Особенности постинфекционного и поствакцинального гуморального иммунитета к коклюшу тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.03.09, доктор медицинских наук Зайцев, Евгений Михайлович

  • Зайцев, Евгений Михайлович
  • доктор медицинских наукдоктор медицинских наук
  • 2012, МоскваМосква
  • Специальность ВАК РФ14.03.09
  • Количество страниц 258
Зайцев, Евгений Михайлович. Особенности постинфекционного и поствакцинального гуморального иммунитета к коклюшу: дис. доктор медицинских наук: 14.03.09 - Клиническая иммунология, аллергология. Москва. 2012. 258 с.

Оглавление диссертации доктор медицинских наук Зайцев, Евгений Михайлович

Список используемых сокращений.

Введение.

Обзор литературы.

Глава 1. Эпидемический процесс коклюшной инфекции на современном этапе.

Вакцинопрофилактика коклюша.

Глава 2. Факторы патогенности и протективные антигены коклюшного микроба.

Глава 3. Серологическая диагностика коклюша. Иммунологический мониторинг эпидемического процесса коклюшной инфекции.

Собственные исследования.

Материалы и методы.

1. Материалы.

1.1. Штаммы Bordetella pertussis.

1.2. Антигены.

1.3. Животные.

1.4. Сыворотки животных, пероксидазные коньюгаты сывороток.

1.5. Сыворотки людей.

2. Методы исследования.

2.1. Микробиологические и генотипические методы.

2. 2. Получение комплекса антигенов коклюшного микроба.

2.3. Получение антисывороток к антигенам В. pertussis.

2.4. Иммуноферментный анализ.

2.5. Реакция микробной агглютинации.

2.6. Реакция пассивной гемагглютинации.

2.7. Радиальная иммунодиффузия в геле.

2.8. Имуноэлектрофорез.

2.9. Гель-фильтрация.

2.10. Методы оценки мукозального и системного иммунитета к антигенам В. pertussis у экспериментальных животных.

2.11. Оценка протективной активности антигенов В. pertussis.

2.12. Определение активности липополисахарида.

2.13. Статистические методы.

Результаты и обсуждение.

Глава 1. Характеристика иммунобиологических свойств вакцинных и свежевыделенных штамов В. pertussis.

1.1. Характеристика морфологических, культуральных и генотипических свойств штаммов.

1.2. Анализ антигенного состава штаммов вИЭФ.

1.3. Исследование антигенных профилей вакцинных и свежевыделенных штаммов коклюшного микроба в ИФА.

1.3.1. Разработка и характеристика тест-систем для количественного определения антигенов коклюшного микроба.

1.3.2. Исследование антигенного состава штаммов.

1.4. Вирулентные свойства штаммов.

1.5. Антигенная активность штаммов с сыворотками больных коклюшем и здоровых привитых АКДС - вакциной детей.

Глава 2. Разработка и характеристика тест - систем для выявления антител к антигенам В. pertussis.

2.1. Характеристика физико-химических и имунохимических свойств комплекса антигенов В. pertussis.

2.1.1. Молекулярные параметры комплекса антигенов.

2.1.2. Содержание отдельных компонентов в комплексном препарате антигенов

2.1.3. Иммунохимические свойства комплекса антигенов.

2.2. Характеристика иммунохимических свойств отдельных антигенов В. pertussis.

2.3. Разработка оптимальных условий проведения ИФА.

2.4. Оценка чувствительности и специфичности тест- систем, установление диагностических титров антител к антигенам В. pertussis.

2.5. Оценка воспроизводимости тест-систем.

Глава 3. Характеристика мукозального и гуморального иммунитета к антигенам В. pertussis на экспериментальной модели.

Глава 4. Характеристика гуморального постинфекционного иммунитета к коклюшу.

4.1. Титры сывороток больных коклюшем в реакции микробной агглютинации.

4. 2. Общая характеристика спектров изотипов и субизотипов антител к антигенам В. pertussis при коклюшной инфекции.

4.3. Динамика антител к комплексному антигену В. pertussis у больных коклюшем в разные сроки заболевания.

4.3.1. Динамика IgM антител.

4.3.2. Динамика IgA антител.

4.3.3. Динамика IgG антител.

4.3.4. Динамика субизотипов IgG антител.

4.3.5. Уровни IgG, IgA и IgM антител у больных коклюшем привитых и непривитых АКДС - вакциной.

4.4. Динамика антител к отдельным антигенам В. pertussis.

4.4.1. Динамика антител к коклюшному токсину.

4.4.2. Динамика антител к филаментозному гемагглютинину.

4.4.3. Динамика антител к агглютиногенам.

4.4.4. Динамика антител к ЛПС.

4.5. Особенности антительного ответа к белковым антигенам и липополисахариду В. pertussis.

4.6. Разработка иммуноферментной тест-системы для использования в условиях практического здравоохранения.

Глава 5. Характеристика гуморального популяционного противококлюшного иммунитета.

5.1. Популяционный уровень IgM антител к антигенам В. pertussis.

5.2. Популяционный уровень IgG антител к антигенам В. pertussis.

5.2.1. Популяционный уровень IgG антител к антигенам В. pertussis у клинически здоровых детей и взрослых.

5.2.2. Уровень IgG антител к антигенам В. pertussis у детей с хроническими заболеваниями.

5.3. Популяционный уровень IgA антител к антигенам В. pertussis.

5.4. Спектры антител у здоровых привитых против коклюша детей к белковым антигенам и ЛПС В. pertussis.

5.5. Гуморальный иммунитет к коклюшу, дифтерии и столбняку у взрослых.

5.6. Гуморальный иммунитет к коклюшу у беременных женщин.

5.7. Уровень IgG, IgA и IgM антител к антигенам В. pertussis у больных с длительным кашлем.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Клиническая иммунология, аллергология», 14.03.09 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Особенности постинфекционного и поствакцинального гуморального иммунитета к коклюшу»

Актуальность проблемы

Успехи в области вакциноирофилактики коклюша подтвердили правильность принятых ранее научно-организационных и медицинских решений, направленных на борьбу с коклюшной инфекцией, вызываемой Bordetella pertussis, передающейся воздушно-капельным путем. Тем не менее, коклюш продолжает оставаться актуальной проблемой здравоохранения.

Заболеваемость коклюшем в Европе и других развитых странах мира, остается высокой. Несмотря на массовую вакцинацию, ежегодно заболевают около 600 ООО взрослых, растет заболеваемость подростков и детей первого года жизни. Начиная с середины 90-х годов прошлого столетия, во многих странах мира, несмотря на широкий охват прививками населения, начали регистрировать подъем заболеваемости коклюшем (47,169, 311, 327, 370), в том числе среди привитых детей, подростков, а также части взрослых (153, 225). Достаточно высоким во всех странах мира остаётся уровень скрытой заболеваемости, серологические маркёры инфицирования выявляют у 13 - 32% подростков и взрослых (39, 49, 95).

В России охват прививками выше 95% привел к снижению заболеваемости с 19,06 на 100000 населения в 1998 г до 2,51 на 100000 в 2008 г. Однако публикуемые данные не отражают истинного положения по заболеваемости коклюшем. В связи с тем, что в России исследования по иммунологическому мониторингу коклюша часто проводятся в неполном объеме, установить истинный уровень заболеваемости в стране не представляется возможным. Для серологической диагностики коклюша и оценки напряженности гуморального иммунитета в отечественной медицинской практике традиционно используется, главным образом, реакция агглютинации, а отсутствие на рынке более информативных иммуноферментных (ИФА) тест-систем отечественного производства, существенно обостряет данную проблему (37, 42). Кроме того, сведения о состоянии иммунитета к коклюшу в России у детей имеют ограниченный характер, а у взрослых практически отсутствуют. При этом известно, что определяемые различия в спектрах антител к антигенам вакцинных и циркулирующих (диких) штаммов В. pertussis у больных коклюшем и здоровых, привитых против коклюша детей, являются одним из ключевых факторов понимания механизмов формирования постинфекционного и поствакцинального гуморального иммунного ответа.

Одним из наиболее эффективных методов слежения за эпидемическим процессом коклюша, в том числе на фоне стертых и атипичных форм болезни, является иммунологический мониторинг, позволяющий оценить реальный уровень заболеваемости. За рубежом постоянно совершенствуется серологическая диагностика коклюша (70, 152, 226, 317), проводятся исследования, отражающие распространенность данной инфекции в популяции (112, 202, 342), изучается иммунологический статус привитых против коклюша (109, 160, 161). Однако, несмотря на широкое применение в борьбе с коклюшной инфекцией новых диагностических приёмов, в том числе ИФА, в области диагностики существуют определённые проблемы.

В настоящее время назрела необходимость в увеличении информативности иммуноферментного анализа (46, 240). Стала очевидной важность исследований по определению диагностической значимости антител различных изоти-пов/субизотипов к антигенам В. pertussis. Проведение подобных исследований при коклюшной инфекции и вакцинации против коклюша невозможно без создания новых ИФА тест-систем, предназначенных для углублённого изучения гуморального иммунитета, процесса антителообразования при инфекции и вакцинации. Можно полагать, что подобный серологический анализ позволит определить критерии, необходимые, в частности, для надёжной дифференцировки постинфекционного и поствакцинального иммунитета. Таким образом, в борьбе с коклюшной инфекцией необходимо использовать приёмы современной лабораторной диагностики, которые в сочетании с мерами по активной иммунопрофилактике болезни среди восприимчивых контингентов, включая подростков и взрослых, позволят значительно увеличить эффективность противоэпидемических мероприятий и существенно снизить уровень заболеваемости (111,162, 296).

К настоящему времени устанавливают генотипические и антигенные различия между вакцинными и дикими штаммами коклюшного микроба (227, 255), проводится мониторинг антигенных профилей циркулирующих штаммов коклюшного микроба. Эти результаты необходимы для обоснования штаммового и антигенного состава новых коклюшных вакцин (33, 51). Таким образом, эффективные меры по борьбе с коклюшной инфекцией, включая повышение уровня управления эпидемическим процессом коклюша, возможны лишь при активном совершенствовании иммунологического контроля с использованием наиболее современных лабораторных методов изучения особенностей формирования постинфекционного и поствакцинального иммунитета у населения.

Имеющиеся в литературе данные не дают полного представления об особенностях антигенного состава вакцинных и циркулирующих штаммов В. pertussis, специфичности и изотипе антител, продуцирующихся при коклюшной инфекции и вакцинации против коклюша, уровне популяционного иммунитета разных возрастных групп населения в условиях высокого охвата прививками и продолжающейся циркуляции возбудителя. Решение этих вопросов позволит найти новые подходы к обоснованию штаммового и антигенного состава вакцин для профилактики коклюша, повысить эффективность лабораторной диагностики коклюшной инфекции, определить возрастные «группы риска» с низким уровнем противококлюшного иммунитета, подлежащих ревакцинации против коклюша.

Цель работы - выявление особенностей формирования постинфекционного и поствакцинального гуморального иммунитета к коклюшу, разработка подходов к созданию высокоинформативных методов серологической диагностики коклюшной инфекции и контроля напряженности популяционного иммунитета к коклюшу.

Задачи исследования:

1. Исследовать антигенный профиль вакцинных и свежевыделенных (диких) штаммов В. pertussis для обоснования включения бактериальных антигенов в состав новых диагностических ИФА тест- систем.

2. Разработать и сконструировать ИФА тест-системы, предназначенные для выявления антител изотипов - IgG, IgM, Ig А и субизотипов - IgGl, IgG2, IgG3, IgG4 к антигенам В. pertussis.

3. Провести сравнительный анализ процессов IgG-, IgM- и IgA-антителообразования у экспериментальных животных при различных способах их иммунизации антигенами В. pertussis.

4. Оценить процесс продукции антител основных изотипов/субизотипов к антигенам В. pertussis у пациентов с коклюшной инфекцией, изучить закономерности динамики антителообразования в разные фазы заболевания.

5. Провести популяционный анализ формирования антител основных изотипов/субизотипов к антигенам В. pertussis в различных возрастных группах населения.

Научная новизна

Впервые установлены закономерности в динамике образования антител различных изотипов и субизотипов к антигенам В. pertussis при развитии коклюшной инфекции, а также формировании поствакцинального иммунитета в различных возрастных группах населения. Предложен новый перспективный подход к серологической диагностике коклюша и оценке поствакцинального иммунитета, учитывающий особенности выработки антикоклюшных антител различных изотипов и субизотипов в разные фазы коклюшной инфекции и при иммунизации.

Впервые показано, что коклюшная инфекция сопровождается нарастанием титров сывороточных антител изотипов IgM, IgA, IgG и IgGl-, IgG2-, IgG3-, IgG4- субизотипов к белковым антигенам (коклюшному токсину, филаментоз-ному гемагглютинину, агглютиногенам 1, 2, 3) и липополисахариду (ЛПС) В. pertussis. При коклюшной инфекции динамика образования антител к липопо-лисахариду В. pertussis отличается от динамики антителообразования к белковым антигенам возбудителя, при этом, в фазу реконвалесценции отмечается снижение титров специфических IgG - и IgA - иммуноглобулинов.

Впервые показано, что для острой фазы коклюшной инфекции характерно:

- нарастание титров IgM-антител к коклюшному токсину, филаментозному гемагглютинину, агглютиногенам 1, 2, 3 и липополисахариду В. pertussis с последующим снижением их уровня в фазе реконвалесценции.

- титры IgG-, IgGl-, IgG2-, IgG4- и IgA-антител к белковым антигенам В. pertussis достигают максимальных значений в конце острой фазы заболевания с последующей стабилизацией показателей до конца фазы реконвалесценции.

- нарастание титра IgG3 - антител к антигенам В. pertussis с 3 - 4 недель от начала коклюшной инфекции с последующим снижением их уровня в фазу реконвалесценции, позволяет дифференцировать острую фазу коклюша от периода реконвалесценции, что важно для проведения адекватных противоэпидемических мероприятий, особенно при стёртых формах этой инфекции.

Впервые, с учётом определения титра IgG3 - антител к антигенам В. pertussis, разработан перспективный серологический метод лабораторной диагностики коклюша, позволяющий дифференцировать острую фазу заболевания от фазы реконвалесценции, а также иммунный ответ вследствие текущего заболевания и вакцинации.

Показано, что увеличение титра IgM-антител к антигенам В. pertussis у больных коклюшем отмечено как у категории лиц, не привитых против коклюша, так и у пациентов, иммунизированных АКДС - вакциной.

Поствакцинальный гуморальный иммунный ответ к антигенам В. pertussis у детей младшего возраста, привитых АКДС вакциной, характеризуется низким уровнем IgM- и IgA-антител, а также узким спектром субизотипов IgG антител (IgGl и IgG2).

У детей 2 - 5-летнего возраста, привитых АКДС вакциной, уровень IgG- антител к антигенам В. pertussis - максимальный и постепенно снижается, достигая минимальных значений у детей 9 лет и старше, без существенного изменения динамики антителообразования у подростков и взрослых. Нарастание титра антител изотипа А к антигенам В. pertussis наблюдается преимущественно у лиц старшего возраста, что может быть обусловлено перенесенной стертой формой инфекции. Это подтверждается данными по аэрозольной вакцинации экспериментальных животных антигенами В. pertussis , при которой происходит стимуляция продукции сывороточных IgG-, IgM- и IgA-антител. Инъекционные способы иммунизации вызывают активную выработку антител IgG- и IgM-изотипов, но не вызывают процесс IgA-антителообразования.

Впервые показано, что антигенные профили вакцинных и свежевыделенных (диких) штаммов В. pertussis имеют сходные характеристики, однако, для диких штаммов характерен более широкий диапазон содержания коклюшного токсина в надосадочной жидкости при культивировании. Концентрация коклюшного токсина в культурах вакцинных и свежевыделенных диких штаммов В. pertussis не связана со структурой гена ptxA, кодирующего ферментативно активную S1 субъединицу.

Материалы работы включены в Национальное руководство «Вакцины и вакцинация».

Практическая значимость

Разработанная ИФА тест-система для определения антител основных изотопов (IgG, IgM, IgA) и субизотипов (IgGl, IgG2, IgG3, IgG4) к комплексу антигенов В. pertussis (коклюшному токсину, филаментозному гемагглютинину, ли-пополисахариду, агглютиногенам 1, 2, 3) может быть использована:

- для серологической диагностики коклюша;

- для проведения адекватных противоэпидемических мероприятий, особенно при стертых формах этой инфекции, по оценке уровня нарастание титра IgG3-антител к антигенам В. pertussis с 3 - 4 недель от начала коклюшной инфекции с последующим снижением их уровня в фазу реконвалесценции, позволяя дифференцировать острую фазу коклюша от периода реконвалесценции;

- при оценке иммунологической эффективности вакцин для профилактики коклюша;

- при оценке напряженности популяционного иммунитета к коклюшу, включающей определение IgG- и IgA-антител к комплексу антигенов В. pertussis, в разных возрастных группах населения;

- для определения интенсивности циркуляции возбудителя в старших возрастных группах населения и их значимости как резервуара и источника инфекции, обоснования разработки программ ревакцинации против коклюша детей старше 9 лет, подростков и взрослых.

В результате проведенных исследований получен патент на изобретение «Способ серологической диагностики коклюша» № 2424530 от 20.07. 2011 г. Разработан проект инструкции по изготовлению и контролю иммунофермент-ной тест - системы для выявления антител к антигенам В. pertussis «ИФА - В. р. - IgG, IgA, IgM» и проект инструкции по её применению, изготовлены и испытаны на клиническом материале 3 опытные серии тест - наборов.

Разработаны ИФА тест-системы, которые могут быть использованы для количественного определения антигенов В. pertussis: коклюшного токсина, фи-ламентозного гемагглютинина и агглютиногенов 1, 2, 3, а также для мониторинга антигенного состава вакцинных и циркулирующих штаммов В. pertussis и контроля антигенного состава коклюшных вакцин.

С помощью разработанной ИФА тест-системы можно определять уровень экспрессии коклюшного токсина и других антигенов вакцинными и свежевыде-ленными штаммами В. pertussis.

Отобранный штамм В. pertussis, отличающийся от вакцинных штаммов высокой способностью к токсинообразованию, в перспективе может быть использован для создания новой коклюшной вакцины. Штамм депонирован в коллекции штаммов ГИСК им JI.A. Тарасевича (Свидетельство № 01-12/27 от 08.06.2009 г.). Получен патент на изобретение «Свежевыделенный штамм бактерий Bordetella pertussis - продуцент коклюшного токсина» № 2407788 от 27.12. 2010 г. J

Материалы диссертации использованы при разработке технологии получения комплекса антигенов В. pertussis, включающего коклюшный токсин, фила-ментозный гемагглютинин, липополисахарид и агглютиногены 1,2,3. Получены патенты на изобретение «Способ получения анатоксина Bordetella pertussis» (№ 2227746 от 27.04.2004 г., № 2285540 от 20.10.2006 г.). Показана перспективность использования комплекса антигенов для создания препаратов для вакцинопрофилактики и диагностики коклюша. На основе комплекса антигенов разработана технология изготовления и контроля бесклеточной коклюшной вакцины. На базе ОАО «Биомед» им. И.И Мечникова изготовлены опытно - промышленные серии препарата для проведения доклинических испытаний, разработаны проекты фармакопейной статьи и опытно - промышленного регламента.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Анализ генотипических, иммунобиологических и антигенных свойств возбудителя коклюша выявил сходство антигенного состава вакцинных и све-жевыделенных штаммов В. pertussis при более широким диапазоне содержания коклюшного токсина в супернатантах культур свежевыделенных штаммов. Наличие в современной популяции В. pertussis штаммов с повышенным уровнем продукции коклюшного токсина указывает на необходимость мониторинга уровня токсинообразования циркулирующими штаммами возбудителя и селекции таких штаммов для усовершенствования вакцинных препаратов.

2. Использование комплекса антигенов В. pertussis (коклюшный токсин, филаментозный гемагглютинин, липополисахарид, агглютиногены 1, 2, 3) в качестве специфического лиганда в иммуноферментном анализе и антивидовых пероксидазных коньюгатов к основным изотипам и субизотипам иммуноглобулинов человека обеспечивает выявление широкого по специфичности и изо-типу спектра противококлюшных антител у больных коклюшем и здоровых лиц разного возраста в ИФА.

3. Определены показатели уровня изотипов (IgM, IgA, IgG) и субизотипов (IgG3) антител к антигенам В. pertussis, имеющие диагностическую значимость при коклюшной инфекции с 3 - 4 недель от начала заболевания и позволяющие дифференцировать острую фазу коклюша от периода реконвалесценции, что важно для проведения адекватных противоэпидемических мероприятий, особенно при стертых формах этой инфекции.

4. Показано, что у вакцинированных АКДС - вакциной детей и иммунизированных инъекционными способами животных не происходит значимого IgA ответа, развивающегося при поступлении антигенов В. pertussis через слизистые органов дыхания при коклюшной инфекции у людей или аэрозольной иммунизации экспериментальных животных, в связи с чем выявление антител этого класса у здоровых лиц можно рассматривать как серологический признак перенесенной инфекции, позволяющий оценить распространенность коклюша в популяции.

5. Выявленное снижение популяционного иммунитета к коклюшу в возрастных группах населения старше 8 лет сопровождается нарастанием частоты выявления IgA антител к антигенам В. pertussis, что указывает на интенсивность циркуляции возбудителя в старших возрастных группах населения и их значимость как резервуара и источника инфекции и свидетельствует о необходимости разработки программ ревакцинации против коклюша детей старше 8 лет, подростков и взрослых.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Похожие диссертационные работы по специальности «Клиническая иммунология, аллергология», 14.03.09 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Клиническая иммунология, аллергология», Зайцев, Евгений Михайлович

ВЫВОДЫ

1. С помощью разработанных тест - систем к различным антигенным компонентам В. pertussis выявлены особенности формирования постинфекционного и поствацинального гуморального иммунитета к коклюшу, разработаны подходы к созданию высокоинформативных методов серологической диагностики коклюшной инфекции и контроля напряженности популяционного иммунитета к коклюшу.

2. Показано, что вакцинные и свежевыделенные (дикие) штаммы В. pertussis при культивировании имеют сходные антигенные профили, однако рост свеже-выделенных штаммов сопровождается более широким, по сравнению с вакцинными штаммами, диапазоном содержания в культуре коклюшного токсина. Не установлено коррелятивных связей между структурой гена ptxA, кодирующего ферментативно активную S1 субъединицу, и разницей в концентрации коклюшного токсина в культурах вакцинных и свежевыделенных штаммов В. pertussis.

3. Разработанная технология выделения и контроля комплекса антигенов вакцинного штамма В. pertussis обеспечивает получение препаратов со стандартным содержанием коклюшного токсина, филаментозного гемагглютинина, липополисахарида, агглютиногенов 1, 2, 3. Использование в иммунофермент-ном анализе в качестве лиганда комплекса антигенов вакцинного штамма В. pertussis обеспечивает выявление широкого по специфичности спектра противококлюшных антител и позволяет оценивать показатели поствакцинального и постинфекционного иммунитета к коклюшу.

4. Установлено, что постинфекционный иммунитет у больных коклюшем людей характеризуется повышением уровня основных изотипов (IgG, IgA и IgM) и субизотипов (IgGl, IgG2, IgG3, IgG4) антител к белковым антигенам и липополисахариду В. pertussis. Особенности динамики образования IgM- и IgG3-антител к антигенам В. pertussis у больных коклюшем с нарастанием их титров в острую фазу и снижением в фазу реконвалесценции позволяют рассматривать их в качестве характерного признака (маркёра) острой фазы инфекции.

5. Определение уровней IgM-, IgA-, IgG- и IgG3-антител к комплексу антигенов В. pertussis обеспечивает выявление серологических признаков коклюшной инфекции, начиная с 3-й недели заболевания, позволяет проводить дифференцировку постинфекционного и поствакцинального иммунитета, дифференцировать острую фазу коклюша от периода реконвалесценции.

6. Выявление в диагностическом титре IgG-, IgG3-, IgA- и IgM-антител к комплексу антигенов В. pertussis у взрослых больных с длительным кашлем может рассматриваться как серологический признак стертых форм коклюшной инфекции.

7. Показано, что аэрозольная иммунизация экспериментальных животных антигенами В. pertussis индуцирует выработку сывороточных IgG-, IgA- и IgM-антител, в то время как инъекционные способы иммунизации вызывают синтез сывороточных IgG- и IgM-антител, но не стимулируют продукцию антител класса IgA.

8. Продемонстрировано, что гуморальный иммунитет к коклюшу у привитых АКДС вакциной детей 2-5 лет не связан с продукцией IgM- и IgA-антител, преимущественно связан с образованием антител IgGl и IgG2 субизотипов, а также с высоким уровнем антителообразования к белковым антигенам В. pertussis.

9. Показано, что связанное с увеличением возраста снижение популяцион-ных титров IgG- антител к антигенам В. pertussis сопровождается нарастанием частоты выявления специфических IgA-антител у здоровых лиц, что является косвенным индикатором распространенности скрытых форм коклюшной инфекции.

10. Снижение уровня противококлюшного гуморального иммунитета у детей старше 8 лет указывает на необходимость разработки программ ревакцинации против коклюша детей старшего возраста, подростков и взрослых.

Список литературы диссертационного исследования доктор медицинских наук Зайцев, Евгений Михайлович, 2012 год

1. Бабаченко И.В. Современные представления об иммуногенности и профилактической эффективности бесклеточных АКДС вакцин на основе антигенов коклюшной палочки // Вопросы современной педиатрии. - 2005. - 4 (5). -С. 35 - 41.

2. Бабаченко И.В., Курова H.H., Ценева Г.Я. Коклюшная инфекция в условиях антигенного дрейфа Bordetella pertussis И Вопросы современной педиатрии. ~ 2006. 5 (6). - С. 25 - 27.

3. Борисова И.Э., Селезнева Т.С. Антигенный дрейф коклюшного микроба // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. -2008.- 1(38).- С. 39 42.

4. Борисова О.Ю. «Молекулярно генетические особенности структуры генов патогенности возбудителей коклюша и дифтерии; совершенствование лабораторной диагностики при этих инфекциях // Автореф. дисс. докт. мед. наук. - М. - 2009. - 49 С.

5. Верезуб Л.Г, Вельвовская Р.И. Палант Б.Л., Розина Ц.С. Атипичные штаммы как одна из причин снижения противококлюшного иммунитета // Коклюш. Материалы Всесоюзного симпозиума по иммунологии и эпидемиололо-гии. Минск. - 1977. - С. 35 - 36.

6. Демина A.A. Ларина Л.И., Девяткина Н.П. Смена серологического типа возбудителя коклюша // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1968. - 2. - С. 13 - 17.

7. Захарова М.С. Специфическая профилактика коклюша в СССР. // Конференция по эпидемиологии и иммунологии коклюша. Тезисы докл. М.- 1968. -С. 4 - 6.

8. Йегер Л. (ред.). Клиническая иммунология и аллергология // М. «Медицина». - 1990. - том 1. - 528 С.

9. Ковальчук JI.B., Игнатьева Г.А., Ганковская JI.B. Иммунология: практикум: учебное пособие // М., «ГЭОТАР Медиа». - 2010 - 176 С.

10. Котелева С.И. Цитокиновый профиль иммунного ответа у детей, больных коклюшем, и его изменение в зависимости от особенности течения заболевания //Автореф. дисс. канд. мед. наук.- М. 2010.- 24 С.

11. Кузнецов Е.А. К вопросу об антигенной структуре В. pertussis в связи с условиями циркуляции штаммов // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1972. - 9. - С. 122 - 127.

12. Курова H.H. Молекулярно-биологическая характеристика Bordetella pertussis, циркулирующих в период подъема заболеваемости, и совершенствование лабораторной диагностики коклюша // Автореф. дисс. канд. мед. наук. -Санкт-Петербург.- 2004,- 20 С.

13. Мазурова И.К., Борисова О.Ю. Комбарова С.Ю., Гадуа Н.Т., Алешкин В.А. Динамика изменчивости основных генов патогенности штаммов В. pertussis, выделенных от больных коклюшем в Москве в 1948 2005 гг. // Молекулярная медицина. - 2008. - 1. - С. 40-45.

14. Максимова Н.М., Маркина С.С., Яцковский К.А. и др. Иммунизация взрослого населения против дифтерии в России в 2006 2007 гг. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2008. - 6. - С. 27-31.

15. Москаленко Е.Р., Сигаева JI.A., Уразовский С.Ф., Ильина С.И. Оценка состояния противококлюшого иммунитета у детей разной степени привитости. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1997. - 6. - С. 87 - 88.

16. Наркевич М.И., Тымчаковская И.М. Инфекционная заболеваемость в России // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1997. -3. - С.48 - 52.

17. Никулин Б.А. Оценка и коорекция иммунного статуса // «ГЭОТАР-Медиа». М. - 2007. - 375 С.

18. Онищенко Г.Г. Санитарно эпидемиологическое благополучие среды и здоровье детского населения // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. - 2008. - 6. - С .15 - 19.

19. Пол У. (ред.). Иммунология // М. «Мир» - 1989. - Том 3.-360 С.

20. Селезнева Т.С., Баева Е.А., Цветкова Н.В., Борисенко Ю.В. Изучение противококлюшного иммунитета с помощью иммуноферментного анализа // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1986. - 7. - С. 86 -88.

21. Селезнева Т.С. Эпидемиологическая ситуация в России по коклюшу.// Материалы VIII съезда Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов. М. - 2002. - С. 229-230.

22. Селезнева Т.С., Титова Н.С., Заргарьянц А.И. Некоторые аспекты вакци-нопрофилактики коклюша // Материалы VIII Съезд Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов. М. - 2002. - С. 228 - 229.

23. Семенов Б.Ф., Захарова Н.С. Мазурова И.К. Подъем заболеваемости коклюшем на фоне массовой вакцинации. Гипотезы, объясняющие этот феномен

24. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2003. - 6. - С. 70 - 73.

25. Семина И.Э., Янкина Н.Ф. Использование метода иммуноблоттинга для идентификации индивидуальных белков в антигенных комплексах коклюшного микроба // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1989. -3.- С. 78-81.

26. Семина H.A., Селезнева Т.С., Заргарьянц А.И. Эпидемиологический надзор за коклюшной инфекцией: Методические указания // МУ 3. 1. 2. 2160 г 07 М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. - 2007. - 10 С.

27. Смирнов В.Д., Максютов Р.В., Эглит Ю.Х. и др. Разработка метода количественного определения токсина коклюшных бактерий и перспективы его использования для диагностики // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1987. - 7. - С. 103 - 106.

28. Сухинин М.В. Коклюш. Требуется новая стратегия диагностики и вак-цинопрофилактики // Эпидемиология и вакцинопрофилактика.- 2005. 6(25). -С. 17-21.

29. Таточенко В.К., Озерецковский H.A., Федоров A.M. Иммунопрофилактика 2009 (справочник) // М. - ИПК «Континент - Пресс». - 2009. - 176 С.

30. Таточенко В.К. Перспективы развития иммунопрофилактики в России // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2010. - 5. - С. 90 -98.

31. Таточенко В.К., Озерецковский H.A., Федоров A.M. Иммунопрофилактика 2011 (справочник) // М. - ИПК «Континент - Пресс». - 2009. - 198 С.

32. Тимченко В.Н., Бабаченко И.В., Ценева Г.Я. Эволюция коклюшной инфекции у детей // «ЭЛБИ СПб». - Санкт - Петербург. - 2005. - 192 С.

33. Хардина A.A. Преимущества и перспективы использования иммуноферментного анализа для оценки противококлюшного иммунитета // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1992. - 1. - С. 65 - 68.

34. Ценева Г.Я., Курова H.H. Микробиологическая характеристика возбудителя коклюша и лабораторная диагностика коклюша // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2003. - 4(5). - С. 329 - 341.

35. Янкина Н.Ф., Ванеева Л.И. Разработка метода получения коньюгатов пероксидазы с антииммуноглобулином для иммуноферментного анализа // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1985. - 1. - С. 35 -40.

36. Advani A., Donelly D., Gustafsson L., Hallander H.O. Changes of the Swedish Bordetella pertussis population in incidence peaks during an acellular perussis vaccine period between 1997 and 2004 // APMIS. 2007. - 115(4). - P. 299 - 310.

37. Advani A., Gustafsson L., Carlsson R.M., Donelly D., Hallander H.O. Clinical outcome of pertussis in Sweden assotiation with pulsed- field gel electrophoresis profiles and serotype // APMIS. 2007. - 115(6). - P. 736 - 742.

38. Advani A., Gustafsson L., Ahren C., Mooi F.R., Hallander H.O. Appearance of fim 3 and ptxP3 Bordetella pertussis strains, in two regions of Sweden with different vaccination programs //Vaccine. - 2011.- 29(18).- P. 3438 - 3442.

39. Amano K., Fukushi K., Watanabe M. Biochemical and immunological comparison of lipopolysacharides from Bordetella species // J. Gen. Microbiol. 1990. -136(3).- P. 481-487.

40. Andre P., Caro V., Njamkepo E., Wendelboe A.M., Van Rie A., Guiso N. Comparison of serological and real time PCR assays to diagnose Bordetella pertussis infection in 2007 // J. Clin. Microbiol. - 2008. - 45(5). - P.1672 - 1677.

41. Antico A., Fabozzi F., Scipiotti C. Pertussis in adult. A stady in an Italian population with chronic cough // Monaldi Arch. Chest. Dis. 2002. - 57(5 - 6). - P. 229 - 230).

42. Aquas R., Goncalves G., Gomes M.G. Pertussis increasing disease as a consequence of reducing transmission // Lancet Infect. Dis. 2006. - 6(2). - P. 112 - 117.

43. Arai H, Munoz J.J. Fimbrial haemagglutinin in stationary and shake cultures of Bordetella pertussis I I Infect. Immun. 1979. - 25(2). - P. 764 - 767.

44. Arico B., Rappuoli R. Bordetella parapertussis and Bordetella bronchiseptica contain transcriptionally silent pertussis toxin genes // J. Bacteriol. 1987. - 169 (6).-P. 2847-2853.

45. Ashworth L.A.E., Irons L.I., Dowsett A.B. Antigenic relationship between serotype specific agglutinogen and fimbriae of Bordetella pertussis II Infect. Immun.-1982.-37.-P. 1278- 1281.

46. Bart M.L., van Gent M., van der Heide H.G., Boekhorst J., Hermans P., Parkhill J., Mooi F.R. Comparative genomics of prevaccination and modern Bordetella pertussis strains // BMC Genomics. 2010. - 11. - P. 627.

47. Bassinet L., Gueirard P., Maiter B., Housset B. Gounon P., Guiso N. Role of adhesins and toxins in invasion of human tracheal epithelial cells by Bordetella pertussis II Infect. Immun. 2000. - 68(4). - P. 1934 - 1941.

48. Bass J.W., Stephenson S.R. The return of pertussis // Pediatr. Infect. Dis.J. -1987. -6. P. 141 -144.

49. Beaver M.E., Karow C.M. Incidence of seropositivity to Bordetella pertussis and Mycoplasma pneumoniae infection in patients with chronic laringotracheitis // Lariungoscope. 2009. - 119(9). - P. 1839 - 1843

50. Bergfors E., Trollfors B., Taranger J. et al. Parapertussis and pertussis: differences and similarities in incidence, clinical course, and antibody responses // Int. J. Infect. Dis. 1999. - 3(3). - P. 140 - 146.

51. Berstad A.K.H., Holst J., Froholm L.O. et al. A nasal whole-cell pertussis vaccine induces specific systemic and cross reactive mucosal antibody responses in human volunteers // J. Med. Microbiol. - 2000. - 49. - P. 157 - 163.

52. Bjornstad O.N., Harvill E.T. Evolution and emergence of Bordetella pertussis II Trends Microbiol. 2005. - 13(8). - P. 355 - 359.

53. Bock J. M, Burtis CC, Poetker DM, Blumin JH, Frank M. O. Serum immunoglobulin G analysis to establish a delayed diagnosis of chronic cough due to Bordetella pertussis II Otolaryngol Head Neck Surg. 2012.- 146(1). - P. 63 - 67.

54. Bonhoeffer J., Bär G., Riffelman M., Soler M., Heininger U. The role of Bordetella infection in patients with acute exacerbation of chronic bronchitis H Infection. -2005.- 33(1).-P. 13 17.

55. Boucher P., Menozzi F.D., Locht C. The modular architecture of bacterial response regulators: insights into the activation mechanism of the Bvga transactivator of Bordetella pertussis // J. Mol. Biol. 1994. - 241. - P. 363 - 377.

56. Bouches V., Brun D., Cantinelli T., Dore G., Njamkepo E., Guiso N. First report and detailed characterization of B. perussis isolates non exspressing pertussius toxin or pertactin I I Vaccine. 2009. - 27(43). - P. 6034 - 6041.

57. Boursaux Eude C., Thiberge S., Carletti G., Guiso N. Intranasal murine model of Bordetella pertussis infection: II. Sequence variation and protection induced by a tricomponent acellular vaccine // Vaccine. - 1999. - 17. - P. 2651 -2660.

58. Boursaux-Eude C., Guiso N. Polymorphism of repeated regions of pertactin in Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis and Bordetella bronchiseptica // Infect. Immun. 2000.-68.- P. 4815-4817.

59. Bouziri A., Hamdi A., Khaldi A. et al. Malignant pertussis an underdiagnosed illness // Med. Trop. 2010. - 70(3). - P. 245 - 248.

60. Bowen S., Renauld-Mongenie G., Rouse J.H., Menozzi F.D., Locht C., Heron I., Brennan M J. Immunodominant Domains present on the Bordetella pertussis vaccine component filamentous hemagglutinin // I. Infect. Dis. 1997. - 175(6). - P. 1423-1431.

61. Braman S.S. Postinfectious cough ACCP evidence based clinical practice guidelines // Chest. - 2006. - 129. - P. 138S - 146S.

62. Brennan M.J., Li Z.M, Cowell J.I., Bisher M.E., Steven A.C., Novotny P., Manclark C.R. Identification of a 69 kilodalton nonfimbrial protein as an agglutinogen of Bordetella pertussis II Infect. Immun. 1988. - 56. - P. 3189 - 3195.

63. Bronne Shanbury C.J., Dolby J.M. The stability of the serotypes of Bordetella pertussis with particular reference to serotype 1,2,3,4 // J. Hyg. (Lond). - 1976. -76(2). - P. 277- 286.

64. Brooks D.A., Clover R. Pertussis infection in the United States role for vaccination of adolescents and adults // J. Am. Board Fam. Med. 2006. - 19(6). - P. 603 -611.

65. Cadney M., Maclntyre C.R., Maclntyre P., Puech M., Giammanco A. The se-roepidemiology of pertussis in Australia during an epidemic period // Epidemiol. Infect. 2006. - 134(6). - P. 1208 - 1216.

66. Cadney M., Mclntyre P.B., Heron L., Giammanco A., Maclntyre C.R. The relationship between pertussis symptomatology, incidence and serology in adolescens // Vaccine. 2008. - 26(44). - P. 5547 - 5553.

67. Calugar A., Ortega-Sanchez I.R., Tiwari T., Oakes L., Jahre J.A., Murphy T.V. Nosocomial pertussis cost of an outbreak and benefits of vaccinating health care workers // Clin. Infect. Dis. 2006. - 42(7). - P. 981 - 988.

68. Canthaboo C., Williams L., Xing D.K., Corbel M.J. Investigation of cellular and humoral immune responses to whole cell and acellular pertussis vaccine // Vaccine. 2000. - 19(6). - P. 637 - 643.

69. Carbonetti N.H. Immunomodulation in the pathogenesis of Bordetella pertussis infection and disease // Curr. Opin. Pharmacol. 2007. - 7(3). - P. 272 - 278.

70. Carbonetti N.H. Pertussis toxin and adenylate cyclase toxin: key virulence factors of Bordetella pertussis and cell biology tools // Future Microbiol. 2010. - 5. -P. 456 - 459.

71. Cassiday P.K., Tobin D' Angelo M., Watson J.R., Wu K.H., Park M.M., Sanden G.N. Co-infection with two different strains of Bordetella pertussis in an infant // J. Med. Microbiol. - 2008. - 57(Pt3). - P. 388 - 391.

72. Cattaneo L.A, Reed G.W, Haase D.H., Wills M.J., Edwards K.M. The se-roepidemiology of Bordetella pertussis infections: a study of person ages 1-65 years // J. Infect Dis. 1996. - 173(5). - P. 1256 - 1259.

73. Cherry J.D., Gornbein J., Heininger U., Stehr K. A search for serologic correlates of immunity to Bordetella pertussis cough illness // Vaccine. 1998. - 16.1. P. 1901 1906.

74. Cherry J.D., Wang S.P., Grayston J.T. Frequence of serological evidence of Bordetella infection and mixed infections with other respiratory pathogens in university students with cough illnesses // Clin. Infect.Dis. 2000. - 31(1). - P. 3 - 6.

75. Cherry J.D. The epidemiology of pertussis: a comparison of the epidemiology of the disease pertussis with the epidemiology of Bordetella pertussis infection // Pediatrics. 2005. - 115(5). - P. 1422 - 1427.

76. Cheung G.Y., Kelly S.M., Jess T.J., Prior S., Price N.C., Parton R., Coote J.G. Functional and structural studies on different forms of the adenilate cyclase toxin of Bordetella pertussis // Microb. Pathog. 2009. - 46(1). - P. 36 - 42.

77. Chuk L.M., Lambert S.B., May M.L.et al. Pertussis in infants: how to protect the vulnerable? // Commun .Dis .Intell. 2008. - 32(4). - P. 449 - 456.

78. Coffman R.L., Lebman D.A., Rothman P. Mechanism and regulation of immunoglobulin isotype switching // Adv. Immunol. 1993. - 54. - P. 229 - 270.

79. Cohen Bacrie S., Bertin F., Gassiot A.S., Prere M.F. Rapid molecular genetic assay for direct identification of Bordetella pertussis from patient speciments // Pathol. Biol. (Paris). - 2010. - 58(1). - P. 52 - 54.

80. Conway S.P., Balfour A.H., Ross H. Serologic diagnosis of whooping cough by enzyme-linced immunosorbent assay // Pediatr. Infect. Dis. J. 1988. - 7(8). - P. 570 - 574.

81. Cookson B.T., Cho H-L, Herwaldt L.A., Goldman W.E. Biological activities and chemical composition of purified tracheal cytotoxin of Bordetella pertussis II Infect. Immun. 1989. - 57. - P. 2223 - 2229.

82. Coote J.G. Environmental sensing mechanism in Bordetella II Adv. Mic-ribiol. Physiol. 2001.-44.- P. 141 - 181.

83. Crameri S., Heininger U. Successful control of a pertussis outbreak in a university children hospital // Int. J.Infect. Dis. 2008. - 12(6). - P. 85 - 87.

84. Cushley W. Immunoglobulins // In: Collier L., Badows A., Sussman M., editors. Topley & Wilson's microbiology and microbial infections. 9 th. ed., v. 3. London: Arnold. 1998. - P. 25 - 36.

85. Dalby T., Harboe Z.B., Krogfelt K.A. Seroprevalence of pertussis among Danish patients with cough of unknown etiology // Clin.Vaccine Immunol. 2010.-17(12).- P. 2016-2023.

86. Dalby T, Krogfelt KA. Laboratory diagnosis of pertussis: agglutination is not suitable. Respirology. 2011. - 16(8). - P. 1160 - 1162.

87. De Magistris M.T., Romano M., Nuti S.et al. Dissecting human T cell responses against Bordetella species// J. Exp. Med. 1988. - 168(4). - P. 1351 - 1362.

88. De Melker H.E., Versteegh F.G., Schelltkens J.F. et al. The incidence of Bordetella pertussis infections estimated in the population from a combination of serological surveys // J.Infect. 2006. - 53(2). - P. 106 - 113.

89. Deville J.G., Cherry J.D., Christenson P.D., Pineda E., Leach C.T., Kuhls T.L., Viker S. Frequency of unrecognized Bordetella pertussis infections in adults // Clin. Infect. Dis. 1995. - 21 (3). - P. 639 - 642.

90. Diavatopulos D.A., Hijnen M., Mooi F.R. Adaptive evolution of the Bordetella autotransporter pertactin // J. Evol. Biol. 2006. - 19(6). - P. 1931 - 1938.

91. Dominques A., Vidal J., Plans P., Salleras L. The seroepidemiology of B. pertussis in Catalonia, Spain I I Epidemiol. Infect. 2001. - 126(2). - P. 205 - 210.

92. Elomaa A., Advani A., Donelly D., Antila M., Mertsola J., He Q., Hallander H. Population dynamics of Bordetella pertussis in Finland and Sweden, neighboring countrier with different vaccination histories // Vaccine. 2007. - 25(5). - P. 918926.

93. Engvall E., Perlman P. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Quantitative assay of immunoglobulin G // Immunochemistry. 1971. - 8. - P. 871 - 874.

94. Engvall E., Perlman P. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Quantitative of specific antibodies by enzyme-labeled anti-immunoglobulin in antigen-coated tubes // J. Immunol. 1972. - 109. - P. 129 - 135.

95. Esen B., Coplu N., Kurtogle D. et al. Prevalence of high antibody titers of pertussis in Turkey: reflection of circulating microorganism and a threat to infants // J. Clin. Lab. Anal. 2007. - 21(3). - P. 154 - 161.

96. Fedele G, Celestino I, Spensieri F et al. Lipooligosaccharide from Bordetella pertussis induces mature human monocyte derived dendritic cells and drives a Th2 biased response I I Microbes Infect.- 2007. - 9(7). - P. 855 - 863.

97. Finger H., von König C.H.W. Serological diagnosis of whooping cough // Dev. Biol. Stand. 1985. - 61. - P. 331 - 335.

98. Finn T.W., Stevens L.A. Tracheal colonization factor: a Bordetella pertussis secreted virulence determinant // Mol. Microbiol. 1995. - 16. - P. 625 - 634.

99. Forsyth K., Tan T., von König C.H., Caro J.J., Plotkin S. Potential strategies to reduce the burden of pertussis // Pediatr. Infect. Dis.J. 2005. - 24(5 Suppl). - P. S69 - S74.

100. Fry N.K., Tzirva O., Li Y.T., McNiff A., Doshi N., Maple P.F., Crowcroft N.S., Miller E., George R.C., Harrison T.G. Laboratory diagnosis of pertussis infection the role of PCR and serology // J.Med. Microbiol. 2004. - 53(Pt6). - P. 519 -525.

101. Geuijen C.A., W., Willems R.J.L., Bongaerts M., Top J., Gielen H., Mooi F.R. Role of the Bordetella pertussis minor subunit Fim D in colonization of the mouse repiratory tract // Infect. Immun. 1997. - 65. - P. 4222 - 4228.

102. Ghanaie R.M., Farimi A., Sadeghi H. et al. Sensitivity and specificity of the World Health Organization pertussis clinical case definition // Int. J. Infect Dis. -2010.- 14(12).-P. 1072- 1075.

103. Giammanco A., Taormina S., Genovese M., Mangiaracina G., Giammanco G., Chiarini A. Serological responses to infection with B. pertussis II Dev. Biol. Stand. 1997. - 89. - P.213 - 220.

104. Giammanco A., Taormina S., Chiarini A. et al. Analogous IgG subclass response to pertussis toxin in vaccinated children, healthy or affected by whoohing cough//Vaccine. 2003.-21.-P. 1924- 1931.

105. Giammanco A., Nardone A., Pebody R. et al. European sero epidemiology network 2: standartisation of immunoassay results for pertussis requires homogeneity in the antigenic preparations // Vaccine. - 2008. - 26(35). - P. 4486 - 4493.

106. Godfroid F., Denoel P., Poolman J. Are vacconation programs and isolate polymorphism linked to pertussis re-emergence? // Expert. Rev. Vaccines. 2005. -4(5).-P. 757 - 778.

107. Gonic B., Puder K.S., Gonic N., Kruger M. Seroprevalence of Bordetella pertussis antibodies in mothers and their newborn infants // M. Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 2005. - 13(2). - P. 59 - 61.

108. Goodman Y.E., Wort A.J., Jacson F.L. Enzyme-linked immunosorbent assay for decection of pertussis immunoglobulin A in nasopharyngeal secretions as an indicator of recent infection // J. Clin. Microbiol. 1981. - 13. - P. 286 - 292.

109. Granström M., Ferngren Y., Linde A., Granström G. IgG subclass responses to Bordetella pertussis filamentous hemagglutinin and perussis toxin in whooping cough // Serodiagn. Immunother. Infect. Dis. 1989. - 3. - P. 403 - 412.

110. Granström M., Granström G. Serological correlates in whooping cough // Vaccine. 1993.- 11(4). - P. 445 - 448

111. Gregory D.S. Pertussis: a disease affecting all ages // Am. Fam. Physician.-2006. 74(3). - P. 420 - 426.

112. Grimpel E. Pertussis in practice in 2007 // Arch. Pediatr. 2007. - 14 (3). - P. 306 - 309.

113. Gross R., Keidel K., Schmitt K. Resemblance and divergence the new members of the genus Bordetella II Med. Microbiol. Immunol. 2010. - 199(3). - P. 155163.

114. Guiso N., Grimpel E., Anjak I., Begue P. Western blot analysis of antibody responses of young infant to pertussis infection // Eur J. Clin.Microbiol. Infect. Dis -1993.- 12(8).-P. 596-600.

115. Guiso N. Impact of vaccination on the infectious diseases epidemiology: example of pertussis // Med. Sei. (Paris). 2007. - 24(4). - P. 399 - 403.

116. Guiso N. Whooping cough from infants to adults // Bull. Acad.Natl. Med.2008. 192(7). - P. 1437 - 1449.

117. Guiso N. Bordetella pertussis and pertussis vaccines // Clin. Infect. Dis.2009.- 49 (10).-P. 1565- 1569.

118. Guiso N., Berbers G., Fry N.K., He Q., Riffelman M., von König C.H. What to do and what not to do in serological diagnosis of pertussis. Recommendation from EU reference laboratories // Eur. J. Microbiol. Infect. Dis. 2011. - 30(3) , - P. 307-312.

119. Guiso N, Liese J, Plotkin S. The Global Pertussis Initiative: meeting report from the fourth regional roundtable meeting, France, April 14-15, 2010 // Hum. Vaccin. 2011. - 7(4). - P. 481 - 488.

120. Gustafsson B., Askelöf P. Monoclonal antibody based sandwich enzyme-linked immunosorbent assay for decection of Bordetella pertussis filamentous hemagglutinin // J. Clin.Microbiol. - 1988. - 26(10). - P. 2077 - 2082.

121. Hagiwara K, Ouchi K, Tashiro N et al. An epidemic of a pertusis like illness caused by Chlamidia pneumonia II Pediatr. Infect. Dis. J. - 1999. - 18(3). - P. 271 -275.

122. Hallander H.O., Storsaeter J., Möllby R. Evaluation of serology and nasopharyngeal cultures for diagnosis of pertussis in a vaccine efficacy trial // J. Infect. Dis.-1991.- 163(5).-P.1046- 1054.

123. Hallander H.O., Gnarpe J., Gnarpe H.,Oün P. Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis, Mycoplasma pneumonia, Chlamydia pneumonia and persistent cough in children // Scand. J. Infect. Dis. 1999. - 31 (3). - P. 281 - 286.

124. Hallander H.O., Advani A., Donnelly D., Gustafsson L., Carlsson R.M. Schift of Bordetella pertussis variants in Sweden from 1970 to 2003, during three period marked by different vaccination programs // J. Clin. Microbiol. 2005. - 43(6). -P. 2856-2865.

125. Hallander H.O., Ljungman M., Jahnmatz M., Storsaeter J,, Nilsson L., Gus-taffson L. Should fimbriae be includ in pertussis vaccine? Studies on ELISA IgG an-ti-fim2/3 antibodies after vaccination and infection //APMIS. 2009. - 117(9). - P. 660-671.

126. Hallander H.O.,Ljungman M., Storsaeter J., Gustafsson L. Kinetics and sensitivity of ELISA IgG pertussis antitoxin after infection and vaccination with Bordetella pertussis in young children. APMIS. 2009. - 117(11). - P. 797- 807.

127. Hallander HO, Nilsson L, Gustafsson L. Is adolescent pertussis vaccination preferable to natural booster infections? // Expert Rev Clin Pharmacol. 2011. -4(6).-P. 705 - 711.

128. Hanlon M., Nambiar R., Kakakios A. et al. Pertussis antibody levels in infants immunized with in acellular pertussis component vaccint, measured using whole -cell pertussis ELISA // Immunol. Cell. Biol. 2000. - 78(3). - P. 254 - 258.

129. Harvill E.T., Preston A., Cotter P.A., Allen A.G., Maskell D.J., Miller J.F. Multiple roles for Bordetella lipopolysaccharide molecules during respiratory tract infection // Infect. Immun. 2000. - 68(12). - P. 6720 - 6728.

130. Hausman S.Z., Burns D.L. Use of pertussis toxin encoded by ptx genes from Bordetella bronhiseptica to model the effect of antigenic drift of pertussis toxin on antibody neutralization // Infect. Immun. 2000. - 68(6). - P. 3763 - 3767.

131. He Q., Viljanen M.K., Arvilommi H., Aittanen B., Mertsola J. Whooping cough caused by Bordetella pertussis and Bordetella parapertussis in an immunized population // JAMA. 1998. - 280(7). - P. 635 - 637.

132. He Q, Mertsola J. Factors contributing to pertussis resurgence // Future Microbiol. 2008. - 3 (3). - P. 329 - 339.

133. Healy C.M., Munoz F.M., Rench M.A., Halasa N.B. et al. Prevalence of pertussis antibodies in maternal delivery, cord, and infant serum // J. Infect. Dis.2004.- 190(2).-P. 335-340.

134. Heikkinen E., Xing D.K., Olander R.M., Hytonen J., Mertsola J., He Q. Bordetella pertussis isolates in Finland: serotype and fimbrial expression // BMC Microbiol. 2008.- 8.-P. 162.

135. Heininger U., Frei R., Cherry J.D., Stehr K. Comparison of pulsed field gel electrophoresis patterns of Bordetella pertussis isolates from unvaccined children with severe or mild pertussis // Pediatr. Infect. Dis. J. 2004. - 23(3). - P. 211- 217.

136. Heininger U., Cherry J.D., Stehr K. Serologic response and antibody titer decay in adults with pertussis // Clin. Infect. Dis. - 2004, 38(4). - P. 591 - 594.

137. Hertz J.B., Holby N., Andersen V., Baekgaard P. Crossed immunoelectro-phoretic analysis of Bordetella pertussis antigens and of corresponding antibodies in human sera // Acta Pathol. Microbiol. Scand. 1976. - 84B (6). - P. 386 - 394.

138. Hewitt M., Canning B.J. Coughing precipitated by Bordetellapertusis infection // Lung. 2010. - 188. - Suppl. 1. - P. S73 - S79.

139. Hewlett E.L. Pertussis: current concepts of pathogenesis and prevention // Pediatr Infect. Dis. J. 1997. - 16. - P. S78 - S84.

140. Hewlett E., Edvards K.M. Pertussis not Just for kids // N. Engl. J. Med. -2005.-352.-P. 1215- 1222.

141. Higa F., Haranaga S., Tateyama M. et al. Assesment of serum anti Bordetella pertussis antibody titers among medical staff members. Jpn. J. Infect. Dis. -2008.-61(5).-P. 371 -374.

142. Hijnen M., Mooi F.R., van Gadeldonk P.G., Hoogerhout P., King A.J., Berbers G.A. Epitope structure of the Bordetella pertussis protein P.69 pertactin, a major vaccine component and protective antigen // Infect. Immun. 2004. - 72(7). - P. 3716-3723.

143. Hijnen M., de Voer R., Mooi F.R., Schepp R., Moret EE., van Gadeldonk P., Smits G., Berbers G.A.The role of peptid loops of the Bordetella pertussis protein P.69 pertactin in antibody recognition // Vaccine. 2007. - 25(31). - P. 5902 - 5914.

144. Hijnen M., He Q., Schepp R. et al. Antibody responses to defined regions of the Bordetella pertuss virulence factor pertactin // Scand. J. Infect. Dis. 2007. - 10. -P. 1 - 11.

145. Hindiyeh M., Carrol K.C. Laboratory diagnosis of atypical pneumonia. Semin. Respir. Infect. 2000. - 15(2). - 101 - 113.

146. Holby N., Herts J.B., Andersen V. Cross- reaction between Bordetella pertussis and twenty- eight other bacterial species. Acta Pathol. Microbiol. Scand. (B). -1976.- 84.-P. 395-400.

147. Hu J.J., Lu C.Y., Chang L.Y., Huang C.H., Chou C.C., Huang F.Y., Lee C.Y., Huang L.M. Survey of pertussis in patients with prolonged cough // J. Microbiol. Immunol. Infect. 2006. - 39(1). - P. 54 - 58.

148. Ibsen P., Moller S., Heron I. Lipopolysacharides in a traditional pertussis vaccines // J. Biol.Stand. 1988. - 16(4). - P. 299 - 309.

149. Ibsen P., Schou C., Au-Jensen M., Heron I. The effect of cyclodextrin on lip-opolysaccharide production in cultures of Bordetella pertussis II J.Biol. Stand. -1989.- 17(4).- P. 321-330.

150. Inatsuka C.S., Julio S.M., Cotter P.A. Bordetella filamentous hemagglutinin plays a critical role in immunomodulation, suggesting a mechanism for host specificity//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2005. - 102(51). -P. 18578 - 18583.

151. Irons L.I., Ashworth L.A.E., Wilton-Smith P. Heterogeneity of the filamentous hemagglutinin of Bordetella pertussis studied with monoclonal antibodies // J. Gen. Microbiol. 1983. - 129. - P. 2769 - 2778.

152. Isacson J. Studies of pertussis epidemiology and of serum antibody responces to Bordetella pertussis antigens after disease and vaccination // Tryckt & Bunden. Vasastadens Bokbinderi AB. Goteborg. - 1997. - 167 P.

153. Isacson J., Trollfors B., Lagergard T., Taranger J. Comparison of a toxin neutralization assay and ELISA for determination of pertussis toxin antibodies // Se-rodiagn. Immun. Infect. Dis. 1997. - 8. - P. 163 - 167.

154. Kallonen T., He Q. Bordetella pertussis strain variation and evolution postvaccination // Expert. Rev. Vaccines. 2009. - 8(7). - P 863 - 875.

155. Kamano H., Mori T., Maeta H. et al. Analysis of Bordetella pertussis agglutinin titers during an outbreak of pertussis at a university in Japan // Jpn. J. Infect. Dis.-2010.-63(2). P. 108-112.

156. Kapaskelis A.M., Voulomanou E.K., Rafailidis P.I., Hatzoupoulo P., Nikita D., Falagas M.E. High hrevalence of antibody titers against Bordetella pertussis in a adult popoulation with prolonged cough 11 Respir. Med. 102(11). - P. 1586 - 1591.

157. Kerr J.R., Matthews R.C. Bordetella pertussis infection pathogenesis, diagnosis. Management, and the role of protective immunity // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2000.- 19(2). - P. 77 - 88.

158. Kimura A, Mountzouros KT, Relman DA, Falkow S, Cowell JL. Bordetella pertussis filamentous hemagglutinin: evaluation as a protective antigen and colonization factor in a mouse respiratory infection model // Infect Immun. 1990. - 58(1). -P. 7- 16.

159. King A.J., Berbers G., van Oirschot Y.F., Hoogerhout P., Knipping K., Mooi F.R. Role of the polymorphic region 1 of the Bordetella pertussis protein pertactin in immunity // Microbiology. 2001. - 147(Pt 11). - P. 2885 - 2895.

160. Knelef N., Sakamoto H., Guiso N. Both adenylate cyclase and hemolytic activities are required by Bordetella pertuss to initiate infection //Microb. Pathog.1992.-12. -P. 227-235.

161. Knelef N, Danve B., Quentin-Miller M.J., Guiso N. Bordetella pertussis and Bordetella parapertussis: two immunologically distinct species // Infect. Immun.1993.-61(2).-P. 486-490.

162. Konda T., Kamachi K., Iwaki M., Matsunaga Y. Distribution of pertussis antibodies among different age groups in Japan // Vaccine. 2002. - 20(13-14). - P. 1711 - 1717.

163. Kösters K., Riffelman M., Dohm B., von König C.H. Comparison of five commercial enzyme linked immunosorbent assays for detection of antibodies to Bordetella pertussis II Clin. Diagn. Lab. Immunol. - 2000. - 7(3). - P. 422 - 426.

164. Kriz B., Fabianova K., Maixnerova M. et al. Pertussis: a reemerging infection? // Epidemiol. Microbiol. Immunol. 2007. - 56(2). - P. 51 - 65.

165. Kuronen T., Huovila R. Seroresponse to pertussis vaccine // In:Manclark C.R., Hill J.C. (ed.): Internationale symposium on pertussis. U.S. Department of health, education and welfare. Bethesda, Md. - 1978. - P. 34 - 40.

166. Lacey B.W. Antigenic modulation of Bordetella pertussis II J. Hyg. 1960.- 58.-P. 57-93.

167. Ladant D., Ullman A. Bordetella pertussis adenylate cyclase a toxin with multiple talents // Trends. Microbiol. 1999. - 7. - P. 172 - 176.

168. Ladant D., Brezin C., Alonso J-M., Crenon I., Guiso N. Bordetella pertussis adenylate cyclase: purification, characterization and radioimmunoassay // J. Biol. Chem. 1986. - 26. - P. 1624 - 1629.

169. Lambert-Buisine C., Willery E., Locht C., Jacob-Dubuisson F. N terminal characterization of the Bordetella pertussis filamentous haemagglutinin // Mol. Microbiol. - 1998. - 28. - P. 1283 - 1293.

170. Lawrence A.J., Paton J.C. Efficacy of enzyme-linked immunosorbent asay for rapid diagnosis of Bordetella pertussis infection // J. Clin. Microbiol. 1987. -25 (11).-P. 2102-2104.

171. Le Blay K., Caroff M., Blanchard F., Perry M.B., Chaby R. Epitopes of Bordetella pertussis lipopolisacharides as potenyial markers for typing of isolates with monoclonal antibodies // Microbiology. 1996. - 142(pt4). - P. 971 - 978.

172. Le Coustumier A., Njamkepo E., Cattoir V., Guillot S., Guiso N. Bordetella petrii infection with long lasting persistence in human // Emerg. Infect. Dis. - 2011. -17(4).-P. 61-618.

173. Leef M., Elkins K.L., Barbie J., Shahin R.D. Protective immunity to Bordetella pertussis requires both B cells and CD4(+) T cells for key functions other than specific antibody production // J. Exp. Med. 2000. - 191(11). - P. 1841 - 1852.

174. Letowska I., Chodorowska M., Kaszurba E., Kuklinska D., Tuski S. Bacterial growth and virulence factors production by different Bordetella pertussis strains //Acta Microbiol. Pol. 1997. - 46(1). - P. 45- 55.

175. Leung A.K., Robson W.L., Davies H.D. Pertussis in adolescents //Adv. Ther. 2007. - 24(2).-P. 353 -361.

176. Locht C., Bertin P., Menozzi F.D., Renauld G. The filamentous haemagglu-tinin, a multifaceted adhesion produced by virulent Bordetella spp // Mol. Microbiol. 1993.- 9.- P. 653 -660.

177. Locht C. Molecular aspects of Bordetella pertussis pathogenesis // Int. Microbiol. 1999. - 2(30). - P. 137 - 144.

178. Locht C., Antoine R., Jacob-Dubuisson F. Bordetella pertussis, molecular pathogenesis under multiple aspects // Curr. Opin. Microbiol. 2001. - 4. - P. 82 -89.

179. Lowry O.H., Rosenbrought N.J., Farr A.L., et al. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chemistry. 1951. - 193. - P. 265 - 275.

180. Lynn F., Reed G.F., Meade B.D. Collaborative study for the evaluation of enzyme linked immunosorbent assays used to measure human antibodies to Bordetella pertussis antigens // Clin. Diagn. Lab. Immunol. - 1996. -3(6). - P. 689 -700.

181. Macaulay M.E. The IgM and IgG response to Bordetella pertussis vaccination and infection // J. Med.Microbiol. 1981. - 14(1). - P. 1 - 7.

182. Madan Babu M., Bhargavi J., Ranajeet Singh Saund, Kumar Singh S. Virulence factors of Bordetella pertussis II Current Science.- 2001. 80(12). - P. 1512 -1522.

183. Madison J.M., Irwin R.S. Cough: a worldwide problem // Otolaryngol. Clin. North. Amer.-2010. 43(1).-P. 1-13.

184. Mahon B.P., Brady M.T., Mills K.H. Protection against Bordetella pertussis im mice in the absence of decectable circulating antibody implications for long-term immunity in children //1. Infect. Dis. 2000. - 181(6). - P. 2087 - 2091.

185. Marchitto K.S., Smith S.G., Locht C., Keit J.M. Nucleotide sequence homology to pertussis toxin gene in Bordetella bronchiseptica and Bordetella parapertussis // Infect. Immun. 1987. - 55. - P. 497 - 501.

186. Merkel T., Stibitz S., Keit J.M., Leef M., Shahin R. Contribution of regulation by the bvg locus to respiratory infection of mice by Bordetella pertussis II Infect. Immun. 1998. - 66. - P. 4367 - 4373.

187. Merkel T., Barros C., Stibitz S. Characterization of the bvgR locus of Bordetella pertussis II J. Bacteriol. 1998. - 180. - P. 1682 - 1690.

188. Merrigan S.D., Welch R.J., Litwin C.M. A comparison of western im-munoblots to ELISA for the determination of anti Bordetella pertussis antibodies // Clin. Vaccine Immunol. - 2011.- 18(4). - P. 615 - 620.

189. Mertsola J., Kuronen T., Turunen A., Viljanen M.K., Ruuscanen O. Diagnosis of pertussis // J.Infect. Dis. 1984. - 8(2). - P. 149 - 156.

190. Mertsola J. Whooping cough. Serological and epidemiological studies // Kir-japaino Pika Oy Turku, Finland. - 1985. - P. 47 - 48.

191. Mertsola J., Ruuskanen O., Kuronen T., Meurman O., Viljanen M.K. Serologic diagnosis of pertussis evaluation of pertussis toxin and other antigens in enzyme-linked immunosorbent assay // J. Infect Dis. 1990. - 161(5). - P. 966 - 971.

192. Mielcarec N., Debrie A-S., Raze D et al. Live attenuated B. pertussis as a single-dose nasal vaccine against whooping cough // PLoS Pathogens. 2006. - 2(7). -P. e 65.

193. Miller E., Fleming D.M., Ashworth L.A., Mabett D.A., Vurdien J.E., Elliot T.S. Seroligical evidence of pertussis in patients presenting with cough in general practice in Birmingam // Comm. Dis. Public. Health. 2000. - 3(2). - P. 132 - 134.r

194. Mink C.M., OBrien C.H., Wassilak S. et al. Isotype and antigen specificity of pertussis agglutinins following whole cell pertussis vaccination and infection with Bordetellapertussis II Infect. Immun. - 1994. - 62(3). - P. 1118 - 1120.

195. Mooi F.R., He Q., van Oirschot H., Mertsola J. Variation in the Bordetella pertussis virulence factors pertussis toxin and pertactin in vaccine strains and clinical isolates in Finland // Infect. Immun. 1999. - 67(6). - P. 3133 - 3134.

196. Mooi F.R., van Loo I.H., King A.J. Adaptation of Bordetella pertussis to vaccination a cause for its reemerdence? // Emerg. Infect. Dis. 2001. - 7(3). - P. 526-528.

197. Mooi F.R. Bordetella pertussis and vaccination: the persistence of a genetically monomorphic pathogen // Infect Genet Evol. 2010. - 10(1). - P. 36 - 49.flt I1. I \

198. Munoz F.M. Pertussis in infants, children and adolescents: diagnosis, treatment and prevention // Semin.Pediatr. Infect. Dis. 2006. - 17(1). - P. 14 - 19.

199. Nagel J. and Poot Scholtens. Serum IgA antidody to Bordetella pertussis as an indicator of infections // J. Med.Microbiol. - 1983. - 16. - P. 417 - 426.

200. Njamkepo E., Cantinelli T., Guidon G., Guiso N. Genomic analysis and comparison of Bordetella pertussis isolates circulating in low and high vaccine coverage areas // Microbes Infect. 2008. - 10 (14-15). - P. 1582 - 1586.

201. Nooitgedagt J.E., de Greeff S.C., Elvers B.H. et al. Seroprevalence oiBordetella pertussis infection during pregnancy measured by IgG antibodies against pertussis toxin // Clin. Infect. Dis. 2009. - 49(7). - P. 1086 - 1089.

202. Olin P., Hallander H.O., Gustafsson L., Reizenstein E., Storsaeter J. How to make sense of pertussis immunogenisity data // Clin. Infect. Dis. 2001.- 33(4). - P. S288-S291.

203. Onorato I.M., Wassilak S.G.R. Laboratory diagnosis of pertussis: the state of the art // Pediatr. Infect. Dis. J. 1987. - 6. - P. 145 - 151.

204. Packard E.R., Parton R., Coote J.G., Fry N.K. Sequence variation and conservation in virulence-related genes of Bordetella pertussis isolates from the UK // J. Med. Micribiol. 2004. - 53 (Pt5). - P. 355 - 365.

205. Pagliaccia C., Manetti R., Rappuoli R. Pertactin antigens extracted from Bordetella pertussis and Bordetella bronchiseptica differ in the isoelectric point // Arch. Microbiol. 1997. - 168(5). - P. 437 - 400.

206. Palmer C.M., McCall., Jarvinen K., Nisen M.D. Bordetella pertussis PCR positivity, folloving onset of illness in children under 5 yeare of age // Commun. Dis. Intell. 2007. - 31(2). - P. 202 - 205.

207. Patriarca P.A., Biellik R.J., Sanden G., Burstyn D.G., Mitchell P.D., Silverman P.R., Davis J.P., Manclark C.R. Sensitivity and specificity of clinical case definitions for pertussis // Am. J. Public. Health. 1988. - 78. - P. 833 - 836.1,1

208. Pebody R.G., Gay N.J., Giammanco A., Baron S., Schellekens J., Tischer A., Olander R.M., Andrews N.J. et al. The seroepidemiology of Bordetella pertussis infection in Western Europe // Epidemiol. Infect. 2005. - 133(1). - P. 159 - 171.

209. Peppier M.S. Two physically and serologically distinct lipopolysaccharide profiles in strains of Bordetella pertussis and their phenotype variants. Infect. Immun. 1984. - 43(1). - P. 224 - 232.

210. Perera V.Y., Wardlaw A.C., Freer J.H. Antigenic heterogeneity in subunit SI of pertussis toxin // J. Gen. Microbiol. 1986. - 132(2). - P. 553 - 556.

211. Pereira A., Pietro Pereira A.S., Silva C.L. et al. Antibody response from whole cell pertussis vaccine immunized Brazilian children against different strains of Bordetella pertussis II Am.J.Trop.Med. Hyg. - 2010. - 82(4). - P. 678 - 682.

212. Pittman M. Pertusis toxin the cause of the harmful effects and prolonged immunity of whooping cough. A hypothesis // Rev. Infect. Dis. 1979. - 1. - P. 401412.

213. Pittman M. The concept of pertussis as a toxin mediated disease // Pediatr. Infect. Dis. 1984. - 3. - P. 467- 486.

214. Plans P., Jansa J., Doshi N. et al. Prevalence of pertussis antibodies in umbilical cord blood samples in Catalonia, Spain // Pediatr. Infect. Dis. J. 2008. -27(11).-P. 1023- 1025.

215. Plotkin S.A., Cadoz M. Accellular vaccine efficacy trial // Pediatr Infect. Dis. J. 1997.- 16.-P. 913-914.

216. Polyzou A., Pournaras S., Dafni U., Sofianou D., Christeli E., Patrinos S., Tsakris A. Seroepidemiology of Bordetella pertussis immune responses in a healthy population in northern Greece // J. Clin. Lab. Anal. 2004. - 18(3). - P. 211 - 214.

217. Poolman J.T., Hallander H.O. Acellular pertussis vaccines and the role of pertactin and fimbria // Expert. Rev. Vaccines. 2007. - 6(1). - P. 47 - 56.

218. Poynten M., Hanlon M., Irvig L., Gilbert G.L. Serological diagnosis of pertussis evaluation of IgA against whole cell and specific Bordetella pertussis antigens as markers of recent infection // Epidemiol. Infect. 2002. - 128(2). - P. 161 -167.

219. Pootong A., Budhirakkul P., Tongtave P., Tapchaisri P., Chongsa-nguan M., Chaicumpa W. Monoclonal antibody that neutralizes pertussis toxin activities // Asian Pac. J. Allergy Immunol. 2007. - 25(1). - P. 37- 45.

220. Pratter M.R. Chronic upper airway cough syndrome secondary to rhinosinus diseases (previously reffered to as postnasal drip syndrome): ACCP evidence-based clinical practice quidelines // Chest. 2006. - 129(1 Suppl). - P. 63S - 71S.

221. Prince H.E., Lape-Nixon M., Matud J. Evaluation of a tetraplex microsphere assay for Bordetella pertussis antibodies // Clin. Vaccine Immunol. 2006. - 13(2). - P. 266 - 270.

222. Prior S., Corbel M.J., Xing D.K. Development of an approach for the laboratory toxicological evaluation of Bordetella pertussis adenilate cyclase genetic toxoid constructs as multipurpose vaccines // Hum.Vaccin. 2005. - 1(4). - P. 151 - 159.

223. Quinn Y.E., Mclntare P.B. Pertussis epidemiology in Australia over the decade 1995-2005 trend by region and age group // Comm. Dis. Intell. - 2007. - 31 (2).-P. 205 -215.

224. Rastawcki W., Rocosz N., Jagielski M. et al. Comparison of routine serological investigation perfomed in three different laboratories in Poland for the diagnosis of pertussis // Med. Dosw. Microbiol. 2010. - 62(2). - P. 109 - 117.

225. Raze D., Veithen A., Sato H., Antoine R., Menozzi F.D., Locht C. Genetic exange of the S2 and S3 subunit in pertussis toxin // Mol. Micribiol. 2006. -60(5).- P. 1241 - 1250.

226. Rendi -Wagner P., Tobias J., Mortman L., Goren S., Bassal R., Green M., Cohen D. The seroepidemiology of Bordetella pertussis in Israel estimate of incidence of infection // Vaccine. - 2010. - 28(19). - P. 3285 - 3290.

227. Riffelman M., Littman M., Hülße C et al. Pertussis: Not only a disease of childhood// Dtsch. Arztebl. Int. -2008. 105 (37).-P. 623-628.

228. Riffelman M., Wirsing von König C.H. Lifelong protection against pertussis // Dtsch. Med. Wochenschr. 2009. - 134 (2). - P. S86 - S89.

229. Riffelman M., Thiel K., Schmetz J. et al. Performance of commercial enzyme-linked immunosorbent assays for decection antibodies to Bordetella pertussis II J. Clin. Microbiol.-2010.- 48 (12).-P. 4459-4463.

230. Robbins J.B., Schneerson R, Bryla D.A., Trollfors B., Taranger J., Lagergárd T. Immunity to pertussis. Not all virulence factirs are protective antigens // Adv. Exp. Med. Biol. 1998.-452.-P. 207-218.

231. Robbins J.B., Schneerson R.,Keit J.M., Shiloach J., Miller M., Trollors B. The rise in pertussis cases urges remlacement of chemically-inactivated with geniti-cally-inactivated toxoid for DTP // Vaccine. 2007. - 25(15). - P. 2811 - 2816.

232. Ruuskanen O., Viljanen M.K., Salmi T.T. et al. DTP and DTP inactivated polio vaccines: comparison of adverse reactions and IgG, IgM and IgA antibody responses to DTP II Acta Paediatr. Scand. 1980. - 69. - P. 177 - 182.

233. Sanz Moreno J.C., De Ory Manchón F., Gonzales Alonso J., della Torre J.L., Salmerón F. et al. Laboratory diagnosis of pertussis. Role of serology // Enferm. In-fecc. Microbiol. Clin. 2002. - 20(5) . - P. 212-218.

234. Schellekens J., von König C.H., Gardner P. Pertussis sources and routes of transmission in the vaccination era // Pediatr. Infect. Dis. J. 2005. - 24(5 Suppl). -P. S19-S24.

235. Scott L.J. Tdap vaccine (Covaxis): a review of its use as a single booster immunization for the prevention of tetanus, diphtheria, and pertussis in children (aged 4 years), adolescens, and adults // BioDrugs. - 2010. - 24(6). - P. 387 - 406.

236. Shahin R.D., Brennan M.J., Li Z.M., Meade B.D., Manclark C.R. Characterization of the protective capacity and immunogenicity of the 69 kDa outer membrane protein of Bordetella pertussis II J.Exp. Med. 1990. - 171. - P. 63 - 73.

237. Shahin RD, Amsbaugh DF, Leef MF. Mucosal immunization with filamentous hemagglutinin protects against Bordetella pertussis respiratory infection // Infect Immun. 1992. - 60(4). - P. 1482 - 1488.

238. Skerry C.M., Mahon B.P. A live attenuated Bordetella pertussis vaccine provides long term protection against virulent challenge in a murine model // Clin. Vaccine Immunol. -2011.-18(2). P. 187 - 193.

239. Stibits S., Aaronson W., Monack D., Falkow S. Phase variation in Bordetella pertussis by frameshift mutation in a gene for a novel two- component system // Nature. 1989. - 338 . - P. 266 - 269.

240. Storsaeter J., Hallander H.O., Gustafsson L., Olin P. Levels of anti-pertussis antibodies related to protection after housenhold exposure to Bordetella pertussis II Vaccine. 1998. - 16(20). - P. 1907- 1916.

241. Storsaeter J., Halander H.O., Gustafsson L., Olin P. Low levels antipertussis antibodies plus lack of history of pertussis correlate with suscebtibility after housenhold exposyre to Bordetella pertussis II Vaccine. 2003. - 21(25-26). - P. 3542 -3549.

242. Storsaeter J., Wolter J. Is there a need for a new generation of vaccine against pertussis? // Expert. Opin. Emerg. Drugs. 2006. - 11(2).- P. 195 -205.

243. Strebel P., Nordin J., Edwards K., Hunt J., Besser J., Burns S., Amundson G., Baughman A., Wattigney W. Population based incidence of pertussis among adolescents and adults, Minnesota, 1995-1996 // J. Infect. Dis. - 2001. - 183(9). - P. 1353 - 1359.

244. Sutherland J.N., Maynard J.A. Characterization of a key neutralizing epitope on pertussis toxin recognized by monoclonal antibody 1B7// Biochemistry. 2009. -48(50).-P. 1982- 1993.

245. Tan T., Trindade E., Scowronski D. Epidemiology of pertussis // Pediatr. Infect. Dis. J. 2005. - 24(5).-P. 10-18.

246. Taranger J., Trollfors B., Lagergard T. Correlation between pertussis toxin IgG antibodies in postvaccination sera and subsequent protection against pertussis // J. Infect. Dis. 2000. - 181.-P. 1010-1013.

247. Thalen M., Venema M., van den IJssel J., Berwald L., Beuvery C., Martens D., Tramper J. Effect of relevant culture parameters on pertussis toxin expressison by Bordetellapertussis II Biologicals. 2006. - 34(3). - P. 213 - 220.

248. Thenius P.F., van der Heijden O.G., de Melker H.E., Schellecens J.F., Ver-steegh F.G., Kretzschmar M.E. Kinetics of the IgG antibody response to pertussis toxin after infection with B. pertussis II Epidemiol. Infect. 2002. - 129(3). - P. 479 -489.

249. Thomas MG., Redhead K., Lambert H.P. Human serum antibody reponses to Bordetella pertussis infection and pertussis vaccination //J. Infect. Dis. 1989. -159(2).-P. 211 -218.

250. Tran Minh N.N., He Q., Edelman K., Putto-Laurila A., Arvilommi H., Vil-janen M.K., Mertsola J. Immune responces to pertusis antigens eight years after booster immunization with acellular vaccines in adults // Vaccine 2000. - 18(19). -P. 1971 - 1974.

251. Trollfors B., Burman L., Lagergard T. et al. No cross-reactivity with filamentous hemagglutinin of Bordetella pertussis in sera from patient with nontypable Haemophilus influezae pneumonia // Pediatr. Infect. Dis. J. 1996. - 15. - P. 558 -559.

252. Trollfors B., Lagergarg T., Gunarsson E., Taranger J. Determination of per-tactin IgG antibodies for the diagnosis of pertussis // Clin. Microbiol. Infect. 2003.- 9(7). P. 585 - 589.

253. Tsang R.S., Lau A.K., Still M.L., Halperin S.A., Van Caeseele P., Jamieson F., Martin I.E. Polymorphism of the fimbria fim3 gene of Bordetella pertussis srtains isolated in Canada // J. Clin. Microbiol. 2004. - 42(11). - P. 5364 - 5367.

254. Tuomanen E., Weiss A. Characterization of two adhesins of Bordetella pertussis for human ciliated respiratory epithelial cells // J. Infect. Dis. - 1985.- 152.- P. 118-125.

255. Ulloa-Gutierrez, Avila Aquero M.L. Pertussis in Latin America: current situation and future vaccination challenges // Expert.Rev. Vaccines. - 2008. - 7(10).- P. 1569- 1580.

256. Van Boven M., de Melker H.E., Schellecens J.F., Kretzzchmar M. Waning immunity and sub-clinical infection in an epidemic model: implication for pertussis in the Netherlands // Math. Biosci. 2000. - 164(2). - P. 161 - 182.

257. Van Boven M., Mooi F.R., Schellekens J.F., de Melker H.E., Kretzschmar M. Pathogen adaptation under imperfect vaccination: implication for pertussis // Proc. Biol. Sei. 2005. - 272 (1572). - P. 1617 - 1624.

258. Van Loo I.H., Mooi F.R. Changes in the Dutch Bordetella pertussis population in the first 20 years after introduction of whole-cell vaccines // Microbiology. -2002. 148(pt7). - P. 201 - 2018.

259. Van Savage J., Decker M.D., Edwards K.M. et al. Natural history pertussis antibody in the infant and effect on vaccine response // J. Infect. Dis. 1990. -161(3). -P. 487-492.

260. Van der Wielen M., Van Damme P., Van Herck K., Schlegel-Haueter S., Siegrist C.A. Seroprevalence of Bordetella pertussis antibvodies in Flanders (Belgium) // Vaccine 2003. - 21(19 - 20). - P. 2412 - 2417.

261. Versteegh F.G., Schellekens J.F., Nagelkerke A.F., Roord J.J. Laboratory -confirmed reinfection with Bordetella pertussis // Acta Paediatr. 2002. - 91(1). - P. 95 - 97.

262. Versteegh F.G., Mertens P.L., de Melker H.E. et al. Age-specific long-term course of IgG antibodies to pertussis toxin after symptomatic infection with Bordetella pertussis // Epidemiol. Infect. 2005. - 133(4). - P. 737 - 748.

263. Versteegh F.G., Mooi- Kokenberg E.A., Shellekens J.F., Roord J.J. Bordetella pertussis and mixed infections. Minerva Pediatr. 2006. - 58(2). - P. 131 - 137.

264. Villuendas M.C., Lopes A.I., Moles B., Revillo M.J. Bordetella spp. infection: a 19 year experience in diagnosis by culture // Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. -2004.- 22(4).-P. 212-216.

265. Vincent M, Rodeghiero C, Eylenbosch R, Mans Y, Swalus-Steenhouwer J, Pierard D, Huygen K, Vanhoof R. Rertussis serodiagnosis in Belgium from 1990 to 2009. // Clin. Vaccine Immunol. 2011. - 18(4). - P. 588 - 94.

266. Voller A., Bidwell D., Huldt G., Engvall E. A microplate method of enzyme-linked immunosorbent assay and its application to malaria // Bull.WHO. 1974. -56.-P. 209- 211.

267. Von König C.H., Halperin S., Riffelman M., Guiso N. Pertussis of adults and infants // Lancet Infect. Dis. 2002. - 2(12). - P. 744 - 750.

268. Watanabe M., Connelly D., Weiss A.A. Characterization of serological responses to pertussis // Clin.Vaccine Immunol.- 2006. 13(3). - P. 341- 348.

269. Wearing H.J., Rohani P. Estimating the duration of pertussis immunity using epidemiological signatures // PLos Pathog. 2009. - 5(10). - P. el000647.

270. Wendelboe A.M., Van Rie A., Salmaso S. and Englund J.A. Duration of immunity against pertussis after natural infection or vaccination // The Pediatric. Infect. Dis. Jour. 2005. - 24(5). - P. S58 - S61.

271. Wendelboe A.M., Njamkepo.E., Bourillon A, Floret.D.D., Gaudelus J., Gerber M., Grimpel E., Greenberg D. et al. Transmissison of Bordetella pertussis to young infants // Pediatr. Infect. Dis. J. 2007. - 26(4). - P. 293 - 299.

272. Westdijk J., van den Ijssel J., Thalen M. et al. Quantification of cell associated and free antigtns in Bordetella pertussis suspension by antigen binding ELISA // J. Immunoassay. - 1997. - 18(3). - P. 267 - 284.

273. Westphal O., Jann K. Bacterial lipopolysaccharides extraction with phenol -water and fiither application of the procedure // In: Methods in Carbohydrate Chemistry (Whistler R.L., Wolfrom M.I., Eds.) Academic Press, New York - 1965 - 5.-P. 83-91.

274. Widdicombe J, Kamath S. Acute cough in the elderly: aethiology, diagnosis and therapy // Drugs Aging 2004. - 21(4). - P. 243 - 258.

275. Williamson P., Matthews R. Epitope mapping the Fim 2 and Fim 3 proteins of Bordetella pertussis with sera from patients infected with or vaccinated against whooping cough // FEMS Immunol. Med. Microbiol. 1996. - 13(2). - P. 169 -178.

276. Wilson D.R., Sieberg A., Finlay B.B. Antigenic analysis of filamentous hemagglutinin with phage display libraries and rabbit Bordetella pertussis anti-filamentous hemagglutinin polyclonal antibodies. // Infect. Immun. 1998, - 66(10). . p. 4884 - 4894.

277. Winsnes R., Mogster B. The identification of diphtheria, tetanus and pertussis vaccines by single radial and double immunidiffusion techniques // J. Biol. Stand. 1985.- 13.-P. 31-34.

278. Wirsing von König C.H., Gounis D., Laukamp S., Bogaerts., Schmitt H.J. Evaluation of a single-sample serological technique for diagnosing pertussis in unvaccinated children // Eur.J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 1999. - 18(5). - P. 341 -345.

279. Wolfe D.N., Goebel E.M.,Bjornstad O.N., Restif O., Harvill E.T. The O antigen enables Bordetella parapertussis to avoiud Bordetella pertussis induced immunity//Infect. Immun. - 2007. - 75(10).-P. 4972- 4979.

280. Wolfe D.N., Kirimanjeswara G.S., Goebel E.M., Harvill E.T. Comparative role of immunoglobulin A in protective immunity against the Bordetella II Infect. Immun. 2007. - 75(9). - P. 4416 - 4422.

281. Wood N., Mclntyre P. Pertussis: review of epidemiology, diagnosis, management and prevention // Paediatr. Respir. Rev. -2008,- 9(3). P. 201-211.

282. Xing D., Wirsing von König C.H., Newland p. et al. Characterization of reference materials for human antiserum to pertussis antigens by an international collaborative study // Clin. Vaccine Immunol. 2009 - 16 (3). - P. 303 - 311.

283. Xy Y., Wang Y., Zhang Y. et al. Production and characterization recombinant pertactin fimbria 2 and fimbria 3 from Bordetella pertussis II BMC Microbial. -2009. 9. - P. 274.

284. Yaari E., Yafe-Zimmerman Y., Schwarts S.B. et al. Clinical manifestation of Bordetella pertussis infection in immunized children and young adults. Chest. -1999/- 115(5).-P. 1254- 1258.

285. Yeh S.H., Mink C.M. Schift in the epidemiology of perussis infection: an indication for pertussis vaccine boosters for adults? // Drugs. 2006, 66(6). P. 731-741.

286. Yildirim I., Ceyhan M, Kalayci O. et al. Frequency of pertussis in children with prolongued cough // Scand.J. Infect. Dis. 2007. - 11. - P. 1-6.

287. Yu J.J., Chang L.Y., Huang L.M. et al. Survey of pertussis in patient with prolonged cough // J. Microbiol. Immunol. Infect. 2006. - 39(1). - P. 54 - 58.

288. Zackrisson G., Lagerdard T.,Trollfors B., Krantz I. Immunoglobulin A antibodies to pertussis toxin and filamentous hemagglutinin in saliva from patients with pertussis // J.Clin. Microbiol. 1990. - 28(7). - P. 1502 - 1505.

289. Zepp F., Knuf M., Habermehl P. et al. Cell mediated immunity after pertussis vaccination and after natural infection // Dev. Biol. Stand. - 1997. - 89. - P. 307 -314.

290. Zepp F, Heininger U, Mertsola J, Bernatowska E, Guiso N, Roord J, Tozzi AE, Van Damme P. Rationale for pertussis booster vaccination throughout life in Europe // Lancet Infect Dis. 2011. - 11(7). - P. 557 - 570.

291. Zhang Y.L., Secura R.D. Purification and characterization of the heat-labile toxin of. Bordetella pertussis II Infect. Immun. 1991. - 59. - P. 3754 - 3759.

292. Zhang L., Prietsch S.O., Axelsson I., Halperin S.A. Acellular vaccines for prevention whooping cough in children // Cochrane Database Syst. Rev. -2011.-1. -P. CDOQ1478.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.