Экспериментально-клиническое обоснование применения коллагеновой матрицы для увеличения объема десны тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.01.14, кандидат наук Баулин, Иннокентий Михайлович

• Баулин, Иннокентий Михайлович
• кандидат наук
• 2015

Оглавление диссертации кандидат наук Баулин, Иннокентий Михайлович

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. СОВРЕМЕННЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ О СПОСОБАХ

УВЕЛИЧЕНИЯ ОБЪЕМА КЕРАТИНИЗИРОВАННОЙ ДЕСНЫ

(ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

1.1. Анатомо-физиологические особенности строения мягких тканей вокруг имплантата

1.2. Количественная характеристика тканей кератинизированной десны

1.2.1. Биологическая ширина

1.2.2. Объем десны

1.3. Влияние особенностей биотипа десны и объема прикрепленной десны на эффективность дентальной имплантации

1.4. Методики увеличения объема кератинизированной десны

1.4.1. Техники расширения границ прикрепленной слизистой

1.5. Материалы, используемые для увеличения объема прикрепленной кератинизированной десны

1.5.1. Бесклеточная дермальная матрица А11ос1егт

1.5.2. Матрицы на основе бычьего и свиного коллагена

1.5.3. Коллагеновая матрица Микх^гай

1.5.4. Результаты доклинических исследований матрицы Mucograft

1.5.5. Результаты клинических исследований матрицы Mucograft

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВ АНИЯ

2.1. Организация работы

2.2. Экспериментальная часть

2.2.1. Приготовление гистологических препаратов

2.3. Клиническое исследование

2.3.1. Критерии оценки клинических признаков и болевого синдрома

2.4. Статистический анализ полученных данных

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1. Экспериментальные исследования

3.1.1. Результаты гистологического исследования

3.1.2. Результаты морфометрического исследования

3.1.3. Измерения объема мягких тканей по данным ЗО-сканирования

3.2. Результаты клинического исследования

3.2.1. Сравнительная оценка длительности хирургического вмешательства

3.2.2. Суммарная доза принятых анальгетиков

3.2.3. Выраженность болевого синдрома

3.2.4. Динамика клинических признаков в раннем послеоперационном периоде

3.2.5. Динамика размеров десны

3.2.6. Клинические примеры

ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Экспериментально-клиническое обоснование применения коллагеновой матрицы для увеличения объема десны»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования

В задачи современной имплантологии и пародонтологии входят как обеспечение успешного приживления зубного имплантата, так и достижение функционального восстановления зубного ряда наряду с получением высокоэстетичного результата лечения [117]. Значимыми факторами для эстетического восприятия фронтальной группы зубов являются цвет, текстура и контуры межзубных мягких тканей [55], которые в свою очередь определяются адекватным состоянием эпителиального и соединительнотканного компонентов слизистой, во многом определяющим успех зубной имплантации и последующее функционирование имплантата

[13,17,Ш].

Проблемы мягких тканей краевого пародонта находят отражение в осложнениях имплантации, таких, как гиперплазия десны или послеоперационная рецессия [178], а также развитие периимплантита, сопровождающегося резорбцией костной ткани в области шейки дентального имплантата [169, 119].

В настоящее время разработан ряд методов увеличения объема альвеолярного отростка на основе мягкотканного компонента, в частности пересадка десневого трансплантата и применение аллопластических материалов. «Золотым стандартом» считается содинительнотканный трансплантат [14, 85, 139, 161]. Тем не менее недостатками этих методик являются как болевой синдром, обусловленный взятием ткани, так и ее ограниченный объем [115].

Альтернативным методом создания объема прикрепленной кератинизированной десны является применение материалов на основе коллагена. На сегодняшний день на рынке представлено большое количество коллагенсодержащих мембран. Большинство таких мембран эффективно выполняют барьерные функции, однако их особенностью является

недостаточная толщина, что не позволяет добиться значимого прироста объема мягких тканей. В отличие от них, коллагеновая матрица Мисо§гай обладает комбинированной структурой, способствующей восполнению мягкотканных дефектов в ходе одной операции даже при дефиците мягких тканей, но возможности его клинического применения еще недостаточно изучены.

В связи с вышеизложенным актуальной задачей является дальнейшее исследование свойств материалов, позволяющих получать достаточный объем прикрепленной кератинизированной десны, а также разработка методик, способствующих снижению травматичности и объема хирургических вмешательств.

Цель исследования — повысить эффективность лечения больных с дефицитом объёма десны путём применения коллагеновой матрицы.

Задачи исследования

1. Изучить влияние коллагеновой матрицы на репарацию мягких тканей в эксперименте на животных.

2. В эксперименте на животных (мини-свиньях) на основании морфологического исследования и трехмерной компьютерной реконструкции оценить в динамике заживление тканей десны с участием коллагеновой матрицы открытым доступом без перекрытия слизистой после установки дентальных имплантатов в сравнении с пересадкой свободного аутотрансплантата неба.

3. Провести анализ клинического использования коллагеновой матрицы и аутотрансплантатов неба.

4. Провести сравнительный анализ результатов клинического применения коллагеновой матрицы и свободного аутотрансплантата с неба у пациентов с дефицитом кератинизированной десны и мелким преддверием полости рта.

5. Разработать практические рекомендации для клинического применения коллагеновой матрицы.

Научная новизна исследования

Впервые экспериментально установлено, что применение коллагеновой матрицы открытым способом приводит к образованию зрелой соединительной ткани вокруг имплантатов, более выраженной через 70 суток, и ширина прикрепленной слизистой на 45-е сутки (от 4,4±0,3 мм до 7,7±0,5 мм) сопоставима с таковой после пересадки аутотрансплантата.

Впервые с помощью трехмерного компьютерного моделирования челюстей экспериментальных животных установлен прирост объема мягких тканей прикрепленной десны после фиксации коллагеновой матрицы, который достигает 0,8±0,1 см3 после использования коллагеновой матрицы и

л

1,1 ±0,12 см после пересадки свободного аутотрансплантата с неба.

Впервые проведён сравнительный анализ клинической эффективности применения коллагеновой матрицы открытым способом и свободного аутотрансплантата с целью увеличения объёма прикреплённой слизистой в области установленных дентальных имплантатов, а также углубления преддверия полости рта.

Практическая значимость

Применение коллагеновой матрицы является клинически эффективным и безопасным методом и адекватной альтернативой использования свободного аутотрансплантата с неба для увеличения объема прикрепленной слизистой в области установленных дентальных имплантатов, а также углубления преддверия полости рта.

Обосновано клиническое применение коллагеновой матрицы для закрытия дефицитных зон операционного поля без перекрывания его слизисто-надкостничным лоскутом.

По сравнению с пересадкой свободного аутотрансплантата применение коллагеновой трёхмерной матрицы приводит к значимому уменьшению травматичности и сокращению длительности вмешательства, что, в свою очередь, способствует снижению выраженности болевого синдрома и суммарной дозы анальгетиков, принимаемых пациентами в

послеоперационном периоде, по сравнению с пересадкой свободного аутотрансплантата с неба.

Внедрение в практику результатов исследования

Основные результаты исследования внедрены в практическую деятельность ФГБУ «ЦНИИС и ЧЛХ» Минздрава России отделения клинической и эксперементальной имплантологии.

Материалы диссертации используются в учебном процессе в ФГБУ «ЦНИИС и ЧЛХ» Минздрава России.

Основные положения, выносимые на защиту

1. После трансплантации колагеновой матрицы морфологическая картина эпителизации слизистой оболочки полости рта, сопоставима с таковой после использования соединительно-тканного трансплантата с нёба.

2. Применение коллагеновой матрицы способствует увеличению объема десны у экспериментальных животных при фиксации открытым способом без перекрытия слизистой после установки дентальных имплантатов, что подтверждается результатами трехмерного компьютерного моделирования челюстей.

3. Экспериментальные и клинические результаты применения коллагеновой матрицы свидетельствуют об эффективности и безопасности этого материала, и обосновывают его использование в клинической практике.

Личный вклад автора

Автор принимал непосредственное участие во всех этапах выполнения представленной работы: анализ научной литературы по выбранной теме, организация и проведение экспериментального исследования, отбор пациентов для клинического исследования и выполнения операций, а также последующее контрольное послеоперационное наблюдение с применением инструментальных методов исследования, статистическая обработка данных и анализ полученных результатов.

Апробация работы

Основные результаты исследования доложены и обсуждены на юбилейной научно-практической конференции «Северная стоматологическая школа: к 55-летию стоматологического факультета СГМУ» (Архангельск, 2013), научно-практической конференции молодых ученых в ФГБУ «ЦНИИС и ЧЛХ» (Москва, 2014), на врачебной конференции в ФГБУ «ЦНИИС и ЧЛХ» (Москва, 2014), научно-практической конференция «Инновационные технологии в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии» ГБУЗ МО «Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского» (Москва, 2015).

Предварительное обсуждение материалов исследования проведено на совместном заседании сотрудников отделения клинической и экспериментальной имплантологии, отдел общей патологии, отделения хирургической стоматологии, рентгенологического отделения ФГБУ ФГБУ «ЦНИИС и ЧЛХ» Минздрава России 21 февраля 2015 г.

Публикации

По теме диссертации опубликовано 5 научных раб, в том числе 4 статьи в научных журналах, рекомендованных Высшей аттестационной комиссией Министерства образования РФ.

ГЛАВА 1. СОВРЕМЕННЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ О СПОСОБАХ УВЕЛИЧЕНИЯ ОБЪЕМА КЕРАТИНИЗИРОВАННОЙ ДЕСНЫ

(ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

В настоящее время общепризнано, что состояние мягких тканей краевого пародонта существенно влияет на долгосрочный результат зубной имплантации, а также на эффективность лечения воспалительных заболеваний пародонта [172, 14, 20].

1.1. Анатомо-физиологические особенности строения мягких тканей

вокруг имплантата

В результате процесса регенерации тканей вокруг шейки дентальных имплантатов создается так называемое мягкотканное прикрепление, основная функция которого —■ предотвращение инфицирования костной ткани из полости рта. Несмотря на схожесть гистологического строения десны вокруг зубов и слизистой оболочки, контактирующей с пришеечной частью дентальных имплантатов, имеются и некоторые различия их структуры.

Наружная поверхность свободной десны покрыта многослойным плоским ороговевающим эпителием, который переходит в барьерный эпителий, обращенный к поверхности абатмента. Барьерный эпителий представлен несколькими рядами клеток. Эпителиальные структуры сменяются соединительной тканью примерно на 2 мм апикальнее границы мягких тканей на расстоянии 1-1,5 мм от альвеолярного гребня. Соединительная ткань вокруг зуба отличается от таковой, окружающей имплант, наличием цемента, от которого отходят зубо-десневые и зубо-альвеолярные коллагеновые волокна [143]. Вокруг имплантата коллагеновые волокна ориентированы по-другому: начинаясь в надкостнице альвеолярного гребня, они располагаются параллельно поверхности имплантата, не прикрепляясь к ней [49]. Соединительная ткань надальвеолярного слоя возле

имплантатов содержит больше коллагеновых волокон, но меньше фибробластов и кровеносных сосудов, чем вокруг зубов [105]. По периметру находится подвижная соединительная ткань, хорошо снабженная сосудами. В то же время, непосредственно у поверхности имплантата расположен широкий слой плотных волокон толщиной 50-100 мкм, бедный кровеносными сосудами [120]. Таким образом, коллагеновые волокна образуют вокруг дентального имплантата плотную связку, стабильность которой в большей степени зависит от их прикрепления к надкостнице альвеолярной кости [49, 5.

В настоящее время установлено, что поверхностная топография имплантата играет важную роль в процессах остеинтеграции [160], обусловливая, в частности, риск возникновения периимплантита [70, 137, 73].

Кровоснабжение мягких тканей в периимплантатной области происходит через конечные ветви крупных сосудов надкостницы, а не из периодонтальной щели, как у естественного зуба. По этой причине питание мягких тканей вокруг имплантата менее обильно, чем вокруг зуба [49, 55, 64].

1.2. Количественная характеристика тканей кератинизированной десны

Для количественной характеристики тканей десны используются различные параметры, в частности, биологическая ширина, толщина десны, высота и ширина альвеол [105, 173]. Часто используемым параметром является биологическая ширина — длина комплекса тканей (соединительной ткани и прикрепленного эпителия) над периимплантатной костной тканью по аналогии с естественным пародонтом.

1.2.1. Биологическая ширина

и

Биологическая ширина определяется как измерение мягких тканей, которая крепится к части зуба коронковой на гребень альвеолярного отростка. Этот термин был основан на работе Саг§ш1о А.А^. е1 а1. [77], которые впервые описали размеры, снятые с зубодесневых компонентов 287 отдельных зубов из 30 аутопсийных образцов. Исследователи установили, что существует определенная пропорциональная зависимость между шириной десневой бороздки, толщиной краевого эпителия и соединительнотканного прикрепления, которые составляют в среднем 0,69 мм, 0,97 мм и 1,07 мм соответственно. Биологическая ширина — сумма размеров краевого эпителия и соединительнотканного прикрепления, в среднем равная 2,04 мм.

Это физиологически оформленная величина определятся также контурами альвеолярной кости и оценивается индивидуально: под анестезией плоским пародонтальным зондом измеряют расстояние до альвеолярной кости, из полученного результата вычитают глубину десневой бороздки [173].

Вокруг имплантата биологическая ширина увеличивается и составляет 3,0±0,5 мм [90]. Для имплантатов поддесневого заживления эта величина несколько больше (около 3,8 мм), чем для имплантатов, заживление которых проходит трансгингивально (около 2,73 мм) [63, 91]. Объясняется это наличием микрощели, которая образуется после раскрытия имплантата и фиксации абатмента в месте перехода внутрикостной части имплантата к опорному элементу.

В поддержании здорового состояния пародонта соединительный эпителий играет ключевую роль: он создает эпителиальное прикрепление, обеспечивая плотное соединение мягких тканей с поверхностью зуба; он проницаем и обеспечивает выведение метаболических продуктов бактерий зубного налета (токсины, хемотаксины, антигены и т.д.). В обратном направлении осуществляется диффузия защитных элементов организма (сывороточный экссудат, антитела и т.д.). Даже при отсутствии клинических

признаков воспаления через соединительный эпителий в десневую борозду постоянно мигрируют полиморфноядерные лейкоциты [91].

По данным АЬгаИатэзоп I. е1 а1. [44], размер биологической ширины зависит от материала, из которого изготовлен абатмент. Соединительнотканное прикрепление формируется вокруг абатментов из титана и керамики на основе алюминия. При использовании сплавов золота и стоматологической керамики соединительнотканная зона смещается в апикальном направлении, и биологическая ширина увеличивается.

1.2.2. Объем десны

Для характеристики объема десны и ее тканей используют методы, позволяющие воссоздать ее трехмерную структуру. Долгое время визуализацию проводили с помощью реконструкции серийных срезов, которая занимает много времени и возможна, как правило, только на небольшом объеме материала [168, 110].

В последнее время ЗО-моделирование на основе неинвазивных методов, например, компьютерной томографии для оценки объема тканей десны, получает все большее распространение в челюстно-лицевой хирургии [65] и ортодонтии [107]. Статистический компьютер-ассистированный подход был применен к планированию и проведению операции дентальной имплантации, что позволило повысить точность установки имплантатов на 35,5% [39].

Цифровая стоматология возникла и развивалась в неразрывной связи со стремительно совершенствующимися компьютерными технологиями, от первых попыток трехмерного моделирования [121] до новых методик рентгеновской микроскопии и томографии на источнике синхротронного излучения, которые позволяют успешно анализировать топологию и морфологию различных структур, в том числе трансплантированных коллагеновых матриц [131]. Тем не менее данные методы пока позволяют

создать цифровую модель ограниченного объема. Для более полной оценки динамики объема мягких тканей десны и характеристики зубного ряда в 2007 году был предложен качественно новый подход — трехмерная визуализация.

Впервые система трехмерной визуализации лица и зубных рядов на основе использования оптических сканеров (способ построения трехмерного изображения лица и зубных рядов, сопоставленных в корректном друг относительно друга положении) была создана Ряховским А.Н. и соавт. [34]. Для получения трехмерных зубных рядов снимают полные анатомические оттиски верхней и нижней челюсти, отливают гипсовые модели. Затем при помощи трехмерного сканера сканируют гипсовую модель зубного ряда с установленным на ней реперным объектом. Не меняя положение гипсовой модели, реперный объект снимается, и повторно сканируется уже сам зубной ряд.

Для трехмерной визуализации применяют универсальный сканер Roland LPX-250, работа которого основана на методике сканирования точкой. На сканируемый объект (гипсовые модели челюстей и прикусные силиконовые регистраты) проецируется луч лазера в виде точки, при этом сам объект вращается на поворотном столике во внутренней камере сканера и по изменению расстояния от объекта до дальномера сканера восстанавливается трехмерная поверхность. Максимальные размеры сканируемого объекта могут доходить до 0,4 м в высоту и до 0,2 м в диаметре.

Для обработки данных трехмерного сканирования используется программа-редактор трехмерных моделей Rapid Form (INUS Technology, Корея). Данные о трехмерных моделях челюстей сохраняются в файлах формата *.stl, содержащего информацию о координатах каждой вершины поверхности. С помощью трехмерной модели и программы Rapid Form можно измерять такие важные антропометрические параметры, как мезиодистальные размеры каждого зуба, продолжительность зубного ряда, расстояние между клыками, между первыми премолярами, между молярами,

длина переднего отрезка по Коркхаузу, длина апикального базиса, ширина апикального базиса и т.д. После получения ЗБ-моделей лица и зубных рядов они совмещаются путем последовательных сопоставлений через реперные точки. Трехмерные модели верхней и нижней челюстей изучаются в 3-х плоскостях и под разными углами, как в прикусе, так и отдельно каждая челюсть [23, 35].

Недавно был предложен способ точной реконструкции зубного ряда через интеграцию внешних отсканированных данных и медицинских изображений на основе КТ, когда гипсовую модель оцифровывают с помощью ЗЭ-сканера и совмещают с обработанными цифровыми моделями коронок и корней, полученными на основе компьютерной томографии [175].

Таким образом, наиболее полную количественную характеристику параметров десны можно получить на трехмерных моделях гипсовых слепков, отсканированных с помощью оптических сканеров. Следует отметить, что этот метод еще не был использован в экспериментальных исследованиях, не проводилось оценка объема посредством 3D-моделирования, и полученные данные не сравнивали с результатами инструментальных исследований.

1.3. Влияние особенностей биотипа десны и объема прикрепленной десны на эффективность дентальной имплантации

Как в пародонтологии, так и в имплантологии существует понятие «биотип тканей», которое включает в себя следующие параметры:

• наличие или отсутствие кератинизированной десны

• толщина и ширина кератинизированной десны;

• высота и ширина десневых сосочков;

• высота и ширина альвеолярного отростка верхней челюсти и

альвеолярного края нижней челюсти;

• уровень прикрепления мимических и жевательной группы мышц;

форма коронковой части зубов.

Причин, по которым важно обращать внимание на состояние мягких тканей вокруг имплантатов, немало. Такие факторы, как мелкое преддверие, уровень прикрепления уздечек губ могут повлиять на развитие патологии пародонта в 1,4-2,5% случаев [13, 36]. Огромное значение для стабильности пародонтальных тканей, по мнению многих, имеют особенности строения тканей и органов полости рта, или биотип (фенотип) тканей пародонта [27, 156, 104].

Различают толстый и тонкий биотипы десны. Целесообразно также учитывать так называемый средний биотип [25].

При толстом биотипе десны усадка мягких тканей после удаления зуба происходит в минимальном количестве. При тонком биотипе десны и атрофии альвеолярного гребня уменьшение ширины зоны прикрепленной кератинизированной десны весьма существенно. При минимальном количестве кератинизированной десны в зоне адентии установка дентального имплантата может привести к ее уменьшению или полному ее отсутствию.

Недостаточность ширины зоны прикрепленной кератинизированной десны, и, высокая подвижность мягких тканей, приводят к неудовлетворительному эстетическому и функциональному результату.

Подвижная слизистая оболочка, окружающая естественный зуб или дентальный имплантат, постоянно смещается при открывании рта, приеме пищи, проведении гигиенических процедур. Вследствие недостаточной гигиены при подвижных мягких тканях развивается воспаление с последующей рецессией десны. Некератинизированная ткань легче травмируется. Как следствие, при скоплении пищевых остатков в области папиллярной и маргинальной десны возникает воспалительный процесс. Привлечение воспалительных клеток приводит к повышенной активности остеокластов и нарушению процесса остеоинтеграции вокруг имплантата [53]. Еще одной причиной резорбции костной ткани является нарушение кровоснабжения при дефиците прикрепленной десны.

Кап J. et al. [98] сравнивали тонкий и толстый биотипы десны, реакцию мягких тканей после немедленной установки дентального имплантата. В результате установлено, что тонкие ткани имеют высокий риск развития рецессий в отдаленные сроки. Jung R. et al. [97] выявили, что через десну толщиной менее 1,5-2,0 мм просвечивает любая ортопедическая конструкция, выполненная как из медицинского сплава титана, так и из оксида циркония. Таким образом, принято считать, что для успеха дентальной имплантации толщина кератинизированной десны должна быть не менее 2 мм.

Эстетический результат имплантологического лечения не будет совершенным при отсутствии десневых сосочков, нефизиологическом контуре десны и рецессии мягких тканей.

Классификация рецессии десны по Миллеру [118] различает четыре класса по ширине и длине потери десны.

1. Класс 1 включает случаи узкой или широкой рецессия на уровне зубодесневого соединения с сохранной структурой.

2. Класс 2 объединяет случаи узкой и широкой рецессия на уровне зубодесневого соединения с нарушением его целостности, но без изменений костной ткань в области корня исследуемого зуба.

3. Класс 3 включает случаи с уровнем рецессии ниже зубодесневого соединения, в области корня исследуемого зуба происходит резорбция кости.

4. Класса 4 - самые тяжелые формы рецессии десны. В этих случаях полностью отсутствует зубодесневое соединение, резорбция кости отмечается не только в области корня исследуемого зуба, но и в межальвеолярной области [33].

Зона прикрепленной кератинизированной десны вокруг имплантата влияет как на клинические, так и на иммунологические параметры этих областей. Ее достаточная ширина является защитой от механических травм любого вида, дает возможность проведения легкого и эффективного контроля над образованием микробной бляшки и мягкого зубного налета, а в

эстетически значимой области полости рта способствует более длительному стабильному результату [94, 179].

Дифференцированный подход к выбору методики коррекции преддверия полости рта в различных клинических ситуациях позволяет добиться наилучших результатов лечения [16, 17,24].

Таким образом, при планировании любых мукогингивальнгых операций необходимо учитывать биотип десны для прогнозирования результатов операции с тем, чтобы предварительно увеличить объем и ширину прикрепленной слизистой.

1.4. Методики увеличения объема кератинизированной десны

Из общего числа всех заболеваний пародонта на долю рецессии десны приходится 10% [33]. Успех хирургического устранения рецессий десны обусловлен выявлением причин ее развития, а также грамотным планированием лечения и выбором его адекватной методики [42].

В 1957 году N. Friedman предложил термин «слизисто-десневая хирургия» для обозначения хирургических вмешательств, направленных для коррекции соотношения между прикрепленной кератинизированной десной и подвижной слизистой оболочкой полости рта [71]. Этим термином часто обозначали только те хирургические процедуры, которые проводились для увеличения глубины преддверия полости рта, а также при устранении повышенного натяжения уздечек губ и дополнительных уздечек щек.

Позже в понятие слизисто-десневой хирургии были включены методика прогнозируемого устранения пародонтальных дефектов и манипуляции по увеличению кератинизированной десны с использованием свободного аутотрансплантата неба.

Среди наиболее распространенных поводов к увеличению объема кератинизированной десны можно выделить:

1) расширение зоны прикрепленной слизистой в пришеечной области имплантата;

2) расширение зоны кератинизированной слизистой в области преддверия.

1.4.1. Техники хирургического вмешательсва для увеличения границ прикрепленной слизистой

Для получения необходимого объема прикрепленной кератинизированной десны и/или смещения мукогингивальной линии в пришеечной области имплантата существует несколько техник [7, 9, 13].

В предимплантационный период:

• полнослойный слизисто-надкостничный лоскут на питающей ножке;

• расщепленный апикально-смещенный лоскут;

• методика валика деэпителизированным лоскутом;

• свободный аутотрансплантат с неба;

• туннельная пластика с использованием соединительнотканного трансплантата;

• расщепленный апикально-смещенный лоскут с использованием специальных мембран;

• туннельная пластика с использованием специальных мембран.

Для увеличения глубины преддверия полости рта применяются практически те же методы, адаптированные для данного вида вмешательства.

Основные типы хирургических вмешательств следующие.

1. Полнослойный слизисто-надкостничный лоскут на питающей ножке.

Принцип операции состоит в том, чтобы смоделировать лоскут соединительной ткани с небной стороны. Для улучшения кровоснабжения соединительнотканный лоскут оставляют на питающей ножке. Соединительнотканная часть перемещается вестибулярно под лоскут

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Баулин, Иннокентий Михайлович, 2015 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Або С. Г. Анализ эффективности применения методов пластики для устранения локализованной рецессии десны: Автореф. дисс. ... канд. мед. наук. — М, 2004. — 20 с.

2. Арсенова И.А., Трофимов A.C. Пластика преддверия полости рта различными мукозными трансплантатами // Сибирский медицинский журнал (г. Иркутск). — 2009. — Т. 85. — №2. С. 48-51.

3. Арсенова И.А., Трофимов A.C. Вестибулопластические операции с применением свободного мукозного трансплантата // Вестник новых медицинских технологий.—2009,. — Т. 16.—№1. — С. 123-125.

4. Базикян Э. А., Смбатян Б. С., Кржижановская Ю. А. Свободный десневой трансплантат // Клиническая стоматология. — 2005. -— №4. — С.40^43.

5. Базикян Э. А., Смбатян Б. С., Кржижановская Ю. А. Формирование прикрепленной десны эпителиальными трансплантатами при дентальной имплантации // Клиническая стоматология. — 2006. — №4. — С. 72-74

6. Базикян Э. А., Смбатян Б. С., Кржижановская Ю. А., Саркисян М. А. О способах формирования прикрепленной десны в области дентальных имплантантов // Стоматология. — 2007. ■— Т. 86. — №1. — С. 50-53.

7. Беем С., Венг Д., Мейле Й. Соединительнотканные трансплантаты в пародонтологии // PerioIQ. — 2006.—№3.— С. 129—137.

8. Белозеров М.Н. Оценка остеопластических свойств различных биокомпозиционных материалов для заполнения дефектов челюстей (экспериментально-клиническое исследование): Дисс. ... канд. мед. наук. — М., 2004. — 137 с.

9. Блок М.С. Дентальная имплантология. Хирургические аспекты (перевод с английского под общей редакцией М.В. Ломакина). — М.: МЕДпресс-Информ, 2011. — 397 с.

10. Бородулина И.И. Вестибулопластика в комплексном лечении заболеваний пародонта // Российский стоматологический журнал. — 2005.—№2. —С. 51-53.

11. Галеева Н.И. Гингивопластика свободным небным аутотрансплантатом // Новые методы диагностики, лечения заболеваний и управления в медицине. — Новосибирск, 1998. — С. 202-203.

12. Ганжа И.Г., Модина Т.Н., Болбат М.В. Закрытие рецессии десны с использованием факторов роста // Пародонтология. — 2005. — №3. —С. 34-37.

13. Грудянов А.И., Ерохин А.И. Хирургические методы лечения заболеваний пародонта. — М.: Медицинское информационное Агентство, 2006. — С. 82-90

14. Давидян A.J1. Использование альтернативного источника свободного соединительнотканного трансплантата // Пародонтология. — 2007.— №4.—С. 35-39.

15. Ерохин А.И., Бондаренко О.В. Метод оценки эффективности предимплантологической аугментации // Пародонтология. — 2010. — Т. XV. — С. 44-50

16. Ерохин А.И. Хирургическое лечение хронического пародонтита, протекающего в условиях тонкого биотипа пародонта // Пародонтология. — 2011. — Т. 16. — №3. — С. 60-65.

17. Жданов Е.В., Февралева А.Ю. Анализ значения десневого фенотипа при выборе хирургического метода закрытия рецессии десны // Пародонтология. — 2006. — №1. — С. 33-39.

18. Жданов Е.В, Савич О.В, Февралев А.Ю. Влияние этиологических факторов развития рецессий на выбор тактики и результат хирургического лечения // Новое в стоматологии. — 2005.— №5.— С. 53-60.

19. Колесников JI.JI., Чукбар A.B. Анатомия зубов. — М.: Медицина XXI, 2007. — 49 с.

20. Кострюков Д.А., Баншева В.И., Райнов H.A., Махова Ф.М. Сравнительное морфологическое изучение использование материалов «Остеоматрикс» и «Биоматрикс» при пародонтологических вмешательствах в эксперименте // Пародонтология. —2007. — №2. (43). — С. 22-27.

21. Курякина Н.В., Кутепова Т.Ф. Применение трансплантатов соединительной ткани для закрытия атрофии // Заболевания пародонта. — М.,2003.— С. 174—175.

22. Лапина С.Л. Контурная пластика альвеолярного отростка соединительнотканным прансплантатом: Дисс. ... канд. мед. наук. — М., 2009. — 117 с.

23. Левицкий В.В., Ряховский А.Н. Новые возможности планирования эстетического результата ортопедического лечения // Клиническая стоматология. — 2008. — №4. — С. 32-36.

24. Лукьяненко A.A., Кравцова A.B. Эффективность различных методик коррекции преддверия полости рта на этапе подготовки к ортопедическому, имплантологическому, ортодонтическому лечению // Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Медицина. — 2009. — №4. — С. 141-143.

25. Модина Т.Н., Ганжа И.Р. Использование факторов роста при хирургическом лечении десневой рецессии // Дентап Юг. — 2008. — №8 (57). — С. 24-25.

26. Мураев A.A., Иванов С.Ю., Артифексова A.A., Рябова В.М., Володина Е.В., Полякова И.Н. Изучение биологических свойств нового остеопластического материала на основе недеминерализованногоколлагена, содержащего фактор роста эндотелия сосудов при замещении костных дефектов // Современные технологии в медицины. — 2012 . —№1. — С. 21-26.

27. Мюллер Х.П. Пародонтология. — Львов: ГалДент, 2004. — 256 с.

28. Насименту М.Л., Сержиу Ж., Нету М. Применение модифицированной методики валика для увеличения объема гребня перед установкой имплантатов: Клинический случай // PerioIQ. — 2006. —№3. —С.49-56.

29. Орландо Д. Двуслойный СТТ на ножке для увеличения размеров альвеолярного гребня // PerioiQ. — 2006.— №5. — С. 76-82.

30. Павленко A.B., Горбань С.А., Илык Р. Р., Shterenberg А., Остеоиластические материалы в стоматологии: прошлое, настоящее, будущее // Современная стоматология. — 2008. — №4 (44). — С. 18.

31. Перова М.Д., Фомичева Е.А., Хаджиева Э.Г. Клиническая оценка отдаленных результатов хирургической коррекции рецессии тканей пародонта // Медицинский вестник Северного Кавказа. — 2008. — Т. 12. — №4. — С. 38^42.

32. Перова М.Д., Фомичева Е.А. Результаты когортного ретроспективного исследования рецессии тканей пародонта // Дентал Юг. — 2008. — №8 (57). — С. 20-23.

33. Рунова Г.С., Гугкаева З.Д. Ликвидация рецессий, современный подход к пластической периодонтальной хирургии // Российская стоматология. — 2011. — №6. — С. 51-54.

34. Ряховский А.Н., Юмашев A.B., Левицкий В. В. Способ построения трехмерного изображения лица и зубных рядов, сопоставленных в корректном друг относительно друга положении: Патент РФ на изобретение №2306113. — Бюл. №26 от 20.09.2007.

35. Ряховский А.Н. Цифровая стоматология. -— М.: Дельта-Рамис. — 2010.—282 с.

36. Степанов А.Е. Френулопластика, вестибулопластика и основные операции на тканях пародонта. — М.: Паритет. 2000. — 368 с.

37. Степанова И.И. Применение фибробластов в пародонтологии и имплантологии // Клеточные технологии в биологии и медицине. — 2007. —№3. —С. 165-168.

38. Степанова И.И. Использование аутофибробластов при лечении пациентов с рецессиями слизистой оболочки и дефицитом десны в области зубов и зубных имплантатов: Автореф. дисс... канд. мед. наук. — 2009. — 25 с.

39. Сухарский И.И. Оптимизация хирургического этапа дентальной имплантации на основании компьютерного моделирования: Автореф. дисс.... канд. мед. Наук. — М., 2013. — 25 с.

40. Тарасенко С .В., Ашурко И.П. Кератинизированная прикрепленная десна вокруг дентальных имплантов: роль, строение, методы увеличения // Стоматология. — 2015. [Статья в печати].

41. Февралева, А.Ю. Субэпителиальный соединительнотканный трансплантат на питающей ножке (в модификации A. Sclar) // Пародонтология. — 2010. — №4 (57). — С. 66-68.

42. Февралева А.Ю., Давидян A.JI. Устранение рецессии десны: планирование, современные методы лечения, прогноз. — М.: Поли Медиа Пресс. — 2007. — 151 с.

43. Хрупкин В.И. Ивашкин А.Н., Писаренко JI.B. Использование жизнеспособных криоконсерви-рованных аллодермотрансплантатов в лечении раневых дефектов мягких тканей // Вестник хирургии им. И.И. Грекова. — 2002. — Т. 161. —№5. —С. 5-59.

44. Abrahamsson I, Berglundh Т, Glantz Р.-О, Lindhe, J. The mucosal attachment at different abutments. An experimental study in dogs // J. Clin. Periodontol. — 1998. — Vol.25. — P. 721-727.

45. Abrams L. Augmentation of the deformed residual edentulous ridge for fixed prosthesis // Compend Contin Educ Gen Dent. — 1980. — Vol. 1(3). —P. 205-213.

46. A?il Y, Zhang X, Nitsche T, Möller В, Gassling V, Wiltfang J, Gierloff M. Effects of different scaffolds on rat adipose tissue derived stroma cells // J. Craniomaxillofac. Surg. — 2014. — Vol. 42 (6). — P. 825-34.

47. Batista E. L., Batista F. C., Novaes A. B. Management of soft tissue ridge deformities with acellular dermal matrix, clinical approach and outcome after 6 months of treatment // J. Periodontol. — 2001. — Vol. 72. — P. 265-273.

48. Beitzel K., McCarthy M.B., Cote M.P., Russell R.P., Apostolakos J., Ramos D.M., Kumbar S.G., Imhoff A., Arciero R., Mazzocca A.D. Properties of biologic scaffolds and their response to mesenchymal stem cells // Arthroscopy. — 2014. — Vol. 30 (3). — P. 289-298.

49. Berglundh, T., Lindhe, J., Jonsson, K. & Ericsson, I. The topography of the vascular systems in the periodontal and peri-implant tissues dog // J. Clin. Periodontol. — 1994. — Vol. 21. — P. 189-193.

50. Bhola M, Newell D.H., Hancock E.B. Acellular dermal allograft for vestibuloplasty an alternative to autogenous soft tissue grafts in preprosthetic surgical procedures: a clinical report // J. Prosthodont. — 2003. —Vol. 12(2). —P. 133-137.

51. Block M.S., Kent J.N., Ardoin R.C., Davenport W. Mandibular augmentation in dogs with hydroxylapatite combined with demineralized bone // J. Oral. Maxillofac. Surg. — 1987. — Vol. 45 (5). — P.414-420.

52. Bragger U., Bürgin W.B., Hammerle C.H., Lang N.P. Associations between clinical parameters assessed around implants and teeth // Clinic. Oral. Implants. Research. — 1997. — Vol. 8. — P. 412-421.

53. Broggini N., McManus L.M., Hermann J.S., Medina R.U., Oates T.W., Schenk R.K., Buser D., Mellonig J.T., Cochran D.L. Persistent acute inflammation at the implant-abutment interfacee// J. Dent. Res. — 2003 — Vol. 82 (3) — P. 232-237.

54. Bunyaratavej P., Wang H.L., Collagen membranes: a review// J. Periodontol. — 2001. — Vol. 72 (2). — P. 215-229.

55. Buser, D., Weber, H.P., Donath, K., Fiorellini, J.P., Paquette, D.W. and Williams, R.C. Soft tissue reactions to non-submerged unloaded titanium implants in beagle dogs // J. Periodontol. — 1992. — Vol. 63. — P. 225235.

56. Cairo F., Pagliaro U., Nieri M. Soft tissue management at implant sites // J. Clin. Periodontol. —2008. — Vol. 35. — P. 163-167.

57. Calesini G., Micarelli C., Coppé S., Scipioni A. Edentulous site enhancement: a regenerative approach for the management of edentulous areas. Part 1. Pontic areas// Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. —

2008. — Vol. 28 (5). — P. 517-523.

58. Cardaropoli D., Cardaropoli G. Healing of gingival recessions using a collagen membrane with a demineralized xenograft: a randomized controlled clinical trial // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. —

2009. — Vol. 29. — P. 59-68.

59. Cardaropoli D., Tamagnone L., Roffredo A., Gaveglio L. Treatment of gingival recession defects using coronally advanced flap with a porcine collagen matrix compared to coronally advanced flap with connective tissue graft: a randomized controlled clinical trial // J. Periodontol. — 2012. — Vol. 83 (3). — P. 321-328.

60. Carnio J., Miller P.D. Increasing the amount of attached gingiva using a modified apically repositioned flap // J. Periodontol. —1999. — Vol. 70. —P. 1110-1117.

61. Chung D.M., Oh T.J., Shotwell J.L., Misch C.E., Wang H.L. Significance of keratinized mucosa in maintenance of dental implants with different surfaces // J. Periodontology. — 2006. — Vol. 77. — P. 1410-1420.

62. Clark H.B. Deepening of Labial Sulcus by Mucosal Flap Advancement. Report of Case//J. Oral. Surg. — 1953.— Vol. 11. —P. 165.

63. Cochran D.L., Nummikoski P.V., Jones A.A., Makins S.R., Turek T.J., Buser D. Radiographic analysis of regenerated bone around endosseous implants in the canine using recombinant human bone morphogenetic protein-2 // Int. J. Oral. Maxillofac. Implants. — 1997. — Vol. 12(6). — P. 739-748.

64. Comut A.A., Weber H.P., Shortkroff S., Cui F.Z., Spector M. Connective tissue orientation around dental implants in a canine model // Clin. Oral. Implants. Res. — 2001. — Vol. 12 (5). — P. 433^140.

65. Cui J., Chen L., Guan X., Ye L., Wang H., Liu L. Surgical planning, three-dimensional model surgery and preshaped implants in treatment of bilateral craniomaxillofacial post-traumatic deformities // J. Oral. Maxillofac. Surg. — 2014. — Vol. 72 (6). — P. 11-38.

66. Cummings L.C., Kaldahl W.B., Allen E.P. Histologic evaluation of autogenous connective tissue and acellular dermal matrix grafts in humans // J. Periodontol. — 2005. — Vol. 76 (2). — P. 178-186.

67. Dominiak M., Mierzwa D., Puzio M., Gedrange T. Clinical evaluation of the effectiveness of using a collagen matrix (Mucograft® prototype) in gingival recession coverage — pilot study // J. Stoma. — 2012. — Vol. 65(2). —P. 184-197

68. Edel A. Clinical evaluation of free connective tissue grafts used to increase the width of keratinised gingival // Periodontal. Clinical. Investigations: Official Publication of the Northeastern Society of Periodontists. — 1998. — Vol. 20. — P. 12-20.

69. Esposito M., Hirsch J.-M., Lekholm U., Thomsen P. Biological factors contributing to failures of osseointegrated oral implants (II). Etiopathogenesis // Eur. J. Oral. Sciences. — 1998. — Vol. 106. — P. 721-764.

70. Fedi P.F., Vernino A.R., John L., Gray J.L. The periodontic syllabus, 4th . ed. — Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins, 2000. — 1030 p.

71. Friedman N. Mucogingival surgery // Texas. Dent. J. — 1957. — Vol. 75 —P. 358.

72. Froum S.J., Froum S.H., Rosen P.S. Successful management of periimplantitis with regenerative approach: A consecutive series of 51 treated implant with 3- to 7,5 years follow-up // Int. J. Periodont. Restor. Dent. — 2012. — Vol. 32 (1). — P. 11-19.

73. Fu J.-H., Yeh C.-Y., Chan H.-L., Tatarakis N., Leong J.M., Wang H.-L. Tissue Biotype and Its Relation to the Underlying Bone Morphology // J. Periodontol. — 2010. — Vol. 81. — P. 569-574.

74. Karring T., Ostergaard E., Loe H. Conservation of tissue specificity after heterotopic transplantation of gingiva and alveolar mucosa // J. Periodontal. Research. — 1971. — Vol. 6. — P. 282-293.

75. Gao Z.R., Hao Z.Q., Li Y. et al: Porcine dermal collagen as a wound dressing for skin donor sites and deep partial skin thickness burns// Burns. — 1992. — Vol. 18. — P. 492.

76. Gapski R., Parks C.A., Wang H.L. Acellular dermal matrix for mucogingival surgery: a meta-analysis // Periodontol. — 2005. — Vol. 76(11). —P. 1814-1822.

77. Gargiulo AW, Wentz FM, Orban B. Dimensions and relations of the dentogingival junction in humans// J. Periodontol. — 1961. — Vol. 32. — P. 261-267.

78. Gasparini D.O. Double-fold connective tissue pedicle graft: A novel approach for ridge augmentation // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 2004. — Vol. 24. — P. 280-287.

79. Ghanaati S. Non-cross-linked porcine-based collagen I-III membranes do not require high vascularization rates for their integration within the implantation bed: a paradigm shift// Acta. Biomater. — 2012. — Vol. 8(8). —P. 3061-3072.

80. Ghanaati S., Schlee M., Webber M.J., Willershausen I., Barbeck M., Balic E., Christoph Gorlach Ch., Stupp S.I., Sader R.A., Kirkpatrick CJ. Evaluation of the tissue reaction to a new bilayered collagen matrix in vivo and its translation to the clinic // Biomed. Mater. — 2011. — Vol. 6. —P. 1-12.

81. Goissis G., Marcantonio E., Marcantonio R.A., Lia R.C., Cancian D.C., De Carvalho W.M. Biocompatibility studies of anionic collagen membranes with different degree of glutaraldehyde cros-linking // Biomaterials.— 1999. — Vol. 20. — P. 27-34.

82. Gordon H.P., Sullivan H.C., Atkins J.H. Free autogenous gingival grafts. II.Supplemental findings—histology of the graft site // Periodontics. — 1968. —Vol. 6(3). —P. 130-133.

83. Griffin T.J., Cheung W.S., Zavras A.I. Postoperative complications following gingival augmentation procedures // J/ Periodontol. — 2006. — Vol. 77 (12). — P. 2070-2079.

84. Guiha R. el Khodeiry S, Mota L, Caffesse R. Histological evalution of healing and revascularization of subepithelial tissue graft // J. Periodontology. — 2001. — Vol. 72. — P. 470-478.

85. Haeri A., Parsell D. Creeping attachment: autogenous graft vs dermal matrix allograft // Compend Contin Educ Dent. — 2000. — Vol. 21(9). — P. 725-729.

86. Hall W.B., Lundergan W.P. Free gingival grafts. Current indications and techniques // Dent. Clin. North. Am. — 1993. — Vol. 37 (2). — P. 227242.

87. Harris R.J., Miller R., Miller L.H., Harris C. Complications with surgical procedures utilizing connective tissue grafts: a follow-up of 500

consecutively treated cases // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 2005. — Vol. 25 (5). — P 449^159.

88. Herford A.S., Akin L., Cicciu M., Maiorana C., Boyne P.J. Use of a porcine collagen matrix as an alternative to autogenous tissue for grafting oral soft tissue defects // J. Oral. Maxillofac. Surg. — 2010. — Vol. 68. —P. 1463-1470.

89. Herford A.S., Lu M., Akin L., Cicciu M. Evaluation of a porcine matrix with and without platelet—derived growth factor for bone graft coverage in pigs // Int. J. Oral. Maxillofac. Implants. — 2012 Vol.; 27(6) P. 1351— 1358.

90. Hermann, J.S., Buser, D., Schenk, R.K., Higginbottom, F.L., Cochran, D.L. Biologic width aroundtitanium implants. A physiologically formed and stable dimension over time // Clinical. Oral. Implants. Research. —

2000. —Vol. 11.—P. 1-11.

91. Hermann, J.S., Buser, D., Schenk, R.K., Schoolfleld J.D., Cochran D.L. Biologic width around one- and two-piece titanium implants. A histometric evaluation of unloaded nonsubmerged and submerged implants in the canine mandible // Clinical. Oral. Implants. Research. —

2001.—Vol. 12.—P. 559-571.

92. Imberman M. Gingival augmentation with an acellular dermal matrix revisited: surgical technique for gingival grafting // Practical. Procedures. Aesthetic. Dentistry. — 2007.— Vol. 19. —P. 123-128.

93. Jahnke P., Sandifer J., Gher M. Thick free gingival and connective tissue autograft for root coverage // J. Periodontol. — 1993. — Vol. 79. — P. 315-322.

94. Jeong S.M., Choi B.H., Li J., Xuan F. The effect of thick mucosa on periimplant tissues: an experimental study in dogs // J. Periodontol. — 2008. — Vol. 79. —P. 2151-2155.

95. Joly J.C., Carvalho A.M., Da Silva R.C., Ciotti D.L., Cury P.R. Root coverage in isolated gingival recessions using autograft versus allograft: a pilot study//Implant. Dent. —2007. — Vol. 16(1). —P. 80-88.

96. Jung R.E., Hurzeler M.B., Thoma D.S., Khraisat A., Hammerle C.H. Local tolerance and efficiency of two prototype collagen matrices to

increase the width of keratinized tissue // J. Clin. Periodontol. — 2011. — Vol. 38(2). —P. 173-179.

97. Jung R.E., Zwahlen R., Weber F.E., Molenberg A., Van Lenthe G.H., Hammerle C.H. Evaluation of an in situ formed synthetic hydrogel as a biodegradable membrane for guided bone regeneration // Clinical. Oral. Implants. Research. — 2006. — Vol. 17. — P 426^133.

98. Kan J.Y., Rungcharassaeng K., Lozada J.L. Bilaminar subepithelial connective tissue grafts for immediate implant placement and provisionalization in the esthetic zone // J. Calif. Dent. Assoc. — 2005. — Vol. 33 (11).—P. 865-871.

99. Kim B.S., Kim Y.K., Yun P.Y. et al. Evaluation of periimplant tissue response according to the presence of keratinized mucosa // Oral. Surg. Oral. Med. Oral. Pathol. Oral. Radiol. Endod. — 2009. — Vol. 107. — P. 24-28.

100. Lee E.-J., Meraw S.J., Oh T.-J., Giannobile W., Wang H.-L. Comparative Histologic Analysis of Coronally Advanced Flap With and Without Collagen Membrane for Root Coverage // J. Periodontol. — 2002. — Vol. 73. —P. 779-788.

101. Lee K.-H., Kim B.-O., Jang H.-S. Clinical evaluation of a collagen matrix to enhance the width of keratinized gingiva around dental implants // J. Periodontal. Implant. Sci. — 2010. — Vol. 40. — P. 96-101.

102. Lee P.-L., Chen L.-S. Increasing the keratinized gingiva of the teeth with a buccally positioned pedicle flap from the palatal mucosa — case report//J. Dent. Sci.— 2006.— Vol. 1 (1). —P. 37-43.

103. Lieberman SM, Ojo RB, Casiano RR., Distant pseudomeningoceles of the ventral skull base: a report of 2 cases // Int. Forum. Allergy. Rhinol. — 2013. — Vol. 3 (12). — P. 1021-1024.

104. Lindhe J., Lang N. P., Karring T. Clinical periodontology and implant dentistry. 4th edition. — Blackwell Munksgaard, 2003. — 1044 p.

105. Lindhe J., Lang N.P., Karring T. Clinical Periodontology and Implant Dentistry. — Blackwell Publishing company, 2008. — 1026 p.

106. Lindhe J., Meyle J. Peri-implant diseases: Consensus Report of the Sixth European Workshop on Periodontology // J. Clin. Periodontol. — 2008. — Vol. 35 (8). — P. 282-285.

107. Liu Y.F., Zhang PY, Zhang QF, Zhang JX, Chen J. Digital design and fabrication of simulation model for measuring orthodontic force // Biomed. Mater. Eng. —2014. —Vol. 24 (6). —P. 2265-2271.

108. Lorenzo R., Garcia V., Orsini M., Martin C., Sanz M. Clinical efficacy of a xenogeneic collagen matrix in augmenting keratinized mucosa around implants: a randomized controlled prospective clinical trial // Clin. Oral Impl. Res. — 2012. — Vol. 23. — P. 316-324.

109. Mahn D.H., Esthetic soft tissue ridge augmentation using an acellular dermal connective tissue allograft // J. Esthet. Restor. Dent. — 2003. — Vol. 15 (2). —P. 72-78.

110. Mao Y.Q., Ohsaki Y., Kurisu K. Immunohistochemical study of the relationship between extracellular matrix and root bifurcation in the mouse molar // Arch. Oral. Biol. — 1990. —Vol. 35 (8). — P. 583-591.

111. Marchetti C., Farina A., Cornaglia A.I. Microscopic, immunocytochemical, and ultrastructural properties of peri-implant mucosa in humans // J. Periodontol. — 2002. — Vol. 73 (5). — P. 555563.

112. Mariotti A., Cochran D.L. Characterization of fibroblasts derived from human periodontal ligament and gingiva// J. Periodontol. — 1990. — Vol. 61 (2). —P. 103-111.

113. Marler J.J., Guha A., Rowley J., Koka R., Mooney D., Upton J., Vacanti J.P. Soft tissue augmentation with injectable alginate and syngeneic fibroblasts // Plast. Reconstr. Surg. — 2000. — Vol. 105 (6). — P. 2049-2058.

114. McGuire MK, Scheyer ET, Nunn ME.A pilot study to evaluate a tissueengineered bilayered cell therapy as an alternative to tissue from the palate // J. Periodontol. — 2008. — Vol. 79 (10). — P. 1847-1856.

115. McGuire M.K., Scheyer ET, Snyder MB. Evaluation of Recession Defects Treated With Coronally Advanced Flaps and Either Recombinant Human Platelet-Derived Growth Factor-BB Plus P-Tricalcium Phosphate or

Connective Tissue: Comparison of Clinical Parameters at 5 Years // J. Periodontol. — 2014 — Vol. 85 (10). — P. 1361-1370.

116. McGuire M.K., Scheyer E.T. Xenogeneic collagen matrix with coronally advanced flap compared to connective tissue with coronally advanced flap for the treatement of dehiscence-type recession defects // J. Periodontol. —2010. —Vol. 81. —P. 1108-1117.

117. Meyenberg K. The ideal restoration of endodontically treated teeth — structural and esthetic considerations: a review of the literature and clinical guidelines for the restorative clinician // Eur. J. Esthet. Dent. — 2013.—Vol. 8 (2). —P. 238-268.

118. Miller P.D. A classification of marginal tissue recession // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 1985. — Vol. 5. — P. 8-14.

119. Miller P.D., Allen E.P. The development of periodontal plastic surgery // Periodontol. — 2000. — 1996. — Vol. 2. — P. 7.

120. Moon, I.S., Berglundh T., Abrahamsson, I., Linder, E. and Lindhe, J. The barrier between the keratinized mucosa and the dental implant. An experimental study in the dog // J. Clin. Periodontol. — 1999. — Vol. 26.—P. 658-663.

121. Mozzo P., Procacci C., Tacconi A., Tinazzi P., Bergamo A. A new volumetric CT machine for dental imaging based on the cone-beam technique: preliminary results // Eur. Radiology. — 1998. — Vol. 9. — P. 1558-156.

122. Needleman I, Tucker R, Giedrys-Leeper E, Worthington HA systematic review of guided tissue regeneration for periodontal infrabony defects // J. Periodontal. Res. — 2002. — Vol. 37 (5). — P. 380-388.

123. Nemcovsky C.E, Artzi Z. Split palatal flap. II. A surgical approach for maxillary implant uncovering in cases with reduced keratinized tissue: technique and clinical results // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 1999. —Vol. 19.—P. 387-393.

124. Nevins M., Nevins M.L., Camelo M., Camelo J.M., Schupbach P., Kim D.M. The clinical efficacy of dynamatrix extracellular membrane in augmenting keratinized tissue // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 2010. —Vol. 30.—P. 151-161.

125. Nevins M., Nevins M.L., Kim S.W., Schupback P., Kim D.M. The use of mucograft collagen matrix to augment the zone of keratinized tissue around teeth: a pilot study // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 2011. —Vol. 31 (4). —P. 367-373.

126. Nevins M.L. Tissue-engineered bilayered cell therapy for the treatment of oral mucosal defects: a case series // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 2010. — Vol. 30. — P. 31-39.

127. Nobuto T., Imai H., Yamaoka A. Microvascularization of the free gingival autograft // J. Periodontol. — 1988. — Vol. 59 (10). — P. 639-646.

128. Novaes A.B., Grisi D.C., Taba M., Grisi M.F. Comparative clinical study of a subepithelial connective tissue graft and acellular dermal matrix graft for the treatment of gingival recessions: six- to 12-month changes // Acad. Periodontol. — 2008. — Vol. 10 (3). — P. 87-94.

129. Nunez J., Caffesse R., Vignoletti F., Guerra F., San Roman F., Sanz M. Clinical and histological evaluation of an acellular dermal matrix allograft in combination with the coronally advanced flap in the treatment of miller class I recession defects: an experimental study in the mini-pig // J. Clin. Periodontol. — 2009. — Vol. 36 (6). — P. 523-531.

130. Okabe K., Yamada Y., Ito K., Kohgo T., Yoshimi R., Ueda M. Injectable softtissue augmentation by tissue engineering and regenerative medicine with human mesenchymal stromal cells, platelet—rich plasma and hyaluronic acid scaffolds // Cytotherapy. — 2009. — Vol. 11 (3). — P. 307-316.

131. Pabst A.M., Wagner W., Kasaj A., Gebhardt S., Ackermann M., AstolfoA., Marone F., Haberthur D., Enzmann F., Konerding M.A. Synchrotron-based X-ray tomographic microscopy for visualization of three-dimensional collagen matrices // Clin. Oral. Investig. — 2014. — Vol.11 (1).—P. 561-564.

132. Paolantonio M., Dolci M., Esposito P. et. al. Subpedicle acellular dermal matrix graft and autogenous connective tissue graft in the treatment of gingival recessions: a comparative 1 year clinical study // J. Periodontol. — 2002. — Vol.73 (11). — P. 1299-1307.

133. Papaioannou K.A., Markopoulou C.E., Gioni V., Mamalis A.A., Vayouraki H.N., Kletsas D., Vrotsos I.A. Attachment and proliferation of human osteoblast-like cells on guided bone regeneration (GBR) membranes in the absence or presence of nicotine: an in vitro study // Int. J. Oral. Maxillofac. Implants. — 2011. — Vol. 26 (3). — P. 509-519.

134. Park J.B. Increasing the width of keratinized mucosa around endosseous implant using acellular dermal matrix allograft // Implant. Dentistry. — 2006.—Vol. 15.—P. 275-281.

135. Peacock M.E., Cuenin M.F., Hokett S.D. Gingival augmentation with a dermal allograft // Gen. Dent. — 1999. — Vol. 47 (5). — P. 526-528.

136. Quirynen M., De Soete M., Van Steenberghe D. Infectious risks for oral implants: a review of the literature // Clin. Oral Impl. Res. — 2002. — Vol. 13. —P. 1-19.

137. Rastogi S., Modi M., Sathian B. The efficacy of collagen membrane as a biodegradable wound dressing material for surgical defects of oral mucosa: A prospective study // J. Oral. Maxillofac. Surg. — 2009. — Vol. 67. —P. 1600.

138. Reiser G.M., Bruno J.F., Mahan P.E. The subepithelial connective tissue graft palatal donor site: anatomic considerations for surgeons // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 1996. — Vol. 16 (2). — P. 130-137.

139. Roccuzzo M., Bunino M., Needleman I., Sanz M. Periodontal plastic surgery for treatment of localized gingival recessions: a systematic review // J. Clin. Periodontol. — 2002. — Vol. 29 (3). — P. 178-194.

140. Romagna-Genon C. Comparative clinical study of guided tissue regeneration with a bioabsorbable bilayer collagen membrane and subepithelial connective tissue graft// J. Periodontol. — 2001. — Vol. 72 (9). —P. 1258-1264.

141. Rothamel D., Schwarz F., Sculean A., Herten M., Scherbaum W., Becker J. Biocompatibility of various collagen membranes in cultures of human PDL fibroblasts and human osteoblast—like cells // Clin. Oral Implants Res. — 2004. — Vol. 15. — P. 443-449.

142. Rotundo R., Pini-Prato G. Use of a new collagen matrix (mucograft) for the treatment of multiple gingival recessions: case reports // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 2012. — Vol. 32 (4). — P. 413-419.

143. Sabolinski M.L., Alvarez O., Auletta M., Mulder G., Parenteau N.L. Cultured skin as a 'smart material' for healing wounds: experience in venous ulcers // Biomaterials. — 1996. — Vol. 17 (3). — P. 311-320.

144. Santos A., Goumenos G., Pascual A. Creeping attachment after 10 years of treatment of a gingival recession with acellular dermal matrix: a case report // Quintessence. Int. — 2011. — Vol. 42 (2). — P. 121-126.

145. Sanz M., Lorenzo R., Aranda J.J., Martin C., Orsini M. Clinical evaluation of a new collagen matrix (Mucograft prototype) to enhance the width of keratinized tissue in patients with fixed prosthetic restorations: a randomized prospective clinical trial // J. Clin .Periodontal. — 2009. — Vol.36. —P. 868-876.

146. Scharf D.R., Tarnow D.P. Modified roll technique for localized alveolar ridge augmentation// Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. 1992. — Vol. 12. —P. 415-425

147. Scheyer E.T., Nevins M.L., Neiva R., Cochran D.L., Giannobile W.V., Woo S.B., King W.N., Spitznagel J.K., Bates D., McGuire M.K. Generation of site-appropriate tissue by a living cellular sheet in the treatment of mucogingival defects// J. Periodontol. — 2014. — Vol. 85(4). — P. e57-64.

148. Schlee M., Ghanaati S., Willershausen I., Stimmlmayr M., Sculean A., Sader R.A. Bovine pericardium based non-cross linked collagen matrix for successful root coverage, a clinical study in human // Head & Face Medicine. — 2012. — Vol. 8. — P. 6-13.

149. Schmitt C.M., Tudor C., Kiener K., Wehrhan F., Schmitt J, Eitner S., Agaimy A., Schlegel K.A. Vestibuloplasty: porcine collagen matrix versus free gingival graft: a clinical and histologic study // J. Periodontol. — 2013. — Vol. 84 (7). — P. 914-923.

150. Schou S., Holmstrup P., Hjorting-Hansen E., Lang N.P. Plaque induced marginal tissue reactions of osseointegrated oral implants: a review of the

literature // Clinical. Oral. Implants. Research. — 1992. — Vol. 3. — P. 149-161.

151. Schwarz F., Rothamel D., Herten M., Sager M., Becker J. Angiogenesis pattern of native and cross-linked collagen membranes: an immunohistochemical study in the rat // Clinical. Oral. Implants. Research. — 2006. — Vol. 17. — P. 403-409.

152. Sclafani A.P, Romo T 3rd, Jacono A. A. Evaluation of acellular dermal graft in sheet (AlloDerm) and injectable (micronized AlloDerm) forms for soft tissue augmentation. Clinical observations and histological analysis // Arch. Facial. Plast. Surg. — 2000. — Vol. 2 (2). P. 130-136.

153. Sculean A., Nikolidakis D., Schwarz F. Regeneration of periodontal tissues: combinations of barrier membranes and grafting materials — biological foundation and preclinical evidence: a systematic review// J. Clin. Periodontol. — 2008. — Vol. 35 (8). —P. 106-116.

154. Sedon C.L., Breault L.G., Covington L.L., Bishop B.G. The subepithelial connective tissue graft: part I. Patient selection and surgical techniques // J. Contemp. Dent.Pract. —2005, —Vol. 156(1). —P. 146-162.

155. Simion M., Rocchietta I., Fontana F., Dellavia C. Evaluation of a resorbable collagen matrix infused with rhPDGF-BB in peri-implant soft tissue augmentation: a preliminary report with 3.5 years of observation // Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 2012. — Vol. 32 (3). — P. 273282.

156. Smukler H., Chaibi M. Periodontal and dental considerations in clinical crown extension: a rational basis for treatment// Int. J. Periodontics. Restorative. Dent. — 1997. — Vol. 17 (5). — P. 464^177.

157. Sullivan H.C., Atkins J.H. Free autogenous gingival grafts. 2 Principles of successful grafting//Periodontics. — 1968. — Vol. 6 (3). —P. 121-129.

158. Sullivan H.C., Atkins J.H. Free autogenous gingival grafts. 3. Utilization of grafts in the treatment of gingival recession // Periodontics. — 1968. — Vol. 6(4). —P. 152-160.

159. Sullivan H.C., Atkins J.H. Free autogenous gingival grafts. 1. Principles of successful grafting// Periodontics. — 1968. — Vol. 6 (1). — P. 5-13.

160. Thakral G., Thakral R., Sharma N., Seth J, Vashisht P. Nanosurface — the future of implants // J. Clin. Diagn. Res. — 2014. — Vol. 8 (5).— P. ZE07-10.

161. Thoma D.S., Jung R.E., Schneider D., Cochran D.L., Ender A., Jones A.A., Gorlach C., Uebersax L., Graf-Hausner U., Hammerle C.H. Soft tissue volume augmentation by the use of collagen—based matrices: a volumetric analysis // J. Clin. Periodontol. — 2010. — Vol. 37. — P. 659-666.

162. Thoma D.S., Sancho-Puchades M., Ettlin D.A., Hammerle C.H., Jung R.E. Impact of a collagen matrix on early healing, aesthetics and patient morbidity in oral mucosal wounds — a randomized study in humans // J. Clin. Periodontol. — 2012. — Vol. 39 (2). — P. 157-165.

163. Thoma D.S., Benic G.I., Zwahlen M., Hammerle C.H., Jung R.E. A systematic review assessing soft tissue augmentation techniques // Clinical. Oral. Implants. Research. — 2009. — Vol. 20 (4). — P. 146165.

164. Thomas M., Allen M.S., Shen K.R., Wigle D.A. A novel use of human acellular dermis for conduit salvage after esophagectomy // Ann. Thorac. Surg. — 2014. — Vol. 97 (4). — P. 1459-1463.

165. Toscano N., Holtzclaw D., Victor S. A Prospective Pilot Study on the Clinical Application of Fibroblast Stem Cells in the Treatment of Miller Class I and II Gingival Recession Defects // J. of Implant & Advanced Clinical Dentistry. — 2011. — Vol. 3 (9). — P. 25-31.

166. Trombelli L., Scabbia A., Tatakis D.N., Checchi L., Calura G. Resorbable barrier and envelope flap surgery in the treatment of human gingival recession defects Case reports// J. Clin. Periodontol. — 1998. — Vol. 25(1). —P. 24-29.

167. Wagshall E., Lewis Z., Babich S.B., Sinensky M.C., Hochberg M. Acellular dermal matrix allograft in the treatment of mucogingival defects in children: illustrative case report // ASDC. J. Dent. Child. —2002. — Vol. 69(1).—P. 39^13.

168. Ware RW. Three-dimensional reconstruction from serial sections// Int. Rev. Cytol. — 1975. — Vol. 40. — P. 325-440.

169. Warrer K., Buser D., Lang N.P., Karring T. Plaque-induced peri-implantitis in the presence or absence of keratinized mucosa. An experimental study in monkeys // Clinical. Oral. Implants. Research. — 1995. —Vol. 6. —P. 131-138.

170. Wei P.C., Laurell L., Geivelis M., Lingen M.W., Maddalozzo D. Acellular dermal matrix allografts to achieve increased attached gingiva. Part 1. A clinical study // J. Periodontol. — 2000. — Vol. 71. — P. 12971305.

171. Wei P.C., Laurell L., Lingen M., Geivelis M. Acellular dermal matrix allografts to achieve increased attached gingiva. Part 2. A histological comparative study // J. Periodontology. — 2002. — Vol. 73. — P. 257265.

172. Wennstrom J., Prato G.P. Mucogingiva therapy. In "Clinical Periodontology and Implant Dentistry" 3rd ed. / Lindhe J ed, Munksgaard, Copenhagen, 1997.—P. 550-596.

173. Wilkins E.M., Clinical Practice of the Dental Hygienist, 9th ed. — Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins, 2005. — 1020 p.

174. Willershausen I., Barbeck M., Boehm N., Sader R., Willershausen B., Kirkpatrick C.J., Ghanaati S. Non-cross-linked collagen type I/III materials enhance cell proliferation: in vitro and in vivo evidence// J. Appl. Oral. Sci. — 2014. — Vol. 22 (1). — P. 29-37.

175. Yan J.J., Tsai A.Y., Wong M.Y., Hou L.T. Comparison of acellular dermal graft and palatal autograft in the reconstruction of keratinized gingiva around dental implants: a case report // Int. J. Periodont. Restorat. Dentistry. — 2006. — Vol. 26. — P. 287-292.

176. Yau H.T., Yang T.J., Chen Y.C. Tooth model reconstruction based upon data fusion for orthodontic treatment simulation // Comput. Biol. Med. — 2014. —Vol. 48. —P. 8-16.

177. Zabalegui I., Sicua A., Cambra J. Treatment of multiple adjacent gingival recessions with the tunnel subepithelial connective tissue graft: a clinical report // Int. J. Periodont. Restor. Dent. — 1999. — Vol. 19. — P. 199.

178. Zadeh H.H. Implant site development: clinical realities of today and the prospects of tissue engineering// J. Calif. Dent. Assoc. — 2004. —-Vol. 32(12). —P. 1003-1010.

179. Zigdon H., Machtei E.E. The dimensions of keratinized mucosa around implants affect clinical and immunological parameters // Clinical. Oral. Implants. Research. — 2008. — Vol. 19. — P. 387-392.

180. Zuhr O., Fickl S., Wachtel H., Bolz W., Huerzler M.B. Covering of gingival recessions with a modified microsurgical tunnel technique: case report // Int. J. Periodont. Restor. Dent. — 2007. — Vol. 27. — P. 457463.