Комплексное моделирование процесса измерения биохимического потребления кислорода в жидких инкубационных средах тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.04, кандидат биологических наук Миняев, Михаил Владимирович

• Миняев, Михаил Владимирович
• кандидат биологических наук
• 2007

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Миняев, Михаил Владимирович

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. Современные представления о методах изучения биохимического потребления кислорода.

1.1. Классификация методов измерения концентрации растворенного кислорода.

1.1.1. Физические методы.

1.1.2. Химические методы.

1.1.3. Оптические методы.

1.1.4. Электрохимические методы.

1.1.5. Прочие методы.

1.2. Полярографический метод измерения концентрации растворенного кислорода.

1.2.1. Принцип полярографического метода.

1.2.2. Полярографическое обнаружение кислорода и измерение его концентрации.

1.2.3. Закрытые полярографические кислородные датчики.

1.3. Факторы, влияющие на точность динамического измерения биохимического потребления кислорода.

1.3.1. Автопотребление.

1.3.2. Осмотические явления на мембранах закрытых кислородных датчиков.

1.3.3. Диффузия атмосферного кислорода в среду инкубации.

1.3.4. Собственная емкость закрытых кислородных датчиков.

ГЛАВА 2. Материалы и методы исследования.

2.1. Объекты исследования.

2.1.1. Кислородный датчик.

2.1.2. Измерительная ячейка.

2.1.3. Вспомогательное оборудование.

2.1.4. Модельная система.

2.2. Методы исследования.

2.2.1. Подготовка измерительной системы.

2.2.2. Запись кривых поглощения.

2.2.3. Контроль поглощения кислорода объемным методом.

2.2.4. Запись кривых насыщения.

2.2.5. Измерение собственной кислородной емкости системы.

2.2.6. Статистическая обработка результатов.

ГЛАВА 3. Выявление факторов, оказывающих искажающее воздействие на результаты измерения биохимического потребления кислорода биологическими объектами.

3.1. Анализ ошибок, допускаемых при изучении потребления кислорода биологическими объектами.

3.2. Основные подходы к моделированию процессов, происходящих в измерительной системе во время изучения потребления кислорода биологическими объектами.

3.2.1. Моделирование аэробного биологического объекта.

3.2.2. Моделирование инкубационной среды.

3.2.3. Моделирование закрытого кислородного датчика.

ГЛАВА 4. Влияние диффузии атмосферного кислорода в инкубационную среду на результаты измерения потребления кислорода.

4.1. Изучение динамики диффузии кислорода из атмосферы в среду инкубации.

4.2. Калибровка измерительной системы на поступление кислорода из атмосферы в среду инкубации.

4.3. Корректировка результатов измерения.

ГЛАВА 5. Собственная кислородная емкость измерительной системы и ее влияние на результаты измерения потребления кислорода.

5.1. Вычисление собственной кислородной емкости измерительной системы по косвенным данным.

5.2. Экспериментальное определение собственной кислородной емкости измерительной системы.

5.2.1. «Быстрая» кислородная емкость.

5.2.2. «Медленная» кислородная емкость.

5.3. Корректировка результатов измерения потребления кислорода на влияние собственной кислородной емкости измерительной системы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Комплексное моделирование процесса измерения биохимического потребления кислорода в жидких инкубационных средах»

Актуальность исследования. Молекулярный кислород является без преувеличения важнейшим метаболитом аэробного обмена, имеющим ключевое значение в энергообеспечении организма. Поэтому уровень и характер биохимического потребления кислорода обычно рассматривается как основной показатель метаболической активности тканей, клеток и субклеточных структур. Современные биохимические измерительные приборы, предназначенные для регистрации данного показателя, обладают вполне приемлемыми техническими характеристиками. Тем не менее реальные результаты измерения биохимического потребления кислорода, согласно литературным данным, отличаются неоправданно низкой воспроизводимостью: ошибка среднего, которая в биохимических исследованиях используется для характеристики разброса показаний, при измерении метаболического потребления кислорода обычно составляет порядка 12% от измеряемой величины [26, 45, 61 и др.], а довольно часто [138, 168, 185 и др.] достигает 30 и более процентов. В результате корректной оказывается только сравнительная интерпретация полученных данных.

Подобное несоответствие между характеристиками оборудования и точностью полученных с его помощью результатов объясняется тем, что изменение концентрации кислорода в инкубационной среде, фиксируемое прибором, зависит не только от биохимического потребления кислорода изучаемым объектом, но и от диффузионных потоков кислорода между средой инкубации и ее окружением [65, 67, 68, 69, 72 и др.], которые по величине сравнимы, а зачастую и превышают биохимическое потребление. Поэтому задача по выявлению и изучению факторов, определяющих величину и направление этих потоков, является актуальной, так как ее решение позволило бы существенно повысить точность биохимических исследований, связанных с изучением аэробного метаболизма и, как следствие, осуществить строгий количественный подход к изучению его важнейших биохимических механизмов.

Решение данной задачи с использованием аэробных биологических объектов оказалось крайне затруднительным по ряду причин, основной из которых явилась невозможность определения действительного количества потребленного ими кислорода и, следовательно, расчета наиболее важной количественной характеристики метода - относительной погрешности. Поэтому возникла необходимость моделирования биохимического процесса потребления кислорода с привлечением устойчивой, простой, доступной и воспроизводимой химической модели, так как действительное количество кислорода, поглощенное моделью, в отличие от биологического объекта, может быть легко проконтролировано. Использование подобной модели позволяет определять важнейшие динамические характеристики существующего оборудования, а также значительно облегчает разработку новой специальной биохимической аппаратуры, предназначенной для изучения аэробного метаболизма, что также является весьма актуальным.

Целью исследования явилось выявление и изучение факторов, искажающих результаты измерения биохимического потребления кислорода биологическими объектами в малых объемах жидких инкубационных сред, и разработка специальной биохимической аппаратуры и методических подходов, позволяющих устранить или учесть влияние данных факторов для существенного повышения точности такого рода измерений.

В задачи исследования входило:

1) разработать эталонную химическую модель, имитирующую биохимическое потребление кислорода в жидких инкубационных средах, позволяющую точно контролировать действительное количество поглощенного кислорода;

2) путем химического моделирования метаболического потребления кислорода выявить факторы, оказывающие наибольшее искажающее влияние на результаты измерения потребления кислорода в малых объемах жидких инкубационных сред;

3) разработать конструкцию измерительной системы на базе амперометри-ческого кислородного датчика, обладающую низкой собственной кислородной емкостью и позволяющую легко изменять и точно контролировать площадь поверхности раздела фаз воздух-среда инкубации.

4) изучить динамику пассивной диффузии кислорода из атмосферы в инкубационную среду открытой измерительной ячейки при различной площади поверхности раздела фаз воздух-среда;

5) разработать метод учета количества кислорода, поступившего в среду инкубации из атмосферы за время проведения замера биохимического потребления кислорода, и вычисления соответствующей поправки к результату измерения;

6) изучить динамику обмена кислородом между средой инкубации и собственной кислородной емкости измерительной системы в ходе замера потребления кислорода моделью биологического объекта;

7) разработать метод определения собственной кислородной емкости измерительной системы и ее количественного вклада в погрешность измерения для вычисления соответствующей поправки к результату измерения биохимического потребления кислорода.

Научная новизна полученных данных. Впервые проведено исследование, в котором, путем моделирования биохимического потребления кислорода аэробным биологическим объектом, было изучено влияние атмосферного кислорода и собственной кислородной емкости измерительной системы на результаты измерения потребления кислорода, полученные с помощью закрытого амперометрического кислородного датчика. На основании полученных данных разработана специальная биохимическая аппаратура и комплексный методический подход, позволяющие кардинально повысить точность подобных измерений и в значительной мере устранить искажения характера регистрационных кривых биохимического потребления кислорода в жидких инкубационных средах.

Основные положения, выносимые на защиту. Неучтенный кислород, поступающий в среду инкубации из атмосферы, способствует существенному занижению результатов измерения биохимического потребления кислорода в открытых измерительных системах. Предлагаемый в данной работе метод позволяет учесть поступивший из атмосферы кислород и, таким образом, снизить погрешность измерения до уровня, характерного для закрытых измерительных систем.

Существующие приборы, предназначенные для измерения концентрации растворенного кислорода, обладают собственной кислородной емкостью. Диффузионный обмен кислородом между средой инкубации и кислородной емкостью измерительной системы ведет к заметному искажению результатов измерения биохимического потребления кислорода. Предлагаемый в данной работе метод предоставляет возможность определения как самой кислородной емкости, так и ее количественного вклада в величину погрешности результата измерения потребления кислорода, что позволяет существенно повысить точность такого рода измерений.

Конструкции выпускаемых промышленностью электрохимических измерительных приборов, предназначенных для регистрации метаболического потребления кислорода, не позволяют в достаточной мере учесть влияние атмосферного кислорода и собственной кислородной емкости измерительной системы на результаты измерения, чем обусловлена неоправданно высокая погрешность при их использовании в биохимических исследованиях. Предлагаемая в данной работе измерительная система дает возможность снизить погрешность динамического измерения биохимического потребления кислорода до уровня погрешностей используемого оборудования.

Теоретическая и практическая значимость работы. Полученные данные вносят определенный вклад в экспериментальную биохимию аэробного метаболизма, позволяя с иной точки зрения взглянуть на интерпретацию результатов измерения биохимического потребления кислорода, что дает возможность отдифференцировать биохимические и физико-химические причины регистрируемых изменений измеряемой величины при изучении потребления кислорода биологическими объектами. Большинство из выявленных в работе закономерностей являются универсальными, то есть в той или иной мере присущими любым измерительным системам, предназначенным для изучения биохимического потребления кислорода, вне зависимости от принципа их действия. Поэтому предлагаемый комплекс методических подходов может быть использован с любым биохимическим оборудованием подобного назначения, как существующим, так и перспективным.

Предложенный в работе подход к корректировке результатов измерения позволяет существенно повысить точность методов измерения биохимического потребления кислорода, что дает возможность обратиться к изучению тонких биохимических механизмов аэробного метаболизма, а также к исследованию биологических объектов, характеризующихся низким потреблением кислорода. Результаты исследования позволяют систематизировать подходы к выбору существующих и конструированию новых электрохимических датчиков и ячеек, предназначенных для биохимических и биоэнергетических исследований.

Разработанное оборудование, методы и полученные результаты используются в исследовательской работе и в учебном процессе на кафедре биомедицины Тверского государственного университета: в курсе лекций, большом практикуме, а также при подготовке курсовых и дипломных работ студентов.

Заключение диссертации по теме «Биохимия», Миняев, Михаил Владимирович

ВЫВОДЫ

1. Разработана воспроизводимая (Су~1%) химическая модель, имитирующая биохимическое потребление кислорода аэробным биологическим объектом, с использованием сульфита натрия в качестве поглотителя, пригодная для динамической калибровки измерительных систем и определения их основных технических характеристик.

2. Факторами, в наибольшей степени искажающими результаты измерения биохимического потребления кислорода при использовании открытых измерительных систем, являются диффузионные обменные потоки кислорода между средой инкубации и атмосферой, а также между средой инкубации и собственной кислородной емкостью измерительной системы.

3. Разработана измерительная система, предназначенная для изучения биохимического потребления кислорода в жидких инкубационных средах, обладающая низкой и стабильной собственной кислородной емкостью (£г=0,46-10'7 моля, £¿-2,7-10"7 моля), предоставляющая возможность оперативного изменения площади поверхности раздела фаз воздух-среда инкубации от 183 до 16 мм .

4. Динамика пассивной диффузии кислорода из атмосферы в инкубационную среду незначительно отклоняется от закона диффузии для неоднородных сред под влиянием собственной кислородной емкости измерительной системы и за счет испарение воды с поверхности раздела фаз.

5. Учет количества кислорода, поступившего из атмосферы в среду инкубации во время замера, позволяет снизить относительную погрешность измерения биохимического потребления кислорода с -24,11 до -8,24% для открытой измерительной ячейки.

6. Собственная кислородная емкость измерительной системы, построенной на базе закрытого амперометрического кислородного датчика, включает не менее двух компонентов («быструю» и «медленную» емкость), характеризующихся различными скоростями обмена кислородом со средой.

7. Учет количества кислорода, перешедшего из «быстрой» кислородной емкости измерительной системы в среду инкубации во время замера, позволяет снизить относительную погрешность измерения биохимического потребления кислорода с -10,90 до 0,19% для закрытой измерительной ячейки.

8. Использование комплекса методических подходов, учитывающих обмен кислородом между средой инкубации и ее окружением, и оригинальных измерительных средств позволяет снизить относительную погрешность измерения потребления кислорода с -38,63 до 0,19%, а коэффициент вариации измеренных значений - с 8,91 до 2,02%.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Моделирование процессов, протекающих в электрохимической измерительной системе при изучении потребления кислорода биологическими объектами, позволило выявить ряд факторов, способствующих заметному снижению точности измерения. Наиболее существенными из них оказались сопутствующие измерению процессы обмена кислородом с атмосферным воздухом и собственной кислородной емкостью измерительной системы. Суммарная погрешность, обусловленная их влиянием, вполне может превышать 38% от измеряемой величины, что фактически исключает количественный подход к изучению окислительного метаболизма.

Разработанные модельные системы, методические подходы и средства измерения позволили определить основные количественные характеристики данных факторов и закономерности их проявления. Показано, что степень воздействия каждого из них существенно зависит от условий, в которых производится измерение. Так, при использовании открытой измерительной ячейки в качестве основного фактора выступает обмен кислорода с атмосферой, тогда как в закрытой погрешность в основном обуславливается влиянием собственной кислородной емкости системы. Данная зависимость объясняется тем, что при полной или частичной изоляции инкубационной среды от атмосферы практически единственным источником для компенсации убыли кислорода из среды инкубации становится собственная кислородная емкость, поэтому в данных условиях ее влияние проявляется в максимальной степени.

Таким образом, процессы обмена кислородом с атмосферой и собственной кислородной емкостью находятся в отношениях обратной взаимообусловленности: снижение или устранение влияния одного из них автоматически усиливает влияние другого. В условиях, когда устранение даже одного искажающего фактора представляется весьма сложным по техническим соображениям, оптимальным выходом, позволяющим снизить погрешность измерения до приемлемого уровня, является описанный в работе комплексный подход, основными составляющими которого являются:

- проведение всех измерений при одинаковом исходном состоянии измерительной системы (п. 3.1, гл. 3);

- устранение осмотических эффектов на мембране закрытого кислородного датчика путем выравнивания осмотического давления инкубационной среды и электролита датчика (п. 3.1, гл. 3);

- динамическая калибровка системы на поступление кислорода из атмосферы (п. 4.1, 4.2, гл. 4) и вычисление на ее основе соответствующей поправки к результату измерения (п. 4.3, гл. 4);

- измерение собственной кислородной емкости системы (п. 5.2, гл. 5) и вычисление соответствующей поправки на основании результатов анализа регистрационных кривых поглощения кислорода (п. 5.3, гл. 5).

Использование данного подхода оказалось достаточно эффективным лишь при условии, что величина собственной кислородной емкости измерительной системы не превышает кислородную емкость среды инкубации и характеризуется высокой скоростью диффузии кислорода через границу раздела фаз емкость-среда. Так как при разработке конструкций датчиков промышленного изготовления данное условие не учитывалось, автором был сконструирован и изготовлен амперометрический кислородный датчик с пониженной кислородной емкостью (ПКЕ), предназначенный для измерения биохимического потребления кислорода в малых объемах инкубационных сред.

Основным результатом использования представленных в работе новых методических и аппаратных средств явилось снижение относительной погрешности измерения потребления кислорода (А) с 38,63 до 0,19%, то есть более чем в 200 раз. Таким образом, погрешность измерения была приведена в полное соответствие с погрешностями используемого оборудования.

Вторым итогом стало заметное улучшение воспроизводимости результатов: коэффициент вариации (Су) снизился с 8,91 до 2,02%, то есть более чем в 4 раза, что также является хорошим показателем для многоступенчатого эксперимента, каковым является измерение метаболического потребления кислорода в малом объеме инкубационной среды.

Таким образом, можно констатировать, что влияние измерительной системы на результат измерения было практически полностью устранено. В результате при изучении потребления кислорода реальными биологическими объектами появилась возможность надежной интерпретации полученных данных как отражения метаболических свойств изучаемого объекта, а не конструктивных особенностей используемых средств измерения.

Следует особо отметить, что большинство из описанных искажающих факторов являются универсальными, то есть не зависящими от принципа работы измерительной системы. Поэтому те же явления, отличающиеся лишь в количественном аспекте, будут наблюдаться и при использовании открытых полярографических электродов, оптических, полупроводниковых, а также любых других кислородных датчиков, как существующих, так и перспективных. По этой причине выявленные в данной работе закономерности и предложенные средства могут заинтересовать не только биохимиков, изучающих количественные проблемы окислительного метаболизма, фотосинтеза и др., но и разработчиков новых средств измерения.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Миняев, Михаил Владимирович, 2007 год

1. Авербух Т.Д. Технология сульфитов / Т.Д. Авербух. - М.: Химия, 1984. -167 с.

2. Агранов Х.И. Электрохимический датчик для определения кислорода в жидких средах / Х.И. Агранов // Бюллетень изобретений. 1979. - № 12. -С. 45-48.

3. Агранов Х.И. Электрохимический анализатор кислорода / Х.И. Агранов // Заводская лаборатория. 1974. - Т.40. - №11. - С. 1332.

4. Агранов Х.И. и др. Электрохимический анализатор кислорода при высоких давлениях / Х.И. Агранов // Приборы и системы управления. 1976. -№11.-С. 34.

5. Адомсон У.А. Физическая химия поверхностей / У.А. Адомсон. М. : Мир, 1979. - 233 с.

6. Альперин В.З. Современные электрохимические методы и аппаратура для анализа газов в жидкостях и газовых смесях / В.З. Альперин, Э.И. Конник, A.A. Кузьмин. М. : Химия, 1975. - 183 с.

7. Альперин В. 3. Современные электрохимические методы и аппаратура для анализа газов в жидкостях и газовых смесях / В.З. Альперин. М. : Химия, 1988.-203 с.

8. Аманназаров А. Методы и приборы для определения кислорода / А. Аманназаров. М.: Химия, 1988. - 143 с.

9. Ананьев Г.М. Датчик кислорода для биологических исследований / Г.М. Ананьев // Сенсоры и датчики физико-химической биологии. Пущино. -1991.-С. 100-105.

10. Ахметов Н.С. Общая и неорганическая химия / Н.С. Ахметов. М. : Высшая школа, 1981. - 679 с.

11. Барковский В.Ф. Основы физико-химических методов анализа / В.Ф. Барковский, Т.Б. Городенцева, Н.Б. Топорова. М. : Высшая школа, 1983. -248 с.

12. Бачило С. М. Регистрация поглощения a'Ag —> b'Hg+ кислорода в растворах / С.М. Бачило, И. Н. Ничипорович, А.П. Лосев // Журнал прикладной спектроскопии. 1998. - №6. - С. 811.

13. Бейли Дж. Основы биохимической инженерии : в 2 т. Т.2. / Дж. Бейли, Д. Оллис. М. : Мир, 1989. - 590 с.

14. Березовский В.А. К методике полярографического определения напряжения кислорода в органах и тканях / В.А. Березовский // Фармакология и токсикология. Киев. - 1966. - С. 260-265.

15. Березовский В.А. Электрохимические и биологические особенности хроноамперометрического определения кислорода / В.А. Березовский // Полярографическое определение кислорода в биологических объектах. -Киев.- 1968.-С. 98-121.

16. Березовский В.А. О способах оценки результатов хроноамперометрического определения кислорода на открытых индикаторных электродах / В.А. Березовский // Физиологический журнал. 1970. - №8. - С. 1182-1185.

17. Березовский В.А. Электроды для полярографического определения кислорода в биологических объектах / В.А. Березовский // Полярографическое определение кислорода в биологических объектах. Киев. - 1974. - С. 34-57.

18. Березовский В.А. Напряжение кислорода в тканях животных и человека / В.А. Березовский. Киев : Наукова думка, 1975. - 112 с.

19. Борисов С.М. Новый оптический кислородный датчик, основанный на фосфоресценции катионных водорастворимых Pd(II), Pt(II) и Rh(III) пор-фиринов / С.М. Борисов, В.В. Васильев // Журнал аналитической химии. -2004. Т.59. - №2. - С. 155.

20. Ваня Я. Анализаторы газов и жидкостей / Я. Ваня М. : Энергия, 1970. - 562 с.

21. Виноградов А.Д. Идентификация ионной формы фосфата, сопровождающей активное накопление Ca митохондриями печени крысы / А.Д. Виноградов, Ю.Н. Лейкин // Биохимия. 1971. - №5. - С.1062.

22. Виноградов А.Д. Биохимия митохондрий / А.Д. Виноградов, Ю.Н. Лейкин, Т.Ю. Липская. М.: Изд-во МГУ, 1977. - 65 с.

23. Виноградова E.H. Методы полярографического и амперометрического анализа / E.H. Виноградова. М.: Изд-во МГУ, 1963. - 124 с.

24. Гавриленко В.Ф. Большой практикум по физиологии растений. Фотосинтез. Дыхание / В.Ф. Гавриленко, М.Е. Ладыгина, Л.М. Хандобина. М. : Высшая школа, 1975. - 392 с.

25. Гейровский Я. Основы полярографии / Я. Гейровский, Я. Кута. М. : Мир, 1965.- 559 с.

26. Горская И.А. Выделение митохондрий из сердца крысы / И.А. Горская, И.Д. Шевелева, А.И. Суслова // Новые методы практической биохимии. -М., 1988.-С. 47-50.

27. Горшков В.И. Основы физической химии / В.И. Горшков, И.А. Кузнецов. М.: Изд-во МГУ, 1993. - 336 с.

28. Гройсман А.Ш. Методы определения кислорода в жидкостях / А.Ш. Гройсман, Н.Е. Хомутов // Журнал аналит. химии. 1989. - Т.44. - №12. - С. 2133-2147.

29. Гройсман А.Ш. Растворимость кислорода в растворах электролитов / А.Ш. Гройсман, Н.Е. Хомутов, // Успехи химии. 1990. - Т.59. - №8. - С. 1217-1250.

30. Данкверст П.В. Газожидкостные реакции / П.В. Данкверст. М. : Химия, 1973.- 123 с.

31. Делимарский Ю.К. Электродные процессы и методы исследования в полярографии / Ю.К. Делимарский, A.B. Городысский. Киев : Изд-во АН УССР, 1960. 192 с.

32. Делимарский Ю.К. Полярография на твердых электродах / Ю.К. Делимарский, Е.М. Скобец. Киев : Техника, 1970. - 220 с.

33. Делахей П. Новые приборы и методы в электрохимии / П. Делахей. М. : Наука, 1957. - 493 с.

34. Делахей П. Двойной электрический слой и кинетика электродных процессов / П. Делахей. М. : Мир, 1976. - 315 с.

35. Справочник биохимика / Р. Додсон, Д. Эллиот, У. Эллиот, К. Джонс.1. М. : Мир, 1991.-544 с.

36. Доис Э. Количественные проблемы биохимии / Э. Доис. М. : Мир, 1983.- 376 с.

37. Дыхание, фосфорилирование и структура митохондрий печени крыс при действии тироксина in vivo и in vitro / Я.Х. Туракулов, A.K. Мирахме-дов, H.A. Львович, Хусаинова Ф. // Биохимия. 1970. - №2. - С. 349-350.

38. Евтодиенко Ю.В. Влияние pH на окислительное фосфорилирование и поглощение кальция митохондриями печени крысы / Ю.В. Евтодиенко, Л.Ю. Кудзина // Митохондрии. Биохимия и морфология. М., 1967. - С. 18» 23.

39. Захаров А.И. Флуоресцентный датчик для определения растворенного в воде кислорода / А.И. Захаров, Т.И. Гришаева // Журнал аналитической химии. 1996. - Т.51. - №8. - С. 818.

40. Зеленский М.И. О калибровке кислородных электродов / М.И. Зеленский, Г.А. Могилева // Полярографическое определение кислорода в биологических объектах. Киев. - 1974. - С. 71-77.

41. Зеленский М.И. Полярографическое определение кислорода в исследованиях по фотосинтезу и дыханию / М.И. Зеленский. Л. : Наука, 1986. -140 с.

42. Звягильская P.A. Особенности окисления сукцината митохондриями дрожжей Endomyces magnusii / Р.А.Звягильская, И.М. Коростелева // Митохондрии. Транспорт электронов и преобразование энергии. М., 1976. -С. 73-76.

43. Исаакян JI.A. Электрохимические методы газового анализа в физиологии / Л.А. Исаакян. М.: Наука, 1964. - 79 с.

44. Калиман П.А. Окисление биогенных моноаминов митохондриями некоторых органов кроликов и влияние ингибиторов моноаминоксидазы / П.А. Калиман // Митохондрии. Ферментативные процессы и их регуляция. -М., 1968.-С. 55-58.

45. Капитанов А.Б. Изменение липидного состава мембран митохондрий в ходе сукцинатоксидазной реакции / А.Б. Капитанов, Г.А. Грибанов // Вопросы мед. химии. 1990. - Т.36. - №5 - С. 56-58.

46. Каплан Е.Я. Влияние антиоксидантов на скорость деоксигенации крови животных, подвергшихся воздействию измененной газовой среды / Е.Я. Каплан, В.И. Шубин, И.М. Эпштейн // Космич. биол. и медицина. 1973. -№1. - С. 9-14.

47. Коваленко Е.А. Изменение напряжения кислорода в тканях мозга при действии на организм высоты и перегрузок / Е.А. Коваленко, A.B. Ряжский // Полярографическое определение кислорода в биологических объектах. -Киев, 1972,-С.53-54.

48. Коваленко Е.А. Полярографическое определение кислорода в организме / Е.А. Коваленко, В.А. Березовский, И.М. Эпштейн. М. : Медицина, 1975.-232 с.

49. Корольков В.И. Напряжение кислорода в мышце сердца и крови в условиях циркуляторной и анемической гипоксии / В.И. Корольков, В.Б. Ко-зинер // Кислородный режим организма и его регулирование. Киев. -1966. - С. 295-298.

50. Кузьмин А.А. Современные методы и аппаратура автоматического контроля и регулирования кислородного режима нефтесодержащих сточных вод в аэрационных очистных сооружениях / А.А. Кузьмин, В.М. Пате-тюк. М.: Изд-во ЦНИИТЭ нефтехимии, 1970. - 78 с.

51. Кулонометрическое определение кислорода растворенного в полярных органических растворителях с электрогенерацией Си (I) ионов / И.Ф. Аб-дуллин, Г.К. Будников, С.С. Филюшина, Ю.Н. Баканина // Журнал аналитической химии. -1998. Т.53. - №6. - С. 568.

52. Кучеренко М.Г. Датчик молекулярного кислорода на основе эффектал

53. О -индуцированной флуоресценции / М.Г. Кучеренко, Г.А. Кецле // Датчики и системы. 1999. - №4. - С. 35.

54. Лайтинен Г.А. Химический анализ / Г.А. Лайтинен. М. : Химия, 1966. -651 с.

55. Лакин Г.Ф. Биометрия / Г.Ф. Лакин. М. : Высшая школа, 1990. - 325 с.

56. Лейкин Ю.Н. Флуоресценция никотинамидадениндинуклеотидов при транспорте Са2+ в митохондриях печени / Ю.Н. Лейкин, А.Д. Виноградов // Биохимия. 1972. - №2. - С. 244.

57. Ленинджер А. Биохимия. Молекулярные основы структуры и функций клетки / А. Ленинджер. М. : Мир, 1974. - 562 с.

58. Летута С.Н. Люминесцентный способ определения концентрации кислорода / С.Н. Летута, В.А. Бондаренко, Г.А. Кецле // Датчики и системы. -2001.-№9.-С. 27.

59. Лосев А. П. Кинетика -» а^ -флуоресценции молекулярного кислорода в растворах / А. П. Лосев, С. М. Бачило, И. Н. Ничипорович // Журнал прикладной спектроскопии. 1998. - №1. - С. 5.

60. Лурье Ю.Ю. Аналитическая химия промышленных сточных вод / Ю.Ю. Лурье. М.: Химия, 1984. - 448 с.

61. Меерсон Ф.З. Сократительная функция и эффективность использования сердцем кислорода при адаптации к гипоксии / Ф.З. Меерсон, Н.П. Ларионов // Кардиология. 1995. - Т.15. - №7. - С. 70-78.

62. Методы изучения мембран растительных клеток. Л. : Изд-во ЛГУ, 1986.-С. 127-128.

63. Методы практической биохимии / ред. Э. Гриффитц, Б. Уильяме, К. Уилсон. М.: Мир, 1978. - 510 с.

64. Миллер С.Д. Опыт замены ртутного капельного электрода электродом из твердых металлов / С.Д. Миллер // Сб. трудов Всесоюзн. конференции по аналитической химии. М., 1961. - Т.2. - С. 551-558.

65. Миняев М.В. Гальванический кислородный датчик с пониженной собственной кислородной емкостью / М.В. Миняев // Актуальные проблемы биохимии и биотехнологии: сб. науч. тр. / Тверской гос. ун-т. Тверь. -2001.-С. 154-161.

66. Миняев М.В. Собственная кислородная емкость закрытых кислородных датчиков / М.В. Миняев, И.И. Гугушвили // Актуальные проблемы биохимии и биотехнологии: сб. науч. тр. / Тверской гос. ун-т. Тверь. -2001.-С. 161-166.

67. Миняев М.В. Влияние толщины полиэтиленовой мембраны на работу полярографического кислородного датчика закрытого типа / М.В. Миняев, Н.О. Иванова // Вестник ТвГУ: биология и экология. 2005. -Т. 10. - №4. С. 84-87.

68. Мясников И.А. Полупроводниковые датчики для определения свободных радикалов и молекулярного кислорода в жидкой полярной среде / И.А. Мясников, Л.А. Обвинчева, А.П. Сысоева // Журнал физической химии -2004. Т.78. - №2. - С. 178.

69. Назаров Н.Г. Метрология. Основные понятия и математические модели / Н.Г. Назаров. М.: Высшая школа, 2002. - 348 с.

70. Накагаки М. Физическая химия мембран / М. Накагаки. М. : Мир, 1991.-255 с.

71. Некрасов H.B. Общая и неорганическая химия / Н.В. Некрасов. М. : Химия, 1976.-412 с.

72. Николаева JI.B. Схема первичной оценки состояния митохондрий в зависимости от функциональной нагрузки на дыхательную цепь / JI.B. Николаева, М.Н. Кондрашова // Митохондрии: структура и функции. М., 1966. -С. 83-85.

73. Николе Д.Д. Биоэнергетика: введение в хемиосмотическую теорию / Д.Д. Николе. М.: Мир, 1985. - 340 с.

74. Никулин В.Н. Катодное восстановление кислорода в зависимости от ' ориентации и структуры кристаллитов электрода. Восстановление 02 наразличных гранях монокристалла серебра / В.Н. Никулин // Журнал физ. химии. 1961. -Т.35. -№1. - С. 84-89.

75. Определение кислорода в воде и газовой фазе с использованием жидкостной хроматографии / Г.И. Барам, A.JI. Верещагин, JI.A. Кочанова, Г.Г. Шамовский // Журнал аналитической химии. 1999. - Т.54. - №8. - С. 739.

76. Ормонт Б.Ф. Структура неорганических веществ / Б.Ф. Ормонт. М. : Химия, 1950. - 798 с.

77. Особенности использования микродозаторов с полиэтиленовыми наконечниками для калибровки кислородных датчиков / М.В. Миняев, М.Д.

78. Платонова, К.В. Костина, Л.И. Ворончихина // Вестник ТвГУ: биология иэкология. 2006. -Т.22 - №5. С. 53-56.

79. Павленко И .Г. Электровосстановление кислорода на ртутно-серебряных катодах: автореф. дис. канд. мед. наук / И.Г. Павленко. М., 1958.- 18 с.

80. Попов Т.А. Влияние ингибитора дыхательного фосфорилирования а,2-4-динитрофенола на потребление кислорода мышечной тканью / Т.А. Попов, И.П. Березин // Кислородный режим организма и его регулирование. -Киев. 1966. - С. 206-208.

81. Разбавление среды инкубации бескислородной добавкой как вероятная причина «эффекта быстрого потребления кислорода» / М.Б. Белякова, М.В. Миняев, А.А. Егорова, Л.И. Ворончихина // Вестник ТвГУ: биология и экология. 2006. -Т.22 - №5. С. 57-60.

82. Разумович А.Н. Измерение некоторых функциональных показателей митохондрий при остром В |-авитаминозе / А.Н. Разумович, И.Л. Фольб // Митохондрии. Ферментативные процессы и их регуляция. М., 1968. - С. 63-67.

83. Разумовский С.Д. Кислород элементарные формы и свойства / С.Д. Разумовский. - М.: Химия, 1979. - 183 с.

84. Редди Т.Г. Влияние 0,Ь-а-токоферолацетата, витамина В)2 и гидроли-зата глюкозоциклоацетоацетата на окислительное фосфорилирование в митохондриях печени крысы при некрозе / Т.Г. Редди, М.С. Нат // Биохимия. 1972. - №3. - С.649.

85. Рейшахрит Л.С. Электрохимические методы анализа / Л.С. Рейшахрит. Л.: Изд-во ЛГУ, 1970. - 100 с.

86. Родионов А.К. Использование анализаторов растворенного кислорода при решении актуальных экологических задач / А.К.Родионов, Ю.Н. Зиновьев // Экологические системы и приборы. 2003. - №9. - С. 25-27.

87. Роскошный В.Г. Электрохимический анализатор кислорода / В.Г. Роскошный // Приборы и системы управления. 1983. - №10. - С. 25-26.

88. Руководство по изучению биологического окисления полярографическим методом / ред. Г.М. Франк. М.: Наука, 1973. - 220 с.

89. Русинова Н.Г. Полярографическое определение активности рибулозо-дифосфатоксигеназы / Н.Г. Русинова, Ле Тхи Лай Оань // Биохимические методы. М., 1980. - С. 100-102.

90. Сабадвари Ф. История аналитической химии / Ф. Сабадвари, А. Робинсон -М.: Мир, 1984.-304 с.

91. Сабадош Д. Регулирование биосинтеза киназина и структурного белка митохондрий компонентами фосфатного цикла / Д. Сабадош // Биохимия. -1971.-№2.-С. 402.

92. Сейц И.Ф. Взаимодействие дыхания и гликолиза в клетке и сопряженное фосфорилирование / И.Ф. Сейц. Л.: Медгиз, 1961. -151 с.

93. Семихатова O.A. Манометрические методы изучения дыхания и фотосинтеза растений / O.A. Семихатова, М.В. Чулановская. М. : Наука, 1965. -201с.

94. Словарь-справочник по физиологии и патофизиологии дыхания / ред. В.А. Березовский. Киев : Наукова думка, 1984. - 256 с.

95. Соловьев Л.Г. Опыт применения оксиметра ИОАН для непрерывного определения кислорода, образующегося в процессе фотосинтеза / Л.Г. Соловьев, A.M. Цветкова// Океанология. 1966. - Т.6. - Вып.З. - С. 542-547.

96. Сонгина O.A. Амперометрическое титрование / O.A. Сонгина, В.А. Захаров. М.: Химия, 1979. - 304 с.

97. Справочник химика : в 4 т. Т.4. / ред. Б.П. Никольский. М. : Химия, 1967. - 920 с.

98. Умбрейн В.В. Манометрические методы изучения тканевого дыхания / В.В. Умбрейн. М.: Изд-во иностранной литературы, 1951. - 151 с.

99. Фарзане Н.Г. Технологические измерения и приборы / Н.Г. Фарзане. -М.: Высшая школа, 1989. 456 с.

100. Физика / ред. A.A. Выгодский. М.: Просвещение, 1993. - 416 с.

101. Физическая химия / ред. К. С. Краснов. М. : Высш. школа, 1982. -687 с.

102. Фрумкин А.Н. Адсорбционные явления и электрохимическая кинетика / А.Н. Фрумкин // Успехи химии. 1955. - Т.24. - Вып.8. - С. 933-934.

103. Хватова Е.М. Сравнительная оценка влияния некоторых регуляторных факторов на энергетическую функцию митохондрий мозга / Е.М. Хватова, Г.В. Шуматова // Митохондрии. Транспорт электронов и преобразование энергии. М., 1976. - С. 182-189.

104. Хохлова Л.П. Выделение и изучение функций митохондрий растений / Л.П. Хохлова. Казань : Изд-во Казанского ун-та, 1988. - 126 с.

105. Цыпин Л.В. К вопросу о повышении точности и надежности устройств для амперометрического метода определения кислорода / Л.В. Цыпин // Полярографическое определение кислорода в биологических объектах. Киев. - 1968. - С. 140-148.

106. Шольц К.Ф. Ячейка для амперометрического определения кислорода / К.Ф. Шольц, Д.Н. Островский // Методы современной биохимии. М., 1975.-С. 55.

107. Шольц К.Ф. Амперометрическое определение ферроцианида в присутствии субклеточных структур / К.Ф. Шольц, И.М. Мосолова, Л.А. Дро-нова // Биохимические методы. М., 1980. - С. 147-150.

108. Эпштейн И.М. Метод электрохимической регистрации кислородного режима в тканях животного / И.М. Эпштейн // Бюлл. экспер. биологии. -1960.-№12.-С. 104-107.

109. Эткинс П. Физическая химия : в 2 т. Т.2. / П. Эткинс. М.: Мир, 1980. - 230 с.

110. A sensitive measurement of oxygen uptake rate using a optochemical sensor / Chung-Ming Chi, L.N. Frautschy, F.B. Cerra, Wei-Shou Hu // Biotechnology Tech. 1993. - V.7. - №2. - P. 99-104.

111. Adverse Effects of Hyperoxemia During Cardiopulmonary Bypass / P.O. Joachimsson, F. Sjöberg, M. Forsman, M. Johansson, H.C. Ahn, H. Rutberg // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 1996. - V.l 12. - №9. - P. 812.

112. Aiba S. Rapid determination of oxygen permeability of polymer membranes / S. Aiba, M. Ohashi, Schin Yow Huang // Industr. Eng. Chem. Fundament. 1968. - V.7. - № 3. - P. 497-502.

113. Amao Y. Probes and Polymers for Optical Sensing of Oxygen / Y. Amao // Microchimica Acta. 2003. - V. 143. - №1. - P. 1-12.

114. An electrochemical Nafion® matrix oxygen sensor and the evaluation of oxygen permeation in coated films / Y. Gao, H. Kita, Y. Watanabe, K. Sima // J. of Appl. Electrochem. 1993. - V.23. - №11. - P. 1102 - 1106.

115. Armstrong W. Stem Photosynthesis not Pressurized Ventilation is Responsible for Light-enhanced Oxygen Supply to Submerged Roots of Alder (Alnus glutinosa) / W. Armstrong, J. Armstrong // Ann. Bot. 2005. - V.96. - №9. - P. 591-612.

116. Bard A.J. Application of controlled potential coulometry to the study of electrode reactions / A.J. Bard, K.S.V. Santhanam // Electroanal Chem. / Marcel Dekker. N.Y., 1970. - V.4. - P. 215.

117. Bassnett S. The effect of elevated intraocular oxygen on organelle degradation in the embryonic chicken lens / S. Bassnett, R. McNulty // J. Exp. Biol. -2003.-V.206.-№12.-P. 4353.

118. Battino R. The Solubility of Gases in Liquids / R. Battino, H.L. Clever // Chem. Rev. 1966. - V.66. - № 4. - P. 395.

119. Battino R. The Solubility of Oxygen and Ozone in Liquids / R. Battino, T.R. Rettich, T. Tominaga //J. Phys. and Chem. Ref. Data. 1983. - V.12. - №2. -P. 163.

120. Baucke F.G.K. High-temperature oxygen sensors for glass-forming melts / F.G.K. Baucke // Fresenius' J. of Anal. Chem. 1996. - V.356. - №3-4. - P. 209.

121. Brina R. Electrogenerated chemiluminescence : Part XLVIII. Electrochemistry and electrogenerated chemiluminescence of bis(2,4,6-trichlorophenyl) ox-alate-luminescer systems / R. Brina, A.J. Bard // J. Electroanal. Chem. 1987. -V. 238.-№1.-P. 277-295.

122. Cater D.B. Apparatus and technique for the quantitative measurement of oxygen tension in living tissues / D.B. Cater, J.A. Silver, G.M. Wilson // Proc. Roy. Soc. 1959. - V. 151.-P. 256-276.

123. Cerebral oxygen vasoreactivity and cerebral tissue oxygen reactivity / A.J. Johnston, L.A. Steiner, A.K. Gupta, D.K. Menon // Br. J. Anaesth. 2003. -V.90. - №6. - P. 774.

124. Comparison of tumor and normal tissue oxygen tension measurements using OxyLite or microelectrodes in rodents / R.D. Braun, J.L. Lanzen, S.A. Snyder, M.W. Dewhirst // J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 2001. - V.280. - №6. -P. 2533.

125. Davies P.W. Microelectrodes for measuring local oxygen tension in animal tissues / P.W. Davies, F. Brink // Rev. Sci. Instr. 1942. - V. 13. - P. 524-533.

126. Degn H. Continuous measurement of dissolved gases in biochemical systems with the quadrupole mass spectrometer / H. Degn, R.P. Cox, D. Lloyd. // Methods of Biochemical Analysis. 1985. - V.31. - P. 165-194.

127. Deshpande R.R. On-line oxygen uptake rate and culture viability measurement of animal cell culture using microplates with integrated oxygen sensors / R.R. Deshpande, E. Heinzle // Biotechnology Letters. 2004. - V.26. - №9. - P. 763-767.

128. Diaz I. Kinetics of heterogeneous oxidation of diluted sulphite solutions /1. Diaz//Hung. J. Ind. Chem. 1987. - V.5. - P. 213-215.

129. Endogenous NO regulates superoxide production at low oxygen concentrations by modifying the redox state of cytochrome c oxidase / M. Palacios-Callender, M. Quintero, V.S. Hollis, R.J. Springett, S. Moncada // PNAS. -2004. -V.101. №5. - P. 7630 - 7635.

130. Evidence for a preglomerular oxygen diffusion shunt in rat renal cortex / H.J. Schurek, U. Jost, H. Baumgartl, H. Bertram, U. Heckmann // J. Physiol. Renal. Physiol. 1990. - V.259. - №12. - P. 910.

131. Gloves G.A.H. The membrane Oxygenerator. Extracorporeal circulation / G.A.H. Gloves, W.E. Neville // Ch.Thomas. 1958. - №3. - P. 83.

132. Guth U. Electrochemical solid electrolyte gas sensors hydrocarbon and NOx analysis in exhaust gases / U. Guth, J. Zosel // Ionics. - 2004. - V.10. - №5-6.-P. 366-377.

133. Hersch P.A. Trace monitoring in gases using galvanic systems / P.A. Hersch // Anal. Chem. 1960. - V.32. - №8. - P. 1030-1034.

134. Hitchman M.L. Measurment of dissolved oxygen / M.L. Hitchman N.Y. : John Wiley and Sons Inc, 1978. - 71 p.

135. Indomethacin lowers optic nerve oxygen tension and reduces the effect of carbonic anhydrase inhibition and carbon dioxide breathing / D.B. Pedersen, T.

136. Eysteinsson, E. Stefänsson, J.F. Kiilgaard, M. la Cour, K. Bang, P.K. Jensen // Br. J. Ophthalmol. 2004. - V.88. - №8. - P. 1088 - 1091.

137. Influence of Water Vapor on the Response of Mg-Doped SrTi03 Ceramic Oxygen Sensors / Hong Zheng, O.T. Sörensen, Liu Xin Gqin, H. Jensen // J. of Electroceramics. 1999. - V.3. - №3. - P. 301 - 310.

138. Jeroschewski P. A flow system for calibration of dissolved oxygen sensors / P. Jeroschewski, D. zur Linden // Fresenius' J. of Anal. Chem. 1997. - V.358. - №6. - P. 677 - 682.

139. Joyner J.L. Possible Roles of Sulfur-Containing Amino Acids in a Chemo-autotrophic Bacterium-Mollusc Symbiosis / J.L. Joyner, S.M. Peyer, R.W. Lee // Biol. Bull. 2003. - V.205. - №12. - P. 331.

140. Kenten R. Gasometric analysis in plant investigation / R. Kenten // Moderne methoden der Pflancenanalyse. Berlin. - 1956. - Bd.l. - S. 415.

141. Killing of Bacillus Spores by Aqueous Dissolved Oxygen, Ascorbic Acid, and Copper Ions / J.B. Cross, R.P. Currier, D.J. Torraco, L.A. Vanderberg, G.L. Wagner, P.D. Gladen // Appl. Envir. Microbiol. 2003. - V.69. - №4. - P. 2245 -2252.

142. Klots C.E. Isotope effect in the solution of oxygen and nitrogen in distilled water / C.E. Klots, B.B. Benson // J. Chem. Phys. 1963. - V.38. - №4. - P. 890892.

143. Knapp H. Phase equilibria for the design of gas wash systems: Experimental techniques / H. Knapp, S. Zeck, R. Langhorst // Chem. Eng. and Process. -1987. V.21. - №1. - P.25-32.

144. Kraus D.W. Sulfide consumption by mussel gill mitochondria is not strictly tied to oxygen reduction: measurements using a novel polarographic sulfide sensor / D.W. Kraus, J.E. Doeller // J. Exp. Biol. 2004. - V.207. - №10. - P. 3667 -3679.

145. Kreuzer F.Ed. Oxygen pressure recording in gases, fluids and tissaes / F.Ed. Kreuzer, S. Karger. Basel:, 1969. - 248 p.

146. Kuznetsov V.V. Reversed Flow-Injection Photometric Analysis for the Monitoring of Dissolved Oxygen in Water / V.V. Kuznetsov, M.V. Murasheva. // J. Anal. Chem. 1996. - V.51. - №10. - P. 993.

147. Glucose Utilization Is Essential for Hypoxia-Inducible Factor la-Dependent Phosphorylation of c-Jun / K.R. Laderoute, J.M. Calaoagan, M. Knapp, R.S. Johnson // Mol. Cell. Biol. 2004. - V.24. - №5. - P. 4128 - 4137.

148. Laitinen H.A. A study of diffusion processes by electrolysis with micro-electrodes / H.A. Laitinen, J.M. Kolthoff// J. Am Chem. Soc. 1939. - V.61. -P. 3344-3349.

149. Lee E.D. Luminescence ratio indicators for oxygen / E.D. Lee, T.C. Werner, W.R. Seitz // Anal. Chem. 1987. - V.59. - №2. - P. 279-283.

150. Liposomal NAD+ prevents diminished 02 consumption by immunostimu-lated Caco-2 cells / A.U. Khan, R.L. Delude, Y.Y. Han, P.L. Sappington, X. Han, J.A. Carcillo, M.P. Fink // J. Physiol. Lung. Cell. Mol. Physiol. 2002. -V.282. - №5. - P. 1082.

151. Luminescence-Based Oxygen Sensors: ReL(CO)3Cl and ReL(CO)3CN Complexes on Copolymer Supports / K.A. Kneas, W. Xu, J.N. Demas, B.A. DeGraff, A.P. Zipp // J. of Fluorescence. 1998. - V.8. - №4. - P. 295 - 300.

152. Mancy K.H. A galvanic cell oxygen analyzer / K.H. Mancy, D.A. Okun, C.N. Reilley // J. Electroanal. Chem. 1962. - V.4. - №2. - P. 65-92.

153. Maskell W.C. Solid state potentiometric oxygen gas sensors / W.C. Maskell, B.C.H. Steele // J. of Applied Electrochem. 1986. - V.16. - №4. - P. 475489.

154. Monitor and control of blood and tissue oxygen tensions // Soc. Artific. Intern. Organs. 1956. - V.2. - P. 41-43.

155. Moran A.L. Energy Metabolism During Larval Development of Green and White Abalone, Haliotis fiilgens and H sorenseni / A.L. Moran, D.T. Manahan // Biol. Bull. 2003. - V.204. - №6. -P. 270.

156. Nishri A. Solubility of oxygen in the Dead Sea brine / A. Nishri, S. Ben-Yaakov // Hydrobiologia. 1990. - V. 197. - №1. - P. 99-104.

157. Optical Sol-Gel-Based Dissolved Oxygen Sensor: Progress Towards a Commercial Instrument / C.M. Mcdonagh, A.M. Shields, A.K. Mcevoy, B.D. Maccraith, J.F. Gouin // J. of Sol-Gel Sci. and Tech. 1998. - V.13. - №1-3. - P. 207-211.

158. Ortmann C. Energy metabolism and valve closure behaviour in the Asian clam Corbicula fluminea / C. Ortmann, M.K. Grieshaber // J. Exp. Biol. 2003. -V.206. - №11. - P. 4167.

159. Oxygen Sensors Based on a Quenching of Tris-(4,7-diphenyl-l,10-phenanthroline) ruthenium (II) in Fluorinated Polymers / A.M. Morin, Wenying Xu, J.N. Demas, B.A. DeGraff// Journal of Fluorescence. 2000. - V.10. - №1. -P. 7-12.

160. Oxygen diffusion and consumption of aortic valve cusps / K.L. Weind, D.R. Boughner, L. Rigutto, C.G. Ellis // J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2001. -V.281. - №12. - P. 2604.

161. Oxygen Tension in Rabbit Vitreous and Lens / J. Liang, I. Barazabetto, L. Zheng, J. Dillon // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2002. - V.43. - №12. - P. 2380.

162. Parker D. A new approach to inline gas monitoring: development of an oxygen sensor / D. Parker, D.T. Delpy, D.N. Halsall // Med. and Biol. Engineering and Computing. 1983. - V.21. - №2. - P. 134 - 137.

163. Performance of calorimetric methods for the investigation of microbial systems in combination with additional sensors / F. Ullrich, M. Winkelmann, R. Hüttl, G. Wolf// Anal, and Bioanal. Chem. 2005. - V.383. - №5. - P. 747-751.

164. Portable Fibre Optic Oxygen Sensor Based on Room-Temperature Phosphor escence Lifetime / J.M. Costa-Fernandez , N. Bördel , J.C. Campo, F.J. Ferrero , M.A. Perez, A. Sanz-Medel // Microchimica Acta. 2000. - V.134. -№3-4.-P. 145-152.

165. Ragheb J. Editorial III: Tissue oxygen tension (PT02) in anaesthesia and perioperative medicine / J. Ragheb, D.J. Buggy // Br. J. Anaesth. 2004. - V.92.- №4. P. 464 - 468.

166. Ramamoorthy R. Oxygen sensors: Materials, methods, designs and applications / R. Ramamoorthy , P.K. Dutta, S.A. Akbar // J. of Materials Sei. 2003. -V.38. - №21. - C. 4271-4282.

167. Regulation of tissue oxygen levels in the mammalian lens / R. McNulty, H. Wang, R.T. Mathias, B.J. Ortwerth, R.W. Truscott, S. Bassnett // J. Physiol. -2004. V.559. - №9. - P. 883 - 898.

168. Richter H.G. Thallium-204 Radiometric Determination of Dissolved Oxygen in Water / H.G. Richter, A.S. Gillespie //Anal. Chem. 1962. - V.34. - №9. -P. 1116.

169. Schönweger G. Temperature-dependent development of cardiac activity in unrestrained larvae of the minnow Phoxinus phoxinus / G. Schönweger, T. Schwerte, B. Pelster // J. Physiol. Regulatory Integrative Comp. Physiol. 2000.- V.279. №11. - P. 1634.

170. Schubert F. Plant tissue-based amperometric tyrosine electrode / F. Schubert, U. Wollenberger, F. Scheller // Biotechnology Letters. 1983. - V.5. - №4.- P. 239-242.

171. Separation of electrode reactions in multi electrode amperometric sensors / S.L. Somov, G. Reinhardt, U. Guth, U. Schonauer, W. Gilpe// Ionics. 1995. -V.l.-№5-6.-P. 514-520.

172. Stock J. Amperometric titrations / J. Stock. N.Y.: Intersci., 1965. - 230 p.

173. Tanaka S. Measurement of concentration and oxidation rate of S(IV) in rainwater in Yokahama / S. Tanaka, K. Yamanaka, Y. Hashimoto // Japan. ACS Symp. Ser. 1987. - V.349. - P. 158-69.

174. The cutaneous uptake of atmospheric oxygen contributes significantly to the oxygen supply of human dermis and epidermis / M. Stucker, A. Struk, P. Altmeyer, M. Herde, H. Baumgartl, D.W. Lubbers // J. Physiol. 2002. - V.538. - №2. - P. 985.

175. The influence of environmental P02 on hemoglobin oxygen saturation in developing zebrafish Danio rerio / S. Grillitsch, N. Medgyesy, T. Schwerte, B. Pelster // J. Exp. Biol 2005. - V.208. - №1. - P. 309 - 316.

176. Thompson J.K. Separate Spatial Scales Determine Neural Activity-Dependent Changes in Tissue Oxygen within Central Visual Pathways / J.K. Thompson, M.R. Peterson, R.D. Freeman // J. of Neuroscience. 2005. - V.25. -№9. - P. 9046 - 9058.

177. Tsai A.G. Oxygen Gradients in the Microcirculation / A.G. Tsai, P.C. Johnson, M. Intaglietta // Physiol. Rev. 2003. - V.83. - №7. - P. 933.

178. Tumor-dependent Kinetics of Partial Pressure of Oxygen Fluctuations during Air and Oxygen Breathing / L.I. Cardenas-Navia, D. Yu, R.D. Braun, D.M. Brizel, T.W. Secomb, M.W. Dewhirst // Cancer Res. 2004. - V.64. - №9. - P. 6010 - 6017.

179. Vanderkooi J.M. Oxygen in mammalian tissue: methods of measurement and affinities of various reactions / J.M. Vanderkooi, M. Erecinska, I. A. Silver // J. Physiol. Cell. Physiol. 1991. - V.260. - №6. - P. 1131.

180. Verslues P.E. Root Growth and Oxygen Relations at Low Water Potentials. Impact of Oxygen Availability in Polyethylene Glycol Solutions / P.E. Verslues, E.S. Ober, R.E. Sharp // Plant Physiology/ 1998. - V.l 16. - №4. - P. 1403.

181. Vishnoi G. A New Plastic Optical Fiber Sensor for Oxygen Based on Fluorescence Enhancement / G. Vishnoi, M. Morisawa, S. Muto A // Optical Review. 1998. - V.5. - № 1. - P. 13 -15.

182. Vitek V. Polarographic studies with the dropping mercury cathode. P. LVII. The estimation of oxygen contained in gases and solution / V. Vitek // Collect. Czech. Chem. Communs. 1935. - V.7. - №7. - P. 537-547.

183. Warner H. An oxygen partial pressure sensor / H. Warner // Med. and Bio. Engineering and Computing. 1963. - V.l. - №1. - P. 79-84.

184. Wilcock, RJ. Solubility of oxygen-nitrogen mixture in water / RJ. Wil-cock, R. Battino // Nature. 1974. - V.252. - P. 614-615.

185. Winmill R.E. Development of the respiratory response to hypoxia in the isolated brainstem of the bullfrog Rana catesbeiana / R.E. Winmill, A.K. Chen, M.S. Hedrick // J. Exp. Biol. 2005. - V.208. - №1. - P. 213 - 222.

186. Zuev B.K. Solid electrolyte sensor as a detector for gas chromatographic determination of combustible contaminants in air / B.K. Zuev, A.Yu. Olenin // Russian J. of Anal. Chemi. 2006. - V.61. - №2. - P. 147-152.