Морфо-функциональное исследование нейрональных сигнальных систем (серотонина и оксида азота) у паразитических плоских червей тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.19, кандидат биологических наук Толстенков, Олег Олегович

• Толстенков, Олег Олегович
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Толстенков, Олег Олегович

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Нейрональные сигнальные системы у паразитических плоских червей цестод и трематод: серотонин и оксид азота.

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Объекты исследования.

2.2. Гистохимический метод определения синтазы оксида азота.

2.3. Иммуноцитохимический метод определения серотонина.

2.4. Окрашивание мускулатуры TRITC-меченным фаллоидином.

2.5. Регистрация сократительной активности мускулатуры прикрепительных органов.

2.6. Регистрация сократительной активности мускулатуры тела цестод.

2.7. Радиометрический метод исследования циклического гуапозинмонофосфата у гельминтов.

Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Нервно-мышечная система трематод.

3.1.1. Allocreadium isoporum.

3.1.2. Paramphistomum cervi.

3.1.3. Echinoparyphium aconiatum.

3.2. Нервно-мышечная система цестод.

3.2.1. Echinococcus multilocularis.

3.2.2. Cysticercus pisiformis.

3.3. Функциональное значение оксида азота в регуляции мышечной активности гельминтов.

3.3.1. Роль оксида азота в регуляции мышечной активности присосок у трематод и цестод.

3.3.2. Роль оксида азота в регуляции двигательной активности цестод.

3.4. Изучение клеточных механизмов действия оксида азота.

Глава 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфо-функциональное исследование нейрональных сигнальных систем (серотонина и оксида азота) у паразитических плоских червей»

Актуальность темы. Паразитические плоские черви представляют многообразную и широко распространённую группу организмов. Они паразитируют в различных органах и тканях животных и человека, вызывая болезни, представляющие большую медицинскую и сельскохозяйственную проблему, поскольку наносят значительный вред здоровью человека и являются причиной больших экономических потерь в сельском хозяйстве. Паразитические плоские черви имеют хорошо развитую нервную систему, которая играет важную роль в реализации различных функций паразитов, включая питание, движение, репродукцию, миграцию, прикрепление к органам и тканям хозяина. В эволюции нервной системы плоские черви занимают стратегически важное положение, поскольку являются самыми простыми организмами с билатеральной симметрией, у которых впервые появляется централизация и цефализация нервных элементов. Исследование наличия, распределения, функционального значения нейромедиаторных систем у гельминтов даёт возможность приблизиться к пониманию сложных эволюционно закреплённых механизмов адаптации паразитического организма к условиям обитания, расширяет представление об основах взаимоотношения паразита и хозяина, а также играет роль при решении фундаментальных проблем эволюции нервной системы, в частности, нейрональных сигнальных систем. Необходимость борьбы с гельминтозами человека и животных, возникновение резистентности к имеющимся химиотерапевтическим препаратам требует поиска новых высокоэффективных и малотоксичных веществ, воздействующих на паразитов. Прогресс в исследовании нейрохимических основ жизнедеятельности гельминтов даст возможность выработать принципиально новый подход в борьбе с паразитическими червями, используя их нервную систему как мишень при химиотерапии. Развитие современных методов - гистохимических, иммуноцитохимических, биохимических и других внесло определённый вклад в исследование нейромедиаторов у паразитических червей. Однако, многие аспекты этого направления в паразитологии остаются недостаточно изученными до сих пор.

Цель и задачи исследования. Целью настоящей работы явилось морфо-функциональное исследование нейрональных сигнальных систем у паразитических плоских червей - трематод и цестод. Основное внимание в работе уделено исследованию классического нейромедиатора - серотонина, а также нового атипичного нейромедиатора, каким является оксид азота.

В задачи работы входило:

1. Изучить наличие и локализацию нейрональных сигнальных веществ — серотонина и оксида азота в нервной системе паразитических плоских червей на примере некоторых представителей цестод и трематод.

2. Изучить наличие и локализацию серотонина и оксида азота на различных стадиях жизненного цикла гельминтов.

3. Изучить организацию мускулатуры стенки тела, прикрепительных органов, органов пищеварительной и репродуктивной систем у различных представителей трематод и цестод.

4. Изучить функциональное значение исследуемых нейромедиаторов в регуляции активности мускулатуры тела и прикрепительных органов цестод и трематод.

5. Изучить клеточный механизм действия нейромедиатора - оксида азота у гельминтов на примере цестоды Hymenolepis diminuta.

Научная новизна.

Получены новые приоритетные данные о наличии и локализации в нервной системе паразитических плоских червей - трех видов трематод (Echinoparyphium aconiatum, Allocreadium isoporum, Paramphistomum cervi) и двух видов цестод {Echinococcus multilocularis, Cysticercus pisiformis,) классического нейромедиатора - серотонина, а также структур, генерирующих оксид азота - новое атипичное вещество со свойствами нейромедиатора.

Установлен характер пространственных отношений между нервными структурами, содержащими исследуемые нейромедиаторные вещества.

Получены новые оригинальные данные об организации мускулатуры стенки тела, прикрепительных органов, репродуктивной системы и ее иннервации у исследованных трематод и цестод.

Впервые получены данные о наличии и локализации серотонинергических и нитроксидергических (NO-ергических) нервных структур на различных стадиях жизненного цикла трематод на примере Е. aconiatum.

Выявлена роль нового нейромедиаторного вещества - оксида азота в регуляции сокращения мускулатуры тела и мускулатуры прикрепительных органов у цестод и трематод.

Показано, что одним из клеточных механизмов влияния нейромедиатора оксида азота у цестоды Hymenolepis diminuta является его воздействие на фермент - растворимую гуанилатциклазу с последующим синтезом циклического гуанилилмонофосфата (цГМФ).

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Новый фактический материал о наличии и локализации в центральных и периферических отделах нервной системы трех видов трематод: Echinoparyphium aconiatum (сем. Echinostomatidae), Allocreadium isoporum (сем. Allocreadiidae), Paramphistomum cervi (сем. Paramphistomatidae) и двух видов цестод: Echinococcus multilocularis, Cysticercus pisiformis (сем Taeniidae) серотонина и структур, генерирующих оксид азота.

2. Серотонин и структуры, генерирующие оксид азота, присутствуют в нервной системе паразитических плоских червей - цестод и трематод на разных стадиях жизненного цикла.

3. Нейрональные сигнальные вещества - оксид азота и серотонин являются вероятными медиаторами нервной системы трематод и цестод и участвуют в регуляции сокращений мускулатуры стенки тела, прикрепительных органов, репродуктивной системы гельминтов.

4. Одним из механизмов клеточного воздействия оксида азота на органы и ткани цестоды Я. diminuta является активация фермента циклической гуанилатциклазы с последующим синтезом вторичного мессенджера -циклического гуанозинмонофосфата.

5. Результаты исследований хорошо согласуются с рабочей гипотезой о том, что серотонинергические и NO-ергические системы являются эволюционно древними и имеют широкое распространение.

Научное и практическое значение работы. Полученные результаты позволяют расширить представления о нейрохимических механизмах жизнедеятельности паразитических червей, а именно о наличии, локализации, функциональной роли и механизме действия нейромедиаторов - серотонина и оксида азота у трематод и цестод. Данные о роли серотонина и оксида азота в регуляции деятельности мускулатуры цестод и трематод могут быть учтены при разработке новых антипаразитарных препаратов. Результаты работы, а также полученный иллюстративный материал использованы в лекционных курсах на биологическом факультете Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова, а также на кафедре биологии с основами генетики Московской медицинской академии им. И.М. Сеченова.

Апробация работы. Материалы диссертационной работы доложены на Международной конференции «Проблемы современной паразитологии», 6-12 октября, 2003г., Петрозаводск; Международной конференции, посвященной 125 летней годовщине К.И. Скрябина и 60-летию со дня основания Лаборатории гельминтологии АН СССР - Института паразитологии РАН, 14-16 апреля, 2004г., Москва; 9-ом Европейском мультиколлоквиуме по паразитологии, 19-24 июля 2004г., Валенсия, Испания; 20-й Международной конференции по ветеринарной паразитологии, 16-21 октября 2005г., Кристчёч, Новая Зеландия; 1-ом симпозиуме Скандинаво-Балтийского общества паразитологов, 26-29 мая, 2005г., Вильнюс, Литва; Всероссийской конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями», 2004, 2005гг., Москва.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 17 работ.

Благодарности. Автор выражает благодарность за предоставленный материал сотрудникам Института систематики и экологии животных СО РАН к. б. н. Юрловой Н.И, к. б. н. Сербиной Е.А, Водяницкой С.Н. (Echinoparyphium aconiatum); д. б. н. Архипову И.А., Всероссийский институт гельминтологии им.

К.И. Скрябина (Paramphistomum cervi); д.б. н. Коваленко Ф.П., Институт тропической медицины и паразитарных болезней им. Е.С. Марциновского (Echinococcus multilocularis); сотрудникам Института Зоологии HAH РА (Cysticercus pisiformis), сотрудникам Института проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН д. б. н. Нечаеву И.В., к. б. н. Костину В.В. за помощь в освоении методики регистрации двигательной активности гельминтов и обработке полученных результатов.

Заключение диссертации по теме «Паразитология», Толстенков, Олег Олегович

ВЫВОДЫ

1. В центральных и периферических отделах нервной системы трематод (Echinoparyphium aconiatum, Allocreadium isoporum, Paramphistomum cervi) и цестод (Echinococcus multilocularis, Cysticercus pisiformis,) обнаружены структуры, генерирующие оксид азота. Указанные структуры выявлены в церебральных ганглиях, церебральной комиссуре, продольных нервных стволах, между волокон мускулатуры прикрепительных органов, дистальных отделов репродуктивной системы цестод и трематод, пищеварительных органов трематод.

2. Структуры, содержащие оксид азота (нитроксидергические) выявлены на различных стадиях развития гельминтов: у редий и церкарий трематоды Echinoparyphium aconiatum, а также у личинок цестоды - Cysticercus pisiformis.

3. В нервной системе трематод (Echinoparyphium aconiatum, Allocreadium isoporum, Paramphistomum cervi) и цестод (Echinococcus multilocularis, Cysticercus pisiformis,) обнаружены серотонинергические структуры. Нервные клетки и волокна, содержащие серотонин, выявлены в церебральных ганглиях, продольных нервных стволах, комиссурах, между мышечными волокнами мускулатуры прикрепительных органов и дистальных отделов репродуктивной системы цестод и трематод. Серотонинергические нервные структуры выявлены у редий и церкарий Е. aconiatum.

4. Применение двойного окрашивания - на серотонинергические и нитроксидергические нервные структуры показало различие в пространственном распределении исследуемых нервных элементов у трематод и цестод.

5. На основании гистохимических, иммуноцитохимических и фармакологических исследований установлено, что регуляция сокращений мускулатуры изученных трематод и цестод осуществляется с помощью серотонинергических и нитроксидергических нервных структур.

6. Оксид азота осуществляет свою функцию как сигнальная молекула у паразитических плоских червей (Н. diminuta) путем увеличения активности фермента растворимой гаунилатциклазы с последующим подъемом уровня циклического гуанозинмонофосфата (цГМФ).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ.

Паразитические плоские черви имеют хорошо дифференцированную нервную систему, которая играет важную роль в интеграции и координации функций паразитов, включая питание, движение, репродукцию, прикрепление к органам и тканям хозяина. Основное внимание в нашей работе было уделено исследованию классического нейромедиатора - серотонина и нового атипичного вещества со свойствами нейромедиатора - оксида азота у трематод и цестод.

Исследования, проведенные нами на трех видах трематод - А. isoporum, Р. cervi, Е. aconiatum, представителей различных семейств, паразитов рыб, птиц и млекопитающих показали наличие хорошо развитой мускулатуры стенки тела, присосок, пищеварительной и репродуктивной систем. Иммуноцитохимические и гитохимические данные свидетельствуют о том, что в центральных и периферических отделах нервной системы исследованных трематод содержатся серотонинергические и нитроксидергические (NO-ергические) нервные структуры. Указанные нервные элементы обнаружены в церебральных ганглиях и связывающих их комиссурах, продольных нервных стволах и поперечных комиссурах. Специфическое окрашивание, свидетельствующее о наличие N0-ергических структур отмечены в мускулатуре стенки тела, между мышечными волокнами ротовой и брюшной присосок, органов пищеварительной и репродуктивной систем. Серотонинергические нервные клетки и волокна обнаружены вблизи ротовой и брюшной прососок, дистальных отделов репродуктивной системы, а также среди мышечных волокон прикрепительных органов.

Результаты соответствующих экспериментов, проведенных на цестодах (Е. multilocularis, С. pisiformis) обнаружили серотонинергические и NO-ергические структуры в ганглиях сколекса, церебральной комиссуре, центральном нервном кольце и продольных нервных стволах. Отмечена иннервация хорошо развитой мускулатуры тела и прикрепительных органов. У Е. multilocularis серотонинергические структуры выявлены также в дистальных отделах репродуктивной системы.

Таким образом, полученные морфологические данные о локализации нейрональных сигнальных систем у исследованных гельминтов свидетельствуют о том, что в регуляции активности мускулатуры стенки тела, присосок, репродуктивной и пищеварительной системы осуществляется с помощью серотонинергических и NO-ергических нервных элементов.

О важной роли исследуемых нейромедиаторов на различных стадиях жизненного цикла гельминтов свидетельствуют наши данные об обнаружении и локализации серотонинергических и NO-ергических нервных элементов у редий и церкарий трематоды Е. aconiatum, а также у личиночной формы цестоды С. pisiformis.

Двойное окрашивание: иммуноцитохимическое на серотонин и гистохимическое на синтазу оксида азота показывает, что указанные структуры локализуются в различных нервных элементах. В то же время, близкое расположение серотонинергических и нитроксидергических нервных клеток и волокон свидетельствует о возможной функциональной кооперации в деятельности данных нейромедиаторных систем у исследованных паразитических плоских червей.

Морфологические данные об участии NO-ергических нервных элементов в регуляции мышечных сокращений были подтверждены в наших исследованиях с использованием фармакологического подхода. Полученные результаты показали, что применение донора и ингибитора оксида азота оказывает влияние на сократительную активность присосок трематод F. hepatica, личинок цестод М. corti, а также мускулатуры стенки тела Т. nodulosus.

Известно, что одним из путей дальнейшего воздействия оксида азота на органы и ткани является активация циклической гуанилатциклазы с последующим синтезом вторичного мессенджера - циклического гуанозинмонофосфата. Наличие этого пути сигнализации было показано в отношении некоторых позвоночных и беспозвоночных животных. Полученные нами данные показали, что оксид азота у гельминтов (на примере Н. diminuta) осуществляет свою функцию в качестве сигнальной молекулы, как и у других исследованных в этом отношении животных, путем увеличение активности фермента гуанилатциклазы с последующим подъемом уровня циклического гуанозинмонофосфата (цГМФ).

Результаты исследований хорошо согласуются с рабочей гипотезой о том, что серотонинергические и ЖЗ-ергические сигнальные системы являются эволюционно древними и имеют широкое распространение.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Толстенков, Олег Олегович, 2006 год

1. Александрюк С.П. Роль серотонина в регуляции двигательной активности ленточного гельминта Ligula intestinalis L. // Труды Гельминт. Лаб. 1965. Т. 15. С. 5-25.

2. Анникова Л.В., Пальцева Ю.Н. Нитроксидергическая иннервация гонады двустворчатого моллюска Modiolus kurilensis. И Морфология. 2000. № 3. С. 12-13.

3. Анникова Л.В.,Пименова Е.А., Дюйзен И.В., Вараксин A.A. Локализация NO-ергических элементов в центральной нервной системе двустворчатого моллюска Crenomytilus grayanus. II Ж. эволюц. биохим и физиол. 2000. № 5. С. 442-457.

4. Бисерова Н.М. Нервная система цестод и амфилинид. // Автореф. дисс. на соиск. ст. докт. биол. наук. М. 2004.

5. Бенедиктов И.И. Пути биологического окисления и энергетический обмен у гельминтов и биохимический анализ действия антигельминтиков. // Автореф. дисс. на соиск. ст. докт. биол. наук. М. 1982.

6. Бузников Г.А. Нейротрансмиттеры в эмбриогенезе. // М.: Наука. 1987. 230 с.

7. Галактионов К.В., Добровольский A.A. Гермафродитное поколение трематод. //Л.: Наука, 1987. 193 с.

8. Галактионов К.В., Добровольский A.A. Происхождение и эволюция жизненных циклов трематод. // С.-Пб.: Наука. 1998.404 с.

9. Гинецинская Т.А. Трематоды, их жизненные циклы, биология и эволюция. //Л.: Наука. 1968.411с.

10. Глебов Р.Н. Кржижановский Г.Н. Функциональная биохимия синапсов. // М.: Медицина. 1978. 261 с.

11. Гончарова Г.В. Морфофункциональные изменения нервной и мышечной системы цестоды Hymenolepis папа после воздействия фенасала. // Труды Института паразитол. 1995. Т. XL. С. 5-8.

12. Громова Е.А. Серотонин и его роль в организме. // М.: Медицина. 1966. 183с.

13. Давыдов О.Н., Стражник Л.И., Куровская Л.И.Влияние серотонина на некоторые стороны углеводного обмена цестоды Bothriocephalus gowcongensis. II Докл. Акад. Наук. 1974. Сер Б. Т. 9. С. 853-855.

14. Девойно Л.В., Ильючонок Р.Ю. Моноаминергические системы в регуляции иммунных реакций. // Новосибирск: Наука. Сиб. 1983.

15. Дюйзен И.В., Анникова Л.В., Мотавкин П.А. Локализация NO-синтазы в центральной нервной системе двустворчатых моллюсков. // Биол. моря. 1999. Т. 25. №3. с. 243-245.

16. Жукова Т.Н., Шишов Б.А. Флуоресценция биогенных аминов в нервной системе цестоды Khavia sp. II Матер, конф. "Простые нервные системы, Казань, 1988. С. 99-101.

17. Курский М.Д., Бакшеев Н.С. Биохимические основы механизма действия серотонина. // К.: «Наук, думка», 1974.

18. Люкшина Л.М., Шишов Б.А. Биогенные амины в нервной системе Eudiplozzon nipponicum (Monogenea). II Всесоюзн. конф. Простые нервные системы. Казань, 1988. С. 173-176.

19. Маниковская Н.С. Морфофункциональные особенности пищеварительной системы трематод при формировании системы «паразит хозяин» // Дисс. на соиск. ст. канд. биол. наук. М. 2005.

20. Онуфриев М.В. Синтаза оксида азота при экспериментальных патологиях мозга. // Дисс. на соиск. ст. канд. биол. наук. М. 1997.

21. Планельес Х.Х., Попененкова З.А. Серотонин и его значение в инфекционной патологии. //М.: Медицина. 1965.

22. Поспехова H.A. Шишов Б.А. Серотонинергические элементы нервной системы Microstomaganthus microskrjabini (Cestoda: Hymenolepididae). // Матер, конф. «Простые нервные системы» Казань. 1985. С. 66-68.

23. Поспехова H.A., Шишов Б.А., Плужников J1.T. Гистохимическая реакция на биогенные амины в нервной системе личинки и зрелой цестоды Microsomacanthus microskrjabini. II Паразитология. 1989. Т. 23 № 1. С. 7174.

24. Раевский К. С. Оксид азота новый физиологический мессенджер: возможная роль при патологии центральной нервной системы // Бюллетень эксп. биологии и мед. 1997. Т. 123. № 5. С. 484-490.

25. Теренина Н.Б. Биогенные амины (дофамин, серотонин) в тканях некоторых трематод сем. Plagiorchidae. II Паразитология. 1982. Т XYI. № 5. С. 384-389.

26. Теренина Н.Б. Серотонин и дофамин в тканях цестод Pseudophyllidea. II Ж. эволюц. биохим. и физиол. 1983. Т. 19. №3. С. 302-304.

27. Теренина Н.Б. Сравнительное исследование метаболизма серотонина у гельминтов и их хозяев. // Ж. эволюц. биохим. и физиол. 1991. Т.27. №6. С. 737-742.

28. Теренина Н.Б., Оверчук Е.Б. Серотонин и дофамин в экстрактах из тканей Polystoma integerrimum (Monogenea). II Паразитология. 1988. Т. 22. № 2. С. 160-164.

29. Теренина Н.Б., Густаффсон М.К.С. Нейротрансмиттеры у гельминтов. // М.: Наука. 2003. 178 с.

30. Хайдарлиу С.Х. Нейромедиаторные механизмы адаптации. // Кишинёв: Штиинца, 1989. 180с.

31. Шалаева Н.М., Теренина Н.Б., Оверчук Е.Б. норадреналин и серотонин в тканевых экстрактах. //Доклады Академии наук. 1986. Т. 290 №6. С. 15031505.

32. Шишов Б.А. К изучению нейрохимии нематод и акантоцефал. // Helminthologia, 1974. №. 15. Р. 495-450.

33. Шишов Б.А. Аминергические и холинергические элементы в нервной системе гельминтов. //Труды зоол. ин-та. 1991. Т. 241. С. 112-137.

34. Шишов Б.А., Канев И. Аминергические элементы в нервной системе эхиностоматид и филофталмид. // Паразитология, 1986. Т. 20 № 1. С. 4652.

35. Шишов Б.А., Люкшина Л.М., Щербакова М.А. Постоянство и изменчивость аминергичесих нервных клеток на разных этапах жизненного цикла паразитического плоского червя Fasciola hepatica (Trematoda). //Ж. общей биологии. 1987. Т. XLYIII. № 1. С. 124-135.

36. Шульц Р.С., Гвоздев Е.В. Основы общей гельминтологии. Т. 1. М.: Наука, 1970.492 с.

37. Шульц Р.С., Гвоздев Е.В. Основы общей гельминтологии. Т. 2. М.: Наука, 1972.515 с.

38. Ястребова И.В. Мышечная система некоторых реофильных представителей класса Trematoda. // Дисс. на соиск. ст. канд. биол. наук. М. 2005.

39. Ястребов М.В. Локомоторный аппарат Diplodiscus subclavatus (Pallas, 1760) (Trematoda: Diplodiscidae) // Деп. в ВИНИТИ 13.06.1997а в № 1975-В97. 14 с.

40. Ястребов М.В. Мускулатура тела некоторых трематод и фиксация фаз в эволюции присасывательной функции // Зоол. журн., 19976. Т. 76. № 6. С. 645-656.

41. Abrahams S.L., Northup J.K., Mansour Т. Adenosine cyclic 3,5-monophosphate in the liver fluke, Fasciola hepatica. I. Activation of adenylate cyclase by 5-hydroxytryptamine. // Molec. Pharmacol. 1976. V.12. № 1. P. 958.

42. Aimi Y., Fujimura M., Vincent S.R., Kimura H., Localization of NADPH-diaphorase containing nervous in sensory ganglia of the rat. // J. Сотр. Neurol., 1991. V. 306. P. 382-392.

43. Aimi Y., Kimura H., Kinoshita Т., Minami Y., Fujimura M., Vincent S.R. Histochemical localization of nitric oxide synthase in rat enteric nervous system. //Neuroscience, 1993. V. 53. P. 553.

44. Andreini, G.C., Beretta, C., Faustini, R., Gallina, G. Spectrofluorometric and chromatographic characterization of a butanol extract from Fasciola hepatica. II Experientia. 1970. V. 26. Fasc. 2. P. 166-167.

45. Anya, A.O. The distribution and possible neuropharmacological significance of serotonin (5-hydroxytryptamine) in Aspiculuris tetraptera. II Comp. Gen. Pharmaco., 1973. V. 4. № 4. P. 149-156.

46. Bascal Z.A., Montgomery A., Holden-Dye L., Williams R.G., Walker R.J. Histochemical mapping of NADPH diaphorase in the nervous system of the nematode Ascaris suum. II Parasitology. 1995. V. 110. P. 625-637.

47. Bascal Z.A., Montgomery A., Holden-Dye L., Williams R.G., Thorndyke C., Walker R.J. NADPH diaphorase activity in peptidergic neurons of the parasitic nematode Ascaris suum. II Parasitology. 1996. V. 112. P. 125-134.

48. Beltz B.S., Krawitz E.A. Maping of serotonin-like immunoreactivity in the lobster nervous system. // J. Neurosci. 1983. V. 3. P. 585-602.

49. Bennett, J., Bueding, E., Timms, A.R., Engstrom, R.G. Occurrence and levels of 5-hydroxytryptamine in Schistosoma mansoni. II Molec. Pharmacol. 1969. V. 5. № 5. P. 542-545.

50. Bennett J., Bueding E. Localization of biogenic amines in Schistosoma mansoni. II Comp. Biochem. Physiol. 1971. V. 39. № 4. P. 859-867.

51. Bennett J., Bueding E. Uptake of 5-hydroxytryptamine by Schistosoma mansoni. //Molec. Pharmacol. 1973. V. 9. № 3. P. 311-319.

52. Bennett J.L., Kohler P. Fasciola hepatica: action in vitro of friclabendazole on immature and adult stages. // Expl. Parasitol. 1987. V. 63. № 1. P. 49-57.

53. Bone L.W., Bottier K.P. Oviposition by Trichostrongylus colubriformis (Nematoda) in vitro. Int. J. Invertebr. // Reprod. Develop. 1984. V. 7. № 5. P. 303-309.

54. Bredt S.D. Molecular characterization of nitric oxide synthase. In: S.Vincent (ed).), Nitric oxide in the nervous system. // Aademic Press, London. 1995. P. 1-19.

55. Bredt S.D., Hwang P.M., Snyder S.H. Localization of nitric oxide synthase indicating a neural role for nitric oxide. //Nature. 1990. V. 347. (6295). P. 768770.

56. Bredt S.D., Glatt C.E., Hwang P.M., Fothui M., Dawson T.M., Snyder S.H. Nitric oxide synthase protein and mRNA are discretely localized in neuronal populations of the mammalian CNS together wih NADPH diaphorase. // Neuron. 1991. V. 7. P. 615-624.

57. Bredt D.S., Snyder S.H. Nitric oxide mediates glutamate-linked enhancement of cGMP levels in the cerebellum. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. V. 86. № 22. P. 9030-9033.

58. Bredt S.D., Snyder S.H. Nitric oxide, a novel neuronal messenger. // Neuron. 1992. P. 3-11.

59. Bredt S.D., Snyder S.H. Nitric oxide: A physiological messenger molecule. // Ann. Rev. Biochem. 1994. V. 63. P. 175-195.

60. Breer, H., Shepherd, G.M. Implication of the NO/cGMP system for olfaction. // TINS. 1993. V. 16. P. 5-9.

61. Brownlee D.J.A., I. Fairweather, C.F.Johnston, M.T.Rogan. Immunocytochemical localization of serotonin (5-HT) in the nervous system ofthe hydatid organism, Echinococcus granulosus (Cestoda, Cyclophyllidea). // Parasitology 1994. V. 109. P. 233-241.

62. Briining, G. Localization of NADPH-diaphorase in the brain of the chicken. // J. Compar. Neurol. 1993. V. 334. № 2. P. 192-208.

63. Budziakowski, E., Mettrick, D.F. Aminergic neurons of the anterior nervous system of the rat Acanthocephalan Moniliformis dubius. II J. Neurology. 1983. V. 14. №4. P. 313-325.

64. Burton P.R. A histochemical study of vitelline cells, egg capsules, and Mehlis gland in the frog lung fluke, Haemonchus medioplexus. II J. Exp. Zool. 1963. V. 154. P. 247-258.

65. Calza L., Giardine L., Ceccalelli S. NOS, mRNA in the paraventricular nucleus of young and old rats after immobilization stress. // Neuroreport. 1993. V. 4. P. 627-630.

66. Cattell V., Jansen A. Inducible nitric oxide synthase in inflammination. // Histochem . J. 1995. V. 27. № 10. P. 777-784.

67. Catto B.A. Schistosoma mansoni: Decarboxilation of 5-hydroxytryptophan, L-Dopa, and L-histidine in adult and larval schistosomes. // Experimental. Parasitology. 1981. V. 51. № 1. P. 152-157.

68. Catto B.A., Ottesen E.A. Serotonin uptake in schistosomules of Schistosoma mansoni. II Compar. Biochem. Physiol. 1979. V. 63C. № 2. P. 235-242.

69. Cho C.H., Mettrick D.F. Effects of 5-hydroxytryptamine and histamine on establishment, production and reproduction by Hymenolepis diminuta in the final and intermediate hosts. // Can. J. Zool. 1982a. V. 60. № 4. P. 725-728.

70. Cho C.H., Mettrick D.F. Circadian variation in the distribution of Hymenolepis diminuta (Cestoda) and 5-hydroxytryptamine levels in the gastrointestinal tract of the laboratory rat. // Parasitology. 1982b. V. 84. № 3. P. 431-442.

71. Chou, T.C.T, Bennett, J., Bueding, E.J. Occurrence and concentrations of biogenic amines in trematodes. // J. Parasitol. 1972. V. 58. № 6. P. 1098-1102.

72. Colasanti M., Lauro G.M., Venturini G. NO in hydra feeding response. // Nature, London. 1995. V. 374. P. 505.

73. Coons A.H., Leduc, E.H., Connolly, J.M. Studies of antibody production. I. A method for the histochemical demonstration of specific antibody and its application to a study for the hiperimmune rabbit. // J. Exper. Med. 1955. V. 102. P. 49-60.

74. Cooper, J.R., Melcer, J. The enzymic oxidation of tryptophan to 5-Hydroxytryptophan in the biosynthesis of serotonin. // J. Pharmacol. Exp.Ther. 1961. V. 132. P. 265-268.

75. Dawson T.M., Bredt D.S., Fotui M., Hwang P.M., Snyder S.H. Nitric oxide synthase and neuronal NADPH diaphorase are identical in brain and peripheral tissue. // Proc. Natn. Acad. Sci. U.S.A., 1991. V. 88. P. 7797-7801.

76. Del-Cas, E., Dhainaut-Courtois, N., Dhainaut, A., Vernes, A. Ultrastructural localization of tritiated 5-HT in adult Schistosoma mansorti. II A preliminary report. Biol. Cellulaire, 1979. V. 35. P. 321-324.

77. Dixon, K.R., Mercer, F.H. The fine structure of the nervous system of the liver fluke Fasiola hepatica L. // J. Parasitol. 1965. V. 51. № 6. P. 967-976.

78. Dorsey, C.H., Cousin, E. Schistosoma mansorti: a new parenchima cell in cercariae. //Expl. Parasitol. 1986. V. 61. № 1. P. 33-41.

79. Dorsey CH, Cousin CE, Lewis FA, Stirewalt MA. Ultrastructure of the Schistosoma mansoni cercaria. // Parasitology, 2002 V.33, №3 P. 278-323.

80. Douglas W.W. 5-hydroxytryptamine and antagonists; polypeptides -angiotensin and kinins. // In: The pharmacological basis of therapeutics. London Toronto, 1966. P.644-664.

81. Dow J.A.I., Maddrell S.H.P. Fluid secretion by the malpigian tubule of Drosophyla melanogaster is stimulated by nitric oxide and cyclic GMP. // J. Physiol. 1993. V. 473. P. 233.

82. Dow J.A.I., Maddrell S.H.P., Davies S., Skaer N., Kaiser K. A novel role for the nitric oxide/GMP signalling pathway: the control of epithelial function in Drosophyla. //Am.J.Physiol. 1994. V. 266, P. 1716-1719.

83. Elofsson R., Carlberg M., Moroz L.L., Nezlin L.P, Sakharov D.A. Is nitric oxide (NO) produced by inverterate neurons? // Neuroreport. 1993. V. 4. P. 279-282.

84. Elphick M.R., Green I.C., O'Shea M. Nitric oxide synthesis and action in an invertebrate brain. // Brain Res. 1993a, V. 619. P. 344-346.

85. Elphick, M.R., Riveros-Moreno V., Moncada S., O'Shea M. Identification of nitrergic neurons in invertebrates. //Endothelium, 1993b.V. 1. 9 (suppl), P. 57.

86. Elphick M.R., Green I.C., O'Shea M. Nitric oxide signalling in the insect nervous system. // In: Insect Neurochemistry (Ed. by Borkovec, A.B. and Loeb, M.J.) Boca Raton: CRC Press. 1994. P. 129-132.

87. Elphick M.R., Kemenes G., Staras K., O'Shea M. Behaveoral role for nitric oxide in chemosensory activation of feeding in a mollusk. // J.Neurosci. 1995a. V. 15. P. 7653-7664.

88. Elphick M.R., Reyne R.C., Riveros-Moreno S, Moncada M., O'Shea M. Nitric oxide synthesis in locust olfactory interneurones. // J. Exp. Biol. 1995b. V. 198. P. 821-829.

89. Eriksson K.S. Nitric oxide synthase in the pharynx of the planarian Dugesia tigrina. I I Cell and Tissue Research, 1996. V. 286. P. 407-410.

90. Evans P.D. Biogenic amines in the insect nervous system. // In: Adv.Insect Physiology (Berridge, M.J., Treharne, J.E., Wigglesworth, V.B., Eds.). Ac. Press, New York, London. 1980. V. 5. P. 317-437.

91. Fairweather I., Holmes S.D., Threadgold L. Fasciola hepatica: Motility responce to fasciolicides in vitro. Expl.Parasitology. 1984, V 57 (3), 209-224.

92. Fairweather I., Threadgold L.T. Hymenolepis nana: the fine structure of the adult nervous system. // Parasitology. 1983. V. 86. P. 89-103.

93. Fairweather I., Mcmullan M.T., Johnston, C.F., Halton, D.H., Rogan M.T., Reb H. Serotoninergic and peptidergic nerve elements in the protoscolex of Echinococcus granulosus (Cestoda, Cyclophyllidea). // Parasitol. Res. 1994. V. 80. P. 649-656.

94. Faraci F.M., Brian J. Nitric oxide and the cerebral circulation. // Stroke. 1994. V. 25. P. 692-703.

95. Feelish M., Martin J.F. The early role of nitric oxide in evolution. // Trends in Ecology and Evolution. 1995. V. 10. P. 496-499.

96. Feldberg, W., Myers, R.D. A new concept of temperature regulation by amines in hypothalamus. //Nature, 1963. V. 200. P. 1325 -1326.

97. Fetterer, R.H., Pax, R.H., Bennett, J.L. Schistosoma mansoni: direct methods for simultaneous recording of electrical and motor activity. // Expl. Parasitology. 1977. V. 43. P. 286-294.

98. Folk E.G., Long J.P. Serotonin as neurotransmitter: a review. // Compar. Biochem. Physiol., 1988. V. 91C (1). P. 251-257.

99. Frandsen J.C., Bone L.W. Biogenic amines and their metabolites in the Trychostrongylus colubriformis, a nematode parasite of ruminants. // Comp. Biochem. Physiol. 1987. V. 87C № 1. P. 75-77.

100. Garthwaite J. Glutamate, nitric oxide and cell-cell signalling in the nervous system. //Trends Neurosci. 1991. V. 14. (2). P. 60-67.

101. Garthwaite J., Boulton C. Nitric oxide signalling in the central nervous system. //Annu. Rev. Physiol. 1995. V. 57. P. 683-706.

102. Gelperin A. Nitric oxide mediates network oscillations of olfactory interneurons in a terrestrial mollusc. //Nature, 1994. V. 369. P. 61-63.

103. Gentelman S., Abrahams S.L., Mansour T. Adenosine cyclic 3'5'-monophosphate in the liver fluke, Fasciola hepatica. Activation of protein kinase by 5-hydroxytryptamine. // Molec. Pharmacol. 1976. V. 12. № 1. P. 5968.

104. Green H., Sawyer J.L. Demonsrtation, characterization, and assay procedure of tryptophan hydroxylase in rat brain. // Analyt. Biochem. 1966. V. 15. P. 53-64.

105. Grozdanovic, Z., Baumgarten, H.G., Brüning ,G. Histochemistry of NADPH-diaphorase, a marker for neuronal nitric oxide synthase, in the peripheral autonomic nervous system of the mouse. // Neuroscience. 1992. V. 48. P. 225235.

106. Grozdanovic, Z., Nakos, G., Dahlmann, G., Mayer, B., Gossrau, R. Species-independent expression of nitric oxide synthase in the sarcolemma region of visceral and somatic striated muscle fibres. // Cell and Tissue Research. 1995. V. 281. P. 493-499.

107. Grüner S., Mettrick D.F. The effects of 5-hydroxytryptomine on glucose absorbtion by Hymenolepis diminuta (Cestoda) and by mucosa of the rat small intestine. // Can. J. Zoology. 1984. V. 62 (5). P. 798-803.

108. Gustafsson M.K.S. Synapses in Diphyllobothrium dendriticum (Cestoda). An electron microscopical study. // Ann. Zool., Fennici. 1984. V. 21. P. 167-175.

109. Gustafsson M.K.S. Immunocytochemical demonstration of neuropeptides and serotonin in the nervous system of adult Schistosoma mansoni. II Parasitol. Res. 1987. V. 74 (2). P. 168-174.

110. Gustafsson M.K.S., Holmström. The effect of praziquantel, an antihelminthicum, on the peptidergic nervous system of the tapeworm Diphyllobohrium dendriticum. II Medical Biology, 1985. V. 63. № 1. P. 28-33.

111. Gustafsson M.K.S., Wikgren M.C. Peptidergic and aminergic neurons in adults Diphyllobothrium dendriticum, Nitzsh, 1824, (Cestoda, Pseudophyllidea). // Z. Parasitenkd. 1981. V. 64, 124-134

112. Gustafsson M.K.S., Wikgren M.C., Karhi T.J., Schot L.P.C. Immunocytochemical demonstration of neuropeptides and serotonin in the tapeworm Diphyllobothrium dendriticum. II Cell Tissue Res., 1985. V. 240. № 2. P. 255-260.

113. Gustafsson M.K.S. The neuroanatomy of parasitic flatworms. // Advances in Neuroimmunology. 1992. V. 2. P. 267-286.

114. Gustafsson MK, Fagerholm HP, Haiton DW, Hanzelova V, Maule AG, Reuter M, Shaw C. Neuropeptides and serotonin in the cestode, Proteocephalus exiguous: an immunocytochemical study. // Int J Parasitol. 1995. V.25. № 6. P. 673-82.

115. Gustafsson M.K.S, Lindholm A., Terenina N.B., Reuter M. NO nerves in a tapeworms: NADPH -diaphorase histochemistry in adult Hymenolepis diminuta. II Parasitology. 1996. V. 113. P. 559 565.

116. Gustafsson M.K.S., Lindholm A.M., Mäntylä K., Reuter M., Lundström Ch., Terenina, N. Nitric oxide synthase in parasitic and free-living flatworms. // Hydrobiologia, 1998. P. 1-6.

117. Gyr D., Grüner S., Mettrick D.F. Hymenolepis diminuta: uptake of 5-hydroxytryptamine (serotonin), glukose and changes in worm glycogen levels. // Can. J. Zool. 1983. V. 61. P. 1469-1474.

118. Halton D.W., Maule A.G., Johnston C.F., Fairweather J. Occurrence of 5-hydroxytryptamine (serotonin) in the nervous system of a monogenean, Diclidophora merlangi. II Parasitol. Res., 1987. V. 74. № 2. P. 151-154.

119. Halton D.W., Maule A.G. Flatworm nerve-muscle: structural and functional analysis. // Can. J. Zool. 2003. V. 82. P. 316-333.

120. Halton D.W. Observations on the nutrition of digenetic trematodes // Parasitology, 1967. V. 57. № 4. P. 639-660.

121. Harder A., Abbink J., Andrews P., Thomas H. Praziquantel imprairs the ability of exogenous serotonin to stimulate carbohydrate metabolism in intact Schistosoma mansoni. II Parasitol. Res. 1987. V. 73. № 5. P. 442-445.

122. Hariri M. Occurrence and concentration of biogenic amines in Mesocestoides corti (Cestoda). // J. Parasitol. 1974. V. 60. № 5. P. 737-743.

123. Hariri M. Uptake of 5-hydroxytryptamine by Mesocestoides corti (Cestoda). // .J. Parasitol. 1975. V.61. №3. P. 440-448.

124. Hart J.L. Studies on the nervous system of tetrathyridia (Cestoda: Mesocestoides). //J. Parasitol. 1967. V.53. № 5. P. 1032-1039.

125. Helluy S, Holmes J. C. Serotonin, octopamine, and the clining behavior induced by the parasite Polymorphus paradoxus (acanthocephala) in Gammarus lacustris (Crustaceae). // Com. J. Zool. 1990. V.68. № 6. P. 1214-1220.

126. Higashi G.J., Kreiner P.W., Keirns J.J., Bitensky M.W. Adenosine 3'5'-cyclic monophosphate in Schistosoma mansoni. II Life Sciences. 1973. V. 13. P. 12111220.

127. Hillman C. R., Senft A. W. Schistosoma motility measurement: Responce to drugs. //J. Pharmacol. Exp. Ther. 1973. V.185. P. 177-184.

128. Holmes S.D., Fairweather I. Fasciola hepatica: The effects of neuropharmacological agents upon in vitro motility. I I Expl. Parasitol. 1984. V. 58. №2. P. 194-208.

129. Hope B.T., Michael G.J., Knippe K.M., Vincent S.R. Neuronal NADPH-diaphorase is a nitric oxide synthase. // Proceedings of the National Academy of Sciences, USA. 1991. V.88. P. 2811-2814.

130. Hope B.T., Vincent S.R. Histochemical localization of neuronal NADPH-diaphorase. //J. Histochem. Cytochem. 1989. V.37. P. 653-661.

131. Hrckova G„ D.W.Halton, Maule A.G., Shaw Ch, Johnston C.F. 5-Hydroxytryptamine (Serotonin) immunoreactivity in the nervous system of Mesocestoides corti tetrathyridia (Cestoda: Cyclophyllidea) // J.Parasitol. 1994. V.80. №1. P. 144-148.

132. Hrckova G., D.W.Halton, A.G.Maule, G.P.Brennan, Ch. Shaw, C.F.Johnston. Neuropeptide F-immunoreactivity in the tetrathyridium of Mesocestoides corti (Cestoda: Cyclophyllidea). //Parasitol. Res. 1993. V. 79. P. 690-695

133. Hrckova G., D.W.Halton, A.G.Maule, G.P.Brennan, Ch. Shaw, C.F.Johnston. Neuropeptide F-immunoreactivity in the tetrathyridium of Mesocestoides corti (Cestoda: Cyclophyllidea). //Parasitol. Res. 1993. V.79. P. 690-695.

134. Hrckova G., V., Velenbny S., Halton D.W., Maule A.G. Mesocestoides corti (syn. M. vogae): modulation of larval motility by neuropeptides, serotonin and acetylcholine. //Parasitology. 2002. V. 124. P. 409-421.

135. Huang S, Kerschbaum HH, Hermann A. Nitric oxide-mediated cGMP synthesis in Helix neuronal ganglia. // Brain Research. 1998. V. 780. P. 329336.

136. Ignarro, L.J., Buga, G.M., Wood, K.S., Byrns, R.E., Chaudhuri, G. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1987. V.84. P. 9265-9269.

137. Jacobs B.L., Gelperin A. Serotonin. Neurotransmission and behavior. // MTT Press, Cambridge, Mass. 1981.

138. Jacquot, C., Barreteau, H., Trouvin, J.H., Gayral, P., Leroy, J.P. Putative neurotransmitters in three experimental filariasis models. // Life Sciences. 1986. V.39. № 17. P. 1539-1542.

139. Johansson K.U.I., Carlberg M. NADPH-diaphorase histochemistry and nitric oxide synthase activity in deutocerebrum of the crayfish, Pacifastacus leniusculus (Crustacea, Decapoda). // Brain. Res. 1994. V. 649. P. 36-42.

140. Kar P.K., Tandon V., Saha N. Anthelmintic efficacy of Flemingia vestita: genistain-induced effect on the activity of nitric oxide synthase and nitric oxide in the trematode parasite, Fasciolopsis buski. II Parasitol. Int. 2002. V. 51. P. 249-257

141. Kasschau M., Mansour T.E., Serotonin-activated adenylate cyclase during early development of Schistosoma mansoni. II Mol. And Biochem.Parasitol. 1982a. V. 5. №2. P. 107-116.

142. Kasschau M., Mansour T.E., Serotonin-activated adenylate cyclase during early development of Schistosoma mansoni. II Nature, 1982b. V. 296. № 5852. P. 6668.

143. Kim R.A., Lukacs J., Tanaka R.D., Maclnnis, A.F. Effects of hycanthone and praziquantel on monoamine oxidase and cholinesterase in Schistosoma mansoni. II J. Parasitol. 1981. V. 67. № 1. P. 20-23.

144. Knowles R.G., Moncada S. Nitric oxide synthases in mammals. // Biochem. J. 1994. V. 298. № 2. P. 249-258.

145. Laverty R., Teylor K.M. The fluorometric assay of catecholamines and related compounds. Improvements and extensions to the hydroxyindole technique. // Anal. Biochem. Physiol. 1968. V. 22 (2). P. 269-279.

146. Leake L.D., Moroz L.L. Nitric oxide in the CNS of the leech Hirude medicinalis. // ISIN conference. Abstracts. 1995. P. 42.

147. Lee D.L., Bueding E., Schiller E. L. The occurrence and distribution of 5-hydroxytryptamine in Hymenolepis diminuta and H.nana. II J. Parasitol. 1978. V. 64. № 2. P. 257-264.

148. Machado, C.R.S., Machado, A.B.U., Pellegrino, J. Catecholamine-containing neurons in Schistosoma mansoni. II. Z. Zellforsch. 1972. V. 124. №2. P. 230237.

149. Magee C.A., Cahir, M., Halton D.W., Johnston C.F., Shaw C. Cytochemical observation on the nervous system of adult Corrigia vitta. II J. Helminthology. 1993. V. 67. №3. p. 189-199.

150. Mair G., R., Maule A.G., Show C., Halton D.W. Muscling in on parasitic flatworms. // Parasitology Today. 1998. V.14. P. 73-76.

151. Mair G., R., Maule A.G., Day T.A., Halton D.W. A confocal microscopical study of the musculature of adult Schistosoma mansoni. II Parasitology. 2000. V. 121. P.163-170.

152. Mansour T.E. Effect of serotonin on phenol oxidase from the liver fluke Fasciola hepatica and from other sourses. // Biochim. Biophys. Acta. 1958. V. 30. P. 492-500.

153. Mansour T.E., The effect of serotonin and related compounds on the carbohydrate metabolism on the liver fluke, Fasciola hepatica. // J. Pharmacol. Exp.Ther. 1959. V. 126. № 3. P. 212.

154. Mansour T.E. Effect of serotonin on glycolysis in homogenates from the liver fluke, Fasciola hepatica. //J. Pharmacol. Expl. Ther. 1962. V. 135. P. 94-101.

155. Mansour T.E., Lado, A.D., Hawkins, J.L. Occurrence and possible role of serotonin in Fasciola hepatica. II Federation Proceedings. 1957. V. 16. № 1. P. 319.

156. Mansour T.E., Sutherland E.W., Rail T.W., Bueding E. Effect of serotonin (5-hydroxytryptamine) on the formation of adenosine 3'5'-phosphate by tissue particles from the liver fluke, Fasciola hepatica. II J. Biol. Chem. 1960. V. 235. P. 466-470.

157. Mansour T.E., Le Rouge N.A., Mansour J.M. Activation of phosphofructokinase from the liver fluke Fasciola hepatica by serotonin and 3'5'-AMP. II Biochem Pharmac. 1962. V. 9. P. 149-153.

158. Martinez, A., Riveros-Moreno, V., Polak, J.M., Moncada, S., Sesma, P. Nitric oxide (NO synthase-immunoreactivity) in the starfish Marthasterias glacialis. II Cell Tissue Res. 1994. V. 275. P. 599-603.

159. Mats C. Assay of neuronal nitric oxide synthase by HPLC determination of citrulline. //J. Neurosci. Meth. 1994. V.52. P. 165-167.

160. Maule, A.G., Halton, D.W., Shaw, C., Johnston, C.F. The cholinergic, serotoninergic and peptidergic components of the nervous system of Moniezia expansa (Cestoda, Cyclophyllidea). // Parasitology, 1993. V. 106. P. 429-440.

161. Mayer B. Biochemistry and molecular pharmacology of nitric oxide synthases. // In Nitric Oxide in the Nervous System (ed. Vincent, S.). Academic Press, London. 1995. P. 21-42.

162. McKay D.M., Halton D.W., Johnston C.F., Fairweather J, Shaw C. Occurrence and distribution of putative neurotransmitters in the frog-lung parasite Haplometra cylindracea (Trematoda: Diginea). // Parasitol. Res. 1990. V. 76. №6. P. 509-517.

163. McKay D.M., D.W.Halton, A.G.Maule, C.F.Johnston, C.Shaw, J.Fairweather. Putative neurotransmitters in two monogeneans. // Helminthologia. 1991b. V. 28. P. 75-81.

164. McKay D.M., D.W.Halton, A.G.Maule, C.F.Johnston, J.Fairweather, C.Shaw. Cytochemical demonstration of cholinergic, serotoninergic and peptidergic nerve elements in Gorgoderina vitelliloba (Trematoda: Digenea). Int. J Parasitol. 1991c. V. 21. P. 71-80.

165. McCormick M.I., Nechaev I.V. Influence of Cortisol on developmental rhythms during embryogenesis in a tropical damselfish. // J. Exper. Zool. 2002. V. 293. P. 456-466.

166. Mettrick D.F., Rahman M.S., Podesta R.B. Effect of 5-Hydroxytryptamine (5-HT, serotonin) on the in vitro glucose uptake and glycogen reserves in Hymenolepis diminuta. II Molec. Biochem. Parasitol. 1981. V. 44. №3-4. P. 217-223.

167. Mettrick D.F., Cho C.H. Migration of Hymenolepis diminuta (Cestoda) and changes in 5-HT (serotonin) levels in the rat host following parenteral and oral 5-HT administration. // Can. J. Physiol, and Pharmacol. 1981. V. 59. № 3. P. 281-286.

168. Mettrick D.F., Podesta R.B. Effect of gastrointestinal hormones and amines on intestinal motility and the migration of Hymenolepis diminuta in the rat small intestine. // Int. J. Parasitol. 1982. V. 12. № 2-3. P. 151-154.

169. Mishra, S.K., Sen, R., Ghatak, S. Ascaris lumbricoides and Ascaridia galli: Biogenic amines in adults and development stages. // Expl. Parasitology. 1984. V. 57 №1. P. 34-39.

170. Mishra N, Tandon V. Topography of nervous system in two pouched paramphistomes. // Proc. Indian Acad. Sci. (Anim. Sci.). 1985. V. 94. № 2. P. 129-138.

171. Moncada S., Palmer P.M.J., Higgs E. A. Nitric oxide: physiology, pathophysiology and pharmacology. // Pharmacol. Rev. 1991. V.43. P. 109-142.

172. Moroz, L.L., Nezlin, L.P., Carlberg, M., Elofsson, R., Sakharov, D.A. Do nitric oxide producing neurons occur in invertebrate animals? // Biologicheskie Membrany. 1992. V. 9. P. 1119-1121.

173. Moroz, L.L., Ji-Ho Park, Winlow, V. Nitric oxide activates buccal motor patters in Limnaea stagnalis. II Neuroreport 1993a. V. 4. P. 643-646.

174. Moroz, L.L., Park, J.H. Nitric oxide modulates the central respiratory pattern in Limnea stagnalis. J. Physiol. 1993. V. 473. P. 188.

175. Moroz, L.L., Winlow, W., Turner, R.W., Bulloch, A.G.M., Lukowian, K., Syed, N.J. Nitric oxide synthase- immunoreactive cells in the CNS and periphery of Limnea. // Neuroreport. 1994. V. 5. P. 1277-1280.

176. Muller U. Ca2+ /calmodulin-dependent nitric oxide synthase in Apis mellifera and Drosophila melanogaster. II Eur. J. Neurosci. 1994. V.6. P. 1362-1370.

177. Muller U., Bicker. Calcium activated release of nitric oxide and cellular distribution of nitric oxide synthesizing neurons in the nervous system of the locust. // J. Neurosci. 1994. V. 14. P. 7521-7528.

178. Müller U., Hildebrandt H., The nitric oxide/cGMP system in the antennal lobe of Apis mellifera is implicated in integrative processing of chemosensory stimuli. //Eur. J. Neurosci. 1995. V. 7. P. 2240-2248.

179. El-Naggar MM, Arafa SZ, El-Abbasy SA, Stewart MT, Halton DW. Neuromusculature of Macrogyrodactylus clarii, a monogenean gill parasite of the Nile catfish Ciarías gariepinus in Egypt. // Paras. Research. 2004. V. P. 273-282.

180. Pan JZ, Halton DW, Shaw C, Maule AG, Johnston CF. Serotonin and neuropeptide immunoreactivities in the intramolluscan stages of three marine trematodes parasites. // Parasitol Res. 1994. V.80 №5. P. 388-95.

181. Pax R.A., Bennett J.L., Fetterer R.H. A benzodiazepine derívate and praziquantel: Effects on musculature of Schistosoma mansoni and Sch. japonicum. II Naunyn-Schiedeberg's Arch. Pharmacol. 1978. V. 304. P. 309315.

182. Rahman M.S., Mettrick D.F., Podesta R.B. 5-Hydroxytryptamine, glucose uptake, glycogen utilisation and carbon dioxide fixation in Hymenolepis microstoma (Cestoda). // Comp. Biochem.and Physiol. 1982. V. 73. № 4. P. 901-906.

183. Rahman M.S., Mettrick D.F., Podesta R.B. Effect of 5-hydroxytriiptamine on carbohydrate intermediary metabolism in Hymenolepis diminuta. // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1983. V. 61. № 2. P. 137-143.

184. Rahman M.S., Mettrick D.F., Podesta R.B. Schistosoma mansoni: Effects of in vitro serotonin (5-HT) on aerobic and anaerobic carbohydrate metabolism. // Expl. Parasitology. 1985. V. 60. № 1. P. 10-17.

185. Rand M.J., Li C.G. Nitric oxide in the autonomic and enteric nervous system. In: Nitric oxide in the nervous system (ed. Vincent, S.), Academic Press, London. 1995. P. 228-279.

186. Rees G. Light and microscope studies of the redia of Parorchis acanthus II Nicoll. Parasitology. 1966. V. 55. P. 589-602.

187. Rees G. The histochemistry of cystogenous gland cells and cyst wall of Parorchis acanthus Nicoll and some details of the morphology and fine structure of the cercaria. // Parasitology 1967. V. 57. P. 87-110.

188. Regulski M., Tully, T. Clonning of a Drosophyla nitric oxide synthase. // Abstracts of the meeting on Neurobiology of Drosophila. Cold Spring Harbor, NY. 1993. P. 126.

189. Reuter, M. Immunocytochemical demonstration of serotonin and neuropeptides in the nervous system of Gyrodactylus salaris (Monogenea). // Acta Zoologica (Stokh.). 1987. V. 68. № 3. P. 187-193.

190. Ribeiro J.M.C., Nussenzveig R.H. Nitric oxide synthase activity from a hematophagous insect salivary gland. //FEBS 1993. V. 330. P. 165-168.

191. Ribeiro P., Webb R.A. The synthesis of 5-hydroxytryptamine from tryptophan and 5-hydroxytryptophan in the cestode Hymenolepis diminuta. // Internat. J. Parasitology. 1983a. V. 13. № l.P. 101-106.

192. Ribeiro P., Webb R.A. The occurrence and synthesis of octopamine and catecholamines in the cestode Hymenolepis diminuta. II Mol. Biochem. Parasitol. 1983b. V. 7. № 1. P. 53-62.

193. Ribeiro P., Webb R.A.Characterization of a serotonin transport and adenylate cyclase-linked serotonin receptor in the cestode Hymenolepis diminuta. II Life Sci. 1987. V. 46. № 8. P. 755-768.

194. Richard J., Klein M.J., Stoeckel M.E. Neural and glandular localisation of substance P in Echinostoma caproni (Tramatoda Digenea). // Paras. Resear. 1989. V. 75. P. 641-648.

195. Sakharov, D.A., Cellular aspects of invertebrate neuropharmacology. Ann. Rev. Pharmacol. 1970. V. 10. P. 335-352.

196. Saxena, J.K., Bose, S.K., Sen, R„ Chatterjee, R.K., Sen, A.B., Ghatak, S. Litomosoides carinii: Biogenic amines in microfilariae and adults. // Expl. Parasitology. 1977. V. 43. № 1. P. 239-243.

197. Sebelova S., Stewart M., Mousley A., Fried B., Marks N.J., Halton D.W. The musculature and associated innervation of adult and intramolluscan stages of Echinostoma caproni (Trematoda) visualised by confocal microscopy. // Parasitol. Res. 2004.

198. Skuce PJ, Johanston CF, Fairweather I., Halton DW, Shaw C. A confocal scanning laser microscope study of the peptidergic and serotoninergic components of the nervous system in larval Schistosoma mansoni. II Parasitology. 1990. V. 101. P. 227-234.

199. Shaw M.K., Erasmus D.A. Scistosoma mansoni: The effects of subcurative doze of praziquantel on the ultrastructure of worms in vivo. // Z. Parasitenkd. 1983. V. 69. P. 73-90.

200. Shield J.M. Histochemical localization of monoamines in the nervous system of Dipylidium caninum (Cestoda) by the formaldehyde fluorescence technique. // Int. J. Parasitol. 1971. V.12. P. 135-138.

201. Shishov B.A., Zhuchkova, N.I., Terenina, N.B. Study of monoaminergic nerve cells in some nemnatodes and in trematoda Fasciola hepatica. II In: Proc. 3-rd Intern. Congr. Parasitol. Munich, 1974. V. 3. 1503-1504.

202. Seed J.L., Bennett J.L. Schistosoma mansoni: phenol oxidase role in eggshell formation. //Exp. Parasitol. 1980. V. 49. P. 430-441.

203. Seed, J.L., Kilts C.D., Bennett, J.L. Schistosoma mansoni: Tyrosine, a putative in vivo substrate of phenol oxidase. // Exp. Parasitology. 1980. V. 50. № l.P. 33-44.

204. Smith J.B., Clegg, J.A. Egg shell formation in trematodes and cestodes. // Exp. Parasitol. 1959. V. 8. P. 286-323.

205. Snyder S.H. Nitric oxide: first in a new class of neurotransmitters. // Science. 1992. V. 257. P. 494-496.

206. Stewart M.T., Mousley A., Koubkova B., Sebelova S., Marks N.J., Halton D.W. Gross anatomy of the muscle systems and associated innervation of

207. Apatemon cobitidis proterorhini metacercaria (Trematoda: Strigeidea), as visualized by confocal microscopy. // Parasitology 2003. V. 126. P. 276-282.

208. Stewart M.T., Marks N.J., Halton D.W. Neuroactive substances and associated major muscle systems in Bucephaloides gracilescens (Trematoda: Digenea) metacercaria and adult. // Parasitol. Res. 2004.

209. Sukhdeo, M.V.K., Hsu, S.C., Thompson, C.S., Mettrick, D.F. Hymenolepis diminuta: behavioral effects of 5-hydroxytryptamine, acetylcholine, histamine and somatostatin. // J. Parasitol. 1984. V. 70. № 5. P.682-688.

210. Sulgostowska T., The development of organ systems in cestodes. I. A study of histology of Hymenolepis diminuta (Rudolphy, 1819) (Hymenolepididae). // Acta Parasitol. Polonica. 1972. V. 20. P. 449-462.

211. Tandon V., Kar P.K., Saha N. No nerves in trematodes too! NADPH-diaphorase activity in adult Fasciolopsis buski. II Parasitol. Int. 2001. V. 50. № 3.P. 157-163.

212. Terenina N.B., Gustafsson M.K.S., Reuter M. Serotonin, reserpine, and motility in Mesocestoides tetrathyridia. An experimental spectrofluorimetry and immunocytochemistry study. // Parasitol. Res. 1995. V. 81. P. 677-683.

213. Terenina N., C.Lundstrom, D.Halton, M.Reuter, R.Johnston, M. Gustafsson. Innervation of musculature in trematodes and cestodes. // IX Internat. Congress Parasitol. Proceedings, 1998, Japan. P. 1057-1061.

214. Terenina N.B., M.Reuter, M.K.S.Gustafsson. An experimental, NADPH-diaphorase histochemical and immunocytochemical study of Mesocestoides vogae tetrathyridia. // Internat. J. Parasitol. 1999. V. 29. 787-793.

215. Terenina NB, Onufriev MV, Gulyaeva NV, Lindholm AM, Gustafsson MKS. A radiometric analysis of nitric oxide synthase activity in Hymenolepis diminuta. Parasitology 2000. V. 120. P. 91-95.

216. Terenina N.B., M.K.S.Gustafsson. Nitric oxide and its target cells in cercaria of Diplostomum chromatophorum: a histochemical and immunocytochemical study. // Parasit. Research. 2002. V. 89. № 3. P. 199-206.

217. Terenina N.B., Onufriev M.V., Gulyaeva N.V., Moiseeva Y.V., M.K.S.Gustafsson. Nitric oxide synthase activity in Fasciola hepatica: a radiometric study. Parasitology 2003. V. 126. P. 585-590.

218. Thompson C.S., Mettrick D.F.The effects of 5-hydroxytryptamine and glutamate on muscle contraction in Hymenolepis diminuta (Cestoda). Can. J. Zool. 1989. V. 67. P. 1257-1262.

219. Thompson C.S., Mettrick D.F. Neuromuscular physiology of Hymenolepis diminuta and H.microstoma (Cestoda). Parasitology. 1984. V. 89. № 3. P. 567578.

220. Teyke T. Nitric oxide, but not serotonin, is involved in acquistion of food-attraction conditioning in the snail Helix pomata. II Neurosci. Lett. 1996. V. 206. P. 29-31.

221. Ursone RL, Fried B, Light and scanning electron microscopy of Echinostoma caproni (Trematoda) during maturation in ICR mice. // Parasitol. Res. 1995. V. 81. № l.P. 45-51.

222. Wahlberg M.H. The distribution of F-actin during the development of Diphyllobothrium dendriticum (Cestoda). // Cell and Tissue Research. 1998. V. 291. P. 561-570.

223. Walker R.J. 5-Hydroxytryptamine in invertebration: minireview. // Comp. Biochem. And Physiol. 1984. V. 79. № 2. P. 231-236.

224. Ward S.M., Allen J.M., Kerr G. M. Neuromuscular physiology of Grillotia erinaceus metacestodes (Cestoda: Trypanorhyncha) in vitro. // Parasitology. 1986. V. 93. P. 121-132.

225. Webb, R.A. The organization and fine structure of the musculature of the scolex of the cysticercoid of Hymenolepis microstoma. II J. Morphology. 1977. V. 154. P. 339-356.

226. Webb, R.A. The uptake and metabolism of 5-Hydroxytryptamine by tissue slices of the cestode Hymenolepis diminuta. II Comp.Biochem. Physiol. 1985. V. 80. №2. P. 305-312.

227. Webb R. A., Mizukawa K. Serotoninlike immunoreactivity in the cestode Hymenolepis diminuta. II J. comp. Neurol. 1985. Vol. 234. № 4. P. 431-440.

228. Welsh J.H., Moorhead M. The quantitative sistribution of 5-hydroxytryptamine in the invertebrates, especially in their nervous system. // J. Neurochem. 1960. V. 6. P. 146-169.

229. Wikgren M., Reuter M., Gustafsson M. Neuropeptides in free-leeving and parasitic flatworms (Platyhelminthes). An immunocytochemical study. // Hydrobiologia. 1986. V. 132. P. 93-99.

230. Wikgren M. The nervous system of early larval stages of the cestode Diphyllobothrium dendriticum. II Acta Zool. 1986. V. 67. № 3. P. 155-163.

231. Withyachumnarnkul B., Pongsa-Asawapaiboon, A., Sobhon, P., Upatham, E.S. The neuronal commissural rings of the adult male Schistosoma mansoni. II J. Helminthol. 1987. V.61.№2.P. 169-172.

232. Van den Bosche H. Biology of the tapeworm Hymenolepis diminuta. II Ed. By Hisao P.Arai. Academic Press. 1980. P. 639-693.

233. Vincent, S.R. Localization of nitric oxide in the central nervous system. // In: Vincent, S., Editor. Nitric Oxide in the nervous system. London: Academic press. 1995. P. 83-102.

234. Vincent S., Hope B.T. Neurons that say NO. // Trends Neurosci. 1992. V. 15. № 3. P. 108-113.

235. Vincent S.R., Kimura H. Histochemical mapping of nitric oxide synthase in the rat brain. Neuroscie. 1992, V.46, 755-784.

236. Yong, H.M., Furness, J.B., Shuttlworth, C.W.R., Bredt, D.S., Snyder, S.H. Co-localization of nitric oxide synthase immunoreactivity and NADPH diaphorase staining in neurons of the guenea-pig intestine. // Hystochemistry 1992. V. 97. P. 375-378.

237. Zdarska Z. The gland cells in the tails of cercaria. // Fol. Parasitol. 1969. V. 16. P. 111-120.

238. Zdarska Z. Morphology and histochemistry of the sensory endings in the metacercaria of the trematode Echinoparyphium aconiatum. II Fol. Parasitol. 1975. V. 22. P. 25-31.

239. Zhu X-Z., Luo L-G. Effect of nitroprusside (nitric oxide) on endogenous dopamine release from rat strioatal slices. // J. Neurochem. 1992. V. 59. P. 932935.