«Изучение растений рода Многоколосник (Agastache J.Clayton ex Gronov.) в условиях in vitro» тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.06, кандидат наук Поливанова Оксана Борисовна

  • Поливанова Оксана Борисовна
  • кандидат науккандидат наук
  • 2019, ФГБОУ ВО «Российский государственный аграрный университет - МСХА имени К.А. Тимирязева»
  • Специальность ВАК РФ03.01.06
  • Количество страниц 151
Поливанова Оксана Борисовна. «Изучение растений рода Многоколосник (Agastache J.Clayton ex Gronov.) в условиях in vitro»: дис. кандидат наук: 03.01.06 - Биотехнология (в том числе бионанотехнологии). ФГБОУ ВО «Российский государственный аграрный университет - МСХА имени К.А. Тимирязева». 2019. 151 с.

Оглавление диссертации кандидат наук Поливанова Оксана Борисовна

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Ботаническая характеристика Agastache spp

1.2 Синонимы названий изучаемых видов Agastache spp

1.3 Фитохимическая характеристика Agastache spp

1.4 Биоактивность Agastache spp

1.5 Биосинтез активных компонентов Agastache spp

1.6 Культура Agastache spp. in vitro

1.7 Витрификация в культуре in vitro

1.8 Синтез наночастиц металлов с использованием растительных экстрактов

ГЛАВА II ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1 Растительный материал

2.2 Введение в культуру in vitro семян Agastache spp

2.3 Изучение условий клонального микроразмножения Agastache spp

2.4 Индукция каллусогенеза Agastache spp., получение суспензионной клеточной культуры и ее характеристика

2.5 Изучение влияния гормонального состава питательной среды и

типа экспланта на регенерацию Agastache spp

2.6 Изучение влияния условий культивирования in vitro на уровень витрификации A. foeniculum

2.7 Изучение биохимических особенностей Agastache spp. in vitro

2.8 Синтез наночастиц серебра с использованием экстрактов из растений и каллуса A. foeniculum и определение их

бактерицидной активности

2.9 Исследование цитотоксичности водных экстрактов Agastache spp

2.10 Статистическая обработка данных

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

ГЛАВА III КУЛЬТИВИРОВАНИЕ МНОГОКОЛОСНИКА

(AGASTACHE SPP.) IN VITRO

3.1 Получение асептических растений Agastache spp

3.2 Изучение влияния условий клонального микроразмножения

растений Agastache spp

3.3 Индукция каллусогенеза Agastache spp. и получение

суспензионной клеточной культуры

3.4 Влияние гормонального состава питательной среды и типа

экспланта на регенерацию Agastache spp

3.5 Влияние условий культивирования in vitro на уровень

витрификации A. foeniculum

ГЛАВА IV БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ВТОРИЧНЫХ

МЕТАБОЛИТОВ МНОГОКОЛОСНИКА (AGASTACHE SPP.)

IN VITRO

4.1 Определение суммарного содержания фенольных соединений Agastache spp

4.2 Определение суммарного содержания флавоноидов Agastache spp

4.3 Синтез наночастиц серебра с использованием экстрактов

из растений и каллуса A. foeniculum

4.4 Исследование цитотоксичности водных экстрактов Agastache spp

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

2,4-Д 2,4-дихлорфеноксиуксусная кислота

В5 питательная среда Гамборга

8К-ОУ-3 линия клеток карциномы яичника

БАВ биологически активные вещества

БАП 6 - бензиламинопурин

ВМ вторичные метаболиты

ВЭЖХ высокоэффективная жидкостная хроматография

ИК ингибирующая концентрация

ИУК индолил-3-уксусная кислота

МАО моноаминоксидаза

МИК минимальная ингибирующая концентрация

МС питательная среда Мурасиге и Скуга

НУК а-нафтилуксусная кислота

ПЦР полимеразная цепная реакция

РК розмариновая кислота

СОД супероксиддисмутаза

ТДЗ тидиазурон

ТЭМ трансмиссионный электронный микроскоп

ФС фенольные соединения

ЦНС центральная нервная система

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)», 03.01.06 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему ««Изучение растений рода Многоколосник (Agastache J.Clayton ex Gronov.) в условиях in vitro»»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Вторичные метаболиты (ВМ) растений используются в деятельности человека, прежде всего, в медицине, на протяжении более чем 5000 лет (Rashrash et al., 2017). Растения продолжают оставаться ценным источником лекарственных формул (артемизин, галантамин, паклитаксел), обладающих противоопухолевой и антиоксидантной активностью (William et al., 2006; Гинс и др., 2013, 2014). На основе веществ природного происхождения производится более 50 % всех лекарств, применяемых в клинической практике. По данным Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ), около 80 % населения мира полагаются на фитотерапию для профилактики и лечения болезней (Shakya, 2016). Рынок биофармацевтических препаратов растет быстрее, чем фармацевтический рынок в целом, и в недавнем прогнозе предполагалось, что к 2020 году стоимость этого сегмента может достичь 278,2 млрд. долларов США (Filova, 2014). Среди идентифицированных веществ растительного происхождения, на основе которых разрабатываются препараты, - винбластин, винкристин, лактотехин и полусинтетические лекарственные вещества, такие как этопозид, этопофос и тенипозид, являющиеся производными лигнана подофиллотоксина (Davey, 2017).

Получение растений-источников ценных ВМ может быть осложнено из-за их ограниченного распространения в природе (Khojasteh et al., 2014). Культура клеток и тканей растений in vitro по сравнению с традиционными способами получения биологически активных веществ (БАВ) из растительного лекарственного сырья имеет ряд преимуществ: отсутствие экологических ограничений, возможность осуществления строгого контроля качества и производства; большая производительность из-за ускорения циклов роста растений; регуляция синтеза целевого продукта путем варьирования физических и химических факторов среды культивирования, приводящих к изменению метаболического профиля культур (Hussain et al., 2012; Поливанова, Чередниченко, 2015). Эта технология может быть альтернативой химическому

производству БАВ, так как иногда химический синтез является необоснованным из-за сложной структуры целевых веществ. К факторам, позволяющим осуществить целенаправленный синтез в культуре in vitro, относят отбор клеточных линий, регулирование качественного и количественного состава питательной среды, добавление элиситоров и предшественников синтеза, учет конструкции биореактора. Также важно учитывать и другие внешние параметры культивирования, такие как pH, температура, экзогенные фитогормоны и регуляторы роста, изменение которых позволяет повысить метаболическую активность (Alfermann, Petersen, 1995; Носов, 1999; Ramachandra Rao, Ravishankar, 2002; Verpoorte, Memelink, 2002; Vanisree, Tsay, 2004; Nosov, 2012; Cusido et al., 2014).

Яснотковые (Lamiaceae Mart.) широко используются как лекарственные и ароматические растения. Среди них представители таких известных родов, как мята (Mentha L.), лаванда (Lavandula L.), базилик (Ocimum L.), шалфей (Salvia L.) и др. Популярными объектами исследований среди Яснотковых являются растения рода Многоколосник (Agastache J.Clayton ex Gronov.). Представителей рода используют как источник эфирных масел, лекарственное растительное сырье, а также как медоносы и декоративные растения. Их применяют в этномедицине для лечения воспалений, гастроэнтерологических расстройств, лихорадки, головных болей, грибковых инфекций (Cano Asseleih, 1997; Hou, Jin, 2005; Gonzalez-Trujano et al., 2012). В связи с растущим интересом к традиционной фитотерапии ряд исследований был направлен на выявление фармакологических свойств представителей рода Agastache. Agastache spp. содержат ВМ, такие как терпеноиды, летучие фенольные соединения (ФС), фенилпропаноиды, флавоноиды и др. (Zielinska and Matkowski, 2014). Перечисленные компоненты в составе экстрактов и эфирных масел обладают антибактериальной и антифунгальной, противовирусной, антиоксидантной активностью, антимутагенными и цитотоксическими свойствами, оказывают противовоспалительный эффект (Lee et al., 1995; Wang et al., 2009; Ownagh et al., 2010).

Изучение Agastache spp. в культуре in vitro нацелено на разработку технологии клонального микроразмножения и создание систем для изучения регуляции биосинтеза важных ВМ. Некоторые исследования демонстрируют, что растения рода способны к синтезу и накоплению ВМ в культуре in vitro в больших по сравнению с интактными растениями количествах. Так, в культуре клеток и в культуре бородатых корней A. rugosa активно накапливается розмариновая кислота (Park et al., 2008). Розмариновая кислота (РК) обладает высокой антиоксидантной активностью, способствует стабилизации мембран, рассматривается как нейропротектор и потенциальное средство для предотвращения болезни Альцгеймера, обладает цитотоксическими и противовоспалительными свойствами (Bulgakov et al., 2012; Буданцев, Лесиовская, 2012; Палий и др., 2015; Swamy et al., 2018). Широкий спектр ВМ также позволяет рассматривать Agastache spp. применительно к биотехнологическим процессам, например, в технологии «зеленого синтеза» -получения наночастиц металлов и оксидов на основе экстрактов из растений без использования высокотоксичных химикатов и сложных технологических процессов (Makarov, Love et al., 2014).

Цель работы - изучение морфогенетических и биохимических особенностей представителей рода Многоколосник (Agastache J.Clayton ex Gronov.) в культуре in vitro.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

1. Изучение условий культивирования Agastache spp. в культуре in vitro:

а) получение асептических растений Agastache spp.;

б) индукция каллусогенеза и получение суспензионной культуры Agastache

spp.;

в) изучение морфогенетического потенциала Agastache spp.;

г) преодоление витрификации A. foeniculum;

2. Анализ биохимических особенностей Agastache spp. в различных условиях культивирования in vitro;

3. Получение наночастиц серебра с использованием водных экстрактов из растений и каллуса A. foeniculum in vitro и установление их антибактериальной активности;

4. Анализ цитотоксичности водных экстрактов, полученных из растений и каллуса Agastache spp. in vitro.

Научная новизна работы. Впервые проведено многостороннее исследование в культуре in vitro трех представителей рода Agastache - A. foeniculum, A. scrophulariifolia, A. urticifolia. A. scrophulariifolia и A. urticifolia были впервые введены в культуру in vitro, была предложена технология их культивирования. Для всех трех видов была разработана технология клонального микроразмножения, предложены питательные среды для регенерации, индукции каллусогенеза, получены суспензионные культуры A. foeniculum и A. urticifolia и определены их характеристики. Для A. foeniculum впервые было описано такое физиологическое расстройство, как витрификация in vitro, факторы культивирования, оказывающие влияние на уровень витрификации, и предложены подходы для ее устранения. Впервые проведен качественный фитохимический скрининг водных экстрактов из растений и каллуса Agastache spp. in vitro и проанализировано суммарное содержание растворимых ФС и флавоноидов при различных условиях культивирования. Осуществлен синтез наночастиц серебра с использованием водных экстрактов из растений in vitro и каллуса A. foeniculum, дана их характеристика и установлены бактерицидные свойства. Показано цитотоксическое действие водных экстрактов из растений и каллуса in vitro представителей рода Agastache J.Clayton ex Gronov. на клетки опухолевой линии SK-OV-3.

Теоретическая и практическая значимость работы. Предложенная технология культивирования видов рода Agastache J.Clayton ex Gronov. in vitro может быть использована для дальнейшей разработки систем для накопления ценных ВМ. Рассмотренные подходы к преодолению витрификации могут позволить получить более качественный посадочный материал и увеличить эффективность использования растений in vitro в генетической трансформации,

получении ВМ, клеточной селекции. Наночастицы, полученные с использованием растительных экстрактов, могут послужить основой для бактерицидных лекарственных препаратов. Полученные результаты также могут быть использованы при проведении занятий по таким учебным дисциплинам, как «Культура тканей и клеток растений», «Сельскохозяйственная биотехнология», «Прикладная биотехнология», «Вторичный метаболизм высших растений», «Физиология растений» для студентов бакалавриата и магистратуры, обучающихся по направлениям «Биотехнология», «Агрономия» и «Садоводство».

Методология и методы диссертационного исследования. Диссертационная работа выполнена с использованием классических и современных методов культуры клеток и тканей, биохимического анализа, микроскопии, калориметрических (МТТ-тест) и спектрофотометрических методов. Методология и методы исследования детально описаны в разделе «Объекты и методы исследований».

Положения диссертации, выносимые на защиту:

1. Технология культивирования in vitro растений рода Agastache spp.;

2. Способы преодоления витрификации асептических растений A. foeniculum;

3. Биохимический анализ растений Agastache spp. in vitro;

4. Метод получения наночастиц серебра на основе растительных экстрактов A. foeniculum, их характеристика и бактерицидные свойства;

5. Цитотоксические свойства водных экстрактов из растений Agastache spp. in vitro и каллуса на клетки опухолевой линии SK-OV-3.

Апробация работы. Результаты проведенных исследований были представлены на следующих конференциях и симпозиумах: конференция аспирантов и молодых специалистов РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева (г. Москва, 2015, 2016, 2017); Symposium on Euroasian Biodiversity (г. Баку, Азербайджан, 2015; г. Анталия, Турция, 2016; г. Минск, Республика Беларусь, 2017); Международная научно-практическая конференция «Пути повышения конкурентоспособности отечественных сортов семян, посадочного материала и

технологий на мировом рынке» (г. Ялта, 2015); II Международная научно-практическая конференция «Современное состояние и перспективы развития селекции, семеноводства, размножения и оздоровления растений в связи с импортозамещением в АПК РФ» (г. Ялта, 2016); Международная научно-практическая конференция, посвященная 129-й годовщине со дня рождения академика Н.И. Вавилова «Вавиловские чтения - 2016» (г. Саратов, 2016); XII Неделя науки молодежи Северо-Восточного административного округа города Москвы (г. Москва, 2017); Международная научно-практическая конференция «Фундаментальные проблемы науки» (г. Казань, 2017); Годичное собрание Общества физиологов растений России, Научная конференция и школа для молодых ученых «Экспериментальная биология растений: фундаментальные и прикладные аспекты» (г. Судак, 2017); Пятая научно-практическая конференция с международным участием «Молодые учёные и фармация XXI века» (г. Москва,

2017); X Международный Симпозиум «Фенольные соединения: фундаментальные и прикладные аспекты» (г. Москва, 2018); Международная научная конференция РЬАМГС2018 «Растения и микроорганизмы: биотехнология будущего» (г. Уфа,

2018).

Личный вклад автора. Диссертационная работа является результатом исследований, проведенных лично автором на кафедре генетики, биотехнологии, селекции и семеноводства РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева. Автор принимал участие в разработке программы исследования, выборе методов, проведении экспериментов, обработке и анализе полученных данных, подготовке публикаций. Исследования по определению цитотоксичности были проведены совместно с к.б.н., с.н.с. Института биоорганической химии имени академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН В.О. Шипуновой. Исследования по определению характеристик наночастиц и их бактерицидной активности были проведены совместно с к.б.н., м.н.с. НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского МГУ имени М.В. Ломоносова В.В. Макаровым и к.б.н., с.н.с. НИЦ эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава РФ В.А. Гущиным.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 15 научных работ, 3 из которых в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.

Структура и объем диссертации. Диссертационная работа состоит из введения, 4 глав, выводов, библиографического списка. Общий объем рукописи 151 страница, содержит 22 таблицы, 38 рисунков. Список цитируемой литературы содержит 222 источника, в том числе 198 на иностранных языках.

ГЛАВА I ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Ботаническая характеристика Agastache spp.

Agastache J.Clayton ex Gronov. - небольшой род семейства Lamiaceae Mart., включающий более 20 видов многолетних ароматических лекарственных травянистых растений. Данный род принадлежит к Nepetoideae - подсемейству Lamiaceae, а все виды разделены на 2 секции - Brittonastrum и Agastache (Lint, Epling, 1945; Sanders, 1987; Cantino et al., 1992). Морфология Agastache spp. типична для Lamiaceae. Это многолетние травянистые растения высотой 1 м и более. Стебель может быть простым или разветвленным, прямым или слегка ползучим, иногда одревесневшим, четырехугольной формы. Листья характеризуются наличием большого числа секреторных трихом. Цветки имеют губовидную форму и белый или ярко окрашенный в пурпурный, красный, желтоватый, оранжевый цвет венчик. Количество хромосом равно 2n = 18. Виды рода Agastache обитают на территории Северной Америки, но один вид (A. rugosa) встречается в Юго-Восточной Азии (Zielinska, Matkowski, 2014).

Согласно таксономической веб-базе данных, которую ведут Королевский Ботанический Сад Кью, Ботанический Сад Миссури и др. (www.theplantlist.org), род Agastache включает следующие 29 принятых таксонов: A. aurantiaca (A.Gray) Lint & Epling; A. breviflora (A.Gray) Epling; A. cana (Hook.) Wooton & Standl.; A. coccinea (Greene) Lint & Epling; A. cusickii (Greenm.) A.Heller; A. eplingiana R.W.Sanders; A. foeniculum (Pursh) Kuntze; A. mearnsii Wooton & Standl.; A. mexicana (Kunth) Lint & Epling; A. mexicana subsp. mexicana (внутривидовой таксон); A. micrantha (A.Gray) Wooton & Standl.; A. nepetoides (L.) Kuntze; A. occidentalis (Piper) A.Heller; A. pallida (Lindl.) Cory; A. pallida var. pallida (внутривидовой таксон); A. pallidiflora (A.Heller) Rydb.; A. pallidiflora var. greenei (Briq.) R.W.Sanders; A. pallidiflora var. harvardii (A.Gray) R.W.Sanders; A. pallidiflora subsp. neomexicana (Briq.) Lint & Epling; A. palmeri (B.L.Rob.) Standl.; A. palmeri var. breviflora (Regel) R.W.Sanders; A. parvifolia Eastw.; A. pringlei (Briq.)

Lint & Epling; A. pringlei var. verticillata (Wooton & Standl.) R. W.Sanders; A. rugosa (Fisch. & C.A.Mey.) Kuntze; A. rupestris (Greene) Standl.; A. scrophulariifolia (Willd.) Kuntze; A. urticifolia (Benth.) Kuntze; A. wrightii (Greenm.) Wooton & Standl.

Тем не менее систематическое положение представителей Agastache не является постоянным. Некоторые виды изменяли свои таксономические позиции в течение многих лет (Lint, Epling, 1945; Fuentes-Granados et al., 1998). В 1945 году Lint and Epling сообщали о 22 таксонах рода Agastache, разделенных на 2 секции: Brittonastrum и Chiastandra (синоним, в настоящее время данную секцию определяют как секцию Agastache). Представители секции Brittonastrum описывались как обитающие на юго-востоке США и Мексики, в то время как Chiastandra (=Agastache) характеризовались как типичные для северных частей США, Канады и Восточной Азии. Разделение видов на 2 секции основывается на различиях в длине и расположении тычинок. К секции Agastache относятся A. cusickii, A. foeniculum, A. nepetoides, A. occidentalis, A. parvifolia, A. rugosa, A. scrophulariifolia, A. urticifolia (Sanders, 1987). Наиболее типичным представителем секции Brittonastrum является A. mexicana. В 1998 году в обзорной статье Fuentes-Granados с соавт. перечислили 22 вида, хотя описывались новые виды и происходило перемещение уже известных видов внутри таксона (Fuentes-Granados et al., 1998). Основные критерии подродового разделения кажутся четкими, но генетические отношения между видами представляются неоднозначными. Морфологическое сходство видов одной и той же секции не всегда указывает на тесное генетическое родство (Zielinska, Matkowski, 2014). A. rugosa оказался более похожим на восточные североамериканские популяции, чем на западные североамериканские популяции секции Agastache. Кроме того, в секции Agastache меньше межвидовых вариаций, чем в секции Brittonastrum (Lint, Epling, 1945; Vogelmann, Gastony, 1987).

Представители рода Agastache имеют тонкие супротивные листья в основном овально-треугольной формы. В секцию Brittonastrum входят виды с листовой пластиной размером от 2 до 6 см в длину. У представителей секции Agastache длина листовой пластинки варьирует от 1 до 15 см. Черешки в 2...4 раза

короче пластинки. Листья яйцевидные или продолговато-яйцевидные, с сердцевидным или реже округлым основанием, заостренные или с длинным оттянутым кончиком, крупно- или мелкозубчатые (Sanders, 1987). Для представителей секции Brittonastrum типична овально-треугольная форма листа, но ювенильные листья в основном овально-сердцевидные, а среди зрелых встречаются овальные, узкоовальные или продолговато-линейные. Края листа в основном зубчатые или сплошные (Lint, Epling, 1945; Zielinska, Matkowski, 2014).

Стебель у представителей рода Agastache простой или разветвленный, имеющий четырехугольное сечение высотой до 1 ми толщиной 7...8 мм. У представителей различных популяций, а также в зависимости от условий культивирования степень разветвленности стебля может варьировать (Lint, Epling, 1945).

Соцветие у Agastache в отличие от многих других видов Яснотковых, у которых цветки выходят из пазушных почек, расположено на терминальном конце. Lint and Epling описывали цветки рода Agastache как находящиеся в сидячем положении или на ножке мутовки, с беловатой или цветной чашечкой и розеткой фиолетового, розового или белого цвета (Lint, Epling, 1945). Размер чашечки - 5...8 мм, цвет - белый, пурпурный, фиолетовый, оранжевый. Соцветия Agastache состоят из множества мелких цветков, внешне обычно колосовидные, собранные в ложные мутовки. Реже встречаются четковидные соцветия. Ложные мутовки скучены на конце стебля и пазушных ветвей в плотные цилиндрические соцветия, которые на стебле достигают около 10 см длины и 2 см ширины. Верхушечные листья у основания соцветия подобны стеблевым, но мельче, прицветные листья у основания полумутовок не длиннее 5 мм и около 1,0...1,2 мм шириной, ланцетно-линейные, длинные, заостренные, прицветники подобны им, но приблизительно вдвое короче. Представители секции Brittonastrum обладают непрерывными, шипо-, щетко- и четкообразными, разветвленными соцветиями. Морфология соцветий варьирует в зависимости от вида и состояния окружающей среды (Lint, Epling, 1945).

Морфология цветков у представителей Brittonastrum и Agastache также

различается. У представителей секции Agastache асимметричный венчик, сформированный в виде узкой воронки, немного двугубый. Два адоксиальных лепестка слиты на две трети их длины в неглубоко вогнутую верхнюю губу. Два боковых лепестка значительно возвышаются над верхней губой. Четыре тычинки выходят из трубки венчика и значительно возвышаются над верхней губой венчика. Дорсальная пара тычинок длиннее. У Brittonastrum отверстие венчика косое, с небольшими лепестками (менее чем на одну четверть от всей длины венчика). Боковые лепестки больше слиты с верхней губой, чем со средним лепестком. Тычинки включены под губу венчика или незначительно возвышаются над ней (Sanders, 1987; Zielinska, Matkowski, 2014).

Корневая система смешанного типа.

Все виды Agastache характерны для Северной Америки, кроме A. rugosa (родом из Восточной Азии). Другие виды секции Agastache родом c запада, центрального севера и востока Северной Америки, в то время как виды секции Brittonastrum обитают в юго-западной части Северной Америки, включая Мексику (Fuentes-Granados et al., 1998).

Виды рода Agastache произрастают преимущественно в засушливых, хорошо освещенных районах. Встречаются на скалистых склонах, заболоченных равнинах, местах с природным и антропогенным изменениями ландшафта.

1.2 Синонимы названий изучаемых видов Agastache spp.

Согласно таксономическим базам данных The Plant List (www.theplantlist.org) и World Checklist of Selected Plant Families (wcsp.science.kew.org), изучаемые виды имеют следующие синонимичные названия:

A. foeniculum (Pursh) O.Kuntze

Гомотипные синонимы:

Hyssopus foeniculum (Pursh) Spreng., Lophanthus foeniculum (Pursh) E.Mey., Stachys foeniculum Pursh, Vleckia foeniculum (Pursh) MacMill (wcsp.science.kew.org).

Гетеротипные синонимы:

Agastache anethiodora (Nutt.) Britton & A.Br., Agastache foeniculum f. bernardii B.Boivin, Agastache foeniculum f. candicans B.Boivin, Hyptis marathrosma (Spreng.) Benth., Hyssopus anisatus Nutt., Hyssopus discolor Desf., Lophanthus anisatus (Nutt.) Benth., Perilla marathrosma Speng., Vleckia albescens Raf., Vleckia anethiodora (Nutt.) Greene, Vleckia anisata (Nutt.) Raf., Vleckia bracteata Raf., Vleckia bracteosa Raf., Vleckia discolor Raf., Vleckia incarnata Raf. (theplantlist.org).

A. scrophulariifolia (Wilde) O.Kuntze

Гомотипные синонимы:

Hyssopus scrophulariifolius Willd., Lophanthus scrophulariifolius (Willd.) Benth., Vleckia scrophulariifolia (Willd.) Raf. (wcsp.science.kew.org).

Гетеротипные синонимы:

Agastache scrophulariifolia var. mollis (Fernald) A.Heller, Hyssopus catariifolius Benth., Lophanthus scrophulariifolius var. mollis Fernald, Vleckia cordifolia Raf., (theplantlist.org)

A. urticifolia (Benth.) Kuntze

Гомотипные синонимы:

Lophanthus urticifolius Benth., Vleckia urticifolia (Benth.) Raf.

Гетеротипные синонимы:

Agastache glaucifolia A.Heller, Agastache urticifolia var. glaucifolia (A.Heller) Cronquist (theplantlist.org).

1.3 Фитохимическая характеристика Agastache spp.

Agastache как вид Lamiaceae содержит ВМ, такие как фенилпропаноиды и терпеноиды. Первая группа включает в себя флавоноиды, свободные фенольные кислоты и депсиды (Zielinska, Matkowski, 2014). Вторая обширная группа веществ - терпеноиды - включает в себя как летучие, так и нелетучие соединения из различных органов растений (Zielinska, Matkowski, 2014).

1.3.1 Состав эфирного масла Agastache spp.

Два основных класса летучих компонентов эфирных масел -фенилпропаноиды и терпеноиды (Zielinska, Matkowski, 2014). В наибольшем количестве в эфирном масле Agastache представлены монотерпены и их производные, а сесквитерпены и их производные обычно встречаются в небольшом количестве.

Природные эфирные масла могут содержать от 20 до 100 различных ВМ, принадлежащих различным классам химических веществ (Carson, Hammer, 2011). У представителей рода Agastache идентифицировано в общей сложности 77 компонентов эфирных масел (табл. 1.1; Fuentes-Granados et al., 1998).

Таблица 1.1

Компоненты эфирных масел Agastache spp. (Fuentes-Granados et al., 1998)

Вещество Виды рода Agastache

1 2

транс-анитол A. foeniculum

анисальдегид A. foeniculum, A. rugosa

1-ацетат актен-3-ил A. rugosa, A. foeniculum, A. scrophulariifolia

бензальдегид A. foeniculum

борнеол A. scrophulariifolia

борнил ацетат A. foeniculum, A. rugosa

Р-бурбонил A. foeniculum, A. rugosa, A. nepetoides

бутанол A. foeniculum

гексанол A. scrophulariifolia

цмс-Р,у-гексенол A. rugosa

гераниол A. foeniculum

гермакрен А и В A. foeniculum

гермакрен D A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana, A. scrophulariifolia, A. nepetoides, A. urticifolia

а-гумулен A. rugosa, A. foeniculum

Продолжение таблицы 1.1

1 2

ß-гумулен A. rugosa

дамасценон A. rugosa, A. foeniculum, A. nepetoides

дегидротерпинеол A. rugosa, A. foeniculum

диметил гексаналь A. foeniculum

а-р-диметилстирол A. scrophulariifolia

жасмон A. rugosa

изоментон A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana, A. scrophulariifolia, A. urticifolia

транс-изопулегон A. rugosa, A. mexicana, A. scrophulariifolia

цмс-изопулегон A. rugosa, A. mexicana, A. scrophulariifolia

а-иланген A. rugosa

ß-ионон A. foeniculum

у-кадинен A. foeniculum, A. rugosa

5-кадинен A. foeniculum, A. rugosa, A. nepetoides

а-кадинол A. foeniculum, A. rugosa

5-кадинол A. foeniculum, A. rugosa, A. nepetoides

каламенен A. rugosa

камфен A. foeniculum, A. nepetoides, A. mexicana

камфора A. rugosa

карвакрол A. foeniculum

карвон A. rugosa

ß-кариофиллен A. foeniculum, A. rugosa, A. scrophulariifolia, A. nepetoides, A. mexicana, A. urticifolia

кариофиллен оксид A. foeniculum, A. nepetoides

а-копаен A. nepetoides

лимонен A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana, A. scrophulariifolia, A. urticifolia, A. nepetoides

линолоол A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana, A. scrophulariifolia, A. nepetoides

ментол A. rugosa

ментон A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana, A. scrophulariifolia, A. urticifolia

Продолжение таблицы 1.1

1 2

ментофуран A. scrophulariifolia

метилхавикол A. rugosa, A. foeniculum, A. scrophulariifolia

метилэвгенол A. rugosa, A. foeniculum, A. scrophulariifolia

метоксикоричный спирт A. rugosa, A. foeniculum

метоксициннамальдегид A. rugosa

мирцен A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana, A. scrophulariifolia, A. urticifolia, A. nepetoides

3-октанол A. foeniculum, A. urticifolia, A. nepetoides

3-октанон A. rugosa, A. foeniculum

1-октен-З-ол A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana, A. scrophulariifolia

октен-7-4-ол A. rugosa, A. foeniculum,

октил-З-ацетат A. scrophulariifolia

оцимен A. foeniculum, A. urticifolia, A. nepetoides

а-пинен A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana, A. scrophulariifolia, A. urticifolia, A. nepetoides

ß-пинен A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana, A. scrophulariifolia, A. urticifolia, A. nepetoides

пинокамфон A. foeniculum

пиперитон A. mexicana, A. scrophulariifolia, A. urticifolia, A. rugosa

пулегон A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana, A. urticifolia, A. scrophulariifolia

сабинен A. foeniculum

сафрол A. rugosa

спатуленол A. foeniculum, A. nepetoides

а-терпинен A. foeniculum

терпинен-4-ол A. foeniculum

а-терпинеол A. scrophulariifolia

тимол A. foeniculum

^^-фарнезен A. rugosa, A. foeniculum

фурфурол A. mexicana

хавикол A. rugosa

р-цимен A. rugosa, A. foeniculum, A. mexicana

Окончание таблицы 1.1

1 2

1,8-цинеол A. rugosa, A. mexicana, A. scrophulariifolia

цитраль A. rugosa

цитронеллаль A. mexicana

эвгенол A. foeniculum

Р-элемен A. rugosa, A. mexicana, A. foeniculum

у-элемен A. foeniculum

элемол A. scrophulariifolia

этилдиметил гептан A. foeniculum

Р-элемен A. rugosa, A. mexicana, A. foeniculum

Летучие компоненты эфирных масел растений рода Agastache синтезируются и накапливаются в секреторных трихомах на поверхности листа. Листовая пластина различных видов Agastache в большей или меньшей степени также покрыта несекреторными волосками. У некоторых видов, таких как A. foeniculum, волоски покрывают поверхность листа особенно плотно (Svoboda et al., 1995). Содержание эфирного масла может достигать более 2 % в зависимости от вида и органа растения (Svoboda et al., 1995; Omidbaigi, Mahmoodi, 2010).

Состав эфирных масел представителей рода Agastache зависит от времени сбора сырья, состояния окружающей среды и методов культивирования (Svoboda et al., 1995; Omidbaigi, Sefidkon, 2004; Suchorska-Tropilo et al., 2004; Маланкина, 2007; Omidbaigi, Mahmoodi, 2010). Наибольшее количество эфирного масла из A. mexicana и A. rugosa было получено в начале цветения, а из A. foeniculum - в середине периода цветения (Suchorska-Tropilo et al., 2004). Большее количество эфирного масла было получено из растений A. rugosa и A. scrophulariifolia, культивируемых в условиях прохладных летних температур. Напротив, A. foeniculum и A. urticifolia предпочитают более теплый климат, в противном случае они не цветут и производят незначительное количество эфирного масла (Svoboda et al., 1995; Rudik, 2013).

Многие виды Agastache продуцируют значительно большее количество

эфирного масла в период цветения, а не в период вегетации. После прекращения цветения количество масла снижается вновь.

Установлено, что на качественный и количественный состав эфирного масла A. foeniculum влияет время посева (Omidbaigi, Sefidkon, 2004). Ранний посев (в марте) позволяет получить растения, содержащие большее количество эфирного масла (более 2 %) и метилхавикола в нем (92 %), чем растения, посев которых пришелся на поздние месяцы (май, июнь). В том же исследовании было продемонстрировано, что нитратные удобрения увеличивают содержание эфирного масла до 2,88 %. Умеренное орошение полей в окрестностях Тегерана (Иран) также увеличивало выход эфирного масла (до 2,3 %), но подобного рода воздействие не может быть одинаково эффективным для районов с менее засушливым летом (Omidbaigi et al., 2008; Omidbaigi, Mahmoody, 2010). В другом исследовании было изучено влияние органических (коровий навоз и биогумус) и неорганических (нитратные удобрения) удобрений на состав и содержание эфирного масла у A. foeniculum. Максимальное содержание эфирного масла было отмечено у растений, выращенных с использованием навоза и биогумуса. Основным компонентом эфирного масла был метилхавикол (Moghaddam et al., 2015).

Похожие диссертационные работы по специальности «Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)», 03.01.06 шифр ВАК

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Поливанова Оксана Борисовна, 2019 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Буданцев, А.Л. Розмариновая кислота: источники и биологическая активность / А.Л. Буданцев, Е.Е. Лесиовская // Раст. ресурсы. - 2012. - Т. 48, № 3. - С. 453-468.

2. Буданцев, А.Л. Содержание розмариновой кислоты в листьях некоторых видов семейств Ьаш1аееае и Boraginaceae / А.Л. Буданцев, А.Л. Шаварда, Н.А. Медведева [и др.] // Раст. ресурсы. - 2015. - № 1. - С. 105-116.

3. Гинс, М.С. Содержание антиоксидантов в лекарственных и овощных растениях, проявляющих противоопухолевую активность / М.С. Гинс, А.А. Байков, А.М. Рабинович [и др.] // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. - 2013. - Т. 11, № 2. - С. 10-15.

4. Гинс, М.С. Антиоксидантные характеристики зеленых пряно-ароматических культур / М.С. Гинс, В.А. Харченко, В.К. Гинс [и др.] // Овощи России. - 2014. - № 2(23). - С. 42-45.

5. Ермаков, А.И. Методы биохимического исследования растений / А.И. Ермаков, В.В. Арасимович, Н.П. Ярош. - 2-е изд., перераб. и доп. - Л.: Колос, 1972. - 456 с.

6. Запрометов, М.Н. Фенольные соединения и методы их исследования / М.Н. Запрометов // Биохимические методы в физиологии растений. Под ред. О.А. Павлиновой. - М.: Наука, 1971. - С. 185-197.

7. Калашникова, Е.А. Лабораторный практикум по сельскохозяйственной биотехнологии / Е.А. Калашникова, М.Ю. Чередниченко, Н.П. Карсункина [др.]. - Изд. 3-е, испр. и доп. - М.: Изд-во РГАУ-МСХА, 2014. -147 с.

8. Котлова, Е.Р. Сравнение метаболитных профилей тритерпеноидов и стеринов - представителей рода Agastache (Lamiaceae) / Е.Р. Котлова, М.А. Виноградская, Р.К. Пузанский [и др.] // Раст. ресурсы. - 2018. - Т. 54, № 1. - С. 75-97.

9. Мазур, Т.В. Вторичные метаболиты растений-регенерантов Agastache

rugosa (Fish. et Mey) / Т.В. Мазур, В.Н. Решетников, Т.И. Фоменко // Веещ Нацыянальнай акадэми навук Бeлapyci. Cepыя бiялaгiчныx навук. - 2008. - №. 4. -С. 5-9.

10. Маланкина, Е.Л. Агробиологическое обоснование повышения продуктивности эфиромасличных растений из семейства Яснотковые (Lamiaceae L.) в Нечерноземной зоне России: дис. ... д-ра сельскохозяйственных наук: 06.01.13 / Маланкина Елена Львовна. - М., 2007. - 343 с.

11. Маланкина, Е.Л. Лекарственные растения семейства Яснотковые (Lamiaceae) как источник флавоноидов / Е.Л. Маланкина, Е.Н. Ткачева, Л.Н. Козловская // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. - 2018. - Т. 21, № 1. - С. 30-35.

12. Мяделец, М. А. Биологически активные вещества и антиоксидантная активность растений рода Agastache Clayton ex Gron. (Lamiaceae L.), культивируемых в условиях Среднего Урала / М.А. Мяделец, Т.А. Кукушкина, Т.А. Воробьева [и др.] // Химия растительного сырья. - 2014. - № 4. - С. 147-152.

13. Носов, А.М. Культура клеток высших растений - уникальная система, модель, инструмент (Plant cell culture: unique system, model, and tool) / А.М. Носов // Физиология растений. - 1999. - Т. 46, № 6. - С. 837-844.

14. Палий, А.Е. Розмариновая кислота и ее сырьевые источники в Крыму / А.Е. Палий, Ф.М. Меликов, О.А. Гребенникова [и др.] // Фармация и фармакология. - 2015. - № 2(9). - С. 7-13.

15. Пленина, Л.В. Агастацин® - новый растительный гепатопротектор (результаты клинических испытаний) / Л.В. Пленина, Ю.С. Лопатенто, Т.Р. Романовская [и др.] // Рецепт. - 2007. - № 2(52). - С. 132-136.

16. Поливанова О.Б. Изучение влияния когерентного лазерного излучения и гормонального и минерального состава питательной среды на развитие побегов Agastache foeniculum (Pursh) Kuntze (Lamiaceae) in vitro / О.Б. Поливанова, М.Ю. Чередниченко // Вавиловские чтения - 2016: Сборник статей международной научно-практической конференции, посвященной 129-й годовщине со дня рождения академика Н.И. Вавилова. - Саратов: ФГБОУ ВО Саратовский ГАУ,

2016. - С. 130-133 (б).

17. Поливанова О.Б., Чередниченко М.Ю. Морфогенетический потенциал Agastache foeniculum (Pursh) Kuntze (Lamiaceae Mart.) in vitro // Пятая научно-практическая конференция с международным участием «Молодые учёные и фармация XXI века». Сб. науч. трудов. - М.: ВИЛАР, 2017. - С. 109-113 (б).

18. Поливанова, О.Б. Влияние гормонального состава питательной среды на индукцию каллусогенеза и соматического органогенеза у Agastache foeniculum (Pursh) Kuntze (Lamiaceae) / О.Б. Поливанова, М.Ю. Чередниченко // Труды Кубанского государственного аграрного университета. - 2016. - № 3(60). - С. 331334 (а).

19. Поливанова, О.Б. Влияние режима стерилизации на всхожесть семян Agastache J.Clayton ex Gronov. и рост растений in vitro / О.Б. Поливанова // Международная научно-практическая конференция молодых учёных и специалистов, посвящённая 150-летию РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева, г. Москва, 2-3 июня 2015: Сборник статей. - М.: Изд-во РГАУ-МСХА, 2015. - C. 6364.

20. Поливанова, О.Б. Перспективы биотехнологических методов размножения представителей рода Agastache J.Clayton ex Gronov. для получения вторичных метаболитов / О.Б. Поливанова, М.Ю. Чередниченко // Труды Кубанского государственного аграрного университета. - 2015. - № 4(55). - С. 282286.

21. Поливанова, О.Б. Пути преодоления витрификации многоколосника фенхельного Agastache foeniculum (Pursh) Kuntze) в культуре in vitro / О.Б. Поливанова, М.Ю. Чередниченко // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. - 2017. - № 5. - С. 17-28 (а).

22. Чередниченко М.Ю. Влияние минерального состава питательной среды на эффективность клонального микроразмножения растений рода Agastache J.Clayton ex Gronov. / М.Ю. Чередниченко, О.Б. Поливанова, С.А. Дадаян // Фундаментальные проблемы науки: сборник статей Международной научно-практической конференции (20 июня 2017 г., г. Казань). В 4 ч. Ч. 4. - Уфа:

АЭТЕРНА, 2017. - С. 30-32.

23. Чумакова, В.В. Анатомо-диагностическое изучение травы лофанта анисового / В.В. Чумакова, О.И. Попова // Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции: сб. науч. тр. - Вып. 68. - Пятигорск, 2013. -С.137-139.

24. Чумакова, В.В. Изучение фенольных соединений травы лофанта анисового / В.В. Чумакова, О.И. Попова // Фармация. - 2011. - № 3. - С. 20-22.

25. Abbasi, B.H. Shoot regeneration and free-radical scavenging activity in Silybum marianum L. / B.H. Abbasi, M.A. Khan, T. Mahmood [et al.] // Plant Cell Tissue Org. Cult. - 2010. - Vol. 101. - P. 371-376.

26. Aiyegoro, O.A. Preliminary Phytochemical Screening and In Vitro Antioxidant Activities of the Aqueous Extract of Helichrysum Longifolium DC / O.A. Aiyegoro, A.I. Okoh // BMC Complementary and Alternative Medicine. - 2010. - Vol. 10 (21). - P. 1-8.

27. Alfermann, A.W. Natural products formation by plant cell biotechnology / A.W. Alfermann, M. Petersen // Plant Cell Tissue Org. Cult. - 1995. - Vol. 43. - P. 199-205.

28. Andres, M.F. Nematicidal activity of essential oils: a review / M.F. Anders, A. Gonzalez-Coloma, A.J. Sanz [et al.] // Phytochem. Rev. - 2012. - Vol. 11. - P. 371390.

29. Aromal, S. Green synthesis of gold nanoparticles using Trigonella foenum-graecum and its size dependent catalytic activity / S. Aromal, D. Philip // Spectrochim. Acta. A. - 2012. - Vol. 97. - P. 1-5.

30. Asada, Y. Isopyrenylated flavonoids from hairy root cultures of Glycyrrhiza glabra / Y. Asada, W. Li, T. Yoshikawa // Phytochemistry. - 1998. - Vol. 47. - P. 389-392.

31. Baghel, P.S. Preliminary phytochemical screening of certain aphrodisiac plants used in traditional system of medicine / P.S. Baghel, S. Ray // International Journal of Botany Studies. - 2017. - Vol. 2 (5). - P. 33-36.

32. Bansod, S. Antifungal activity of essential oils from Indian medicinal

plants against human pathogenic Aspergillus fumigatus and A. niger / S. Bansod, M. Rai // World J. Med. Sci. - 2008. - Vol. 3(2). - P. 81-88.

33. Baskaran, P. In vitro propagation and secondary product production by Merwilla plumbea (Lindl.) Speta / P. Baskaran, B. Ncube, J. Van Staden // Plant Growth Regulation. - 2012. - Vol. 67. - P. 235-245.

34. Bindhu, M.R. Synthesis of monodispersed silver nanoparticles using Hibiscus cannabinus leaf extract and its antimicrobial activity / M.R. Bindhu, M. Umadevi // Spectrochimica Acta Part A - Molecular and Biomolecular Spectroscopy. -2013. - Vol. 101. - P. 184-190.

35. Bota, C. Effect of plant growth regulators on the production of flavonoids by cell suspension cultures of Digitalis lanata / C. Bota, C. Deliu // Farmacia. - 2015. -Vol. 63(5). - P. 716-719.

36. Bruni, R. Essential oil composition of Agastache anethiodora Britton (Lamiaceae) infected by cucumber mosaic virus (CMV) / R. Bruni, A. Bianchi, M.G. Bellardi // Flavour. Fragr. J. - 2007. - Vol. 22. - P. 66-70.

37. Bulgakov, V.P. Rosmarinic acid and its derivatives: biotechnology and applications / V.P. Bulgakov, Y.V. Inyushkina, S.A. Fedoreyev // Crit. Rev. Biotech. -2012. - Vol. 32(2). - P. 203-217.

38. Cano Asseleih, L.M. Flora medicinal de Veracruz. I. Inventario etnobotanico / L.M. Cano Asseleih. - Xalapa, Veracruz, Mexico, 1997. - P. 606.

39. Cantino, P.D. Genera of Labiatae: status and classification / P.D. Cantino, R.M. Harley, S.J. Wagstaff // In: Harley R. M., Reynolds T. (editors) Advances in Labiatae Science. Royal Botanic Gardens, Kew, UK, 1992. - P. 511-515.

40. Carson, C.F. Chemistry and bioactivity of essential oils. Lipids and essential oils as antimicrobial agents / C.F. Carson, K.A. Hammer. - ed. H. Thormar. -John Wiley & Sons, Ltd, Chichester, UK, 2011. - P. 203-236.

41. Chae, S.C. Variation of carotenoid content in Agastache rugosa and Agastache foeniculum / S.C. Chae, S.W. Lee, J.K. Kim [et al.] // Asian J. Chem. - 2013. - Vol. 25(8). - P. 4364-4366.

42. Chae, Y.A. Variability of the volatile composition of Agastache rugosa in

South Korea / Y.A. Chae, O. Hyun-Choong, J.S. Song // Acta Hortic. - 2005. - Vol. 675. - P. 59-64.

43. Chandran, K. Effect of size and shape controlled biogenic synthesis of gold nanoparticles and their mode of interactions against food borne bacterial pathogens / K. Chandran, S. Song, S. Yun // Arab. J. Chemi. - 2014. - Vol. 9. - P. 1-13.

44. Chang, C. Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods / C. Chang, M. Yang, J. Chern // Journal of Food and Drug Analysis. - 2002. - Vol. 10(3). - P. 178-182.

45. Charles, D.J. Characterization of essential oil of Agastache species / D.J. Charles, J.E. Simon, M.P. Widrlechner // J. Agric. Food. Chem. - 1991. - Vol. 39(11). - P. 1946-1949.

46. Chen, F.P. Frequency and pattern of Chinese herbal medicine prescriptions for chronic hepatitis in Taiwan / F.P. Chen, Y.Y. Kung, Y.C. Chen [et al.] // J. Ethnopharmacol. - 2008. - Vol. 117. - P. 84-91.

47. Cusido, R.M. A rational approach to improving the biotechnological production of taxanes in plant cell cultures of Taxus spp. / R.M. Cusido, M. Onrubia, A. B. Sabater-Jara [et al.] // Biotechnol. Adv. - 2014. - Vol. 32(6). - P. 1157-1167.

48. Davey, M. Secondary metabolism in plant cell culture / M. Davey // Encyclopedia of applied plant sciences (sec. ed.). - 2017. - Vol. 2. - P. 462-467.

49. De Sousa, D.P. Pharmacological activity of (R)-(+)-pulegone, a chemical constituent of essential oils / D.P. De Sousa, F.F. Nobrega, M.R. De Lima [et al.] // Z. Naturforsch. - 2011. - Vol. 66(7-8). - P. 353-359.

50. Desta, K.T. The polyphenolic profiles and antioxidant effects of Agastache rugosa Kuntze (Banga) flower, leaf, stem and root / K.T. Desta, G.S. Kim, Y.H. Kim [et al.] // Biomed. Chromatograph. - 2015. - Vol. 30. - P. 225-231.

51. Diaz-Perez, J.C. Effects of in vitro-formed roots and acclimatization on water status and gas exchange of tissue-cultured apple shoots / J.C. Diaz-Perez, K.A. Shackel, E.G. Sutter // J. Amer. Soc. Hort. Sci. - 1995. - Vol. 120(3). - P. 235-240.

52. Dizaj, S.M. Antimicrobial activity of carbon-based nanoparticles / S.M. Dizaj, A. Mennati, S. Jafari [et al.] // Adv. Pharm. - 2015. - Vol. 5. - P. 19-23.

53. Duda, S.C. Changes in major bioactive compounds with antioxidant activity of Agastache foeniculum, Lavandula angustifolia, Melissa officinalis and Nepeta cataria: Effect of harvest time and plant species / S.C. Duda, L.A. Marghitas, D. Dezmirean [et al.] // Indust. Crop. Prod. - 2015. - Vol. 77. - P. 499-507.

54. Ebadollahi, A. Chemical constituents and toxicity of Agastache foeniculum (Pursh) Kuntze essential oil against two stored-product insect pests / A. Ebadollahi // Chil. J. Agr. Res. - 2011. - Vol. 71(2). - P. 212-217.

55. Ebadollahi, A. Toxicity and physiological effects of essential oil from Agastache foeniculum (Pursh) Kuntze against Tribolium castaneum Herbst (Coleoptera: Tenebrionidae) larvae / A. Ebadollahi, R. Khosravi, J.J. Sendi [et al.] // Ann. Rev. Res. Biol. - 2013. - Vol. 3(4). - P. 649-658.

56. Ebadollahi, A. Toxicity of essential oil of Agastache foeniculum (Pursh) Kuntze to Oryzaephilus surinamensis L. and Lasioderma serricorne F. / A. Ebadollahi, M.H. Safaralizadeh, A.A. Pourmirza [et al.] // J. Plant. Prot. Res. - 2010. - Vol. 50(2). -P. 215-219.

57. Edmundson, M. Exploring the potential of metallic nanoparticles within synthetic biology / M. Edmundson, M. Capeness, K. Hussian // Nat. Biotechnol. - 2014. - Vol. 25. - P. 572-578.

58. Estrada-Reyes, R. Comparative chemical composition of Agastache mexicana subsp. mexicana and A. mexicana subsp. xolocotziana / R. Estrada-Reyes, E.A. Hernández, A. García-Argaez [et al.] // Biochem. Syst. Ecol. - 2004. - Vol. 32. -P. 682-694.

59. Fei, L. From leaf explants to hanging rooted plantlets in a mist reactor / L. Fei, P. Weathers // Plant Cell Tiss. Organ. Cult. - 2015. - Vol. 51(6). - P. 669-681.

60. Filova, A. Production of some secondary metabolites in plant tissue cultures / A. Filova // Res. J. Agric. Sci. - 2014. - Vol. 46(1). - P. 263-245.

61. Fuentes-Granados, R. An overview of Agastache research / R. Fuentes-Granados, M.P. Widrlechner, L.A. Wilson // J. Herbs Spices Med. Plants. - 1998. -Vol. 6(1). - P. 69-97.

62. Fujita, S.I. Miscellaneous contributions to the essential oils of plants from

various territories XXXIII. Essential oil of Agastache rugosa O. Kuntze / S.I. Fujita, Y. Fujita // Yakugaku. Zasshi. - 1973. - Vol. 93(12). - P. 1679-1681.

63. Gamborg, O.L. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells / O.L. Gamborg, R.A. Miller, K. Ojima // Exp. Cell Res. - 1968. - Vol. 50(1). - P. 151-158.

64. Ganeva, Y. Triterpenoids from Agastache foeniculum / Y. Ganeva, E. Tsankova, K. Parvanova [et al.] // Chimie. - 1994. - Vol. 47. - P. 49-51.

65. Gao, H. Reversion of hyperhydricity in pink (Dianthus chinensis L.) plantlets by AgNO3 and its associated mechanism during in vitro culture / H. Gao, X. Xia, L. An [et al.] // Plant Science. - 2017. - Vol. 254. - P. 1-11.

66. García-Díaz, J.A. Antidiabetic, antihyperlipidemic and anti-inflammatory effects of tilianin in streptozotocin-nicotinamide diabetic rats / J.A. García-Díaz, G. Navarrete-Vázquez, S. García-Jiménez // Biomed. Pharmacother. - 2016. - Vol. 83. -P. 667-675.

67. Georgiev, M. Rosmarinic acid production by Lavandula vera MM cell suspension: the effect of temperature / M. Georgiev, A. Pavlov, M. Ilieva // Biotechnol. Lett. - 2004. - Vol. 26. - P. 855-856.

68. Gong, H. Constituents of essential oil isolated from the dried flower and leaf of Agastache rugosa (Fisch. et Mey) from Xinjiang, in China / H. Gong, X. Zhou, M. Zhu [et al.] // J. Essent. Oil. Bear. Pl. - 2012. - Vol. 15(4). - P. 534-538.

69. Gong, H. Microscopic identification and in vitro activity of Agastache rugosa (Fisch. et Mey) / H. Gong, S. Li, L. He, R. Kasimu // BMC complementary and alternative medicine. - 2017. - Vol. 17(95). - P. 1-6.

70. Gong, H.Y. Phytochemical investigation and antimicrobial activity of Agastache rugosa growing in Xinjiang, China / H.Y. Gong, J.B. Ding, M. Zhu [et al.] // Asian J. Chem. - 2012. - Vol. 24(7). - P. 2961-2964.

71. Gonzalez-Ramirez, A. Antinociceptive and anti-inflammatory activities of the Agastache mexicana extracts by using several experimental models in rodents / A. Gonzalez-Ramirez, M.E. Gonzalez-Trujano, F. Pellicer [et al.] // J. Ethonopharmacol. -2012. - Vol. 142. - P. 700-705.

72. Gonzalez-Trujano, M.E. Depressant effects of Agastache mexicana methanol extract and one of major metabolites tilianin / M.E. Gonzalez-Trujano, H. Ponce-Munoz, S. Hidalgo-Figueroa [et al.] // As. Pacific J.Tropic. Med. - 2015. - P. 185-190.

73. Gonzalez-Trujano, M.E. Spasmolytic and antinociceptive activities of ursolic acid and acacetin identified in Agastache mexicana / M.E. Gonzalez-Trujano, R. Ventura-Martinez, M. Chavez [et al.] // Planta. Med. - 2012. - Vol. 78(08). - P. 793796.

74. Guo, K.J. Active components of common traditional Chinese medicine decoctions have antioxidant functions / K.J. Guo, S.F. Xu, P. Yin [et al.] // J. Anim. Sci. - 2011. - Vol. 89. - P. 3107-3115.

75. Haiyan G. Antimicrobial, antibiofilm and antitumor activities of essential oil of Agastache rugosa from Xinjiang, China / G. Haiyan, H. Lijuan, L. Shaoyu [et al.] // Saudi J. Biol. Sc. - 2016. - Vol. 23. - P. 524-530.

76. Han, D.S. Triterpenes from the root of Agastache rugosa / D.S. Han // Kor. J. Pharmacogn. - 1987. - Vol. 18. - P. 50-53.

77. Hashemi, M. Phytochemical, antibacterial, antifungal and antioxidant properties of Agastache foeniculum essential oil // M. Hashemi, A. Hasani, A. Afshari [et al.] // Journal of Chemical Health Risks. - 2017. - Vol. 7(2). - P. 95-104.

78. Hassannejad, S. SA improvement of hyperhydricity reversion in Thymus daenensis shoots culture may be associated with polyamines changes / S. Hassannejad, F. Bernard, F. Mirzajani [et al.] // Plant Physiol. Biochem. - 2012. - Vol. 51. - P. 4046.

79. Hassellöv, M. Analysis and Characterization of Manufactured Nanoparticles in Aquatic Environments / M. Hassellöv, R. Kaegi // In: Lead J.R., Smith E. (Eds.) Environmental and human health impacts of nanotechnology. - Chichester, West Sussex: Wiley, 2009. - P. 211-266.

80. Haytham, M.M.I. Green synthesis and characterization of silver nanoparticles using banana peel extract and their antimicrobial activity against representative microorganisms / M.M.I. Haytham // Journal of Radiation Research and

Applied Sciences. - 2015. - Vol. 8(3). - P. 265-275.

81. Hazarika, B.N. Morpho-physiological disorders in in vitro culture of plants // B.N. Hazarika // Scientia Horticulturae. - 2006. - Vol. 108(2). - P. 105-120.

82. Hernandez-Abreu, O. Antihypertensive and vasorelaxant effects of tilianin isolated from Agastache mexicana are mediated by NO/cGMP pathway and potassium channel opening / O. Hernandez-Abreu, P. Castillo-Espana, I. Leon-Rivera [et al.] // Biochem. Pharmacol. - 2009. - Vol. 78. - P. 54-61.

83. Hernandez-Abreu, O. Dose-dependent antihypertensive determination and toxicological studies of tilianin isolated from Agastache Mexicana / O. Hernandez-Abreu, M. Torres-Piedra, S. Garcia-Jimenez [et al.] // J. Ethnopharmacol. - 2013. - Vol. 146. - P. 187-191.

84. Hernandez-Abreu, O. Validated liquid chromatographic method and analysis of content of tilianin on several extracts obtained from Agastache mexicana and its correlation with vasorelaxant effect / O. Hernandez-Abreu, L. Duran-Gomez, R. Best-Brown [et al.] // J. Ethnopharmacol. - 2011. - Vol. 138. - P. 487-491.

85. Hong, J.J. Inhibition of cytokine-induced vascular cell adhesion molecule-1 expression; possible mechanism for anti-atherogenic effect of Agastache rugosa / J.J. Hong, J.H. Choi, S.R. Oh [et al.] // FEBS Lett. - 2001. - Vol. 495. - P. 142-147.

86. Hou, J.P. The healing power of Chinese herbs and medicinal recipes / J.P. Hou, Y. Jin. - Integrative Healing Press. Haworth Press Inc. Binghampton, NY, USA, 2005. - P. 812.

87. Hussain, M. Current approaches toward production of secondary plant metabolites / M. Hussain, S. Fareed, S. Ansari [et al.] // J. Pharm. Bioall. Sci. - 2012. -Vol. 4. - P. 10-20.

88. Ibarra-Alvarado, C. Vasoactive and antioxidant activities of plants used in Mexican traditional medicine for the treatment of cardiovascular diseases / C. Ibarra-Alvarado, A. Rojas, S. Mendoza [et al.] // Pharm. Biol. - 2010. - Vol. 48. - P. 732-739.

89. Ishitsuka, H. Antipicornavirus flavone Ro 09-0179 / H. Ishitsuka, C. Ohsawa, T. Ohiwa [et al.] // Antimicrob. Agents Chemotherapy. - 1982. - Vol. 22. - P. 611-616.

90. Ismail, A.M. Preliminary phytochemical screening, plant growth inhibition and antimicrobial activity studies of Faidherbia albida legume extracts / A.M. Ismail,

E.A. Mohamed, M.R. Marghany [et al.] // Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences. - 2016. - Vol. 15. - P. 112-117.

91. Ivanova, M. Effect of ammonium ions and cytokinins on hyperhydricity and multiplication rate of in vitro regenerated shoots of Aloe polyphylla / M. Ivanova, J. van Staden // Plant Cell Tiss. Org. Cult. - 2008. - Vol. 92(2). - P. 227-231.

92. Jamzad, Z. Leaf surface flavonoids in Iranian species of Nepeta (Lamiaceae) and some related genera / Z. Jamzad, R.J. Grayer, G.C. Kite [et al.] // Biochem. Syst. Ecol. - 2003. - Vol. 31. - P. 587-600.

93. Janicsak, G. Comparative studies of the rosmarinic and caffeic acid contents of Lamiaceae species / G. Janicsak, I. Mathe, V. Mikklosy-Vari [et al.] // Biochem. Syst. Ecol. - 1999. - Vol. 27. - P. 733-738.

94. Juarez, Z.N. Antifungal activity of essential oils extracted from Agastache mexicana ssp. xolocotziana and Porophyllum linaria against post-harvest pathogens / Z.N. Juarez, L.R. Hernández, H. Bach // Indust. Crop. Prod. - 2015. - Vol. 74. - P. 178182.

95. Kamatou, G.P. Menthol: a simple monoterpene with remarkable biological properties / G.P. Kamatou, I. Vermaak, A.M. Viljoen [et al.] // Phytochem. - 2013. -Vol. 96. - P. 15-25.

96. Kamtekar, S. Estimation of phenolic content, flavonoid content, antioxidant and alpha amylase inhibitory activity of marketed polyherbal formulation / S. Kamtekar,

F. Keer, V. Patil // Journal of Applied Pharmaceutical Science. - 2014. - Vol. 4(09). -P. 061-065.

97. Karalija, E. The effect of BA and IBA on the secondary metabolite production by shoot culture of Thymus vulgaris L. / E. Karalija, A. Paric // Biologica Nyssana. - 2011. - Vol. 2(1). - P. 29-35.

98. Kasthuri, J. Phyllanthinassisted biosynthesis of silver and gold nanoparticles: a novel biological approach / J. Kasthuri, K. Kanthiravan, N. Rajendiran // J. Nanopart. Res. - 2008. - Vol. 15. - P. 1075-1085.

99. Kayani, H.A. Micropropagation of Agastache anisata using nodal segments as explants and cytotoxic activity of its methanolic extracts / H.A. Kayani, S. Khan, S. Naz [et al.] // Pak. J. Bot. - 2013. - Vol. 45(6). - P. 2105-2109.

100. Kevers, C. Hyperhydricity of micropropagated shoots: a typically stress-induced change of physiological state / C. Kevers, T. Franck, R.J. Strasser [et al.] // Plant Cell, Tiss.Org. Cult. - 2004. - Vol. 77. - P. 181-191.

101. Khojasteh, A. New trends in biotechnological production of rosmarinic acid / A. Khojasteh, M.M. Mirjalili, D. Hidalgo [et al.] // Biotechnol. Lett. - 2014. -Vol. 36(12). - P. 2393-2406.

102. Kim, H.K. Benzothiadiazole enhances the elicitation of rosmarinic acid production in a suspension culture of Agastache rugosa O. Kuntze / H.K. Kim, S.R. Oh, H.K. Lee [et al.] // Biotechnol. Lett. - 2001. - Vol. 23. - P. 55-60.

103. Kim, H.K. HIV integrase inhibitory activity of Agastache rugosa / H.K. Kim, H.K. Lee, C.G. Shin [et al.] // Arch. Pharm. Res. - 1999. - Vol. 22(5). - P. 520523.

104. Kim, M.K. The effect of the oil of Agastache rugosa O. Kuntze and three of its components on human cancer cell lines / M.K. Kim, W.T. Chung, Y.K. Kim [et al.] // J. Essent. Oil. Res. - 2001. - Vol. 13(3). - P. 214-218.

105. Kim, S.I. Contact and fumigant activities of aromatic plant extracts and essential oils against Lasioderma serricorne (Coleoptera: Anobiidae) / S.I. Kim, C. Park, M.H. Oh et al. // Stored. Prod. Res. - 2003. - Vol. 39. - P. 11-19.

106. Kim, S.I. Contact and fumigant toxicity of oriental medicinal plant extracts against Dermanyssus gallinae (Acari: Dermanyssidae) / S.I. Kim, Y.E. Na, J.H. Yi [et al.] // Vet. Parasitol. - 2007. - Vol. 145. - P. 377-382.

107. Kim, T.H. Volatile flavor compounds in suspension culture of Agastache rugosa Kuntze (Korean mint) / T.H. Kim, H.S. Joong, H.B. Hyung [et al.] // J. Sci. Food. Agric. - 2001. - Vol. 81. - P. 569-575.

108. Kim, Y.B. Metabolomics analysis and biosynthesis of rosmarinic acid in Agastache rugosa Kuntze treated with methyl jasmonate / Y.B. Kim, J.K. Kim, M.R. Uddin [et al.] // PLoS ONE. - 2013. - Vol. 8(5). - P. e64199.

109. Lee Mei Ng, T. Amino Acid and Secondary Metabolite Production in Embryogenic and Non-Embryogenic Callus of Fingerroot Ginger (Boesenbergia rotunda) // T. Lee Mei Ng, R. Karim, Y.S. Tan [et al.] // PLoS ONE. - 2016. - Vol. 11(6). - P. 1-19.

110. Lee, C.H. Agastinol and agastenol, novel lignans from Agastache rugosa and their evaluation in an apoptosis inhibition assay / C.H. Lee, H.N. Kim, Y.E. Kho // J. Nat. Prod. - 2002. - Vol. 65. - P. 414-416.

111. Lee, H.K. Agastaquinone, a new cytotoxic diterpenoid quinone from Agastache rugosa / H.K. Lee, S.R. Oh, J.I. Kim [et al.] // J. Nat. Prod. - 1995. - Vol. 58. - P. 1718-1721.

112. Lee, H.K. Diterpenoids from the roots of Agastache rugosa and their cytotoxic activities / H.K. Lee, S.J. Byon, S.E. Oh [et al.] // Korean J. Pharmacogn. -1994. - Vol. 25. - P. 319-327.

113. Lee, H.W. Potent inhibitions of monoamine oxidase A and B by acacetin and its7-O-(6-O-malonylglucoside) derivative from Agastache rugosa / H.W. Lee, H.W. Ryu, S.C. Baek [et al.] // Int. J. Bio. Mac. - 2017. - Vol. 104. - P. 547-553.

114. Lee, J.J. Agastache rugosa Kuntze extract, containing the active component rosmarinic acid, prevents atherosclerosis through up-regulation of the cyclin-dependent kinase inhibitors p21WAF1/CIP1 and p27KIP1 / J.J. Lee, J.H. Lee, M.G. Gu [et al.] // J. Funct. Food. - 2017. - Vol. 30. - P. 30-38.

115. Lee, J.Y. Verification of biological activity of irradiated Sopoongsan, an oriental medicinal prescription, for industrial application of functional cosmetic material / J.Y. Lee, T.S. Park, J.H. Son [et al.] // Radiat. Phys. Chem. - 2007. - Vol. 76. - P. 1890-1894.

116. Lee, S.Y. Rosmarinic acid production in hairy root cultures of Agastache rugosa Kuntze / S.Y. Lee, H. Xu, Y.K. Kim [et al.] // World J. Microbiol. Biotechnol. -2008. - Vol. 24. - P. 969-972.

117. Lee, T.H. Demethyleugenol ß-Glucopyranoside isolated from Agastache rugosa decreases melanin synthesis via down-regulation of MITF and SOX9 / T.H. Lee, S. Park, G. Yoo [et al.] // J. Agricult. Food Chem. - 2016. - Vol. 64. - P. 7733-7742.

118. Li, H.Q. Chemical composition and nematicidal activity of essential oil of Agastache rugosa against Meloidogyne incognita / H.Q. Li, Q.Z. Liu, Z.L. Liu [et al.] // Molecules. - 2013. - Vol. 18. - P. 4170-4180.

119. Lim, S.S. Chemical composition of essential oils from flower and leaf of korean mint, Agastache rugosa / S.S. Lim, J. M. Jang, W.T. Park [et al.] // Asian J. Chem. - 2013. - Vol. 25. - P. 4361-4363.

120. Lint, H. A revision of Agastache / H. Lint, C. Epling // Am. Midl. Nat. -1945. - Vol. 33. - P. 207-230.

121. Liu, M. Effects of multiple factors on hyperhydricity of Allium sativum L. / M. Liu, F. Jiang, X. Kong [et al.] // Scientia Horticulturae. - 2017. - Vol. 217. - P. 285-296.

122. Louis, K.S. Cell viability analysis using trypan blue: manual and automated methods / K.S. Louis, A.C. Siegel // Methods in Molecular Biology. - 2011. - Vol. 740.

- P. 7-12.

123. Machado, M.P. Influence of calcium content of tissue on hyperhydricity and shoot-tip necrosis of in vitro regenerated shoots of Lavandula angustifolia Mill. / M.P. Machado, A.L.L. da Silva, L.A. Biasi [et al.] // Arch. Biol. Technol. - 2014. - Vol. 57. - P. 636-643.

124. Makarov, V.V. "Green" nanotechnologies: synthesis of metal nanoparticles using plants / V.V. Makarov, A.J. Love, O.V. Sinitsyna [et al.] // Acta Naturae. - 2014.

- Vol. 6(1). - P. 35-44.

125. Makarov, V.V. Biosynthesis of stable iron oxide nanoparticles in aqueous extracts of Hordeum vulgare and Rumex acetosa plants / V.V. Makarov, S.S. Makarova, A.J. Love [et al.] // Langmuir. - 2014. - Vol. 30(20). - P. 5982-5988.

126. Mallavarapu, G.R. The Essentials oil composition of anise hysop grown in India / G.R. Mallavarapu, R.N. Kulkarni, K. Baskaran [et al.] // Flavour. Fragr. J. -2004. - Vol. 19. - P. 351-353.

127. Maruyama, T. Molecular cloning, functional expression and characterization of d-Limonene synthase from Agastache rugosa / T. Maruyama, D. Saeki, M. Ito [et al.] // Biol. Pharm. Bull. - 2002. - Vol. 25(5). - P. 661-665.

128. Mathur, S. Establishment and characterization of Stevia rebaudiana (Bertoni) cell suspension culture: An in vitro approach for production of stevioside / S. Mathur, G.S. Shekhawat // Acta Physiol. Plant. - 2012. - Vol. 35. - P. 931-939.

129. Mazur, T.V. Cultivation of Agastache rugosa (Fisch. et Mey) Kuntze in vitro / T.V. Mazur, V.N. Reshetnikov // Bec^ Haцыянaльнaй aкaдэмii швук Бeлapyci. Cepbrn бiялaгiчныx швук (Vestsi Natsyyanal'naj Akademii Navuk Belarusi ser. Biyalagichnykh navuk). - 2005. - Vol. 3. - P. 5-9.

130. Mazza, G. Essential oil of Agasatche foeniculum, a potential source of methylchavicol / G. Mazza, F.A. Kiehn // J. Essent. Oil. Res. - 1992. - Vol. 4(3). - P. 295-299.

131. Menghini, A. Pigment content and methyl chavicol production in Agastache foeniculum Kuntze cultured in vitro / A. Menghini, M. Capuccella, R. Pagiotti [et al.] // J. Essent. Oil Res. - 1992. - Vol. 4(5). - P. 483-486.

132. Metcalf, R.L. Estragole analogues as attractants for corn rootworms (Coleoptera: Chrysomelidae) / R.L. Metcalf, R.L. Lampman // J. Econ. Entom. - 1989. - Vol. 82. - P. 123-129.

133. Mo, J. Volatile oil of Herba Agastache in various growth periods and different parts by GC-MS / J. Mo, L. Ma // Chin. J. Pharm. - 2011. - Vol. 4. - P. 225227.

134. Mo, J.X. Studies on characteristics of volatile oil and micro identification between Herba Pogostemonis and Herba Agastache rugosae / J.X. Mo, C. Jang, X.Y. Zhang // J. Chin. Med. Mater. - 2009. - Vol. 32(11). - P. 1675-1677.

135. Moghaddam, M. Effect of organic and inorganic fertilizers on morphological and physiological characteristics, essential oil content and constituents of Agastache (Agastache foeniculum) / M. Moghaddam, A. Estaji, N. Farhadi // J. Essential Oil Bear. Plant. - 2015. - Vol. 18(6). - P. 1372-1381.

136. Molina-Hernandez, M. Agastache mexicana may produce anxiogenic-like actions in the male rat / M. Molina-Hernandez, P. Tellez-Alcantara, E. Martinez // Phytomedicine. - 2000. - Vol. 7(3). - P. 199-203.

137. Mude, N. Synthesis of silver nanoparticles using callus extract of Carica

papaya: a first report / N. Mude, A. Ingle, A. Gade [et al.] // J. Plant Biochem. Biotechnol. - 2009. - Vol. 18. - P. 83-86.

138. Murashige, T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue cultures / T. Murashige, F. Skoog // Physiol. Plant. - 1962. - Vol. 15. -P. 473-497.

139. Myadelets, M.A. Composition of the Essential Oils of Some Species Belonging to Genus Agastache Clayton ex Gronov (Lamiaceae) Cultivated under the Conditions of the Middle Ural / M.A. Myadelets, T.A. Vorobyeva, D.V. Domrachev // Chemistry for Sustainable Development. - 2013. - Vol. 21. - P. 397-401.

140. Nam, K.W. Inhibition of cytokine-induced IkB kinase activation as a mechanism contributing to the antiatherogenic activity of tilianin in hyperlipidemic mice / K.W. Nam, J. Kim, J.J. Hong [et al.] // Atherosclerosis. - 2005. - Vol. 180. - P. 27-30.

141. Nikolic, M. Antimicrobial activity of three Lamiaceae essential oils against common oral pathogens / M. Nikolic, T. Markovic, D. Markovic // Balk. J. Dent. Med. - 2016. - Vol. 20. - P. 160-167.

142. Nosov, A.M. Application of cell technologies for production of plant-derived bioactive substances of plant origin / A.M. Nosov // Applied Biochemistry and Microbiology. - 2012. - Vol. 48(7). - P. 609-624.

143. Nourozi, E. A reliable and efficient protocol for induction of hairy roots in Agastache foeniculum / E. Nourozi, B. Hosseini, A. Hassani // Biologia. - 2014. - Vol. 69(7). - P. 870-879.

144. Obianime, A.W. The phytochemical screening and effects of methanolic extract of Phyllanthus amarus leaf on the biochemical parameters of male guinea pigs / A.W. Obianime, F.I. Uche // J. Appl. Sci. Environ. Manage. - 2008. - Vol. 12(4). - P. 73-77.

145. Oh, H.M. Protein kinase G dependent heme oxygenase-1 induction by Agastache rugosa leaf extract protects RAW264.7 cells from hydrogen peroxide induced injury / H.M. Oh, Y.J. Kang, Y.S. Lee et al. // J. Ethnopharmacol. - 2006. -Vol. 103. - P. 229-235.

146. Oh, Y. Attenuating properties of Agastache rugosa leaf extract against ultraviolet-B-induced photoaging via up-regulating glutathione and superoxide dismutase in a human keratinocyte cell line / Y. Oh, H.W. Lim, Y.H. Huang // J. Photochem. Photobiolog. - 2016. - Vol. 163. - P. 170-176.

147. Omidbaigi, R. Effect of irrigation regimes on the essential oil content and composition of Agastache foeniculum / R. Omidbaigi, M. Mahmoody // J. Essent. Oil. Bear. Pl. - 2010. - Vol. 13(1). - P. 59-65.

148. Omidbaigi, R. Effect of sowing time on the essential oil content and composition of Agastache foeniculum / R. Omidbaigi, F. Sefidkon // J. Essent. Oil. Bear. Pl. - 2004. - Vol. 7(2). - P. 190-194.

149. Omidbaigi, R. Essential oil composition of Agastache foeniculum cultivated in Iran / R. Omidbaigi, F. Sefidkon // J. Essent. Oil. Res. - 2003. - Vol. 15(1). - P. 52-53.

150. Omidbaigi, R. Nitrogen fertilizer affecting herb yield, essential oil content and composition of Agastache foeniculum Purch. / R. Omidbaigi, M. Kabudani, M. Khoorang // J. Essent. Oil. Bear. Pl. - 2008. - Vol. 11(3). - P. 261-266.

151. Ownagh, A. Antifungal effects of Thyme, Agastache and Satureja essential oils on Aspergillus fumigates, Aspergillus flavus, and Fusarium solani / A. Ownagh, A. Hasani, K. Mardani [et al.] // Vet. Res. Forum. - 2010. - Vol. 1(2). - P. 99-105.

152. Park, C.H. Influence of Indole-3-Acetic Acid and Gibberellic Acid on Phenylpropanoid Accumulation in Common Buckwheat (Fagopyrum esculentum Moench) Sprouts / C.H. Park, H.J. Yeo, Y.J. Park [et al.] // Molecules. - 2018. - Vol. 22(3). - P. 374-384.

153. Park, M.J. Anti-Adipogenic Effects of Ethanol Extracts Prepared from Selected Medicinal Herbs in 3T3-L1 Cells / M.J. Park, J.H. Song, M.S. Shon [et al.] // Prev. Nutr. Food Sci. - 2016. - Vol. 21(3). - P. 227-235.

154. Park, S. A new flavone glycoside from the leaves of Agastache rugosa (Fisch. & C.A.Mey.) Kuntze / S. Park, N. Kim, G. Yoo [et al.] // Biochem. Syst. Ecol. -2016. - Vol. 67. - P. 17-21.

155. Park, S.U. Biotechnological applications for rosmarinic acid production in

plant / S.U. Park, M.D. Uddin, H. Xu et al. // Afr. J. Biotechnol. - 2008. - Vol. 7(25). -P. 4959-4965.

156. Park, W.T. Yeast extract and silver nitrate induce the expression of phenylpropanoid biosynthetic genes and Induce the accumulation of rosmarinic acid in Agastache rugosa cell culture / W.T. Park, M.V. Arasu, N.A. Al-Dhabi [et al.] // Molecules. - 2016. - Vol. 21(4). - P. 426.

157. Pçkal, A. Evaluation of aluminium complexation reaction for flavonoid content assay / A. Pçkal, K. Pyrzynska // Food Anal. Methods. - 2014. - Vol. 7(9). - P. 1776-1782.

158. Peralta-Videa, J. R. Plant-based green synthesis of metallic nanoparticles: scientific curiosity or a realistic alternative to chemical synthesis? / J. R. Peralta-Videa, Y. Huang, J. G. Parson [et al.] // Nanotechnol. Environ. Eng. - 2016. - Vol. 1(4). - P. 129.

159. Polak, E.H. The volatile oil from Lophantus anisatus Benth. / E.H. Polak, R.M. Hixon // Am. Pharm. Assoc. - 1945. - Vol. 35. - P. 240-243.

160. Poter, N.G. Composition and yield of commercial essential oils from parsley. 1: Herb oil and crop development / N.G. Poter // Flavour and Fragrance Journal. - 1989. - Vol. 4. - P. 207-219.

161. Qui, J.A. Differential effects of phytotoxic metabolites from Alternaria tagetica on Tagetes erecta cell cultures / J.A. Qui, L.A. Castro-Concha, K. Garcia-Sosa [et al.] // J. Gen. Plant. Pathol. - 2009. - Vol. 75. - P. 331-339.

162. Rajesh, S. Biosynthesis of silver nanoparticles using Ulva fasciata (Delile) ethyl acetate extract and its activity against Xanthomonas campestris pv. malvacearum / S. Rajesh, D. Raja, J. Rathi [et al.] // J. Biopest. - 2012. - Vol. 5. - P. 119-128.

163. Ramachandra Rao, S. Plant cell cultures: Chemical factories of secondary metabolites / R. Ramachandra Rao, G.A. Ravishankar // Biotechnology Advances. -2002. - Vol. 4. - P. 3-102.

164. Ramos-Hryb, A.B. Therapeutic potential of ursolic acid to manage neurodegenerative and psychiatric diseases / A.B. Ramos-Hryb, F.L. Pazini, M.P. Kaster [et al.] // CNS Drugs. - 2017. - Vol. 31. - P. 1-13.

165. Rashrash, M. Prevalence and predictors of herbal medicine use among adults in the United States / M. Rashrash, J.C. Schommer, L.M. Brown // J. Patient Exper. - 2017. - Vol. 4(3). - P. 108-113.

166. Rudik, G.O. Ontomorphogeny of Agastache rugosa (Fisch. et C.A. Mey.) O. Kuntze ex situ / G.O. Rudik // Mod. Phytomorphol. - 2013. - Vol. 4. - P. 257-260.

167. Ruthiran, P. Phytochemical screening and in vitro antioxidant activity of Parkia timoriana (DC.) Merr. / P. Ruthiran, C.I. Selvaraj // Res. J. Biotech. - 2017. -Vol. 12(12). - P. 47-54.

168. Sadeghi, B. A study on the stability and green synthesis of silver nanoparticles using Ziziphora tenuior (Zt) extract at room temperature / B. Sadeghi, F. Gholamhoseinpoor // Spectrochim. Acta A. - 2014. - Vol. 134. - P. 310-315.

169. Saez, P. Increased light intensity during in vitro culture improves water loss control and photosynthetic performance of Castanea sativa grown in ventilated vessels / P. Saez, L. Bravo, M. Latsague [et al.] // Scientia Horticulturae. - 2012. - Vol. 138. - P. 7-16.

170. Saito, K. Transgenic medicinal plants: Agrobacterium-mediated foreign gene transfer and production of secondary metabolites / K. Saito, M. Yamazaki, I. Murakoshi // Journal of Natural Products. - 1992. - Vol. 55(2). - P. 149-162.

171. Sanders, R.W. Taxonomy of Agastache section Brittonastrum (Lamiaceae-Nepeteae) / R.W. Sanders // Systematic Botany Monograph. - 1987. - Vol. 15. - P. 192.

172. Sandoval, I.V. Poliovirus infection and expression of the poliovirus protein 2B provoke the disassembly of the Golgi complex, the organelle target for the antipoliovirus drug Ro-090179 / I.V. Sandoval, L. Carrasco // J. Virol. - 1997. - Vol. 71. - P. 4679-4693.

173. Satishkumar, M. Cinnamon zeylanicum bark extract and powder mediated green synthesis of nano-crystalline silver particles and its bactericidal activity / M. Satishkumar, K. Sneha, S. Won [et al.] // Colloids Surf. B. - 2009. - Vol. 73. - P. 332338.

174. Sen, A. Antioxidant enzyme activities, malondialdehyde, and total phenolic

content of PEG-induced hyperhydric leaves in sugar beet tissue culture / A. Sen, S. Alikamanoglu // In Vitro Cell. Dev. Biol. - Plant. - 2013. - Vol. 49(4). - P. 396-404.

175. Shah, M. Green synthesis of metallic nanoparticles via biological entities / M. Shah, D. Fawcett, S. Sharma [et al.] // Material. - 2015. - Vol. 8. - P. 7278-7308.

176. Shakya, A.K. Medicinal plants: Future source of new drugs / A.K. Shakya // International Journal of Herbal Medicine. - 2016. - Vol. 4(4). - P. 59-64.

177. Sheen, L.Y. Flour characteristic compounds found in the essential oil of Ocimum basilicum L. with sensory evaluation and statistical analysis / L.Y. Sheen, Y.H. Tsai, S.D. Shai // J. Agric. & Food Chem. - 1991. - Vol. 39. - P. 939-943.

178. Shin, S. Antifungal activity of the essential oil of Agastache rugosa Kuntze and its synergism with ketoconazole / S. Shin, C.A. Kang // Lett. Appl. Microbiol. -2003. - Vol. 36. - P. 111-115.

179. Shin, S. Essential oil compounds from Agastache rugosa as antifungal agent against Trichophyton species / S. Shin // Arch. Pharm. Res. - 2004. - Vol. 27. - P. 295-299.

180. Shin, S. Production of volatile oil components by cell culture of Agastache rugosa O. Kuntze / S. Shin, Y.S. Kim, C.A. Kang // Nat. Prod. Sci. - 2001. - Vol. 7. -P. 120-123.

181. Singleton, V.L. Colorunetry of Total Phenolics with Phosphomolybdic-Phosphotungstic Acid Reagents / V.L. Singleton, J.A. Rossi // Am. J. Enol. Viticult. -1965. - Vol. 16. - P. 144-158.

182. Skakovskii, E.D. Characterisation of the essential oil of Agastache rugosa by NMR spectroscopy / E.D. Skakovskii, W.P. Kiselev, L.Y. Tychinskaya [et al.] // J. Appl. Spectrosc. - 2010. - Vol. 77(3). - P. 329-334.

183. Sourestani, M.M. Influence of drying, storage and distillation times on essential oil yield and composition of anise hyssop [Agastache foeniculum (Pursh.) Kuntze] / M.M. Sourestani, M. Malekzadeh, A. Tava // J. Ess. Oil. Res. - 2014. - Vol. 26(3). - P. 177-184.

184. Stanojevic, L. Antioxidant activity and total phenolic and flavonoid contents of Hieracium pilosella L. extracts / L. Stanojevic, M. Stankovic, V. Nikolic [et

al.] // Sensors. - 2009. - Vol. 9. - P. 5702-5714.

185. Suchorska-Tropilo, K. Morphological, developmental and chemical analysis of the chosen Agastache species / K. Suchorska-Tropilo, E. Pioro-Jabrucka // Ann. Warsaw. Univ. Life. Sci. SGGW Horticult. Landsc. Architect. - 2004. - Vol. 25. -P. 25-31.

186. Suvitayavat, W. Effects of Ya-hom on the gastric secretion in rats / W. Suvitayavat, J. Kodchawongs, S.S. Thirawarapan [et al.] // J .Ethnopharmacol. - 2004. -Vol. 94. - P. 331-338.

187. Svoboda, K.P. Analysis of the essential oils of some Agastache species grown in Scotland from various seed sources / K.P. Svoboda, J. Gough, J. Hampson // Flavour. Fragr. J. - 1995. - Vol. 10. - P. 139-145.

188. Swamy, M.K. Anticancer potential of rosmarinic acid and its improved production through biotechnological interventions and functional genomics / M.K. Swamy, U.R. Sinniah, A. Ghasemzaden // Applied Microbiology and Biotechnology. -2018. - Vol. 7. - P. 1-19.

189. Tabart, J. Effect of polyamines and polyamine precursors on hyperhydricity in micropropagated apple shoots / J. Tabart, K. Franck, C. Kevers [et al.] // Plant Cell Tiss. Organ. Cult. - 2015. - Vol. 120(1). - P. 11-18.

190. Tian, J. Induction of reactive oxygen species and the potential role of NADPH oxidase in hyperhydricity of garlic plantlets in vitro / J. Tian, Y. Chen, X. Kong // Protoplasma. - 2017. - Vol. 254(1). - P. 379-388.

191. Tian, J. The apoplastic oxidative burst as a key factor of hyperhydricity in garlic plantlet in vitro / J. Tian, F. Jiang, Z. Wu // Plant Cell Tiss. Organ. Cult. - 2015. -Vol. 120(2). - P. 571-584.

192. Tirillini, B.B. Constituents of the leaf secretory hairs of Agastache foeniculum Kuntze / B.B. Tirillini, A.A. Menghlni, R.R. Pellegrino // J. Essent. Oil. Res. - 1997. - Vol. 9(1). - P. 19-21.

193. Tsay, H. Influence of ventilation closure, gelling agent and explant type on shoot bud proliferation and hyperhydricity in Scrophularia yoshimurae - a medicinal plant / H. Tsay, C. Lee, D. Agrawal [et al.] // In Vitro Cell. Dev. Biol. - Plant. - 2006. -

Vol. 45. - P. 449-554.

194. Tuan, P.A. Accumulation of tilianin and rosmarinic acid and expression of phenylpropanoid biosynthetic genes in Agastache rugosa / P.A. Tuan, W.T. Park, H. Xu [et al.] // J. Agric. Food Chem. - 2012. - Vol. 60. - P. 5945-5951.

195. Tutcer, A.O. Native American herbs of flavor and fragrance / A.O. Tutcer // Herbarist. - 1994. - Vol. 60. - P. 57-63.

196. Vanisree, M. Plant cell cultures - an alternative and efficient source for the production of biologically important secondary metabolites / M. Vanisree, H.S. Tsay // International J. Appl. Sci. Engin. - 2004. - Vol. 2. - P. 29-48.

197. Vasudevan, R. Cytokinin and explant types influence in vitro plant regeneration of Leopard Orchid (Ansellia africana Lindl.) / R. Vasudevan, J. van Staden // Plant Cell Tiss. Organ. Cult. - 2011. - Vol. 107(1). - P. 123-129.

198. Ventura-Martinez, R. Spasmogenic and spasmolytic activities of Agastache mexicana ssp. mexicana and A. mexicana ssp. xolocotziana methanolic extracts on the guinea pig ileum / R. Ventura-Martinez, R. Rodriguez, M.E. Gonzalez-Trujano // J. Ethnopharmacolog. - 2017. - Vol. 196. - P. 58-65.

199. Verano, J. Ursolic acid from Agastache mexicana aerial parts produces antinociceptive activity involving TRPV1 receptors, cGMP and a serotonergic synergism / J. Verano, M.E. Gonzales-Trujano, M. Deciga-Campos [et al.] // Pharmacol. Biochem. - 2013. - Vol. 110. - P. 255-264.

200. Verpoorte, M. Engineering secondary metabolite production in plants / M. Verpoorte, J. Memelink // Cur. Op. Biotech. - 2002. - Vol. 12(2). - P. 181-187.

201. Vinoth, A. Reduced hyperhydricity in watermelon shoot cultures using silver ions / A. Vinoth, R. Ravindhran // In Vitro Cell. Dev. Biol. - Plant. - 2015. - Vol. 51(3). - P. 258-264.

202. Vogelmann, J.E. Electrophoretic enzyme analysis of North American and eastern Asia population of Agastache sect. Agastache (Labiatae) / J.E. Vogelmann, G.J. Gastony // Amer. J. Bot. - 1987. - Vol. 74. - P. 445-452.

203. Waller, S.B. Plants from Lamiaceae family as source of antifungal molecules in humane and veterinary medicine / S.B. Waller, M.B. Cleff, E.F. Serra [et

al.] // Microb. Path. - 2017. - Vol. 104. - P. 232-237.

204. Wang, J.G. GC-MS Analysis of chemical composition of volatile oil from Agastache rugosa / J.G. Wang // Food Sci. - 2010. - Vol. 8. - P. 223-225.

205. Wang, K.C. 4-Methoxycinnamaldehyde inhibited human respiratory syncytial virus in a human larynx carcinoma cell line / K.C. Wang, J.S. Changb, L.C. Chiangd [et al.] // Phytomedicine. - 2009. - Vol. 16. - P. 882-886.

206. Wang, K.H. Cosmetic applications of selected traditional Chinese herbal medicines / K.H. Wang, R.D. Lin, F.L. Hsu [et al.] // J. Ethnopharmacol. - 2006. - Vol. 106. - P. 353-359.

207. Weyerstahl, P. Volatile constituents of Agastache rugosa / P. Weyerstahl, H. Marschall, E. Manteuffel [et al.] // J. Essent. Oil. Res. - 1992. - Vol. 4(6). - P. 585587.

208. Wiegand, I. Agar and broth dilution methods to determine the minimal inhibitory concentration (MIC) of antimicrobial substances / I. Wiegand, K. Hilpert, R.E.W. Hancock // Nature Protocols. - 2008. - Vol. 3(2). - P. 163-175.

209. William, P.J. The Role of Pharmacognosy in Modern Medicine and Pharmacy / P.J. William, Y.W. Chin, A.D. Kinghorn // Current Drug Targets. - 2006. -Vol. 7. - P. 247-264.

210. Wilson, L.A. Headspace analysis of the volatile oils of Agastache / L.A. Wilson, N.P. Senechal, M.P. Widrlechner // J. Agric. Food. Chem. - 1992. - Vol. 40(8). - P. 1362-1366.

211. Wu, C. Effects of QWBZP on T-cell subsets and their cytokines in intestinal mucosa of HRV infection suckling mice / C. Wu, X. Jiang, S. He [et al.] // J. Ethnopharmacol. - 2010. - Vol. 131. - P. 130-134.

212. Xu, H. Rosmarinic acid biosynthesis in callus and cell cultures of Agastache rugosa Kuntze / H. Xu, Y.K. Kim, X. Jin [et al.] // J. Med. Plants Res. -2008. - Vol. 2(9). - P. 237-241.

213. Xu, Q. Allelopathy effect of aqueous extracts from different parts of Agastache rugosa on its seed germination and seedling growth / Q. Xu, K.C. Wang, Y.F. Liang [et al.] // Journal of Nanjing Agricultural University. - 2017. - Vol. 40(4). -

P. 611-617.

214. Zacchino, S.A. Plant phenolics and terpenoids as adjuvants of antibacterial and antifungal drugs / S.A. Zacchino, E. Butassi, M.D. Liberto [et al.] // Phytomedicine

- 2017. - Vol. 37. - P. 27-48.

215. Zakharov, A.M. Essential and fatty oil of Agastache rugosa / A.M. Zakharov, V.S. Dolya, O.I. Zakharova [et al.] // Chem. Nat. Comp. - 1988. - Vol. 24. -P. 448-450.

216. Zakharova, O.I. Flavonoids of Agastache rugosa / O.I. Zakharova, A.M. Zakharov, V.I. Glyzin // Chem. Nat. Comp. - 1980. - Vol. 15. - P. 561-564.

217. Zhishen, J. The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effect on superoxide radicals / J. Zhishen, T. Mengcheng, W. Jiamming // Food Chem. - 1999. - Vol. 64. - P. 555-559.

218. Zhou, Y. Flavonoids and phenylethanoids from hairy root cultures of Scutellaria baicalensis / Y. Zhou, M. Hirotani, Y. Yoshikawa [et al.] // Phytochemistry.

- 1997. - Vol. 44(1). - P. 83-87.

219. Zielinska, S. Influence of plant growth regulators on volatiles produced by in vitro grown shoots of Agastache rugosa (Fisher & C.A.Meyer) O.Kuntze / S. Zielinska, E. Piatczak, D. Kalemba [et al.] // Plant Cell Tissue Organ Cult. - 2011. -Vol. 107. - P. 161-167.

220. Zielinska, S. Ontogenetic and trans-generational variation of essential oil composition in Agastache rugosa / S. Zielinska, M. D^browska, W. Kozlowska [et al] // Industrial Crops and Products. - 2017. - Vol. 97. - P. 612-619.

221. Zielinska, S. Phytochemistry and bioactivity of aromatic and medicinal plants from the genus Agastache (Lamiaceae) / S. Zielinska, A. Matkowski // Phytochem. Rev. - 2014. - Vol. 13. - P. 391-416.

222. Zou, Z.M. Studies on the chemical constituents from roots of Agastache rugosa / Z. Zou, P.Z. Cong // Acta. Pharmacol. Sin. - 1991. - Vol. 26(12). - P. 906910.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.