Терапевтическая эффективность препарата сальмогир® при гельминтозах рыб и его токсикологические свойства тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Сорокин Павел Антонович
Сорокин Павел Антонович
кандидат наук
2025
- Специальность ВАК РФ00.00.00
- Количество страниц 157
Оглавление диссертации кандидат наук Сорокин Павел Антонович
ВВЕДЕНИЕ
ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ
1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1 Краткие сведения о систематике, морфологии, биологии развития и распространенности исследуемых гельминтозов рыб
1.1.1 Семейство Gyrodacthylidae, род Gyrodactylus
1.1.2 Семейство Diplozoidae, род Diplozoon
1.1.3 Семейство Dactylogyridae, род Dactylogyrus
1.1.4 Семейство Diplostomidae, род Diplostomum
1.1.5 Семейство Dilepididae, род Valipora
1.2 Обзор используемых в рыбоводстве средств для борьбы с гельминтозами рыб
1.3 Сведения о действующем веществе препарата Сальмогир®
1.3.1 Краткая характеристика празиквантела
1.3.2 Использование празиквантела в ветеринарии
1.3.3 Эффективность празиквантела при гельминтозах рыб
1.3.4 Токсичность празиквантела для рыб
2 ОБЪЕКТ, МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1 Объект исследования
2.2 Материалы исследования
2.3 Методы исследований
2.3.1 Исследование острой токсичности препарата на рыбах
2.3.1.1 Определение острой токсичности препарата на карпах
2.3.1.2 Определение острой токсичности на гуппи Эндлера
2.3.2 Исследование переносимости препарата на рыбах
2.3.2.1 Исследование переносимости препарата на рыбах, выращиваемых в естественных и искусственных водоемах
2.3.2.2 Исследование переносимости препарата на декоративных рыбах
2.3.3 Определение оптимальных терапевтических доз и оценка эффективности применения препарата Сальмогир® при гельминтозах рыб, выращиваемых в естественных и искусственных водоемах
2.3.4 Оценка эффективности препарата Сальмогир® при дактилогирозе аквариумных рыб
2.3.5 Статистическая обработка данных
3 СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
3.1 Результаты определения острой токсичности препарата Сальмогир® для рыб
3.1.1 Острая токсичность препарата для карпов
3.1.2 Острая токсичность препарата для гуппи Эндлера
3.2 Результаты изучения переносимости препарата Сальмогир®
3.2.1 Переносимость препарата Сальмогир® карпами
3.2.2 Переносимость препарата Сальмогир® стерлядью
3.2.3 Переносимость препарата Сальмогир® форелью
3.2.4 Переносимость препарата Сальмогир® боцией мраморной
3.2.5 Переносимость препарата Сальмогир® гуппи Эндлера
3.2.6 Переносимость препарата Сальмогир® золотыми рыбками
3.2.7 Переносимость препарата Сальмогир® радужницами Боэсмана
3.2.8 Переносимость препарата Сальмогир® скаляриями обыкновенными
3.2.9 Переносимость препарата Сальмогир® сомиками коридорасами Венесуэльскими
3.2.10 Переносимость препарата Сальмогир® тернецией обыкновенной
3.3 Титрация дозы и оценка терапевтической эффективности препарата Сальмогир® при моногенеозах, трематодозах и цестодозах рыб, выращиваемых в естественных и искусственных водоемах
3.3.1 Определение эффективности препарата Сальмогир® при гиродактилезе
3.3.1.1 Эффективность препарата Сальмогир® при гиродактилезе карпов
3.3.1.1.1 Титрация дозы препарата Сальмогир® при гиродактилезе карпов
3.3.1.1.2 Определение эффективности препарата Сальмогир® при гиродактилезе карпов
3.3.1.2 Эффективность препарата Сальмогир® при гиродактилезе форели
3.3.2 Определение эффективности препарата Сальмогир® при диплозоонозе карпов
3.3.2.1 Титрация дозы препарата Сальмогир® при диплозоонозе карпов
3.3.2.2 Оценка терапевтической эффективности препарата Сальмогир® при диплозоонозе карпов
3.3.3 Определение эффективности препарата Сальмогир® при дактилогирозе карпов
3.3.3.1 Титрация дозы препарата Сальмогир® при дактилогирозе карпов
3.3.3.2 Оценка терапевтической эффективности препарата Сальмогир® при дактилогирозе карпов
3.3.4 Определение эффективности препарата Сальмогир® при диплостомозе карпов
3.3.4.1 Титрация дозы препарата Сальмогир® при диплостомозе карпов
3.3.4.2 Оценка терапевтической эффективности препарата Сальмогир® при диплостомозе карпов
3.3.5 Определение эффективности препарата Сальмогир® при валипорозе карпов
3.3.5.1 Титрация дозы препарата Сальмогир® при валипорозе карпов
3.3.5.2 Оценка терапевтической эффективности препарата Сальмогир® при валипорозе карпов
3.4 Оценка терапевтической эффективности препарата Сальмогир® при дактилогирозе аквариумных рыб
3.4.1 Определение эффективности препарата Сальмогир® при дактилогирозе моллинезий
3.4.2 Определение эффективности препарата Сальмогир® при дактилогирозе золотых рыбок
3.4.2.1 Эффективность препарата при однократной обработке
3.4.2.2 Эффективность препарата при двукратной обработке
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
РЕКОМЕНДАЦИИ И ПЕРСПЕКТИВЫ ДАЛЬНЕЙШЕЙ РАЗРАБОТКИ ТЕМЫ
ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ ПРАКТИКИ
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК
ПРИЛОЖЕНИЯ
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Другие cпециальности», 00.00.00 шифр ВАК
Терапевтическая эффективность препарата Эмикон® при крустацеозах пресноводных рыб и его фармако–токсикологические свойства2021 год, кандидат наук Корсакова Мария Валерьевна
Гельминтозы рыб в рыбохозяйственных водоемах Саратовской области2013 год, кандидат наук Вастьянова, Анна Анатольевна
Комплексный препарат на основе моксидектина и празиквантела в форме таблеток при гельминтозах собак и кошек2016 год, кандидат наук Смирнова, Евгения Сергеевна
Феномикс и альбен гранулы для терапии цестодозов рыб семейства карповых (Cyprinidae) и их фармакотоксикологическая характеристика2010 год, кандидат ветеринарных наук Ершова, Татьяна Анатольевна
Фармако - токсикологические свойства и эффективность препаратов на основе ивермектина при гельминтозах и арахноэнтомозах овец2022 год, доктор наук Енгашева Екатерина Сергеевна
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Терапевтическая эффективность препарата сальмогир® при гельминтозах рыб и его токсикологические свойства»
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность проблемы. Аквакультура является одной из самых быстро растущих отраслей сельско-хозяйственного производства в мире. Прогнозы многих экспертов показывают, что с ростом численности населения к 2030 году потребуется дополнительно 29 миллионов тонн рыбы в год, чтобы удовлетворить спрос (Cressey D., 2009). Согласно стратегии развития рыбохозяйственного комплекса Российской Федерации на период до 2030 года (от 26 ноября 2019), объем производства продукции товарной аквакультуры, включая посадочный материал, должен увеличиться почти вдвое, до 618 тыс. тонн.
В 2009 году мировое производство рыбы, ракообразных и моллюсков составило 55,7 млн тонн и оценивалось в 105,3 миллиарда долларов США (FAO, 2010). В 2020 году объем выращиваемой рыбной продукции достиг 57,5 млн тонн (146,1 млрд долларов США), дополнительно к которым было выращено 17,7 млн тонн моллюсков (29,8 млрд долларов США), в основном двустворчатых, и 11,2 млн тонн ракообразных (81,5 млрд долларов США) (FAO, 2022).
Кроме того, хотя торговля декоративными рыбами значительно уступает в объеме мировому производству пищевой рыбы, ее экономическое значение оценивается также высоко. Только в 2005 году глобальный экспорт и импорт декоративных рыб оценивались в 237 636 000 и 282 549 000 долларов США соответственно (European Commission, 2008). По данным на 2017 год в мире ежегодно продавалось порядка 1,5 миллиарда декоративных рыб (Stevens C. H. et al., 2017).
Объекты аквакультуры, как и другие животные, подвержены воздействию паразитарных организмов. Инвазионные заболевания наносят существенный экономический ущерб отрасли, ограничивая ее развитие и устойчивость и увеличивая производственные затраты (Whittington R.J. and Chong R., 2007; FAO, 2010; Peeler E. J. and Feist S. W., 2011; FAO, 2022).
Исследования, проводимые в различных рыбоводных хозяйствах на территории РФ, демонстрируют широкое распространение паразитозов рыб, в
частности вызываемых представителями, относящимися к плоским червям (моногенеи, трематоды и цестоды).
Кроме того, большое количество ввозимых на территорию страны декоративных рыб являются паразитоносителями, возбудители которых не выявляются при обследованиях, проводимых во время или через небольшое количество времени после транспортировки. Высокая плотность посадки, свойственная зоомагазинам и частным предпринимателям, также способствуют вспышкам паразитарных заболеваний.
При возникновении заболевания аквариумисты и рыбоводы имеют возможность воспользоваться лишь небольшим количеством средств и методов лечения, многие из которых недостаточно эффективны или не удобны в применении для борьбы с определенными видами, вызывающими паразитарные заболевания, при определенных условиях, свойственных хозяйству или частной аквариальной.
Распространенными методами лечения многих заболеваний является использование формалина, малахитового зеленого и перекиси водорода, которые высоко токсичны для рыб, а также для человека и окружающей среды, особенно в высоких дозах и при длительном многократном воздействии (Aldermann, 2009).
Для борьбы с диплостомозом и валипорозом рыб разработаны методы, обуславливающие применение препаратов исключительно в составе кормо-лекарственной смеси (КЛС). Однако применение такого вида лечения имеет ряд недостатков:
- карповые виды рыб не потребляют корм при низкой температуре воды, следовательно, рыбам можно задавать КЛС только в теплое время года;
- при высокой инвазии паразитами рыбы и вовсе могут отказываться от потребления корма или поедать его в меньшем количестве с дозой вещества, недостаточной для борьбы с определенным паразитом;
- для расчета количества препарата необходимо знать точный вес обрабатываемой партии рыбы, назвать который будет трудно любому аквариумисту;
- если в рыбоводных хозяйствах используют в основном гранулированные и экструдированные корма, нанесение препарата на которые имеет свои тонкости, но, в целом, не является сложным, то в аквариумистике каждый вид рыб порой потребляет свой вид кормов (замороженные, живые, гранулы, хлопья, водоросли и тд.), в который внести препарат в большинстве случаев не представляется возможным.
На данный момент на территории Российской Федерации для борьбы с заболеваниями рыб, вызванными плоскими гельминтами, имеется скудный ассортимент зарегистрированных лекарственных средств, включающих в себя 5 препаратов (4 для прудового рыбоводства и 1 для аквариумистики).
Феномикс и Альбен гранулы (разработчик: ООО «НВЦ Агроветзащита»), а также Микросал (разработчик: ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) используются в составе корма для борьбы только с цестодозами карповых рыб, возбудители которых паразитируют в кишечнике. Девастин (разработчик: ООО «НВЦ Агроветзащита») используется в составе ванн для обработки карповых рыб и применяется для борьбы с гиродактилезом и дактилогирозом.
До недавнего времени для борьбы с гельминтозами аквариумных рыб на российский рынок поступал широкий ассортимент лекарственных средств зарубежных производителей. Однако в настоящее время многие компании-производители этих средств ушли с российского рынка, соответственно выбор эффективных препаратов для этих целей стал весьма ограничен. Декоративное рыбоводство испытывает острую потребность в новых отечественных продуктах. Единственным зарегистрированным препаратом для борьбы с эктопаразитозами декоративных рыб является Антипар (разработчик: ООО «НВЦ Агроветзащита»), который, однако, применяется для борьбы только с эктопаразитозами и при передозировках может оказывать токсический эффект.
Весьма ограниченный ассортимент средств для борьбы с паразитозами и полное отсутствие препаратов для лечения диплозооноза, диплостомоза и валипороза побудили провести работу по разработке нового лекарственного препарата для борьбы с гельминтозами рыб, применяемого в виде лечебных ванн.
Степень разработанности темы исследования. Сведения о видовом составе и распространенности паразитических плоских гельминтов у рыб, а также об ущербе, наносимом данными паразитами, представлены во многих работах отечественных и зарубежных авторов (Жарикова Т.И., 1987; Schmahl G. and Taraschewski H., 1987; Карасев А.Б. и Митенев В.К., 1996; Thilakaratne I. et al., 2003; Корнюшин В.В. и др., 2004; Whittington R.J. and Chong R., 2007; Биттиров А.М. и др., 2008; Коротова Д.М. и Федотова Г.А., 2008; Hongslo T. and Jansson Е., 2009; Куликова Н.А. и др., 2009; Pugachev O. N. et al., 2010; Новак А.И., 2010; Давыдов О.Н. и др., 2012а; Грищенко Л.И., 2013; Катюха С. М. и Вознюк I. О., 2014; Румянцев Е.А., 2014; Соколов С.Г. и Фролова С.Е., 2015; Sokolov S. G. et al., 2015; Truter М. et al., 2016; Верланова О.А. и др., 2017; Головина Н.А. и др., 2017; Иешко Е.П. и др., 2017; Капустина Я.А. и др., 2017; Кузнецова Е.В., 2017а; Trajülo-González А. et al., 2018а; Ананьев И.С., 2019; Мельник В.С., 2019; Пояркова Т.А., 2019; Тихая Н.В. и Понамарев Н.М, 2019; Карпенко Н.И. и Судакова Н.В., 2020; Сорокин П.А. и Изотова Е.С., 2020; Карабекова Д.У. и Кылжырова Б., 2021; Кучбоев А.Э. и Соатов Б.Б., 2021; Хасбулатова З.А. и др., 2021; Хорошельцева В.Н. и др., 2021; Paladini G. et al., 2021; Авдеева Е.В. и Казимирченко О.В., 2022; Бычкова Е.И. и др., 2022; Иваницкая О.А. и др., 2022; Казарникова А.В. и Степанова Ю.В., 2022).
Целью настоящей работы является разработка и испытание современного противопаразитарного препарата, предназначенного для борьбы с гельминтозами карповых, лососевых и декоративных рыб, вызванными представителями классов Monogenea, Trematoda и Cestoda, методом лечебных ванн.
Задачи исследований. Для достижения цели были поставлены следующие задачи:
1. Разработать лекарственный препарат на основе празиквантела в форме раствора для наружного применения на рыбах в составе ванн.
2. Определить токсикологические параметры воздействия лекарственного препарата Сальмогир® на представителях прудовых и декоративных рыб в условиях острого эксперимента.
3. Определить переносимость лекарственного препарата на целевых видах рыб, выращиваемых в прудах и садках, и на декоративных рыбах.
4. Определить терапевтические дозы и установить эффективность лекарственного препарата Сальмогир® при моногенеозах, трематодозах и цестодозах прудовых и декоративных рыб.
Научная новизна. В России впервые разработан, изучен и внедрен в производство и ветеринарную практику для применения в составе ванн для лечения и профилактики моногенеозов, трематодозов и цестодозов карповых, лососевых и декоративных рыб препарат, содержащий в качестве действующего вещества водорастворимую форму празиквантела. Впервые зарегистрирован препарат для борьбы с диплозоонозом, диплостомозом и валипорозом, а также с гиродактилезом лососевых рыб, включенным в список ВОЗЖ и перечень заразных болезней животных, утвержденный Минсельхозом России.
На декоративных рыбах и рыбах, выращиваемых в естественных и искусственных водоемах, исследована переносимость и проведена токсикологическая оценка нового лекарственного препарата для ветеринарного применения Сальмогир®.
Доказана терапевтическая эффективность препарата Сальмогир® при дактилогирозе декоративных рыб и рыб, выращиваемых в естественных и искусственных водоемах, а также при гиродактилезе, диплозоонозе, диплостомозе и валипорозе рыб, выращиваемых в водоемах, при разных гидрологических параметрах.
Теоретическая и практическая значимость работы. Впервые в России с научной точки зрения было обосновано применение празиквантела наружно для лечения целого ряда заболеваний декоративных рыб и рыб, выращиваемых в естественных и искусственных водоемах. Были разработаны критерии оценки качества нового лекарственного препарата и способы его применения. По результатам проведенных исследований была разработана нормативно-техническая документация, утвержденная в установленном порядке в РСХН. Она определяет состав, методы контроля и способы применения препарата.
- Инструкция по ветеринарному применению лекарственного препарата Сальмогир® (утверждена Россельхознадзором 21.01.2025 г.)
- СТО 76069684-0369-2023
- Было получено 2 патента РФ на изобретение «Способ лечения паразитарных болезней рыб» (№ 2819870. 28.05.2024 Бюл. № 16) и «Способ лечения паразитарных болезней рыб» (№ 2819872. 28.05.2024 Бюл. № 16).
Препарат Сальмогир® зарегистрирован на территории Российской Федерации (номер регистрационного удостоверения: 77-3-01.25-5262№ПВР-3-01.25/04038), выпускается в промышленных масштабах компанией ООО «АВЗ СП» и успешно применяется в рыбоводных хозяйствах и частных аквариальных для борьбы с моногенеозами, трематодозами и цестодозами декоративных рыб и рыб, предназначенных для использования в пищевых целях.
Методология и методы исследования.
Доклинические исследования (изучение острой токсичности и переносимости) проводились согласно регламентирующей документации.
Осмотр рыб с целью выявления клинических признаков и обнаружения паразитов на поверхности тела, а также неполное паразитологическое вскрытие проводились по общепринятой методике. Видовая принадлежность паразитов определялась с помощью определителей.
Для количественной оценки зараженности рыб и эффективности препарата использовались следующие показатели: экстенсивность инвазии (ЭИ), интенсивность инвазии (ИИ), интенсэффективность (ИЭ) и экстенсэффективность (ЭЭ). Статистическая обработка полученных результатов осуществлялась при помощи пакета прикладных программ для персональных компьютеров (ПК).
Дизайн проведенных исследований и полученные практические результаты соответствуют основным положениям и принципам проведения доклинических и клинических испытаний. Исследования на рыбах проводили согласно правовым и биоэтическим нормам.
Положения, выносимые на защиту.
1. Изучение острой токсичности лекарственного препарата Сальмогир® для ветеринарного применения на рыбах.
2. Проведение исследовательской работы по изучению переносимости лекарственного препарата декоративными рыбами и рыбами, выращиваемыми в естественных и искусственных водоемах.
3. Результаты титрации доз и определение эффективности лекарственного препарата Сальмогир® на рыбах.
Личный вклад аспиранта. После ознакомления с научной литературой по вопросам исследования при непосредственном участии автора на рыбах изучены острая токсичность и переносимость лекарственного препарата Сальмогир®. В серии экспериментальных исследований проведены клинические испытания и доказана высокая эффективность препарата при борьбе с моногенеозами, трематодозами и цестодозами рыб. Подготовлены публикации по результатам исследования, оформлена заявка на изобретение, а также инструкция по применению и СТО на препарат Сальмогир®, утверждённые Россельхознадзором.
Степень достоверности и апробация результатов. Материалы работы доложены на Десятой Всероссийской межвузовской конференции по клинической ветеринарии в формате Purina Partners (Москва, 2020); III Международной научно-практической конференции «Развитие и современные проблемы аквакультуры «Аквакультура 2023» (с. Дивноморское, 2023 г.); Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Неделя молодежной науки» (г. Москва, 2024); IV Международной научно-практической конференции «Развитие и современные проблемы аквакультуры «Аквакультура 2024» (с. Дивноморское, 2024 г.); Международной научно-практической конференции, приуроченной к 75-летию известного ученого-паразитолога, академика РАН Василевича Ф.И. (г. Москва, 2024); XVII Всероссийской научно-практической конференции памяти профессора В.А. Ромашова «Современные проблемы общей и прикладной паразитологии» (г. Воронеж, 2024 г.).
Достоверность и новизна полученных данных подтверждена 2-мя патентами РФ на изобретения, нормативной документацией на лекарственный препарат Сальмогир (СТО 76069684-0369-2023 и «Инструкция по ветеринарному применению лекарственного препарата САЛЬМОГИР®), утвержденной Россельхознадзором РФ в установленном порядке.
Публикации. По материалам диссертации опубликовано 9 печатных работ, из них 3 в журналах, рецензируемых ВАК, 2 патента.
Структура и объем диссертационной работы. Работа изложена на 146 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы (глава 1), описания материалов и методов исследования (глава 2), изложения результатов собственных исследований (глава 3), обсуждения результатов, заключения, практических предложений, библиографического списка и приложения. Работа иллюстрирована 37 таблицами, 13 рисунками. Библиографический указатель включает 219 источников (71 отечественных и 148 иностранных авторов).
Благодарность. Выражаю искреннюю признательность и благодарность за постоянную поддержку, неоценимую научно-методическую помощь в проведении исследований и анализе полученных результатов, создание благоприятной атмосферы при проведении исследований своему научному руководителю, д.в.н., профессору, академику РАН С.В. Енгашеву, сотрудникам кафедры паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО МГАВМиБ-МВА имени К.И. Скрябина, ООО «НВЦ Агроветзащита» и рыбоводных хозяйств.
ОСНОВНАЯ ЧАСТЬ 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1. Краткие сведения о систематике, морфологии, биологии развития и распространенности исследуемых гельминтозов рыб
Гельминтозы рыб, вызываемые паразитированием плоских червей (моногеней, трематод и цестод), широко распространены на территории Российской Федерации и встречаются во всех зонах рыбоводства.
Представителей класса Monogenea на данный момент насчитывается более 1500 видов, которые встречаются как в солоноводных, так и в пресных водоемах. Моногенеи являются гермафродитами и развиваются прямым путем. В пресноводных водоемах чаще всего встречаются представители семейств Dactylogyridae и Gyrodactylidae, которые наносят существенный ущерб хозяйствам, специализирующимся на выращивании рыбы (Грищенко Л.И., 2013).
Трематодозы рыб, которых насчитывается около сотни, возбудители которых относятся к классу Trematoda, в основном вызываются паразитированием личиночных стадий гельминтов - церкариями и метацеркариями. Трематоды - биогельминты со сложным циклом развития. В прудовых хозяйствах наиболее распространенными являются представители семейства Diplostomidae, вызывающие диплостомоз (Грищенко Л.И., 2013).
Цестодозы рыб вызываются ленточными гельминтами из класса Cestoda, развитие которых происходит со сменой нескольких хозяев. Чаще всего в хозяйствах по выращиванию рыбы встречаются цестоды, вызывающие лигулидозы и дилепидозы, для которых рыбы являются промежуточными хозяевами, а также кавиоз и ботриоцефалез, обусловленные паразитированием половозрелых гельминтов (Грищенко Л.И., 2013).
1.1.1 Семейство Gyrodacthylidae, род Gyrodactylus Gyrodactylus spp. - эктопаразитические гельминты, паразитирующие у многих видов костистых рыб, общее количество которых насчитывает уже более 400 видов (Harris P. D. et al., 2004). Представители данного рода нередко вызывают гибель значительного количества рыб (Грищенко Л.И., 2013).
Гиродактилез включен в список ВОЗЖ как опасное заболевание. Также гиродактилез лососевых и карповых входит в перечень заразных болезней животных, утвержденный Министерством сельского хозяйства Российской Федерации (№564 от 25 сентября 2020 г.).
Гиродактилюсы - плоские черви длиной 0,5-1,0 мм. У них дорсальная сторона обычно выпуклая, а брюшная - вогнутая. Данная моногенея прикрепляется к своему хозяину с помощью фиксаторного диска, вооружённого 2 крупными центральными и 16 краевыми крючьями. Глаза отсутствуют (Грищенко Л.И., 2013).
Эти моногенеи, являющиеся живородящими гермафродитами, размножаются без смены хозяев. В организме половозрелого гельминта формируются зародыши, которые поселяются на кожном покрове, жаберном аппарате и плавниках рыб, постепенно достигая половой зрелости (Cable J. and Harris P. D., 2002; Грищенко Л.И., 2013).
Особенностью жизненного цикла данного паразита является гиперживорождение, при котором в находящемся ещё в теле взрослой особи зародыше начинают развиваться собственные эмбрионы (Грищенко Л.И., 2013). Такая особенность позволяет некоторым видам при оптимальной температуре начинать размножаться через сутки после собственного рождения (Scott and Nokes, 1984). Продолжительность жизни гиродактилюсов составляет 12-15 дней (Грищенко Л.И., 2013).
Такая быстрая смена поколений и прямой жизненный цикл создают высокий эпидемический потенциал.
В Норвегии случайная интродукция G. solaris в 1970-х годах вместе с балтийским лососем (Salmo salar) привела к сокращению некоторых популяций лосося на 90 % (Bakke Т.А. et al., 2007). Масштабы инвазии и серьезность ситуации побудили Норвегию учредить Комитет по гиродактилезу в 1980 г. Затраты на реализацию проекта составили около 12 млн норвежских крон ежегодно. Однако, несмотря на затраченные усилия, предотвратить
распространение G. salaris в северных странах Европы не удалось (Карасев А.Б. и Митенев В.К., 1996).
Кроме упомянутой выше Норвегии, этот паразит встречается в водоемах многих стран Евразии: Швеции, Финляндии, Дании, Латвии, Эстонии, Польше, Румынии, Великобритании, Германии, Италии, Португалии, Испании, Беларуси, Кыргызстане, Украине и в других странах (Карасев А.Б. и Митенев В.К., 1996; Катюха С.М. и Вознюк 1.О., 2014; Карабекова Д.У. и Кылжырова Б., 2021; Paladini G. et al., 2021; Бычкова Е.И. и др., 2022).
Представители рода Gyrodactylus, паразитирующие на рыбе, употребляемой в пищу человеком, также распространены в водоемах Африки, Северной и Южной Америки (Rubio-Godoy М. et al., 2012; Lari Е. et al., 2016; Lebedeva D. et al., 2021; Truter М. et al., 2023).
На территории Российской Федерации они распространены во всех зонах разведения пресноводных рыб (Карасев А.Б. и Митенев В.К., 1996; Грищенко Л.И., 2013; Румянцев Е.А., 2014; Соколов С.Г. и Фролова С.Е., 2015; Верланова О.А. и др., 2017; Иешко Е.П. и др., 2017; Кузнецова Е.В., 2017б; Ананьев И.С., 2019; Мельник В.С., 2019; Пояркова Т.А., 2019; Тихая Н.В. и Понамарев Н.М., 2019; Хорошельцева В.Н. и др., 2021; Иваницкая О.А. и др., 2022; Казарникова А.В. и Степанова Ю.В., 2022).
У гуппи гиродактилюсы увеличивают вероятность скатывания самцов рыбы вниз по течению во время ежегодных наводнений на 19 %, подвергая рыб воздействию среды, богатой хищниками, к которой они плохо адаптированы (van Oosterhout С. et al., 2007).
Гиродактилиды часто обнаруживаются у декоративных рыб в аквакультурных зонах и зоомагазинах (Kim J.H. et al., 2002, Thilakaratne I. et al., 2003, Whittington R.J. and Chong R., 2007, Hongslo Т. and Jansson Е., 2009; Trujillo-Gonzalez А. et al., 2018а).
Питаясь слизью и эпителиальными клетками, гиродактилюсы травмируют кожу. У больных рыб на поверхности тела появляется голубовато-матовый налет, а межлучевые перепонки плавников разрушаются. На коже иногда наблюдаются
язвы. Больные рыбы худеют, отстают в росте. На жабрах отмечают неравномерную окраску лепестков (Грищенко Л.И., 2013).
1.1.2 Семейство Diplozoidae, род Diplozoon
Диплозоонозы - болезни многих видов пресноводных рыб, вызываемые моногенеями из семейства Diplozoidae. Установлено более 15 видов диплозоонов. По многим параметрам они идентичны, но наиболее распространенным и чаще всего встречающимся в рыбоводных хозяйствах видом является Diplozoon paradoxum (Грищенко Л.И., 2013).
Diplozoon paradoxum (Nordmann, 1832) является паразитической моногенеей карповых рыб, широко распространенной в водоемах Европы (Schmidt G. and Roberts L., 1989).
Взрослый экземпляр Diplozoon paradoxum представляет собой две сросшиеся в области брюшной присоски особи, приобретающие характерную для данного рода Х-образную форму (Wong W. and Gorb S., 2013). При этом женская половая система одной моногенеи срастается с мужской другого гельминта (Грищенко Л.И., 2013). Половозрелый экземпляр грязно-серого цвета длиной 8-10 мм. Личинка (дипорпа) имеет длину примерно 0,23 мм (Schmahl G. and Taraschewski H., 1987).
У каждой сросшийся особи имеется свой собственный аппарат прикрепления. Так на переднем конце у паразитов имеются присоски, расположенные сбоку от ротовой полости, и железистые клетки, выделяющие клейкое вещество (Halton D. and Jennings J., 1965).
На заднем конце тела имеется фиксаторный аппарат (гаптор), состоящий из четырех пар зажимов (Owen I., 1963). Количество зажимов и их размер у диплозоонов различается у разных видов, что имеет большое диагностическое значение (Грищенко Л.И., 2013).
На брюшной стороне также имеется пара небольших крючьев, но считается, что именно зажимы играют наиболее важную роль в прикреплении паразита к поверхности жабр рыб (Owen I., 1963).
Недавние исследования показали, что зажимы остаются закрытыми благодаря природе эластичного материала, а не активной мышечной силе паразита. А вот открываются они, как считают эксперты, благодаря мышечному воздействию, что, вероятно, является объяснением длительного положения взрослых особей на одном месте (Wong W. and Gorb S., 2013).
Яйца диплозоонов имеют на одном из полюсов длинные спиралеобразные нити (филаменты) (Schmidt G. and Roberts L., 1989). Личинки обычно вылупляются через десять дней после откладывания яиц. Недавно появившиеся личинки имеют две пары зажимов и два медиальных крючка, а также 3 группы ресничек, способствующих перемещению и расселению онкомирацидиев (Bychowsky В., 1957). Считается, что продолжительность жизни активно плавающей личинки составляет около 10 часов (Bovet J., 1967).
Прикрепление её к хозяину происходит с использованием приротовых присосок и крючьев (Kagel М. and Tarachewski Н., 1993; Konstanzova V. et al., 2015; Konstanzova V. et al., 2017). После прикрепления к жаберному аппарату рыб личинка почти сразу теряет свои реснички, а по мере взросления приобретает другой набор зажимов, спинной сосочек и вентральную присоску. Развитие зажимов происходит в определенном порядке (Sebelova S. et al., 2002). Продолжительность жизни паразитирующей на рыбе особи (дипорпы) после прикрепления к хозяину составляет несколько месяцев (Schmidt G. and Roberts L., 1989).
Когда диплозооны срастаются, одна особь прикрепляет свою вентральную присоску к сосочку на дорсальной поверхности другой (Schmidt G. and Roberts L, 1989). После этого пигментированные глазки исчезают. И по мере того, как личинки срастаются, у них развиваются последние зажимы. Рост моногеней происходит довольно медленно и значительно ускоряется после срастания (Bychowsky В., 1957). Спаривающиеся диплозооны способны жить и, соответственно, паразитировать на рыбе в течение нескольких лет (Schmidt G. and Roberts L., 1989).
Согласно Bovet J. (1967), после срастания личинок-гермафродитов женская половая система одной особи открывается в непосредственной близости от семявыносящего протока другой, что приводит к перекрестному оплодотворению в паре.
Данные моногенеи питаются кровью. Однако было обнаружено, что диплозооны также дополнительно потребляют жаберную ткань и слизь рыб (Halton D. and Jennings J., 1965).
Диплозооны часто становятся серьезной проблемой на карповодческих хозяйствах Восточной и юго-Восточной Европы, приводя к истощению и гибели рыб (Schmahl G. and Taraschewski Н., 1987). Они встречаются в водоемах и реках, относящихся к бассейну Балтийского, Черного, Каспийского и Аральского морей, в Норвегии, Великобритании, а также в некоторых водоемах Азии, например, в озере Иссык-Куль (Кыргызстан). В России они также встречаются в реках Обь, Енисей, Лена и Амур (Жарикова Т.И., 1987; Биттиров А.М. и др., 2008; Pugachev O. N. et al., 2010; Новак А.И., 2010; Давыдов О.Н. и др., 2012а; Головина Н.А. и др., 2017; Карпенко Н.И. и Судакова Н.В., 2020; Сорокин П.А. и Изотова Е.С., 2020; Хасбулатова З.А. и др., 2021; Авдеева Е.В. и Казимирченко О.В., 2022; Казарникова А.В. и Степанова Ю.В., 2022; Бычкова Е.И. и др., 2022).
Diplozoon paradoxum паразитирует на жабрах Abramis brama, Carassius carassius, Ballerus ballerus, Blicca bjoerkna, Cyprinus carpio, Rutilus rutilus, Vimba vimba и других рыб (Pugachev O. N. et al., 2010; Грищенко Л.И., 2013; Хасбулатова З.А. и др., 2021; Авдеева Е.В. и Казимирченко О.В., 2022).
Также на территории России у карпов паразитируют схожие по строению Paradiplozoon alburni, P. homoion (Syn.: Diplozoon homoion), P. zeller, P. cyprini, Eudiplozoon nipponicum (Syn.: Diplozoon nipponicum) (Pugachev O. N. et al., 2010).
Похожие диссертационные работы по специальности «Другие cпециальности», 00.00.00 шифр ВАК
Обитатели водной среды - соактанты инфекционных и инвазионных паразитарных систем в условиях Поволжского региона2010 год, доктор ветеринарных наук Померанцев, Дмитрий Александрович
Антигельминтная активность и токсикологическая характеристика супрамолекулярного комплекса альбендазола на основе наноразмерных систем доставки2025 год, кандидат наук Гламаздин Игорь Игоревич
ЭКОЛОГО-ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ТРЕМАТОД МОЛЛЮСКОВ И КАРПОВЫХ РЫБ В ВОДОЕМАХ С РАЗЛИЧНОЙ СТЕПЕНЬЮ АНТРОПОГЕННОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ2016 год, кандидат наук Плеханова Валентина Владимировна
Экологические аспекты фасциолеза Fasciola hepatica L., 1758 в Центральном регионе России (особенности биологии и меры профилактики)2020 год, кандидат наук Постевой Алексей Николаевич
Кишечные гельминтозы лошадей в Тюменской области и совершенствование мер борьбы с ними2023 год, кандидат наук Калугина Елена Геннадьевна
Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Сорокин Павел Антонович, 2025 год
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Авдеева, Е. В. Особенности зараженности карпа моногенеями Dactylogirus vastator и Diplozoon paradoxum в прудовом учебно-опытном хозяйстве (Калининградская область) / Е. В. Авдеева, О. В. Казимирченко // Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации: материалы VII национальной научно-практической конференции / под ред. И. В. Поддубной. - Саратов : ООО «Армивит», 2022. - С. 3-7.
2. Ананьев, И. С. Организация ветеринарного обслуживания рыбоводческих предприятий Республики Татарстан / И. С. Ананьев // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. - 2019. - Т. 240. - № 4. - С. 16-20.
3. Архипов, И.А. Антигельминтики: фармакология и применение. - М., 2009.
- 406 с.
4. Препарат "Диплоцид" для борьбы против диплостомозов рыб / Беспалый, А. В., Дегтярик, С. М., Асадчая, Р. Л. [и др.] // Вопросы рыбного хозяйства Беларуси. - 2014. - № 30. - С. 88-100.
5. Эколого-видовой анализ паразитов рода Dactylorus у гидробионтов бассейна р. Терек / Биттиров, А. М., Казанчев, М. Х., Хачетлов, Э. С. [и др.] // Вестник КРАСГАУ - 2008. - № 2. - С. 92-98.
6. Быховская-Павловская, И. Е. Паразитологическое исследование рыб: Методы паразитологического исследования / И. Е. Быховская-Павловская.
- Л.: Наука, 1969. - 108 с.
7. Гельминтофауна карпа обыкновенного Cyprinus carpio (Linnaeus, 1758) в прудовых хозяйствах Беларуси / Бычкова, Е. И., Якович, М. М., Дегтярик, С. М. // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. - 2022. -№ 23. - С. 102-106.
8. Васильков Г.В. Болезни рыб: справочник / Г. В. Васильков, Л. И. Грищенко, В. Г. Енгашев [и др.] ; под ред. В. С. Осетрова. - 2-е изд., перераб. и доп. - Москва: Агропромиздат, 1989. - 288 с.
9. Видовой и эпизоотологический анализ возбудителей гиродактиллеза у рыб р. Малка / Верланова, О. А., Шахмурзов, М. М., Алиева, К. Г. [и др.] // Ученые записки научно-исследовательской внедренческой лаборатории "Паразитология" Кабардино-Балкарского государственного аграрного университета им. В. М. Кокова. Сер. "Серия Биология. Ветеринария". -Нальчик - Черкесск, 2017. - С. 84-88.
10.Болезни рыб в аквакультуре России. Практическое руководство / Воронин, В. Н., Кузнецова, Е. В., Стрелков, Ю. А., Чернышева, Н. Б.; под ред. Витенко, О. А., Дерман, А. А. - Санкт-Петербург: ООО «Типография Феникс», 2011. - 263 с.
11.Гаврилин, К. В. Эпизоотическая ситуация в современной декоративной аквакультуре / К. В. Гаврилин, Г. А. Мамыкина, Т. А. Ершова // Мир ветеринарии. - 2013. - № 2 (13). - С. 51-53.
12.Герасев, П. И. Мировая фауна Dactylogyrus spp. (Plathelminthes: Monogenea: Dactylogyridae) с пятилучевой вентральной пластинкой прикрепительного диска. 1. Состав и структура // Паразитология. - 2009. -Т. 43, № 6. - С. 478-501.
13.Моногеней (Monogenea) как модельные объекты для исследования эволюции паразитов, филогеографии хозяев и становления специфичности / Герасев, П. И., Пугачев, О. Н., Дмитриева, Е. В., Пронькина, Н. В. // В кн.: Матер. IV Всерос. шк. по теоретич. и морской паразитологии. - Калининград, пос. Лесное, 21—26 мая 2007 г. - С. 48-51.
14.Головина, Н. А. Эколого-фаунистический анализ паразитов рыб Белгородского и Старооскольского водохранилищ / Н. А. Головина, Н. Н. Романова, П. П. Головин // Научные ведомости Белгородского государственного университета. - 2017. - № 11 (260). - С. 51-64.
15.Ихтиопатология / Н. А. Головина, Ю. А. Стрелков, В. Н. Воронин [и др.] // М.: Мир, 2003. - 448 с.
16.Грищенко, Л. И. Болезни рыб с основами рыбоводства / Л. И. Грищенко, М. Ш. Акбаев; под ред. Л. И. Грищенко. - М.: КолосС, 2013. - 479 с.
17.Паразитофауна растительноядных рыб в некоторых регионах культивирования / О. Н. Давыдов, Л. Я. Куровская, С. И. Неборачек, В. Н. Лысенко // Рибогосподарська наука Украши. - 2012. - № 4 (22). - С. 136148.
18.Анализ видового разнообразия паразитов карася серебряного Южной Палеарктики / О. Н. Давыдов, В. Н. Лысенко, Л. Я. Куровская, С. И. Неборачек // Рибогосподарська наука Украши. - 2012. - № 3 (21). - С. 6372.
19.Эффективность применения препарата "Празиквантел" при диплостоматидозе пестрого толстолобика / В. М. Егоров, В. А. Герасимчик, О. В. Низалидина, В. П. Якименко // Ученые записки учреждения образования Витебская ордена Знак почета государственная академия ветеринарной медицины. - 2016. - Т. 52. - № 3. - С. 43-47.
20.Енгашева, Е. С. Фармако-токсикологические свойства и лечебно-профилактическая эффективность монизена при гельминтозах водоплавающих птиц: автореф. дис. канд. вет. наук : 06.02.03, 03.00.19 / Е. С. Енгашева ; Всерос. науч.-исслед. ин-т вет. санитарии, гигиены и экологии. - Москва, 2012. - 25 с. : ил.
21.Ермоленко, А. В. Некоторые аспекты проявления валипороза разводимых рыб / А. В. Ермоленко // Паразитология. - 2000. - Вып. 2. - С. 147-149.
22.Жарикова, Т. И. О сопряженности встречаемости моногеней родов Dactylogyrus и Diplozoon на леще и карпе / Т. И. Жарикова // Зоологический журнал. - 1987. - Т. 66. - № 12. - С. 1789-1793.
23.3араженность радужной форели на рыбоводных хозяйствах в водоемах бассейна реки Тулома моногенеями рода Gyrodactylus / Иваницкая, О. А., Тюкина, О. С., Приймак, П. Г., Кравец, П. П. // Природные ресурсы, их современное состояние, охрана, промысловое и техническое использование : материалы XIII Национальной (всероссийской) научно-практической конференции / ответственный за выпуск Т. А. Клочкова. -Петропавловск-Камчатский, 2022. - С. 72-76.
24.Моногенеи рода Gyrodactylus - паразиты лососевых рыб (Salmonidae) рек Северо-Запада России / Иешко, Е. П., Соколов, С. Г., Паршуков, А. Н. [и др.] // Лососевые рыбы: биология, охрана и воспроизводство: материалы международной конференции. - Институт биологии КарНЦ РАН, 2017. -С. 68.
25.Инструкция о мероприятиях по борьбе с дилепидозом рыб // Сборник инструкций по борьбе с болезнями рыб. Часть 1. - М.: АМБ-агро, 1998. -С. 256-260.
26.Казарникова, А. В. Зараженность карповых рыб моногенеями (Monogenea; Platyhelminthes) в дельте реки Дон и восточной части Таганрогского залива в современных условиях / А. В. Казарникова, Ю. В. Степанова // Развитие и современные проблемы аквакультуры : сборник научных трудов II Международной научно-практической конференции (Конференция "Аквакультура 2022") - Ростов-на-Дону : ДГТУ-ПРИНТ, 2022. - С. 58-61.
27.Современные данные по эпизоотическому состоянию рыбохозяйственных водоемов и рыбоводных хозяйств Тюменской области / Капустина Я. А., Осипов А. С., Ширшов В. Я. [и др.] // Вестник рыбохозяйственной науки: материалы конференции / под редакцией [Фамилия и инициалы редактора]. - Место издания : Издательство, 2017. - С. 84-95.
28.Карабекова, Д. У Моногенеи сазана, карпа (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758) в водоёмах Кыргызстана / Д. У Карабекова, Б. Кылжырова // Исследование живой природы Кыргызстана. - 2021. - № 1. - С. 37-39.
29.Карасев, А. Б. Гиродактилез атлантического лосося - проблема стран Северной Европы / А. Б. Карасев, В. К. Митенев // Рыбное хозяйство. -1996. - № 6. - С. 54-56.
30.Карпенко, Н. И. Весенняя динамика паразитофауны карповых рыб в условиях аквакультуры в Астраханской области / Н. И. Карпенко, Н. В. Судакова // Рыбоводство и рыбное хозяйство. - 2020. - № 11 (178). - С. 5663.
31.Каспакбаев, А. С. Паразиты рыб в водоемах Казахстана / А. С. Каспакбаев, В. Т. Рамазанов, Н. В. Демидов // Бюллетень Всесоюзного института гельминтологии. - 1981. - Вып. 29. - С. 17-20.
32.Катюха, С. М. Характеристика паразитарних комплекшв у риб ставкових господарств Захщного Полюся Украши / С. М. Катюха, I. О. Вознюк // Ветеринарна бютехнолопя. - 2014. - № 25 (25). - С. 27-29.
33.Фармакокинетика и динамика выведения остаточных количеств действующего вещества лекарственного препарата для ветеринарного применения «Сальмогир®» у форели при наружном применении / А. А. Комаров, Е. Н. Гончарова, П. А. Сорокин [и др.] // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2025. - № 1. - С. 118-127.
34.Корнюшин, В. В. Циркуляция гельминтов в колониях веслоногих и голенастых птиц юга Украины / В. В. Корнюшин, Л. А. Смогоржевская, Н. И. Искова // Сборник научных трудов Азово-Черноморской орнитологической станции. - 2004. - № 7. - С. 241-277.
35.Коротова, Д. М. Паразитофауна карпов в товарных хозяйствах Новобурасского района Саратовской области / Д. М. Коротова, Г. А. Федотова // Энтомологические и паразитологические исследования в Поволжье. - 2008. - № 7. - С. 85-87.
36.Кузнецова, Е. В. Инвазионные болезни рыб, выращиваемых в садковых хозяйствах европейской части РФ / Е. В. Кузнецова // Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации в свете импортозамещения и обеспечения продовольственной безопасности страны: материалы II национальной научно-практической конференции, Санкт-Петербург, 13-15 сентября 2017 г. / под ред. А. А. Васильева. -Саратов: ООО «ЦеСАин», 2017. - С. 90-95.
37.Кузнецова, Е. В. Паразитофауна и паразитарные болезни рыб, выращиваемых в садковых хозяйствах Европейской части России / Е. В. Кузнецова // Паразитология. - 2017. - Т. 51. - № 5. - С. 436-444.
38. Охрана здоровья рыб в рыбопитомнике "Серебряные пруды" / Куликова, Н. А., Борисова, М. Н., Завьялова, Е. А. [и др.] // Рыбное хозяйство. - 2009. - № 2. - С. 102-103.
39. Куликова, Н. А. Охрана здоровья рыб в рыбопитомнике "Серебряные пруды" / Н. А. Куликова, М. Н. Борисова, Е. А. Завьялова, Т. Д. Пичугина, А. Е. Дрошнев // Рыбное хозяйство. - 2009. - № 2. - С. 102-103.
40.Кучбоев, А. Э. Гельминты рыб водоемов низовьев реки Зарафшан / А. Э. Кучбоев, Б. Б. Соатов // Биологические науки Казахстана. - 2021. - № 4. -С. 42-51.
41.Лукьяненко, В. И. Токсикология рыб / В. И. Лукьяненко. - М.: Пищевая промышленность, 1967. - 216 с.
42.Мельник, В. С. Влияние рыбоводных хозяйств на распространение паразита Gyrodactylus salaris в лососевых реках Мурманской области / В. С. Мельник // Сборник: Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации. Материалы IV национальной научно-практической конференции. - 2019. - С. 169-172.
43.Метелев, В. В. Водная токсикология / В. В. Метелев, А. И. Канаев, Н. Г. Дзасохова. - М.: Колос, 1971. - 247 с.
44.Михеев, В. Н. Личинки трематод Diplostomum pseudospathaceum (Diplostomidae), проникая в сеголеток Oncorhynchus mykiss (Salmonidae), манипулируют их поведением / В. Н. Михеев // Вопросы ихтиологии. - 2023. - Т. 63, № 6. - С. 724-730.
45. Мусаев М.Б. Комиссионное испытание Празифена при основных гельминтозах лошадей / М.Б. Мусаев, Х.И. Берсанова, А.З. Джамалова, Х.Х. Гадаев // Материалы докладов научной конференции Всероссийского общества гельминтологов «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». - Москва, 2011. - Вып. 12. - С. 343-345
46.Никифоров-Никишин, Д. Л. Нарушение прозрачности хрусталика гидробионтов / Д. Л. Никифоров-Никишин, А. Л. Бородин, А. Л. Никифоров-Никишин // Проблемы иммунологии, патологии и охраны
здоровья рыб и других гидробионтов - 2: Расширенные материалы Международной научно-практической конференции, Борок, 17-20 июля 2007. - М.: Россельхозакадемия, 2007. - С. 385-387.
47.Новак, А. И. Инвазии рыб в водоемах с различными экологическими условиями / А. И. Новак // Российский паразитологический журнал. -2010. - № 2. - С. 6-10.
48.Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т. 2. Паразитические многоклеточные. (Первая часть). - Л.: Наука, 1985. - 425с.
49.Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т. 3. Паразитические многоклеточные. (Вторая часть). - Л.: Наука, 1987. - 583с.
50.Пояркова, Т. А. Многолетний мониторинг распространения паразитарных болезней радужной форели в рыбоводных хозяйствах Республики Карелия / Т. А. Пояркова // Петрозаводский государственный университет. -Петрозаводск, 2019. - С. 20-22.
51.Рекомендации по диагностике и профилактике валипороза карпов в прудовых хозяйствах, утв. Главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР от 27 ноября 1978 года (Ветеринарное законодательство. Том III). - М.: Колос, 1981.
52.Румянцев, Е. А. Фауна паразитов лососевых рыб (Salmonidae, Pisces) Онежского и Ладожского озер / Е. А. Румянцев // Наука и мир. - 2014. - № 3-1 (7). - С. 95-98.
53.Соколов, С. Г. Материалы по паразитофауне рыб Сахалина / С. Г. Соколов, С. Е. Фролова // Вестник Северо-Восточного научного центра ДВО РАН. -2015. - № 2. - С. 90-97.
54. Эффективность препарата «Сальмогир» при смешанных эктопаразитозах радужной форели (Oncorhynchus mykiss) / Сорокин, П. А., Аржанова, Л. А., Енгашев, С. В. [и др.] // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. -2024. - № 4 (64). - С. 65-68.
55. Сорокин, П. А. Эффективность препарата «Сальмогир» при диплостомозе карпов / П. А. Сорокин, М. Н. Гончарова, С. В. Енгашев // Современные
проблемы общей и прикладной паразитологии: Сборник научных статей по материалам XVII Всероссийской научно-практической конференции памяти профессора В. А. Ромашова (17-18 октября 2024 г., ФГБУ «Воронежский государственный заповедник»). - Воронеж: Издательство «Цифровая полиграфия», 2024. - С. 195-200.
56.Сорокин, П. А. Новый препарат для борьбы с гельминтозами прудовых рыб / П. А. Сорокин, С. В. Енгашев // Материалы международной научно-практической конференции, приуроченной к 75-летию известного ученого-паразитолога, академика РАН Василевича Ф. И. (1 -2 октября 2024 г.). - М.: ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К. И. Скрябина, 2024. - С. 199-201.
57. Эффективность препарата «Сальмогир®» при дактилогирозе карпов / П. А. Сорокин, С. В. Енгашев, М. Н. Гончарова [и др.] // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2025. - № 2. - С. 143-148.
58. Эффективность препарата «Сальмогир®» при дактилогирозе золотых рыбок / П. А. Сорокин, С. В. Енгашев, М. Н. Гончарова // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2025. - № 7. - С. 128-135.
59. Сорокин, П. А. Эффективность празиквантела при валипорозе карпов / П. А. Сорокин, С. В. Енгашев, М. Н. Гончарова // Развитие и современные проблемы аквакультуры (Конференция «Аквакультура 2023»): сборник научных трудов III Международной научно-практической конференции (с. Дивноморское, 4 - 10 сентября 2023 г.) / ред. кол. Б. Ч. Месхи [и др.]; ДГТУ - Ростов-на-Дону: ДГТУ-Принт, 2023. - С. 113-116.
60.Сорокин, П. А. Эффективность празиквантела при диплозоонозе карпов / П. А. Сорокин, С. В. Енгашев, В. Г. Енгашев // Материалы всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Неделя молодежной науки». - М.: ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К. И. Скрябина, 2024. - С. 249-251.
61.Сорокин, П. А. Паразитозы рыб семейства карповых в приусадебных и декоративных прудах юго-востока Московской области / П. А. Сорокин, Е.
С. Изотова // Сборник научных трудов Десятой Всероссийской межвузовской конференции по клинической ветеринарии в формате Purina Partners. - НПО «Сельскохозяйственные технологии» (Москва), 2020. - С. 433-442.
62.Сорокин, П. А. Эффективность препарата «Сальмогир» при моногенеозах и его безопасность для рыб / П. А. Сорокин, С. В. Енгашев, М. Н. Гончарова // Развитие и современные проблемы аквакультуры. Сборник научных трудов IV Международной научно-практической конференции. -Ростов-на-Дону, 2024. - С. 21-24.
63.Способ лечения паразитарных болезней рыб // Патент России № 2819870. 28.05.2024 Бюл. № 16. // Сорокин П. А., Жасминова Л.Ф., Енгашева Е.С. [и
др.].
64. Способ лечения паразитарных болезней рыб // Патент России № 2819872. 28.05.2024 бюл. № 16. // Жасминова Л.Ф., Сорокин П.А., Комаров А.А. [и др.].
65. Стратегия развития рыбохозяйственного комплекса Российской Федерации на период до 2030 года // Утверждена распоряжением Правительства Российской Федерации от 26 ноября 2019 г. № 2798-р.
66. Султанков Т.Д. // Бюл. Всес. ин-та гельминтол. - 1988. - Вып. 49. - С.76
67.Тихая, Н. В. Паразитарные болезни прудовых рыб в условиях Алтайского края / Н. В. Тихая, Н. М. Понамарев // Тенденции развития науки и образования. - 2019. - № 55-4. - С. 20-24.
68.Тищенко, В. В. // Бюл. Всес. ин-та гельминтол. - 1983. - Вып. 34. - С. 6263.
69.Успенская, А. В. Влияние Dactylogyrus vastator Nybelin, 1924 на организм карпа // Зоол. журн. - 1961. - Т. 40. - Вып. 1. - С. 7-12.
70.Хасбулатова, З. А. Гельминтофауна Каспийского сазана (Cyprinus carpio) на побережье Дагестана / З. А. Хасбулатова, М. М. Шабанова, С. Г. Ашумова // Проблемы сохранения экосистемы Каспия в условиях освоения нефтегазовых месторождений. Материалы VIII научно-
практической конференции с международным участием. - Астрахань, 2021. - С. 300-305.
71.Паразитофауна сеголетков карпа (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758) в выростных прудах Азово-Черноморского рыбохозяйственного бассейна / Хорошельцева, В. Н., Стрижакова, Т. В., Керимова, А. А., Денисова, Т. В. // Водные биоресурсы и среда обитания. - 2021. - Т. 4. - № 4. - С. 54-64.
72. Adnyana, W. Efficacy of praziquantel in the treatment of green sea turtles with spontaneous infection of cardiovascular flukes / W. Adnyana, P. W. Ladds, D. E. Blair // Aust. Vet. J. - 1997. - Vol. 75, No. 6. - P. 405-407.
73.Alderman, D. J. Control of the use of veterinary drugs and vaccines in aquaculture in the European Union / D. J. Alderman // Options Méditerranéennes. - 2009. - No. 86. - P. 13-28.
74.Anderson, F. L. // Amer. J. Vet. Res. - 1979. - Vol. 40, No. 5. - P. 700-701.
75. Andrews, P. Praziquantel / P. Andrews, H. Thomas, R. Pohlke, J. Seubert // Med. Res. Rev. - 1983. - Vol. 3, No. 2. - P. 147-200.
76. Arakawa, J. Seasonality of Clinostomum complanatum cercariae in the snail host Radix auricularia japonica and drug treatment of the parasite in goldfish Carassius auratus / J. Arakawa, K. Suzuki, R. Ishii // Fish Pathol. -2021. - Vol. 55, No. 4. - P. 162-165.
77. Efficacy of injectable praziquantel for elimination of trematode metacercariae in bluegills (Lepomis macrochirus) and quantification of parasite death by propidium iodide staining / C. Bader et al. // Parasitol. Res. - 2018. - Vol. 117, No. 2. - P. 365-370.
78. Outbreak of Cleidodiscus in juvenile black crappies (Pomoxis nigromaculatus) and bath treatment with praziquantel / C. Bader et al. // J. Fish. Dis. - 2017. -Vol. 40, No. 11. - P. 1737-1739.
79. Bakke, T. A. The biology of gyrodactylid monogeneans: the 'Russian-Doll Killers' / T. A. Bakke, J. Cable, P. D. Harris // Adv. Par. - 2007. - Vol. 64. - P. 161-376.
80.Bauer, C. // Prakt. Tierarztl. - 1998. - Vol. 79, No. 4. - P. 364-366.
81.Bjorklund, H. Absorption, distribution and excretion of the anthelmintic praziquantel (Droncit) in rainbow trout (Salmo gairdneri) / H. Bjorklund, G. Bylund // Parasitol. Res. - 1987. - Vol. 73, No. 3. - P. 240-244.
82.Bovet, J. Contribution à la morphologie et à la biologie de Diplozoon paradoxum v. Nordmann, 1832 // Bull. Soc. Neûchatel Sci. nat. - 1967. - Vol. 90. - P. 64-159.
83.Bristow, G. A. A report on some metazoan parasites of wild marine salmon (Salmo salar) L. from the west coast of Norway with comments on their interactions with farmed salmon / G. A. Bristow, B. Berland // Aquaculture. -1991(a). - Vol. 98, No. 1. - P. 311-318.
84.Bristow, G. A. The effect of long term, low level Eubothrium sp. (Cestoda: pseudophyllidea) infection on growth in farmed salmon (Salmo salar) L. / G. A. Bristow, B. Berland // Aquaculture. - 1991(b). - Vol. 98, No. 4. - P. 325-330.
85.Buchmann, K. The effects of praziquantel on the monogenean gill parasite Pseudodactylogyrus bini / K. Buchmann // Acta Vet. Scand. - 1987. -Vol. 28, No. 3-4. - P. 447.
86. Pseudodactylogyrosis in Anguilla anguilla (Actinopterygii: Anguilliformes: Anguillidae): change of control strategies due to occurrence of anthelmintic resistance / K. Buchmann, P. W. Kania, L. Neumann, G. De' Besi // Acta Ichthyol. Piscatoria. - 2011. - Vol. 41, No. 2. - P. 105-108.
87.Bychowsky, B. Monogenetic Trematodes: Their Systematics and Phylogeny. -Washington D.C.: American Institute of Biological Sciences, 1957.
88. Bylund, G. Laboratory tests with Droncit against diplostomiasis in rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) / Bylund, G., Sumari, O. // J. Fish Dis. -1981. - Vol. 1. - P. 259-264.
89.Cable, J. Gyrodactylid developmental biology: historical review, current status and future trends / Cable, J., Harris, P. D. // Int. J. Parasitol. - 2002. - Vol. 32. - P. 255-280.
90.Neobenedenia melleni (Monogenea: Capsalidae) in ornamental reef fish imported to Brazil / Cardoso, P. H. M., Balian, S. de C., Soares, H. S. [и др.] // Rev. Bras. Parasitol. Vet. - 2019. - Jan-Mar. - Vol. 28, No. 1. - P. 157-160.
91. Chai, J. Y. Praziquantel treatment in trematode and cestode infections: an update / Chai, J. Y // Infect. Chemother. - 2013. - Vol. 45, No. 1. - P. 32-43.
92.Chisholm, L. A., Whittington, I. D. Efficacy of praziquantel bath treatments for monogenean infections of the Rhinobatos typus / Chisholm, L. A., Whittington, I. D. // J. Aquat. Anim. Health. - 2002. - Vol. 14. - P. 230-234.
93.Future fish / Cressey, D. [и др.] // Nature. - 2009. - Vol. 458. - P. 398-400.
94.Dayan, A. D. Albendazole, mebendazole and praziquantel. Review of nonclinical toxicity and pharmacokinetics / Dayan, A. D. // Acta Trop. - 2003. -Vol. 86, No. 2. - P. 141-159.
95.Chemotherapy and drug resistance in schistosomiasis, fascioliasis and tapeworm infections / Doenhoff, M. J., Coles, G. C., Pica-Mattoccia, L., Wheatcroft-Francklow, K. [et al.] // In: Antimicrobial Drug Resistance / Mayers, D. L., Sobel, J. D., Ouellette, M., Kaye, K. S., Marchaim, D. (eds.). -Springer; 2009. - P. 629-646.
96. El-Banna, S. The effects of praziquantel on selected hematological and biochemical indices in Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) with tapeworm infestation / El-Banna, S., Zaghlol, N. F., Saad, T. // J. Arabian Aquacult. Soc. -2008. - Vol. 3. - P. 80-93.
97.Effects of temperature, salinity, desiccation and chemical treatments on egg embryonation and hatching success of Benedenia seriolae (Monogenea: Capsalidae), a parasite of farmed Seriola spp. / Ernst, I., Whittington, I. D., Corneillie, S., Talbot, C. // J. Fish. Dis. - 2005. - Vol. 28, No. 3. - P. 157-164.
98.Monogenean parasites in sea-cage aquaculture / Ernst, I., Whittington, I. D., Corneillie, S., Talbot, C. // Austasia Aquacult. - 2002. - Vol. 16. - P. 46-48. Background information on the consultation process on monitoring international trade in ornamental fish / European Commission // [не указано]. -2008.
99.Fajer-Avila, E. J. Effectiveness of treatments against eggs, and adults of Haliotrema sp. and Euryhaliotrema sp. (Monogenea: Ancyrocephalinae) infecting red snapper, Lutjanus guttatus / Fajer-Avila, E. J., Velasquez-Medina, S. P., Betancourt-Lozano, M. // Aquaculture. - 2007. - Vol. 264. - P. 66-72.
100. The State of World Fisheries and Aquaculture 2010 / FAO Fisheries and Aquaculture Department. - 2010.
101. The State of World Fisheries and Aquaculture 2022 / FAO Fisheries and Aquaculture Department. - 2022.
102. Bendelorm (Eubothrium sp.) hos laks (Salmo salar): Utpr0ving av nye behandlingsmidler og utvikling av et in vitro bioassay for maling av resistens overfor praziquantel - Rapport fra et pilotprosjekt / FHF (The Norwegian Fishery and Aquaculture Industry Research Fund) // [не указано]. - 2006. - [in Norwegian]. - URL: https://www.fhf.no/prosjekter/prosjektbasen/551024/
103. Resistens hos bendelorm (Eubothrium sp.) Sluttrapport 2008 / FHF (The Norwegian Fishery and Aquaculture Industry Research Fund) // [не указано]. -2008. - [in Norwegian]. - URL: https://www.fhf.no/prosjekter/prosjektbasen/552024/ (accessed 25 April 2020).
104. Foreyt, W. J. Preliminary evaluation of praziquantel against metacercariae of Nanophyetus salmincola in Chinook Salmon (Oncorhynchus tshawytscha) / Foreyt, W. J., Gorham, J. R. // J. Wildl. Dis. - 1988. - Vol. 24, No. 3. - P. 551554.
105. Praziquantel delivery via moist pellets to treat monogenean parasites of yellowtail kingfish Seriola lalandi: efficacy and feed acceptance / Forwood, J. M., Bubner, E. J., Landos, M., Deveney, M. R., D'Antignana, T. // Dis. Aquat. Org. - 2016. - Vol. 121, No. 3. - P. 201-209.
106. Fridman, S. Efficacy of garlic-based treatments against monogenean parasites infecting the guppy (Poecilia reticulata (Peters)) / Fridman, S., Sinai, T., Zilberg, D. // Vet. Parasitol. - 2014. - Vol. 203, No. 1-2. - P. 51-58.
107. Funk, R. S. Herp. health hints and husbandry: Parasiticide dosages for captive amphibians and reptiles / Funk, R. S. // Bull. Chicago Herpetol. Soc. -1988. - Vol. 23, No. 2. - P. 30.
108. Halton, D. Observations on the nutrition of monogenetic trematodes / Halton, D., Jennings, J. // Biological Bulletin. - 1965. - Vol. 129, No. 2. - P. 257-272.
109. Hardy-Smith, P. In vitro and in vivo efficacy of anthelmintic compounds against blood fluke (Cardicola forsteri) / Hardy-Smith, P., Ellis, D., Humphrey, J. // Aquaculture. - 2012. - Vol. 334-337. - P. 39-44.
110. Nominal species of the genus Gyrodactylus v Nordmann 1832 (Monogenea: Gyrodactylidae), with a list of principal host species / Harris, P. D., Shinn, A. P., Cable, J., Bakke, T. A. // Syst. Parasitol. - 2004. - Vol. 59. - P. 1-27.
111. Heckmann, R. A. The efficacy of praziquantel and ivermectin against selected helminths of fishes / Heckmann, R. A. // Abstracts of papers read at the 2nd Int. Symp. of Ichthyoparasitol., 27 Sept - 3 Oct. 1987, Tihany, Hungary. -1987. - P. 25.
112. Hirazawa, N. Differences in sensitivity to the anthelmintic praziquantel by the skin-parasitic monogeneans Benedenia seriolae and Neobenedenia girellae / Hirazawa, N., Akiyama, K., Umeda, N. // Aquaculture. - 2013. - Vol. 404-405. - P. 59-64.
113. Hoai, T. D. Reproductive strategies of parasitic flatworms (Platyhelminthes, Monogenea): the impact on parasite management in aquaculture / Hoai, T. D. // Aquacult. Int. - 2019. - Vol. 28, No. 1. - P. 421-447.
114. Hoai, T. D. Efficacy of praziquantel against external parasites infecting freshwater fish / Hoai, T. D., Van, K. V. // J. Sci. & Devel. - 2014. - Vol. 12, No. 5. - P. 711-719.
115. Hongslo, T. Health survey of aquarium fish in Swedish pet-shops / Hongslo, T., Jansson, E. // B. Eur. Assoc. Fish Pat. - 2009. - Vol. 29. - P. 163-174.
116. Hutson, K. S. Risk assessment for metazoan parasites of yellowtail kingfish Seriola lalandi (Perciformes: Carangidae) in South Australian sea-cage
aquaculture / Hutson, K. S., Ernst, I., Whittington, I. D. // Aquaculture. - 2007. - Vol. 271, No. 1. - P. 85-99.
117. Ishimaru, K. Praziquantel treatment against Cardicola blood flukes: determination of the minimal effective dose and pharmacokinetics in juvenile Pacific bluefin tuna / Ishimaru, K. [et al]// Aquaculture. - 2013. - Vol. 402. - P. 24-27.
118. Janse, M. Praziquantel treatment of captive whitespotted eagle rays (Aetobatus narinari) infested with monogean trematodes / Janse, M., Borgsteede, F. H. M. // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. - 2003. - Vol. 23, No. 4. -P. 152-156.
119. Jones, M. Cultured aquatic species information programme. Salmo salar / Jones, M. // FAO Fisheries and Aquaculture Department. - 2004. - Rome. -Updated 1 January 2004. - URL: http://www.fao.org/fishery/culturedspecies/Salmo_salar/en (accessed 13 April 2023).
120. Joubert, C. J. H. The Potential of Commercial Praziquantel Formulations as "off Label" Treatments for Diplectanum oliveri (Monogenea) Infecting Cultured Argyrosomus Species in the South African Marine Finfish Aquaculture Industry / Joubert, C. J. H. // University of the Western Cape. - 2012. - Master's thesis.
121. Kagel, M. Host-parasite interface of Diplozoon paradoxum (Monogenea) in naturally infected bream, Abramis brama (L.) / Kagel, M., Tarachewski, H. // J. Fish Dis. - 1993. - Vol. 16, No. 5. - P. 501-506.
122. Kassai, T. Veterinary Helminthology. - Butterworth Heinemann. - 1999. -260 p.
123. Depletion of praziquantel in muscle tissue and skin of cultured rockfish (Sebastes schlegeli) under the commercial culture conditions / Kim, C. S. [et al] // Aquaculture. - 2003. - Vol. 219, No. 1-4. - P. 1-7.
124. Parasitic infections in live freshwater tropical fishes imported to Korea / Kim, J. H., Hayward, C. J., Joh, S. J., Heo, G. J. // Dis. Aquat. Org. - 2002. -Vol. 52. - P. 169-173.
125. Kim, K. H. Treatment of Microcotyle sebastis (Monogenea: Polyopisthocotylea) infestation with praziquantel in an experimental cage simulating commercial rockfish Sebastes schlegeli culture conditions / Kim, K. H., Cho, J. B. // Dis. Aquat. Org. - 2000. - Vol. 40, No. 3. - P. 229-231.
126. Kim, K. H. Cimetidine enhances the plasma praziquantel concentration and treatment efficacy against Microcotyle sebastis in cultured rockfish Sebastes schlegeli / Kim, K. H., Kim, C. S. // Dis. Aquat. Org. - 2002. - Vol. 49, No. 1. -P. 45-49.
127. Kim, K. H. Depletion of praziquantel in plasma and muscle tissue of cultured rockfish Sebastes schlegeli after oral and bath treatment / Kim, K. H., Kim, C. S., Kim, J. W. // Dis. Aquat. Org. - 2001. - Vol. 45, No. 3. - P. 203207.
128. Kim, K. H. Treatment of Microcotyle sebastis infestation in cultured rockfish Sebastes schlegeli by oral administration of praziquantel in combination with cimetidine / Kim, K. H., Lee, E. H., Kwon, S. R., Cho, J. B. // Dis. Aquat. Org. - 2001. - Vol. 44, No. 2. - P. 133-136.
129. Kim, K. H. Efficacy of oral administration of praziquantel and mebendazole against Microcotyle sebastis (Monogenea) infestation of cultured rockfish (Sebastes schlegeli) / Kim, K. H., Park, S. I., Jee, B. Y. // Fish Pathol. - 1998. -Vol. 33, No. 5. - P. 467-471.
130. Kline, S. J. Effects of praziquantel on eggs of the Asian tapeworm Bothriocephalus acheilognathi / Kline, S. J., Archdeacon, T. P., Bonar, S. A. // N. Am. J. Aquacult. - 2009. - Vol. 71, No. 4. - P. 380-383.
131. Ultrastructure of the digestive tract of Paradiplozoon homoion (Monogenea) / Konstanzova, V. [et al] // Parasitology Research. - 2015. - Vol. 114. - P. 1485-1494.
132. An ultrastructural study of the surface and attachment structures of Paradiplozoon homoion (Bychowsky & Nagibina, 1959) (Monogenea: Diplozoidae) / Konstanzová, V. [et al] // Parasites & Vectors. - 2017. - Vol. 10. - P. 261.
133. Spatial Distribution of Gyrodactylus salmonis (Monogenea) on the Body of Captive Fingerling Oncorhynchus mykiss, Including Attachment Within the Olfactory Chamber / Lari, E., Cone, D. K., Goater, C. P., Pyle, G. G. // J. Parasitol. - 2016. - Vol. 102, No. 2. - P. 174-178.
134. Larsen, A. H. Pathogenicity of Diplostomum cercariae in rainbow trout, and alternative measures to prevent diplostomosis in fish farms / Larsen, A. H., Bresciani, J., Buchmann, K. // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. - 2005. - Vol. 25, No. 1. - P. 20-27.
135. Lebedeva, D. New salinity tolerant species of Gyrodactylus (Platyhelminthes, Monogenea) on intertidal and supratidal fish species from the Chilean coast / Lebedeva, D., Muñoz, G., Lumme, J. // Acta Parasitol. - 2021. - Vol. 66, No. 3. - P. 1021-1030.
136. Efficacy of ginger-based treatments against infection with Gyrodactylus turnbulli in the guppy (Poecilia reticulata (Peters)) / Levy, G., Zilberg, D., Paladini, G., Fridman, S. // Vet. Parasitol. - 2015. - Vol. 209, No. 3-4. - P. 235241.
137. Lewbart, G. A. The use of praziquantel in the elimination of intestinal cestodes from the red snakehead (Channa micropletes) / Lewbart, G. A., Gratzek, J. B. // Proc. Int. Assoc. Aquat. Anim. Med. - 1990. - Vol. 21. - P. 1113.
138. Lorio, W. J. Experimental control of metacercariae of the yellow grub Clinostomum marginatum in channel catfish / Lorio, W. J. // J. Aquat. Anim. Health. - 1989. - Vol. 1, No. 4. - P. 269-271.
139. Lunestad, B. T. Safety of medical feed additives in the food chain / Lunestad, B. T., Hannisdal, R., Samuelsen, O. // In: Feed and Feeding Practices
in Aquaculture. - Davis, D. A. (Ed.). - Woodhead Publishing; Oxford. - 2015. -P. 251-268.
140. Parasite-induced aggression and impaired contest ability in a fish host / Mikheev, V. N., Pasternak, A. F., Taskinen, J., Valtonen, E. T. // Parasit. Vectors.
- 2010. - Vol. 3. - Article No. 17.
141. Mitchell, A. Efficacy of 6-, 12-, and 24-h praziquantel bath treatments against Asian tapeworms Bothriocephalus acheilognathi in grass carp / Mitchell, A., Darwish, A. // N. Am. J. Aquacult. - 2009. - Vol. 71, No. 1. - P. 30-34.
142. Mitchell, A. J. Effectiveness of praziquantel bath treatments against Bothriocephalus acheilognathi in grass carp / Mitchell, A. J. // J. Aquat. Anim. Health. - 2004. - Vol. 16, No. 3. - P. 130-136.
143. Mitchell, A. J. Importance of treatment duration for praziquantel used against larval digenetic trematodes in sunshine bass / Mitchell, A. J. // J. Aquat. Anim. Health. - 1995. - Vol. 7, No. 4. - P. 327-330.
144. Mitchell, A. J. The acute toxicity of praziquantel to grass carp and golden shiners / Mitchell, A. J., Hobbs, M. S. // N. Am. J. Aquacult. - 2007. - Vol. 69, No. 3. - P. 203-206.
145. Mitchell, C. Eubothrium / Mitchell, C. // Scottish Office Agriculture and Fisheries Department. - 1993. - Aquaculture Information Series, No. 14. - 8 p.
146. Molnár, K. Field guide to the control of warmwater fish diseases in Central and Eastern Europe, the Caucasus and Central Asia / Molnár, K., Székely, C., Láng, M. // FAO Fisheries and Aquaculture Circular No. 1182. - Ankara: FAO.
- 2019. - 124 p.
147. Efficacy of praziquantel and a combination anthelmintic (Adecto®) in bath treatments against Tagia ecuadori and Neobenedenia melleni (Monogenea), parasites of bullseye puffer fish / Morales-Serna, F. N. [et al] // Aquaculture. -2018. - Vol. 492. - P. 361-368.
148. Moser, M. The effects of praziquantel on various larval and adult parasites from freshwater and marine snails and fish / Moser, M., Sakanari, J., Heckmann, R. // J. Parasitol. - 1986. - Vol. 72, No. 1. - P. 175-176.
149. Nagano, T. H13 / Nagano, T., Isshiki, T., Sakamoto, H. // Bull. Kagawa Pref. Fish Exp. Stn. - 2013. - P. 97-99.
150. Legemidler I Fiskeoppdrett 2016 [Medicines in Fish Farming 2016] / NIPH (National Institute of Public Health). - 2016.
151. Noga, E. J Fish Disease: Diagnosis and Treatment / Noga, E. J. - John Wiley & Sons. - 2010. - 536 p.
152. Mutagenic and physiological responses in the juveniles of African catfish, Clarias gariepinus (Burchell 1822) following short term exposure to praziquantel / Nwani, C. D. [et al] // Tissue Cell. - 2014. - Vol. 46, No. 4. - P. 264-273.
153. Obiekezie, A. Toxicity of four commonly used chemotherapeutic compounds to fry of the African catfish, Clarias gariepinus (Burchell) / Obiekezie, A., Okafor, N. // Aquacult. Res. - 1995. - Vol. 26, No. 6. - P. 441-445.
154. Okabe, K. Hada-clean, an antiparasitic drug for oral treatment of fish parasites / Okabe, K. // Doyaku Kenkyu. - 2000. - Vol. 60. - P. 1-12.
155. Onaka, E. Albendazole and praziquantel efficacy against Anacanthorus penilabiatus (Monogenea: Dactylogyridae), gill parasite of Piaractus mesopotamicus (Osteichthyes: Characidae). I. Therapeutic baths / Onaka, E., Martins, M., Moraes, F. // Bol. Inst. Pesca. - 2003. - Vol. 29, No. 2. - P. 101107.
156. The attachment of the monogenean Diplozoon paradoxum to the gills of Rutilus rutilus L. II. Structure and mechanism of the adhesive apparatus / Owen, I. // Parasitology. - 1963. - Vol. 53, No. 3-4. - P. 463-468.
157. Ozer, A. Checklist of marine, freshwater and aquarium fish parasites in Turkey / Ozer, A. // Publication No: 62. - Istanbul. - 2021. - 311 p.
158. Geographical distribution of Gyrodactylus salaris Malmberg, 1957 (Monogenea, Gyrodactylidae) / Paladini, G. [et al] // Parasit. Vectors. - 2021. -Vol. 14, No. 1. - P. 34.
159. Peeler, E. J. Human intervention in freshwater ecosystems drives disease emergence / Peeler, E. J., Feist, S. W. // Freshwater Biol. - 2011. - Vol. 56. - P. 705-716.
160. Plumb, J. A. Effect of Droncit (praziquantel) on yellow grubs Clinostomum marginatum and eye flukes Diplostomum spathaceum in channel catfish / Plumb, J. A., Rogers, W. A. // J. Aquat. Anim. Health. - 1990. - Vol. 2, No. 3. -P. 204-206.
161. Side effects of praziquantel in the treatment of Schistosoma mansoni in Maniema, Zaire / Polderman, A., Gryseels, B., Gerold, J., Mpamila, K., Manshande, J. // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. - 1984. - Vol. 78, No. 6. - P. 752-754.
162. Pool, D. The control of Bothriocephalus acheilognathi in grass carp / Pool, D., Ryder, K., Andrews, C. // Aquacult. Res. - 1984. - Vol. 15, No. 1. - P. 3133.
163. Poynton, S. L. Skin lesions in captive lemon sharks Negaprion brevirostris (Carcharhinidae) associated with the monogenean Neodermophthirius harkemai Price, 1963 (Microbothriidae) / Poynton, S. L., Campbell, T. W., Palm, H. W. // Dis. Aquat. Org. - 1997. - Vol. 31. - P. 29-33.
164. Guide to Monogenoidea of freshwater fish of Palaearctic and Amur regions / Pugachev, O. N. [et al] // Ledizion-Ledipublishing. - Milan. - 2010. - 562 p.
165. Evaluation of praziquantel efficacy against Zeuxapta seriolae infections in greater amberjack, Seriola dumerili / Rigos, G., Kogiannou, D., Vasilaki, A., Kotsiri, M. // Appl. Sci. - 2021. - Vol. 11. - P. 46-56.
166. Morphological and molecular characterisation of Gyrodactylus salmonis (Platyhelminthes, Monogenea) isolates collected in Mexico from
rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum) / Rubio-Godoy, M. [et al] // Vet. Parasitol. - 2012. - Vol. 186, No. 3-4. - P. 289-300.
167. Effect of marine Eubothrium sp. (Cestoda: Pseudophyllidea) on the growth of Atlantic salmon, Salmo salar L. / Saksvik, M., Nilsen, F., Nylund, A., Berland, B. // J. Fish. Dis. - 2001. - Vol. 24, No. 2. - P. 111-119.
168. Experimental infection of Atlantic salmon (Salmo salar) with marine Eubothrium sp. (Cestoda: Pseudophyllidea): observations on the life cycle, aspects of development and growth of the parasite / Saksvik, M., Nylund, A., Nilsen, F., Hodneland, K. // Folia Parasitol. - 2001. - Vol. 48, No. 2. - P. 118-126.
169. Anthelminthic activity of praziquantel, niclosamide, netobimin and mebendazole against Bothriocephalus scorpii naturally infecting turbot (Scophthalmus maximus) / Sanmartín Durán, M. L. [et al] // Aquaculture. -1989. - Vol. 76. - P. 199-201.
170. Anthelmintic treatment against Gyrodactylus sp. infecting rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / Santamarina, M. T. [et al] // Dis. Aquat. Org. - 1991. -Vol. 10. - P. 39-43.
171. Acute visceral cysticercosis by Taenia hydatigena in lambs and treatment with praziquantel / Scala, A. [et al] // J. Helminthol. - 2016. - Vol. 90, No. 1. -P. 113-116.
172. Schmahl, G. Treatment of fish parasites. 1. Praziquantel effective against Monogenea (Dactylogyrus vastator, Dactylogyrus extensus, Diplozoon paradoxum) / Schmahl, G., Mehlhorn, H. // Z. Parasitenkd. - 1985. - Vol. 71, No. 6. - P. 727-737.
173. Schmahl, G. Treatment of fish parasites. Effects of sym. triazinone (toltrazuril) on Monogenea / Schmahl, G., Mehlhorn, H. // Parasitol. Res. -1988. - Vol. 75, No. 2. - P. 132-143.
174. Schmahl, G. Treatment of fish parasites. 2. Effects of praziquantel, niclosamide, levamisole-HCl, and metrifonate on Monogenea (Gyrodactylus
aculeati, Diplozoon paradoxum) / Schmahl, G., Taraschewski, H. // Parasitol. Res. - 1987. - Vol. 73, No. 4. - P. 341-351.
175. Foundations of Parasitology / Schmidt, G., Roberts, L. - St. Louis, Missouri: Times Mirror/Mosby. - 1989.
176. Scott, M. E. Temperature dependent reproduction and survival of Gyrodactylus bullatarudis (Monogenea) on guppies (Poecilia reticulata) / Scott, M. E., Nokes, D. J. // Parasitol. - 1984. - Vol. 89. - P. 221-227.
177. Sebelova, S. Abnormalities of the attachment clamps of representatives of the Family Diplozoidae / Sebelova, S., Kuperman, B., Gelnar, M. // J. Helminthol. - 2002. - Vol. 76, No. 3. - P. 249-259.
178. Efficacy of Aqui-S, formalin and praziquantel against the monogeneans, Benedenia seriolae and Zeuxapta seriolae, infecting yellowtail kingfish Seriola lalandi lalandi in New Zealand / Sharp, N. J., Diggles, B. K., Poortenaar, C. W., Willis, T. J. // Aquaculture. - 2004. - Vol. 236, No. 1-4. - P. 67-83.
179. Shirakashi, S. Blood fluke infections in marine cultured fish / Shirakashi, S., Ogawa, K. // Fish Pathol. - 2016. - Vol. 51, No. 3. - P. 92-98.
180. Sitja-Bobadilla, A. In vivo and in vitro treatments against Sparicotyle chrysophrii (Monogenea: Microcotylidae) parasitizing the gills of gilthead sea bream (Sparus aurata L.) / Sitja-Bobadilla, A., de Felipe, M. C., Alvarez-Pellitero, P. // Aquaculture. - 2006. - Vol. 261, No. 3. - P. 856-864.
181. Sokolov, S. G. First data on parasites of the rotan, Perccottus glenii Dybowski, 1877 (Perciformes: Odontobutidae), from Germany, with a detection of the previously unknown merocercoid of the gryporhynchid cestode mashonalepis macrosphincter (Fuhrmann, 1909) / Sokolov, S. G., Protasova, E. N., Reshetnikov, A. N. // Acta Zoologica Bulgarica. - 2015. - Vol. 67, No. 4. - P. 557-560.
182. Efficacy and side effects of praziquantel in an epidemic focus of Schistosoma mansoni / Stelma, F. [et al] // Am. J. Trop. Med. Hyg. - 1995. -Vol. 53, No. 2. - P. 167-170.
183. Use of praziquantel for the control of monogenetic trematodes in public marine aquariums / Stetter, M. D., Davis, J., Capobianco, J., Coston, C. // Proc. Int. Assn. Aquat. Anim. Med. - 1999. - Vol. 30. - P. 85-86.
184. Stress and welfare in ornamental fishes: what can be learned from aquaculture? / Stevens, C. H., Croft, D. P., Paull, G. C., Tyler, C. R. // J. Fish Biol. - 2017. - Vol. 91. - P. 409-428.
185. The effect of praziquantel applied per os on selected haematological and biochemical indices in common carp (Cyprinus carpio L.) / Sudova, E. [et al] // Fish Physiol. Biochem. - 2009. - Vol. 35, No. 4. - P. 599-605.
186. Efficacy testing of orally administered praziquantel to common carp naturally infected by Caryophyllidean tapeworms (Platyhelminthes: Eucestoda) / Sudova, E. [et al] // Acta Vet. - 2010. - Vol. 79, No. 9. - P. S73-S78.
187. Summary report (1), PRAZIQUANTEL / Committee for Veterinary Medicinal Products. - EMEA/MRL/141 /96-FINAL. - September 1996. - 3 p.
188. Szekely, C. Praziquantel (Droncit) is effective against diplostomosis of grass carp (Ctenopharyngodon idella) and silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) / Szekely, C., Molnar, K. // Dis. Aquat. Org. - 1991. - Vol. 11, No. 2. - P. 147150.
189. Szekely, C. Treatment of Ancylodiscoides vistulensis monogenean infestation of the European catfish (Silurus glanis) / Szekely, C., Molnar, K. // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. - 1990. - Vol. 10, No. 3. - P. 74-77.
190. Parasitic infections in freshwater ornamental fish in Sri Lanka / Thilakaratne, I. [et al] // Dis. Aquat. Organ. - 2003. - Vol. 54. - P. 157-162.
191. The efficacy of praziquantel against cestodes in cats, dogs and sheep / Thomas, H., Gonnert, R. // Res. Vet. Sci. - 1978. - Vol. 24, No. 1. - P. 20-25.
192. The effects of trichlorfon, praziquantel and copper sulphate on various stages of the monogenean Benedeniella posterocolpa, a skin parasite of the cownose ray, Rhinoptera bonasus (Mitchill) / Thoney, D. A. // J. Fish. Dis. -1990. - Vol. 13, No. 5. - P. 385-389.
193. Thoney, D. A. Monogenea (Platyhelminthes) as hazards for fish in confinement / Thoney, D. A., Hargis, W. J. // Annu. Rev. Fish Dis. - 1991. -Vol. 1. - P. 133-153.
194. Tojo J.L. Oral pharmacological treatments for parasitic diseases of rainbow trout Oncorhynchus mykiss. II. Gyrodactylus sp. / Tojo J.L., Santamarina M.T. // Dis. Aquat. Org.. - 1998. - T. 33, № 3. - C. 187-193.
195. Efficacy of anthelmintic drugs against gyrodactylosis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / Tojo J. [et al] // Bull Eur Ass Fish Pathol. - 1993a. -T. 13. - C. 45-48.
196. Efficacy of antiprotozoal drugs against gyrodactylosis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) / Tojo J. [et al] // Bull Eur Ass Fish Pathol. - 1993b. -T. 13. - C. 79-82.
197. Trujillo-Gonzalez A. Chapter Seven - Parasite Dispersal From the Ornamental Goldfish Trade / Trujillo-Gonzalez A., Becker J.A., Hutson K.S. // Advances in Parasitology. - 2018. - T. 100. - C. 239-281.
198. Trujillo-Gonzalez A., Becker J.A., Vaughan D.B., Hutson K.S. Monogenean parasites infect ornamental fish imported to Australia / Trujillo-Gonzalez A., Becker J.A., Vaughan D.B., Hutson K.S. // Parasitol Res. - 2018. - T. 117, № 4.
- C. 995-1011.
199. Truter M., Prikrylova I., Malherbe W., Smit N.J. First report of metazoan parasites from the cichlid Pseudocrenilabrus philander and the cyprinid enteromius paludinosus in a South African Ramsar wetland / Truter M., Prikrylova I., Malherbe W., Smit N.J. // African Journal of Aquatic Science.
- 2016. - T. 41, № 4. - C. 499-503.
200. Truter M. Review of the metazoan parasites of the economically and ecologically important African sharptooth catfish Clarias gariepinus in Africa: Current status and novel records / Truter M., Hadfield K.A., Smit N.J. // Adv Parasitol. - 2023. - T. 119. - C. 65-222.
201. Tubbs L.A. Bioavailability and pharmacokinetics of a praziquantel bolus in kingfish Seriola lalandi / Tubbs L.A., Tingle M.D. // Dis. Aquat. Org. - 2006а.
- Т. 69, № 2-3. - С. 233-238.
202. Tubbs L.A. Effect of dose escalation on multiple dose pharmacokinetics of orally administered praziquantel in kingfish Seriola lalandi / Tubbs L.A., Tingle M.D. // Aquaculture. - 2006b. - Т. 261, № 4. - С. 1168-1174.
203. Tubbs L. Metabolism of praziquantel in kingfish Seriola lalandi / Tubbs L., Mathieson T., Tingle M. // Diseases of Aquatic Organisms. - 2008. - Т. 78. - С. 225-233.
204. Selection by parasites in spate conditions in wild Trinidadian guppies (Poecilia reticulata) / van Oosterhout C/ [et al] // Int J Parasitol. - 2007. - Т. 37. - С. 805-812.
205. Vaughan D.B. Heterocotyle tokoloshei sp. nov. (Monogenea, monocotylidae) from the gills of Dasyatis brevicaudata (Dasyatidae) kept in captivity at Two Oceans Aquarium, Cape Town, South Africa: description and notes on treatment / Vaughan D.B., Chisholm L.A. // Acta Parasitol. - 2010. - Т. 55. - №
2. - С. 108-114.
206. Effects of praziquantel on common carp embryos and larvae / Velisek J., Zuskova E., Kubec J., Sandova M. // Sci Rep. - 2022. - 14 окт. - Т. 12. - № 1.
- С. 17290.
207. Ward D.L. Removal and quantification of Asian tapeworm from bonytail chub using praziquantel / Ward D.L. // N. Am. J. Aquacult. - 2007. - Т. 69. - №
3. - С. 207-210.
208. Wegner D. The profile of the trematodicidal compound praziquantel / Wegner D. // Arzneim. Forsch. - 1984. - Т. 34. - № 9B. - С. 1132-1136.
209. Whittington I.D. In: Fish Parasites: Pathobiology and Protection / Woo P.T.K., Buchmann K. (ред.). - CABI; Wallingford: 2012. - С. 225-244.
210. Whittington R.J. Global trade in ornamental fish from an Australian perspective: the case for revised import risk analysis and management strategies / Whittington R.J., Chong R. // Prev Vet Med. - 2007. - Т. 81. - С. 92-116.
211. WHO (World Health Organization), Stuart M.C., Kouimtzi M., Hill S.R. WHO Model Formulary 2008 // World Health Organization; Geneva: 2009. -[Электронный ресурс]. - URL: https://apps.who.int/iris/handle/10665/44053 (дата обращения: 14.10.2023).
212. Wikerhauser T., Ergles J., Kozelj B. // Acta Parasitol. - 1976. - Т. 7. - С. 33-36.
213. Williams R.E. Oral treatments for monogenean parasities of farmed yellowtails, Seriola spp. (Carangidae) / Williams R.E. // PhD thesis. -University of Adelaide, Adelaide; 2009.
214. Efficacy of orally administered praziquantel against Zeuxapta seriolae and Benedenia seriolae (Monogenea) in yellowtail kingfish Seriola lalandi / Williams R.E., Ernst I., Chambers C.B., Whittington I.D. // Dis. Aquat. Org. - 2007. - Т. 77. - № 3. - С. 199-205.
215. Wong W. Attachment ability of a clamp-bearing fish parasite, Diplozoon paradoxum (Monogenea), on gills of the common bream, Abramis brama / Wong W., Gorb S. // Journal of Experimental Biology. - 2013. - Т. 216. - № 16. - С. 3008-3014.
216. The efficacy of four common anthelmintic drugs and traditional Chinese medicinal plant extracts to control Dactylogyrus vastator (Monogenea) / Zhang X.P. [et al] // Aquaculture. - 2014. - Т. 420-421. - С. 302-307.
217. Zhatkanbayeva D. Effectiveness of praziquantel against trematodoses of fish / Zhatkanbayeva D., Heckmann R.A. // Book of Abstracts, Vllth Int. Congr. of Parasitol., 20-24 August 1990, Paris, p. 869.
218. Efficacy and toxicity of praziquantel in helminth-infected barbel (Barbus barbus L.) / Zuskova E. [et al] // J Fish Dis. - 2018. - Т. 41. - № 4. - С. 643649.
219. Acute toxicity of praziquantel to fish Danio rerio and planktonic crustacean Daphnia magna / Zuskova E. [et al] // Vet Med - Czech. - 2022. - Т. 67. - № 11. - С. 579-584.
ПРИЛОЖЕНИЯ
ФЕДЕРАЛЬНАЯ СЛУЖБА ПО ВЕТЕРИНАРНОМУ И ФИТОСАНИТАРНОМУ НАДЗрРУ
Регистрационное удостоверение лекарственного препарата для ветеринарного применения
№ 007245
Номер регистрационного удостоверения
Дата государственной регистрации: «......21».........._......шваря______.. 20 25_ г
Наименование и адрес держателя или владельца регистрационного удостоверения
лекарственного препарата: ООО "НЩ Агроветзащета'' 129329, г. Москва, _______
Игарский проезд, д. 4, стр. 2 .........___ _____________________^_____
Наименование и адрес юридического лица - разработчика лекарственного препарата ООО нНВЦ Aгpoвeтзaщитa,, 129329, г. Москва, Игарский проезд, д. ^слр. г_______
Торговое наименование лекарственного прёпарата:-
Международное непатентованное, или группировочное, или химическое наименование лекарственного препарата: . ________________
Лекарственная форма: „Ш™
Дозировка
Регистрационное удостоверение выдано бессрочно, со сроком действия 5 лет (нужное подчеркнуть) ^-у
Савенков
Заместитель Руководителя
(подпись) \
(Ф.И.О.)
(должность)
АО «ОПЦИОН», Москва, 2024 г., «Б». ТЗ №~703.
ИНСТРУКЦИЯ по ветеринарному применению лекарственного препарата
САЛЬМОГИР®
(Организация-разработчик: ООО «НВЦ Агроветзащита», Россия, 129329, г. Москва, Игарский проезд, д. 4, стр.2)
Номер регистрационного удостоверения:
I. Общие сведения
1. Наименование лекарственного препарата для ветеринарного применения:
торговое наименование: САЛЬМОГИР® (Бакш^и);
международное непатентованное наименование: празиквантел.
2. Лекарственная форма: раствор для наружного применения.
САЛЬМОГИР® в 1 мл в качестве действующего вещества содержит
празиквантел - 50 мг, а в качестве вспомогательных веществ: этилцеллозольв, трилон Б, полиэтиленгликоль-400.
3. По внешнему виду лекарственный препарат представляет собой прозрачную жидкость от светло-желтого до розового цвета.
Срок годности лекарственного препарата при соблюдении условий хранения в закрытой упаковке производителя - 2 года со дня производства, после первого вскрытия упаковки - 3 месяца. Запрещается применять препарат по истечении срока годности.
Рабочий раствор препарата стабилен в течение 24 часов.
4. Лекарственный препарат выпускают расфасованным по 20 мл в полимерные флаконы и флаконы из тёмного стекла, по 100 мл в полимерные флаконы, по 1 л в полимерные бутылки, по 5 л в полимерные канистры, укупоренные навинчиваемыми полимерными крышками с контролем первого вскрытия. Флаконы помещают поштучно в картонную пачку. Флаконы допускается снабжать полимерным адаптером и / или шприцом-дозатором. Каждую потребительскую упаковку снабжают инструкцией по применению препарата.
5. Хранят лекарственный препарат в закрытой упаковке производителя, в защищенном от прямых солнечных лучей месте, при температуре от 2°С до 25°С.
6. Лекарственный препарат хранят в местах, недоступных для детей.
7. Неиспользованный лекарственный препарат утилизируют в соответствии с требованиями законодательства.
8. Отпускается без рецепта ветеринарного врача.
II. Фармакологические свойства
9. САЛЬМОГИР® относится к лекарственным препаратам фармакотерапевтической группы - антигельминтные средства.
10. Входящий в состав препарата празиквантел обеспечивает широкий спектр его противопаразитарного действия в отношении: имагинальных и личиночных стадий развития моногеней, трематод и цестод, в том числе СугойаМуЫь 8рр., Ва&у1о£уги8 8рр., БгрЬгооп эрр., метацеркариев трематод В1р1о5^тит 8рр., плероцеркоидов цестод семейства ВИер1сИс1ае, паразитирующих у декоративных рыб и рыб, выращиваемых в естественных и искусственных водоемах.
Празиквантел - синтетическое производное пиразинизохинолина. Механизм действия празиквантела основан на деполяризации нейромышечных ганглиоблокаторов, нарушении транспорта глюкозы и микротубулярной функции гельминтов, что вызывает нарушение мышечной иннервации, паралич и гибель паразитов.
После добавления лекарственного препарата в воду празиквантел хорошо всасывается, поступает в системный кровоток и распределяется в органах и тканях рыб. Через 15 минут обработки рыб препаратом празиквантел достигает высоких концентраций в плазме крови, начиная оказывать противопаразитарное действие.
Выводится празиквантел из организма рыб в основном с мочой и фекалиями, в меньшей степени через кожу.
САЛЬМОГИР® по степени воздействия на организм относится к веществам умеренно опасным (3 класс опасности по ГОСТ 12.1.007).
III. Порядок применения
/К\
11. САЛЬМОГИР применяют с лечебной и профилактической целью при моногенеозах, трематодозах и цестодозах декоративных рыб и рыб, выращиваемых в естественных и искусственных водоемах.
12. Противопоказанием к применению является повышенная индивидуальная чувствительность рыб к компонентам лекарственного препарата. Не рекомендуется применять непосредственно в аквариумах с ценными беспозвоночными и растениями.
13. При проведении лечебных мероприятий с использованием препарата САЛЬМОГИР® следует соблюдать общие правила личной гигиены и техники безопасности, предусмотренные при работе с лекарственными препаратами. При случайном контакте лекарственного препарата с кожей или слизистыми оболочками глаз их необходимо немедленно промыть большим количеством проточной воды. Людям с гиперчувствительностью к компонентам
лекарственного препарата следует избегать прямого контакта с препаратом САЛЬМОГИР®. В случае появления аллергических реакций или при случайном попадании препарата в организм человека следует немедленно обратиться в медицинское учреждение (при себе иметь инструкцию по применению препарата или этикетку).
Пустые флаконы, бутылки и канистры из-под лекарственного препарата запрещается использовать для бытовых целей, они подлежат утилизации с бытовыми отходами.
14. Возможность применения лекарственного препарата рыбам в период размножения определяет лечащий ветеринарный врач на основании оценки отношения ожидаемой пользы к возможному риску его применения.
15. САЛЪМОГИР® применяют пресноводным декоративным рыбам и рыбам, выращиваемым в естественных и искусственных водоемах, в виде ванн.
Применение лекарственного препарата рыбам, выращиваемым в естественных и искусственных водоемах
Рыбам, выращиваемым в естественных и искусственных водоемах, лекарственный препарат применяют с лечебной и профилактической целью в виде кратковременных и долговременных ванн в следующих дозах и экспозициях:
Семейство рыб: заболевание Доза препарата (мл/л воды) / продолжительность обработки
Лососёвые: Гиродактилез Диплостомоз 0,2 мл/л/30 минут 0,4 мл/л/30 минут
Карповые: Гиродактилез9 валипороз, диплозооноз Диплостомоз Дактилогироз 0,1 мл/л/60 минут 0,2 мл/л/24 часа 0,4 мл/л/30 минут 0,2 мл/л/24 часа (двукратно)
Осетровые: Диплостомоз 0,2 мл/л/24 часа 0,4 мл/л/30 минут
При дактилогирозе карповых рыб обработку проводят при температуре воды не ниже 18 °С двукратно: с интервалом 7 суток при температуре воды > 23 Тис интервалом 10 суток при температуре воды < 23 °С.
Перед обработкой всей партии 10-15 рыб помещают в отдельную емкость с препаратом в рабочей концентрации на 60 минут. У рыб возможно потемнение окраски тела, нарушение координации движения и небольшое угнетение. При гибели хотя бы 1 рыбы, обработку прекращают, а оставшихся особей
з
пересаживают в чистую воду и увеличивают аэрацию. При отсутствии гибели в отобранной группе (10-15 рыб) проводят обработку всей партии рыб.
Предварительно необходимое количество препарата растворяют в небольшом количестве воды и вносят в емкость с водой, используемую для обработки рыб, тщательно перемешивают и включают аэрацию на 5-10 минут.
Во время обработки не используют осветительные приборы и поддерживают постоянную аэрацию воды.
Лечебный раствор используют однократно.
Во время обработки в растворе с препаратом кормление рыб не проводят.
Повторные противопаразитарные обработки проводят по показаниям, но не чаще 1 раза в 7 суток.
Применение лекарственного препарата декоративным рыбам
Препарат применяют для лечения и профилактики дактилогироза и гиродактилеза пресноводных декоративных рыб в дозе 0,1 мл на литр воды с экспозицией 24 часа двукратно с интервалом 7 суток - при температуре воды > 23 °С и с интервалом 10 суток - при температуре воды < 23 °С.
Лечебную обработку проводят в аквариуме с больными рыбами. Если в аквариуме присутствуют живые растения и ценные гидробионты, обработку рыб проводят в отдельной емкости. Профилактическую обработку вновь приобретенных рыб проводят во время карантина в отдельной емкости (аквариуме).
Перед проведением лечебно-профилактических обработок 2-3 рыбы помещают в отдельную емкость с раствором препарата (0,1 мл на 1 л воды) на 24 часа. У рыб возможно потемнение окраски тела, нарушение координации движения и небольшое угнетение. При гибели хотя бы 1 рыбы, обработку прекращают, а оставшихся особей пересаживают в чистую воду и увеличивают аэрацию. При отсутствии гибели проводят обработку всех рыб в аквариуме.
Для проведения лечебно-профилактических обработок необходимое на объем емкости количество препарата предварительно растворяют в небольшом количестве воды, и полученный раствор вносят в воду емкости, предназначенной для обработки рыбы, включают аэрацию воды.
Во время обработки поддерживают постоянную аэрацию воды, отключают осветительные приборы, пенообразователи (скиммеры), озонаторы и ультрафиолетовые лампы. Не используют во время обработки фильтрацию через сорбенты (уголь, цеолит, ионообменные смолы). Не использовать в воде с повышенным содержанием аммония.
После завершения каждой обработки, в аквариуме необходимо заменить 80% воды.
Лечебный раствор используют однократно.
Во время обработки в растворе с препаратом кормление рыб не проводят.
Повторные противопаразитарные обработки проводят по показаниям, но не чаще 1 раза в 7 суток.
16. При применении лекарственного препарата в соответствии с настоящей инструкцией побочных явлений и осложнений, как правило, не наблюдается. При повышенной индивидуальной чувствительности рыб к компонентам препарата возможно потемнение окраски тела, слабая реакция на внешние раздражители и проявление седативного действия, выраженного в заваливании рыб на бок на дно, которые имеют обратимый характер после их пересадки в чистую воду.
17. При передозировке лекарственного препарата у рыб может наблюдаться отсутствие реакции на внешние раздражители, отсутствие глазных рефлексов, ступор, гибель. В этом случае обработку прекращают, рыб пересаживают в чистую воду и увеличивают аэрацию воды.
18. САЛЬМОГИР® не следует применять одновременно с другими антипаразитарными препаратами. Сведения о несовместимости препарата с лекарственными средствами других фармакологических групп, включая антибактериальные, кормами и кормовыми добавками отсутствуют.
19. Особенностей действия лекарственного препарата при его первом применении или отмене не выявлено.
20. Следует избегать нарушений рекомендуемых сроков и кратности применения препарата, так как это может привести к снижению его терапевтической эффективности.
21. Сроки использования рыб в пищевых целях после обработки определяют путем деления показателя градусо-дней (для лососевых рыб - 150, для карповых и осетровых рыб - 170) на среднюю температуру воды в водоеме.
Наименование и адрес производственной площадки производителя лекарственного препарата для ветеринарного применения:
Наименование, адрес организации, уполномоченной держателем или владельцем регистрационного удостоверения лекарственного препарата на принятие претензий от потребителя:
ООО «АВЗ С-П», Россия, 141305, Московская обл., г.о. Сергиево-Посадский, г. Сергиев Посад, ул. Центральная, д. 1/11.
ООО «АВЗ С-П», Россия, 141305, Московская обл., г.о. Сергиево-Посадский, г. Сергиев Посад, ул. Центральная, д. 1/11.
Телефон круглосуточной «Горячей линии»: 8-800-700-19-93. Информация о лекарственном препарате размещена на сайте www.avzvet.ni
енеральныи директор
С.В. Енгашев
ОБЩЕСТВО С ОГРАНИЧЕННОЙ ОТВЕТСТВЕННОСТЬЮ «НАУЧНО-ВНЕДРЕНЧЕСКИЙ ЦЕНТР АГРОВЕТЗАЩИТА»
СТАНДАРТ ООО «НВЦ АГРОВЕТЗАЩИТА»
СТО 76069684-0369-2023
ОВАНО
одителя
Г САВЕНКОВ
21 ЯНВ 2025
УТВЕРЖДАЮ
НОРМАТИВНЫЙ ДОКУМЕНТ
САЛЬМОГИР®
празиквантел
СТО 76069684-0369-2023
1
к
Ч
^ Москва - 2024 г
ТО€€Ш®(ОЕАЖ ФВДИРАЩЖЖ
ж жжжжж
ж ж ж ж ж ж ж ж
ж ж ж ж ж
жжжжжж
ЩтШ^
ШШШШ^Щ
НА ИЗОБРЕТЕНИЕ
№ 2819870
'■/к'/г:'-
г- " \
тЩШф'
шт
ёжшШж.
Способ лечения паразитарных
Патентообладатель: Общество с ограниченной о.
Т Г
Научно-внедренческий центр Агроветзащита"
тШШШ §¡1
ЦШ
щр " " "
К ■■ *'
Авторы: Сорокин Павел Антонович ШШИ«, Федоровна (ВЦ), Енгашева Екатерина Сергеевна ( Комаров Александр Анатольевич (В11), Енгашев ( Владимирович (Я11), Гончарова Маргарита Никол Сапожников Владимир Ноевич (В11),
ШшшшШЯРШ
ШжШШШшШшШШШШ®, ШШШЖМШшШ.
ЩщШШШтШЩШШ
^ШШШтШШШШШШяШ
Заявка №2023135392
ШШШШШМ
ттт\-л. 1
шШ1ШКГ
вея
Щшт'
Дата государственной регистрации в Государственном реестре изобрел Российской Федерации 28 мая 2024 Г. Срок действия исключительного права на изобретение истекает 27 декабря 2043
Руководитель Федеральной службы по интеллектуальной собственности
ж ж
ж ж ж ж
ж ж ж ж ж ж ж ж ж
ж ж ж ж ж ж ж
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.