Разработка иммуноферментных тест-систем для серологического мониторинга кишечных и респираторных болезней свиней тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.02, кандидат ветеринарных наук Оганесян, Андрей Серожович

• Оганесян, Андрей Серожович
• кандидат ветеринарных наук
• 2010

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Оганесян, Андрей Серожович

стр.:

1. ВВЕДЕНИЕ

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1 Инфекции смешанной этиологии у свиней.

2.2. Эпизоотическая ситуация по КРБС в странах.

2.3. Эпизоотическая ситуация по КРБС в Российской Федерации.

2.4. Энзоотическая пневмония свиней.

2.5. Репро/дуктивный и респираторный синдром свиней.

2.6. Респираторная коронавирусная инфекция свиней.

2.7. Цирковирусная инфекция свиней.

2.8. Болезнь Ауески.

2.9. Ротавирусная инфекция свиней.

2.10. Метод иммуноферментного анализа в лабораторной диагностике инфекционных заболеваний.

2.11. Эпизоотологические исследования.

2.11.1. Методы исследований в популяции.

2.11.2. Определение объёма выборки.

2.11.3. Принцип отбора проб для расчета превалентности.

2.12. Методы поиска этиологических факторов болезни.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Разработка иммуноферментных тест-систем для серологического мониторинга кишечных и респираторных болезней свиней»

Несмотря на применение таких технологий содержания, как, «пусто-занято», сегрегированный отъём поросят и другие, эпизоотическая ситуация в свиноводстве характеризуется распространением ряда инфекционных болезней, в том числе респираторно-репродуктивного синдрома свиней [17,23-25,91,113,163], цирковирусной инфекции свиней [12,31,32,43,58], гриппа свиней типа А, вызванного новыми подтипами вируса [89,122,151,162,166,183], респираторной коронавирусной инфекции свиней [3,31,55,228]. Между тем, не потеряли своей актуальности и микоплазмоз свиней [48,78,94], болезнь Ауески [8,28,114,121], ротавирусная инфекция свиней [7,15,18,27,186], классическая чума свиней [28,56,88,149,212] и трансмиссивный гастроэнтерит свиней (ТГС) [36,52,185]. Экономическая значимость таких болезней как ВБА, ТГС обусловлена высокими показателями заболеваемости и смертности, а также значительными расходами при ликвидации возникшей вспышки. Серологический мониторинг данных инфекций наиболее востребован ввиду простоты и удобства применения средств серодиагностики, а разработка методов серологической диагностики, удовлетворяющих целям ведения мониторинга весьма актуальна [5,15,19].

Для промышленного свиноводства экономическую значимость представляют не столько отдельные возбудители, как их ассоциации, при которых патогенность возбудителей проявляется в полной мере, а ущерб, вследствие прямых и косвенных потерь, порой может достигать уровня ущерба, наносимого особо опасными инфекциями [13,27,39,48,50,]. Отдельное место при всём этом занимают антропозоонозы. Настораживающими выглядят последние данные о роли ротавирусов в инфекционной патологии животных и человека. А ряд исследователей прямо указывает на необходимость строгого контроля ротавирусной инфекции среди животных, как потенциально-опасного источника ротавирусов, поражающих человека [123,125,153,172]. Таким образом, разработка диагностических тестов для ведения серологического мониторинга ротавирусной инфекции в хозяйствах является актуальным.

Большое внимание уделяется комплексу респираторных болезней свиней (КРБС) [16,17,29,30,53,117]. Считается, что данное явление имеет полиэтиологическую природу. Из возбудителей, причастных к КРБС в качестве первичного фактора патологического процесса, выступают вирусы РРСС, ЦВС-2, гриппа свиней типа A (H1N1, H3N2), РКВС, ВБА и бактериальные патогенны: Actinobacillus plenropneumoniae, Bordetella bronchiseptica [30,117]. Также, как первичный патоген, весомую долю в этиологии КРБС занимает Mycoplasma hyopneumoniae, которая вместе с несколькими второстепенными бактериальными патогенами вызывает более тяжелое заболевание - «энзоотическую пневмонию» [100].

Причина заболеваемости - основной вопрос большинства работ [22,35,51,76,87,133,183]. Вместе с тем, большинство подобных работ носит описательный характер и выполнены в полевых условиях вне прямого и/или косвенного контроля за ними со стороны исследователей, что делает доказательство причинной связи весьма трудным. Поэтому взаимосвязь причины и следствия в значительной степени спорный вопрос, требующий аналитических методов эпидемиологии [13,45,74,84,112,142,161,165,210].

Невозможность адекватного толкования этиологии конкретной эпизоотической вспышки, вызванной смешанной инфекцией, ведёт к малой эффективности проводимых мероприятий. Диагностические ошибки и низкая эффективность мероприятий по борьбе с заболеваниями, возможны не только при болезнях, сопровождаемых массовым носительством, но и в таких случаях, как наличие иммунизирующей субинфекции, смешанных и факторных инфекциях. Выход из сложившейся ситуации заключается в привлечении клинико-эпизоотологических данных при постановке диагноза по результатам лабораторного исследования и в использовании статистических методов, в частности, проведения статистически достоверного отбора проб и обеспечении количественной и качественной репрезентативности выборки [4,13,74,161,171].

В связи с вышеизложенным представляется актуальным тема диссертационной работы: «Разработка иммуноферментных тест-систем для серологического мониторинга кишечных и респираторных болезней свиней».

Цели и задачи исследования. Основной целыо исследования являлась разработка тест-систем для серологического мониторинга ротавирусной инфекции свиней и болезни Ауески и на основании серологического исследования определение степени распространения ротавирусной инфекции и возбудителей комплекса респираторных болезней (РРСС, ЦВС-2, РКВС, ГС и M.hyopneumoniae) в группах доращивания свиней в хозяйствах Центрального Федерального округа Российской Федерации (ЦФО РФ). Для достижения поставленных целей, было необходимо решить следующие задачи:

1. разработать методику для определения титра антител к возбудителю болезни Ауески в сыворотках крови свиней с помощью непрямого варианта иммуноферментного анализа (ИФА);

2. разработать методику для обнаружения антител к ротавирусу свиней в сыворотках крови с помощью непрямого варианта ИФА и установить серопревалентность ротавируса свиней в группах доращивания в хозяйствах ЦФО РФ;

3. изучить серопревалентность возбудителя репродуктивно-респираторного синдрома свиней, гриппа свиней типа A (H1N1), респираторного коронавируса свиней, цирковируса свиней 2 типа и Mycoplasma hyopneumoniae у свиней групп доращивания в хозяйствах ЦФО РФ;

4. определить основных возбудителей смешанных респираторных болезней у свиней групп доращивания в хозяйствах ЦФО РФ используя факторный анализ по Ротману [K.J.Rothman, 1976, 2005] и общую модель факторного взаимодействия в форме диаграмм Венна.

Научная новизна исследований. Разработаны отечественные методики для выявления антител к ротавирусу в сыворотках крови свиней в непрямом варианте ИФА при тестировании проб в одном разведении и по определению титра антител к вирусу болезни Ауески в сыворотках крови свиней в непрямом варианте ИФА.

Проведен анализ данных ИФА, полученных при серологическом мониторинге свинопоголовья с использованием разработанных тест-систем и сравнительная оценка результатов исследований сывороток крови свиней с использованием разработанных иммуноферментных тест-систем, реакции микронейтрализации и коммерческих иммуноферментных наборов зарубежного производства.

Определены показатели превалентности антител к возбудителям ротавирусной инфекции свиней, РРСС, РКВС, ЦВС-2, М.hyopneumoniae на репрезентативной выборке свиней групп доращивания в хозяйствах ЦФО РФ.

Впервые на репрезентативной выборке поросят групп доращивания в условиях хозяйств ЦФО РФ с использованием факторного анализа по Ротману и общей модели факторного взаимодействия определены основные возбудители смешанных респираторных болезней свиней.

Практическая значимость работы. По материалам работы подготовлены, прошли комиссионные испытания, одобрены Ученым Советом и утверждены директором ФГУ «ВНИИЗЖ» следующие методики и методические указания:

- «Методика определения титра антител к вирусу болезни Ауески в сыворотках крови свиней в непрямом варианте иммупоферментного анализа» (2006 г.)

- «Методика выявления антител к ротавирусу в сыворотках крови свиней в непрямом варианте иммуноферментного анализа при тестировании проб в одном разведении» (2007 г.)

- «Методические указания по выявлению антител к ротавирусу в сыворотках крови свиней в непрямом варианте иммуноферментного анализа при тестировании проб в одном разведении» (2008 г.)

- «Методические указания по определению титра антител к вирусу болезни Ауески в сыворотках крови свиней в непрямом варианте иммуноферментного анализа» (2008 г.)

Результаты исследований сывороток крови от репрезентативной выборки поросят групп доращивания в хозяйствах ЦФО РФ и определения основных возбудителей смешанных респираторных болезней свиней с использованием факторного анализа по Ротману и общей модели факторного взаимодействия могут быть использованы при разработке и проведении мероприятий по профилактике комплекса респираторных болезней свиней в хозяйствах ЦФО РФ.

Основные положения, выносимые на защиту:

- данные по выявлению антител к вирусу болезни Ауески в сыворотках крови свиней в разработанном непрямом варианте ИФА. Определение относительной чувствительности и специфичности разработанного варианта ИФА по сравнению с ИФА-набором CHEKIT-Aujeszky (Bommeli-IDEXX);

- дан ные по выявлению антител к ротавирусу свиней в сыворотках крови свиней с помощью разработанного непрямого варианта ИФА при тестировании проб в одном разведении. Сравнения результатов тестирования проб в коммерческом наборе Ingezim rotavirus (INGENASA, Испания) и разработанном непрямом варианте ИФА;

- результаты исследования серопревалентности ротавируса свиней в группах доращивания в хозяйствах ЦФО РФ;

- результаты серологического исследования превалентности антител к возбудителям РРСС, ГС (H1N1), РКВС, M.hyopneumoniae, ЦВС-2 в группах доращивания свиней в хозяйствах ЦФО РФ;

- результаты определения основных возбудителей смешанных респираторных болезней у свиней групп доращивания в хозяйствах ЦФО РФ с использованием факторного анализа по Ротману [K.J.Rothman, 1976, 2005] и общей модели факторного взаимодействия в форме диаграмм Венна.

Личный вклад соискателя. Диссертационная работа выполнена автором самостоятельно. Отдельные этапы исследований выполнены совместно с к.в.н. С.А. Дудниковым, к.б.н. О.П. Бъядовской, вед. биол. О.Г. Андреевой, к.б.н. С.Н. Колосовым, за что автор выражает им искреннюю благодарность.

Апробация работы. Основные результаты исследований доложены и опубликованы в материалах научных конференций: «Диагностика профилактика и лечение болезней животных» (Новосибирск, 2008), «Достижения молодых ученых в ветеринарную практику», посвященная 50-летию создания ФГУ «ВНИИЗЖ» (Владимир, 16-18 апреля 2008), а также на заседаниях учёного совета ФГУ «ВНИИЗЖ» 2005-2008 гг.

Публикация научных исследований. По теме диссертационной работы опубликованы 8 научных статей в журналах и материалах научных конференций, 4 из них в изданиях рекомендованных ВАК РФ.

Объём и структура диссертации. Диссертация изложена на 166 страницах компьютерного текста, иллюстрирована 24 таблицами и 14 рисунками. Список литературы включает 235 источников, в том числе 183 -иностранных.

2 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Заключение диссертации по теме «Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов», Оганесян, Андрей Серожович

5. Результаты исследования 847 проб сыворотки крови свиней групп доращивания хозяйств ЦФО РФ свидетельствуют, что 84,2% (712 животных) были серопозитивными к исследуемым возбудителям (РРСС, ЦВС-2, РКВС, М. hyopneumoniae).

6. Установлено, что серопозитивность свиней групп доращивания к РРСС, М. hyopneumoniae, ЦВС-2, или РКВС наблюдалась у 36,52% животных в виде моноинфекции, а у 63,48% серопозитивных животных в виде смешанной инфекции.

7. Ведущими агентами в комплексе респираторных болезней свиней групп доращивания в хозяйствах ЦФО РФ являются: ЦВС-2 (31,2%), РРСС (27,2%) и РКВС (25,2%), роль M.hyopneumoniae менее значима (16,4%), а гриппа свиней типа A (H1N1) несущественна.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Для практического использования предлагаются:

- «Методика определения титра антител к вирусу болезни Ауески в сыворотках крови свиней в непрямом варианте иммуноферментного анализа»,

- «Методика выявления антител к ротавирусу в сыворотках крови свиней в непрямом варианте иммуноферментного анализа при тестировании проб в одном разведении»,

- «Методические указания по определению титра антител к вирусу болезни Ауески в сыворотках крови свиней в непрямом варианте иммуноферментного анализа»,

- «Методические указания по выявлению антител к ротавирусу в сыворотках крови свиней в непрямом варианте иммуноферментного анализа при тестировании проб в одном разведении».

- Результаты серологических исследований репрезентативной выборки свиней групп доращивания в хозяйствах ЦФО РФ и результаты определения основных возбудителей смешанных респираторных болезней свиней с использованием факторного анализа по K.J.Rothman и общей модели факторного взаимодействия могут быть использованы при разработке и проведении мероприятий по профилактике комплекса респираторных болезней свиней в хозяйствах ЦФО РФ.

135

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Оганесян, Андрей Серожович, 2010 год

1. Антитела. Методы: пер. с англ. / Д. Кэтти и др.; под ред. Д. Кэтти.-М.: Мир, 1991.-382 с.

2. Апатенко В.М. Вирусные инфекции сельскохозяйственных животных. Харьков.: ХЗВИ, 1996.- 224с.

3. Байбиков Т.З., Пузанкова О.С., Кукушкин С.А. Коронавирусные инфекции свиней // Ветеринария с.-х. животных. 2008. - N 8. - С. 2830.

4. Беляков В.Д., Дегтярев А.А., Иванников Ю.Г. Качество и эффективность противоэпидемических мероприятий. — Д.: Медицина, 1981.-304 с.

5. Белянко JI.B., Савельева Т.А. Ротавирусный гастроэнтерит свиней и его лабораторная диагностика // Вет. наука производству: ведом, сб. — Минск, 1996. Вып. 29. - С. 4-5.

6. Болезнь Ауески: эпизоотическая ситуация и современная система мер борьбы / А.А. Коломыцев, А.А. Стрижаков, В.М. Котляров и др. // Всерос. науч.-исслед. ин-т ветеринар, вирусологии и микробиологии. -Покров, 2004. С. 134-145.

7. Вирусные болезни животных / В.Н. Сюрин, А .Я. Самуйленко, Б.В. Соловьёв, Н.В. Фомина М.: ВНИТНБП, 1998.- 928с.

8. Власов В.В. Эпидемиология: учебное пособие- 2-е изд., испр. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2006,- 464 с.

9. Вспышка РРСС на свинокомплексе промышленного типа / В.В. Куриннов, Н.И. Бунькова, Е.А. Балашова и др. // Ветеринария. -2007.-№8.-С. 17-21.

10. П.Гусева Е.В., Ануфриева Т.А., Мамкова Р.В. Трансмиссивный гастроэнтерит свиней Владимир: «ВНИИЗЖ», 1993. - 18 с.

11. Дудников С.А. Количественная эпизоотология: основы прикладной эпидемиологии и биостатистики Владимир: Демиург, 2004. - 460 с.

12. Дудников С.А. Эпизоотологическая методология. Отбор проб при эпизоотологических исследованиях (биометрический подход к планированию отбора проб для исследования) Владимир: ОКНИИ и МС, 2002. -56 с.

13. Егорова А.И., Ерофеев С.Г. Ротавирусная инфекция свиней // Ветеринария. 2002.-№7-С.16-19.16.3еленуха Е.А., Гречухин А.Н. Мероприятия при респираторных болезнях свиней в промышленных комплексах // Ветеринария. 2006. -№ 5.- С. 13-15.

14. Изучение респираторных болезней свиней в свиноводческих хозяйствах России / С.А. Кукушкин, Т.З. Байбиков, A.M. Тимина, и др. // Российский ветеринарный журнал. 2008. -№ 3. - С. 55-57.

15. Инфекционная патология животных: в 2т. Т. 1/ под ред. А .Я. Самуйленко, Б.В. Соловьева, Е.А. Непоклонова, Е.С. Воронина.- М.: ИКЦ «Академкнига», 2006. 191.1 с.

16. Инфекционная патология животных: в 2 т. Т.2 / под ред. А .Я. Самуйленко, Б.В. Соловьева, Е.А. Непоклонова, Е.С. Воронина и др.- М.: ИКЦ «Академкнига», 2006. 807 с.

17. Использование принципов аналитической эпизоотологии в ветеринарной практике / А.К. Караулов, С.А. Дудников, К.П. Николаева, В.М. Гуленкин // Тр.Федерального центра охраны здоровья животных. Владимир, 2005. - Т.З. - С. 73-84.

18. Кукушкин С.А. Эпизоотология и меры борьбы с репродуктивно-респираторным синдромом свиней в мире и в Российской Федерации // Вет.патология. 2006. - N 4. - С. 89-95.

19. Кукушкин С.А., Байбиков Т.З., Курман И.Я. Особенности течения репродуктивно-респираторного синдрома свиней в хозяйствах разного типа // Достижения молодых ученых в вет.практику. -Владимир, 2000. - С. 51-57.

20. Кукушкин С.А., Байбиков Т.З., Яременко Н.А. Эпизоотология и специфическая профилактика РРСС // Ветеринария. 2004. - № 2. - С. 19-21.

21. Макаров В.В. Избранные вопросы общей эпизоотологии и инфектологии: монография. М.: Изд-во РУДН, 1999. - 194 с.

22. Мониторинг инфекционных болезней среди диких кабанов/А.В. Щербаков, С.А. Кукушкин, A.M. Тимина, и др. // Вопр. вирусологии.- 2007. Т.52, N 3. - С. 29-33.

23. Моно- и смешанные инфекционные диареи новорожденных телят и поросят / Х.З. Гаффаров, А.В. Иванов, Е.А. Непоклонов, А.З. Равилов.- Казань: Изд-во «Фен», 2002. — 592 с.

24. Свиноводство. 2007. - №3. - С. 47-49. 32.0рлянкин Б.Г. Цирковирусные болезни свиней // Пром. и плем. Свиноводство. - 2007. - №2. - С. 41-46.

25. По дольная М.А., Кобринский Б. А. Показатели и методика расчета эпидемиологических характеристик риска // Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2000.- N6. - С. 52-54.

26. Практическая химия белка /под ред. А.Дарбре.- М.:Мир.- 1989.- 621 с.

27. Пролиферативно-некротизирующая пневмония свиней / С.А. Кукушкин, Т.З. Байбиков, В.Ф. Ковалишин, и др. // Ветеринария. -2005. -№ 9. С. 17-20.

28. Репродуктивно-респираторный синдром свиней / Т.З. Байбиков, А.А. Гусев, Н.А. Яременко, и др. //Ветеринария. 2001. - № 3. - С. 18-23.

29. Серомониторинг инфекционных болезней среди диких кабанов в Центральном Федеральном округе России / С.А. Кукушкин, Т.З.

30. Байбиков, A.M. Тимина и др. // Тр. Федер. центра охраны здоровья животных. Владимир, 2006. - Т.4. - С. 233-240.

31. Сидорчук А.А., Воронин Е.С., Глушков А.А. Общая эпизоотология.-М.:Колосс, 2004.-176 с.

32. Смешанное течение РРСС и пастереллеза в экспериментальных условиях / С.А. Кукушкин, И .Я. Курман, Т.З. Байбиков, и др. // Актуал. пробл. болезней молодняка в соврем; условиях. Воронеж, 2002. - С. 362-364.

33. Теория и практика иммуноферментного анализа / A.M. Егоров, А.П. Осипов, Б.Б. Дзантиев, Е.М. Гаврилова. М.: Высшая школа, 1991. -288 с.

34. Тимина A.M. Разработка методов лабораторной диагностики цирковирусной инфекции свиней Мультиплексная ПЦР.: автореф. дис. на соиск. учен. степ. канд. ветеринар, наук- Владимир, 2006,- 27 с.

35. Урбан В.П., Найманов И.Л. Болезни молодняка в промышленном животноводстве.- М.: Колос, 1984. 207 с.

36. Флетчер Р., Флетчер С., Вагнер Э. Клиническая эпидемиология. Основы доказательной медицины.: пер. с англ. / под ред. С.Е. Бащинского, С.Ю. Варшавского — М.: Медиа-Сфера, 1998. 352 с.

37. Чермашенцев В.И., К укушкин С.А., Байбиков Т.З. // Ветеринарная жизнь 2006. - № 13. - С. 23-35.

38. Чермашенцев В.И., Кукушкин С.А., Байбиков Т.З. Профилактика репродуктивно-респираторного синдрома свиней // Пром. и плем. свиноводство. — 2007. N 5. - С. 67-69.

39. Шахов А., Ануфриев А., Ануфриев П. Факторные инфекции свиней // Животноводство России. 2004. - № 3. - С. 22-24.

40. Шитиков В.К., Розенберг Г.С., Зинченко Т.Д. Количественная гидроэкология: методы системной идентификации — Тольятти: ИЭВБ РАИ, 2003.-463 с.

41. Эпизоотологический метод исследования: учебное пособие/В.В. Макаров, А.В. Святковский, В.А. Кузьмин, О.И. Сухарев СПб.: Издательство «Лань», 2009. — 224 с.

42. Этиологическая структура инфекционных болезней свиней в животноводческих хозяйствах России / А.В. Щербаков, В.Ф. Ковалишин, А.С. Яковлева и др. // Актуал.пробл.инфекц.патологии животных. Владимир, 2003. - С. 146-150.

43. Ясгребов А.С., Белянко JI.B., Бычковский А.М Вирусный трансмиссивный гастроэнтерит в свиноводческих хозяйствах Белоруссии // Вет. наука произв.: ведом.сб.- Минск, 1996.- Вып. 29 -С. 8-12.

44. A longitudinal study of serological patterns of respiratory infections in nine infected Danish swine herds / M.Andreasen, J.P.Nielsen, P.Baekbo et al. // Prev.Vet.Med. 2000. Vol.45, N 3-4. - P. 221-235.

45. A serodiagnostic ELISA using recombinant antigen of swine transmissible gastroenteritis virus nucleoprotein / C. Liu, T. Kokuho, T. Cubota et al. // J. Vet. Med. Sci. -2001. Vol. 63, N 11.-P. 1253-1256.

46. A sero-epizootiological study of porcine respiratory coronavirus in Belgian swine/ M. Pensaert, E. Cox, K. Van Deun, P. Callebaut // Vet. Q. -1993.-Vol. 15, N l.-P. 16-20.

47. A simplified general method for cluster sample surveys of health in developing countries / S. Bennett, T. Woods, W. Liyanage, D. Smith // WHO Statistics Quarterly. 1991. Vol.44. - P. 98-106.

48. Allan G.M., Ellis J.A. Porcine circoviruses: a review // J. Vet. Diagn. Invest. 2000. - Vol. 12. - P. 3-14.

49. An exploratory study on risk factors for postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS) in Spain / S. Lopez-Soria, J. Segales, N. Rose et al. // Prev. Vet. Med. 2005. - Vol. 69. - P. 97-107.

50. Analysis of sampling strategies to substantiate freedom from disease in large areas / M. Ziller, T. Selhorst, J. Teuffert et al. // Prev. Vet. Med. -2002. Vol. 52. - P. 333-343.

51. Andreasen M., Mousing J., Thomsen L.K. No simple association between time elapsed from seroconversion until slaughter and the extent of lung lesions in Danish swine // Prev. Vet. Med. 2001. Vol.52, N 2. - P. 147161.

52. Application of enzyme-linked immunosorbent assay for the surveillance of Mycoplasma hyopneumoniae infection in pigs / V. Sorensen, K. Barfod, N.C. Feld, L. Vraa-Andersen //Rev.Sci.Tech.Off.Int.Epiz. 1993. Vol. 12. -P. 593-604.

53. Assessing the duration of persistence and shedding of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in a large population of breeding-age gilts / L. Batista, S.A. Dee, K.D. Rossow et al. // Can. J. Vet. Res. 2002. -Vol. 66.-P. 196-200.

54. Babiuk L.A, Lawman M.J., Ohmann H.B. Viral-bacterial synergistic interaction in respiratory disease // Adv. Virus Res. 1988. - Vol. 35 - P. 219-249.

55. Barnett M.L., Hyman J.J. Challenges in interpreting study results: The conflict between appearance and reality // J. Am. Dent. Assoc. — 2006. -Vol.137.-P. 32-36.

56. Beskow P., Norqvist M., Wallgren P. Relationships between selected climatic factors in fattening units and their influence on the development of respiratory diseases in swine // Acta veter.scand. 1998. Vol.39, N 1. - P. 49-60.

57. Bican J., Svoboda M., Drabek J. Porcine Parvovirus Infection in Boars in the Czech Republic // Acta Vet. Brno. 2002. - Vol. 71. - P. 45-49.

58. Borgdorff M.W., Walker G. Estimating vaccination coverage: routine information or sample survey? // J. of Tropical Pediatrics. 1998. -Vol. 91.-P. 35-42.

59. Brandtzaeg P. Induction of secretory immunity and memory at mucosal surfaces // Vaccine. 2007. - Vol. 25. - P. 5467-5484.

60. Burch D. Porcine circovirus vaccines — where are we? // Pig Progress. — 2008.-Vol. 24. N6.-P. 7-9.

61. Calsamiglia M., Pijoan C. Colonisation state and colostral immunity to Mycoplasma hyopneumoniae of different parity sows // Vet. Rec. 2000. Vol. 146.-P. 530-532.

62. Calsamiglia M., Pijoan C., Trigo A. Application of a nested polymerase chain reaction assay to detect Mycoplasma hyopneumoniae from nasal swabs // J.Vet.Diagn.Invest. 1999. Vol.11. - P. 246-251.

63. Cameron A.R. Survey Toolbox A Practical Manual and Software Package for Active Surveillance of Livestock Diseases in Developing Countries: Monograph № 54. - Australian Centre for International Agricultural Research (ACIAR), 1999. - 330 p.

64. Choi С., Chae С. Colocalization of Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Vims and Porcine Circovirus 2 in Porcine Dermatitis and Nephropathy Syndrome by Double-Labeling Technique // Vet. Pathol. -2001.-Vol. 38, N. 4.-P. 436-441.

65. Choi Y.K., Goyal S.M., Joo H. S. Retrospective analysis of etiologic agents associated with respiratory diseases in pigs // Can. Vet. Journal. 2003. -Vol. 44.-P. 735-737.

66. Christensen N.H. Evaluation of the effects of enzootic pneumonia in pigs on weight gain and days to slaughter under New Zealand conditions. // N.Z.veter.J. 1995. Vol.43,N 4. - P. 146-148.

67. Cleveland-Nielsen A., Nielsen E.O., Ersboll A.K. Chronic pleuritis in Danish slaughter pig herds // Prev. Vet. Med. 2002. - Vol. 55. - P. 121135.

68. Coinfection by porcine circoviruses and porcine parvovirus in pigs with naturally acquired postweaning multisystemic wasting syndrome / J.A. Ellis, A. Bratanich, E.G. Clark et al. // J.Vet. Diagn. Invest. 2000. -Vol. 12.-P. 21-27.

69. Comparison of the sensitivity of two ELISA systems for detection ofantibodies to Mycoplasma hyopneumoniae in naturally infected pigs / P.i

70. Wallgren, O. Schwan, S. Mattson, G. Bolske // Proceedings of the 14th International Pig Veterinary Society congress.: Bologna, Italy, July 7-10, 1996. -217 p.

71. Comparison of transmission of Mycoplasma hyopneumoniae in vaccinated and non-vaccinated populations / T. Meyns, J. Dewulf, A. de Kruift, et al. // Vaccine. 2006. - Vol. 24. - P. 7081 -7086.

72. Concepts for risk-based surveillance in the field of veterinary medicine and veterinary public health: Review of current approaches / K. D. C.Stark, G. Regula, J. Hernandez et al. // BMC Health Services Research. 2006. -Vol. 6, N20-P. 1-8.

73. Cytokine Responses in Porcine Respiratory Coronavirus-Infected Pigs Treated with Corticosteroids as a Model for Severe Acute Respiratory Syndrome / X. Zhang, K. Alekseev, K. Jung, et al. // J. Virol. 2008. -Vol. 82, N 9. - P. 4420-4428.

74. Demonstrating freedom from disease using multiple complex data sources 2: Case study—Classical swine fever in Denmark / P. A. J. Martin, A.R. Cameron, K. Barfod, et al. // Prev. Vet. Med. 2007. - Vol. 79. - P. 98115.

75. Development of an ELISA to differentiate between animals either vaccinated with or infected by Aujeszkys disease virus / M. Eloit, D.

76. Fargeaud, P.Vannier, В. Toma // Veter. Rec. 1989. - Vol. 124, N 4. - P. 91-94.

77. Dewey C. PRRS in North America, Latin America, and Asia // Vet. Res. -2000.-Vol. 31.-P. 84-85.

78. Diseases in swine transmitted by artificial insemination: An overview / D. Maes, H. Nauwynck, T. Rijsselaere, et al. // Theriogenology 2008. -Vol. 70.-P. 1337-1345.

79. Duration of Infection and Proportion of Pigs Persistently Infected with Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus / R.W. Wills, A.R. Doster, J.A. Galeota et al. // J. Clin. Microbiol. 2003. - Vol. 41, N 1. -P. 58-62.

80. Dynamics of Mycoplasma hyopneumoniae infection in 12 farms with different production systems / M. Sibila, M. Calsamiglia, D. Vidal et al. // Can.J.Vet.Res. -2004. Vol.68, N 1.- P. 12-18.

81. Dynamics of Mycoplasma hyopneumoniae infection in farms / M. Calsamiglia, M. Sibila, D. Vidal et al. // Can.J.Vet.Res. 2004. - Vol.69, N 1. - P. 35-38.

82. Effect of Mycoplasma hyopneumoniae colonization at weaning on disease severity in growing pigs / E. Fano, C. Pijoan, S. Dee, J. Deen // Can. J. Vet. Res.- 2007. Vol. 71. - P. 195-200.

83. Effect of porcine respiratory coronavirus infection on lipopolysaccharide recognition proteins and haptoglobin levels in the lungs / S. Van Gucht, K.

84. Atanasova, F. Barbe et al. //Microbes and Infection. 2006. - Vol. 8. — P. 1492-1501.

85. Enzootic pneumonia in pigs / D. Maes, M. Verdonck, H. Deluyker, A. de Kruif// Vet. Q. 1996.-N 18.-P. 104-109.

86. Epidemiologic assessment of porcine circovirus type 2 coinfection with other pathogens in swine / P. M. Dorr, R. B. Baker, G. W. Almond et al. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 2007. - Vol. 230, N 2. - P. 244-250.

87. Evaluation of a standardized survey design for use in epidemiological research on AIDS / D.R. Harris, S. Lemeshow, S.K. Lwanga, et al. // Int. J. Epidemiol. 1991.-Vol. 20.-P. 1048-1056.

88. Experimental dual infection of pigs with an H1N1 swine influenza virus (A/Sw/Hok/2/81) and Mycoplasma hyopneumoniae / S. Yazawa, M. Okada, M Ono et al. 11 Vet. Microbiol. 2004. - Vol. 98. - P. 221-228.

89. Experimental Reproduction of Postweaning Multisystemic Wasting Syndrome in Pigs by Dual Infection with Mycoplasma hyopneumoniae and Porcine Circovirus Type 2 / T. Opriessnig, E.L. Thacker, S. Yu et al. // Vet. Pathol. 2004. - Vol. 41. - P. 624-640.

90. Exploratory field study on Mycoplasma hyopneumoniae infection in suckling pigs / M. Sibila, M. Nofrarias, S. Lopez-Soria, et al. // Vet. Microbiol.-2007.-Vol. 121.-P. 352-356.

91. Factors affecting sensitivity and specificity of pooled-sample testing for diagnosis of low prevalence infections / C. Munoz-Zanzi, M. Thurmond, S. Hietala , W. Johnson // Prev. Vet. Med. 2006. - Vol. 74. -P. 309-322.

92. Factors affecting the transfer of porcine parvovirus antibodies from sow to piglets / B.I. Damm, N.C. Friggens, J. Nielsen, et al. // J. Vet. Med. A Physiol. Pathol. Clin. Med. 2002. - Vol. 49, N 9. - P. 487-495.

93. Factors associated with morbidity and mortality in feedlot calves: the Bruce County beef project, year two / S.W. Martin, A.H. Meek, D.G. Davis, et al.//Can. J. Сотр. Med. 1981. - Vol. 45, N2.-P. 103-112.

94. Fano E., Pijoan C. Dynamics and persistence of M.hyopneumoniae infection in pigs // Can. J. Vet. Res. 2005. - Vol. 69, N 3. - P. 223-228.

95. Frerichs R.R., Tar-Tar K. Use of rapid survey methodology to determine immunization coverage in rural Burma // Journal of Tropical Pediatrics. 1988. - Vol. 34. - P. 125-130.

96. General overview ofPRRSV: a perspective from the United States / J.J. Zimmerman, K.-J. Yoon, R.W. Wills, S.L. Swenson // Vet.Microbiol. -1997. Vol. 55, N (1-4). - P. 187-196.

97. Greenland S., Brumback B. An overview of relations among causal modeling methods // Int.J. Epimiol. 2002. - Vol.31. - P. 1030-1037.

98. Greiner M., Dekker A. On the surveillance for animal diseases in small herds // Prev. Vet. Med. 2005. - Vol. 70. - P. 223-234.

99. Halbur P.G. Porcine respiratory disease // Proc. Int. Pig Vet.Soc. Congr.: 1998.- 15 - P. 1-9.

100. Harris R.E., Charleston W.A.G An examination of the march microhabitats of Lymnoea tomentose and L.columella (Mollusca: Gastropoda) by path analysis // N.Z.J. Zool. 1977. - Vol. 4 - P. 395-399.

101. Health surveys in developing countriesrthe objectives and design of an international programme / Timaeus I., Harpham Т., Price M., Gilson L. // Social Science in Medicine. 1988. - Vol.27, N4. - P. 359-368.

102. Heinen P.P., de Boer-Luijtze E.A., Bianchi A.T.J. Respiratory and systemic humoral and cellular immune responses of pigs to a heterosubtypic influenza A virus infection // Journal of General Virology. -2001.-Vol. 82.-P. 2697-2707.

103. Herd factors associated with the seroprevalences of four major respiratory pathogens in slaughter pigs from farrow-to-finish pig herds / D. Maes, H. Deluyker, M. Verdonck et al. // Vet. Res. 2000,- Vol. 31. - P. 313-327.

104. Herd-level seroprevalence of swine-influenza virus in Korea / T. Jung, C. Choi, H.K. Chung et al. // Prev. Vet. Med. 2002. - Vol. 53. - P. 311314.

105. Human, porcine and bovine rotaviruses in Slovenia: evidence of interspecies transmission and genome reassortment / A. Steyer, M. Poljsak-Prijatelj, D. Barlic-Maganja, J. Marin // Journal of General Virology. -2008. -Vol. 89. P. 1690-1698.

106. Humphry R.W., Cameron A., Gunn G.J. A practical approach to calculate sample size for herd prevalence surveys // Prev. Vet. Med. -2004. Vol. 65. - P. 173-188.

107. Identification of Group A Porcine Rotavirus Strains Bearing a Novel VP4 (P) Genotype in Italian Swine Herds / V. Martella, M. Ciarlet, K. Banyai et al. //J. of Clin. Microbiol. Feb. 2007. - Vol. 45, N 2. - P. 577580.

108. Isolation and characterisation of circoviruses from pigs with wasting syndromes in Spain, Denmark and Northern Ireland / G.M. Allan, F. McNeilly, B.M. Meehan, et al. // Vet. Microbiol. 1999. - Vol. 66. - P. 115-123.

109. Isolation of porcine circovirus-like viruses from pigs with a wasting disease i n the United States of America and Europe / G.M. Allan, F. McNeilly, S. Kennedy, et al. // J. Vet. Diagn. Invest. 1998. - Vol. 10. -P. 3-10.

110. Isolation of porcine respiratory coronavirus from pigs affected with porcine reproductive and respiratory syndrome / O. Kamogawa, Y. Tomita, M. Kaneko, S. Yamada. et al. // J. Vet. Med. Sci. 1996. - Vol. 58, N 4. -P. 385-388.

111. Jakobson R.LI. Validation of serological assays for diagnosis of infectious diseases // Rev.Sci. Techn. OIE. 1998. - Vol. 17, N2. - P.469-486.

112. Jasbir S., Nisha T.G., Choo P.Y. Porcine Circovirus Type 2 in Malaysian Pigs Recent Findings // The 19th Veterinary Association Malaysia Congress, 3-5 August 2007 - P. 109 - 111.

113. Kamakawa A., H.T.V. Thu, Yamada S. Epidemiological survey of viral diseases of pigs in the Mekong delta of Vietnam between 1999 and 2003 // Vet. Microbiol. 2006. - Vol. 118. - P. 47-56.

114. Kim J., Chae C. Simultaneous detection of porcine circovirus 2 and porcine parvovirus in naturally and experimentally coinfected pigs by double in situ hybridization // J. Vet. Diagn. Invest. 2002. - Vol. 14. - P. 236-240.

115. Kim J., Choi C., Chae C. Pathogenesis of Postvveaning Multisystemic Wasting Syndrome Reproduced by Co-infection with Korean Isolates of Porcine Circovirus 2 and Porcine Parvovirus // Сотр. Path. 2003. - Vol. 128.-P. 52-59.

116. Kim J., Chung H.-K., Chae C. Association of porcine circovirus 2 with porcine respiratory disease complex // The Vet. Journal. 2003. - Vol. 166. - P. 251-256.

117. Kish L., Hess I. On variances of ratios and their differences in multistage samples // Journal of the American Statistical Association -1959. -N. 54. P. 416-446.

118. Kobisch M., Blanchard В., Le Potier M.F. Mycoplasma hyopneumoniae infection in pigs: Duration of the disease and resistance to reinfection // Veter.Res. 1993. Vol.24, N 1. - P. 67-77.

119. Kok P.W. Cluster sampling for immunization coverage // Soc. Sci. Med. 1986.-Vol. 22, N7.-P. 781-783.

120. Kundi M. Causality and the interpretation of epidemiologic evidence // Environmental Health Perspectives. 2006. - Vol. 114, N 7. - P. -969974.

121. Lanza I., Brown I.H., Paton D.J. Pathogenicity of concurrent infection of pigs with porcine respiratory coronavirus and swine influenza virus // Res. Vet. Sci. 1992. - Vol.53, N 3. - P. 309-314.

122. Larochelle R., Magar R., D'Allaire S. Comparative serologic and virologic study of commercial swine herds with and without postweaning multisystemic wasting syndrome // Can. J. Vet. Res. — 2003. Vol. 67. - P. 114-120.

123. Laude H., Van Reeth K., Pensaert M. Porcine respiratory coronavirus: molecular features and virus-host interactions // Vet. Res. 1993. - Vol.24, N2.-P. 125-150.

124. Lemeshow S., Robinson D. Surveys to measure programme coverage and impact: a review of the methodology used by the expanded programme on immunization // World Health Statistics Quarterly. 1985. - Vol. 38. -P. 65-75.

125. Lindman H. R. Analysis of variance in complex experimental designs San Francisco.: W. H. Freeman & Co., 1974. - 297 p.

126. Long-term monitoring of classical swine fever in wild boar (Sus scrofa sp.) using serological data / S. Rossi, M. Artois, D. Pontier et al. // Vet. Res. 2005. - Vol. 36. - P. 27-42.

127. Lwanga S.K., Abiprojo N. Immunization coverage surveys: Methodological studies in Indonesia // Bulletin of the World Health Organization. 1987. - Vol. 65. - P. 847-853.

128. Markowska-Daniel I., Stankevicius A. Seroprevalence of antibodies against swine influenza virus in pigs of different age // Bull. Vet. Inst. Pulawy. 2005. - Vol. 49, N 1. - P. 3-7.

129. Mengeling W.L. Prenatal Infection Following Maternal Exposure to Porcine Parvovirus on Either the Seventh or Fourteenth Day of Gestation // Can. J. Сотр. Med. 1979. - Vol. 43. - P. 106-109.

130. Molecular Characterizations of Human and Animal Group A Rotaviruses in The Netherlands / R. van der Heide, M.P.G. Koopmans, N. Shekary et al. // J. Clin. Microbiol. 2005. - Vol. 43, N 2. - P. 669-675.

131. Moreau I.A., Miller G.Y., Bahnson P.B. Effects of Mycoplasma hyopneumoniae vaccine on pigs naturally infected with M. hyopneumoniae and porcine reproductive and respiratory syndrome virus // Vaccine. — 2004. Vol. 22. - P. 2328-2333.

132. Mycoplasma hyopneumoniae infection in pigs: duration of the disease and evaluation of four diagnostic assays/ V. Sorensen, P. Ahrens, K. Barfod et al. // Vet. Microbiol. 1997. - Vol. 54. - P. 23-341

133. Mycoplasma hyopneumoniae interaction with other agents in pigs, and evaluation of immunogens / A.Ciprian, T.A. Cruz, M. de la Garza et al. // Arch. Med. Res. 1994. - Vol.25, N.2. - P. 235-239.

134. Mycoplasma hyopneumoniae p65 surface lipoprotein is a lipolytic enzyme with a preference for shorter-chain fatty acids / J.A. Schmidt, G.F. Browning, P.F. Markham et al. // J. Bacteriol.- 2004. Vol. 186 (17). -P. 5790-5798.

135. Mycoplasma hyopneumoniae Potentiation of Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus-Induced Pneumonia / E.L. Thacker, P.G. Halbur, R.F. Ross et al. // Journal of clinical microbiology. 1999. - Vol. 37, N3.-P. 620-627.

136. Myint Т., Htoon M.T., Shwe T. Estimation of leprosy prevalence in Bago and Kawa Townships using two-stage probability proportionate tosize sampling techniques // Int. J. Epidemiol. — 1992. — Vol. 21, N 4. — P. 778-783.

137. Natural infection with the porcine respiratory coronavirus induces protective lactogenic immunity against transmissible gastroenteritis / S. Bernard, E. Bottreau, J.M. Aynaud et al. // Vet. Microbiol. 1989. -Vol.21, N 1.-P. 1-8.

138. Norell S.E. Workbook of Epidemiology. New York: Oxford Univ. Press, 1995.-317 p.

139. Novel reassortant of swine influenza H1N2 virus in Germany / R. Zell, S. Motzke, A. Krumbholz ct al. // J. Gener. Virol. 2008. - Vol. 89. -P. 271-276.

140. Ohlinger V.F., Pesch S., Bischoff C. History, occurrence, dynamics and current status of PRRS in Europe // Vet. Res. 2000. - Vol. 31. - P. 86-87.

141. Oral immunization induccs local and distant mucosal immunity in swine / K. Hyland, D.L. Foss, C.R. Johnsona, M.P. Murtaugha // Vet. Immunol, and Immunopathol. 2004. - Vol. 102. - P. 329-338.

142. Parascandola M., Weed D.L. Causation in epidemiology // J. Epidemiol. Community Health-2001. Vol. 55. - P. 905-912.

143. Pasma T. Spatial epidemiology of an H3N2 swine influenza outbreak. // Can. Vet. J. 2008. - Vol. 49. - P. 167-176.

144. Passive Transfer of Maternal Mycoplasma hyopneumoniae-Specific Cellular Immunity to Piglets / M. Bandrick, M. Pieters, C. Pijoan, T.W. Molitor // Clin. Vaccine Immunol. 2008. - Vol. 15, N 3. - P. 540-543.

145. Pathogenicity of three isolates of porcine respiratory coronavirus in the USA / P.G. Halbur, T. Opriessnig, F. J. Pallares et al. // The Veterinary Record. 2003. - Vol. 152, Is. 12. - P. 358-361.

146. Penzes Z., Meszaros I. Comparison of different computational methods for measuring antibodies to avian Infectious bronchitis virus in single serum dilution // Acta. Vet. Hungarica.-1992.-Vol.40.-P.311-321.

147. Phylogenetic analysis of porcine rotavirus in Argentina: Increasing diversity of G4 strains and evidence of interspecies transmission / G.I. Parra, G. Vidales, J.A. Gomez et al. // Vet. Microbiology. 2008. - Vol. 126.-P. 243-250.

148. Piffer I.A., Ross R.F. Effect of age on susceptibility of pigs to Mycoplasma hyopneumoniae pneumonia // Am.J.Vet.Res. 1984. - Vol. 45, N3.-P. 478-481.

149. Pig and herd level prevalence of Toxoplasma gondii in Ontario finisher pigs in 2001, 2003, and 2004 / Z. Poljak, C.E. Dewey, R.M. Friendship et al. // The Can. J. of Vet. Res. 2008. - Vol. 72. - P. 303310.

150. PMWS: experimental model and co-infections / G.M. Allan, F. McNeilly, S. Krakowka et al. // Vet. Microbiology 2004. - Vol. 98. - P. 165-168.

151. Porcine circovirus-2 and concurrent infections in the field / J. Ellis, E. Clark, D. Haines et al. // Vet. Microbiol. 2004. - Vol. 98. - P. 159-163.

152. Porcine circovirus-2 inclusion bodies in pulmonary and renal epithelial cells / Y.Y. Huang, I. Walther, S.A. Martinson et al. // Vet.Pathol.-2008. Vol. 45, N.5. - P. 640-644.

153. Porcine pararotavirus: detection, differentiation from rotavirus, and pathogenesis in gnotobiotic pigs / E.H. Bohl, L.J. Saif, K.W.A. Theil et al. // J.Clin.Microbiol. 1982. - Vol. 15. - P. 312-319.

154. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus: a persistent infection / R.W. Wills, J.J. Zimmerman, K.J. Yoon et al. // Vet. Microbiol. 1997. - Vol. 55, N (1-4). - P. 231-240.

155. Postweaning mortality in Manitoba swine / C.E. Dewey, W.T. Johnston, L. Gould, T.L. Whiting // Can.J.Vet.Res. 2006. - Vol.70 - P. 161-167.

156. Prevalence of and risk factors for influenza in southern Ontario swine herds in 2001 and 2003 / Z. Poljak, C.E. Dewey, S.W. Martin, et al. // Can.J.Vet.Res. 2008.- Vol. 72. - P. 7-17.

157. Prevalence of Antibodies to Porcine Parvovirus in Wild Boars (Sus scrofa) in Croatia / B. Roic, S. Cajavec, J. Toncic, et al. // Journal of Wildlife Diseases. 2005. - Vol. 41, N4. - P. 796-799.

158. Prevalence of coronavirus antibodies in Iowa swine / R.D. Wesley, R.D. Woods, J.D. McKean et al. // Can.J.Vet.Res. 1997. - Vol. 61, N 4. -P. 305-308.

159. Prevalence of group С rotaviruses in weaning and post-weaning pigs with enteritis / V. Martella, K. Banyai, E. Lorusso et al. // Vet. Microbiol. 2007. - Vol. 123. - P. 26-33.

160. Prevalence of PCV2 in Austrian and German boars and semen used for artificial insemination / F. Schmoll, C. Lang, A.S. Steinrigl, et al. // Theriogenology 2008. - Vol. 69. - P. 814-821.

161. Redman D.R., Bohl E.H., Ferguson L.C. Porcine Parvovirus: Natural and Experimental Infections of the Porcine Fetus and Prevalence In Mature Swine // Infection and Immunity. 1974,- Vol. 10, N 4. - P. 718-723.

162. Relationships among seroconversion to Mycoplasma hyopneumoniae, lung lesions, and production parameters in pigs / M. Sitjar, E.P. Noyes, X. Simon, C. Pijoan // Swine Health Prod. 1996. - Vol. 4. - P. 273-277.

163. Renton A. Epidemiology and causation: a realist view.// J. Epidemiol. Community Health- 1994. Vol. 48. - P. 79-85.

164. Risk factors for infection of sow herds with porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) virus / S. Mortensen, H. Stryhn, R. Sogaard, et al. // Prev. Vet. Med. 2002. - Vol. 53, Iss. 1-2. - P. 83-101.

165. Risk factors for porcine post-weaning multisystemic wasting syndrome in 149 French farrow-to-finish herds / N. Rose, G. Larour, G. Le Diguerher et al. // Prev.Vet.Med. -2003. Vol. 61. - P. 209-225.

166. Risk-based design of repeated surveys for the documentation of freedom from non-highly contagious diseases / D.C. Hadorn, J. Rufenacht, R. Hauser, K.D.C. Stark // Prev.Vet.Med. 2002. - Vol. 56. - P. 179-192.

167. Rose N., Madec F. Occurrence of respiratory disease outbreaks in fattening pigs: Relation with the features of a densely and a sparsely populated pig area in France // Vet. Res. 2002. - Vol. 33. - P. 179-190.

168. Ross R.F. Mycoplasmal diseases. In Straw et al. (eds.) Diseases of swine // Iowa State University Press, Ames 1999. P. 495-509.

169. Rothman K.J., Greenland S. Causation and causal inference in epidemiology // Am.J.Publ. Health. 2005. - Vol. 95, N. si. -P. 144-150.

170. Ruiz-Fons F., Segales J., Gortazar C. A review of viral diseases of the European wild boar: Effects of population dynamics and reservoir role // The Vet. J. 2008. - Vol. 176.-P. 158-169.

171. Seroepidemiologic study of natural transmission of Mycoplasma hyopneumoniae in a swine herd / C.R. Morris, I.A. Gardner, S.K. Flietala et al. //Prev.Vet.Med. 1995. Vol. 21. - P. 323-337.

172. Seroprevalence of porcine respiratory coronavirus in selected Korean pigs / C. Chae, O. Kim, K. Min et al. // Prev. Vet. Med. 2000. - Vol.46, N4.-P. 293-296.

173. Seroprevalence of six reproductive pathogens in European wild boar (Sus scrofa) from Spain: The effect on wild boar female reproductive performance / F. Ruiz-Fons, J. Vicente, D. Vidal et al. // Theriogenology. 2006. Vol. 65. - P. 731-743.

174. Species-specific antigens of Mycoplasma hyopneumoniae and cross-reaction with other porcine mycoplasma / G. Bolske, M.L. Strandberg, K. Bergstrom, K.E. Johansson,// Curr. Microbiol.- 1987. Vol. 15. - P. 233239.

175. Straw B.E., Shin S.J., Yeager A.E. Effect of pneumonia on growth rate and feed efficiency of minimal disease pigs exposed to Actinobacillus pleuropneumoniae and Mycoplasma hyopneumoniae // Prev.Vet.Med. -1990.-Vol. 9.-P. 287-294.

176. Susser M. Reviews and Commentary: Judgment and causal inference: criteria in epidemiologic studies 1977 // Am. J. Epidemiol.- 1995. Vol. 141, N 8. - P. 701-715.

177. Suter M., KobischM., Nicolet J. Stimulation of immunoglobulin-containing cells and isotype-speciflc antibody response in experimental Mycoplasma hyopneumoniae infection in specific-pathogen-free pigs // Infect. Immun. 1985. - T.49, N 3.-P. 615-620.

178. Terpstra С., de Smit A.J. The 1997/1998 epizootic of swine fever in the Netherlands: control strategies under a non-vaccination regimen // Vet. Microbiol. 2000. - Vol. 77, Iss. 1-2. - P. 3-15.

179. Thacker E.L. Thacker B.J., Janke B.H. Interaction between Mycoplasma hyopneumoniae and Swine Influenza Virus // Journal of clinical microbiology. 2001. - Vol. 39, N 7. - P. 2525-2530.

180. Thanavvongnuwech R., Brown G.B., Halbur P.G. Pathogenesis of Porcine Reproductive and Respiratoiy Syndrome Virus-induced Increase in Susceptibility to Streptococcus suis Infection // Vet Pathol. 2000. - Vol. 37, N 2.-P .143-152.

181. The concept of compartmentalisation / A. Scott, C. Zepeda, L. Garber et al. // Rev. sci. tech. Off. int. Epiz. 2006. - Vol. 25, N 3. - P. 873-879.

182. The effect of a killed porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) vaccine treatment on virus shedding in previously PRRSV infected pigs / D. Nilubol, K.B. Piatt, P.G. Halbur et al. // Vet. Microbiol. -2004.-Vol. 102.-P. 11-18.

183. The effect of the Hurnik-Morris (HM) system on sow locomotion, skin integrity, and litter health / J.R. Moms, J.F. Hurnik, R.M. Friendship et al. . // J.anim.Sc. 1997. - Vol. 75, N 2. - P. 308-310.

184. The emergence of porcine circovirus 2b genotype (PCV-2b) in swine in Canada / C.A. Gagnon, D. Tremblay, P. Tijssen et al. // Can. Vet. J. -2007. Vol. 48, N 8. - P. 811-819.

185. Transmissible gastroenteritis in pigs in south east Spain: prevalence and factors associated with infection /M.J. Cubero, L. Leon, A. Contreras et al. //Vet. Rec. 1993. - Vol. 132, N 10. - P. 238-241.

186. Transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus from persistently infected sows to contact controls / M.D. Bierk, S.A. Dee, K.D. Rossow et al. // Can. J. Vet. Res. 2001. - Vol. 65. - P. 261-266.

187. Van Gucht S., Labarque G., Van Reeth K. The combination of PRRS virus and bacterial endotoxin as a model for multifactorial respiratory disease in pigs // Veterinary Immunol, and Immunopathol. 2004. - Vol. 102.-P. 165-178.

188. Van Reeth K., Pensaert M.B. Porcine respiratory coronavirus-mediated interference against influenza virus replication in the respiratory tract of feeder pigs // Am. J. Vet. Res. 1994. - Vol. 55, N 9. - P. 12751281.

189. Van-Nieuwstadt A.P., Zetstra Т., Boonstra J. Infection with porcine respiratory coronavirus does not fully protect pigs against intestinal transmissible gastroenteritis virus // Vet. Rec. 1989. - Vol. 125, N 3. - P. 58-60.

190. Virological and immunological responses to porcine reproductive and respiratory syndrome virus in a large population of gilts / L. Batista, C. Pijoan, S. Dee, et al. // Can. J. Vet. Res. 2004. - Vol. 68. - P. 267-273.

191. Virological and Serological Studies of Porcine Respiratoryr

192. Coronavirus Infection on a Japanese Farm / Y. Usami, K. Fukai, Y. Ihcikawa et al. // J. Vet. Med. Sci. 2008. - Vol. 70, N 9. - P. 929-936.

193. Weed D.L. On the use of causal criteria // Int. J. Epidemiol. 1997. -Vol. 26, N 6. - P. 1137-1141.

194. Wesley R. Neutralizing antibody decay and lack of contact transmission after inoculation of 3 and 4-day-old piglets with porcine respiratory coronavirus // J. Vet. Diagn. Invest. - 2002. - Vol. 14. - P. 525-527.

195. Wesley R.D., Woods R.D. Induction of protective immunity against transmissible gastroenteritis virus after exposure of neonatal pigs to porcine respiratory coronavirus // Am. J. Vet. Res. — 1996. Vol. 57, N 2. - P. 157162.

196. Willeberg P. Animal disease information processing. Epidemiologic analyses of the feline urological syndrome // Acta. Vet. Scand. Suppl. -1977. Vol. 64.-P. 1-48.

197. Yagihashi Т., Kazama S., Tajima M. Seroepidemiology of mycoplasmal pneumonia of swine in Japan as surveyed by an enzyme-linked immunosorbent assay // Vet.Microbiol.- 1993. Vol.34, N 2. - P. 155-166.

198. Young T.F., Ross R.F. Assessment of antibody response of swine infected with Mycoplasma hyopneumoniae by immunoblotting // Am. J. veter. Res. 1987. - T.48. N 4. - P. 651-656.