Повышение неспецифической устойчивости персика (Prunus persica (L.) Batsch) к фитопатогенам при применении иммуноиндукторов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.07, кандидат наук Михайлова Елена Валерьевна

• Михайлова Елена Валерьевна
• кандидат наук
• 2018

Оглавление диссертации кандидат наук Михайлова Елена Валерьевна

СОДЕРЖАНИЕ

Введение

1 ОБЗОР СОВРЕМЕННЫХ СРЕДСТВ И МЕТОДОВ ЗАЩИТЫ ПЕРСИКА ОТ ГРИБНЫХ БОЛЕЗНЕЙ

1.1 Культура персика и основные сорта, возделываемые на Черноморском побережье России

1.2 Основные грибные болезни персика и методы защиты от них

1.3 Опыт и перспективы практического использования иммуно-индукторов

1.4 Основные биохимические механизмы формирования индуцированного иммунитета растений в ответ на действие фитопа-тогенов

2 УСЛОВИЯ, ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1 Условия региона исследования

2.2 Объекты исследования

2.3 Методика исследований

3 ЭФФЕКТИВНОСТЬ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ИММУНОИНДУКТО-РОВ СИСТЕМЕ ЗАЩИТЫ ПЕРСИКА ОТ ГРИБНЫХ БОЛЕЗНЕЙ

В ЗОНЕ ВЛАЖНЫХ СУБТРОПИКОВ РОССИИ

3.1 Защитное действие иммуноиндукторов в борьбе с грибными болезнями персика

3.1.1 Курчавость листьев персика

3.1.2 Кластероспориоз

3.1.3 Плодовые гнили

3.2 Влияние иммуноиндукторов на биохимические показатели и фотосинтетическую активность листьев персика

3.2.1 Ферменты антиоксидантной системы

3.2.2 Содержание эндогенной салициловой кислоты

3.2.3 Фотосинтетическая активность листьев персика

3.3 Защитное действие иммуноиндукторов в борьбе с фитопато-

генами на отдельных сортах персика. 84 4 ХОЗЯЙСТВЕННАЯ И ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ

ПРИМЕНЕНИЯ ИММУНОИНДУКТОРОВ

Заключение

Библиографический список

Приложение

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Повышение неспецифической устойчивости персика (Prunus persica (L.) Batsch) к фитопатогенам при применении иммуноиндукторов»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность. В последние десятилетия во всем мире усиливается негативное действие на растения антропогенных факторов, осложнилась фи-тосанитарная обстановка в насаждениях сельскохозяйственных культур (Яну-шевская и др., 2013). Потери урожая от болезней имеют тенденцию к увеличению (Захаренко, 2008; Дьяков, 2012). Широкомасштабное применение пестицидов приводит к загрязнению агроценозов с последующей дестабилизации их функционального состояния и снижению продуктивности (Горовой, Косяков, 2002).

В настоящее время разрабатывается наиболее перспективное и экологически безопасное направление в защите растений с использованием препаратов элиситорного действия повышающих природную устойчивость к фитопа-тогенам (Андреев, Талиева, 1991; Озерецковская, 1994). Так, использование иммуноиндукторов в системах защиты растений от болезней показывает многие их преимущества по сравнению с традиционными фунгицидами (Злотни-ков, 2012; Тютерев, 2002). Они не токсичны для человека и окружающей среды, при попадании в почву разлагаются на безопасные вещества, не вызывают резистентности к ним фитопатогенных микроорганизмов (Ильинская и др., 1991). Иммуноиндукторы, действуя опосредованно через растения, обеспечивают разнообразные положительные эффекты: повышение иммунного статуса, усиление ростовых процессов, стимуляцию репродуктивных свойств, усиление фотосинтетической активности и др., что в итоге приводит к увеличению урожайности сельскохозяйственных культур (Рябчинская и др., 2008; Злотников, 2012;).

Препараты иммуноиндукторного действия появляются на рынках многих стран мира и, по мнению за ними - будущее в защите растений (Нагорная, 2013; Каширская и др., 2013; Белошапкина, 2014). В настоящее время препаратами данной группы в мире обрабатывается 50-80 % площадей под сельскохозяйственными культурами. Производство и использование этих препаратов

рассматривается как важный потенциал для устойчивого развития сельского

4

хозяйства. Согласно литературным данным включение иммуноиндукторов в системы защиты растений различных сельскохозяйственных культур может приводить к биологической эффективности сопоставимой с традиционной химической обработкой (Тютерев, 2002; Злотников, 2012; Каширская, Цуканова, 2013; Нагорная, 2013; Леонов, Сокирко, 2015). Например, эффективность препарата бион в борьбе с фитопатогенами зерновых и овощных культур находится в пределах 70-80% (Тютерев, 2014). Интенсивность защитного действия препарата хитозар, разработанного ВИЗР на основе хитозана в комплексе с биологически активными веществами, при применении на зерновых культурах составляет 70-80%, что в ряде случаев превышает эффективность фунда-зола (Тютерев, 2014). В результате испытаний иммуноиндуктора альбит на основных сельскохозяйственных культурах (зерновые, зернобобовые, овощные и плодовые) установлено соответствие его эффективности фунгицидам при умеренной степени поражения фитопатогеном (до 30%). При высокой степени поражения культур фитопатогенами эффективным является использование альбита с половинными дозировками фунгицидов. Вследствие проявления высокого защитного действия в борьбе с фитопатогенами альбит зарегестриро-ван в качестве фунгицида для использования на 8 культурах включая персик (Злотников, 2012). Особо актуально применение иммуноиндукторов в агроце-нозах характеризующихся повышенной устойчивостью фитопатогенов к фунгицидам, вследствие чего только при совместном использовании химических средств защиты с элиситорами возможно достичь высокой эффективности в борьбе с инфекционными заболеваниями.

Специфика региона влажных субтропиков России заключается в том,

что практически вся территория Черноморского побережья Краснодарского

края занята организациями санаторно-курортного профиля и густо изрезана

речной сетью, поэтому применение традиционных химических пестицидов

здесь сильно ограничено или полностью запрещено (Леонов, 2010; Карпун и

др., 2016а). В связи с этим актуальным направлением исследований является

поиск новых, высокоэффективных и нетоксичных препаратов-индукторов

5

устойчивости и разработка технологии их применения (Егоров, 2013; Карпун и др., 2016а), в том числе на культурах, продукция которых употребляется в свежем виде. К этой группе относится и персик - косточковая плодовая культура, которая выращивается в России исключительно на юге, в частности на Черноморском побережье Кавказа.

Важной проблемой возделывания персика в условиях влажных субтропиков России является поражение листьев курчавостью и другими болезнями, а системы защиты включают исключительно химический метод (Леонов, 2010). При этом многолетнее использование пестицидов приводит к деградации агроценозов, снижению эффективности применения химических средств защиты и нарастанию вредоносности фитопатогенов (Карпун и др., 2016д). Установлено, что повышение резистентности Taphrina deformans (Berk.) Tul. к фунгицидам происходит в результате активации гена устойчивости (Ousmane et al., 2013), когда в ответ на попадание пестицидов в организм фитопатогена синтезируются ферменты, обеспечивающие их детоксикацию. Только повышенные дозы фунгицидов в 2-3 раза превосходящие разрешенные к применению сдерживают развитие курчавости (Леонов, 2010). Согласно литературным данным улучшение фитосанитарной ситуации в агроценозах достигается при включении в системы защиты иммуноиндукторов, которые совместно с фунгицидами существенно повышают биологическую эффективность. Положительное значение применения иммуноиндукторов заключается в том, что продолжительность их защитного действия в два раза превосходит биоцидное влияние фунгицидов (Карпун и др., 2016д).

Вследствие этого, во влажных субтропиках России важным вопросом в защите растений является изучение эффективности иммуноиндукторов, стимулирующих защитные природные механизмы культур к воздействию биотических факторов.

Цель исследований - изучить возможность повышения неспецифической устойчивости персика к фитопатогенам при использовании иммуноин-

дукторов в условиях влажных субтропиков России.

6

Для достижения поставленной цели исследований решались следующие задачи:

- выявить степень защитного действия иммуноиндукторов (альбита имму-ноцитофита, экогеля и салициловой кислоты) от основных грибных патогенов персика (Taphrina deformans, Stigmina carpophila, Monilia cinerea, Botrytis cinerea);

- определить влияние иммуноиндукторов на состояние защитных механизмов персика по показателям активности ферментов антиоксидантной системы каталазы и пероксидазы, содержание салициловой кислоты в листьях и интенсивности фотосинтеза;

- установить влияние сортовых особенностей на проявление защитного действия иммуноиндукторов в борьбе с фитопатогенами персика в условиях влажных субтропиков России;

- оценить экономическую эффективность использования иммуноиндукторов в системе защиты персика от болезней.

Научная новизна результатов исследования. Впервые установлено иммуностимулирующее действие альбита, иммуноцитофита, экогеля и салициловой кислоты при применении в чистом виде и совместно с фунгицидами в половинных нормах расхода (делан, скор), обеспечивающее повышение устойчивости персика к фитопатогенам (Taphrina deformans, Stigmina carpophila, Monilia cinerea, Botrytis cinerea). Установлено, что в основе развития неспецифической устойчивости при применении иммуноиндукторов лежит активация ферментов антиоксидантной системы защиты каталазы и общей пероксидазы, процесса фотосинтеза и увеличение содержания салициловой кислоты в листьях персика. Установлены различия в проявлении эффективности иммуноиндукторов на отдельных сортах персика.

Теоретическая и практическая значимость. В результате выявления высокой биологической, экономической и хозяйственной эффективности альбита и экогеля по сравнению с другими изучаемыми иммуноиндукторами

установлена целесообразность их использования в борьбе с основными болезнями персика в зоне проведения исследований. Рекомендовано включение препаратов-иммуноиндукторов в системы защиты персика от фитопатогенов. Результаты эксперимента могут быть использованы в дальнейших исследованиях и учебно-образовательном процессе при изучении таких дисциплин, как «Защита растений», «Физиология растений».

Методология и методы исследования. Теоретическую и методологическую основу исследований составили труды российских и зарубежных ученых по проблемам изучения неспецифической устойчивости растений. При проведении исследований использовали общепринятые методики проведения фито-патологических, молекулярно-генетических и физиологических исследований, которые подробно изложены в главе «Материалы и методы».

Положения, выносимые на защиту:

1. Иммуноиндукторы: альбит, иммуноцитофит, экогель и салициловая кислота повышают устойчивость персика к основным грибным заболеваниям -курчавость (Taphrina deformans), кластероспориоз (Stigmina carpophila), мони-лиоз (Monilia cinerea), серая гниль (Botrytis cinerea), что доказывает целесообразность их использования в системах защиты.

2. Развитие устойчивости персика к фитопатогенам при применении имму-ноиндукторов является результатом повышения активности ферментов анти-оксидантной системы, увеличения содержания салициловой кислоты в листьях и стимуляции фотосинтетических процессов.

3. Применение иммуноиндукторов позволяет повысить болезнеустойчивость основных сортов персика (Редхавен, Коллинз, Ветеран), возделываемых в условиях региона, снизить вредоносность фитопатогенов и уменьшить расход фунгицидов.

Апробация работы. Результаты исследований были доложены на 11 Всероссийских, международных конференциях, на ежегодных отчетных сессиях ФГБНУ ВНИИЦиСК, а также на конкурсах и других мероприятиях, в т.ч.:

VIII Всероссийская научно-практическая конференция молодых ученых

8

«Научное обеспечение агропромышленного комплекса», Краснодар, 2014; The XI international scientific and practical conference «Cutting-edge science - 2015» England; Международный конкурс молодых ученых «Alltech young scientist award 2014-2015 г.» (медаль за третье место в региональном этапе конкурса, Приложение 1); Кубанская школа инноваторов, МЦ «Инвентум», Краснодар, 2015; Международная научная конференция молодых учёных и специалистов «Наука молодых - агропромышленному комплексу», Москва, 2016.

Публикации результатов исследований. По материалам диссертации опубликованы 24 научные статьи общим объёмом 5,8 п.л. (в том числе автора - 2,4), в том числе 7 в изданиях, рекомендованных ВАК РФ (1,7 п.л., в т.ч. автора - 0,5), 1 - в журнале, индексируемом БД Scopus (0,8 п.л., в т.ч. автора -0,27).

Структура и объем диссертации: Диссертационная работа содержит введение, 4 главы, заключение, включающее выводы и практические рекомендации, библиографический список из 224 наименований, в том числе 73 - иностранных авторов. Работа изложена на 130 страницах, содержит 22 рисунка, 18 таблиц, 2 приложения.

Благодарности. Автор выражает искреннюю благодарность за оказанные содействие и координацию исследований своему научному руководителю -к.б.н., доценту Н.Н. Карпун, коллегам из ФГБНУ ВНИИЦиСК - к.б.н. Э.Б. Янушевской - за методическую поддержку и консультативную помощь на протяжении всего периода исследований, к.с.-х.н. Н.Н. Леонову - за помощь в закладке полевых экспериментов, к.б.н. Л.С. Самариной - за проведение некоторых лабораторных исследований. Автор также признательна к.б.н. А.А. Агу-мава (ФГБНУ ВНИИ МП) за помощь в диагностике фитопатогенов молекулярными методами.

1 ОБЗОР СОВРЕМЕННЫХ СРЕДСТВ И МЕТОДОВ ЗАЩИТЫ ПЕРСИКА ОТ ГРИБНЫХ БОЛЕЗНЕЙ 1.1 Культура персика и основные сорта, возделываемые на Черноморском побережье России

Персик (Prunus persica (L.) Batsch) - это листопадное древесное растение подсемейства миндальные (Amygdalaceae) семейства розоцветные (Rosaceae Juss) класса двудольные (Magnoliopsida) отдела покрытосеменные, или цветковые растения (Magnoliophyta), родиной которого является Восточная Азия (Абильфазова, Смагин, 2016).

Деревья персика достигают высоты 5-7 метров, крона широкораскидистая или обратнопирамидальная в зависимости от сорта. Побеги круглые, тонкие. Различают листовые и цветочные почки, которые размещены в пазухах листьев. Листья узколанцетовидные, края листьев зубчатые или пильчатые.

Цветение колокольчатыми или розовидными цветками, продолжается 520 дней (Шайтан и др., 1989).

Плод - костянка с мясистым околоплодником. Плоды персика очень разнообразны: от плоских до округлых, бывают опушенные или голые, кожица среднеплотная (Абильфазова и др., 2016). У персика самые крупные плоды среди всех косточковых пород. Они очень привлекательны по внешнему виду, высоким десертным и вкусовым качествам, с гармоничным сочетанием сахара и кислоты (Смагин и др., 2009).

Персик - скороплодная и высокоурожайная культура юга России. Плодоносит со 2-3 года после посадки до 15-20 лет. Урожайность плодов персика достигает 200-400 ц/га. Сорта персика очень раннего срока созревания обычно имеют плоды мельче - от 40-50 г, но у большинства сортов масса плода достигает 100-200, а у некоторых 400-500 г (Леонов, 2010). Процесс формирования плодов в зависимости от сорта, высоты и зоны, где расположены насаждения, длится 80-130 дней. Срок созревания в зависимости от сорта составляет 2,5-3 месяца, начиная с первой декады июля при среднесуточных температурах

+20,1...+24,5 °С (Драгавцева и др., 2014).

10

Благодаря высоким пищевым, лекарственным и декоративным особенностям он широко распространен в районах с благоприятными почвенно-кли-матическими условиями, способствующими его нормальному росту и плодоношению (Драгавцева и др., 2014).

Основными факторами климата, ограничивающими его возделывание на юге России, являются низкие температуры в зимний период, поздние весенние заморозки, резкие колебания температур в зимний период (Драгавцева и др., 2014). В субтропиках России имеются благоприятные условия для промышленного возделывания персика. Здесь нет сильных морозов зимой, достаточно солнечных дней и тепла, однако обилие влаги при сумме годовых осадков свыше 1500 мм требует более внимательного подхода к этой культуре, особенно к подбору сортов (Мищенко, 2007; Смагин, 2012).

В субтропиках России в результате тщательного отбора сортов в 19701980 гг. сложился промышленный сортимент, состоящий из 9 сортов: Пушистый ранний, Ранний Кубани, Коллинз, Золотой юбилей, Редхавен, Старт, Са-маркандский-10, Ветеран, Рот-Фронт (Глущенко, 1969). Несмотря на имеющееся разнообразие сортов, в настоящее время преимущество (более 80 %) остается за тремя основными районированными сортами: Редхавен (50%), Коллинз и Ветеран, отличающимися товарными по величине плодами, вкусовыми качествами, транспортабельностью (Смагин и др., 2009).

Природно-климатические условия зоны влажных субтропиков России благоприятствуют не только продолжительному росту и получению высоких урожаев южных плодовых культур (в том числе и персика), но и способствуют интенсивному развитию и размножению целого ряда вредителей и возбудителей болезней растений (Омаров и др., 2011, 2013).

Так, основным вредителем персика в регионе является восточная плодожорка (Grapholita molesta Busck), повреждающая плоды и побеги (Игнатова, 2011; Игнатова и др., 2016). Сильное поражение листьев вызывают такие грибные заболевания как курчавость (Taphrina deformans (Berk.) Tul.) и кластеро-

спориоз (Stigmina carpophila (Lév.) M.B. Ellis, син. Clasterosporium carpophi-lum (Lév.) Aderh.), а плоды поражаются монилиальной (Monilia cinerea Bonord.) и серой гнилью (Botrytis cinerea Bon.) (Игнатова и др., 2016).

Болезни приводят к нарушениям обмена веществ, дыхания, фотосинтеза, транспирации и других функций. По данным Н.А. Осташевой (2004), в некоторые годы потери урожая персика от болезней составляли на отдельных участках более 90 %. Интенсивному развитию болезней способствуют, в основном, высокие температура и влажность воздуха.

1.2 Основные грибные болезни персика и методы защиты от них В настоящее время на персике в зоне влажных субтропиков выявлено 55 возбудителей болезней (Осташева, 2004). Ниже представлена характеристика основных болезней персика и их возбудителей на Черноморском побережье Кавказа.

Курчавость, или деформация листьев персика, возбудитель - гриб Taphrina deformans (Berk.) Tul. (Ascomycota, Taphrinomycotina, Taphrinomycetes, Taphrinomycetidae, Taphrinales, Taphrinaceae).

Впервые о курчавости персика на Кавказе пишет А.А. Ячевский в 1901 г., затем М.А. Новиков и Н.Н. Воронихин указывают на потенциальную опасность болезни во влажных субтропиках России (Воронихин, 1914; Осташева, 2004). В 1963-1969 гг. ученые Сочинской опытной станции уже отмечали большую вредоносность курчавости для персика (Козицкий, Кулибаба, 1963; Загайный и др., 1968; Кулибаба, 1969).

Биологическая группа - облигатный паразит, биотроф. Весной развитие гриба происходит под кутикулой листьев, клетки которых начинают неравномерно делиться (Каратыгин, 2002; Ousmane et al., 2013). Листья становятся сморщенными (гофрированными), приобретают розовую окраску (рис. 1), затем буреют и в конце мая - начале июня опадают. Заболевание вызывает также опадение плодов, отмирание однолетних побегов, что приводит к сильному истощению деревьев и снижению урожая. При отсутствии защитных мероприятий больные растения не плодоносят (Каленич и др., 1999; Леонов, 2010).

12

На побегах симптомы болезни особенно заметны, т.к. побеги утолщаются, приобретают желтовато-ржавый цвет, их рост прекращается. Почти все листья на таком побеге курчавые. Большая часть пораженных побегов впоследствии засыхает и погибает. Когда заражение происходит на ранних стадиях развития почек, прирост побегов практически не отмечается (Попкова, 2015; Леонов, 2010).

В литературе описаны проявления курчавости на плодах, на поверхности которых, также, как и на листьях, образуются опухолевидные разрастания, цвет их варьирует от желтоватого до красновато-фиолетового. Плод персика остаётся слегка деформированным, а зоны эпидермиса покрыты шрамами и трещинами (Леонов, 2010).

Вред курчавости листьев персика заключается в нарушении фотосинтеза в пораженных листьях и преждевременном их опадении. Определяющими факторами, способствующими распространению и развитию курчавости листьев в насаждениях персика, является сумма осадков и влажности воздуха, а также температура воздуха, особенно в начальный период вегетации - от набухания почек до приостановки первой волны роста побегов (Нагорная, 2010; Леонов, 2015). По наблюдениям Н.А. Осташевой (2005, 2007) и Н.Н. Леонова

Рисунок 1 - Симптомы курчавости листьев персика (ориг.)

(2010), в условиях влажных субтропиков России заражение успешно проходит при температуре +6...+12 оС.

Кластероспориоз, или дырчатая пятнистость листьев, возбудитель - гриб Stigmina carpophila (Lev.) M.B. Ellis, син. Clasterosporium carpophilum (Lev.) Aderh. (Ascomycota, Pezizomycotina, Dothideomycetes, Dothideomyceti-dae, Capnodiales, Mycosphaerellaceae). Биологическая группа - факультативный паразит, некротроф.

Поражению кластероспориозом подвержены все надземные органы растения - почки, цветы, завязь, плоды, листья, побеги, ветви. На листьях образуются округлые вначале красновато-фиолетовые или красно-бурые пятна, затем они приобретают светло-коричневый цвет с более тёмной каймой. Такая кайма вокруг пятен - важный отличительный признак болезни, отличающая ее от других пятнистостей. Пятна вначале имеют вид уколов, но через несколько дней (в зависимости от метеорологических условий и восприимчивости сорта) пятна достигают 2-5 мм, а в дальнейшем выпадают, образуя округлые отверстия (рис. 2). По краям листа и около главной жилки пятна могут сливаться, отчего лист кажется объеденным насекомыми (Игнатова и др., 2016).

Плодовые косточковые культуры обладают некрогенной реакцией на внедрение паразита в ткань листа. Сущность этой реакции сводится к быстрому отмиранию клеток участка пораженной ткани, которая служит барьером, изолирующим паразита. Это приводит к гибели или резкому ограничению развития патогена (Прах и др., 2014, 2015). Растения, относительно устойчивые к кластероспориозу, быстрее реагируют на внедрение патогена - изоляция мест поражения листовой пластинки происходит быстрее, чем у восприимчивых, что ограничивает интоксикацию патогеном прилегающей здоровой ткани. У устойчивых сортов выпадение пятен наступает на 9-10 сутки, у восприимчивых - на 14-15. Листья относительно устойчивых сортов после выпадения ткани не опадают, остаются здоровыми, нормально функционируют, величина

дырчатости незначительна, спороношение часто отсутствует (Хохрякова, Никитина, 1978).

Рисунок 2 - Кластеропориоз на персике (ориг.)

Зимует гриб конидиями в пораженных участках коры и в камеди, а также мицелием в коре и древесине поврежденных побегов. Ранней весной при температуре выше +4.. .+5 °С и выпадении осадков на пораженных поверхностях на конидиеносцах образуются конидии. Они вместе с перезимовавшим мицелием являются первичной инфекцией кластероспориоза (Алейникова, 2011). С помощью ветра, дождя, насекомых конидии переносятся на молодые листья, вызывая их заболевание (Овчаренко, 1967; Дорожкина и др., 2015). Температура более +26 °С, отсутствие осадков и влажность воздуха ниже 60 % подавляют развитие возбудителей болезни (Кулибаба, 1963).

Болезнь не только снижает качество и урожай, но и резко ослабляет растения, сокращая их долговечность. На Черноморском побережье Кавказа в отдельные годы при отсутствии защитных мероприятий уже в конце июля сбрасывается до 90% листьев (Леонов, 2012). Преждевременный листопад влечет за собой вторичный (осенний) рост побегов, вследствие чего древесина не вызревает, деревья уходят в зимовку ослабленными, неподготовленными к низким температурам (Дементьева, 1985; Чикин, 2001).

Монилиальная гниль плодов, или монилиоз, возбудитель - гриб Monilia cinerea Bonord. (телиморфа Monilinia laxa (Aderh. et Ruhland) Honey) (Ascomy-cota, Pezizomycotina, Leotiomycetes, Leotiomycetidae, Helotiales, Sclerotinia-ceae). Биологическая группа - факультативный паразит, некротроф. Сумчатая стадия в виде апотециев встречается крайне редко, чаще всего гриб находится в стадии анаморфы. Развивается на плодах растений, вызывая плодовую гниль. На плодах с поврежденной кожицей появляются концентрические круги подушечек с конидиями (рис. 3а). Плоды, оставшиеся на дереве, превращаются в полые псевдосклероции (рис. 3б), покрытые снаружи и внутри черной корой (Исмаилова, Койшибаев, 1999).

Рисунок 3 - Монилиоз плодов персика (ориг.): а - спороношения на поверхности плода; б

- мумификация плода

После перезимовки псевдосклероции снова прорастают конидиями (редко апотециями). В распространении инфекции принимает участие восточная плодожорка, которая может переносить конидии с пораженных плодов на здоровые, а также наносит механические повреждения плодам, служащие во-ромтами инфекции для монилиоза. Конидии гриба прорастают вместе с развитием личинок, питающихся пораженной мякотью плодов (Исмаилова, Койшибаев, 1999).

Серая гниль плодов, возбудитель - гриб Botrytis cinerea Pers. (Ascomy-cota, Pezizomycotina, Leotiomycetes, Leotiomycetidae, Helotiales, Sclerotinia-ceae). Биологическая группа - раневой паразит, некротроф. Серая гниль проявляется бурыми, быстро увеличивающимися пятнами на плодах. При повышенной влажности воздуха бурые некрозы покрываются серым пушистым мицелием и спорами (рис. 4), которые разносятся с ветром и заражают соседние плоды (Faretra, Grindle, 1992).

Рисунок 4 - Серая гниль плодов персика (ориг.)

Зимует конидиями на побегах и плодах, склероциями, очень редко аско-спорами на мумифицированных завязях. Распространяется конидиями в течение в всей вегетации. Проявляется плодовая гниль в период созревания плодов. Оптимальные условия для плодовой гнили - температура +24...+28 °С, относительная влажность воздуха выше 75 %, наличие механических повреждений плодов (Палеева, 2004, 1атв, 1977).

Распространенность болезни обусловлена условиями внешней среды и неодинакова по годам и по отдельным межфазным периодам (Выприцкая и др., 2015).

Меры защиты от основных грибных болезней персика. Среди мероприятий, направленных на получение высоких урожаев качественных плодов,

важное место занимает своевременная защита плодовых культур от вредителей и болезней, которая должна быть постоянной и комплексной. В систему мероприятий по борьбе с вредителями и болезнями необходимо включать различные методы: агротехнические, механические, биологические, химические и др. Одни из них направлены на сдерживание распространения и снижение вредоносности вредителей и болезней, другие - на непосредственное их уничтожение (Игнатова и др., 2010).

Химические средства защиты растений хотя и гарантируют высокую гибель вредителей и болезней, защиту урожая, но в то же время большинство из них представляют опасность для человека, теплокровных животных, полезных насекомых и птиц. Поэтому широкое применение химических средств имеет свои отрицательные стороны. Надо стремиться к тому, чтобы химические обработки были сведены к минимуму (Карпун и др., 2013; Карпун и др., 2016д.).

Чтобы успешно вести борьбу с вредителями и возбудителями болезней садов, надо хорошо знать, что они собой представляют, как размножаются, живут и распространяются, какие причины способствуют их появлению и т.п. Деятельность вредителей и патогенов обычно тесно связана с развитием плодовых растений, поэтому защитные мероприятия следует проводить в соответствии не с обычным, а с фенологическим календарем (фенологическими фазами развития дерева), ведя наблюдение за сроками появления и развития вредителей и болезней (Игнатова и др., 2016).

Как правило защитные мероприятия на персике проводятся комплексно против всех видов заболеваний, а также с основными вредителями данной культуры (восточной плодожоркой).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Михайлова Елена Валерьевна, 2018 год

Библиографический список:

1. Абильфазова, Ю.С. Методическое пособие по диагностике устойчивости растений персика к гидротермическим факторам влажных субтропиков России / Ю.С. Абильфазова, Н.Е. Смагин. - Сочи: ВНИИЦиСК, 2016. - 19 с.

2. Аветисян, Г.А. Влияние перекиси водорода и 3-амино-1,2,4-триазо-лом на развитие мучнистой росы пшеницы / Г.А. Аветисян, А.В. Бабоша // Современная микология в России. Том 2: матер. 2 съезда микологов России. - М.: Национальная академия микологии, 2008. - С. 157-158.

3. Андреев, Л.Н. Физиологические аспекты иммунитета растений / Л.Н. Андреев, М.Н. Талиева // Облигатный паразитизм: Цитофизиологические аспекты. - М.: Наука, 1991. - С. 5-12.

4. Алейникова, Н.В. Особенности развития клястероспориоза и кокко-микоза в современных условиях / Н.В. Алейникова // Технологии, Инновации.

- 2011. - № 5. - С. 40-43.

5. Байбурина, Э. В. Влияние салициловой кислоты на растения (теоретические аспекты) / Э.В. Байбурина, А.И. Фазлутдинова // Молодой ученый.

- 2015. - № 7. - С. 233-235.

6. Белошапкина, О.О. Результаты испытаний новых препаратов и аг-рохимикатов против парши груши (Venturia pyrina Aderh) / О.О. Белошапкина, И.Н.Н. Вахшех, Е.Т. Илюсинов // Плодоводство и ягодоводство России. - 2013.

- Т.36. - № 1. - С. 44-49.

7. Белошапкина, О.О. Использование агрохимикатов и биопрепаратов для защиты яблони и груши от парши / О.О. Белошапкина // Субтропическое и декоративное садоводство: сб. науч. тр. - Сочи: ВНИИЦиСК. - 2014. - Т. 51.

- С. 267-272.

8. Белошапкина, О.О. Влияние химических и биологического препаратов на Venturia pyrina - возбудителя парши груши / О.О. Белошапкина, И.Н.Н. Вахшех, А.С. Рябченко // Микология и фитопатология. - 2015. - Т.49. -№ 1. - С. 50-55.

9. Белошапкина, О.О. Фитопатология: учебник / О.О. Белошапкина, Ф.С. Джалилов, И.В. Корсак, под ред. О.О. Белошапкиной. - М.: НИЦ ИН-ФРА-М, 2015. - 288 с.

10. Беседина, Т.Д. Биологическая индикация состояния садовых экосистем в субтропиках России / Т.Д. Беседина, Э.Б. Янушевская // Оптимизация технолого-экономических параметров и структуры агроценозов при возделывании плодовых культур и винограда. - Краснодар, 2008. - С.345-356.

11. Беседина, Т.Д. Влияние пестицидов на биоресурсы садовых экосистем в субтропиках России / Т.Д. Беседина, Э.Б. Янушевская, А.В. Егошин // Субтропическое и декоративное садоводство: сб. науч. тр. - Сочи: ВНИИ-ЦиСК. - 2009. - Вып. 42. - С. 296-312.

12. Бехтерев, В.Н. Экстракционное вымораживание карбоновых кислот из водного раствора в ацетонитрил в условиях действия поля центробежных сил / В.Н. Бехтерев // Сорбционные и хроматографические процессы. - 2015а. - Т. 15, № 5. - С. 683-692.

13. Бехтерев, В.Н. Способ извлечения органических веществ из водных сред экстракционным вымораживанием в поле центробежных сил: Патент РФ №2564999 от. 11.09.2015; Опубл. 10.10.2015б. - Бюл. № 28.

14. Будаговский, А.В. Неразрушающий способ функциональной диагностики растений: Патент РФ № 2342825 МПК7 A01G 7/00. Авторы: А.В. Будаговский, О.Н. Будаговская, И.А. Будаговский. - №2007104756/12; от 07.02.2007; Опубл. 10.01.2009. - Бюл. №1.

15. Бухов, Н. Г. Динамическая световая регуляция фотосинтеза / Н.Г. Бухов // Физиология растений. - 2004. - Т. 51, № 6. - С. 825-837.

16. Васильев, Д.А. Характеристика биологических свойств бактериофагов вида Bacillus subtilis / Д.А. Васильев, С.Н. Золотухин, И.Н. Хайрул-лин // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. - 2011. - № 1(13). - С. 79-83.

17. Васюкова, Н.И. Роль салициловой кислоты в болезнеустойчивости

растений (Обзор) / Н.И. Васюкова, Н.Г. Герасимова, О.Л. Озерецковская //

102

Прикладная биохимия и микробиология. - 1999. - Т. 35, № 5. - С. 557-568.

18. Волкова, Г.В. Использование индукторов устойчивости против желтой ржавчины на пшенице озимой / Г.В. Волкова, Ю.В. Шумилов // Агротехнический метод защиты растений от вредных организмов: матер. VII междунар. конф. - Краснодар, 2015. - С. 53-55.

19. Воронихин Н.Н. Материалы к микологической флоре Сочинского округа / Н.Н. Воронихин. - СПб: тип. Кинда, 1914. - 74 с.

20. Выприцкая, А.А. Botrytis cinerea Pers. на подсолнечнике в Тамбовской области / А.А. Выприцкая, А.А. Кузнецов, И.И. Мустафин, З.И. Мазурина, С.В. Иванов, А.М. Пучнин // Вестник ТГУ. - 2015. - Т. 20, вып. 6. - С. 1591-1594.

21. Гесслер, Н.Н. Активные формы кислорода в регуляции развития грибов / Н.Н. Гесслер, А.А. Аверьянов, Т.А. Белозерская // Биохимия. - 2007. - № 72(10). - С. 1342-1364.

22. Глущенко, К.С. Персик - важная южная плодовая культура / К.С. Глущенко // Научные труды. - Сухум, 1969. - Вып. XVIII. - С.180-190.

23. Гонарчук, Л.Г. Бурые лесные почвы / Л.Г. Гонарчук, В.К. Козин // Почвы Краснодарского края, их использование и охрана. - Ростов-на-Дону: СКНЦ ВШ, 1995. - 192 с.

24. Горовой, Л. Ф. Сорбционные свойства хитина и его производных : Хитин, его строение и свойства / Л. Ф. Горовой, В. Н. Косяков // Хитин и хи-тозан. Получение, свойства и применение. - М. : Наука, 2002. - C. 217-246.

25. Граскова, И.А. Пероксидаза как компонент сигнальной системы клеток картофеля при патогенезе кольцевой гнили / И.А. Граскова, Г.Б. Боровский, А.В. Колисниченко, В.К. Войников // Физиология растений. - 2004. -Том. 51, № 5. - С. 692-697.

26. Граскова, И.А. Роль слабосвязанных с клеточной стенкой перокси-даз в устойчивости картофеля при инфицировании корневой гнилью / И.А. Граскова, Е.В. Кузнецова, В.К. Войников // Journal of Stress Physiology & Bio-chemisty. - 2008. - Vol. 4, № 1. - С. 5-10.

103

27. Гречкин, А.Н. Сигнальные системы клеток и геном / А.Н. Гречкин // Биоорганическая химия. - 2000. - Т. 26, № 10. - С. 779-781.

28. Гунар, И.И. Практикум по физиологии растений: учебники и учебные пособия для высших сельскохозяйственных учебных заведений / И.И. Гунар. - М.: Колос, 1972. - С. 102-103.

29. Дементьева, М.И. Фитопатология / М.И. Дементьева. - 3-е изд., пе-рераб. и доп. - М.: Агропромиздат, 1985. - 398 с.

30. Дмитриев, А.П. Сигнальные молекулы растений для активации защитных реакций в ответ на биотический стресс / А.П. Дмитриев // Физиология растений. - 2003. - Т. 50, № 3. - С. 465-474.

31. Долженко, В.И. Методические указания по регистрационным испытаниям фунгицидов в сельском хозяйстве / В.И. Долженко. - СПб, 2009. - 377 с.

32. Дорожкина, Л.А. Защита растений в питомнике и в саду: справочник / Л.А. Дорожкина, О.О. Белошапкина, И.М. Митюшев, А.Н. Неженец. -Казань, 2015. - 300 с.

33. Драгавцева, И.А. Адаптация культуры персика к условиям выращивания на юге России / И.А. Драгавцева, И.Ю. Савин, В.В. Доможирова, А.С. Моренец, З.П. Ахматова, Н.Г. Загиров // Садоводство и виноградарство. -2014. - № 6. - С. 35-40.

34. Дьяков, Ю.Т. Общая фитопатология с основами иммунитета / Ю.Т. Дьяков, Г.Д. Успенская, И.Г. Семенкова. - 2-е изд., перераб. и доп. - М.: Колос, 1976. - 256 с.

35. Дьяков, Ю.Т. Общая и молекулярная фитопатология: учебное пособие / Ю.Т. Дьяков, О.Л. Озерецковская, В.Г. Джавахия, С.Ф. Багирова. - М.: Общество фитопатологов, 2001. - 302 с.

36. Дьяков, Ю.Т. Фундаментальная фитопатология / Ю.Т. Дьяков. - М.: Красанд, 2012. - 512 с.

37. Егоров, Е.А. Эколого-экономическая эффективность плодоводства / Е.А. Егоров // Научные труды ГНУ СКЗНИИСиВ. - 2013. - Т. 2. - С. 7-21.

104

38. Ермаков, И.П. Физиология растений / И.П. Ермаков. - М.: Академия, 2005. - С. 464-465

39. Захаренко, В.А. Изучение иммунитета растений к вредным организмам в программе фундаментальных и приоритетных прикладных исследований по научному обеспечению развития агропромышленного комплекса РФ на 2006-2010 годы / В.А. Захаренко // Современные проблемы иммунитета растений к вредным организмам: матер. конф. - СПб, 2008. - С. 3-7.

40. Загайный С.А. Защита субтропических и южных плодовых культур от вредителей и болезней в Черноморской зоне Краснодарского края / С.А.За-гайный, Ю.Ф. Кулибаба, Н.А. Панкова. - Краснодар: Краснод. книжн. изд-во, 1968. - 168 с.

41. Злотников, А.К. Альбит повышает урожайность гречихи / А.К. Злотников // Земледелие. - 2006. - № 3. - С. 41-43.

42. Злотников, А.К. Фунгицидные свойства регулятора роста Альбит // Земледелие. - 2007. - № 1. - С. 38-41.

43. Злотников, А.К. Разработка и комплексная характеристика полифункционального препарата Альбит для защиты растений от болезней и стрессов: автореф. дис. ... д-ра с-х наук: 06.01.07 / Злотников Артур Кириллович. -Воронеж, 2012. - 46 с.

44. Злотников, А.К. Влияние биопрепарата Альбит на микрофлору почв / А.К. Злотников, Е.П. Дуринина, Н.В. Костина, А.В. Кураков, Э.Б. Янушев-ская, Н.Н. Леонов, А.Т. Подварко, К.М. Злотников // Защита и карантин растений. - 2016. - № 5. - С. 24-28.

45. Игнатова, Е.А. Технологический регламент применения химических и биологических препаратов для защиты растений персика / Е.А. Игнатова, Н.Н. Карпун, Н.А. Осташёва, Э.Б. Янушевская. - Сочи: ВНИИЦиСК, 2010. - 39 с.

46. Игнатова Е.А. Защита персика от восточной плодожорки во влажных субтропиках РФ // Защита и карантин растений. - 2011. - № 9. - С. 38.

47. Игнатова, Е.А. Атлас вредителей и болезней косточковых и семечковых культур на Черноморском побережье Кавказа / Е.А. Игнатова, Л.Я. Айба, Н.Н. Карпун, М.Ш. Шинкуба, Ю.Г. Акаба, Е.В. Михайлова. - Сочи-Сухум, 2016. - 142 с.

48. Илларионов, А.И. Методы защиты растений от вредных организмов: учебное пособие / А.И. Илларионов. - Воронеж, 2007. - 252 с.

49. Ильинская, Л.И. Биохимические аспекты индуцированной устойчивости и восприимчивости растений / Л.И. Ильинская, Н.И Васюкова, О.Л. Озе-рецковская // Итоги науки и техники, сер. Защита растений. - 1991. - Т. 7. - С. 4-102.

50. Ильинская, Л.И. Участие метилжасмоната в индуцировании устойчивости картофеля к возбудителю фитофтороза / Л.И. Ильинская, Е.В. Горен-бург, Г.И. Чаленко, О.Л. Озерцковская // Физиология растений. - 1996. - Т. 43, № 5. - С. 713-720.

51. Исмаилова, Э.Т. Монилиальная гниль плодовых культур / Э.Т. Ис-маилова, М. Койшибаев // Защита и карантин растений. - 1999. - № 9. - С. 1617.

52. Каленич, Ф.С. Курчавость листьев персика / Ф.С. Каленич, Л.А. Мя-лова, Л.В. Нагорная // Защита и карантин растений. - 1999. - № 9. - С. 17-18.

53. Каплан, И.Б. Индукция PR-белков и приобретенной противовирусной устойчивости под влиянием кинетина в растениях табака / И.Б. Каплан, С.И. Малышенко, Э.Р. Шакулова. // Физиология растений. - 1988. - Т. 35. - С. 849-856.

54. Каратыгин, И.В. Определитель грибов России. Порядки Exobasidiales, Taphrinales, Protomycetales, Microstromatales / И.В. Каратыгин. - СПб: Наука, 2002. - 134 с.

55. Карпун, Н.Н. Методические положения по применению препаратов нового поколения в системах защиты персика / Н.Н. Карпун, Э.Б. Янушевская, Е.А. Игнатова, Н.Н. Леонов. - Сочи: ВНИИЦиСК, 2013. - 24 с.

56. Карпун, Н.Н. Механизмы формирования неспецифического индуцированного иммунитета растений при биогенном стрессе (обзор) / Н.Н. Карпун, Э.Б. Янушевская, Е.В. Михайлова // С.-х. биология. Сер. Биология растений. - 2015. - Т. 50, № 5. - С. 540-549.

57. Карпун, Н.Н. Экологизация садоводства в субтропиках РФ / Н.Н. Карпун, Э.Б. Янушевская, Е.А. Игнатова // Защита и карантин растений. -2016а. - № 4. - С. 18-20.

58. Карпун, Н.Н. Экологическая целесообразность применения альбита в агроценозах персика / Н.Н. Карпун, Э.Б. Янушевская, Е.В. Михайлова // Состояние и перспективы защиты растений: матер. междунар. конф. - Прилуки, 2016б. - С. 91-94.

59. Карпун, Н.Н. Влияние альбита и экогеля на развитие системного неспецифического иммунитета персика / Н.Н. Карпун, Э.Б. Янушевская, Е.В. Михайлова Е.В // Вестник АПК Ставрополья. - 2016в. - № 2 (22). - С. 199-202.

60. Карпун, Н.Н. Экологическая роль применения экогеля в насаждениях персика / Н.Н. Карпун, Э.Б. Янушевская, Е.В. Михайлова Е.В // Плодоводство и ягодоводство России. - 2016г. - Т. 47. - С. 216-224.

61. Карпун, Н.Н. Эффективность применения индукторов устойчивости персика в борьбе с курчавостью / Н.Н. Карпун, Е.В. Михайлова, Э.Б. Янушевская, Г.Г. Пантия // Садоводство и виноградарство. - 2016д. - № 3. - С. 4147.

62. Каширская, Н.Я. Применение индукторов устойчивости в системе защиты яблони от парши / Н.Я. Каширкая, Е.М. Цуканова, А.М. Кочкина // Сб. науч. тр. ГНУ СКЗНИИСиВ. - 2013. - Т. 2. - С. 62-64.

63. Козицкий Ю.Н. Болезни персика / Ю.Н. Козицкий, Ю.Ф. Кулибаба // Защита растений от вредителей и болезней. - 1963. - № 6. - С. 32-33.

64. Козин, В.К. Оценка почвенно-экологических условий садовых ценозов субтропиков России: учебное пособие / В.К. Козин. - Краснодар, 2005. - 135 с.

65. Колупаев, Ю.Е. Активные формы кислорода в растениях при действии стрессоров: образование и возможные функции / Ю.Е. Колупаев // Вестник Харьковского нац. аграрного ун-та. Сер. Биология. - 2007. - № 3. - С. 626.

66. Кошкин, Е.И. Физиология устойчивости сельскохозяйственных культур: учебная литература / Е.И. Кошкин. - М.: Дрофа, 2010. - 641 с.

67. Креславский, В.Д. Влияние предобработки хлорхолинхлоридом на устойчивость ФС и растений фасоли к УФ-В в радиации, содержание фитогор-монов и перекиси водорода / В.Д. Креславский, В.Ю. Любимов, Л.М. Котова // Физиология растений. - 2011. - Т.58, № 2. - С. 262-267.

68. Креславский, В.Д. Сигнальная роль активных форм кислорода при стрессе у растений / В.Д. Креславский, Д.А. Лось // Физиология растений. -2012. - Т.59, № 2. - С. 163-178.

69. Кузнецов, В.В. Физиология растений: учебник для академического бакалавриата / В.В. Кузнецов, Г.А. Дмитриева. - М.: Юрайт, 2016. - 437 с.

70. Кулибаба, Ю.Ф. Дырчатая пятнистость косточковых в субтропиках Краснодарского края: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук / Кулибаба Юрий Федорович. - Л., 1963. - 19 с.

71. Кулибаба Ю.Ф. Курчавость персика / Ю.Ф. Кулибаба // Защита растений. - 1969. - № 6. - С. 41-42.

72. Кумейко, Т.Б. Влияние салициловой кислоты на устойчивость риса к пирикуляриозу / Т.Б. Кумейко, Т.А. Ольховская // Рисоводство. - 2009. - № 14. - С. 55-58.

73. Леонов, Н.Н. Эффективность бордоской смеси, приготовленной разными способами, в борьбе с курчавостью листьев персика во влажных субтропиках России / Н.Н. Леонов // Субтропическое и декоративное садоводство: сб. науч. тр. - Сочи: ВНИИЦиСК. - 2009. - Вып. 41. - С. 175-180.

74. Леонов, Н.Н. Курчавость листьев персика и совершенствование её контроля в зоне влажных субтропиков России: автореф. дисс. ... канд. с.-х.

наук: 06.01.07 / Леонов Николай Николаевич. - Краснодар, 2010. - 22 с.

108

75. Леонов Н.Н. Для защиты персика от кластероспориоза // Защита и карантин растений. - 2012. - №1. - С. 28.

76. Леонов, Н.Н. Зависимость динамики развития курчавости листьев персика от гидротермических условий в зоне влажных субтропиков России / Н.Н. Леонов // Субтропическое и декоративное садоводство: сб. науч. тр. -Сочи: ВНИИЦиСК. - 2015. - Вып. 53. - С. 147-153.

77. Леонов, Н.Н. Применение биопрепаратов на косточковых культурах от болезней в условиях влажных субтропиков России / Н.Н. Леонов, В.П. Сокирко // Труды КубГАУ. - 2015. - №56. - С.125-131.

78. Леонов, Н.Н. Эффективность препаратов от кластероспориоза на сливе, возделываемой во влажных субтропиках / Н.Н. Леонов // Биологическая защита растений - основа стабилизации агроэкосистем: матер. конф. - Краснодар: ВНИИБЗР, 2016. - С. 499-501.

79. Лиу, Ю.Ю. Взаимосвязь между Н2О2 и жасмоновой кислотой в ответной реакции листьев гороха на поранение / Ю.Ю. Лиу, Ц.Х. Пан, Х.Р. Ян,

B.Д. Хуан // Физиология растений. - 2008. - Т. 55, № 6. - С. 851-862.

80. Лыкова, Н.А. Эффект превегетации. Экологические последствия / Н.А. Лыкова. - СПб: Наука, 2009. - 310 с.

81. Максимов, И.В. Влияние салициловой и жасмоновой кислот на компоненты про-/антиоксидантной системы в растениях картофеля при фитофто-розе / И.В. Максимов, А.В. Сорокань // Физиология растений. - 2011. - Т. 58, № 2. - С. 243-251.

82. Малина Р.Б. Фотосинтетическая продуктивность персика в связи со степенью восприимчивости листьев к патогену Taphrina deformans / Р.Б. Малина, Г.В. Шишкану // Плодоводство и ягодоводство России. - 2013. - Т. 36. -

C. 23-28.

83. Медведев, С.С. Физиология растений: учебник / С.С. Медведев. -СПб: БХВ-Петербург, 2012. - 512 с.

84. Михайлова, Е.В Роль неспецифического индуцированного иммунитета персика в формировании устойчивости к Tafrina deformans (Berk.) Tul. /

109

Е.В. Михайлова, Н.Н. Карпун, Э.Б. Янушевская // Плодоводство и ягодовод-ство России. - 2015 - Т. 43. - С. 146-153.

85. Мищенко, И.Г. Сортовая устойчивость косточковых пород к основным болезням / И.Г. Мищенко // Агротехнический метод защиты растений от вредных организмов: матер. междунар. конф. - Краснодар, 2007. - С. 107-108.

86. Молодченкова, О.О. Влияние салициловой кислоты и Fusarium graminearum на активность каталазы, содержание Н202 и эндогенной салициловой кислоты в проростках пшеницы / О.О. Молодченкова // Физиология и биохимия культурных растений. - 2005. - Т. 37, № 1. - С. 37-42.

87. Мосияш, А.С. Агроклиматическая характеристика субтропических районов Краснодарского края / А.С. Мосияш // Докл. Сочинского отд. географ. Общества СССР. - 1971. - С. 80-94.

88. Мосияш, А.С. Агроклиматическая характеристика Большого Сочи / А.С. Мосияш, А.М. Лугавцов. - Ростов на Дону, 1967. - 171 с.

89. Нагорная, Л.В. Курчавость листьев персика, монилиоз абрикоса и усовершенствование систем защиты насаждений от них в условиях Южной Степи Украины: автореф. дисс. ... канд. с.-х. наук: 06.01.11 / Нагорная Людмила Викторовна. - Киев, 2010. - 21 с.

90. Нагорная, Л.В. Биологическая защита персика от болезней / Л.В. Нагорная // Современное садоводство. - 2013. - № 3. - С. 1-6.

91. Овчаренко, Г.В. К биологии возбудителя кластеросориоза косточковых плодовых пород в Крыму / Г.В. Овчаренко // Труды Никитского бот. сада. - 1967. - Т. 39. - С. 423-433.

92. Озерецковская, О.Л. Арахидоновая и экозапатентаеновая кислоты как активное начало биогенного элиситора - липогликопротеидного комплекса, выделенного из возбудителя фитофтороза // Доклады АН СССР. -1987. - Т. 292. - С. 738-741.

93. Озерецковская, О.Л. Индуцирование устойчивости растений к вирусам биогенными элиситорами фитопатогенов / О.Л. Озерцковская // Прикладная биохимия и микробиология. - 1994. - Т. 30. - С. 325-339.

110

94. Озерецковская, О.Л. Действие иммуномодуляторов на устойчивость и восприимчивость картофеля к Phytophthora infestans / О.Л. Озерцков-ская, Н.И. Васюкова // Физиология растений. - 2006. - Т. 53, №2 4. - С. 546-553.

95. Омаров М.Д. Система эколого-биологической защиты хурмы восточной от вредных организмов на Черноморском побережье России / М.Д. Омаров, Н.А. Осташева, Н.Н. Карпун // Вестник защиты растений. - 2011. -№3. - С. 65-69.

96. Омаров М.Д. Болезни фейхоа на Черноморском побережье России и пути снижения их вредоносности / М.Д. Омаров, Н.Н. Карпун, З.М. Омарова, Н.А. Осташева // Вестник защиты растений. - 2013. - № 2. - С. 56-59.

97. Осташева Н.А. Биологическое обоснование защиты персика от курчавости на Черноморском побережье Кавказа / Н.А. Осташева // Субтропическое и декоративное садоводство: сб. науч. тр. - Сочи: ВНИИЦиСК. - 2004. -Вып. 39. - С. 580-582.

98. Осташева, Н.А. Экологические основы защиты персика от микозов на Черноморском побережье / Н.А. Осташева // Оптимизация фитосанитар-ного состояния садов в условиях погодных стрессов: матер. конф. - Краснодар: Просвещение-Юг, 2005. - С. 166-171.

99. Осташева, Н.А. Основы биологизированной системы защиты персика от вредных организмов в субтропиках России / Н.А. Осташева, Е.А. Игнатова, Э.Б. Янушевская, В.А. Фогель // Субтропическое и декоративное садоводство: сб. науч. тр. - Сочи: ВНИИЦиСК, 2007. - Вып. 40. - С. 358-369.

100. Павлюшин, В.А. Современные проблемы иммунитета растений к вредным организмам / В.А. Павлюшин, О.С. Афанасенко, Н.А. Вилкова // Современные проблемы иммунитета растений к вредным организмам: матер. IV междунар. конф. - СПб: ВИЗР, 2008. - С. 8-9.

101. Палеева, Т.В. Определитель болезней и вредителей растений / Т.В. Палеева. - М.: Эксмо, 2004. - 192 с.

102. Пархоменко, Т.Ю. Новый перспективный штамм Bacillus subtilis /

Т.Ю. Пархоменко, И.А. Новиков // Химия и биология: электрон. науч. журн. -

111

2015. - № 3-4 (12). - Режим доступа: http://7universum.com/ru/nature/archive /item/2045. - Дата доступа: 01.03.2017.

103. Пахомова, В.М. Основные положения современной теории стресса и неспецифический адаптационный синдром у растений / В.М. Пахомова // Цитология. - 1995. - Т. 37, № 1. - С. 66-91.

104. Перковская, Г.Ю. Индукция активных форм кислорода и фитоалек-синов в культуре клеток лука (Allium cepa) биогенными элиситорами из гриба Botrytis cinerea / Г.Ю. Перковская, Ж.Н. Кравчук // Физиология растений. -

2004. - Т. 51, № 5. - С. 680-685.

105. Плотникова, Л.Я. Влияние салициловой и янтарной кислот на цито-физиологические реакции пшеницы, инфицированные бурой ржавчиной / Л.Я. Плотникова, Т.Ю. Штубей // Цитология. - 2009. - Т. 51, №1. - С. 43-52.

106. Подгорная, М.Е. Дыхательная активность почвы как показатель ее устойчивости к негативному действию пестицидов в системе экологизированной защиты персика / М.Е. Подгорная, Э.Б. Янушевская, А.В. Рындин // Агрохимия. - 2011а. - № 10. - С. 39-42.

107. Подгорная, М.Е. Формирование устойчивых пато- и энтомосистем садовых агроценозов / М.Е. Подгорная, Г.В. Якуба, С.Р. Черкезова, С.В. Прах, Н.А. Холод // Плодоводство и виноградарство юга России. - 2011б. - № 12. -С. 107-118.

108. Попкова, К.В. Общая фитопатология / К. В. Попкова. - М.: Дрофа,

2005. - 446 с.

109. Прах, С.В. Технология защиты вишни от доминирующих вредных объектов с целью обеспечения устойчивости косточковых агроэкосистем / С.В. Прах, И.Г. Мищенко, Ю.М. Серова // Науч. тр. ГНУ СКЗНИИСиВ. - 2014. - Т. 5. - С. 172-178.

110. Прах, С.В. Особенности развития возбудителя кластероспориоза и мониторинг сливовой плодожорки в сливовых насаждениях Краснодарского края / С.В. Прах, И.Г. Мищенко, М.Е. Подгорная // Плодоводство и виноградарство Юга России. - 2015. - № 35(05). - С. 131-141.

112

111. Радюкина, Н.Л. Методы оценки содержания активных форм кислорода, низкомолекулярных антиоксидантов и активностей основных антиоксидантных ферментов / Н.Л. Радюкина, Ю.В. Иванов, Н.И. Шевякова // Молекулярно-генетические и биохимические методы в современной физиологии растений. - М.: Бином. Лаборатория знаний, 2011. - 487 с.

112. Радюкина, Н.Л. Функционирование антиоксидантной системы дикорастущих видов растений при кратковременном действии стрессоров: дисс. ... канд. биол. наук: 03.01.05 / Радюкина Наталия Львовна. - М., 2015. - 200 с.

113. Рожнова, Н.А. Синтез новых белков картофеля in vitro при защищенном действии арахидоновой кислотой в процессе развития вирусных инфекций / Н.А. Рожнова, Г.А. Геращенков, Т.И. Одинцова // Физиология растений. - 2001. - Т. 48, № 6. - С. 897-905.

114. Рожнова, Н.А. Действие арахидоновой кислоты и вирусной инфекции на активность фитогемагглютининов при формировании индуцированной устойчивости у табака / Н.А. Рожнова, Г.А. Геращенков, А.В. Бабоша // Физиология растений. - 2003. - Т. 50, № 5. - С. 738-743.

115. Рожнова, Н.А. Влияние арахидоновой кислоты и фитовирусов на гормональную систему растений картофеля in vitro / Н.А. Рожнова, Г.А. Геращенков // Физиология растений. - 2006. - Т.53, № 2. - С. 235-242.

116. Рындин А.В. Использование физиолого-биохимических методов для выделения механизмов адаптации субтропических, южных плодовых и декоративных культур в условиях субтропиков России / А.В. Рындин, О.Г. Белоус, В.И. Маляровская, З.В. Притула, Ю.С. Абильфазова, А.М. Кожевникова // Сельскохозяйственная биология. - 2014. - № 3. - С. 40-48.

117. Рябчинская, Т.А. Биохимические и физиологические предикторы индуцированного иммунитета при обработке растений иммуноиндукторами группы Альбит / Т.А. Рябчинская, Г.Л. Харченко, Н.А. Саранцева, И.Ю. Боб-решова, А.К. Злотников // Вестник защиты растений. - 2008. - № 2. - С. 34-41.

118. Рябчинская, Т.А. Особенности полифункционального действия биопрепарата Альбит при обработке семян / Т.А. Рябчинская, Г.Л. Харенко,

113

И.Ю. Бобрешова, Н.А. Саранцева, А.К. Злотников // Агрохимия. - 2009. - № 10. - С. 39-47.

119. Семенова, Е.А. Энзиматическая активность инфицированных листьев Glycine max и Glycine soja / Е.А. Семенова, С.А. Титова, Л.К. Дубовицкая // Фундаментальные исследования. - 2011. - № 4(12). - С. 708-711.

120. Смагин, Н.Е. Геноресурсы персика в субтропиках России / Н. Е. Смагин, А. В. Рындин, Ю. С. Кочкина // Субтропическое и декоративное садоводство: сб. науч. тр. - Сочи: ВНИИЦиСК. - 2009. - Вып. 41. - С. 159-168.

121. Смагин, Н.Е. Подбор сортов персика для субтропиков России / Н.Е. Смагин // Субтропическое и декоративное садоводство: сб. науч. тр. - Сочи: ВНИИЦиСК, 2012. - Вып. 47. - С. 77-83.

122. Смольякова, В.М. Болезни плодовых пород юга России / В.М. Смо-льякова. - Краснодар: Весть, 2000. - 192 с.

123. Соколов, Ю.А. Элиситоры и их применение / Ю.А. Соколов // Известия национальной академии наук Беларуси. - 2014. - № 4. - С. 109-121.

124. Стиммунол ЕФ. - 2017. - URL: http://stimmunol.ru/stati/64-biologi-zatsiya-selskogo-khozyajstva (дата обращения: 01.03.2017).

125. Стороженко, Е.М. Болезни плодовых культур и винограда / Е.М. Стороженко. - Краснодар: Краснодарское книж. изд-во, 1970. - 207 с.

126. Стрешинская, Г.М. Углеводсодержащие полимеры клеточных стенок некоторых штаммов группы Bacillus subtilis / Г.М. Стрешинская, А.С. Шашков, Н.В. Потехина, Ю.И. Козлова, Е.М. Тульская, С.Н. Сенченкова, Е.Б. Кудряшова, Л.Н. Ананьина // Микробиология. - 2011. - Т. 80, № 1. - С. 24-32.

127. Тарчевский, И.А. Элиситор-индуцируемые сигнальные системы и их взаимодействие / И.А. Тарчевский // Физиология растений. - 2000. - Т. 47, № 2. - С. 321-331.

128. Тарчевский, И.А. Сигнальные системы клеток растений / И.А. Тарчевский. - М.: Наука, 2002. - 294 с.

129. Титова, С.А. Влияние фитопатогенных микроорганизмов на энзи-матическую активность растения-хозяина Glycine max (L.) Merr. и Glycine soja

114

Б1еЬ. е1 7исс.: дисс. ...канд. биол. наук: 03.02.08 / Титова Светлана Анатольевна. - Благовещенск, 2014. - 148 с.

130. Трошина, Н.Б. Перекись водорода как регулятор устойчивости растений и каллусов пшеницы к грибным патогенам: дисс. ... д-ра. биол. наук: 03.00.12 / Трошина Наталья Борисовна. - СПб, 2007. - 236 с.

131. Трунов, Ю.В. Влияние минерального питания на фотосинтетическую активность листьев яблони в условиях центрального Черноземья / Ю.В. Трунов, А.И. Кузин, Е.М. Цуканова, Н.С. Вязьмикина // Плодоводство и яго-доводство России. - 2012. - Т.35. - С. 187-193.

132. Тютерев, С.Л. Хитозары - новая группа препаратов-активаторов болезнеустойчивости растений / С.Л. Тютерев // Биологически активные вещества в защите растений: матер. совещ. - СПб: ВИЗР, 1999. - С.14-17.

133. Тютерев, С.Л. Препараты - фитоактиваторы болезнеустойчивости для подавления фузариозной корневой гнили зерновых культур / С.Л. Тютерев, Э.В. Попова, Л.К. Хацкевич // Биологически активные вещества в защите растений: матер. совещ. - СПб: ВИЗР, 1999. - С. 65-67.

134. Тютерев, С.Л. Научные основы индуцированной устойчивости растений / С.Л. Тютерев. - СПб: Наука, 2002. - 328 с.

135. Тютерев, С.Л. Индуцированный иммунитет к болезням и перспективы его использования / С.Л. Тютерев // Защита и карантин растений. - 2005. - № 4. - С. 21-26.

136. Тютерев С.Л. Индуцированный иммунитет - новое направление в интегрированной защите растений / С.Л. Тютерев // Индуцированный иммунитет сельскохозяйственных культур - важное направление в защите растений: матер. всеросс. конф. - Большие Вяземы, 2006. - С. 8-11.

137. Тютерев С.Л. Механизмы действия фунгицидов на фитопатогенные грибы / С.Л. Тютерев. - СПб: ИПК «Нива», 2010. - 170 с.

138. Тютерев, С.Л. Природные и синтетические индукторы устойчивости растений к болезням. Монография / С.Л. Тютерев. - СПб: Родные просторы, 2014. - 212 с.

139. Хомяк, А.И. Разработка технологии получения нового экологически безопасного биофунгицида на основе бактерий Bacillus subtilis для защиты озимой пшеницы от экономически значимых болезней / А.И. Хомяк, А.М. Аса-турова // Молодой ученый. - 2015. - № 9.2(89.2). - С. 82-83.

140. Хорошева, Т.М. Применение биологически активных веществ в качестве индукторов устойчивости томатов к болезням / Т.М. Хорошева, Т.А. Суслова, М.В. Норицина, Л.А. Лысова. // Защита растений от вредителей и болезней: сб. тр. - Саратов, 1996. - С. 70-76.

141. Хохрякова, Т.М. Методы изучения устойчивости косточковых культур / Т.М. Хохрякова, К.В. Никитина. - Л.: ВИР, 1978. - 64 с.

142. Чикин, Ю.А. Общая фитопатология: учебное пособие / Ю.А. Чикин. - Томск: Томский госуниверситет, 2001. - 170 с.

143. Чиркова, Т.В. Физиологические основы устойчивости растений: учебное пособие / Т.В. Чиркова. - СПб: СПбГУ, 2002. - 244 с.

144. Чумаков, А.Е. Вредоносность болезней сельскохозяйственных культур / А.Е. Чумаков, Т.И. Захарова. - М.: Агропромиздат, 1990. - 127 с.

145. Шайтан, И.М. Биологические особенности и выращивание персика, абрикоса и алычи / И.М. Шайтан, Л.М. Чуприна, В.А. Анпилогова. - Киев: На-укова Думка, 1989. - 256 с.

146. Шакирова, Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция / Ф.М. Шакирова. - Уфа: Гилем, 2001. - 160 с.

147. Шкаликов, В.А. Защита растений / В.А. Шкаликов. - М.: Колос, 2010. - 397 с.

148. Яруллина, Л.Г. Клеточные механизмы формирования устойчивости растений к грибным патогенам / Л.Г. Ярулллина, Р. И. Ибрагимов. - Уфа: Гилем, 2006. - 228 с.

149. Янушевская, Э.Б. Роль альбита в повышении устойчивости микро-боценоза почв к пестицидным нагрузкам / Э.Б. Янушевская, Н.Н. Карпун // Защита и карантин растений. - 2011. - № 9. - С. 30-31.

150. Янушевская, Э.Б. Основные этапы развития экотоксикологических исследований в садовых агроценозах Черноморского побережья России / Э.Б. Янушевская, Н.Н. Карпун // Субтропическое и декоративное садоводство: сб. науч. тр. - Сочи: ВНИИЦиСК, 2012. - Вып. 47. - С. 194-200.

151. Янушевская Э.Б. Анализ современных научных исследований по проблеме иммунитета / Э.Б. Янушевская, Н.Н. Карпун, Е.В. Михайлова // Научные исследования в субтропиках России: сб. тр. молодых ученых, аспирантов и соискателей. - Сочи, 2013. - С. 209-216.

152. Alvarez, A.L. Salicylic acid in machinery of hypersensitive cell death and disease resistance / A.L. Alvarez // Plant Molecular Biology. - 2000. - № 44. -P. 429-442.

153. Apel, K. Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction / K. Apel, H. Hirt // Annual Review of Plant Biology. - 2004. -Vol. 55. - P. 373-399.

154. Bailiss, K.W. Role of ethylene and abscisic acid in tmv-induced symptoms in tobacco / K.W. Bailiss, E. Balazs, Z. Kiraly // Acta Phytopathologica Aca-demiae Scientiarum Hungaricae. - 1977. - Vol. 12. - P. 133-140.

155. Barna, B. Role of antioxidant systems and juvenility in tolerance of plants to diseases and abiotic stresses / B. Barna, A.L. Adam, G. Gullner, Z. Kiraly // Acta Phytopathologica et Entomologica Hungarica. - 1995. - Vol. 30. - P. 39-45.

156. Bartling, D. A glutathione S-transferase with glutathione-peroxidase activity from Arabidopsis thaliana / D. Bartling, R. Radzio, U. Steiner, E.W. Weiler // Molecular cloning and functional characterization. - 1993. - Vol. 216(2). - P. 579586.

157. Bolwell, G.P. Role of active oxygen species and NO in plant defence responses / G.P. Bolwell // Current Opinion in Plant Biology. - 1999. - Vol. 2. - P. 287-294.

158. Bolwell, G.P. Reactive Oxygen Species in Plant-Pathogen Interactions / G.P. Bolwell, A. Daudi // Signaling and Communication in Plants. Book 2. Plant Signaling. Eds Baluska F., Vivanco J. - Berlin, Heidelberg, 2009. - P. 3-27.

117

159. Bostock, R.M. Eicosapentaenoic and Arachidonic Acids from Phy-tophthora infestans Elicit Fungitoxic Sesquiterpenes in the Potato / R.M. Bostock, J. Kuc, R.A. Laine // Science. - 1981. - Vol. 212(4490). - P. 67-69.

160. Bostock, R.M. Factors Affecting the Elicitation of Sesquiterpenoid Phy-toalexin Accumulation by Eicosapentaenoic and Arachidonic Acids in Potato / R.M. Bostock, J. Kuc, R.A. Laine // Plant Physiology. - 1982. - Vol. 70(5). - P. 14171424.

161. Boyes, D.C. Plant pathology: Many roads lead to resistance / D.C. Boyes, J.M. McDowell, J.L. Dang // Current Biology. - 1996. - Vol. 6. - P. 634-637.

162. Broekaert, W.E. Plant defensins: novel antimicrobial peptides as component of the host defense systems / W.E. Broekaert, F.R.G. Terras, B.P.A. Cammue, R.W. Osborn // Plant Physiology. - 1995. - № 108(4). - P. 1353-1358.

163. Castoria, R. Metabolism of Arachidonic Acid Involved in Its Eliciting Activity in Potato Tuber / R. Castoria, C. Fanelli, A.A. Fabbri, S. Passi // Physiological and Molecular Plant Pathology. - 1992. - V. 41, (2). - P. 127-137.

164. Castoria, R. Interrelationships between browning and phytoalexin accumulation elicited by arachidonic acid / R. Castoria, M.M. Altamura, A.A. Fabbri, M. Tomassi, C. Fanelli // Plant Physiology. - 1995. - Vol. 145. - P. 209-214.

165. Chamnongpol, S. Defense activation and enhanced pathogen tolerance induced by H2O2 in transgenic tobacco / S. Chamnongpol, H. Willekens, W. Moeder, C. Langebartels, H. Sandermann, van M. Montagu, D. Inze, van W. Camp // Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. - 1998. - Vol. 95(10). -P. 5818-5823.

166. Chen, G. Ascorbate peroxidase in tea leaves occurrence of two isozymes and differences in their enzymatic and molecular properties / G. Chen, K. Asada // Plant and Cell Physiology. - 1989. - Vol. 30. - P. 987-998.

167. Chen, Z. Pseudomonas syringae type III effector AvrRpt2 alters Ara-bidopsis thaliana auxin physiology / Z. Chen, J.L. Agnew, J.D. Cohen, P. He, P. Shan, J. Sheen, B.N. Kunkel // Proceedings of the National Academy of Sciences,

USA. - 2007. - Vol. 104(50). - P. 20131-20136.

118

168. Chivasa, S. Salicylic acid interferes with tobacco mosaic virus replication via a novel salicylhydroxamic acid-sensitive mechanism / S. Chivasa, A.M. Murphy, M. Naylor, J.P. Carr // Plant Cell. - 1997. - Vol. 9, № 4. - P. 547-557.

169. Coquoz, J.L. Arachidonic-acid induces local but not systemic sunthesis of salicylic-acid and confers systemic resistance in potato plants to Phytophthora infestans and Alternaria solani / J.L. Coquoz, A.J. Buchala, P. Meuwly, J.P. Metraux // Phytopthology. - 1995. - Vol. 85. - P. 1219-1224.

170. Desikan, R. Regulation of the Arabidopsis transcriptome by oxidative stress / R. Desikan, S.A.-H. Mackerness, J.T. Hancock, S.J. Neil // Plant Physiology. - 2001. - Vol. 127, № 1. - P. 159-172.

171. de Vleesschauwer, D. Rhizobacteria-induced systemic resistance / D. de Vleesschauwer, M. Hofte //Advances in Botanical Research. - 2009. - Vol. 51. - P. 223-281.

172. de Wit, P.J.G.M. Fungal a virulence genes and plant resistance genes: unraveling the molecular basis of gene-for-gene interactions / P.J.G.M. de Wit // Advances in Botanical Research. - 1995. - Vol. 21. - P. 147-185.

173. Ding C.K. Jasmonate and salicylate induce the expression of pathogene-sis-related-protein genes and increase resistance to chilling injury in tomato fruit / C.K. Ding, C.Y. Wang, K.C. Gross, D.L. Smith // Planta. - 2002. - Vol. 214(6). -P. 895-901.

174. Faretra, F. Genetic studies of Botryotinia fuckeliana (Botrytis cinerea) / F. Faretra, M. Grindle // Recent advances in Botrytis research: book / Verhoeff K., Malathrakis N.E., Williamson B. (eds). - Wageningen: Pudoc Scientific Publishers, 1992. - P. 7-17.

175. Foyer, C. Hydrogen peroxide- and glutathione-associated mechanisms of acclamatory stress tolerance and signaling / C. Foyer, H. Lopez-Delgado, J.F. Dat, I.M. Scott // Pathology Plant. - 1997. - Vol. 100. - P. 241-245.

176. Galvez-Valdivieso, G. The role of reactive oxygen species in signalling from chloroplasts to the nucleus / G. Galvez-Valdivieso, P.M. Mullineaux // Pathology Plant. - 2010. - Vol. 138(4). - P. 430-439.

119

177. Gill, S.S. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants / S.S. Gill, N. Tuteja // Plant Physiology and Biochemistry. - 2010. - Vol. 48 (12). - P. 909-930.

178. Grant, J.J. Role of reactive oxygen intermediates and cognate redox signaling in disease resistance / J.J. Grant, G.J. Loake // Plant Physiology. - 2000. -Vol. 124(1). - P. 21-30.

179. Hammerschmid, T.R. Phytoalexins: what we have learned after 60 years? / T.R. Hammerschmid // Annual Review Phytopathology. - 1999. - Vol. 37.

- P. 28-36.

180. Hanania, U. High affinity binding site for a fungal elicitor (EIX) exists only in plants responding to the elicitor / U. Hanania, N. Furman, M. Ron, D. Zamir, Y. Eshed, A. Avini // Plant Physiology. - 1997. - Vol. 114. - P. 42.

181. Heil, M. Induced systemic resistance (ISR) against pathogens in the context of induced plant defences // M. Heil, R.M. Bostock // Annals of Botany. - 2002.

- Vol. 89(5). - P. 503-512.

182. Huckelhoven, R. Reactive oxygen intermediates in plant-microbe interactions: Who is who in powdery mildew resistance / R. Huckelhoven, K.H. Kogel // Planta. - 2003. - Vol. 216(6). - P. 891-902.

183. Huub, J.M. Pathogenesis-related proteins in plants / J.M. Huub, J.M. Linthorst, L.C. Van Loon // Critical Reviews in Plant Sciences. - 1991. - Vol. 10(2).

- P. 123-150.

184. Hung, K.T. Hydrogen peroxide is involved in methyl jasmonateinduced senescence of rice leaves / K.T. Hung, Y.T. Hsu, C.H. Kao // Physiology Plant. -2006. - Vol. 127(2). - P. 293-303.

185. Howe, G.A. Plant immunity to insect herbivores / G.A. Howe, G. Jander // Annual Review of Plant Biology. - 2008. - Vol. 59. - P. 41-66.

186. Jarvis, W.R. Botryotinia and Botrytis species: taxonomy, physiology and pathogenicity / W.R. Jarvis. - Ottawa: Research Branch, Canada Department of Agriculture, 1977. - 206 p.

187. Jaspers, P. Reactive oxygen species in abiotic stress signaling / P. Jaspers, J. Kangasjarvi // Physiology Plant. - 2010. - V. 138 (4). - P. 405-413.

188. Karpun N.N. The effectiveness of applying biological preparation Al-bit® of eliciting effect in peach cultivation technologies / N.N. Karpun, E.B. Yanushevskaya, Ye.V. Mikhailova // Cutting-Edge Science - 2015: materials of the XI Int. sci. and pract. conf., April 30 - May 7, 2015. - Sheffield: Science and Education Ltd, 2015. - Vol. 26 Agriculture. - P. 48-52.

189. Keen, N.T. Specific elicitors of plan phytoalexin production: determinants of race specificity in pathogens / N.T. Keen // Science. - 1975. - Vol. 187(4171). - P. 74-75.

190. Khripach, V.A. Twenty years of brassinosteroids: steroidal plant hormones warrant better crops for the XXI century / V.A. Khripach, V.N. Zhabinskii, Ac. De Groot // Annals of Botany. - 2000. - Vol. 86. - P. 441-447.

191. Khripach, V.A. New practical aspects of brassinosteroids and results of their ten-year agricyltural use in Russia and Belarus / V.A. Khripach, V.N. Zhabinskii, N.B. Khripach, S. Hayat, A. Ahmad // In: «Brassinosteroids. Bioactivity and crop productivity». Ed. S. Hayat, A. Ahmad. - Dordrecht: Kluwer Academic Publisher, 2003. - P. 189-230.

192. Knoester, M. Systemic resistance in Arabidopsis induced by rhizobacte-ria requires ethylene-dependent signaling at the site of application / M. Knoester, C.M.J. Pieterse, J.F. Bol, L.C. Van Loon // Molecular Plant-microbe Interactions. -1999. - Vol.12. - P. 720-727.

193. Kuc, J. Phytoalexins, stress metabolism and disease resistance in plants / J. Kuc // Annual Review Phytopathology. - 1993. - Vol. 33. - P. 275-297.

194. Lamb, C. The oxidative burst in plant disease resistance / C. Lamb, R.A. Dixon // Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology. - 1997. - Vol. 48. - P. 251-275.

195. Mehdy, M.C. Active oxygen species in plant defense against pathogens / M.C. Mehdy // Plant Physiology. - 1994. - Vol. 105. - P. 467-472.

196. Meloni, D.A. Photosynthesis and activity of superoxide dismutase, peroxidase and glutathione reductase in cotton under salt stress / D.A. Meloni, M.A. Oliva, C.A. Martinez, J. Cambraia // Environmental And Experimental Botany. -2003. - Vol. 49(1). - P. 69-79.

197. Meuwly, Ph. Accumulation of salicylic acid in cucumber, Arabidopsis and potato plants infected with pathogens / Ph. Meuwly, K. Summermatter, J.L. Coquoz, A. Buchala, W. Molders, J.-P. Metraux // Mater. 15-th Int. Bot. Congr. Yokogama, 1993. - 395 p.

198. Mishina, T.E. Pathogen-associated molecular pattern recognition rather than development of tissue necrosis contributes to bacteria linduction of systemic acquired resistance in Arabidopsis / T.E. Mishina, J. Zeier // Planta. - 2007. - Vol. 50. - P. 500-513.

199. Mullineaux, P.M. Spatial dependence for hydrogen peroxide-directed signaling in light-stressed plants / P.M. Mullineaux, S. Karpinski, N.R. Baker // Plant Physiology. - 2006. - Vol. 141(2). - P. 346-350.

200. Nunez, M. Influence of a brassinosteroid analogue on antioxidant enzymes in rice grown in culture medium with NaCl / M. Nunez, P. Mazzafera, L.M. Mazorra, W.J. Siquira, M.A.T. Zullo // Plant Biology. - 2003. - Vol. 47(1). - P. 6770.

201. Okey, E.N. Phytophthora canker resistance in cacao: Role of peroxidase, polyphenoloxidase and phenylalanine ammonialyase / E.N. Okey, E.J. Duncan, G. Sirju-Charran, T.N. Sreenivasan // Phytopathology. - 1997. - Vol. 145(7). - P. 295299.

202. Ousmane, H. Genome sequencing of the plant pathogen Taphrina deformans, the causal agent of peach leaf curl / H. Ousmane, M.G. Joao, C.F. Almeida, A. Fonseca, A. Kumar, J. Salojarvi, K. Overmyer, P.M. Hauser, M. Pagni // American society for microbiology. - 2013. - Vol. 4. - P. 1-8.

203. Pegg, G.F. The involvement of ethylene in plant pathogenesis / G.F. Pegg // Encyclopedia of Plant Pathology. - 1976. - Vol. 4. - P. 582-591.

204. Pugin, A. Mode of action of elicitors: Involvement of plasma membrane functions / A. Pugin, J. Guern // Comptes rendus de l'Académie des Sciences, Ser.3.

- 1996. - Vol. 319(11). - P. 1055-1061.

205. Radhakrishnan, N. Salicylic acid induced defense responsesin Curcuma longa (L.) against Pythium aphanidermatum infection / N. Radhakrishnan, R. Bal-asubramanian // Crop Protection. - 2009. - Vol. 28(11). - P. 974-979.

206. Repka, V. Methyl jasmonate is a potent elicitor of multiple defense responses in grapevine leaves and cell-suspension cultures / V. Repka, I. Fisherova, K. Silharova // Plant Biology. - 2004. - Vol. 48(2). - P.273-283.

207. Rohwer, F. Biochemical reactions of different tissues of potato (Solanum tuberosum) to zoospores or elicitors from phytophthora infestans / F. Rohwer, K.-H. Fritzemeier, D. Scheel, K. Hahlbrock // Planta. - 1987. - Vol. 170(4). - P. 556561.

208. Ryals, J.A. Systemic acquired resistance / J.A. Ryals, U.H. Neu-enschwander, M.G. Willits, A. Molina, H.-Y. Steiner, M.D. Hunt // The Plant Cell.

- 1996. - Vol. 8. - P. 1809-1819.

209. Selitrennikoff, C.P. Antifungal proteins / C.P. Selitrennikoff // Applied and Environmental Microbiology. - 2001. - Vol. 67(7). - P. 2883-2894.

210. Seskar, M. Endogenous methyl salicylate in pathogeninoculated tobacco plants / M. Seskar, V. Shulaev, I. Raskin // Plant Physiology. - 1998. - Vol. 116 (1).

- P. 387-392.

211. Shao, H.B. Primary antioxidant free radical scavenging and redox signaling pathways in higher plant cells / H.B. Shao, L.Y. Chu, C.M. Kang // Biological Sciences. - 2008. - Vol. 4, № 1. - P. 8-14.

212. Shetty, N.P. Roles of reactive oxygen species in interaction between plants and pathogen / J. Eur, N.P. Shetty, H.J.L. Jorgensen, J.D. Jensen, D.B. Col-linge, H.S. Shetty // Plant Pathology. - 2008. - Vol. 121(3). - P. 267-280.

213. Shirasu, K. Salicylic acid potentiates an agonist-dependent gain control that amplifies pathogen signals in the activation of defense mechanisms / K. Shirasu,

H. Nakajima, V.K. Rajasekhar, R.A. Dixon, C. Lamb // Plant Cell. - 1997. - Vol. 9(2). - P. 261-270.

214. Stermer, B.A. Rapid changes in protein sunthesis after application of ar-achidonic acid to potato Tuber Tissue / B.A. Stermer, R.M. Bostock // Physiological and Molecular Plant Pathology. - 1989. - Vol. 35. - P. 347-356.

215. Sun, Y. Cost-Free Method of Purification of DNA Fragments from Agarose Gel / Y. Sun, K. Sriramajayam, D. Luo // Journal of Cancer. - 2012. - Vol. 3.

- P. 93-95.

216. Tavares, S. Direct detection of Taphrina deformans on peach trees using molecular methods / S. Tavares, J. Inagcio, A. Fonseca, C. Oliveira // European Journal of Plant Pathology. - 2004. - Vol. 110 - P. 973-982.

217. Thakur, M. Role of elicitors in inducing resistance in plants against pathogen infection: a review / M. Thakur, B.S. Sohal // ISRN Biochemistry. - 2013. - P. 1-10.

218. Van Loon, L.C. The families of pathogenesis-related proteins, their activities, and comparative analysis of PR-1 type proteins / L.C. Van Loon, E.A. Van Strien // Physiological and Molecular Plant Pathology. - 1999. - Vol. 55(2). - P. 8597.

219. Van Loon, L.C. Root-associated bacteria inducing systemic resistance / L.C. Van Loon, P.A.H.M. Bakker // Plant-Associated Bacteria: book, S.S. Gnana-manickam (ed.). - Springer Netherlands, 2006. - P. 269-316.

220. Vimala, R. Induced resistance in bhendi against powdery mildew by foliar application of salicylic acid / R. Vimala, M. Suriachandraselvan // Biopesticides.

- 2009. - Vol. 2(1). - P. 111-114.

221. Vranova, E. Signal transduction during oxidative stress / E. Vranova, D. Inze, van F. Breusegem // Experimental Botany. - 2002. - Vol. 53(372). - P. 12271236.

222. Wojtaszek, P. Oxidative burst an early plant response to pathogen infection / P. Wojtaszek // Biochemistry. - 1997. - Vol. 322(3). - P. 681-692.

223. Xing, T.I. Race-specific elicitors of Cladosporium fulvum promote translocation of cytosolic components of NADPH oxidase to the plasma membrane of tomato cells / T.I. Xing, V.J. Higgins, E. Blumwald // Plant Cell. - 1997. - Vol. 9(2). - P. 249-259.

224. Zhang, J. Receptor-like cytoplasmic kinases integrate signaling from multiple plant immune receptors and are targeted by a Pseudomonas syringae effector / J. Zhang, W. Li, T. Xiang, Z. Liu, X. Ding, Y. Zou, M. Gao // Cell Host Microbe. - 2010. - Vol. 7, № 4. - P. 290-301.

Приложение 1 Таблица 1

Биологическая эффективность и влияние иммуноиндукторов на степень развития (Я, %) курчавости листьев на разных

сортах персика в 2015-2016 гг. (II декада мая)

Варианты опыта *Я, %/БЭ, % 2015 г. *Я, %/БЭ, % 2016 г.

Ветеран Коллинз Редхавен Ветеран Коллинз Редхавен

Контроль 37,8±2,6 35,1±2,7 31,2±4,9 22,6±1,6 23,1±1,1 20,0±2,8

* производственная схема защиты 11,5±2,1 / 69,5 10,0±1,9 / 71,5 7,8±1,9 / 75,0 10,5±1,3 / 53,5 11,3±1,1 / 51,0 8,8±1,3 / 56,0

*** Альбит, ТПС в баковой смеси с фунгицидами 8,7±0,6 / 76,9 6,5±0,5 / 81,4 6,2±2,2 / 80,1 8,4±1,3 / 62,8 10,4±1,5 / 54,9 8,1±1,3 / 59,5

Иммуноцитофит, ТАБ в баковой смеси с фунгицидами 9,7±1,3 / 74,3 9,6±1,2 / 72,6 8,7±1,4 / 72,1 9,3±1,0 / 58,8 11,0±1,5 / 52,3 8,0±0,7 / 60,0

Экогель, ВР в баковой смеси с фунгицидами 8,0±1,5 / 78,8 8,4±1,2 / 76,0 7,0±1,2 / 77,5 7,5±0,7 / 66,8 7,8±1,2 / 66,2 7,2±0,6 / 64,0

Салициловая кислота, Р в баковой смеси с фунгицидами 8,7±1,3 / 76,9 8,7±2,6 / 75,2 7,8±2,3 / 75,0 9,6±1,2 / 57,5 9,3±1,2 / 59,7 8,7±2,6 / 56,5

Альбит, ТПС (без фунгицидов) 9,8±0,4 / 74,0 7,5±0,5 / 78,6 5,8±1,7 / 81,4 8,1±0,9 / 64,1 9,4±1,1 / 59,3 7,0±0,8 / 65,0

Иммуноцитофит, ТАБ (без фунгицидов) 11,8±2,0 / 68,7 13,2±2,1 / 62,3 10,4±0,5 / 69,8 11,0±1,1 / 51,3 10,5±1,9 / 54,5 10,2±0,9 / 49,0

Экогель, ВР (без фунгицидов) 6,9±0,9 / 81,7 8,9±1,0 / 74,6 6,6±1,2 / 78,8 8,1±0,9 / 64,1 8,0±1,3 / 65,3 7,6±1,2 / 62,1

Салициловая кислота, Р (без фунгицидов) 10,1±1,4 / 73,2 9,5±1,1 / 72,9 9,5±1,7 / 69,5 10,2±0,9 / 54,8 12,0±1,5 / 48,0 11,4±1,8 / 43,4

НСР005 1,8 1,7 1,7 1,0 1,1 0,8

Примечание: *Я, %/БЭ, % развитие курчавости листьев и биологическая эффективность препаратов с учетом развития болезни. производственная обработка (делан, ВГ (0,7 кг/га) 1 обработка, скор, КЭ (0,2 л/га) 2 обработки). **Баковая смесь с фунгицидами в половинных нормах расхода: делан, ВГ (0,35 кг/га) 1 обработка, скор, КЭ (0,1 л/га) 2 обработки).

Биологическая эффективность и влияние иммуноиндукторов на степень развития (Я, %) кластероспориоза листьев на _ разных сортах персика в 2015-2016 гг. (II декада июля)_

Варианты опыта *Я, %/БЭ, % 2015 г. *Я, %/БЭ, % 2016 г.

Ветеран Коллинз Редхавен Ветеран Коллинз Редхавен

Контроль 14,0±1,5 13,8±1,5 9,8±1,7 19,5±2,0 18,9±2,9 11,0±1,5

**Производственная схема защиты 8,6±1,1 / 40,6 7,6±1,1 / 44,9 6,4±1,2 / 34,6 12,5±1,0 / 35,8 9,3±1,2 / 50,7 8,6±1,1 / 21,8

***Альбит, ТПС в баковой смеси с фунгицидами 4,2±1,2 / 71,0 3,0±1,0 / 78,2 2,6±0,8 / 73,4 6,3±0,8 / 67,6 6,5±1,0 / 65,6 4,0±1,0 / 63,6

Иммуноцитофит, ТАБ в баковой смеси с фунгицидами 4,0±1,0 / 72,4 3,2±1,2 / 76,8 2,7±1,2 / 72,4 7,3±1,0 / 62,5 5,5±1,0 / 70,8 4,2±1,2 / 61,8

Экогель, ВР в баковой смеси с фунгицидами 3,7±1,2 / 74,4 3,2±1,2 / 76,8 2,6±1,1 / 73,4 7,0±0,8 / 64,1 6,2±1,4 / 67,1 4,2±1,2 / 61,8

Салициловая кислота, Р в баковой смеси с фунгицидами 5,3±1,0 / 63,4 4,8±1,0 / 65,2 4,7±1,2 / 52,0 7,6±1,1 / 61,0 7,3±1,0 / 61,3 6,4±1,2 / 41,8

Альбит, ТПС (без фунгицидов) 4,6±1,4 / 68,2 3,6±1,4 / 73,9 2,7±1,2 / 72,4 5,3±1,6 / 72,8 6,5±1,0 / 65,6 4,6±1,4 / 58,1

Иммуноцитофит, ТАБ (без фунгицидов) 6,3±1,0 / 56,5 5,3±1,0 / 61,5 5,8±1,0 / 40,8 5,2±0,5 / 73,3 6,7±1,1 / 64,5 6,3±1,0 / 42,7

Экогель, ВР (без фунгицидов) 4,6±1,9 / 68,2 3,2±1,2 / 76,8 3,1±0,9 / 68,3 6,2±0,5 / 68,2 7,2±0,7 / 61,9 6,2±0,8 / 43,6

Салициловая кислота, Р (без фунгицидов) 6,4±1,2 / 55,8 5,5±1,0 / 60,1 4,6±1,9 / 53,0 7,5±0,7 / 61,5 7,0±0,8 / 62,9 6,4±1,2 / 41,8

НСР05 0,5 0,6 0,5 0,9 0,8 0,4

Примечание: *Я, %/БЭ, % развитие кластероспориоза листьев и биологическая эффективность препаратов с учетом развития болезни. производственная обработка (делан, ВГ (0,7 кг/га) 1 обработка, скор, КЭ (0,2 л/га) 2 обработки). **Баковая смесь с фунгицидами в половинных нормах расхода: делан, ВГ (0,35 кг/га) 1 обработка, скор, КЭ (0,1 л/га) 2 обработки).

Биологическая эффективность и влияние иммуноиндукторов на степень развития (Я, %) серой гнили плодов на разных _сортах персика в 2015-2016 гг. (II декада июля)_

Варианты опыта *Я, %/БЭ, % 2015 г. *Я, %/БЭ, % 2016 г.

Ветеран Коллинз Редхавен Ветеран Коллинз Редхавен

Контроль 21,5±1,6 18,2±2,9 16,1±1,4 16,8±1,5 13,9±1,5 12,5±0,9

** Производственная схема защиты 15,6±1,4 / 27,4 13,8±1,5 / 24,1 11,3±0,9 / 29,8 12,5±1,0 / 25,5 10,6±0,9 / 23,7 9,3±0,9 / 25,6

***Альбит, ТПС в баковой смеси с фунгицидами 9,4±1,0 /56,2 7,8±0,7 / 57,1 5,4±0,4 / 66,4 7,8±0,6 / 53,5 6,3±0,5 / 54,6 5,0±0,2 / 60,0

Иммуноцитофит, ТАБ в баковой смеси с фунгицидами 11,4±0,9 / 46,9 10,0±1,5 / 45,0 7,5±1,0 / 53,4 8,4±1,2 / 50,0 7,3±1,0 / 47,4 6,2±0,4 / 50,4

Экогель, ВР в баковой смеси с фунгицидами 9,2±0,9 / 57,2 8,9±0,6 / 51,0 6,1±0,2 / 62,1 7,3±0,4 / 56,5 6,9±0,5 / 50,3 5,2±0,8 / 58,4

Салициловая кислота, Р в баковой смеси с фунгицидами 12,0±1,5 / 44,1 11,3±1,1 / 37,9 8,4±0,8 / 47,8 9,5±1,0 / 16,8 8,9±0,6 / 35,9 7,8±0,9 / 37,6

Альбит, ТПС (без фунгицидов) 9,9±0,4 / 53,9 8,2±1,3 / 54,9 6,7±0,5 / 58,3 8,1±1,3 / 51,7 7,6±1,1 / 45,3 5,7±0,2 / 54,4

Иммуноцитофит, ТАБ (без фунгицидов) 12,0±1,5 / 44,1 11,3±1,8 / 37,9 8,6±0,6 / 46,5 9,3±1,0 / 44,6 8,1±1,3 / 41,7 6,5±0,5 / 48,0

Экогель, ВР (без фунгицидов) 10,1±0,9 / 53,0 9,5±1,2 / 47,8 7,3±0,4 / 64,6 8,2±1,3 / 51,1 7,0±0,8 / 49,6 5,9±0,5 / 52,8

Салициловая кислота, Р (без фунгицидов) 12,9±0,9 / 40,0 12,2±1,5 / 32,9 9,2±0,9 / 42,8 10,1±0,9 / 39,8 9,6±1,2 / 30,9 8,9±1,0 / 28,8

НСР05 0,8 0,9 0,6 0,6 0,6 0,4

Примечание: *Я, %/БЭ, % развитие серой гнили плодов и биологическая эффективность препаратов с учетом развития болезни. производственная обработка (делан, ВГ (0,7 кг/га) 1 обработка, скор, КЭ (0,2 л/га) 2 обработки). **Баковая смесь с фунгицидами в половинных нормах расхода: делан, ВГ (0,35 кг/га) 1 обработка, скор, КЭ (0,1 л/га) 2 обработки).

Биологическая эффективность и влияние иммуноиндукторов на степень развития (Я, %) монилиоза плодов на разных _сортах персика в 2015-2016 гг. (II декада июля)_

Варианты опыта *Я, %/БЭ, % 2015 г. *Я, %/БЭ, % 2016 г.

Ветеран Коллинз Редхавен Ветеран Коллинз Редхавен

Контроль 14,2±1,5 11,6±1,1 10,5±0,7 17,5±2,9 15,8±1,5 13,6±0,8

**Производственная схема защиты 12,6±1,1 / 11,2 10,5±0,5 / 9,4 9,3±0,5 / 11,4 12,4±1,0 / 29,1 10,6±1,3 / 32,9 9,2±0,9 / 32,3

***Альбит, ТПС в баковой смеси с фунгицидами 8,3±1,2 / 41,5 7,9±1,2 / 31,8 7,0±0,3 / 33,3 8,9±1,5 / 49,1 7,3±0,5 / 53,7 6,4±1,0 / 52,9

Иммуноцитофит, ТАБ в баковой смеси с фунгицидами 9,6±1,2 / 32,3 9,1±0,9 / 21,5 8,6±0,6 / 18,0 9,7±1,2 / 44,5 8,1±0,9 / 48,7 7,1±0,9 / 47,7

Экогель, ВР в баковой смеси с фунгицидами 9,4±1,1 / 33,8 9,0±0,8 / 22,4 8,0±0,4 / 23,8 8,2±0,9 / 53,1 7,8±1,2 / 50,6 6,7±0,2 / 50,7

Салициловая кислота, Р в баковой смеси с фунгицидами 11,0±1,5 / 22,5 9,8±0,5 / 15,5 9,0±0,9 / 14,2 10,1±0,8 / 42,2 9,3±1,0 / 41,1 8,6±1,0 / 36,7

Альбит, ТПС (без фунгицидов) 9,0±0,7 / 36,6 8,7±1,0 / 25,1 8,3±0,4 / 20,9 9,8±0,4 / 44,0 9,0±0,8 / 43,0 8,1±0,2 / 40,4

Иммуноцитофит, ТАБ (без фунгицидов) 10,1±0,7 / 28,8 9,4±0,9 / 18,9 8,9±1,0 / 15,2 10,5±0,5 / 40,0 9,6±1,2 / 39,2 8,4±0,6 / 38,2

Экогель, ВР (без фунгицидов) 9,8±0,5 / 30,9 9,2±0,9 / 20,6 8,8±0,9 / 16,1 9,2±0,9 / 47,4 8,8±0,6 / 44,3 8,1±0,2 / 40,4

Салициловая кислота, Р (без фунгицидов) 11,9±1,8 / 16,1 10,2±0,7 / 12,0 9,2±0,9 / 12,3 11,4±1,5 / 34,1 9,5±1,2 / 39,8 8,7±0,9 / 36,0

НСР05 0,4 0,4 0,2 0,6 0,5 0,4

Примечание: *Я, %/БЭ, % развитие монилиоза плодов и биологическая эффективность препаратов с учетом развития болезни. производственная обработка (делан, ВГ (0,7 кг/га) 1 обработка, скор, КЭ (0,2 л/га) 2 обработки). **Баковая смесь с фунгицидами в половинных нормах расхода: делан, ВГ (0,35 кг/га) 1 обработка, скор, КЭ (0,1 л/га) 2 обработки).

CERTIFICATE OF

ACHIEVEMENT

Приложение 2

A fltech young scientist

This is to certify that

Elena Mikhaylova

placed 3rd in the Russia Undergraduate Competition in the Alltech Young Scientist Program 2014 - 2015

Dr. Pearse Lyons