Влияние разных антиоксидантов на обмен веществ и продуктивность кур-несушек тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.02, кандидат биологических наук Тюркина, Ольга Валентиновна

  • Тюркина, Ольга Валентиновна
  • кандидат биологических науккандидат биологических наук
  • 2009, Москва
  • Специальность ВАК РФ06.02.02
  • Количество страниц 145
Тюркина, Ольга Валентиновна. Влияние разных антиоксидантов на обмен веществ и продуктивность кур-несушек: дис. кандидат биологических наук: 06.02.02 - Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов. Москва. 2009. 145 с.

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Тюркина, Ольга Валентиновна

ВВЕДЕНИЕ

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Биологическая роль антиоксидантов

1.1.1 Роль свободных радикалов в живом организме

1.1.2 Перекисное окисление липидов

1.1.3 Механизм действия антиоксидантов

1.2 Природные антиоксиданты и их функция в организме

1.3 Синтетические антиоксиданты, их использование в кормлении животных и птицы

II. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1 Зоотехнический опыт

2.2 Методы исследований

III. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ 3.1 Хозяйственно-полезные признаки кур-несушек

3.1.1 Сохранность и живая масса кур-несушек

3.1.2 Яичная продуктивность и затраты корма на продукцию

3.1.3 Качество яиц

3.2. Переваримость и использование питательных веществ рациона

3.3. Обмен веществ у кур-несушек

3.3.1 Белковый обмен

3.3.2 Углеводный обмен

3.3.3 Минеральный обмен

3.3.4 Витаминная обеспеченность организма кур-несушек

3.3.5 Состояние антиоксидантной защиты организма кур- 90 несушек

IV. РЕЗУЛЬТАТЫ ПРОИЗВОДСТВЕННОЙ ПРОВЕРКИ

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов», 06.02.02 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние разных антиоксидантов на обмен веществ и продуктивность кур-несушек»

Для максимальной реализации генетического потенциала высокопродуктивных яичных кроссов кур, которые используются в настоящее время в основном всеми птицефабриками нашей страны, необходимо с особой тщательностью следить-за полноценностью кормления птицы. На фоне чрезвычайно напряженных обменных процессов, протекающих в организме птицы, несбалансированность рационов по питательности приводит к ухудшению ее здоровья, снижению продуктивности и сроков ее использования.

Входящие в; состав комбикормов компоненты (жиры, жирорастворимые витамины, каротин и др.) под воздействием кислорода^ воздуха, света, повышенной* влажности легко поддаются* окислению. В»' результате образуются и накапливаются токсические продукты — кетоны, альдегиды, перекиси, свободные кислоты. Все это приводит к ухудшению^ качества кормов, разрушению многих витаминов, вследствие чего снижается> питательная ценность кормов, и при их потреблении у птицы наблюдается» отставание в росте и развитии, патологические изменения в крови, печени, почках и других органах.

С целью максимальной сохранности качества комбикормов сегодня довольно широко используют антиоксиданты. В биологических системах антиоксидантами называют вещества, способные ингибировать процессы свободнорадикального окисления. Для живых клеток наибольшую опасность представляет цепное окисление полиненасыщенных жирных кислот, или перекисное окисление липидов (ПОЛ). В реакциях перекисного окисления липидов! образуется большое количество гидроперекисей, которые обладают высокой реакционной способностью и оказывают мощное повреждающее действие на клетку. В последнее время) свободные радикалы и реакции с их участием считаются причиной возникновения многих заболеваний у животных.

Принцип действия антиоксиданта состоит в том, что он взаимодействует с активными радикалами, в результате чего образуются малоактивные вещества и процесс окисления либо замедляется, либо прекращается вовсе. Если образование свободных радикалов происходит слишком интенсивно, организм перестает нейтрализовывать их и происходит нарушение равновесия — так называемый, «окислительный стресс». Из-за избытка свободных радикалов и их высокой биохимической активности начинаются процессы окисления фосфолипидов клеточных мембран. Вызываемые таким! окислением повреждения могут приводить к нарушениям структуры молекулы ДНК и генным мутациям. Повышенный уровень антиокислителей так же нежелателен, как и их недостаток, поскольку он может привести к подавлению важных процессов окисления в организме и, как следствие, к нарушению обмена веществ:

Доказано, что антиоксидантные препараты могут эффективно предотвращать окислительный' стресс: они нейтрализуют свободные радикалы в организме животного и в* кормах, играют важную роль, в! сохранении целостности клеток организма и, следовательно, его здоровья1. Количество антиоксидантов может быть увеличено у животных при полноценном кормлении. При оптимальном балансе различных антиоксидантов в результате проявления синергизма возникает возможность значительного ограничения окислительных стрессов

15,21,35,47,55,57,61,77].

В настоящее время антиоксиданты, уникальные свойства которых не могли остаться незамеченными, получили широкое распространение в животноводстве, и в первую очередь в производстве комбикормов и премиксов [63,23,30,33,38].

Актуальность темы. Результаты отечественных и зарубежных исследований свидетельствуют, что применение антиоксидантов в животноводстве позволяет более эффективно использовать питательные вещества корма и снизить их затраты на единицу продукции [43,63]. Введение в комбикорма антиоксидантов способствует понижению окислительных процессов в организме, обеспечивает высокую сохранность молодняка, повышение живой массы, общей резистентности и продуктивности животных [1,2,3,32,34,38,44,79,105,156,157].

Но,' несмотря на широкое применение и свою универсальность, антиоксиданты не панацея, а очень тонкий регулирующий инструмент. Эффективность антиоксидантов зависит от дозы препарата не линейно. В-больших концентрациях антиоксиданты начинают действовать в обратном, направлении и не тормозят а, напротив, ускоряют свободнорадикальные реакции [15]. Следовательно, к применению антиоксидантов необходимо подходить очень осторожно. Поскольку ассортимент антиоксидантов, разрешенных к применению, достаточно широк, особенно важным становится изучение эффективности» их использования в кормлении- кур-несушек высокопродуктивных кроссов.

Цель исследований. Целью1 диссертационной работы явилось, изучение влияния антиоксидантов Агидола кормового и Окси-Нил драй на обмен веществ и продуктивность кур-несушек.

Основные задачи исследований:

• установить влияние антиоксидантов на продуктивность птицы, затраты кормов на единицу продукции и качество яиц;

• выявить влияние различных антиоксидантов на состояние обменных процессов в организме кур-несушек;

• установить оптимальные дозировки введения антиоксидантов в комбикорма для кур-несушек;

• дать оценку экономической эффективности использования антиоксидантов в комбикормах кур-несушек.

Научная новизна исследований. Впервые у кур-несушек кросса H&N «Super Nick» в период интенсивного роста яйценоскости, получавших антиоксиданты Агидол кормовой и Окси-Нил драй, изучен обмен белков, углеводов и минеральных веществ, уровень свободнорадикального окисления липидов, определена активность антиоксидантной системы. Показано влияние ввода антиоксидантов на морфологические и биохимические показатели яиц.

Практическая значимость результатов работы. Проведенными исследованиями установлено, что введение в кормосмесь антиоксидантов (175 мг/кг Агидол кормовой и 125 мг/кг Окси-Нил драй) способствует улучшению обменных процессов, витаминной обеспеченности, повышению эффективности работы антиоксидантной системы кур-несушек. Использование данных антиоксидантов в оптимальных дозировках обеспечило повышение яичной продуктивности, качества яиц, рентабельности производства продукции.

Основные положения, выносимые на защиту:

• продуктивные показатели кур-несушек кросса H&N «Super Nick»;

• характеристика качества яиц;

• переваримость и использование питательных веществ рациона курами-несушками;

• уровень обменных процессов у кур-несушек;

• экономическая эффективность применения антиоксидантов. Апробация результатов работы. Основные положения представлены: Международный симпозиум «Современные проблемы ветеринарной диетологии и нутрициологии» (Санкт-Петербург 2008); Международная научно-практическая конференция «Селекционно-технологические аспекты повышения продуктивности сельскохозяйственных животных в современных условиях аграрного производства» (Брянск 2008); Международная научно-практическая конференция «Нанобиотехнологии в сельском хозяйстве» (Москва 2008); Международная научно-практическая конференция (Оренбург 2008).

Публикация результатов работы. Материалы диссертации опубликованы в 8 статьях, в том числе в изданиях, рецензируемых ВАК РФ.

Структура и объем работы. Диссертационная работа изложена на 145 листах компьютерного текста и состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы, материал и методы исследований, результаты собственных исследований, результаты производственных исследований, заключение, выводы, предложения производству, библиографического списка, включающего 182 наименования, в том числе 59 на иностранных языках и приложение. В диссертационной работе 42 таблицы и 9 рисунков.

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

В современном животноводстве и птицеводстве в частности все большее применение для повышения сохранности питательных компонентов рациона (а именно для прекращения или замедления окисления многих веществ, входящих в состав кормовых смесей вводят антиоксиданты) используют антиоксиданты, вещества, которые в достаточно малых количествах способны предотвращать окисление ненасыщенных жирных кислот, жирорастворимых витаминов, каротиноидов и др.

Похожие диссертационные работы по специальности «Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов», 06.02.02 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов», Тюркина, Ольга Валентиновна

выводы

1. С целью повышения сохранности жиров, жирорастворимых витаминов и каротина для кур-несушек кросса «Super Nick» наиболее оптимальными являются дозировки Агидола кормового — 175 мг/кг корма и Окси-Нил драй - 125 мг/кг и 175 мг/кг. Наиболее оптимальные дозировки антиоксидантов обеспечивали более высокий, по сравнению с контролем, уровень яйценоскости (на 2,3-5,1%), выход яичной массы (на 3,2-6,2%) и более низкие затраты корма на 1 кг яичной массы (5,5-6,6%).

2. Введение в рацион кур-несушек Агидола кормового и Окси-Нил драй способствовало увеличению переваримости протеина (на 6,5-10,9%), жира (на 2,9-3,7%), клетчатки (на 10,7-11,2%), более полному использованию кальция (на 1,0-11,7%) и фосфора (на 3,0-28,3%).

3. Наличие в составе кормосмесей антиоксидантов Агидола кормового в дозировке 175 мг/кг и Окси-Нил драй в дозировке 125 мг/кг корма положительно сказалось на морфологических показателях яиц (качество желтка и белка, толщина скорлупы) и биохимических свойствах.

4. Введение в рацион кур-несушек антиоксидантов способствовало повышению интенсивности белкового и минерального обмена. В период стабильно высокой яйценоскости содержание общего белка, кальция и фосфора в сыворотке крови птицы опытных групп превышало показатели кур контрольной группы.

5. Установлено, что антиоксиданты Агидол кормовой и Окси-Нил драй в дозировке 175 мг/кг корма обладают более выраженной способностью, по сравнению с другими дозировками, к сохранению от окисления жирорастворимого витамина А в кормосмесях и способствуют лучшему его депонированию в организме птицы, что проявилось в достоверно более высоком содержании его в печени кур (на 68,1- 84,1%).

6. Положительное влияние включения Агидола кормового и Окси-Нил драй проявилось в достоверном снижении интенсивности образования в организме кур-несушек продуктов перекисного окисления липидов: диеновых коньюгатов (на 18,5-20,1%) и малонового диальдегида (на 21,5-22,3%).

7. Введение в состав кормосмесей Агидола кормового и Окси-Нил драй способствовало повышению антиоксидантной защиты организма кур-несушек, что проявилось в более высокой активности ферментов супероксидцисмутазы (на 5,9-6,1%), каталазы (на 58,9-61,3%), глутатион-пероксидазы (на 6,5-7,0%) и глутатионредуктазы (на 51,8-58,9%).

8. Использование в составе кормосмесей для кур-несушек антиоксидантов Агидола кормового в дозировке 175 мг/кг и Окси-Нил драй в дозировке 125 мг/кг позволило повысить рентабельность производства пищевых яиц на 5,59 и 7,65% соответственно.

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ

Для стабилизации легко окисляющихся питательных веществ комбикормов, улучшения обменных процессов в организме кур-несушек, повышению их яичной продуктивности и улучшения качества продукции рекомендуем использовать антиоксиданты Агидол кормовой из расчета 175 г/т и Окси-Нил драй — 125 г/т.

V. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Работами ряда исследователей доказано положительное влияние антиоксидантов на сохранность питательных веществ компонентов комбикормов, продуктивность птицы и качество продукции [1,34,37,43,56].

Сравнительное изучение яичной продуктивности и качества продукции, переваримости и использования птицей питательных веществ рациона, уровня обменных процессов при введении в комбикорм кур-несушек Агидола кормового и Окси-Нил драй в различных дозировках позволило получить сопоставимые данные и дать им объективную оценку.

Исследованиями установлено, что введение в комбикорма антиоксидантов - в пределах от 125 до 175 мг/кг Агидола кормового и от 100 до 175 мг/кг Окси-Нил драй — оказало положительное влияние на яичную продуктивность кур-несушек. Устойчивые различия между группами по яйценоскости проявились через 8-9 недель после начала опыта. Начиная с этого времени у кур-несушек опытных групп интенсивность яйцекладки была выше, чем у кур контрольной группы. За последние три недели экспериментальных исследований (возраст птицы — 40-43 недели) разница между некоторыми группами достигала более 10 %. Средняя интенсивность яйцекладки за этот период у кур в контрольной группе составила 88,7 %, тогда как в 4 группе она была 99,1% , во 2 группе — 95,8% и в 3 группе — 95,7%. Следует также отметить, что — по сравнению с рекомендуемой для данного кросса интенсивностью яйцекладки (92,2 %) — куры-несушки, получавшие добавку антиоксиданта Окси-Нил драй, имели меньшее превосходство, чем куры, получавшие Агидол кормовой. В лучшей 6 группе интенсивность яйцекладки кур в конце опыта превышала контроль только на 4,6%, а рекомендуемые для данного кросса — на 1,1%, тогда как куры 4 группы — на 10,4% и 6,9% соответственно. Эти данные подтверждаются и возрастом выхода кур на максимальный пик яйценоскости и темпом ее падения. Необходимо отметить, что более ранний выход на пик продуктивности еще не гарантирует высокую яичную продуктивность за весь период яйцекладки в целом. Очень важно, чтобы после его наступления не было быстрого падения продуктивности. У кур, получавших в составе кормосмеси антиоксидант Агидол кормовой в дозировке 175 мг/кг кормосмеси, как раз и произошло наиболее благоприятное сочетание этих показателей. Куры-несушки этой группы, вместе с птицей получавшей 125 мг/кг антиоксидант Окси-Нил драй, в 33-недельном возрасте вышли на 100 % продуктивность. Кроме того, более низкий темп падения продуктивности в 4 группе (0,08% в неделю) способствовал в целом более высокой яйценоскости. Птица из 3 группы хотя и вышла на пик продуктивности позже кур 7 группы (на 4 недели), но за счет медленного снижения яйценоскости также показала достаточно высокую яичную продуктивность. В 3 и 4 группах у кур как раз и отмечается самый высокий индекс яйценоскости, который составил 4,03 и превосходил показатели контрольной на 6,3%.

Однако в современных условиях на первый план выходят экономические показатели, поскольку повышение продуктивности любой ценой не всегда оправдано. Следовательно, очень важно, чтобы затраты кормов на единицу продукции были минимальными.

В результате проведенных исследований нами было установлено, что наименьшие затраты корма, протеина и обменной энергии (как на 10 яиц, так и на 1 кг яичной массы) были у кур-несушек, получавших Агидол кормовой из расчета 175 мг/кг и 125 мг/кг Окси-Нил драй. Затраты корма на 10 яиц в 4 и 7 группах были ниже соответственно на 5,3% и 6,2%, чем в контрольной. Такая же закономерность отмечается и по затратам корма на 1 кг яичной массы. В 4 группе они были ниже контроля на 5,3 %, а в 7 группе - на 6,2 %. Самые большие затраты корма были в группе с максимальной в наших исследованиях дозировкой антиоксиданта Агидола кормового (200 мг/кг); это может указывать на то, что данная дозировка является несколько завышенной. Полученные нами данные полностью согласуются с работами

В. Куренкова и др. (1986); В. Семенютина и др.(1989); А.Гуськова (1993), JI. Захаровой, В. Менькина (2002); О. Сухаренко (2003); И. Драганова, Д. Аджиева (2007) и др. Эти исследователи также отмечают положительное влияние ввода антиоксидантов на продуктивность животных и птицы.

Важно установить влияние вносимых в кормосмесь антиоксидантов на качество яиц. Оценка морфологических и биохимических показателей показала, что введение антиоксидантов положительно сказалось на качестве яйца, а наиболее существенные различия были выявлены не по количественным признакам (масса яйца и его составных частей), а по качественным (индексы белка и желтка и толщина скорлупы, содержание витаминов и др.).

Одним из самых важных показателей является толщина скорлупы, поскольку она, наравне с массой яиц, влияет на товарность яйца. Введение антиоксидантов способствовало увеличению толщины скорлупы. Наиболее-существенная разница по сравнению с контролем была в 8 (выше на 2, 9%), в 5 (на 3,1%) и в 4 группах (на 2,6%). Это важно; поскольку яичная продуктивность кур-несушек опытных групп (кроме 5 группы) была выше, однако это не привело к уменьшению толщины скорлупы, что указывает на лучшую обеспеченность организма кур-несушек минеральными веществами. Это можно объяснить тем, что введенные антиоксиданты, предохраняя от разрушения в кормах жирорастворимые витамины (в частности витамин D, который играет важную роль в минеральном обмене), тем самым способствовали улучшению использования минеральных веществ рациона, что было подтверждено и в балансовом опыте.

По результатам оценки качества желтка и белка удалось также установить определенные различия между некоторыми группами. За период опыта лучшим качеством желтка характеризовались яйца несушек, получавших антиоксидант Окси-Нил драй, и двух групп кур (2 и 4), получавших Агидол кормовой. Хотя в среднем за период опыта яйцо кур 9 группы имеет самый высокий индекс желтка, однако следует отметить, что только у птицы 7 группы на протяжении всего эксперимента не отмечалось снижения его качества. Таким образом, высокая продуктивность кур 7 группы подкрепляется и хорошим качеством яйца. Также установлено, что введение антиоксидантов положительно сказалось и на качестве белка яиц. В яйцах кур-несушек, получавших антиоксидант Окси-Нил драй, белок был более плотным. Если индекс белка у кур; получавших Агидол кормовой, в среднем составил 0,121, то у птицы, получавшей Окси-Нил, — 0;126. Таким образом, как желток, так и белок яиц, более высокого качества был у кур, в кормосмесь которым добавлялся- антиоксидант Окси-Нил драй, что, вероятно, может указывать на улучшение процессов формирования яиц.

Изучение биохимических показателей яиц кур-несушек позволило установить, что по содержанию^ жирорастворимых витаминов и каротина яйца кур опытных групп были более качественным. Несмотря на то, что в< рационе'кур отсутствовала травяная мука, (основной-источник каротина в рационах птицы), введение антиоксидантов положительно сказалось на сбережении каротина, который в некотором количестве присутствовал в^ кукурузе. Но недостаток каротина в рационе отразился на его содержании в яйцах. Самое низкое (3,68 мкг/г) содержание каротина в желтке яиц у несушек контрольной группы указывает на более низкую — по сравнению с опытной птицей - обеспеченность им организма. Средняя величина содержания каротина у яиц кур, получавших Агидол кормовой, составила 3,94 мкг/г, а у птицы, получавшей Окси-Нил драй, — 4,09 мкг/г. Наиболее высокие показатели были отмечены в 8 группе - 4,43 мкг/г (на 20,4% выше контроля). То же самое наблюдается и с содержанием жирорастворимых витаминов. Данные наших исследований согласуются с результатами, полученными Л.Захаровой и В'. Менькиным (2002). По содержанию витаминов А и Е в яйцах среди групп кур, получавших Агидол, лучшей была 4 группа (соответственно на 28,2% и на* 17,5% больше контроля) и 9 группа (на 32,9% и 23,6%). Данные результаты подтверждают, что введение антиоксидантов в корма предохраняло каротин и жирорастворимые витамины от разрушения, тем самым способствуя большему их поступлению в организм птицы. Кроме того, способность антиоксидантов замедлять окислительный расход витаминов в желудочно-кишечном тракте и таким образом сберегать жирорастворимые витамины и содействовать их депонированию в яйце также нашла подтверждение в наших исследованиях.

В проведенном балансовом опыте установлено, что у кур-несушек опытных групп, получавших в рационе антиоксидант Окси-Нил драй, переваримость и использование питательных веществ рациона была выше, чем в контроле и в группах, получавших Агидол кормовой. В группах с максимальным вводом антиоксидантов (5 и 9 группы) переваримость была также выше у птицы, получавшей Окси-Нил драй. Эти данные вполне логичны и подтверждаются вышеприведенными данными яичной продуктивности и качеством яиц. При анализе переваримости и использования питательных веществ рациона при увеличении дозировок антиоксидантов (от оптимальных в наших исследованиях до 200 мг/кг Агидола кормового и 175 мг/кг Окси-Нил драй) установлено, что в группах кур, в рацион которым вводили Агидол кормовой, наблюдалось снижение переваримости протеина на 6,8 %, жира — на 1,81 %, клетчатки — на 6,67 %, тогда как у кур, получавших Окси-Нил драй, наоборот, наблюдалось увеличение переваримости: по протеину - на 2,69 %, жиру — на 0,38 %, клетчатке - на 6,19 %. Полученные данные подтверждают, что антиоксиданты, предохраняя в кормах биологически активные вещества от окисления, тем самым оказали благоприятное воздействие на обменные процессы у кур. Это способствовало лучшей переваримости и использованию питательных веществ рациона.

Показатели продуктивности и качество яиц кур-несушек согласуются с данными обмена веществ. Обобщая результаты особенностей обмена веществ, остановимся на показателях, по которым прослеживается достаточно четкая и выраженная тенденция изменения их в зависимости от типа и дозировок внесенных в кормосмесь антиоксидантов.

Установлено, что ввод антиоксидантов Агидола кормового и Окси-Нил драй положительно сказался на белковом обмене, поскольку у кур опытных групп прослеживалась довольно четкая тенденция к увеличению содержания белка в сыворотке крови. В группах кур, получавших Агидол кормовой, содержание белка находилось в пределах от 50,7 до 61,3 г/л, и от 55,5 до 58,0 г/л - в группах кур, получавших Окси-Нил драй. У птицы в контрольной группе содержание белка было 45,4 г/л. Поскольку синтез белка в организме идет не только в рибосомах, но и в клеточных мембранах, можно предположить, что антиоксиданты, предохраняя липопротеиды мембран от повреждения, способствуют более интенсивному (по сравнению с контролем) биосинтезу белков в организме птиц.

Изучаемые антиоксиданты оказали стабилизирующее влияние и на фракционный состав белка, так как bi опытных группах прослеживалась достаточно'четкая тенденция к увеличению в сыворотке крови альбуминов. Содержание этой белковой фракции в контрольной группе составило 28;5%, тогда как минимальное количество альбумина в 7 группе составило 32%, что на 12,3% больше контроля, а максимальное — в 2, 3, 4 и 9 группах — 33% (на 15,8% выше контроля). Рассматривая глобулиновые фракции можно отметить, что в опытных группах содержание р- и у-глобулинов оптимизировалось и не выходило за физиологические нормы.

Показатели минерального обмена кур-несушек позволили установить, что по содержанию кальция и фосфора прослеживалась также положительная тенденция. В организме птицы, получавшей антиоксиданты, по сравнению с контролем отмечено более высокое содержание этих элементов. Полученные нами данные согласуются с результатами J1. Захаровой, В. Менькина (2002); В. Антипова (2003). В их опытах было установлено, что введение Агидола кормового приводило к увеличению содержания в крови кур кальция. В наших исследованиях также было зафиксировано положительное влияние ввода в рацион птицы антиоксидантов на уровень содержания минеральных веществ - как в крови, так и в костях кур-несушек. Следует отметить, что за исключением кур 4 группы, лучшие результаты были получены в группах несушек, которые получали антиоксидант Окси-Нил драй. Существенное превышение результатов начинается с дозировки Агидола кормового 175 мг/кг и у всех групп кур, получавших Окси-Нил драй. По содержанию кальция в крови и костях у кур в 4 группе превышение над контролем составило 47 и 62 % , в 5 и 8 группах — 47 и 49%, в 9 группе — 49 и 50,6% соответственно. Оценка обеспеченности организма кур фосфором позволила установить картину сходную с обеспеченностью организма кальцием. Содержание фосфора' в сыворотке крови максимальным было у кур* 4 группы — на 0,5 ммоль/л больше, чем в контроле. По^содержанию фосфора в костях прослеживается та же закономерность.

Показатели витаминной обеспеченности- организма кур-несушек в наших исследованиях согласуются с данными полученными М: Черняк (1993); В. Бузлан и др. (1998); О. Сухаренко (2003), эти показатели позволили установить, что в печени резервы витамина А были выше у кур, в рационе которых присутствовали антиоксиданты. Следует выделить кур-несушек 9 группы: у них в печени установлено самое высокое содержание витамина А - на 218,9 мкг/г (Р<0,01), в 8 и 7 группах - на 198,2 мкг/г (Р<0,01). В группах кур, где в качестве антиоксиданта использовался Агидол кормовой (кроме 2 группы), также отмечено достоверно большее содержание в печени этого витамина: в 3 группе - на 166,4 мкг/г, в 4 группе — на 177,25 мкг/г, в 5 группе — на 125 мкг/г (Р<0,01).

Данные по содержанию в печени кур рибофлавина еще раз подтвердили более эффективное действие антиоксиданта Окси-Нил драй по сравнению с Агидолом кормовым. Среднее содержание этого витамина в печени кур, получавших Агидол кормовой, составило 12,95 мкг/г, а у кур, получавших Окси-Нил драй, - 18,28 мкг/г. Наибольшее превосходство (по сравнению с контролем) было отмечено у птицы 9 группы (на 6,6 мкг/г -52,8 %).

Одним из важнейших показателей в наших исследованиях следует считать уровень ПОЛ в организме кур и функционирование их антиоксидантной системы. Установлено, что позитивное влияние введения антиоксидантов в состав кормосмесей для кур-несушек на показатели, характеризующие интенсивность перекисного окисления* липидов, проявилось в достоверном снижении концентрации продуктов липопероксидации (ПОЛ) в организме птицы. Это отразилось на содержании в организме птицы малонового диальдегида (конечный продукт ПОЛ), который, являясь токсичным соединением, способен взаимодействовать со свободными аминогруппами белков, фосфолипидов, что приводит к нарушению клеточных мембран. Поэтому, будучи продуктом* расщепления жирных кислот, малоновый, диальдегид является маркером на процессы распада клеточных биомембран. Содержание малонового диальдегида в крови кур всех опытных групп было достоверно ниже, чем в контрольной группе, а наименьшее его содержание отмечено у несушек 4 группы — на 0,34 мкМ/л (Р<0,001), 8 и 9 группы - на 0,35 мкМ/л (Р<0,001). Но, разумеется, нельзя утверждать, что количество образовавшегося в организме птицы малонового диальдегида зависит только от наличия или отсутствия антиоксидантов. В дополнении к полученным нами результатам необходимо упомянуть и о том, что имеется прямая зависимость количества образовавшегося малонового диальдегида от количества двойных связей в молекуле ненасыщенной жирной кислоты: линолевая образует одну молекулу малонового диальдегида, линоленовая — две, арахидоновая — три, клупанодоновая - четыре. Поэтому количество образовавшегося малонового диальдегида будет еще зависеть не только от наличия или отсутствия в рационе антиоксидантов, но, вероятно, и от соотношения ненасыщенных жирных кислот в рационе птицы.

Похожая закономерность характерна и для конъюгированных диен. Уровень содержания в организме птицы этих метаболитов показал, что введение в рацион антиоксидантов также способствовало достоверному снижению интенсивности их образования. Через 3 месяца после введения в рацион Агидола кормового и Окси-Нил драй, во всех опытных группах у несушек уровень диеновых коныогатов снизился, тогда, как у кур контрольной группы, увеличился на 0,027 ед./мг липидов. Это свидетельствует о снижении интенсивности процессов перекисного окисления липидов в организме птицы, в рационе которой присутствовали антиоксиданты. Можно отметить 4 и 9 группы, у кур этих групп существенно ниже (по сравнению с контрольной группой), уровень содержания в крови диеновых конъюгатов на 16,7% (Р<0,01), на 15,6% (Р<0,05) соответственно.

Очень важно, чтобы в живом организме не происходило нарушения прооксидантно-антиоксидантного равновесия. Одинаково плохо, когда преобладают либо прооксидантные процессы (организм будет испытывать окислительный стресс), либо, наоборот, антиоксидантные (будет наблюдаться ингибирование окислительных процессов). Анализируя антиоксидантные процессы в организме кур, мы установили, что у птицы всех опытных групп активность супероксиддисмутазы в конце опыта была выше, чем у кур контрольной группы. Достоверно выше активность фермента отмечена у кур 4 группы - на 50 ед./мл эритроцитов (Р<0,001), 8 группы - на 44 ед./мл эритроцитов (Р<0,05), 9 группы - на 48 ед./мл эритроцитов (Р<0,01). Похожая закономерность прослеживается и по активности каталазы, которая, как и в случае с СОД, была выше во всех опытных группах, а достоверные различия были отмечены в 4 группе - на 12,7 ед./с на 1 мл эритроцитов (Р<0,01), 8^ группе - на 11,4 ед./с на 1 мл. эритроцитов (Р<0,05), в 9 группе - на 12,2 ед./с на 1 мл эритроцитов (Р<0,01). А поскольку на активность каталазы влияют диоксид- радикал (02 ) и перекись водорода, значит в опытных группах уровень ПОЛ был ниже, чем в контрольной - что согласуется с нашими данными по перекисному окислению липидов. Это подтверждается также активностью глутатионпероксидазы и глутатионредуктазы, когда в контрольной группе через три месяца наблюдалось уменьшение активности этих ферментов, а во всех опытных группах через три месяца после начала использования в рационе антиоксидантов прослеживалась четкая тенденция к увеличению их активности. Выделяются куры-несушки 4 группы (соответственно на 7 % и 59% выше контроля) 8 группы (на 6% и 48%) и 9 группы (на 6% и 52%); в этих группах активность как глутатионпероксидазы, так и глутатионредуктазы была среди всех групп самой высокой.

В целом, полученные результаты указывают на то, что Агидол кормовой и Окси-Нил драй стимулируют антиоксидантную систему кур-несушек, ингибируя в организме чрезмерную активность свободно-радикального окисления. Данные, полученные в наших исследованиях, полностью согласуются с исследованиями В. Бузлан, А. Бузхлан, JI. Кудрявцева, А. Молодыка, В. Привалова, А. Гусева, В.Ударова (1998); Л. Захаровой, В. Менькина (2002) установивших, что введение антиоксидантов предупреждает чрезмерную активацию ПОЛ, повышает мощность антиокислительной системы клеток.

Учитывая все приведенные выше показатели, характеризующие яичную продуктивность и качество продукции, которые, несомненно, являются следствием работы самого организма птицы, можно сделать предположение, что нормальным физиологическим фоном должны быть показатели той птицы, которая характеризуется лучшей яйценоскостью и качеством продукции. Если характеризовать прооксидантные процессы в организме птицы, то, исходя из наших исследований, можно считать, что в период наивысшей яичной продуктивности у кур-несушек физиологически нормальным будет уровень содержания в крови диеновых конъюгатов 0,224-0,233 ед.опт.пл./мг липидов, а малонового диальдегида - 1,57-1,61 мкМ/л.

Антиоксидантную защиту организма характеризует активность антиокислительных ферментов. Как пониженная, так и слишком высокая активность этих ферментов также нежелательна, поскольку это тоже будет указывать на нарушение прооксидантно-оксидантного равновесия в организме. Поэтому логично предположить, что физиологически нормальной будет активность супероксиддисмутазы — от 855 до 869 ед./мл эритроцитов, каталазы - от 27,3 до 33,4 ед. 1/с на 1 мл эритроцитов, глутатионпероксидазы — от 33,7 до 34,2 мкМ/мин. на 1 мл. эритроцитов, глутатионредуктазы - от 0,77 до 0,89 мкМ/мин. на 1 мл. эритроцитов.

Результаты производственной проверки 2 лучших — по продуктивности и затратам корма на яйцо — вариантов (4 группа — 175 мг/кг Агидол кормовой, 7 группа — 125 мг/кг Окси-Нил драй) показали, что их применение позволило получить экономический эффект.

За учетный период в опытных группах было получено на 3196 и 2440' яиц больше, чем в. контроле. Кроме того, в этих группах был более высокий выход товарных яиц. Снизились затраты корма на продукцию1 соответственно на 4,2 и 5,6%.

Уровень рентабельности в опытной группе был 24,15%, в 4 группе -29,74% и 7 группе - 31,80%.

Таким образом, нашими исследованиями установлено, что введение антиоксидантов Агидола кормового (175 мг/кг) и Окси-Нил драй (125 мг/кг) в состав кормосмесей для кур-несушек способствовало лучшей сохранности жиров, жирорастворимых витаминов и каротина, результатом чего явилось улучшение переваримости питательных веществ рациона, улучшение обменных процессов у птицы, что обеспечило более высокую продуктивность и лучшее качество яиц. По большинству показателей, характеризующих обменные процессы более эффективным антиоксидантом оказался Окси-Нил драй, что согласуется с данными В. Айдиняна (2002) показавшего, что смеси различных антиоксидантов (Окси-Нил драй - это смесь синергичных антиоксидантов), как правило, более эффективно препятствуют окислению жиров. Это связано с тем, что отдельные антиоксиданты эффективно предотвращают окисление одного вида жира, но неэффективны в отношении других. Смесь же антиоксидантов в этом смысле обладает более широким спектром действия и большей антиоксидантной активностью [1].

Ill

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Тюркина, Ольга Валентиновна, 2009 год

1. Айдинян Т. Окисление жиров: практическое значение в кормопроизводстве // Комбикорма. 2005. № 6. С. 79-80.

2. Антипов В.А. Эффективность использования препарата «Каролин» // Материалы междунар. коорд. совещания* «Экологические проблемы патологии, фармакологии и терапии животных». Воронеж, 1997. С. 175-176.

3. Антипов В.А. Результаты изучения эффективности «Каролина» на курах-несушках // Материалы научн.-практ. конф. «Новые фармакологические средства для животноводства и ветеринарии». Краснодар, 2001. Т.1 С. 38-39.

4. Антипов В.А. Применение бета-каротина при воспроизводстве животных и птиц // Информационный обзор. Краснодар, 2002. С. 55.

5. Антипов В.А. Применение препаратов каротина в ветеринарии- и животноводстве // Антипов В.А., Турченко А.Н., Кузьминова Е.В. и др. Методические рекомендации. Краснодар, 2003. С. 16.

6. Антипов В.А. Бета-каротин: значение для животных и птиц, их воспроизводства и продуктивности // Информ. обзор. Краснодар, 2003. С. 91.

7. Балакирев Н.А. Влияние витамина Е, аскорбиновой кислоты на воспроизводительную систему норок // Докл. 2-го Всесоюзного симпозиума «Научные основы витаминного питания животных». Юрмала-Рига, 1987. С. 29-31.

8. Балакирев Н.А. Биологически активные вещества и технология кормления норок: Диссертация д-ра с.-х. наук: 06.02.02. М., 1991. С. 46.

9. Барсель В.А. Состояние системы перекисного окисления липидов у больных ишемической болезнью сердца// Кардиология. 1998. № 5. С. 18-20.

10. Бессарабов Б.Ф. Болезни птиц // Бессарабов Б.Ф., Мельникова И.И., Сушкова Н.К., Садчиков С.Ю. Учебное пособие. Изд-во «Лань», 2007. С. 448.

11. Биленко М.В. Ишемические и реперфузионные повреждения органов // Биленко М.В. Медицина. М., 1989. С. 368.

12. Н.Болдырев А.А. Парадоксы окислительного метаболизма мозга // Биохимия. 1995. Т.60. №9. С. 1536-1542.

13. Бурлакова Е.Б. Перекисное окисление липидов мембран и природные антиоксиданты // Бурлакова Е.Б., Храпова Н.Г. Успехи химии. 1985. Т. 54. № 9. С. 1540-1558.

14. Бурлакова Е.Б. Блеск и нищета антиоксидантов // Наука и жизнь. 2006. №2. С. 18-20.

15. Бурков В.И. Применение антиоксиданта эмицидина в ветеринарии // Ветеринария. 2003. №10. С. 52-53.

16. Буртов Ю.З. Инкубация яиц // Буртов Ю.З., Голдин Ю.С., Кривопишин И.П. Справочник. М.: Агропромиздат, 1990. С. 239.

17. Вальдман А.Р. Биологические эффекты некоторых антиоксидантов в питании цыплят // Вальдман А.Р., Апсите М.Р., Атлавин А.Б. Всасывание и обмен веществ у животных. Рига: Знание, 1980. С. 45-52.

18. Вальдман А.Р. Иммунологические проявления витаминов A, D, Е, цинка и дилудина в питании цыплят // Вальдман А.Р., Апсите М.Р., Атлавин А.Б. Тез. докл. научн. конф. Вильнюс, 1988. С. 116-117.

19. Вартанян Л.С. Образование супероксидных радикалов в мембранах субклеточных органелл регенерирующей печени // Вартанян Л.С., Садовникова И.Л., Гефевич С.М, Соколова Н.С. Биохимия. 1992. Т. 57. Вып. 5. С. 671-678.

20. Васильева Е.А. Клиническая биохимия сельскохозяйственных животных. М.: Россельхозиздат, 1982. С. 253.

21. Васильев А.В. Комплексная оценка качества кормов для с.-х. птицы по степени окисления и гидролиза липидов: Автореф. диссертации канд. биол. наук: 03.00.04. Воронеж, 2007. С. 33.

22. Виленчик М.М. Биологические основы старения и долголетия. М.: Знание, 1987. С. 224.

23. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. С. 202.

24. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1983. С. 203.

25. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы в живых системах // Владимиров Ю.А., Азизова О.А., Деев А.И. и др. Итоги науки и техники. Сер. Биофизика. 1991. Т.29. С. 241-249.

26. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах // Соросовский общеобразовательный журнал. 2000. Т. 6. № 9. С. 2-9.

27. Воскресенский О.Н. Антиоксидантная система, онтогенез и старение //Вопр. мед. химии. 1982. Т. 28. № 1. С.14-17.

28. Воскресенский О.Н. Биоантиоксиданты облигатные факторы питания / Воскресенский О.Н., Бобырев В.Н. // Вопр. мед. химии. 1992. Т. 38. №4. С. 21-25.

29. Голиков С.Н., Саноцкий И.В., Тиунов JI.A. Общие механизмы токсического действия. JL: Медицина, 1986. С. 280.

30. Гольденберг В. Водорастворимые антиоксиданты // Птицеводство. 1997. № 1.С. 18-19.

31. Гольденберг В. Новые формы антиоксидантов // Птицеводство. 2001. №5. С. 24-25.

32. Гольденберг В. Антиоксиданты для кормовых продуктов // Комбикорма. 2002. № 8. С. 63-64.

33. Гольдштейн Н. Активные формы кислорода как жизненно необходимые компоненты воздушной среды // Биохимия. 2002. Т. 67. № 2. С. 194-204.

34. Гродзинский Д.М., Войтенко В.П., Кутлахмедов Ю.А. и др. Надежность и старение биологических систем. Киев: Наукова думка, 1987. С. 172.

35. Гуськов A.M. Повышение репродуктивной способности животных методом ингибирования перекисного окисления липидов // Гуськов A.M., Дарий Г.Е. Тез. докл. РАСХН. М., 1993. № 2. С. 71-73.

36. Двинская JI.H., Шубин А.А. Использование антиоксидантов в животноводстве. Л.: Агропромиздат, 1986. С. 10.

37. Диксон М., Уэбб Э. Ферменты. М.: Мир, 1982. Т. 1. С. 389.

38. Драганов И.Ф. Влияние антиоксиданта агидола на содержание витаминов А и Е в крови кроликов // Вестник мясного скотоводства: Матер. Всерос. научно-практ. конф. Оренбург, 2007. Вып. 60. Т.2. С. 45-47.

39. Драганов И.Ф. Влияние скармливания кроликам кормового агидола на состав их крови // Вестник мясного скотоводства: Материалы Междунар. научно-практ. конф. Оренбург, 2008. Вып. 61. Т. 2. С. 58-61.

40. Драганов И.Ф. Продуктивность кроликов при введении в рацион антиоксиданта агидола кормового // Вестник мясного скотоводства: Матер. Всерос. научно-практ. конф. Оренбург, 2007. Вып. 60. Т. 2. С. 44-45.

41. Драганов И.Ф. Влияние агидола кормового на гематологические показатели кроликов // Сборник трудов Международной научно-практической конференции «Агротехнологии XXI века». М.: ФГОУ ВПО РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева, 2008. С. 274-279.

42. Дубинина Е.Е. Активность и изоферментный спектор СОД эритроцитов и плазмы крови человека // Лаб. дело. 1983. №10. С. 30-33.

43. Дубинина Е.Е. Антиоксидантная система плазмы крови // Укр. биохим. журн. 1992. № 2. С. 3-15.

44. Дубинина Е.Е. Характеристика внеклеточной супероксид-дисмутазы // Вопр. мед. химии. 1995. Т. 41. Вып. 6. С. 8-12.

45. Ефимов А.С. Перекисное окисление% липидов в эритроцитах больных сахарным диабетом с диабетическими ангиопатиями // Пробл. эндокринологии. 1985. №1. С. 6-9.

46. Журавлев А.И. Биоантиокислители в живом организме // Журавлев А.И. Биоантиокислители. М.: Наука, 1975. С. 15-29.

47. Журавлев А.И. Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии // Журавлев А.И. Развитие идеи Б.Н. Тарусова о роли цепных процессов в биологии. М.: Наука, 1982. С. 3-36.

48. Караващенко В.Ф., Попов А.А. Учебная книга оператора-птицевода. М.: Агропромиздат, 1987. С. 304.

49. Клименко Т. Антиоксиданты в животноводстве. Чем опасны свободные радикалы // Молоко и корма. 2004. № 3(4). С.35-39.

50. Коган В.Е., Орлов О.Н., Прилипко JI.JI. Проблема анализа эндогенных продуктов ПОЛ. М.: ВИНИТИ, 1986. С. 197.

51. Кольтовер В.К. Надежность ферментативной системы клеток от супероксидных радикалов и старение // Докл. АН СССР. 1981. Т. 256. С. 199202.

52. Комаров А.А. Влияние продуктов окисления и гидролиза липидов корма на физиологические и биохимические показатели сельскохозяйственной птицы // Тезисы докладов 3 межд. конф. «Актуальные проблемы биологии в животноводстве». Боровск, 2000. С. 125.

53. Комаров> А.А. Влияние продуктов окисления и гидролиза липидов корма на уровень витаминов А, Е, С в крови, и печени цыплят-бройлеров // Материалы IX Моск. Междун. ветеринар, конгресса. М., 2001. С. 76-77.

54. Комаров А.А. Изучение динамики окисления и гидролиза липидов БВМК // Тез. докл. Всерос. научн. конф. «Совершенствование* методов контроля, стандартизация', и* сертификация1 ветеринарных препаратов». М., 2001. С. 208-210.

55. Комаров» А.А. Окисление и гидролиз липидов в составе БВМК и комбикормов для кур-несушек // Материалы IV per. конференции «Золотое кольцо России». Владимир, 2001. С. 68-69.

56. Комаров. А.А. Влияние продуктов окисления и гидролиза липидов корма на цыплят-бройлеров // Тез. докл. 10 Московского Международного ветеринарного конгресса. М., 2002. С. 280-282.

57. Комаров А.А. Влияние продуктов окисления липидов кормов на биохимические показатели у цыплят // Ветеринария. 2004. № 1. С. 56-59.

58. Комаров А.А. Окисление и гидролиз липидов // Птицеводство. 2007. №7. С. 35-36.

59. Кондрашова М.Н. Взаимодействие процессов переаминирования и окисления карбоновых кислот при разных функциональных состояниях ткани // Биохимия. 1991. Т. 56. №3. С. 388-405.

60. Кондрахин И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики//Кондрахин И.П. Справочник. М.: Колос, 2004. С. 520.

61. Королюк М.А. Метод определения активности каталазы // Лаб. дело. 1988. № 1. С. 16-19.

62. Круглякова К.Е. Общие представления о механизме действия антиоксидантов // Сб. научн. статей «Исследование синтетических и природных антиоксидантов in vitro и in vivo». М.: Наука, 1992. С. 5-8.

63. Кузьминова Е.В. Эффективность применения препарата «Каролин» в птицеводстве // Материалы Всеросс. научн.-практ. конф. «Студенты и аспиранты малому наукоемкому бизнесу». Казань, 2001. С. 35-36.

64. Кузьминова Е.В. Применение антиоксидантов в птицеводстве // Материалы научн.-практ. конф. «Актуальные проблемы ветеринарии в современных условиях». Краснодар, 2006. С. 299-302.

65. Кузьминова Е.В. Фармакология и применение каротиноидов в ветеринарии и животноводстве: Автореф. диссертации докт. вет. наук: 16.00.04. Казань, 2007. С. 48.

66. Кулинский В.И. Активные формы кислорода и оксидативная модификация макромолекул: польза, вред и защита // Соросовский образовательный журнал. 1999. № 1. С. 2-7.

67. Куренкова В.П. Применение антиоксидантов класса фернозанов // Материалы II Всесоюзной конф. «Биоантиоксиданты». Черноголовка, 1986. Т. 2. С. 103.

68. Ланкин В.З. Ферментативное перекисное окисление липидов // Укр. Биохим. Журн. 1984. Т. 56. № 3. С. 317-331.

69. Ланкин В.З. Антиоксиданты и атеросклероз: Критический анализ проблемы и направление дальнейших исследований // Патогенез. 2004. № 1. С. 71-86.

70. Левицкий Д.О. Биохимия мембран. Кальций и биологические мембраны. М.: Высш. шк., 1990. С. 124.

71. Ленинджер А. Митохондрия. М.: Мир, 1966. С. 315.

72. Ленинджер А. Основы биохимии. М.: Мир, 1985.Т. 2. С. 368.

73. Лохова С.С. Показатели перекисного окисления липидов и системы антиоксидантной защиты в крови цыплят-бройлеров при денитрификации // Достижения науки и техники. 2004. № 2. С. 19-21.

74. Лукьянова Л.Д., Балмуханов Б.С., Уголев А.Т. Кислородозависмые процессы в клетке и ее функциональное состояние. М.: Наука, 1982. С. 301.

75. Лычак А. Антиоксидант «Анок» в кормах для животных и птицы // Комбикорма. 2006. №8. С. 92-94.

76. Лю Б.Н. Антиоксидантная система клетки и канцерогенез // Усп. совр. биол. 1976. Т. 82. № 2. С. 236-251.

77. Малер Г., Кордес Ю. Основы биологической химии // М.: Мир, 1970. С. 563.

78. Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. Новосибирск: Наука, 1989. С. 344.

79. Меньшикова Е.Б. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных окислительных процессов // Успехи современной биологии. 1993. Т. 113. Вып. 4. С. 443-455.

80. Микулец Ю.И, Цыганов А.Р., Тишенков А.Н. и др. Биохимические и физиологические аспекты взаимодействия витаминов и биоэлементов. М., 2004. С. 192.

81. Надиров Н.К. Токоферолы и их использование в медицине и сельском хозяйстве. М.: Наука, 1991. С. 336.

82. Осипов А.Н. Активированные формы кислорода и их роль в организме // Успехи биол. химии. 1990. Т. 31. № 2. С. 180-208.

83. Панченко Л.Ф., Герасимов A.M., Антоненков В.Д. Роль пероксисом в патологии клетки. М.: Медицина, 1981. С. 207.

84. Передельник Н.Ш. Нормирование витаминов в условиях практического кормления пушных зверей // Научн. Тр. НИИПЗК. 1978. Вып. 18. С. 36-46.

85. Петрович Ю.А. Свободно-радикальное окисление и его роль в патогенезе воспаления, ишемии и стресса // Патол. физиология и эксперим. терапия. 1986. №5. С. 85-92.

86. Петровский К.С. Как улучшить внутреннюю среду // Химия и жизнь. 1981. № 11. С. 44-47.

87. Пескин А.В. Взаимодействие активного кислорода с ДНК // Биохимия. 1997. Т.62. №12. С. 1571-1578.

88. Поберезкина Н.Б. Биологическая роль супероксиддисмутазы // Укр. биохим. журн. 1989. Т. 61. № 2. С. 14-27.

89. Прайор У. Роль свободнорадикальных реакций в биологических системах // Свободные радикалы в биологии. М.: Мир, 1979. Т.1. С.13-67.

90. Рассказова JI. Антиоксиданты для кормов. Защищаем комбикорма от окисления // Молоко и корма. 20041 № 4. С. 22-25.

91. Садовая С. Витамин С и ферментный препарат в комбикормах для утят // Комбикорма. 2007. № 2. С. 77.

92. Семенов Н.Н. Цепные реакции. М.: Наука, 1986. С. 535.

93. Семенютин В.В. Антиоксидант фенозан как стимулятор энергетического обеспечения организма // Тезисы III Всесоюзной конференции «Биоантиоксидант». М., 1989. T.I. С. 201.

94. Строев Е.А. Биологическая химия. М.: Высшая школа, 1986. С.479.

95. Сухаренко О.И. Автореф. диссертации канд. с.-х. наук: 06.02.02. Нац. аграр. ун-т. Киев, 2003. С. 18.

96. Таранов М.Т. Биохимия и продуктивность животных. М.: Колос, 1976. С. 240.

97. Тарасов Н.И. Состояние перекисного оксиления липидов, антиоксидантной защиты крови у больных инфарктом миокарда, отягощенным недостаточностью кровообращения // Тер. архив. 2002. № 12. С. 12-15.

98. Темираев Р. Пробиотики и антиоксиданты в рационах для птицы // Птицеводство. 2007. № 10. С. 24-25.

99. Уайт А., Хендлер Ф., Смит Э., Хилл Р., Леман И. Основы биохимии. М.: Мир, 1981. Т. 2. С. 617.

100. Уголев A.M. Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций. Л.: Наука, 1985. С. 550.

101. Фисинин В.И., Тардатьян Г.А. Промышленное птицеводство. М.: Колос, 1978. С. 399.

102. Фисинин В.И. Методика проведения научных и производственных исследований по кормлению сельскохозяйственной птицы // ВНИТИП. 2000. С. 33.

103. Фридович И. Радикалы кислорода, пероксид водорода и токсичность кислорода // Свободные радикалы в биологии. М., 1979. Т.1. С. 272-314.

104. Фридович И. Радикалы кислорода, пероксид водорода и токсичность // Профилактика старения. 2000. Вып. 3. С. 24-28.

105. Хорст А. Молекулярные основы патогенеза болезней. М.: Медицина, 1982. С. 456.

106. Царенко П.П. Повышение качества продукции птицеводства: пищевые и инкубационные яйца. Л.: Агропромиздат, 1988. С. 240.

107. Чевари С., Андял Т., Штренгер Я. Определение антиоксидантных параметров крови и их диагностическое значение в пожилом возрасте // Лаб. дело. 1991. № 10. С. 9-13.

108. Черняк М.И. Использование жиров различного качества в рационах цыплят-бройлеров // Промышленное производство яиц и мяса птицы. Сб. научн.тр. ВНИТИП. 1993. С. 51-62.

109. Aebi Н.Е. Catalase // In Methods of Enzymatic Analysis. New York, 1984. Vol. 3.P. 273-286.

110. Anderson R. Ascorbic acid and immune Functions: Mechanism of immunostimulation // «Vitamin С Ascorbic Acid» ed. J.N. Counsell and D. H. Hornig. Applied Science. London, 1981. P. 249.

111. Anderson R. Ascorbate and cysteine-mediated selective neutralisation of extracellular oxidants during N-formyl peptide activation of human phagocytes // Anderson R., Lukey P., Theron A., Dippenaar U. Agents and Actions. 1987. Vol. 20. № 1/2. P. 77.

112. Bast A., Haenen G.R.M.M., Doelman C.J.A. Oxidants and antioxidants: State of the art // Amer .J.Med. 1991. Vol. 91. Suppl. 3 C. P. 2S-13S.

113. Beisel W.R. Single nutrients and immunity // Amer.J.Clin.Nutr. 1982. №35. P. 417

114. B. de Quiroga G., Gutierrez H. Superoxide dismutase during the development of two amphibian species and its role in hyperoxia toleranse // Mol. Physiol. 1984. № 2. P. 221-232.

115. B. de Quiroga G. A comparative study of superoxide dismutase in amphibian tissures // Comp: Biochem. Physiol. 1984. № 4. P. 589-593.

116. Burton G.W. Beta-carotene: an unusual type of antioxidant // Science. 1984. №224. P. 569-573.

117. Choi J.H. Unsuitability of ТВ A test as a lipid peroxidation marker due to prostaglandin synthesis in the aging kidney // Age. 1990. Vol. 13. № 1. P. 6164.

118. Danh H.C., Benedetti M.S., Destert P. Differential changes in superoxide dismutase activity in brain and liver of old rats and mice // J. Neurochem. 1983. Vol. 40. P. 1003-1007.

119. Das S.K. Hyperoxia elevates Cu, Zn — superoxide dismytase of endothelial cells as detected by sensitive ELISA // Enzyme. 1992. Vol. 46. № 2. P. 188-195.

120. Del Rio L.A. A new cellular function for peroxisomes related to oxygen free radicals? // Del Rio L.A., Sandalino L.M., Palmaa J.M. Experientia (Basel). 1990. Vol.46. P. 989-992.

121. Dhaunsi G.S. Demonstration of Cu-Zn superoxide dismutase in rat liver peroxisomes. Biochemical and immunological evidence // J. Biol. Chem. 1992. Vol. 267. P. 6870-6873.

122. Dhaunsi G.S. Peroxisomfl participation in the cellular response to the oxidative stress of endotoxin // Mol. Cell. Biochem. 1993. Vol. 126. № 1. P. 68706873.

123. Elchuri S. Cu Zn SOD deficiency leads to persistent and widespread oxidative damage and hepatocarcinogenesis later in life // Elchuri S., Oberley T. D., Qi W., Eisenstein R.S. et. al. Oncogene. 2005. P. 367-380.

124. Esterbauer PL The role of lipid peroxidation and antioxidants in oxidative modification of LDL // Free Radic. Biol. Med. 1992. № 13. P. 341-390.

125. Fahimi H.D. Cytochemical localization of peroxidatic activity of catalase in rat hepatic microbodies (peroxisomes) // J.Cell.Biol. 1969. Vol. 43. № 2. P. 275-288.

126. Fahimi H.D. Diffuction artifacts in cytochemistry of catalase // Histochem. Cytochem. 1973. Vol. 21. № 11. p. 999-1009.

127. Fahimi H.D. Current cytochemical techniques for the investigation of peroxisomes. A review // J. Histrochem. Cytochem. 1999. Vol. 47. № 10. P. 1219-1232.

128. Farmer K.L. Relationship betveen superoxide anion radical generation and aging in the housefly, Musca domestica // Free Rad.Biol.Med. 1989. Vol. 7. № 1. P.23-29.

129. Fontecave A. The function of superoxide dismutase during the enzymatic formation of the free radical of ribonucleotide reductase // J.Biol. Chem.1987. Vol. 262. №25. P. 12332-12337.

130. Frei B. Antioxidant deferences and lipid peroxidation in human blood plasma // Frei В., Stacker R., Ames B.N. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. Vol.85. P. 9748-9752.

131. Frei B. Natural antioxidants in human health and disease. Orlando, F.L: Academic Press, 1993. P. 296.

132. Fridovich I. Superoxide dismytases // Annu. Rev. Biochem. 1975. Vol. 44. № 1. P. 147-159.

133. Fridovich I. Superoxide anion radical (O2 radical anion), superoxide dismytases, and related matters // J. Biol.Chem. 1977. V. 272. P. 18515-18517.

134. Fridovich I. Superoxide dismytases // J. Biol.Chem. 1989. Vol. 264. №-5. P. 7761-7764.

135. Green I. Nutrition abstinence // Green I., Banyan S. Rev. 1969. Vol. 39(2). P. 236-239.

136. Gryglewsky R.J. Superoxide anion is involved in the breakdown of endotelium derived vascular relaxing factor // Nature. 1986. Vol. 320. P. 454-456.

137. Halliwell B. Lipid peroxidation, oxygen radicals, cell damage, and antioxidant therapy // Halliwell В., Gutteridge J.M. Lancet. 1985. P. 1396-1398.

138. Harman D. Free radical theory of aging // Mutat. Res. 1992. Vol. 275 № 3-6. P. 257-266.

139. Jordan S. W. Biosynthesis of lipoic acid and posttranslational modification with lipoic acid in Escherichia coli // Jordan S. W., Cronan J. E. Metods Enzymol. 1997. Vol.279. P. 176-181.

140. Krinsky N.L. Membrane antioxidants // Ann. NY. Acad. Sci.1988. Vol.551. P. 17-33.

141. Liebler D.C. Antioxidant reactions of carotenoids // Ann. NY. Acad. Sci. 1993. Vol. 691. P. 20-31.

142. Lin C.F. Effects of oxidised dietary oil and antioxidant supplementation on broiler growth and meat stability // Brit. Poultry Sc. 1989. Vol. 30 (4). P. 855-864.

143. Liochev S.L. The role of superoxide in the prodyction of hydroxyl radical in vitro and in vivo // Free Radic. Biol. Med. 1994. Vol. 16. № 11. P. 2933.

144. Lynch S.M. Formation of non-cyclooxygenase-derived prostanoids (F2-isoprostanes) in plasma and low density lipoprotein exposed to oxidative stress in vitro // J.Clin.Invest. 1994. Vol. 93. P. 998-1004.

145. Machlin L. Vitamin E. Hayftboon of Vitamins Natrione Biochemical llincol Aspects // Machlin L., Ed. d. J.Machlin N.V. Marcsel Deccer. Jnl. Basel, 1984. P. 99.

146. Marklund S.L. Regylation by cytokines of extracellular dismytase and other superoxide dismutase isoenzymes in fibroblast // J. Biol. Chem. 1992. Vol. 267. № 10. P. 6696-6701.

147. Mc Cord J.M. Superoxide radical: controversies, contradictions, and paradoxes // Proc. Soc. Ex. Biol. Med. 1995. V. 209. № 2. P.l 12-117.

148. Morel F. The superoxide generating oxidase of phagocytic cells. Physiological, molecular and pathological aspects // Eur. J. Biochem. 1991. Vol. 201. №3. P. 523-546.

149. Nakamura Y. Extracellular ATR induced production of hydrogen peroxide in porcine thyroid cells // J. Endocrinol. 1989. Vol. 126. № 2. P. 283287.

150. Panush R.S. Modulation of certain immunologic responses by vitamin С III-Potentiation of in-vitro and in-vivo lymphocyte responses // Panush R., Delafuente J., Katz P., Johnson J. Int. J. Vit. Nutr. Res. 1982. Vol. 23. P. 35.

151. Pfister H.W. Antioxidant attenuate microvaskylar chages in the early phase of experimental pneumococcal meningitis in rat // Stroke. 1992. Vol. 23. № 12. P. 1798-1804.

152. Prodczacy J J. Redyction of iodonitrotetrazoliym violet by superoxide radicals // Prodczacy J.J., Wei R. Biochem. Res. Comm. 1988. Vol. 150. № 3. P: 1294-1301.

153. Pry or W.A. Free radicals and lipid peroxidation: what they are and how they got that way // Frei B. ed. Natural antioxidants in human health and disease. Orlando, FL: Academic Press, 1994. P. 1-24.

154. Radeke H.H. Functional expression of NADPH oxidase components (alpha-and beta-subunits of cytochrome b 558 and 45 kDa flavoprotein) by intrinsic human glomerular mesangial cells // J.Biol. Chem. 1991. Vol. 266. № 32. P. 21025-21029.

155. Shaw S. Etanol-induced iron mobilization: role of acetaldehyde oxidase generated superoxide // Free Rad. Biol. Med. 1990. Vol. 9. № 1. P. 11-17.

156. ShigetaY. Study of serum level of thioctic acid in patients with various diseases // Shigeta Y., Hiraizumi G., Wada M. et al. J. Vitaminol. 1961. Vol. 7. P. 47-52.

157. Sies H. Oxidative stress from basis research to clinical // Amer. J. Med. 1991. Vol. 91. Suppl. 3C. P. S31-S38

158. Sohal R.S. Oxidative Stress, Caloric Restriction, and Aging // Sohal R.S., Weindruch R. Science. 1996. Vol. 273. P. 59-63.

159. Staat D.A. Effects of tocopherol depletion on the regional differences, in adrenall microsomal lipid peroxidation and steroid metabolism // Endocrinology. 1988. Vol. 123. № 3. P. 291-299.

160. Stocker R. Endogenous antioxidant defences in human blood plasma // Stocker R., Frei B.Sies H. ed. Oxidative stress: oxidants and antioxidants. London: Academic Press, 1991. P. 213-243.

161. Sundvqist T. Bovine aortic endothelial cells release hydrogen peroxide //J. Cell. Physiol. 1991. V.148. №1. P. 152-156.

162. Tinkler J. H. Dietary carotenoids protect human cells from damage // J. Photochem Photobiol B. 1994. Vol. 26. P. 283-285.

163. Turrens J.F. Ubisemiquinone is the electron donor for superoxide formation by complex III of hear mitochondria // Arch.Biochem. Biophys. 1985. Vol.23. № 2. P. 408-414.

164. Wendel A. Enzymes acting against reactive oxygen // Enzymes -Tools and Targetss. Basel: Kaarger, 1988. P. 161-167.

165. White A.A., Karr D.B., Patt C.S. Role of lipooxigenase in the 02 -dependent activation of soluble guanylate cyclase from ratlung // Biochem. 1982. 204. P. 383-393.

166. Yim M.B. Enzyme function of copper, zinc super-oxide dismutase as a free radical generator // J. Biol. Chem. 1993. Vol. 268. № 6. P. 4099-4105.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.