Стабильность растений земляники садовой (Fragaria ananassa Duch.) после длительного хранения in vitro тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.07, кандидат сельскохозяйственных наук Рыжкова, Надежда Сергеевна

• Рыжкова, Надежда Сергеевна
• кандидат сельскохозяйственных наук
• 2005

Оглавление диссертации кандидат сельскохозяйственных наук Рыжкова, Надежда Сергеевна

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Коллекции растительных объектов in vitro.

1.1.1. Пересадочные коллекции.

1.1.2. Депонированные коллекции.

1.1.3. Использование методов криоконсервации для сохранения генетических ресурсов.

1.1.3.1. Использование низкотемпературных криобанков для длительного хранения генетической информации.

1.1.4. Нерешенные проблемы, связанные с хранением растительных объектов в условиях in vitro.

1.2. Генетическая стабильность растений при использовании культуры in vitro.

1.2.1. Сомаклональная изменчивость в культуре клеток, возможные причины ее возникновения.

1.2.1.1. Генные мутации.

1.2.1.2. Хромосомные аберрации.

1.2.1.3. Изменения числа хромосом.

1.2.1.4. Нарушение коррелятивных связей при изолировании тканей от растения.

1.2.1.5. Особенности исходного материала.

1.2.1.6. Условия культивирования.

1.2.1.7. Длительность субкультивирования.

1.2.2. Использование сомаклональной изменчивости в селекции.

1.2.3. Появление уклоняющихся форм в процессе микроклонального размножения земляники.

1.3. Цель и задачи исследований.

2. ОБЪЕКТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3. МАТЕРИАЛЫ, МЕТОДИКА И УСЛОВИЯ ПРОВЕДЕНИЯ ЭКСПЕРИМЕНТОВ.

3.1. Состав и приготовление питательных сред.

3.2. Соблюдение стерильных условий при операциях посадок и пересадок.

3.3. Условия культивирования.

3.4. Перевод микроразмноженных растений в нестерильные условия.

3.5. Изучение фертильности пыльцы растений земляники.

3.6. Учеты и наблюдения.

3.7. Обработка результатов.

4. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ОБСУЖДЕНИЕ.

4.1. Влияние длительного хранения in vitro на пролиферирующую способность растений земляники.

4.2. Поведение эксплантов земляники, прошедших этап длительного депонирования in vitro, на этапе укоренения.

4.3. Влияние длительного хранения in vitro на приживаемость и частоту появления аномалий у растений-регенерантов земляники на этапе адаптации.

4.4. Поведение растений земляники различных сортов после длительного культивирования in vitro в полевых условиях.^

4.4.1. Вегетативная продуктивность растений в первый год высадки.

4.4.2. Поведение растений во второй сезон вегетации.

4.4.2.1. Учет генеративной продуктивности, определение сроков цветения и созревания плодов.

4.4.2.2. Изучение фертильности пыльцы.

4.4.2.3. Изучение урожайности.

4.4.2.4. Изучение вегетативной продуктивности.

4.4.2.5. Уклоняющиеся формы у растений земляники в полевых условиях, пестролистность и поражаемость грибными болезнями.\ о j

5. ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ СОДЕРЖАНИЯ КОЛЛЕКЦИЙ ЗЕМЛЯНИКИ IN VITRO.1Ю

РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ.

ВЫВОДЫ.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВ АНЫХ ИСТОЧНИКОВ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Стабильность растений земляники садовой (Fragaria ananassa Duch.) после длительного хранения in vitro»

Актуальность темы. В настоящее время биотехнология - важнейший инструмент внедрения научных достижений в производство. Исследование процессов жизнедеятельности на клеточном и молекулярном уровнях позволили создать необходимые предпосылки возникновения и быстрого развития современной биотехнологии и ее важнейших направлений -генетической и клеточной инженерии (B.C. Шевелуха, 2000).

Современная биотехнология охватывает широкий круг методов, отраслей и задач, объединенных в несколько крупнейших блоков. В частности, в растениеводстве можно выделить следующие направления: 1) микроклональ-ное размножение и освобождение от вирусов (P. Boxus et al., 1984; R.A. Drew et al., 1986; B. Borkowska, 2001; Е.Д. Бондаренко, Н.И. Киссель, 2002); 2) создание новых форм растений с помощью методов генной инженерии (G.S. Warren, 1992; А.В. Поляков, 2002); 3) клеточная селекция с использованием сома-клональной изменчивости в культуре in vitro (В.М. Тюленев, 2000; JI.JI. Бун-цевич, В.В. Захарченко, 2002; Е.А. Гладков и др., 2003); 4) сохранение генетических ресурсов культурных и дикорастущих видов и форм растений (К.К. Kartha, 1984; L.A. Withers, 1995).

Использование методов клеточной и генной инженерии открывает большие возможности для генетической реконструкции организмов в желаемых для исследователей направлениях (А. Атанасов, 1993). Но гены, необходимые для таких инженерных манипуляций должны быть надёжно сохранены в виде банка генов. В связи с этим в практической селекции особое значение имеет сохранение генетически ценных образцов.

С другой стороны, для широкой селекционной работы по выведению новых сортов необходимо сохранение разнообразия видов, подвидов, рас и сортов культурных растений и их ближайших диких сородичей, которые могли быть использованы в качестве доноров ценных признаков (морозоустойчивости, зимостойкости, повышенной устойчивости к патогенам и другим неблагоприятным факторам).

Однако в результате хозяйственной деятельности человека происходит постоянное сокращение естественных ареалов дикорастущих форм и видов растений, что приводит к их гибели. Из-за чего человечество рискует не только потерей ценного генофонда растений, но и нарушением экологического равновесия в целом на планете. По данным, опубликованным в научной литературе (Н.Д. Тарасенко, 2000), в результате иррациональной деятельности человека, ежегодно мировое сообщество теряет 400 - 450 видов растений.

Для сохранения разнообразия растительного мира существуют заповедники, ботанические сады и постоянно возобновляемые коллекции живых растений (Н.М. Иркаева и др., 1993; А.Т. Мокроносов и др., 1994; Э.В. Трускинов, Е.В. Рогозина, 1997; Е.И. Назарова, 2002; Т.Г. Яненко, 2002) и семян (банки семян). К сожалению, заповедники, в которых поддерживаются типичные биогеоценозы, не дают полной гарантии сохранения всех видов растений, произрастающих на их территории. В ботанических садах обычно сохраняются только узкие группы растений или отдельные представители (В.Д. Мануильский, А.Д. Шалин, 1992). Кроме того, для создания таких коллекций требуются значительные земельные ресурсы, а также в полевых условиях возрастает риск самоопыления в популяциях и гибридизации с родственными видами, что может привести к генной эрозии или даже к утере специфичности генотипа (И.Р. Рахимбаев, Ю.И. Ковальчук, 1999).

Дальнейшие возможности открывает банк семян (S.D. Stoyanova, 2001). Однако, для вегетативно размножаемых растений, к которым относится подавляющее большинство плодовых и ягодных растений, банки семян неприемлемы.

Ещё большие трудности возникают при необходимости иметь коллекции оздоровленных экземпляров (репозитории), в которых необходимо предусмотреть меры защиты от возможного повторного заражения (В. А. Высоцкий, 2000).

В последнее время для создания и хранения коллекций все шире привлекаются методы биотехнологии (L.A. Withers, 1995; L. Guarino et al., 2001; P.K. Байбурина и др., 2002; C.D. Le et al., 2002; G. Casazza et al., 2002). В основу этих методов положена возможность поддержания жизнеспособности пробирочных растений или их отдельных органов в течение длительного времени. Преимущество данного способа состоит в том, что позволяет значительно снизить затраты на оздоровление вегетативно размножаемых растений, обеспечить сохранность их ценных форм, сортов и видов, для создания коллекции не нужно большого количества посадочного материала, площади, она не подвержена действию биотических и абиотических факторов.

Для некоторых видов культура ткани является единственно возможным способом сохранения генетического разнообразия. Однако, здесь также имеются некоторые трудности. Во-первых, время хранения таких растений ограничено, и поэтому правильнее рассматривать коллекции in vitro как дополнение к полевым насаждениям. Кроме того, существует риск потери исходных генотипов из-за генетической нестабильности материала в культуре ткани, возникающей в результате сомаклональных вариаций.

Для решения первой проблемы в настоящее время активно ведется разработка методов длительного хранения пробирочных растений. Большое внимание уделяется поиску оптимального состава питательных сред, температурного режима, освещенности, что позволяет добиться удлинения срока хранения материала. Помимо этого, быстрое развитие в области криоконсервации даёт возможность сохранять растительный материал в течение неограниченно длительного периода, несмотря на сложность этого процесса. Тогда как вопрос о влиянии хранения в условиях in vitro на генетическую стабильность сохраняемых образцов растений остается практически незатронутым.

В связи с этим актуальной задачей является наиболее полное изучение влияния хранения in vitro на стабильность проявляемых признаков, как у пробирочных растений, так и у полученных из них растений-регенерантов в полевых условиях.

Научная новизна исследований. Впервые было изучено последействие длительного хранения (более 12 лет) растений земляники в условиях in vitro при низких положительных температурах. Изучена пролиферирующая способность на этапе размножения пробирочных растений. Определены способность к образованию корней и параметры развития корневой системы при перемещении эксплантов на среду укоренения. Установлены процент выживаемости при пересадке растений в нестерильные условия, а также основные типы и частота отклонений, возникающих на этапе адаптации.

Изучено поведение растений-регенерантов в полевых условиях. Проведена оценка их вегетативной и генеративной продуктивности. Установлено влияние длительного хранения in vitro на сроки прохождения фенологических фаз (цветения и созревания плодов). Определены качество пыльцы, величина плодов и биологическая урожайность растений. Выявлены основные типы отклонений, а также степень поражения различными болезнями.

Практическая значимость результатов исследований. Наблюдения за растениями, прошедшими этап длительного хранения в условиях пониженных температур, показали относительно высокую стабильность признаков, присущих исходным растениям. Не было обнаружено серьезных нарушений в процессах пролиферации, ризогенеза, адаптации растений к нестерильным условиям, а также значительных отличий между растениями после хранения и недавно введенными в культуру ткани при изучении их поведения в полевых условиях. Замеченные отклонения встречались как в опыте, так и в контроле и примерно с той же частотой. Таким образом, полученные данные свидетельствуют о возможности включения процесса длительного депонирования in vitro в систему хранения ценных форм, методика регистрации и оценки стабильности проявления признаков может быть рекомендована для аналогичных исследований.

Полученным в результате работы материалом заложены маточные насаждения земляники на лабораторном участке ВСТИСП отделения «Измайлово», а также в СХПК «Племзавод Майский» (Вологодская область).

Результаты работы были доложены на VIII международной конференции «Биология клеток растений in vitro и биотехнология» (9-13 сентября, 2003, Саратов), на Всероссийской научно-практической конференции «Повышение эффективности садоводства в современных условиях» (22 - 24 декабря 2003, Мичуринск), на международной научно-практической конференции «Ягодоводство на современном этапе» (13 - 15 июля 2004 г., Институт плодоводства Национальной академии наук Беларуси), на международной научно-практической конференции «Мобилизация адаптационного потенциала садовых растений в динамичных условиях внешней среды» (24 - 26 августа 2004 г., ВСТИСП, Москва), заседаниях учёного совета ВСТИСП, секции ягодных культур учёного совета ВСТИСП. По результатам исследования опубликовано 5 печатных работ.

Заключение диссертации по теме «Плодоводство, виноградарство», Рыжкова, Надежда Сергеевна

ВЫВОДЫ:

1. После длительного хранения in vitro растения земляники изученных сортов не утрачивают способности к пролиферации, ризогенезу, адаптации к нестерильным условиям, а также цветению и образованию плодов при выращивании в полевых условиях, что свидетельствует о возможности долгосрочного их депонирования (более 12 лет) при низких положительных температурах.

2. В культуре in vitro способность эксплантов земляники к образованию дополнительных побегов различна в зависимости от сорта и числа субкультивирований. В первом субкультивировании коэффициент размножения в вариантах после хранения ниже по сравнению с контролем в среднем на 10 %, тогда как с увеличением числа пассажей коэффициент размножения у эксплантов после хранения увеличивается и превышает контроль в среднем на 12 %.

3. Укоренение микропобегов в большей степени зависит от сортовых особенностей, тогда как длительное депонирование в условиях in vitro существенно не влияет на этот показатель. Однако, побеги от эксплантов, недавно введенных в культуру на этапе ризогенеза, превосходят по параметрам развития корневой системы побеги после хранения: по длине корней в среднем -на 20 % и по числу корней - на 18 %.

4. Растения земляники контрольных вариантов характеризуются лучшей приживаемостью на этапе адаптации, превосходя по этому показателю в среднем на 9 % растения-регенеранты из вариантов после хранения, что является следствием лучшего развития корневой системы у таких экземпляров.

5. Практически у всех изученных сортов на этапе адаптации отмечаются определенные аномалии. Наиболее часто встречаются такие отклонения, как белая штриховатость и аномальная морфология листьев. Однако проявление этих аномалий является нестойким и они элиминируются с течением времени, в отличие от других типов отклонений: многоверхушечности, пестролистности и хлорозов листьев, проявление которых более стойко и зависит от сортовых особенностей растений.

6. Растения, подвергнутые длительному хранению, начинают цвести на 1-2 дня раньше, чем недавно введенные в культуру in vitro. Соответственно сдвигаются и сроки созревания плодов.

7. Фертильность пыльцы в большей степени зависит от сортовых особенностей растений, тогда как длительное хранение в условиях in vitro не влияет на этот показатель.

8. Растения большинства сортов земляники в контроле образуют большее число цветоносов (в среднем на 16 %) и цветков (в среднем на 19 %), чем в опыте, тогда как растения сортов Холидей и Женева после хранения, наоборот, формируют существенно большее количество цветоносов и цветков (в среднем на 74 и 73 % соответственно). Аналогичная ситуация прослеживается и в отношении биологической урожайности.

9. Растения большинства сортов, подверженные хранению, в первый год после высадки образуют больше розеток по сравнению с контролем (в среднем на 16 %), однако большее количество листьев характерно для контрольных растений (в среднем на 8 %). Эти различия сохраняются в большинстве случаев и на второй год выращивания в полевых условиях.

10. Появление симптомов июньской желтухи и других типов отклонений в большей степени зависит от генотипа растений, а хранение in vitro влияет на частоту появления тех или иных аномалий у большинства сортов. Аналогичная ситуация отмечается и в отношении поражения листьев земляники белой и бурой пятнистостями.

Список литературы диссертационного исследования кандидат сельскохозяйственных наук Рыжкова, Надежда Сергеевна, 2005 год

1. Александрова И.В., Аверьянова В.А., Чернышев Р.В. Каллусная ткань и суспензионная культура Hidrastis canadisis L.: ростовые цитогенетические особенности и первичная оценка биосинтетического потенциала // Биотехнология. 2004. - №1. - С.39-46.

2. Атанасов А. Биотехнология в растениеводстве. Новосибирск: ИЦ и ГСО РАН. - 1993 г. - С. 7-8.

3. Бондаренко Е.Д., Киссель Н.И. Особенности клонального микроразмножения in vitro сортов земляники ананасной // Сельскохозяйственная биология. 2002. -№>1.-С.81-84.

4. Высоцкая О.Н. Длительное сохранение in vitro коллекции растений земляники // Физиология растений. 1994. - Т.41 - № 6. - С.935-941.

5. Высоцкая О.Н., Мохаммед А.И., Бутенко Р.Г. Криоконсервация меристем малины (Rubus idaeus L.) изолированных из растений in vitro II Известия АН. Серия биология. 1999. - №1. - С.25 - 29.

6. Высоцкая О. Н., Попов А. С., Бутенко Р. Г. Преимущество глюкозы перед сахарозой при криосохранении меристем земляники // Физиология растений. -1999. Т.46. - №2. - С.300-302.

7. Высоцкий В.А. Возможности создания коллекций ценных форм плодовых и ягодных растений in vitroll Плодоводство и ягодоводство России: Сб. научн. работ/ВСТИСП. М., 2000. - T.VII. - С. 56-61.

8. П.Высоцкий В.А. О генетической стабильности при клональноммикроразмножении плодовых и ягодных культур // Сельскохозяйственная биология. 1995.-№5.-0.57-63.

9. Гладков Е.А., Долгих Ю.И., Бирюков В.В. Отбор солеустойчивых газонных трав с помощью метода биотехнологии // Биотехнология. 2003. - №5.- С.11-15.

10. Долгих Ю.И., Ларина С.Н., Шамина З.Б. Использование методов клеточной и тканевой селекции при получении жаро- и засухоустойчивых форм кукурузы //Физиология растений. 1994. - Т.41. - №1. - С.114.

11. Дорошенко Н.Д. Длительное хранение генофонда винограда in vitro П Виноград и вино России. 2001. - №2. - С.38-40.

12. Дорошенко Н.Д., Соколова Г.В. Способы создания коллекций винограда // Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда. Тез. докл. VII международной конференции (25 28 ноября). Москва.- 1997.-С.521.

13. Дорошенко Н.Д., Хохлова H.A. Способы создания коллекции генофонда "in vitro" // Виноград и вино России.-1993.-№ 6.-С. 32.

14. Ежов B.A., Толстова Г.В. Земляника.-ИПК: «Звезда»-Пермь-2000.1. С.12.

15. Зоринянц С.Э., Смоленская И.Н., Носов A.B. Длительно культивирумая суспензия клеток Triticum timopheevii I. Реорганизация генома // Физиология растений. 1998. - Т. 45. - №1. - С.86-94.

16. Иванов В.Б. Проблема стволовых клеток у растений // Онтогенез. -2003. Т.34. - №4. - С.253-261.

17. Иркаева Н.М., Матвеева Т.В. Реакция генетических линий земляники Fragaria vesca L. на цитокинин in vitro II Генетика растений. 1997. - Т.ЗЗ. - №4. -С. 495-500.

18. Иркаева Н.М., Матина Н.П., Фадеева Т.С. Генетическая коллекция земляники Fragaria vesca L. и перспективы ее использования // Изогенные линии и генетические коллекции: Материалы второго совещания. Новосибирск. -ИЦиГ СОРАН. - 1993. - С.140-142.

19. Исачкин A.B., Воробьев Б.Н., Аладина О.Н. Сортовой каталог. Ягодные культуры. М.: Изд-во ЭКСМО-пресс, Изд-во Лик пресс. - 2001.-416 с.

20. Карнаухов A.B. Проблемы и перспективы создания генетических криобанков для целей сохранения биоразнообразия // Биофизика живой клетки. -1994.-Т. 6.-С. 8-13.

21. Каталог: сорта плодовых, ягодных и цветочно-декоративных культур / Под ред. В.И. Кашина / ВСТИСП. М. - 2000. - 159 с.

22. Кичина В.В., Литвинова В.М., Попова И.В. Сорта ягодных культур для крупных товарных плантаций нечерноземной полосы. В сб.: Выращивание безвирусного посадочного материала плодовых и ягодных культур. - М.- 1972. -С.127-133.

23. Козыренко М.М., Артюкова Е.В. Лауве Л.С., Болтенков Е.В. Анализ генетической изменчивости каллусных культур некоторых видов рода Iris L. // Биотехнология.- 2002. .No 4. - С. 38—48.

24. Козыренко М.М., Артюкова Е.В., Лауве Л.С., Журавлев Ю.Н., Реунова Г.Д. Генетическая изменчивость каллусных линий женьшеня Panax ginseng // Биотехнология. -2001. №1. С.19-26.

25. Коллекция хранения, изучения и размножения растений рода Fragaria / Методическое указание. Ленинград. - 1989. - 54 с.

26. Кударов Б.Р., Емагулов К.Е., Тулегенова Б.Т. Биохимическая гетерогенность каллюсов в культуре пыльников пшеницы // 2 Съезд Всесоюз. о-ва физиоло-гов растений. — Минск (24-29 сентября). 1990: Тез. докл. 4.2. - М. -1992.-С.111.

27. Кулаева О.Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК и белка. М.:Наука. - 1982. - 84с.

28. Кунах В.А. Геномная изменчивость соматических клеток растений. 1. Изменчивость в онтогенезе // Биополимеры и клетка,- 1994. Т. 10. - С. 5-35.

29. Кунах В.А. Геномная изменчивость соматических клеток растений. 2. Изменчивость в природе // Биополимеры и клетка.- 1995. Т. 11. - С. 5 -40.

30. Кунах В.А. Изменчивость растительного генома растений в процессе дедифференцировки и каллусообразования //Физиология растений. 1999. -Т.46.-№6.-С.919-929.

31. Кунах В.А., Можилевская Л.П., Адонин В.И., Губарь С.И. Продуктивность и генетическая структура клеточной популяции женьшеня Panaxginseng в культуре in vitro II Биотехнология. 2003. - №3. - С.25-35.

32. Манжулин A.B., Яшина И.М., Ладыгина Е.А. Оценка растений-регенерантов, полученных из апексов картофеля после глубокого замораживания на сохранение генетической стабильности // Сельскохозяйственная биология. -1985. №10. - С.53-56.

33. Мануильский В.Д., Шалин А.Д. Проблемы длительного хранения растительных объектов в условиях низкотемпературного криобанка// Генетические коллекции растении. Вып. 3. Новосибирск: ИЦРиГ СО РАН. -1992.-С. 6-36.

34. Мардамшин А.Г., Шарафутдинова Г.Г. Влияние длительности культивирования картофеля in vitro на приживаемость растений при переходе от гетеротрофного питания к автотрофному // Биотехнология. — 2000. — № 3. — С. 38-41.

35. Машкина О.С., Табацкая Т.М., Бурдаева JI.M. Методы культуры ткани в лесной генетике и селекции // Лесхоз, информация. 2002. - №6. - С.40.

36. Мокроносов А.Т., Купцова Е.С., Попов A.C. Генетическая коллекция как способ сохранения биоресурсов планеты//Вест. РАН.- 1994.- № 4. С. 991-1001.

37. Молканова О.И., Ветчинчина Е.М., Сучкова Н.К.Сохранение генофонда ценных растений с помощью культуры тканей // VIII International Conference The Biology of Plant Cells In vitro and Biotechnology. Abstract. Saratov, September 9-13. -2003.-C.211.

38. Мохаммед А.И. Микроразмножение, длительное культивирование и крио-сохранение in vitro малины красной // Автореф. Дис. канд. б.н. М. -1998.- 26 с.

39. Олейник Т.Н. Клеточная селекция в культуре картофеля // Биология клеток растений in vitro, биотехнология и сохранение генофонда. Тез. докл. VII Междунар. конф. Москва, 25-28 ноября 1997. М. - 1997. - С.319.

40. Острейко С.А. Роль естественного отбора в онтогенезе растений (основы цитоклональной теории онтогенеза) // Физиология растений. 1985. -Т.32. - Вып. 3.- С.585-603.

41. Острейко С.А., Дроздовский Э.М. Гетерогенность, изменчивость, отбор в организме их теоретическое и практическое значение // Плодоводство и ягодоводство России: Сб. науч. работ /ВСТИСП. - М. - 1998. - Т.5. - С.31-43.

42. Плохинский H.A. Биометрия. Издательство Московского Университета. - 2-е издание. - 1970.- 370 с.

43. Подвигина О.Н., Знаменская В.В., Цупикова JI.A. Депонирование селекционного материала на искусственных питательных средах // Сахарная свёкла.-2000.-№2.-С. 18-19.

44. Поляков A.B. Комплексное использование биотехнологических методов в селекции растений // Достижения науки и техники АПК. 2002. - №10 - С.21-23.

45. Попов A.C. Криосохранение генофонда растений в культурах in vitro II Консервация генетических ресурсов. Материалы XIV раб. совещания / Пущино (28-30 мая). - 1996.-С. 128-129.

46. Попов A.C., Волкова JI.A. Криосохранение и некоторые изменения культуры клеток диоскореи на среде без витаминов // Физиология растений. -1994. Т.41. - №6. - С.923-928.

47. Попов A.C., Тихонова B.JI. Криобанк генетических ресурсов растений в Российской Академии наук // Генетические ресурсы культурных растений. -Меж-дународная научно-практическая конференция: Тез. докл. Спб. - 2001. -С.47-48.

48. Попова И.В., Пелевина В.К. Пестролистность сеянцев земляники // Плодоводство и ягодоводство нечерноземной полосы / Сб. науч. работ. -НИЗИСНП. 1975. - Том VIII. - С.218-224.

49. Попович Е. А., Филипеня В. JI. Влияние экзогенного цитокинина на жизнеспособность эксплантов голубики высокой in vitro II Физиология растений. 1997. - Т.44. - №1. - С. 104-107.

50. Потапов В.А., Кашин В.И., Курсаков А.Г. Методы обработки экспериментальных данных в плодоводстве/ Рекомендации. М.: Колос. - 1997. - 144с.

51. Программа и методика селекции плодовых, ягодных и орехоплодных культур / Под ред. E.H. Седова и Т.П. Огольцовой Орел: Изд-во ВНИИСПК. -1999.-608 с.

52. Расторгуев СЛ., Тюленев В.М. Регенерация растений из изолированных соматических тканей и анализ сомаклональной изменчивости земляники // Бюлл. ВНИИ генетики и селекции растений им. Мичурина. 1995. - Вып. 52. - С. 50-60.

53. Рахимбаев И.Р., Ковальчук И.Ю. Гермоплазма плодово-ягодных культур в Казахстане // Садоводство и виноградарство. 1999. - №3. - С. 20 - 22.

54. Розанов С.И. Место генетических криобанков в решении проблемы сохранения биоразнообразия//Биофизика живой клетки. 1994.-Т. 6.-С. 14-16.

55. Розенберг В. Исследование сомаклонапьной изменчивости у меристемных клонов картофеля // Материалы научной конференции, посвященной 90-летию ученого-семеноведа И.И. Адамова (11-14 июля). -Минск.-2000.-С.52-53.

56. Ротт H.H. Вепринцев Б.Н. Экспериментальные и теоретические предпосылки для решения проблемы сохранения генофонда животных методом консервации // Успехи современной биологии.- 1981. - Т.91. - Вып. 3. - С . 451-466.

57. Самсонова О.Н. Длительное сохранение пробирочных растений земляники: Дисс. . канд. биол. наук М. 1991. -С. 13.

58. Семенас С.Э., Кухарчик Н.В. Методика клонального микроразмножения сортов земляники садовой / Белорусский научно-исследовательский институт плодоводства. Научные труды. - Т. 13. - 2000. - С. 138-145.

59. Сопина С.А., Самыгин Г.А. О механизме защитного действия плазмолизирующих растворов сахарозы при замораживании суспензионных клеток пшеницы // Физиология растений. 1993. - Т.40. - №4. - С.636-641.

60. Стрибуль Т.Ф. Обзор методов криоконсервирования культуры растительных клеток // Проблемы криобиологии — 2000. — № 1. — С. 52—58.

61. Стрибуль Т.Ф., Новиков А.Н., Олейник С.Т. Усовершенствование методов криоконсервирования меристемы винограда // Проблемы криобиологии. -2000. №4.-С. 62-65.

62. Тарасенко Н.Д. Генетические методы сохранения редких и исчезающих видов растений // Материалы II съезда Вавиловского общества генетиков и селекционеров (1-5 февраля 2000 г.). Воронеж. - 2000. - Т. 1. - С. 255.

63. Типовые карты интенсивных технологий по производству посадочного материала плодовых и ягодных культур/Под ред. В.И. Кашина /ВСТИСП.-2001. -73 с.

64. Тищенко E.H., Корж Л.П. Гипометилирование ДНК побегов подсолнечника//Биополимеры и клетка. -2001.-Т. 17. №2. - С. 140-145.

65. Трускинов Э.В., Рогозина Е.В. Оздоровление клоновой коллекциикартофеля в культуре ткани // Физиология растений. 1997. — Т.44. - №3. — С.432-439.

66. Тюленев В.М. Применение биотехнологических методов в генетике и селекции плодовых и ягодных культур / Плодоводство на рубеже XXI в. Минск. -2000. — С.24-25.

67. Тюленев В.М., Соловых Н.В. Сомаклональная изменчивость земляники // Биотехнология. 1999. - №2. - С.34-40.

68. Ульянова Е.К. Длительность хранения земляники in vitro // Научно-технический бюллетень ВИР. 1990. - Вып. 197. - С.57-58.

69. Цоглин Н.В., Габель Б.В. Автоселекционные процессы при микроклонировании растений. Фототрофное размножение in vitro И Физиология растений.- 1994. Т.41. - №3. - С.436-39.

70. Цупикова JI.A. Депонирование и рекультивирование сахарной свеклы в культуре in vitro II Автореф. Дис. канд. б. н. Рамонь. - 2002.- 26 с.

71. Чережанова JI.B., Мелик-Саркисов О.С., Овчинникова В.Н. Цитогене-тический эффект Сахаров // Генетика. 1991. - Т.27. - С.1372-1378.

72. Шамина З.Б. Генетическая изменчивость растительных клеток in vitro/ Культура клеток растений. М.: Наука. 1978. - С.80-93

73. Шевелуха B.C. Проблемы, приоритеты и масштабы сельскохозяйственной биотехнологии в XXI веке // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 2000. - №4. — С.27-31.

74. Шипунова A.A. Кпональное микроразмножение садовых культур: Дисс. ' . канд. с.-х. наук. Москва. 2003. - С. 139-148.

75. Шокаева Д.Б. Сорта земляники, районированные, перспективные и получившие распространение на юге Нечерноземья России / Издательство ОрелГАУ. 2001. - 26 с.

76. Шубакова Н.В. К вопросу о длительном хранении коллекционных образцов черной смородины in vitro II Научно-технический бюллетень ВИР. -1995. Вып. 234. - С.61 -62.

77. Юрцев В.Н. Руководство к лабораторно-практическим занятиям по цитологической и эмбриологической микротехнике /Под ред. Горина А.П. М.: 1961.-64 с.

78. Alleweldt G., Harst-Langenbucher M. Der Einfluss von Wachstuminhibitoren auf die Langzeitlagerung von in vitro Kulture der Rebe // Vitis. 1987. -T. 26.-N2. -S. 57-64.

79. Anderson H.M., Abbott A.J., Wiltsheire S. Micropropagation of strawberry plants in vitro effect of growth regulators on incidence of multi-apex abnormality // Sci. Hort.-1982.-V. 16.-P. 331-341.

80. Bayliss M.W. Chromosomal variation in plant tissues in culture // Int. Rev. Cytol. 1980. - V. 11 A. - P. 113-144.

81. Beauchesne G. Appearance of plants not true to type during in vitro plant propagation. In: E.D. Earle (Ed.). Variability in plants regenerated from tissue cultures.- 1982. P. 268-273. Praeger Publishers, New York.

82. Bekheet S.A., Taha H.S., Saker M.M. In vitro long-term storage of date palm // Biol. Plant. 2002. - 45. - No 1. - P. 121-124.

83. Benson E. E., Wilkinson M., Donally A., Ekuere U, Lyon J. Histological and morphogenetic assessment of plants regenerated from cyopreserved apices of potato // Cryo-Lett. 1995. -16. - № 1. - C. 66.

84. Berlin M.B. Patterns of variability in DNA contend and nuclear in regenerating cultures of Nicotiana tabacum И Cañad. J. Genet. Cytol.-1983.-V. 25. P. 354 - 360.

85. В inns A.N. Developmental variation in plant tissue culture // Environmental and Experimental Botany.- 1981.-V. 21.-N. 3/4.- P. 325-332.

86. Binns A.N., Meins F.J. Habtulacion of tobacco pith cells for factors promoting cell division is heritable and potentially reversible. Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 1973. - V.70. - P.2660-2662.

87. Blakesley D., Kiernan RJ. Cryopreservation of axillary buds of a Eucalyptus granáis X Eucalyptus camaldulensis hybrid // Cryo-Lett. 2001. — 22.1.-C. 13-18.

88. Blaich R. Recherches sur les cultures de meristemes et d'organes de vinge in vitro en vue de la selection et de la conservation de genotypes // Bull O.I.V. 1985.- T.58. № 650/651. - P.391-395.

89. Bochud P., Coppey G., Berthouzoz F. Rapport du Centre d'arboriculture et d'horticulture des Fongires, Station fidirale de rechreches agronomiques de Changius, Conthey, Switzerland. 1981.-P.23-30.

90. Borkowska B. Morphological and physiological characteristics of micropropagated strawberry plants rooted in vitro or ex vitro II Scientia Horticulturae.- 2001. V.89. - No3. - P. 195-206.

91. Boucaud M.T., Helliot B., Brison M. Desiccation and cryopreservation of embryonic axes of peach / // Cryo-Lett. — 1996. Vol. 17. - № 6. — C. 379-390.

92. Boxus P., Quoirin M., Laine J.M. Large scale propagation of strawberry plants from tissue culture. In: J. Reinert & Y.P.S. Bajaj (Eds.) Applied and fundamental aspects of plant, tissue and organ culture. Springer-Verlag, New York. -1977.-P. 130-143.

93. Boxus P., Damiano C., Brasseur E. Strawberry. Handbook of Plant Cell Culture, Crop Species. 1984. - V.3. - P.453-486.

94. Braak J.P. Effect of temperature and light on June yellows in strawberries // Euphytica. 1955. - V.4. - No2. - P. 189-196.

95. Brindgen M.P., Staby G.L. Low Pressure and Low Oxigen Storage of Nicotiana tabacum and Chrysanthemum morifolium Tissue Cultures // Plant Sei. Lett. 1981.-V. 22. №1. - P. 177.

96. Burrows W.J. Incorporation of 3H-adenine into free citokinin autonomus tobacco callus tissue // Biochem. Biophis. Res. Commun. — 1987. 84. - P. 743-748.

97. Cameron, J.S., Hancock J.F. Enhanced vigor in vegetative progeny of micropropagated strawberry plants // Hort Science. 1986. - V.21. - P. 1225-1226.

98. Cameron J.S., Hancock., J.F. Nourse T.M. The field performance of strawberry nurseiy stock produced originally from runners or micropropagation. Adv. Strawberry Prod. 1985. - V.4. - P. 56-58.

99. Casazza G., Savona M., Carli S. Micropropagation of Limonium cordatum (L.) Mill for conservation purposes // J. Hort. Sei. and Biotechnol. 2002. - V.77.1. No5.-C.541-545.

100. ChaleffR. S. Genetics of higher plants / L.: Cambridge Univ. press. 1981. - 250 p.

101. Chaudhuiy R., Chandel K.P.S. Cryopreservation of embryonic axes of almond (Prunus amygdalus Batsch.) seeds // Cryo-Lett. 1995. - Vol.16. -№ 1. - C. 51-56.

102. Chen Liguang, Zheng Yushan. Jiangxi nongye daxue xuebao //Acta Agr. Univ. Jiangxi. — 2000. — 22. № 4. - C. 571-575.

103. Cheng-Zhang Z., Chang-Deng Y., Lian-Bin W. Study on the genetic characters of Hu 18, a haploid Indica rice progeny subcultured for 11 years // Acta Agronomica Sinica. 2000. - V.26. - № 1. - P. 98-103.

104. Cullis C.A. The molecular biology of plant cells and cultures / Plant biotechnology. Oxford etc. - 1992. - Suppl.2. - P. 129-149.

105. D'Amato F. Chromosome number variation in cultured cells and regenerated plants. In: T.A. Thorpe (Ed.). Frontiers of plant tissue culture. International Association of Plant Tissue Culture, U. of Calgary, Canada. 1978. - P. 278-295.

106. Damiano C., Faedi W., Cobianch D. Nursery runner plant production, fruiting and behaviour of micripropagated strawberry plant // Acta Horticulturae. — 1983. V.131. -P.193-200.

107. Dominique D., Block W., Worland R., Reed B. M., Benson E. E. Profiling cryopreservation protocols for Ribes ciliatum using differential scanning calorimetry // Cryo-Lett. 2000. - V.21. - № 6. - C. 367-378.

108. Donovan A.M., Ridout M.S., Jams D.J. Assessment of somaclonal variation in apple I. Resistance to the fire blight pathogen, Erwinia amylovora II Journal of Horticultural Science. -1994. V.69. -No.l. - 105—113.

109. Drew R.A., Herrington M.E., Grebe R.S., Duncalfe F. Tissue culture and subsequent field evaluation of strawberry. Quenn // J. Agric. Anim. Sci. 1986. -V.43.-P. 91-96.

110. Druart P. In vitro germplasm preservation technique for fruit tree // In vitro techniques. Propagation and long term storage. Dordecht etc.- 1985. P. 167-171.

111. Einset J.W. Two effects of cytokinin on the auxin requirement of tobacco callus cultures II Plant. Physiol. 1977. - V.50. - P. 45-47.

112. Ezhova T.A., Bagrova A.M. Cell selection asapossible reason for the specifity of somaclonae variation in pea // Plant Breeding. 1995. - V.l 14. -No.6. - P.520-524.

113. Finnegan R.J., Genger R.K. DNA methilation in plants // Annu. Rev. -1998. V.49. — P.223-247.

114. Fukai S., Goi M. Morphological observations of chrisantemum shoot tips cultured after cryopreservation and freezing // J. Japan. Soc. Yort. Sci. 1990. — Vol. — 59. — No2. — P.383-387.

115. Fukai S., Goi M., Tanaka M. The chimeric structure of the apical dome of chrysanthemum (Dendranthema grandiflorum (Ramat.) Kitam.) is affected by cryopreservation // Sci. hort. (Neth.). 1994. - 57. - № 4. - P. 347-351.

116. Golmirzaie A., Panta A. Advances in potato cryopreservation by vitrification //CIP program report 1995-96. International Potato Center, Lima, Peru.-1997.- P. 71—76.

117. Golmirzaie A., Toledo J. In vitro conservation of potato and sweet potato germplasm // In: Impact on a changing world. CIP program report 1997—98. International Potato Center, Lima, Peru.- 1999. P. 351—356.

118. Gould A.R. Factors controlling variability in vitro In: I.K. Vasil (Ed.) // Cell culture and somatic cell genetics of plants. 1986. - Vol. 3. - P. 549-567.

119. Grout B.W.W., Crisp P. The origin and nature of shoots propagated from cauliflower roots // J. Hoit. Sci. 1980. - Vol.55. - P. 65-70.

120. Guarino L., Libreros D., Astorga C. Genetic resources collecting in Latin America and Caribbean: the past and the future // Plant genetic resources Newsletter. -2001.-N0.128.-P.11-20.

121. Hammerschlag F.A., Werner D.J., Ritchie D.F. Stability of bacterial leaf spot resistance in peach régénérants under in vitro, greenhouse and field conditions // Euphytica. 1994. - Vol. 76. - № 1/2-P. 101—106.

122. Harding K. The methylation status of DNA derived from potato plants recovered from slow growth // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1994. - Vol.37. -P. 31-38.

123. Hartman C., Wintfield M., Core F., Davey M.R., Rode A. Karp A. A. Comparative Study of The Mito-chondrial Genome Organization in in vitro Cultures of

124. Diploid, Tetraploid, and Hexaploid Triticum Species // Theor. Appi. Genet.- 1996. -V.93. P. 968-974.

125. Hausman J.F., Neys O., Kevers C., Gaspar T. Effect of in vitro storage at 4°C on survival and proliferation of poplar shoots //Plant. Cell, Tissue and Organ Cult. —1994.—V.38. -№ 1 .—P. 65—67.

126. Hellman H., Schmidt R. Willmitzer L., Frommer W.B. Identification of Mutants in Metobolically Regulated Gene Expression // Plant. J.- 1997. V. 11. - P. 53-62.

127. Hirai Dai, Shirai Kayo, Shirai Shigehia, Sakai Akira Cryopreservation of in vitro-grown meristems of strawberry (Fragaria ananassa Duch.) by encapsulation-vitrification // Euphytica. 1998 - V.101. - P. 109-115.

128. Hornung R., Holland A., Taylor H.F., Lynch P.T. Cryopreservation of auricula shoot tips using the encapsulation/dehydration technique // Cryo-Lett. 2001.- V.22. № l.-C. 27-34.

129. Hughes J.A. Strawberry June yellows a review // Plant Pathology. - 1989.- Vol.38.-P.146-160.

130. Janeiro L.V., Vieitez A.M., Ballester A. Cryopreservation of somatic embryos and embryonic axes of Camelleia japonica L. // Plant Cell Repts. 1996. - 15.- № 9. C. 699-703.

131. Jones O.P., Wller B.A., Beeda M.G., Radlow W.C.C. Strawberry somacloning. In programme 26/85: Plant physiology and biochemistry: Improvement of plant and crop productivity. Rep. E. Mailing Res. STN for 1985. P.161.

132. Jungnickel F. Biotechnology in agriculture and forestry // Crops II. Edited by Y.P.S. Bajaj. Springer-Verlag Berlin Heidelburg New-York London Paris ToKyo. -1988.-Vol. 6.-P. 38-103.

133. Jungnickel F., Glimeroth K. Zur Stabilitat axenischer Kulturen von Fragaria und Rubus II Arch. Gartenbau. Berlin 35. - 1987. - 8. - S. 405-415.

134. Jungnickel F., Glimeroth K., Borck B. Fifteen years of axenic germplasm preservation in strawberry varieties // International symposium Plant tissue and cell culture application to crop improvement Czechoslovakia. 24-29 September. 1984. - P.557-558.

135. Karp A. Can genetic instability be controlled in plant tissue cultures? // Intl. Assoc. Plant Tiss. Cult. Newsletter. 1989. - Vol.58. - P.2-11.

136. Kartha K.K. Tissue culture techniques for virus elimination and germplasm preservation // Plant breeding reviews. — 1984. V.2. - P.265-282.

137. Kathiravan K., Shajahan A., Ganapathi A. Isolation and characterization on NaCl resistant cell line of mulberry // Biol. Plantarum. 1995. - Vol.37. - No.7. -P.449-451.

138. Keller J. Zur Rolle in v/7ro-Kultur in Genbanken // Vortr. Pflanzenzüchtg. — 1994. 27. — S.287-295.

139. Larkin P.J., Scowcroft W.R. Somaclonal variation a novel source of variability from cell cultures for plant improvement // Theor. Appl. Genet. - 1981. -Vol.60.-P. 197-214.

140. Larkin P.J., Scowcroft W.R. Somaclonal variation and eyespot toxin tolerance in sugarcane // Plant, Cell, Tissue and Organ Culture. 1983. - Vol.25. -P.l 11-121.

141. Le C.D., Thomas D., Nowbuth L. Conservation des pommes de terre in vitro et caracterisation des varietes ultives en Scus // Rev. Suisse agr. — 2002. — V.34. — No3. C.133-136.

142. Lee M., Phillips R.L. The chromosomal basis of somaclonal variation // Ann. Rev. Plant. Phiaiol. Palo Alto Calit. 1998. - T.39. - P. 713-437.

143. Lis E.K. Zimenosc fenotypowa u truscawek pochodzacych z kultut in vitro // W: Dubert F., Skoczowski A. (red.) "Zastosowanie kultur in vitro w fizjologii roslin". Zaklad Fizjologii Roslin im. Gorskiego PAN, Krakow. - 1997.-S.125-130.

144. Lis E., Chlebowska D. Charakterystyka wzrostui wegetatywnej reprodukcji microrozmnazanych truscawek w uprawie polowej // Zeszyty Nau Kowe Instytutu Sadownietwa I Kwiarstwa w Skiernie wacach.-2000.-Tom.-8.-S. 263-267.

145. Lis E., Masny A. Zimennose fenotipowa roslin traus Kawki z odmiany "Real" pochodzacych z mikrorozmnozania // Zeszyty Nau Kowe Instytutu Sadownietwa I Kwiarstwa w Skiernie wacach.-2000.-Tom.-8.-S.270-273.

146. Lizarraga R., Huaman Z., Dodds J.H. In vitro conservation of potato germplasm at the International potato center // Am. Potato J. 1989. -T.66. - N4. - P. 253-269.

147. Long R.D., Curtin T.F., Cassels A.C. An investigation of the effects of bacterial contaminations on potato nodal cultures // Acta Hortic. 1988 - V.225. - P. 83-90.

148. Lörz H. Genetische Variabilität bei in vitro regenerirten pflanzen // Bericht über die Arbeitstatigung 1983 der "Arbeitgemeinschaft der Saatzuchtleiter". Gumpmenstein Arbeinstag. 1983.- S. 249-258.

149. Marcotrigiano M., Swartz H.J., Gray S.E., Tokarick D. The effect of benzyl-aminopurine on the in vitro multiplication rate and subsequent field performance of tissue culture propagated strawberry plants // Adv. Strawberry Prod.1984.-Vol.3.-P. 23-25.

150. Marcotrigiano M., Pamela A. Morgan H., Swartz J., Ruth J. Histogenic Instability in Tissue Culture-proliferated Strawberry Plants // J. Amer. Soc. Hort. Sei. -1987. -Vol.112. -No.3. P. 583-587.

151. Martinez-Montero M.E., Ojeda E. Field performance of sugarcane (Saccharum sp.) plants derived from cryopreserved calluses // Ciyo-Lett. — 2002. 23. - Nol. - P. 21-26.

152. Masuda K., Kikuta Y., Pujino K., Okazava Y. Preferential Synthesis of Mitochondria DNA during the Initial Stage of Tissue Growth in Potato Explant Cultures II J. Fac. Agr. Hokkaido Univ. 1994. - V.66. - P. 13-25.

153. Meins F. Heritable variation in plant cell culture // Ann. Rev. Plant Physiol. -1983. Vol.34. - P. 327-346.

154. Meins F. Cell heritable changes during development / Plant Genetic.1985.-P. 45-59.

155. Mix G., Schittenhelm S. Langzeitlagerung von Topinambur (Helianthus tuberosus L.) in vitro II Landbauforschung Völkenrode. 1988. - №3. - S. 178-181.

156. Moucadiri O., O'Connor J.E., Cornejo MJ. Effects of the cryopreservation procedures on recovered rice cell populations // Cryo-Lett. 2002 - 23. - №1. - P. 11-20.

157. Mozafari J., Wolyn D.J., All-Khan S.T. Chromosome Doubling via Tuber Disk Culture in Dihaploid Potato as Determined by Confocal Microscopy // Plant Cell Repts. 1997. - V. 16. - P. 229-333.

158. Mullin R. H., Shlegel D. E. Cold storage maintenance of strawberry meristem plantlets.//Hort. Science. 1976. - №2. - P. 100 - 101.

159. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol.Plant.-1962.-V. 15.-№ 3.-P. 473-497.

160. Naumann W.D., Synowski B. Die Ertagsleistung mikrovermehrter Erdbeerpflanzen und ihrer Nachzuchten // Obstbau. 1981. - T.6. - S. 90-94.

161. Nehra N.S., Kartha K.K., Stushnoff C. Effect of in vitro propagation methods on field performance of two strawberry cultivars // Euphitica. 1994. - V.76. -№1/2.-P. 107-115.

162. Nehra N.S., Kartha K.K., Stushnoff C., Giles K.L. The influence 6f hormone concentrations and callus age on somaclonal variation in callus culture regenerants of strawberry // Plant Cell Tiss. Org. Cult. 1992. - Vol.29. - P. 257-268.

163. Niemirowicz-Szezytt K., Zakrzewska Z. Characters of plants obtained from Fragaria ananassa in anther culture // Acta Hortic. The Hagul-1983. Vol.131. - P. 231-237.

164. Nishibayashi S., Nayashi Y., Kyozuka J., Shimamoto K. Chromosome Variations in Protoplast-Derived Calli and in Plants Regenerated from the Calli of Cultivated Rice (Orviza saliva L.) // Jap. J. Genet. 1989. - V. 64. - P. 355-361.

165. Niwata E. Cryopreservation of apical meristems of garlic {Allium sativum L.) and high subsequent plant regeneration // Cryo-Lett. 1995. - № 2. - C. 102-107.

166. Ooszawa K., Takayanagi K. High yielding variants in strawberry derived from anther culture. V. Int. Cong. Plant Tissue Cell Cult. Abstracts. Tokyo 1982. P.121.

167. Orton T.J. Genetic instability in celery tissue and cell cultures // Iowa state J. of research. 1987. - Vol.61. - No. 4. - P. 481-498.

168. Panis B., Swennen R. Cryopreservation of banana meristems using encapsulation dehydration and a simplified freezing method : Summ. Pap. Present. Int. Meet. Soc. Low Temperature Biol., Leuven, 19—23 July, 1994 // Cryo-Lett. 1995. -Vol.16.-№ 1.-C.68.

169. Paques M. Vitrification and micropropagation: causes, remedies and prospects // Acta Hortic. 1991. - V.289. - P. 283-290.

170. Phillips R.L., Kower R.V., Mc.Mullin M.D. Developmentally timed changes in maize endosperm DNA // UCZA Symp. Mollec. Cellular Biol. New York. -1985. —T.35. — P. 739-754.

171. Pijnacker L.P., Ferwerda MA. Effect of Sucrose on Polyploidization in Early Callus Cultures of Solanum tuberosum //Plant, Cell, Tissue, Organ Cult. 1990. -V.21 - P. 153-157.

172. Pohlheim F, Frahm C. Zur Stabilitat chimarischer Fragaria ananassa in vitro und in vivo //Vortr. Pflanzenzuchtg. 1992. - V.22. - S. 385-386.

173. Reed B. Cold storage of strawberries in vitro a comparison of three storage systems // Fruit Varieties Journal. 1992. - Vol. 46. - № 2. - P. 98-102.

174. Reid R.D. June yellows in Auchincruive Climax strawberries // The

175. Grower.-1951.-№35.-P. 1160-1161.

176. Rice R.D., Alderson P.G., Hall J. Micropagation: principles and commercial practice / Plant biotechnology. Oxfod etc. - 1992. - suppl.2. - P. 129-149.

177. Romano A. Conservasao in vitro de germeplasma de sobreiro (Quercus suber L.) // J. Rev. Biol. 1994. - № 1 - 4. - P. 29-42.

178. Scowcroft W.R., Davies P., Rayan S.A. The analysis of somaclonal mutants // ULZA Symp. Molec. Cellular Biol. New-York. 1985. -V. 35. - P.799-815.

179. Silva G.H. In vitro storage of potato tuber explants and subsequent plant regeneration // Hort. Science. 1985. - V.20. - №1. - P. 139-140

180. Skene K.G.M., Goodwins D.R. and Barlass M. Ploidy stability in grapevines following long term storage in vitro II Vitis. 1988. — V. 27. — № 1. - P. 41-46.

181. Smith C.M., Davies E. Wound-Induced Electrical Signaling and Systemic Gene Expression in Plants // Plant Physiol. 1994. - V.105. - P. 67.

182. Sowi K.I., Pulawska J., Wawzzynczak., Michaeezu K. Elimination of fungal and bacteriae contamination from in vitro strawberry cultures // Zeszyty Nau Kowe Instytutu Sadownietwa I Kwiarstwa w Skiernie wacach.-2000.-Tom.-8.-S. 275-280.

183. Stoyanova S.D. Ex situ conservation in the Bulgarian gene bank: 1.Effect of storage // Plant genetic resources Newsletter. 2001. — № 128. - P. 68-76.

184. Swartz H.J., Galetta G.J., Zimmerman R.H. Field performance and phenotypic stability of tissue culture-propagated strawberries // J. Amer. Soc. Hort. Sci. 1981.-V. 106.-№5.-P. 667-673.

185. Takahiro W. Регенеранты ремонтантной земляники (Fragaria ananassa), полученные из каллуса листовых эксплантатов // Rakuno Gakuen daigaku kiyo. Shizen kagaku hen // J. Racuno Gakuen Univ. Natur. Sci. 2002. - V. 27.-№1.-C. 79-83.

186. Thierry C., Tessereau H., Florin B. Role of sucrose for the acquisition of tolerance to ciyopreservation of carrot somatic embryos // Ciyo-Lett. 1997. - 18. - № 5. - P. 283—292.

187. Turner S.R., Tan B., Senaratna T., Bunn E., Dixon K.W, Touchell D.H. Cryopreservation of the Australian species Macropidia fuliginosa (Haemodoraceae) by vitrification II Cryo-Lett. 2000. - 21. - № 6. - C. 379-388.

188. Veprintsev B. N. and Rott N.N. Conserving genetic resourses of animal species //Nature. 1979. - Vol.280. - P. 633-634.

189. Vyskot B., Gazdova B., Siroky J. Methylation Patterns of Two Repetitive DNA Sequences in Tobacco Tissue Cultures and their Regenerants // Biol. Plant. -1993.-V. 35.-P. 321-327.

190. Wafaa W. In vitro storage of proliferated apple rootstock shoot-tip cultures // Annals Agric. Sei., Ain Shams Univ., Cairo. 1992. - Vol. 37.- № 2. - P. 501-510.

191. Waithaka K., Hildebrandt A.C., Dana M.N. Hormonal control of strawberry axillary bud development in vitro II J. Amer. Soc. Hort. Sei- 1980-Vol.105.-P. 428-430.

192. Wan Y., Widholm J.M. Effect of chromosome-doubling agents on somalonal variation in the progeny of doubled haploids of maize // Plant Breeding. -1995. V.l 14. -№ 3. - P. 253-255.

193. Wand L., Heinlein M., Kunze R. Metihlation pattern of activator traspophase binding sites in maize endosperm // Plant cell. 1996. - V.8. - № 4. - P. 747-758.

194. Wang Zi-cheng, Deng Xin-xin. Hean daxul xuebao. Zirach kexue ban // J. Hean Univ. Natur. Sei. 2002. - V. 32. - № 3. - C. 38-40.

195. Warren G.S. Cell culture and recombinant DNA technology in plant pathology // Plant biotechnology. Oxford etc. - 1992. - Suppl. 2. - P. 283-292.

196. Werbsuhn B. G. On the Genetic State of Cells Cultivated in vitro II Biologishes Zentralblatt Band 109. 1990. - P. 345-350.

197. Withers L.A. Collecting in vitro for genetic resources conservation / Collecting plant genetic diversity. Edit by Luigi Guarino, V. Kamanatha 1995. - P. 511-525.

198. Wood H. N. The development campacity for autonomus growth of the gall tumor cell // Prog. Exp. Tumor Res. 1972. - V. 15. - P. 76-85

199. Wood H. N., Braun A.C., Brades H. Studies on the distribution properties of a new class of cell division substances from higher plants // Proc. Nat. Sei. U.S.A. -1969.-V. 62.-P. 349-356.

200. Yongjic W. Engelmanu F., Frattarelli A., Damiano C., Withers L. A. Cryopreservation of strawberry cell suspension cultures // Cryo-Lett. 1997. -Vol. -18. -№ 5.-C. 317-324.

201. Zarske A., Schuh D. Erste Ergebnisse der Langzeitlagerung ausgewählter Kulturpflanzenarten// Gartenbau. 1984. - V. 31. -№1.-S. 8-12.134