Аэробное окисление метана в покрывающей почве полигона твердых бытовых отходов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.07, кандидат биологических наук Каллистова, Анна Юрьевна

• Каллистова, Анна Юрьевна
• кандидат биологических наук
• 2007

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Каллистова, Анна Юрьевна

ВВЕДЕНИЕ

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ И

Глава 1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ПОЛИГОНОВ ТБО

1.1. Продукция, состав и утилизация ТБО в России

1.2. Характеристика микробных процессов на полигонах ТБО

1.3. Эмиссия метана с поверхности полигонов ТБО

Глава 2. МЕТАНОТРОФНЫЕ БАКТЕРИИ

2.1. Классификация и общая характеристика метанотрофных бактерий

2.2. Биохимические особенности окисления метана метанотрофными бактериями

2.3. Экология метанотрофных бактерий

Глава 3. МЕТАНОКИСЛЯЮЩАЯ АКТИВНОСТЬ ПОКРЫВАЮЩЕЙ ПОЧВЫ ПОЛИГОНОВ ТБО

3.1. Измерение метанокисляющей активности покрывающей почвы

3.1.1. Измерение окисления метана in situ

3.1.2. Измерение окисления метана ex situ

3.2. Влияние факторов окружающей среды на метанокисляющую активность покрывающей почвы

3.2.1. Температура

3.2.2. Влажность

3.2.3. Концентрация субстратов метанотрофного роста

3.2.4. Соединения азота

3.2.5. Летучие органические соединения

3.2.6. Состав покрывающей почвы

3.2.7. Кислотная реакция среды (рН)

3.2.8. Растительный покров

3.3. Способы снижения эмиссии метана с поверхности полигонов ТБО

Глава 4. ЧИСЛЕННОСТЬ И СОСТАВ МЕТАНОТРОФНОЙ ПОПУЛЯЦИИ ПОКРЫВАЮЩЕЙ ПОЧВЫ ПОЛИГОНОВ ТБО

4.1. Оценка численности и выделение метанотрофов с помощью методов культивирования

4.2. Исследование метанотрофной популяции с помощью анализа состава клеточных жирных кислот

4.3. Оценка численности и видового состава метанотрофной популяции методом непрямой иммунофлуоресценции

4.4. Количественная идентификация метанотрофов методом флуоресцентной in situ гибридизации

4.5. Исследование биоразнообразия метанотрофов методами, основанными на использовании ПЦР

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

Глава 5. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

5.1. Объект исследования

5.2. Определение эмиссии метана

5.3. Определение состава порового газа по разрезу покрывающей почвы

5.4. Определение физических характеристик покрывающей почвы

5.5. Отбор образцов покрывающей почвы

5.6. Метод газоадсорбционной хроматографии

5.7. Определение метанокисляющей активности покрывающей почвы

5.8. Определение численности метанотрофных бактерий

5.8.1. Метод предельных разведений

5.8.2. Метод флуоресцентной in situ гибридизации (CARD-FISH)

5.9. Выделение накопительных культур метанотрофных бактерий

5.10. Определение морфологии клеток микроорганизмов

5.11. Идентификация метанотрофных бактерий

5.11.1. Метод непрямой иммунофлуоресценции

5.11.2. Методы, основанные на использовании ПЦР

5.11.2.1. ДНК-экстракция

5.11.2.2. ПЦР-амплификация

5.11.2.3. Разделение ПЦР-продуктов методом DGGE

5.11.2.4. Секвенирование ДНК-фрагментов

5.12. Разработка способа снижения эмиссии метана при помощи интродукции консорциума метанотрофных бактерий

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Глава 6. ЭМИССИЯ МЕТАНА С ПОВЕРХНОСТИ ПОЛИГОНА «ХМЕТЬЕВО»

Глава 7. АЭРОБНОЕ ОКИСЛЕНИЕ МЕТАНА В ПОКРЫВАЮЩЕЙ ПОЧВЕ

ПОЛИГОНА «ХМЕТЬЕВО»

7.1. Влияние факторов окружающей среды на метанокисляющую активность покрывающей почвы

7.2. Метанокисляющая активность покрывающей почвы

7.3. Сезонные изменения метанокисляющей активности покрывающей почвы

7.4. Зависимость метанокисляющей активности покрывающей почвы от температуры инкубации

Глава 8. ЧИСЛЕННОСТЬ МЕТАНОТРОФОВ В ПОКРЫВАЮЩЕЙ ПОЧВЕ ПОЛИГОНА «ХМЕТЬЕВО»

8.1. Численность культивируемых метанотрофов

8.2. Сезонная динамика численности культивируемых метанотрофов

8.3. Сезонная динамика численности метанотрофных бактерий, активных в покрывающей почве in situ

Глава 9. БИОРАЗНООБРАЗИЕ КУЛЬТИВИРУЕМЫХ МЕТАНОТРОФОВ В ПОКРЫВАЮЩЕЙ ПОЧВЕ ПОЛИГОНА «ХМЕТЬЕВО»

9.1. Идентификация метанотрофных бактерий методом непрямой иммунофлуоресценции

9.2. Идентификация метанотрофных бактерий молекулярными методами

9.2.1. ПЦР-амплификация образцов ДНК с метанотрофными и универсальными бактериальными праймерами

9.2.2. Разделение ДНК-фрагментов методом DGGE

9.2.3. Видовой состав бактериальной популяции в накопительных культурах

9.2.4. Молекулярный анализ культуры cs20

9.2.5. Молекулярный анализ образцов покрывающей почвы

Глава 10. СНИЖЕНИЕ ЭМИССИИ МЕТАНА С ПОВЕРХНОСТИ

ПОЛИГОНА ТБО ПРИ ПОМОЩИ ИНТРОДУКЦИИ КОНСОРЦИУМА

МЕТАНОТРОФНЫХ БАКТЕРИЙ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Аэробное окисление метана в покрывающей почве полигона твердых бытовых отходов»

Актуальность проблемы

Интерес к изучению микробиологии цикла метана обусловлен тем, что метан является конечным продуктом микробного разложения органического вещества в анаэробных условиях и одним из наиболее опасных парниковых газов. Содержание метана в атмосфере ежегодно возрастает в среднем на 1% за счет дисбаланса между его продукцией и окислением (Заварзин и Кларк, 1987; Blake and Rowland, 1988; Galchenko et al., 1989; IPCC, 2001). Большой вклад в изучение микробных процессов цикла метана принадлежит институту микробиологии им. С.Н. Виноградского, где проводятся комплексные исследования водных (Гальченко, 1995, 2006; Иванов и др., 2001; Ivanov and Lein, 2003, 2006; Пименов, 2004, Пименов и Гальченко, 2006), наземных (Заварзин, 1995; Заварзин и Васильева, 1999, Дедыш, 2004; Коцюрбенко, 2004; Кравченко и Быкова, 2004) и антропогенных (Zavarzin and Nozhevnikova, 1993; Ножевникова, 1994, 1995; Иванов, 2004) экосистем. Среди антропогенных местообитаний важным источником атмосферного метана являются полигоны захоронения твердых бытовых отходов (ТБО), вклад которых в глобальную эмиссию метана составляет 6-12% (IPCC, 2001). В России проблема утилизации ТБО приобрела угрожающие масштабы. В отличие от развитых стран запада, в нашей стране не используется раздельный сбор ТБО, лишь незначительная часть отходов подвергается предварительной механической обработке (прессованию). Не производится сортировка отходов и реутилизация бумаги, металлов, стекла и пластиков, а также отдельная обработка органической фракции отходов с получением компостов. Основным способом утилизации ТБО в России является их захоронение на специальных полигонах, общая площадь которых превышает 40 тыс. га. и ежегодно увеличивается на 2.5-4%. Однако большинство российских полигонов ТБО не соответствует современным нормам организации санитарных полигонов и оказывает негативное воздействие на окружающую среду и здоровье населения (Сборник докладов 4-го Международного конгресса по управлению отходами «ВейсТек», 2005). Полигоны ТБО загрязняют прилежащие почвы и грунты, грунтовые воды и атмосферу тяжелыми металлами и другими токсичными соединениями, включая газообразные и летучие вещества. Помимо отрицательного влияния локального характера, полигоны ТБО являются источником парниковых газов, главным образом СН4 и СО2. При отсутствии систем сбора биогаза, для уменьшения эмиссии метана с поверхности полигонов ТБО чрезвычайно важно его микробное окисление в аэробном покрывающем отходы слое антропогенной почвы, где развивается плотная популяция метанотрофных бактерий (Whalen et al., 1990; Nozhevnikova et al., 1993a, b; Nozhevnikova and Lebedev, 1995; Bogner et al., 1997a).

Метанотрофные бактерии (метанотрофы) представляют собой уникальную группу микроорганизмов, структурно и функционально специализированных на использовании метана в качестве единственного источника углерода и энергии. Метанотрофные бактерии выделены из различных почв, водной толщи озер и морей, болот, горячих источников, антарктических местообитаний, ризосферы растений и органов морских беспозвоночных животных (Hanson and Hanson, 1996; Bowman, 2000; Гальченко, 2001; Гальченко и Пименов, 2006). Высокая активность метанотрофной популяции обнаружена в покрывающей почве полигонов ТБО (Ножевникова и др., 1993; Jones and Nedwell, 1993; Nozhevnikova et al., 2003a). В отличие от анаэробного микробного сообщества, функционирующего в толще отходов, где температура постоянна, жизнедеятельность метанотрофных бактерий покрывающей почвы существенно зависит от климатических условий. Исследования активности, плотности и состава метанотрофной популяции в холодные и теплые сезоны года особенно важны для полигонов ТБО, расположенных в умеренной климатической зоне России, для которой характерны выраженные сезонные колебания температуры и длительная холодная зима. Изучение влияния факторов окружающей среды на плотность и состав метанотрофной популяции и создание условий, необходимых для максимальной активности метанотрофных бактерий, важно для разработки способов снижения эмиссии метана с поверхности российских полигонов ТБО.

Цель и задачи исследования

Целью работы являлось изучение аэробного окисления метана в покрывающей почве полигона ТБО.

Конкретные задачи исследования включали:

1. Изучение сезонной динамики эмиссии и аэробного окисления метана, активности и численности метанотрофных бактерий в покрывающей почве полигона ТБО.

2. Выделение накопительных культур метанотрофных бактерий из образцов покрывающей почвы при разных температурах и концентрациях метана.

3. Изучение биоразнообразия культивируемых метанотрофов в покрывающей почве полигона ТБО.

4. Разработку способа снижения эмиссии метана с поверхности полигона ТБО при помощи интродукции в покрывающую почву консорциума метанотрофных бактерий.

Научная новизна и практическая значимость работы

Впервые проведено комплексное сезонное исследование эмиссии и аэробного окисления метана, численности и состава метанотрофной популяции покрывающей почвы полигона ТБО. Зафиксирована крайняя неоднородность потоков метана с поверхности полигона. Показана зависимость эмиссии метана от возраста участка полигона и сезона года. Выявлена обратная зависимость между сезонными изменениями эмиссии метана и метанокисляющей активностью покрывающей почвы. Впервые использован метод CARD-FISH для анализа численности метанотрофных бактерий, активных в покрывающей почве in situ. Применение данного метода позволило выявить высокую численность метанотрофов, которую не удавалось обнаружить ранее с помощью традиционных методов культивирования. Показан значительный вклад метанотрофов в общую численность бактериальной популяции покрывающей почвы, что может свидетельствовать о важной роли этих бактерий не только в окислении метана, но и в почвообразовании. Сочетание микробиологических и молекулярно-биологических методов позволило исследовать видовой состав метанотрофной популяции покрывающей почвы. Впервые в покрывающей почве полигона ТБО, наряду с известными мезофильными метанотрофами, идентифицированы метанотрофы, близкородственные ацидофильным видам, выделенным из кислых сфагновых болот, психротолерантным видам, выделенным из арктических болотных почв, и термотолерантному виду, выделенному из активного ила очистных сооружений. Эти данные расширяют представление об экологии и распространении метанотрофных бактерий в природе. Результаты работы могут быть использованы при выборе и создании технологий рекультивации полигонов ТБО. Получен патент на способ снижения эмиссии метана с поверхности полигона ТБО путем интродукции в покрывающую почву консорциума метанотрофных бактерий, активных при пониженных температурах.

Апробация работы

Материалы диссертации были представлены на конференциях: "Workshop on Sustainable Landfill Management" (2003); 4-м Международном конгрессе по управлению отходами «ВейстТэк» (2005); "International Conference on Arctic Microbiology" (2004); Всероссийском симпозиуме «Биотехнология Микробов» (2004); 7th FAO/SREN-WORKSHOP "The future of biogas for sustainable energy production in Europe" (2005); 1-ой Всероссийской и И-ой Международной молодежных школах-конференциях «Актуальные аспекты современной микробиологии» (2005, 2006).

Место проведения работы

Работа выполнена в лаборатории микробиологии антропогенных мест обитания Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. Молекулярно-биологические исследования проведены на кафедрах науки об окружающей среде и молекулярной биологии факультета биологии и науки об окружающей среде Университета г. Ювяскюля (Финляндия) и на кафедре прикладной химии и микробиологии факультета микробиологии Университета г. Хельсинки (Финляндия).

Благодарности

Автор выражает глубокую признательность своему научному руководителю д.б.н. А.Н. Ножевниковой за общее научное руководство, предоставленную возможность работы за рубежом, помощь в обсуждении результатов и редактирование диссертации и благодарит сотрудников ИНМИ РАН к.б.н. М.В. Кевбрину и В.К. Некрасову за иммунофлуоресцентный анализ накопительных культур метанотрофов и помощь в лабораторных исследованиях, М.В. Глаголева, Н.А. Шнырева, к.б.н. М.В. Чистотина и к.б.н. А.С. Саввичева за помощь в полевых работах, сотрудников кабинета газохроматографического анализа ИНМИ РАН, сотрудника кафедры физики и мелиорации почв факультета почвоведения МГУ д.б.н. А.В. Смагина, директора полигона ТБО «Хметьево» В.Э. Эвальда и зарубежных партнеров: д-ра, проф. Ю. Ринтала, д-ра, проф. М. Куломаа, д-ра Г. Юргенса и J1. Монтонен. Автор выражает благодарность всем сотрудникам лаборатории антропогенных мест обитания за внимание, всестороннюю поддержку и участие в этой работе.

Работа выполнена при финансовой поддержке грантов INCO-Copernicus (ICA2-CT-2001-10001 А/144168), правительства г. Москвы (договор № 12-Э/04), РАН (проект №3 безвалютного обмена между РАН и АН Финляндии) и АН Финляндии (№214719).

Объем и структура диссертации

Материалы диссертации изложены на 140 страницах машинописного текста и включают 31 рисунок и 18 таблиц. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, содержащей методы, результаты исследования и обсуждения, заключения, выводов и списка литературы, состоящего из 202 наименований.

Заключение диссертации по теме «Микробиология», Каллистова, Анна Юрьевна

выводы

1. Общим свойством всех исследованных участков полигона ТБО являлась гетерогенность потоков метана, которые варьировали от -3.45 ± 1.35 до 9057.5 ± 116 мг С м"2 час'1. Средняя эмиссия метана зависела от возраста участка полигона и была максимальной на участке, закрытом 2.5 года назад, а минимальной - более 15 лет.

2. В результате впервые проведенного на полигоне ТБО детального исследования эмиссии и аэробного окисления метана выявлена обратная зависимость между сезонными изменениями потоков метана и метанокисляющей активностью покрывающей почвы. В теплый сезон года метанокисляющая активность возрастала, а эмиссия метана снижалась.

3. Методом CARD-FISH, ранее не применявшимся для исследования метанотрофных бактерий, выявлена высокая численность метанотрофов, активных в покрывающей почве in situ, которая значительно превышала численность метанотрофов, определенную методом предельных разведений. Численность метанотрофных бактерий была максимальной в теплый сезон года и положительно коррелировала с метанокисляющей активностью покрывающей почвы.

4. Подтверждена зависимость метанокисляющей активности и численности метанотрофных бактерий от физических свойств покрывающей почвы (температуры, состава, плотности, водопроницаемости, влажности) и концентрации субстратов метанотрофного роста (СН4 и Ог), что указывает на необходимость поддержания в покрывающей почве условий, благоприятных для метанотрофных бактерий.

5. С помощью микробиологических и молекулярно-биологических методов выявлено большое видовое разнообразие метанотрофов в покрывающей почве полигона ТБО. Обнаружены известные представители мезофильных, психротолерантных, термотолерантных и ацидофильных метанотрофов, что указывает на способность метанотрофной популяции покрывающей почвы сохранять активность в изменяющихся условиях окружающей среды. В теплый сезон года преобладали мезофильные метанотрофы, а в холодный - психроактивные.

6. Разработан способ снижения эмиссии метана с поверхности полигона ТБО, основанный на интродукции в покрывающую почву консорциума метанотрофных бактерий, активных при пониженной температуре.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

С помощью почвенных, микробиологических и молекулярно-биологических методов проведено комплексное сезонное исследование эмиссии и аэробного окисления метана, численности и состава метанотрофной популяции на полигоне ТБО. Зафиксирована крайняя неоднородность потоков метана с поверхности полигона, которая обусловлена неоднородностью захороненных отходов, их количеством (мощность слоя), качеством складирования (плотность слоя), содержанием разлагаемого органического вещества, интенсивностью метаногенеза в анаэробной зоне полигона, качеством пересыпающего грунта, наличием в свалочном теле разломов и трещин, по которым устремляется свалочный биогаз и интенсивностью аэробного окисления метана. Показана зависимость эмиссии метана от возраста участка полигона и сезона года. Потоки метана были тем выше, чем моложе участок полигона и чем слабее окисляющая активность метанотрофной популяции покрывающей почвы. Максимальная эмиссия метана наблюдалась ранней весной, после таяния снега, летом эмиссия снижалась и увеличивалась поздней осенью. Напротив, метанокисляющая активность покрывающей почвы и численность культивируемых метанотрофов были максимальными в теплый сезон, что доказывает связь между снижением эмиссии метана летом и его более эффективным аэробным окислением. Метанокисляющая активность и численность метанотрофных бактерий зависели от физических свойств покрывающей почвы (температуры, состава, плотности, водопроницаемости и влажности), а также от концентрации субстратов метанотрофного роста (СН4 и Ог). Использование на полигонах ТБО в качестве покрывающей почвы грунта, преимущественно состоящего из песка, не вполне рационально, поскольку в засушливый летний сезон его высокая водопроницаемость приводит к сухости почвы, подавлению метанокисления и к увеличению эмиссии метана с поверхности полигона. Глинистый грунт, обладающий противоположными свойствами, неблагоприятен для метанокисления в сезон дождей и во время таяния снега.

В настоящей работе впервые был использован метод CARD-FISH для анализа численности метанотрофной популяции, активной в покрывающей почве in situ. Применение данного метода позволило выявить высокую численность метанотрофов, которую не удавалось обнаружить ранее с помощью традиционных методов культивирования. Показан значительный вклад метанотрофов в общую численность бактериальной популяции покрывающей почвы, что может свидетельствовать о важной роли этих бактерий как в окислении метана, так и в почвообразовании. Численность метанотрофов, активных в покрывающей почве in situ, коррелировала с данными полевых измерений потоков метана. Достаточно высокая численность метанотрофов, обнаруженная в холодные сезоны года, указывала на присутствие в покрывающей почве психротолерантных метанотрофов. Высокое соотношение между представителями метанотрофов I и II типов свидетельствовало о преобладании метанотрофов I типа на участках с низкой концентрацией метана по разрезу покрывающей почвы.

Сочетание микробиологических и молекулярно-биологических методов позволило исследовать видовой состав культивируемых метанотрофов покрывающей почвы. Накопительные культуры, выделенные при разных температурах из почвы, отобранной в разные сезоны года, отличались по составу метанотрофной популяции. Методом непрямой иммунофлуоресценции показано, что в накопительных культурах, выделенных из почвы, отобранной ранней весной, количество идентифицированных мезофильных метанотрофов составляло менее 10% от общего числа микроорганизмов. Летом, напротив, метанотрофы мезофильных видов доминировали в метанотрофной популяции. С помощью молекулярных методов в накопительных культурах, выделенных при Ю°С, идентифицированы метанотрофы, близкородственные известным психротолерантным видам, при 20°С - мезофильным, и при 40°С - термотолерантным. Впервые в покрывающей почве полигона ТБО идентифицированы метанотрофы, близкородственные ацидофильным видам, выделенным ранее из кислых сфагновых болот. Обнаруженное в покрывающей почве полигона ТБО большое видовое разнообразие метанотрофных бактерий свидетельствовало о способности метанотрофной популяции покрывающей почвы сохранять активность в изменяющихся условиях окружающей среды таких, как температура (0.7-23°С) и концентрации СН4 (0.1-60%).

Разработан способ снижения эмиссии метана с поверхности полигона ТБО при помощи интродукции консорциума метанотрофных бактерий, активных при пониженных температурах. Результаты работы могут быть использованы при выборе и создании технологий рекультивации полигонов ТБО.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Каллистова, Анна Юрьевна, 2007 год

1. Безрукова Л.В., Николенко Ю.И., Нестеров А.И., Гальченко В.Ф., Иванов М.В. Сравнительный серологический анализ метанотрофных бактерий // Микробиология. 1983. Т. 52(5). С. 800-805.

2. Берестовская Ю.Ю., Васильева Л.В., Честных О.В., Заварзин Г.А. Метанотрофы психрофильного микробного сообщества заполярной тундры России // Микробиология. 2002. Т. 71(4). С. 538-544.

3. Бутусов М., Герман Л., Прайнжорн Дж. Безотходная переработка ТБО // Сб. докл. 4-го Межд. конгр. по управлению отходами «ВейстТэк-2005». Москва, 31 мая -3 июня 2005 г. С. 99-100.

4. Вадюнина А.Ф. и Корчагина З.А. Методы исследования физических свойств почв и грунтов // М.: Высшая школа. 1973. 399 С.

5. Васильева Л.В., Берестовская Ю.Ю., Заварзин Г.А. Психрофильные ацидофильные метанотрофы из сфагнеты зоны вечной мерзлоты // Доклады Академии наук. 1999. Т. 368(1). С. 125-128.

6. Гальченко В.Ф., Шишкина В.Н., Сузина Н.Е., Троценко Ю.А. Выделение и свойства новых штаммов облигатных метанотрофов // Микробиология. 1977. Т. XLVI(5). С. 890897.

7. Гальченко В.Ф., Абрамочкина Ф.Н., Безрукова Л.В., Соколова Е.Н., Иванов М.В. Видовой состав аэробной метанотрофной микрофлоры Черного моря // Микробиология. 1988. Т. 57(2). С. 305-311.

8. Гальченко В.Ф. Бактериальный цикл метана в морских экосистемах // Природа. 1995. № 6. С. 35-48.

9. Гальченко В.Ф. Метанотрофные бактерии // М.: ГЕОС. 2001. 500 С.

10. Гальченко В.Ф. Биогеохимия окисления метана в Черном море // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2006. Вып. XIII. С. 45-90.

11. Гальченко В.Ф. и Пименов Н.В. Метанотрофные симбионты морских животных // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2006. Вып. XIII. С. 225-262.

12. Ганжара Н.Ф., Борисов Б.А., Байбеков Р.Ф. Практикум по почвоведению // Под ред. Н.Ф. Ганжары / М.: Агроконсалт. 2002. 280 С.

13. Глаголев М.В. Математическое моделирование метанокисления в почве // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2006. Вып. XIII. С. 315-341.

14. Горбатюк О.В., Минько О.И., Лифшиц А.Б. Ферментеры геологического масштаба // Природа. 1989. № 9. С. 71-79.

15. Дедыш С.Н. Метанотрофные бактерии кислых сфагновых болот // Микробиология. 2002. Т. 71(6). С. 741-754.

16. Дедыш С.Н. Ацидофильные метанотрофные бактерии // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2004. Вып. XII. С. 109-125.

17. Дедыш С.Н. Ацидофильные метанотрофные бактерии // Дисс. на соискание ученой степени д. б. н. Москва, 2005.

18. Дедыш С.Н. Исследование экологии метанотрофных бактерий с использованием молекулярных подходов // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2006. Вып. XIII. С. 192-224.

19. Заварзин Г.А. Трофические связи в метаногенном сообществе // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1986. №3. с. 341-360.

20. Заварзин Г.А. Биогаз и малая энергетика // Природа. 1987. № 1. С. 66-79.

21. Заварзин Г.А. и Кларк У. Биосфера и климат глазами биологов // Природа. 1987. № 6. С. 65-77.

22. Заварзин Г.А. Психрофильный цикл Зенгена // Ж. Эколог. Химии. 1995. Т. 4(1). С. 312.

23. Заварзин Г.А. и Васильева Л.В. Цикл метана на территории России // В кн.: Круговорот углерода на территории России / Под ред. Г.А. Заварзина / М.: Комплекс перспективного развития города Правительства Москвы. 1999. С. 202-230.

24. Захаров С.А. Экономические и налоговые механизмы управления отходами производства и потребления в Московской области // Сб. докл. 4-го Межд. конгр. по управлению отходами «ВейстТэк-2005». Москва, 31 мая -3 июня 2005 г. С. 53-55.13 12

25. Зякун A.M. Использование С/ С для характеристики процесса бактериального метанокисления // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2006. Вып. XIII. С. 285-314.

26. Иванов М.В., Русанов И.И., Пименов Н.В., Байрамов И.Т., Юсупов С.К., Саввичев А.С., Леин А.Ю., Сапожников В.В. Микробные процессы цикла углерода и серы в озере Могильном //Микробиология. 2001. Т. 70(5). С. 675-686.

27. Иванов М.В. Микробиологический метод борьбы с метаном в угольных шахтах // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2004. Вып. XII. С. 160-171.

28. Иванова Е.Г., Доронина Н.В., Троценко Ю.А. Аэробные метанотрофы как симбионты растений // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2006. Вып. XIII. С. 263-284.

29. Кевбрина М.В., Охапкина А.А., Ахлынин Д.С., Кравченко И.К., Ножевникова А.Н., Гальченко В.Ф. Рост мезофильных метанотрофов при низких температурах // Микробиология. 2001. Т. 70(4). С. 444-451.

30. Кондратенко Г.П., Николенко Ю.И., Безрукова JI.B., Нестеров А.И., Гальченко В.Ф. Идентификация метанотрофных бактерий методом иммунофлуоресценции // Микробиология. 1981. Т. 50(2). С. 320-325.

31. Корчагина З.А. Учебное руководство к полевой практике по физике почв // М.: МГУ. 1983.84 С.

32. Коцюрбенко О.Р. Метаногенные микробные сообщества холодных наземных экосистем // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2004. Вып. XII. С. 213-236.

33. Кравченко И.К. и Быкова С.А. Окисление атмосферного метана микроорганизмами аэробных почв // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2004. Вып. XII. С. 235-248.

34. Кравченко И.К., Семенов В.М., Кузнецова Т.В., Дулов JI.E., Семенова Н.А., Гальченко В.Ф., Боукс П., Ван Климпут О. Окисление метана и превращение азота в серой лесной почве // Почвоведение. 2004. № 1. С. 60-67.

35. Лебедев B.C., Горбатюк О.В., Иванов Д.В., Ножевникова А.Н., Некрасова В.К. Биогеохимические процессы образования и окисления биогаза на свалках бытовых отходов // Ж. Эколог. Химии. 1993. № 4. С. 323-334.

36. Лебедев B.C., Каменщиков А.Ф., Глаголев М.В., Иванов Д.В., Каменщикова А.Ю. Математическое моделирование состава биогаза в процессе окисления на объектах захоронения бытовых отходов // Геоинформатика. 1996. № 1(4). С. 23-26.

37. Лебедев B.C., Балакин В.А., Иванов Д.В., Соловьев А.В., Телешева С.Ю. Применение изотопно-химических методов при геоэкологических исследованиях захороненных органических отходов // Разведка и охрана недр. 2005. № 4. С. 76-79.

38. Лебедев В.Н. Безотходная экологически чистая технология сортировки и переработки твердых бытовых отходов (ТБО) // Сб. докл. 4-го Межд. конгр. по управлению отходами «ВейстТэк-2005». Москва, 31 мая -3 июня 2005 г. С. 101-102.

39. Малашенко Ю.Р., Романовская В.А., Богаченко В.Н. Швед А.Д. Термофильные и термотолерантные бактерии, ассимилирующие метан // Микробиология. 1975. Т. XLIV(5). С.855-862.

40. Мирный А.Н. Прогнозы изменения состава ТБО крупных городов России // Сб. докл. 4-го Межд. конгр. по управлению отходами «ВейстТэк-2005». Москва, 31 мая -3 июня 2005 г. С. 124-125.

41. Никогосов Х.Н., Игнатьева О.М., Левина В.В., Корнеева А.А. Перспектива использования вторичных материальных ресурсов // Сб. докл. 4-го Межд. конгр. по управлению отходами «ВейстТэк-2005». Москва, 31 мая -3 июня 2005 г. С. 120-122.

42. Ножевникова А.Н., Елютина Н.Ю., Некрасова В.К., Труфманова Е.А. Образование метана микрофлорой грунта полигона твердых бытовых отходов // Микробиология. 1989. Т. 58(5). С. 859-863.

43. Ножевникова А.Н., Лебедев B.C., Заварзин Г.А., Иванов Д.В., Некрасова В.К., Лифшиц А.Б. Образование, окисление и эмиссия биогаза на объектах захоронения бытовых отходов // Ж. Общ. Биологии. 1993. Т. 54(2). С. 167-182.

44. Ножевникова А.Н. Метаногенные микробные сообщества в охране окружающей среды // Дисс. на соискание ученой степени д. б. н. Москва, 1994.

45. Ножевникова А.Н. Мусорные залежи «метановые бомбы» планеты // Природа. 1995. № 6. С. 25-34.

46. Ножевникова А. Н., Некрасова В. К., Лебедев В. С. Образование и окисление метана микробной популяцией осадков иловых чеков при низких температурах // Микробиология. 1999. Т. 68(2). С. 267-272.

47. Ножевникова А.Н., Каллистова А.Ю., Кевбрина М.В. Эмиссия и окисление метана на полигоне захоронения твердых бытовых отходов: сезонные измерения // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2006. Вып. XIII. С. 172-191.

48. Омельченко М.В., Савельева Н.Д., Васильева Л.В., Заварзин Г.А. Психрофильное метанотрофное сообщество из почвы тундры // Микробиология. 1992. Т. 61(6). С. 10721077.

49. Омельченко М.В., Васильева Л.В., Хмеленина В.Н., Троценко Ю.А. Пути первичного и промежуточного метаболизма у психрофильного метанотрофа // Микробиология. 1993. Т. 62(5). С. 849-854.

50. Омельченко М.В. Психрофильный метанотроф и его спутники // Дисс. на соискание ученой степени к. б. н. Москва, 1994.

51. Омельченко М.В., Васильева JI.B., Заварзин Г.А., Савельева Н.Д., Лысенко A.M., Митюшина JI.JI., Хмеленина В.Н., Троценко Ю.А. Новый психрофильный метанотроф рода Methylobacter И Микробиология. 1996. Т. 65(3). С. 384-389.

52. Орлов Д.С., Минько О.И., Каспаров С.В., Амосова Я.М., Глаголев М.В. Методы изучения газовой функции почв //В кн.: Современные физические и химические методы исследования почв / Под ред. А.Д. Воронина и Д.С. Орлова. М.: МГУ. 1987. С. 118-156.

53. Пименов Н.В. Микробные процессы в зонах разгрузки газосодержащих флюидов на дне океана // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2004. Вып. XII. С. 337-360.

54. Пименов Н.В. и Гальченко В.Ф. Метанокисление в районах черноморских метановых сипов // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2006. Вып. XIII. С. 91-112.

55. Руководство к практическим занятиям по микробиологии: Учеб. пособие. // Под ред. Н. С. Егорова. 3-е изд. / М.: МГУ. 1995. 224 С.

56. Смагин А.В., Глаголев М.В., Суворов Г.Г., Шнырев Н.А. Методы исследования потоков газов и состава почвенного воздуха в полевых условиях с использованием портативного газоанализатора ПГА-7 // Вестник МГУ. Сер. 17 (Почвоведение). 2003. № 3. С. 29-36.

57. Смагин А.В. и Глаголев М.В. Современные полевые методы изучения газовой функции болотных почв // В сб. мат. 3-й Научной Школы «Болота и биосфера». Томск: ЦНТИ. 2004. С 53-63.

58. Смагин А.В. Газовая фаза почв // М.: МГУ. 2005. 301 С.

59. Соломин И.А. и Гасьмаева О.В. Погребенные несанкционированные свалки Москвы и методы их обезвреживания // Сб. докл. 4-го Межд. конгр. по управлению отходами «ВейстТэк-2005». Москва, 31 мая -3 июня 2005 г. С. 122-123.

60. Троценко Ю.А. и Хмеленина В.Н. Особенности биологии и осмоадаптации галоалкалофильных метанотрофов //Микробиология. 2002. Т. 71(2). С. 149-159.

61. Турова Т.П., Омельченко М.В. Фегединг К.В., Васильева JI.B. Филогенетическое положение Methylobacter psychrophilus sp. nov. // Микробиология. 1999. Т. 68(4). С. 568

62. Харитонова Н.В. и Корнилаев Е.М. Оценка воздействия полигонов захоронения ТБО на подземные воды // Сб. докл. 4-го Межд. конгр. по управлению отходами «ВейстТэк-2005». Москва, 31 мая -3 июня 2005 г. С. 255-256.

63. Хмеленина В.Н., Калюжная М.Г., Троценко Ю.А. Физиолого-биохимические особенности галоалкалотолерантного метанотрофа // Микробиология. 1997. Т. 66(4). С. 437-443.

64. Хмеленина В.Н. и Троценко Ю.А. Особенности метаболизма облигатных метанотрофов // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2006. Вып. XIII. С. 24-44.

65. Хмеленина В.Н., Ешинимаев Б.Ц., Решетников А.С., Сузина Н.Е., Троценко Ю.А. Аэробные метанотрофы экстремальных экосистем // Труды Института микробиологии им. С.Н. Виноградского РАН. М.: Наука. 2006. Вып. XIII. С. 147-171.

66. Цинберг М.Б. и Ивановская И.Б. Образование метана на свалке твердых бытовых отходов г. Оренбурга // Чистый город. Оренбург.: ЭкоБиос. 1998. № 4. С. 33-36.

67. Adamsen A.P.S. and King G.M. Methane consumption in temperate and subarctic forest soils: rates, vertical zonation, and responses to water and nitrogen // Appl. Environ. Microbiol. 1993. V. 59. P. 485-490.

68. Alexander M. Most probable number method for microbial populations // In: Methods of soil analysis. Agronomy monograph / Page A.L., Miller R.H., Keeney D.R. (Eds.). 2nd Ed. American Society of Agronomy, Madison, Wisconsin. 1982. V. 2(9). P. 815-820.

69. Amann R.I, Binder B.J., Olsen R.J., Chisholm S.W., Devereux R., Stahl D. A. Combination of 16S rRNA-targeted oligonucleotide probes with flow cytometry for analysing mixed microbial populations // Appl. Environ. Microbiol. 1990. V. 56. P. 1919-1925.

70. Amann R.I., Zarda В., Stahl D.A., Schleifer K.H. Identification of individual prokaryotic cells by using enzyme-labeled, rRNA-targeted oligonucleotide probes // Appl. Environ. Microbiol. 1992. V. 58. P. 3007-3011.

71. Amann R.I., Ludwig W., Schleifer K-H. Phylogenetic identification and in situ detection of individual microbial cells without cultivation // Microbiol. Rev. 1995. V. 59. P. 143-169.

72. Amaral J.A. and Knowles R. Growth of methanotrophs in methane and oxygen counter gradients // FEMS Microbiol. Lett. 1995. V. 126. P. 215-220.

73. Amaral J.A., Archambault C., Richards S.R., Knowles R. Denitrification associated with groups I and II methanotrophs in a gradient enrichment system // FEMS Microbiol. Ecol. 1995. V. 18. P. 289-298.

74. Barber R.D. and Ferry J.G. Methanogenesis // In: Encyclopedia of life science / Nature Publishing Group. 2001. www.els.net.

75. Bender M. and Conrad R. Effect of CH4 concentrations and soil conditions on the induction of CH4 oxidation activity//Soil Biol. Biochem. 1995. V. 27. P. 1517-1527.

76. Blake D.R. and Rowland F.S. Continuing worldwide increase in tropospheric methane, 1978 to 1987 //Science. 1988. V. 239(4844). P. 1129-1131.

77. Boeckx P., Van Cleemput 0., Villaralvo I. Methane emission from a landfill and the methane oxidizing capacity of its covering soil // Soil Biol. Biochem. 1996. V. 28. P. 1397-1405.

78. Boeckx P. and Van Cleemput O. Methane oxidation in neutral landfill cover soil: influence of moisture content, temperature, and nitrogen-turnover // J. Environ. Qual. 1996. V. 25. P. 178183.

79. Bogner J.E. and Spokas K.A. Landfill CH4: rates, fates, and role in global carbon cycle // Chemosphere. 1993. V. 26(1-4). P. 369-386.

80. Bogner J., Spokas K., Burton E., Sweeney R., Corona V. Landfills as atmospheric methane sources and sinks // Chemosphere. 1995. V. 31(9). P. 4119-4130.

81. Bogner J.E., Sweeney R.E., Coleman D., Huitric R., Ririe G.T. Using isotopic and molecular data to model landfill gas processes // Waste Manage. Res. 1996. V. 14. P. 367-376.

82. Bogner, J., Meadows, M., Czepiel, P. Fluxes of methane between landfills and the atmosphere: natural and engineered controls // Soil Use Manage. 1997a. V. 13. P. 268-277.

83. Bogner J.E., Spokas K.A., Burton E.A. Kinetics of methane oxidation in a landfill cover soil: temporal variations, a whole-landfill oxidation experiment, and modeling of net CH4 emissions // Environ. Sci. Tech. 1997b. V. 3. P. 2504-2514.

84. Bogner J.E., Spokas K.A., Burton E.A. Temporal variations in greenhouse gas emissions at midlatitude landfill // J. Environ. Qual. 1999. V. 28. P. 278-288.

85. Bogner J.E., Sass R.L., Walter B.P. Model comparisons of methane oxidation across a management gradient: wetlands, rice production systems, and landfill // Global Biogeochemical Cycles. 2000. V. 14(4). P. 1021-1033.

86. Borjesson G. and Svensson B.H. Seasonal and diurnal methane emissions from a landfill and their regulation by methane oxidation // Waste Manage. Res. 1997a. V. 15. P. 33-54.

87. Borjesson G. and Svensson B.H. Effects of a gas extraction interruption on emissions of methane and carbon dioxide from landfill, and on methane oxidation in the cover soil // J. Environ. Qual. 1997b. V. 26. P. 1182-1190.

88. Borjesson G., Sundh I., Tunlid A., Svensson B.H. Methane oxidation in landfill cover soils, as revealed by potential oxidation measurements and phospholipids fatty acid analyses // Soil Biol. Biochem. 1998a. V. 30. P. 1423-1433.

89. Borjesson G., Sundh I., Tunlid A., Frostegard A., Svensson B.H. Microbial oxidation of CH4 at high partial pressures in an organic landfill cover soil under different moisture regimes // FEMS Microbiol. Ecol. 1998b. V. 26. P. 207-217.

90. Borjensson G., Chanton J., Svensson B.H. Methane oxidation in two Swedish landfill covers measured with carbon-13 to carbon-12 isotope ratios // J Environ. Qual. 2001. V. 30. P. 369-376.

91. Borjesson G. Inhibition of methane oxidation by volatile sulfur compounds (CH3SH and CS2) in landfill cover soils // Waste Manage. Res. 2001. V. 19. P. 314-319.

92. Borjesson G, Sund I, Svensson B. Microbial oxidation of CH4 at different temperatures in landfill cover soils // FEMS Microbiol. Ecol. 2004. V. 48. P. 305-312.

93. Bourne D.G., Holmes A. J., Iversen N., Murrell J.C. Fluorescent oligonucleotide rDNA probes for specific detection of methane oxidizing bacteria // FEMS Microbiol. Ecol. 2000. V. 31. P. 29-38.

94. Bourne D.G., McDonald I.R., Murrell J.C. Comparison ofpmoA PCR primer sets as tools for investigating methanotroph diversity in three Danish soils // Appl. Environ. Microbiol. 2001. V. 67. P. 3802-3809.

95. Bowman J.P., McCammon S.A., Skerratt J.H. Methylosphaera hansonii gen. nov., sp. nov., a psychrophilic, group I methanotroph from Antarctic marine-salinity, meromictic lakes // Microbiology. 1997. V. 143. P. 1451-1459.

96. Bowman J. The methanotrophs the families Methylococcaceae and Methilocystaceae // In: The Prokaryotes / Dworkin M et al (Eds.). 3rd edition. 2000. An evolving electronic resource for the microbiological community.

97. Bykova S., Boeckx P., Kravchenko I., Galchenko V., Van Cleemput O. Response of CH4 oxidation and methanotrophic diversity to NH4+ and CH4 mixing ratios // Biol. Fertil. Soils. 2007. V. 43. P. 341-348.

98. Cai Z. and Yan X. Kinetic model for methane oxidation by paddy soil as affected by temperature, moisture and N addition// Soil Biol. Biochem. 1999. V. 31. P. 715-725.

99. Chan A.S.K. and Parkin T.B. Evaluation of potential inhibitors of methanogenesis and methane oxidation in a landfill cover soil // Soil Biol. Biochem. 2000. V. 32. P. 1581-1590.

100. Chanton J.P., Rutkowski C.M., Mosher B. Quantifying methane oxidation from landfills using stable isotope analysis of downwind plumes // Environ. Sci. Technol. 1999. V. 33. P. 3755-3760.

101. Chanton J. and Liptay K. Seasonal variations in methane oxidation in a landfill cover soil as determined by an in situ stable isotope technique // Global Biogeochemical Cycles. 2000. V. 14(1). P. 51-60.

102. Chen A.C., Ueda К., Sekiguchi Y., Ohashi A., Harada H. Molecular detection and direct enumeration of methanogenic Archaea and methanotrophic Bacteria in domestic solid waste landfill soils // Biotech. Lett. 2003. V. 25. P. 1563-1569.

103. Chiemchaisri W., Visvanathan C., Wu J. S. Effects of trace volatile organic compounds on methane oxidation // Braz. Arch, of Biol. Tech. 2001. V. 44(2). P. 135-140.

104. Christophersen M., Linderad L., Jensen P.E., Kjeldsen P. Methane oxidation at low temperatures in soil exposed to landfill gas // J Envirol. Qual. 2000. V. 29. P. 1989-1997.

105. Christophersen M., Kjeldsen P., Hoist H., Chanton J. Lateral gas transport in soil adjacent to an old landfill: factors governing emission and methane oxidation // Waste Manage. Res. 2001. V. 19. P. 126-143.

106. Czepiel P.M., Mosher В., Crill P.M., Harriss R.C. Quantifying the effect of oxidation on landfill methane emissions // J. Geophys. Res. 1996. V. 101. P. 16,721-16,729.

107. Dedysh S.N., Panikov N.S., Liesack W., Groflkopf R., Zhou J., Tiedje J.M. Isolation of acidophilic methane-oxidizing bacteria from northern peat wetlands // Science. 1998. V. 282. P. 281-284.

108. DeLong E.F., Taylor L.T., Marsh T.L., Preston C.M. Visualization and enumeration of marine planktonic archaea and bacteria by using polyribonucleotide probes and fluorescent in situ hybridization // Appl. Environ. Microbiol. 1999. V. 65. P. 5554-5563.

109. De Visscher A., Thomas D., Boeckx P., Van Cleemput 0. Methane oxidation in simulated landfill cover soil environments // Environ. Sci. Tech. 1999. V. 33(11). P. 1854-1859.

110. De Vissher A., Schippers M., Van Cleemput 0. Short-term kinetic response of enhanced methane oxidation in landfill cover soils to environmental factors // Biol. Fertil. Soils 2001. V. 33. P.231-237.

111. Dunfield P.F., Khmelenina V.N., Suzina N.E., Trotsenko Yu.A., Dedysh S.N. Methylocella silvestris sp. nov., a novel methane-oxidizing bacterium isolated from an acidic forest cambisol // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2003. V. 53. P. 1231-1239.

112. Einola J-K.M., Kettunen R.H., Rintala J.A. Responses of methane oxidation to temperature and water content in cover soil of a boreal landfill // Soil Biol. Biochem. 2007. V. 39. P. 11561164.

113. Eller G., Stubner S., Frenzel P. Group-specific 16S rRNA targeted probes for the detection of type I and type II methanotrophs by fluorescent in situ hybridization // FEMS Microbiol. Lett. 2001. V. 198. P. 91-97.

114. Epp M.A. and Chanton J.P. Rhizospheric methane oxidation determined via the methyl fluoride inhibition technique // J. Geophys. Res. 1993. V. 98. P. 18,413-18,422.

115. Escoffer S., LeMer J., Roger P.A. Enumeration of methanotrophic bacteria in ricefield soils by plating and MPN techniques: a critical approach // Eu. J. Soil Biol. 1997. V. 33. P. 41-51.

116. Fjellbirkeland A., Torsvik V., 0vreas L. Methanotrophic diversity in an agricultural soil as evaluated by denaturing gradient gel electrophoresis profiles of pmoA, mxaF and 16S rDNA sequences // Antonie van Leeuwenhoek. 2001. V. 79. P. 209-217.

117. Frenzel P. and Karofeld E. CH4 emission from a hollow-ridge complex in a raised bog: The role of CH4 production and oxidation // Biogeochemistry. 2000. V. 51. P. 91-112.

118. GalchenkoV.F., Lein A., Ivanov M. Biological Sinks of methane // In: Exchange of trace gases between terrestrial ecosystems and the atmosphere / M.O. Andreae and D.S. Schimel (Eds.). John Wiley & Sons Ltd. 1989. P. 59-71.

119. Gebert J., Groengroeft A., Miehlich G. Kinetics of microbial landfill methane oxidation in biofilters // Waste Manage. 2003. V. 23. P. 609-619.

120. Gebert J., Grongrofit A., Schloter M., Gattinger A. Community structure in a methanotroph biofilter as revealed by phospholipids fatty acid analysis // FEMS Microbiol. Lett. 2004. V. 240. P. 61-68.

121. Graham D.W., Chaudhary J.A., Hanson R.S., Arnold R.G. Factors affecting competition between type I and type II methanotrophs in two-organism, continuous-flow reactors // Microbial Ecol. 1993. V. 25. P. 1-17.

122. Gulledge J., Ahmad A., Steudler P.A., Pomerantz W.J., Cavanaugh C.M. Family- and genus-level 16S rRNA-targeted oligonucleotide probes for ecological studies of methanotrophic bacteria // Appl. Environ. Microbiol. 2001. V. 67. P. 4726-4733.

123. Hahn D. Manual for in situ analysis of microbial populations // In: Workshop on Sediments and Biofilms. EAWAG, Kastanienbaum, Switzerland, 10-14 September 2001.

124. Hanson R.S and Hanson Т.Е. Methanotrophic bacteria // Microbiol. Rew. 1996. V. 60. P. 439-471.

125. Henckel Т., Jackel U., Schnell S., Conrad R. Molecular analyses of novel methanotrophic communities in forest soil that oxidize atmospheric methane // Appl. Environ. Microbiol. 2000. V. 66. P.1801-1808.

126. Heuer H., Wieland G., Schonfeld J., Schonwalder A., Gomes N.C.M., Smalla K. Bacterial community profiling using DGGE or TGGE analysis // Environ. Mol. Microbiol.: Protocols and Applications. 2001. P. 177-190.

127. Heyer J., Galchenko V.F., Dunfield P.F. Molecular phylogeny of type II methane-oxidizing bacteria isolated from various environments // Microbiology. 2002. V. 148. P. 2831-2846.

128. Hilger H.A., Liehr S.K., Barlaz M. A. Exopolysaccharide control of methane oxidation in landfill cover soil // J. Environ. Engineer. 1999. V. 125(12). P. 1113-1123.

129. Hilger H.A., Wollum A.G., Barlaz M.A. Landfill methane oxidation response to vegetation, fertilization, and liming // J. Environ. Qual. 2000a. V. 29. P. 324-334.

130. Hilger H.A., Cranford D.F., Barlaz M.A. Methane oxidation and microbial exopolymer production in landfill cover soil // Soil Biol. Biochem. 2000b. V. 32. P. 457-467.

131. Hilger H. and Humer M. Biotic landfill cover treatments for mitigating methane emissions // Environ. Monitor. Assessment. 2003. V. 84. P. 71-84.

132. Holmes A.J., Costello A., Lindstrom M.E., Murrell J.C. Evidence that particulate methane monooxygenase and ammonia monooxygenase may be evolutionary related // FEMS Microbiol. Lett. 1995. V. 132. P. 203-208.

133. Humer M. and Lechner P. Alternative approach to the elimination of greenhouse gases from old landfills // Waste Manage. Res. 1999. V. 17. P. 443-452.

134. Ivanov M.V. and Lein A. Yu. Fractionation of stable isotopes of carbon and sulfur during biological processes in the Black Sea // In: Past and present water column anoxia / L.N. Neretin (Ed.). Springer. 2006. P. 373-417.

135. Jackel U., Thummes K., Kampfer P. Thermophilic methane production and oxidation in compost // FEMS Microbiol. Ecol. 2005. V. 52. P. 175-184.

136. Jones H.A. and Nedwell D.B. Methane emission and methane oxidation in landfill cover soil //FEMS Microbiol. Ecol. 1993. V. 102. P. 185-195.

137. Ketttunen R.H., Einola J-K.M., Rintala J.A.A. Landfill methane oxidation in organic soil columns at low temperature // Water, Air, and Soil Pollution. 2006. V. 177. P. 313-334.

138. Khmelenina V.N., Kalyuzhnaya M.G., Starostina N.G., Suzina N.E., Trotsenko Yu.A. Isolation and characterization of halotolerant alkaliphilic methanotrophic bacteria from Tuva soda lakes // Current Microbiology. 1997. V. 35. P. 257-261.

139. Kightley D., Nedwell D.B., Cooper M. Capacity for methane oxidation in landfill cover soils measured in laboratory-scale soil microcosms // Appl. Environ. Microbiol. 1995. V. 61. P. 592-601.

140. King G.M. and Adamsen A.P.S. Effects of temperature on methane consumption in a forest soil and in pure culture of the methanotroph Methylomonas rubra И Appl. Environ. Microbiol. 1992. V.58.P. 2758-2763.

141. Kolb S., Knief G., Stubner S., Conrad R. Quantitative detection of methanotrophs in soil by novel pmoA-targeted real-time PCR assays // Appl. Environ. Microbiol. 2003. V. 69. P. 24232429.

142. Lane D.J. 16S/23S rRNA sequencing // In: Nucleic techniques in bacterial systematics / E. Stackebrandt and M. Goodfellow (Eds.). John Wiley & Sons Ltd., Chichester, United Kindom. 1991. P. 115-175.

143. Luton P.E., Wayne .M., Sharp R.J., Riley P.W. The mcrA gene as an alternative to 16S rRNA in the phylogenetic analysis of methanogen populations in landfill // Microbiology. 2002. V. 148. P.3521-3530.

144. Marchiol L., Mori A., Leita L., Zerbi G. Gas Exchanges in soybean as affected by landfill biogas atmosphere // J. Environ. Qual. 1999. V. 28. P. 289-293.

145. Maurice C., Ettala M., Lagerkvist A. Effects of leachate irrigation on landfill vegetation and subsequent methane emissions // Water, Air, and Soil Pollution. 1999. V. 113. P. 203-216.

146. McDonald I.R. and Murrel J.C. The particulate methane monooxygenase gene pmoA and its use as a functional gene probe for methanotrophs // FEMS Microbiol. Lett. 1997. V. 156. P. 205-210.

147. Могу К., Sparling R., Hatsu M., Takamizawa K. Quantification and diversity of the archaeal community in a landfill site // Can. J. Microbiol. 2003. V. 49. P. 28-36.

148. Murrell J.C., McDonald I.R., Bourne D.G. Molecular methods for the study of methanotroph ecology // FEMS Microbiol. Ecol. 1998. V. 27. P. 103-114.

149. Murrell J.C., Gilbert В., McDonald I.R. Molecular biology and regulation of methane monooxygenase // Arch. Microbiol. 2000. V. 173. P. 325-332.

150. Muyzer G. DGGE/TGGE a method for identifying genes from natural ecosystems // Current Opinion in Microbiology. 1999. V. 2. P. 317-322.

151. Nozhevnikova A.N., Nekrasova V.K., Lebedev V.S., Lifshits A.B. Microbiological processes in landfills // Wat. Sci. Tech. 1993a. V. 27(2). P. 243-252.

152. Nozhevnikova A.N., Lifshits A.B., Lebedev V.S., Zavarzin G.A. Emission of methane into the atmosphere from landfills in the former USSR // Chemosphere. 1993b. V. 26(1-4). P. 401417.

153. Nozhevnikova A.N. and Lebedev V.S. Burial sites of municipal garbage as a source of atmospheric methane //J. Ecol. Chem. 1995. № 4. P. 48-58.

154. Nozhevnikova A.N., Lebedev V.S., Ivanov D.V., Nekrasova V.K. Formation of methane oxidizing microbial filter in landfill // In: Proc. of Int. FAWQ Symposium on anaerobic digestion of solid waste. Barselona, Spaine, 15-17 June 1999. P. 216-219.

155. Nozhevnikova A., Glagolev M., Nekrasova V., Einola J., Sormunen K., Rintala J. The analysis of methods for measurement of methane oxidation in landfills // Wat. Sci. Tech. 2003a. V. 48(4). P. 45-52.

156. Oda Ya., Slagman S-J., Meijer W.G., Forney L.J., Gottschal J.C. Influence of growth rate and starvation on fluorescent in situ hybridization of Rhodopseudomonas palustris II FEMS Microbiol. Ecol. 2000. V. 32. P. 205-213.

157. Panikov N.S., and Dedysh S.N. Cold season CH4 and CO2 emission from boreal peat bogs (West Siberia): winter fluxes and thaw activation dynamics // Global Biogeochemical Cycles. 2000. V. 14(4). P. 1071-1080.

158. Pernthaler A., Pernthaler J., Amann R. Fluorescence in situ hybridization and catalyzed reporter deposition for the identification of marine bacteria // Appl. Environ Microbiol. 2002a. V. 68. P. 3094-3101.

159. Pichler M. and Kogel-Knabner I. Chemolytic analysis of organic matter during aerobic andanaerobic treatment of municipal solid waste // J. Environ. Qual. 2000. V. 29. P. 1337-1344.

160. Pohland F.G. and Kim J.C. Microbially mediated attenuation potential of landfill bioreactor systems // Wat. Sci. Tech. 2000. V. 41(3). P. 247-254.

161. Rudd J.W.M., Furutani A., Flett R.J., Hamilton R.D. Factors controlling methane oxidation in shield lakes: The role of nitrogen fixation and oxygen concentration // Limnology Oceanography. 1976. V. 21. P. 357-364.

162. Schafer H. and Muyzer G. Denaturing gradient gel electrophoresis in marine microbial ecology // Methods in microbiology. 2001. V. 30. P. 425-468.

163. Schuetz C., Bogner J., Chanton J., Blake D., Morcet M., Kjeldsen P. Comparative oxidation and net emission of methane and selected non-methane organic compounds in landfill cover soils //Environ. Sci. Technol. 2003. V. 37(22). P. 5150-5158.

164. Steinkamp R., Zimmer W., Papen H. Improved method for detection of methanotrophic bacteria in forest soils by PCR // Current Microbiology. 2001. V. 42. P. 316-322.

165. Streese J. and Stegmann R. Microbial oxidation of methane from old landfills in biofilters // Waste Manage. 2003. V. 23. P. 573-580.

166. Svenning M.M., Wartiainen I., Hestnes A.G., Binnerup S.J. Isolation of methane oxidizing bacteria from soil by use of a soil substrate membrane system // FEMS Microbiol. Ecol. 2003. V. 44. P. 347-354.

167. Trotsenko Yu.A. and Khmelenina V.N. Biology of extremophilic and extremotolerant methanotrophs //Arch. Microbiol. 2002. V. 177. P. 123-131.

168. Tsien H.C., Bratina B.J., Tsuji K., Hanson R.S. Use of oligodeoxynucleotide signature probes for identification of physiological groups of methylotrophic bacteria // Appl. Environ. Microbiol. 1990. V. 56. P. 2858-2865.

169. Tsubota J., Eshinimaev B.T., Khmelenina V.N., Trotsenko Yu.A. Methylothermus thermalis gen. nov., sp. nov., a novel moderately thermophilic obligate methanotroph from a hot spring in Japan // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2005. V. 55. P. 1877-1884.

170. Uz I., Rasche M.E., Townsend Т., Ogram A.V., Lindner A.S. Characterization of methanogenic and methanotrophic assemblages in landfill samples // The Royal Society Biology Letters. 2003. V. 270. P. 202-205.

171. Visvanathan C., Pokhrel D., Cheimchaisri W., Hettiaratchi J.P.A., Wu J.S. Methanotrophic activities in tropical landfill cover soils: effects of temperature, moisture content and methane concentration // Waste Manage. Res. 1999. V. 17. P. 313-323.

172. Ward R.S., Williams G.M., Hills C.C. Changes in major and trace components of landfill gas during subsurface migration // Waste Manage. Res. 1996. V. 14. P. 243-261.

173. Wartiainen I., Hestnes A.G., McDonald I.R., Svenning M.M. Methylobacter tundripaludum sp. nov., a methane-oxidizing bacterium from Arctic wetland soil on the Svalbard islands, Norway (78°N) // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2006. V. 56. P. 109-113.

174. Whalen S.C., Reeburgh W.S., Sandbeck K.A. Rapid methane oxidation in a landfill cover soil // Appl. Environ. Microbiol. 1990. V. 56. P. 3405-3411.

175. Whittenbury R., Phillips K.S., Wilkinson J.F. Enrichment, isolation and some properties of methane-utilizing bacteria// J. General Microbiology. 1970a. V. 61(2). P. 205-218 with 3 plates.

176. Whittenbury R., Davies S.L., Davey J.F. Exospores and cysts formed by methane-utilizing bacteria // J. General Microbiology. 1970b. V. 61(2). P. 219-226 with 5 plates.

177. Whittenbury R. and Dalton H. The methylotrophic bacteria // In: The Prokaryotes. A. Handbook on Habits, Isolation, and Identification of bacteria / New York.: Springer-Verlag. 1981. V. I.

178. Wilshusen J.H., Hettiaratchi J.P.A., De Visscher A., Saint-Fort R. Methane oxidation and formation of EPS in compost: effect of oxygen concentration // Environ. Pollution. 2004a. V. 129. P. 305-314.

179. Wilshusen J.H., Hettiaratchi J.P.A., Stein V.B. Long-term behavior of passively aerated compost methanotrophic biofilter columns // Waste Manage. 2004b. V. 24. P. 643-653.

180. Zavarzin G.A. and Nozhevnikova A.N. Landfills and waste deposits producing greenhouse gases // Current Opinion in Biotechnology. 1993. V. 4. P. 356-362.