - Патология, онкология и морфология животных. Ставрополь. 2007. 166 с.

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Слинько, Марина Сергеевна

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. МОРФОЛОГИЯ ПЕЧЕНИ

1.1.1. Структурно-метаболическая характеристика ацинуса

1.1.2. Клетки синусоидных сосудов печени

1.2. РОЛЬ ПЕЧЕНИ В ОБМЕНЕ ВЕЩЕСТВ

2. СОБСТВЕННЫ ЕИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ АНАЛИЗ 41 2.2.1 .Анатомо-топографические данные печени нутрий в различные возрастные периоды

2.2.2.Микроморфология печени нутрий в постнатальном онтогенезе а) Микроморфологическая характеристика печени нутрий однодневного возраста б) Микроморфология печени одномесячных нутрий в) Микроморфология печени трехмесячных нутрий г) Микроморфология печени шестимесячных нутрий д) Микроморфология печени девятимесячных нутрий е) Микроморфология печени двенадцатимесячных нутрий

2.2.3. Динамика гематологических показателей у нутрий в постнатальном онтогенезе

2.2.4. Динамика показателей обмена веществ у нутрий в постнатальном онтогенезе

3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

4. ВЫВОДЫ

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Патология, онкология и морфология животных», 16.00.02 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфофункциональные показатели печени нутрий в постнатальном онтогенезе»

Актуальность работы. Разведению нутрий в южных регионах Российской Федерации, в частности, в Ростовской области, Краснодарском и Ставропольском краях в последние годы уделяется большое внимание (С.П. Бондаренко, 2002; В.Н. Василенко, Л.П. Миронова, A.A. Миронова, 2003).

На динамическое изменение морфологического состава крови и показателей обмена веществ в отдельные периоды постнатального онтогенеза нутрий указывают работы В.А. Берестова (1981), Л.П. Мироновой (2003), Т.Н. Щебетовской (2003), но этот вопрос до конца не изучен.

Исследования морфофункционального состояния печени привлекают внимание специалистов по морфологии и клинической биохимии в связи с ее важной ролью в обмене веществ, синтезе белков и липопротеидов плазмы крови, конъюгации билирубина и образовании желчи, дезинтоксикационной и других важных функций (О.Г. Архипова, 1988; И.М. Рослый, Ю.А. Шуляк, 2004).

Несмотря на развитие гепатологии, вопросы анатомии печени нутрий, гематологических и биохимических показателей крови, характеризующих функциональное состояние этого органа, на каждом из этапов постнатального онтогенеза, остаются до конца не изученными.

Отсюда следует, что исследование морфофункциональных показателей печени и выяснение гематологических и биохимических показателей крови у йутрий послужит теоретической базой для разработки эффективных методов диагностики и профилактики заболеваний у этого вида животных, что имеет новизну не только в морфологии и физиологии животных, но и в гепатологии и биологии вообще.

Цель и задачи исследования. Целью исследования является изучение динамики морфофункциональных показателей крови и печени у нутрий в постнатальном онтогенезе. В соответствии с этим, перед нами были поставлены следующие задачи:

- описать анатомические и макроморфометрические данные печени нутрий в зависимости от пола в постнатальном онтогенезе;

- выяснить особенности микроструктуры печени нутрий в половозрастном аспекте; изучить константы морфофункциональных показателей крови, характеризующих функциональное состояние печени в постнатальном онтогенезе нутрий в зависимости от пола.

Научная новизна работы. Впервые, в отличие от других млекопитающих, у нутрий выявлено наличие семи долей в печени. Описаны морфометрические данные печени и каждой ее доли в отдельности в зависимости от возраста и пола. Выяснены особенности микроструктуры печени нутрий в половозрастном аспекте и изучена их динамика у самцов и самок нутрий в постнатальном онтогенезе. Определены константные морфофункциональные показатели крови, характеризующие функциональное состояние печени.

Теоретическая и практическая ценность работы. Полученные данные расширяют, дополняют и углубляют имеющиеся сведения о морфологии и функциональном состоянии печени нутрий в постнатальном онтогенезе.

Морфофункциональные показатели крови, полученные в результате исследований, могут использоваться в качестве константных при оценке здоровья, а также дают основание для прогнозирования заболеваний различной этиологии у нутрий.

Данные по морфологии и функциональному состоянию печени, показателям крови самцов и самок нутрий в постнатальном онтогенезе могут быть использованы в научных целях, при составлении руководств, чтении лекций и проведении лабороторно-практических занятий по общей биологии, морфологии, физиологии, биохимии, клинической диагностике, пушному звероводству в высших учебных заведениях биологического профиля.

Реализация результатов исследований. Основные результаты научных исследований вошли в отчеты по научно-исследовательской работе Ставропольского ГАУ за 2004-2007 гг.

Материалы исследований используются при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий, научных исследований в Ставропольском, Башкирском, Алтайском, Кубанском, Воронежском и Донском государственных аграрных университетах, в Самарской, Кабардино-Балкарской, Ульяновской, Ивановской, Костромской, Вятской и Ижевской государственных сельскохозяйственных академиях, в Смоленской государственной медицинской академии. Приняты к внедрению в лечебную и исследовательскую работу в ветеринарных клиниках города Ставрополя.

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены, обсуждены и получили положительную оценку на научных конференциях профессорско-преподавательского состава Ставропольского ГАУ (2004 - 2007 гг.), на международных научно-практических конференциях в Вятской ГСХА (2005 г.) и Ставропольском ГАУ (2007), на Всероссийской научно-практической конференции в Северном ГМУ (г. Архангельск, 2006).

Публикация. Основные положения диссертации изложены в 7 научных работах, 2 из них опубликованы в изданиях, входящих в «Перечень.» ВАК РФ: «Ветеринарный врач», «Экология человека».

Основные положения выносимые на защиту:

1. Динамика морфофункциональных показателей печени обусловлена возрастом и половой принадлежностью нутрий.

2. Гематологические и биохимические показатели крови, характеризующие функцию печени нутрий, меняются периодично и зависят от пола и возраста.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ Печень - самая крупная железа пищеварительного тракта. Трудно назвать другой орган с таким разнообразием функций, каким обладает печень (С.Д. Подымова, 1993).

Печень участвует практически во всех обменных процессах - водном и минеральном обмене, в обмене желчных кислот и желчеобразования, обмене гормонов, ферментов и обезвреживания токсинов, является центральным органом метаболизма белков, углеводов, липидов, витаминов, пигментов.

В связи с этим, в последнее время неуклонно возрастает интерес ученых к изучению функции печени в постнатальном онтогенезе, которая у нутрий изучена недостаточно.

1.1. МОРФОЛОГИЯ ПЕЧЕНИ Конфигурация печени зависит от формы тела животного. Это отчетливо выступает у любого представителя позвоночных. У змей печень в виде тяжа цилиндрической формы, а у млекопитающих брюшная область создает удобное вместилище для овальной или округлой печени (М.И. Урманов, 1974).

Желудок, кишечник, почка и другие топографически близкие органы оказывают влияние на форму печени. Они обусловливают наличие вдавлений (например, почечное ложе на печени млекопитающих, кишечные борозды на печени многих рыб, птиц и т. д.). Их постоянное воздействие на печень может привести к атрофии ее значительных отделов, например, сильно развитый желудок вызывает уменьшение левой доли у человека (Э.И. Борзяк и соавт., 1986). Воздействие этих органов приводит к образованию вырезок, борозд, насечек (висцеральная поверхность печени калана, настоящих и ушастых тюленей, моржа, расщепленность левого края печени кашалота и пр.), а также междолевых щелей (А. \Veimann, 1993).

Характерным видовым признаком печени млекопитающих является степень ее расщепленности на доли. Наличие междолевых щелей связано, по-видимому, с дыхательными экскурсиями диафрагмы и подвижностью тела животного, обусловливающими деформацию печени, которая облегчается автономным изменением конфигурации отдельных долей. Благодаря этому форма печени приспосабливается к требованиям деформирующих факторов (С. Мопп е1 а1., 1992).

У копытных и человека уменьшаются дыхательные экскурсии, а малоподвижное тело почти не оказывает на печень деформирующего влияния. У них отмечается различная степень срастания долей и фрагментов между собой, вплоть до образования компактного органа (человек, жвачные). У человека этому способствует расположение печени над другими органами брюшной полости, в связи с чем она почти не испытывает их сопротивления при каудальном смещении во время вдоха (А.Ф. Блюгер и соавт., 1982; О.Я. Карташова и соавт., 1989).

У плодов, новорожденных и детей грудного возраста печень обычно продолговатой или овальной формы с одинаковой (6,2x3,7X2,6 см) шириной и толщиной правой и левой долей. С 4-летнего возраста и старше преобладает треугольная форма, размеры долей печени увеличиваются, главным образом, за счет роста правой доли, разница в размерах между долями 2-3,5 см. В пожилом и старческом возрасте чаше встречается овальная форма печени (С.И. Катаев, 1982; Л.С. Князева и соавт., 2002).

Особенностью строения печени крыс является многодольчатость. Разные авторы выделяют у этих животных от 4 до 6 долей. Аналогичное строение имеет печень у некоторых других животных: кроликов, кошек, собак, мышей (Ф.К. Западнюк, 1974; А.Б. Трефилов, 1986).

Между правой и левой сагиттальными бороздами на висцеральной поверхности печени расположена соединяющая поперечная борозда в виде буквы «Н», называемая портальными воротами печени. У плодов и детей раннего возраста ворота всегда значительно смещены к заднему краю печени. У взрослых ворота располагались примерно посредине, отступя от заднего края на 7см, от переднего - на 8см (В.Э. Лашкевич с соавт., 1986).

Относительные размеры и масса печени подвержены значительным колебаниям в зависимости от возраста. Масса печени взрослого человека 13001800 г. Печень новорожденных и детей первого месяца жизни занимает 1/2 или 1/3 брюшной полости, составляя в среднем 1/18 массы тела, а у взрослых она составляет лишь 1/36 массы тела. Орган покрыт брюшиной со всех сторон, за исключением области ворот и части задней поверхности. Под ней располагается тонкая прочная фиброзная оболочка (глиссонова капсула), волокна которой входят в паренхиму органа, образуя его соединительный остов (А.Б. Трефилов, 1986; А.Ф. Блюгер, 1988).

J1.M. Бажанова (1975), изучая макро- и микроскопическую анатомию печени плодов крупного рогатого скота, установила, что в различные возрастные периоды весовой ее рост протекает неодинаково. В течение первой половины внутриутробного развития абсолютный вес печени резко нарастает к шестимесячному возрасту, а затем снижается. Развитие клеточных и тканевых структур печени начинается на ранних стадиях внутриутробного периода жизни, а дифференцировка продолжается в течение всего плодного периода.

Рядом исследователей (А.Д. Малов, 1971; J1.M. Бажанова, 1975; A.B. Жаров, 1975; Ш. Темиров, 1979; N. Liman, 1996; M.R. Narkewicz, G. Jones, D. Morales, 2000) доказано, что рост и развитие печени у крупного рогатого скота, овец и свиней находятся в закономерной зависимости от возраста.

Печень на своем вентральном крае имеет у большинства животных (собаки, свиньи, лошади) то более, то менее глубокие надрезы, отделяющие различной величины участки, называемыми долями печени. Однако не у всех млекопитающих (жвачные) доли ясно обрисованы (M.R. Narkewicz, G. Jones, D. Morales, 2000).

На висцеральной поверхности печени человека различают две сагиттальные борозды, или ямки. Из них в правой располагается желчный пузырь, а вверху задняя полая вена. В левой борозде проходит круглая связка. Эти борозды разделяют печень на правую долю, расположенную справа от желчного пузыря и полой вены, и левую долю, лежащую слева от круглой связки, и, наконец, среднюю долю, вклинивающуюся между желчным пузырем и круглой связкой. Средняя доля, расположенными на ней воротами печени, подразделяется на нижнюю квадратную долю и верхнюю хвостатую долю. От хвостатой доли вправо выступает, переходя в правую долю, хвостатый отросток, а около ворот сосочковый отросток (Э. И. Борзяк, 1986; А.Ф. Климов и соавт., 2003).

В отношении печени домашних животных можно выявить большое сходство в строении этого органа у жвачных и у человека.

У собак и кошек печень - достаточно большой орган, с глубокими вырезами. Правая и левая доли разделены на латеральные и медиальные части, квадратная доля резко обособлена. Хвостовая доля, кроме большого хвостового отростка, имеет сильно развитый сосцевидный отросток пирамидальной формы, который лежит в полости малого сальника. Желчный проток открывается вместе с протоком поджелудочной железы в двенадцатиперстную кишку (М.И. Лебедев, Н.В. Зеленский, 1995). На печени свиней существуют те же отношения, что и у собак, но квадратная доля имеет вид треугольника, так как нижний конец желчного пузыря и круглая связка сходятся друг с другом (А.Ф.Климов и соавт., 2003).

Совсем по-другому обстоит дело с печенью лошадей, лишенной желчного пузыря. В ней, благодаря надрезу на вентральном крае, можно выделить большую правую долю, а по локализации круглой связки - левую долю, распадающуюся на левую медиальную и левую латеральную доли, в средней доле отношения остаются обычные (А.Ф.Климов и соавт., 2003).

Печень всегда занимает определенное положение. У человека она расположена непосредственно под диафрагмой в эпигастральной области (В.В. Садовникова, И.М. Солопаева, H.A. Бобылёва, 1998). У одних млекопитающих (собак) печень лежит в левом и несколько больше в правом подреберье. У лошади она сильно сдвинута в правое подреберье, а у рогатого скота - всецело в данной области (А.Ф.Климов и соавт., 2003).

Особенности функции печени, через которую проходят все вещества, адсорбируемые кишечником, обусловили и своеобразие ее кровоснабжения. В норме в печень поступает около 1500 мл крови в 1 мин, то есть почти 1 мл на 1 г массы органа, или 25% минутного объёма сердца, хотя масса печени составляет около 2,5% массы тела. По воротной вене притекает 75% крови, по печеночной артерии - 25%, отток крови происходит по печеночным венам (A.C. Логинов, Л.И. Аруин, 1985).

Однако значение печеночной артерии для жизнедеятельности органа крайне велико. Богатая кислородом артериальная кровь необходима для жизнедеятельности печени, для осуществления многочисленных биохимических и энергетических процессов, уровень которых чрезвычайно высок и требует большого объема кислорода (Л.П. Воробьев и соавт.,1990).

Артериальное кровоснабжение печени осуществляется из общей печеночной артерии. Собственная печеночная артерия в воротах печени делится на правую и левую ветви. Обычно левая печеночная артерия кровоснабжает левую, квадратную и хвостовую доли печени. Правая печеночная артерия снабжает в основном правую долю печени и даёт артерию к желчному пузырю (С.Д. Подымова,1993).

Одна часть терминальных ветвей печеночной артерии формирует сплетение портальных трактов и снабжает кровью все его структуры, другая часть, как было отмечено выше, открывается в синусоиды. Следует отметить, что на основе ветвей печеночной артерии формируется перибилиарное сплетепие по ходу всех желчных протоков. Оно окружает все разветвления желчных ходов. Артериальная кровь из этого сплетения поступает в синусоиды и в портальные вены (A.C. Логинов, Л.И. Аруин, 1985).

Венозная система печени представлена приводящими и отводящими кровь венами. Основной приводящей веной является воротная. Отток крови из печени происходит по печеночным венам, впадающим в нижнюю полую вену (С.А. Симбирцев и соавт., 2000).

В воротной вене клапаны отсутствуют. В пределах ворот печени воротная вена разделяется на правую ветвь, которая снабжает правую долю печени, и левую ветвь, снабжающую левую, хвостовую и квадратную доли (А.П. Довганский, 1989).

В ткани печени воротная вена и печеночная артерия многократно разделяются на более мелкие сосуды: долевые, сегментарные, междольковые и вокругдольковые. На всем протяжении эти сосуды сопровождаются анологичными по названию желчными протоками. Вместе ветви воротной вены, печеночной артерии и желчные протоки составляют так называемые триады (A.C. Логинов, Л.И. Аруин, 1985).

Междольковые и вокругдольковые вены являются сосудами со слаборазвитой мышечной оболочкой. Однако в местах разветвления в их стенках наблюдаются скопления мышечных элементов, образующих сфинктеры. Соответствующие междольковые и вокругдольковые артерии относятся к сосудам мышечного типа. При этом артерии в несколько раз меньше по диаметру, чем рядом лежащие вены (С.Д. Подымова, 1993).

Центральными венами начинается система оттока крови от долек. По выходе из долек эти вены впадают в собирательные, или подцольковые вены, проходящие в междольковых перегородках, Подцольковые вены не сопровождаются артериями и желчными протоками, то есть не входят в состав триад. Центральные и подцольковые вены - сосуды безмышечного типа. Они сливаются и образуют ветви печеночных вен, которые в количестве 3-4 выходят из печени и впадают в нижнюю полую вену. Ветви печеночных вен имеют хорошо развитые мышечные сфинктеры, с помощью которых регулируется отток крови от долек и всей печени (Ф. Неттер, 2003).

Основой лимфатическим руслом у человека и животных являются первичные структурные элементы: капилляр, посткапилляр, лимфангион (0.51. Карташова, Л.Я. Максимова, 1989).

Выделяют три вида капилляров: сетевидные - самые распространённые, слепооканчивающиеся и петлеобразные. Количественное соотношение трёх видов лимфатических капилляров предопределяется функциональными потребностями печени в том или ином периоде жизнедеятельности организма (Ю.Е. Выренков., С.И. Катаев, 1988).

Зарубежные морфологи не склонны выделять посткапилляр как самостоятельную структуру и практически не упоминают в своих работах о нем как таковом (S. Magari et al., 1989; G. Hidden, 1999). Но тщательно проведенное исследование в данной области (С.И. Катаев, 1982, 1984) подтвердило реальное существование посткаппиляра в структуре лимфатического русла печени человека и животных.

Лимфангион - третья структурная единица лимфатического русла печени, которая регулирует транспорт лимфы в центральном направлении. В выполнении этой функции первостепенную роль играют клапаны сосудов, а также способность лимфангиона к спонтанной ритмической деятельности (P.C. Орлов и соавт.,1985). Совокупность последовательно расположенных друг за другом лимфангионов составляют лимфатический сосуд.

Таким образом, многочисленные варианты интегрирования структурно-функциональных единиц кровеносного и лимфатического русла печени дают самые разнообразные по своей архитектонике сети и сплетения, конструкция которых предопределяется строением и функцией органа.

Похожие диссертационные работы по специальности «Патология, онкология и морфология животных», 16.00.02 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Патология, онкология и морфология животных», Слинько, Марина Сергеевна

4. ВЫВОДЫ

1. Печень нутрий имеет семь долей: левая латеральная (lobus sinister lateralis), левая медиальная (lobus sinister medialis), квадратная (lobus quadratus), на которой располагается желчный пузырь, правая медиальная (lobus dexster medialis), правая латеральная (lobus dexster lateralis), четко дифференцированная хвостатая доля (lobus caudatus) и «хвостатый отросток» (pr. caudatus). В отличие от других млекопитающих от хвостатой доли полностью обособлена сосцевидная (сосочковая) доля (lobus papillaris).

2. Масса печени у самцов нутрий от живой массы тела у новорожденных составляет 5,56%, а в первый, третий, шестой, девятый и двенадцатый месяцы их жизни - 4,26%, 3,88%, 4,10%, 3,59% и 2,99%. У самок - 7,40%, 5,02%, 4,3%, 4,61%, 3,67% и 3,16%, соответственно.

3. У нутрий регистрируется неравномерный рост массы и объема печени в целом и каждой ее доли в отдельности. С рождения к двенадцатимесячному возрасту масса печени у самцов увеличилась в 29,43 раз, а ее объем - в 34,21 раз, а у самок масса возросла в 23,92 раз, а ее объем - в 26,59 раз.

4. В печени самцов и самок нутрий однодневного возраста балочная структура выражена возле центральной вены, имеются большие очаги экстрамедуллярного кроветворения. Гепатоциты преимущественно одноядерные, с ячеистой цитоплазмой, содержат ШИК-положительные вещества по периферии клетки и минимальное количество нуклеиновых кислот. ЯПО гепатоцитов у самцов составляет 0,157±0,004, а у самок - 0,182±0,010. Количество двуядерных клеток у самцов 2,28, а у самок - 2,34 на 100 гепатоцитов.

5. В одномесячном возрасте в гепатоцитах увеличилось суммарное количество нуклеиновых кислот, ШИК-положительные вещества находятся не только по периферии клеток, но и в центре, чаще встречаются двуядерные клетки (у самцов -13,01, у самок - 12,5 на 100 гепатоцитов). ЯПО гепатоцитов у самцов составляет 0,160±0,003, а у самок - 0,181 ±0,004.

6. В трехмесячном возрасте у самцов и самок нутрий печеночные дольки и триады сформированы, количество двуядерных клеток максимально (у самцов

35,44, а у самок - 33,60 на 100 клеток). В печени самцов количество нуклеиновых кислот и ШИК-положительных веществ значительно больше, чем у самок, а двуядерные клетки чаще имеют светлую цитоплазму. ЯПО гепатоцитов у самцов составляет 0,122±0,003, а у самок - 0,160±0,004.

7. В 6-месячном возрасте в гепатоцитах обнаружено меньшее количество ШИК-положительных веществ, но большее суммарное содержание нуклеиновых кислот, по сравнению с трехмесячными животными, их цитоплазма ячеистая (у самок таких клеток меньше). Коллагеновые волокна образуют каркас вокруг каждого гепатоцита. Двуядерных гепатоцитов у самцов - 30,60, у самок - 30,40 на 100 клеток. ЯПО гепатоцитов у самцов составляет 0,102±0,002, а у самок - 0,120±0,002.

8. В печени нутрий 9-месячного возраста у самцов больше светлых гепатоцитов, а у самок - темных. Обнаружено меньшее количество ШИК-положительных веществ и меньшее суммарное содержание нуклеиновых кислот, по сравнению с шестимесячными животными. Двуядерных гепатоцитов у самцов - 14,90, у самок -28,90 на 100 клеток. ЯПО гепатоцитов у самцов составляет 0,106±0,002, а у самок -0,127±0,003.

9. В печени нутрий 12-месячного возраста у самцов регистрируется преимущественное наличие светлых гепатоцитов, которые по размерам превышают темные, а у самок количественно темные гепатоциты значительно преобладают над светлыми. ШИК-положительных веществ и нуклеиновых кислот в гепатоцитах незначительно больше, чем у животных девятимесячного возраста. Двуядерных гепатоцитов у самцов - 20,43, у самок - 28,44 на 100 клеток. ЯПО гепатоцитов у самцов составляет 0,129±0,002, а у самок - 0,143±0,003.

10. С рождения к двенадцати месяцам жизни у самцов и самок нутрий содержание эритроцитов и лимфоцитов в крови постепенно увеличивается. Гематокритное число, уровень гемоглобина и содержание лейкоцитов до шестимесячного возраста изменяются с различной динамикой, а затем постепенно повышаются, в то время, как количество тромбоцитов, увеличиваясь к шести месяцам жизни, в последующем снижается.

11. Параметры белкового, азотистого, углеводного, минерального обменов и ферментативной активности крови в постнатальном онтогенезе у нутрий изменяются с различной периодичностью и амплитудой колебаний, обусловлены возрастом и половой принадлежностью. к

5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. Значения морфологических данных печени и морфофункциональных показателей крови могут использоваться практикующими врачами ветеринарной медицины при оценке здоровья нутрий.

2. Основные положения диссертации могут быть использованы при проведении научных исследований, обучении студентов вузов и колледжей ветеринарного профиля, а также при составлении монографий, учебных и справочных пособий.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Слинько, Марина Сергеевна, 2007 год

1. Алиев A.A. Обмен веществ у жвачных животных/ А.А Алиев. М.:НИЦ «Инженер», 1997.-419 с.

2. Архипова, О.Г. Методы исследования в профпатологии (биохимические)/ О.Г. Архипова с соавт.-М.: Медицина, 1988.-208 с.

3. Афанасьев, Ю.И. Гистология/ Ю.И. Афанасьев, H.A. Юрина, Е.Ф. Котовский и др. М.:Медицина, 2001.- 744 с.

4. Бажанова, JI.M. Макро- и микроскопическая анатомия печени плодов крупного рогатого скота в возрастном аспекте: Автореф. дисс.капд. сел-х наук./ JI.M. Бажанова.- Пермь, 1975.-22с.

5. Баранов, В.Н. Внутридольковое распределение активности синтеза альбумина в гепатоцитах нормальной и регенерирующей печени мышей/ В.Н. Баранов, B.C. Полторанина, А.И. Гусев// Бюлл. экспер. биол. -1986.-Т.101.- №2.- С.81-82.

6. Бекетова, Т.П. Синусоидальные клетки печени и их роль в патологических процессах/ Т.П. Бекетова, С.М. Секамова//Архив патологии.- 1983.- Т.45.-Вып.10.- С.83-88.

7. Берестов, В.А. Лабораторные методы оценки состояния пушных зверей/ В.А. Берестов.- Петрозаводск.: «Карелия», 1981 .-С. 151.

8. Бикхардт, К. Клиническая ветеринарная патофизиология. М.: «Аквариум ЛТД», 2001.- 400 с.

9. Блюгер, А.Ф. Печень/ Блюгер А.Ф., Валук В.А //БМЭ. 3-е изд. 1982. Т. 19. -С.153-159.

10. Блюгер, А.Ф. Практическая гепатология/ А.Ф. Блюгер, И.Н. Новицкий.-Рига.- 1984.-С.6.

11. Блюгер, А.Ф. Тайны и парадоксы печени. М.: Медицина, 1988. С.84-86.

12. Бобрик, И.И. Ультраструктурная организация эндотелиоцитов синусоидов печени человека в пренатальном периоде/ И.И. Бобрик, Е.А. Шевченко, Г.А. Алимов//Арх. анат.-1987.- Т.92.-Ж 6.- С. 43-46.

13. Бондаренко, С.П. Содержание нутрий/ С.П. Бондаренко.- М.: ООО «Издательство ACT»; Донецк: «Сталкер», 2002,- 207 с.

14. Борзяк, Э. И. Анатомия человека/ Э.И. Борзяк, В.Я. Бочаров, Л.И. Волкова. -М.: Медицина, 1986. Т.2.-С.

15. Василенко, В.Н Нутриеводство. Учебное пособие/ В.Н. Василенко, Л.П. Миронова, A.A. Миронова. ООО «Ростиздат», 2003. - 304 с.

16. Васильева, Е.А. Клиническая биохимия сельскохозяйственных животных. -М.: Россельхозиздат, 1982.-С. 10-18.

17. Верин, В.К. Основные закономерности гистогенеза синусоидных капилляров печени/ В.К. Верин// Функциональная морфология эмбрионального развития человека и млекопитающих.- Тр. 2-го МОЛГМИ.-1981.-Т.164.-С. 150-152.

18. Воробьёв, Л.П. Болезни печени и кровообращение/ Л.П. Воробьёв, И.В. Маев. М.: Знание, 1990. - 327с.

19. Гарнье, Ф. Методы биохимической оценки печени у собаки/ Ф. Гарнье// Ветеринар. 1999. - №3-4. - С. 26-28.

20. Гичев, С.У. Печень: адаптация, экология/ С.У. Гичев. Новосибирск: Наука, 1993. - С.345-367.

21. Голиков, А.Н. Физиология сельскохозяйственных животных/ А.Н. Голиков, Н.У. Базанова, З.К. Кожебеков и др. М.: Аропромиздат, 1991.-432 с.

22. Данилова, J1.A. Анализы крови и мочи/Л.А.Данилова.- СПб. 1999.-128с.

23. Довганский, А.П. Печень при экстремальных состояниях/ Довганский А.П. и др. Кишенев: Штиинца, 1989. - 324с.

24. Дробленков, A.B. Структура терминальных отделов желчевыводящих путей печени и дуктулярная гиперплазия/ А.В.Дробленков// Морфология. 1996. -№5.-С.96-100.

25. Елецкий, Ю.К. Влияние острой алкогольной интоксикации на распределение и активность сукцинатдегидрогеназы и цитохромоксидазы в печени крыс/ Ю.К. Елецкий//Арх. пат.- 1968. Т.ЗО. - №8. - С.64-66.

26. Жаров, A.B. Функциональная морфология печени высокопродуктивных коров в норме и при патологии обмена веществ: Автореф. дисс.д-ра ветеринар, наук./ A.B. Жаров. М., 1975. - 37 с.

27. Жирнова, A.A. Морфометрический анализ изменений гепатоцитов печени кроликов при экспериментальной гиперхолестеринемии и их обратимости/ A.A. Жирнова, Б.Я. Рыжавский, Е.В. Васильева// Бюлл. экспер. биол.-1986.-Т.101,- №5.- С.628-631.

28. Жукова, Л.Е. Аминокислотный состав целых растений зернофуражных культур в различные фазы их развития/ Л.Е. Жукова// Повышение продуктивности и племенных качеств сельск-х. ж-х: Сб. науч. тр./ Ставроп. ГСХА. Ставрополь, 1994. - С.96-99.

29. Зайцев, В.М. Прикладная медицинская статистика/ В.М. Зайцев, В.Т. Лифяндский, В.И. Маринкин. СПб.: ООО «Фолиант», 2003.- 432с.

30. Зуфаров, К.А. Ультраструктура стенки синусоида печени/К.А. Зуфаров, В.Б. ' Шнейвайс, Е.К. ШишоваУ/Арх. анат. 1970. - Т.58.- Вып. 3.- С.66-75.

31. Зуфаров, К.А. Цитоархитектоника гематопаренхиматозного барьера печени в норме и при нарушении оттока желчи/ К.А. Зуфаров, А.Ф. Садриддинов//Арх. анат. 1986. - Т.91.- №7. - С.85-91.

32. Ивашкин, В.Т. Болезни печени и желчевыводящих путей / В.Т. Ивашкина.

33. М.: ООО «Издат. Дом «М-Вести», 2002. С.251-311.

34. Имбс, Б.Г. Аминокислотное питание сельскохозяйственных животных и птиц и содержание важнейших аминокислот в кормах Ставрополья/ Б.Г. Имбс, Л.Е. Жукова, Н.З. Злыднев. Ставрополь, 1971.-30 с.

35. Исакова, В.К. Аминокислотный состав крови, ее сыворотки, органов и тканей при экспериментальном воспалении у кроликов и овец: Автореф. дисс.канд. биол. наук./ В.К. Исакова. Алма-Ата, 1975. - 22 с.

36. Западшок, Ф.К. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте/ Ф.К. Западнюк, Киев. «Вища школа», 1974. С.45-78.

37. Караганов, Я.Л. Цитоскелет эндотелиальных клеток, его функциональное > "iflwiue н методы исследования/Я.Л. Караганов, В.А. Миронов, A.A.

38. Миронов, С.А. Гусев//Арх. анат.- 1981.- Т.81.- Вып.9. С. 5-19.

39. Карпищенко, А.И. Медицинская лабораторная диагностика/ А.И. Карпищенко.- СПб.: «Интермедика», 2001. С.143.

40. Карташова, О.Я. Функциональная морфология печени/ О.Я. Карташова, Л.Я. Максимова, Рига: Зинатни, 1989. - С.7-63.

41. Кашуба, Э.А. Гистоэнзимологическая характеристика восстановительных процессов в печени при оксигенобаротерапии СС14-гепатоза: Тр. Горьковск. мед. ин-та/Э.А. Кашуба. 1975. - №66. - С. 106-109.

42. Квочко, А.Н. Динамика морфофункциональных показателей мочевыделительной системы и паренхиматозных органов мериносовых овец в норме и при уролитиазе: дисс.д-ра. биол. наук./ А.Н. Квочко. -Ставрополь, 2002. 380 с.

43. Климов, А.Ф. Анатомия домашних животных. Учебное пособие/ А.Ф. Климов. СПб.: Издательство «Лань», 2003. - 1040 с.

44. Князева, Л.С. Морфологические особенности постнатального развития печени при искусственном вскармливании/ Л.С.Князева, С.Т. Азубаева и др.// Морфология. 2002. - № 2-3. - С.72.

45. Коваленко, Н.Я. Функциональный элемент печени в норме и патологии/ Н.Я. Коваленко//Пат. физиол.- 1984.- №1,- С.83-89.

46. Козлова, Н.М. Биохимия/ Н.М. Козлова, Е.А. Чернецкий. 1991.- С. 56-59.

47. Комаров, Ф.И. Биохимические исследования в клинике/Ф.И. Комаров, Б.Ф. Коровкин, В.В. Меньшиков. Элиста.: АПП «Джангар», 1998. -250 с.

48. Кондрахин, И.П. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии: Справочное издание/ И.П. Кодрахин, Н.В. Курилов, А.Г. Малахов и др.-М.: Агропромиздат, 1985 287 с.

49. Кононский, А.И. Биохимия животных/ А.И. Кононский, М.: Колос, 1992. -528 с.

50. Конопатов, IO.B. Диетотерапия высокоэффективный способ лечения собак / Ю.В. Конопатов, М.Э. Онуфриенко// Актуальные проблемы ветеринарной медицины: Сб. науч. труд. - СПб., 1998. - №128 - С. 67-68.

51. Куниский, Д.Г. Влияние метионина, витаминов B.2 и BJ5 на содержание и распределение в дольке печени цыплят белка, гликогена и липидов/ Д.Г. Куниский//Арх. анат.- 1980. Т.79. - №10. - С.97-101.

52. Куприянов, JI.B. Сосудистый эндотелий/JT.B. Куприянов, И.И. Бобрика, Я.Л. Караганова.- Киев.:Здоровье, 1986.-С.46

53. Лашкевич, В.Э. Возрастная изменчивость форм и размеров печени человека/ В.Э. Лашкевич, Г.Е. Цай// Клин, хирургия. 1986. - №9. - С.37-38.

54. Лебедев, М.И. Практикум по анатомии сельскохозяйственных животных/ М.И. Лебедев, Н.В.Зеленский. СПб.: Агропромиздат, 1995. - 400 с.

55. Линдсей, Д.В. Белковый обмен и питание/ Д.В. Линдсей. М.: Колос, 1980.250 с.

56. Липницкий, С.С. Справочник по болезням домашних экзотических животных/ С.С. Липницкий, В.Ф. Литвинов, В.В. Шимко, А.И. Гантимуров. Минск.: Ураджай, 1996. -263 с.

57. Лихачева, Л.М. Гепатоциты трупной печени и электронно-микроскопическая динамика их изменений/ Л.М. Лихачева.- Л.: «Наука», 1974.-С.116.

58. Логинов, A.C. Клиническая морфология печени/ A.C. Логинов, Л.И. Аруип -М.:Медицина, 1985. С. 17-31.

59. Логинов, A.C. Звездчатые ретикулоэндотелиоциты при хроническом гепатите/А.С. Логинов, Л.И. Аруин, О.Л. Шаталова//Арх. пат. 1986. - Т.48 -Вып.5. - С.21-26.

60. Лукьянова, М. Гепатоцит: Функционально-метаболические свойства/ М. Лукьянова. М.: «Наука», 1985.-С. 19-26.

61. Малов, А.Д. Развитие органов и изменение телосложения эмбриона и плода свиньи: Автореф. дисс.д-ра биол. наук./ А.Д. Малов -Казань, 1971- 61с.

62. Маршалл, В.Д. Клиническая биохимия/ В.Д. Маршалл -М -СПб.: "Издательство БИНОМ"-"Невский Диалект", 2000.-368 с.

63. Маркина, В.В. Пространственно-временная характеристика активности бета-оксибутиратдегидрогеназы в дольке печени крыс/ В.В. Маркина// Бюлл. экспер. биол. -1981. Т.92. -№11.- С.614-616.

64. Маркина, В.В. Пространственно-временная характеристика активности некоторых ферментов в дольке печени нормальных и голодающих крыс/ В.В. Маркина// Хронобиология и хронопатология. М.: Изд. ин-та общ. патологии и пат. физиологии. - 1981. - С. 163.

65. Маркина, В.В. Пространственно-временная характеристика активности изоцитратдегидрогеназы в печени крыс/ В.В. Маркина// Бюлл. экспер. биол.-1984. -Т.98. №10.- С.431-434.

66. Маянский, Д.Н. Клетка Купфера и система мононуклеарных фагоцитов/ Д.Н. Маянский.- Новосибирск «Наука», 1981. С. 10-33.

67. Мецлер, Д. Биохимия. Химические реакции в живой клетке/ Д. Мецлер.-М.: «Мир», 1980 Т.2 - С.2-39.

68. Мещеряков, Ф.А. Физиология систем крови, лимфы и иммунитета. Учебное пособие для студентов биологического профиля/ Ф.А. Мещеряков.-Ставрополь, 2003.-100 с.

69. Мирисси, Дж. Болезни печени и желчевыводящих путей/ Дж. Мирисси, -М:000 «М-вести»,1991. С.87-98.

70. Миронова, Л.П. Морфологические и физиологические основы воспроизводства нутрий/Jl.П. Миронова.-Ростов н/Д.:СКНЦ ВШ.-2003.-С.96.

71. Михайлов, В.П. Классификация тканей и явление метаплазии в свете принципа тканевой детерминации/ В.П. Михайлов//Арх. анат. 1972. - Т.62. -№.6.-С. 12-23.

72. Мишанин, Ю.Ф. Практическая ветеринария/ Ю.Ф. Мишанин, М.Ю. Мишанин. Ростов н/Д.: Март, 2002. - С. 108-110.

73. Нетер, Ф. Атлас анатомии человека/ Ф. Нетер. М.:ГЭОТАР-МЕД., 2003. -600с.

74. Николаев, А.Я. Биологическая химия/А.Я. Николаев. М.,1998.-С. 129.

75. Норбоев, К. Токсическая дистрофия печени у овец при откорме (этиология, патогенез, диагностика, профилактика): Автореф. дисс.канд. ветеринар, наук./ К. Норбоев. Санкт-Петербург, 1991. - 27с.

76. Окороков, А.Н. Диагностика болезней органов пищеварения/А.Н. Окороков. М.: Мед. лит., 2002. - С. 410-425.

77. Орешкин, H.H. Конструкция сосудистого русла печеночной дольки по количественным показателям/ Н.И. Орешкин, В.Н. Староверов, Е.А. Воробьева// Патология и физиология сердца и сосудов. М., 1978. - С.33-36.

78. Павлов, A.B. Клеточный состав различных зон печеночной дольки крыс и кроликов в норме и после экспериментальных воздействий/ A.B. Павлов// Арх. анат. 1978. - Т.75. - №8. - С. 63-69.

79. Панин, JI.E. Поглощение йодированных липопротеидов плазмы крови субпопуляциями гепатоцитов и синусоидными клетками печени крыс/Л.Е. Панин, И.Ф. Усынин, Л.М. Поляков//Вопр. мед. химии. 1986. - Т.32. -Вып.4.- с. 106-110.

80. Подымова, С.Д. Болезни печени/ С.Д. Подымова. М. :Медицина, 1993. -С.6-20.

81. Пустовалова, Л.М. Практикум по биохимии/ Л.М Пустовалова. Ростов н/Д: Издательство «Феникс», 1999. - 544 с.

82. Романов, Ю.А. Топографическое распределение делящихся гепатоцитов в дольке регенерирующей печени в период максимальной митотической активности/ Ю.А. Романов, Т.В. Савченко// Бюлл. экспер. биол.-1986. -Т. 102. №11. - С. 597-598.

83. Рослый, И.М. Практическая биохимия/ И.М. Рослый, Ю.А. Шуляк. М., 2004.-165 с.

84. Рябцев, В.П. Морфологический состав крови и показатели углеводно-жирового обмена у здоровых и больных гепатозом норок/В.П. Рябцев // Сб. науч. тр./ Ленингр. вет. ин-т. 1984. - С. 84-88.

85. Садовникова, В.В. Морфологические аспекты регенерации патологически изменённой печени/ В.В. Садовникова, И.М.Солопаева, H.A. Бобылёва// Морфология. 1998. - №3. - С Л 05.

86. Секамова, С.М. О функциональном значении тнмных и светлых клеток/ С.М. Секамова, Т.П. Бекетова// Арх. пат. 1975.-Т.37.- №5. - С.57-64.

87. Секамова, С.М. Функциональная морфология печени/С.М. Секамова, Т.П. Бекетова// Морфологическая диагностика заболеваний печени. М.: Медицина, 1989.-С. 8-36.

88. Серов, В.В. Перспективные направления паталогоанатомических исследований/ В.В. Серов// Арх. пат.- 1986.- Т.48.- №3. С.20-29.

89. Симбирцев, С.А. Варианты и закономерности топографии артерий печени/ С.А. Симбирцев, A.A. Лойт, А.К. Лебедев, A.A. Паншин, И.А. Корешкин// Морфология. 2000. - Т. 118. - № 4. -С. 57-61.

90. Темиров, Ш. Возрастная и сезонная морфология печени овец каракульской породы: Автореф. дисс.канд. ветеринар, наук./ Ш. Темиров. Самарканд, 1979.-21с.

91. Трефилов, А.Б. О функциональной специализации левой боковой и правой внутренней долей печени у крыс/ А.Б. Трефилов, И.А. Березкина, А.Л. Рубинштейн// Физиология. 1986. - Т.12. -№10. - С. 1435-1439.

92. Урманов, М.И. Сравнительная и возрастная анатомия печени и внутрипеченочных кровеносных сосудов и желчных протоков позвоночных животных и человека/ Автореф. дис.д-ра мед. наук./М.И.Урманов. -Ленинград, 1974. 30 с.

93. Урываева, И.В. Структурные аспекты индукции фенобарбиталом пролиферативной активности клеток печени/И.В. Урываева, Г.В. Делоне,

94. B.М. Фактор//Цитологические механизмы гистогенезов. Ташкент, 1983.1. C.173-176.

95. Учитель, И.Я. Макрофаги в иммунитете/И.Я. Учитель.- М.:Медицииа, 1978. С.20-44.

96. Уша, Б.В. Ветеринарная гепатология/ Б.В. Уша,. М.: Колос, 1979. - 263 с.

97. Уша, Б.В. Применение у собак прижизненной пункционной биопсии печени в сочетании с лапароскопией /Б.В. Уша.-Материалы 10-го Московского международного ветеринарного конгресса. М.: Внешторгиздат, 2002. - С. 68-69.

98. Хрущев, Г.К. Орган и клетка (некоторые проблемы цитологии и гистологии)/ Г.К. Хрущев, В.Я. Бродский// Успехи соврем, биол. 1961.-Т.52.-№2.-С. 181-207.

99. Цай, Г.Е. Зависимость топографии печеночных вен от внешней формы печени, ее размеров и от возраста/ Г.Е. Цай//Архив анатомии гистологии и эмбриологии. 1983. - Т.84. - №3 . - С.34-40.

100. Чернух, A.M. Функциональный элемент-орган-организм (особенности адаптации, повреждения и восстановления)/ A.M. Чернух// Пат. физиол.-1977.-№4.- С.3-10.

101. Чижова, JI.H. Активность ферментов признак, прогнозирующий продуктивность овец при их селекции/ J1.H. Чижова, Ф.М. Батурина// Повышение продуктивности и племенных качеств с/х ж-х: Сб. науч. тр./ Ставроп. СХИ.- Ставрополь, 1985.- С.31-34.

102. Шерлок, Ш. Заболевания печени и желчных путей/ Ш. Шерлок, Дж Дули. -М.:Медицина,1999. С.5-13.

103. Шкурупий, В.А. Ультраструктурные аспекты гипертрофии клеток печени при экспериментальных воздействиях/ В.А. Шкурупий, В.Н. Гаврилин, Г.Г. Ковригина// Ультраструктурная патология печени.- Рига.: Зинатне, 1984. -С.148-152.

104. Шкурупий, B.A. Электронно-микроскопическое исследование эндоцитарной способности паренхиматозных и синусоидных клеток печени в экспериментальных условиях/ В.А. Шкурупий, И.Н. Индикова// Цитология и генетика. 1977. - Т. 11.- №1. - С.23-26.

105. Шманенков, Н.А. Аминокислоты в кормлении животных/ Н.А. Шманенков-М.:Колос, 1970. 88с.

106. Юрченко, В.П. Хирургическая анатомия желчного пузыря/ В.П. Юрченко, С.А. Визгалов//Морфология. 2002. - №2-3. - С. 188.

107. Ahlabo, J. Observations on peroxisomes in brown adipose tissue of the rat/ J. Ahlabo, T. Bernari//J. Histochem. 1971. - V.19. - P.670-675.

108. Andersen, B. Perinatal development of the distribution of phosphoenolpyruvate carboxikinase and succinate dehydrogenase in rat liver/B. Andersen, S. Zierz, K. Jungermann// Eur. J. Cell Biol. 1983,- V.30.- P. 126-131.

109. Bachmann, K. Quantitative electron microscopy/ K. Bachmann, M.M. Salpeter.-Maryland, 1965.- P.37-45.

110. Balan, V. Morf. norm pat./ V. Balan, H. Aratei. 1968. - V. 13. - P. 417.

111. Bankston, P.W. Morphological and functional differences between endothelial cells and Kupffer cells in fetal rat liver/ P.W. Bankston//Anat. Rec. 1974. -V.178. - №2. - P.303-304.

112. Bankston, P. The development of the sinusoids of fetal rat liver/ P.Bankston, R. Pino//Am. J. Anat. 1990 .- V.159.- №1. - P. 1- 15.

113. Bardadin, K.A. Endothelial cell changes in acute hepatitis. A light and electron microscopic study/K.A. Bardadin, P.J. Schener//J. Pathol. 1984. - V.144. - №3. -P.213-220.

114. Barthok, L. Ultrastructure of the hepatic perisinusoidal cells in man and other mammalian species/L. Barthok, J. Toth E. Remenar, S. Viragh//Anat. Rec. 1979. - V.194.- №4. - P.571-585.

115. Barthok, L. Fine structure of perisinusoidal cells in developing human and mouse live/L. Barthok, J. Toth, E. Remenar, S. Viragn//Acta morphol. Hung.-1983.- V.31. №4.- P.337-352.

116. Bioulac-Sage, P. La cellule perisinusoidale (ou cellule de Ito)/ P.Bioulac-Sage// Gastroenterol, clin. et biol.- 1985,- V.9. №4. - P.312-322.

117. Bioulac-Sage, P. Pit cells in human liver/P.Bioulac-Sage, C. Balabau, J. Saric// ' Hepatology. 1985. - V.5.- №5. - P.955.

118. Blomhoff, R. In vivo uptake of chylomicron (H3) retiny ester by rat liver/ R. Blomhoff// Proc. Natl. Acad. Sei. USA. - 1982. - V.79. - P.7326-7330.

119. Blomhoff, R. Hepatic retinol metabolism/R. Blomhoff, E. Ramussen, A. Nilsson, K. Norum// J. Biol. Chem. 1985. - V.260. - №5. - P. 13560-13565.

120. Bouwens, L. Proliferation, kinetics and fate of monocytes in rat liver during a zymozan induced inflammation/ L. Bouwens// Leucocyte Biol. 1985. - V.37.-№5. - P.531-543.

121. Britode, G.D. The first report of the occurence о cilium in fat-storing cells in the reptilian liver/ G.D. Britode// Arch. Histol. Jpn. 1987. - V.50. - №3. - P.359-361.

122. Caperna, T. Isolation and culture of parenchymal and nonparenchymal cells from neonatal swine liver/ T. Caperna, H. Failla// J. Anim. Sei. 1985. - V.61. №6.-P. 1576-1586.

123. Coldfisher, P.S. Rohein, E. Essner// Sciense. 1971. - V. 173. - №3991. - P.65-66.

124. Craciun, E.C. Bull. Cancer/ E.C. Craciun, C. Tasca. 1968. - V.l - P.l 11.

125. Crofton, R. The origin, kinetics and characteristics: of the Kupffer cells/ R. Crofton, M. Martina, M. Di esselhoff//J. ExP.Med.- 1978. V. 143.- №1. - P. 1-17.

126. Grube, D. Die endoertnen Zellen des Magendannepithels und der Sloffwechsel der biogenen Amine im Magendarihtrakt, in Progress in Histochemistry and Cytochemistry, G.Fischer, Stuttgart/ D. Grube. New York, 1976.-V.8.-P. 1-124.

127. Cruz, A. R. Z. mikr.-anat/ A.R. Cruz, L. Lison. Forsch., 1963. - V.76. - P.l39.

128. Curtoy, P.J. Synchronous increase of four acute phase proteins synthesized by the same hepatocytes during inflammatory reaction/ P.J. Curtoy, C. Lombart, G. Feldmann//Lab. Invest. 1981.- V.44. - P. 105-115.

129. David, H. Morphometric analysis of peroxisomes in the liver cells of male rats during postnatal developtment/ H. David//ExP.Pathol. 1980. - V.I 8.- P.321-328.

130. Deimam, W. Peroxidase cytochemistry and ultrastructure on resident macrophages in fetal liver: a development study/W. Deimam, H. Fahimi// Dev. Biol. 1978,- V.66. - P.43-56.

131. Drochmans, P.Isolation and subfractionation on ficoll gradients of adult rat hepatocytes/ P. Drochmans, J.C. Wanson, R. Mosselmans// J. Cell. Biol. 1975. -V.66.-P. 1-22.

132. Elias H. Morphology of the liver/ H. Elias, J.C. Sherrick. New York, London, 1969.-P.12-17.

133. Ferri, S. Ultrastructural study of the pit cell in a fresh-water teleost liver/ S. Ferri// Arch. Anat. microsc. 1981. - V.70. - P. 109-115.

134. Fisher, W. Reciproral distribution of hexokinase and glucokinase in periportal and perivenous rat liver tissue/ W. Fisher, M. Inck, N. Katz// Hoppe-Seylers Z. Physiol. Chemie. Histochem. 1982. - V.363. - P.375-380.

135. Friedmann, S. Hepatic lipocytes the principal collagen producting cells of normal rat liver/S. Friedmann, J. Roll, J. Boyles, D. Bissel// Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1985. - V.82.-№24. - P.8681-8685.

136. Gale, R. Bone marrow origin of Kupffer cells in humans/ R. Gale, K. Sparkes, D. Gold// Science. 1978. - V.201. - P.937.

137. Gampieri, M. The lipocytes in normal humal liver/ M. Gampieri, A. Yezequel, F. Orlandi//Digestion. 1981. - V.22. - №4. - P. 165-169.

138. Gearhart, J. An immunofluorescent procedure for the tissue/ J. Gearhart, M. Oster-Granite// Histochem. 1980. - V.28. - P.245-249.

139. Gemmel, R. Fine structure of sinusoids and portal capilj laries in the liver of the adult sheep and the newborn lamb/R. Gemmel, T. Heath// Anat. Rec. 1972. -V.172. - P.57-70.

140. Gibson, D. M. Synthesis and degradation of the lipogenic enzymes of rat liver/ D. M. Gibson, R. T. Lyos, O.F. Scott// Adv. Enzym. Regul.-1972.-V.10.- P.7-204.

141. Greger, R. Comprehensive human physiology/ R. Greger, U. Windhorst.-Berlin.: Heidelberg: Springer-Verlag. 1996. - P. 115-137.

142. Gumucio J.J. Functional implications of liver cell heterogeneity/ J.J. Gumucio, D.L. Miller//Gastroenterology. -1981. V.80 .- P.393-403.

143. Inestrosa, N.C. Detection of peroxisomal fatty acyl-coenzyme A oxidase activity/ N.C. Inestrosa, M. Bronfman// Biochem. J. 1979. - V.182. - P.779-788.

144. Inestrosa, N.C. Properties of fatty acyl-coenzyme A oxidase from rat liver, a peroxisomal flavoprotein/N.C. Inestrosa, M. Bronfman// Life Sci. 1979. - V.25.-P.l 127-1136.

145. Irving, M. Characterization and culture of sinusoidal endothelium from normal rat liver: lipoprotein uptake and collagen phenotype/M. Irving, J. Roll, S. Huang //Gastroenterology. 1984. - V.87. - P. 1233-1247.

146. Ito, T., Scanning-electron microscopy of Itos fat-storing cells in the rat liver/T. Ito, T. Itoshima//Acta Med. Ocayama. 1984. - V.38.- №1. - P. 1-9.

147. Jamada, M. Biochemical characteristics of isolated rat liver stellate cells/M. Jamada//Hepatology. 1987. - V.7. - №6. - P. 1224-1229.

148. Jamamato, K. Freeze-replica study of lipid droplets in the Ito cells of rat liver/K. Jamamato, K. Ogawa//Anat. Rec. 1984. - V.210. - №3.- P.415-420.

149. Jezequel, A.M. Quantitative analysis of the perisinusoidal cells in human liver the lipocytes/A.M. Jezequel, G. Novelli, C. Venturi, Orlandi F// Liver Cirrhoses Meet. Ital. GrouP.Hepatis Cirrhosis. Basel, Karger. 1984. - P.85-90.

150. Jones, A.L. Autoradiographic evidence for hepatic lobular concentration gradient of bile acid derivatives/ A.L. Jones, G.T. Hradek, R.H. Renston//Amer. J. Physiol. 1980. - V.238 - P.233-237.

151. Jones, A.L. Quantitative analysis of hepatic ultrastructure in rats during enhanced bile secretion/ A.L. Jones, D.L. Schmicker, J.S. Mooney// Anat. Rec. -1978. V.192. - P.277-287.

152. Jones, A.L. Morphometric analysis of rat hepatocytes after total biliary obstruction/ A.L. Jones, D.L. Schmicker, J.S. Mooney// Gastroenterology. 1976.-V.71. - P.1051-1061.

153. Jungermann, K. Heterogeneity of liver parenchymal cells/ K. Jungermann, D. Sasse// Trends Biochem. Sci. 1978. - V.3 .- P. 198-202.

154. Jungermann, K. Metabolic heterogeneity of liver parenchyma/ K. Jungermann, N. Katz// H. Sies. Metabolic compartmentation.-London,Acad. Press. 1982.-P.411-435.

155. Hamashima, V. The localization of albumin and fibrinogen in human liver cells/ V. Hamashima, J.G. Harter, A.H. Coons//J. Cell Biol.- 1964. V.20.- P.271-279.

156. Hardonk, M.J. A histochemical study about the zonal distribution of the galastose-binding protein in rat liver/ M.J. Hardonk, H.B. Scholtens// Histochemistry.- 1980.- V.69.- P.289-297.

157. Harizanova, Z.A. Studies into the topics of the polyploid elements in the liver lobule/ Z.A. Harizanova, E.L. Tchacarov, M.S. Kilyovska// Bolg.- 1979.- V.32.-P.221-224.

158. Haussinger D. Functionelle leberzellheterogenitat/ D. Haussinger W. Gerok// Forsch. u. Prax.- 1984. V.l 1. - P.245-253.

159. Hendriks, H. Uptake and processing of (H3) retinoids in rat liver studied by electron microscopic autoradiography/H. Hendriks// Hepatology. 1988. - V.8.-№2.- P.276-285.

160. Hilderbrand, R. Nuclear volume and cellural metabolism/ R. Hilderbrand// Cell. Biol.-l980. V.60.- P. 1-54.

161. Horn, T. Light microscopical demonstration and zonal distribution of perisinusoidal cells in normal human liver/T. Horn, J. Yunge, O. Nielsen// Virch. Arch. Abt. A.- 1988,- V.413.- №2,- P. 147-149.

162. Hulteranz, R. Studies on the rat liver following iron overload, a morphometrical investigation of parenchymal and Kupffer cells/ R. Hulteranz//Acta pathol. microbiol. scand.-1983.- V.91.-№2.- P.253-259.

163. Kachtan, I. Ultrastructural study of the lipid storage in rat liver caused by experimental hypervitarninosis A/i. Kachtan//Acta Univ. Palacki Olomuc Fac. Med. 1987. - V.l 16. - P. 161-175.

164. Kanamura, S. The heterogeneity of hepatocytes during the postnatal development of the mouse/ S. Kanamura, M. Asada-Kubota//Anat. Embriol. -1980.- V.158. -P.151-159.

165. Kameda, Y. Arch, hlstol. jap./Y. Kameda. 1971. - V.33. - P.283.

166. Kaneda, K. Pit-cell hepatocyte contact in autoimmune hepatitis/ K. Kaneda, N. Kurioka, S. Seki// Hepatology.- 1984. - V.4.- №5.- P.995-998.

167. Kaneda, K. The „rod cored vesicle". A new type of vesicle in the pit cells/K. Kaneda, K. Wake, H. Senoo.-Amsterdam.: North Holland biomed. Press. 1982. -P.77-84.

168. Kaneda, K. Distribution and morphological characteristics of the pit cells in the liver of the rat/ K. Kaneda, K. Wake//Cell Tis. Res. 1983. - V.233.- №3.- P.485-505.

169. Kaneda, K. Pit cell in extrahepatic organs of the rat/ K. Kaneda, K. Wake// Anat. Rec. 1985. - V.211 .-№2. - P. 192-197.

170. Khan, M.A. Histochemical activity of acid phosphatase in rat liver after perfusion fixation/ M.A. Khan, B.M. Angus//Acta.anat. 1980. - V.l06. - P.327-329.

171. Kiernan, F. The anatomy and physiology of the liver/ F. Kiernan// Philos Trans. London. 1933. - V.l23. - P.711-770.

172. Kindros, K.O. Digitonin-collagenase perfusion for efficient separation of periportal or perivenous hepatocytes/ K.O. Kindros, K.E. Pentila// Biochem.-l 985. V.228. - P.757-760.

173. Kirn, A. Interaction between viruses and primary cultures of murine and human liver endothelial cells/A. Kirn, A. Steffan, F. Koehren// Sinusoidal liver cells.-Amsterdam.: North Holland Biomed. Press. 1982. - P.413-419.

174. Knook, D.L. High activity of glucose-6-phosphate dehydrogenase in Kupffer cells isolated from rat liver/ D.L. Knook, H. Sleyster, H. Teutsch// Histochemistry.- 1980. V.69. - №2. - P.211- 216.

175. Kobayashi, K. On the fine structure of rat liver sinusoidal cells revealed by freeze-replica and thin section with special reference to Ito's fat-storing cells// K. Kobayashi.- Amsterdam.: North Holland biomed. press. 1982. - P.29-36.

176. Kobayashi, K. Mast cell Ito cell pairings found in the Disse's spaces in the liver of the beagle dog/K. Kobayashi, K. Sakata, K. Miyata//Arch. histol. Yph.- 1985. -V.48.- № 5. - P.483-496.

177. Korner, T. Enzyme histochemical investigation of Itos cells in semithin sections of human liver biopsy specimens/T. Korner, F. Rath//Acta Histochem. 1989. -V.85.- №1. - P.73-77.

178. Kuhlmann, G. Immunoperoxidase labeling of a-fetoprotein (AFP) in normal and regenerating livers of a low and high AFP producing mouse strain/ G. Kuhlmann// Histochemistry.- 1980. V.69. - P.277-288.

179. Киоск, D.L. Separation of Kupffer cells and endothelin cells of the rat liver by centrifugal elutriation/D.L. Киоск, E. Sleyster//ExP.Cell Res. 1976. - V.99.-№2.- P.444-449.

180. Le Bouton, A.V. Heterogeneity of protein metabolism between liver cells is studied by radioautography/ A.V. Le Bouton// Curr. Med. Biol. 1968. - V.2. -P.l 11-114.

181. Le Bouton, A.V. Relations and extent of the zone of intensified protein metabolism in the liver acinus/ A.V. Le Bouton// Curr. Med. Biol. 1969. - V.3.-P.4-8.

182. Le Bouton, A.V. Protein synthesis of the rat liver acinus after injection of actinomycin D: An radioautography study/ A.V. Le Bouton// Curr. Med. Biol. -1971.-V.5.-P.353-358.

183. Leeuw, A. Purified rat liver fat-storing cells in culture divide and contain collagen/ A. Leeuw, S. McCarthy, A. Geerts// Hepatology. 1984. - V.4. - №3. -P.392-403.

184. Lemoine, F. Analyse morphometrique des sinusoides hepatiques din foie humain normal/ F. Lemoine, J. Hemet, J. Dubois// Biol. Cell.- 1982. V.43. - P.221-224.

185. Leo, M.A. Hepatic fibrosis after longterm administration of ethanol and moderate vitamin A supplementation in the rat/ M.A. Leo, C.S. Lieber// Hepatology. 1983. - V.3.-№1.- P.l-11.

186. Liman, N. Quantitative histomorphology of liver growth in sheep at prenatal and postnatal stages/ N. Liman// Anat. Histol. Embryol. 1996.-V.25.-№l.- P.43-48.

187. Lindberg, L. Massive lipid accumulation in mink liver stellate cells may be caused by Fusarium mycotoxine in the feed/ L. Lindberg, Y. Crohn, E. Kappanen//Acta Vet. Seand. 1985. - V. 36. - № 3. - P.423-424.

188. Loud, A.V. Quantitative stereological description of the ultrastructure of normal rat liver parenchymal cells/A.V. Loud// J. Cell. Biol. 1968. - V.37. - P.27-46.

189. Machimasa, K. Immunochemical studies on the localization and on the concentration of cellular retinal binding protein in rat liver during perinatal development/ K. Machimasa, K. Kunigo, G. Witte// Lab. Invest. 1985. - V.52.-№5. - P.475-484.

190. Maly, J.P. Microquantitative determination of the distribution patterns of alcohol dehydrogenase activity in the liver of rat, guinea-pig and horse/ J.P. Maly, D. Sasse//Histochemistry. 1985. - V.83. - P.431-436.

191. Mai le, F.P. A study of the structural unit of the liver/ F.P. Mai 1 e// Amer. J. Anat.- 1906. V.5. - P.227-308.

192. Matsumira, T. Gluconeogenesis predominates in periportal regions of the liver lobule/ T. Matsumira, T. Kashiwagi, H. Meren, R.G. Thurman// Eur. J. Biochern.-1984. V.144. - P.409-415.

193. Miller, D.P. Bromobenzen-induced zonal necrosis in the hepatic acinus/ D.P.Miller, J.M. Harasin, J.J. Gumucio// Exp.Mol. Path. 1978. - V.29. - P.358.-370.

194. Miller, D.L. Quantitative morphology of the sinu-jids of the hepatic acinus/ D.L. Miller, C.S. Zanolli, J.J. Gumucio//Gastroenterology. 1979. - V.76. -P.965-969.

195. Mills, L.R. Hepatic sinusoidal macrophages in alcoholic liver disease/ L.R. Mills, P.J. Scheuer//J. Path. 1985 .- V.147. - P.127-132.

196. Millward-Sadler, C.H. Cirrhosis: An Appraisal, In: Liver and biliary disease/ C.H. Millward-Sadler, E. Hahn, R. Wright.-London.: Tindall. 1985. - P.821-861.

197. Morin C. Patent paraumbilical vein: anatomic and hemodynamic variants and their clinical importance/ C. Morin, M.Lafortune, G. Pomier, M.Robin, G.Breton// Radiology. 1992. - V.185. - №1 - P.253-256.

198. Morris, B.J. Localización of angiotensinogen in rat liver by immunocytochemistry/ B.J. Morris, H.S. Iwamoto, I.A. Reid// Endocrinology. -1976.- V.157. -P.215-243.

199. Motta, P. Fetal and adult liver sinusoids and Kupffer cells as revealed by scanning electron miscrospy/P.Motta, S. MaKabe//Amsterdam North Holland biomed press. 1980. - P. 11-16.

200. Muto, M.A. Scanning electron microscopic study of endothelial cells and Kupffer cells in rat liver sinusoids/ M.A. Muto//Arch, histol. Jpn.- 1975. V.37. -№5. - P.369-386.

201. Naito, M. Filtration effect of endothelial fenestration on chilomicron transport in neonatal rat liver sinusoids/M. Naito, E. Wisse//Cell Tiss. Res.- 1978.- V.190. -№3 .- P.371-382.

202. Naito, M. Ontogenetic development of Kupffer cells. Sinusoidal Liver Cells/ M. Naito, K. TananasKi, M. Kojima//Amsterdam North Holland biomed. Press. -1982. P.109-116.

203. Narkewicz, M.R. Serine and glycine transport in fetal ovine hepatocytes/ M.R. Narkewicz, G. Jones, D. Morales// Biochim. Biophys. Acta-2000- V.1474-№l.-P.41-46.

204. Negi, D.S. An improved method for the histochemical localization of glucoses-phosphate dehydrogenase in animal and plant tissues/ D.S. Negi, R.J. Stephens// Histochemistry- 1977. V.25. - P.149-154.

205. Norpanetaya, W. An ultrastructural study on a new type of hepatic perisinusoidal cells in fish/ W. Norpanetaya, I. Aghajniau// Cell Tiss. Res.- 1979. -V.198.- №1. P.35-42.

206. Ouistorff, B. Gliconeogenesis in periportal and perivenous hepatocytes of rat liver, isolated by a new high-yield digitonin-collagenase perfusion technique/ B. Ouistorff// Biochern. 1985. - V.229. - P.221-226.

207. Piazza, M. The effect of 3-palmitoyi-catecnin on Kupffer cells in guinea pig liver/ M. Piazza, G. Borgia, S. Nappa// Hepatology. 1985. - V.5.- №5. - P.867-869.

208. Pino, R.M. The development of the sinusoids of fetal rat liver. Localization of endogenous peroxidase in fetal Kupffer cells/ R.M. Pino, P.W. Bankston//J. Histochem. Cytohem. 1979.- V.27. - P.643- 652.

209. Purton, M.D. Extravascular cell within the perisinusoidal space of the avian liver/ M.D. Purton// Experientia. 1976. - V.32.- №6. - P.737-740.

210. Rappaport, A.M. The structural and functional unit in the human liver (liver acinus)/ A.M. Rappaport// Anat. Rec. 1958. - V.130. - P.673-686.

211. Rappaport, A.M. The microcirculatory acinar concept of normal and pathological hepatic structure/ A.M. Rappaport// Beitr. Pathol. 1976. - V.157. -P.215-243.

212. Rappaport, A.M. Hepatic blood flow. In: Liver and biliary tract physiology/ A.M. Rappaport//Baltimor. 1980. - P. 1-63.

213. Rappaport, A.M. Subdivision of gexagonal liver lobules into a structural and functional unit: Role in hepatic physiology and pathology/ A.M. Rappaport, Z.G. Borowy, W.M. Laudheed// Anat. Rec. 1954. - V.l 19. - P. 11-34.

214. Rappaport, A.M. Physioanatomical basis of toxic liver injury/ A.M. Rappaport.-In: Toxic injury of the liver.- N. Y., Plenum Press.- 1979. P.l-58.

215. Reinke, P. Strukture und Funktion der Sinusoidwand der Leber/ P.Reinke, H. David//Z. mikr.-anat. Forch. 1987. - V.101. - №1. - P.91-136.

216. Remenar, E. Postnatal development of perisinusoidal cells in the porcine liver/ E. Remenar, J. Toth, S. Viragh, I. Bartok//Acta morphologies Acad. Sci. Hung.-1982.- V.30.-№l.-P.35-48.

217. Richards, W.L. Scanning microdensitometry of glycogen zonation in the livers of rats adapted to a controlled feeding schedule and to 30. 60 or 90 % casein diets/ W.L. Richards, U.R. Potter//Amer. J. Anat. 1980. - V.157. - P.71-85.

218. Rieder, H. NADP-dependent dehydrogenases in rat liver parenchyma/ H. Rieder// Histochemistry. -1981. V.72. - P.579-615.

219. Roesler, W.J. Diurnal variations in the activities of the glycogen metabolizing enzymes in mouse liver/ W.J. Roesler, R.L. Khandelwal// Internat. J. Biochem.-1985.-V.17.-P.85-93.

220. Sato, S. Ultrastructural localisation of type III procollagen in baboon liver/ S. Sato, M. Leo, C.S. Lieber//Am. J. Pathol.- 1986. V.122. -№2. - P.212-217.

221. Shiratori, Y. Sinusoidal cells interaction in liver fibrosis/Y. Shiratori, A. Geerts, T. Ichida, E. Wisse//Hepatology. 1985. - V.5.- №5. - P.949-955.

222. Shiratori, Y. Modulation of the collagen synthesis by fat-storing cells isolated from rats treated with CCI4 and vitamin A/ Y. Shiratori, T. Ichida, A. Geerts// Hepatology.- 1985. V.5.- №5. - P.948-113.

223. Schreiber, G. The distribution of albumin synthesis throughoutthe liver lobule/ G. Schreiber, R. Lesch, V. Weinssen// J. Cell Biol.- 1970. V.47. - P.285-289.

224. Sleyster, E. Relation between localization and function of rat liver Kupffer cells/E. Sleyster, D.L. Knook//Lab. Invest.- 1982. V.47. - P.484-490.

225. Smith, C.M. Activities of NAD-specific and NADP-specific isocitrate dehydrogenases in rat liver mitochondria/C.M. Smith, G.W. Plaut// Euro P.J. Biochem. 1979. - V.97. - P.283-295.

226. Stoffan, A.M. Increase in the number of fenestrae in mouse endothelial liver cells by altering the cyto-skeleton with cytochalasin B/A.M. Stoffan// Hepatology.- 1987.- V.7. №6. - P. 1230-1238.

227. Taira, K. A freeze-fracture study of the plasma membrane of the Ito cells in the normal rat liver/ K. Taira, T. Aoki, S. Schibasaki// Arch, histol. Jpn. 1987. - V.I.-P.95-102.

228. Takanashi-Iwanaga, H. Application of NaOH maceration method to a scanning electron microscopic observation of Ito cells in rat liver/ H. Takanashi-Iwanaga, T. Fujta//Arch, histol. Jpn. 1986. - V.49. - №3. - P.349-357.

229. Tanuma, J. Electron microscopic study on the hepatic sinusoidal wall of the soft shelled turtle (Am. jaP.) with special remark on the smooth muscle cells/ J. Tanuma//Arch, histol. Jpn. 1987. - V.50. - P.351-272.

230. Tanuma J. Electron microscopic study on the liver of the Crucian, Carassius, with special remark on the fat-storing cells/ J. Tanuma, T. Ito//Arch. histol. Jpn.-1980.- V.43.- P.241-263.

231. Teutsch, H.F. Chemomorphology of liver parenchyma/ H.F. Teutsch// Progr. Histochem. Cytochem. 1981. - V. 14 .- P. 1-92.

232. Teutsch, H.F. NADP-dependent dehydrogenases n rat liver parenchyma/ H.F. Teutsch, R. Rieder//Histochemistry.- 1979. V.60.- P.43-52.

233. Towassoli, M. Localization of cytochrome b5 in rat organs and tissues by immunohistochemistry/M. Towassoli, J. Ozols, G. Sugimoto//Biochem. Biophys. Res Comm.- 1976.- V.72.- P.281-287.

234. Trus, M. Hexokinase and glucokinase distribution in the liver lobule/ M. Trus, H, Zawalich, D. Gaynor//J. Histochem.- 1980,- V.28. P.579-581.

235. Tsutsumi, M. Characterisation of desininpositive rat liver sinusoidal cells/M. Tsutsumi, A. Takeda, S. Takase//Hepatology.- 1987. V.7.- №2.- P.277-284.

236. Uchiyama, Y. Circadian variations of ultramorphology and glycogen content in hepatocytes of light-manipulated rats/ Y. Uchiyama, H. Mayerbach// Gegenbaurs morphol. Jahrb. -1981. V.127.- P.452-463.

237. Van Berkel,T. J. Different types of mitochondria in parenchymal and non-parenchymal rat liver cells/ T.J.Van Berkel, J.K. Kruijt// EuroP.J. Biochem. -1977.-V.73.- P.223-229.

238. Wake, K. Perisinusoidal stellate cells, their related structure in and around the liver sinusoids and vitamin A — storing cells in extrahepatic organs/K. Wake//Int. Rev. Cytol. 1980. - V.66.- P.303-353.

239. Weibel E.R. Stereologtcal methods for the quantification of hepatic structures, In The liver.Quantitative aspects of structure and function/ E.R. Weibel. Basel, 1973.- P. 8-13.

240. Weimann A. Diagnostic value of color doppler sonography in primary liver tumors: a trend study//Bildgeburg, 1993. V.60. - P. 140-143.

241. Welsh, F.A. Changes in distribution of enzymes within the liver lobule during adaptive increases/ F.A. Welsh// J. Histochem. 1972. - V.20.- P. 107-111.

242. Whicher, J.T. Abnormalities of plasma proteins/ J.T. Whicher// Biochemistry in Clinical Practice.-London, 1983.-P.221-251.

243. Wimmer, M. Microphotometric studies on intraacinar enzyme distribution in rat liver/ M. Wimmer, D. Pette// Histochemistry.-1979. V5.- 64.- P.23-33.

244. Wisse, E. An electron microscopic study of the fenestrated endothelial lining of rat liver sinusoids/E. Wisse//J. Ultrastruct. Res.-1970. V.31. -№1.- P. 125-150.

245. Wisse, E. The liver sieve consideration concerning the structure and function of endothelial fenestrae, the sinusoidal wall and the space of Disse/E. Wisse// Hepatology.-1985. V.5.- №4.- P.683-692.

246. Yoshimura, S. Purification and immunohistochemical localization of rat liver glutathione peroxidase/S. Yoshimura, N. Komatru, K. Watanabe//Biochem. biophys. Acta.-1980.- V.621. P.130-137.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.