Оптимизация технологии клонального микроразмножения крыжовника и сирени тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.08, кандидат наук Буянов Иван Николаевич
Буянов Иван Николаевич
кандидат наук
2017
- Специальность ВАК РФ06.01.08
- Количество страниц 208
Оглавление диссертации кандидат наук Буянов Иван Николаевич
ВВЕДЕНИЕ
1.ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Особенности микроклонального микроразмножения крыжовника
1.2. Особенности микроклонального размножения сирени
1.3. Адаптация in vitro растений к нестерильным условиям
1.4. Применение внекорневых обработок в технологиях ускоренного
размножения садовых растений
2.ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
2.1. Объекты, методика и условия проведения исследований
2.2. Результаты исследований
2.2.1. Особенности клонального микроразмножения новых сортов крыжовника
2.2.1.1.Способы подготовки маточных растений крыжовника к введению в стерильную культуру в защищенном грунте
2.2.1.2. Подготовка маточных растений крыжовника к введению в стерильную культуру в открытом грунте
2.2.1.3. Способы стерилизации эксплантов
2.2.1.4. Влияние гормонального состава питательных сред на эффективность микроразмножения новых сортов крыжовника
2.2.2. Особенности клонального микроразмножения новых трудно размножаемых in vitro сортов сирени
2.2.3. Адаптация регенерантов новых сортов крыжовника и сирени к нестерильным условиям
2.2.3.1. Состав субстрата и способы его подготовки
2.2.3.1.1. Стерилизация субстрата биоцидными препаратами
2.2.3.1.2. Насыщение субстрата Мицефитом перед пересадкой микроклонов крыжовника и сирени
2.2.3.1.3. Насыщение субстрата гуминовыми препаратами перед пересадкой микроклонов крыжовника и сирени
2.2.3.1.4. Влияние состава субстрата и его предварительной обработки Лигногуматами и Мицефитом на жизнеспособность и силу роста микрорастений сирени на этапе адаптации
2.2.3.2. Влияние внекорневых обработок микрорастений сирени и крыжовника физилогически активными веществами после пересадки на адаптацию на приживаемость и выход жизнеспособных регенерантов
2.2.3.2.1. Влияние внекорневой обработки регенерантов крыжовника и сирени Мицефитом на адаптацию к нестерильным условиям
2.2.3.2.2. Влияние внекорневой обработки регенерантов крыжовника и сирени гуминовыми веществами на адаптацию к нестерильным условиям
2.2.3.2.3. Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника и сирени препаратами с цитокининовой активностью на адаптацию к
нестерильным условиям
3. ОРГАНИЗАЦИОННО-ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ОБРАБОТКИ СУБСТРАТА МИЦИФИТОМ ПРИ АДАПТАЦИИ РЕГЕНЕРАНТОВ
СИРЕНИ К НЕСТЕРИЛЬНЫМ УСЛОВИЯМ
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЯ
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Виноградарство», 06.01.08 шифр ВАК
Оптимизация элементов технологии размножения смородины чёрной и крыжовника in vitro2020 год, кандидат наук Матушкин Сергей Александрович
Повышение эффективности клонального микроразмножения подвоев in vitro2015 год, кандидат наук Беседина Екатерина Николаевна
Клональное микроразмножение и депонирование перспективных форм груши2012 год, кандидат сельскохозяйственных наук Ташматова, Лариса Владимировна
Совершенствование технологии клонального микроразмножения флокса метельчатого (Phlox paniculata L.)2019 год, кандидат наук Мазаева Анна Сергеевна
Оптимизация основных элементов технологического процесса размножения винограда биотехнологическим методом2020 год, кандидат наук Батукаев Магомед Султанович
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Оптимизация технологии клонального микроразмножения крыжовника и сирени»
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность. Крыжовник и сирень являются востребованными культурами. Однако ассортимент, представленный на рынке посадочного материала крайне ограничен. В последнее десятилетие в Государственный реестр селекционных достижений РФ вошло очень мало перспективных отечественных сортов, которые нуждаются в ускоренном размножении.
Известно, что генотип растения в наибольшей степени влияет на морфогенетические потенциал эксплантов in vitro. Распространение новых сортов часто ограничивают трудности размножения и тугорослость многих из них.
Известно, что привитая сирень во многом уступает корнесобственной. Однако большинство сортов сирени плохо размножаются черенкованием, а при размножении отводками коэффициент размножения ничтожный, поэтому клональное микроразмножение - единственный эффективный способ получения выровненного корнесобственного материала этой культуры. Однако, несмотря на успехи в разработке основных этапов культивирования in vitro, некоторые ценные сорта отличаются низким коэффициентом размножения и недостаточной жизнеспособностью при адаптации. Кроме того, сирень относится к тугорослым растениям и требуется много времени для выращивания стандартного посадочного материала.
Среди перспективных сортов крыжовника много трудноразмножаемых и неустойчивых к стрессам, их в одинаковой степени трудно ввести в стерильную культуру и адаптировать к неблагоприятным условиям внешней среды. По-прежнему весьма актуальной задачей является обеспечение надежного коэффициента размножения и получение микропобегов достаточной для укоренения длины. Известные рекомендации порой трудно воспроизводимы на практике.
Потенциал регенерации зависит не только от наследственных особенностей, но также и от фитосанитарного и физиологического состояния исходных растений. В этой связи предварительная подготовка маточников к вегетативному
размножению представляется весьма перспективной, особенно при клональном микроразмножении крыжовника, который характеризуется плохой приживаемостью эксплантов при инициации культуры.
По мнению большинства исследователей, одним из наиболее трудоемких и уязвимых этапов клонального микроразмножения является адаптация регенерантов к нестерильным условиям: гибель пробирочных растений может быть весьма существенной и достигать 50% и более. Слабое развитие надземной части и корней не дает возможности вырастить качественный посадочный материал в сжатые сроки. Это в первую очередь относится к трудноразмножаемым и тугорослым сортам. Высокая чувствительность микрорастений к стрессам и большие выпады при адаптации заставляют искать пути увеличения их приживаемости в стрессовых условиях и активизации ростовых процессов на ранних этапах доращивания. Ранее в опытах лаборатории плодоводства была показана высокая эффективность внекорневых обработок биологически активными веществами зеленых черенков садовых растений на этапе корнеобразования. Мы предположили, что применение регуляторов роста с цитокининовой активностью, а также гуминовых веществ, экологически безопасных микоризных и адаптогенных препаратов может облегчить переход регенерантов к самостоятельному минеральному питанию и фотосинтезу в асептических условиях; сократит потери микрорастений крыжовника и сирени и вместе с тем ускорит их рост после пересадки ex vitro.
Объектами исследования стали новые высокодекоративные сорта сирени, включенные в Государственный реестр в 2011 году, а также перспективные сорта крыжовника, выведенные в лаборатории плодоводства и проходящие сортоиспытание. Оптимизация условий и приемов культивирования in vitro позволит ускорить разработку сортовых технологий ускореного размножения и внедрить новые сорта в производство.
Цель работы - оптимизировать технологию клонального микроразмножения и способы адаптации новых сортов крыжовника и сирени к нестерильным условиям.
Задачи исследования:
1. Оценить новые сорта крыжовника и сирени по способности к клональному микроразмножению.
2. Разработать способы подготовки маточных растений крыжовника в защищенном и открытом грунте к введению в стерильную культуру.
3. Выявить особенности культивирования новых сортов крыжовника и сирени в зависимости от способов стерилизации эксплантов и гормонального состава питательных сред на этапе микроразмножения и укоренения.
4. Оценить влияние состава субстратов, способов их стерилизации и подготовки на приживаемость микрорастений крыжовника и сирени в нестерильных условиях и выход жизнеспособных регенерантов.
5. Изучить последействия внекорневых обработок микрорастений биологически активными веществами после их пересадки в нестерильные условия на приживаемость микроклонов, и их рост на этапе адаптации и при доращивании.
6. Определить экономическую эффективность предварительной подготовки субстратов при адаптации сирени к нестерильным условиям.
Положения, выносимые на защиту:
1. Способы подготовки маточных растений крыжовника к введению в стерильную культуру.
2. Оптимизация этапов культивирования новых сортов крыжовника и сирени in vitro.
3. Последействия состава субстратов, способов их подготовки и внекорневых обработок увеличивает приживаемость регенерантов в асептических условиях, динамику роста и выход жизнеспособных корнесобственных растений новых сортов крыжовника и сирени.
Научная новизна работы. Выявлены сортовые особенности микроразмножения и адаптации новых сортов крыжовника и сирени. Впервые обоснована целесообразность предварительной подготовки маточных растений крыжовника (этиоляция, обработка цитокининами) в защищенном и открытом грунте к введению в стерильную культуру. Оптимизирована методика стерилизации эксплантов крыжовника, модифицирован состав питательных сред для разных этапов клонального микроразмножения. Впервые изучено влияние способов подготовки субстратов с использованием биоцидных, микоризных препаратов и гуминовых веществ с микробиологическим компонентом на адаптацию регенерантов крыжовника и сирени к асептическим условиям. Установлено положительное последействие внекорневых обработок регенерантов на этапе адаптации биологически активными веществами (цитокинины в сочетании с адаптогенными препаратами, гуминовые вещества нового поколения, продуценты эндофитных грибов) на ростовые процессы и устойчивость in vitro растений к неблагоприятным внешним факторам.
Практическая значимость работы. Предварительная подготовка маточных растений новых сортов крыжовника и усовершенствованные способы стерилизации позволяют эффективно вводить экспланты в стерильную культуру при значительном снижении уровня контаминации. Оптимизированный гормональный состав питательных сред позволяет увеличить выход хорошо развитых in vitro растений, пригодных для пересадки в нестерильные условия. Приемы, разработанные для этапа адаптации регенерантов крыжовника и сирени (подготовка субстратов, внекорневые обработки после пересадки микроклонов), обеспечивают их надежную сохраняемость в стрессовых условиях, активный начальный рост и высокий выход жизнеспособных корнесобственных растений с закрытой корневой системой при существенном сокращении сроков адаптации и доращивания. Новые приемы способствуют разработке сортовых технологий ускоренного размножения нового поколения сортов сирени и крыжовника.
Методология и методы исследований. При планировании и проведении исследований в виде источников информации использовали научную литературу по теме исследований. При выполнении научной работы использовали общие методы исследований: наблюдения, сравнения и измерения. Для оценки экономической эффективности использовали методики и рекомендации кафедры организации сельскохозяйственных предприятий (Никифоров М. А., Яковлев Б. И., 1972) и методические указания по определению экономической эффективности регуляторов роста (1983).
Степень достоверности результатов исследований. Статистическую обработку данных проводили методом дисперсионного анализа по Б. А. Доспехову (1985) с использованием программного комплекса STRAZ, что делает выводы и рекомендации обоснованными и достоверными.
Апробация работы. Результаты диссертационной работы были представлены на Международной научно-практической конференции «Актуальные научные вопросы и современные образовательные технологии» (Тамбов, 28 июня 2013 г.); на Международной научно-практической конференции «Инновационное развитие садоводства - основа его экономической эффективности», посвященной 90-летию со дня рождения профессора В. Г. Трушечкина (Москва, 16-18 декабря 2013 г.); на Международной научно-практической конференции «Молодежь в науке - 2014» (Минск, 18-21 ноября 2014 г.); на 3-ей Международной научно-практической конференции «Академическая наука - проблемы и достижения», Academic science - problems and achievements III (North Charleston, USA, 20 - 21 февраля 2014 г.); на Международной научно-практической конференции «Новая наука: от идеи к результату», (г. Стерлитамак, 22 декабря 2016 г.); на Международной научно-практической конференции «Новая наука: современное состояние и пути развития» (г. Оренбург, 30 декабря 2016 г.).
Публикации результатов исследования
По теме диссертации опубликовано 8 печатных работ, 3 из них - в рецензируемых журналах, входящих в перечень ВАК РФ.
Структура и объем диссертации
Диссертация изложена на 209 страницах, содержит 62 таблицы, 65 рисунков, состоит из введения, 3 глав, заключения, выводов, рекомендаций производству. Список литературы содержит 229 источников, из них 60 на иностранных языках.
Благодарности. Автор выражает глубокую благодарность и признательность научному руководителю - доктору сельскохозяйственных наук, профессору Аладиной О. Н., за чуткое руководство и поддержку при проведении исследований и выполнении научной работы. Автор выражает благодарность за внимание и содействие в выполнении научной работы и помощь в научных исследованиях коллективу кафедры Плодоводства, виноградарства и виноделия, а также лично доценту Акимовой С. В. Огромная благодарность за помощь в определении видового состава контаминации профессору Смирнову А. Н. Отдельная благодарность и признательность Игнатову А. Н. и коллективу Центра "Биоинженерия" РАН за проведение секвенирования.
1.ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Особенности микроклонального размножения крыжовника
Крыжовник является ценной ягодной культурой, потребность в которой остро ощущается. Но размножение крыжовника традиционными способами малоэффективно в связи с высокими затратами на содержание маточников, плохим укоренением черенков и малым выходом качественного посадочного материала (Молканова О. И. и др., 2002).
В современных экономических условиях наиболее перспективным и рентабельным является метод микроклонального размножения. Он позволяет в достаточно короткие сроки получить выровненный посадочный материал (Hricovsky I., Maliarcikova V., 1987; Куташова С. М. и др., 2013). Растения, выращенные данным способом, в дальнейшем отличаются ювенильностью и лучшей побегообразовательной способностью, выделяются сильным ростом и на 10-30 % превосходят по урожайности контроль (Walsh C. S., 1986; Hricovsky I., Maliarcikova V., 1987).
Однако следует учитывать, что крыжовник является трудно размножаемой культурой, которая характеризуется высокой сортовой специфичностью при культивировании in vitro (Молканова О. И. и др., 2002; Шипунова А. А., 2002; Колбанова Е. В., 2013; Кухарчик, Н. В. и др., 2016).
В настоящее время разработаны методические рекомендации по культуре крыжовника in vitro в первую очередь в связи с необходимостью оздоровления исходного материала от вирусов (Приходько Ю. Н., 1994; 1995; 1996; 2001; Цубера Л. В., 1998; Тряпицына Н. В., Медведева Т. В., 2014).
Микроклональное размножение крыжовника включает 4 этапа. Этап введения в культуру, этап пролиферации, этап укоренения микропобегов и этап акклиматизации.
При введении в культуру одной из самых главных составляющих является стерилизация эксплантов. Общая картина получения стерильной культуры крыжовника сложная (Титаренко Т. Е., 2008). В этом процессе ключевую роль играют сроки вычленения эксплантов, физиологическое состояние маточных растений. Лучшими эксплантами считаются выделенные из искусственно пробужденных зимующих почек, из распускающихся почек, или из почек в период затухающего роста (Соловьева И. И., 1991; Приходько Ю. Н., 1996; Колбанова Е. В., Кухарчик Н. В., 1999; Титаренко Т. Е., 2008; Терентьева О. С., 2014).
Важнейшим физиологическим фактором является время введения, так как ткани, изолированные в момент вегетации, обладают большей чувствительностью к элементам питательной среды по сравнению с тканями, находящимися в состоянии глубокого или вынужденного покоя, что отражается на частоте пролиферации пазушных почек крыжовника (Колбанова Е. В., 2009; Тимофеева О. А., Невмержицкая Ю. Ю., 2012). Это подтверждают данные исследований Титаренко Т. Е. о том, что наиболее эффективно введение крыжовника во второй половине весны (апрель-май) эксплантами из этиолированных черенков (приживаемость 25 % против 3%) (Титаренко Т. Е., 2008). Так же успешным может быть введение эксплантов, выделенных в позднеосенние сроки, в октябре в виде почек, очищенных от верхних чешуй (Сковородников Д. Н., 2012; Колбанова Е. В., 2013).
Отмечено, что при введении эксплантов из одревесневших черенков, лучше приживаются апикальные меристемы, а при введении эксплантов из зеленых и этиолированных черенков одинаково хорошо прорастают верхушечные и боковые (Кухарчик Н. В. и др., 1999; Титаренко Т. Е., 2008). Выявлено также, что пробуждение меристем напрямую зависит от расположения почек на побеге. Оценка регенерационной способности пяти ярусов почек крыжовника сорта Русский показала преимущество трех верхних почек по скорости и числу развития меристем (Тимофеева О. А., Невмержицкая Ю. Ю., 2012; Терентьева О. С., Сковородников Н. Д., 2014).
На успех регенерации значительное влияние оказывает размер экспланта. Чем он меньше, тем меньше вероятность контаминации. Но с другой стороны регенерационная способность прямо пропорциональна величине экспланта. Крупные экспланты могут, вне зависимости от содержания гормонов в среде, легче формировать побеги (Тимофеева О. А., Невмержицкая Ю. Ю., 2012).
Универсальным эксплантом для большинства культур считается меристема (0,1-2мм), однако крупные экспланты из одревесневших черенков и вегетативные почки выносливей при стерилизации, отличаются более быстрым пробуждением, высоким коэффициентом размножения, при этом микрорастения легче адаптируются к нестерильным условиям (Кухарчик Н. В. и др., 1999, 2002; Тимофеева О. А., Невмержицкая Ю. Ю., 2012).
Для того чтобы получить жизнеспособную культуру крыжовника in vitro экспланты необходимо освободить от конкурентной грибной и бактериальной флоры. В литературных источниках для стерилизации эксплантов крыжовника используют большое разнообразие стерилизующих агентов. Наиболее распространённые из них: HgCI2 (0,1%), АgNOз (1%), Белизна (30-50%), Доместос (1:1-1:3), Н202 (33%), стиральный порошок Лотос и 70-95% спиртовой раствор с дальнейшим промыванием дистиллированной водой (Колбанова Е. В., Кухарчик Н. В., 1999; Колбанова Е. В., 2009; Титаренко Т.Е., 2008; Поздняков И. А., 2007; Булатова А. А., 2012; Клюваденко А. А. и др., 2013; Колбанова Е. В., 2013; Оверченко О. В. и др., 2014; Кухарчик, Н. В. и др., 2016).
Оптимальньный состав питательной среды - важное условие успешного размножения крыжовника in vitro. Во многих литературных источниках для введения в культуру рекомендуется агаризованная питательная среда Мурасиге-Скуга (МС), модифицированная по содержанию гормонов и других компонентов (Колбанова Е. В. Кухарчик Н. В., 1999; Тимофеева О. А., Невмержицкая Ю. Ю., 2012; Матушкин С. А., 2014; Терентьева О. С., Сковородников Д. Н., 2014).
Для введения в культуру крыжовника (сорта Машека, Раволт, Малахит) использовали среду МС, содержащую кроме основных макро- и микроэлементов витамины как: В6 (0,5 мг/л) В1 (0,1мг/л), С (1,0 мг/л), РР (0,5 мг/л), глицин (2,0
мг/л), мезоиназитол (100 мг/л), а также гормоны: 6-БАП (0,3 мг/л) или кинетин (0-0,3 мг/л), ИМК (0,02 мг/л), глюкозу 20 г/л, агар 4,6 г/л (рН 5,6-5,7) (Колбанова Е. В., 2009). Весьма перспективно добавление гидролизата казеина (200 мг/л) (Murashige Skoog F., 1962; Куташова С. М., и др., 2013). Хорошие результаты дает снижение содержания в среде макросолей, однако при этом отмечают большую роль генотипа (Колбанова Е. В., 2009).
В работе Соловьевой И.И. сообщается об использовании на этапе введения в культуру среды МС с добавлением тиамина 0,5 мг/л, сахарозы 30 г/л и агар -агара 6 г/л и исключением ауксина и цитокинина (Соловьёва И. И., 1991, Оверченко О. В. и др., 2014).
Высокую эффективность среды МС отмечает коллектив авторов СевероКавказского НИИ Садоводства и виноградарства. При культивировании крыжовника (сорт Юбилейный) стабильные результаты получены на среде, содержащей удвоенную дозу железа, витамины В1 (1000 мкМ), В6 (500 мкМ), РР (500 мкМ), С (1000 мкМ), инозитол (100 мг/л), сахарозу (20 г/л), агар (8 г/л). При исключении глицина такая среда обеспечивала приживаемость 92% меристем (Бунцевич Л. Л. и др., 2014).
На этапе введения среду с агаром можно заменить на жидкую с закреплением эксплантов на мостиках (Колбанова Е. В., Кухарчик Н. В., 1999; Кухарчик Н. В. и др., 1999; Колбанова Е. В., 2009).
Оптимальная кислотность среды для рода ШЪвя семейства Ого88и1апасеав - 5,8 ^1ак J., РарШет F., 2012).
Культура крыжовника отличается коротким сроком культивирования (3-4 недели), что вызывает необходимость частой пересадки. Сигналом служит замедление роста и побледнение побегов (Соловьева И. И., 1991). Однако есть сведения об опыте более длительного субкультивирования с пересадкой каждые 6 недель (Сковородников Д. Н., 2012).
После получения стерильной культуры крыжовника наступает этап ускоренного размножения, задача которого - получить максимальное количество жизнеспособного материала.
Большинство исследователей при выборе питательной среды для мультипликации (собственно этапа микроразмножения) останавливаются на среде МС. Ее особенность состоит в том, что она содержит наибольшее количество неорганического азота, который является важнейшим питательным элементом. При культивировании крыжовника многие авторы отмечают заметное снижение концентрации азота в среде. В базовой среде МС содержится азот в нитратной и аммонийной формах. Соотношение форм азота имеет большое значение: для сортов крыжовника Берилл и Родник наилучшее соотношение форм азота (NH4/NO3) - 1:3, что увеличивает коэффициент размножения на 30%. Для сорта Серенада это соотношение - 1:2, для сортов Черносливовый, Казачок и Малахит -1:4. (Молканова, О. И., Коновалова Л. Н., Смирнова Т. В., 2002; Колбанова Е. В., 2009; Тимофеева О. А., Невмержицкая Ю. Ю., 2012; Матушкин С. А., 2014). Оптимизировать среду размножения удалось также заменой хлористого кальция нитратом кальция (Матушкин С. А., 2014).
Другие авторы для мультипликации крыжовника рекомендуют среду Кворина-Лепуавра, коэффициент размножения на которой превышал контрольные значения в 1,2-2,9 раза ^е1а^ег М., 1985; Матушкина О.В. и др., 2014).
Чтобы добиться лучшей пролиферации в состав питательной среды вводятся гормональные препараты с цитокининовой активностью (6-БАП, TDZ, зеатин, 2^р, кинетин, СРРи). В опытах с разными сортами крыжовника наилучшие результаты обеспечивает 6-БАП (0,2-1,5мг/л), TDZ (0,5-0,1 мг/л) и СРРи (0,2 мг/л). При этом большую роль отводят генотипу сорта. Остальные цитокинины индуцируют незначительную пролиферацию (Молканова О. И., Коновалова Л. Н., Смирнова Т.В., 2002; Сковородников Д. Н., 2012; Тимофеева О.А. Невмержицкая Ю. Ю., 2012; Куташова С. М. и др., 2013; Терентьева О. С., Сковородников Д. Н., 2014; Матушкин С. А., Ярмоленко Л. В., 2014). Добавление в среду ауксина ИМК в низких концентрациях (0,01-0,2мг/л) также оказывает положительное влияние на микроразмножение (Приходько Ю. Н., 1996; Соловьёва И. И., 1991; Молканова О. И., Коновалова Л. Н., Смирнова Т. В., 2002).
При пересадке крыжовника на стадии микроразмножения особое значение имеет размер эксплантов. Выявлено, что наиболее жизнеспособными эксплантами являются конгломераты из 3-4 побегов (Соловьёва И. И., 1991; Матушкин С. А., 2014). При этом длительность пассажа на среде размножения не должна превышать один месяц (Соловьёва И. И., 1991; Сковородников Д. Н., 2012; Оверченко О. В. и др., 2014).
Известно, что положительное влияние на микроразмножение крыжовника оказывают предварительные обработки маточных растений физиологически активными веществами. Так, обработка маточников препаратами ретардантного типа (пикс, ретам, культар и 2-ХЭФК) положительно влияет на регенерационную способность эксплантов в первом пассаже и на этапе пролиферации (Аладина О. Н., 2004).
Для успешного укоренения сортов крыжовника очень большое значение имеет размер микропобегов. Так как к укоренению пригодны только крупные микрочеренки крыжовника (0,8-1 см), то возникает необходимость в дополнительном этапе элонгации - культивировании крыжовника на низкогормональной среде (Ковалева И. С., Данилова Т. В., 2001; Молканова О.И., Коновалова Л. Н., Смирнова Т.В., 2002). Решить эту проблему можно добавлением в среду CPPU (0,2 мг/л), что позволит получить большое количество побегов, достаточного размера для укоренения (Сковородников Д. Н., 2012). Введение в питательную среду Комплевита (витаминно-минеральный комплекс, 2 г/л) на фоне низкой концентрации 6-БАП (0,2 мг/л) позволило получить более крупные побеги хорошего качества, пригодные для укоренения (Сковородников Д. Н., 2012). Для получения хорошо развитых побегов рекомендуется также добавление в среду гибберелловой кислоты (0,5-1мг/л) совместно с 6-БАП (0,20,28 мг/л) (Barbara M. R. и др., 2005; Сковородников Д. Н., 2012).
Хорошие результаты (сорт Русский) по сравнению с контролем по количеству и высоте побегов были получены при совместном использовании 6-БАП (0,5 мг/л) и 2-ip (0,5-1 мг/л) (Шипунова А. А., 2002), кинетина (0,25 мг/л) в сочетании с 6-БАП (1,0 мг/л) (Оверченко О. В. и др., 2014).
Есть сведения (Куташова С. М. и др., 2013), что добавление в среду размножения цитокининов TDZ, кинетин, зеатин тормозит дальнейшее корнеобразование.
Этап укоренения является заключительным этапом культуры in vitro. Для успешного укоренения микрорастений и их активного дальнейшего роста можно использовать среду Кворина-Лепуавра, содержащую половинную концентрацию солей и высокую дозу аскорбиновой кислоты (15 мг/л) (Пронина И. Н. и др., 2014). На этапе укоренения генотипическое разнообразие сортов крыжовника оказывает наиболее сильное влияние на процесс укоренения. Известен ряд сортов крыжовника, образующих корни на безгормональной среде. Однако, для основной массы сортов наиболее эффективным препаратом, влияющим на укоренение, являлся ИМК (1 мг/л). По данным Оверченко О. В. добавление в среду кинетина (0,25мг/л) инициировало укореняемость сортов Киевский и Красень (Оверченко О. В. и др., 2014). Для лучшего укоренения микропобегов применяют затемнение нижней части пробирок (Соловьёва И. И., 1991; Молканова О. И., Коновалова Л. Н., Смирнова Т. В., 2002). По данным Сковородникова Д. Н. микрочеренки легкоукореняемых сортов, обработанные препаратом «Корневин», хорошо укореняются и адаптируются ex vitro (Сковородников Д. Н., 2012). Однако следует признать, что большинство наиболее ценных сортов крыжовника укореняются плохо, как в том, так и в другом случае.
Оптимальные условия культивирования - на стеллажах с лампами дневного света при температуре от 20-250С и световом периоде 16 часов. Относительная влажность воздуха - 30-60 % (Матушкин С.А., 2014). Есть данные о положительном влиянии снижения температуры до 15-170С на развитие и укоренение микропобегов (Молканова О.И., Коновалова Л. Н., Смирнова Т. В., 2002; Тряпицина Н.В., Медведева Т.В., 2014).
Еще одним сложным этапом микроразмножения является перенесение регенерантов в нестерильные условия. Для улучшения приживаемости укорененные микрорастения отмывают от среды раствором перманганата калия, корни опудривают активированным углем (Соловьева И. И., 1991) и
пересаживают в стерильный субстрат (Оверченко О. В. и др., 2014). Наилучшим вариантом субстрата для адаптации микрорастений крыжовника служит торф верховой и перлит (1:1) (Оверченко О. В. и др., 2014 ), в том числе с добавлением сфагнового мха ( Ковалева И. С., Данилова Т. В., 2001).
Таким образом, по свидетельству большинства исследователей наиболее уязвимыми звеньями микроклонального размножения крыжовника являются: стерилизация эксплантов, инициация культуры, элонгация микропобегов и адаптации микрорастений к нестерильным условиям.
1.2. Особенности микроклонального размножения сирени
Растения сирени, полученные методом микроклонального размножения, имеют ряд преимуществ перед привитыми. Они более долговечны, декоративны, быстро развиваются и зацветают, формируют идеальный габитус куста. Технология микроклонального размножения обеспечивает получение необходимого количества растений нового сорта в короткие сроки или сохранение коллекции. In vitro растения обладают признаками ювенильности, что позволяет их успешно размножать другими вегетативными способами, особенно зеленым черенкованием.
В исследованиях с многочисленными сортами сирени установлено (Молканова О. И. и др., 2002; Price M. R., 2000), что специфика микроклонального размножения и определение оптимальной модели культивирования сирени in vitro продиктованы биологическими особенностями вида. Морфолого-анатомический анализ эксплантов выявил тот факт, что развивающиеся in vitro побеги являются по происхождению аксиллярными, то есть образуются из уже существующих на момент начала микроразмножения пазушных меристем (McCown D. D., 2002).
Похожие диссертационные работы по специальности «Виноградарство», 06.01.08 шифр ВАК
Совершенствование методов криоконсервации и оздоровления от вирусных болезней образцов вегетативно размножаемых культур2017 год, кандидат наук Ухатова Юлия Васильевна
Принципы и методы создания и поддержания исходного материала на современном этапе селекции сахарной свеклы1999 год, доктор сельскохозяйственных наук Знаменская, Валентина Васильевна
Регенерация растений колонновидных слаборослых генотипов яблони из эксплантов различного происхождения2014 год, кандидат наук Ван-Ункан, Надежда Юрьевна
Биотехнологические приемы оптимизации микроклонального размножения и адаптации генотипов сирени (Syringa vulgaris L.)2005 год, кандидат биологических наук Крючкова, Виктория Александровна
Совершенствование клонального микроразмножения межвидовых форм смородины чёрной и малины ремонтантного типа2011 год, кандидат сельскохозяйственных наук Райков, Игорь Александрович
Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Буянов Иван Николаевич, 2017 год
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
1. Агафонов, Н. В. Способ размножения вишни in vitro / Н.В. Агафонов, А.Г. Матушкин, И. В. Жаркова, В. В. Фаустов, О. Н. Аладина - А. св. № 1639534. -1990. - 3 с.
2. Акимова, С. В. Разработка новых элементов технологии зеленого черенкования ягодных кустарников: автореф. дис. канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Светлана Владимировна Акимова - М., 2005. - 24 с.
3. Аладина, О. Н. Применение новых составов при укоренении зеленых черенков крыжовника / О. Н. Аладина, С.В. Акимова, Н. П. Карсункина, С. Ю. Чернова // Плодоводство и ягодоводство России, ВСТИСП. - 2011. -Т. 28, ч. 1. - С. 3-9.
4. Аладина, О. Н. Роль подготовки субстратов в технологии получения укорененных зеленых черенков крыжовника с закрытой корневой системой/ О. Н. Аладина, С. В. Акимова, С. Ю. Чернова // Доклады ТСХА. - 2010. - Вып. 282. - С. 573-576.
5. Аладина, О. Н. Применение мицефитов в технологии зеленого черенкования ягодных и декоративных кустарников / О. Н. Аладина, С.В. Акимова, И.Г. Тараканов // Плодоводство и ягодоводство России. -М.: Изд. дом МСП ГНУ ВСТИСП, 2008. - Т. 18 - С. 16-29.
6. Аладина, О. Н. Роль субстратов и внекорневых обработок в укоренении зеленых черенков крыжовника в пластиковых ячейках / О. Н. Аладина, С. В. Акимова, С. Ю. Чернова, А. Е. Полянская, И. В. Скоробогатова, Д. Н. Никиточкин // Известия ТСХА. - 2008. - №.1. - С. 1-12.
7. Аладина, О. Н. Мицефиты в технологии зеленого черенкования ягодных культур / О. Н. Аладина, С. В. Акимова, И. Г. Тараканов, Д. Н. Никиточкин // Агротехнологии XXI века: сб. трудов Международной научно-практической конференции. - М., 2007. - С. 171-173.
8. Аладина, О. Н. Роль внекорневых обработок в зеленом черенковании садовых растений / О. Н. Аладина, С. В. Акимова, Н. П. Карсункина, И. В. Скоробогатова // Известия ТСХА. - 2006. - № 3.- С. 46-55.
9. Аладина, О. Н. Роль внекорневых обработок в зеленом черенковании крыжовника / О. Н. Аладина, С. В. Акимова, Н. П. Карсункина, И. В. Скоробогатова, Д. Н. Никиточкин // Докл. ТСХА. - 2006. - Вып. 278. - С. 410-413.
10. Аладина, О. Н. Применение мицефита в технологии зеленого черенкования лапчатки (Pentaphylloides Duham.) / О. Н. Аладина, С. В. Акимова, И. Г. Тараканов // Интродукция нетрадиционных и редких растений: материалы 6-ой Междунар. научно-практ. конференции. - Белгород, 2006. -С. 278-282.
11. Аладина, О. Н. Роль внекорневых обработок в зеленом черенковании садовых растений / О. Н. Аладина, С. В. Акимова, Н. П. Карсункина, И. В. Скоробогатова // Известия ТСХА. - 2006. - Вып. 3. - С. 46-55.
12. Аладина, О. Н. Укоренение и выращивание крыжовника в контейнерах / О. Н. Аладина, С. В. Акимова, С. Ю. Чернова, Д. Н. Никиточкин // Доклады ТСХА. - 2006. - Вып. 278. - С. 410-413.
13. Аладина, О. Н. Влияние обработки маточных растений ретардантами на эффективность размножения красной смородины и крыжовника in vitro / О. Н. Аладина // Известия ТСХА. - 2004. - Вып.1.- С. 1-14.
14. Аладина, О. Н. Влияние лигногуматов на укореняемость и развитие зеленых черенков крыжовника при их укоренении в грядах и кассетах / О.Н. Аладина, С. В. Акимова // Теплицы России: инф. сборник. - СПб, 2004. - № 3. - С. 34-36.
15. Аладина, О. Н. Использование лигногуматов в технологии выращивания крыжовника с изолированной корневой системой / О. Н. Аладина, С.В. Акимова // Доклады ТСХА. - М., 2004. - Вып. 276. - С. 326-328.
16. Аладина, О. Н. Эффективность использования крезацина и его смесей с Мивалом при укоренении зеленых черенков барбариса / О. Н. Аладина,
Н. П. Карсункина, С. В. Акимова, В. В. Дьяков // Известия ТСХА. - 2003.-Вып. 4. - С. 1-11.
17. Аладина, О. Н. Использование паклобутразола при размножении вишни зелеными черенками / О. Н. Аладина, Х. В. Шарафутдинов, Н. В. Агафонов // Известия ТСХА. - 2003. - Вып. 1. - С. 116-129.
18. Аладина, О. Н. Качество укорененных черенков ягодных культур в зависимости от их обработки регуляторами роста в период корнеобразования / О. Н. Аладина, И. И Ханжиян // Регуляторы роста и развития растений: тез. докладов 5-ой Междунар. конф., 29 июня - 1 июля 1999 года. - М. - С. 145.
19. Аладина, О. Н. Пикс в ускоренном размножении трудно укореняемых сортов крыжовника / О. Н. Аладина, И. В. Жаркова // Доклады ТСХА. -1996. - Вып. 267. - С. 132-136.
20. Аладина, О. Н. Применение регуляторов роста в технологии размножения крыжовника / О. Н. Аладина, А. Н. Лесничева, Н. В. Агафонов // Изв. ТСХА. - 1989. - Вып. 4. - С. 107-113.
21. Аладина, О. Н. Влияние обработки маточных растений дроппом на эффективность размножения крыжовника / О. Н. Аладина, А. Н. Лесничева // Проблемы интенсификации садоводства: тез. докладов 3-ей Областной научной конференции молодых ученых. - Мичуринск, 1989. - С. 88-89.
22. Алтунин, Д. А. Применение гуминового препарата «Гумисол» под различные культуры / Д. А. Алтунин, И. Н. Титов, Т. И. Шишова, Д. В. Трофимов // Достижения науки и техники. - 2000. - №6. - С. 9-12.
23. Батукаев, А. А. Использование цеолита при адаптации и доращивании растений винограда in vitro в условиях in vivo / А. А. Батукаев, М. А. Садаева // Пути интенсификации и кооперации в селекции садовых культур и винограда. - Краснодар. - 2002. - С. 212-215.
24. Батукаев, А. А. Совершенствование технологии ускоренного размножения винограда методом in vitro и применение регуляторов роста в условиях in
vitro и in vivo: автореф. дис. ... д-ра с.-х. наук: 06.01.08 / Абдулмалик Абдулхамидович Батукаев - М., 1999. - 60 с.
25. Береснева, Л. В. Установление влияния основных приемов фитотехники и структуры насаждений на продуктивность виноградников предгорной зоны Алма-Атинской и Чимкентской областей Казахской ССР: дис. канд. с.-х. наук: 06.01.08 / Лидия Владимировна Береснева. - Алма-Ата, 1985. -195 с.
26. Бондарь, В. И. Продуктивность, качество и сохраняемость кормовой свеклы при регуляции онтогенеза / В. И. Бондарь, Н. С. Архангельский, А. Г. Иванишкин // Известия ТСХА. - 2003. - Вып. 3.- С. 23-32.
27. Блинохватов, А. Ф. Селен в биосфере / А.Ф. Блинохватов, Г. В. Денисова, Д. Ю. Ильин и др. - Пенза: РИО ПГСХА, 2001. - 324 с.
28. Брыкалов, А. В. Исследование биологической активности активированной формы лигногумата / А. В. Брыкалов, Е. М. Головкина // Биоресурсы, биотехнологии, экологически безопасное развитие регионов юга России. -2007. - С. 77.
29. Булатова, А. А. Условия стерилизации листовых эксплантов каллизии душистой и получение каллусной культуры / А. А. Булатова // Биология -наука XXI века: сб. тез. 16-ой Междунар. Пущинской школы - конф. молодых ученых. - Пущино, 2012. - С. 249.
30. Бунцевич, Л. Л. Разработка составов питательных сред для интродукции в культуру in vitro эксплантов сортов малины и крыжовника / Л. Л. Бунцевич, Е. Н. Беседина, М. А. Костюк, М. В. Макаркина // Плодоводство и виноградарство Юга России. - Краснодар, 2014. - №28 (04). - С. 1-10.
31. Бутенко, Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнология на их основе / Р. Г. Бутенко — М.: ФБК-Пресс, 1999. — 160 с.
32. Бъядовский, И. А. Оптимизация условий роста косточковых культур после микроразмножения: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Бъядовский Игорь Александрович. - М., 2007. - 25 с.
33. Ван-Ункан, Н. Ю. Регенерация растений колонновидных слаборослых генотипов яблони из эксплантов различного происхождения: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.05 / Ван-Ункан Надежда Юрьевна. - Мичуринск -Наукоград РФ, 2014. - 22 с.
34. Вовк, В. В. Оптимизация селекционного процесса и ускоренное размножение межвидовых ремонтантных форм малины методом in vitro: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.05 / Вовк Владимир Владимирович. -Брянск, 2000. - 20 с.
35. Волосевич, Н. Н. Изучение методов стерилизации при введении в культуру in vitro малины красной [Белоруссия] / Н. Н. Волосевич // Методическое обеспечение устойчивого развития современного плодоводства: материалы Междунар. научной конф. / Ин-т плодоводства Нац. акад. наук Беларуси. - 2006. - Т.18, ч.2. - С. 169-173.
36. Волынец, В. Ф. Аналитическая химия азота / В. Ф. Волынец, М. П. Волынец. - М.: Наука, 1977. - 307 с.
37. Воронина, А. И. Размножение и выращивание оздоровленного посадочного материала ягодных культур / А. И. Воронина, Е. И. Глебова, А. И. Поташова. - Л.: Колос, 1977. - 96 с.
38. Воронков, М. Г. Силатраны в медицине и сельском хозяйстве / М. Г. Воронков, В.П. Барышок // Рос. акад. наук, Сиб. отд-ние, Иркут. ин-т химии им. А. Е. Фаворского, М-во образования и науки Рос. Федерации, Иркут. гос. техн. ун-т. - Новосибирск: СО РАН, 2005. - С.174-224.
39. Воронков, М. Г. Силатраны / М. Г. Воронков, В. М. Дьяков. -Новосибирск: Наука, 1978. — 208 с.
40. Воронков, М. Г. Химия гетероциклических соединений. / М.Г. Воронков, Г.И. Зелчан. - Новосибирск: Наука, 1965. - №1. - С.51-57.
41. Высоцкий, В. А. Биотехнологические методы в системе производства оздоровленного посадочного материала плодово-ягодных культур: автореф. дис. ... д-ра с.-х. наук: 06.01.07; 03.00.12 / Высоцкий Валерий Александрович — М., 1998. — 44 с.
42. Гиголашвили, Т. С. Особенности водного режима Solanum tuberosum L. при микроклональном размножении: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 06.01.05 / Гиголашвили Тамара Сикоевна. - Минск, 1998. - 20 с.
43. Грозова, В. М. Изучение действия низких температур на состояние воды у растений винограда / В. М. Грозова, А. Ф. Кириллов // Экзогенная регуляция водообмена, засухо- и морозоустойчивость растений. -Кишинев: Штиинца, 1990. - С. 60-68.
44. Дезинфицирующее средство "БИОПАГ-Д" - область применения, производитель, цены // Институт эколого-технологических проблем (РОО ИЭТП): [Электронный ресурс]. Режим доступа: http: //polyguanidines. ru/biopagd.htm
45. Деменко, В. И. Микроклональное размножение садовых растений: Учебное пособие для студентов по специальности 310300 -"Плодоовощеводство и виноградарство" / В. И. Деменко // М-во сел. хоз-ва Рос. Федерации, Рос. гос. аграр. ун-т - МСХА им. К.А. Тимирязева. - М.: ФГОУ ВПО РГАУ-МСХА, 2007. - 55 с.
46. Деменко, В. И. Биологические и технологические особенности вегетативных способов размножения в системе производства здорового посадочного материала: дис. ... д-ра сельскохозяйственных наук: 06.01.07 / Деменко Василий Иванович. - М., 2006. - 329 с.
47. Деменко, В. И. Сравнительная оценка способов микроклонального размножения сирени (Syringa vulgaris L.) / В. И. Деменко, В. А. Крючкова // К 125-летию П. Г. Шитта и 100-летию А. М. Негруля: сб. науч. тр. по материалам науч. конф. - М.: МСХА, 2001 - С. 99-107.
48. Демьянова - Рой, Г. Б. Теоретические и практические аспекты использования биологически активных веществ в технологии выращивания овощных культур: автореф. дис. ... д-ра с.-х. наук: 06.01.06 / Демьянова-Рой Галина Борисовна. - М., 2003. - 50 с.
49. Дженеев, С. Ю. Использование искусственной ионитной почвы БИОНА при адаптации растений винограда, клонированных in vitro / С. Ю.
Дженеев, А. И. Литвак, В. С. Солдатов, А. З. Насимов // 1990, - 14 с. Рукопись деп. во ВНИИТЭИ агропром 31.10 1990.
50. Доан, Тху Тхуи. Особенности клонального микроразмножения редких и лекарственных растений (Euonymus nana Bieb., Dioscorea nipponica Makino., Dioscorea caucasia Lipsky. и Aristolochia manshuriensis Kom.): дис. ... канд. биологических наук: 03.01.06 / Доан Тху Тхуи. - М.: МСХА, 2013.
- 24 с.
51. Долгих, Ю. И. Сомаклональная изменчивость растений и возможности ее практического использования (на примере кукурузы): автореф. дис. ... д-ра биол. наук: 03.00.12 / Долгих Юлия Ивановна. — М., 2005. — 45 с.
52. Ермаков, Е. И. Развитие представлений о влиянии гуминовых веществ на метаболизм и продуктивность растений / Е. И. Ермаков, А. И. Попов // Вестник российской сельскохозяйственной науки - 2003. - № 2. - С. 16-20.
53. Ермаков, Е. И. Некорневая обработка растений гуминовыми веществами, как экологически гармоничная корректировка продуктивности и устойчивости агроэкосистем / Е. И. Ермаков, А. И. Попов // Вестник российской сельскохозяйственной науки - М., 2003. -№ 4. - С. 7-11.
54. Жемчужина, Н. С. Результаты экспериментов лаборатории космической биотехнологии ОАО «Биохиммаш» / Н. С. Жемчужина, И. Н. Кофнова, Т. К. Крашенинникова, В. В. Лаврикова, Е. В. Синчурина, Г. Л. Смоляная, А. Д. Украинцев // Космонавтика и ракетостроение. - 2007. - Т. 49, №4. - С. 103-107.
55. Земская, В. А. Физиология растений / В. А. Земская, Ю. В. Ракитин, Л. М. Черникова, З. В. Калиберная. - 1971. - Т. 18, вып. 4. - С.184-185.
56. Зубкова, Н. Ф. Дефолиирующая активность у веществ цитокининового типа / З. В. Букашкина, Х. А. Шаренкова, О. Н. Кулаева // Докл. АН СССР.
- 1983. - Т. 212, № 4. - С. 1011 -1018.
57. Карпова, О. В. Возможность использования элиситоров при клональпом микроразмножении ежевики / О. В. Карпова, В. Л. Высоцкий //
Плодоводство и ягодоводство России: сб. научных работ. - М., 1999. - Т. 6. - С. 84-87.
58. Карпова, О. В. Адаптация пробирочных растений ягодных культур и последействие криосохранения: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Карпова Ольга Викторовна. - М., 2000. - 24 с.
59. Карсункина, Н. П. Физиологически активные вещества во внекорневых подкормках при размножении крыжовника. Эффективность и механизм действия / Н. П. Карсункина, О. Н. Скоробогатова, О. Н. Аладина, С. В. Акимова, Е. А. Чакина // Физиология растений - фундаментальная основа современной фитобиотехнологии: школа для студентов и молодых ученых: тез. докладов конф., 2-6 октября 2006г. - Ростов н / Д., 2006. - С. 102.
60. Карсункина, Н. П. Действие регуляторов роста на прорастание клубней картофеля и стахиса и их устойчивость к болезням при хранении: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 03.00.12 / Карсункина Наталья Петровна. - М., 1996. - 18 с.
61. Катаева, Н. В. Клональное микроразмножение абрикоса / Н. В. Катаева, Л. А. Крамаренко // Бюл. Гл. ботан. сада. - М., 1989 - Т. 153. - С. 69-73.
62. Кириллов, А. Ф. О возможности применения кремнийорганических соединений в целях повышения морозоустойчивости винограда / А.Ф. Кириллов, Т.Х. Левит, С. И. Тома, Я. Д. Ханин, В. М. Грозова, А.М. Скуртул, Р. А. Козьмик, Я. В. Эрлихман // Строение и реакц. способность кремнийорган. соед. - Иркутск, 1989. - С. 310.
63. Клюваденко, А. А. Особенности получения асептической культуры голубики высокорослой (уассшит corymbosum 1.) / А. А. Клюваденко, О. Ю. Чорнобров, А. Ф. Лиханов // Биологически активные вещества растений - изучение и использование: материалы Междунар. научной конф. / Нац. академия наук Беларуси - Центральный ботанический сад, Отдел биохимии и биотехнологии растений. - Минск, 2013. - С. 331.
64. Ковалева, И. С. Особенности микроклонального размножения сортов крыжовника / И. С. Ковалева, Т. В. Данилова // Агро XXI. - 2001. - N 5. -С. 21.
65. Ковалева, И.С. Усовершенствование методик клонального микроразмножения и адаптации малино-ежевичного гибрида Тайберри / И. С. Ковалева, Т. В. Данилова, О. И. Молканова // Бюлл. ГБС, 2000. - Вып. 179. - С. 85-91.
66. Ковалева, И.С. Применение препарата рибав экстра в культуре in vitro сирени обыкновенной / И.С. Ковалева, Т.Г. Михеева // Доклады ТСХА. -2005. - Вып. 277. - С. 429-432.
67. Колбанова, Е.В. Подбор минерального и гормонального состава питательной среды для культивирования сортов крыжовника в культуре in vitro / Колбанова Е.В // Плодоводство: научные труды -Самохваловичи, 2013. - Т. 25. - С. 284-294.
68. Колбанова, Е. В. Влияние стерилизующих соединений и питательной среды на жизнеспособность и развитие меристематических верхушек сортов крыжовника в культуре in vitro. / Колбанова Е. В. // Плодоводство: научные труды. - Самохваловичи, 2009. - Т. 21. - С. 252-263.
69. Колбанова, Е.В. Особенности введения в культуру in vitro некоторых ягодных кустарников [Смородина черная и крыжовник] / Е. В. Колбанова, Н. В. Кухарчик // Итоги и перспективы ягодоводства. - Минск, 1999. - С. 38-41.
70. Корзинников, Ю. С. Регуляторы роста растений - производные триэтаноламина / Ю. С. Корзинников, В. М. Дьяков, В. Н. Казакова // Регуляторы роста растений. - Л., 1989. - С. 118-121.
71. Корнацкий, С. А. Наиболее значимые элементы промышленной технологии клонального икроразмножения древесных культур / С. А. Корнацкий // Пром. пр-во оздоровлен. посадоч. материала плодовых, ягод. и цветоч. - декоратив. культур. - М., 2001. - С. 103-104.
72. Кочетова, Н. И. Особенности регенерации растений крыжовника в условиях in vitro / Н. И. Кочетова, Л. В., Алешкевич, Ю. В., Кочетов Ю. В. // Вестник с.-х. науки. - 1981. - № 2. - С. 80-82.
73. Красильникова, Т.А. Факторы оптимизации репродуцирования in vitro различных представителей рода Rosa L.: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 03.00.12 / Татьяна Анатольевна Красильникова. - М., 1998. - 22 c.
74. Крючкова, В.А. Биотехнологические приемы оптимизации микроклолнального размножения и адаптации генотипов сирени: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.05, 03.00.23 / Крючкова Виктория Александровна. - М., 2005. - 49 с.
75. Крючкова, В.А. Взаимосвязь между гормональным составом питательной среды при укоренении сирени in vitro и последующей адаптацией к нестерильным условиям / В. А. Крючкова, Е. В. Мамонов, В. И. Деменко // Доклады ТСХА. - М., 2005. - Вып. 277. - С. 450-453.
76. Крючкова, В.А. Приживаемость сирени, размноженнной, при адаптации в культивационных сооружениях. / В. А. Крючкова, В. И. Деменко, Е. В. Мамонов // Докл. ТСХА. - М., - 2004. - Вып. 276. - С. 449-451.
77. Крючкова, В. А. Укореняемость сирени обыкновенной Syringa vulgaris L. in vitro в зависимости от регуляторов роста / В. А. Крючкова, В. И. Деменко, Е. В. Мамонов // Доклады ТСХА. - М., 2002. - Вып. 274. - С. 109112.
78. Кузнецова, Л. М. Обоснование параметров торфяного сырья, используемого в растениеводстве / Л. М. Кузнецова, В. Н. Булганина, Г. П. Симонова, В. А. Щербаков // Переработка и использование торфа: сб. научн. трудов / ВНИИТП. - Л., 1987. - Вып. 59.- С. 5-12.
79. Куклина, А. Г. Опыт клонального микроразмножения голубых жимолостей / А. Г. Куклина, Е. А. Семерикова, О. И. Молканова // Бюл. Гл. ботан. сада - 2003. - Вып.185. - С. 160-167.
80. Кутас, Е. Н. Научные основы клонального микроразмножения растений на примере интродуцированных сортов голубики высокой и брусники
обыкновенной: автореф. дис. д-ра биол. наук: 03.00.12 / Кутас Елена Николаевна. - М., 1997. - 35 с.
81. Куташова, С. М. Влияние цитокининов на эффективность микроклонального размножения крыжовника бесшипого in vitro / С. М. Куташова, А. А. Эрст, С. Ю. Толузакова // Инновационное развитие АПК в России: сб. докл. Междунар. научно-практ. конф. молодых ученых и специалистов, 12-13 марта 2013 г. — Саратов: ГНУ НИИСХ Юго-Востока Россельхозакадемии, 2013. — 467 с.
82. Кухарчик, Н. В. Размножение плодовых растений в культуре in vitro. / Н. В. Кухарчик, М. С. Кастрицкая, С. Э. Семенас, Е. В. Колбанова. -Минск: Белорусская наука, 2016. - 235 с.
83. Кухарчик, Н. В. Роль экспланта при инициации культуры in vitro некоторых плодовых и ягодных растений / Н. В. Кухарчик, С. Э. Семенас, М. С. Чиковани, Р. М. Пугачев // Плодоводство: научные труды / Белорусский научно-исследовательский институт плодоводства. - Минск, 1999. - Т. 12. - С. 25-28.
84. Кухарчик, Н. В. Культура in vitro в размножении и оздоровлении плодовых и ягодных растений / Н. В. Кухарчик, С. Э. Семенас, Е. В. Колбанова // Актуальные проблемы освоения достижений науки в промышленном плодоводстве: материалы Междунар. научно-практ. конференции. -Минск, 2002. - С. 107-113.
85. Левит, Т. Х. Влияние мивала на компонентный состав белков виноградной лозы в условиях закаливания / Т. Х. Левит, P. A. Козьмик, В. П. Барышок, М. Г. Воронков // Экзоген. регуляция водообмена, засухо- и морозоустойчивости растений. - Кишинев, 1990. - С. 75-86.
86. Леонтьев-Орлов, О. А. Получение посадочного материала яблони методом культуры тканей / О. А. Леонтьев-Орлов. - М., 1986. - 24 с.
87. Лештаева, Е. А. Гуминовые удобрения - новые резервы повышения урожайности и качества продукции в хозяйствах защищенного грунта / Е. А. Лештаева // Теплицы России. - 2007. - №1. - С. 48-50.
88. Лигногумат марка "Б" калийный 20 % водный раствор, канистра 10 л // "Радонеж-Агро" - интернет-магазин товаров для дома, сада и огорода [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://radonezh-agro.ru/p60985173-lignogumat-marka-kalijnyj.html
89. Лукаткин, А. С. Синтетические регуляторы роста как индукторы холодоустойчивости и продуктивности растений / А. С. Лукаткин, С. В. Пугаев, А. В. Пугаев, Н. В. Кипайкина // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях: тез. докл. 6-й Междунар. конференци.- М., 2001. - С. 108-109.
90. Матушкин, С. А. Влияние различных цитокининов на пролиферацию крыжовника и малины in vitro / С. А. Матушкин, Л. В. Ярмоленко // Плодоводство и ягодоводство России. - 2014. - Т. 38, №2. - С. 7-12.
91. Матушкин, С. А. Влияние эксплантов на пролиферацию крыжовника in vitro / С. А. Матушкин // Биология клеток растений in vitro и биотехнологий: сб. тез. 10-ой Междунар. конференции. - Казань, 2013. - С. 297.
92. Матушкина, О. В. Влияние минерального состава питательной среды на морфогенез садовых растений in vitro / О. В. Матушкина, И. Н. Пронина, Л. В. Ярмоленко, С. А. Матушкин // Достижения науки и техники АПК. -2014. - № 1. - С. 41-42.
93. Македонская, Н. В. Омоложение коллекции сирени в ЦБС НАН Беларуси / Н. В. Македонская, Н. Г. Брель // Теор. и прикл. аспекты биохимии и биотехнологии растений: сб. науч. трудов. - Минск, 2008. — С. 147-149.
94. Малаева, Е. В. Использование биотехнологических и молекулярных методов для комплексного изучения рода Actinidia Lindl / Е.В. Малаева, Л.Н. Коновалова, О.И. Молканова // Бюл. Глав. бот. сада. - 2008. - Вып. 195. - С. 177-187.
95. Мелехов, Е. И. Влияние экзогенных фитогормонов на устойчивость растительных клеток к нагреву и 2,4-Д / Е. И. Мелехов, Л. Ефремова // Физиология растений. - 1990. - Т. 37, № 3. - C. 561-568.
96. Минаев, В. А. Биологические особенности слаборослых клоновых подвоев яблони при клональном микроразмножении: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Вадим Александрович Минаев -Мичуринск; 2005. - 23 с.
97. Мирзаев, М. М. Эффективные способы выращивания меристемных растений гвоздики в почвенных субстратах / М. М. Мирзаев // Тр. НИИ садоводства, виноградарства и виноделия им. Шредера. - 1988. - Т. 50. - С. 31-34.
98. Миронова, О. А. Микроразмножение крыжовника / О. А. Миронова // Проблемы вегетативного размножения в садоводстве. - М., 1985. - C. 102106.
99. Мишке, И. В. Микробные фитогормоны в растениеводстве / И. В. Мишке // АН ЛатвССР, Ин-т микробиологии им. А. Кирхенштейна. - Рига: Зинатне, 1988 - С. 150.
100. Молканова, О. И. Комплексное изучение интродуцированных видов и сортов рода Syringa l. в ГБС ран и ЦБС НАН Беларуси / О. И. Молканова, Е. В. Спиридович, Л. Н. Коновалова, Н. Г. Брель, Ю. М. Зинина,
B. Н. Решетников // Вестник удмуртского университета. - 2011. - Вып. 2. -
C. 66 -73.
101. Молканова, О. И. Клональное микроразмножение представителей семейства крыжовниковых grossulariaceae dumant / О. И. Молканова, Л. Н. Коновалова, Т. В. Смирнова // Клональное Микроразмножение. Ботанические сады: состояние и перспективы сохранения, изучения, использования биологического разнообразия растительного мира: тез. докл. Междунар. науч. конф., 30-31 мая 2002 / Центральный Ботанический сад НАН Беларуси. - Минск: БПГУ. - 2002. - С. 186.
102. Молканова, О. И. Клональное микроразмножение интродуцированных сортов Syringa vulgaris L. / О. И. Молканова, О. А. Чурикова, Л. Н. Коновалова, И. Б. Окунева // Вестн. Моск. ун-та, серия Биология. -2002. - № 4. - С. 8 - 14.
103. Молканова, О. И. Использование регуляторов роста цитокининового ряда при микроклональном размножении сирени / О. И. Молканова, Л. Н. Коновалова // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях. - 2001. - С. 180.
104. Муратова, С. А. Размножение ягодных культур in vitro / С. А. Муратова, М. Б. Янковская, Н. В. Соловых, В. М. Тюленев // Плодоводство. Ягодоводство на современном этапе. / Ин-т плодоводства Нац. акад. наук Беларуси. - 2004. - Т. 15. - С. 232-236.
105. Муратова, С. А. Повышение эффективности клонального микроразмножения плодовых, ягодных и декоративных культур / С. А. Муратова, М. Б. Янковская, В. М. Тюленев, Н. В. Соловых // Экология человека. Концепция факторов риска и управления рисками: сб. матер. 7-ой Всерос. науч.- практ. конф. - Пенза, 2003. - С. 166-168.
106. Нейгебаур, Э. Ф. Применение жидких азотных удобрений, пестицидов и ретардантов / Э. Ф. Нейгебаур, Т. Н. Башкирова, К. Веверка и др. // Химизация сельского хозяйства. - 1989. - № 6. - С. 69-71.
107. Никифоров, М. А. Практикум по организации овощеводства, садоводства, виноградарства в совхозах и колхозах / М. А. Никифоров, Б. И. Яковлев. -М.: Колос, 1972. - 400 с.
108. Нугманова, Т. А. Растения как источник эндофитных грибов - новых продуцентов фитогормонов / Т. А. Нугманова, Ю. В. Чекменев, М. В. Кабаргина, М. Г. Шатило // Актуальные проблемы инноваций с нетрадиционными растительными ресурсами и создания функциональных продуктов. - М., 2001. - С. 162.
109. Обработка домашних помещений от пыли, шерсти, вирусов и клещей // Питомник Royal legacy [Электронный ресурс]. Режим доступа: http : //www.royall egacy .ru/index .php?id=9 8
110. Оверченко, О. В. Розмноження перспективних сорив агрусу (grossularia reclinata l.) в культурi in vitro / О. В. Оверченко, А. А. Клюваденко, А. Ф. Лиханов, С. Н. Костенко, М. Д. Мельничук // Науковий вюник НЛТУ
Украши. 36ipHrn науково-технiчних праць 1.Люове та садово-паркове господарство. - 2014. - Вип. 24.8. - С. 87-93.
111. О пользе гуматов замолвите слово // Инга Петерс «НПО» «Реализация экологических технологий» 2004 [Электронный ресурс]. Режим доступа: http: //www.humate.spb.ru/publications/archive/O%20polze%20gumatov%2020 04.pdf
112. Орлов, П. А. Клеточные и генно-инженерные технологии модификации растений / П.А. Орлов. — Минск, 2006. — 248 с.
113. Павлова Н. Ю. Использование цеолита для контейнерной культуры крыжовника / Н. Ю. Павлова, И. И. Крылова // Плодоводство и ягодоводство России. - М.: ВСТИСП, 1996. - Т. 3. - С. 135-140.
114. Паскеев Н. А. Совершенствование системы производства оздоровленного посадочного материала земляники в условиях Северного Кавказа: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Паскеев Николай Анатольевич. -Краснодар. - 2001. - 27 с.
115. Пат. №2106087, Российская Федерация МПК A01N 39/02, С. П. Князев, Е. А.Чернышев, В. Н. Казакова, А. Н. Поливанов, П. А. Стороженко, В. Г. Лахтин опубл. 10.03.98;. [Электронный ресурс]. Режим доступа: http: //www.findpatent.ru/patent/233/2336699. html
116. Пат. 2368127 Российская Федерация, МПК A01G1/00. Субстрат для укоренения зеленых черенков трудноукореняемых ягодных и декоративных кустарников / О. Н. Аладина, С. В. Акимова, В. Н. Архангельский, С. А. Аладин, С. Ю. Чернова, Д. Н. Никиточкин № 2007145661 Заявлено 11.12.2007; Опубл. 27.09.2009.
117. Персикова, Т. Ф. Влияние регуляторов роста на урожай и качество клубней раннего картофеля / Т. Ф. Персикова, А. Р. Цыганов // Регуляторы роста и развития растений: тез. докладов 5-ой Межд. конф. - М., 1999. - Ч. 2. - С. 229-230.
118. Поздняков, И. А. Особенности микроклонального размножения шиповника и декоративных сортов рода Rosa L.: автореферат дисс. ... кандидата
сельскохозяйственных наук: 06.01.07 / Иван Александрович Поздняков. -М., 2007. - 220 с.
119. Покровский, Н. П. Исследование биологической активности новых стимуляторов роста, полученных путем культивирования эндофитных грибов / Н. П. Покровский, Т. А. Нугманова, М. В. Кабаргина. - М.: НПП ПВОН "Биоин". - 1999.- 6 с.
120. Полевой, В. В. Система регуляции у растений / В.В. Полевой // Вестник Ленинградского университета, серия Биология. - 1981. - № 21. - С. 105.
121. Поляков, С. А. Адаптация растений регенерантов земляники к неблагоприятным условиям / С. А. Поляков, С. П. Расторгуев, А. В. Верзилин // Повышение эффективности садоводства в современных условиях: материалы Всероссийской научно-практической конф. -Мичуринск-Наукоград РФ, 2003. - Т. 2 - С. 335-339.
122. Полянская, А. Е. Особенности выращивания саженцев ягодных культур из укорененных черенков с закрытой корневой системой: дис. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Полянская Анна Евгеньевна. - М., 2009. - 20 с.
123. Пономаренко С. П., Гашников Э. Г., Определение типа физиологической активности эмистима с использованием специфических биотестов / Аграрная Россия. - М.: ООО "Фолиум", 1999. - №1. - С. 15-16.
124. Попова, И. В. Крыжовник / И. В. Попова. - М.: Агропромиздат, 1985. - 39 с.
125. Попович, Е. А. Значение типа цитокинина в микроразмножении сирени обыкновенной / Е. А. Попович, О. В. Тройнина, В. Л. Филипеня // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях: тез. докладов, 2628 июня 2001 г. - М.: МСХА, 2001. - С. 186-187.
126. Приходько, Ю. Н. Вирусные болезни плодовых и ягодных культур в европейской части России и современная схема производства и сертификации безвирусного посадочного материала / Ю.Н. Приходько // Промышленное пр-во оздоровленного посадочного материала плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур: материалы Междунар. научно-практ. конф. - М., 2001, - С. 54-68.
127. Приходько, Ю. Н. Технология оздоровления крыжовника от вирусов / Ю. Н. Приходько // Плодоводство и ягодоводство России. - 1996. - Т. 3 -С. 109-113.
128. Приходько, Ю. Н. Разработка метода хемотерапии вирусов в процессе микроклонального размножения плодовых и ягодных культур / Ю. Н. Приходько, Л. В. Цубера // Плодоводство и ягодоводство России. -1996. - Т. 3. - С. 96-101.
129. Приходько, Ю. Н. Получение и микроклональное размножение безвирусных клонов крыжовника / Ю. Н. Приходько // Молодые ученые -садоводству России. - 1995. - С. 150-154.
130. Приходько, Ю. Н. Вирусные болезни крыжовника в средней полосе России / Ю. Н. Приходько, О. Ю. Суркова // Плодоводство и ягодоводство России. - 1994 - Т.1 - С. 126-136.
131. Пронина, И. Н. Антиоксидантная активность аскорбиновой кислоты при корнеобразовании садовых культур in vitro / И. Н. Пронина, О. В. Матушкина, Л. В. Ярмоленко, С. А. Матушкин // Плодоводство и ягодоводство России. - 2014. - Т. 38, №2. - С. 59-63.
132. Ракош, Л. Опыт с применения Лигногумата и продуктов на его основе в сельском хозяйстве Чешской республики / Л. Ракош, П. Штранц // Гуминовые кислоты и фитогормоны в растениеводстве. 12 - 16 June. -Kiev: Radostim, 2007. - С. 114-121.
133. Ребров, А. Н. Адаптация растений винограда in vitro к условиям нестерильной среды: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 06.01.07 / Ребров Антон Николаевич. - Краснодар, 2007. - 27 с.
134. Рожнова, Н. А. Эмистим - индуктор устойчивости к вирусным болезням паслёновых / Н. А. Рожнова, Г. А. Геращенков, М. М. Янина, Ш. Я. Гилязетдинов // Аграрная Россия. - 1999. - № 1. - С. 35-38.
135. Романенко, Е. С. Применение лигногумата на посевах озимой пшеницы сорта Донская юбилейная / Е. С. Романенков, А. В. Брыкалов,
0. В. Мазницына, Н. А. Павленко // Проблемы экологии и защиты растений в сельском хозяйстве. - 2006. - С. 175-177.
136. Романов, Е. М. Экологические аспекты утилизации осадков сточных вод в лесных питомниках / Е. М. Романов // Проблемы охраны окружающей среды от промышленных, бытовых, биологических и медицинских отходов, осадков сточных вод: матер. Международ. науч.-практ. конференции. - Пенза, 1997. - С. 147-150.
137. Роньжина, Е. С. Роль цитокининов в регуляции онтогенеза листьев бобов / Е. С. Роньжина // Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях. - М.: МСХА, 2001. - 62 с.
138. Садыкова, А. Ф. Выращивание сортовой сирени в культуре in vitro /
A. Ф. Садыкова, Т. В. Жерновкова // Механизмы поддержания биол. разнообразия. - Екатеринбург, 1995, - С. 129-130.
139. Седых Э. М. Анализ осадков городских стоков / Э. М. Седых,
B. Е. Аджиенко, Н. П. Старшинова, Л. Н. Банных, Ю. Г. Таций, Н. И. Гулько // РИА Стандарты и качество. Партнеры и конкуренты. - 2001. - №
1. - С. 16-20.
140. Синчурина, Е. В. Технология культивирования грибного штамма Phialocephala fortinii - продуцента биологически активных веществ / Е. В. Синчурина // Естественные и технические науки. - 2010. - №1. - С. 359-361.
141. Синчурина, Е. В. Выделение микромицетов из ризосферы корней лекарственных растений и изучение их биологической активности / Е.В. Синчурина, Н. С. Жемчужина, Т. К. Крашенинникова // Молекулярные механизмы взаимодействия микроорганизмов и растений: фундаментальные и прикладные аспекты: сб. материалов Всероссийской конф., Саратов, 15-17 июня 2005. - Саратов: Научная книга, 2005. - С. 4647.
142. Синчурина, Е. В. Повышение продуктивности сельскохозяйственных растений при обработке стимуляторами роста грибного происхождения /
Е. В. Синчурина, Н. С. Жемчужина, Т. К. Крашенинникова // Биотехнология и современность: сб. 4 -го Международного форума. -Санкт-Петербург, 2005. - С. 53-54.
143. Синчурина, Е. В. Новый препарат - стимулятор роста растений на основе микоризных грибов / Е. В. Синчурина, Н. С. Жемчужина, Т. К. Крашенинникова // Перспективы и проблемы развития биотехнологии в рамках единого экономического пространства стран Содружества: сб. материалов Междунар. научно-практ. конф., 25-28 мая 2005 г., Минск-Нарочь. - Мн.: РИВШ, 2005. - С. 235-236.
144. Синчурина, Е. В. Новый препарат - стимулятор роста растений для увеличения продуктивности сельскохозяйственной растений / Е. В. Синчурина, Н. С. Жемчужина, Т. К. Крашенинникова // Высокоэффективные пищевые технологии и технические средства для их реализации: сб. научных трудов 2-ой Всерос. научно-практ. конф. -выставки с междунар. участием, ч. 2. - М.: МГУПП, 2004. - С. 118-121.
145. Скалий, Л. П. Размножение растений зелеными черенками: Учеб. пособие / Л.П. Скалий, Е.Г. Самощенков; Департамент кадровой политики и образования М-ва сел. хоз-ва Рос. Федерации. Моск. с.-х. акад. им. К. А. Тимирязева - М.: МСХА, 2002. - 111с.
146. Сковородников, Д. Н. Совершенствование клонального микроразмножения крыжовника / Д. Н. Сковородников // Вестник Орел ГАУ, 2012. - №6(39) -С. 24-27.
147. Сковородников, Д. Н. Совершенствование клонального микроразмножения крыжовника // Вестник орловского государственного аграрного университета. - 2012. - Т. 39, №6. - С. 24-26.
148. Сковородников, Д. Н. Особенности клонального микроразмножения in vitro и ускорение селекции новых ремонтантных форм малины: автореф. ... дис. канд. с.-х. наук: 06.01.05, 03.00.12 / Сковородников Дмитрий Николаевич. - Брянск, 2004. - 20 с.
149. Скоробогатова, И. В. Изменение содержания фитогормонов в проростках ячменя в онтогенезе и при внесении регуляторов, стимулирующих рост / И. В. Скоробогатова, Н. П. Карсункина, Е. В. Захарова, П. Б. Курпатов, Г. Л. Сорокина, Е. Н. Кислин // Агрохимия. - 1999. - № 8. - С. 49-53.
150. Соловьева, И. И. Клональное микроразмножение крыжовника / И. И. Соловьева // Ускоренное размножение посадоч. материала плодово-ягодн. культур с использ. биотехнол. методов. - Алма-Ата, 1991. - С. 108111.
151. Спиваковский, Н. Д. Удобрение плодовых и ягодных культур / Н. Д. Спиваковский - М.: Сельхозиздат, 1962 - 360 с.
152. Терентьева, О. С. Введение в культуру in vitro растений крыжовника / О. С. Терентьева, Д. Н. Сковородников // Развитие научной, творческой и инновационной деятельности молодежи: материалы 5-ой Всерос. научно-практ. заочной конф. молодых ученых. - Курган: Изд-во Курганской ГСХА, 2014. - С. 94-97.
153. Тимофеева, О. А. Клональное микроразмножение растений: учебно-методическое пособие / О. А. Тимофеева, Ю. Ю. Невмержицкая —Казань: Казанский университет, 2012. — 56 с.
154. Титаренко, Т. Е. Оптимизация методов введения в культуру in vitro некоторых ягодных культур - смородины чёрной (Ribes nigrum L.), смородины красной (Ribes rubrum L.) и крыжовника (Ribes uvacrispa L.) / Т.Е. Титаренко // Бютехнолопя. Наука. Освгга. Практика: тези доповщей IV Мiжнародноi науково-практично!' конференцп, Дншропетровськ, 11 -13 листопада 2008 р. - Дншропетровськ, 2008. - С. 174-175.
155. Тряпицына, Н. В. Хемотерапия крыжовника в условиях культуры in vitro / Н. В. Тряпицына, Т. В. Медведева // Плодоводство и ягодоводство России. - 2014. - Т. 38, № 2. - С. 177-183.
156. Тарашвили, З. Т. Размножение черной и красной смородины in vitro / З.Т. Тарашвили, В.А. Высоцкий // Технология возделывания интенсивных садов и виноградников в Грузинской ССР. - Тбилиси, 1983. - C. 176-185.
157. Теплицкая, Л. М. Влияние гумата калия на прорастание семян Orchis picta Loisel. in vitro / Л. М. Теплицкая //Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях. - M., 2001. - С. 196.
158. Упадышев, М. Т. Особенности клонального микроразмножения сортовой сирени / М. Т. Упадышев, М. П. Лапинская // Новые и нетрадиц. растения и перспективы их использ.: 4-ый Междунар. симп. - М., 2001. - Т.1. - С. 453-455.
159. Упадышев, М. Т. Роль фенольных соединений в процессах жизнедеятельности садовых растений / М. Т. Упадышев. - М.: Изд. дом МСП, 2008. - 319 с.
160. Фирсанова, Г. Н. Влияние фитогормонов на анатомическую структуру листьев яровой пшеницы / Г. Н. Фирсанова, Д. А. Климачев // Регуляторы роста и развития растений: тез. докл. 4-ой Межд. конф. - Москва, 1997. - С. 83.
161. Цветков, И. Адаптация на хризантема, получена в различни видове субстрати / И. Цветков, С. Кръстанова // Растениевъдни науки. -1991. - Т. 28, № 3-6. - С. 44-49.
162. Цубера, Л. В. Хемотерапия вирусов плодовых и ягодных культур в процессе микроклонального размножения / Л. В. Цубера, Ю. Н. Приходько // Актуал. вопр. теории и практики защиты плодовых и ягодн. культур от вредн. организмов в условиях многоукладности сел. хоз-ва. - М., 1998, - С. 251-254.
163. Чекурова, Г. В. Размножение клюквы крупноплодной в культуре in vitro / Г. В. Чекурова, Л. А. Евтухова, А. Г. Слюсаренко // Бюл. Гл. ботан. Сада. -1990. - Т. 157. - С. 90-95.
164. Чернова, С. Ю. Выявление оптимальной фазы корнеобразования у зеленых черенков крыжовника для внекорневых обработок регуляторами роста / С. Ю. Чернова, С. В. Акимова, О. Н. Аладина // Доклады ТСХА. - 2007. -Вып. 279.- С. 551-553.
165. Чернова, С. Ю. Оптимизация условий укоренения зеленых черенков крыжовника и барбариса в пластиковых ячейках: дисс. ... канд. с.-х. наук: 06.01.07 / Чернова Светлана Юрьевна. - М., 2008. - 20 с.
166. Чигоев, И. З. Ягодные культуры / И. З. Чигоев. - Владикавказ: Ир, 1995. -262 с.
167. Чижик, О. В. Адаптация клонированного посадочного материала древесно-кустарниковых видов рода vaccinium с использованием комплексного микробного препарата / О. В. Чижик, В. Л. Филипеня, В. И. Горбацевич,
B. Н. Решетников, Л. Е. Картыжова, З. М. Алещенкова // К 75-летию академика НАН Беларуси В. Н. Решетникова: матер. Международной научной конференции, 29-31 мая 2013 г. - Минск, 2013. - С. 348-349.
168. Шабаев, Н. Е. Использование лигнина и биорганического концентрата для получения посадочного материала облепихи: материалы научн. конф., посвящ. 85-летию со дня рождения И. И. Синягина. - Новосибирск, 1996. -
C. 60-62.
169. Шипунова, А. А. Влияние некоторых факторов культивирования на клональное микроразмножение плодовых и ягодных растений / А. А. Шипунова, В. А. Высоцкий // Плодоводство и ягодоводство России. -М.: ГНУ ВСТИСП, 2002. - Т. 9. - С. 193-200.
170. Abbott. Micro propagative propagation of apples / Abbott, A. J. Constantine, S. Wiltshine and A. Belcher // In: Rpt. Long Ashton Res. Std for 1978, 1980. -P. 80.
171. Acta Horticultural Home Page // International Society for Horticultural Science [electronic resources]. www.actahort.org
172. Anon. Grace aux cultures in vitro, le framboisier regenere // Agri sept, 1986. -Vol. 1070. - P. 23.
173. Baolin, Z. Acclimatization systems for Euplorbia fulgent micro cutting/ Z. Baolin, L. P. Stoltz // Hort. Sci. - 1989. - Vol. 24, N 6. - P. 1025-1026.
174. Bengtson, C. Water stress, transpiration, kinetin and ABA / C. Bengton // Physiol Plant. -1979. -Vol. 45. - P. 183-188.
175. Blanke, M. M. Stomata of apple leaves cultured in vitro / M. M. Blanke, A. P. Belcher // Plant. Cell. Tissue and Organ Culture. -1989. - Vol. 19, N 1. - P. 85-89.
176. Bowden, A. Transferring tissue-cultured plants - in particular grevilleas - to the nursery environment // Comb. Proc. Intern. Plant Propagators' Soc. - 1985. -Vol. 34. - P. 76-78.
177. Brainerd, K. E. Acclimatization of in vitro of apple and plum trees to low relative humidity / K. E. Brainerd // Thesis (Ph. D.). - Oregon State University. -1982. Vol. 80.- P.120-121
178. Cappellades, M. Effects of sucrose on starch accumulation and rate of photosynthesis in Rosa cultured in vitro / M. Cappellades, R. Lemeur and P. Debergh // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. - 1991. - Vol. 25, Is. 1. - P. 21-26.
179. Chariebois, D. Multiplication in vitro de Syringe vulgarls 'Katherine Havemayer' et 'Charles Joly' / D. Chariebois, C. Richer // Canad. J. Plant Sc. - 2004. - Vol. 84, N 1. - P. 279-289.
180. Cheema, GS. In vitro propagation of apple rootstock / GS Cheema and DP Sharma // Emla 25 Acta Horticulturae (ISHS). - 1983. - P. 75-88.
181. Deng R. In vitro hardening of red raspberry by CO2 enrichment and reduced medium sucrose concentration / R. Deng, D.J. Donnelly // Hort. Science, 1993. -Vol. 28, N 10. - P. 1048-1051.
182. Desyardins, J. Effect of C02 enrichment and high photosynthetic photon flux on development of autotrophy and growth of tissue cultured strawberry, raspberry and asparagus plant / J. Desyardins // Acta Horticult. - 1988. - N 230. - P. 45-53.
183. Dixon, R. K. Response of white oak seedlings to foliar applications of fertilizer and plant growth regulators / R. K. Dixon, H. E. Garrett, G. S. Cox // Hort. Science, 1984. - Vol. 19, N 4. - P. 523-524.
184. Donnelly, D. J. Leaf anatomy of red raspberry transferred from culture to soil / D. J. Donnelly, W. E. Vidaver // J. Am. Soc. Hort. Science. - 1984. - Vol. 109, N 2. - P. 172-176.
185. Doolan, D. W. Culture of micro propagated strawberry plants in nutrient film technique / D. W. Doolan, M. J. Hennerby, J. V. Moorgan // Acta. Horticult. -1983. - № 133. - P. 103-109.
186. Drainerd, E. Acclimatization of Aseptically cultured Apple Plants to Low Relative Humidity / E. Drainerd et.al // J. Am. Soc. Hort. Sci. 1981. - Vol. 106, N 4. - P. 515-518.
187. Einset, J. W. Multiplication of Syringa species and cultivars in tissue culture / J. W. Einset, J. H. Alexander, Comb. Proc. Intern. Plant Propagators Soc. -1985- Vol. 34. - P. 628-636.
188. Filiti, N. In vitro rhizogenesis: histoanatomicul aspects on Prunus root stock / N. Filiti et al. // Advans in Horticultural Sci. 1987. - Vol. l, N 1. - P. 34-38.
189. Fuchigami L. H. Abaxial Transpiration and Water Loss in Aseptically cultured plum / L. H. Fuchigami, T. V. Cheng // J. Am. Soc. Hort. Sic. 1981. - Vol. 106, N 4. - P. 519-522.
190. Frye, C. L., Vogel G. E., Hall J. A.: J. Amer. Chem. Soc. 1961. - Vol.83, N 20. -P. 996-997.
191. Griffis J. L. Establishing tissue-cultured plants in soil Griffis J. L. Establishing tissue-cultured plants in soil [ Methods of growing fruit plants in the soil obtained by tissue culture method] / J. L. Griffis, G. Hennen, R. P. Oglesby // Comb. Proc. Intern. Plant Propagators' Soc. - 1984. - Vol. 33. - P. 618-622.
192. Grout, B. W. W. Photosynthesis of regenerated plantles in vitro and the stresses of transplantins / B. W. W. Grout // Acta. Horticul. - 1988. - Vol. 230. - P. 129135.
193. Gur, A. The role of myo-inositol and cytokinins in the survival of roots peach cuttings / A. Gur, A. Altman, R. Stern, B. Wolowitch // Acta Horticultural. -1986. - N 179. - P. 853-860.
194. Hricovsky, I. Vyuzitie explantatovych kultur v ovocinarstve / I. Hricovsky, V. Maliarcikova // Vestn. CS Acad. Zemed 1987. - Vol. 34, N 11. - P. 650-652.
195. Lima, H. J. The effect of propagation method on forced potted plants and on pathogen resistance in Syringa vulgaris / H. J. Lima, R. Ticknor // Comb. Proc. Intern. Plant Propagators' Soc, 1987. - Vol. 36. - P. 126-131.
196. McCown D. D. Micro propagation of Syringa: tree vs. shrub lilacs/ D. D. McCown // Comb. Proc. Intern. Plant Propagators' Soc. - Seattle (Wash.), 2002. - Vol. 51. - P. 117-119.
197. Mehers, O. Ethylene production inhibitors can improve in vitro propagation of roses / O. Mehers, L. Meireson et al // Meded. Fac. Landbouwensch. Rijksuniv. Gent. -1984. - Vol. 49, N 36. - P. 1139-1144.
198. Murashige, T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures / T. Murashige, F. Skoog // Physiol. Plant. - 1962. - P. 473-97.
199. Nooden, L. D. Cytokinin Control of Monocarpic Senescence in Soybean / L. D. Nooden, D. S. Letham // Plant Growth Substances. - 1985. - P. 324-332.
200. Oplustilova, M. Dormance pupenu seriku (Syringa vulgaris L.) v podminkach in vitro a in vivo / M. Oplustilova, Jan Hradilik // Acta Universitatis Agriculturae, Facultas Agronomica. - 1993. - R. 41 - P. 59-86.
201. Orlikowska, T. Rozmnazanie pigwy S 1 w kulturach in vitro / T. Orlikowska // Ogrodnictwo. -1988. - Vol.25, N. 4. - P. 6-8.
202. Pierik, R. L. M. Micro propagation of Lilac (Syringa vulgaris L.) / R. L. M. Pierik, H. H. M. Steagmans, P. F. Sprenkels // Biotechnology an d Forestry. - 1992. -Vol. 20. - P. 407-426.
203. Pierik R. L. M. Vegetative propagation of Syringa vulgaris L. in-vitro / R.L.M. Pierik, H. H. M. Steegmans, A. A. Elias, O. T. J. Stiekema, A. J. van der Velde // Acta Horticulturae. 1988. - P. 25-40.
204. Pierik, R. L. M. In vitro culture of higher plants / R. L. M. Pierik 1987. - Vol. 5. - 344p.
205. Pocock, S. Procedures and problems associated with the transfer of tissue-cultured plants / S. Pocock // Comb. Proc. Intern. Plant Propagators' Soc. -1984. - Vol. 33. - P. 316-320.
206. Preece, J. E. The most tricky part of micropropagation: establishing plants in greenhouses and fields / J. E. Preece // Comb. Proc. Intern. Plant Propagators' Soc. - 2002 - Vol. 51. - P. 300-303.
207. Price, M. R. Propagation of French hybrid lilacs / M.R. Price // Comb. Proc. Intern. Plant Propagators' Soc. -S.l., 2000. - Vol. 49. - P. 325-327.
208. Reed, B. M. Evaluation of a modified encapsulation-dehydration procedure incorporating sucrose pretreatments for the cryopreservation of Ribes germplasm / Barbara M. Reed, Laura Schumacher, Dominique Dumet, and Erica
E. Benson // In Vitro Cell. Dev. Biol.—Plant 41. - July -August 2005. - P. 431436.
209. Romani, F. et al. La vetrificazione in germogli di M26 coltivate in vitro / F. Romani et al. // Annali. Fac. Agr. Univ. Perugia. - 1987. - Vol. 10, N 1. - P. 709728.
210. Roux, J.-M. Nutrition minerale de plants de fraisier micropropages en acclimatition ex vitro / J.-M. Roux, E. Parisot, J. Marchal // Fruits. - 1989. - Vol. 44, N 5. - P. 275-279.
211. Safadi, F. In vitro acclimatization of tobacco with polyethylene Glycol and salt /
F. Safadi // Hort. Sci. -1990. - Vol. 25, N 11. - P. 1356.
212. Schaad, N. W. Laboratory Guide for Identification of Plant Pathogenic Bacteria / N. W. Schaad, J. B. Jones, W. Chun // 3nd. Ed. APS Press, St. Paul, MN, USA. -2001. - P. 152-156
213. Selvapandijan, A. et al // Plant. Sci. 1988. -Vol. 56. - №1. - P. 81-83.
214. Sedlak, J. In vitro establishment and proliferation of red currant cultivars / J. Sedlak, F. Paprstein // Hort. Sci. (Prague). - 2012. - Vol. 39, No. 1. - P. 21-25.
215. Short, K. C. Rosa spp (Roses): In Vitro culture, micro propagation and production of secondary products / K. S. Short, A. V. Roberts. // In: Bajaj Y. P. S. (Ed.). Biotechnology in Agriculture and Forestry. Medicinal and Aromatic Plants. III, Springer. - Verlag, Berlin, 1991. - Vol. 15. - P. 376-391.
216. Smith, MK. Current applications of tissue culture in plant propagation and improvement / MK. Smith and RA. Drew // Australian Journal of Plant Physiology 17. -1990. - P. 267-289.
217. Steed, D. A. W. Micro propagation-controlled environment facilities and equipment for weaning / D. A. W Steed // Acta Hortic. - 1989. - Vol. 245. - P. 424-428.
218. Sutter, E. G. Use of Humidity tends and anti-transparent in the acclimatization of tissue cultured plants to the Greenhous / E. G. Sutter et.al. // Sci. Hort. - 1984.
- Vol. 23. - P. 303-312.
219. Sutter, E. G. Physiological and anatomical aspects of water stress of cultured plants / E. G. Sutter, V. Novello, K. Shackel // Acta Horticulturae (230). - 1988.
- P. 113-119.
220. Tarakanov, I. Studies of innovative biotech plant growth regulator on the basis of rhizosphere microflora metabolites / I. Tarakanov, T. Krasheninnikova, D. Cataldo, N. Nikishenkova, A. Sinitsin, E. Sinchurina // 20th International Conference on Plant Growth Substances. - Universitat Rovira I Virgili, Terragona. Spain. - 2010. - P. 142-143.
221. Thomas, M. Controlling vitrificution of petunia in vitro / M. Thomas et al. // Program and Abstract. - 1988. - P. 758.
222. Tomsone, S. In vitro propagation of Syringa vulgaris L. cultivars / S. Tomsone, A. Galeniece, A. Akere, G. Priede, L. Zira // Biologija, 2007. - Vol. 53, N 2. -P. 28-31.
223. Trillas, M. I. The effect of photo autotrophy on photosynthesis and photo inhibition of gardenia plantlets during micro propagation / M. I. Trillas, J. Matas, J. L. Araus // Photosynthetica - 2001- Vol. 39, N 2. - P. 245-255.
224. Walsh, C. S.; Swartz H. J.; Carison P.S. Are tissue culture plants for you / C. S. Walsh, H. J. Swartz, P. S. Carison // Am. Fruit Grower, 1986. - Vol. 106, N 3. - P. 38, 40-41.
225. Wainwright, H. Influence of in vitro preconditioning with carbohydrates during the rooting of micro cuttings on in vivo establishment / H. Wainwright, J. Scrace
// Sc. hortic, 1989. - Vol. 38. N 3/4. - P. 261-267. Welander, M. In vitro culture of raspberry (Rubus ideaus) for mass propagation / M. Welander // J. hortic. Sc. - 1985. -Vol. 60, N 4. - P. 493-499.
226. Welander, N. T. Propagation of Syringa chinensis cv Saugeana by in vitro culture of nodal explants [Reproduction of lilac with tissue culture. (Sweden)] / N. T. Welander // J. hortic. Sc, 1987. - Vol. 62, N 1. - P. 89-96.
227. Welander, M. Regulation of in vitro shoot multiplication in Syringa, Alnus and Malus by different carbon sources / M. Welander, N. T. Welander, A.-S. Brackman // J. Hortic. Sc. - 1989. - Vol. 64, N 3. - P. 361-366.
228. Westermeier, R. Electrophoresis in practice (Third Edition) / R. Westermeier. -WILEY-VCH Verlag: Weinheim, 2001. - 349 p.
229. Youn, Y. In vitro plantlet regeneration from axillary buds of mature trees of Tilia cordata / Y. Youn, K. Ishil , A. Saito, K. Ohba // J. Japan. Forestry Soc. -1988. - Vol. 70, № 7. - P. 315-317.
Объекты исследования Перспективные сорта крыжовника селекции лаборатории плодоводства.
Летнее утро Дачный
Аладдин Сердолик
Авторы: О.Н. Аладина, С.В., Акимова, Н.Д. Никиточкин
Новые сорта сирени
Маршал Конев
Маршал Бирюзов
Маршал Малиновский
Синенький скромный платочек
Оля
Авторы: С.А. Аладин, Т.В. Полякова, О.Н. Аладина
Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника (сорт Летнее утро) биологически активными веществами при адаптации на динамику роста
Варианты через 2 недели через 1 месяц через 1,5 месяца через 2 месяца через 7 месяцев
Контроль 0,7 1,0 1,2 1,6 20,8
6-БАП 0,8 1,3 1,4 2,0 26,2
Цитовит 1,0 1,1 1,6 1,8 22,7
Этиран 0,7 0,8 1,0 1,0 23,3
Черказ 0,5 1,1 1,5 1,7 22,9
6-БАП + Цитовит 0,3 0,5 1,7 2,2 28,2
6-БАП + Этиран 1,0 1,6 1,9 2,1 35,1
6-БАП + Черказ 0,7 0,8 1,3 1,5 28,7
Цитодеф 1,0 1,0 1,1 1,2 23,2
Цитодеф+ Цитовит 1,0 1,0 1,0 1,3 26,0
Цитодеф+Этиран 0,7 1,2 1,4 1,7 24,1
Цитодеф+Черказ 0,8 0,8 1,7 1,9 28,3
Цитовит - 1 мг/л, 6-БАП - 20 мг/л, Черказ - 50 мг/л, Цитодеф - 40 мг/л, Этиран -50мг/л
Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника (сорт Летнее утро) БАВ при адаптации на динамику облиственности микропобегов
Варианты через 2 недели через 1 месяц через 1,5 месяца через 2 месяца через 7 месяцев
Контроль 5,4 6,1 6,8 7,1 15,1
6-БАП 5,3 5,7 7,3 8,0 19,3
Цитовит 6,0 6,2 6,6 7,7 15,7
Этиран 4,3 5,3 6,3 6,7 16,3
Черказ 6,0 6,3 6,7 6,7 17,5
6-БАП + Цитовит 4,3 6,7 7,3 9,3 21,3
6-БАП + Этиран 5,7 6,3 6,7 7,0 24,9
6-БАП + Черказ 5,3 5,3 6,3 6,4 20,8
Цитодеф 6,0 6,3 8,0 8,7 20,2
Цитодеф+ Цитовит 5,0 5,3 6,0 6,9 17,4
Цитодеф+Этиран 5,3 6,0 7,0 7,0 20,7
Цитодеф+Черказ 6,3 6,7 7,6 7,7 18,7
Цитовит - 1 мг/л, 6-БАП - 20 мг/л, Черказ - 50 мг/л, Цитодеф - 40 мг/л, Этиран -50мг/л
Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника (сорт Летнее утро) БАВ при адаптации на динамику суммарной площади листьев
Варианты через 2 недели через 1 месяц через 1,5 месяца через 2 месяца через 7 месяцев
Контроль 40,7 50,6 64,1 66,7 844,6
6-БАП 36,1 52,1 59,4 80,2 1019,4
Цитовит 32,4 42,1 44,2 49,6 791,2
Этиран 34,5 48,3 50,8 52,4 876,2
Черказ 34,3 34,8 35,8 41,8 1004,8
6-БАП + Цитовит 39,2 41,3 55,4 65,4 1221,6
6-БАП + Этиран 60,8 69,9 74,1 78,3 1495,1
6-БАП + Черказ 34,7 52,9 55,5 59,1 1119,4
Цитодеф 33,7 51,5 57,5 59,2 952,2
Цитодеф+ Цитовит 38,4 39,0 50,2 51,8 1031,9
Цитодеф+Этиран 35,6 41,4 46,2 55,0 861,1
Цитодеф+Черказ 47,7 47,9 67,8 89,5 1144,2
Цитовит - 1 мг/л,6-БАП - 20 мг/л, Черказ - 50 мг/л, Цитодеф - 40 мг/л, Этиран -50мг/л
Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника (сорт Летнее утро) БАВ при адаптации на динамику роста корней
Варианты Среднее число корней, шт. Средняя длина корней, см Суммарная длина корней, см
через 1 месяц через 2 месяца через 7 месяцев через 1 месяц через 2 месяца через 7 месяцев через 1 месяц через 2 месяца через 7 месяцев
Контроль 3,6 4,8 5,3 1,5 3,8 10,1 5,4 10,3 53,5
6-БАП 5,0 5,8 10,1 3,6 4,1 9,4 18,0 23,8 94,9
Цитовит 5,0 5,4 5,6 4,8 5,5 12,7 24,0 29,7 71,2
Черказ 5,0 5,4 7,6 5,1 5,8 8,7 25,5 31,3 66,1
6-БАП + Цитовит 5,1 5,3 6,4 4,2 5,6 9,2 21,4 29,6 50,9
6-БАП + Этиран 6,0 7,1 10,2 5,6 6,1 13,1 33,6 43,3 133,6
6-БАП + Черказ 6,2 6,1 9,2 3,9 5,9 12,8 24,2 36,0 117,8
Цитодеф 4,9 4,7 9,0 3,5 4,2 13,2 17,2 19,7 118,8
Цитодеф + Цитовит 5,0 5,4 7,1 4,2 5,2 16,1 21,0 28,0 114,3
Цитодеф + Этиран 5,0 5,9 9,0 4,6 4,9 10,9 23,0 28,9 98,1
Цитодеф + Черказ 6,1 7,4 8,9 4,5 4,8 11,2 27,5 35,4 99,7
Цитовит - 1 мг/л, 6-БАП - 20 мг/л, Черказ - 50 мг/л, Цитодеф - 40 мг/л, Этиран -50мг/л
Приложение Е
Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника (сорт Летнее утро) биологически активными веществами при адаптации на динамику роста
побегов
Варианты через 2 недели через 1 месяц через 1,5 месяца через 2 месяца через 7 месяцев
Контроль 0,3 1,4 2,5 2,9 17,1
6-БАП 1,0 1,6 2,1 2,5 24,5
Цитовит 1,0 1,6 2,3 2,5 21,6
6-БАП + цитовит 1,0 1,6 2,1 2,6 26,7
Этиран 0,6 1,5 2,0 2,3 18,3
6-БАП + этиран 1,1 1,8 2,6 2,9 29,5
Цитовит - 1 мг/л, 6-БАП - 20 мг/л, Этиран - 50мг/л
Приложение Е1 - Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника (сорт Летнее утро) биологически активными веществами при адаптации на динамику облиственности побегов
Варианты через 2 через 1 через 1,5 через 2 через 7
недели месяц месяца месяца месяцев
Контроль 6,3 8,3 8,7 9,1 13,3
6-БАП 5,3 6,7 8,3 8,7 19,7
Цитовит 6,7 8,0 8,3 9,3 17,3
6-БАП + цитовит 6,3 7,2 8,3 9,0 21,3
Этиран 6,1 6,8 8,1 8,9 17,9
6-БАП + этиран 6,7 8,4 8,9 10,2 24,2
Цитовит - 1 мг/л, 6-БАП - 20 мг/л, 1 ерказ - 50 мг/л, Цитодеф - 40 мг/л, Этиран - 50мг/л
Приложение Е 2 - Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника (сорт Летнее утро) Биологически активными веществами при
Варианты через 2 недели через 1 месяц через 1,5 месяца через 2 месяца через 7 месяцев
Контроль 54,3 60,2 83,2 90,5 892,2
6-БАП 49,1 69,3 80,7 88,5 1050,1
Цитовит 68,9 80,3 81,6 91,6 824,5
6-БАП + цитовит 59,1 77,9 90,7 116,4 1145,9
Этиран 50,3 65,3 76,3 87,3 898,6
6-БАП + этиран 60,4 79,4 96,6 132,7 1530,6
Цитовит - 1 мг/л, 6-Б зАП - 20 мг/л, Этиран - 50мг/л
Приложение Ж
Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника (сорт Летнее _утро) БАВ при адаптации на динамику роста побегов_
Варианты через 2 недели через 1 месяц через 1,5 месяца через 2 месяца через 7 месяцев
Контроль 0,3 0,7 1,5 1,6 22,8
6-БАП 0,3 1,0 2,1 2,2 23,8
Этиран 0,4 0,8 1,3 1,4 18,3
6-БАП + этиран 0,4 1,2 2,7 2,8 28,5
6-БАП - 20 мг/л, Этиран - 50мг/л
Приложение Ж 1 - Влияние внекорневых обработок микрорастений
крыжовника (сорт Летнее утро) БАВ при адаптации на динамику облиственности побегов
Варианты через 2 недели через 1 месяц через 1,5 месяца через 2 месяца через 7 месяцев
Контроль 5,3 5,7 7,7 8,3 21,8
6-БАП 5,0 7,1 8,7 9,9 26,7
Этиран 5,3 7,0 7,3 7,7 21,3
6-БАП + этиран 6,3 6,7 8,9 9,3 28,4
6-БАП - 20 мг/л, Этиран - 50мг/л
Приложение Ж 2 - Влияние внекорневых обработок микрорастений
крыжовника (сорт Летнее утро) БАВ при адаптации на динамику суммарной площади листьев
Варианты через 2 недели через 1 месяц через 1,5 месяца через 2 месяца через 7 месяцев
Контроль 28,5 37,2 66,4 93,5 1186,2
6-БАП 57,8 58,7 75,2 1028 1351,8
Этиран 37,2 56,1 63,4 84,7 1212,4
6-БАП + этиран 49,4 68,5 78,1 118,3 1729,6
6-БАП - 20 мг/л, Этиран - 50мг/л
Приложение И
Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника (сорт Летнее _утро) БАВ при адаптации на динамику роста побегов_
Варианты через 2 через 1 через 1,5 через 2 через 7
недели месяц месяца месяца месяцев
Контроль 0,7 0,7 0,7 - -
6-БАП 0,5 0,5 0,6 0,6 15,8
Цитовит 0,3 0,6 0,7 1,2 14,6
6-БАП + цитовит 0,3 0,7 1,2 1,2 17,5
Этиран 0,4 0,5 0,5 0,6 11,4
6-БАП + этиран 0,6 0,6 0,7 0,9 19,4
Цитовит - 1 мг/л, 6-БАП - 20 мг/л, Этиран - 50мг/л
Приложение И 1 - Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника (сорт Летнее утро) ^ БАВ при адаптации на динамику облиственности побегов
Варианты через 2 через 1 через 1,5 через 2 через 7
недели месяц месяца месяца месяцев
Контроль 3,0 3,5 4,0 - -
6-БАП 2,5 3,3 3,7 4,0 13,2
Цитовит 3,7 4,7 5,3 6,0 12,7
6-БАП + цитовит 4,0 4,0 5,0 5,0 18,4
Этиран 3,2 4,1 4,2 4,3 12,4
6-БАП + этиран 3,3 4,2 5,0 5,8 19,0
Цитовит - 1 мг/л, 6-БАП - 20 мг/л, Цитодеф - 40 мг/л, Этиран - 50мг/л Приложение И 2 - Влияние внекорневых обработок микрорастений крыжовника
(сорт Летнее утро) БАВ при адаптации на динамику суммарной площади листьев
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.