Вторичные морские грибы Японского и Охотского морей тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Пивкин, Михаил Викторович

• Пивкин, Михаил Викторович
• кандидат наук
• 2010

Оглавление диссертации кандидат наук Пивкин, Михаил Викторович

оглавление

ВВЕДЕНИЕ 5 ГЛАВА 1. ИСТОРИЯ ИЗУЧЕНИЯ И ЭКОЛОГИЧЕСКИЕ ГРУППЫ МОРСКИХ 11 ГРИБОВ

1.1 Определение группы морских грибов

1.1.1. Видовое богатство морских грибов

1.1.2. Размеры морских грибов

1.1.3. Образ жизни, жизненные формы и распространение морских грибов

1.1.4. Географическое распространение морских грибов

1.1.5. Вертикальная зональность

1.2. Глубоководные грибы

1.3. Грибы морских грунтов и морской воды

1.4. Грибы песчаных пляжей и морской пены

1.5. Грибы водорослей

1.5.1. Паразиты

1.5.2. Сапротрофы

1.5.3. Подводные лишайники и лишайникоподобные ассоциации

1.6. Грибы на растениях солевых маршей

1.7. Грибы мангров

1.8. Грибы листьев высших растений

1.9. Грибы, заселяющие корневища

1.10. Грибы на древесине и других целлюлозных субстратах 85 1.10.1 Колонизация древесины в морской среде 87 1.10.2. Грибы, населяющие кору

1.11. Микобиота морских животных, субстратов животного происхождения, грибные болезни 90 1.11.1. Отношения животных и грибов

1.12. Грибы на искусственных материалах

1.13. Низкомолекулярные метаболиты вторичных морских грибов

1.14. Ферменты морских грибов 146 ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ, МЕТОДЫ И ХАРАКТЕРИСТИКА РАЙОНОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Характеристика мест микологических исследований

2.1.1. Японское море

2.1.2. Охотское море

2.2. Методы исследования

2.2.1. Методы сбора морских грибов

2.2.2. Методы выделения грибов в чистую культуру

2.2.3. Методы культивирования грибов

2.2.4. Методы определения биологической активности экстрактов грибов и индивидуальных веществ

2.2.5. Методы идентификации метаболитов морских грибов 191 ГЛАВА 3. ГРИБЫ МОРСКИХ ГРУНТОВ

3.1. Структура комплексов грибов грунтов Японского моря

3.1.1. Влияние гранулометрического состава грунтов Японского моря на видовое богатство и биоразнообразие комплексов грибов

3.1.2. Влияние антропогенной нагрузки на видовое богатство и биоразнообразие комплексов грибов грунтов Японского моря

3.1.3. Влияние глубины отбора образцов грунта на видовое богатство и биоразнообразие комплексов грибов морских грунтов

3.2. Структура комплексов грибов грунтов Охотского моря

3.2.1. Микобиота грунтов южной части о.Сахалип

3.2.2. Микобиота грунтов Сахалинского залива

3.2.3. Грибные комплексы грунтов северо-восточной части охотоморского

шельфа 264 ГЛАВА 4. СТРУКТУРА КОМПЛЕКСОВ ГРИБОВ АССОЦИИРОВАННЫХ С

МОРСКИМИ ЖИВОТНЫМИ

4.1. Структура комплексов грибов губок

4.2. Структура комплексов грибов голотурий 278 ГЛАВА 5. АДАПТАЦИЯ ВТОРИЧНЫХ МОРСКИХ ГРИБОВ В МОРСКИХ УСЛОВИЯХ

5.1. Устойчивость морских грибов к солености морской воды

5.2. Морфология вторичных морских грибов в море

5.3. Продукция вторичными морскими грибами

метаболитов адаптивного значения

5.3.1. Продукция ферментов морскими грибами

5.3.2. Продукция вторичными морскими грибами биологически активных

веществ

ВЫВОДЫ

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЯ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Вторичные морские грибы Японского и Охотского морей»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. В последние годы возрос интерес к экологическим исследованиям морских и эстуарных местообитаний. Единственные участники этих процессов оставшиеся за рамками таких исследований - это морские грибы. До недавнего времени морские грибы чаще служили объектами в таксономических и филогенетических исследованиях.

Наличие активных форм грибов в море часто оспаривалось. Поворотным моментом в представлении экологической роли грибов в морских местообитаниях послужила публикация E.S. Barghoorn и D.H. Linder "Marine Fungi, Their Taxonomy and Biology" (1944), в которой показан рост и репродукция грибов на погруженной в море древесине, что доказывает существование специфической морской микобиоты. Исследования этих и других авторов, несомненно, доказывают, что грибы вносят вклад в разложение органических субстратов в океанах, хотя степень биодеградации, вызванной грибами в море, остается не выясненной.

Впервые из морских местообитаний был описан факультативный морской гриб, Phaeosphaeria typharum (Desmazières, 1849) (как Sphaeria scirpicola var. Typharum) из Typha в пресной воде. С. Durieu de Maisonneuve и J.F.C. Montagne (1869) обнаружили первый облигатный морской гриб на корневищах морской травы Posidonia oceanica, и были поражены необычным жизненным циклом Sphaeria posidoniae (=Halotthia posidoniae), весь жизненный цикл которого проходил на дне моря. Если число описаний новых видов может быть использовано для индикации работы с отдельными группами организмов в разные периоды времени, то до периода 1930-1939 г.г. возникал только спорадический интерес к морским грибам. Описания морских видов грибов в период XIX - начало XX веков были обнародованы авторами, работающими преимущественно с широким разнообразием грибов без специального интереса к морским грибам. Исключение составляют братья P. Crouan и Н. Crouan, которые описали пять видов морских грибов в 1867 году в «Florule du Finistè» и подготовили 11 других для опубликования (остались неопубликованными) (FCohlmeyer, 1974а), а так же G.K. Sutherland (1915, 1915а, 1916, 1916а), который опубликовал серию статей исключительно по морским грибам. В последующем интенсивные исследования морских грибов приходятся на период сороковых годов XX века и связаны с выходом вышеназванной публикации E.S. Barghoorn и D.H. Linder. Значительный интерес к изучению морских грибов наблюдался в шестидесятых — восьмидесятых годах XX века. Первый всеобъемлющий труд по морским грибам опубликовали T.W. Johnson и F.K. Sparrow (1961). G.C. Hughes (1975) в очень информативном обзоре рассмотрел работы, опубликованные с

1961 года. Ключи для определения морских грибов представлены в работах J. Kohlmeyer и Е. Kohlmeyer (1979), J. Kohlmeyer и В. Volkmann-Kohlmeyer (1991). Современный обзор о морских грибах был опубликован в 2000 году и рассматривает, в основном, облигатные морские грибы (Hyde, Pointing, 2000). Единственный обзор о морских грибах на русском языке вышел в 1981 году (Артемчук, 1981). В нем были рассмотрены работы автора, а так же литературные сведения и об олигатных, и о факультативных морских грибах европейской части России (Черное, Балтийское и Белое моря). Дальневосточные моря России практически не исследованы микологами. До наших исследований были известны 55 видов грибов в Дальневосточных морях России, в том числе имелись сведения о наличии 9 видов вторичных морских грибов (Адрианов, Кусакин, 1998).

В последующем, усиление интереса к морским грибам приходится на девяностые годы прошлого века и начало XXI. Оно связано с изучением их биологически активных веществ. Однако большая часть таких исследований сделана на экологической группе факультативных морских грибов, практически не изученной морскими микологами. До наших исследований метаболиты грибов в России не изучались.

В нашей работе исследовались грибы наименее изученной группы - факультативных мицелиальных морских грибов - в Дальневосточных морях России, чего ранее микологами не делалось. Кроме того, на основе наших исследований мы объединили экологические сведения о морских грибах в целом, без разделения их на условные экологические группы, и предложили естественное экологическое определение грибов, основанное на их экологических нишах и субстратах.

Цель и задачи исследования. Целью исследований было установление структуры комплексов вторичных морских грибов Японского и Охотского морей России и их экологической роли. Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи: 1) изучить видовое богатство грибов морских грунтов и ассоциантов морских животных; 2) изучить структуру комплексов грибов грибов морских грунтов, горных пород, а так же ассоциантов морских животных; 3) изучить влияние факторов среды на структуру комплексов грибов вышеназванных экологических групп; 4) изучить морфологические адаптаций грибов в морской среде; 5) изучить устойчивость грибов к солености морской воды; 6) проанализировать ферментные системы морских грибов на примере О-гликозилгидролаз; 7) изучить биологически активные вторичные метаболиты морских грибов и другие низкомолекулярные вещества адаптивного значения.

Научная новизна работы. Впервые проведены исследования по инвентаризации вторичных морских грибов Японского и Охотского моря, в полной мере выявлен их таксономический состав и его зависимость от среды и мест обитания (субстраты,

флористические районы), причем особое внимание было уделено как эталонным природным резерватам, так и зонам с нарушенными ценозами. В настоящее время выявлено 189 видов вторичных морских грибов Японского и Охотского морей. Впервые проведены планомерные исследования грибов морских грунтов этих акваторий, проведен анализ комплексов грибов морских грунтов, выявлены факторы, влияющие на биоразнообразие грибных ассамблей морских грунтов. Впервые обнаружены и исследованы грибы голотурий. Впервые исследованы грибы губок Охотского и Японского морей. Разработан метод выращивания грибов в естественных условиях. Описаны новые виды вторичных морских грибов: Aphanoascus aciculaíns Pivkin et Khudyakova и Ulocladium litoreum Pivkin et Zvereva (в настоящее время переведен в базионимы Alternaría litorea (Pivkin et Zvereva) E.G. Simmons). Изучено влияние морской среды на комплексы О-гликозилгидролаз морских грибов. Впервые исследовано влияние экологических факторов на продукцию вторичных метаболитов морских грибов. Протестировано более 2000 штаммов грибов на способность продуцировать биологически активные вещества. Выявлены продуценты 32 метаболитов новой химической структуры.

Теоретическое значение работы. Выводы, полученные в результате работы, позволяют расширить наши знания об экологической роли морских грибов. Работа вносит вклад в изучение проблем биоразнообразия, экологии, ареалогии и природной зональности. Результаты исследований могут быть использованы для аргументированного обсуждения общих вопросов экологии и ареалогии эукариотных микроорганизмов.

С учетом пространственно-сукцессионного и широгно-зонального факторов выявлен ряд закономерностей распределения вторичных морских грибов на отдельных субстратах в разнообразных биогеоценозах, что позволяет выяснить общие закономерности распространения вторичных морских грибов в Японском и Охотском морях.

Практическое значение работы. В результате исследований обобщены сведения о таксономическом составе вторичных морских грибов Охотского и Японского морей. Подготовлен аннотированный список микобиоты, включающий 189 видов и 8 внутривидовых таксонов из 69 родов, относящихся к 26 семействам из 5 порядков, 4 подклассов и 4 классов подцарства сумчатых грибов (Ascomycota). Исследованный материал использован для создания Базы данных по микобиоте Дальнего Востока. Выявленная достоверная связь показателей массовости некоторых видов микромицстов, численности грибов и стабильности комплексов с концентрацией органического углерода, гранулометрическим составом морских грунтов и соленостью, а так же приуроченность некоторых видов грибов к повышенному содержанию нефтеуглеводородов и биогенных элементов в морских грунтах позволяет использовать полученные результаты как основу для

биомониторинга морских экосистем. Выявленные в ходе исследований продуценты

ферментов и низкомолекулярных биологически активных веществ могут служить основой

для биотехнологического получения этих веществ.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Видовое богатство вторичных морских грибов Японского и Охотского морей представлено 189 видами мицелиальных грибов из 68 родов, в основном видами морфологической группы анаморфных грибов (117 видов из 36 родов) и Ascomycota (14 видов из 9 родов), среди которых преобладают виды родов Penicillium, Aspergillus, Acremonium, Cladosporium, Geomyces.

2. В условиях Японского и Охотского морей изменение биоразнообразия, численности грибов и выравненное™ обилий видов обусловлено гранулометрическим составом морских грунтов, концентрацией в них органических веществ, а так же антропогенной нагрузкой (содержание биогенных элементов и углеводородов нефти).

3. Специфичность распространения грибов в условиях шельфа Японского и Охотского морей позволяет использовать индикаторные свойства отдельных видов грибов: массовое развитие Geomyces pannorum (Link) Sigler et J.W. Carmich., Wardomyces inflatus (Marchal) Hennebert и стерильного мицелия связано с концентрацией органического углерода в морских грунтах, Acremonium charticola (J. Lindau) W.Gams и A.fuci Summcrb., Zuccaro et W. Gams - с высоким содержанием кремния, видов рода Aspergillus - с высоким содержанием углеводородов нефти, Acremonium rutilum W. Gams, Phialophora sp., Emericellopsis glabra (J.F.H. Beyma) Backus et Orpurt, E. terrícola J.F.H. Beyma, E. mínima Stolk - с низкими концентрациями соли в морской воде, а замещение обычных видов видами рода Scopulariopsis и несвойственными морской среде обитания видами Beauveria, массовое развитие стерильного мицелия, показывает повышенное антропогенное воздействие на морские сообщества.

4. На биоразнообразие и видовое богатство грибов морских животных в первую очередь оказывает видовая принадлежность животного. Токсичность животного увеличивает видовое богатство и биоразнообразие грибов, но снижает их относительную численность. Детритофаги существенно модифицируют видовое богатство грибов морских грунтов.

5. Ферментные профили вторичных морских грибов существенно отличаются от таковых у наземных представителей этих видов, что обуславливает изменение их экологических ниш в морских условиях. Продукция ферментов с новыми свойствами позволяет использовать морские грибы в биотехнологии.

6. Комплексы грибов морских грунтов содержат до 50% штаммов, образующих биологически активные соединения. Чаще всего продуценты биологически активных

соединений встречаются в иловатых и песчаных грунтах, а так же среди ассощиантов губок и колониальных асцидий по сравнению с изученными комплексами грибов на иных субстратах. Антропогенное воздействие увеличивает частоту продуцентов биологически активных вторичных метаболитов в морских грунтах. На начальных этапах колонизации субстрата биологическая активность адаптивных метаболитов морских грибов обусловлена экстрацеллюлярными жирными кислотами.

Личный вклад автора. Автором осуществлялась постановка проблемы и методическая разработка путей ее решения, планирование и проведение исследований, обработка, систематизация и интерпретация полученных данных, апробация и публикация результатов. Доля личного участия в публикациях, выполненных в соавторстве, пропорциональна числу соавторов.

Апробация работы. Основные положения и материалы работы представлены и обсуждены на региональных, всероссийских и международных конференциях, совещаниях и съездах: II (X) съезде Русского ботанического общества "Проблемы ботаники на рубеже XX-XXI веков" (С.-Петербург, 1998); 8-ом Международном симпозиуме по морской и пресноводной микологии (Ни^Ьаёа, Египет, 2001); Международной конференции "Микология и криптогамная ботаника в России: традиции и современность" (С.-Петербург, 2000); Международной конференции по морской биотехнологии (Аккепуа1е, Австралия, 2000); 1 съезде Микологов России «Современная микология в России (Москва, 2002); XI съезде Русского ботанического общества «Ботанические исследования в азиатской России (Новосибирск-Барнаул, 2003); Международной научной конференции «Биология, систематика и экология грибов в природных экосистемах и агрофитоценозах (Минск, Белоруссия, 2004); Международной конференции, посвященной 100-летию начала работы профессора А. С. Бондарцева в Ботаническом институте им. В. Л. Комарова РАН «Грибы в природных и антропогенных экосистемах (С.-Петербург, 2005); Международной научной конференции «Экология и биология почв: проблемы диагностики и индикации (Ростов на Дону 2006); V Всероссийском Конгрессе по Медицинской микологии (Москва, 2007); XV Конгрессе европейских микологов (С.-Петербург, 2007); 21 Тихоокеанском научном конгрессе (Окинава, Япония, 2007); II съезде микологов России (Москва, 2008); Междисциплинарном микологическом форуме (Москва, 2009); V Международной конференции «Изучение грибов в биоценозах (Пермь, 2009) и других.

Благодарности. Работа проводилась в лаборатории микробиологии Тихоокеанского института биоорганической химии ДВО РАН. Автор выражает глубокую благодарность за неоценимую помощь и всестороннюю поддержку инициатору этих исследований В.В. Михайлову, искренне признателен коллегам по лаборатории Г.М. Фроловой, Ю.В.

Худяковой, H.H. Слинкиной. Безусловно, эта работа не могла быть выполнена без

плодотворного сотрудничества с коллегами-химиками [Г. А. Кузнецовой|, Ш.Ш. Афиятулловым, О.Ф. Сметаниной, В.В. Совой, Ю.В. Бурцевой, В.А. Рассказовым, Л.А. Балабановой. Автор благодарен своим коллегам из Биолого-почвенного института ДВО РАН J1.H. Васильевой и З.М. Азбукиной. Выражаю особенную признательность В.А. Мельнику, И.А. Дудке, И.И. Сидоровой, С.Н. Лекомцевой, Ю.Т. Дьякову, O.E. Марфениной, Л.В. Зверевой, Л. Н. Егоровой и О.В. Полохину за ценные замечания и внимание к моей работе. Искреннюю благодарность выражаю моему учителю, Л.А. Ищенко.

ГЛАВА 1. ИСТОРИЯ ИЗУЧЕНИЯ И ЭКОЛОГИЧЕСКИЕ ГРУППЫ МОРСКИХ ГРИБОВ

1.1 Определение группы морских грибов

Морские и эстуарные местообитания - это океаны и ассоциированные с океанами мелкие водоемы, которые содержат морскую воду, включая устья рек, приливные болота, лагуны, приливные водоемы, марши и другие литоральные местообитания, а так же соленые озера. Грибы из наземных соляных озер мало изучены, но микобиота из этих мест обитания идентична морской (Anastasiou, 1961, 1963; Davidson, 1974; Buchalo et ah, 2000; Steiman et ah, 2004).

Определение «морские грибы за последние сто лет претерпело существенную эволюцию от полного отрицания существования этой группы до современного понимания того, что морские грибы - это таксономически разнородная, эколого-физиологическая группа грибов. Вплоть до начала 70-х годов XX столетия высказывали сомнения в том, что грибы играют хоть какую-то существенную роль в морских биоценозах (Dowman, 1970; Fenchel, 1972). Это мнение представлялось вполне оправданным, поскольку в морской среде существует целый ряд неблагоприятных для грибов факторов: низкая активность воды (aw), обусловленная относительно высоким содержанием солей, преимущественно одновалентных металлов; щелочные значения pH среды; относительная гипоксия; на больших глубинах наблюдается высокое давление. В то же время, некоторые исследователи придерживались другого, противоположного мнения. Они полагали, что все грибы моря относятся к филогенетически отдельной группе Thalassiomycetes (Meyers, Moore, 1959, I960). В этот период описывали многие новые виды из морских мест обитания, в последующем отнесенные в синонимы к известным наземным видам.

Раньше определение морских грибов часто основывали на их способности расти на средах с морской водой (Johnson, Sparrow, 1961, Tubaki, 1969). В последующем такой тест был признан недостаточным. В ходе долговременной дискуссии было признано, что морские грибы не могут быть определены строго по физиологическому тесту (Kohlmeyer, 1974; G.C. Hughes, 1975). Тем не менее, этот тест до сих пор используют в исследованиях морских грибов (Pawar, Thirumalachar, 1966; Masuma, et ah, 2001). Некоторые авторы были убеждены, что попытки определить морские грибы были преждевременны (Schaumann, 1975), но, по нашему мнению, эти попытки необходимы для понимания роли грибов в специфических местах обитания.

Эта дискуссия закончилась тем, что было принято введённое J. Kohlmeyer определение морских грибов, которые он разделил на две группы, а именно: облигатные морские грибы - те, которые растут и размножаются исключительно в морских и эстуарных

местообитаниях; факультативные морские грибы - те, что обитают в пресной воде или на суше, но могут расти (и возможно размножаться) в морской среде (Kohlmeyer, 1974). Сложно судить о продуктивности этого определения морских грибов. С одной стороны, оно стимулировало исследования грибов морских мест обитания, а с другой стороны, на 30 лет переключило внимание исследователей на группу облигатных морских грибов, и практически прекратились исследования факультативных морских грибов. Это произошло по двум причинам: исследователи старались инвентаризировать эту группу грибов и описать новые специфически морские грибы с целлюлозных и других субстратов, кроме того, методы исследования облигатных морских грибов существенно отличаются от методов работы с факультативными морскими грибами.

По мнению J. Kohlmeyer и Е. Kohlmeyer приемлемым критерием для определения морских грибов должна быть их способность прорастать и формировать мицелий в естественных морских условиях. Некоторые грибы нуждаются в постоянном погружении, в то время как другие, например, виды обнаруживаемые в прибрежных песках, нуждаются в большем снабжении кислородом для прорастания (Kohlmeyer, Kohlmeyer, 1979).

В 2001 году E.G.B. Jones (2001) акцентировал внимание исследователей на группе факультативных морских грибов. Кроме того, был разработан метод посева грибов для наблюдения их роста в естественных условиях моря (Пивкин и др., 2002) и было показано, что многие наземные виды грибов, выделенные методом посева из моря (так называемые «marine derived fungi - «вторичные морские грибы , называемые J. Kohlmeyer и Е. Kohlmeyer «факультативными морскими грибами ), растут в море. Некоторые из них меняют морфологию бесполых пропагативных структур, сообразно условиям среды. Возможно, большая часть этих грибов являются морскими экоформами наземных видов.

Исследования последних лет (Jones, 2001; Pivkin et al., 2001; Пивкин и др., 2002) заставили пересмотреть экологический статус вторичных морских грибов и существенно расширить их состав. По нашему мнению, применение терминов «облигатный и «факультативный морской гриб в настоящее время вносит некоторую путаницу в понимание этих двух групп. Например, некоторые исследователи описывают новые виды грибов (Kohlmeyer et al., 1997), не встречавшиеся ранее. Тем не менее, эти виды при описании помещены в группу «факультативных морских грибов . Грибы родов, традиционно относящиеся к факультативным морским грибам, также содержат виды, которые не встречаются в наземных условиях, например Pénicillium dimorphosporum H.J. Swart. (Swart, 1970), P. marinum Frisvad et Samson (Frisvad, Samson, 2004), P. dravuni J.E. Janso (Janso, et al. 2005), Acremonium fitei Summerbell, Zuccaro et W. Gams (Zuccaro et al., 2004) и другие. Тем не менее, эти виды относят к факультативным морским грибам. Из всех

Морские грибы

I-

Облигатные морские грибы

(obligate marine fungi)

Вторичные (факультативные) морские грибы

(marine-derived (facultative marine) fungi)

вторичноморские грибы

(marine-derived fungi)

вторичноморские прибрежные грибы

(maritime-derived fungi)

Рис. 1. Схема экологической классификации морских грибов (по (Kohlmeyer, Kohlmeyer,

1979) в модификации (Pang, Mitchell, 2005)

таких примеров сделано только одно исключение - Arachniotus littoralis (G.F. Orr) Arx. Так же как и вышеназванные, этот вид относится к роду, большинство представителей которого обычно встречаются в наземных условиях, но этот вид признан облигатно морским (Kohlmeyer, Volkmann-Kohlmeyer, 1991). В последнее десятилетие, с помощью молекулярногенетических методов было показано, что многие «облигатно морские виды филогенетически связаны с наземными грибами (Spatafora et al., 1998, Kohimeyer et al., 2000, Campbell et al., 2005).

Для преодоления вышеназванных противоречий в экологическую классификацию морских грибов были внесены некоторые изменения. Группа вторичных морских грибов (факультативные морские грибы) была поделена на две подгруппы: вторичноморские грибы (marine derived fungi) - грибы, виды которых относятся к родам, встречающимся на суше, но обнаруженные только в морских условиях и вторичноморские прибрежные грибы (maritime derived fungi), встечающиеся как в море, так и на суше (Pang, Mitchell, 2005) (Рис.1).

Следует заметить, что в традициях российских исследований морской микобиоты никогда не принимали радикального разделения грибов на искусственные экологические группы, отдавая предпочтение в исследованиях одной из них (Артемчук, 1981). Экологическая классификация морских грибов в этих исследованиях, совершенно

правомочно, строится на основе занимаемых ими экологических ниш, поскольку грибы обеих групп, и облигатные, и вторичные морские, часто встречаются на одних и тех же субстратах и, соответственно, как облигатные, так и вторичноморские прибрежные грибы могут занимать одни и тс же экологические ниши. Этот подход к экологической классификации морских грибов представляется нам более логичным.

В этой работе мы используем широкое экологическое определение и включаем в з кол о го-фит о л огич ее кую группу морских грибов все организмы этого царства, растущие и размножающиеся тем или иным способом в морских и близких к ним местах обитания (аскоспорами, базидиоспорами; бесполыми конидиями, или какими либо другими вегетативными пропагативными структурами), принимающие участие в процессах биосинтеза, деструкции и модификации веществ в морских биоценозах (Пивкин и др., 2006).

1.1.1. Видовое богатство морских грибов

Грибы - это гигантская группа организмов. По прогнозам, общее число грибов на Земле составляет 1,5 миллиона видов (Hawksworth, 1997; Hawksworth, Rossman 2001, Mueller . Schmit, 2007). Менее чем 500 видов мицелиальных грибов было описано из океанов и эстуариев (Shearer et al., 2007), которые покрывают значительно большую площадь, а именно три четверти земного шара. Океан, по сравнению с сушей, обеспечивает стабильную окружающую среду с минимальными изменениями температуры и солености. Морские субстраты, такие как водоросли, маршевые растения и растительные остатки концентрируются преимущественно вдоль побережья, где они обеспечивают питание грибов. Открытый океан — «грибная пустыня , где могут быть найдены только дрожжи на планктонных организмах или дрожжи и редкие мицелиальные грибы на пелагиальных животных и в богатых органическими веществами морских грунтов. В отличие от наземных мест обитания, стабильные условия среды океанов и сравнительно небольшое число хозяев и субстратов не оказывало сильного селективного давления в ходе эволюции для стимуляции образования большого числа различных видов грибов. Предполагается, что морских грибов должно быть около 1% от наземных грибов (Kohlmeyer, Kohlmeyer, 1979).

Анализ количества описаний морских грибов (Kohlmeyer, Kohlmeyer, 1979) показывает, что в период 1970 — 1980 г.г. существенно уменьшилось число описаний новых видов. Это говорит о том, что виды, которые могли быть обнаружены стандартными методами уже описаны, и, что существенное добавление новых видов облигатных морских грибов в будущем маловероятно. По мнению Hyde (2001), новые виды можно будет встретить на необычных субстратах и в малоизученных районах. Новые виды морских

грибов можно также будет обнаружить в некоторых менее изученных местах обитания, например, в солевых маршах умеренной зоны, в мангровых лесах, на больших глубинах и среди эндофитов растений, обитающих в море. Оптимизм внушают результаты исследований Newell с соавторами (Newell et al., 2000; Newell, Zakel, 2000), которые оценивали биомассу грибов разлагающих спартину (Spartina alternißora) в солевых маршах косвенным методом, по содержанию специфически грибного стерина — эргостерина, и показали, что биомасса грибов в ней должна быть в десять раз больше, чем это показывают оценки биомассы грибов прямыми методами. Следует заметить, что биомассу обычно оценивают по непосредственному наблюдению грибов, которые учитывают только облигатные морские грибы и небольшое число факультативных грибов. По нашему мнению, разница в оценках биомассы обусловлена вторичными морскими грибами. Поэтому, новые описания грибов следует ожидать именно в этой группе и среди, возможно, некультурабельных грибов. Выявление новых видов грибов среди последних можно будет обеспечить при широком использовании молекулярно-генетических методов, и после разработки новых методов культивирования морских грибов.

1.1.2. Размеры морских грибов

Большая часть грибов, найденных в морских местообитаниях - это микроскопические грибы. Самые крупные плодовые тела обнаружены у Amylocarpus encephaloides Curr., не превышают 3 мм, а базидиомицеты Digitatispora marina Doguet и Nia vibrissa R.T. Moore et Meyers имеют плодовые тела 4 мм в длину и 3 мм в диаметре, соответственно. Очевидно, морская среда не позволяет развиваться большим, мясистым плодовым телам, потому что абразия волн и песка препятствует формированию таких структур. Макромицеты, растущие в листовой подстилке, нуждаются в большом мицелии, поставляющем питание. Подобно им, мягкие плодовые тела крупных морских видов (A. encephaloides, Eiona hinicata Kohlin., D. marina, N. vibrissa и Halocyphina villosa Kohlm. et E. Kohlm.) развиваются преимущественно в укрытых местообитаниях, на твердо закреплённой древесине на уровне или выше линии приливов или под защитой, в трещинах древесины или под корой. Другая среда обитания, где могут развиваться крупные плодовые тела - это глубоководные зоны, поскольку там не наблюдается быстрых течений. Аскомицет Oceanites scuticella Kohlm., встречающийся на глубине 4000 м образует мягкие плодовые тела до 2 мм высотой.

Заключение диссертации по теме «Другие cпециальности», Пивкин, Михаил Викторович

ВЫВОДЫ

1. Видовое богатство грибов Японского и Охотского морей моря представлено 189 видами, 68-ти родов. Из них 59 видов грибов выделены впервые из морских источников. Наиболее часты в морских местообитаниях представители родов Pénicillium, Aspergillus, Acremonium, Cladosporium, Geomyces.

2. На биоразнообразие грибов морских грунтов большее влияние оказывает гранулометрический состав грунта, концентрация органического углерода и антропогенная нагрузка по сравнению с другими факторами среды. Глубина обитания не оказывает влияние на биоразнообразие грибов грунтов в пределах сублиторальной зоны. С увеличением антропогенной нагрузки существенно изменяется их качественный состав.

3. На биоразнообразие и видовое богатство грибов морских животных в первую очередь оказывает видовая принадлежность животного. Токсичность животного увеличивает видовое богатство и биоразнообразие грибов, но снижает их численность. Детритофаги существенно изменяют видовое богатство грибов морских грунтов.

4. Конидиобразование вторичных морских грибов существенно элиминируется и замещается образованием вегетативных пропагул.

5. Способность вторичных морских грибов расти и образовывать репродуктивные структуры при низкой активности воды - это не видовой, а штаммовый признак, что позволяет считать вторичные морские грибы отличными от наземных экоформами.

6. Ферментные профили вторичных морских грибов существенно отличаются от таковых у наземных представителей этих видов, что обуславливает изменение их экологических ниш в морских условиях.

7. Вторичные морские грибы продуцируют значительное количество стимуляторов ферментов, поэтому могут принимать участие в пищевых цепях морских макроорганизмов.

8. Комплексы вторичных морских грибов содержат до 50% штаммов, образующих биологически активные соединения. Антропогенное воздействие увеличивает частоту продуцентов биологически активных вторичных метаболитов. На начальных этапах колонизации субстрата биологическая активность адаптивных метаболитов обусловлена экстрацеллюлярными жирными кислотами.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Пивкин, Михаил Викторович, 2010 год

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

АртемчукНЛ. Микофлора морей СССР. М. Наука. 1981. 190 с.

Афиятуллов Ш. LLL, Калиновский А. И., Пивкин М. В, Дмитренок П. С., Кузнецова Т. А. 2005. Алкалоиды из морского изолята гриба Aspergillus fumigatus II Химия природ, соед. № 2. Р. 188-189.

Афиятуллов Ш. LLL, Калиновский А. И., Пивкин М. В, Дмитренок П. С., Кузнецова Т. А. 2004. Фумитреморгины из морского изолята гриба Aspergillus fumigatus II Химия природ, соед. № 6. Р. 506-507.

Балабанова Л.А., Пивкин М.В., Рассказов В.А. Распространение и свойства нуклеаз морских грибов // Региональная научная конференция «Биоактивные вещества из морских макро- и микроорганизмов и наземных растений Дальнего Востока . сб. тез. докл.-Владивосток. 2001. С. 16-17.

Богданов К.Т., Горбачев В.В., Мороз В.В. Атлас приливов Берингова, Охотского и Японского морей. Изд. ТОЙ ДВО РАН, 1991. 29 с.

Богданов К.Т., Мороз В.В.. Структура, динамика и гидролого-акустические характеристики вод проливов Курильской гряды. Владивосток: Дальнаука, 2000. 151 с.

Бурцева Ю.В., Веригина Н.С., Сова В.В., Пивкин М.В., Звягинцева Т.Н О-Гликозилгидролазы морских мицелиальных грибов. Р-1,3-Глкжаназы морского гриба Trichoderma aureviride И Прикп. биохимия и микробиол. 2003. Т. 39. № 5. С. 550-556.

Бурцева Ю.В., Сова В.В., Пивкин М.В., Звягинцева Т.Н. Ферменты углеводного обмена мицелиальных грибов, обитающих в морской среде. Р-1,3-Глюканаза морского гриба Chaetomium indicum II Биохимия. 2000. Т. 65. № 10. С. 1175-1183.

Голубкова Н.С. К вопросу о происхождении и путях эволюции лишайникового симбиоза // Новости систематики низших растений. С.-Пб. Наука. 1993. Т. 29. С. 84 - 104.

Добровольский А.Д., Залогин Б.С. Моря СССР. М.: Изд-во МГУ, 1982. 192 с.

Дудка И.А. Водные несовершенные грибы СССР. Киев. Наук. Думка. 1985. 188 с.

Егорова Л. Н. Почвенные грибы Дальнего Востока. Гифомицеты. Л.: Наука, 1986. 191 с.

Журавлева Н.В., Лукьянов П.А., Пивкин М.В. М-ацетил-ß- D- гексозаминидаза секретируемая морским грибом Phoma glomerata II Прикл. биохимия и микробиол. 2004. Т. 40. №5. С. 448-453.

Зверева Л.В. Микобиота культивируемой бурой водоросли Laminaria japónica. И Биология моря. 1998. Т. 24. № 1. С. 21-25.

Зверева Л.В. Экологическое разнообразие морских грибов залива Петра Великого Японского моря. // Биология моря. 1999. Т. 25. № 1. С. 21-25.

Ивлев A.M., Нестерова О.В. Аквапочва - форма почвообразования. // Материалы IV съезда Докучаевского общества почвоведов (кн. 2). Почвы - национальное достояние России. 9-13 августа 2004г. Новосибирск: Наука-центр, 2004. С. 166-168.

Ивлев A.M., Нестерова О.В. К вопросу об изучении аквапочв. // Вестник ДВО РАН. № 4. 2004а. С. 47-52.

Каратыгин И.В. Коэволюция грибов и растений. С.-Пб. Гидрометеоиздат. 1993; 118 с.

Кирцидели И.Ю., Томилин Б.А. Почвенные микромицеты архипелага Северная Земля//Микология и фитопатология. 1997. Т. 31, № 6. С. 1-6.

Крылова Н.В., Рындина Л.В. Высшие морские грибы литорали южного Приморья. // Микол. и фитопатол. 1983. Т. 17. № 4. С. 285-288.

Литвинов М.А., Дудка И.А. Методы исследования микроскопических грибов пресных и соленых (морских) водоемов. Наука. Ленинград. 1975. 151 с.

Лоция Охотского моря. Выпуск I. Южная часть моря. Изд. УНГС ВМФ, 1959. 264 с.

Мензорова Н.И., Сибирцев Ю.Т., Кузнецова Т.А. 2005. Метаболиты морского гриба Aspergillus varians (Wehner) КММ 4630 //Хим. Природ. Соед. (в печати).

Михайлов В.В., Кузнецова Т.А., Еляков Г.Б. Морские микроорганизмы и их вторичные

биологически активные метаболиты. Владивосток: Дальнаука, 1999. 132 с. Михайлов В.В., Терентьев JI.JL, Терентьева Н.А. Морские микроорганизмы и их ферменты.

Владивосток: Дальнаука, 2004. 227 с. Моравская Н.О., Михайлов В.В. Сапротрофные грибы из бурых водорослей залива Петра

Великого Японского моря. // Биология моря. 1990. №1. С. 72-74. Номенклатура морских льдов. Условные обозначения для ледовых карт. J1.

Гидрометеоиздат, 1974. 76 с. Основные черты геологии и гидрологии Японского моря // Под ред. Степанова В.Н. М.: Изд.

АН СССР, 1961.218 с. Океанографическая энциклопедия. JL: Гидрометеоиздат, 1974. 631 с.

Пивкин М.В., Зверева JI.B. Грибы родов Alternaría и Ulocladium в акватории залива Петра Великого (Японское море) // Микология и фитопатология. 2000. Т. 34. Вып. 6. С. 3844.

Пивкин М.В., Худякова Ю.В., Бурцева Ю.В. Журавлёва Н.В., Фролова Г.М., Веригина Н.С. Экология вторичных морских грибов. // Ботанические исследования в азиатской России. Материалы XI съезда Русского ботанического общества, 18-22 августа 2003г., Новосибирск-Барнаул. Т. 1. Барнаул. 2003. С. 53-54. Пивкин М.В., Худякова Ю.В., Полохин О.В. Влияние антропогенной нагрузки на биоразнообразие грибов аквапочв южной части Приморского края. // Микробиологические особенности биогеохимии, генезиса, плодородия, мониторинга и санации почв Дальнего востока России. Труды Дальневосточного отделения Докучаевского общества почвоведов РАН. Т. 3. Владивосток. 2005. С. 26-32. Пивкин М.В., Алешко С.А., Красохин В.Б., Худякова Ю.В. Комплексы грибов губок

южного побережья острова Сахалин. // Биология моря. 2006 (в печати). Полякова A.M. Календарь типов атмосферной циркуляции с учетом нестационарности

процессов над северной частью Тихого океана и их краткая характеристика. Владивосток: Изд. ДВГУ. 1999. 116 с. Проект "МОРЯ". Гидрометеорология и гидрохимия морей. Том IX. ОХОТСКОЕ МОРЕ. Выпуск 1. Гидрометеорологические условия. // Под ред. Терзиева Ф.С. и др. Санкт-Петербург: Гидрометеоиздат, 1998. 343 с. Сметанина О.Ф., Кузнецова Т.А., Герасименко А.В., Калиновский А.И., Пивкин М.В., Дмитренок П.С., Еляков Г.Б. Метаболиты гриба Humicola fuscoatra //Изв. АН, серия химическая, 2004. № 11. Р. 2534-2537. Сметанина О.Ф., Калиновский А.И., Худякова Ю.В., Моисеенко О.П., Пивкин • М.В., Мензорова Н.И., Сибирцев Ю.Т, Кузнецова Т.А. Метаболиты морского гриба Aspergillus varians (Wehner) КММ 4630 // Хим. Природ. Соед. 2005. № 2. С. 193-194. Термины и понятия. Справочные таблицы. Изд. ГУНИО МО СССР, 1980. 156 с. Фролова Г.М., Сильченко А.С., Пивкин М.В., Михайлов В.В. Амилазы гриба Aspergillus Jlavipes, ассоциированного с Fucus evanescens II Прикл. биохимия и микробиология 2002, Т. 38, №2, С. 155-160. Худякова Ю.В., Пивкин М.В., Кузнецова Т.А., Светашев В.И. Грибы грунтов Японского моря (Российское побережье) и их биологически активные метаболиты // Микробиология. 2000. Т. 69. № 5. С. 722-726. Шляхов С.А., Костенков Н.М. Почвы Тихоокеанского побережья России, их

классификация, оценка и использование. Владивосток. Дальнаука. 2000. 183 с. Шляхов С.А., Костенков Н.М. Талассосоли побережья залива Петра Великого. Владивосток. 2000. 83 с.

Юрасов Г.И., Яричин В.Г. Течения Японского моря. Владивосток: Изд. ДВО АН СССР, 1991. 174 с.

Якунин Л.П. Атлас границ распространения и крупных форм льда Дальневосточных морй

России. Владивосток. ТОЙ ДВО РАН. 1995. 57 с.

Abdel-Hafez S.I., Maubasher A.M., Abdel-Fattah H.M. Cellulose-decomposing fungi of salt marshes in Egypt // Folia Mycrobiol. (Praha). 1978. V. 23, №1. P. 37-44.

Abdel-Hafez S.I., Moubasher A.H., Abdel-Fattah H.M. Studies on mycoflora of salt marshes in Egypt. I. Shugar fungi // Mycopathologia. 1977. V. 62, №3. P. 143 - 151.

Abdel-Hafez S.I., Moubasher A.H., Abdel-Fattah H.M. Studies on mycoflora of salt marshes in Egypt. IV. Osmophilic fungi // Mycopathologia. 1977a. Vol. 62, №1. P. 19 - 26.

Abdel-Lateff A., Klemke Ch., Konig G., Wright A. Two new xanthone derivatives from the algicolous marine fungus Wardomyces anomalus II J. Nat. Prod. 2003. V. 66. P. 706-708.

Abdel-Wahab M.A., Jones E.B.G. Three new marine ascomycetes from driftwood in Australian sand dunes. // Mycoscience. 2000. V. 41. P. 379 - 388.

Abdel-Wahab M.A., Jones E.B.G., Vrijmoed L.P. Halosarpheia kandeliae sp. nov. on intertidal bark of the mangrove tree Kandelia candel in Hong Kong. // Mycol. Res. 1999. V. 103. P. 1500-1504.

Abdel-Wahab M.A., Pang K.L., El-Sharouny H.M., Jones E.B.G. Halosarpheia imicellidaris sp. nov. (Halosphaeriales, Ascomycota) based on morphological and molecular evidence. // Mycoscience. 2001. V. 42. P. 255 260.

Abrel L., Borgeson В., Crews P. A new polyketide, secocurvularin, from the salt water culture of the sponge-derived fungus//Tetrahedron Lett. 1996. V. 37. P. 8983-8994.

Afiyatullov Sh. Sh., Kalinovsky A.I., Kuznetsova T. A., Pivkin M.V., Prokofeva N. G., Dmitrenok P.S., Elyakov G.B. 2004a. New Glycosides of the Fungus Acremonium striatisporum Isolated from a Sea Cucumber //J. Nat. Prod. V. 67 (6). P. 1047-1051.

Afiyatullov Sh.Sh., Kalinovsky A.I., Kuznetsova T.A., Isakov V.V., Pivkin M.V., Dmitrenok P.S., Elyakov G.B. New diterpenic glycosides of the fungus Acremonium striatisporum isolated from a sea cucumber//J. Nat. Prod. 2002. 65(5). P. 641-644.

Afiyatullov Sh.Sh., Kalinovsky A.I., Pivkin M.V., Dmitrenok P.S., Kuznetsova T.A. 2004.

Fumitremorgns from the marine isolate of the fungus Aspergillus fumigatus //Chem. Nat.

Prod. V. 40(6). P. 615-617.

Afiyatullov Sh.Sh., Kuznetsova T.A., Isakov V. V., Pivkin M.V., Prokof eva N.G., Elyakov G.B.

2000. New Diterpenic Altrosides of the Fungus Acremonium striatisporum isolated from a

Sea Cucumber//J. Nat. Prod. V. 63 (6). P. 848-850.

Ahearn D.G., Crow S.A. Fungi and hydrocarbons in the marine environment. / In The biology of

marine fungi. (S.T. Moss ed.) Cambridge university press. 1986. Cambridge London New

York New Rochelle Melbourne Sydney. P. 11-18.

Akpata T.V.I, Ekundayo J.A. Occurrence and periodicity of some fungal populations in the Lagos

lagoon II Trans. Brit, mycol. Soc. V. 80. No 2. 1983. P. 347-352.

Alderman D.J. Fungal diseases of marine animals. / In Recent Advances in Aquatic Mycology.

(E.B.G. Jones, ed.). Wiley. New York. 1976. P. 223-260.

Alderman D.J. Fungal infection of crawfish (.Palinurus elephas) exoskeleton. // Trans. Brit, mycol.

Soc. 1973. V. 61. P. 595-597.

Alderman D.J. Fusarium solani causing an exoskeletal pathology in cultured lobsters, Homarus

vulgaris. //Trans. Br. Mycol. Soc. 1981.V. 76. P. 25-27.

Aleem A. Distribution and ecology of marine fungi in Sierra Leone (Tropical West Africa). //

Botanica Marina. 1980. V. 23. P. 679-688.

Alias S.A., Jones E.B.G. Vertical distribution of marine fungi on Rhizophora apiculata at Morib

mangrove, Selangor, Malaysia. // Mycoscience. 2000. V. 41. P. 431-436.

Ames L.M. A monograph of the Chaetomiaceae. Army Research Office, 1961. 31 Op. Anastasiou C.J. Fungi from salt lakes. I. A new species of Clavariopsis. II Mycologia. 1961. V. 53.

P. 11-16.

Anastasiou C.J. Fungi from salt lakes. II. Ascomycetes and Fungi Imperfecti from the Salton Sea. // Nova Hedwigia. 1963. V. 6. 243-276.

Anastasiou C.J., Churchland L.M. Fungi on decaying leaves in marine habitats. // Can. J. Bot. 1969. V 47. P. 251-257.

Andrews J.H. Observations on the pathology of seaweeds in the Pacific Northwest. // Can. J. Bot.

1977. V. 55. P. 1019-1027. Andrews J.H. The pathology of marine algae. // Biol. Rev. Cambridge Philos. Soc. 1976. V. 51. P. 211-253.

Apinis A.E., Chesters C.G.C. Ascomycetes of some salt marshes and sand dunes. // Trans. Br.

Mycol. Soc. 1964. V. 47. P. 419-435. Armonies W., Reise K. Faunal diversitiy across a sandy shore. // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2000. V. 196. P. 49-57.

Ashton E.C., Hogarth P.J., Ormond R. Breakdown of mangrove leaf litter in a managed mangrove

forest in Peninsular Malaysia. // Hydrobiologia. 1999. V. 413. P. 77-88. Barghoorn E.S. II. Biological Aspects. // Farlowia. 1944. V. 1. P. 434-467. Barghoorn, E.S., Under, D.H. Marine fungi; their taxsonomy and biologi. // Farlowia. 1944. No 1. P. 395—487.

Barlocher F., Kendrick B. Assimilation efficiency of Gammarus pseudolimnaeus (Amphipoda)

feeding on fungal mycelium or autumn-shed leaves. // Oikos. 1975a. V. 26. P. 55-59. Barlocher F., Kendrick B. Fungi in the diet of Gammarus pseudolimnaeus (Amphipoda). // Oikos. 1973. V. 24. P. 295-300.

Barlocher F., Kendrick B. Leaf-conditioning by microorganisms. // Oecologia. 1975. V. 20. P. 359-362.

Bass D., Howel A., Brown N., Barton H., Demidova M., Michelle H., Li L., Sanders H., Watkinson S.C., Willcock S., Richards T.A. Yeast forms dominate fungal diversity in the deep oceans. // Proc. royal soc. Biological sc. 2007 V. 274, # 1629. P. 3069-3077. Bauch R. Ophiobolus kniepii, ein neuer parasitischer Pyrenomycet auf Kalkalgen. // Pubbl. Stiit.

Zool. Napoli. 1936. B. 15. S. 377-391.

Becker G. Biological investigations on marine borers in Berlin-Dahlem. / In Marine Boring and

Fouling Organisms. (D. L. Ray, ed.). Univ. of Washington Press, Seattle. 1959. P. 62-83.

Becker G., Kampf W.-D., Kohlmeyer J. Zur Ernährung der Holzbohrasseln der Gattung Limnoria.

//Naturwissenschaften. 1957. B. 44. S. 473^174.

Bissett J. A revision of the genus Trichoderma. I. Section Longibrachiatum sect. nov. // Can. J.

Bot. 1984. V. 62. P. 924-931. Bissett J. A revision of the genus Trichoderma. IV. Additional notes on section Longibrachiatum II

Can. J. Bot. 1991. V. 69. P. 2418-2420. Blant J., Copp B., Munro M., Northcote P., Prinsep M. Marine natural products // Nat. Prod. Rep.

2004. V. 21. P. 1-49.

Blaylock R.B., Overstreet R.M., Klich M.A. Mycoses in red snapper (.Lutjanus campechanus) caused by two deuteromycete fungi (Penicillium corylophilum and Cladosporium sphaerospermum). // Hydrobiologia. 2001. V. 460 P. 221-228. Bock K., Lundt J., Pcdersen C. 1973. Assignment of anomeric structure to carbohydrates through

geminal ,3C-H coupling constants // Tetrahedron Lett. V. 13. P. 1037-1040. Borut, S. Y., and Johnson, T. W., Jr. Some biological observations on fungi in estuarine sediments

// Mycologia. 1962. V. 54. P. 181-193. Brauers G., Ebel R., Edrada R., Wray V., Berg A., Gräfe U., Proksch P. Hortein, a new natural product from the fungus Hortaea werneckii, associated with the sponge Aplysina aerophoba Hi. Nat. Prod. 2001. V.64. P. 651-652. Brauers G., Ebel R., Edrada R., Wray V., Berg A., Gräfe U., Proksch P. 2001. Hortein, a new natural product from the fungus Hortaea werneckii, associated with the sponge Aplysina aerophoba //J. Nat. Prod. V.64. P. 651-652. Brausers G., Edrada R., Ebel R., Proksch P., Wray V., Berg A„ Gräfe U., Schachtele C., Totzke F., Finkenzeller G., Marme D., Kraus J., Munchbach M., Michel M., Bringmann G.,

Schaumann K. Antraquinones and betaenone derivatives from the sponge-associated fungus Microsphaeropsis species: nonel Inhibitors of Protein Kinases //J. Nat. Prod. 2000. V.63. No 6. P. 739-745.

Bringmann G., Lang G., Steffens S., Gunther E., Schaumann K. Evariquinone, isoemericellin, and stromemycin from a sponge derived strain of the fungus Emericella variecolor //Phytochemistry. 2003. V. 63. P. 437-443. Bringmann G., Lang G., Steffens S., Schaumann K. Petrosifungins A and B. Novel Cyclodepsipeptides from a Sponge-Derived Strain of Pénicillium brevicompactum. //J. Nat. Prod. 2004. V. 67. No. 3. P. 311-315. Bringmann G., Lang G., Steffens S., Schaumann K. Petrosifungins A and B. Novel Cyclodepsipeptides from a Sponge-Derived Strain of Pénicillium brevicompactum //J. Nat. Prod. 2004. V. 67. No. 3. P. 311-315. Brooks R.D. The presence of dolipore septa in Nia vibrissa and Digitatisporu marina. //

Mycologia. 1975. V. 67. P. 172 - 174. Bruun A.F. Deep sea and abyssal depths. // Treatise on Marine Ecology and Paleoecology I.

Ecology. Mem. Geol. Soc. Am. 1957. V. 67. 641-672. Buchalo A.S., Nevo E., Wasser S.P., Molitoris H.P., Oren A., Volz P.A. Fungi discovered in the

dead sea.//Mycol. Res. 2000. V. 104. P. 132-133. Bugni T., Abbanat D., Bernan V. Maiese W., Greenstein M., Van Wagoner R., Ireland C. Yanuthones: Novel metabolites from a marine isolate of Aspergillus niger //J. Org. Chem. 2000. V.65. P. 7195-7200. Bugni T., Bernan S., Greenstein M., Janso J., Maiese W., Mayne Ch., Ireland Ch. Brocaenols A -C: Novel Polyketides from a marine-derived Pénicillium brocae //J. Org. Chem. 2003. V.68. P. 2014-2017.

Bugni T., Janso J., Williamson T., Feng X., Bernan V., Greenstein M., Carter G., Maiese W,

Ireland C. Dictyosphaeric acids A and B: New decalactones from an undescribed Pénicillium sp. obtained from the alga Dictyosphaeria versluyii //J. Nat. Prod. 2004. V. 67. P. 1396-1399.

Bultman J.D. Ritchie D.D. Inhibition of fungal growth and reproduction by obtusaquinone and some cinnamylphenols. In Proceedings of a Workshop on the Biodeterioration of Tropical Woods: Chemical Basis for Natural Resistance (J.D. Bultman.ed.). Nav. Res. Lab. Department of the Navy. Washington D.C. 1976. P. 57-65. Bultman J.D., Felsenstein D., Ritchie, D.D. The inhibitory effects of obtusaquinone on the growth

and reproduction of two marine fungi. //Nav. Res. Lab. Rep. 1973. No. 7653. P. 1-10. Bultman J.D., Southwell C.R. A preliminary investigation of the marine borer resistance of the

tropical wood Dalbergia retusa. //Nav. Res. Lab. Rep. 1972. No. 7416. P. 1-14. Burtseva Yu.V., Verigina N.S., Sova V.V., Pivkin M.V., Zvyagintseva T.N. Filamentous marine fungi as producers of O-glycosylhydrolases. P-1,3-Glucanase from Chaetomium indicum // Mar. Biothechnol. 2003. V. 5. P. 1-11. Byrne P.J., Jones E.B.G. Lignicolous marine fungi. // Verôff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1974. S. 5. S. 301-320.

Cagnolli-Bellavita N., Cecchrelli P., Mariani R. 1970. Structure du virescenoside C, nouveau

metabolite de Oospora virescens (Link) Wallr. //Eur. J. Biochem. V. 15. P. 356-359. Cagnolli-Bellavita N., Cecchrelli P., Ribaldi M., Polonsky J., Baskevitch Z. 1969. Virescenoside A e Virescenoside B: nuovi altrosidi metabolite dell'Oospora virescens (Link) Wallr. //Z. Gazz. Chim. Ital. V. 99. P. 1354-1363. Cagnolli-Bellavita N., Cecchrelli P., Ribaldi M., Polonsky J., Baskevitch Z., Varenne J. 1977. Structures of Virescenosides D and H, new metabolites of Acremonium luzulae (Fuckel) Gams //J. Chem. Soc. Perkin I. P. 351 -354. Campbell J. Volkmann-Kohlmeyer B., Grafenhan T., Spatafora J., Kohlmeyer J. A re-evaluation

of Lulworthiales: relationships based on 18S and 28S rDNA // Mycol. Res. 2005. V. 109 (5) P. 556-568.

Capon R., Skene C., Stewart M., Ford J., Hair R., Williams L., Lacey E., Gill J., Heiland K., Friedel T. Aspergillicins A - E: five novel depsipeptides from the marine-derived fungus Aspergillus carneus IIOrg. Biomol. Chemistry. 2003. V. 1. P. 1856-1862. Carriker M.R., Smith E.H., Wilce R.T. Penitration of calcium carbonate substrates by lower plants and invertebrates. An international multidisciplinary symposium. // Am. Zool. 1969. V. 9. P. 629-1020.

Castro P., Freitas H. Fungal biomass and decomposition in Spartina maritima leaves in the

Mondego salt marsh (Portugal). // Hydrobiologia. 2000. V. 428 P. 171-177. Cavalière A.R. Marine fungi of Iceland: A preliminary account of Ascomycctes. // Mycologia 1968. V. 60 P. 475-479.

Ceccherelli P., Cagnoli-Belavita N., Polonsky J., Baskevitch Z. 1973. Structures des virescenosides F et G, nouveaux metabolites de Oospora virescens (Link) Wallr. //Tetrahedron. V. 29. P. 449-454. Ceccherelli P., N. Cagnolli-Bellavita, J. Polonsky, Z. Baskevitch, and M. Ribaldi. 1977. Structures of virescenoside E and L, new metabolites of Acremonium luzulae (Fuckel) Gams III. Chem. Soc., Gazz. Chim. Ital. V. 107. P. 51-53. Chapman VJ. (ed.) Mangrove vegetation. Cramer. Vadus. Liechtenstein. 1976. 447 p. Chapman V.J. Salt marshes and salt deserts of the world. / In Ecology of Halophytes. (R.J.

Reimold, W.H. Queen, eds.). Academic Press. New York. 1974. P. 3-19. Chen G., Lin Y., Wen L., Vrijmoed L., Jones G. Two new metabolites of a marine endophytic fungus (No. 1893) from an estuarine mangrove on the South China Sea coast //Tetrahedron. 2003. V. 59. P. 4907-4909. Christophersen C., Crescente O., Frisvad J.C., Gram L., Nielsen J., Nielsen P.H., Rahbak L.

Antibacterial activity of marine-derived fungi//Mycopathologia. 1999. V. 143. P. 135-138. Chu P.C., Lan J., Fan C. Japan Sea Thermohaline Structure and Circulation. Part I: Climatology //

J. Physical Oceanography. 2001. Vol.31. P. 244-271. Churchland L.M., McCIaren M. Marine fungi isolated from a Kraft pulp mill outfall area. // Can. J.

Bot. 1973. V. 51. P. 1703-1710. Clapp W.F., Kenk R. Marine borers. An Annotated Bibliography. // Off. Nav. Res., Department of

the Navy, Washington, D.C. 1963. Conover J.T., Sieburth J.M. Effect of Sargassum distribution on its epibiota and anybacterial

activity. // Bot. Mar. 1964. V. 6. P. 147-157. Coppins B.J. Checklist of Lichens of Great Britain & Ireland. British Lichen Society. 2002. 87 p. Cribb A.B., Cribb J.W. Marine fungi from Queensland - I. // Univ. Queensl. Pap. Dep. Bot. 1955. No. 3.P. 77-81.

Cribb A.B., Cribb J.W. Marine fungi from Queensland-II. // Univ. Queensl. Pap. Dep. Bot. 1956. No. 3. P. 97-105.

Cribb A.B., Cribb, J.W. Some marine fungi on algae in European herbaria. // Univ. Queensl. Pap.

Dep. Bot. 1960. No. 4. P. 45-48. Cribb A.B., Herbert J.W. Three species of fungi parasitic on marine algae in Tasmania. // Univ.

Queensl. Pap. Dep. Bot. 1954. No. 3. P. 9-13. Cuomo V., Palomba I., Guerriero A., D'Ambrosio M., Pietra F. Antimicrobial activities from

marine fungi Hi. Mar. Biotechnol. 1995. V. 2. P. 199-204. Cutter J.M., Rosenberg F.A. The role ofcellulolytic bacteria in the digestive processes of the shipworm. II. Requirement of bacterial cellulase in the digestive system of Teredine borers. / In Biodeterioration of Materials. (A.H. Walters and E.H. Hueck-van der Pias, eds.). Applied Science. London. 1972. P. 42-51. Dabrowa N., Landau J.W., Newcomer V.D., Plunkett, O.A. A survey of tide-washed coastal areas

of Southern California for fungi potentially pathogenic to man. // Mycopathol. Mycol.

Appi. 1964. V. 24. P. 137-150.

Daferner M., Anke T., Sterner O. Zopfíellamides A and B, antimicrobial pyrrolidinone derivatives

from the marine fungus Zopfiella latipes //Tetrahedron. 2002. V. 58. P. 7781-7784.

de Hoog G.S. The genera Beauveria, Isaria, Tritirachium and Acrodontium gen. nov. // Studies in

mycology. Baarn, 1972, №1. 41 p. Dean R.C. Cellulose and wood digestion in the marine mollusk Bankia gouldi Bartsch. / In

Proceedings of the Third International Biodégradation Symposium (J.M. Sharpley and

A.M. Kaplan, eds.). Applied Science, London. 1976. P. 955-965.

Debeaupuis J.P., Lafont P. Nouvelles toxines d'Aspergillus fumigatus Fresentius //C.R. Acad. Sci.

Paris. 1978. V. 286. P. 431-434.

Den Hartog C. Sea-grasses of the World. North-Holland Publishing Company. Amsterdam. 1970.

275 p.

Desmaziéres J.B.H.J. Plantes cryptogames de France. 2nd ed. No 1778. Lille. 48 p.

Dewey F.M., Donnelley K.A., Foster D. Penicillium waksmanii isolated from a red seaweed,

Eucheuma striatum. II Trans. Br. Mycol. Soc. 1983. V. 81. P. 433^134. Dick M.W. Straminipilous Fungi. Systematics of the Peronosporomycetes including accounts of the marine straminipilous protists, the plasmodiophorids and similar organisms. Kluwer Academic Publishers. Dordrecht. The Netherlands. 2001. 670 p. Dickinson C.H. Pugh G.J.F. The mycoflora associated with Halimione portulacoides. II. Root surface fungi of mature and excised plants. // Trans. Br. Myiol. Soc. 1965c. V. 48. P. 595602.

Dickinson C.H. Pugh G.J.F. The mycoflora associated with Halimione portulacoides. I. The establishment of the root surface flora of mature plants. // Trans. Br. Mycol. Soc. 1965b. V. 48. P. 381-390.

Dickinson C.H. Pugh G.J.F. Use of a selective cellulose agar for isolation of soil fungi. // Nature.

1965a. V. 207. P. 440-441. Dickinson C.H. The mycoflora associated with Halimione portulacoides. III. Fungi on green and

moribund leaves. // Trans. Br. Mycol. Soc. 1965. V. 48. P. 603-610. Dickinson C.H., Morgan-Jones G. The mycoflora associated with Halimione portulacoides. IV. Observations on some species of Sphaeropsidales. // Trans. Br. Mycol. Soc. 1966. V. 49. P. 43-55.

Dictionary of the fungi / Ed. by Kirk P.M., Cannon P.F., David J.C. and Stalpers J.A. CAB

International, 1999. 662 p. Doguet G. Influence de la température et de la salinité sur la croissance et la fertilité du

Digitatispora marina Doguet. Il Bull. Soc. Fr. Physiot. Vég. 1964. V. 10. P. 285-292.

Dowman E.A. Conservation in field archaeology. Methuen Co. London. 1970. 170 p.

Durieu de Maisonneuve C., Montagne J.F.C. Pyrenomycetes Fr. / In Exploration scientifiqu de

l'Algerie, botanique. (J. Bory de Saint-Vincent, C. Durieu de Maisonneuve eds.). Paris. P.

443-608.

Edrada R., Heubes M., Brauers G., Wray V., Berg A., Gräfe U., Wohlfarth M., Muhlbacher J.,

Schaumann K., Sudarsono., Bringmann G., Proksch P. Online Analysis of

Xestodecalactones A - C, Novel Bioactive Metabolites from the fungus Pénicillium cf.

montanense and their subsequent Isolation from the sponge Xestospongia exigua II J. Nat.

Prod. 2002. V. 65. P. 1598-1604.

Ellis M.B. Dematiaceous hyphomycetes. Kew; Surrey; England, 1971. 608p.

Erchner R.D., Al Salami M., Wood P.R., Mullbacher A. The effect of gliotoxin upon macrophage

function //Int. J. Immunopharmacol. 1986. V. 8 (7). P. 789-797.

Estee L.M. Fungus galls on Cystoseira and Halidrys. II Univ. Calif. Berkeley Publ. Bot. 1913. V 4.

P. 305-316.

Faulkner J. Marine natural products //Nat. Prod. Rep. 2001. V. 18. P. 1-49.

Feldmann G. Un nouvel Ascomycète parasite d'une algue marine: Chadefaiidia marina. Il Rev.

Gén. Bot. 1957. V. 64. P. 140 - 152. Feldmann J. Le Blodgettia confervoides Harv. est-il un liehen? // Rev. Bryol. Lichénol. 1938. V. 11. P. 155-163.

Fell J.W., Cefalu R.C., Master I.M., Tallman A.S. Microbial activities in the mangrove {Rhizophora mangle) leaf detrital system. / In The Biology and Management of Mangroves. (G. Walsh, S. Snedaker, H. Teas, eds.). Vol. 2. Univ. of Florida. Gainesville. 1975. P. 661679.

Fell J.W., Master I.M. Fungi associated with the degradation of mangrove (Rhizophora mangle L.) leaves in south Florida. / In Estuarine Microbial Ecology (L.H. Stevenson, R.R. Colwell, eds.) Univ. of South Carolina Press. Columbia. 1973. P. 455^65. Fell J.W., Master I.M. The association and role of fungi in mangrove detrital systems. // Bot. Mar. 1980.V23. P. 257-263.

Fenchel F. Aspects of decomposer food chains in marine benthos. // Verhandlingen der Deutischen

zoologischen Gesellschaft H. 65. 1972. S. 14-23. Ferdinandsen C., Winge O. A Phyliachorella parasitic on Sargassum. // Mycologia. 1920. V. 12. P. 102-103.

Fisher A.J., Gordon T.R., Ditomaso J.M. Geographic distribution and diversity in Claviceps purpurea from salt marsh habitats and characterization of Pacific coast populations. // Mycol. Res. 2005. V. 109. P. 439^146. Fize A. Présence de deux espèces de champignons pyrénomycètes dans les sables littoraux du-

Golfe d'Aigues-Mortes. // Vie Milieu. 1960. V. 11. P. 675-677. Fujimoto H., Okuyama M., Ishibashi M. Immunomodulatory Constituents from an Ascomycete,

Chaetomium seminudum // J. Nat. Prod. 2004. V. 67. P. 98-102. Furtado, S- E. J-, Jones, E. B. G., and Bultman, J. D. The effect of certain wood extractives on the growth of marine microorganisms. C. R. Congr. Int. Corros. Mar. Salissures, 4th. 1976.

1977. P. 195-201. g 2001 by Walter de Gruyter • Berlin ■ New York

Gaertner A. Niedere, mit Pollen köderbare marine Pilze diesseits und jenseits des Island-Färöer-Rückens im Oberflächenwasser und im Sediment. // Veröff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1968. S. ll.V. 65-82.

Gallo M.L., Seldes A.M., Cabrera G.M. Antibiotic long-chain and a,ß-unsaturated aldehydes from the culture of the marine fungus Cladosporium sp. //Biochem. System. Ecol. 2004. V. 32. P. 545-551.

Gams W. Cephalosporium-artige Schimmelpilze (Hyphomycetes). Jena, 1971. 262 p.

Garo E., Starks C., Jensen P., Fenical W., Lobkovsky E., Clardy J. 2003. Trichodermamides A and

B, cytotoxic modified dipeptides from the marine-derived fungus Trichoderma virens IIJ.

Nat. Prod. V. 66. P. 423-426.

Gautschi J., Amagata T., Amagata A., Valeriote F., Mooberry S., Crews Ph. Expanding the

strategies in natural product studies of marine-derived fungi: A chemical investigation of

Pénicillium obtained from Deep Water sediment //J. Nat. Prod. 2004 V. 67. P. 362-367.

Geiser D. M., Taylor J. W., Ritchie K. B., Smith, G. W. Cause of sea fan death in the West Indies.

//Nature. 1998. V. 394 P. 137-138.

Gessner R.V. Seasonal occurrence and distribution of fungi associated with Spartina alterniflora

from a Rhode Island estuary. // Mycologia. 1977. V. 69. P. 477-491.

Gessner R.V., Goos R.D. Fungi from Spartina alterniflora in Rhode Island. // Mycologia. 1973. V.

65. P.1296-1301.

Gessner R.V., Goos R.D. Fungi from Spartina alterniflora in Rhode Island. // Mycologia. 1973a. V. 65. P. 1296-1301.

Gessner R.V., Goos R.D., Sieburth J.M. The fungal microcosm of the internodes of Spartina

alterniflora. II Mar. Biol. 1972. V. 16. P. 269-273. Gessner R.V., Kohlmeyer J. Geographical distribution and taxonomy of fungi from salt marsh

Spartina. II Can. J. Bot. 1976. V. 4. P. 2023-2037. Gold H.S. Distribution of some lignicolous Ascomycetes and Fungi Imperfecti in an estuary. // J.

Elisha Mitchell Sei. Soc. 1959a. V. 75 P. 25-28. Gold H.S. Isolation, culture, growth and nutrition of some lignicolous marine fungi. // Phyton 1959. V. 12. P. 65-80.

Golubic S., Brent G., Le Campion T. Scanning electron microscopy of endolithic aigae and fungi

using a multipurpose casting-embedding technique. // Lethaia. 1970a. V. 3. P. 203-209. Golubic S., Perkins R.D., Lukas K.J. Boring microorganisms and microbormgs in carbonate substrates / In The Study of Trace Fossils (R.W. Frey, ed ). Springer-Verlag. Berlin and New York. 1975. P. 229-259. Gonda K.E., Jendrossek D., Molitoris H.P. Fungal degradation of the thermoplastic polymer poly-/?-hydroxybutyric acid (PHB) under simulated deep sea pressure. // Hydrobiologia. 2000. V. 426 P. 173- 183.

González M.C., Hanlin R.T., Herrera T., Ulloa M. Fungi colonizing hair-baits from three coastal

beaches of Mexico. // Mycoscience. 2000. V. 41. P 259-262. Goodman P.J. The possible role of pathogenic fungi in die-back of Spartina townsendii Agg. //

Trans. Br. My col. Soc. 1959. V. 42. P. 409^115. Goos R.D., Gessner R.V. Hyphal modifications of Sphaerulina pedicellata: appressoria or

hyphopodia. // Micologia. 1975. V. 67. P. 1035-1038. Grant W.D., Atkinson M., Burke B., Molloy C. Chitinolysis by the marine ascomycete Corollospora maritime Werdermann: Purification and properties of a chitobiosidase // Bot. Mar. 1996. V. 39. № 2. P. 177-186. Grovel O., Pouchus Y., Verbist J-F. Accomulation of gliotoxin, a cytotoxic mycotoxin from

Aspergillus fumigatus, in blue mussel (Mytilis edulis) //Toxicon. 2003. V. 42. P. 297-300. Gui C.B., Hideaki K., Hiroyuki O. Novel mammalian cells cycle inhibitors, spirotryprostatins A

and B, produced by A. fumigatus, which inhibit mammalian cell cycle at G2/M phase // Tetrahedron. 1996b. V. 52 (39). P. 12651-12666. Gui C.B., Kakeya H., Okada G., Onose R., Osada H. Novel mammalian cells cycle inhibitors, triptostatins A, B and other diketopiperazines produced by Aspergillus fumigatus: Taxonomy, fermentation, isolation and biological properties // J. Antibiot. 1996a. V. 49 (6). P.527-533.

Gui C.B., Kakeya H., Osada H. Isolation, structural determination and biological activities of novel mammalian cell cycle inhibitors, spirotryprostatins A and B, tryprostatins A and B and relatived new diketopiperazine derivaties produced by a fungus A. fumigatus II Tennen Yuki Kagobutsu Toronkai Koen Yoshishu. 1996c. V. 38. P. 49-54. Hanson J. //Nat. Prod. Rep. 1995. V. 12. P. 381-384.

Hawksworth D.L. Looking at lichens //Nat. Hist. Book Rev. 1976. V. 1. P. 8-15.

Hawksworth D.L. The magnitude of fungal diversity: the 1.5 million species estimate revisited. //'

Mycol. Res. 2001. V. 105 P. 1422-1432. Hawksworth D.L., Rossman A.Y. Where are all the undescribed fungi? // Phytopathology. 1997. V. 87 P. 888-891.

Heald EJ. Odum W.E. The contribution of mangrove swamps to Florida fisheries // Proc. Gulf.

Canbb. Fish. Inst. 22nd Annu. Sess. 1969. P. 130-135. Hellio C., Bremer G., Pons A.M., Le Gal Y., Bourgougnon N. Inhibition of the development of microorganisms (bacteria and fungi) by extracts of marine algae from Brittany, France. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2000. V. 54. P 543-549. Henssen A., Jahns H.M. Lichenes. Eine Einfuhrung in die Flechtenkunde. Thieme. Stuttgart. 1974. 467p.

Hiort J., Maksimenka K., Reichert M., Perovic-Ottstadt S., Lin W., Wray V., Steube K., Schaumann K., Weber H., Proksch P., Ebel R., Muller W., Bringmann G. New natural

products from the sponge-derived fungus Aspergillus niger //J. Nat. Prod. 2004. V.67. P. 1532-1543.

Höhnk W. A further contribution to the oceanic mycology. // Rapp. P.V. Reun., Cons. Int. Explor.

Mer. 1961. V. 149. P. 202-208. Höhnk W. Fungi. In Research Methods in Marine Biology (C. Schlieper, ed.). Univ. of

Washington Press. Seattle. 1972. P. 142-155. Höhnk W. Studien zur Brack-und Seewassermykologie. IV. Ascomyceten des Küstensandes. //

Veröff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1954. S. 3. S. 27-33. Höhnk W. Studien zur Brackund Seewassermykologie. V. Höhere Pilze des submersen Hölzes. //

Veröff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1955. S 3. S. 199-227. Höhnk W. Über den pilzlichen Befall kalkiger Hartteile von Meerestieren. // Ber. Dtsch. Wiss.

Komm. Meeresforsch. 1969. B. 20. S. 129-140. Höhnk W. Über die submersen Pilze an der rumänischen Schwarzmeerküste nahe Constanza. //

Veröff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1967. S. 10. S. 149-158. Höller U., Wright A.D., Matthee G.F., Konig G.M., Draeger S., Aust H.J., Schulz B. Fungi from marine sponges: diversity, biological activity and secondary metabolites // Mycol. Res. 2000. Vol. 104. P. 1354-1365. Hopmann C., Knauf M.A., Weithmann K., Wink J. Aventis Pharma Deutschland G.m.b.H.,

Germany, International Patent Application 2001. No. Wo 01/44264 A2. Hughes G.C. Biogeography and the marine fungi. / In The biology of marine fungi. (S.T. Moss ed.) Cambridge university press. Cambridge, London, New York, New Rochelle, Melbourn, Sydney. 1986. P. 274-295. Hughes G.C. Geographical distribution of the higher marine fungi. // Veröff. Inst. Meeresforsch.

Bremerh. 1974. S. 5. S. 419-441. Hughes G.C. Intertidal lignicolous fungi from Newfoundland. // Can. J. Bot. 1968. V. 46. P. 1409-

Hughes G.C. Studies of fungi in oceans and estuaries since 1961. I. Lignicolous, caulicolous and

foliicolous species. // Oceanogr. Mar. Biol. Annu. Rev. 1975. V. 13. P. 69-180. Hyde K.D, Farrant C.A., Jones E.B.G. Isolation and marine fungi. // Botanica marina. 1987. V. 30. P.291-303.

Hyde K.D. Vertical zonation of intertidal mangrove fungi. / In Recent Advances in Microbial Ecology (ed. by Hatori, T., Ishida, Y., Maruyama, R. Morita, R. and Uchida, A.). Japan Sci. Soc. Press, Tokyo. 1989. P. 302-306. Hyde K.D. Where are the missing fungi? Does Hong Kong have any answers? // Mycol. Res.

2001. V. 105. P. 1514-1518. Hyde K.D., A study of the vertical zonation of intertidal fungi on Rhizophora spp. at Kampung

Danau mangrove. // Asian Mar. Biol. 1988. V. 36 P. 255-262. Hyde K.D., Allias S.A, Biodiversity and distribution of fungi associated with decomposing Nypa

fruticans. II Biodiversity and Conservation. 2000. V. 9. P. 393-402. Hyde K.D., Gon T.K., Lu B.S., Alias S.A. Eleven new intertidal fungi from Nypa fruticans. H

Mycol. Res. 1999. V. 103. P. 1409-1422. Hyde K.D., Jones E.B.G. Marine mangrove fungi. // Mar. Ecol. (P.S.Z.N.I). 1988. V. 9. P. 15-33. Hyde K.D., Jones E.B.J., Leano E., Pointing S.B., Poonyth A.D., Vrijmoed L.L.P. Role of fungi in

marine ecosystems // Biodiversity and conservation. 1998. V. 7. Js|° 9. P. 1147-1161. Hyde K.D., Pointing S.B. Marine Mycology. A Practical Approach. Fungal Diversity Press, Hong Kong. 2000. 377 p.

Inderbitzin P., Jones E.B.G., Vrijmoed L.L.P. A new species of Leptosphaerulina from decaying

mangrove wood from Hong Kong. // Mycoscience. 2000. V. 41. P. 233-237. Ingold C.T. The morphology and biology of freshwater fungi excluding Phycomycetes. / In Recent Advances in Aquatic Mycology (E. B. G. Jones, ed.). 1976. P. 335-357.

Irvine J., Eaton R.A., Jones E.B.G. The effect of water of different ionic composition on the leaching of a water borne preservative from timber placed in cooling towers and in the sea. // Mater. Org. 1972. V. 7. P. 45 - 71.

Irvine J., Jones E.B.G. The effect of a copper-chrome-arsenate preservative and its constituents on the growth of aquatic micro-organisms. // J.Inst. Wood Sci. 1975. V. 7. P. 1-5.

Isaka M., Suyarnsestakorn Ch., Tanticharoen M., Kongsaeree P., Thebtarononth Y. Aigialomycins A - E, new resorcylic macrolides from the marine mangrove fungus Aigialus parvus II J. Org. Chem. 2001. V. 67. P. 1561-1566.

Jadulco R., Brauers G., Edrada A., Ebel R., Wray V., Sudarsono, Proksch P. New metabolites from sponge-derived fungi Curvularia lunata and Cladosporium herbarum //J. Nat. Prod. 2002 V. 65. P. 730-733.

Jadulco R., Edrada R. A., Ebel R., Berg A., Schaumann K., Wray V., Steube K., Proksch P. New communesin Derivatives from the Mediterranean Sponge Axinella verrucosa //J. Nat. Prod. 2004. V. 67. P. 78-81.

Jadulco R., Proksch P., Wray V., Sudarsono, Berg A., Graefe U. 2001. New macrolides and fiiran carboxylic acid derivative from the sponge-derived fungus Cladosporium herbarum //J.Nat. Prod. V. 64. P. 527.

Jannasch H.W., Wirsen C.O. Deep-sea microorganisms: in situ response to nutrient enrichment. // Science. 1973. V. 180. P. 641-643.

Jannasch H.W., Wirsen C.O., Taylor C.D. Undecompressed microbial populations frora the deep sea. // Appl. Environ. Microbiol. 1976. V. 32. P. 360-367.

Jansol J.E., Bernan V.S., Greenstein M., Bugni T.S., Ireland C.M. Penicillium dravuni, a new marine-derived species from an alga in Fiji. // Mycologia. 2005. V. 97. P. 444-453.

Jayus, McDougall B.M., Seviour R.J. Purification and properties of a (l-»6)-P-glucanase from Acremonium sp. IMI 383068 // Enzyme Microbial. Technol. 2001. V. 29. P. 194-200.

Jiang, Z., Barret M.O., Boyd K., Adams D., Boyd A., Burgess J. JM47, a cyclic tetrapeptide HC-

toxin analogue from a marine Fusarium species // Phytochemistry. 2002. V. 60. P. 33-38. Johnson R.G. Paniculate matter at the sediment-water interface in coastal environments. // J. Mar.

Res. 1974. V. 32. P. 313-330. Johnson T.W., Sparrow F.K. Fungi in oceans and estuaries. Cramer. Weinheim. 1961. 668 p. Johnson T.W.Jr. Aquatic fungi of Iceland: Introduction and preliminary account. // J. Elisha

Mitchell Sri. Soc. 1968. V. 84. P. 179-183. Johnson T.W.Jr. Ferchau H.A., Gold H.S. Isolation, culture, growth and nutrition of some

lignicolous marine fungi. // Phyton. 1959. V. 12. P. 65-80. Johnson T.W.Jr. Marine fungi. I. Leptosphaeria and Pleospora. II Mycologia. 1956. V. 48. P. 495505.

Johnson T.W.Jr. Marine fungi. II. Ascomycetes and Deuteromycetes from submerged wood. //

Mycologia. 1956a. V. 48. P. 841-851. Johnson T.W.Jr. The estuarine mycoflora. / In Estuaries (G.H. Lauft, ed.). Publ. No. 83. Am.

Assoc. Adv. Sei. Washington. D.C. 1967. P. 303-305. Jones E. B. G. Do fungi occur in the sea? // The Mycologist. 1988. V. 2. P. 150 - 157. Jones E.B.G. Aquatic fungi. / In Methods in Microbiology (J. R. Morris, D. W. Ribbons, and C.

Booth, eds.). Academic Press. New York. 1971. V. 4. P. 335 - 365. Jones E.B.G. Le Campion-Alsumard T. The biodeterioration of polyurethane by marine fungi. //

Int. Biodeterior. Bull. 1970a. V. 6. P. 119-124. Jones E.B.G. Lignicolous and algicolous fungi. // Recent Advances in Aquatic Mycology (E. B. G.

Jones, ed.) Wiley, New York. 1976. P. 1-51. Jones E.B.G. Marine fungi. II Curr. Sci. 1968a. V. 37. P. 378-379.

Jones E.B.G. Observations on the fungal succession on wood test blocks submerged in the sea. // J. lust. Wood Sci. 1963. V. 11. P. 14-23.

Jones E.B.G. The decay of timber in aquatic environments. // Br. Wood Pres. Assoc. Annu. Conv. 1972. P. 1-18.

Jones E.B.G. The distribution of marine fungi on wood submerged in the sea. / In Biodeterioration of Materials (A.H. Walters and J.J. Elphick, eds.). Eisevier. Amsterdam. 1968. P. 460-485. Jones E.B.G. The forgotten fungi: facultative marine fungi. / Abstracts of the 8th International Marine and Freshwater Mycology Symposium, 7-12 July 2001, Hurghada, Egypt. 2001. P. 13.

Jones E.B.G., Irvine J. The role of fungi in the deterioration of wood in the sea. // J. Inst. Wood

Sci. 1971. V. 29. P. 31-40. Jones E.B.G., Irvine J. The role of marine fungi in the biodeterioration of materials. / In "Biodeterioration of Materials" (A.H. Walters and E.H. Hueck-van der Plas, eds.). Applied Science. London. 1972. P. 422-431. Jones E.B.G., Jennings D.H. The effect of salinity on the growth of marine fungi in comparison

with non-marine species. //Trans. Brit, mycol. Soc. V. 47. 1964. P. 619-625. Jones E.B.G., Kühne H., Trussell P.C., Turner R.D. Results of an international cooperative research programme on the biodeterioration of timber submerged in the sea. // Mater. Org. 1972. P. 7 P. 93-118.

Jones E.B.G., Le Campion-Alsumard T. Marine fungi on polyurethane covered plates submerged

in the sea. //Nova Hedwigia. 1970. V. 19. P. 567-582. Jones E.B.G., Tan T.K. Observation on manglicolous fungi from Malaysia. // Trans. Br. Mycol.

Soc. 1987. V. 89. P. 390-392. Jones E.B.G., Uyenco F.R., Follosco M.P. Fungi on driftwood collected in the intertidal zone from

the Philippines. //Asian Mar. Biol. 1988. V. 5 P. 103-106. Jones E.B.G. Marine fungi: some factors influencing biodiversity. // Fung. Divers. 2000. V. 4. P. 53-73.

Kagata T., Shigemori H., Mikami Y., Kobayashi J. Coruscol A, new metabolite from the marine-

derived fungus Penicillium species // J. Nat. prod. 2000. V. 63. P. 886-887. Kampf W.D., Becker G., Kohlmeyer J. Versuche über das Auffinden und den Befall von Holz durch Larven der Bohrmuschel Teredo pedicellata Qutrf. // Z. Angew. Zool. 1959. B. 46. S. 257-283.

Kanazawa S., Fusetani N., Matsunaga S. 1993. Cylindramide: Cytotoxic tetramic acid lactam from the marine sponge Hellichondria cylindrata Tanita and Hoshino //Tetrahedron Lett. V. 34. P. 1065-1068.

Kappen L., Lange O.L. Die Kälteresistenz einiger Makrolichenen. // Flora (Jena) 1972. V. 161. P. 1-29.

Keerthi T.R., Suresh P.V., Sabu A., Rajeevkumar S., Chandrasekaran M. Extracellular production of L-glutaminase by alkalophilic Beauveria bassiana BTMFS-10 isolated from marine sediment // Word Journal of Microbiology and Biotechnology. 1999. V. 15. № 6. P. 751752.

Kim J., ZoBell C.E. Agarase, amylase, cellulose, and chitinase activity at deep-sea pressures. // J.

Oceanogr. Soc. Jap. 1972. V. 28. № 4. P. 131-137. Kirby C.J., Gosselink J.G. Primary production in a Louisiana Gulf coast Spartina allerniflora

marsh. //Ecology. 1976. V. 57. 1052-1059. Kirk P.M., Cannon P.F., David J.C., Stalpers J.A. Ainsworth & Bisby's Dictionary of the fungi.

9th ed. Commonw. Mycol. Inst. Surrey. England. 2002. 656 p. Kirk P.W. The mycostatic effect of seawater on spores of terrestrial and marine higher fungi. //

Botanica Marina. 1980. V. 23 P. 233-238. Kobayashi H., Meguro S., Yoshimoto T., Namikoshi M. Absolute structure, biosynthesis, and anti-microtubule activity of phomopsidin, isolated from a marine-derived fungus Phomopsis sp. // Tetrahedron. 2003. V. 59. P. 455-459.

Kobayashi J., Ishibashi M. Bioactive metabolites of symbiotic marine microorganisms //Chem.

Rev. 1993. V. 93. P. 1753-1769. Kobayashi M., Uehara H., Matsunami K., Aoki S., Kitagawa I. 1993. Trichoharzin, a new polyketide produced by the imperfect fungus Tricoderma harzianum separated from the marine sponge Mycale cecillia I ¡Tetrahedron Lett. V. 34. P. 7925-7928. Koch J. Marine fungi on driftwood from the west coast of Jutland, Denmark. // Friesia. 1974. V. 10. P. 209-250.

Kohlmeyer J. A new Trematosphaeria from roots of Rhizophora racemosa. //Mycopathol. Mycol.

Appl. 1968. V. 34. P. 1-5. Kohlmeyer J. Annotated check-list of New England marine fungi. // Trans. Br. Mycol. Soc. 1971a. V. 57. P. 473-492.

Kohlmeyer J. Ascospore morphology in Corollospora. II Mycologia. 1966a. V. 58. P. 281-288. Kohlmeyer J. Beobachtungen iiber mediterrane Meerespilze sowie das Vorkommen von marinen Moderfaule-Erregern in Aquariumszuchten holzzerstorender Meerestiere. // Ber. Dtsch. Bot. Ges. 1958. B. 71. V. 98-116. Kohlmeyer J. Deterioration of wood by marine fungi in the deep sea. // Materials Performance and

the Deep Sea. Am. Soc. Test. Mater., Spec. Tech. Publ. 1969a. V. 445. P. 20-29. Kohlmeyer J. Ecological notes on fungi in mangrove forests. // Trans. Br. Mycol. Soc. 1969. V. 53. P. 237-250.

Kohlmeyer J. Ecological observations on arenicolous marine fungi. // Z. Allg. Mikrobiol. 1966. V. 6. P. 94-105.

Kohlmeyer J. Ein neuer Ascomycet auf Hydrozoen im Siidatlantik. // Ber. Dtsch. Bot. Ges. 1970. B. 83. S.505-509.

Kohlmeyer J. Fungi from marine algae. // Bot. Mar. 1973. V. 16. P. 201-215. Kohlmeyer J. Fungi from the Sargasso Sea. // Mar. Biol. 1971. V. 8. P. 344-350.

Kohlmeyer J. Fungi marini novi vel critici. // Nova Hedwigia. 1963. V. 6. P. 297-329. Kohlmeyer J. Halophile Pilze von den Ufern Frankreichs. // Nova Hedwigia. 1962a. V. 4. P. 389420.

Kohlmeyer J. Higher fungi as parasites and symbionts of algae. // Veröff. Inst. Meeresforsch.

Bremerh. 1974. S. 5. S. 339-356. Kohlmeyer J. Intenidai and pincophilous fungi from Tenerife (Canary Islands). // Trans. Br.

Mycol. Soc. 1967. V. 50. P. 137- 147. Kohlmeyer J. Marine fungi deteriorating chitin of hydrozoa and keratin-like annelid tubes. // Mar.

Biol. 1972. V. 12. P. 277-284. Kohlmeyer J. Marine fungi from South America. // Mitt. Inst. Colombo-Ale man Invest. Dent.

"Punta de Beim" 1976. No 8. P. 33-39. Kohlmeyer J. Marine fungi from the tropics. // Mycologia 1968c. V. 60 P. 252-270. Kohlmeyer J. Marine fungi of Hawaii including the new genus Helicascus. II Can. J. Bot. 1969b. V. 47 P. 1469-1487.

Kohlmeyer J. Neue Meerespilze an Mangroven. // Ber. Dtsch. Bot. Ges. 1966b. B. 79. S. 27-37. Kohlmeyer J. Neufunde holzbesiedelnder Meerespilze. //Nova Hedwigia. 1959. V. 1. P. 77-99. Kohlmeyer J. New clues to the possible origin of Ascomycetes. // Bioscience 1975. V. 25. P. 8693.

Kohlmeyer J. New genera and species of higher fungi from the deep sea (1615-5315 m). // Rev.

Mycol. 1977. V. 41. P. 189-206. Kohlmeyer J. On the definition and taxonomy of higher marine fungi. // Veröff. Inst.

Meeresforsch. Bremerh. 1974a. S. 5. S. 263-286. Kohlmeyer J. Parasitic Haloguignardia oceanica (Ascomycetes) and hyperparasitic Sphaceloma cecidil sp. nov. (Deuteromycetes) in drift Sargassum in North Carolina. // J. Elisha Milchell Sei. Soc. 1972a. V. 88. P. 255 - 259.

Kohlmeyer J. Parasitische und epiphytische Pilze auf Meeresalgen. // Nova Hedwigia 1963a. V. 6. P. 127-146.

Kohlmeyer J. Pilzfunde am Meer. //Z. Pilzkd. 1964. B. 30. S. 43-51.

Kohlmeyer J. Répartition de champignons marins (Ascomycetes et Fungi Imperfecti) dans la

Méditerranée. // Rapp. Comm. Int. Explor. Sei. Mer Méditerr. 1963c. V. 17. P. 723-730. Kohlmeyer J. Revision of algicolous Zignoella spp. and description of Pontogeneia gen. nov.

(Ascomycetes). // Bot. Jahrb. 1975a. V. 96. P. 200-211. Kohlmeyer J. Revisions and descriptions of algicolous marine fungi. // Phytopathol. Z. 1968b. V. 63. P. 341 -363.

Kohlmeyer J. Spathulosporales, a new order and possible missing link between Laboulbeniales and

Pyrenomycetes. // Mycologia 1973a. V. 65. P. 614 - 647. Kohlmeyer J. The first Ascomycete from the deep sea. // J. Elisha Mitchell Sei. Soc. 1968a. V. 84. P. 239-241.

Kohlmeyer J. The role of marine fungi in the penetration of calcareous substances. // Am. Zool.

1969c. V. 9. P. 741 -746. Kohlmeyer J. Über den Cellulose-Abbau durch einige phytopathogene Pilze. // Phytopalhol. Z.

1956. B. 27 S. 147- 182. Kohlmeyer J. Über Pleospora gandefroyi Patouillard. Willdenowia 1962. V. 3. P. 315 -324. Kohlmeyer J. Wood-inhabiting marine fungi from the Pacific Northwest and California. // Nova

Hedwigia. 1960. V. 2. P. 293 - 343. Kohlmeyer J. Zwei neue Ascomyceten-Gattungen auf Posidonia-Khizomen. II Nova Hedwigia 1963b. V. 6. P. 5-13.

Kohlmeyer J., Becker G., Kampf W.-D. Versuche zur Kenntnis der Ernährung der Holzbohrassel Limnoria tripunetata und ihre Beziehung zu holzzerstörenden Pilzen. // Z. Angew. Zool. 1959. B. 46. V. 457-489.

Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Bermuda marine fungi. // Trans. Br. Mycol. Soc. 1977. V. 68. P. 207-219.

Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Biology and geographical distribution of Spathulospora species. //

Mycologia 1975. V. 67. 629-637. Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Is Ascophyllum nodosum lichenized? // Bot. Mar. 1972. V. 15. 109112.

Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Marine fungi from tropical America and Africa. // Mycologia. 1971. V. 63. P. 831-861.

Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Marine mycology, The Higher Fungi. N.Y. 1979. 690 p. Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. New marine fungi from mangroves and trees along eroding

shorelines. //Nova Hedwigia. 1965. V. 9. P. 89-104. Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. On the life history of marine Ascomycetes: Halosphaeria

mediosetigera and H. circumvestita. //Nova Hedwigia. 1966. V. 12. P. 189-202. Kohlmeyer J., Spatafora J. W., Volkmann-Kohlmeyer B. Lulworthiales, a new order of marine

Ascomycota. II Mycologia. 2000. V. 92. P. 453-458. Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. A new Lulworthia (Ascomycotina) from corals. //

Mycologia. 1989a. V. 81 P. 289-292. Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Fungi from coral reefs: a commentary. // Mycol. Res.

2003a. V. 107. P. 386-387. Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Fungi on Juncus and Spartina: New marine species of

Anthostomella, with a list of marine fungi known on Spartina. II Mycol. Res. 2002. V. 106. P. 365-374.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Fungi on Juncus roemerianus 14. Three New Coelomycetes, including Floricola, anam.-gen. nov. // Botanica Marina. V. 43. 2000. P. 385-392.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Fungi on Juncus roemerianus: new coelomycetes with notes on Dwayaangam junci. // Mycol. Res. 2001. V. 105. P. 500-505.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Halographis (Opegraphales), a new endolithic lichenoid from coral and snails. // Canadian J. Bot. V. 66. 1988. P. 1138-1141.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Hawaiian marine fungi, including two new genera of Ascomycotina. // Mycol. Res. 1989. V. 92. P. 410-421.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Illustrated Key to the Filamentous Higher Marine Fungi. //Bot. Marina. 1991. V. 34. P. 1-61.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Koralionastetaceae fam. nov. (Ascomycetes) from coral rock. // Mycologia. 1987. V. 79 P. 764-778.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Marine Ascomycetes from algae and animal hosts. // Bot. Mar. 2003. V. 46 P 285-306.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. New species of Koralionastes (.Ascomycotina) from the Caribbean and Australia // Can. J. Bot. 1990. Vol. 68. P. 1554-1559.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Ophiodeira gen.nov. (Halosphaeriales) and a survey of higher marine fungi from Saint Croix (Virgin Islands). // Can. J. Bot. 1988. V. 66. P. 20622067.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Two Ascomycotina from coral reefs in the Caribbean and Australia. // Cryptogamic Botany. 1992. V. 2 P. 367-374.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B., Eriksson O.E. Fungi on Juncus roemerianus. 9. New obligate and facultative marine ascomycotina. // Bot. Marina. 1997 V. 40 P. 291-300.

Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B., Eriksson O.E. Fungi on Juncus roemerianus. 11. More new ascomycetes. // Can. J. Bot. 1998. V. 76. P. 467-477.

Kolliker A. On the frequent occurence of vegetable parasites in the hard tissues of the lower animals. // Q. J. Microasc. Sci. 1860a. V. 8. P. 171-187.

Kölliker A. Über das ausgebreitete Vorkommen von pflanzlichen Parasiten in den Hartgebilden niederer Thiere. //Z. Wiss. Zool. 1860. B. 10. S. 215-232.

Komatsu K., Shigemori H., Mikami Y., Kobayashi J. Sculezonones A and B, two metabolites possessing a phenalenone skeleton from a marine fungus Pénicillium species // J. Nat. prod. 2000. V. 63. P. 408-409.

Koyama K., Ishino M., Takatory K., Sugita T., Kinoshita K., Takahashi K. Phomactin H, a novel diterpene from an unidentified marine-derived fungus // Tetrahedron Lett. 2004. V. 45. P. 6947-6948.

Krohn K., Riaz M. Total Synthesis of (+)- xyloketal D, a secondary metabolite from the mangrove Xylaria sp.//Tetrahedron Lett. 2004. V. 45. P. 293-294.

Kusnick C., Jansen R., Liberra K., Lindequist U. Ascochital, a new metabolite from the marine ascomyccte Kirschsteiniothelia maritime II Pharmazie. 2002. V. 57. P. 10-12.

Lai X.T., Cao L.X., Tan H.M., Fang S., Huang Y.L., Zhou S.N. Fungal communities from methane hydrate-bearing deep-sea marine sediments in South China Sea. // ISME J. 2007 V. l.P. 756-762.

Lane C.E. The teredo. // Sei. Am. 1961. V. 204. P. 132-142.

Lateff A., Konig G., K. Fisch G., Holler U., Jones P., Wright A. New antioxidant hydroquinone derivatieves from the algicolous marine fungus Acremonium sp. Il J. Nat. Prod. 2002. V. 65. P. 1605-1611.

Le Campion-Alsumard T. Etude qualitaiive et quantitative des salissures biologiques de plaques expérimentales immergées en pleine eau. 2. Etude préliminaire de quelques Pyrénomycètes marins récoltés sur des plaques de polyurethane. // Tethys. 1970. V. l.P. 715-718.

Lee B.K.H., Baker G.E. An ecological study of the soil microfungi in a Hawaiian mangrove swamp. // Pac. Sei. 1972. V. 26. P. 1-10.

Lee B.K.H., Baker G.E. Environment and the distribution of microfungi in a Hawaiian mangrove

swamp. // Pac. Sci. 1972a. V. 26. P. 11-19. Lee B.K.H., Baker, G.E. Fungi associated with the roots of red mangrove, Rhitophora mangle. II

Mycologia. 1973. V. 65. P. 894-906. Lee O.H.K., Hyde K.D. Phylloplane fungi in Hong Kong mangroves: evaluation of study methods.

// Mycologia. 2002 V. 94. P. 596-606. Lee S., Li X., Jiang H., Cheng J., Seong S., Choi H., Son B. Terreusinone, a novel UV-A protecting dipyrroloquinone from the marine algicolous fungus Aspergillus terreus II Tetrahedron Lett. 2003. V. 44. P. 7707-7710. Lee Y.S. Qualitative evaluation of lignolytic enzymes in xylariaceous fungi // J. Microbiol.

Biotechnol. 2000. V. 10. № 4. P. 462-469. Lewis D.H. Concepts in fungal nutrition and the origin of biotrophy. // Biol. Rev. Cambridge

Philos. Soc. 1973. V. 48. 261-278. Li X., Choi H., Kang J., Lee C., Son B. New polyoxygenated farnesylcyclohexenones, deacetoxyanuthon A and its hydro derivative from the marine-derived fungus Penicillium sp. // J. Nat. Prod. 2003. V. 66. P. 1499-1500. Li X., Kim Se-K, Kang J., Choi H., Son B. Polyketide and sesquiterpenediol metabolites from a

marine-derived fungus //Bull. Korean Chem. Soc. 2004. V. 25, (5). P. 607-608. Li X., Kondo R., Sakai K. Studies on hypersaline-tolerant white-rot fungi III: biobleaching of unbleached kraft pulp by hypersaline-tolerant manganese peroxidase from a marine white rot isolate, Phlebia sp. MG-60. // J. Wood Sci. 2003a. V.49. P. 42-46. Li X., Kondo R., Sakai K. The marine isolate Phlebia sp. MG-60 under saline conditions.// J.

Wood Sci. 2003b. V.49. P. 355-360. Li X.F., Lee S.M., Choi H.D., Kang J.S., Son B.W. 2003c. Microbial transformation of terreusinone, an ultraviolet-A (UV-A) protecting dipyrroloquinone, by Streptomyces sp. // Chem. Pharm. Bull. V. 51 (12). P. 1458-1459.

Li Y., Kim Se-Kwon, Kang J.S., Choi H. D., Rho J.R., Son B. W. Golmaenone, a New Diketopiperazine Alkaloid from the marine-derived Fungus Aspergillus sp. // Chem. Pharm. Bull. 2004b. V. 52 (3). P. 375-376.

Li. Y., Li X., Kang J., Choi II., Son B. New radical scavenging and ultraviolet-A protecting prenylated dioxopiperazine alkaloid related to isoechinulin A from a marine isolate of the fungus Aspergillus U J. Antibiotics. 2004a. V. 57 (5). P. 337-340.

Lin J., Shao Z., Jiang G., Zhou S., Cai J., Vrijmoed L., Jones E. Penicillazine, a unique quinolone derivative with 4/7-5,6-dihydro-1,2-oxazine ring system from the marine fungus PeniciIlium sp. (strain # 386) from the South China Sea // Tetrahedron. 2000. V. 56. P. 9607-9609.

Lin Y., Wu X., Feng Sh., Jiang G., Luo J., Zhou Sh., Vrijmoed L., Jones E.B., Krohn K., Steigrover K., Zsila F. Five Unique Compounds: Xyloketals from Mangrove Fungus Xylaria sp. from the South China Sea Coast // J. Org. Chem. 2001. V. 66. P. 6252-6256.

Liu C.H, Meng J.C, Zou W.X., Tang H.Q., Tan R.X. Antifungal Metabolite with a New Carbon Sceleton from Keissleriella sp. YS 4108, a marine Filamentous Fungus // Planta Med. 2002. V.68. P. 363-365.

Liu C.H., Meng J., Zou W., Huang L. Tang H., Tan R. 2002. Antfungal metabolite with a new carbon skeleton from Keissleriella sp. YS4108, a marine filamentous fungus //Planta Med. V. 68. P. 363-365.

Liu Z., Jensen P., Fenical W. A cyclic carbonate and related polyketides from a marine-derived fungus of the genus Phoma II Phytochemistry. 2003. V. 64. P. 571-574.

Lockwood J.L. Fungistasis in soils. // Biol. Rev. Cambridge Philos. Soc. 1977. V. 52. P. 1 -43.

MacDonald L., Barbieri L., Bernan V., Janso J., Lassota P., Carter G. 2004. 07H239-A, a new cytotoxic eremophilane sesquiterpene from the marine-derived xylariaceous fungus LL-07H239//J. Nat. Prod. V. 67. P. 1565-1567.

MacDonald M.J., Speedie M.K. Cell-associated and extracellular cellulolytic enzyme activity in

the marine fungus Dedryphiella arenaria // Can. J. Bot. 1982. V. 60. P. 838-844. Malmstrom J., Christophersen C., Barrero A.F., Oltra J.E., Justicia J., Rosales A. Bioactive metabolites from a Marine-Derived Strain of the fungus Emericella variecolor II J. Nat. Prod. 2002. V. 65. P. 364-367. Masuma R., Yamaguchi Y., Noumi M., Omura S., Namikoshi M. Effect of sea water on hyphal growth and antimicrobial metabolite production in marine fungi. // Mycoscience. 2001. V. 42 P. 455—459.

Mattick F. Lichenologische Notizen 1-5. II Ber. Dtsch. Bot Ges. 1953. B. 66. S. 263-276. McDonald L., Barbieri L., Bernan V., Janso J., Lassota P., Carter G. 07H239-A, a new cytotoxic eremophilane sesquiterpene from the marine-derived xylariaceous fungus LL-07H239// J. Nat. Prod. 2004. V. 67. P. 1565-1567. Menzies R.J. Zaneveld J.S., Pratt R.M. Transported turtle grass as a source of organic enrichment

of abyssal sediments off North Carolina. // Deep Sea Res. 1967. V. 14. P. 111-112. Meyers S.P. Marine fungi in Biscayne Bay, Florida. II Bull. Mar. Sci. Gulf Canbb. 1953. V. 2. P. 590-601.

Meyers S.P. Marine fungi in Biscayne Bay, Florida. II. Further studies of occurrence and

distubution. // Bull. Mar. Sci. Gulf Caribb. 1954. V. 3. P. 307-327. Meyers S.P. Observations on the physiological ecology of marine fungi. // Bull. Misait. Mar. Biol.

Inst. Kioto Univ. 1968. V. 12. V. 207-225. Meyers S.P. Thalassiomycetes XI. Further studies of the genus Lindra with a description of L.

marinera, a new species. // Mycologia. 1969. V. 61. 486-495. Meyers S.P., Feder W.A., Tsue K.M. Nutritional relationships among certain filamentous fungi

and a manne nematode // Science. 1963. V. 141. P. 520-522. Meyers S.P., Feder W.A., Tsue K.M. Studies of relationships among nematodes and filamentous

fungi in the marine environment. // Dev. Ind. Microbiol. 1964. V. 5. P. 354-364. Meyers S.P., Hopper B.E. Attraction of the marine nematode, Metoncholaimus sp. , to fungal

substrates//Bull. Mar. Sei. 1966. V. 16. P. 142-150. Meyers S.P., Hopper B.E. Studies on manne fungal nematode associations and plant degradation. //

Helgol. Wiss. Meeresunfers. 1967. B. 15. S. 270-281. Meyers S.P., Kohlmeyer J.J. Varicosporina ramulosa gen. nov. sp. nov., an aquatic Hyphomycete

from marine areas. // Can. J. Bot. 1965. V. 43. P. 915-921. Meyers S.P., Moore R.T. Thalassiomycetes I Principles of delimitation of the manne mycota with description of a new aquatical adapted Deuteromycetes genus. // Mycology. 1959. V. 51. No 7. P. 871-876.

Meyers S.P., Moore R.T. Thalassiomycetes II New genera and species of Deuteromycetes. //

Amer. J. Bot. 1960. V. 47. P. 345-349. Meyers S.P., Nicholson M.L., Rhee J., Miles P., Ahearm D.G. Mycological studies in Barataria Bay, Louisiana, and biodégradation of oyster grass, Spartina alterniflora, Louisiana State Univ. // Coastal Stud. Bull. 1970. V. 5. P. 111-124. Meyers S.P., Orpurt P.A., Simms J., Boral L.L. Thalassiomycetes VII. Observations on fungal infestation of turtle grass, Thalassia lestudinum König. // Bull. Mar. Sei. 1965. V. 15. P. 548-564.

Meyers S.P., Reynolds E.S. A wood incubation method for the study of lignicolous marine fungi. //

Bull. Mar. Sei. Gulf Caribb. 1958. V. 8. P. 342-347. Meyers S.P., Reynolds E.S. Occurrence of lignicoious fungi in northern Atlantic and Pacific

marine localizes // Can. J. Bot. 1960. V. 38 P. 217-226. Meyers S.P., Simms J. Thalassiomycetes IX Comparative studies of reproduction in marine

Ascomycetes. //Bull. Mar. Sei. 1967. V. 17. P. 133-148. Meyers S.P., Simms J. Thalassiomycetes VI Comparative growth studies of Lindra thalassiae and

lignicolous Ascomycete species // Can. J. Bot. 1965. V. 43. P. 379-392. Miyabe K., Tokida J. Black-dots disease of Gloiopeltis furcata Post, et Rupr. caused by a new

ascomycetous fungus. // Bot. Mag. 1948. V. 61. V. 116-118. Mohapatra B.R., Banerjee U.C., Bapuji M. Characterization of fungal amylase from Mucor sp. associated with the marine sponge Spirastrella sp. // J. Biotechnol. 1998. V. 60. № 2. P. 113-117.

Molitoris H.P., Schaumann K. Physiology of marine fungi: a screening programme for growth and enzyme production / In The biology of marine fungi. Cambridge: Cambridge University Press, 1986. P. 34-47.

Moubasher A.H., el-Naghy M.A., Abdel-Fattah H.M., Maghazy S.M. Keratinolytic fungi in Egyptian soils. I. Baited with Hair and wool // Zentralbl. Microbiol. 1992. V. 147, No 8. P. 529-535.

Mounce I., Diehl W.W. A new Ophiobolus on eelgrass. // Can. J. Res. 1934. V. 11. P. 242-246. Moustafa A.F. Osmophilous fungi in the salt marshes of Kuwait // Can. J. Bot. 1975. V. 21, No 10. P. 1573-1580.

Moustafa A.F., Sharkas M.S., Kamel S.M. Thermophilic and thermotolerant fungi in the desert and

salt-marsh soils of Kuwait. //Norw. J. Bot. 1976. V. 23. P. 213-220. Mueller G.M., Schmit J.P. Fungal biodiversity: what do we know? What can we predict? //

Biodivers. Conserv. 2007. V. 16. P. 1-5. Muraoka J.S. "Deep-ocean Biodeterioration of Materials," Part III, Tech. Rep. R 428, U.S. Nav.

Civ. Eng. Lab. Port Hueneme. Calif. 1966. P. I - IV, 1^17. Muraoka J.S. "Deep-ocean Biodeterioration of Materials," Part V, Tech. Rep. R 495, U.S. Nav.

Civ. Eng. Lab., Port Hueneme, California. 1966a. P. I - IV, 1-46. Nakamura H., Ono M., Yamada T., Numata A., Akita H. Determination of the absolute Stereostructure of seko-Macroshelide E Produced by a fungal strain from a Sea Hare //

Chem. Pharm. Bull. 2002. V. 50(2). P. 303-306. Namikoshi M., Akano K., Kobayashi H., Koike Y., Kitazawa A., Rondonuwu A.B., Pratasik S.B. Distribution of marine filamentous fungi associated with marine sponges in coral reefs of Palau and Bunaken Island, Indonesia // Journal of Tokyo University of Fisheries 2002. V. 88. P. 15-20.

Namikoshi M., Kobayashi H., Yoshimoto T., Meguro S. Paecilospirone, a unique spiro[chroman-2,l'(3'H)-isobenzofuran] derivative isolated from tropical marine fungus Paecilomyces sp. // Chem. Lett. 2000. P. 308-309. Namikoshi M., Kobayashi H., Yoshimoto T., Meguro Sh., Akano K. Isolation and characterization of bioactive metabolites from marine-derived filamentous fungi collected from tropical and sub-tropical coral reefs // Chem. Pharm. Bull. 2000. V. 48 (10). P. 1452-1457. Namikoshi M., Kobayashi H., Yoshimoto T., Meguro Sh., Akano K. Isolation and characterization of bioactive metabolites from marine-derived filamentous fungi collected from tropical and sub-tropical coral reefs // Chem. Pharm. Bull. 2000. V. 48 (10). P. 1452-1457. Namikoshi M., Negishi, Nagai H., Dmitrenok A., Kobayashi H. Three new chlorinecontaining antibiotics from a marine-derived fungus Aspergillus ostianus collected in Pohnpei // J. Antibiot. 2003. V. 56 (9). P. 755-761. Newell S.Y. Decomposition of shoots of a salt marsh of grass. // Advences in Microbial Ecology. 1993. V. 13. P. 301-326.

Newell S.Y. Established and potencial impact of eucariotc mycelial decomposers in

marine/terrestrial ecotones. // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1996. V. 200. P. 187-206. Newell S.Y. Mangrove fungi. The succession in the mycoflora of red mangrove (.Rhizophora mangle L ) seedlings. / In Recent Advances in Aquatic Mycology (E.B.G. Jones, ed.). Wiley. New York. 1976. P. 51-91. Newell S.Y. Succession and role of fungi in the degradation of red mangrove seedlings / In

Estuarine Microbial Ecology (L.H. Stevenson, R.R. Colwell, eds.). Univ of South Carolina Press. Columbia. 1973. P. 467^80. Newell S.Y., Blum L.K., Crawford R.E., Dai T., Dionne M. Autumnal Biomass and Potential Productivity of Salt Marsh Fungi from 29° to 43° North Latitude along the United States Atlantic Coast. // Applied and Environmental Microbiology. V. 66. No. 1. 2000. P. 180 — 185.

Newell S.Y., Fell J.W. Preliminary experimentation in the development of natuial food analogues for culture of detritivorous shrimp. // Univ. Miami Sea Grant. Tech. Bull. 1975. V. 30. Pt. IX. P. 1-115.

Newell S.Y., Zakel K. Measuring summer ratterns of ascospore release by saltmarsh fungi. //

Mycoscience V. 41. 2000. P. 211-215. Nicot J. Quelques micromycètes des sables littoraux. // Bulletin Société Mycologique de France. 1958. V. 74. P 221-235.

Nihashi Y., Lim C, Tanaka C., Miyagawa H., Ueno T. 2002. Phytotoxic sesterterpene, 11-epiterpestacin, from bipolaris sorokinianaNSDR-011 //Biosci. Biotechnol. Biochem. V. 66. No. 3. P. 685-688.

Nilsson T. 1974. Formation of soft rot cavities in various cellulose fibres by Humicola alopalla

Meyers and Moore. // Stud. For. Suec. V. 112. P. 1-30. Norris J.N. Observation on the genus Blidingia (Chlorophyta) in California. // J. Phycol. 1971. V. 7. P. 145-149.

Odum W.E., Heald E.J. Trophic analyses of an estuarine mangrove community. // Bull. Mar. Sci. 1972. V. 22 P. 671-738.

Ohta E., Ohta S., Ikegami S. 1997. Ancorinoside A: a novel tetramic acid glycoside from the marine sponge Ancorina sp. which specifically inhibits blastulation of starfish embryos // J. Org. Chem. V. 62. P. 6452-6453.

Ohta E., Ohta S., Ikegami S. 2001. Ancorinoside A Mg salt from the marine sponge Ancorina sp., which specifically inhibits blastulation of starfish embryos //Tetrahedron. V. 57. P. 46994703.

Ohzeki T., Mori K. Synthesis of corollosporine, an antibacterial metabolite of the marine fungus Corollospora maritime //Biosci. Biotechnol. Biochem. 2001. V. 65 (1). P. 172-175.

Ollivier G. Thalassocnicus tregouhovi (nov. gen., nov. sp.) pyrenomycete marin, parasite des Cutleriacees. IIC. R. Hebd. Seances Acad. Sei. 1926. V. 182. P. 1348-1349.

Orpurt P.A., Meyers S.P., Bora L.L., Simms, J. Thalassiomycetes V. A new species of Lindra from turtle grass, Thalassia testudinum Konig. // Bull. Mar. Sci. Gulf Caribb. 1964. V. 14. P. 405-417.

Osterhage C., Kaminsky R., Konig G., Wright A. Ascosalipyrrolidinone A, an antimicrobial alkaloid, from the obligate marine fungus Ascochyta salicorniae II J. Org. Chem. 2000. V. 65. P. 6412-6417.

Osterhage C., Konig G., Holler U., Wright A. Rare sesquiterpenes from the algicolous fungus Drechslera dematioidea II J. Nat. Prod. 2002. V. 65 P. 306-313.

Ovenden S., Sberna G., Tait R., Wildman H., Patel R., Li B., Steffy K., Nguyen N.. Meurer-Grimes B. A diketopiperazine dimmer from a marine-derived isolate of Aspergillus niger H J. Nat. Prod. 2004. V. 67. P. 2093-2095.

Padhye A.A., Pawar V.H., Sukapure R.S., Thirumalachar M.J. Keratinophilic fungi from marine soils of Bombay, India: I. // Hind. Antibiot. Bull. 1967. V. 10. P. 138-141.

Pang K. L. and Mitchell J. I. Molecular approaches for assessing fungal diversity in marine substrata. // Botanica Marina. 2005. V. 48. P. 332-347.

Pavar V.H., Thirumalachar M.J. Studies on halophilic soil fungi from Bombay. // Nowa Hidwigia. 1966. V. 12 P. 497-508.