Систематика, филогения и филогеография нативных и инвазионных двустворчатых моллюсков рода Corbicula (Bivalvia, Cyrenidae) тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Кропотин Александр Вадимович

• Кропотин Александр Вадимович
• кандидат наук
• 2025

Оглавление диссертации кандидат наук Кропотин Александр Вадимович

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Проблема биологических инвазий

1.2 Современный ареал моллюсков рода СогЫсы!а

1.3 Современная филогения, систематика и таксономия двустворчатых моллюсков рода СогЫси!а (Bivalvia, Cyreшdae)

1.4 Филогеография нативных и инвазионных популяций двустворчатых моллюсков рода СогЫси!а

1.5 Репродуктивная биология представителей рода СогЫси!а

1.6 Влияние моллюсков рода СогЫси!а на нативные экосистемы .... 29 ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1 Отбор образцов моллюсков рода СогЫси!а

2.2 Морфологические и анатомические исследования

2.3 Гистологические исследования

2.4 Молекулярно-генетический анализ

2.4.1 Выделение ДНК, ПЦР и секвенирование

2.4.2 Выравнивание и анализ последовательностей

ГЛАВА 3. ФИЛОГЕНИЯ, СИСТЕМАТИКА И ТАКСОНОМИЯ НАТИВНЫХ И ИНВАЗИОННЫХ МОЛЛЮСКОВ РОДА CORBICULA

3.1 Филогения двустворчатых моллюсков рода СогЫси!а (Bivalvia, Cyrenidae)

3.2 Морфология и анатомия моллюсков рода СогЫси!а

3.2.1 Дальневосточные виды рода СогЫси!а

3.2.2 Моллюски рода СогЫси1а из озера Тоба (Суматра, Индонезия)

3.2.3 Инвазионные моллюски рода СогЫси!а Европейской России

3.3 Таксономический анализ и систематика отдельных представителей рода СогЫси!а (Bivalvia, Cyrenidae)

ГЛАВА 4. ФИЛОГЕОГРАФИЯ НАТИВНЫХ И ИНВАЗИОННЫХ МОЛЛЮСКОВ РОДА CORBICULA

4.1 Пути расселения нативных моллюсков рода Corbicula

4.1.1 Двустворчатые моллюски рода Corbicula Дальнего Востока России (бассейн Японского моря)

4.1.2 Двустворчатые моллюски рода Corbicula озера Тоба (Северная Суматра)

4.2 Пути расселения инвазионных моллюсков рода Corbicula Европейской России

4.3 Оценка уровня гибридизации инвазионных линий моллюсков рода ^Ш^Ш. Полиморфизм 28S рРНК

4.4 Эволюционная биогеография моллюсков рода Corbicula

ГЛАВА 5. ИНВАЗИОННЫЙ ПОТЕНЦИАЛ МОЛЛЮСКОВ РОДА

CORBICULA

5.1 Особенности моллюсков рода Corbicula, способствующие их высокому инвазионному потенциалу

5.2 Комменсалы моллюсков рода Corbicula в нативном ареале

5.3 Заражение С. Аиттеа и C. церкариями трематоды Prosorhynchoides sp. (Digenea: Bucephalidae)

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЯ

150

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

В данной работе применяются следующие сокращения и условные обозначения:

ДНК - дезоксирибонуклеиновая кислота; мтДНК - митохондриальная ДНК; ПЦР - полимеразная цепная реакция; РНК - рибонуклеиновая кислота;

РМЦБ - Российский музей центров биологического разнообразия ФГБУН ФИЦКИА им. акад. Н.П. Лавёрова УрО РАН;

COI - Cytochrome c Oxidase Subunit I - фрагмент гена первой субъединицы

цитохром c-оксидазы;

dATP - дезоксиаденозинтрифосфат;

dCTP - дезоксицитидинтрифосфат;

dGTP - дезоксигуанозинтрифосфат;

dTTP - дезокситимидинтрифосфат;

PCA - Principal Component Analysis - анализ главных компонент;

млн. лет - миллион лет;

п.н. - пара нуклеотидов;

тыс. лет - тысяч лет;

BI (Bayesian Inference) - метод Байеса;

BPP - значения байесовской апостериорной вероятности;

BS (Bootstrap) - значения бутстреп-анализа;

HPD - 95% максимальная плотность апостериорной вероятности;

ML (Maximum likelihood) - метод максимального правдоподобия;

MRCA - ближайший общий предок.

ВВЕДЕНИЕ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Систематика, филогения и филогеография нативных и инвазионных двустворчатых моллюсков рода Corbicula (Bivalvia, Cyrenidae)»

Актуальность исследований.

Corbicula (Megerle von Muhlfeld, 1811) - это род пресноводных и солоноватоводных двустворчатых моллюсков, нативный ареал которых охватывает Азию, Ближний Восток, Австралию и Африку (McMahon, 1982). Однако за прошедшее столетие несколько инвазионных видов этого рода вселились в Северную и Южную Америку и Европу (Pigneur et al., 2014). Моллюски рода Corbicula являются одними из самых успешных инвазионных видов в пресноводных экосистемах Америки и Европы (Pigneur et al., 2014; Gomes et al., 2016). Многочисленные опубликованные источники указывают на то, что представители рода Corbicula являются наиболее агрессивными пресноводными захватчиками и их вселение может привести к негативным экологическим и экономическим последствиям (Simberloff et al., 2013; Oliveira et al., 2015). Установлено, что инвазионные виды рода Corbicula в пресноводных экосистемах способствуют снижению плотности фитопланктона и некоторых групп бентоса, включая двустворчатых моллюсков (Vaughn, Hakenkamp, 2001; Karatayev et al., 2007; Sousa et al., 2008; Lucy et al., 2012; Pigneur et al., 2014). Кроме этого, моллюски рода Corbicula способствуют трансформации естественных местообитаний (Karatayev et al., 2007). Однако изучение этого рода моллюсков является важным не только с точки зрения биологических инвазий, но и из-за уникальных биологических характеристик данной группы среди других двустворчатых моллюсков (Glaubrecht et al., 2003, 2006). Репродуктивная биология моллюсков рода Corbicula представляет большой интерес для эволюционных исследований (Araujo et al., 1993; Glaubrecht et al., 2006; Pigneur et al., 2014). Этот род отличает широкий спектр репродуктивных стратегий, начиная от развития свободно плавающей личинки до вынашивания личинок в жабрах (Byrne et al., 2000; Rajagopal et al., 2000). Первый режим типичен для видов Corbicula, обитающих в эстуариях, второй

ограничен пресноводными таксонами (Siripattrawan et al., 2000; Glaubrecht et al., 2003, 2006; Pigneur et al., 2014). Для представителей рода также характерна полиплоидия, андрогенез и клональность с разнообразными генетическими взаимодействиями между клонами, что затрудняет проведение филогенетических исследований инвазионных пресноводных линий.

В настоящее время вопросы, связанные с таксономией, филогеографией и экологией как нативных, так и инвазионных видов рода Corbicula остаются нерешенными (Glaubrecht et al., 2003, 2006; Pigneur et al., 2014; Gomes et al., 2016). Смешанная таксономия рода Corbicula и расхождения между описаниями морфологических и репродуктивных характеристик, приведенные для одного и того же видового названия различными авторами, затрудняют фундаментальные и прикладные исследования этой важной группы пресноводных двустворчатых моллюсков (Glaubrecht et al., 2003, 2006).

Цель исследования: изучить систематику, таксономию, филогению, пути расселения и рассмотреть причины инвазионного успеха моллюсков рода Corbicula.

Для достижения поставленной цели были сформулированы следующие задачи:

1. Провести таксономическую ревизию и уточнить систематическое положение двустворчатых моллюсков рода Corbicula на основе морфологических, анатомических и молекулярно-генетических данных.

2. Изучить филогеографию нативных и инвазионных видов моллюсков рода Corbicula. Оценить уровень гибридизации у инвазионных моллюсков рода Corbicula.

3. Выполнить реконструкцию происхождения моллюсков рода Corbicula на основе молекулярно-генетических данных.

4. Исследовать видовой состав паразитофауны и комменсалов моллюсков рода Corbicula.

5. На основе полученных данных проанализировать причины высокого инвазионного успеха представителей рода Corbicula.

Научная новизна.

Впервые выполнена таксономическая ревизия и уточнен систематический статус ряда спорных видов рода Corbicula на основе комплексного подхода, включающего анализ морфологических, анатомических, гистологических и молекулярно-генетических данных. Ревизия рода Corbicula, выполненная с применением интегративного таксономического подхода, показала, что он включает не менее 27 видов.

Получены новые данные об уровне гибридизации в инвазионных популяциях этого рода. Выполнен анализ филогенетических и биогеографических связей инвазионных и нативных популяций моллюсков рода Corbicula. Получены новые данные о путях расселения моллюсков рода Corbicula и рассмотрены основные факторы, способствующие их высокому инвазионному потенциалу.

Впервые выполнена калиброванная по времени филогения рода Corbicula на основе объединенного набора молекулярных маркеров (COI мтДНК + 28S рРНК). Впервые установлено, что подёнки и хирономиды могут использовать моллюсков рода Corbicula в качестве хозяев для личиночного развития своей молоди. Впервые было выявлено инфицирование C. fluminea и C. leana церкариями трематод рода Prosorhynchoides, подтвержденное молекулярными и гистологическими методами.

Теоретическая и практическая значимость.

Представленные результаты филогенетических исследований послужат основой для проведения дальнейшей таксономической ревизии моллюсков рода Corbicula. Полученные данные расширяют представления об эволюционных механизмах видообразования и формирования гибридных линий для рода Corbicula. Результаты исследования вносят вклад в понимание источников и векторов расселения инвазионных видов рода

Corbicula, а также роли паразитов и комменсалов в инвазионном успехе корбикул.

Полученные данные могут быть использованы для контроля распространения инвазионных видов и разработки методов биологического контроля. Кроме того, полученная информация о видовом составе нативных популяций рода Corbicula важна для проведения ревизии региональных фаун и формирования списка редких и нуждающихся в охране видов. Результаты работы могут быть применены в учебном процессе при подготовке лекционных и практических курсов, составлении учебных пособий по зоологии беспозвоночных и гидробиологии для студентов ВУЗов.

Положения, выносимые на защиту.

1. Полученные молекулярно-генетические данные подтверждают гипотезу о том, что вселение Corbicula leana Prime, 1867 и C. fluminea (Müller, 1774) проходило из Юго-Восточной и Восточной Азии, а расселение C. fluminalis (Müller, 1774) - из Западной Азии.

2. Филогения (COI мтДНК + 28S рРНК), откалиброванная по ископаемым находкам, и обобщенная биогеографическая модель указывают на то, что самый недавний общий предок моллюсков рода Corbicula мог возникнуть на обширной территории, охватывающей Северо-Восточную, Южную и Юго-Восточную Азию в середине мелового периода (105.4 млн. лет назад).

Степень достоверности и апробация результатов диссертации.

Основные результаты диссертационного исследования были представлены на 8 научных конференциях различного уровня: Всероссийская конференция с международным участием «II Юдахинские чтения: Проблемы обеспечения экологической безопасности и устойчивое развитие арктических территорий» (г. Архангельск, 24-28 июня 2019); II Международная научно-практическая конференция «Арктические исследования: от экстенсивного освоения к комплексному развитию» (г. Архангельск, 11-14 ноября 2020); Шестой международный симпозиум «Invasion of Alien Species in Holarctic. Borok-VI» (г. Углич, 11-15 октября 2021); I Всероссийская научная конференция (с международным участием) «Чтения памяти В.И. Жадина» (г. Санкт-Петербург, 18-22 апреля 2022); III международная молодёжная научно-практическая конференция «Арктические исследования: от экстенсивного освоения к комплексному развитию» (г. Архангельск, 26-28 апреля 2022); Всероссийская конференция с международным участием «VII Съезд Паразитологического общества: итоги и актуальные задачи» (г. Петрозаводск, 16-20 октября 2023); Всероссийская конференция с международным участием «II Лавёровские чтения. Арктика: актуальные проблемы и вызовы» (г. Архангельск, 11-17 ноября 2023), II международная малакологическая конференция «Моллюски: биология, экология, эволюция и формирование малакофаун» (г. Архангельск, 17-20 сентября 2024).

Связь работы с научно-исследовательскими программами и темами.

Работа была выполнена при финансовой поддержке ФГБУН ФИЦКИА УрО РАН (проект молодых учёных, посвящённый Десятилетию науки и технологий в Российской Федерации), а также грантами РНФ, в которых автор участвовал в качестве исполнителя (№ 21-14-00092, 21-74-10155) и в рамках государственных заданий Российского музея центров биологического разнообразия ФГБУН ФИЦКИА УрО РАН (№ гос. регистрации АААА-А17-117033010132-2 и 1021060909147-2-1.6.21).

Личный вклад соискателя. Автор лично принимал участие во всех этапах диссертационного исследования. Соискателем сформулированы цель и задачи, определены методы обработки полученных данных. Автор непосредственно участвовал в экспедициях по изучению нативных (Хабаровский и Приморский края, о. Сахалин) и инвазионных (Архангельская, Костромская, Ростовская области, Республика Дагестан, Республика Азербайджан) популяций моллюсков рода Corbicula. Самостоятельно выполнены морфолого-анатомические, гистологические, молекулярно-генетические и цитологические исследования. Автором лично выполнены статистическая обработка, интерпретация результатов, написан текст по согласованному с научным руководителем плану, а также подготовлены доклады и публикации по теме диссертации. Филогенетический анализ проведен совместно с коллегами, вклад которых отражён в совместных публикациях, подготовленных в ходе выполнения работы.

Публикации.

В рамках проведения диссертационного исследования было опубликовано 15 печатных работ, из них 8 в рецензируемых научных изданиях, рекомендованных ВАК и индексируемых в международных наукометрических базах данных Web of Science и Scopus («Белый список» научных журналов).

Структура и объем работы.

Диссертация состоит из списка сокращений и условных обозначений, введения, пяти глав, заключения, выводов, списка литературы и приложений. Текст диссертационной работы изложен на 200 страницах, включает 6 таблиц и 22 рисунка. Список литературы содержит 259 источников, в том числе 252 иностранных.

Благодарности.

Выражаю искреннюю благодарность своему научному руководителю -д.б.н. Беспалой Ю.В. за наставничество, отзывчивость, всестороннюю поддержку, ценные советы и плодотворное обсуждение полученных данных на всех этапах подготовки работы. Автор благодарен коллегам ФГБУН ФИЦКИА УрО РАН к.б.н. Аксёновой О.В., к.б.н. Вихреву И.В., к.б.н. Любасу А.А., к.б.н. Травиной О.В., Хребтовой И.С., Шевченко А.Р. за помощь в сборе полевого материала. Автор искренне признателен члену-корреспонденту РАН, д.б.н. Болотову И.Н., к.т.н. Аксёнову А.С. (г. Архангельск), д.б.н. Винарскому М.В. (г. Санкт-Петербург), к.б.н. Палатову Д.М. (г. Москва), к.б.н. Карабанову Д.П. (Ярославская обл., п. Борок), к.б.н. Большакову В.В. (Ярославская обл., п. Борок) за помощь при проведении экспедиционных работ, предоставленные материалы, консультации и информационную поддержку.

Автор глубоко признателен к.т.н. Кондакову А.В. и к.б.н. Соболевой А.А. за помощь в освоении методик молекулярно-генетического анализа. Автор также выражает искреннюю благодарность к.т.н. Кондакову А.В. и к.б.н. Коноплёвой Е.С. за помощь в проведении филогенетических исследований. Автор благодарен к.г.н. Гофарову М.Ю. за помощь в подготовке картографического материала. Автор выражает также свою благодарность заведующей сектором аспирантуры к.х.н. Тельтевской С.Е. и главному учёному секретарю ФГБУН ФИЦКИА УрО РАН к.б.н. Ежову О.Н. за помощь в организационных вопросах.

Автор выражает благодарность и другим сотрудникам Института биогеографии и генетических ресурсов за отзывчивость, поддержку и советы.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Проблема биологических инвазий

Проблема проникновения видов за пределы их исторических ареалов имеет исключительно важное социально-экономическое и природоохранное значение во всем мире (Simberloff et al., 2013). Проведённые исследования показали, что инвазионные виды могут значительно изменять среду обитания и оказывать негативное воздействие на нативные виды (Karatayev et al., 1997, 2007; Simberloff et al., 2013; Oliveira et al., 2015). В последние десятилетия многие нативные виды значительно сократили свою численность в результате воздействия чужеродных видов (Keller et al., 2011; Ricciardi, 2017). В связи с этим, мероприятия по мониторингу расселения видов за пределы их естественных ареалов, предотвращению нежелательных вселений и ограничению распространения инвайдеров становятся ключевыми вопросами по изучению и сохранению биологического разнообразия (Дгебуадзе, 2002; Aldridge et al., 2006).

Инвазии в пресноводные экосистемы тесно связаны с процессами развития и глобализации экономики. В результате расширения торговых путей эти виды распространились далеко за пределы своего нативного ареала, пересекли океаны, и колонизировали большинство пресноводных водоёмов Америки и Европы (Karatayev et al., 2007; Strasser, 1999; Fofonoff et al., 2003; Mills et al., 1993).

Вероятно, распространение инвазионных видов не было непрерывным процессом, а характеризовалось периодами повышенной активности, в течение которых некоторые из этих видов значительно расширяли свой ареал (Reid, 1899). Каждый такой скачок был связан с интенсификацией темпов какой-либо деятельности человека, к примеру: строительство судоходных каналов для торговли; строительство резервуаров для хранения воды и производства электроэнергии; изменения в политических системах, которые

повлияли на положение или открытость государственных границ; миграция людей, изменения в режиме и объеме международной торговли, а также недавними производственными достижениями и экологическими законами (Karatayev et al., 2007).

Инвазионные виды оказывают значительное негативное влияние на нативные экосистемы (Vermeij, 1996). В регионах, за пределами их нативного ареала, некоторые из инвазионных видов занимают экологические ниши с условиями, аналогичными тем, которые имеются в их естественном ареале, но без их естественных хищников, паразитов и конкурентов (Sakai et al., 2001; Torchin et al., 2003). В связи с этим инвазионные виды часто способствуют необратимым изменениям в нативных сообществах и, в конечном итоге, вызывают глобальное сокращение биоразнообразия из-за хищничества, конкуренции или изменения абиотических условий, которые не могут выдержать аборигенные виды (Ruiz et al., 1997; Dukes, Mooney, 1999; Butchart et al., 2003; Revenga, Kura, 2003; Sousa et al., 2008b).

Растущее число инвазионных видов, вселяющихся в новые для них экосистемы, обуславливает всё более возрастающие экологические и экономические затраты, связанные с их негативным воздействием на нативные экосистемы (Sousa et al., 2014).

По мере того как на протяжении ХХ века увеличивалось количество как преднамеренных интродукций, так и непреднамеренных инвазий, учёные собирали все больше свидетельств негативного влияния, которое некоторые инвазионные виды представляют для нативных видов и экосистем. В этой связи особенно важно определить наиболее опасные виды, оценить риски их расселения и влияния на аборигенные экосистемы (Simberloff et al., 2013; Дгебуадзе, 2014). Этот подход позволит предотвратить распространение чужеродных видов и уменьшить наносимый ими экологический и экономический ущерб (Дгебуадзе, 2014). В последние годы, на основе большого количества собранной об инвазионных видах информации, были созданы различные базы данных. В них собрана информация о наиболее

опасных для нативных экосистем и здоровья человека инвазионных видах (Lowe et al., 2000; Самые опасные..., 2018). Среди пресноводных инвазионных видов моллюски рода Corbicula считаются одними из наиболее опасных для нативных экосистем вследствие своего высокого инвазионного потенциала (Nguyen, Pauw, 2002; Elliott, 2008; Sousa et al., 2008a; Pigneur et al., 2011). В частности, особого внимания заслуживает вид Corbicula fluminea, который внесён в Глобальную базу инвазионных видов IUCN и в число 100 опасных инвазионных видов России (Самые опасные., 2018).

1.2 Современный ареал моллюсков рода Corbicula

Моллюски рода Corbicula широко распространены в тропических и субтропических регионах Старого и Нового Света. Нативный ареал рода охватывает водоёмы Африканского континента, Ближнего Востока, всей южной части Азии, Японии, Китая, Малайского полуострова и Зондских островов, Новой Гвинеи и Австралии (Korniushin, Glaubrecht, 2003). Некоторые представители этого рода успешно колонизировали оба американских континента и Европу (Morton, 1986; Araujo et al., 1993; Pfenninger et al., 2002).

Например, азиатский вид C. fluminea, имеющий нативный ареал в южной и западной Азии в начале 20-го века стал активно распространяться по пресноводным экосистемам Северной Америки и Европы (McMahon, 1999; Karatayev et al., 2007). В 1938 году этот вид был впервые обнаружен в реке Колумбия штата Вашингтон (США) и затем стремительно распространился в 38 континентальных штатах США. Популяции C. fluminea отмечены в Великих озерах, озере Оваско, штате Нью-Йорк (Karatayev et al., 2012), реке Святого Лаврентия (Simard et al., 2012). Позднее, вид C. fluminea обнаружен на Гавайских островах, а также в северной и центральной Мексике, на острове Ванкувер в Канаде (Kirkendale, Clare, 2008). Описание распространения C. fluminea по Северной Америке может быть отражено в виде арки, демонстрирующей расселение по всей территории материка, за

исключением центральных штатов США. Причиной этого могут служить Скалистые горы - горный хребет, пересекающий Северную Америку с севера на юг. Данный горный хребет выступает естественным барьером, препятствующим распространению моллюсков в восточные районы Северной Америки (Crespo et al., 2015).

Инвазия в Центральную Америку, вероятно, произошла в результате ответвления североамериканского основного инвазионного пути (Crespo et al., 2015). Вселение на некоторые Карибские острова произошло уже после инвазии на материк (Crespo et al., 2015). Инвазия на Карибские острова отмечена относительно недавно, а именно в 1998 году, и была вызвана деятельностью человека (Verbrugge et al., 2011). Как и в Северной Америке, инвазия не была отмечена в горных цепях Центральной Америки.

В 1970-х годах началось распространение Corbicula fluminea по Европе и Южной Америке. Популяции C. fluminea были обнаружены в Аргентине (Ituarte, 1981), Бразилии (Veitenheimer-Mendes, 1981) и Уругвае. В 2018 году отмечена первая находка этого вида в Перу (Torres-Zevallos, 2018). По мнению Darrigran (2002) этот вид, со временем, также будет обнаружен в Боливии. Достаточно сложно проследить траекторию вселения моллюсков рода Corbicula в Южную Америку. В целом молекулярно-генетические исследования показывают, что южноамериканские популяции имеют генетическое сходство с североамериканскими популяциями (Lee et al., 2005). Таким образом, основными путями вселения корбикул в Южную Америку являются североамериканский или азиатский вектор. Высокое биоразнообразие, которое характеризует тропические биотопы, может быть причиной более высокой биологической устойчивости и меньшей подверженности этого региона биологическим инвазиям (Stachowicz, Byrnes, 2006).

В Европе вид C. fluminea впервые был обнаружен в 1980 году в устьях рек Тежу (Португалия) и Гаронна (Франция). В 1985 году выявлен в реке Рейн (Голландия) (Mouthon, 1981). В настоящее время этот вид успешно

колонизировал пресноводные водоёмы Франции (Marescaux et al., 2010), Португалии, Германии (Haesloop, 1992), Бельгии (Swinnen et al., 1998), Нидерландов (McMahon, 1999), Испании (Lois, 2010), Венгрии (Csanyi, 1998), Молдовы (Munjiu, Shubernetski, 2010), Сербии (Paunovic et al., 2007), Украины (Волошкевич, Сон, 2002), Великобритании (Howlett, Baker, 1999), а в 2009 году этот азиатский моллюск был впервые обнаружен в Ирландии (Sweeney, 2009). Реконструировать пути расселения Corbicula fluminea в страны Европы довольно сложно. Первые находки C. fluminea были практически одновременными и довольно разобщены географически. Этот факт подтверждает теорию о том, что инвазия вида на большие расстояния была опосредована деятельностью человека и связана, в первую очередь, с морским транспортом балластных вод.

В России инвазионные моллюски рода Corbicula были впервые обнаружены в европейской части России в реке Шура-Озень (бассейн Каспийского моря) в 2013 году (Nabozhenko, 2016). В дальнейшем, в 20172021 годах моллюски рода Corbicula были выявлены в Аграханском заливе, Кубякинской банке, озере Кузнечонок, Юзбаш-Сулакском коллекторе и Присулакском канале Каспийского моря (Khlopkova et al., 2019, Khlopkova et al., 2023). В 2015 году Corbicula была обнаружена в пруде-охладителе Костромской ГРЭС, бассейн р. Волги (бассейн Каспийского моря) (Pryanichnikova et al., 2019) и в подогретых водах Архангельской ТЭЦ, бассейн р. Северной Двины (бассейн Белого моря) (Bespalaya et al., 2018). В 2017 году несколько экземпляров Corbicula были обнаружены в подогретом канале Новочеркасской ГРЭС и в реке Дон (бассейн Азовского моря) (Zhivoglyadova, 2018a, Zhivoglyadova, 2018b, Zhivoglyadova, 2018c).

Вселение C. fluminea на африканский континент впервые было отмечено в 2018 году в Марокко. В настоящее время распространение C. fluminea в Марокко отмечено по всему бассейну реки Себу, включая саму Себу и ее притоки Бет и Инауэн, а также в реке Ум Эр-Рбиа (Clavero et al., 2012).

По мнению Komiushin (2004) Corbicula fluminalis так же был отмечен на африканском континенте, однако фактическое распространение этого вида в других регионах континента по-прежнему остается неизвестным, вследствие отсутствия современных молекулярных данных для африканских популяций Corbicula. Инвазионный ареал C. fluminalis охватывает Южную Америку и Европейские страны (Haponski, О Foighil, 2019).

В настоящее время C. leana известен из Нового Света, встречаясь преимущественно на западе Соединенных Штатов, но, по-видимому, расширяет свой ареал на восток (Tiemann et al., 2017). Кроме того, этот вид был отмечен в водоёмах многих европейских стран (Pigneur et al., 2014). По данным Pigneur et al. (2014), нативный ареал C. leana расположен на территории Восточной и Юго-Восточной Азии.

Во всемирном масштабе самая южная находка моллюсков рода Corbicula - река Негро в Шимпае (Патагония - Аргентина) (Cazzaniga, Perez, 1999). Самой северной находкой считается популяция моллюсков, обнаруженная в подогретых водах Архангельской ТЭЦ (Архангельск -Россия) (Bespalaya et al., 2018). В высокоширотных регионах моллюски рода Corbicula встречаются в водах, подогреваемых тепловыми электростанциями и другими техническими сооружениями (Karatayev et al., 2007; Vinarski et al., 2015). Известно, что водоёмы с искусственно изменённым тепловым режимом, например, пруды-охладители электростанций, являются фактором инвазии экзотических субтропических или тропических видов (Crespo et al., 2015; Vinarski et al., 2015). Таким образом, популяции моллюсков рода Corbicula часто обитают в теплых водах электростанций по всему миру, которые обеспечивают им благоприятную среду обитания (Bodis et al., 2011; Bryan et al., 2013; Vinarski et al., 2015).

1.3 Современная филогения, систематика и таксономия двустворчатых моллюсков рода Corbicula (Bivalvia, Cyrenidae)

Семейство Cyrenidae Grey, 1840 (=Corbiculidae Grey, 1847) включает три морских/солоноватых или одновременно солоноватоводных и пресноводных родов, а именно: Corbicula Megerle von Mühlfeld, 1811, Batissa Grey, 1853, Villorita Griffith, Pidgeon, 1833 (Graf, Cummings, 2024). Представители семейства широко распространены по всему миру (Glaubrecht et al., 2003, 2007). Это двустворчатые моллюски средних размеров с характерными концентрически-ребристыми раковинами (Glaubrecht et a!., 2007). Среди них представители рода Corbicula хорошо известны как одни из наиболее опасных инвазионных двустворчатых моллюсков (Pigneur et al., 2011; Gomes et al., 2016).

Таксономия рода Corbicula, несмотря на интенсивное изучение и внимание ученых, остается не до конца разрешенной (Korniushin, 2004; Pigneur et al., 2011; Bieler, Mikkelsen, 2019; Morhun et al., 2022; Vastrade et al., 2022). Несоответствия в таксономии и систематике моллюсков рода Corbicula существуют как у нативных, так и у инвазионных представителей этого рода (Glaubrecht et al., 2003, 2007). Идентификация видов Corbicula долгое время основывалась на морфологических признаках, что привело к описанию большого числа видов (Korniushin, 2004). В настоящее время род Corbicula включает 90 современных видов (Graf, Cummings, 2024), но достоверность многих из них сомнительна и нуждается в подтверждении (Glaubrecht et al., 2003, 2007; Korniushin, 2004; Bespalaya et al., 2023).

Первую ревизию азиатских видов рода Corbicula провёл Prashad (1924, 1928, 1929). В результате, по конхологическим признакам было описано большое количество видов (Glaubrecht et al., 2003, 2007). В дальнейшем, исходя из морфологических и анатомических особенностей, а также анализа репродуктивной биологии, число валидных видов уменьшилось (Britton, Morton, 1977; Morton, 1986; Glaubrecht et al., 2003). По данным

Morton (1986) для Азии существуют только два отдельных вида Corbicula fluminalis (Müller, 1774) и C. fluminea (Müller, 1774). Однако в дальнейшем это предположение не подтвердилось (Siripattrawan et al., 2000; Glaubrecht et al., 2003; Korniushin, 2004; Lee et al., 2005; Komaru et al., 2012; Bespalaya et al., 2023).

Наиболее полное описание африканских популяций рода Corbicula было выполнено Daget (1998), который выделил на этом континенте несколько географически разделенных подвидов C. fluminalis, а именно Corbicula f. consobrina (Cailliaud, 1927) (бассейн Нила и Западная Африка), C. f. cunningtoni (Smith, 1906) (озера Виктория, Эдвард и Альберт), C. f. tanganycensis (Crosse, 1881) (озеро Танганьика) и C. f. africana (Krauss, 1848) (Восточная и Южная Африка от озера Малави до Капской провинции). Данные Korniushin (2004) согласуются с этой классификацией. Однако им не было выделено чёткого различия между C. f. consobrina и C. fluminalis. Следует также отметить, что C. f. africana обитает в Южной Африке в симпатрии с C. astartina (Martens, 1860), отличаясь от последнего таксона морфологией раковины (Mandahl-Barth, 1988; Korniushin, 2004).

На сегодняшний день существуют проблемы с определением количества валидных видов в Индонезии (Djajasasmita, 1975, 1977; Glaubrecht et al., 2003, 2007), Африке (Mandahl-Barth, 1988; Daget, 1998; Korniushin, 2004), Таиланде (Brandt, 1974; Kijviriya et al., 1991), Японии (Harada, Nishino, 1995; Komaru et al., 1998; Bespalaya et al., 2022), Корее (Park et al., 2002; Park, Chung, 2003; Park, Kim, 2003; Park, Kim, 2003), Вьетнаме (Park, Kim, 2003), Китае (Morton, 1986; Park, Chung, 2003; He, Zhuang, 2013; Graf, Cummings, 2024). Нет согласия между исследователями и относительно общего количества андрогенетических линий, зарегистрированных в Америке и Европе (Pigneur et al., 2014; Peñarrubia et al., 2017; Vastrade et al., 2022).

Филогенетические взаимоотношения между таксонами этой группы остаются недостаточно изученными (Vastrade et al., 2022). Отсутствие четкой

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Кропотин Александр Вадимович, 2025 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Винарский М.В., Кантор Ю.И. Аналитический каталог пресноводных и солоноватоводных моллюсков России и сопредельных стран // Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН. Москва, 2016. 544 с.

2. Волошкевич Е.В., Сон М.О. Corbicula fluminalis - новый вид двустворчатого моллюска для фауны Украины // Вестник зоологии. 2002. Том 36, № 6. с. 94.

3. Дгебуадзе Ю.Ю. Проблемы инвазий чужеродных организмов. Экологическая безопасность и инвазии чужеродных // МСОП, ИПЭЭ РАН. Москва, 2002. С. 11-14.

4. Дгебуадзе Ю.Ю. Чужеродные виды в Голарктике: некоторые результаты и перспективы исследований // Российский журнал биологических инвазий. 2014. Т. 7, № 1. С. 2-8.

5. Дгебуадзе Ю.Ю., Петросян В.Г., Хляп Л.А. Самые опасные инвазионные виды в России (ТОР-100) // Товарищество научных изданий КМК. Москва, 2018. 688 с.

6. Меркулов Г.А. Курс патолого-гистологической техники // учебное пособие. Медгиз. Москва, 1956. 264 с.

7. Мордухай-Болтовской Ф.Д. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука. 1975. 240 с.

8. Abdel-Gaber R., Fol M., Quraishy S.A. Light and scanning electron microscopic studies of Unionicola tetrafurcatus (Acari: Unionicolidae) infecting four freshwater bivalve species and histopathological effect on its hosts // Journal of Parasitology. 2018. Vol. 104. P. 359-371.

9. Aksenova O.V., Bolotov I.N., Gofarov M.Y., Kondakov A.V., Vinarski M.V., et al. Species Richness, Molecular Taxonomy and Biogeography of the Radicine Pond Snails (Gastropoda: Lymnaeidae) in the Old World // Scientific Reports. 2018. Vol. 8. № article 11199.

10. Aldridge D.C., Elliott P., Moggridge G.D. Microencapsulated BioBullets for the control of biofouling zebra mussels // Environmental Science and Technology. 2006. Vol. 40. P. 975-979.

11. Alves P.V., Vieira F.M., Santos C.P., Scholz T., Luque J.L. A checklist of the Aspidogastrea (Platyhelminthes: Trematoda) of the world // Zootaxa. 2015. Vol. 3918. P. 339-396.

12. Araujo R., Moreno D., Ramos M. The Asiatic clam Corbicula fluminea (Meuller, 1774) (Bivalvia: corbiculidae) in Europe // American Malacological Bulletin. 1993. № 10. P. 39-49.

13. Bandelt H.J., Forster P., Röhl A. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies // Molecular biology and evolution. 1999. Vol. 16, № 1. P. 37-48.

14. Bauret L., Field A. R., Gaudeul M., Selosse M.-A., Rouhan G. First insights on the biogeographical history of Phlegmariurus (Lycopodiaceae), with a focus on Madagascar // Molecular Phylogenetics and Evolution. 2018. Vol. 127. P. 488-501.

15. Bespalaya Y.V., Aksenova O.V., Gofarov M.Y., Kondakov A.V., Kropotin A.V., Kononov O.D., Bolotov I.N. Who inhabits the world's deepest Crater Lake? A taxonomic review of Corbicula (Bivalvia: Cyrenidae) clams from Lake Toba, North Sumatra, Indonesia // Journal of Zoological Systematics and Evolutionary research. 2020. Vol. 59, № 2. P. 400-410.

16. Bespalaya Y.V., Aksenova O.V., Kropotin A.V., Shevchenko A.R., Travina O.V. Reproduction of the Androgenetic Population of the Asian Corbicula Clam (Bivalvia: Cyrenidae) in the Northern Dvina River Basin, Russia // Diversity-Basel. 2021. Vol. 13. Is. 7. № article 316.

17. Bespalaya Y.V., Bolotov I.N., Aksenova O.V., Kondakov A.V., Gofarov M.Y., Laenko T.M., Sokolova S.E., Shevchenko A.R., Travina O.V. Aliens are moving to the Arctic frontiers: an integrative approach reveals selective expansion of androgenic hybrid Corbicula lineages towards the North of Russia // Biological Invasions. 2018. № 20. P. 2227-2243.

18. Bespalaya Y.V., Kropotin A.V., Kondakov A.V., Aksenova O.V., Gofarov M.Y., Sang K. K., Jin H.L., Travina O.V., Vikhrev I.V., Vinarski M.V., Bolotov I.N. A taxonomic reassessment of native and invasive species of Corbicula clams (Bivalvia: Cyrenidae) from the Russian Far East and Korea // Zoological Journal of the Linnean Society. 2023. Vol. 197, Is. 1. P. 104126.

19. Bespalaya Y.V., Palatov D.M., Gofarov M.Y., Kondakov A.V., Kropotin A.V., Sousa R., Taskinen J., Inkhavilay K., Tanmuangpak K., Tumpeesuwan S., Vikhrev I.V., Bolotov I.N. Associations of mayfly larvae with Corbicula clams // Biological Journal of the Linnean Society. 2023. Vol. 138. Is. 2. P. 169-193.

20. Bespalaya Y.V., Sousa R., Gofarov M.Y., Kondakov A.V., Kropotin A.V., Palatov D., Vikhrev I.V., Bolotov I.N. An exploration of the hidden endosymbionts of Corbicula in the native range // Ecology. 2023. Vol. 104. Is. 1. № article e3836.

21. Bespalaya Y.V., Vinarski M. V., Aksenova O.V., Babushkin E.S., Gofarov M.Y., et al. Phylogeny, taxonomy, and biogeography of the Sphaeriinae (Bivalvia: Sphaeriidae) // Zoological Journal of the Linnean Society. 2024. P. 1-34.

22. Bieler R., Mikkelsen P.M. Cyrenidae Gray, 1840 // In: Lydeard C, Cummings KS, eds. Freshwater mollusks of the world. A distribution atlas. Baltimore: Johns Hopkins University Press. 2019. P. 187-192.

23. Bodis E., Nosek J., Oertel N., Toth B., Fehér Z. Comparative study of two Corbicula morphs (Bivalvia, Corbiculidae) inhabiting River Danube // International Review of Hydrobiology. 2011. № 3. P. 257-273.

24. Bogatov V.V., Starobogatov Y.I. Genus Corbicula in the Amur River (Bivalvia, Corbiculidae) // Ruthenica, Russian Malacological Journal. 1994. Vol. 4. P. 147-150.

25. Böhme M. The Miocene climatic optimum: evidence from ectothermic vertebrates of Central Europe // Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology. 2003. Vol. 195. P. 389-401.

26. Bolotov I.N., Kondakov A.V., Vikhrev I.V., Aksenova O.V., Bespalaya Y.V., Gofarov M.Y., Kolosova Y.S., Konopleva E.S., Spitsyn V.M., Tanmuangpak K., Tumpeesuwan S. Ancient River inference explains exceptional Oriental freshwater mussel radiations // Scientific Reports. 2017. Vol. 7, 2135.

27. Bolotov I.N., Konopleva E.S., Vikhrev I.V., Gofarov M.Y., Lopes-Lima M., Bogan A.E., Lunn Z., Chan N., Win T., Aksenova O.V., Tomilova A.A., Tanmuangpak K., Tumpeesuwan S., Kondakov A.V. New freshwater mussel taxa discoveries clarify biogeographic division of Southeast Asia // Scientific Reports. 2020. Vol. 10, 6616.

28. Bolotov I.N., Konopleva E.S., Vikhrev I.V., Lopes-Lima M., Bogan A.E., Lunn Z., Chan N., Win T., Aksenova O.V., Gofarov M.Y., Tomilova A.A., Kondakov A.V. Eight new freshwater mussels (Unionidae) from tropical Asia // Scientific Reports. 2019. Vol. 9, 12053.

29. Brandt R. A. M. The non-marine Mollusca of Thailand // Archiv für Molluskenkunde. 1974. Vol. 105. P. 1-423.

30. Brian J.I., Aldridge D.C. A rapid, non-destructive method for sampling castrating parasites in endangered bivalve molluscs // Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems. 2021. Vol. 31. P. 729-735.

31. Brian J.I., Aldridge D.C. Endosymbionts: An Overlooked Threat in the Conservation of Freshwater Mussels? // Biological Conservation. 2019. Vol. 237. P. 155-65.

32. Brian J.I., Dunne S.E., Ellis C.L., Aldridge D.C. Population-Level Effects of Parasitism on a Freshwater Ecosystem Engineer, the Unionid Mussel Anodonta anatine // Freshwater Biology. 2021. Vol. 66. P. 2240-50.

33. Britton J.C., Morton B. Corbicula in North America: The evidence reviewed and evaluated // In: Proceedings of the First International Corbicula Symposium. 1977. P. 250-287.

34. Bryan N.J., Florence C.V., Crail T.D., Moorhead D.L. Freshwater mussel community response to warm water discharge in western Lake Erie // Journal of Great Lakes Research. 2013. Vol. 39. P. 449-454.

35. Butchart S.H., Walpole M., Collen B. Global biodiversity: indicator of recent declines // Science. 2003. Vol. 328. P. 11б4-11б8.

36. Byrne M., Phelps H., Chuгch T., Adaiг V., Selvakumaraswamy P., Potts J. Repгoduction and development of the freshwater clam Corbicula australis in southeast Australia // Hydrobiologia. 2000. Vol. 418. P. 185-197.

37. Caraco N.F., Cole J.J., Raymond P.A., Strayer D., Pace M., Findlay S., Fischer D. Zebra mussel invasion in a large, turbid river: phytoplankton response to increased grazing // Ecology. 1997. Vol. 78. P. 588-б02.

38. Caraco N.F., Cole J.J., Strayer D.L. Top down control from the bottom: regulation of eutrophication in a large river by benthic grazing // Limnology and Oceanography. 200б. Vol. 51. P. бб4-б70.

39. Carlsson N.O., Sarnelle O., Strayer D.L. Native predators and exotic prey - an acquired taste? // Frontiers in Ecology and the Environment. 2009. № 7. P. 525-532.

40. Cazzaniga N., Perez C. Asiatic Clam, Corbicula fluminea, in Northwestern Patagonia (Argentina) // Journal of Freshwater Ecology. 1999. №14. P. 551-552.

41. Chiarello M., Bucholz J.R., McCauley M., Vaughn S.N., Hopper G.W., Sánchez González I., Atkinson C.L., Lozier J.D., Jackson C.R. Environment and co-occurring captive mussel species, but not host genetics, impact the microbiome of a freshwater invasive species (Corbiculafluminea) // Frontiers in Microbiology. 2022. Vol. 13: 8000б1.

42. Chung P.R., Jung Y., Park Y.K., Hwang M.G., Soh C.T. Corbicula fluminea (Bivalvia: Corbiculidae): a possible second molluscan intermediate host of Echinostoma cinetorchis (Trematoda: Echinostomatidae) in Korea // Journal of Parasitology. 2001. Vol. 39. P. 329-332.

43. Clavero M., Araujo R., Calzada J. The first invasive bivalve in African fresh waters: invasion portrait and management options // Aquatic Conservation Marine and Freshwater Ecosystems. 2012. № 22. P. 277-280.

44. Crespo D., Dolbeth M., Leston S., Sousa R., Pardal M.Â. Distribution of Corbicula fluminea (Muller, 1774) in the invaded range: a geographic approach with notes on species traits variability // Biological Invasions. 2015. № 17. P. 2087-2101.

45. Csanyi B. Spreading invaders along the Danubian highway: first record of Corbicula fluminea (O.F. Müller, 1774) and C. fluminalis (O.F. Müller, 1774) in Hungary (Mollusca: Bivalvia) // Folia Historica Naturalia Musei Matraensis. 1998. Vol. 23. P. 343-345.

46. Daget J. Catalogue raisonné desmollusques bivalves d'eau douce africains // Backhuys Publishers. Leiden, 1998. 329 pp.

47. Danford D.W., Joy J.E. (Trematoda) parasites of bivalve molluscs in western West Virginia // Proceedings of the Helminthological Society of Washington. 1984. Vol. 51. P. 301-305.

48. Darrigran G. Potential impact of filter-feeding invaders on temperate inland freshwater environments // Biological Invasions. 2002. № 4. P. 145-156.

49. DeCelles P.G., Castañeda I.S., Carrapa B., Liu J., Quade J., Leary R., Zhang L. Oligocene-Miocene Great Lakes in the India-Asia Collision Zone // Basin Research. 2016. Vol. 30. P. 228-47.

50. Dereeper A., Guignon V., Blanc G., Audic S., Buffet S., Chevenet F., Dufayard J-F., Guindon S., Lefort V., Lescot M., Claverie J.-M., Gascuel O. Phylogeny.fr: robust phylogenetic analysis for the non-specialist // Nucleic Acids Resersh. 2008. W465-9.

51. Dias E., Morais P., Antunes C., Hoffman J.C. Linking terrestrial and benthic estuarine ecosystems: organic matter sources supporting the high secondary production of a non-indigenous bivalve // Biological Invasions. 2014. Vol. 16. P. 2163-2179.

52. Djajasasmita M. An annotated list ofthe species of the genus Corbicula from Indonesia (Mollusca: Corbiculidae) // Bulletin Zoologisch Museum Universiteit van Amsterdam. 1977. Vol. 6, № 1. P. 1-9.

53. Djajasasmita M. On the species ofthe genus Corbicula from Celebes, Indonesia (Mollusca, Corbiculidae) // Bulletin Zoologisch Museum Universiteit van Amsterdam. 1975. Vol. 4, № 10. P. 83-87.

54. Dukes J., Mooney H. Does global change increase the success of biological invaders? // Trends in Ecology & Evolution. 1999. Vol. 14. P. 135-139.

55. Elliott P. The Asian clam (Corbicula fluminea) in the River Thames, London, England // Aquatic Invasions. 2008. №. 3. P. 54-60.

56. Etoundi E, Vastrade M, Berthelin C, Kellner K, Fafin-Lefevre M, Van Doninck K. Transition from sexuality to androgenesis through a meiotic modification during spermatogenesis in freshwater Corbicula clams // PLoS ONE. 2024. Vol.19, №11. e0313753.

57. Evdokimov V.V., Matrosova I.V. Seasonal changes in amino acid composition in the Corbicula japonica gonads // Pacific Medical Journal. 2014. Vol. 1. P. 48-51.

58. Eydal M., Freeman M.A., Kristmundsson A., Bambir S.H., Jonsson P.M., Helgason S. Prosorhynchoides borealis Bartoli, Gibson & Bray, 2006 (Digenea: Bucephalidae) cercariae from Abra prismatica (Mollusca: Bivalvia) in Icelandic waters // Journal of Helminthology. 2013. Vol. 87. P. 34-41.

59. Fofonoff P.W., Ruia G.M., Stewens B., Carlton JT. In ships or on ships? Mechanisms of transfer and invasion for nonnative species to the coast of North America // Invasive species: vectors and management strategies. Island Press, Washington. 2003. P.152-182.

60. Folmer O., Black M., Hoeh W., Lutz R., Vrijenhoek R. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates // Molecular Marine Biology and Biotechnology. 1994. Vol. 3, № 5. P. 294-299.

61. Forsyth D.J., McCallum I.D. Xenochironomus canterburyensis (Diptera: Chironomidae), a commensal of Hyridella menziesi (Lamellibranchia) in Lake Taupo; features of pre-adult life history // New Zealand Journal of Zoology. 1978. Vol. 5. P. 795-800.

62. Franzen A. Ultrastructural studies of spermatozoa in three bivalve species with notes on evolution of elongate sperm nucleus in primitive spermatozoa // Gamete Research. 1983. № 7. P. 199-214.

63. French J., Schloesser D. Distribution and winter survival health of Asian clams, Corbicula fluminea, in the St. Clair River, Michigan // Journal of Freshwater Ecology. 1996. Vol.11. P. 183-192.

64. Funk D.H., Roberts S.L., Graham A.C. Oviposition Behavior and Host Records for the Parasitic Midge Trichochilus lacteipennis (Johannsen) (Chironomidae: Orthocladiinae) // Chironomus Journal of Chironomidae Research. 2018. Vol. 31. P. 37-42.

65. Gillies M.T., Elouard J.M. The mayfly-mussel association, a new example from the River Niger Basin in mayflies and stoneflies // Mayflies and stoneflies: life histories and biology. 1990. Series Entomologica. Vol. 44. Dordrecht: Springer. P. 289-297.

66. Glaubrecht M. Rapid evolution of sessility in an endemic species flock of the freshwater bivalve Corbicula from ancient lakes on Sulawesi, Indonesia // Biology Letters. 2006. Vol. 2, № 1. P. 73-77.

67. Glaubrecht M., Fehe'r Z., von Rintelen T. Brooding in Corbicula madagascariensis (Bivalvia, Corbiculidae) and the repeated evolution of viviparity in corbiculids // Zoological Scripta. 2006. Vol. 35. P. 641-654.

68. Glaubrecht M., Fehér Z., Köhler F. Inventorizing An Invader: Annotated Type Catalogue of Corbiculidae Gray, 1847 (Bivalvia, Heterodonta, Veneroidea), Including Old World Limnic Corbicula in the Natural History Museum Berlin // Malacologia. 2007. Vol. 49, № 2. P. 243-272.

69. Glaubrecht M., von Rintelen T., Korniushin A.V. Towards a systematic revision of brooding freshwater Corbiculidae in Southeast Asia (Bivalvia, Veneroida): on shell morphology, anatomy and molecular phylogenetics of endemic taxa from islands in Indonesia // Malacologica. 2003. Vol. 45. P. 11-40.

70. Goltenboth F., Timotius K.H., Milan P.P., Margraf J. Ecology of Insular Southeast Asia: The Indonesian Archipelago // Oxford: Elsevier. - Amsterdam, 2006.

71. Gomes C., Sousa R., Mendes T., Borges R., Vilares P., Vasconcelos V., Guilhermino L., Antunes A. Low genetic diversity and high invasion success of Corbicula fluminea (Bivalvia, Corbiculidae) (Muller, 1774) in Portugal // PLoS ONE. 2016. Vol. 11, № 7.

72. Gordon M.J., Swan B.K., Paterson C.G. Baeoctenus bicolor (Diptera: Chironomidae) Parasitic in Unionid Bivalve Molluscs, and Notes on Other Chironomid-Bivalve Associations // Journal of the Fisheries Research Board of Canada. Vol. 35. P. 154-7.

73. Graf D.L., Cummings K.S. The freshwater mussels (Unionoida) of the world (and other less consequential bivalves) // MUSSEL Project Web Site 2024.

74. Graham N.R., Fisher B.L., Girman D.J. Phylogeography in response to reproductive strategies and ecogeographic Isolation in ant species on Madagascar: Genus Mystrium (Formicidae: Amblyoponinae) // PLoS ONE 2016. Vol. 11. № e0146170.

75. Graney R., Cherry D., Rodgers J., Cairns, J. The influence of thermal discharges and substrate composition on the population-structure and distribution of the Asiatic clam, Corbicula fluminea, in the New River Virginia // Nautilus. 1980. Vol. 94. P.130-135.

76. Haccou P., Schneider M. Modes of reproduction and the accumulation of deleterious mutations with multiplicative fitness effects // Genetics. 2004. Vol. 166. P. 1093-1104.

77. Haesloop U. Establishment of the Asiatic clam Corbicula cf. fluminalis in the tidal Weser River (N. Germany) // Archiv für Hydrobiologie. 1992. Vol. 126, № 2. P. 175-180.

78. Hall T.A. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT // Nucleic acids symposium series. 1999. Vol. 41, № 41. P. 95-98.

79. Hammer O., Harper D.A.T., Ryan P.D. PAST: paleontological statistics software package for education and data analysis // Palaeontologia Electronica. 2001. Vol. 4. art. 4.

80. Hammond M.D., Cribb T.H., Bott N.J. Three new species of Prosorhynchoides (Digenea: Bucephalidae) from Tylosurus gavialoides (Belonidae) in Moreton Bay, Queensland, Australia // Parasitology International. 2018. Vol. 67, № 4. P. 454-464.

81. Haponski A.E., Foighil D.O Phylogenomic analyses confirm a novel invasive North American Corbicula (Bivalvia: Cyrenidae) lineage // PeerJ. 2019. Vol. 7. e7484.

82. Harada E., Nishino N. Differencesin inhalant siphonal papillae among the Japanese species of Corbicula (Mollusca: Bivalvia) // Publications of the Seto Marine Biological Laboratory. 1995. Vol. 36. P. 389-408.

83. He J., Zhuang Z. The Freshwater Bivalves of Chinam // Harxheim: ConchBooks. Germany, 2013.

84. Hedtke S., Glaubrecht M., Hillis D. Rare gene capture in predominantly androgenetic species // Proceedings of the National Academy of Sciences of USA. 2011. Vol. 108. P. 9520-9524.

85. Hedtke S., Stanger-Hall K., Baker R., Hillis D.M. All male asexuality: origin and maintenance of androgenesis in the Asian clam Corbicula // Evolution. 2008. Vol. 62. P. 1119-1136.

86. Hoang D.T., Chernomor O., Von Haeseler A., Minh B.Q., Vinh L.S. UFBoot2: improving the ultrafast bootstrap approximation // Molecular biology and evolution. 2018. Vol. 35, № 2. P. 518-522.

87. Houki S., Yamada M., Honda T., Komaru A. Origin and possible role of males in hermaphroditic androgenetic Corbicula clams // Zoological Scipta. 2011. Vol. 28. P. 526-531.

88. Howlett D., Baker R. Corbicula fluminea (Müller): New to UK // Journal of Conchology. 1999. Vol. 36. 83 p.

89. Hsu T-H., Komaru A., Gwo J-C. Genetic diversity and clonality of the Asian clam Corbiculafluminea are reflected by inner shell color pattern // Aquatic Invasions. 2020. Vol. 15. P. 633-645.

90. Hurukawa M., Mizumoto S. An ecological study on the bivalve "seta-shijimi", Corbicula sandai Reinhardt on the Lake Biwa. II. On the development // Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries. 1953. Vol. 19. P. 91-94.

91. Ikematsu W., Yamane S. Ecological studies of Corbicula leana Prime // III Bulletin of the Japanese Society for the Science of Fish. 1977. Vol. 43. P. 11391146.

92. Ilarri M., Antunes C., Guilhermino L., Sousa R. Massive mortality of the Asian clam Corbicula fluminea in a highly invaded area // Biological Invasions. 2011. №13. P. 277-280.

93. Ilarri M., Freitas F., Costa-Dias S., Antunes C. Associated macrozoobenthos with the invasive Asian clam Corbicula fluminea // Journal of Sea Research. 2012. Vol. 72. P. 113-120.

94. Ilarri M., Souza A., Modesto V., Guilhermino L., Sousa R. Differences in the macrozoobenthic fauna colonizing empty bivalve shells before and after invasion by Corbicula fluminea // Marine and Freshwater Research. 2015. Vol. 66. P. 549-558.

95. Ishibashi R., Ookubo K., Aoki M., Utaki M., Komaru A., Kawamura K. Androgenetic reproduction in a freshwater diploid clam Corbicula fluminea (Bivalvia: Corbiculidae) // Zoological Science. 2003. Vol. 20. P. 727-732.

96. Ituarte C. Corbicula and Neocorbicula (Bivalvia: Corbiculidae) in the Parana, Uruguay, and Rio de La Plata basins // Nautilus. 1994. Vol. 107. P. 129 -135.

97. Ituarte C. Primera noticia acerca de la presencia de pelecipodos asiaticos en el area rioplatense // Neotropica. 1981. Vol. 27. P. 79-82.

98. Janech M., Hunter R. Corbicula fluminea in a Michigan River: implication for low temperature tolerance // Malacological review. 1995. Vol. 28. P. 119-124.

99. Jones C.G., Lawton J.H., Shachak M. Organisms as ecosystem engineers // Oikos. 1994. Vol. 69. P. 373-386.

100. Jovelin R., Justine J.L. Phylogenetic relationships within the polyopisthocotylean monogeneans (Platyhelminthes) inferred from partial 28S rDNA sequences // International journal for Parasitology. 2001. Vol. 31, № 4. P. 393-401.

101. Juhel G., Culloty S., O'Riordan R., O'Connor J., Faoite L., McNamara R. A histological study of the gametogenic cycle of the freshwater mussel Dreissena polymorpha (Pallas, 1771) in Lough Derg, Ireland // Journal of Molluscan Studies. 2003. Vol. 69. P. 365-373.

102. Kalyaanamoorthy S., Minh B.Q., Wong T.K.F., von Haeseler A., Jermiin L.S. ModelFinder: Fast model selection for accurate phylogenetic estimates // Nature Methods. 2017. Vol. 14. P. 587-589.

103. Karatayev A.Y., Burlakova L.E., Padilla D.K. The effects of Dreissena polymorpha (Pallas) invasion on aquatic communities in Eastern Europe // Journal of Shellfish Research. 1997. Vol. 16. P. 187-203.

104. Karatayev A.Y., Mastitsky S.E., Burlakova L.E., Karatayev V.A., Hajduk M.M., Conn D.B. Exotic mollusks in the Great Lakes host epizootically important trematodes // Journal of Shellfish Research. 2012. Vol. 31. P. 1-10.

105. Karatayev A.Y., Padilla D.K., Minchin D., Boltovskoy D., Burlakova L.E. Changes in global economies and trade the potential spread of exotic freshwater bivalves // Biological Invasions. 2007. № 9. P. 161-180

106. Keeler S.P., Huffman J.E. Echinostomes in the second intermediate host // The Biology of Echinostomes: from the Molecule to the Community. New York, 2009. P. 61-87.

107. Keller R.P., Geist J., Jeschke J.M., Kühn I. Invasive species in Europe: ecology, status, and policy // Environmental Sciences Europe. 2011. Vol. 23. №. 1. P. 1-17.

108. Khlopkova M.V., Barkhalov R.M., Guseynov K.M., Gasanova A.S., Zurkhaeva U.D. Invasions of new morphotypes of Corbicula fluminalis and

Corbicula fluminea (Bivalvia: Corbiculidae) to the basin of the Dagestan Region of the Caspian Sea // Russian Journal of Biological Invasions. 2023. Vol. 14. P. 251261.

109. Khlopkova M.V., Guseynov K.M., Gasanova A.S., Barkhalov R.M., Zurkhaeva U.D., Guseynov M.K. Russian first record of live clams of Corbicula fluminalis (Bivalvia: Corbiculidae) in the Dagestan Sector of the Caspian Sea Basin // Russian Journal of Biological Invasions. 2019. Vol. 10. P. 79-82.

110. Kijviriya V., Upatham E.S., Viyanant V., Woodruff D.S. Genetic studies of Asiatic clams Corbicula, in Thailand: Allozymes of 21 nominal species are identical // American Malacological Bulletin. 1991. Vol. 8. P. 97-106.

111. Kimura T., Soutome Y., Sekiguchi H. Larval development of the brackish water clam Corbicula japonica (Bivalvia: Corbiculidae), with special reference to morphological comparison with concurrent tidal flat bivalves // Venus. 2004. Vol. 63. P. 33-48.

112. Kirkendale L., Clare J. The Asiatic clam (Corbicula fluminea) rediscovered on Vancouver Island // The Victoria Naturalist. 2008. Vol. 65. P. 1216.

113. Köhler M., Glaubrecht F. Uncovering an overlooked radiation: molecular phylogeny and biogeography of Madagascar's endemic river snails (Caenogastropoda: Pachychilidae: Madagasikara gen. nov.) // Biological Journal of the Linnean Society. 2010. Vol. 99. P. 867-894.

114. Kolpakov E.V. , Kolpakov N.V., Slobodskova V.V. Production and biological characteristics and genotoxic status of clam Corbicula japonica (Bivalvia, Corbiculidae) in the estuary of Avvakumovka River (Olga Bay, northwestern Japan Sea) // Izvestiya TINRO. 2016. Vol. 187. P. 145-159.

115. Komaru A. , Kumamoto A., Ishibashi R. Possible elevation of ploidy levels by accidental formation of female pronucleus in androgenetic clam Corbicula leana // Developmental Biology. 2001. Vol. 18. 87 p.

116. Komaru A., Houki S., Yamada M., Miyake T., Obata M., Kawamura K. 28S rDNA haplotypes of males are distinct from those of androgenetic

hermaphrodites in the clam Corbicula leana // Development genes and evolution. 2012. Vol. 222. P. 181-187.

117. Komaru A., Kawagishi T., Konishi K. Cytological evidence of spontaneous androgenesis in the freshwater clam Corbicula leana Prime // Development Genes and Evolution. 1998. Vol. 208. P. 46-50.

118. Komaru A., Konishi K. Ultrastructure of biflagellate spermatozoa in the freshwater clam, Corbicula leana (Prime) // Invertebrate Reproduction & Development. 1996. Vol. 29, № 3. P. 193-197.

119. Komaru A., Konishi K., Nakayama I., Kobayashi T., Sakai H., Kawamura K. Hermaphroditic freshwater clams in the genus Corbicula produce non-reductional spermatozoa with somatic DNA content // Biology Bulletin. 1997. Vol. 193. P. 320-323.

120. Komaru A., Kumamoto A., Kato T., Ishibashi R., Obata M., Nemoto T. A hypothesis of ploidy elevation by formation of a female pronucleus in the androgenetic clam Corbicula fluminea in the Tone River Estuary, Japan // Zoological Science. 2006. Vol. 23. P. 529-532.

121. Komaru A., Ookubo K., Kiyomoto M. All meiotic chromosomes and both centrosomes at spindle pole in the zygotes discarded as two polar bodies in clam Corbicula leana: unusual polar body formation observed by antitubulin immunofluorescence // Development Genes and Evolution. 2000. Vol. 210. P. 263269.

122. Komma D., Endow S. Haploidy and androgenesis in Drosophila // Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 1995. Vol. 92. P. 1188411888.

123. Konishi K., Kawamura K., Furuita H., Komaru A. Spermatogenesis of the freshwater clam Corbicula aff. fluminea Muller (Bivalvia: Corbiculidae) // Journal of Shellfish Research. 1998. Vol. 17. P. 185-189.

124. Konopleva E.S., Bolotov I.N, Vikhrev I.V., Inkhavilay K., Gofarov M.Y, Kondakov A.V., Tomilova A.A, Chapurina Y.E., Tu Van Do, Pfeiffer J.M., Lopes-Lima M., Bogan A.E. A freshwater mussel species reflects a Miocene

stream capture between the Mekong Basin and East Asian rivers // Zoosystematics and Evolution. 2023. Vol. 99, № 1. P. 29-43.

125. Korniushin A.V. Revision of some Asian and African freshwater clams assigned to Corbicula fluminalis (Mu'ller, 1774) (Mollusca: Bivalvia: Corbiculidae), with review of anatomical characters and reproductive features based on museum collections // Hydrobiologia. 2004. Vol. 529. P. 251-270.

126. Korniushin A.V., Glaubrecht M. Novel reproductive modes in freshwater clams: brooding and larval morphology in Southeast Asian taxa of Corbicula (Mollusca, Bivalvia, Corbiculidae) // Acta Zoologica. 2003. Vol. 84. P. 293-315.

127. Kraemer L., Swanson C., Galloway M., Kraemer R. Biological basis of behaviour in Corbicula fluminea. Functional morphology of reproduction and development and review of evidence for self-fertilization // Proc Second Int Malacological Bulletin Special Ed. 1986. Vol. 2. P. 193-202.

128. Krieger J., Hett A.K., Fuerst P.A., Birstein V.J., Ludwig A. Unusual intraindividual variation of the nuclear 18S rRNA gene is widespread within the Acipenseridae // Journal of Heredity. 2006. Vol. 97. P. 218-225.

129. Kropotin A.V., Bespalaya Y.V. Cytogenetic characteristics of invasive Corbicula fluminalis (Bivalvia: Cyrenidae) of the Northern Dvina River basin // Ecologica Montenegrina. 2023. Vol. 68. P. 97-102.

130. Kropotin A.V., Bespalaya Y.V., Aksenova O.V., Bolotov I.N. Reproductive Mode of Corbicula tobae (Martens, 1900): Brooding and Larval Morphology in Lake Toba (Indonesia) // Diversity-Basel. 2022. Vol. 14, № 9. № article 700.

131. Kropotin A.V., Bespalaya Y.V., Aksenova O.V., Kondakov A.V., Aksenov A.S., Khrebtova I.S., Palatov D.M., Travina O.V., Bolotov I.N. Genetic and morphological characterization of the invasive Corbicula lineages in European Russia // Water. 2023. Vol. 15, № 18. № article 3226.

132. Kropotin A.V., Bespalaya Y.V., Kondakov A.V., Khrebtova I.S., Vikhrev I.V., Bolotov I.N. Infection of Corbicula clams by trematode cercariae in Myanmar // Ecologica Montenegrina. 2023. Vol. 62. P. 1-11.

133. Kursalova V.I., Starobogatov Y.I. Mollusks of the genus Corbicula of the Antropogene of North and West Asia and Europe // Molluscs, trends, methods and results of their investigation. Fourth meeting on the Investigation of Molluscs. Moskva, 1971. P. 93-96.

134. Labecka A.M., Domagala J. Continuous reproduction of Sinanodonta woodiana (Lea, 1824) females: an invasive mussel species in a female-biased population // Hydrobiologia. 2018. Vol. 810. P. 57-76.

135. Lee T., Siripattrawan S., Ituarte C., Foighil O. Invasion of the clonal clams: Corbicula lineages in the New World // American Malacological Bulletin. 2005. № 20. P. 113-122.

136. Licht A., Win Z., Westerweel J., Cogné N., Morley C.K., Chantraprasert S., Poblete F., Ugrai T., Nelson B., Aung D.W., Dupont-Nivet G. Magmatic history of central Myanmar and implications for the evolution of the Burma Terrane // Gondwana Research. 2019. Vol. 87. P. 303-319.

137. Liquin F., Hünicken L.A., Arrighetti F., Davies D., Paolucci E.M., Sylvester F. Parasitism and fitness of invaders: oligochaete. Chaetogaster limnaei produces gill damage and increased respiration rates in freshwater Asian clams // Hydrobiologia. 2021. Vol. 848. P. 2213-2223.

138. Lobo J., Costa P.M., Teixeira M.A., Ferreira M.S.G., Costa M.H., O Costa F. Enhanced primers for amplification of DNA barcodes from a broad range of marine metazoans // BMC ecology. 2013. Vol. 13, № 1. P. 1-8.

139. Lois S. New records of Corbicula fluminea (Müller, 1774) in Galicia (Northwest of the Iberian Peninsula): Mero, Sil and Deva rivers // Aquatic Invasions. 2010. Vol. 5. P. 17-20.

140. Lokki J. Genetic polymorphism and evolution in parthenogenetic animals. VIII. Heterozygosity in relation to polyploidy // Hereditas. 1976. Vol. 83. P. 65-72.

141. Lopes-Lima M., Hattori A., Kondo T., Lee J.H., Kim S.K., Shirai A., et al. Freshwater mussels (Bivalvia: Unionidae) from the rising sun (Far East Asia): phylogeny, systematics, and distribution // Molecular Phylogenetics and Evolution. 2020. Vol. 146. 106755.

142. Lowe S., Browne M., Boudjelas S., de Poorter M. 100 of the World's worst invasive alien species: a selection from the Global Invasive Species Database // Aliens. 2000. Vol. 12. P. 1-12.

143. Lucy F., Karatayev A.Y., Burlakova L.E. Predictions for the spread, population density, and impacts of Corbicula fluminea in Ireland // Aquatic Invasions. 2012. Vol. 7. P. 465-474.

144. Mandahl-Barth G. Studies on African freshwater bivalves // Danish Bilharziasis Laboratory. Charlottenlund, 1988. 161 pp.

145. Mandic O., Pavelic D., Harzhauser M., Zupanic J., Reischenbacher D., Sachsenhofer R.F., Tadej N., Vranjkovic A. Depositional history of the Miocene Lake Sinj (Dinaride Lake System, Croatia): A long-lived hard-water lake in a pullapart tectonic setting // Journal of Paleolimnology. 2008. Vol. 41. P. 431-52.

146. Marescaux J., Pigneur L-M., Van Doninck K. New records of Corbicula clams in French rivers // Aquatic Invasions. 2010. Vol. 5. P. 35-39.

147. Masters J.C., de Wit M.J., Asher R.J. Reconciling the origins of Africa, India, and Madagascar with vertebrate dispersal scenarios // Folia Primatologica. 2006. Vol. 77: 399-418.

148. Maurya R., Gupta R., Saxena A.M. Taxonomic redescriptions and a review of the status of Prosorhynchoides spp. (Digenea: Bucephalidae) infecting some freshwater fishes of India // Comparative Parasitology. 2018. Vol. 85, № 2. P. 159-176.

149. Maynard S. J. The Evolution of Sex // Cambridge University Press: Cambridge, 1978.

150. McKone M., Halpern S. The evolution of androgenesis // The American Naturalist. 2003. Vol.161. P. 641-656.

151. McMahon R. Evolutionary and physiological adaptations of aquatic invasive animals: r-selection versus resistance // Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 2002. Vol. 59. P. 1235-1244.

152. McMahon R. Invasive characteristics of the freshwater bivalve Corbicula fluminea // Nonindigenous Freshwater Organisms Vectors, Biology and Impact. 1999. P. 315-343.

153. McMahon R. The occurrence and spread of the introduced Asiatic freshwater clam, Corbicula fluminea (Muller), in North America: 1924-1982 // Nautilus. 1982. Vol. 96. P. 134-141.

154. Miller M.A., Pfeiffer W., Schwartz T. Creating the CIPRES Science Gateway for inference of large phylogenetic trees // Gateway Computing Environments Workshop (GCE). - Text: electronic. 2010. P. 1-8.

155. Mills E.L., Leach J.H., Carlton J.T., Secor C.L. Exotic species in the Great Lakes - a history of biotic crises and anthropogenic introductions // Journal Great Lakes Research. 1993. Vol. 19. P. 1-54.

156. Mito T., Tanaka T., Aranishi F. Genetic variability and reproduction structure of Corbicula japonica in major fishing brackish lakes in Japan // Open Journal of Marine Science. 2014. Vol. 4. P. 174-184.

157. Modesto V., Ilarri M., Labecka A.M., Rodriguez N.F., Coughlan N.E., Liu X., Sousa R. What we know and do not know about the invasive Asian clam Corbicula fluminea // Hydrobiologia. 2023

158. Morhun H., Vinarski M.V., Labecka A.M., van der Velde G., Son M.O. Differentiation of European invasive clams of the genus Corbicula (Cyrenidae) using shell shape analysis // Journal of Molluscan Studies. 2022. Vol. 88. eyab045.

159. Morton B. Corbicula in Asia - an updated synthesis // American Malacological Bulletin. 1986. № 2. P.113-124.

160. Morton B. Polymorphism in Corbicula fluminea (Bivalvia: Corbiculidae) from Hong Kong // Malacological Review. 1987. Vol. 20. P. 105127.

161. Motokawa M. "Land emergence" and "Elevation shift" affect diversification: a new perspective toward understanding the high species diversity of terrestrial animals in Japan // Species diversity of animals in Japan. Diversity and commonality in animals. Tokyo, 2017. P. 3-23.

162. Mouthon J. Sur la pre'sence en France et au Portugal de Corbicula (Bivalvia, Corbiculidae) originaire d'Asie // Basteria. 1981. Vol. 45. P. 109-116.

163. Müller-Liebenau I., Heard W.H. Symbiocloeon: a new genus of Baetidae from Thailand (Insecta, Ephemeroptera) // Proceedings of the second international conference on Ephemeroptera. Warszawa-Krakow, 1979. P. 57-65.

164. Munjiu O., Shubernetski I. First record of Asian clam Corbicula fluminea (Müller, 1774) in the Republic of Moldova // Aquatic Invasions. 2010. Vol. 5. P. 67-70.

165. Muñoz G., Valdivia I., López Z. The life cycle of Prosorhynchoides carvajali (Trematoda: Bucephalidae) involving species of bivalve and fish hosts in the intertidal zone of central Chile // Journal of Helminthology. 2015. Vol. 89, № 5. P. 584-592.

166. Myers N., Mittermeier R.A., Mittermeier C.G. Biodiversity hotspots for conservation priorities // Nature. 2000. Vol. 403. P. 853-858.

167. Nabozhenko M.V., Nabozhenko S.V. Corbicula fluminalis (O.F. Müller 1774), A new clam species for the Russian Sector of the Caspian Basin // Science in the South Russia. 2016. Vol. 12. P. 61-64.

168. Nanbu R., Mizuno T., Sekiguchi H. Post-settlement growth and mortality of brackish water clam Corbicula japonica in the Kiso Estuaries, Central Japan // Fisheries Science. 2008. Vol. 74. P. 1254-1268.

169. Nguyen L., De Pauw N. The invasive Corbicula species (Bivalvia, Corbiculidae) and the sediment quality in Flanders, Belgium // Belgian Journal of Zoology. 2002. Vol. 132. P. 41-48.

170. Nguyen L.T., Schmidt H.A., Von Haeseler A. IQ-TREE: a fast and effective stochastic algorithm for estimating maximum-likelihood phylogenies // Molecular biology and evolution. 2015. Vol. 32, № 1. P. 268-274.

171. Nishino M. Biodiversity // Lake Biwa: Interactions between Nature and People. Dordrecht, Heidelberg, New York and London. Springer, 2012.

172. Novais A., Souza A., Ilarri M., Pascoal C., Sousa R. From water to land: How an invasive clam may function as a resource pulse to terrestrial invertebrates // Science of The Total Environment. 2015. Vol. 538. P. 664-671.

173. Oliveira P., Lopes-Lima M., Machado J., Guilhermino L. Comparative sensitivity of European native (Anodonta anatina) and exotic (Corbicula fluminea) bivalves to mercury // Estuarine, Coastal and Shelf Science. 2015.

174. Otto S.P. The evolutionary consequences of polyploidy // Cell. 2007. Vol. 131. P. 452-462.

175. Otto S.P., Whitton J.Polyploid incidence and evolution // Annual Review of Genetics. 2000. Vol. 34. P. 401-437.

176. Park G.M., Chung E.Y. Molecular phylogenetics of five Corbicula species determined by partial 28S ribosomal RNA gene sequences // Journal of Shellfish Research. 2003. Vol. 22, № 2. P. 481-485.

177. Park J-K., Kim W. Two Corbicula (Corbiculidae: Bivalvia) mitochondrial lineages are widely distributed in Asian freshwater environment // Molecular Phylogenetics and Evolution. 2003. Vol. 29. P. 529-539.

178. Park J-K., Lee J., Kim W. A single mitochondrial lineage is shared by morphologically and allozymatically distinct freshwater Corbicula clones // Molecules and Cells. 2002. № 14. P. 318-322.

179. Paunovic M., Csanyi B., Knezevic S., Simic V., Nenadic D., Jakovcev-Todorovic D., Stojanovic B., Cakic P. Distribution of Asian clams Corbicula fluminea (Müller, 1774) and C. fluminalis (Müller, 1774) in Serbia // Aquatic Invasions. 2007. № 2. P. 99-106.

180. Penarrubia L., Araguas R., Vidal O., Pla C., Vinas J., Sanz N. Genetic characterization of the Asian clam species complex (Corbicula) invasion in the Iberian Peninsula // Hydrobiologia. 2017. Vol. 784. P. 349-365.

181. Pfenninger M., Reinhardt F., Streit B. Evidence for cryptic hybridization between different evolutionary lineages of the invasive clam genus Corbicula (Veneroida, Bivalvia) // Journal of Evolutionary Biology. 2002. № 15. P. 818-829.

182. Phelps H. L. The Asiatic clam (Corbicula fluminea) invasion and system-level ecological change in the Potomac River estuary near Washington, D.C // Estuaries. 1994. Vol. 17. P. 614-621.

183. Pholyotha A., Sutcharit C., Lin A., Panha S. Uncovering local endemism from southeastern Myanmar: description of the new karst-associated terrestrial snail genus Burmochlamys (Eupulmonata, Helicarionidae) // ZooKeys. 2022. Vol. 1110. P. 1-37.

184. Pi J., Tang Y., Coughlan N.E., Liu L., Wang X., Liu X., Xiang J., Li D. Temperature drives reproductive activity in a rare trioecy population of Corbicula clams // Hydrobiologia. 2023.

185. Pigneur L-M., Etoundi E., Aldridge D., Marescaux J., Yasuda N., Van Doninck K. Genetic uniformity and long-distance clonal dispersal in the invasive androgenetic Corbicula clams // Molecular Ecology. 2014. № 23. P. 5102-5116.

186. Pigneur L-M., Hedtke S., Etoundi E., Van Doninck K. Androgenesis: a review through the study of the selfish shellfish Corbicula spp // Heredity. 2012. Vol. 108. P. 581-591.

187. Pigneur L-M., Marescaux J., Roland K. Phylogeny and androgenesis in the invasive Corbicula clams (Bivalvia, Corbiculidae) in Western Europe // BMC Evolutionary Biology. 2011. Vol. 11. 147 p.

188. Prashad B. Revision of the Asiatic species of the genus Corbicula. I. The Indian species of Corbicula // Memoirs of the Indian Museum. 1928a. Vol. 9. P. 13-27.

189. Prashad B. Revision of the Asiatic species of the genus Corbicula. II. The species of the genus Corbicula // Memoirs of the Indian Museum. 1928b. Vol. 9. P. 29-48.

190. Prashad B. Revision of the Asiatic species of the genus Corbicula. III. The Indo-Chinese species of the genus Corbicula from China south-eastern Russia, Tibet, Formosa and the 124 Corbicula symposium Philippine Islands // Memoirs of the Indian Museum. 1929. Vol. 9. P. 49-68.

191. Prashad B. Zoological results of a tour in the Far East. Revisions of the Japanese species of the genus Corbicula // Memoirs of the Asiatic Society of Bengal. 1924. Vol. 4. P. 522-529.

192. Prokopovich N.P., Herbert D.J. Sedimentation in the Delta-Mendota Canal // Journal of American Water Works Association. 1965. Vol. 57. P. 375-382.

193. Pryanichnikova E.G., Voroshilova I.S., Sabitova R.Z. Introduction of Corbicula fluminea (Müller, 1774) (Mollusca: Bivalvia: Corbiculidae) in the Volga River Basin // Inland Water Biology. 2019. Vol. 12. P. 95-97.

194. Qiu A., Shi A., Komaru A. Yellow and brown shell colour morphs of Corbicula fluminea (Bivalvia: Corbiculidae) from Sichuan Province, China, are triploids and tetraploids // Journal of Shellfish Research. 2001. Vol. 20. P. 323328.

195. Rajagopal S., van der Velde G., bij de Vaate A. Reproductive biology of the Asiatic clams Corbicula fluminalis and Corbicula fluminea in the river Rhine // Archiv für Hydrobiologie. 2000. Vol. 149. P. 403-420.

196. Rakotoarivelo A.R., Goodman S.M., Schoeman M.C., Willows-Munro S. 2019. Phylogeography and population genetics of the endemic Malagasy bat, Macronycteris commersoni s.s. (Chiroptera: Hipposideridae) // PeerJ Vol. 7:e5866.

197. Rambaut A., Drummond A.J., Xie D., Baele G., Suchard M.A. Posterior summarisation in Bayesian phylogenetics using Tracer 1.7 // Systematic Biology. 2018. Vol. 67, № 5. P. 901-904.

198. Reeves C. The position of Madagascar within Gondwana and its movements during Gondwana dispersal // Journal of African Earth Sciences 2014. Vol. 94. P. 45-57.

199. Reichard M., Liu H., Smith C. The Co-Evolutionary Relationship between Bitterling Fishes and Freshwater Mussels: Insights from Interspecific Comparisons // Evolutionary Ecology Research. 2007. Vol. 9. P. 1-21.

200. Reid C. The origin of the British flora // Dulau & Co. London UK, 1899. 191 p.

201. Revenga C., Kura Y. Status and trends of biodiversity of inland water ecosystems // CBD techni. 2003. 120 p.

202. Ricciardi A., Blackburn T.M., Carlton J.T., Dick J.T.A., Hulme P.E., Iacarella J.C., Jeschke J.M., Liebhold A.M., Lockwood J.L., MacIsaac H.J., Pysek P., Richardson D.M., Ruiz G.M., Simberloff D., Sutherland W.J., Wardle D.A., Aldridge D.C. Invasion science: a horizon scan of emerging challenges and opportunities // Trends in Ecology & Evolution. 2017. Vol. 32, № 6. P. 464-474.

203. Rintelen T. V., Glaubrecht, M. Gene trees and species trees - a case study from a species flock of viviparous freshwater gastropods (Caenogastropoda: Cerithioidea: Pachychilidae) from the ancient lakes of Sulawesi, Indonesia. P. 110, in: B. T. DILLON, ed., Abstracts of the 68" meeting of the American Malacological Society. Charleston, South Carolina: American Malacological Society. 2002. 124 p

204. Rintelen T. V., Glaubrecht M. On the reproductive anatomy of freshwater gastropods of the genera Brotia H. Adams, 1866 and Tylomelania Sarasin & Sarasin, 1897 in the central lakes on Sulawesi, Indonesia (Cerithioidea: Melanatriidae) // Courier Forschungs-Institut Senckenberg. 1999. Vol. 215. P. 163169.

205. Roditi H.A., Strayer D.L., Findlay S.E. Characteristics of zebra mussel (Dreissena polymorpha) biodeposits in a tidal freshwater estuary // Archiv fur Hydrobiologie. 1997. Vol. 140. P. 207-219.

206. Ronquist F., Teslenko M., Van Der Mark P., Ayres D.L., Darling A., Höhna S., Larget B., Liu L., Suchard M.A., Huelsenbeck J.P. MrBayes 3.2: Efficient Bayesian Phylogenetic Inference and Model Choice Across a Large Model Space // Systematic Biology. 2012. Vol. 61, № 3. P. 539-542.

207. Ruiz G., Carlton J.T., Grosholz E.D., Hines A.H. Global invasions of marine and estuarine habitats by non-indigenous species: mechanisms, extent, and consequences // American Zoologist. 1997. Vol. 37. P. 621-632.

208. Rybalkina (Dzyuba) S.M., Maiorova M.A., Anisimov A.P., Kravchenko D.N. The gametogenesis and sexual cycle of the bivalve Corbicula japonica Prime (1864) in the mouth of the Kievka River (Sea of Japan) // Russian Journal of Marine Biology. 2013. Vol. 39. P. 253-264.

209. Sagata N. Meiotic metaphase arrest in animal oocytes: its mechanisms and biological significance // Trends in Cell Biology. 1996. № 6. P. 22-28.

210. Sakai A.K., Allendorf F.W., Holt J.S. The population biology of invasive species // Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics. 2001. Vol. 32. P. 305-332.

211. Sharma P.P., Zardus J.D., Boyle E.E., González V.L., Jennings R.M., McIntyre E., Wheeler W.C., Etter R.J., Giribet G. Into the deep: A phylogenetic approach to the bivalve subclass Protobranchia // Molecular Phylogenetics and Evolution. 2013. Vol. 69. P. 188-204.

212. Simard M., Paquet A., Jutras C., Robitaille Y., Blier P.U., Courtois R., Martel A.L. North American range extension of the invasive Asian clam in a St. Lawrence River power station thermal plume // Aquatic Invasions. 2012. Vol. 7. P. 81-89.

213. Simberloff D., Jean-Louis M., Genovesi P., Maris V., Wardle D.A., Aronson J., Courchamp F., Galil B., García-Berthou E., Pascal M., Pysek P., Sousa R., Tabacchi E., Vilá M. Impacts of biological invasions: what's what and the way forward // Trends in Ecology & Evolution. 2013. Vol. 28. P. 58-66.

214. Siripattrawan S., Park J., Foighil D. Two lineages of the introduced Asian freshwater clam Corbicula occur in North America // Journal of Molluscan Study. 2000. Vol. 66. P. 423-429.

215. Skuza L., Labecka A., Domagaa J. Cytogenetic and morphological characterization of Corbicula fluminalis (O. F. Muller, 1774) (Bivalvia: Veneroida:

Corbiculidae): taxonomic status assessment of a freshwater clam // Folia Biologica. 2009. Vol. 57. P. 177-185.

216. Sousa R., Antunes C., Guilhermino L. Ecology of the invasive Asian clam Corbicula fluminea (Muller, 1774) in aquatic ecosystems: an overview // International Journal of Limnology. 2008a. Vol. 44. P. 85-94.

217. Sousa R., Nogueira A.J., Gaspar M.B. Growth and extremely high production of the non-indigenous invasive species Corbicula fluminea (Muller, 1774): possible implications for ecosystem functioning // Estuarine, Coastal and Shelf Science. 2008b. Vol. 80. P. 289-295.

218. Sousa R., Novais A., Costa R., Strayer D.L. Invasive bivalves in fresh waters: impacts from individuals to ecosystems and possible control strategies // Hydrobiologia. 2014. Vol. 735. P. 233-251.

219. Sousa R., Varandas S., Cortes R., Teixeira A., Lopes-Lima M., Machado J., Guilhermino L. Massive die-offs of freshwater bivalves as resource pulses. Annales de Limnologie // International Journal of Limnology. 2012. Vol. 48. P. 105-112.

220. Stachowicz J., Byrnes J. Species diversity, invasion success, and ecosystem functioning: disentangling the influence of resource competition, facilitation, and extrinsic factors // Marine Ecology Progress Series. 2006. Vol. 311. P. 251-262.

221. Stepien C., Hubers A., Skidmore J. Diagnostic genetic markers and evolutionary relationships among invasive Dreissenoid and Corbiculoid bivalves in North America: phylogenetic signal for mitochondrial 16S rDNA // Molecular Phylogenetics and Evolution. 1999. Vol. 13. P. 31-49.

222. Strasser M. Mya Arenaria - an ancient invader of the North Sea coast // Helgoland Marine Research. 1999. Vol. 52. P. 309-324.

223. Strayer D.L. Effects of alien species on freshwater mollusks in North America // Journal of the North American Benthological Society. 1999. Vol. 18. P. 74-98.

224. Suchard M.A., Lemey P., Baele G., Ayres D.L., Drummond A.J., Rambaut A. Bayesian phylogenetic and phylodynamic data integration using BEAST 1.10 // Virus Evolution. 2018. Vol. 4, № 1. vey016.

225. Sutcharit C., Jeratthitikul E., Pholyotha A., Lin A., Panha S. Molecular phylogeny reveals high diversity and endemism in the limestone karst-restricted land snail genus Sophina Benson, 1859 from Myanmar (Eupulmonata: Helicarionidae), with description of four new species // Journal of Zoological Systematics and Evolutionary Research. 2020. Vol. 58, № 4. P. 957-981.

226. Sweeney P. First record of Asian clam Corbicula fluminea (Muller, 1774) in Ireland // Irish Naturalists'Journal. 2009. Vol. 30, № 2. P. 147-148.

227. Swinnen F, Leynen M, Sablon R.D., Vanmaele R. The Asiatic clam Corbicula (Bivalvia: Corbiculidae) in Belgium // Bulletin de l'Institut Royal des Sciences Naturelles de Belgique Biologie. 1998. Vol. 68. P. 47-53.

228. Sylvester F., Boltovskoy D., Cataldo D. Fast response of freshwater consumers to a new trophic resource: predation on the recently introduced Asian bivalve Limnoperna fortunei in the lower Parana' River, South America // Austral Ecology. 2007. Vol. 32. P. 403-415.

229. Tabata R., Kakioka R., Tominaga K., Komiya T., Watanabe K. Phylogeny and historical demography of endemic fishes in Lake Biwa: the ancient lake as a promoter of evolution and diversification of freshwater fishes in western Japan // Ecology and Evolution. 2016. Vol. 6, №. P. 2601-2623.

230. Tamura K., Stecher G., Kumar S. MEGA11: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 11 // Molecular Biology and Evolution. 2021. Vol. 38, № 7. P. 3022-3027.

231. Tang C. Some larval trematodes from marine bivalves of Honk Kong and freshwater bivalves of costal China // The Marine Flora and Fauna of Hong Kong and Southern China III. 1992. Vol. 1. P. 17-29.

232. Taskinen J., Urbanska M., Ercoli F., Andrzejewski W., Ozgo M., Deng B., Choo J.M., Riccardi N. Parasites in sympatric populations of native and invasive freshwater bivalves // Hydrobiologia. 2021. Vol. 848. P. 3167-3178.

233. Tiemann J.S., Haponski A.E., Douglass D.A., Lee T., Cummings K.S., Davis M.A., Foighil D.Ó. First record of a putative novel invasive Corbicula lineage discovered in the Illinois River, Illinois, USA // BioInvasions Records. 2017. Vol. 6, № 2. P. 159-166.

234. Torchin M.M., Lafferty K.K., Dobson A.A. Introduced species and their missing parasites // Nature. 2003. Vol. 421. P. 628-630.

235. Torres-Zevallos U.A. First observations of the "Asian clam" Corbicula fluminea (Müller, 1774) (Veneroida: Cyrenidae) in a ditch of the Mala river Lima, Peru // The Biologist (Lima). 2018. Vol. 16, № 2. P. 335-345.

236. Trifinopoulos J., Nguyen L.T., von Haeseler A., Minh B.Q. W-IQ-TREE: a fast online phylogenetic tool for maximum likelihood analysis // Nucleic acids research. 2016. Vol. 44, № W1. P. W232-W235.

237. Ueji T. Fresh-water Fossil Molluscs from Kitamatsuura Coal-Field, Northern Kyushu, Japan // Venus. 1934. Vol. 4, № 6. P. 341-350.

238. Upchurch P. Gondwana break-up: legacies of a lost world? // Trends in Ecology and Evolution. 2008. Vol. 23. P. 229-236

239. Vastrade M., Etoundi E., Bournonville T., Colinet M., Debortoli N., Hedtke S.M., Nicolas E., Pigneur L-M., Virgo J., Flot J-F., Marescaux J., Van Doninck K. Substantial genetic mixing among sexual and androgenetic lineages within the clam genus Corbicula // bioRxiv. 2022. 590836.

240. Vaughn C.C., Hakenkamp C.C. The functional role of burrowing bivalves in freshwater ecosystems // Freshwater Biology. 2001. Vol. 46. P. 1431 -1446.

241. Veitenheimer-Mendes I. Corbicula manilensis (Philippi, 1844) molusco asiático, na bacia do Jacuí e do Guaíiba, Río Grande do Sul, Brasil (Bivalvia, Corbiculidae) // Iheringia. 1981. Vol. 60. P. 63-74.

242. Vences M., Wollenberg K. C., Vieites D.R., Lees D.C. Madagascar as a model region of species diversification // Trends in Ecology and Evolution 2009. Vol. 24 № 8.

243. Verbrugge L.N., Schipper A.M., Huijbregts M.A. Sensitivity of native and non-native mollusc species to changing river water temperature and salinity // Biological Invasions. 2011. № 14. P.1187-1199

244. Vermeij G. J. An agenda for invasion biology // Biological Conservation. 1996. Vol. 78. P. 3-9.

245. Villesen P. FaBox: an online toolbox for fasta sequences // Molecular Ecology. 2007. Vol. 7, № 6. P. 965-968.

246. Vinarski M.V., Andreev N.I., Andreeva S.I., Kazantsev I.E., Karimov A.V., Lazutkina E.A. Alien mollusk species in the aquatic ecosystems of Western Siberia: a review // Russian Journal of Biological Invasions. 2015. Vol. 6. P. 137147.

247. Voroshilova I.S., Pryanichnikova E.G., Prokin A.A., Sabitova R.Z., Karabanov D.P., Pavlov D.D., Kurina E.M. Morphological and genetic traits of the first invasive population of the Asiatic clam Corbicula fluminea (O.F. Müller, 1774) naturalized in the Volga River basin // Russian Journal of Biological Invasions. 2021. Vol. 12. P. 36-43.

248. Wang J.P., Li D.L., Zeng C., Zhu P-F., Zhan J.F. Genetic diversity and reproductive characteristics of Corbicula fluminea from the Laodao river in Liuyang city [J] // Acta Hydrobiologica Sinica. 2018. Vol. 42, № 5. P. 913-918.

249. Wang J.P., Zhang T., Zhang J., Li D.L., Xiao T.Y. Morphological and molecular differentiation of genus Corbicula suggests that two species are sympatrically distributed in Datong Lake in the Central Yangtze River Basin. Zoological Studies. 2014. Vol. 53, art. 64.

250. Watanabe K., Takahashi H., Kitamura A., Yokoyama R., Kitagawa T., Takeshima H., Sato S., Yamamoto S., Takehana Y., Mukai T., Ohara K., Iguchi K. Biogeographical history of Japanese freshwater fishes: phylogeographic approaches and perspectives // Japanese Journal of Ichthyology. 2006. Vol. 53. P. 1-38.

251. Westerweel J., Licht A., Cogné N., Roperch P., Dupont-Nivet G., Thi M.K., Swe H.H, Huang H., Win Z., Aung D.W. Burma Terrane collision and

northward indentation in the Eastern Himalayas recorded in the Eocene-Miocene Chindwin Basin (Myanmar) // Tectonics. 2020. Vol. 39. e2020TC006413.

252. Williams S. T. Molluscan shell colour // Biological Reviews. 2017. Vol. 92. P. 1039-1058.

253. Wisniewski J.M., Bockrath K.D., Wares J.P., Fritts A.K., Hill M.J. The Mussel-Fish Relationship: A Potential New Twist in North America? // Transactions of the American Fisheries Society. 2013. Vol. 142. P. 642-8.

254. Yamada M., Ishibashi R., Toyoda K., Kawamura K., Komaru A. Phylogeography of the Brackish Water Clam Corbicula japonica Around the Japanese Archipelago Inferred from Mitochondrial COII Gene Sequences // Zoological Science. 2014. Vol. 31, № 3. P. 168-179.

255. Yu Y., Blair C., He X.J. RASP 4: Ancestral State Reconstruction Tool for Multiple Genes and Characters // Molecular Biology and Evolution. 2020. Vol. 37, № 2. P. 604-606.

256. Zhivoglyadova L.A., Revkov N.K. First records of Corbicula fluminea (O.F. Müller, 1774) (Mollusca: Bivalvia) from the Lower Don // Ecologica Montenegrina. 2018. Vol. 17. P. 46-52.

257. Zhivoglyadova L.A., Revkov N.K. Invasion of the bivalve Corbicula fluminea (O.F. Müller, 1774) (Bivalvia: Cyrenidae) into the lower Don Basin // Aquatic Bioresources & Environ. 2018. Vol. 1. P. 44-50.

258. Zhivoglyadova L.A., Revkov N.K., Kovalev E.A. Extension of the bivalve Corbicula fluminea (O. F. MÜLLER, 1774) areal in the lower Don River system // Journal of marine biology. 2018. Vol. 3. P. 73-75.

259. Zhu G.X., Zhou Y.Z. Fresh-water molluscan fauna across Jurassic-Cretaceous boundary in southeast Jilin // Acta Palaeontologica Sinica. 1988. Vol. 27, № 6. P. 713-721. pl. 2, figs 3-6.

ПРИЛОЖЕНИЯ

Таблица 1. Перечень отсеквенированных образцов моллюсков рода Corbicula и дополнительных последовательностей COI мтДНК и 28s рРНК, полученных из NCBI GenBank, использованных для построения филогенетических деревьев и медианной сети гаплотипов, с указанием номера, кода образца, информации о локалитете.

Вид Номер в GenBank Номер образца Локалитет Источник

COI 28S

Corbicula fluminalis KX192335 KX347246 MCorb01 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

Corbicula fluminea KX192336 KX347247 MCorb02 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

Corbicula fluminalis KX192337 MG757355 MCorb03/1 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

Corbicula fluminalis KX192338 MG757356 MCorb03/2 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

Corbicula fluminalis KX192339 - MCorb04/1 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

Corbicula fluminalis KX192340 - MCorb04/2 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

Corbicula fluminalis KX192341 - MCorb05/1 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

Corbicula fluminalis KX192342 - MCorb05/2 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

Corbicula fluminalis KX192343 - MCorb06 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

Corbicula fluminalis KX192344 - MCorb07 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

Corbicula fluminalis KX192345 - MCorb08 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СогЫеи1а АиттаИя КХ192346 КХ347248 МСогЬ11/1 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СогЫеи1а АиштаНя КХ192347 МС757357 МСогЬ11/2 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СогЫеи1а АиштаНя КХ192348 МС757358 МСогЬ12/1 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СогЫеи1а АиштаНя КХ192349 МС757359 МСогЬ12/2 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СогЫеи1а АиштаНя КХ192350 М0757360 МСогЬ12/3 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СогЫеи1а АиштаНя КХ192351 МС757361 МСогЬ12/4 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СогЫеи1а АиштаНя КХ192352 - МСогЬ12/5 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СогЫси1а Аиштва КХ192353 КХ347249 МСогЬ13 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СогЫси1а Аиштва КХ192354 КХ347250 МСогЬ14 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СогЫси1а АиштаНя КХ192335 КХ347246 МСогЬ01 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СотЫси1а вШют М2425203 М2427282 МСогЬ 15 Россия: г. Николаевск-на-Амуре, река Амур Наши данные

СогЫси1а вШют М2425204 М2427283 МСогЬ15/2 Россия: г. Николаевск-на-Амуре, река Амур Наши данные

СотЫси!а в1аИот М2425205 М2427284 МСогЬ15/3 Россия: г. Николаевск-на-Амуре, река Амур Наши данные

СогЫеи1а вШют М2425206 М2427285 МСогЬ15/4 Россия: г. Николаевск-на-Амуре, река Амур Наши данные

СогЫеи1а вШют М2425207 М2427286 МСогЬ15/5 Россия: г. Николаевск-на-Амуре, река Амур Наши данные

СогЫеи1а вШют М2425208 М2427287 МСогЬ15/6 Россия: г. Николаевск-на-Амуре, река Амур Наши данные

СотЫеи1а вШют М2425209 М2427288 МСогЬ15/7 Россия: г. Николаевск-на-Амуре, река Амур Наши данные

СотЫеи1а вШют М2425210 МСогЬ15/8 Россия: г. Николаевск-на-Амуре, река Амур Наши данные

СотЫеи1а в1аИот М2425211 МСогЬ15/9 Россия: г. Николаевск-на-Амуре, река Амур Наши данные

СотЫеи1а в1аИот М2425212 МСогЬ15/10 Россия: г. Николаевск-на-Амуре, река Амур Наши данные

СотЫеи1а 1вапа МШ46814 МШ95581 МСогЬ16 Индонезия: Суматра, озеро Тоба Наши данные

СотЫеи1а 1вапа МШ46815 МШ95582 МСогЬ16/2 Индонезия: Суматра, озеро Тоба Наши данные

СотЫеи1а 1вапа МШ46816 - МСогЬ16/3 Индонезия: Суматра, озеро Тоба Наши данные

СотЫеи1а 1вапа МШ46817 - МСогЬ16/4 Индонезия: Суматра, озеро Тоба Наши данные

СотЫеи1а 1вапа МШ46818 - МСогЬ16/5 Индонезия: Суматра, озеро Тоба Наши данные

СотЫси1а ЮЪав МШ46819 МШ95583 МСогЬ17 Индонезия: Суматра, озеро Тоба Наши данные

СотЫси1а ЮЪав МШ46820 МШ95584 МСогЬ17/2 Индонезия: Суматра, озеро Тоба Наши данные

СотЫси1а ЮЪав МШ46821 - МСогЬ17/3 Индонезия: Суматра, озеро Тоба Наши данные

СотЫси1а ЮЪав МШ46822 МШ95585 МСогЬ17/4 Индонезия: Суматра, озеро Тоба Наши данные

СотЫси1а ЮЪав МШ46823 - МСогЬ17/5 Индонезия: Суматра, озеро Тоба Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252880 - МСогЬ18 Мьянма: река Коклу Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252881 - МСогЬ18/2 Мьянма: река Коклу Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252882 - МСогЬ19 Мьянма: река Коклу Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252883 - МСогЬ19/2 Мьянма: река Коклу Наши данные

СотЫси1а 1вапа - - МСогЬ20 Мьянма: река Лемро Наши данные

СотЫси1а Бр.1 - - МСогЬ20/2 Мьянма: река Лемро Наши данные

СотЫси1а Бр.1 - - МСогЬ20/3 Мьянма: река Лемро Наши данные

СотЫси1а Бр.1 - - МСогЬ20/4 Мьянма: река Лемро Наши данные

СотЫси1а 1вапа КУ021080 КУ021082 МСогЬ21/1 Мьянма: Змеиный ручей Наши данные

СотЫси1а 1вапа КУ021081 КУ021083 МСогЬ21/2 Мьянма: Змеиный ручей Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252884 - МСогЬ23/1 Малайзия: река Перак Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252885 - МСогЬ23/2 Малайзия: река Перак Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252886 - МСогЬ24/2 Малайзия: река Перак Наши данные

СотЫси1а АиштаНя 0Я252887 - МСогЬ26 Таджикистан: Заповедник Тигровая Балка Наши данные

СотЫси1а АиштаНя 0Я252888 0Я252261 МСогЬ31/1 Турция: река Карасу Наши данные

СотЫси1а АиштаНя 0Я252889 0Я252262 МСогЬ31/2 Турция: река Карасу Наши данные

СотЫси1а АиштаНя 0Я252890 0Я252263 МСогЬ31/3 Турция: река Карасу Наши данные

СотЫси1а АиштаНя 0Я252891 0Я252264 МСогЬ31/4 Турция: река Карасу Наши данные

СотЫси1а АиштаНя 0Я252892 0Я252265 МСогЬ32/1 Турция: река Карасу Наши данные

СотЫси!а АиштаНя 0Я252893 0Я252266 МСогЬ32/2 Турция: река Карасу Наши данные

СотЫеи1а /¡ишта^ ОЯ252894 ОЯ252267 МСогЬ32/3 Турция: река Карасу Наши данные

СотЫеи1а /¡ишта^ ОЯ252895 ОЯ252268 МСогЬ32/4 Турция: река Карасу Наши данные

СотЫеи1а ¡ашатеИапа - - МСогЬ33/1 Таиланд: река Фонг Наши данные

СотЫеи1а ¡ашатеИапа - - МСогЬ33/2 Таиланд: река Фонг Наши данные

СотЫеи1а ¡ашатеИапа - - МСогЬ33/3 Таиланд: река Фонг Наши данные

СотЫеи1а ¡ашатеИапа - - МСогЬ33/4 Таиланд: река Фонг Наши данные

СотЫеи1а ¡ашатеИапа - - МСогЬ33/5 Таиланд: река Фонг Наши данные

СотЫеи1а ¡ашатеИапа - - МСогЬ34/2 Таиланд: река Лоэй Наши данные

СотЫеиШ е£ Ыап&апа - - МСогЬ35/1 Таиланд: река Чи Наши данные

СотЫеиШ е£ Ыап&апа - - МСогЬ35/2 Таиланд:река Чи Наши данные

СотЫеиШ е£ Ыап&апа - - МСогЬ35/3 Таиланд: река Чи Наши данные

СотЫеиШ е£ Ыап&апа - - МСогЬ35/4 Таиланд: река Чи Наши данные

СотЫеиШ е£ Ыап&апа - - МСогЬ35/5 Таиланд: река Чи Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252896 ОЯ252269 МСогЬ37/1 Канада: озеро Кавакава Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252897 ОЯ252270 МСогЬ37/2 Канада: озеро Кавакава Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252898 ОЯ252271 МСогЬ38/1 Канада: озеро Кавакава Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252899 ОЯ252272 МСогЬ38/2 Канада: озеро Кавакава Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252900 ОЯ252273 МСогЬ38/3 Канада: озеро Кавакава Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252901 - МСогЬ39 США: река Чехалис Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252902 - МСогЬ40 США: река Чехалис Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252903 ОЯ252274 МСогЬ42 Канада: озеро Питт Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252904 ОЯ252275 МСогЬ43 Канада: озеро Питт Наши данные

СотЫеиШ /¡ишта^ МС759517 - МСогЬ52/1 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СотЫеиШ /¡ишта^ МС759518 - МСогЬ52/2 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва МС759519 МС757364 МСогЬ52/3 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СотЫеиШ /¡ишта^ М0759520 МС757365 МСогЬ52/4 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СотЫси1а Аиштва МС759521 МС757366 МСогЬ53 Россия: Архангельск, ТЭЦ-канал Наши данные

СотЫси1а ]аротса М2425213 М2427289 МСогЬ54 Россия: Приморский край, река Киевка Наши данные

СотЫси1а ]аротса М2425214 - МСогЬ55 Россия: Приморский край, река Киевка Наши данные

СотЫси1а е£ Ыап&апа - - МСогЬ56/1 Таиланд: ручей Чае Наши данные

СотЫси1а е£ Ыап&апа - - МСогЬ56/2 Таиланд: ручей Чае Наши данные

СотЫси1а е£ Ыап&апа - - МСогЬ56/3 Таиланд: ручей Чае Наши данные

СотЫси1а АиштаНя 0Я252905 - МСогЬ57/1 Мьянма: река Ситтаунг Наши данные

СотЫси1а АиштаНя 0Я252906 - МСогЬ57/2 Мьянма: река Ситтаунг Наши данные

СотЫси1а АиштаНя 0Я252907 - МСогЬ57/3 Мьянма: река Ситтаунг Наши данные

СотЫси1а Бр.2 - - МСогЬ58/2 Мьянма: деревня Даунг-Йет, река Билин Наши данные

СотЫси1а 1вапа - - МСогЬ58/3 Мьянма: деревня Даунг-Йет, река Билин Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252908 - МСогЬ58/4 Мьянма: деревня Даунг-Йет, река Билин Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252909 - МСогЬ59/1 Мьянма: Мандавай, река Иравади Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252910 - МСогЬ59/2 Мьянма: Мандавай, река Иравади Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252911 - МСогЬ61/1 Мьянма: ручей Син Хонг Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252912 - МСогЬ61/2 Мьянма: ручей Син Хонг Наши данные

СотЫси1а 1вапа - - МСогЬ62 Мьянма: река Хаунгтайо Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252913 - МСогЬ63 Мьянма: деревня НЫТ1 Баит§ руат§ Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252914 - МСогЬ64 Мьянма: ручей возле города Каукарейк Наши данные

СотЫси1а Аиштва 0Я252915 - МСогЬ65 Мьянма: река Мьитнге Наши данные

СотЫси!а laтgilliвтti - - МСогЬ66 Мьянма: река Иравади Наши данные

СотЫеиШ ¡aтgi¡¡iвтti - - МСогЬ67/1 Мьянма: река Салвен Наши данные

СотЫеиШ ¡aтgi¡¡iвтti - - МСогЬ67/2 Мьянма: река Салвен Наши данные

СотЫеиШ ¡вапа - - МСогЬ67/3 Мьянма: река Салвен Наши данные

СотЫеиШ ¡aтgi¡¡iвтti - - МСогЬ67/4 Мьянма: река Салвен Наши данные

СотЫеиШ /¡иштаШ ОЯ252916 - МСогЬ68 Мьянма: деревня Таунг Джи, старичное озеро Наши данные

СотЫеиШ ¡aтgi¡¡iвтti - - МСогЬ69/1 Мьянма Наши данные

СотЫеиШ ¡aтgi¡¡iвтti - - МСогЬ69/2 Мьянма Наши данные

СотЫеиШ /¡иштаШ ОЯ252917 - МСогЬ70/1 Мьянма: река Баго Наши данные

СотЫеиШ /¡иштаШ - - МСогЬ70/2 Мьянма: река Баго Наши данные

СотЫеиШ ¡вапа - - МСогЬ72 Мьянма: река Билин Наши данные

СотЫеиШ е£ ЫапЛапа - - МСогЬ73 Таиланд: река Мун Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252918 - МСогЬ74/1 Италия: Озеро Маджоре Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252919 - МСогЬ74/2 Италия: Озеро Маджоре Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252920 - МСогЬ74/3 Италия: Озеро Маджоре Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252921 - МСогЬ75/1 Италия: Озеро Маджоре Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252922 - МСогЬ75/2 Италия: Озеро Маджоре Наши данные

СотЫеиШ /¡иштва ОЯ252923 - МСогЬ75/3 Италия: Озеро Маджоре Наши данные

СотЫеиШ ¡вапа ОЯ252924 - МСогЬ76/1 Италия: Лукка, Ирригационный канал Наши данные

СотЫеиШ ¡вапа ОЯ252925 - МСогЬ76/2 Италия: Лукка, Ирригационный канал Наши данные

СотЫеиШ ¡вапа ОЯ252926 - МСогЬ76/3 Италия: Лукка, Ирригационный канал Наши данные

СотЫеиШ ¡вапа ОЯ252927 - МСогЬ77/1 Италия: Лукка, Ирригационный канал Наши данные

СотЫеиШ ¡вапа ОЯ252928 - МСогЬ78/1 Индия: река Ганг Наши данные

СотЫеиШ ¡вапа ОЯ252929 - МСогЬ78/2 Индия: река Ганг Наши данные