Иммуно-физиологический статус у рыб из природных популяций и аквакультуры в норме и при патологии тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.06, кандидат биологических наук Маклакова, Мария Евгеньевна

  • Маклакова, Мария Евгеньевна
  • кандидат биологических науккандидат биологических наук
  • 2012, МоскваМосква
  • Специальность ВАК РФ03.02.06
  • Количество страниц 149
Маклакова, Мария Евгеньевна. Иммуно-физиологический статус у рыб из природных популяций и аквакультуры в норме и при патологии: дис. кандидат биологических наук: 03.02.06 - Ихтиология. Москва. 2012. 149 с.

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Маклакова, Мария Евгеньевна

Содержание

Введение

1. Обзор литературы

Современные представления об иммунной системе рыб

Бактериальные инфекции

Вирусные инфекции

Инвазии

Антибиотики и их влияние на иммуно-физиологическое состояние рыб

Хемо сенсорные свойства различных веществ для рыб

2. Материалы и методы

2.1. Объекты

2.2. Методы

2.2.1. Гематологический анализ

2.2.2. Клинический осмотр рыб и патологоанатомическое исследование

2.2.3. Бактериологическое исследование

2.2.4. Вирусологическое исследование

2.2.5. Паразитологическое исследование

2.2.6. Электрофоретическое исследование сыворотки крови

2.2.7. Введение антибиотиков

2.2.8. Электронная микроскопия

2.2.9. Исследование вкусовой привлекательности гранул с антибиотиками

2.2.10. Статистический анализ результатов

3. Результаты

3.1. Исследование иммуно-физиологического статуса трески и наваги

3.2. Исследование иммуно-физиологического статуса карпа при бактериальной и вирусной инфекциях

Морфогенез БУСУ

Ультраструктура и строение вириона 8УСУ

3.3. Влияние антибиотиков на иммунофизиологический статус радужной форели

3.4. Оценка вкусовой привлекательности антибиотиков

4. Обсуждение результатов

4.1. Исследование иммуно-физиологического статуса трески и наваги

4.2. Исследование иммуно-физиологического статуса карпа при бактериальной и вирусной инфекциях

4.3. Воздействие инъекций антибиотиков на иммуно-физиологический статус форели

4.4. Оценка вкусовой привлекательности антибиотиков для радужной форели

Заключение

Выводы

Список литературы

Список сокращений

ДИ-частицы - делеционные мутанты вируса 8УСУ

ЕРС - перевиваемая культура клеток из эпителиальной папилломы карпа.

ЖКТ — желудочно-кишечный тракт.

М - матриксный белок вириона 8УСУ

МПА — мясопептонный агар.

МПБ — мясопептонный бульон.

ПСА - персульфат аммония.

с/х животные - сельскохозяйственные животные.

Список МЭБ - заразные (трансмиссивные) болезни, которые имеют способность к опасному и быстрому распространению безотносительно к государственным границам, сопровождаются серьезными последствиями в области общественной экономики и здравоохранения, имеют важное значение в международной торговле животными и продуктами животноводства.

ТЕМЭД - N,N,N',14' - тетраметилэтилендиамин.

ТЦД - титр вируса, количество вируса, которое вызывает ЦПД в 50% зараженных лунок с культурой клеток. ЦПД - цитопатогенное действие вируса. ЭДТА - этилендиаминтетрауксусная кислота. (-) ббИКА - минус-цепь вирусная РНК. (+) 88ЮЧ[А - плюс-цепь вирусная РНК (З-МЭ - (3-меркаптоэтанол. ВБМА - диметилбензиламин. ББ8 А - додецилянтарный ангидрид. (¿бБЫА - двуцепочечная вирусная ДНК. в - гликопротеин оболочки вириона 8УСУ.

IHNV - вирус некроза гематопоэтической ткани лососевых.

1 - длина тела до конца чешуйного покрова.

N, NS, L - белки нуклеокапсида вириона SVCV.

SDS - додецилсульфат натрия.

SVCV - вирус весенней виремии карпов.

TL - максимальная длина.

TTSS - Type three secretion system, система белков грамотрицательных

бактерий, увеличивающая их патогенность.

YHSV - вирус геморрагической септицемии лососевых.

VSV - вирус везикулярного стоматита.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Ихтиология», 03.02.06 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Иммуно-физиологический статус у рыб из природных популяций и аквакультуры в норме и при патологии»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. В настоящее время во многих развитых странах мира увеличивается производство продуктов питания, получаемых за счет аквакультуры. Масштабный рост искусственного выращивания рыб и других гидробионтов неизбежно сопровождается деградацией водных экосистем, вспышками массовых заболеваний среди культивируемых объектов и аборигенных представителей природных водоемов, усилением дестабилизирующего воздействия на рыб различных стрессовых факторов естественного и антропогенного происхождения (Наумова, 1991; Лукьяненко, Кулик, 1994; Буторина, 1997; Van der Oost, 1998; Грищенко и др., 1999; Карасева, 2001; Карманова, Рудакова и др., 2004; Казимирченко, 2006; Мелехова и др., 2010). В связи с этим особую актуальность приобретают исследования, направленные на выяснение закономерностей и особенностей естественных защитных функций организма рыб, к важнейшим из которых относится врожденная система иммунитета (Ярилин, 2010). Изучение закономерностей ее функционирования и определение факторов, влияющих на иммуно-физиологический статус рыб, относится к одному из наиболее активно развиваемых направлений в физиологии рыб (Микряков и др., 1992, 2001; Балабанова, Степанова, 2000; Головин, Головина, 2001; Юхименко и др., 2005). Особый интерес представляет понимание пределов нормы иммуно-физиологического состояния рыб, находящихся под воздействием широкого спектра различных абиотических и биотических факторов, в том числе, таких как паразитарные, бактериальные и вирусные инфекции (Cipriano, Shchelkunov et al., 2005; Казарникова, Шестаковская, 2005).

Важным, но остающимся слабо разработанным направлением современной иммунологии рыб, является поиск индикаторных характеристик, позволяющих оценивать иммуно-физиологический статус особи, проводить раннюю диагностику патологических состояний и восприимчивости рыб к заболеваниям, в том числе, к латентным формам

инфекций (Anderson, 1990; Peakall, 1994; Bressler et al., 1999; Skouras, 2002). Разработка принципов и методов контроля здоровья рыб в природных водоемах и, особенно для рыб, выращиваемых искусственным образом, создание новых или совершенствование существующих способов лечения рыб имеет важное прикладное значение. Широкое применение антибиотиков, используемых в аквакультуре для подавления инфекций и в профилактических целях, не всегда дает желаемый эффект (Киташова и др., 2002; Егоров, 2004; Samanidou, Evaggelopoulou, 2007). Многими авторами отмечено иммуносупрессивное действие антибиотиков на больных рыб (Zelikoff, 1994; Кондратьева, Киташова, 2002; Saglam, Yonar, 2009). Недостаточно изучено влияние лекарственных препаратов на иммуно-физиологическое состояние здоровых рыб (Rodgers, 1991; Maqsood et al., 2009). Отсутствуют сведения о хемосенсорных свойствах антибиотиков и их влиянии на вкусовую привлекательность лечебных и профилактических кормов для рыб.

В связи с вышесказанным представляется актуальным изучение закономерностей формирования клеточного и гуморального ответа врожденного иммунитета у рыб в норме и находящихся под влиянием разнообразных факторов естественного и искусственного происхождения.

Цель работы - установить особенности иммуно-физиологического статуса рыб из природных популяций и содержащихся в искусственных условиях при поражениях различной этиологии, выяснить хемосенсорные свойства антибиотиков и их влияние на рыб.

Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

• определить у рыб из природных водоемов и аквакультуры иммуно-физиологические параметры в норме и при поражениях различной этиологии (паразитарные, вирусные, бактериальные и смешанные инфекции)

• установить гематологические индикаторы иммуно-физиологического состояния рыб

• выяснить влияние антибиотиков на иммуно-физиологическое состояние здоровых рыб

• оценить вкусовые свойства антибиотиков и их влияние на пищевое поведение рыб

Научная новизна. Впервые определены доминирующие аэробные виды бактерий у трески Сайт тогкиа тат-а1Ы и наваги Е^тш navaga Белого моря. Установлена возможность оценки иммуно-физиологического статуса рыб по электрофоретическому анализу соотношения белковых фракций в сыворотки крови и по лейкограмме. Впервые продемонстрировано, что антибиотики бензилпенициллин и окситетрациклин вызывают у здоровых особей радужной форели РагаяаЫо (= Опсогкупскш) туШ$. нейтропению, элиминируют альбуминовую фракцию в сыворотке крови, индуцируют появление липоидных скоплений и других патологий внутренних органов. Негативное влияние антибиотиков зависит от длительности их применения. Впервые обнаружено, что антибиотики обладают для рыб привлекательными (окситетрациклин в высокой концентрации и неомицин в широком диапазоне концентраций) или отталкивающими (бензилпенициллин в высокой, а окситетрациклин в низкой концентрации) свойствами.

Практическая значимость работы. Подготовлены научно-практические рекомендации по диагностике иммуно-физиологического статуса рыб для специалистов ихтиопатологов и рыбоводов. Полученные результаты используются в лекционных курсах на биологическом факультете МГУ имени М.В.Ломоносова.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Рыбы из природных популяций и не имеющие внешних клинических проявлений заболевания могут быть носителями возбудителей паразитарных и бактериальных инфекций. Особи с минимальным

количеством паразитов во внутренних органах имеют нормальные показатели лейкограммы и содержания сывороточных белков крови.

2. Фракционный состав белков сыворотки крови и лейкограмма являются индикаторами иммуно-физиологического состояния рыб.

3. Длительное применение антибиотиков ухудшает иммуно-физиологическое состояние здоровых рыб.

4. Антибиотики обладают для рыб выраженными вкусовыми свойствами и влияют на их пищевое поведение.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на Международной научной конференции «Физиология микроорганизмов в природных и экспериментальных системах» (Москва, 2006, 2009); на Российском иммунологическом форуме (Санкт-Петербурге, 2008); на двусторонней конференции Россия - США по здоровью гидробионтов (Шеффердстон, Западная Вирджиния, 2009); на открытых заседаниях Научно-консультативного совета по болезням рыб ФГУ «Межведомственная ихтиологическая комиссия» (Москва, 2009, 2010); на совместном заседании кафедр ихтиологии и иммунологии биологического факультета МГУ имени М.В.Ломоносова (Москва, 2012).

Публикации. Основные положения диссертации изложены в 8 печатных работах, в том числе в 5-и ведущих рецензируемых научных журналах, рекомендованных ВАК.

Структура диссертации. Диссертация изложена на 149 страницах печатного текста, включает 6 таблиц, 25 рисунков. Состоит из введения, 4 глав (обзор литературы, материалы и методы, результаты, обсуждение результатов), заключения, выводов и списка цитируемой литературы, который включает 321 источников, из них 221 - на иностранных языках.

Похожие диссертационные работы по специальности «Ихтиология», 03.02.06 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Ихтиология», Маклакова, Мария Евгеньевна

ВЫВОДЫ

1. В природных популяциях трески Gadus morhua maris-albi и наваги Eleginus navaga Белого моря большинство особей поражены паразитарными инвазиями. Преобладающими гельминтами во внутренних органах у трески и наваги являются скребни Echinorhynchus gadi, нематоды Anisakis simplex, Hysterothylacium aduncum gadi, трематоды Pyramicocephalus phocarum, цестоды Bothricephalus acheilognathi. При интенсивности инвазии менее 10 гельминтов на особь белковый профиль сыворотки крови и лейкограмма у трески и наваги не изменяются.

2. При интенсивности инвазии, превышающей 10 экземпляров гельминтов на особь, и при доминировании в кишечнике бактерий рода Pseudomonas у тресковых рыб наблюдается фибринозное воспаление внутренних органов, в белковом профиле сыворотки крови повышается уровень преальбуминов и глобулинов, снижается уровень альбуминов, в крови изменяется процентное соотношение лейкоцитов. Это указывает на изменение реакций врожденного иммунитета и, в целом, на снижение иммуно-физиологического статуса рыб. Усиление инвазии (20 и более многоклеточных паразитов на особь) приводит к дальнейшему подавлению у рыб иммунных функций.

3. Поражение вирусной, бактериальной и смешанной инфекциями вызывает у искусственно выращенных рыб (карп Cyprinus carpio) специфические изменения в белковом составе сыворотке крови. При вирусной инфекции в составе сыворотки крови увеличивается фракция глобулинов, снижается содержание альбуминов и преальбуминов; при бактериальной инфекции возрастает содержание фракции альбуминов и преальбуминов, смешанная инфекция сопровождается снижением в сыворотке крови фракции у-глобулинов и повышением фракции альбуминов.

4. Применение антибиотиков (натриевая соль бензилпенициллина, гидрохлорид окситетрациклина) вызывает у здоровых рыб (молодь радужной форели РагаяаЫо (=Опсогкупскш) туШзя) нейтропению, приводит к исчезновению альбуминовой фракции в сыворотке крови, индуцирует появление липоидных скоплений и других патологий внутренних органов, что свидетельствует о снижении общей резистентности рыб к инфекциям.

5. Присутствие антибиотиков в составе искусственных кормов может существенно изменять их вкусовую привлекательность для выращиваемых рыб. Антибиотики цефазолин-акос и натриевая соль бензилпенициллина в высоких концентрациях и гидрохлорид окситетрациклина в низких концентрациях обладают отталкивающим (детеррентным) вкусом для радужной форели. Антибиотики сульфат неомицина в широком диапазоне концентраций и окситетрациклин в высоких концентрациях имеют привлекательный вкус для радужной форели и повышают потребление искусственных пищевых гранул.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В соответствии с поставленной целью и задачами были проведены исследования трески и наваги из природных популяций Белого моря, карпа и радужной форели, содержащихся в искусственных условиях. Использование количественного показателя (лейкоцитарная формула крови) и качественных (белковый профиль сыворотки крови, патоморфологический анализ) позволило оценить иммуно-физиологический статус рыб, находящихся в разных условиях.

Установлено, что в природных водоемах при низком уровне антропогенной нагрузки и загрязнений рыбы демонстрируют сложившуюся эволюционно норму реакции. На примере трески и наваги Белого моря определено влияние паразитарной и бактериальной инфекции на иммунологические параметры рыб. Патологии органов, наблюдаемые у большинства особей, коррелируют со степенью инвазии и составом микрофлоры кишечника исследованных рыб. На основании анализа состояния внутренних органов, лейкоцитарной формулы и фракционного состава сыворотки крови сделан вывод, что в данных климатических условиях зараженность внутренних органов рыб гельминтами менее 10 экземпляров на особь может быть принята за норму. При таком значении интенсивности инвазии гематологические показатели пораженных особей и особей, не имеющих паразитов, близки. При усилении зараженности и при доминировании условно-патогенных бактерий в кишечнике проявляются патологические изменения внутренних органов, а изменения иммунологических параметров свидетельствуют об угнетении лимфопоэза, и ослаблении иммуно-физиологического состояния рыб.

В аквакультуре рыбы более всего подвержены бактериальным и вирусным инфекциям. На примере карпа было исследовано влияние бактериальной (аэромоноз), вирусной (весенняя виремия карпа) и смешанной инфекций на иммунологические показатели. Определены явные различия белкового профиля сыворотки крови и лейкограммы у рыб, зараженных различными типами инфекций. Эти критерии могут использоваться как диагностический тест.

Для предотвращения вспышек заболеваний при искусственном разведении рыб и других гидробионтов применяют лекарственные препараты. Антибиотики, как многие другие экзогенные вещества, обладают собственным действием на организм рыб, нередко приводящим к реинфекциям или секундарным инфекциям. При исследовании наиболее распространенных в ветеринарии препаратов - натриевой соли бензилпенициллина и гидрохлорида окситетрациклина обнаружено негативное действие этих препаратов на иммунологические и физиологические параметры здоровых особей радужной форели. Длительное применение антибиотиков приводит к усилению и распространению патологий внутренних органов. Введение бензилпенициллина и окситетрациклина вызывает подавление гемопоэза, что проявляется в виде нейтропении, резкого снижения бластных форм клеток крови, уменьшения фракции альбуминов. Суммарным эффектом является снижение иммунитета особей и усиление зараженности условно-патогенными бактериями и вирусами. Несмотря на негативные аспекты использования антибиотиков, их применение необходимо для контроля массовых заболеваний в аквакультуре. Наиболее удобным способом лечения является добавление лекарственных препаратов в корм. При исследовании четырех различных антибиотиков было обнаружено, что они могут иметь диаметрально противоположные вкусовые свойства для рыб. Например, неомицин и окситетрациклин (в концентрации 100 мг/мл) обладают высокопривлекательными свойствами для радужной форели, а цефазолин-акос и бензипенициллин (в концентрации 100 мг/мл) проявляют свойства детеррента.

Известно, что вкусовые спектры у рыб характеризуются высокой межвидовой вариабельностью. Вещества, привлекательные или отталкивающие по вкусу для одних видов могут быть индифферентными вкусовыми стимулами или иметь противоположные вкусовые свойства для рыб других видов. Эта особенность вкусовой рецепции важна при выборе антибиотиков и других терапевтических препаратов для практического использования в аквакультуре, поскольку вкусовые свойства одного и того же лекарственного средства для разных видов рыб могут резко различаться. Препараты с неблагоприятным вкусом будут снижать пищевую активность рыб и, как следствие, приводить к развитию нежелательного побочного эффекта - к снижению темпа роста, к ухудшению или медленному восстановлению состояния рыб после лечения, к неэффективным тратам корма. Использование разных типов гранул, отличающихся по составу или концентрации присутствующих в них веществ, позволило подтвердить ряд важных общих закономерностей тестирования рыбами пищевых объектов. Поведение тестирования пищи, как показывают наши результаты, у радужной форели может развиваться по одному из двух стереотипов. Стереотип, заканчивающийся потреблением объекта, характеризуется длительным внутриротовым опробыванием объекта, в 3-4 раза более продолжительным, чем стереотип, заканчивающийся отверганием объекта. По числу отверганий и повторных схватываний объекта эти стереотипы у радужной форели отличаются слабо, хотя можно отметить, что в случае потребления число манипуляций с гранулами обычно меньше. Наличие у рыб двух стереотипов тестирования пищевых объектов выявлено к настоящему времени лишь на примере ограниченного числа видов рыб.

Контроль вкусовой компоненты лечебных кормов и диагностика состояния рыб по клеточному и белковому составу крови позволит определить оптимальную схему применения лекарственных препаратов, учитывающую видовые особенности выращиваемых рыб, что, в свою очередь, приведет к минимизации экономических затрат на профилактику здоровья рыб и устранение вспышек заболеваний.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Маклакова, Мария Евгеньевна, 2012 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Антибиотики, сульфаниламиды и нитрофураны в ветеринарии. 1989. Справочник. Сост.: В.Ф. Ковалев, И.Б. Волков, Б.В. Виолин и др. М.: Агропромиздат.

2. Бакай Ю.И. 1998. Эколого-географическая характеристика паразитов американского морского окуня Sebaster fasciatus Storer. Паразиты и болезни морских и пресноводных рыб северного бассейна: Сб. науч. тр. ПИНРО. Мурманск: Изд-во ПИНРО, С. 5-21.

3. Балабанова Л.В., Заботкина Е.А., Лапирова Т.Б., Микряков В.Р. 2003. Влияние карбофоса и иммунизации бактериальным антигеном на некоторые показатели иммунной системы карпа Cyprinus carpió L. (Cyprinidae). Вопр. ихт. Т. 43, № 2, с. 262-271.

4. Балабанова Л.В., Микряков Д.В., Микряков В.Р. 2007. Характер изменения состава лейкоцитов при язвенной патологии кожи карпа Cyprinus carpió L. Проблемы иммунологии, патологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов - 2. Расширенные материалы науч.-практ. конф., Борок. М.: Россельхозакадемия, с. 5-8.

5. Балабанова Л.В., Степанова В.М. 2000. Хроническое действие нафталина и дихлофоса на иммуно-компетентные клетки мозамбикской тиляпии. Биол. внутр. вод, № 4, с. 146-155.

6. Безгачина Т.В. 2000. Международный ихтиопатологический рейс судна «Вальтер Хервиг III» в Балтийском море. Паразиты и болезни рыб: сборник научных трудов. М: ВНИРО, с. 16-19.

7. Буторина Т.Е. 1997. Определитель наиболее распространенных паразитов рыб Дальневосточных морей. Владивосток: Дальрыбвтуз. 115 с.

8. Буторина Т.Е., Шедько М.Б., Горовая О.Ю. 2008. Экологические особенности гольцов рода Salvelinus озера Краноцкое на Камчатке. Вопр. Ихтиол., вып. 5. с. 652-667.

9. Васильков Г.В., Грищенко Л.И., Енгашев В.Г. 1989. Болезни рыб. Справочник. Под ред. В. С. Осетрова. - 2-е изд., перераб. и доп. - М.: Агропромиздат, 288 с.

Ю.Вялова Г.П., Сергеенко Т.М. 2007. Патологии и оценка состояния кеты, зараженной миксоспоридиями Myxosoma dermatobolia. Проблемы иммунологии, патологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов -2. Расширенные материалы науч.-практ. конф., Борок. М.: Россельхозакадемия, с. 131-135.

П.Гаврилин К.В., Енгашев В.Г. 2005. Новые методы контроля неспецифических бактериозов рыб. Эпизоотологический мониторинг в аквакультуре: состояние и перспективы. Расширенные материалы Всероссийской научно-практической конференции-семинара. М.: Россельхозакадемия. С. 24-26.

12.Гаевская А. В. 2001. Справочник болезней и паразитов морских и океанических промысловых рыб. Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 262 с.

13.Гаевская А. В. 2003. Паразитология и патология рыб: Энциклопедический словарь-справочник. М.: Изд-во ВНИРО, 231 с.

14.Гаевская А. В. 2005. Анизакидные нематоды и заболевания, вызываемые ими у животных и человека. Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 223 с.

15. Галактионов В.Г. 2005. Эволюционная иммунология. М.: ИКЦ Академкнига, 408 с.

16.ГирсаИ.И. 1981. Освещенность и поведение рыб. М.: Наука. 163 с.

17.Гиченок Л.А. 1996. Паразитарная система Echinorhynchus gadi в условиях беломорской сублиторали. Тезисы IV Всероссийского симпозиума по популяционной биологии паразитов, 27-28.

18.Говядинова A.A., Ланге М.А., Хрущов Н.Г. 2000. Гемопоэтические органы уникальной локализации у осетровых рыб. Онтогенез, 31, Р. 440-445.

19. Головин П.П. 2000. Основные болезни осетровых в товарных индустриальных хозяйствах и меры борьбы с ними. Пробл. соврем, товарн. осетроводства. - Астрахань, С. 122-125.

20. Головин П.П., Головина H.A. 2001. Сравнительная эффективность антидотных свойств хитозана при микотоксикозе карпа. Новые достижения в исследовании хитина и хитозана. Матер. 6 Междунар. конф. - М.: Изд-во ВНИРО. С. 156-158.

21. Головина H.A., Головин П.П., Ващенко A.C. и др. 1994. Синдром дефицита энергии у карпа, его диагностика, меры профилактики и терапии. Рыбн. хоз-во. Сер. Аквакультура: Информационный пакет. М.: ВНИЭРХ, Вып. 2. С. 1-12.

22.Грищенко Л.И. 2000. Эпизоотология, течение и проявление асцитно-язвенного синдрома карпов в тепловодных рыбоводных хозяйствах. Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре. Сборник тезисов, Москва, с. 53-54.

23.Грищенко Л.И., Акбаев М.Ш., Васильков Г.В. 1999. Болезни рыб и основы рыбоводства. М.: «Колос». 456 с.

24. Девицына Г.В. 1997. К вопросу о хемосенсорно-тактильном обеспечении пищевого поведения тресковых рыб Белого моря. Вопр. ихтиологии. Т. 37. № 1. С. 94-100.

25. Дмитриева Т.М., Москалева Т.М. 1984. Электорофизиологическая характеристика функциональной значимости необонятельной хеморецепции рыб. Тр. 1 Всес. совещания по сенсорной физиологии рыб. Мурманск. С. 49-51.

26. Дьяконов Л.П. 2000. В кн. Животная клетка в культуре (под ред. Л.П. Дьяконова, В.И. Ситькова), Компания Спутник+, Москва, с. 133-148.

27. Егоров Н.С. 2004. Основы учения об антибиотиках. М.: Наука, 528 с.

28.Житенева Л.Д., Макаров Э.В., Рудницкая O.A. 2004. Основы ихтиогематологии. Ростов-на-Дону: Эверест, 312 с.

29.3аботкина Е.А., Микряков В.Р. 1997. Реакция иммунокомпетентных клеток печени карпа на воздействие карбофоса. ДАН, т. 352, №4, с. 562564.

30. Иванова Н.Т. 1995. Система крови. Материалы к сравнительной морфологии системы крови человека и животных. Ростов-на-Дону. 155 с.

31. Извекова Г.И., Субботкина Т.А., Субботкин М.Ф. 2010. Содержание лизоцима в организме щуки при заражении цестодами. Биол. внутр. вод, № 2, с. 73-76.

32. Казарникова A.B., Шестаковская Е.В. 2005. Основные заболевания осетровых рыб в аквакультуре. М.: Изд-во ВНИРО. 104 с.

33.Казимирченко О.В. 2006. Роль условно-патогенных бактерий в возникновении патологических изменений у европейского угря (Anguilla Anguilla L.) Вислинского залива. Рыбное хозяйство. № 6, с. 90-91.

34.Карасев А.Б., Бакай Ю.И. 1993. Оценка зараженности трески и окуня-клювача в Баренцевом море личинками анизакидных нематод. Материалы отчетной сессии по итогам НИР ПИНРО в 1992 г. - Мурманск: Изд-во ПИНРО, С. 220-231.

35.Карасева Т.А. 1993. Папилломатоз молоди семги на Княжегубском рыбоводном заводе. Паразитологические исследования рыб северного бассейна: Сб. науч. Тр. ПИНРО. Мурманск: Изд-во ПИНРО, С. 125-140.

36.Карасева Т.А. 2001. Стрептококоз лососевых рыб. Болезни гидробионтов в аквакультуре. Аналит. и реф. информ. ВНИЭРХ, Вып. 1, С. 10-21.

37.Карманова И.В., Пугаева В.П., Рудакова C.JL, Гаврюсева Т.В., Устиненко Е.А., Сергиенко Н.В., Линева Т.П. 2000. Данные бактериологических, вирусологических, паразитологических исследований. Как показатели технического состояния рыбоводных заводов Камчатки. Проблемы охраны и рационального использования биоресурсов Камчатки: Материалы второй областной Камчатской научно-практической

конференции. Петропавловск-Камчатский: Камчатрыбвод, Камч. печати, двор, С.-28-34

38.Карманова И.В., Рудакова C.JL, Гаврюсева Т.В., Устиненко Е.А., Сергиенко Н.В., Линева Г.П., Корнеева С.А. 2004. Инфекционные и инвазионные возбудители болезни рыб в аквакультуре (Камчатка). Болезни рыб. - М. : Спутник, Вып. 79, С. 97-104

39.Карташев H.H., Соколов В.Е., Шилов И.А. 1981. Практикум по зоологии позвоночных. М.: Высшая школа, 320 с.

40.Касаева С.Ю., Судакова Н.В., Письменная O.A., Савинкова E.H., Дегтярев А.Н. 2006. Предоперационная иммунокоррекция гибрида (белуга х стерлядь) в условиях индустриального рыбоводства. Аквакультура осетровых рыб: достижения и перспективы развития. Материалы докл. 4 Междунар. науч. практ. конф. 13-15 марта. Астрахань. - М.: Изд-во ВНИРО, с. 254-257.

41. Кассиль В.Г. 1990. Пищевое поведение в онтогенезе. Л.: Наука. 220 с.

42.Касумян А.О. 1997. Вкусовая рецепция и пищевое поведение рыб. Вопр. ихтиологии. Т. 37. № 1. С. 78-93.

43.Касумян А.О., Девицина Г.В. 1997. Влияние ольфакторной депривации на хемосенсорную чувствительность и состояние вкусовых рецепторов осетровых рыб. Вопр. ихтиологии. Т. 37, № 6, С. 823-835.

44.Касумян А.О., Кажлаев A.A., Сидоров С.С., Пащенко Н.И. 1991. Обонятельная и вкусовая привлекательность компонентов искусственных кормов для молоди севрюги. Рыбное хозяйство. № 12, С. 53-55.

45.Касумян А.О., Кажлаев A.A., Сидоров С.С., Пащенко Н.И. 1992. Исследование запаховых и вкусовых свойств компонентов комбикормов для молоди севрюги. Осетровые - перспективные объекты аквакультуры. Выпуск 1. Серия: Аквакультура. ВНИЭРХ. С. 21-34.

46.Касумян А.О., Марусов Е.А. 2003. Поведенческие ответы интактных и хронически аносмированных обыкновенных гольянов Phoxinus phoxinus

(Cyprinidae) на свободные аминокислоты. Вопр. ихтиологии. Т. 43, № 4, С.528-539.

47. Касумян А.О., Морей А.М.Х., Сидоров С.С. 1993. Вкусовая чувствительность карпа Cyprynus carpió к веществам, вызывающим основные типы вкусовых ощущений // Докл. АН СССР. Т. 330. № 6. С. 792-793.

48. Касумян А.О., Сидоров С.С. 1994. Вкусовые свойства свободных аминокислот для молоди каспийской кумжи Salmo trutta caspius Kessler. Вопр. ихтиологии. Т. 34. № 6. С. 831-838.

49. Касумян А.О., Сидоров С.С. 1995. Сравнительный анализ вкусовых ответов молоди кумжи Salmo trutta trutta популяций Каспийского, Балтийского и Белого морей. Докл. РАН. Т. 343. № 3. С. 417-419.

50. Касумян А.О., Сидоров С.С., 2001. Вкусовая чувствительность молоди озерного гольца Salvelinus namayeush (Salmonidae). Вопросы рыболовства. Приложение 1. С. 121-125.

51. Касумян А.О., Сидоров С.С. 2005. Вкусовые предпочтения кумжи Salmo trutta трех географически изолированных популяций. Вопр. ихтиологии. Т. 45, № 1,С. 117-130.

52. Клаус Дж. (ред.). 1990. Лимфоциты: методы. М.: Мир, 393 с.

53.Киташова A.A., Наумова А.Ю., Кондратьева И.А. 2002. Действие лекарственных препаратов на молодь радужной форели. Вопросы рыболовства. № 1 (9), С. 125-136.

54.Киташова A.A., Ремизова A.A., Максимов А.Ю., Рябов В.Б., Валовая М.А., Косевич И.А., Ланге М.А., Кондратьева И.А., Криксунов Е.А. 2003. Исследование форменных элементов и белков сыворотки крови пресноводных и морских рыб. Тез.докл.Всерос. науч.-практ. конф., п. Борок, 16-18 июля 2003, М.: Россельхозакадемия, с. 55-56.

55. Кондратьева И.А. 2005. Иммунитет гидробионтов в аквакультуре и естественных условиях. Мат.Всерос.науч.-практ.конф.-семин.

«Эпизотологический мониторинг в аквакультуре: состояние и перспективы» М.: Россельхозакадемия, с. 157-161.

56. Кондратьева И.А., Киташов A.B. Киташова A.A. 2007. Исследование параметров врожденного иммунитета гидробионтов в ответ на неблагоприятное воздействие. В кн.: «Биологический контроль окружающей среды. Биоиндикация и биотестирование.» Под ред. О.П. Мелеховой и Е.И. Егоровой. М.: Издательский центр «Академия» с.256-286.

57. Кондратьева И.А., Киташова A.A., Ланге М.А. 2001. Современные представления об иммунной системе рыб. Ч. 1. Организация иммунной системы рыб. Вестник Московского университета. Сер. 16. Биология. № 4. С. 19-28.

58. Кондратьева И.А., Киташова A.A. 2002. Функционирование и регуляция иммунной системы рыб. Иммунология. № 2. С. 97-102.

59. Кондратьева И.А., Киташова A.A., Киташов A.B. 2003. Параметры иммунитета массовых видов морских животных (рыб, моллюсков и морских звезд) как критерий для оценки здоровья гидробионтов в естественных и экспериментальных условиях.,печ.,Тез.докл.Всерос. науч.-практ. конф., п. Борок, 16-18 июля 2003, М.: Россельхозакадемия, с. 56-58.

60. Кондратьева И.А., Ярилин A.A., Егорова С.Г. и др. 2004. Практикум по иммунологии: Учебное пособие для студ. высш. учеб. заведений. М.: изд. центр «Академия», 272 с.

61.Лапирова Т.Б. 2000. Изменение показателей белой крови карпа под влиянием карбофоса и иммунизации. Биол. внутр. вод. № 3. с. 102-106.

62.Лапирова Т.Б. 2001. Влияние сублетальных концентраций ртути, меди и кадмия на иммуно-физиологическое состояние молоди ленского осетра. Биол. внутр. вод. № 3. с. 80-84.

63. Ларцева Л.В. 2000. Проблема аеромонадной обсемененности воды и рыбы в дельте Волги. Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре. Сборник тезисов, Москва, с. 82-83.

64. Ларцева Л.В., Болдырева Я.М., Лисицкая И.А. 2002. Рыбы и гидробионты - переносчики возбудителей инфекционных болезней человека. Мат. Межд. науч.-практич. конфер. М.: Изд-во ВНИРО,- с. 226-231.

65. Лукьяненко В.И., Кулик П.В. 1994. Физиолого-биохимическая и рыбоводная характеристика разновозрастных производителей волго-каспийских осетровых рыб в связи с проблемой их искусственного воспроизводства. Академия наук России, Институт биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина. 269 с.

66. Лукьяненко В.И., Седов С.И. 1968. Об изменчивости и видоспецифичности белкового спектра сыворотки крови у рыб. Журнал общей биологии. Т. 29, № 2, с. 209-219.

67. Лукьяненко В.И., Хабаров М.В., Лукьяненко В.В. 2003. Межгодовая внутрипопуляционная изменчивость русского осетра северокаспийской популяции по количеству и частоте встречаемости различных фенотипов альбумина в речной период жизни. Гидробиол. журн., т. 39, вып. 2, с. 4756.

68. Лукьянова H.A. 2007. Пробиотические препараты и микроорганизмы, обладающие пробиотическими свойствами, применяемые в рыбоводстве. Рациональное использование пресноводных экосистем - перспективное направление реализации национального проекта «Развитие АПК». Мат-лы и доклады межд. науч.-практ. конф. М.: Изд-во Россельхозакадемии. С. 177-180.

69. Мелехова О.П., Сарапульцева Е.И., Евсеева И.Т. 2010. Биологический контроль окружающей среды. Биоиндикация и биотестирование. М.: изд. центр «Академия», 288 с.

70.Микряков В.Р., Балабанова JI.B., Заботкина Е.А., Лапирова Т.Б., Попов A.B., Силкина Н.И. 2001. Реакция иммунной системы рыб на загрязнение воды токсикантами и закисление среды. М., Наука, 126 с.

71.Микряков В.Р., Лапирова Т.Б. 1997. Влияние солей некоторых тяжелых металлов на картину белой крови молоди ленского осетра Acipenser baeri Brandt. Вопр. ихт., т. 37, вып. 4, с. 538-542.

72.Микряков В.Р., Понякина И.Д., Лебедев К.А., Балабанова Л.В., Лапирова Т.Б., Силкина Н.И. 1992. Анализ лейкоцитов крови для скрининга рыб в популяционно-экологических исследований. Вопр. ихт. Т. 32, Вып. 5, с. 155-160.

73.Микряков В.Р., Терещенко В.Г., Микряков Д.В., Балабанова Л.В. 2002. Применение интегральных показателей структуры лейкоцитов для изучения реакции иммунной системы рыб на токсиканты. Биол. внутр. вод. № 4, с. 84-88.

74. Микряков Д.В., Микряков В.Р. 2002. Влияние гидрокортизона на антителообразовательную функцию иммунной систему карпа (Cyprinus carpió L.). Вопросы ихтиол., т. 42, № 6, с. 820-824.

75. Микряков Д.В., Микряков В.Р. 2005. Влияние гормона стресса кортизона на лейкоциты крови карася Carassius carassius L. Биол. внутр. вод, №4, с. 90-94.

76. Михайлова Е.С., Исаева О.М., Касумян А.О. 2010. Особенности поведения тестирования вкусовых свойств пищевых объектов и его темпоральные характеристики у рыб с разным типом питания. Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов. Т. 1. Экологическая физиология и биохимия водных организмов. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН. С. 172-175.

77.Мусселиус В.А., Ванятинский В.А., Вихман A.A. 1983. В кн. Лабораторный практикум по болезням рыб. Легкая и пищевая промышленность, Москва, с. 286.

78. Наумова А.М., Стрелков Ю.А., Шестаковская Е.В., Ширшов В .Я., Кондратьева И. А. 1997. Диагностика и профилактика новых, малоизученных и ассоциативных болезней карпа и форели в рыбоводных хозяйствах. Межведомственная ихтиологическая комиссия, РАСХН, Итоги научно-практических работ в ихтиопатологии (информационный бюллетень). М., с. 81-83.

79. Нечаева Т. А. 2005. Противоэпизоотические мероприятия в индустриальных форелевых хозяйствах разного типа применительно к различным этапам выращивания. Эпизоотологический мониторинг в аквакультуре: состояние и перспективы. Расширенные материалы Всероссийской научно-практической конференции-семинара. М.: Россельхозакадемия. С. 84-86.

80. Павлов Д.С., Касумян А.О. 1990. Сенсорные основы пищевого поведения рыб. Вопр. ихтиологии. Т. 30. Вып. 5. С. 720-732.

81. Павлов Д.С., Касумян А.О. 1998. Структура пищевого поведения рыб. Вопр. ихтиологии. Т. 38. № 1. С. 123-136.

82. Плотников А.О., Корнева Ж.В., Извекова Г.И. 2010. Морфофизиологическая характеристика бактерий, населяющих слизистую кишечника щуки (Еяох \ucius Ь.). Биология внутренних вод, №2, с. 77-85.

83.Проскурина В.В., Лисицкая И.А. 2007. Паразиты и микрофлора промысловых рыб дельты Волги и их патогенное влияние на представителей ихтиофауны. Рыбное хозяйство., № 3, с. 69-71.

84. Рудакова С.Л. 2003. Некроз гемопоэтической ткани у производителей нерки и предполагаемые источники инфекций. Вопросы рыболовства. Т. 4.,№ 1, с. 93-102.

85. Рудакова С.Л. 2004. Анализ развития эпизоотии, вызванной вирусом инфекционного некроза гемопоэтической ткани (1НЫУ) у мальков нерки Опсогкупскт пегка при искусственном выращивании (Камчатка). Вопросы рыболовства. Т. 5., № 2 (18), с. 362-374.

86. Рябов В.Б., Киташов А.В., Кондратьева И.А. 2005. Неблагоприятные условия среды обитания как фактор возникновения массовых инфекций у гидробионтов в естественных условиях и в аквакультуре. Мат. Всерос.науч.-практ.конф.-семин. Эпизотологический мониторинг в аквакультуре: состояние и перспективы» М.: Россельхозакадемия, с. 104106.

87. Рябов В.Б., Кондратьева И.А. Смуров А.В., Смурова Т.Г., Румак B.C., Хуонг Д.Т. 2007а. Иммунные и физиологические параметры гидробионтов залива Нячанг (Вьетнам) из районов с различной антропогенной нагрузкой. Бюллетень МОИП, отдел биологический, Том 12 (1), приложение № 1, с. 85 - 96.

88. Рябов В .Б., Смуров А.В., Хуонг Д.Т., Кондратьева И.А. 20076. Физиологический и иммунный статус гидробионтов залива Нячанг (Вьетнам). Проблемы иммунологии, патологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов. Расширенные материалы Международной научно-практической конференции, Борок, 17-20 июля 2007 года. М.: Россельхозакадемия, с. 239-244.

89. Сергеева Е.Г., Петросян Р.А. 2002. Индуцирование иммунных реакций хозяина при разных формах паразитирования. Теоретические и прикладные проблемы паразитологии. М.: Наука, с. 200-205.

90. Степанова В.М. 2002. Влияние температуры на антиген-реагирующие клетки карпа (Cyprinus carpió L.). Биол. внутр. вод., № 4, с. 80-83.

91. Степанова В.М., Павлов Д.Ф., Чуйко Г.М. 1998. Хроническое действие кадмия на клетки ретикуло-лимфоидной ткани селезенки и периферической крови мозамбикской тиляпии {Orechromes mossambicus Peters). Биол. внутр. вод., № 3, с. 68-75.

92.Чумаченко Л.П., Гладкий Т.В., Дьяченко Л.Ф. 2006. Фракционный состав сыворотки крови черноморских бычков (Perciformes, Gobidae). Bíchhk ОНУ, т. 11, вып. 6, с. 258-265.

93.Шарова Ю.Н., Лукин A.A. 2007. Патологии рыб при афлатоксикозе. Проблемы иммунологии, патологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов - 2. Расширенные материалы науч.-практ. конф., Борок. М.: Россельхозакадемия, с. 82-86 .

94. Щелкунов И.С., Орешкова С.Ф. 2006. Новые перспективы в диагностике вирусных болезней рыб: разработка тест-систем для выявления возбудителя весенней виремии карпа на основе методов анализа генома. М.: Россельхозакадемия. 112с.

95.Щелкунов И.С., Щелкунова Т.И., Пичугина Т.Д., Борисова М.Н., Завьялова Е.А. 2004. Весенняя виремия карпа. Ветеринария, №5, стр. 2830.

96. Эмерсон С.У. 1989. Рабдовирусы. В кн. Вирусология (под ред. Б. Филдса и Д. Найпа), с. 418-441.

97. Юнчис О.Н. 2000. Паразиты как индикаторы состояния среды. Паразиты и болезни рыб: сборник научных трудов. М: ВНИРО, с. 146-152.

98.Юхименко Л.Н., Койдан Г.С. 1998. Проблема аэромоноза рыб в России. -11 BI19 ВИНИТИ.

99. Яременко H.A., Мачнев А.Н. 2000. Эпизоотическая обстановка по заразным болезням рыб в Российской Федерации. Проблемы охраны здоровья рыб в аквакультуре. Сборник тезисов, Москва, с. 10-13.

100. Ярилин A.A. 2010. Иммунология. М.: ГЭОТАР, Медиа, 752 с.

101. Abreu М.Т., Fukata M., Arditi M.f 2005. TLR Signaling in the Gut in Health and Disease. The Journal of Immunology. Vol. 174, no. 8, P. 4453-4460.

102. Ahne W., Bjorklund H.V., Essbauer S., Fijan N., Kurath G., Winton J.R. 2002. Spring viremia of carp (SVC), Dis. Aquat. Org. 52, P. 261-272.

103. Alexander J.B., Ingram G.A. 1992. Noncellular non-specific defence mechanisms in fish. Ann Rev Fish Dis 2: 249-279.

104. Allen D.A., Austin B., and Colwell R.R. 1983. Numerical taxonomy of bacterial isolates associated with a freshwater fishery. J. Gen. Microbiol. 129, 2043-2062.

105. Altizer S., Dobson A., Hosseini P., Hudson P., Pascual M., Rohani P. 2006. Seasonality and the dynamics of infectious diseases. Ecol Lett, 9, P. 467-484.

106. Anderson D.P. 1990. Immunological indicators: effects of environmental stress on immune protection and disease outbreaks. Am. Fish. Soc. Symp., 8, P. 38-50.

107. Anderson D.P., Jeney G. 1992. Immunostimulants added to injected Aeromonas salmonicida bacterin enhance the defense mechanisms and protection in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Veterinary Immunology and Immunopathology. V. 34. № 3-4. P. 379-389.

108. Apun, K., Yusof, A.M., and Jugang, K. 1999. Distribution of bacteria in tropical freshwater fish and ponds. Int. J. Environ. Health Res. 9, P. 28-292.

109. Austin B. 1983. Bacterial microflora associated with a coastal, marine fish-rearing unit. J. Mar. Biol. Assoc. U. K. 63, P. 583-592.

110. Austin B. 2002. The bacterial microflora of fish. J. Scientific World, 2, P. 558-572.

111. Barber I., Crompton D.W.T. 1997. The distribution of the metacercariae of Diplostomum phoxini in the brain of minnows, Phoxinus phoxinus. Folia Parasitol, 44, P. 19-25.

112. Bastiaan Star, Alexander J. Nederbragt, Sissel Jentoft, Unni Grimholt, Martin Malmstrom, Tone F. Gregers et al. 2011. The genome sequence of Atlantic cod reveals a unique immune system. Nature, 477, P. 207-210.

113. Baya, A.M., Toranzo, A.E., Lupiani, B., Li, T., Roberson, B.S., and Hetrick, F.M. 1991. Biochemical and serological characterization of Carnobacterium spp isolated from farmed and natural-populations of striped bass and catfish. Appl. Environ. Microbiol. 57, P. 3114-3120.

114. Bell T.A. The national wild fish health survey: a new tool for fisheries management. P. 16-23.

115. Bell G.R., Hoskins G.E., Hodgkiss W. 1971. Aspects of the characterization, identification and ecology of the bacterial flora associated with the surface of stream-incubating Pacific salmon (Oncorhynchus) eggs. J. Fish. Res. Bd. Can. 28, P. 1511-1525.

116. Bernard J., Lecocq-Xhonneux F., Rossius M., Thiry M.E., de Kinkelin J. 1990. Clonning and sequencing the messenger RNA of the N gene of viral hemorrhagic septicemia virus. Gen. Virology, vol. 71, P. 1669-1674.

117. Bjorklund H. V., T. R. Johansson, and A. Rinne. 1997. Rhabdovirus-induced apoptosis in a fish cell line is inhibited by a human endogenous acid cysteine proteinase inhibitor. J. Virol., vol. 71, P. 5658-5662.

118. Blaxhall P.C. 1972. The haematological assessment of the health of freshwater fish. A review of selected literature. J. Fish. Biol., 5, P. 771-781.

119. Bols N.C., Brubacher J.L., Ganassin R.C., Lee L.E.J. 2001. Ecotoxicology and innate immunity in fish. Dev. Comp. Immunol., 25, P. 853-873.

120. Bootland L.M., Leong J.C. 1999. Infectious hematopoietic necrosis virus. In eds. Woo P.T.K., Bruno D.W. (eds.) Fish diseases and disorders. V. 3: Viral, bacterial and fungal infectious CAB International. P. 57-112.

121. Borysenko M. 1976. Phylogeny of immunity: an overview. Immunogenetics 3, P. 305-321.

122. Boshra H., Li J., Sunyer J.O. 2006. Recent advances on the complement system of teleost fish. Fish Shellfish Immunol., 20, P. 239-262.

123. Bowden T.J., Thompson K.D., Morgan A.L., Gratacap R.M.L., Nikoskelainen S. 2007. Seasonal variation and the immune response: a fish perspective. Fish Shellfish Immunol., 22, P. 695-706.

124. Brown A.P., Olivero-Verbel J., Holdan W.L., Geney P.E. 1998. Neutrophil activation by poly chlorinated biphenyls: structure-activity relationship. Toxicol. Sci., 46, P. 308-316.

125. Busacker G.P., Adelman, I.R., Goolish, E.M. 1990. Growth. In Methods for fish biology. (C.B.. Schreck and P.B. Moyle eds.) P. 363-387.

126. Buchmann K., Lindenstr0m T., Bresciani J. 2001. Defence mechanisms against parasites in fish and the prospect for vaccines. Acta Parasitol, 46, P. 71— 81.

127. Campbell, A.C. and Buswell, J.A. 1983. The intestinal microflora of farmed Dover sole {Solea solea) at different stages of fish development. J. Appl. Bacteriol. 55, P. 215-223.

128. Canny G.O., McCormick B.A. 2008. Bacteria in the Intestine, Helpful Resident or Enemies from Within? Infect. Immun., 76(8), p. 3360-3373.

129. Chopra I., Roberts M. 2001. Tetracycline antibiotics: mode of action, applications, molecular biology, and epidemiology of bacterial resistance. Microbiol. Mol. Biol. Rev., V. 65, no. 2, P. 232-260.

130. Christensen, P.J. 1977. The history, biology and taxonomy of the Cytophaga group. Can. J. Microbiol. 23, P. 1599-1653.

131. Cipriano R.C., Shchelkunov I.S., Faisal M. (eds) 2005. Health and diseases of aquatic organisms: bilateral perspectives. Proceedings of second bilateral conference between Russia and the United States Shepherdstown, WV.

132. Colwell, R.R. 1962. The bacterial flora of Puget Sound fish. J. Appl. Bacteriol. 25, P. 147-158.

133. Connell D., Lam P., Richardson B., Wu R. 1999. Introduction to ecotoxicology. London, UK: Blackwell Science. 170 p.

134. Cooper A. D., Stubbings G. W. E, Kelly M., Tarbin J. A., Farrington W. H. H., Shearer G. 1998. Improved method for the on-line metal chelate affinity chromatography-high-performance liquid chromatographic determination of tetracycline antibiotics in animal products. J. Chromatogr. A, 812, P. 321 - 326.

135. Cooper E.L. 2002. Comparative immunology. Curr. pharm. design, 8, P. 99110.

136. Corbel M.J. 1975. The fish immune response: a review. J. Fish. Biol. 7, P.539-563.

137. Curtis P. A., Drawbridge M., Iwamoto T., Nakai, T., Hedrick R. P., Gendron A. P. 2001. Nodavirus infection of juvenile white sea bass, Atractoscion nobilis, cultured in southern California: first record of viral nervous necrosis (VNN) in North America. Journal of Fish Diseases, 24, P. 263-271.

138. Dalmo R.A., Ingebrigtsen K., Bogwald J. 1997. Non-specific defence mechanisms in fish, with particular reference to the reticuloendothelial system (RES). J Fish Dis, 20, P. 241-273.

139. Dean J.H., Murray M.J., Ward E.C. 1986. Toxic responses of the immune system. In: Cassaret and Doull's Toxicology: The Basic Science of. Poisons, 3rd edition. New York: MacMillan Publishing Co., P. 245-285.

140. Decostere, A., Haesebrouck, F., Devriese, L., and Ducatelle, R. 1996. Identification and pathogenic significance of Shewanella sp. from pond fish. Vlaams Diergeneeskd. Tijdschr. 65, P. 82-85.

141. Depledge M.H., Fossi M.C. 1994. The role of biomarkers in environmental assessment. Ecotoxicology 3, P. 161-172.

142. Depledge M.H., Aagaard A., Gyorkos R. 1995. Assessment of trace metals toxicity using molecular, physiological and behavioural biomarkers. Mar Pollut Bull., Vol. 31. Iss. 1-3. P. 19-27.

143. Diler O., Diler A. 1998. Quantitative and qualitative changes of the gastrointestinal microflora of pike-perch (Stizostedion lucioperca L, 1758) in Egirdir Lake. Turk. J. Vet. Anim. Sci. 22, P. 325-328.

144. Diler O., Altun S., Calikusu F., and Diler A. 2000. A study on qualitative and quantitative bacterial flora of the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) living in different fish farms. Turk. J. Vet. Anim. Sci. 24, P. 251-259.

145. Edholm E.-S., Bengten E., Stafford J.L., Sahoo M., Taylor E.B., N.W. Miller, Wilson M. 2010. Identification of two IgD+ B cell populations in channel catfish, Ictalurus punctatus. J. Immunol., 185, P. 4082 - 4094.

146. Ellis A.E. 1977. The leukocytes offish: a review. J. Fish. Biol., 1, P. 453491.

147. Ellis A.E. 1980. Antigen trapping in the spleen and kidney of the plaice Pleuronectesplatessa L. J. Fish Dis, 3, P. 413-426.

148. Else K.J. 2005. Have gastrointestinal nematodes outwitted the immune system? Parasite Immunol, 27, P. 407-415.

149. Evans D.L., Jaso-Freidmann L. 2001. Nonspecific cytotoxic cells: pluripotent effectors of innate immunity in teleosts. Am. Zool., 41, P. 1439.

150. Fange R. 1986. Lymphoid organs in sturgeons (Acipenseridae). Vet. Immunol. Immunopathol., 12, P. 153-161.

151. Feiler K., Winkler H. 1981. Erstfunde von Anisakis-larven in Zander, Stizostedionluciopercae aus Kiistengewassern der Ostsee. Anfew. Parasitol. 22, no. 3. P.124 - 130.

152. Feng J.-B., Jia X.-P. 2009. Single dose pharmacokinetic study of florfenicol in tilapia (Oreochromis niloticus x O. aureus) held in freshwater at 22°C. Aquaculture 1-2, P. 129-133.

153. Fijan N. 1999. Spring viraemia of carp and other viral diseases and agents if warm-water fish. Fish Diseases and Desorders, V.3: Viral, Bacterial and Fungal Infections (Woo P.T.K., Bruno D.W., Eds.), CAB Intl., Oxon, P. 177-244.

154. Fishelson L. 1999. Polymorphism in gigantobacterial symbionts in the guts of surgeonfish (Acanthuridae: Teleostei). Mar. Biol. 133, P. 345-351.

155. Fletcher T.C., White A. 1973. Antibody production in the plaice Pleuronectes platessa, after oral and parenteral immunization with Vibrio anguillarum antigens. Aquaculture, 1, P. 417-428.

156. Frank M.E., Hettinger T.P., Mott A.E. 1992. The sense of taste: neurobiology, aging, and medication effects. SO. Crit Rev Oral Biol Med. 3(4), P.371.

157. Gaikowski M., Wolf J.C., Endris R.G., Gingerich W.H. 2003. Safety of aquaflor (florfenicol, 50% type A medicated article), administered in feed to channel catfish, Ictalurus puctatus. Toxicologic pathology. V. 31. P. 689-697.

158. Gerhart D.J., Bondura M.E., Commito J.A. 1991. Inhibition of sunfish feeding by defensive steroids from aquatic beetles: structure-activity relationships. Journal of Chemical Ecology. V. 17. P. 1363-1370.

159. Gomahr A., Palzenberger M., Kotrschal K. 1992. Density and distribution of external taste buds in cyprinids. Environmen. Biol. Fish. V. 33. № 12. P. 125134.

160. Gonzalez U.S.III, Spencer J.P. 1998. Aminoglycosides: a practical review. Am. Fam. Physician. 58(8), P. 1811-1820.

161. Gonzalez, C.J., Lopez-Diaz, T.M., Garcia-Lopez, M.L., Prieto, M., and Otero, A. 1999. Bacterial microflora of wild brown trout (Salmo trutta), wild pike (Esox lucius), and aquacultured rainbow trout {Oncorhynchus mykiss). J. Food Protect. 62, P. 1270-1277.

162. Gonzalez C.J., Santos J.A., Garcia-Lopez M.L., and Otero A. 2000. Psychrobacters and related bacteria in freshwater fish. J. Food Protect. 63, P. 315-321.

163. Gonzalez C.J., Santos J.A., Garcia-Lopez M.L., Gonzalez N., and Otero A. 2001. Mesophilic aeromonads in wild and aquacultured freshwater fish. J. Food Protect. 64, P. 687-691.

164. Granzow Harald, Weiland F., Fichtner D., Karger A. 2001. Identification and ultrastructural characterization of a novel virus from fish. J. of General Virology, vol. 82, P. 2849-2859.

165. Graves S.S., Evans D.L., Cobb D., Dawe D.L. 1984. Nonspecific cytotoxic cells in fish (Ictalurus punctatus). I. Optimum requirements for target cell lysis. Develop. Comp. Immunol., 8, P. 293-302.

166. Grimes, D.J, Jacobs, D., Swartz, D.G., Brayton, P.R., and Colwell, R.R. 1993. Numerical taxonomy of Gram-negative, oxidase-positive rods from carcharhinid sharks. Int. J. Syst. Bacteriol. 43, P. 88-98.

167. Grondel J.L., Nouws J.F.M., Dejong M. et al. 1987. Pharmacokinetics and tissue distribution of oxytetracycline in carp (Cyprinus carpio L.), following different routes of administration. J. Fish Dis. V. 10. P. 153-163.

168. Hansen G.H. and Olafsen J.A. 1999. Bacterial interactions in early life stages of marine cold water fish. J. Microb. Ecol. 38, P. 1-26.

169. Hara T.J., Carolsfeld J., Kitamura S. 1999. The variability of the gustatory sensibility in salmonids, with special reference to strain differences in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 56. P. 13-24.

170. Harnett W. 2005. Parasite modulation of the immune response. Parasite Immunol, 27, P. 357-359.

171. Haygood M.G. 1993. Light organ symbioses in fishes. Crit. Rev. Microbiol. 19, P. 191-216.

172. Haygood M.G., Distel D.L., and Herring P.J. 1992. Polymerase chain-reaction and 16S-ribosomal-RNA gene-sequences from the luminous bacterial symbionts of 2 deep-sea anglerfishes. J. Mar. Biol. Assoc. U.K. 72, P. 149-159.

173. Hendrickson G.L. 1979. Ornithodiplostomum ptychocheilus — migration to the brain of the fish intermediate host, Pimephales promelas. Exp Parasitol, 48, P. 245-258.

174. Hidaka I., Ishida Y. 1985. Gustatory response in the Shimaisaki (tigerfish) Therapon oxyrhynchu. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries. V. 51. P. 387-391.

175. Hidaka I., Ohsugi T., Kubomatsu T. 1978. Taste receptor stimulation and feeding behaviour in the puffer Fugu pardalis. Part I. Effect of single chemicals. Chemical Sense and Flavor. № 3. P. 341-354.

176. Hoffmann J.A., Kafatos F.C., Janeway C.A., Ezekowitz R.A. 1999. Phylogenetic perspectives in innate immunity. Science. 284(5418), P. 13131318.

177. Holm J.C., Walther B. 1988. Free amino acids in live freshwater zooplankton and dry feed: possible importance for first feeding in Atlantic salmon (Salmo salar). Aquakulture. № 71. P. 341-354.

178. Hoole D., Arme C. 1985. The in vitro culture and tegumental dynamics of the plerocercoid of Ligula intestinalis (Cestoda, Pseudophyllidea). Int J Parasitol, 15, P. 609-615.

179. Horsley R.W. 1973. The bacterial flora of the Atlantic salmon (Salmo salar L.) in relation to its environment. J. Appl. Bacteriol. 36, P. 377-386.

180. Houston A.H. 1990. Blood and circulation. In Methods for Fish Biology (Schreck,. C. B. & Moyle, P. B., eds), P. 273-334.

181. Inglis V., Richards R.H., Varma K.J. et al. 1991. Florfenicol in Atlantic salmon, Salmo salar L., parr: tolerance and assessment of efficacy against furunculosis. J. FishDis. V. 14. P. 343-351.

182. Jacobson K.C., Arkoosh M.R., Kagley A.N., demons E.R., Collier T.K., Casillas E. 2003. Cumulative effects of natural and anthropogenic stress on immune function and disease resistance in juvenile chinook salmon. J. Aquat. Anim. Health, 15, P. 1-12.

183. Jakubowski M., Whitear M. 1990. Comparative morphology and cytology of taste buds in teleosts. Z. mikrosk.-anat. Forsch. V. 104. № 4. P. 529-560.

184. Jakubowski M., Zuwala K. 2000. Taste organs in lower vertebrates: morphology of the gustatory organs in fishes. Vertebrate functional morphology: horizon of research in the 21st century (Eds. H.M.Dutta, J.S.Munshi). Science Publishers, Inc. Enfield. P. 159-172.

185. Janeway C.A., Medzhitov R. 2002. Innate immune recognition. Annu. Rev. Immunol. 20, P. 197-216.

186. Johnson M.C., Maxwell J.M., Loh P.C., Leong J.C. 1999. Molecular characterization of the glycoproteins from two warm water rhabdoviruses: snakehead rhabdovirus (SHRV) and rhabdovirus of penaeid shrimp (RPS)/ spring viraemia of carp virus (SVCV). Virus res. V. 64, P. 95-106.

187. Johnson S.C., Treasurer J.W., Bravo S., Nagasawa K., Kabata Z. 2004. A review of the impact of parasitic copepods on marine aquaculture. Zool Stud, 43, P. 229-243.

188. Jones S.R.M. 2001. The occurrence and mechanisms of innate immunity against parasites in fish. Dev. Comp. Immunol., 25, P. 841-852.

189. Josefsson S., Tatner V.F. 1993. Histogenesis of the lymphoid organs in sea bream Sparus auratus L. Fish Shellfish Immunol., 3, 35, P. 35-50.

190. Kage T.R., Takahashi R., Barcus I., Hayashi F. 1992. Aeromonas hydrophila, a causative agent of mass mortality in cultured Japanese catfish larvae {Silurus asotus). Fish pathology, vol. 27, P. 57-62.

191. Kalbe M., Kurtz J. 2006. Local differences in immunocompetence reflect resistance of sticklebacks against the eye fluke Diplostomum pseudospathaceum. Parasitology, 132, P. 105-116.

192. Kamal S.M., Khalifa K.E. 2006. Immune modulation by helminthic infections: worms and viral infections. Parasite Immunol., 28, P. 483-496.

193. Kamei, Y., Sakata, T., and Kakimoto, D. 1985. Microflora in the alimentary tract of the Tilapia: characteristics and distribution of anaerobic bacteria. J. Gen. Appl. Microbiol. 31, P. 115-124.

194. Kanwal J.S., Caprio J. 1983. An elektrophysiological investigation of the oro-pharyngeal (IX-X) taste system in the channel catfish Ictalurus punctatus. J. Comp. Physiol. A. V. 150. P. 345-357.

195. Kanwal J.S., Caprio J. 1988. Overlapping taste and tactile maps of the oropharynx in the vagal lobe of the channel catfish Ictalurus punctatus. J. Neurobiol. V. 19. № 3. P. 211-222.

196. Karasev A.B., Bakay Yu.I. 1994. Infection of the Barents Sea cod, Gadus morhua, and redfish, Sebastes mentella, with larval anisakid Nematodes: long-term data Bull. Of the Scand. Soc. For Parasitology, Vol. 4, № 2. P. 11-12.

197. Kasumyan A.O. 2002. Sturgeon food searching behavior evoked by chemical stimuli: a reliable sensory mechanism. J. Appl. Ichthyol. V. 18. P. 685690.

198. Kasumyan A.O. 2011. Tactile reception and behavior of fish. J. Ichthyol. V. 51. № 11. P. 1035-1103.

199. Kasumyan A., Doving K.B. 2003. Taste preferences in fish. Fish and Fisheries. V. 4. № 4. P. 289-347.

200. Kasumyan A.O., Marusov E.A., Sidorov S.S., 2003. Feeding behavior of the ruffe Gymnocephalus cernuus triggered by olfactory and gustatory stimulants. Journal of Ichthyology. V. 43. Suppl. 2. P. 247-254.

201. Kasumyan A., Mikhailova E. 2005. Comparison of taste preferences and behavioral taste response in the nine-spined stickleback Pungitius pungitius from the Moscow River and the White Sea. Fish chemosenses. K. Reutter and B. G. Kapoor (eds.). Enfield: Science Publishers, Inc. P. 305-324.

202. Kasumyan A.O., Sidorov S.S., Kazhlaev A.A., Pashchenko N.I. 1995. Behavioral responses of young stellate sturgeon to smell and taste of artificial feeds and their compents. Proceeding of International Symposium on Acipenserids. A.D. Gershanovich and T.I.J. Smith (eds.). VNIRO Publishing. Moscow. P. 278-288.

203. Kazunaga Yazawa. 1996. Production of eicosapentaenoic acid from marine bacteria. Lipids, V. 31, Number 1, P. 297-300.

204. Kirbis A., Marinsek J., Flajs V. C. 2005. Introduction of the HPLC method for the determination of quinolone residues in various muscle tissues. Biomed. Chromatogr. 19, P. 259 - 265.

205. Kiyohara S., Yamashita S., Harada S. 1981. High sensitivity of minnow gustatory receptors to amino acids. Physiol, and Behav. V. 26. № 6. P. 1103— 1108.

206. Knutton S., Lloyd D.R. and McNeish A.S. 1987. Adhesion of enteropathogenic Escherichia coli to human intestinal enterocytes and cultured human intestinal mucosa. Infection and Immunity, 55, 69-77.

207. Kondratieva I. A., Maklakova M. E., Gui Lian Xing. 2010. Aquaculture in the people's republic of China and in Russia: research centers on pathology of fish and other objects. Moscow University Biological Sciences Bulletin, V. 65, № 3, P. 119-125.

208. Konishi J., Zotterman Y. 1961. Taste functions in the carp: an electrophysiological study on gustatory fibres. Acta Physiologica Scandinavica. V. 52. P. 150-161.

209. Kumai H., Kimura I., Nakamura M., Takii K., Ishida H. 1989. Studies on digestive system and assimilation of a flavored diet in ocellate puffer. Nippon Suisan Gakkaishi, V. 55. No. 6. P. 1035-1043.

210. Kurath G., Higman K.N., Bjorklund N.V. 1995. The NV genes of fish rhabdoviruses: development of RNase protection assays for rapid assessment of genetic variation. Vet. Res., vol. 26, p. 477-485.

211. Kurath G., Winton J. 2008. Fish rhabdoviruses, in: Mahy B.W.J., van Regenmortel M.H.V. (Eds.), Encyclopedia of Virology, Elsevier, Oxford, P. 221-227.

212. Laemmli U.K. 1970. Cleavage of structural proteins during the assemble, of the head of bacteriophage T4. Nature 227, 680 pp.

213. Larsen A. H., Bresciani J., Buchmann K. 2002. Interactions between ecto-and endoparasites in trout Salmo trutta. Vet. Parasitol. 103, no. 1. P. 167 - 173.

214. Lee, S. Y., Yin, Z., Ge, R. & Sin, Y. M. 1997. Isolation and characterization of fsh Aeromonas hydrophila adhesins important for in vitro epithelial cell invasion. J Fish Dis., 20, p. 169-175.

215. Lee S., Lee Y. 1995. Identification of intestinal microflora in rainbow trout. J. Microbiol. 33, P. 273-277.

216. Li C. 1991. Electrophoretic analysis on the serum proteins of xinggua red carp, grass carp and their hybrid F sub (1). Freshwater Fish Danshui Yuye 6, P. 12-14.

217. Liston J. 1957. The occurrence and distribution of bacterial types on flatfish. J. Gen. Microbiol. 16, P. 205-216.

218. Lom J., Dykova I. 1992. Protozoan parasites of fishes. Amsterdam: Elsevier Science; 1 edition, 316 p.

219. Lorensen N. 1992. Affinity purification of the structural proteins of a fish rhabdovirus by the use of monoclonal antibodies. J. Virol. Methods., vol. 38, p. 297-303.

220. Lorensen N., Olesen N.J., Jorgensen P.E. 1990. Neutralization of Egtved virus pathogenicity to cell cultures and fish by monoclonal antibodies to the viral G protein. J. Gen. Virology., vol. 71, p. 561-567.

221. Luczkovich, J.J. and, Stellwag, E.J. 1993. Isolation of cellulolytic microbes from the intestinal-tract of the pinfish, Lagodon rhomboids, size-related changes in diet and microbial abundance. Mar. Biol. 116, P. 381-388.

222. Lukin A.A., Sharova J.N. 2011. Fish pathologies in Northwestern Russia. In Cipriano R.C., Bruckner A.W., Schelkunov I.S., editors. Bridging America and Russia with shared perspectives on aquatic animal health. Proceeding of the Third Bilateral Conference between Russia and United States. Shepherdstown, WV. P. 355.

223. Lunden T., Lilius E.M., Bylund G. 2002. Respiratory burst activity of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) phagocytes is modulated by antimicrobial drugs. Aquaculture, V. 207, 3-4, P. 203-212.

224. Luster M.I., Rosenthal G.J. 1993. Chemical agents and the immune response. Environ. Health. Perspect, 100, P. 219-236.

225. Machado P.M., Takemoto R.M., Pavanelli G.C. 2005. Diplostomum (Austrodiplostomum) compactum (Lutz, 1928) (Platyhelminthes, Digenea) metacercariae in fish from the floodplain of the Upper Parana River, Brazil. Parasitol. Res., 97, P. 436-444.

226. Magnadottir B. 2006. Innate immunity of fish (overview). Fish Shellfish Immunol, 20, P. 137-151.

227. Maqsood Sajid, Samoon M.H., Singh Prabjeet. 2009. Immunomodulatory and growth promoting effect of dietary levamisole in Cyprinus carpio fingerlings against the challenge of Aeromonas hydrophila. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. V. 9. P. 111-120.

228. Marui T., Caprio J. 1992. Teleost gustation. In: Fish Chemoreception (Ed. T.J.Hara). Chapman and Hall. London. P. 171-198.

229. Marui T., Evans R.E., Zielinski B., Hara T.J. 1983. Gustatory responses of the rainbow trout (,Salmo gairdneri) palate to amino acids and derivatives. J. Comp. Physiol. V. 153A. P. 423-433.

230. McLaughlin S. M., Collier L. M., Jacobs J. M. et al. 2009. Integrated ecological assessment in Chesapeake Bay. Aquatic animal health: a continuing dialogue between Russia and the United States. Proceedings of the third bilateral conference between the United States and Russia: Aquatic Animal Health 12-20 July 2009. Shepherdstown, W.Ya. P. 356-357.

231. Medzhitov R. 2008. Origin and physiological roles of inflammation. Nature. 454(7203), P. 428-35.

232. Meijer A.H., Spaink H.P. 2011. Host-pathogen interactions made transparent with the zebrafish model. Curr Drug Targets, 7. P. 1000-1017.

233. Miller N.W., Rycyzyn M.A., Wilson M.R., Warr G.W., Naftel J.P, Clem L.W. 1994. Development and characterization of channel catfish long term B cell lines. J. Immunology, Vol.152, Issue 5, P. 2180-2189.

234. Monette S., Dallaire A. D., Mingelbier M., Groman D., Uhland C., Richard J.-P., Paillard G, Johannson L. M., Chivers D. P., Fergusson H. W., Leighton F.

A., Simko E. 2006. Massive mortality of common carp (Cyprinus carpió carpió) in the St. Lawrence River in 2001: Diagnostic investigation and experimental induction of lymphocytic encephalitis. Vet Pathol., 43, p. 302310.

235. Montes M., Perez M.J., Nieto T.P. 1999. Numerical taxonomy of gramnegative, facultative anaerobic bacteria isolated from skin of turbot (Scophthalmus maximus) and surrounding water. Syst. Appl. Microbiol. 22, P. 604-618.

236. Moore D.H. 1945. Species differences in serum protein patterns. J. Biol. Chem., 161, P. 21-32.

237. Moore M.N., Stebbing A.R.D., Widdings J. 1985. The effects of stress and Pollution on Marine Animals. Praeger, New York, USA. 384 pp.

238. Moran J.D.W., Whitaker D.J., KentM.L. 1999. A review of the myxosporean genus Kudoa Meglitsh, 1947, and its impact on the international aquaculture industry and commercial fisheries. Aquaculture, 172, P. 163-196.

239. Moravec F. 1994. Parasitic nematodes of freshwater fishes of Europe. -Dordrecht / Boston/ London: Kluwer Acad. Publ. 473 pp.

240. Morris T.H. 1995. Antibiotic therapeutics in laboratory animals. Laboratory animals. V. 29. P. 16-36.

241. Mudarris M. and Austin, B. 1988. Quantitative and qualitative studies of the bacterial microflora of turbot, Scophthalmus maximus L., gills. J. Fish Biol. 32, P. 223-229.

242. Muhittin Yilmaz, H. Ramazan Yilmaz, Ali Alas. 2007. An electrophoretic taxonomic study on serum proteins of Acanthobrama marmid, Leuciscus cephalus, and Chondrostoma regium. Eur.Asia. J. Bio.Sci. 3, P. 22-27.

243. Muiswinkel W., Rijkers G., Oude Vrielink H. 1981. Antibiotics and immune response in fish. Fish boil.: Serodiagn. and Vaccines. Proc. Symp., Leetown, W.Va.P. 285.

244. Munro P.D., Barbour, A., Birkbeck, T.H. 1994. Comparison of the gut bacterial-flora of startfeeding larval turbot reared under different conditions. J. Appl. Bacteriol. 77, P. 560-566.

245. Nakanishi T., Aoyagi, K., Xia, C., Dijkstra, J.M., Ototake, M. 1999. Specific cell-mediated immunity in fish. Vet. Immunol. Immunopathol., 72, P. 101-109.

246. Nedoluha P.C., Westhoff, D. 1997. Microbiological analysis of striped bass (.Morone saxatilis) grown in a recirculating system. J. Food Protect. 60, P. 948953.

247. Nedoluha P.C., Owens, S., Russek-Cohen, E., and Westhoff, D.C. 2001. Effect of sampling method on the representative recovery of microorganisms from the surfaces of aquacultured fmfish. J. Food Protect. 64, P. 1515-1520.

248. Newman J.T., Cosenza, B.J., and Buck, J.D. 1972. Aerobic microflora of the bluefish intestine. J. Fish. Res. Bd. Can. 29, P. 330-336.

249. Nieto T.P., Toranzo, A.E., and Barja, J.L. 1984. Comparison between the bacterial flora associated with fingerling rainbow trout cultured in two different hatcheries in the north-west of Spain. Aquaculture 42, P. 193-206.

250. Olafsen J.A. 2001. Interactions between fish larvae and bacteria in marine aquaculture. Aquaculture 200, P. 223-247.

251. Onyeji C. O., Nicolau D. P., Nightingale C. H., Bow L. 2000. Modulation of efficacies and pharmacokinetics of antibiotics by granulocyte colony-stimulating factor in neutropenic mice with multidrug-resistant Enterococcus faecalis infection. J. Antimicrobial Chemotherapy. V. 46. P. 429-436.

252. Osse J.W.M., Sibbing F.A., Van Den Boogaart J.G.M. 1997. Intra-oral food manipulation of carp and other cyprinids: adaptationa and limitations. Acta Physiol. Scand. V. 161. Suppl. 638. P. 47-57.

253. Padros F., Crespo S., 1996. Ontogeny of the lymphojd organs in the turbot Scophtalmus maximus: a light and electronic microscope study. Aquaculture. 144, P. 1-16.

254. Pichugina T.D., Borisova M.N., Shchelkunova T.I., Shchelkunov I.S., Zavyalova E. A. 2003. First report of spring viraemia of carp virus at a fish farm in Moscow Province, Russia. Aquatic and Marine Animal Health. Second Bilateral Conference Center Shepherdstown, West Virginia, Abstract Book, p. 20.

255. Pinwen P. Chiou, Carol H. Kim, Patricia Ormonde, Jo-Ann C. Leong. 2000. Infectious hematopoietic necrosis virus matrix protein inhibits host-directed gene expression and induces morphological changes of apoptosis in cell cultures. J. of Virology, p. 7619-7627.

256. Podolska M. 1995. The role of cod (Gadus morbus L.) in the life-cycle of Anisakis simplex (Rudolphi, 1802) (Nematoda, Anisakidae) in the southern Baltic Sea - an overview. Medd. Havsfiskelab. Lysekikl. No. 327. P. 115-122.

257. Poulin R., Morand S. 2000. The diversity of parasites. Quart Rev Biol, 75, P. 277-293.

258. Pulsford A., Tomlinson M.G., Lemaire-Gony S., Glynn P. J. 1994. Development and immunocompetence of juvenile flounder Flatichthys flesus L. Fish Shellfish Immunol. 4, P. 63-78.

259. Riffkin M., Seow H.F., Jackson D., Brown L., Wood P. 1996. Defence against the immune barrage: Helminth survival strategies. Immunol. Cell. Biol., 74, P. 564-574.

260. Ringo E., Bendiksen, H.R., Gausen, S.J., SundsQord, A., and Olsen, R.E. 1998. The effect of dietary fatty acids on lactic acid bacteria associated with the epithelial mucosa and from faecalia of Arctic charr, Salvelinus alpinus (L.). J. Appl. Microbiol. 85, P. 855-864.

261. Ringo E., Lodemel, J.B., Myklebust, R., Kaino, T., Mayhew, T.M., and Olsen, R.E. 2001a. Epitheliumassociated bacteria in the gastrointestinal tract of Arctic charr {Salvelinus alpinus L.). An electron microscopical study. J. Appl. Microbiol. 90, P. 294-300.

262. Ringo E., Wesmajervi, M.S., Bendiksen, H.R., Berg, A., Olsen, R.E., Johnsen, T., Mikkelsen, H., Seppola, M., Strom, E., and Holzapfel, W. 2001b. Identification and characterization of carnobacteria isolated from fish intestine. Syst. Appl. Microbiol. 24, P. 183-191.

263. Robertson P.A.W., O-Dowd, C., Burrells, C., Williams, P., and Austin, B. 2000. Use of Carnobacterium sp. as a probiotic for Atlantic salmon (Salmo salar L.) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum). Aquaculture 185, P. 235-243.

264. Rodgers C.J. 1991. The usage of vaccination and antimicrobial agents for control of Yersinia ruckeri. Bacterial Diseases of Fish. V. 14. № 3. P. 291-301.

265. Rodriguez R.E., Inglis V., and Millar S.D. 1997. Survival of Escherichia coli in the intestine of fish. Aquacult. Res. 28, P. 257-264.

266. Rohde K. 2002. Ecology and biogeography of marine parasites. Adv. Mar. Biol., 43, P. 1-86.

267. Romano N., A. J. Taverne-Thiele, et al. 1999a. Ontogeny of the thymus in a teleost fish, Cyprinus carpio L.: developing thymocytes in the epithelial microenvironment. Dev Comp Immunol 23(2), P. 123-137.

268. Romano N., M. Fanelli, et al. 1999b. Histological and cytological studies on the developing thymus of sharpsnout seabream, Diplodus puntazzo. J. Anat, 194 (Ptl), P. 39-50.

269. Roudaut B., Yorke J.-C. 2002. High-performance liquid chromatographic method with fluorescence detection for the screening and quantification of oxolinic acid, flumequine and sarafloxacin in fish. J. Chromatogr. B, 780, P. 481 -485.

270. Ruby E.G., Lee K.H. 1998. The Vibrio fischeri-Euprymna scolopes light organ association: current ecological paradigms. Appl. Environ. Microbiol. 64, P. 805-812.

271. Saglam N., Yonar M.E. 2009. Effects of sulfamerazine on selected haematological and immunological parameters in rainbow trout

(Onchorhynchus mykiss, Walbaum, 1792) Aquaculture Research. V. 40. R 395404.

272. Sakata, T., Sugita, H., Mitsuoka, T., Kakimoto, D., and Kadota, H. 1981. Microflora in the gastrointestinal tracts of fresh-water fish. 2. Characteristics of obligate anaerobic-bacteria in the intestines of fresh-water fish. Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish. 47, P. 421-427.

273. Samanidou V. F., Evaggelopoulou E. N. 2007. Analytical strategies to determine antibiotic residues in fish. J. Sep Sci, 30(16), P. 2549-2569.

274. Samuelsen, Bergh. 2004. Efficacy of orally administered florfenicol and oxolinic acid for the treatment of vibriosis in cod (Gadus morhua). Aquaculture, V. 235,1. 1-4, P. 27-35.

275. Santos Y., Toranzo A.E., Barja J.L., Nieto T.P., Villa T.G. 1988. Virulence properties and enterotoxin production of Aeromonas strains isolated from fish. Infection and immunity, P. 3285-3293.

276. Sar N., Rosenberg E. 1989. Fish skin bacteria: production of friction-reducing polymers. Mar. Ecol. 17, P. 27-38.

277. Sayackkara N., Srivastava P.P. 1997. Chages in hematological parameters in Heteropneustes fossilis affected with cutaneous ulceration. Proc. Nat. Acad. Sci., India. №2, P. 117-119.

278. Schelkunov I.S., Schelkunova T.I. 1989. Rhabdovirus carpio in herbivorous fishes: isolation, pathology and comparative susceptibility of fishes. In: Viruses of lower vertebrates. (W. Ahne, E. Kurstak, eds.), Berlin: Heidelberg, SpringerVerlag. P. 333-348.

279. Schroder M.B., Vilenna A.J., Jorgensen T.O. 1998. Ontogeny of lymphojd organs and immunoglobulin producing cells in Atlantic cod {Gadus morhua L.). Dev. Comp. Immunol. 22, P. 507-517.

280. Schulte B.A., Bakus G.J. 1992. Prédation deterrence in marine sponges: laboratory versus field studies. Bull. Marine Sci. V. 50. № 1. P. 205-211.

281. Secombes C.J., Chappell L.H. 1996. Fish immune responses to experimental and natural infection with helminth parasites. Ann. Rev. Fish Dis., 6, P. 167-177.

282. Secombes C.J., Wang T., Hong S., Peddie S., Crampe M., Laing K.J. et al. 2001. Cytokines and innate immunity of fish. Dev. Comp. Immunol., 25, P. 713-723.

283. Sekirov I., Rüssel Sh.L., Antunes L.C.M., Finlay B.B. 2010. Gut Microbiota in Health and Disease. Physiol. Rev., vol. 90, no. 3, P. 859-904.

284. Sera H., Ishida Y., and Kadota H. 1972. Bacterial microflora in the digestive tract of marine fish. IV. Effect of H+ concentration and gastric juices on the indigenous bacteria. Bull. Jpn. Soc. Sei. Fish. 38, P. 859-863.

285. Shchelkunov I.S. 2009. Emergent fish diseases in Russia. Aquatic animal health: a continuing dialogue between Russia and the United States. Proceedings of the third bilateral conference between the United States and Russia: Aquatic animal health 12-20 July 2009. Shepherdstown, West Virginia. P. 1-6.

286. Shewan J.M. 1961. The microbiology of sea-water fish. In Fish as Food. Vol. 1., Borgstrom, G., Ed. Academic Press, New York. P. 487-560.

287. Shutse H., Mündt E., Mettenleiter T.C. 1999. Complete genomic seguence of viral hemorrhagic septicemia virus, a fish rhabdovirus. Virus Genes., vol. 19, P. 59-65.

288. Sitja'-Bobadilla A. 2008. Living off a fish: A trade-off between parasites and the immune system. Fish & Shellfish Immunology. V. 25, P. 358-372.

289. Skouras A. 2002. The use of piscine innate immune responses as indicators for environmental pollution in marine ecosystems. Von dem Fachbereich Biologie der Universität Hannover zur Erlangung des Grades eines Dr. rer. nat. Genehmigte. 119 pp.

290. Smith J. W. 1974. Experimental transfer of Anisakis sp. larvae (Nematoda: Ascaridata) from one fish host to another. J. Helminthol. 48, no. 3. P. 229 -177.

291. Smyth J.D.P. 1995. Introduction to animal parasitology. Cambridge: Univ. Press., 569 pp.

292. Snow M., Gunningham C.O., Melvin W.T., Kurath G. 1999. Analysis of the nucleoprotein gene identifies distinct lineages of viral hemorrhagic septicemia virus within the European marine environment. Vims Res., vol. 63, P. 35-44.

293. Spanggaard B., Huber I., Nielsen J., Nielsen T., Appel, K.F., and Gram, L. 2000. The microflora of rainbow trout intestine: a comparison of traditional and molecular identification. Aquaculture 182, P. 1-15.

294. Stone D.M., Ahne W., Denham K.L., Dixon P.F., Liu C.T.Y., Sheppard A.M., et al. 2003. Nucleotide sequence analysis of the glycoprotein gene of putative spring viraemia of carp virus and pike fry rhabdovirus isolates reveals four genogroups, Dis. Aquat. Org. 53, P. 203-210.

295. Sugita H, Shinagawa Y, Okano R. 2000. Neuraminidase-producing ability of intestinal bacteria isolated from coastal fish. Lett Appl Microbiol. 31(1), P. 1013.

296. Sunyer J.O., Tort L. 1995. Natural hemolytic and bactericidal activities of sea bream Sparus aurata are effected by the alternative complement pathway. Vet. Immunol. Immunopathol. 45, P. 333-345.

297. Sunyer J.O., Tort L., Lambris J.D. 1997. Diversity of the third form of complement, C3, in fish: functional characterization of five forms of C3 in the diploid fish Sparus aurata. Biochem J. 326, P. 877-881.

298. Tan E., Low K.W., Wong W.S.F., Leung K.Y. 1998. Internalization of Aeromonas hydrophila by fish epithelial cells can be inhibited with a tyrosine kinase inhibitor. Microbiology, V.144, P. 299-307.

299. Tannock G.W. 1987. Demonstration of mucosa-associated microbial populations in the colons of mice. Applied and Environmental Microbiology 53, P. 1965-1968.

300. Toranzo, A.A, Novoa, B., Romalde, J.L., Nunez, S., Devesa, S., Marino, E., Silva, R., Martinez, E., Figueras, A., and Barja, J.L. 1993. Microflora associated with healthy and diseased turbot (Scophthalmus maximus) from 3 farms in Northwest Spain. Aquaculture 114, P. 189-202.

301. Trust, T.J. 1975. Bacteria associated with the gills of salmonid fishes in freshwater. J. Appl. Bacteriol. 38, P. 222-233.

302. Trust, T.J. and Sparrow, R.A.H. 1974. The bacterial flora in the alimentary tract of freshwater salmonid fish. Can. J. Microbiol. 20, P. 1219-1228.

303. Ulevitch R.J. 2000. Molecular mechanisms of innate immunity. Immunol Res 21, P. 49-54.

304. Ura K., Hara A., Kawamura H., Yamauchi K. 1994. Immunochemical studies on serum proteins in juvenile masu salmon, Oncorhynchus masou. Comp. Biochem. Physiol. 1078, 2, P. 225-229.

305. Van der Maarel, M.J.E.C., Sprenger, W., Haanstra, R., and Forney, L.J. 1999. Detection of methanogenic archaea in seawater particles and the digestive tract of a marine fish species. FEMS Microbiol. Lett. 173, P. 189-194.

306. Van der Oost R. 1998. Fish biomarkers for inland water pollution. An environmental field survey on relationship between bioaccumulation and biochemical responses in freshwater fish. PhD thesis, University of Amsterdam, The Netherlands.

307. Verburg-van Kemenade B.M., Ribeiro C.M., Chadzinska M. 2011. Neuroendocrine-immune interaction in fish: differential regulation of phagocyte activity by neuroendocrine factors. Gen Comp Endocrinol. 172(1), P. 31-38.

308. Vestergaard-Jorgensen P.E., Olesen N.J., Ahne W., Lorentsen N. 1989. SVC and PFR viruses. Serological examination of 22 isolates indicates close

relationship between the two rhabdoviruses. Viruses of Lower Vertebrates (ed. Ahne W. and Kurstak E.). Springer-Verlag, Berlin, Germany, P. 349-366.

309. Walker P.J., Winton J.R. 2010. Emerging viral diseases of fish and shrimp. Vet. Res. 41:51, P. 1-24.

310. Watson A. D. J. 1977. Chloramphenicol toxicity in dogs. Res. Vet. Sci. V. 23. P. 66-69.

311. Weber K, Pringle J, Osborn M. 1972. Measurement of molecular weights by electrophoresis on sds-acrylamide gel. Meth. Enzymol. 26, 3.

312. Williams M.A., Hoole D. 1995. Immunolabelling of fish host molecules on the tegumental surface of Ligula intestinalis (Cestoda: Pseudophyllidea). Int. J. Parasitol., P. 249-256.

313. Wolf K. 1988. Fish Viruses and Fish Viral Diseases. Cornell University Press, Ithaca, NY, USA.

314. Woo P.T.K. 1992. Immunological responses of fishes to parasitic organisms. Ann. Rev. Fish Dis., 2, P. 339-366.

315. Yano, Y., Nakayama, A., and Yoshida, K. 1995. Population sizes and growth pressure responses of intestinal microfloras of deep-sea fish retrieved from the abyssal zone. Appl. Environ. Microbiol. 61, P. 4480-4483.

316. Yilmaz M., Cigremis Y., Turkoz Y., Gaffaroglu M. 2000. An electrophoretic taxonomic study on blood serum proteins of some fish in Karakaya Dam Lake. J. of Selcuk Univ. Veterinary Sci. 16, 1, P. 89-92.

317. Yoshimizu M., Kamiyama K., Kimura T., Sakai M. 1976. Studies on the intestinal microflora of salmonids. IV. The intestinal microflora of freshwater salmon. Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish. 42, P. 1281-1290.

318. Yoshimizu M., Kimura T., and Sakai M. 1980. Microflora of the embryo and the fry of salmonids. Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish. 46, P. 967-975.

319. Yun Liu, Guoliang Jiang, Shicui Zhang. 2004. Ontogeny of the lymphoid organs of Japanese flounder, Paralichthys olivaceus. J. of Ocean University of China (English Edition).V. 3, No 2, P. 161-165.

320. Zarkadis I.K., Mastellos D., Lambris J.D. 2001. Phylogenetic aspects of the complement system. Dev. Сотр. Immunol. 25, 745-762.

321. Zambrano-Villa S., Rosales-Borjas D., Carrero J.C., Ortiz-Ortiz L. 2002. How protozoan parasites evade the immune response. Trends Parasitol, 18, P. 272-278.

322. Zapata A., Diez В., Cejalvo T. et al. 2006. Ontogeny of the immune system offish. Fish Shellfish Immunol. V. 20(2). P. 126-136.

323. Zelikoff J.T. 1994. Fish immunotoxicology. In Immunotoxicology and Immunopharmacology (Dean J.H., Luster. M.I., Munson A.E., Kimber I., eds). NY: Raven press, P. 71 -94.

324. Zelikoff J.T. 1998. Biomarkers of immunotoxicity in fish and other non-mammalian sentinel species: Predictive value for mammals. Toxicology 129, P. 63-71.

325. Zelikoff J.T., Raymond A., Carlson E., Li Y., Beaman J.R., Anderson M.

2000. Biomarkers of immunotoxicity in fish: from the lab to the ocean. Toxicology letters, 112-113, P. 325-331.

326. Zmyslowska, I., Lewandowska, D., Nowakowski, Т., and Kozlowski, J.

2001. Occurrence of bacteria in water and in vendace {Coregonus albula) during rearing in tanks. Pol. J. Environ. Stud. 10, P. 51-56.

327. http://www.fao.org/docrep/W4601 E/w4601 e0d.htm

Благодарности. Автор выражает благодарность за помощь в получении и обработке результатов Г.А. Дольниковой, Е.А. Завьяловой, Е.А. Марусову, Г.Г. Миллер, Е.С. Михайловой, Т.Д. Пичугиной; за постоянные консультации А.В. Киташову, A.M. Наумовой; сотрудникам кафедры иммунологии, ихтиологии биологического факультета МГУ имени М.В.Ломоносова, лаборатории ихтиопатологии ВИЭВ имени Я.Р. Коваленко,

лаборатории ассоциированных инфекций ГУ НИИЭМ имени Н.Ф. Гамалеи за поддержку на всех этапах работы.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.