Белки почек и мочевыводящей системы в протеоме мочи здорового человека после длительного космического полета тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.03.08, кандидат медицинских наук Киреев, Кирилл Сергеевич

  • Киреев, Кирилл Сергеевич
  • кандидат медицинских науккандидат медицинских наук
  • 2013, МоскваМосква
  • Специальность ВАК РФ14.03.08
  • Количество страниц 170
Киреев, Кирилл Сергеевич. Белки почек и мочевыводящей системы в протеоме мочи здорового человека после длительного космического полета: дис. кандидат медицинских наук: 14.03.08 - Авиационная, космическая и морская медицина. Москва. 2013. 170 с.

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Киреев, Кирилл Сергеевич

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Протеомный метод анализа мочи.

1.2. Метаболизм белка почками.

1.2.1. Строение гломерулярного фильтра.

1.2.2. Избирательная проницаемость клубочкового фильтра.

1.2.3. Реабсорбция белка.

1.2.4. Канальцевая секреция белка.

1.2.5. Влияние нереабсорбированного белка на функции проксимальных канальцев почки.

1.2.6. Взаимовлияние реабсорбции натрия и белков.

1.3. Гомеостаз натрия и воды в космическом полёте.

1.4. Гемодинамика и функция почек в космическом полёте.

1.5. Протеинурия в космическом полёте.

1.6. Гистопатологические изменения почек после космического полёта.

1.7. Влияние отдельных факторов космического полёта на функцию почек.

1.8. Риск развития мочекаменной болезни в космическом полёте.

1.9. Изменения биохимического состава мочи в космическом полёте.

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ.

3.1. Анализ протеома мочи до и после космических полётов.

3.2. Анализ протеома мочи в эксперименте с 520-суточной изоляцией.

3.2.1. Анализ почечных белков.

3.2.2. Анализ постоянно присутствующих белков.

3.2.3. Значение изучения вариабельности протеомного состава мочи человека.

3.3. Влияние перегрузок на протеом мочи здорового человека.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Авиационная, космическая и морская медицина», 14.03.08 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Белки почек и мочевыводящей системы в протеоме мочи здорового человека после длительного космического полета»

Актуальность проблемы.

Завершение расшифровки генома человека вызвало бурное развитие, в последнее время, протеомики, что даёт реальную возможность на новом, молекулярном уровне описать и понять индивидуальную изменчивость белкового состава человеческого организма при различных заболеваниях, а так же адаптивные изменения, вызванные факторами как окружающей, так и внутренней среды организма.

Поскольку моча, как одна из биологических жидкостей организма человека, представляет собой практически идеальный материал для использования в клинической диагностике и для теоретических исследований, внимание специалистов ' по протеомике было обращено именно на нее. Концентрация белка в моче и белковый состав мочи непосредственно отражают не только изменения функций почек и мочеполовой системы, но и практически всех других систем организма. Современные методы разделения сложных белковых смесей и определения отдельных компонентов этих смесей, которые используются в протеомике, позволяют выявить в пуловых образцах мочи человека до 3500 различных белков [Court М. et al., 2011]. В последнее время использование протеомного анализа мочи для диагностики заболеваний, при мониторинге лечения и прогнозировании исхода болезни обеспечило успех практического применения достижений протеомики. Огромное количество (свыше 20000) списков белков, характерных при отдельных заболеваниях, содержится в открытых интернет-ресурсах [Coon B.G. et al., 2009]. Считают, что протеомика"достигла наиболее впечатляющих успехов в плане практического использования ее достижений именно в области исследований протеома мочи [Не J.C. et al., 2012].

Развитие методов количественного детектирования опровергло длительно существовавшее представление, что белки не присутствуют в моче здорового человека. Различными исследованиями было показано, что существует физиологическая протеинурия, т.е. с мочой выводится определенное количество белков при таких состояниях, как интенсивная физическая нагрузка, ортостаз, лихорадка, эмоциональный стресс [Poortmans J.R. et al., 1989; Храйчик Д.Е. и др., 2001], а так же при изменении скорости мочеотделения [Jung К. et al., 1988; Wiegmann T.B. et al., 1989]. При развитии патологии протеинурия многократно усиливается.

Представляет большой интерес влияние на протеомный профиль мочи здоровых лиц специфических факторов внешней среды, таких как продолжительная жизнедеятельность на борту орбитальной станции (ОС). Хорошо известно, что факторы космического полета (КП) вызывают изменения водно-электролитного обмена и функций почек [Газенко О.Г. и др., 1986]. Однако влияние условий КП на белковый состав мочи только начинает исследоваться.

Изучение белкового состава мочи, определяемого с помощью методов протеомики, позволяющих одновременно выявлять сотни белков в образце, необходимо для понимания молекулярных механизмов сохранения гомеостаза во время КП. Эти результаты помогут улучшить полётные диагностические тесты для ранней диагностики субклинических стадий заболеваний во время будущих исследовательских миссий (таких, как годовой орбитальный полёт, полёт на Марс), а так же способны создать мощный потенциал для развития стратегий управлением рисками во время КП.

Цель исследования.

Исследование методами протеомики характеристик изменений белкового состава мочи здорового человека, происходящих под действием космического полёта и отдельных его факторов (длительная изоляция и перегрузки).

Задачи исследования.

1. Охарактеризовать изменения протеомного состав мочи здорового человека до и после длительных космических полётов, и сравнить их с контрольной группой.

2. Выявить белки, присутственность которых в моче может быть связана с космическим полетом.

3. Оценить общий протеомный состав, охарактеризовать почечные белки и выявить постоянно присутствующие белки мочи здорового человека в эксперименте с 520-суточной изоляцией в контролируемых условиях.

4. Оценить влияние поперечно-направленных перегрузок в направлении грудь-спина величиной до 8 единиц на протеомный состав мочи здорового человека.

Научная новизна.

С использованием протеомных технологий получения данных и современных биоинформационных подходов их анализа впервые выявлены белки, присутственность которых в моче наиболее вероятно связана с космическим полетом.

Впервые выявлена и охарактеризована постоянная часть протеома мочи здорового человека при 520-суточном наблюдении в условиях изоляции в контролируемых условиях.

Впервые описаны изменения протеомного состава мочи здорового человека под влиянием поперечно-направленных перегрузок в направлении грудь-спина величиной до 8 единиц.

Научно-практическая значимость работы.

Полученные данные с использованием протеомных технологий и современных биоинформационных подходов их анализа способствовали пониманию молекулярных механизмов сохранения гомеостаза и предоставили новую информацию о физиологических особенностях функционирования почек во время длительного космического полета, что поможет улучшить полётные диагностические тесты для ранней диагностики субклинических стадий заболеваний во время КП при будущих исследовательских миссиях (таких, как годовой орбитальный полёт, полёт на Марс). Выявленные постоянно обнаруживаемые белки протеома мочи здоровых лиц в контролируемых условиях делают вклад в создание паспорта здоровья и могут использоваться для нормирования при исследовании содержания конкретных белков в количественной протеомике.

Положения, выносимые на защиту.

1. Длительные космические полёты оказывают влияние на функцию почек, что вызывает функциональные изменения протеомного состава мочи.

2. В белковом составе мочи здорового человека, несмотря на его значительную вариабельность, присутствуют постоянно обраруживаемые белки.

3. Воздействие поперечно-направленных перегрузок в направлении грудь-спина величиной до 8 единиц при вращениях на центрифуге (ЦФ) вызывают изменение селективности клубочкового барьера почек.

Апробация работы.

Диссертация прошла апробацию на заседании секции Ученого совета ГНЦ РФ - ИМБП РАН «Космическая медицина» 10.06.2013 г., протокол №4.

Основные положения работы были представлены и обсуждены на пяти конференциях: llth Annual World Congress HUPO, Boston, Massachusetts, USA, Sept.9-13, 2012; Доклады III международной научно-практической конференции «Постгеномные методы анализа в биологии, лабораторной и клинической медицине», Казань, 22-24 ноября 2012; 8th International Conférence on «Bioinformatics of Genome Régulation and Structure/Systems Biology» BGRS/SB-2012. Novosibirsk, Russia June 25-29, 2012; Proteomic Forum, Berlin 2013; 12th Annual World Congress HUPO, Yokohama, Japan, Sept. 14-19, 2013, a также будут представлены на Юбилейной Конференции, посвященной 50-летию ИМБП, 28-30 октября, 2013.

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 12 печатных работ, в том числе 6 статей в журналах из перечня Высшей Аттестационной Комиссии при Министерстве образования и науки Российской Федерации.

Структура и объём диссертации.

Диссертация изложена на 170 страницах и состоит из введения, обзора литературы, характеристики материала и методов исследования, 4 глав результатов исследования и их обсуждения, заключения, выводов, списка литературы, включающего 60 отечественных и 303 иностранных источников. Диссертация иллюстрирована 24 таблицами и 11 рисунками.

Похожие диссертационные работы по специальности «Авиационная, космическая и морская медицина», 14.03.08 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Авиационная, космическая и морская медицина», Киреев, Кирилл Сергеевич

выводы

1. Использование протеомных технологий получения данных и современных биоинформационных подходов их анализа позволило выявить 18 белков в моче космонавтов и их дублёров, происходящих из тканей почек и мочевыводящих путей.

2. Исследование протеомного состава мочи космонавтов после длительных КП на РС МКС и его сравнительный анализ с контрольной группой позволило выявить 3 белка (афамин, аминопептидаза А и аквапорин-2), присутственность которых в моче наиболее вероятно связана с воздействием факторов КП.

3. Исследование протеомного состава мочи здорового человека на протяжении 520 суток жизнедеятельности в контролируемых условиях позволило выявить 13 белков, принадлежащих непосредственно к почечной ткани.

4. Постоянной составляющей протеома мочи здорового человека, выявленной на основе анализа данных эксперимента с 520-суточной изоляцией в гермообъекте, являются 7 белков: эпидермальный фактор роста, полимерный рецептор иммуноглобулина, ингибитор сериновых протеаз плазмы, белок АМВР, кератин, тип II цитоскелета 1, коллаген альфа-1 (VI) цепи, сывороточный альбумин.

5. Воздействие поперечно-направленных перегрузок в направлении грудь-спина величиной до 8 единиц при вращениях на ЦФ вызывает достоверное (р<0,05) увеличение скорости минутного диуреза и повышение среднегруппового нормированного показателя экскреции общего белка с мочой.

6. Во время воздействия перегрузок на ЦФ происходит снижение селективности клубочкового барьера почек, в результате чего крупные белки (превышающих по молекулярному весу альбумин) легче преодолевают гломерулярный фильтр и попадают в мочу.

126

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Результаты изучения белкового состава мочи методами протеомики способствуют повышению значимости полётных диагностических тестов для ранней диагностики субклинических стадий заболеваний во время будущих исследовательских миссий (в том числе, таких продолжительных, как годовой орбитальный полёт, полёт на Марс). В связи с этим рекомендуется дальнейшая разработка методов протеомики для экспресс-анализа мочи во время длительных КП для выявления белковых маркеров, определяемых в моче на самых ранних стадиях различных заболеваний и патологических состояний.

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Киреев, Кирилл Сергеевич, 2013 год

1. Агрон И.А., Автономов Д.М., Кононихин A.C., Попов И.А., Мошковский С.А., Николаев E.H. База данных по точным массово-временным меткам для хромато-масс-спектрометрического анализ протеома мочи // Биохимия. 2010. - Т.75. - №4. - С.598-605.

2. Агуреев А.Н., Сидоренко Л.А. Разработка и апробация системы обеспечения питанием экипажа проекта «МАРС-500» // Международный симпозиум по результатам экспериментов, моделирующих пилотируемый полет на Марс. (МАРС-500) // Сборник материалов 2012. - С.5-6.

3. Аракелянтс A.A., Жукова Н.В., Рязанов A.C., Юренев А.П. Микроальбуминурия: клиническое и прогностическое значение при артериальной гипертензии // Тер. арх. 2003. - Т.75. -№12. - С.81-83.

4. Арчаков А.И., Говорун В.М. Протеомные технологии в современной бимедицинской науке // Биохимия. 2002. - Т.67. - №10. -С.1341-1359.

5. Афонин Б.В. Система пищеварения // Орбитальная станция «Мир» // Космическая биология и медицина. М. 2001. - Т. 1. - С.620-628.

6. Афонин Б.В. Состояние пищеварительной системы в длительных космических полетах и гипокинезии // Рос. журн. гастроэнтерол., гепатол., колопроктол. 1999.-Т. 9.-С.5-15.

7. Бабиченко И.И., Ковязин В.А. Новые методы иммуногистохимической диагностики опухолевого роста // М.: Изд-во РУДН -2008.- 109 с.

8. Байгильдина A.A. Роль адгезивных молекул vcam-1 и ve-кадгерина в развитии дисфункции эндотелия при геморрагической лихорадке с почечным синдромом // Саратовский научно-медицинский журнал — 2009. — Т.5. №4. - С.478-481.

9. Баранов В. М. Физиологический анализ возможных причин гипоксемии в невесомости // Физиология человека. — 2011. Т.37. - №.4. — С.72-78.

10. Барер А. С. Предел переносимости человеком поперечно действующих ускорений и физиологические реакции организма // Пробл. косм. биол. 1962. - Т.2. - С.255.

11. Барер A.C., Елисеев A.C., Панфилов В.Е., Родин С. А. Человек-оператор в условиях действия ускорений // Косм. биол. и мед. 1968. - №.1. - С.54-58.

12. Береговой Г.Т., Ярополов В.И., Баранецкий И.И. Справочник по безопасности космических полетов // М., Машиностроение. 1989. - С. 28.

13. Богомолов В.В., Моргун В.В. Послеполётные клинико-физиологические исследования // Орбитальная станция «Мир» // Космическая биология и медицина. М. 2001. - Т. 1. - С.482-499.

14. Валеева O.A., Пастушкова Л.Х., Пахарукова H.A., Доброхотов И.В., Ларина И.М. Вариабельность протеома мочи здорового человека в эксперименте со 105-суточной изоляцией в гермообъекте // Физиология человека. 2011. - Т.З. - №3. - С.98-102.

15. Вандер А. Физиология почек, пер. с англ. СПб.: Питер, 2000.256с.

16. Вартабонов P.A., Глод Г. Д., Углова H.H., Ролик И.С. Гиповолемические реакции человека и животных при воздействии перегрузок +GZ нарастающей интенсивности // Космич. биология и авиакосмич. медицина 1984. - Т. 18. - №5. - С. 18-23.

17. Васильев П.В, Котовская А.Р. Длительные линейные и радиальные ускорения // Основы космической биологии и медицины. М.: Наука. 1975. - Т.2. - Кн. 1. - С. 177-231.

18. Воробьев Е.И, Какурин Л.И, Егоров А.Д, Свистунов И.Б. Некоторые результаты медицинских исследований, выполненных во время полетов космических кораблей «Союз-6», «Союз-7» и «Союз-8» // Космич. биология и медицина. 1970. - Т.4. - №.2. - С.65-73.

19. Газенко О.Г, Генин A.M. Влияние динамических факторов космического полета на организм животных. Наука, 1979, С. 219-221.

20. Газенко О.Г, Григорьев А.И, Наточин Ю.В. Водно-солевой гомеостаз и невесомость // Косм. биол. и авиакосм. мед. 1980. - Т. 14. - №5. -С.3-10.

21. Газенко О.Г, Григорьев А.И, Наточин Ю.В. Водно-солевой гомеостаз и космический полет // Пробл. космич. биол. — 1986. Т.54. — С.237.

22. Григорьев А.И, Баевский P.M. Концепция здоровья и космическая медицина. М, «Слово», 2007, С.208.

23. Григорьев А.И, Ларина И.М, Носков В.Б. Влияние космических полётов на состояние и регуляцию водно-электролитного обмена // Рос. физиол. журнал им. И.М. Сеченова. 2006. -Т.92. -№1. - С.5-17.

24. Григорьев А.И, Носков В.Б. Гормональный контроль гидратационного статуса человека при космическом полёте // Рос. физиол. журнал им. И.М. Сеченова 2009. - Т.95. - №3. - С.225-234.

25. Григорьев А.И, Потапов А.Н. От полета Ю.А. Гагарина к современным пилотируемым космическим полетам и межпланетным экспедициям // Авиакосм, и экологич. мед. 2011. -№2. -С.3-15.

26. Григорьев Г. А, Егоров А.Д. Феноменология и механизмы изменения основных функций организма человека в невесомости // Косм, биол. и авиакосм. мед. 1988. -Т.22. -№ 6. - С.4-17.

27. Гусева Е.В., Ташпулатов Р.Ю. Влияние 49-суточного космического полета на показатели иммунологической реактивности и белковый состав крови экипажа «Салют-5» // Косм. биол. и авиакосм. мед. -1979. Т. 13. -№.1. - С.3-8.

28. Гусева Е.В., Ташпулатов Р.Ю. Влияние полетов различной продолжительности на белковый состав крови космонавтов // Косм. биол. и авиакосм, мед. 1980.-Т.14.-№1.-С.13-17.

29. Доброхотов И.В., Пастушкова Л.Х., Ларина И.М. Исследование протеома мочи здорового человека // Авиакосм, и экологич. мед. — 2009. — №3. С.3-11.

30. Катунцев В.П., Осипов Ю.Ю., Гноевая Н.К., Тарасенков Г.Г., Барер A.C. Медицинское обеспечение внекорабельной деятельности космонавтов // Орбитальная станция «Мир» // Космическая биология и медицина. М. 2001. - Т. 1. - С. 482-499.

31. Котовская А.Р., Вартбаронов P.A. Длительные линейные ускорения // Антипова В.В., Григорьева А.И., Хаптун К.Л. (ред.). Человек в космическом полете. 1997. -Т.З. - С. 10-68.

32. Котовская А.Р., Юганов Е.М. Влияние длительных поперечных ускорений на организм животных // Проблемы космической биологии. -1962.-Т. 1.-С.384.

33. Ларина И.М. Гормональная регуляция. В кн.: "Орбитальная станция МИР", 2002, М. «Аником», 4.1, Гл.14, С.603-606.

34. Ларина И.М. Закономерности адаптации гормональных систем организма человека к условиям микрогравитации: автореф. дис. .доктора мед. наук: 14.03.08 / Ларина Ирина Михайловна. М., 2000 - 23 с.

35. Лот К. Основы физиологии почки. — М.: Научный мир, 2005. —292 с.

36. Маркин A.A., Журавлева O.A. Биохимическое исследование крови // Орбитальная станция «Мир». М. 2001. -Т.1. - С.606-612.

37. Медведева Н.В., Ипатова О.М., Иванов Ю.Д., Дрожжин А.И., Арчаков А.И. Нанобиотехнология и наномедицина // Биомедицинская химия. 2006. - Т.52. - №6. - С.529-546.

38. Наточин Ю.В. Клиническая физиология: роль в разработке фундаментальных проблем регуляции функций почек у человека // Физиология человека. 2005. - №5. - С.80-87.

39. Наточин Ю.В. Механизмы мочеобразования. В кн.: Нефрология: руководство для врачей / Под ред. И.Е. Тареевой. М.: Медицина, 2000. -С.24-48.

40. Наточин Ю.В. Физиология почки. В кн.: Физиология водно-солевого обмена и почки. СПб.: Наука, 1993. - С.202-416.

41. Наточин Ю.В., Мухин H.A. Введение в нефрологию. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. - 152 с.

42. Носков В.Б., Котов А.Н., Моруков Б.В., Ничипорук И.А., Шаргин Ю.Г. Биоимпедансный анализ жидких сред и состава тела в условиях непродолжительного космического полёта и гипокинезии // Физиология человека. 2006. - Т.32. - №5. - С. 136-140.

43. Носков В.Б., Лобачик В.И., Чепуштанов С.А. Объем внеклеточной жидкости при действии факторов длительного космического полета// Физиология человека. —2000. -Т.26. —№.5. -С.106-110.

44. Носков В.Б., Маркин A.A. Оценка биохимического статуса во время длительных космических полетов // Орбитальная станция «Мир» // Космическая биология и медицина. М. 2001. — Т. 1. - С. 316-318.

45. Носков В.Б., Ничипорук И.А., Григорьев А.И. Динамикажидкостных сред и состава тела в условиях длительного космического133полёта (биоимпедансный метод) // Авиакосм, и экология, мед. 2007. - Т.41.- №3. С.3-7.

46. Носков В.Б., Ничипорук И.А., Моруков Б.В., Маленченко Ю.И. Исследование состояния жидких сред организма человека в условиях длительного космического полета // Авиакосм, и экологич. мед. 2005. -Т.39. -№1. - С.27-31.

47. Пахарукова H.A. Характеристика протеомного профиля сыворотки крови здорового человека при воздействии факторов космического полета: автореф. дис. . канд. мед. наук: 14.03.08 / Пахарукова Наталия Анатольевна М., 2010. - 25 с.

48. Пахарукова H.A., Носовский A.M., Пастушкова Л.Х., Трифонова О.П., Ларина И.М. Выбор статистического подхода для анализа протеомных профилей сыворотки крови здорового человека // Авиакосм, и экологич. мед.- 2009. №4. - С.60-66.

49. Пахарукова H.A., Пастушкова Л.Х., Самарин Г.И., Почуев В.И., Моруков Б.В., Ларина И.М. Прямое протеомное профилирование сыворотки крови космонавтов после длительных космических полетов // Авиакосм, и экологич. мед. 2010. - Т.44. - №5. - С. 16-20.

50. Пахарукова H.A., Пастушкова Л.Х., Трифонова О.П., Мошковский С.А., Ларина И.М. Вариабельность низкомолекулярного субпротеома сыворотки крови здорового человека в обычных условиях жизнедеятельности // Физиология человека. 2011. - Т.37. - №2. - С.77-85.

51. Приказ МО и МЗ РФ №14/7 от 9 января 2001 года «Об утверждении Положения о медицинском освидетельствовании и контроле за состоянием здоровья кандидатов в космонавты, космонавтов и инструкторов-космонавтов».

52. Пыльник Т.О., Редина О.Е., Смоленская С.Э., Иванова Л.Н., Маркель А.Л. Ососбенности экспрессии генов Egf и Egfr в ткани почки гипертензивных крыс линии нисаг (ISIAH) // Росс, физиол. ж. им. И.М. Сеченова. 2012. - Т.98. -№3. - С.373-380.

53. Серов В.В. Функциональная морфология почек. В кн.: Нефрология: руководство для врачей / Под ред. И.Е. Тареевой. М.: Медицина, 2000. - С. 12-23.

54. Смирнов К.В. Пищеварение и гипокинезия // М.: Медицина, 1990. -Т.224. С. 19.

55. Храйчик Д.Е., Седор Д.Е., Ганц М.Б. Секреты нефрологии, пер. с англ. М., СПб.: Бином, Невский Диалект, 2001. - 303с.

56. Шейман Д.А. Патофизиология почки, пер. с англ. / Под ред. Ю.В. Наточина. -М.: Бином. 1999.-206 с.

57. Яровая Г.А. Калликреин-кининовая система: новые факты и концепции (обзор). // Вопросы медицинской химии. 2001. - Т.47. — №1. — С.20-42.

58. Abboud Н.Е., Poptic Е., DiCorleto P. Production of platelet-derived growth factorlike protein by rat mesangial cells in culture // J. Clin. Invest. 1987. - V.80. -N.3. — P.675-683.

59. Adachi J., Kumar C., Zhang Y., Olsen J.V., Mann M. The human urinary proteome contains more than 1500 proteins, including a large proportion of membrane proteins // Genome Biol. 2006. - V.7. - N.9. - R.80.

60. A1 Moustafa A.E., Achkhar A., Yasmeen A. EGF-receptor signaling and epithelial-mesenchymal transition in human carcinomas // Front. Biosci. (Schol. Ed.). 2012. - N.4. - P.671-684.

61. Allhorn M., Berggard Т., Nordberg J., Olsson M.L., Akerstrom B. Processing of the lipocalin alpha(l)-microglobulin by hemoglobin induces heme-binding and heme-degradation properties // Blood. 2002. - V.99. - N.6. -P.l 894-1901.

62. Anderson N.L., Anderson N.G. The human plasma proteome: history, character, and diagnostic prospects // Mol. Cell Proteomics. — 2002. V.l. - N.l 1. - P.845-867.

63. Aron D.C., Rosenzweig J.L., Abboud H.E. Synthesis and binding of insulin-like growth factor I by human glomerular mesangial cells // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1989. - V.68. -N.3. -P.585-591.

64. Asano M., Saito M., Suguro H., Nomura H., Inage T., Moro I. Active synthesis of mouse polymeric immunoglobulin receptor in the epithelial cells of the distal urinary tubule in kidney // Scand. J. Immunol. 2004. - V.60. - N.3. -P.267-272.

65. Bae E.H., Ma S.K., Lee J., Kim S.W. Altered regulation of renal nitric oxide and atrial natriuretic peptide systems in angiotensin II-induced hypertension // Regul. Pept. 2011. - V.l70. - N.l-3. - P.31-37.

66. Baines R.J., Brunskill N.J. The molecular interactions between filtered proteins and proximal tubular cells in proteinuria // Nephron. Exp. Nephrol. -2008. V.l 10. -N.2. - P.e67-e71.

67. Balkovetz D.F., Chumley P., Amlal H. Downregulation of claudin-2 expression in renal epithelial cells by metabolic acidosis // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. -2009. -V.297. -N.3. F.604-611.

68. Barker D.F., Hostikka S.L., Zhou J., Chow L.T., Oliphant A.R.,

69. Gerken S.C., Gregory M.C., Skolnick M.H., Atkin C.L., Tryggvason K.1361.entification of mutations in the COL4A5 collagen gene in Alport syndrome // Science. 1990. - V.248. - N.4960 - P. 1224-1227.

70. Barratt J, Topham P. Urine proteomics: the present and future of measuring urinary protein components in disease // CMAJ. 2007. - V.177. -N.4. -P.361-368.

71. Batuman V, Guan S. Receptor-mediated endocytosis of immunoglobulin light chains by renal proximal-tubule cells // Am. J. Physiol. -1997. V.272. - N.4. - Pt.2. - F.521-530.

72. Batuman V, Verroust P.J, Navar G.L, Kaysen J.H, Goda F.O, Campbell W.C, Simon E, Pontillon F, Lyles M, Bruno J, Hammond T.G. Myeloma light chains are ligands for cubilin (gp280) // Am. J. Physiol. — 1998. -V.275. — 2P.2. — F.246-254.

73. Bennett M.R, Devarajan P. Proteomic analysis of acute kidney injury: biomarkers to mechanisms // Proteomics Clin. Appl. 2011. - Y.5. - N.l-2. -P.67-77.

74. Berggard T, Thelin N, Falkenberg C, Enghild J.J, Akerstrom B. Prothrombin, albumin and immunoglobulin A form covalent complexes with alpha 1-microglobulin in human plasma // Eur. J. Biochem. 1997. - V.245. -N.3. -P.676-683.

75. Blaikley J, Sutton P, Walter M, Lapsley M, Norden A, Pugsley W, Unwin R. Tubular proteinuria and enzymuria following open heart surgery // Intensive Care Med. 2003. - V.29. - N.8. - P. 1364-1367.

76. Blouch K, Deen W.M, Fauvel J.P, Bialek J, Derby G, Myers B.D. Molecular configuration size selectivity in healthy and nephritic human // Am. J. Physiol. 1997. - V.273. - 3Pt.2. - F430-F437.

77. Boron W.F. Acid-base transport by the renal proximal tubule // J. Am. Soc. Nephrol. 2006. - V. 17. - N.9. - P.2368-2382.

78. Bouley R., Lu H.A., Nunes P., Da Silva N., McLaughlin M., Chen Y., Brown D. Calcitonin has a vasopressin-like effect on aquaporin-2 trafficking and urinary concentration // J. Am. Soc. Nephrol. 2011. - V.22. - N. 1. - P.59-72.

79. Bradwell A.R. Birmingham Medical Research Expeditionary Society 1977 Expedition: Serum and urine proteins during a high attitude trek // Postgrad. Med. J. 1979. - V.55. -N.645. - P.478-481.

80. Brandes A., Oehlke O., Schümann A., Heidrich S., Thevenod F.,

81. Roussa E. Adaptive redistribution of NBCel-A and NBCel-B in rat kidney138proximal tubule and striated ducts of salivary glands during acid-base disturbances // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2007. - V.293. - N.6. - P.2400-2411.

82. Brown D. The ins and outs of aquaporin-2 trafficking // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2003. - V.284. - N.5. - F893-901.

83. Brown E.M., MacLeod R.J. Extracellular calcium sensing and extracellular calcium signaling // Physiol. Rev. 2001. - V.81. - N. 1. - P.239-297.

84. Burkard T.R., Planyavsky M., Kaupe I., Breitwieser F.P., Bürckstümmer T., Bennett K.L., Superti-Furga G., Colinge J. Initial characterization of the human central proteome // BMC Syst. Biol. 2011. - V.5. -P.17.

85. Carone F.A., Peterson D.R., Oparil S., Pullman T.N. Renal tubular transport and catabolism of proteins and peptides // Kidney Int. 1979. - V.16. — N.3. - P.271-278.

86. Carretero O.A. Vascular remodeling and the kallikrein-kinin system // J. Clin. Invest. 2005. - V.l 15. -N.3. - P.588-591.

87. Celis J.E., Wolf H., Ostergaard M. Bladder squamous cell carcinomabiomarkers derived from proteomics // Electrophoresis. 2000. - V.21. -N.l 1 -P.2115-2121.

88. Chen Z.B., Huang D.Q., Niu F.N., Zhang X., Li E.G., Xu Y. Human urinary kallidinogenase suppresses cerebral inflammation in experimental stroke and downregulates nuclear factor-kappaB // J. Cereb. Blood. Flow Metab. 2010.- V.30. -N.7. — P. 1356-1365.

89. Cho H.J., Cho H.J., Kim H.S. Osteopontin: a multifunctional protein at the crossroads of inflammation, atherosclerosis, and vascular calcification // Curr. Atheroscler. Rep. 2009. - V.l 1. - N.3. - P.206-213.

90. Cholst I.N., Steinberg S.F., Tropper P.J., Fox H.E., Segre G.V., Bilezikian J.P. The influence of hypermagnesemia on serum calcium and parathyroid hormone levels in human subjects // N. Engl. J. Med. 1984. - V.310.1. N.l9. P. 1221-1225.

91. Christensen B., Petersen T.E., Sorensen E.S. Post-translational modification and proteolytic processing of urinary osteopontin // Biochem. J. -2008. V.411. - N. 1. - P.53-61.

92. Christensen E.I., Birn H. Megalin and cubilin: synergistic endocytic resertors in renal proximal tubute // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2001. -V.280. -N.4. - F.562-573.

93. Christensen E.I., Birn FI. Megalin and cubulin: multifunctional endocytic receptors // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2002. - V.3. - N.4. - P.256-266.

94. Christensen E.I., Birn II., Verroust P., Moestrup S.K. Megalin-mediated endocytosis in renal proximal tubule // Ren. Fail. 1998. - V.20. - N.2. -P.191-199.

95. Christensen E.I., Gburek J. Protein reabsorption in renal proximal tubule-function and dysfunction in kidney pathophysiology // Pediatr. Nephrol. -2004. V.19. - N.7. - P.714-721.

96. Christensen E.I., Gliemann J., Moestrup S.K. Renal tubule gp330 is a calcium binding receptor for endocytic uptake of protein // J. Histochem. Cytochem. 1992 - V.40. - N. 10. - P. 1481-1490.

97. Christensen E.I., Verroust P.J., Nielsen R. Receptor-mediated endocytosis in renal proximal tubule // Pflugers. Arch. 2009. - V.458. - N.6. -P.1039-1048.

98. Cifcioglu N., Haddad R.S., Golden D.C., Morrison D.R., McKay D.S. A potential cause for kidney stone formation during space flights: enhanced growth of nanobacteria in microgravity // Kidney Int. 2005. - V.67. - N.2. -P.483-491.

99. Cirillo M., De Santo N.G., Heer M., Norsk P., Elmann-Larsen B., Bellini L., Stellato D., Drummer C. Low urinary albumin excretion in astronauts during space missions //Nephron. Physiol. -2003. -V.93. -N.4. P. 102-105.

100. Collard C.D., Montalto M.C., Reenstra W.R., Buras J.A., Stahl G.L. Endothelial oxidative stress activates the lectin complement pathway: role of cytokeratin 1 //Am. J. Pathol. -2001. V.159. -N.3. - P. 1045-1054.

101. Court M., Selevsek N., Matondo M., Allory Y., Garin J., Masselon C.D., Domon B. Toward a standardized urine proteome analysis methodology // Proteomics. -2011. V.l 1. -N.6. - P. 1160-1171.

102. Dai L.J., Ritchie G., Kerstan D., Kang H.S., Cole D.E., Quamme G.A. Magnesium transport in the renal distal convoluted tubule // Physiol. Rev. 2001. - V.81.-N.1.-P.51-84.

103. D'Amico G., Bazzi C. Pathophysiology of proteinuria // Kidney Int. -2003. V.63. - N.3. - P.809-825.

104. Datta K., Li J., Karumanchi S.A., Wang E., Rondeau E., Mukhopadhyay D. Regulation of vascular permeability factor/vascular endothelial growth factor (VPF/VEGF-A) expression in podocytes // Kidney Int. 2004. -V.66. -N.4. - P.1471-1478.

105. De Santo N.G., Cirillo M., Valenti G., Perna A., Anastasio P., Drummer C. Renal function in space: the link between osteoporosis, hypercalciuria and aquaporins // J. Ren. Nutr. 2005. - V. 15. - N. 1. - P. 183-188.

106. Deen W.M. What determines glomerular capillary permeability? // J. Clin. Invest. 2004. - V. 114. - N. 10. - P. 1412-1414.

107. Deen W.M., Lazzara M.J., Myers B.D. Structural determinants of glomerular permeability // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2001. - V.281. -N.4. -F579-596.

108. Deen W.M., Satvat B. Determinants of the glomerular filtration of proteins // Am. J. Physiol. 1981. - V.241. - N.2. - F. 162-170.

109. DeLonga D.M. Proteinuria in aviation personnel: waiver policy in the U.S. Navy // Aviat. Space Environ. Med. 2003. - V.74. - 6Pt. 1. - P.664-668.

110. Devuyst O., Jouret F., Auzanneau C., Courtoy P.J. Chloride channels and endocytosis: new insights from Dent's disease and C1C-5 knockout mice // Nephron. Physiol. -2005. -V.99. -N.3. -P.69-73.

111. Dimke H., Floenderop J.G., Bindels R.J. Molecular basis of epithelial Ca2+ and Mg2+ transport: insights from the TRP channel family // J. Physiol. -2011. N.589. - Pt.7. - P. 1535-1542.

112. Drummer C, Hesse C, Baisch F, Norsk P, Elmann-Larsen B, Gerzer R, Heer M. Water and sodium balances and their relation to body mass changes in microgravity // Eur. J. Clin. Invest. 2000. - V.30. - N.12. - P. 10661075.

113. Drummer C, Norsk P, Heer M. Water and sodium balance in space // Am. J. Kidney Dis. 2001. - V.38. - N.3. - P.684-690.

114. Drummer C, Valenti G, Cirillo M, Perna A, Bellini L, Nenov V, De Santo N.G. Vasopressin, hypercalciuria and aquaporin: the key elements for impaired renal water handling in astronauts? // Nephron. 2002. - V.92. - N.3. -P.503-514.

115. Eaton D.C. Frontiers in renal and epithelial physiology — grand challenges // Front. Physiol. 2012. - N.3. - P.2.

116. El-Achkar T.M, Wu X.R. Uromodulin in kidney injury: an instigator, bystander, or protector? // Am. J. Kidney Dis. 2012. - V.59. -N.3. - P.452-461.

117. Erdos E.G., Wagner B, Harbury C.B, Painter R.G, Skidgel R.A, Fa X.G. Down-regulation and inactivation of neutral endopeptidase 24.11 (enkephalinase) in human neutrophils //J. Biol. Chem. 1989. -V.264. -N.24. - P. 14519-14523.

118. España F., Navarro S., Medina P., Zorio E., Estellés A. The role of protein C inhibitor in human reproduction // Semin. Thromb. Flemost. 2007. -V.33. -N.l. - P.41-45.

119. Farquhar M.G. The glomerular basement membrane: not gone, just forgotten // J. Clin. Invest. 2006. - V.l 16. -N.8. - P.2090-2093.

120. Ferment O., Gamier P.E., Touitou Y. Comparison of the feedback effect of magnesium and calcium on parathyroid hormone secretion in man // J. Endocrinol. 1987. - V. 113. - N. 1. - P. 117-122.

121. Fliser D., Wittke S., Mischak H. Capillary electrophoresis coupled to mass spectrometry for clinical diagnostic purposes // Electrophoresis. 2005. -V.26. - V.14. -P.2708-2716.

122. Fröhlich M., Deen P.M., Klipp E. A systems biology approach: modelling of aquaporin-2 trafficking // Genome Inform. 2010. - V.24. — N.l. — P.42-55.

123. Gburek J., Verroust P.J., Willnow T.E., Fyfe J.C., Nowacki W., Jacobsen C., Moestrup S.K., Christensen E.I. Megalin and cubilin are endocytic receptors involved in renal clearance of hemoglobin // J. Am. Soc. Nephrol. -2002. V.13. -N.2. — P.423-430.

124. Gekle M., Mildenberger S., Freudinger R., Silbernagl S. Endosomal alkalinization reduces Jmax and Km of albumin receptor-mediated endocytosis in OK cells // Am. J. Physiol. 1995. - V.268. - 5Pt.2. - F.899-906.

125. Goldspink D.F., Kelly F.J. Protein turnover and growth in the whole body, liver and kidney of the rat from the foetus to senility // Biochem. J. 1984. -V.217. - N.2. — P.507-516.

126. Gonzales P.A., Pisitkun T., Hoffert J.D., Tchapyjnikov D., Star R.A., Kleta R., Wang N.S., Knepper M.A. Large-scale proteomics and phosphoproteomics of urinary exosomes // J. Am. Soc. Nephrol. 2009. - V.20. -N.2. -P.363-379.

127. Gonzales P.A., Pisitkun T., Knepper M.A. Urinary exosomes: is there a future? // Nephrol. Dial. Transplant. 2008. - V.23. -N.6. - P. 1799-1801.

128. González-Buitrago J.M., Ferreira L., Lorenzo I. Urinary proteomics // Clin. Chim. Acta. 2007. - V.375. -N.l-2. - P.49-56.

129. Good D.M., Zubarev R.A. Drug target identification from protein dynamics using quantitative pathway analysis // J. Proteome Res. 2011. - V.10. -N.5. - P.2679-2683.

130. Gorriz J.L., Martinez-Castelao A. Proteinuria: detection and role in native renal disease progression // Transplant. Rev. (Orlando). 2012. - V.26. -N.l. -P.3-13.

131. Grandis J.R., Sok J.C. Signaling through the epidermal growth factor receptor during the development of malignancy // Pharmacol. Ther. 2004. -V. 102. - N.l. — P.37-46.

132. Grigoriev A.I., Egorov A.D. The effects of prolonged spaceflights on the human body //Adv. Space Biol. Med. 1991. -N.l. - P. 1-35.

133. Grigoriev A.I., Morukov B.V., Vorobiev D.V. Water and electrolyte studies during long-term missions onboard the space stations SALYUT and MIR // Clin. Investig. 1994. - V.72. -N.3. - P. 169-189.

134. Hall A.M., Kleta R., Unwin R.J. The renal Fanconi syndrome // Oxford Desk Reference in Nephrology, Oxford University Press, New York, NY. -2009.

135. Hall A.M., Unwin R.J. The not so 'mighty chondrion': emergence of renal diseases due to mitochondrial dysfunction // Nephron. Physiol. 2007. -V. 105. - N.l. - P. 1-10.

136. Hall A.M., Unwin R.J., Parker N., Duchen M.R. Multiphoton imaging reveals differences in mitochondrial function between nephron segments // J. Am. Soc. Nephrol. 2009. - V.20. - N.6. - P.1293-1302.

137. Hamburger A.E., West A.P. Jr., Bjorkman P.J. Crystal structure of a polymeric immunoglobulin binding fragment of the human polymeric immunoglobulin receptor // Structure. 2004. - V. 12. - N. 11. - P. 1925-1935.

138. Flan X., Fiehler R., Broze G.J. Jr. Characterization of the protein Z-dependent protease inhibitor. // Blood. 2000. - V.96. -N.9. - P.3049-3055.

139. Haraldsson B. Tubular reabsorption of albumin: it's all about cubilin //

140. J. Am. Soc. Nephrol. 2010. - V.21. - N. 11. - P. 1810-1812.146

141. Haraldsson B., Nystrom J. The glomerular endothelium: new insights on function and structure // Curr. Opin. Nephrol. Hypertens. 2012. - V.21. — N.3.- P.258-263.

142. Haraldsson B., Nystrom J., Deen W.M. Properties of the glomerular barrier and mechanisms of proteinuria // Physiol. Rev. 2008. - V.88. — N.2. -P.451-487.

143. Haraldsson B., Sorensson J. Why do we not all have proteinuria? An update of our current understanding of the glomerular barrier // News Physiol. Sci.- 2004. -N.19. — P.7-10.

144. Hartmann H.G., Braedel H.E., Jutzler G.A. Detection of renal tubular lesions after abdominal aortography and selective renal arteriography by quantitative measurements of brush-border enzymes in the urine // Nephron. — 1985. V.39. -N.2. -P.95-101.

145. He J.C., Chuang P.Y., Ma'ayan A., Iyengar R. Systems biology of kidney diseases // Kidney Int. 2012. - V.81. - N. 1. - P.22-39.

146. Heer M., Baisch F., Kropp J., Gerzer R., Drummer C. High dietary sodium chloride consumption may not inducebody fluid retention in humans // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2000. - V.278. - N.4. - F.585-595.

147. Heiser M., Hutter-Paier B., Jerkovic L., Pfragner R., Windisch M., Becker-Andre M., Dieplinger H. Vitamin E binding protein afamin protects neuronal cells in vitro. // J. Neural. Transm. Suppl. 2002. - V.62. - P.337-345.

148. Henry J.P., Gauer O.H., Reeves J.L. Evidence of the atrial location of receptors influencing urine flow // Circ. Res. 1956. - V.4. - N. 1. - P.85-90.

149. Herrera G.M., Etherton B., N-Ausch B., Nelson M.T. Negative feedback regulation of nerve-mediated contractions by K/Ca channels in mouse urinary bladder smooth muscle // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. -2005. V.289. -N.2. - P.402-409.

150. Hersh L.B., Rodgers D.W. Neprilysin and amyloid beta peptide degradation // Curr. Alzheimer Res. 2008. - V.5. - N.2. - P.225-231.

151. Hjalmarsson C., Ohlson M., Haraldsson B. Puromycin aminonucleoside damages the glomerular size barrier with minimal effects on charge density // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2001. - V.281. - N.3. - P.503-512.

152. Hocevar B.A., Smine A., Xu X.X., Howe P.H. The adaptor molecule Disabled-2 links the transforming growth factor beta receptors to the Smad pathway // EMBO J. 2001. - V.20. - N. 11. - P.2789-2801.

153. Hoyer J.R. Uropontin in urinary calcium stone formation // Miner. Electrolyte Metab. 1994. - V.20. - N.6. - P.385-392.

154. Hoyer J.R., Pietrzyk R.A., Liu H., Whitson P.A. Effects of microgravity on urinary osteopontin // J. Am. Soc. Nephrol. — 1999. — V. 10. -Suppl.14. S.389-393.

155. Huxley V.H., Willians D.A. Role of a glycocalyx on coronary arteriole permeability to proteins: evidence from enzyme treatments // Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 2000. - V.278. - N.4. - H.l 177-1185.148

156. Ishihama Y, Rappsilber J, Andersen J.S, Mann M. Microcolumns with self-assembled particle frits for proteomics // J. Chromatogr. A. 2002. -V.979. -N.l-2. -P.233-239.

157. Ishikawa H, Sugie K, Murayama K, Awaya A, Suzuki Y, Noguchi S, Hayashi Y.K, Nonaka I, Nishino I. Ullrich disease due to deficiency of collagen VI in the sarcolemma // Neurology. 2004. - V.62. - N.4. - P.620-623.

158. Ishikawa S. Urinary excretion of aquaporin-2 in pathological states of water metabolism // Ann. Med. 2000. - V.32. - N.2. - P.90-93.

159. Izzedine H, Launay-Vacher V, Deray G. Antiviral drug-induced nephrotoxicity // Am. J. Kidney Dis. 2005. - V.45. -N.5. - P.804-817.

160. Izzedine H, Launay-Vacher V, Deray G. Fanconi syndrome associated with didanosine therapy // AIDS. 2005. - V.19. - N.8. - P.844-845.

161. Jantos-Siwy J, Schiffer E, Brand K, Schumann G, Rossing K, Delles C, Mischak H, Metzger J. Quantitative urinary proteome analysis for biomarker evaluation in chronic kidney disease // J. Proteome Res. 2009. - V.8. -N.l. - P.268-281.

162. Jarad G, Miner J.H. Update on the glomerular filtration barrier // Curr. Opin. Nephrol. Hypertens. 2009. - V. 18. -N.3. - P.226-232.

163. Jeansson M, Haraldsson B. Morphological and functional evidence for an important role of the endothelial cell glycocalyx in the glomerular barrier // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2006. - V.290. - N. 1. - F. 111 -116.

164. Jefferson J.A, Shankland S.H, Pichler R.FI. Proteinuria in diabetic kidney disease: a mechanistic viewpoint // Kidney Int. 2008. - V.74. - N.l. -P.22-36.

165. Jia L., Zhang L., Shao C., Song E., Sun W., Li M., Gao Y. An attempt to understand kidney's protein handling function by comparing plasma and urine proteomes // PLoS One. 2009. - V.4. - N.4. - e.5146.

166. Julian B.A., Novak J. IgA nephropathy: an update // Curr. Opin. Nephrol. Hypertens. 2004. -V. 13. -N.2. - P. 171-179.

167. Jung K., Pergande M., Porstmann B., Porstmann T. Diuresis-dependent excretions of low-molecular mass proteins in urine: beta-2-microglobulin, lysozyme, and ribonuclease // Scand. J. Clin. Lab. Invest. 1988. -V.48. -N.l. -P.33-37.

168. Kaetzel C.S. The polymeric immunoglobulin receptor: bridging innate and adaptive immune responses at mucosal surfaces // Immunol. Rev. 2005. -N.206. — P.83-99.

169. Kajander E.O., Ciftcioglu N., Aho K., Garcia-Cuerpo E. Characteristics of nanobacteria and their possible role in stone formation // Urol. Res. 2003. - V.31. - N.2. - P.47-54.

170. Kanno K., Sasaki S., Hirata Y., Ishikawa S., Fushimi K., Nakanishi S., Bichet D.G., Marumo F. Urinary excretion of aquaporin-2 in patients with diabetes insipidus //N. Engl. J. Med. 1995. - V.332. -N.23. - P.1540-1545.

171. Kaseda R., Hosojima M., Sato H., Saito A. Role of megalin and cubilin in the metabolism of vitamin D(3) // Ther. Apher. Dial. 2011. - V.15. -Suppl.l. - P. 14-17.

172. Kenny A.J., Bourne A, Ingram J. Hydrolysis of human and pig brain natriuretic peptides, urodilatin, C-type natriuretic peptide and some C-receptor ligands by endopeptidase-24.11 // Biochem. J. 1993. - V.291. - Pt. 1. - P.83-88.

173. Kerjaschki D. Dysfunctions of cell biological mechanisms of visceral epithelial cell (podocytes) in glomerular diseases // Kidney Int. 1994. — V.45. -N.2. - P.300-313.

174. Kestila M., Mannikko M., Holmberg C., Gyapay G., Weissenbach J., Savolainen E.R., Peltonen L., Tryggvason K. Congenital nephritic syndrome of the Finnish type maps to the long arm of chromosome 19 // Am. J. Hum. Genet. -1994. V.54. - N.5. - P.757-764.

175. Kharmate G., Rajput P.S., Watt H.L., Somvanshi R.K., Chaudhari N., Qiu X., Kumar U. Role of somatostatin receptor 1 and 5 on epidermal growth factor receptor mediated signaling. // Biochim. Biophys. Acta. 2011. - V. 1813. -N.6.-P.1172-1189.

176. Kirsch K.A., Rocker L., Gauer O.H., Krause R., Leach C., Wicke H.J., Landry R. Venous pressure in man during weightlessness // Science. 1984. -V.225. - N.4658. - P.218-219.

177. Kleinman J.G., Wesson J.A., Hughes J. Osteopontin and calcium stone formation // Nephron. Physiol. 2004. - V.98. -N.2. - P.43-47.

178. Kramer HJ., Fleer M., Cirillo M., De Santo N.G. Renal hemodynamics in space // Am. J. Kidney Dis. 2001. - V.38. -N.3. - P.675-678.

179. Lampe A.K., Bushby K.M. Collagen VI related muscle disorders // J. Med. Genet. 2005. - V.42. -N.9. - P.673-685.

180. Leach C.S. Medical results from STS 1-4: analysis of body fluids // Aviat. Space Environ. Med. 1983. - V.54. - 12Pt.2. - S.50-54.152

181. Leach C.S., Alfrey C.P., Suki W.N., Leonard J.I., Rambaut P.C., Inners L.D., Smith S.M., Lane H.W., Krauhs J.M. Regulation of body fluid compartments during short-term spaceflight // J. Appl. Physiol. 1996. - V.81. -N.l. -P.105-116.

182. Leach C.S., Grigoriev A.I., Natochin Y.V. Fluid and Electrolyte Regulation in Space Flight // Science and Technology Series. 1998. - V.94.

183. Leach C.S., Johnson P.C., Rambaut P.C. Metabolic and endocrine studies: the second manned Sky lab mission // Aviat. Space Environ. Med. 1976. — V.47. — N.4. — P.402-410.

184. Leach C.S., Leonard J.I., Rambaut P.C., Johnson P.C. Evaporative water loss in man in a gravity-free environment // J. Appl. Physiol. 1978. - V.45. -N.3. - P.430^136.

185. Lei T., Zhao X., Jin S., Meng Q., Zhou H., Zhang M. Discovery of potential bladder cancer biomarkers by comparative urine proteomics and analysis // Clin. Genitourin. Cancer. 2013. - V. 11. - N. 1. - P.56-62.

186. Levillain O. Expression and function of arginine-producing and consuming-enzymes in the kidney // Amino Acids. 2012. - V.42. - N.4. -P.1237-1252.

187. Lhotta K. Uromodulin and chronic kidney disease. // Kidney Blood Press. Res. 2010. - V.33. -N.5. - P.393-398.

188. Liakopoulos V., Leivaditis K., Eleftheriadis T., Dombros N. The kidney in space //Int. Urol. Nephrol. -2012. -V.44. -N.6. P. 1893-1901.

189. Liu K., Li Q.Z., Delgado-Vega A.M., Abelson A.K., Sánchez E.,

190. Kelly J.A., Li L., Liu Y., Zhou J., Yan M., Ye Q., Liu S., Xie C., Zhou X.J., Chung

191. S.A., Pons-Estel B., Witte T., de Ramón E., Bae S.C., Barizzone N., Sebastiani

192. G.D., Merrill J.T., Gregersen P.K., Gilkeson G.G., Kimberly R.P., Vyse T.J., Kim1., D'Alfonso S., Martin J., Harley J.B., Criswell L.A., Profile Study Group, Italian

193. Collaborative Group, German Collaborative Group, Spanish Collaborative Group,

194. Argentinian Collaborative Group, SLEGEN Consortium, Wakeland E.K., Alarcón

195. Riquelme M.E., Mohan C. Kallikrein genes are associated with lupus and153glomerular basement membrane-specific antibody-induced nephritis in mice and humans // J. Clin. Invest. 2009. - V. 119. - N.4. - P.911 -923.

196. Liu X., Yu X., Zack D.J., Zhu H., Qian J. TiGER: a database for tissue-specific gene expression and regulation // BMC Bioinformatics. 2008. -V.9. -P.271.

197. Lovett D.H., Mahimkar R., Raffai R.L., Cape L., Maklashina E., Cecchini G., Karliner J.S. A novel intracellular isoform of matrix metalloproteinase-2 induced by oxidative stress activates innate immunity // PLoS One. 2012. - V.7. -N.4. - e.34177.

198. Lu J., Stewart A .J., Sadler P. J., Pinheiro T. J., Blindauer C.A. Albumin as a zinc carrier: properties of its high-affinity zinc-binding site // Biochem. Soc. Trans. 2008. - V.36. - Pt 6. - P.1317-1321.

199. Lundgren S., Carling T., Hjalm G., Juhlin C., Rastad J., Pihlgren U., Rask L., Akerstrom G., Hellman P. Tissue distribution of human gp330/megalin, a putative Ca(2+)-sensing protein // J. Histochem. Cytochem. 1997. - V.45. - N.3. -P.383-392.

200. Maack T., Johnson V., Kau S.T., Figueiredo J., Sigulem D. Renal filtration, transport, and metabolism of low-molecular-weight proteins: a review // Kidney Int. 1979. - V. 16. - N.3. - P.251 -270.

201. Magrane M., Consortium U. UniProt Knowledgebase: a hub of integrated protein data // Database (Oxford). 2011.

202. Malmstrom E., Morgelin M., Malmsten M., Johansson L., Norrby-Teglund A., Shannon O., Schmidtchen A., Meijers J.C., Herwald H. Protein C inhibitor-a novel antimicrobial agent // PLoS Pathog. 2009. — V.5. - N.12. -e.1000698.

203. McDonough A.A. Mechanisms of proximal tubule sodium transport regulation that link extracellular fluid volume and blood pressure // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2010. - V.298. - N.4. - P.851-861.

204. Medical Evaluation Documents (MED) Volume A, Medical Standards for ISS Crewmembers Rev.3.1. - 2010.

205. Mikolajczyk H., Golec L., Pach B. Glycosaminoglycans and hydroxyproline in the urine of men exposed for 35-40 minutes to a simulated altitude of 5000m (540 hPa) // Acta Physiol. Pol. 1981. - V.32. - N. 1. - P.57-62.

206. Mischak H., Kolch W., Aivaliotis M., Bouyssie D., Court M., Dihazi

207. Mogensen C.E. Microalbuminuria predicts clinical proteinuria and early mortality in maturity-onset diabetes // N. Engl. J. Med. 1984. - V.310. -N.6. - P.356-360.

208. Motoyama N, Okada N, Yamashina M, Okada H. Paroxysmal nocturnal hemoglobinuria due to hereditary nucleotide deletion in the HRF20 (CD59) gene // Eur. J. Immunol. 1992. - V.22. - N. 10. - P.2669-2673.

209. Motoyoshi Y, Matsusaka T, Saito A, Pastan I, Willnow T.E, Mizutani S, Ichikawa I. Megalin contributes to the early injury of proximal tubule cells during nonselective proteinuria // Kidney Int. 2008. - V.74. — N.10. — P. 1262-1269.

210. Nagaraj N., Mann M. Quantitative analysis of the intra- and interindividual variability of the normal urinary proteome // J. Proteome Res. — 2011.— V.10. -N.2. P.637-645.

211. Natochin Yu.V., Grigoriev A.I., Noskov V.B., Parnova R.G., Sukhanov Yu.V., Firsov D.L., Shakhmatova E.I. Mechanism of postflight decline in osmotic concentration of urine in cosmonauts // Aviat. Space Environ. Med. -1991.- V.62. N. 11. - P. 1037-1043.

212. Niaudet P., Rotig A. Renal involvement in mitochondrial cytopathies // Pediatr Nephrol. 1996. - V. 10. - N.3. - P.368-373.

213. Noakes P.G., Miner J.H., Gautam M., Cunningham J.M., Sanes J.R., Merlie J.P. The renal glomerulus of mice lacking s-laminin/laminin beta 2: nephrosis despite molecular compensation by laminin beta 1 //Nat. Genet. 1995.- V.10. -N.4. -P.400-406.

214. Noddeland H., Myhre K., Balldin U.I., Andersen H.T. Proteinuria in fighter pilots after high +Gz exposure // Aviat. Space Environ. Med. 1986. -V.57. -N.2. -P.122-125.

215. Norsk P. Renal adjustments to microgravity // Pflugers. Arch. 2000.- V.441. Suppl.2-3. - R.62-65.

216. Norsk P., Christensen N.J., Bie P., Gabrielsen A., Heer M., Drummer C. Unexpected renal responses in space // Lancet. 2000. - V.356. - N.9241. -P.l 577-1578.

217. Norsk P., Drummer C., Christensen N.J., Cirillo M., Heer M., Kramer H., Regnard J., De Santo N.G. Revised hypothesis and future perspectives // Am. J. Kidney Dis. 2001. - V.38. -N.3. - P.696-698.

218. Nouwen E.J., Verstrepen W.A., Buyssens N., Zhu M.Q., De Broe M.E. Hyperplasia, hypertrophy, and phenotypic alterations in the distal nephron after acute proximal tubular injury in the rat // Lab. Invest. 1994. - V.70. - N.4. -P.479-493.

219. Nykjaer A., Dragun D., Walther D., Vorum H., Jacobsen C., Herz J., Meisen F., Christensen E.I., Willnow T.E. An endocytic pathway essential for renal uptake and activation of the steroid 25-(OH) vitamin D3 // Cell. 1999. -V.96. -N.4. - P.507-515.

220. Offerhouse L., Dejoungh J.C. Flomeostatic regulation of the circulation during prolonged gravitational stress // Aerospace Med. 1967. - V.38. -N.5.-P. 468-475.

221. Oh J., Pyo J.H., Jo E.H., Hwang S.I., Kang S.C, Jung J.H., Park E.K., Kim S.Y., Choi J.Y., Lim J. Establishment of a near-standard two-dimensional human urine proteomic map // Proteomics. 2004. - V.4. - N. 11. - P.3485-3497.

222. Ohlmeier S., Mazur W., Linja-Aho A., Louhelainen N., Rönty M., Toljamo T., Bergmann U., Kinnula V.L. Sputum proteomics identifies elevated PIGR levels in smokers and mild-to-moderate COPD // J. Proteome Res. 2012. -V. 11. - N.2. - P.599-608.

223. Ohlson M., Sorensson J., Lindstrom K., Blom A.M., Fries E., Haraldsson B. Effects of filtration rate on the glomerular barrier and clearance of four differently shaped molecules // Am. J. Physiol. Renal Physiol. 2001. -V.281. -N.l. -P.F103-F113.

224. Osborn L., Vassallo C., Benjamin C.D. Activated endothelium binds lymphocytes through a novel binding site in the alternately spliced domain of vascular cell adhesion molecule-1 // Antioxid. Redox. Signal. 2011. - V.l5. -N.6. -P.1607-1638.

225. Parry D.A., Crewther W.G, Fraser R.D., MacRae T.P. Structure of alpha-keratin: structural implication of the amino acid sequences of the type I and type II chain segments // J. Mol. Biol. 1977. - V.l 13. -N.2. -P.449-454.

226. Pearson A.L., Colville-Nash P., Kwan J.T., Dockrell M.E. Albumin induces interleukin-6 release from primary human proximal tubule epithelial cells // J. Nephrol. 2008. - V.21. - P.6. - P.887-893.

227. Pedersen G.A., Chakraborty S., Steinhauser A.L., Traub L.M., Madsen M. AMN directs endocytosis of the intrinsic factor-vitamin B(12) receptor cubam by engaging ARH or Dab2 // Traffic. 2010. - V.l 1. - N.5. - P.706-20.

228. Penescu M., Purcarea V.L., Sisu I., Sisu E. Mass spectrometry and renal calculi // J. Med. Life. 2010. - V.3. - N.2. - P.128-136.

229. Perkins D.N., Pappin D.J., Creasy D.M., Cottrell J.S. Probability-based protein identification by searching sequence databases using mass spectrometry data // Electrophoresis. 1999. - V.20. - N. 18. - P.3551 -3567.

230. Pietrzyk R.A., Jones J.A., Sams C.F., Whitson P.A. Renal stone formation among astronauts // Aviat. Space Environ. Med. 2007. - V.78. -4Supple.-A.9-13.

231. Pizard A., Richer C., Bouby N., Picard N., Meneton P., Azizi M., Alhenc-Gelas F. Genetic deficiency in tissue kallikrein activity in mouse and man: effect on arteries, heart and kidney // Biol. Chem. 2008. - V.389. - N.6. - P.701-706.

232. Pollock C.A., Poronnik P. Albumin transport and processing by the proximal tubule: physiology and pathophysiology // Curr. Opin. Nephrol. Hypertens. 2007. - V. 16. - N.4. - P.359-364.

233. Ponticelli C., Meroni P.L. Kallikreins and lupus nephritis // J. Clin. Invest. 2009. - V. 119. - N.4. - P.768-771.

234. Poortmans J.R., Rampaer L., Wolfs J.C. Renal protein excretion after exercise in man // Eur. J. Appl. Physiol. Occup. Physiol. 1989. - V.58. - N.5. -P.476-480.

235. Prabakaran T., Christensen E.I., Nielsen R., Verroust P.J. Cubilin is expressed in rat and human glomerular podocytes // Nephrol. Dial. Transplant. -2012. V.27. - N.8. - P.3156-3159.

236. Pro B., Dang N.FI. CD26/dipeptidyl peptidase IV and its role in cancer // Histol. Histopathol. 2004. - V.19. -N.4. -P.1345-1351.

237. Prunier C., Hocevar B.A., Howe P.H. Wnt signaling: physiology and pathology // Growth Factors. 2004. - V.22. - N.3. - P. 141-150.

238. Puliyanda D.P., Ward D.T., Baum M.A., Hammond T.G., Harris H.W. Jr. Calpain-mediated AQP2 proteolysis in inner medullary collecting duct // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2003. - V.303. -N.l. - P.52-58.

239. Rail L.B., Scott J., Bell G.I., Crawford R.J., Penschow J.D., Niall H.D., Coghlan J.P. Mouse prepro-epidermal growth factor synthesis by the kidney and other tissues // Nature. 1985. - V.313. - N.5999. - P.228-231.

240. Rampoldi L., Scolari F., Amoroso A., Ghiggeri G., Devuyst O. Therediscovery of uromodulin (Tamm-Horsfall protein): from tubulointerstitial160nephropathy to chronic kidney disease // Kidney Int. 2011. - V.80. - N.4. -P.338-347.

241. Rasmussen H.H, Orntoft T.F, Wolf H, Celis J.E. Towards a comprehensive database of proteins from the urine of patients with bladder cancer //J. Urol. 1996. - V.155. -N.6. - P.2113-2119.

242. Rehman I, Azzouzi A.R, Catto J.W, Allen S, Cross S.S, Feeley K, Meuth M, Hamdy .FC. Proteomic analysis of voided urine after prostatic massage from patients with prostate cancer: a pilot study // Urology. 2004. - V.64. - N.6. — P.1238-1243.

243. Renigunta A, Renigunta V, Saritas T, Decher N, Mutig K, Waldegger S. Tamm-Horsfall glycoprotein interacts with renal outer medullary potassium channel ROMK2 and regulates its function // J. Biol. Chem. 2011. -V.286. - N.3. - P.2224-2235.

244. Rennie I.D.B, Joseph B.J. Urinary protein excretion in climbers at high altitudes // Lancet. 1970. - V. 1. - N.7659. - P. 1247-1251.

245. Rennke H.G, Denker B.M. Review of renal physiology // Renal pathophysiology: the essentials. Lippincott Williams and Wilkins, Philadelphia. -2007.-375p.

246. Rezaie A.R, Bae J.S, Manithody C, Qureshi S.H, Yang L. Protein Z-dependent protease inhibitor binds to the C-terminal domain of protein Z // J. Biol. Chem. 2008. -V.283. -N.29. - P. 19922-19926.

247. Rezaie A.R, Cooper S.T, Church F.C, Esmon C.T. Protein C inhibitor is a potent inhibitor of the thrombin-thrombomodulin complex // J. Biol.

248. Chem. 1995. - V.270. -N.43. - P.25336-25339.161

249. Riccardi D., Hall A.E., Chattopadhyay N., Xu J.Z., Brown E.M., Hebert S.C. Localization of the extracellular Ca2+/polyvalent cation-sensing protein in rat kidney // Am. J. Physiol. 1998. - V.274. - N.3. - Pt.2. - F.611-622.

250. Rice J.C., Spence J.S., Megyesi J., Safirstein R.L., Goldblum R.M. Regulation of the polymeric immunoglobulin receptor by water intake and vasopressin in the rat kidney // Am. J. Physiol. 1998. - V.274. - N.5. - Pt. 2. -F.966-977.

251. Rich P.R. The molecular machinery of Keilin's respiratory chain // Biochem. Soc. Trans. 2003. - V.31. - Pt.6. - P.1095-1105.

252. Roelofsen H., Alvarez-Llamas G., Schepers M., Landman K., Vonk R.J. Proteomics profiling of urine with surface enhanced laser desorption/ionization time of flight mass spectrometry // Proteome Sci. 2007. -N.5.-P.2.

253. Rostgaard J., Qvortrup K. Sieve plugs in fenestrae of glomerular capillaries-site of the filtration barrier? // Cells Tissues Organs. 2002. — V.170. -N.2-3. -P.132-138.

254. Rubenstein D.A., Yin W. Glycated albumin modulates platelet susceptibility to flow induced activation and aggregation // Platelets. 2009. — V.20. -N.3. -P.206-215.

255. Saito A., Sato H., lino N., Takeda T. Molecular mechanisms of receptor-mediated endocytosis in the renal proximal tubular epithelium // J. Biomed. Biotechnol. 2010. - 403272.

256. Schena F.P., Gesualdo L. Pathogenetic mechanisms of diabetic nephropathy // J. Am. Soc. Nephrol. 2005. - V.16. - Suppl.l. - S.30-33.

257. Schlondorff D. The glomerular mesangial cell: an expanding role for a specialized pericyte //FASEB J. 1987. - V.l. -N.4. -P.272-281.

258. Schmid M., Prajczer S., Gruber L.N., Bertocchi C., Gandini R., Pfaller W., Jennings P., Joannidis M. Uromodulin facilitates neutrophil migration across renal epithelial monolayers // Cell Physiol. Biochem. 2010. - V.26. — N.3. — P.311-318.

259. Shanley P.F., Rosen M.D., Brezis M., Silva P., Epstein F.H., Rosen S. Topography of focal proximal tubular necrosis after ischemia with reflow in the rat kidney // Am. J. Pathol. 1986. - V. 122. -N.3. - P.462^168.

260. Sherman R.L., Drayer D.E., Ley land-Jones B.R., Reidenberg M.M. N-acetyl-beta-glucosaminidase and beta 2-microglobulin. Their urinary excretion in patients with renal parenchymal disease // Arch. Intern. Med. 1983. - V.143. -N.6. -P.1183-1185.

261. Sibilia M., Kroismayr R., Lichtenberger B.M., Natarajan A., Hecking M., Holcmann M. The epidermal growth factor receptor: from development to tumorigenesis // Differentiation. 2007. - V.75. -N.9. -P.770-787.

262. Smith H.W. Salt and water volume receptors: an exercise in physiologic apologetics // Am. J. Med. 1957. - V.23. - N.4. - P.623-652.

263. Smith FI.W. The kidney: structure and function in health and disease. -NY.: Oxford University Press, 1951. 1050p.

264. Smith S.M., Heer M., Wang Z., Huntoon C.L., Zwart S.R. Long-duration space flight and bed rest effects on testosterone and other steroids // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2012. - V.97. -N.l. - P.270-278.

265. Song Q., Chao J., Chao L. High level expression of human tissue kallikrein in the circulation induces hypotension in transgenic mice // Immunopharmacology. 1996. - V.32. -N. 1-3. - P. 105-107.

266. Sorensson J., Ohlson M., Haraldsson B. A quantitative analysis of the glomerular charge barrier in the rat // Am. J. Physiol. Renal Physiol. 2001. -V.280. - N.4. - F.646-656.

267. Sorensson J., Ohlson M., Haraldsson B. A quantitative analysis of the glomerular charge barrier in the rat // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. — 2001. -V.280.-N.4.-F.646-656.

268. Sorensson J., Ohlson M., Lindstrom K., Haraldsson B. Glomerular charge selectivity for peroxidase ad albumin at low and normal ionic strengths // Acta Physiol. Scand. 1998. - V. 163. - N. 1. - P.83-91.

269. Starklint J., Bech J.N., Nyvad O., Jensen P., Pedersen E.B. Increased urinary aquaporin-2 excretion in response to furosemide in patients with chronic heart failure // Scand. J. Clin. Lab. Invest. 2006. - V.66. -N.l. -P.55-66.

270. Stein T.P., Schluter M.D. Excretion of IL-6 by astronauts during spaceflight // Am. J. Physiol. 1994. - V.266. - 3Pt.l. - E.448-452.

271. Stojimirovic B., Petrovic D. Effect of proteinuria on tubulointerstitial damage // Med. Pregl. 2003. - V. 56. - N.7-8. - P.351-354.

272. Stowe R.P., Sams C.F., Pierson D.L. Adrenocortical and immune responses following short- and long-duration spaceflight // Aviat. Space Environ. Med. 2011. - V.82. - N.6. - P.627-634.

273. Stowe R.P., Yetman D.L., Storm W.F, Sams C.F., Pierson D.L. Neuroendocrine and immune responses to 16-day bed rest with realistic launch and landing G profiles // Aviat. Space Environ. Med. 2008. - V.79. - N.2. - P.l 17122.

274. Sun W, Chen Y., Li F.X., Zhang L., Yang R.F., Zhang Z, Zheng D.X., Gao Y.H. Dynamic urinary proteomic analysis reveals stable proteins to be potential biomarkers // Proteomics Clin. Appl. -2009. V.3. -N.3. -P.370-382.

275. Tan Y., Zhang J.J., Liu G., Zhang H., Zhao M.H. The level of urinary secretory immunoglobulin A (slgA) of patients with IgA nephropathy is elevated and associated with pathological phenotypes // Clin. Exp. Immunol. 2009. -V.156. -N.l. - P.l 11-116.

276. Thebault S., Alexander R.T., Tiel Groenestege W.M., Hoenderop J.G., Bindels R.J. EGF increases TRPM6 activity and surface expression. // J. Am. Soc. Nephrol. 2009. - V.20. - N. 1. - P.78-85.

277. Thelle K., Christensen E.I., Vorum H., 0rskov H., Birn H. Characterization of proteinuria and tubular protein uptake in a new model of oral L-lysine administration in rats//Kidney Int. 2006.-V.69. -N.8. -P. 1333-1340.

278. Theodorescu D., Wittke S., Ross M.M., Walden M., Conaway M., Just I., Mischak H., Frierson H.F. Discovery and validation of new protein biomarkers for urothelial cancer: a prospective analysis // Lancet Oncol. 2006. — V.7. -N.3. - P.230-240.

279. Thongboonkerd V. Practical Points in Urinary Proteomics // J. Proteome Res. 2007. - V.6. -N.10. -P.3881-3890.

280. Thongboonkerd V., Malasit P. Renal and urinary proteomics: current applications and challenges // Proteomics. 2005. - V.5. - N. 4. - P. 1033-1042.

281. Thulesen J., J0rgensen P.E., TorffVit O., Nexo E., Poulsen S.S. Urinary excretion of epidermal growth factor and Tamm-Horsfall protein in three rat models with increased renal excretion of urine // Regul. Pept. 1997. — V.72. — N.2-3. - P.179-186.

282. Thwaites D.T., Anderson C.M. The SLC36 family of proton-coupled amino acid transporters and their potential role in drug transport // Br. J. Pharmacol. 2011. - V. 164. - N.7. - P. 1802-1816.

283. Tisher C.C., Brenner B.M. Structure and function of the glomerulus / /Renal pathology: with clinical and functional correlations, JB Lippincott, Philadelphia. 1994.

284. Tryggvason K., Patrakka J. Thin basement membrane nephropathy // J. Am. Soc. Nephrol.-2006.-V.l 7.-N.3.-P.813-822.

285. Tu Z., Kelley V.R. Collins T., Lee F.S. I kappa B kinase is critical for TNF-alpha-induced VCAM1 gene expression in renal tubular epithelial cells // J. Immunol. 2001. - V. 166. - N. 11. - P.6839-6846.

286. Tyagi S., Salier J.P., Lai S.K. The liver-specific human alpha(l)-microglobulin/bikunin precursor (AMBP) is capable of self-association // Arch. Biochem. Biophys. 2002. - V.399. - N. 1. - P.66-72.

287. Venema R.C., Ju H., Zou R., Venema V.J., Ryan J.W. Cloning and tissue distribution of human membrane-bound aminopeptidase P // Biochim. Biophys. Acta. 1997. - V. 1354. - N. 1. - P.45-48.

288. Venturoli D., Rippe B. Ficoll and dextran vs. globular proteins as probes for testing glomerular permselectivity: effects of molecular size, shape,charge, and deformability // Am. J. Physiol. Renal Physiol. 2005. - V.288. - N.4.- P.F605-F613.

289. Verroust P.J., Birn FI., Nielsen R., Kozyraki R., Christensen E.I. The tandem endocytic receptors megalin and cubilin are important proteins in renal pathology // Kidney Int. 2002. - V.62. - N.3 - P.745-756.

290. Verroust P.J., Birn H., Nielsen R., Kozyraki R., Christensen E.I. The tandem endocytic receptors megalin and cubilin are important proteins in renal pathology // Kidney Int. 2002. - V.62. - N.3. - P.745-756.

291. Verroust P J., Christensen E.I. Megalin and cubilin—the story of two multipurpose receptors unfolds // Nephrol. Dial. Transplant. 2002. - V.17. -N.l 1. — P.l 867-1871.

292. Videbaek R., Norsk P. Atrial distention in humans during microgravity induced by parabolic flights // J. Appl. Physiol. 1997. - V.83. -N.6. - P.1862-1866.

293. Wachtell K., Ibsen H., Olsen M.H., Borch-Johnsen K., Lindholm L.H., Mogensen C.E., Dahlof B., Devereux R.B., Beevers G., de Faire U.,167

294. Wang L, Li F, Sun W, Wu S, Wang X, Zhang L, Zheng D, Wang J, Gao Y. Concanavalin A captured glycoproteins in healthy human urine // Mol. Cell Proteomics. 2006. - V.5. -N.3. - P.560-562.

295. Welling L.W, Welling D.J. Surface areas of brush border and lateral cell walls in the rabbit proximal nephron // Kidney Int. 1975. - V.8. - N.6. -P.343-348.

296. Welling P.A, Weisz O.A. Sorting it out in endosomes: an emerging concept in renal epithelial cell transport regulation // Physiology (Bethesda). -2010. V.25. -N.5. - P.280-292.

297. Wen H, Frokiaer J, Kwon T.H, Nielsen S. Urinary excretion of aquaporin-2 in rat is mediated by a vasopressin-dependent apical pathway. //J. Am. Soc. Nephrol. 1999. - V. 10. -N.7. - P. 1416-1429.

298. Weyer K, Storm T, Shan J, Vainio S, Kozyraki R, Verroust P.J, Christensen E.I, Nielsen R. Mouse model of proximal tubule endocytic dysfunction // Nephrol. Dial. Transplant. 2011. - V.26. - N. 11. - P.3446-3451.

299. Whedon G.D., Lutwak L., Reid J., Rambaut P., Whittle M., Smith M., Leach C. Mineral and nitrogen metabolic studies on Skylab orbital space flights // Trans. Assoc. Am. Physicians. 1974. - V.87. -P.95-110.

300. Whitaker H.C., Warren A.Y., Eeles R., Kote-Jarai Z., Neal D.E. The potential value of microseminoprotein-beta as a prostate cancer biomarker and therapeutic target // Prostate. 2010. - V.70. - N.3. - P.333-340.

301. Whitson P.A., Pietrzyk R.A., Jones J.A., Nelman-Gonzalez M., Hudson E.K., Sams C.F. Effect of potassium citrate therapy on the risk of renal stone duration during spaceflight // J. Urology. 2009. - V.182. - N.5. - P.2490-2496.

302. Whitson P.A., Pietrzyk R.A., Morukov B.V., Sams C.F. The risk of renal stone formation during and after long duration space flight // Nephron. -2001. V.89. - N.3. - P.264-270.

303. Wiegmann T.B., Chonko A.M., Herron K., MacDougall M.L., Moore W.V. The effect of water loading on albumin excretion in type I diabetes mellitus //J. Diabet. Complications. 1989. - V.3. -N.4. - P. 187-190.

304. Wu B., Xue Y., Wu P., Gu Z., Wang Y„ Jing X. Physiological responses of astronaut candidates to simulated +Gx orbital emergency re-entry // Aviat. Space Environ. Med. -2012. -V.83. -N.8. -P.758-763.

305. Yu H., Song Q., Freedman B.I., Chao J., Chao L., Rich S.S., Bowden D.W. Association of the tissue kallikrein gene promoter with ESRD and hypertension // Kidney Int. 2002. - V.61. -N.3. - P. 1030-1039.

306. Zak-Golab A., Okopien B., Chudek J. Vitamin K, bone metabolism and vascular calcification in chronic kidney disease. // Przegl. Lek. 2011. - V.68. -N.9. -P.629-632.

307. Zerwekh J.E. Nutrition and renal stone disease in space I I Nutrition. -2002. V. 18. - N. 10. - P.857-863.

308. Zerwekh J.E., Odvina C.V., Wuermser L-A., Pak Y.C. Reduction of renal stone risk by potassium-magnesium citrate during 5 weeks of bed rest // J. Urology. 2007. - V. 177. - N.6. - P.2179-2184.

309. Zhang Y., Gao Z., Zhang Z., Luo M., Huang A., Dong Y., Wang D. Cloning, purification, crystallization and preliminary X-ray studies of human al-microglobulin // Acta Crystallogr. Sect. F. Struct. Biol. Cryst. Commun. 2012. -V.68. - Pt.6. — P.692-694.

310. Zheleznova N.N., Wilson P.D., Staruschenko A. Epidermal growth factor-mediated proliferation and sodium transport in normal and PKD epithelial cells //Biochim. Biophys. Acta. -2011. -V.1812. -N.10. -P.1301-1313.

311. Zolg W. The proteomic search for diagnostic biomarkers: lost in translation // Mol. Cell. Proteomics. -2006. V.5. -N. 10 - P. 1720-1726.

312. Ziirbig P., Dihazi H., Metzger J., Thongboonkerd V., Vlahou A. Urine proteomics in kidney and urogenital diseases: Moving towards clinical applications // Proteomics Clin. Appl. 2011. - V.5. - N.5-6. - P.256-268.

313. Ziirbig P., Jerums G., Hovind P., Macisaac R.J., Mischak H., Nielsen S.E., Panagiotopoulos S., Persson F., Rossing P. Urinary proteomics for early diagnosis in diabetic nephropathy II. .61. N. 12. - P.33043313.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.