Повышение продуктивности хмеля обыкновенного как ресурсного растения в промышленной культуре в условиях Республики Татарстан тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Аль Хуссейн Далаль

• Аль Хуссейн Далаль
• кандидат наук
• 2026

Оглавление диссертации кандидат наук Аль Хуссейн Далаль

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ. Актуальность исследования

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Хмель обыкновенный (Нити1ш 1ири1ш L.) как ресурсное растение

1.1.1. Ботанико-морфологическая, географическая, характеристика растений рода Нити1ш 1ири1ш L

1.1.2. Фитохимический состав Нити1ш 1ири1ш L

1.1.3. Ресурсная роль, биологическая активность и применение Нити1ш 1ири1ш L. в научной и народной медицине

1.1.4. Эколого-географические факторы среды, влияющие на продуктивность и накопление биологически активных веществ в Нити1ш 1ири1ш L

1.2. Вещества вторичного метаболизма, характеризующие продуктивность Нити1ш 1ири1ш L

1.2.1. Фенольные соединения

1.2.2. Терпеноиды

1.3. Физиолого-биохимические аспекты действия синтетических регуляторов роста и био-удобрений на растения

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Объекты исследования

2.2. Схема экспериментов

2.3. Методы исследования

2.3.1. Определение сухой массы листьев и «шишек» Нити1ш 1ири1ш L

2.3.2 Условия произрастания Нити1ш 1ири1ш L. и определение его ресурсного потенциала

2.3.3. Определение суммарного содержания водорастворимых фенольных соединений

2.3.4. Измерение содержания флавоноидов

2.3.5. Определение суммы дубильных веществ методом титрования раствором перманганата калия

2.3.6. Определение содержания сахаров антронным методом

2.3.7. Определение содержания белка

2.3.8. Определение содержания витамина С

2.3.9. Определение содержания каротиноидов

2.3.10. Определение содержания рибофлавина

2.3.11. Определение общей антиоксидантной активности

2.3.12. Определение содержания МДА

2.3.13. Определение активности каталазы

2.3.14. Определения активности пероксидазы

2.3.15. Определение активности аскорбатпероксидазы

2.3.16. Определение активности супероксиддисмутазы

2.3.17. Определение содержания перекиси водорода

2.3.18. Определение содержания фенольных соединений методом ВЭЖХ

2.3.19. Выделение эфирного масла из листьев и «шишек» хмеля

2.3.20. Статистическая обработка результатов

Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИССЛЕДОВАНИЙИИХОБСУЖДЕНИЕ

3.1. ресурсного потенциал Нити1ш 1ири1ш Ь. в природных условиях Республики Татарстан

3.2. Влияние регуляторов роста на урожайность хмеля обыкеовенного

3. 3. Изменение фитохимического состава хмеля (Нити1ш 1ири1шЬ.) в течение

вегетационного периода

3. 4. Фитохимический состав и антиоксидантные свойства листьев (Нити1ш 1ири1ш Ь.) при обработке регуляторами роста

3.5. Влияние ежегодных обработок регуляторами роста на фитохимический состав и антиоксидантные свойства листьев (Нити1ш 1ири1ш Ь.) на разных стадиях зрелости

3.6. Фитохимический состав «шишек» хмеля обыкновенного (Нити1ш 1ири1ш Ь.)

3.7. Влияние регуляторов роста на накопление эфирных масел в листьях и «шишках» хмеля обыкновенного (Нити1ш 1ири1ш Ь.)

3.8. Влияние регуляторов роста на состав фенольных соединений в «шишках» (Ииши1ш ¡ыри1ш Ь.)

3.9. Изменение активности антиоксидантных ферментов в (Нити1ш Iири¡ш Ь.)

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

(ХЫ) - ксантогумол

(НЬ) - Нити1ш 1ири1ш L.

(РТ) - Республика Татарстан

(СОД) - супероксиддисмутаз

^А) - гибберелловая кислота

(МДА) - малоновый - диальдегид

(ТХУ) - трихлоруксусная кислота

(ТБК) - тиобарбитуровая кислота

(ИУК) - индолилуксусная кислота

(ФАЛ) - фенилаланин - аммиаклиаз

(УФ) - ультрафиолетовое излучение

(АФК) - активные формы кислорода

(ПОЛ) - перекисное окисление липидов

(БАВ) - биологически активные веществ

(«шишки») - шишковидное сложное соцветие

(ВЭЖХ) -высоко эффективная жидкостная хроматография

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Повышение продуктивности хмеля обыкновенного как ресурсного растения в промышленной культуре в условиях Республики Татарстан»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность исследования. Лекарственные и пищевые растения являются ценным ресурсом для фармацевтической и пищевой промышленностей. По мнению [Mintah et al., 2019], растительное сырье сохраняет свою значимость как эффективный терапевтический инструмент, поскольку содержит множество биоактивных веществ, обладающих доказанными лечебными свойствами. Некоторые растения могут быть использованы одновременно и в медицине, и как пищевые, что делает их особо ценными и перспективными для массового культивирования. К таким растениям можно отнести хмель обыкновенный (Humulus lupulus L.), который широко используется в пивоваренной промышленности, и привлекает внимание фармацевтов благодаря высокой концентрации биологически активных соединений.

Шишковидные сложные соцветия (далее - «шишки») хмеля обыкновенного отличаются богатым и сложным химическим составом, включающим широкий спектр биологически активных веществ. Среди ключевых компонентов выделяют эфирные масла, хмелевые смолы, воскообразные соединения, камеди, горькие вещества, а также органические кислоты, такие, как валериановая и аминобензойная. Кроме того, хмель содержит первичные метаболиты, такие, как белки, сахара и витамины, обеспечивающие его питательную ценность. Вторичные метаболиты, включая смолы, эфирные масла и полифенолы, обеспечивают хмелю биологическую активность [Okafor et al., 2020; Carbone et al., 2022; Astray et al., 2022; Schiller et al., 2006; Segarra-Medina et al., 2023]. Кроме того, в данном растении выявлены лупулин, каротин, аскорбиновая кислота, холин, тиамин, никотиновая кислота, дубильные вещества и различные группы флавоноидов, что делает его перспективным объектом для применения в медицине, косметологии и пищевой промышленности [Pereira et

al., 2022; Schiller et al., 2006; Segarra-Medina et al., 2023; Inui et al., 2017; Yan et al.,2021].

Ксантогумол - один из ключевых биологически активных компонентов хмеля, обладающий антиоксидантными, противораковыми и антимикробными свойствами. Исследования подтверждают, что ксантогумол ингибирует развитие онкологических клеток, предотвращает окислительный стресс и обладает кардиопротекторным действием [Astray et al., 2022; Schiller et al., 2006]. Рутин и кемпферол - флавоноиды, обладающие противовоспалительными и капилляроукрепляющими свойствами, делают хмель перспективным компонентом для терапии сердечно-сосудистых заболеваний. Фенольные кислоты - группа соединений, участвующих в антиоксидантной защите клеток, способствующих регуляции иммунного ответа и снижению уровня свободных радикалов [Carbone et al., 2022; Schiller et al., 2006].

Терпены и эфирные масла. Хумулин - сесквитерпен, придающий хмелю характерный аромат и обладающий противовоспалительными и антимикробными свойствами. Мирцен - монотерпен, обладающий седативным эффектом, используемый в терапии расстройств нервной системы. Бета-кариофиллен - соединение с доказанным нейропротекторным и противовоспалительным действием, перспективное для применения в профилактике нейродегенеративных заболеваний [Bauerle et al., 2021; Rutnik et al., 2022].

Горькие вещества и органические кислоты. Лупулин и хумулон -биологически активные соединения, обладающие антибактериальным и противогрибковым действием, широко применяемые в фармацевтической промышленности. Валериановая и никотиновая кислоты - органические кислоты, участвующие в метаболических процессах и регуляции нервной активности [Yan et al., 2021; Salihu et al., 2024].

Современные исследования демонстрируют, что экстракты хмеля могут быть эффективны для лечения бессонницы, тревожных расстройств,

воспалительных процессов и метаболических заболеваний. Кроме того, за счёт эстрогенной активности некоторые соединения хмеля рассматриваются как перспективные компоненты для гормональной терапии [Bauerle et al., 2024; Eriksen et al., 2021]. Появились данные о способности экстрактов хмеля предотвращать такие заболевания, как стеатоз печени, воспаление, фиброз, ожирение и диабет [Mahli et al., 2018; Stanius et al., 2022].

В косметологии экстракты хмеля применяются для осветления кожи и борьбы со старением за счёт ингибирования тирозиназы. В пищевой промышленности они используются как натуральные консерванты и ароматизаторы благодаря своим антиоксидантным и антимикробным свойствам. Помимо пищевой и медицинской промышленности, хмель рассматривается как перспективное сырьё для экологических технологий, включая создание биологических инсектицидов[Bauerle et al., 2024; Eriksen et al., 2021; Kim et al., 2016; Carbone et al., 2022; Chen et al., 2023; Sagan et al., 2024].

Несмотря на то, что основным используемым компонентом остаются женские соцветия («шишки»), полезные вещества выявлены не только в соплодиях, но и в листьях, стеблях и корневищах хмеля (Humulus lupulus L.). Согласно исследованиям [Veronika et al., 2015; Rodolfi et al., 2021; Stanius et al., 2022], эти части растения содержат биоактивные соединения, которые играют важную роль в защите растения от биотических и абиотических стрессов. В частности, листья хмеля богаты терпенами и флавоноидами, которые обеспечивают устойчивость растения к неблагоприятным внешним воздействиям и усиливают его адаптивные способности.

Таким образом, хмель обыкновенный является уникальным биологическим ресурсом благодаря широкому спектру полезных свойств. Его применение выходит за рамки традиционного пивоварения, охватывая такие области, как медицина, косметология и экотехнологии. В связи с этим изучение хмеля и разработка методов его культивирования с целью повышения

продуктивности по целевым биологически активным веществам имеет как фундаментальное, так и прикладное значение.

Природные популяции хмеля (Humulus lupulus L.) в условиях Республики Татарстан характеризуются ограниченной биомассой и низким уровнем потенциального сбора растительного сырья, что свидетельствует о слабой продуктивности без внешнего воздействия. Эти наблюдения согласуются с выводами [Milosta, Regilevich, 2007], которые отмечают, что без применения агротехнических приёмов и микроудобрений урожайность хмеля остаётся на низком уровне.

Одним из подходов, способствующих повышению продуктивности растений, является использование регуляторов роста, в частности эпин-экстра гибберсиба и пудрета. Они могут быть использованы для изменения фитохимического состава листьев и «шишек» хмеля, а также для усиления антиоксидантной активности растений. Согласно [Robil et al., 2024], гиббереллины играют ключевую роль в оптимизации роста растений, повышении их устойчивости к неблагоприятным условиям и улучшении качества урожая, что расширяет их потенциальное применение для хмеля. [Minguet et al., 2014], подчеркивают значение гиббереллинов в улучшении способности растений справляться с абиотическими стрессами, а также их роль в регуляции метаболических процессов. В работе [Kosakivska, Vasyuk 2021] также показано, что гиббереллины могут быть эффективно использованы для повышения жизнеспособности растений в стрессовых условиях, в частности за счёт их влияния на синтез защитных веществ и регулирование роста.

Брассиностероиды выступают как многофункциональные регуляторы роста, влияя на клеточное деление, дифференциацию и экспрессию генов. Одной из важнейших функций брассиностероидов является их способность повышать устойчивость растений к абиотическим стрессам, включая засуху, солевой стресс и высокие температуры [Nolan et al., 2020]. Брассиностероиды регулируют экспрессию стресс-ассоциированных генов, улучшают физиологическое

состояние растений и способствуют активации антиоксидантной защиты и накоплению осмолитов, что помогает растениям адаптироваться к неблагоприятным условиям [Ы et а1., 2021].

Эти данные усиливают аргументы в пользу использования регуляторов роста растений в данном исследовании.

Цель и задачи исследования. Оценка ресурсного потенциала природных популяций Нити1ш 1ири1ш L. в условиях РТ и разработка подходов к повышению его продуктивности с помощью биорегуляторов роста растений.

Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать ресурсный потенциал Нити1ш 1ири1ш L. в различных эколого-ценотических условиях Республики Татарстан.

2. Изучить динамику фитохимического состава хмеля в течение вегетационного периода.

3. Провести сравнительный анализ содержания биологически активных веществ при разных способах обработки биологическими регуляторами роста растений хмеля.

4. Изучить влияние регуляторов роста растений на содержание фенольных соединений, витаминов, белков, сахаров, и антиоксидантную активность растений хмеля.

5. Сравнить фитохимический состав листьев и «шишек» хмеля.

6. Оценить действие регуляторов роста растений на содержание ксантогумола и горьких кислот в «шишках» хмеля.

7. Исследовать влияния регуляторов роста и биоудобрения на антиоксидантную систему хмеля при действии пониженных температур.

Научная новизна работы. Исследование расширяет научные представления о биологии и экологии природных популяций хмеля (НитЫш 1ири1ш L.) в условиях Республики Татарстан. Впервые проведена оценка ресурсного потенциала Нити1ш 1ири1ш L. в условиях Республики Татарстан.

Впервые изучена динамика фитохимического состава листьев и «шишек» хмеля на протяжении нескольких вегетационных периодов, что позволило выявить факторы, влияющие на процесс накопления биологически активных веществ у этого растения. Впервые проведено комплексное изучение действия биорегуляторов роста и развития растений на фитохимический состав и антиоксидантную активность листьев и «шишек» хмеля обыкновенного (Нити1ш 1ири1ш Ь.). Регуляторы роста по-разному влияли на содержание исследуемых веществ. Гибберсиб (666,6 мкг/л) в большей степени повышал содержание каротиноидов, белков и сахаров, пудрет (10 г/кг почвы) - витаминов и белков. Эпин-экстра (500 мкл/л) увеличивал содержание фенольных соединений, в т.ч. ксантогумола, горьких кислот и эфирного масла, открывая возможности для использования хмеля в фармации и ароматерапии.

Впервые проведено сравнительное исследование фитохимического состава листьев и «шишек» хмеля, выявлено, что листья хмеля также можно использовать в фармацевтической промышленности, обеспечивая безотходный подход и повышение биологической ценности конечной продукции.

Впервые изучено влияние регуляторов роста (гибберсиб, эпин-экстра) и биоудобрения (пудрет) на антиоксидантную систему хмеля в условиях воздействия пониженных температур. Полученные результаты вносят значимый вклад в понимание адаптационных механизмов растений в стрессовых условиях окружающей среды.

Теоретическая и практическая значимость. Установлено, что экзогенная регуляция ростовых процессов с применением биостимуляторов (гибберсиб, эпин, пудрет) достоверно повышает продуктивность культивируемых популяций Нити1ш 1ири1ш Ь. в условиях Республики Татарстан.

Полученные данные углубляют понимание процессов формирования устойчивости и функциональных реакций растительных организмов в динамично изменяющихся внешних условиях, что открывает новые перспективы для применения биорегуляторов в агробиологии. Полученные данные о

фитохимическом составе листьев и «шишек» хмеля обыкновенного (Нитии 1ири1ш L.) при различных способах обработки и на различных стадиях вегетационного периода углубляют понимание биологических процессов, связанных с накоплением биологически активных веществ в этих органах. Результаты могут быть использованы при разработке эффективных методов культивирования хмеля, направленных на получение сырья с повышенным содержанием биологически активных веществ, востребованных в фармацевтической, косметической и пищевой промышленности, в условиях нестабильного климата.

Результаты могут быть использованы при чтении лекций по курсам «Сельскохозяйственная биотехнология», «Прикладная биотехнология», «Физиология растений», «Ботаника», «Растительные ресурсы» для бакалавров и магистров биологии и специалистов фармацевтов.

Методология и методы диссертационного исследования. В ходе диссертационной работы были применены как традиционные методы биохимического анализа, так и современные подходы, направленные на изучение фитохимического состава растений и их антиоксидантной активности. Раздел «Материалы и методы» содержит подробное описание используемых методик, а также параметров и условий проведения экспериментов. Это обеспечивает высокую точность полученных данных и возможность их воспроизведения в аналогичных исследованиях.

Положения, выносимые на защиту 1. Химический состав листьев и «шишек» хмеля обыкновенного (Нити1ш 1ири1ш L.) в искусственных посадках характеризуется ежегодной стабильностью и не зависит от погодных условий. Изменения фитохимического состава хмеля в течение вегетационного периода и под влиянием регуляторов роста являются факторами, влияющими на накопление биологически активных веществ в растении.

2. Ростовые вещества гибберсиб (666,6 мкг/л), эпин-экстра (500 мкл/л) и пудрет (10 г/кг почвы) увеличивают содержание биологически активных веществ и антиоксидантную активность в листьях и «шишках» хмеля, улучшая качество сырья и повышая устойчивость растений.

3. Листья растений хмеля наряду с «шишками» являются источником ценных биологически активных веществ.

4. Регулятор роста растений эпин-экстра (500 мкл/л) стимулирует образование ксантогумола в «шишках» хмеля.

Степень достоверности и апробация работы. Описанные в диссертационной работе результаты получены с использованием современных методов исследований. Представленные в работе результаты являются многократной повторностью экспериментов. Результаты опубликованы в рецензируемых российских и зарубежных журналах и доложены на всероссийских и международных конференциях, соответствующих тематике диссертационного исследования.

Материалы диссертационного исследования были представлены на следующих научных мероприятиях: Материалы представлены на Международной научно-практической конференции «Биотехнология: Наука и практика» (г. Воронеж, 2023 г.), X Съезде Общества физиологов растений России «Биология растений в эпоху глобальных изменений климата» (г. Уфа, 18-23 сентября 2023 г.), VII Международной научной конференции «Генетика, геномика, биоинформатика и биотехнология растений (РЬАКГСЕК 2023)» (г. Казань, 10-15 июля 2023 г.), 77-й Международной школе-конференции молодых учёных (г. Нижний Новгород, 15-19 апреля 2024 г.), IV Всероссийской научной конференции с международным участием, посвящённой памяти профессора С.Ю. Веселова (г. Уфа, 17-18 октября 2024 г.), 78-й Всероссийской школе-конференции молодых учёных с международным участием (г. Нижний Новгород, 14-18 апреля 2025 г.), Всероссийской научной конференции с международным участием в рамках годичного собрания Общества физиологов растений России

(г. Якутск, 24 июня - 1 июля 2025 г.), III Всероссийской конференции с международным участием «Экобиотех» (г. Уфа, 1- 4 октября 2025 г.).

По материалам диссертации было подготовлено 12 публикаций, в том числе 1 статья в научных журналах из базы данных Scopus, 2 - в журналах из базы данных ВАК, Scopus / Web of Science, 1- в журналах, рекомендованных ВАК, и 8 тезисов докладов на Международных и Всероссийских конференциях и конгрессах.

Личный вклад автора. Исследование выполнялось на базе кафедры ботаники и физиологии растений Казанского (Приволжского) федерального университета, в лаборатории биохимии растений Института фундаментальной медицины и биологии в период с 2020 по 2025 годы. Постановка целей и задач исследования, а также выбор применяемых методов и подходов были разработаны автором совместно с научным руководителем. Автор лично проводил лабораторные эксперименты, анализировал полученные данные, осуществлял их обработку и подготовил научные публикации, в которых изложены ключевые выводы и достижения выполненной работы.

Структура диссертации. Диссертация представлена на. 201 страницах машинописного текста и включает следующие разделы: введение, обзор литературы, раздел «Материалы и методы исследований», основную экспериментальную часть, заключение, выводы и список использованных источников, содержащий 345 наименований. В работе также представлены 42 иллюстраций и 5 таблиц, которые визуализируют полученные результаты и дополняют аналитический материал.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Хмель обыкновенный (Humulus lupulus L.) как ресурсное растение 1.1.1. Ботанико-морфологическая, географическая, характеристика растений рода Humulus lupulus L.

Хмель обыкновенный (Humulus lupulus L.) относится к семейству коноплевых (Cannabaceae), а именно к роду Humulus, который вместе с девятью другими родами, включая Cannabis, составляет это семейство. Род Humulus включает в себя 3 вида: H. lupulus L., H. japonicus и H. yunnanensis, которые являются травянистыми альпинистами с трихомами для прикрепления к опорным кольям. Вид Humulus lupulus L. также относится к следующим классификационным группам: класс Magnoliopsida, подкласс Hamamelididae и порядок Urticales [Turner et al., 2011; Jin et al., 2020].

Хмель обыкновенный - многолетник с раздельными мужскими и женскими растениями. Листья у хмеля пальчатые, разделенные на доли, с мелкими волосками на поверхности. Более мелкие листья чаще всего не имеют долей. Края листьев хмеля имеют остроконечные зубцы. Растение имеет как воздушную, так и подземную систему стеблей. Крепкий неодревесневший ветвистый зеленый воздушный стебель поднимается вверх, закручиваясь на верхушке по часовой стрелке. Высота растения при полной вегетативной зрелости может достигать 10-18 м [Neve, 2010; Korpelainen, Pietilainen, 2021].

Женские соцветия, называемые «хмель» или «стробилы», имеют конусовидную форму с перекрывающимися прицветниками и прицветничками. Женские цветки состоят из завязи и длинного, тонкого рыльца, которые расположены парами между перекрывающимися прицветниками [Paguet et al., 2022]. Мужские растения образуют рыхлые соцветия с гроздьями от 20 до 100 звездообразных цветков без лепестков. Мужские цветки также имеют желтые или беловато-зеленые чашелистики и тычинки с железистыми пыльниками.

В растениях хмеля существует два типа пельтатных и один головчатый тип железистых трихом. Лупулиновые железы, представляющие собой трихомы пельтатного типа, расположены на абаксиальной стороне прицветников на «шишках» и на листьях. Головчатых трихом меньше и находятся в основном на прицветниках и листьях [Nagel et al., 2008]. В железистых трихомах, которые являются эпидермальными выростами, происходит синтез ключевых коммерчески важных фитохимических веществ хмеля [McAdam et al., 2014; Campos et al., 2023].

Механизм секреции Humulus lupulus L. включает три типа структур: фенольные идиобласты, железистые трихомы и трубчатую структуру млечников, состоящую из живых клеток. Железистые трихомы играют ключевую роль в биосинтезе и накоплении защитных соединений, обеспечивая адаптацию растения к ультрафиолетовому излучению, патогенам и травоядным животным [Bauerle et al., 2024; Eriksen et al., 2021; Kim et al., 2016]. Фенольные идиобласты широко распространены по листьям, корням и цветочным частям хмеля и, в отличие от трихома, могут участвовать в защите растительных тканей и органов от чрезмерного окислительного стресса. Трубчатая структура млечников, представленная живыми клетками, также рассматривается как потенциальный компонент секреторной системы, особенно в контексте физиологической активности регенератов хмеля при адаптации к условиям ex vitro [Ramos et al., 2024].

Корневая система хмеля подразделяется на скелетные и верхушечные активные корни. Скелетные корни имеют вторичные утолщения и составляют основу всей корневой системы. Активные верхушки корней имеют первичное строение [Rybácek, 2012; Shephard et al., 2000].

Выращивание хмеля первоначально было сосредоточено между 40° и 50° северной и южной широты, откуда оно распространилось на другие регионы в связи с глобализацией производства пива [Acosta-Rangel et al., 2021; Rossini et al., 2021]. К основным странам, выращивающим хмель, относятся Германия, США,

Чехия, Польша и Словения, на долю которых приходится около 85 % посевных площадей и производства в мире (IHGC. 2023). В последнее время интерес к поиску новых мест для выращивания хмеля постоянно растет, что отчасти объясняется ростом популярности мелкосерийного ремесленного пивоварения и других многочисленных полезных свойств этого растения. Расширение территорий, занятых выращиванием хмеля, наблюдается в Бразилии, Италии и Франции, а также в России, где происходит возрождение его культивирования [Dauger, 2022; Khlynovskiy et al., 2023; Ruggeri et al., 2023].

В основном культивируются женские растения хмеля благодаря их хозяйственному значению. Хмель традиционно выращивают вегетативно, используя узловые черенки и корневища, полученные от корневищ, чтобы сохранить желаемые клональные свойства от урожая к урожаю. Черенки и корневища либо высаживаются непосредственно на хмелевых полях, либо выращиваются в питомниках и в дальнейшем пересаживаются на расстояние 22,5 метра [Di Sario et al., 2025; Paguet et al., 2022; Nizomova et al., 2023].

Альтернативные методы размножения хмеля включают применение биотехнологических методов и использование семян. С помощью методов клонального микроразмножения было достигнуто быстрое размножение посадочного материала. Методы культуры растительных тканей также полезны для освобождения от вирусных инфекций растений хмеля [de Souza et al., 2021; Postman et al., 2005]. Размножение семенами в основном используется в селекционных программах, направленных на выведение новых сортов.

Плантации хмеля требуют использования шпалер для поддержки вьющихся стеблей, чтобы стимулировать их рост вверх для увеличения урожая [Carrubba et el., 2022]. При выборе материалов для шпалеры необходимо учитывать их прочность и способность выдерживать вес. Шпалеры на хмельных полях чаще всего представляют собой постоянные столбы, которые могут быть изготовлены из обработанного дерева, металла или бетона, к которым крепятся струны. Доказано, что конструкция и высота шпалеры влияют на урожайность

хмеля. В зависимости от места выращивания хмеля выбирается различная высота шпалеры - от примерно 5,5 метров в Англии и США до 7,5 метров в Германии. V-образные шпалеры, имеющие три троса на ряд, по сравнению с прямыми шпалерами с одним тросом на ряд, повысили урожайность хмеля на 24% в субтропических климатических условиях Флориды. Увеличение высота шпалеры с 3,75 до 5,5 метров также увеличила урожайность во Флориде [Agehara et al., 2020; Gallardo et al., 2025]. Для мелких производителей хмеля использование низко расположенных шпалер повышает эффективность борьбы с болезнями и вредителями, снижает затраты на сбор урожая и содержание полей [Rossini et al., 2021].

Хмель хорошо растет на хорошо дренированных почвах с диапазоном pH выше 6,5. Для поддержания pH почвы рекомендуется известкование [Alfonso et al., 2020]. Однако растение может процветать на различных типах почв - от глинистых, на приподнятых грядках, до суглинистых. Растение требует достаточного количества воды в период вегетативного роста, но плохо растет на заболоченных почвах [Alfonso et al., 2020].

Для реализации потенциала роста хмеля решающую роль играют питательные вещества в почве. В зависимости от сорта хмеля и места посадки могут потребоваться особые режимы внесения питательных веществ для оптимального роста и развития, а также качества урожая. Наибольшее значение для качества урожая имеет удовлетворение потребностей в азоте, калии и фосфоре [Rossini et al., 2021]. Сообщается, что высокое содержание железа и марганца значительно снижает урожайность хмеля [Alfonso et al., 2020]. Также сообщается, что внесение навоза на поля для выращивания хмеля положительно влияет на результаты его роста. Поскольку наиболее коммерчески важной частью растений на большинстве плантаций хмеля являются женские соцветия, большая часть регенерированных вегетативных материалов, таких как листья и стебли, оставляемые на фермерских полях, представляют собой богатый источник

питательных веществ для почвы в следующем сезоне выращивания [Wong et al., 2017; Clare et al., 2024].

Посадка хмеля начинается весной, а период вегетативного роста продолжается до июля. Репродуктивная стадия начинается в основном в конце июля - августе. Стадии роста хмеля проходят последовательно: всходы, развитие листьев, образование пазушных побегов, удлинение лозы, появление соцветия, цветение, развитие «шишек», зрелость «шишек» и сенисценция, после этого наступает стадия покоя [Rossini et al., 2021]. Однако фенологические этапы хмеля определяются не только генетической предрасположенностью, которая обуславливает сортовые различия, но и рядом факторов окружающей среды, включая температурный режим, длину светового дня, уровень освещённости, а также доступность воды и питательных веществ. [Acosta-Rangel et al., 2024; Agehara et al., 2024].

1.1.2. Фитохимический состав Humulus lupulus L.

Хмель привлекает большое внимание исследователей благодаря своему богатому химическому составу. Из хмеля было выделено более 1000 химических соединений. Хотя все части растения богаты фитохимическими веществами, наиболее известной частью с точки зрения содержания фитохимических веществ являются «шишки», которые обладают железистыми трихомами [McAdam et al., 2014]. Около 15 - 30 % фитохимических веществ содержится в прицветниках «шишек». Синтез и накопление вторичных метаболитов происходят в лупулиновых железах. В химическом составе «шишек» хмеля обнаружены смолы, эфирные масла, полифенольные соединения, пренилированные флавоноиды, а также такие компоненты, как моносахариды, пектиновые вещества, аминокислоты, белки, липиды, воск, целлюлоза и лигнин, Глюкоза, фруктоза и мальтоза являются основными сахарами, которые более доступны в «шишках». Аминокислоты, содержащиеся в экстрактах хмеля, - это аспарагин,

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Аль Хуссейн Далаль, 2026 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

1. Abram, V. A comparison of antioxidant and antimicrobial activity between hop leaves and hop cones / V. Abram, B. Ceh, M. Vidmar, M. Hercezi, N. Lazic, V. Bucik, S. Smole Mozina, I.J. Kosir, M. Kac, L. Demsar, N. Poklar Ulrih // Ind Crops Prod. -2015. - Vol. 65. - P. 124-134.

2. Acosta-Rangel, A. Double-season production of hops (Humulus lupulus L.) with photoperiod manipulation in a subtropical climate / A. Acosta-Rangel, S. Agehara, J. Rechcigl // Scientia Horticulturae. - 2024. - Vol. 332. - P. 1-10.

3. Acosta-Rangel, A. Hop (Humulus lupulus L.) phenology, growth, and yield under subtropical climatic conditions: Effects of cultivars and crop management / A. Acosta-Rangel, J. Rechcigl, S. Bollin, Z. Deng, S. Agehara // Aust. J. Crop Sci. - 2021.

- Vol. 15. - P. 764 -772.

4. Aeby, H. Catalase in vitro / H. Aeby // Methods in Enzymology. - 1984. - Vol. 105. - P. 121-126.

5. Afonso, S. The phenolic composition of hops (Humulus lupulus L.) was highly influenced by cultivar and year and little by soil liming or foliar spray rich in nutrients or algae / S. Afonso, M.I. Dias, I.C.F.R. Ferreira, M. Arrobas, M. Cunha, L. Barros, M. Â. Rodrigues // Horticulturae. - 2022. - Vol. 8. - № 5. - P.18.

6. Agati, G. Flavonoids as antioxidants in plants: location and functional significance / G. Agati, E. Azzarello, S. Pollastri, M. Tattini // Plant Science. - 2012.

- Vol. 196. - P. 67-76.

7. Agehara, S. Hop Yard Establishment and Trellis Construction in Florida / S. Agehara, A. Acosta-Rangel, Z. Deng, J. Rechcigl, S. Bollin // EDIS. - 2020. - HS1354.

- P. 7.

8. Agehara, S. Phenological Assessment of Hops (Humulus lupulus L.) Grown in Semi-Arid and Subtropical Climates Through BBCH Scale and a Thermal-Based Growth Model / S. Agehara, A. Carrubba, M. Sarno, R. Marceddu// Agronomy. -2024- Vol. 14. - № 12. - P. 12.

9. Alehaideb, Z. Furanocoumarin bioactives in the Apiceae and Rutaceae families of plants / Z. Alehaideb, M. Sheriffdeen, F.C.P. Law // Can. J. Pure Appl. Sci. - 2017.

- Vol.11. - № 2. - P. 4157- 4167.

10. Al Hussein, D. Phytochemical composition of Humulus Lupulus L. in ontogeny under different treatments / D. Al Hussein, E. Almugrabi, A. Mostyakova, O. Timofeeva // E3S Web of Conferences. - 2023. - Vol. 381. - P. 11.

11. Alappat, B. Anthocyanin pigments: Beyond aesthetics / B. Alappat, J. Alappat // Molecules. - 2020. - Vol. 25. - № 23. - P. 1-17.

12. Alonso-Esteban, J.I. Phenolic composition and antioxidant, antimicrobial and cytotoxic properties of hop (Humulus lupulus L.) seeds / J.I. Alonso-Esteban, J. Pinela, L. Barros, A. Ciric, M. Sokovic, R.C. Calhelha, E. Torija-Isasa, M. de Cortes Sánchez-Mata, I.C.F.R. Ferreira // Ind Crops Prod. - 2019. - Vol.134. - P. 154-159.

13. Aloo, B.N. Plant growth-promoting rhizobacterial biofertilizers for crop production: The past, present, and future / B.N. Aloo, V. Tripathi, B.A. Makumba, E.R. Mbega // Frontiers in Plant Science. - 2022. - Vol.13. - P. 15.

14. Almagro, L. Effect of UV light on secondary metabolite biosynthesis in plant cell cultures elicited with cyclodextrins and methyl jasmonate / L. Almagro, A.B. Sabater-Jara, S. Belchí Navarro, F. Fernández-Pérez, R. Bru, M.A. Pedreño // In: Vasanthaiah H., Kambiranda D. Plants and Environment. - 2011. - P. 115-136.

15. Anulika, N.P. The chemistry of natural product: Plant secondary metabolites / N.P. Anulika, E.O. Ignatius, E.S. Raymond, O.I. Osasere, A.H. Abiola // Int. J. Technol. Enhanc. Emerg. Eng. Res. - 2016. - Vol. 4. - № 8. - P. 9.

16. Anteh, J.D. Biochar influences on phytochemical composition and expression genes of curly kale at different treatment times / J.D. Anteh, E. Almugrabi, A. Mostyakova, O. Timofeeva // Turkish Journal of Botany. - 2023. - Vol. 47. - № 6. -P. 529-540.

17. Anwar, A. The physiological and molecular mechanism of brassinosteroid in response to stress: a review / A. Anwar, Y. Liu, R. Dong et al. // Biological Research.

- 2018. - Vol.51. - P. 15.

18. Apel, K. Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction /K. Apel, H. Hirt //Annu. Rev. Plant Biol. - 2004. - Vol. 55. - P. 373399.

19. Astray, G. Humulus lupulus L. as a natural source of functional biomolecules / G. Astray, P. Gullon, B. Gullon, P.E. Munekata, J.M. Lorenzo // Appl Sci. - 2020. -Vol. 10. - P .19.

20. Atteya, A.K.G. Brassinolide maximized the fruit and oil yield, induced the secondary metabolites, and stimulated linoleic acid synthesis of Opuntia ficus-indica oil / A.K.G. Atteya, R.S. El-Serafy, K.M. El-Zabalawy, A. Elhakem, E.A.E. Genaidy // Horticulturae. - 2022. - Vol. 8. - № 5. - P. 15.

21. Awouafack, M.D. Xanthohumol: Recent Advances on Resources, Biosynthesis, Bioavailability and Pharmacology / M.D. Awouafack, Y.-E. Lee, H. Morita // Handbook of Dietary Flavonoids. - 2023. - P. 23.

22. Babenko, L.M. Phenolic compounds in plants: Biogenesis and functions / L.M. Babenko, O.E. Smirnov, K.O. Romanenko, O.K. Trunova, I.V. Kosakivska // Ukrainian Biochemical Journal. - 2019. - Vol. 91. - № 3. - P. 5-18.

23. Bae, J. Activity of catechins and their applications / J. Bae, N. Kim, Y. Shin, S.Y. Kim, Y.J. Kim // Biomedical Dermatology. - 2020. - Vol. 4. - P. 1- 8.

24. Bartwal, A. Role of secondary metabolites and brassinosteroids in plant defense against environmental stresses / A. Bartwal, R. Mall, P. Lohani, S.K. Guru, S. Arora // Journal of Plant Growth Regulation. - 2013. - Vol. 32, №1. - P. 216-232.

25. Bauerle, W.L. Internode elongation and strobili production of Humulus lupulus cultivars in response to local strain sensing / W.L. Bauerle // Sci. Rep. - 2021. - Vol. 11.

- P.9017.

26. Bauerle, W.L. Separate and Combined Effects of Supplemental CO2, Gibberellic Acid, and Light on Hop Quality and Yield / W.L. Bauerle // Plants. - 2024.

- Vol. 13. - № 12. - P.1- 13.

27. Bellincampi, D. Extracellular H2O2 induced by oligogalacturonides is not involved in the inhibition of the Auxin-Regulated rolB gene expression in tobacco leaf

explants / D. Bellincampi, N. Dipperro, G. Salvi, F. Cervcone, G. De Lorenzo // Plant Physiology. - 2000. - Vol. 122. - P. 1379-1386.

28. Bernjak, B. A review of tannins in berries / B. Bernjak, J. Kristl // Agricultura.

- 2020. - Vol. 17. - № 2. - P. 27-36.

29. Bernreuther, A. Multidimensional gas chromatography/mass spectrometry: a powerful tool for the direct chiral evaluation of aroma compounds in plant tissues / A. Bernreuther, P. Schreier //Phytochemical Analysis. - 1991. - Vol. 2. - P. 167-170.

30. Berzina, L. Antiradical and antioxidant activity of compounds containing 1,3-dicarbonyl moiety: An overview / L. Bêrzina, I. Mierina // Molecules. - 2023. - Vol. 28. - № 17. - P. 29.

31. Bhat, M. Synthesis, characterization, and biological study of phenylalanine amide derivatives / M. Bhat, S.L. Belagali, P.R. Shastry, V.R. Rai // Monatshefte für Chemie. - 2016. - Vol. 147. - P. 2001-2008.

32. Bhatla, S.C. Plant Physiology, Development and Metabolism / S.C. Bhatla, M.A. Lal // Springer Nature Singapore. - 2018. - P.1237.

33. Bilska, A. Antioxidant activity of Humulus lupulus phenolic hop extracts in creating a new pâté: An element affecting fat stability and microbiological quality during storage / A. Bilska, J. Kobus-Cisowska, J. Wojtczak, R. Kowalski, E. Kaczmarek // Molecules. - 2024. - Vol.29. - № 7. - P. 15.

34. Bocquet, L. Humulus lupulus L., a very popular beer ingredient and medicinal plant: overview of its phytochemistry, its bioactivity, and its biotechnology / L. Bocquet, S. Sahpaz, J.L. Hilbert, C. Rambaud, C. Rivière // Phytochem Rev. - 2018.

- Vol. 17. - P. 1047-1090.

35. Borriss, R. Use of plant-associated Bacillus strains as biofertilizers and biocontrol agents in agriculture / R. Borriss // In: Bacteria in Agrobiology: Plant Growth Responses. - Springer. - 2011. - P. 41-76.

36. Boudet, A.M. Evolution and current status of research in phenolic compounds / A.M. Boudet // Phytochemistry. - 2007.- Vol. 68.-P. 2722-2735.

37. Brodowska, K.M. Natural flavonoids: classification, potential role, and application of flavonoid analogues / K.M. Brodowska // European Journal of Biological Research. - 2017. - Vol. 7. - № 2. - P. 108-123.

38. Camara, J.S. Plant-Derived Terpenoids: A Plethora of Bioactive Compounds with Industrial and Biomedical Applications / J.S. Camara, R. Perestrelo, R. Ferreira, C.V. Berenguer, J.A.M. Pereira, P.C. Castilho// Molecules. - 2024. - Vol. 29. - № 16. - P. 35.

39. Campos, O.P. Morphological characteristics, trichomes, and phytochemistry of inflorescences of Humulus lupulus L.: Comparison of cropping systems and varieties / O.P. Campos, F.M. Leme, G.C. Fortuna, J.A. de O. Gomes, C.S. Neves, R. do C. de O. Arruda, F.P.G. Bonfim // Australian Journal of Crop Science. - 2023. - Vol. 17. -№ 3. - P. 263-274.

40. Carbone, K. An Updated Review of the Genus Humulus: A Valuable Source of Bioactive Compounds for Health and Disease Prevention / K. Carbone, F. Gervasi // Plants. - 2022. - Vol 11. - № 24. - P.29.

41. Carrubba, A. Hop (Humulus lupulus L.): Suitability of traditional cultivars to a low-trellis farming system in a semiarid environment / A. Carrubba, R. Marceddu, M. Sarno // HortScience. - 2022. - Vol. 57. - № 11. - P. 1409-1415.

42. Carr, A.C. Synthetic or food-derived vitamin C—Are they equally bioavailable? / A.C. Carr, M.C. Vissers // Nutrients. - 2013. - Vol. 5. - № 11. - P. 4284-4304.

43. Ceh, B. Relationships between xanthohumol and polyphenol content in hop leaves and hop cones with regard to water supply and cultivar / B. Ceh, M. Kac, I.J. Kosir, V. Abram // Int J Mol Sci. - 2007. - Vol.8. - № 9. - P. 989-1000.

44. Chaitanya, K.V. Variation in heat stress-induced antioxidant enzyme activities among three mulberry cultivars / K.V. Chaitanya, D. Sundar, P.P. Jutur, A. Ramachandra Reddy// Plant Growth Regulation. - 2002. - Vol. 36. - P. 175-180.

45. Chiancone, B. Vitro-derived hop (Humulus lupulus L.) leaves and roots as source of bioactive compounds: Antioxidant activity and polyphenolic profile / B.

Chiancone, V. Guarrasi, L. Leto, L. Del Vecchio, L. Calani, T. Ganino, M. Galaverni, M. Cirlini // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. - 2023. - Vol. 153. - № 2. - P. 295306.

46. Chaudhary, P. Overview of biofertilizers in crop production and stress management for sustainable agriculture / P. Chaudhary, S. Singh, A. Chaudhary, A. Sharma, G. Kumar // Frontiers in Plant Science. - 2022. - Vol. 13. -P.21.

47. Chen, X. The hops (Humulus lupulus L.) genome contains a mid-sized terpene synthase family that shows wide functional and allelic diversity / X. Chen, M.Y. Wang, C.H. Deng, R.A. Beatson, K.R. Templeton, R.G. Atkinson, N.J. Nieuwenhuizen // BMC Plant Biology. - 2023. - Vol. 23. -P.15.

48. Choi, J.M. Increased IL-2 production in T cells by xanthohumol through enhanced NF-AT and AP-1 activity / J.M. Choi, H.J. Kim, K.Y. Lee, H.J. Choi, I.S. Lee, B.Y. Kang // Int. Immunopharmacol. - 2009. - Vol. 9. - P. 103-107.

49. Chun, O.K. Daily consumption of phenolics and total antioxidant capacity from fruit and vegetables in the American diet / O.K. Chun, D.O. Kim, N. Smith, D. Schroeder, J.T. Han, C.Y. Lee // Science of Food and Agriculture. - 2005. - Vol. 10. -№ 85. - P. 1715-1724.

50. Clare, S.J. An affordable and convenient diagnostic marker to identify male and female hop plants / S.J. Clare et al. // G3: Genes, Genomes, Genetics. - 2024. - Vol. 14. - № 1. - P. 11.

51. Clark, S.M. Transcriptome analysis of bitter acid biosynthesis and precursor pathways in hop (Humulus lupulus) / S.M. Clark, V. Vaitheeswaran, S.J. Ambrose, R.W. Purves, J.E. Page // BMC Plant Biology. -2013. - Vol. 13. - P. 14.

52. Conklin, P.L. Ascorbic acid metabolism and functions / P.L. Conklin, C.H. Foyer, R.D. Hancock, T. Ishikawa, N. Smirnoff // Journal of Experimental Botany. -2024. - Vol. 75. - № 9. - P. 2599-2603.

53. Constabel, P.C. Diverse ecological roles of plant tannins: plant defense and beyond / P.C. Constabel, K. Yoshida, V. Walker // Recent Advances in Polyphenol Research. - 2014. - P. 115-142.

54. Croteau, R. Function of natural products as secondary metabolites in plants [Text] / R. Croteau, T.M. Kutchan, N.G. Lewis // American Society of Plant Physiologists. - 2000. - Vol. 40. - P. 115-117.

55. Dabbus-Wah, G. Chemical variability of Corsican hops essential oils and their impact on hop aroma [Text] / G. Dabbus-Wah, A. Valli, F. Tomi, J. Casanova // Foods. - 2023. - Vol. 12. - P. 2613.

56. Dalal, V.K. Modulation of photosynthesis and other proteins during water-stress / V.K. Dalal // Molecular Biology Reports. - 2021. - Vol. 48. - P. 3681-3693.

57. Daphedar, A.B. Plant phenolics compounds and stress management: A review / A.B. Daphedar, S. Khan, S. Kakkalamel, T.C. Taranath // In: Plant Phenolics in Biotic Stress Management. - 2024. - P. 481-502.

58. Dauger, M. Organic hop cultivation in France: 10 years from the first historic grower to the 'neo growers'/ M. Dauger // In: Weihrauch, F. (Ed.) Proceedings of the Scientific-Technical Commission of the International Hop Growers' Convention. -Lugo, Spain. - 2022. - P. 22.

59. de Souza, R. Phenotypical changes in hop induced by micropropagation / R. de Souza, C.R. Adams, R.C. de Melo et al. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. -2021. - Vol. 147. - P. 379-387.

60. de-Souza, R. Growth regulators and their reflection on different hop genotypes cultivated under in vitro conditions / R. de-Souza, C.R. Adams, R.C.de-Melo, A.F. Guidolin, A. Michel, J.L.M. Coimbra // Brazilian Journal of Biology. - 2022. - Vol. 82. - P. 1-8.

61. De Smidt, O. Comparison of major compounds in essential oils obtained by steam distillation from fresh plant material of South African hop cultivars / O. De Smidt, W.S. Jansen van Rensburg, J.M. Brand // Life. - 2025. - Vol. 15. - № 2. - P. 282.

62. de-Souza, R. Growth regulators and their reflection on different hop genotypes cultivated under in vitro conditions / R. de-Souza, C.R. Adams, R.C. de-Melo, A.F.

Guidolin, A. Michel, J.L.M. Coimbra // Brazilian Journal of Biology. - 2022. - Vol. 82. -P.1- 8.

63. Dedei, A.J. Assessment of mineral nutrient impact on metabolites accumulation in kale (Brassica oleracea var. sabellica) / A.J. Dedei, O.A. Timofeeva, A.A. Mostyakova, // Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture. - 2021. - Vol. 13. -№ 3. - P. 208-224.

64. Deng, B. The regulatory role of riboflavin in the drought tolerance of tobacco plants depends on ROS production / B. Deng, X. Jin, Y. Yang, Z. Lin, Y. Zhang // Plant Growth Regulation. - 2014. - Vol. 72. - № 3. - P. 269-277.

65. Deng, X.-G. Role of brassinosteroid signaling in modulating Tobacco mosaic virus resistance in Nicotiana benthamiana / X.-G. Deng, T. Zhu, D.-W. Zhang, H.-H. Lin// Scientific Reports. - 2016. - Vol. 6. - P.14.

66. Deng, Y. Biosynthesis and regulation of phenylpropanoids in plants / Y. Deng, S. Lu // Critical Reviews in Plant Sciences. - 2017. - Vol. 36. - № 4. - P. 257-290.

67. Di Sario, L. Micropropagation of Mapuche hop and evaluation of synthetic seed storage conditions / L. Di Sario, M.F. Zubillaga, C.F. Zepeda Moreno, G.A. Pizzio, P.A. Boeri // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. - 2025. - Vol. 160. - P.14.

68. Divi, U.K. Brassinosteroids confer stress tolerance / U.K. Divi, P. Krishna // In: Plant Stress Biology: From Genomics to Systems Biology. - 2010. - P. 119-135.

69. Doddapattar, P. Xanthohumol ameliorates atherosclerotic plaque formation, hypercholesterolemia, and hepatic steatosis in ApoE-deficient mice / P. Doddapattar, B. Radovic, J.V. Patankar, S. Obrowsky, K. Jandl, C. Nusshold, D. Kolb, N. Vujic, L. Doshi, P.G. Chandak, M. Goeritzer, H. Ahammer, G. Hoefler, W. Sattler, D. Kratky // Molecular Nutrition & Food Research. - 2013. - Vol. 57. - № 10. - P. 1718-1728.

70. Dorais, M. Effect of cultural management on tomato fruit health qualities / M. Dorais // Acta Horticulturae. - 2007. - Vol. 744. - P. 279-294.

71. Dorman, H.J. Antimicrobial agents from plants: antibacterial activity of plant volatile oils / H.J. Dorman, S.G. Deanis // Journal of Applied Microbiology. - 2008. -Vol. 88. - P. 308-316.

72. Dresel, M. Sensomics Analysis of Key Bitter Compounds in the Hard Resin of Hops (Humulus lupulus L.) and Their Contribution to the Bitter Profile of Pilsner-Type Beer / M. Dresel, A. Dunkel, T. Hofmann // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2015. - Vol. 63. - № 27. - P. 3402 -3018.

73. Dwivedi, S. Molecular structure, biological functions, and metabolic regulation of flavonoids /S. Dwivedi, C. Malik, V. Chhokar //Plant Biotechnology: Recent Advancements and Developments. - Singapore: Springer, 2017. - P. 171-188.

74. Eggersdorfer, M. Carotenoids in human nutrition and health / M. Eggersdorfer, A. Wyss // Archives of Biochemistry and Biophysics. - 2018. - Vol.652. - P. 18-26.

75. El-Assri, E.M. Wild Chamomile (Matricaria recutita L) from the Taounate Province, Morocco: Extraction and Valorisation of the Antibacterial Activity of its Essential Oils / E.M. El-Assri, N. Eloutassi, A. El Barnossi, F. Bakkari, A. Hmamou, A. Bouia // Tropical Journal of Natural Product Research. - 2021. - Vol. 5. - № 5. -P. 883-888.

76. EL Sabagh, A. Phytohormones as growth regulators during abiotic stress tolerance in plants / A. EL Sabagh, M.S. Islam, A. Hossain, M.A. Iqbal, M. Mubeen, M. Waleed, M.T. Abdelhamid // Frontiers in Agronomy. - 2022. - Vol. 4. -P.16.

77. Eran, P. Why do plants produce so many terpenoid compounds? / P. Eran, R.A. Robert // New Phytologist. - 2018. - Vol. 220. - P. 692-702.

78. Eriksen, R.L. Gene expression for secondary metabolite biosynthesis in hop (Humulus lupulus L.) leaf lupulin glands exposed to heat and low-water stress / R.L. Eriksen, L.K. Padgitt-Cobb, M.S. Townsend, J.A. Henning // Scientific Reports. -2021. - Vol. 11. - P.18.

79. Esfandiari, N. Effect of the processing conditions on the supercritical extraction and impregnation of rosemary essential oil in linear low-density polyethylene films / N. Esfandiari, A. Rojas, A. Babhadiashar, M.J. Galotto, N.S. Ardestani, S.A. Sajadian // Processes. - 2023. - Vol. 11. - № 1. - P. 11.

80. Eyres, G. Hop essential oil: Analysis, chemical composition and odor characteristics / G. Eyres, J.-P. Dufour // In: Preedy V. (Ed.) Beer in Health and Disease Prevention. - Academic Press. - 2009. - P. 375-385.

81. Faivre, C. Humulus lupulus L. / C. Faivre, K. Ghedira, P. Goetz, R. Lejeune // Phytothérapie. - 2007. - Vol. 5. - № 2. - P. 86-89.

82. Fàbregas, N. The metabolic response to drought / N. Fàbregas, A.R. Fernie // Journal of Experimental Botany. - 2019. - Vol. 70. - № 4. - P. 1077-1085.

83. Falleh, H. Essential oils: A promising eco-friendly food preservative /H. Falleh, M. Jemaa, M. Saada, R. Ksouri //Food Chemistry. - 2020. - Vol. 330. - P.41.

84. Farag, M.A. Metabolite profiling and fingerprinting of commercial cultivars of Humulus lupulus L. (hop): A comparison of MS and NMR methods in metabolomics / M.A. Farag, A. Porzel, J. Schmidt, L.A. Wessjohann // Metabolomics. - 2011. -Vol.8. - № 3. - P. 492-507.

85. Fernández-Aparicio, M. Inhibition of Orobanche crenata seed germination and radicle growth by allelochemicals identified in cereals / M. Fernández-Aparicio, A. Cimmino, A. Evidente, D. Rubiales // Journal of Agricultural and Food Chemistry. -2013. - Vol.61. - № 41. - P. 9797-9803.

86. Ferrentino, G. Extraction of Essential Oils from Medicinal Plants and their Utilization as Food Antioxidants / G. Ferrentino, K. Morozova, C. Horn, M. Scampicchio // Current Pharmaceutical Design. - 2020. - Vol. 26. - P. 519-541.

87. Finkelstein, R.R. Abscisic Acid Signalling in Seeds and Seedlings / R.R. Finkelstein, S.S.L. Gampala, C. Rock // The Plant Cell. - 2002. - Vol. 18. - P. 15-45.

88. Fortuna, G.C. Agronomic performance of Humulus lupulus L. varieties cultivated in organic and conventional systems in Sâo Paulo center-west, Brazil / G.C. Fortuna, J.A.O. Gomes, O.P. Campos, C.S. Neves, F.P.G. Bonfim // Ciência Rural. -2023. - Vol. 53. - № 8. -P.6.

89. Francini, A. Biochemical and molecular regulation of phenylpropanoids pathway under abiotic stresses / A. Francini, A. Giro, A. Ferrante // In: Plant signaling molecules. - Woodhead Publishing, 2019. - P. 183-192.

90. Freile-Pelegrín, Y. Bioactive Phenolic Compounds fromAlgae / Y. Freile-Pelegrín, D. Robledo // In: Bioactive Compounds from Marine Foods: Plant and Animal Sources. - 2013. - P. 113-129.

91. Gallardo, M. Optimization of trellis design and height for double-season hop (Humulus lupulus L.) production in a subtropical climate / M. Gallardo, S. Agehara, J. Rechcigl // European Journal of Agronomy. - 2025. - Vol. 162. - P.13.

92. Galán-Pérez, J.A. Determining the effect of soil properties on the stability of scopoletin and its toxicity to target plants / J.A. Galán-Pérez, B. Gámiz, R. Celis // Biology and Fertility of Soils. - 2021. - Vol. 57. - № 5. - P. 643-655.

93. Gao, Y. Epi-brassinolide regulates ZmC4 NADP-ME expression through the transcription factors ZmbHLH157 and ZmNF-YC2 / Y. Gao, X. He, H. Lv, H. Liu, Y Li, Y. Hu, Y. Liu, Y. Huang, J. Zhang// International Journal of Molecular Sciences. -2023. - Vol. 24.- № 5. - P. 1-12.

94. Gaspar, T.H. Chemistry and biochemistry of peroxidases /T. Gaspar, C. Penel, T. Thorpe, H. Grappin//In: Peroxidases: A Survey of Their Biochemical and Physiological Roles in Higher Plants. - University de Geneve Press,1982. - P. 10-60.

95. George, E.F. Plant propagation by tissue culture / E.F. George, M.A. Hall, G.J. Deklerk // Springer. - 2008. - Vol. 1. - P. 79 - 84.

96. Gerhäuser, C. Broad spectrum anti-infective potential of xanthohumol from hop (Humulus lupulus L.) / C. Gerhäuser // Mol. Nutr. Food Res. - 2005. - Vol. 49. -№ 9. - P. 827-831.

97. Gertsch, J. Beta-caryophyllene is a dietary cannabinoid / J. Gertsch, M. Leonti, M. Raduner, I. Ratz, R. Mechoulam // British Journal of Pharmacology. - 2008. - Vol. 153. - № 2. - P. 263-271.

98. Giannopolitis, C.N. Superoxide dismutase I. Occurrence in higher plants /C.N. Giannopolitis, S.K. Ries//Plant Physiol.-1972. - Vol. 59.-P. 309-314.

99. Gharib, F.A.E.L. Impact of Chlorella vulgaris, Nannochloropsis salina, and Arthrospira platensis as bio-stimulants on common bean plant growth, yield and

antioxidant capacity / F.A.E.L. Gharib, K. Osama, A.M. Abd El Sattar, E. Zakaria// Sci. Rep. - 2024. - Vol.14. - № 1. - P. 1398.

100. Han, Y. Brassinosteroid accelerates wound healing of potato tubers by activation of reactive oxygen metabolism and phenylpropanoid metabolism /Y. Han, R. Yang, X. Zhang, Q. Wang // Foods. - 2022. - Vol. 11.- № 7. - P. 15.

101. Habschied, K. Beer polyphenols - Bitterness, astringency, and off-flavors / K. Habschied, I.J. Kosir, V. Krstanovic, G. Kumric, K. Mastanjevic // Beverages. - 2021.

- Vol. 7. - № 2. - P. 38.

102. Harris, R.E. Cyclooxygenase-2 and the inflammogenesis of breast cancer / R.E. Harris, B.C. Casto, Z.M. Harris // World J. Clin. Oncol. - 2014. - Vol. 5. - № 4. - P. 677-692.

103. Hedden, P. Gibberellin biosynthesis and its regulation / P. Hedden, S.G. Thomas // Biochemical Journal. - 2012. - Vol. 444. - № 1. - P. 11-25.

104. Henchion, M. Future protein supply and demand: Strategies and factors influencing sustainable equilibrium / M. Henchion, M. Hayes, A.M. Mullen, M. Fenelon, B. Tiwari // Foods. - 2017. - Vol. 6. -P.21.

105. Henning, J.A. Simple SNP-based minimal marker genotyping for Humulus lupulus L. identification and variety validation / J.A. Henning, J. Coggins, M. Peterson // BMC Res. Notes. - 2015. - Vol. 8. - P. 542.

106. Hertzler, S.R. Plant proteins: Assessing their nutritional quality and effects on health and physical function / S.R. Hertzler, J.C. Lieblein-Boff, M. Weiler, C. Allgeier // Nutrients. - 2020. - Vol. 12. - № 12. - P. 27.

107. Hirata, H. Xanthohumol prevents atherosclerosis by reducing arterial cholesterol content via CETP and apolipoprotein E in CETP-transgenic mice / H. Hirata, Yimin, S. Segawa, M. Ozaki, N. Kobayashi, T. Shigyo, H. Chiba // PLoS One.

- 2012. - Vol. 7. - P.8.

108. Hoagland, R.E. Interaction of gibberellic acid and glyphosate on growth and phenolic metabolism in soybean seedlings / R.E. Hoagland, C.D. Boyette // Agronomy.

- 2024. - Vol.14. - № 4. - P. 684.

109. Hong, K. Key enzymes involved in the synthesis of hops phytochemical compounds: From structure, functions to applications / K. Hong, L. Wang, A. Johnpaul, C. Lv, C. Ma // Int. J. Mol. Sci. - 2021. - Vol.22. - № 17. - P. 21.

110. Hopkins, W.G. Introduction to Plant Physiology / W.G. Hopkins, N.P.A. Huner // John Wiley & Sons. - 2008. - p.492.

111. Hu, X. Overexpression of a gene encoding hydrogen peroxide-generating oxalate oxidase evokes defense responses in sunflower / X. Hu, D. L. Bidney, N. Yalpani, J. P. Duvick, O. Crasta, O. Folkerts, G. Lu, // Plant Physiology. - 2003. - Vol. 133. - № 1. - P. 170-181.

112. Hussein, S.A. Utilization of tannins extract of Acacia seyal bark (taleh) in tannage of leather / S.A. Hussein // J. Chem. Eng. Process Technol. - 2017. - Vol. 8. -№ 3. - P. 9.

113. Ibrahim, M.H. Involvement of nitrogen on flavonoids, glutathione, anthocyanin, ascorbic acid, and antioxidant activities of Malaysian medicinal plant Labisia pumila Blume (Kacip Fatimah) / M.H. Ibrahim, H.Z.E. Jaafar, A. Rahmat, Z. Abdul Rahman // International Journal of Molecular Sciences. - 2012. - Vol. 13. - № 1. - P. 393-408.

114. IHGC. Economic Commission - Summary Reports / IHGC // Nuremberg, Germany. - 2023.-P.17.

115. Ijdo, J.B.H. The influence of fertilizers on the carotene and vitamin C content of plants / J.B.H. Ijdo // Biochemical Journal. -1936. - Vol.30.-P. 2307-2312.

116. Inui, T. Effect of harvest time on some in vitro functional properties of hop polyphenols / T. Inui, K. Okumura, H. Matsui, T. Hosoya, S. Kumazawa // Food Chemistry. - 2017. - Vol. 225. - P. 69-76.

117. Iqbal, N. Plant protection by tannins depends on defence-related phytohormones / N. Iqbal, P. Poor // Journal of Plant Growth Regulation. - 2025. -Vol. 44. - № 1. - P. 22-39.

118. Ishikawa, T. Biosynthesis and regulation of ascorbic acid in plants / T. Ishikawa, T. Maruta, K. Yoshimura, N. Smirnoff // In: Gupta D.K. et al. (Eds.)

Antioxidants and Antioxidant Enzymes in Higher Plants. -Springer. - 2018. - P. 163179.

119. Jaspers, P. Reactive oxygen species in abiotic stress signaling / P. Jaspers, J. Kangasjarvi // Physiologia Plantarum. - 2010. - Vol. 138. - P. 405-413.

120. Jeliazkova, E. Sequential elution of essential oil components during steam distillation of hops (Humulus lupulus L.) and its effect on oil yield and antimicrobial activity / E. Jeliazkova, V.D. Zhelyazkov, T. Astatkie // Journal of Oleo Science. -2018. - Vol. 67. - № 7. - P. 871-883.

121. Jiang, C.H. Anticancer activity and mechanism of xanthohumol: A prenylated flavonoid from hops (Humulus lupulus L.) / C.H. Jiang, T.L. Sun, D.X. Xiang, S.S. Wei, W.Q. Li // Frontiers in Pharmacology. - 2018. - Vol. 9. - P.13.

122. Jiang, N. Flavones: From biosynthesis to health benefits / N. Jiang, A.I. Doseff, E. Grotewold // Plants. - 2016. - Vol. 5. - № 2. - P. 25.

123. Jin, J.J. Born migrators: Historical biogeography of the cosmopolitan family Cannabaceae / J.J. Jin, M.Q. Yang, P.W. Fritsch, R. van Velzen, D.Z. Li, T.S. Yi // Journal of Systematics and Evolution. -2020.- Vol. 58. - № 4.- P. 461-473.

124. Joco, R.A. Recent development on the extraction process of plants' essential oil and its effect on chemical composition: A review / R.A. Joco, J.A. Lavarias, R.G. Peneyra, C.G. Somera // Graduate Reviews. - 2024. - Vol. 14. - № 1. - P. 9-20.

125. Kabera, J.N. Plant secondary metabolites: biosynthesis, classification, function and pharmacological properties / J.N. Kabera, E. Semana, A.R. Mussa, X. He // Journal of Pharmacy and Pharmacology. - 2014. - Vol. 2. - № 7. - P. 377-392.

126. Kamatou, G.P. Menthol: a simple monoterpene with remarkable biological properties / G.P. Kamatou, I. Vermaak, A.M. Viljoen, B.M. Lawrence // Phytochemistry. - 2013. - Vol. 96. - P. 15-25.

127. Kang, Y.Y. Effects of 24-epibrassinolide on antioxidant system and anaerobic respiratory enzyme activities in cucumber roots under hypoxia stress / Y.Y. Kang, S.R. Guo, J.J. Duan, X.H. Hu // Plant Physiology and Plant Molecular Biology. - 2006. -Vol. 32. - № 5. - P. 535-542.

128. Karak, P. Biological activities of flavonoids: An overview / P. Karak // International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. - 2019. - Vol. 10. - №2 4. - P. 1567-1574.

129. Kavalier, A.R. Phytochemical and morphological characterization of hop (Humulus lupulus L.) cones over five developmental stages / A.R. Kavalier, A. Litt, C. Ma, N.J. Pitra, M.C. Coles, E.J. Kennelly, P.D. Matthews // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2011. - Vol. 59. - P. 4783-4793.

130. Khlynovskiy, M.D. Actual issues of hop growing in Russia / M.D. Khlynovskiy, O.N. Mironenko, L.P. Khlebova, O.V. Bychkova, E.S. Brovko, A.V. Nebylitsa // In: Weihrauch F. (Ed.) Proceedings of the Scientific-Technical Commission of the International Hop Growers' Convention. - Ljubljana. - 2023. - P. 85-89.

131. Kim, D.W. Phenols displaying tyrosinase inhibition from Humulus lupulus /D.W. Kim, H.S. Woo, J.Y. Kim, J.A. Ryuk, K.H. Park, B.S. Ko // Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry. -2016. - Vol. 31. -№ 5.-P. 742-747.

132. Kirkwood, J.S. A metabolomics driven elucidation of the anti-obesity mechanisms of xanthohumol / J.S. Kirkwood, L.L. Legette, C.L. Miranda, Y. Jiang, J.F. Stevens // Journal of Biological Chemistry. - 2013. - Vol. 288. - P. 19000-19013.

133. Klimczak, K. Changes in beer bitterness level during the beer production process / K. Klimczak, M. Cioch-Skoneczny // European Food Research and Technology. - 2023. - Vol. 249. - P. 13-22.

134. Kolenc, Z. Antioxidant activity of different hop (Humulus lupulus L.) genotypes / Z. Kolenc, T. Hribernik, T. Langerholc, M. Pintaric, M. Prevolnik Povse, U. Bren // Plants. - 2023. - Vol. 12. - № 19. - P.16.

135. Kolenc, Z. Hop (Humulus lupulus L.) response mechanisms in drought stress: Proteomic analysis with physiology / Z. Kolenc, D. Vodnik, S. Mandelc, B. Javornik, D. Kastelec, A. Cerenak // Plant Physiology and Biochemistry. - 2016. - Vol. 105. -P. 67-78.

136. Kolodziejczak, A. A novel look at mechanisms and applications of xanthohumol (XN) in dermatology and cosmetology / A. Kolodziejczak, M. Dziedzic,

B. Algiert-Zielinska, P. Mucha// International Journal of Molecular Sciences. - 2024.

- Vol. 25. - № 22. - P. 10.

137. Kopsell, D.A. Air temperature affects biomass and carotenoid pigment accumulation in cabbage and spinach grown under controlled conditions / D.A. Kopsell, M.G. Lefsrud, D.E. Kopsell, J. Curran-Celentano // HortScience. - 2005. -Vol. 40. - № 7. - P. 2026-2030.

138. Korpelainen, H. Hop (Humulus lupulus L.): Traditional and present use, and future potential / H. Korpelainen, M. Pietilainen // Economic Botany. - 2021. - Vol. 75. - № 3. - P. 302-322.

139. Kosakivska, I. Physiological and biochemical responses of Humulus lupulus L. to environmental stress factors / I. Kosakivska, V. Vasyuk // Ukrainian Journal of Ecology. - 2021. - Vol. 11.- №2. - P. 45-52.

140. Kosakivska I.V. Gibberellins in regulation of plant growth and development under abiotic stresses / I.V. Kosakivska, V.A. Vasyuk // Biotechnologia Acta. - 2021.

- Vol. 14.- № 2. - p. 5-18.

141. Kramer, B. Antimicrobial activity of hop extracts against foodborne pathogens for meat applications / B. Kramer, J. Thielmann, A. Hickisch, P. Muranyi, J. Wunderlich, C. Hauser // Journal of Applied Microbiology. - 2015. - Vol 118. - P. 648-657.

142. Krasensky, J. Metabolic changes in plants under drought stress / J. Krasensky,

C. Jonak // Plant Physiology and Biochemistry. - 2012. - Vol. 63. - P. 105-113.

143. Krizova, L. Isoflavones / L. Krizova, K. Dadakova, J. Kasparovska, T. Kasparovsky // Molecules. - 2019. - Vol. 24. - № 6. - P.28.

144. Kumar, G.N.M. Changes in lipid peroxidation and lipolytic and free-radical scavenging enzyme activities during aging and sprouting of potato (Solanum tuberosum) seed-tubers / G.N.M. Kumar, N.R. Knowles // Plant Physiology. - 1993. -Vol. 102. - P. 115-124.

145. Kumar, S. Recent advances in understanding the role of growth regulators in plant growth and development in vitro-I. Conventional growth regulators / S. Kumar, R. Singh, S.Y. Kalia, S.K. Sharma, R. Kalia // Indian Forester. - 2016. - Vol. 142. -№ 5. - P. 459-470.

146. Kumar, S. Role of phenolic compounds in plant-defensive mechanisms / S. Kumar, M.M. Abedin, A.K. Singh // In: Plant Phenolics in Sustainable Agriculture. -2020. - P. 517-532.

147. Kusvuran, S. Antioxidant enzyme activities and abiotic stress tolerance relationship in vegetable crops /S. Kusvuran, S. Kiran, S.S. Ellialtioglu //In: Shanker A., Shanker C. (Eds.) Abiotic and Biotic Stress in Plants. -IntechOpen. - 2016. -P.481-506.

148. Lee, J.-C. Analysis of volatile composition in Humulus lupulus L. cultivated in Taiwan / J.-C. Lee, Y.-K. Wang, K.-M. Yang, C.-S. Wu, L.-P. Chu, H.-C. Chen // European Food Research and Technology. - 2025. - Vol. 251. - P. 1363-1383.

149. Lata, B. Variability in enzymatic and non-enzymatic antioxidants in red and green-leafy kale in relation to soil type and N-level / B. Lata // Scientia Horticulturae.

- 2014. - Vol. 168. - P. 38-45.

150. Legette, L.L. Xanthohumol lowers body weight and fasting plasma glucose in obese male Zucker fa/fa rats / L.L. Legette, A.Y. Moreno Luna, R.L. Reed, C.L. Miranda, G. Bobe, R.R. Proteau, J.F. Stevens // Phytochemistry. - 2013. - Vol. 91. -P. 236-241.

151. Leto, L. Effects of cytokinins on morphogenesis, total (poly)phenolic content and antioxidant capacity of in vitro-cultured hop plantlets, cvs. Cascade and Columbus / L. Leto, V. Guarrasi, A. Agosti, M. Nironi, B. Chiancone, J.J. Vicedo // Plants. -2025. - Vol. 14. - № 3. - P.15.

152. Li, J. Effects of nitrogen and sulfur on total phenolic and antioxidant activity in two genotypes of leaf mustard / J. Li, Z. Zhu, J. Gerendas // Journal of Plant Nutrition.

- 2008. - Vol. 31. - № 9. - P. 1642-1655.

153. Li, S. Roles of brassinosteroids in plant growth and abiotic stress response / S. Li, H. Zheng, L. Lin, F. Wang, N. Sui // Plant Growth Regulation. - 2021. - Vol. 93. - P. 29-38.

154. Li, X. Roles of terpenoids in plant abiotic stress responses and ecological adaptation / X. Li, Y. Xue, X. Zhu, D. Zhang // International Journal of Molecular Sciences. - 2023. - Vol. 24. - № 14. - P.16.

155. Li, X. Drought stress memory and drought stress tolerance in plants: Biochemical and molecular basis / X. Li, F. Liu // In: SpringerLink. - 2016. - Chapter 2. - P. 17-44.

156. Li, Y. Effects of plant growth regulators on yield and quality of Humulus lupulus L. under controlled cultivation / Y. Li, H. Zhang, X. Chen // Journal of Plant Growth Regulation. - 2021. - Vol. 40.- № 3. - P. 678-686.

157. Linster, C.L. Vitamin C: Biosynthesis, recycling, and degradation in mammals / C.L. Linster, E. Van Schaftingen // FEBS Journal. - 2007. - Vol. 274. - №1. - P. 22.

158. Lipinska, L. The structure, occurrence and biological activity of ellagitannins: a general review / L. Lipinska, E. Klewicka, M. Sojka //Acta Scientiarum Polonorum Technologia Alimentaria. -2014.- Vol.13.- № 3.-P.289-299.

159. Liu, M. Pharmacological profile of xanthohumol, a prenylated flavonoid from hops (Humulus lupulus) / M. Liu, P.E. Hansen, G. Wang, L. Qiu, J. Dong, H. Yin, Z. Qian, M. Yang, J. Miao // Molecules. - 2015. - Vol. 20. - №1. - P. 754-779.

160. Liu, Q. Lignins: biosynthesis and biological functions in plants / Q. Liu, L. Luo, L. Zheng // International Journal of Molecular Sciences. - 2018. - Vol. 19. - № 2. -P.16.

161. Liu, X. Exogenous brassinosteroid enhances zinc tolerance by activating the phenylpropanoid biosynthesis pathway in Citrullus lanatus L. / X. Liu, Q. Zhu, W. Liu, J. Zhang // Plant Signaling & Behavior. -2023. - Vol. 18. - № 1. - P.10.

162. Liu, Y. Chitooligosaccharide-induced plant stress resistance / Y. Liu, H. Yang, F. Wen, L. Bao, Z. Zhao, Z. Zhong // Carbohydrate Polymers. - 2023. - Vol. 302.-P.12. - DOI:10.1016/j.carbpol.2022.120344.

163. Loncar, M. Coumarins in food and methods of their determination / M. Loncar, M. Jakovljevic, D. Subaric, M. Pavlic, V. Buzjak Sluzek, I. Cindric, M. Molnar // Foods. - 2020. - Vol. 9. - № 5. - P.34.

164. Lopes, V.V. The effect of plant ontogeny on antioxidant capacity and bioaccessibility of total phenolic compounds and sulforaphane in broccoli sprouts / V.V. Lopes, Y.A. Souza, F.O. Brito, C.L. Soares, C. Beres, M. Citelli, A.E.C. Antunes, R.F. Miyahira // Plant Foods for Human Nutrition. - 2025. - Vol. 80. - P.119. - DOI: 10.1007/s11130-025-01357-0

165. Lowry, O.H. Protein measurement with Folin phenol reagent / O.H. Lowry, N.J. Rosebrough, A.L. Farr, R.J. Randall // Journal of Biological Chemistry. - 1951. - Vol. 193. - № 61. - P. 265-275.

166. Lv, Q. Current state of knowledge on the antioxidant effects and mechanisms of action of polyphenolic compounds / Q. Lv, J. Long, Z. Gong, K. Nong, X. Liang, T. Qin, W. Huang, L. Yang // Natural Product Communications. - 2021. - Vol. 16. - № 7. - P. 1-13.

167. Lyu, J.I. Comparative study on phenolic compounds and antioxidant activities of hop (Humulus lupulus L.) strobile extracts / J.I. Lyu, J. Ryu, K.-S. Seo, K.-Y. Kang, S.H. Park, T.H. Ha, J.-W. Ahn, S.-Y. Kang // Plants. - 2022. - Vol. 11. - P.10.

168. Ma, Y. Strategies and prospects for biostimulants to alleviate abiotic stress in plants / Y. Ma, H. Freitas, M.C. Dias // Front Plant Sci. - 2022. - Vol. 13. - P.15.

169. Macknight, R.C. Increasing ascorbate levels in crops to enhance human nutrition and plant abiotic stress tolerance / R.C. Macknight et al. // Current Opinion in Biotechnology. - 2017. - Vol. 44. - P. 153-160.

170. Mahli, A. Iso-alpha acids from hops (Humulus lupulus) inhibit hepatic steatosis, inflammation, and fibrosis / A. Mahli, A. Koch, K. Fresse, T. Schiergens, W.E. Thasler, C. Schönberger, I. Bergheim, A. Bosserhoff, C. Hellerbrand // Laboratory Investigation. - 2018. - Vol. 98. - № 10. - P. 1403-1416.

171. Malusa, E. A contribution to set a legal framework for biofertilizers / E. Malusa, N. Vassilev // Applied Microbial Biotechnology. - 2014. - Vol. 98. - № 15. - P. 65996607.

172. Manzoor, M.A. Flavonoids: A review on biosynthesis and transportation mechanism in plants / M.A. Manzoor, I.A. Sabir, I.H. Shah, M.W. Riaz, S. Rehman, C. Song, G. Li, M.S. Malik, G.A. Ashraf, M.S. Haider, Y. Cao, M. Abdullah// Functional & Integrative Genomics. - 2023. - Vol. 23. - P.14.

173. Marchiosi, R. Biosynthesis and metabolic actions of simple phenolic acids in plants / R. Marchiosi, W.D. Santos, R.P. Constantin, R.B. Lima, A.R. Soares, A. Finger-Teixeira, T.R. Mota, D.M. Oliveira, M.P. Foletto-Felipe, J. Abrahao, Ferrarese-Filho O. // Phytochemistry Reviews. - 2020. - Vol. 19. - P. 865-906.

174. Marceddu, R. Adapting American Hop (Humulus lupulus L.) Varieties to Mediterranean Sustainable Agriculture: A Trellis Height Exploration / R. Marceddu, A. Carrubba, V. Alfeo, A. Alessi, M. Sarno // Horticulturae. - 2024. - Vol. 10. -№ 2.

- P. 11.

175. Marceddu, R. Resilience of hop (Humulus lupulus L.) to salinity, heat and drought stresses: A mini-review / R. Marceddu, A. Carrubba, M. Sarno // Front Plant Sci. - 2022. - Vol. 13. -P.7.

176. Maresca, V. Antioxidants and antioxidant enzymes in higher plants / V. Maresca (Ed.) // Plants. - 2023. - Vol. 12. - №1. - ISSN 2223-7747. - Special Issue.

- URL: https://www.mdpi.com/journal/plants/special_issues/I9Q2TAV4A3.

177. Mates, J.M. Antioxidant enzymes and human diseases / J.M. Mates, C. Perez-Gomez, I.N. De Castro // Clin Biochem. - 1999. - Vol. 32. - № 8. - P. 595-603.

178. Mathesius, U. Flavonoid functions in plants and their interactions with other organisms / U. Mathesius // Plants. - 2018. - Vol. 7. - № 2. - P.3.

179. Mazid, M. Future of bio-fertilizers in Indian agriculture: an overview / M. Mazid, T.A. Khan // International Journal of Agricultural and Food Research. - 2015.

- Vol. 3. - № 3. - P. 10-23.

180. McAdam, E.L. Quantitative genetic parameters for yield, plant growth and cone chemical traits in hop (Humulus lupulus L.) / E.L. McAdam et al. // BMC Genetics. -2014. - Vol. 15. - P. 18.

181. Melough, M.M. Furocoumarins: A review of biochemical activities, dietary sources and intake, and potential health risks / M.M. Melough, E. Cho, O.K. Chun // Food and Chemical Toxicology. - 2018. - Vol. 113. - P. 99-107.

182. Miranda, C.L. Antiproliferative and cytotoxic effects of prenylated flavonoids from hops (Humulus lupulus) in human cancer cell lines / C.L. Miranda, J.F. Stevens, A. Helmrich, M.C. Henderson, R.J. Rodriguez, Y.H. Yang, M.L. Deinzer, D.W. Barnes // Food and Chemical Toxicology. -1999.- Vol. 37. - №4.- P.271-285.

183. Mishra, A.K. Genome-wide transcriptome profiling of transgenic hop (Humulus lupulus L.) constitutively overexpressing HlWRKY1 and HlWDR1 transcription factors / A.K. Mishra, G.S. Duraisamy, M. Khare, T. Kocabek, J Jakse., J Briza., J. Patzak, T. Sano, J. Matousek. // BMC Genomics. - 2018. - Vol. 19. - P.18.

184. Mintah, S.O. Medicinal plants for treatment of prevalent diseases [Text] / S.O. Mintah, T. Asafo-Agyei, M.-A. Archer, P. Atta-Adjei Junior// In: IntechOpen. - 2019. - P.1-19.

185. Misratia, K.M. Interactive effects of gibberellic acid (GA3) and salt stress on growth, biochemical parameters, and ion accumulation of two rice (Oryza sativa L.) varieties differing in salt tolerance / K.M. Misratia, M.R. Islam, M.R. Ismail, F.C. Oad, M.M. Hanafi, A. Puteh // Journal of Food, Agriculture & Environment. - 2015. - Vol. 13. - №1. - P.66-70.

186. Mohammadi, H. Physiological responses and secondary metabolite ingredients in sage plants induced by 24-epibrassinolide foliar application under different water deficit regimes / H. Mohammadi, M. Akhondzadeh, M. Ghorbanpour, A. Aghaee // Scientia Horticulturae. -2020. - Vol. 263. -P.109-139.

187. Monacci, E. Chemical quality and characterization of essential oils in postharvest hop cv. Cascade: Ventilated room temperature as a sustainable alternative to hot-stove and freeze-drying processes / E. Monacci, C. Sanmartin, A. Bianchi, S.

Pettinelli, B. Najar, F. Mencarelli, I. Taglieri // Beverages. - 2025. - Vol. 11. - № 2. -P.14.

188. Morcol, T.B. UPLC-QTof-MSE metabolomics reveals changes in leaf primary and secondary metabolism of hop (Humulus lupulus L.) plants under drought stress / T.B. Morcol, K. Wysocki, R.P. Sankaran, P.D. Matthews, E.J. Kennelly // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2020. - Vol. 68. - № 49. - P. 14698-14708.

189. Mouradov, A. Flavonoids: a metabolic network mediating plants adaptation to their real estate / A. Mouradov, G. Spangenberg // Front Plant Sci. - 2014. - Vol. 5. -P.16.

190. Mozaffar, A. Nitrogen fertilizers and the amount of vitamins in plants / A. Mozaffar // Plant Nutrition. - 2008. - Vol. 16. - № 12. - P. 2479-2506.

191. Musa, A. Effect of soil nitrogen levels on some micronutrients, antinutrients, and toxic substances in Corchorous olitorius grown in Minna, Nigeria / A. Musa, I.S. Ezenwa, J.A. Oladiran, H.O. Akanya, E.O. Ogbadoyi // African Journal of Agricultural Research. - 2010. - Vol. 5. - № 22. - P. 3075-3081.

192. Mudura, E. Bioactive substances from hops - xanthohumol / E. Mudura, M. Tofana, S. Muste, S. Socaci // University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine Cluj-Napoca. - 2008. vol. 16. - № 12. -p. 62-67.

193. Munene, R. Effects of different nitrogen forms on growth, phenolics, flavonoids, and antioxidant activity in amaranth species / R. Munene, E. Changamu, N. Korir, J. Gweyi-Onyango // Tropical Plant Research. - 2017. - vol. 4. - P. 81-89.

194. Mutua, C.M. Effect of NPK fertilizer rates on secondary metabolites of pepino melon (Solanum muricatum Aiton) / C.M. Mutua, J.O. Ogweno, R.M. Gesimba // Journal of Horticulture and Forestry. - 2021. - vol. 13. - P. 25-34.

195. Muzykiewicz, A. Comparison of antioxidant activity of extracts of hop leaves harvested in different years / A. Muzykiewicz, A. Nowak, J. Zielonka-Brzezicka, K. Florkowska, W. Duchnik, A. Klimowicz // Herba Pol. - 2019. - vol. 65. - P. 1-9.

196. Nagel, J. EST analysis of hop glandular trichomes identifies an O-methyltransferase that catalyzes the biosynthesis of xanthohumol / J. Nagel e // The Plant Cell. - 2008. - Vol. 20. - № 1. - P. 186-200.

197. Nance, W.E. Volatile components of aroma hops (Humulus lupulus L.) commonly used in brewing [Текст] / W.E. Nance, W.N. Setzer // Journal of Brewing and Distilling. - 2011. -Vol. 2. - № 2. - P. 16-22.

198. Natural Living Online. Hops Essential Oil: A Guide to Benefits, Uses, and Side Effects // Natural Living Online .com.- 2022. -URL: https://naturallivingonline.-com/essential-oils/hops-essential-oil-a-guide-to-benefits-uses-and-side-effects.

199. Neve, R.A. Hops / R.A. Neve. - Springer Science & Business Media, 2012. -P.266.

200. Nichol, J.B. Plant growth regulator extracts from seaweeds promote plant growth and confer drought tolerance in canola (Brassica napus) / J.B. Nichol, A.K.B. Ribano, N.M.N. Hickerson, N. Ali, F. Jamois, M.A. Samuel // Plant Signaling & Behavior. - 2023. - Vol. 18. - № 1. - Р.7.

201. Niederau, C. Xanthohumol exerts anti-inflammatory effects in an in vitro model of mechanically stimulated cementoblasts / C. Niederau, S. Bhargava, R. Schneider-Kramman, J. Jankowski, R.B. Craveiro, M. Wolf// Scientific Reports. - 2022. - Vol. 12. - Р.10.

202. Nionelli, L. Use of hop extract as antifungal ingredient for bread making and selection of autochthonous resistant starters for sourdough fermentation / L. Nionelli, E. Pontonio, M. Gobbetti, C.G. Rizzello // International Journal of Food Microbiology. - 2018. - Vol. 266. - P. 173-182.

203. Nizomova, M. Preparation of seedlings from root breeds of medicinal common hop (Humulus lupulus L.) / M. Nizomova, M. Yuldasheva // Lecture Notes in Networks and Systems. - 2023. - P. 2005-2011.

204. Noctor, G. Drought and oxidative load in wheat leaves. A predominant role for photorespiration / G. Noctor, S. Veljovic-Jovanovic, S. Driscoll, L. Novitskaya, C.H. Foyer // Annals of Botany. -2002.-Vol.89. - P. 841-850.

205. Nuutinen, T. Medicinal properties of terpenes found in Cannabis sativa and Humulus lupulus L. / T. Nuutinen // European Journal of Medicinal Chemistry. - 2018.

- Vol. 157. - P. 198-228.

206. Okafor, V.N. Phytochemical constituents of extracts of hops and some potential Nigerian hop substitutes: Acomparative study in beer brewing / V.N. Okafor, R.I. Anyalebechi, U.W. Okafor, C.P. Okonkwo, J.N. Obiefuna, M.C. Obiadi // International Journal of Biological Chemistry Research. - 2020.- Vol.1. - № 1.-P.7.

207. Okuda, T. Tannins of constant structure in medicinal and food plants Hydrolyzable tannins and polyphenols related to tannins / T. Okuda, H. Ito // Molecules. -2011.- Vol. 16.- №3.- P. 2191-2217.

208. Oledzka, E. Xanthohumol—A miracle molecule with biological activities: A review of biodegradable polymeric carriers and naturally derived compounds for its delivery / E. Oledzka // International Journal of Molecular Sciences. - 2024. - Vol. 25.- № 6. - P.20.

209. Osuji, G.O. et al. Biotechnological induction of shikimate-based antioxidant accumulation in Phyla dulcis / G.O. Osuji, M. Gao, L. Carson, P. Ampim, A. Weerasooriya, P. Johnson, E. Duffus, S. Woldesenbet, J. Kirven, E.L. Williams, D. Johnson, D. Clarke // The Natural Products Journal. - 2017. - Vol. 7. - P. 104-111.

210. Ozpinar, H. Allelopathic effects of benzoic acid, salicylic acid and leaf extract of Persica vulgaris Mill. (Rosaceae) / H. Ozpinar, S. Dag, E. Yigit // South African Journal of Botany. -2017. - Vol. 108. - P. 102-109.

211. Paciolla, C. Cellular redox homeostasis as central modulator in plant stress / C. Paciolla, A. Paradiso, M.C. De Pinto // In: Gupta D.K., Palma J.M., Corpas F.J. (Eds.) Redox State as a Central Regulator of Plant-Cell Stress Responses. - Springer. - 2016.

- P. 1-23.

212. Paciolla, C. Vitamin C in plants: from functions to biofortification / C. Paciolla, S. Fortunato, N. Dipierro, A. Paradiso, S. De Leonardis, L. Mastropasqua, M.C.de Pinto // Antioxidants. - 2019. - Vol. 8. - № 11. - P. 1- 26.

213. Paguet, A.S. Agronomic, genetic and chemical tools for hop cultivation and breeding / A.S. Paguet, A. Siah, G. Lefèvre, S. Sahpaz, C. Rivière // Phytochemistry Reviews. - 2022. - Vol. 21. - P. 667-708.

214. Pandey, J. Opportunities and constraints in organic farming: an Indian perspective / J. Pandey, A. Singh // Journal of Scientific Research. - 2012. - Vol. 56.

- P. 47-72.

215. Pandjaitan, N. Antioxidant capacity and phenolic content of spinach as affected by genetics and maturation / N. Pandjaitan, L.R. Howard, T. Morelock, M. Gil // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2005. - Vol. 3. - P. 8618-8623.

216. Paniagua-Garcia, A. I. Fractionation of High-Value Compounds from Hops Using an Optimised Sequential Extraction Procedure. Antioxidants [Text] /Paniagua-Garcia, A. I., Ruano-Rosa, D., &Diez-Antolinez, R.- 2024. - Vol. 13. - P.20.

217. Pereira, O.R. Hop by-products: pharmacological activities and potential application as cosmetics / O.R. Pereira, G. Santos, M.J. Sousa // Cosmetics. - 2022. -Vol. 9. - P.16.

218. Perveen, S. Terpenes and terpenoids: building blocks to bioactive natural products / S. Perveen, A. Al-Taweel // In: Terpenes and Terpenoids. - IntechOpen. -2018. - P. 1-18.

219. Perez-Vizcaino, F. Research trends in flavonoids and health / F. Perez-Vizcaino, C.G. Fraga // Archives of Biochemistry and Biophysics. - 2018. - Vol. 646.

- P. 107-112.

220. Piekara, J. Antioxidant potential of xanthohumol in disease prevention: evidence from human and animal studies / J. Piekara, D. Piasecka-Kwiatkowska // Antioxidants. - 2024. - Vol. 13. - №12. - P.16.

221. Postman, J. Detection and elimination of viruses in USDA hop (Humulus lupulus) germplasm collection / J. Postman, J.S. DeNoma, B.M. Reed // Acta Horticulturae. - 2005. - Vol. 668. - P. 143-148.

222. Pylak, M. Impact of microbial-based biopreparations on soil quality, plant health, and fruit chemistry in raspberry cultivation / M. Pylak, K. Oszust, J. Panek, D.

Siegieda, J. Cybulska, A. Zdunek, A. Orzel, M. Fr^c // Food Chemistry. - 2025. - Vol. 462. - P.15.

223. Qari, S.H. Melatonin induced cold tolerance in plants: physiological and molecular responses / S.H. Qari, M.U. Hassan, M.U. Chattha, A. Mahmood, M. Naqve, M. Nawaz, L. Barbanti, M.A. Alahdal, M. Aljabri M.// Front Plant Sci. - 2022. - Vol. 13. -P.16.

224. Quideau, S. Chemistry and biology of ellagitannins, an underestimated class of bioactive plant polyphenols / S. Quideau. - World Scientific: London. - 2009. - 395 p. ISBN: 978-981-279-740-7.

225. Quifer-Rada, P. A comprehensive characterisation of beer polyphenols by high-resolution mass spectrometry (LC-ESI-LTQ-Orbitrap-MS) / P. Quifer-Rada, A. Vallverdu-Queralt, M. Martinez-Huelamo, G. Chiva-Blanch, O. Jauregui, R. Estruch, R.M. Lamuela-Raventos // Food Chemistry. - 2015. - Vol. 169. - P. 336-343.

226. Ramos, F.P. Updating the knowledge on the secretory machinery of hops (Humulus lupulus L., Cannabaceae) / F.P. Ramos, L. Iwamoto, V.H. Piva, S.P. Teixeira // Plants. - 2024. - Vol. 13. - № 6. - P.23.

227. Rigby, F.L. A Theory on the Hop Flavor of Beer / F.L. Rigby // Proc. Annu. Meet. Am. Soc. Brew. Chem. - 1972. - Vol. 30. - P. 46-50.

228. Robil, J.M. Gibberellins: Extending the Green Revolution / J.M. Robil, P. Awale, P. McSteen, N.B. Best // Journal of Experimental Botany. - 2024. - Vol. 76. -№ 7. - P.17.

229. Rodolfi, M. The Effect of Different Organic Foliar Fertilization on Physiological and Chemical Characters in Hop (Humulus lupulus L., cv Cascade) Leaves and Cones / M. Rodolfi, L. Barbanti, C. Giordano, M. Rinaldi, A. Fabbri, L. Pretti, R. Casolari, D. Beghe, R. Petruccelli, T. Ganino // Appl. Sci. - 2021. - Vol. 11. - P. 19.

230. Rosa, R.S. Hop extracts and their utilizations: perspectives based on the last 10 years of research / R.S. Rosa, S.C. Lannes // Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. - 2024. - Vol. 60. -P.19.

231. Rossini, F. Hops (Humulus lupulus L.) as a novel multipurpose crop for the Mediterranean region of Europe: Challenges and opportunities of their cultivation / F. Rossini, G. Virga, P. Loreti, N. Iacuzzi, R. Ruggeri, M.E. Provenzano // Agriculture. -2021. - Vol. 11. - P. 484.

232. Rozalski, M. Antiadherent and antibiofilm activity of Humulus lupulus L. derived products: New pharmacological properties / M. Rozalski, B. Micota, B. Sadowska, A. Stochmal, D. Jedrejek, M. Wieckowska-Szakiel, B. Rozalska // Biomed. Res. Int. - 2013. - Vol. 2013. - P. 1-7.

233. Ruggeri, R. Establishment of a commercial organic hopyard in a Mediterranean environment: Production attributes and their relationship with soil texture / R. Ruggeri, M. Tolomio, M. Muganu, P. Loreti, G. Virga, N. Iacuzzi, F. Rossini // Scientia Horticulturae. - 2023. - Vol. 310. - P.1- 9.

234. Rutnik, K. Changes in Hop (Humulus lupulus L.) Oil Content and Composition during Long-Term Storage under Different Conditions / K. Rutnik, M. Ocvirk, I.J. Kosir // Foods. - 2022. - Vol. 11. - № 19. - P. 20.

235. Rutnik, K. The Stability of Hop (Humulus lupulus L.) Resins during Long-Period Storage / K. Rutnik, M. Ocvirk, I.J. Kosir // Plants. - 2023. - Vol. 12. - № 4. -P. 16.

236. Rutnik, K. Hop Essential Oil: Chemical Composition, Extraction, Analysis, and Applications / K. Rutnik, M. Knez Hrncic, I.J. Kosir // Food Reviews International. -2021. - Vol. 37. - № 6. - P. 529-551.

237. Rybacek, V. Hop Production / V. Rybacek (ред.). - Amsterdam: Elsevier, 2012. - Р.258.

238. Salihu, B. Analysis of chemical and genetic variability in wild hop (Humulus lupulus L.) populations of Kosovo / B. Salihu, T. Samarakoon, B. Pulaj, C.L. Quave, B. Mustafa, A. Hajdari // Plant Biology. - 2024. - Р.9.

239. Stanius, Z. Analysis of the leaves and cones of Lithuanian hops (Humulus lupulus L.) varieties by chromatographic and spectrophotometric methods / Z. Z.

Stanius, V. Jakstas, V. Janulis, L. Ivanauskas, J. Labokas // Molecules. - 2022. - Vol. 27. - P.13.

240. Sabino, B.C.C. Phytochemical characterization of Humulus lupulus L. varieties cultivated in Brazil: agricultural zoning for the crop in tropical areas / B.C.C. Sabino, F.P.G. Bonfim, M.N.F. Cabral, V. Viriato, O.P. Campos, C.S. Neves, G.C. Fernandes, J.A.O. Gomes, R. Facanali, M.O.M. Marques // Horticulturae. - 2025. - Vol. 11. - № 5. - P.14.

241. Sagan, B. Anticholinesterase activity and bioactive compound profiling of six hop (Humulus lupulus L.) varieties / B. Sagan, B. Czerny, A. Stasilowicz-Krzemien, P. Szulc, U. Skomra, T.M. Karpinski, J. Lisiecka, A. Kaminski, A. Kryszak, O. Zimak-Krótkopad, J. Cielecka-Piontek // Foods. - 2024. - Vol. 13. - № 24. - P. 19.

242. Sabbatini, M. Antimicrobial and antioxidant potential of Humulus lupulus L. leaves: a new pharmacological perspective / M. Sabbatini, L. Del Vecchio, T. Ganino, M. Cirlini // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. - 2024.- Vol. 154.- №2. - P. 215228.

243. Sanz, V. What is new on the hop extraction? / V. Sanz, M.D. Torres, J.M. López Vilariño, H. Domínguez // Trends in Food Science & Technology. - 2019. - Vol. 93. - P. 12-22.

244. Scheible, W. Genome-wide reprogramming of primary and secondary metabolism, protein synthesis, cellular growth processes, and the regulatory infrastructure of Arabidopsis in response to nitrogen / W. Scheible, R. Morcuende, T. Czechowski, C. Fritz, D. Osuna, N. Palacios-Rojas, D. Schindelasch, O. Thimm, M.K. Udvardi, M. Stitt // Plant Physiology. - 2004. - Vol. 136. - P. 2483-2499.

245. Schiller, H. Sedating effects of Humulus lupulus L. extracts / H. Schiller Schiller H., Forster A., Vonhoff C., Hegger M., Winterhoff H.// Phytomedicine. - 2006. - Vol. 13. - № 8. - P. 535-541.

246. Schmelz, E.A. Identity, regulation, and activity of inducible diterpenoid phytoalexins in maize / E.A. Schmelz, A. Huffaker, J. Sims, S.A. Christensen, X. Lu, K. Okada, R.J Peters // The Plant Journal. - 2014. - Vol. 80. - № 4. - P. 617-630.

247. Schluttenhofer, C. Regulation of specialized metabolism by WRKY transcription factors / C. Schluttenhofer, L. Yuan // Plant Physiology. - 2015. - Vol. 167. - P. 295-306.

248. Segarra-Medina, C. Comparison of metabolomic reconfiguration between Columbia and Landsberg ecotypes subjected to the combination of high salinity and increased irradiance / C. Segarra-Medina, L.S. Pascual, S. Alseekh, A.R. Fernie, J.L. Rambla, A. Gómez-Cadenas, S.I. Zandalinas // BMC Plant Biology. - 2023. - Vol. 23. - P.16.

249. Sharma, A. Response of phenylpropanoid pathway and the role of polyphenols in plants under abiotic stress /A. Sharma, B. Shahzad, A. Rehman, R. Bhardwaj, M. Landi, B. Zheng // Molecules. - 2019.- Vol.24.-P.22.

250. Sharma, R. Revolutions in biotic stress management and sustainable agriculture through microbial-mediated nanoformulation / R. Sharma, S. Pandey, R.N. Pudake, N. Tyagi, A. Mishra, J. Tyagi // In: Nano-microbiology for Sustainable Development. -Springer. - 2025. - P. 213-241.

251. Sharma, V. Exploring the antioxidant potential of medicinal plant species: A comprehensive investigative review / V. Sharma, C. Rajpal // Acta Traditional Medicine. - 2023. - Vol. 2. - № 2. - P. 23.

252. Shah, S.H. Gibberellic acid: a versatile regulator of plant growth, development and stress responses / S.H. Shah, S. Islam, F. Mohammad, M.H. Siddiqui // Journal of Plant Growth Regulation. - 2023. - Vol. 42. - P. 7352-7373.

253. Shephard, H.L. Sexual development and sex chromosomes in hop / H.L. Shephard, J.S. Parker, P. Darby, C.C. Ainsworth // New Phytologist. - 2000. - Vol. 148. - № 3. - P. 397-411.

254. Shui, Y.C. Advances in the study of flavonoids in Gingko biloba leaves / Y.C. Shui, X. Feng, W. Yan // Medicinal Plant Research. - 2009. - Vol. 3. - P. 248-252.

255. Siddiqui, T. Therapeutic potential of terpenoids: a systematic overview / T. Siddiqui // Asian Journal of Natural & Applied Sciences. - 2024. - Vol. 13. - № 2. -P. 89-103.

256. Silva, A.S. Evaluation of the status quo of polyphenols analysis: Part I -phytochemistry, bioactivity, interactions, and industrial uses / A.S. Silva, P. Reboredo-Rodríguez, I. Süntar, A. Sureda, T. Belwal, M.R. Loizzo, S.M. Nabavi // Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety. - 2020. - Vol. 19. - № 3.

- P. 3191-3218.

257. Singh Bisht, T. A recent advance in use of plant growth regulators (PGRs) in fruit crops - a review / T. Singh Bisht, L. Rawat, B. Chakraborty, V. Yadav // International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. - 2018. - Vol. 7.

- № 5. - P. 1307-1336.

258. Singh, S. Herbicides and plant growth regulators: current developments and future challenges / S. Singh, V. Kumar, D.S. Dhanjal, J. Singh // In: Natural Bioactive Products in Sustainable Agriculture. - Springer. - 2020. - P. 67-81.

259. Sivaji, M. Modern crop improvement approaches for developing abiotic stress-tolerance in plants / M. Sivaji, S. Shakespear, M. Yuvaraj, A. Chandrasekar, P. Ayyadurai, M. Deivamani // In: Molecular Dynamics of Plant Stress and its Management. - Springer. - 2024. - P. 491-512.

260. Smeriglio, A. Proanthocyanidins and hydrolysable tannins: occurrence, dietary intake and pharmacological effects / A. Smeriglio, D. Barreca, E. Bellocco, D. Trombetta // British Journal of Pharmacology. - 2017. - Vol. 174. - № 11. - P. 1244 -1262.

261. Smirnoff, N. Ascorbic acid: metabolism and functions of a multi-facetted molecule / N. Smirnoff // Current Opinion in Plant Biology. - 2000. - Vol. 3. - № 3. -P. 229-235.

262. Stevens, J.F. Xanthohumol and related prenylflavonoids from hops and beer: to your good health! / J.F. Stevens, J.E. Page // Phytochemistry. - 2004. - Vol. 65. - № 10. - P. 1317-1330.

263. Stevens, J.F. Xanthohumol and structurally related prenylflavonoids for cancer chemoprevention and control / J.F. Stevens // In: Natural Products for Cancer Chemoprevention. - Springer. - 2020. - P. 319-350.

264. Sun, T. Plant carotenoids: recent advances and future perspectives / T. Sun, S. Rao, X. Zhou, L. Li // Molecular Horticulture. - 2022. - Vol.2. - P.21.

265. Suraganov, M.N. Effect of fertilizers and growth stimulants on the yield and feed qualities of the green mass of the yellow melilot in the Akmola region / M.N. Suraganov, U.M. Sagalbekov, A.M. Suraganova, K.Z. Tagayev, G.T. Ualiyeva // Brazilian Journal of Biology. - 2024. - Vol. 84. - P.9.

266. Syltie, P.W. The vitamin B1, B2, B6, B12, and E contents of hard red spring wheat as influenced by fertilization and cultivar / P.W. Syltie, W.C. Dahnke // Plant Food for Human Nutrition. - 1983. - Vol. 32. - № 1. - P. 51-58.

267. Tak, Y. Phenolic biosynthesis and metabolic pathways to alleviate stresses in plants / Y. Tak, M. Kaur, C. Gautam, R. Kumar // In: Plant Phenolics in Abiotic Stress Management. - Springer. - 2023. - P. 63-87.

268. Talaat, N.B. Putrescine, in combination with gibberellic acid and salicylic acid, improves date palm fruit quality via triggering protein and carbohydrate accumulation and enhancing mineral, amino acid, sugar, and phytohormone acquisition / N.B. Talaat, M.R.A. Nesiem, E.G. Gadalla, S.F. Ali // Journal of Plant Growth Regulation. - 2023. - Vol. 44. - P. 1249-1265.

269. Tan, B.A. Expression of phenylpropanoid and flavonoid pathway genes in oil palm roots during infection by Ganoderma boninense / B.A. Tan, L.D.J. Daim, N. Ithnin, T.E.K. Ooi /// Plant Gene. - 2016. - Vol. 7. - P. 11-20.

270. Tanaka, Y. Comprehensive separation and structural analyses of polyphenols and related compounds from bracts of hops (Humulus lupulus L.) / Y. Tanaka. Tanaka, A. Yanagida, S. Komeya, M. Kawana, D. Honma, M. Tagashira, T. Kanda, Y. Shibusawa// Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2014. - Vol. 62. - №2 10. -P. 2198-2206.

271. Taulavuori, E. Comparison of two methods used to analyze lipid peroxidation from Vaccinium myrtillus (L.) during snow removal, reclamation and cold acclimation / E. Taulavuori, E-K. Hellstrom, K. Taulavuori, K. Laine // Journal of Experimental Botany. - 2001. - Vol. 52. - № 365. - P. 2375-2380.

272. Taylor, A.W. Hop (Humulus lupulus L.) proanthocyanidins characterized by mass spectrometry, acid catalysis, and gel permeation chromatography / A.W. Taylor, E. Barofsky, J.A. Kennedy, M.L. Deinzer // Journal of Agricultural and Food Chemistry. - 2003. - Vol. 51. - № 14. - P. 4101-4110.

273. Tholl, D. Terpenes in plant interactions with the environment: a framework for future research / D. Tholl // In: Schrader J., Bohlmann J. (Eds.) Biotechnology of Isoprenoids. - Springer. - 2015. - P. 63-100.

274. Tosovic, J. Exploring antioxidative properties of xanthohumol and isoxanthohumol: an integrated experimental and computational approach with isoxanthohumol pKa determination / J. Tosovic, Z. Kolenc, G. Hostnik, U. Bren // Food Chemistry. - 2025. - Vol. 463. - P.12.

275. Toy, J.Y.H. Terpenoids: case study - ginsenosides / J.Y.H. Toy, X. Yang, D. Huang// In: Natural Products in Drug Discovery. - Royal Society of Chemistry. - 2025.

- Vol. 3. -P.189-210.

276. Turner, S.F. Challenges and opportunities for organic hop production in the United States / S.F. Turner S.F., Turner, C.A. Benedict, H. Darby, L.A. Hoagland, P. Simonson, J.R. Sirrine, K.M. Murphy// Agronomy Journal. - 2011. - Vol. 103. - №2 6.

- P. 1645-1654.

277. Vacca, R.A. Production of reactive oxygen species, alteration of cytosolic ascorbate peroxidase, and impairment of mitochondrial metabolism are early events in heat shock induced programmed cell death in tobacco Bright Yellow 2 cells / R.A. Vacca, M.C. de Pinto, D. Valenti, S. Passarella, E. Marra, L. De Gara// Plant Physiology. - 2004. - Vol. 134. - № 3. - P. 1100-1112.

278. Vanholme, R. Lignin biosynthesis and its integration into metabolism / R. Vanholme, B. De Meester, J. Ralph, W. Boerjan // Current Opinion in Biotechnology.

- 2019. - Vol. 56. - P. 230-239.

279. Vázquez Loureiro, P. Determination of xanthohumol in hops, food supplements and beers by HPLC / P. Vázquez Loureiro, I. Hernández Jiménez, R.

Sendon, A. Rodriguez-Bernaldo de Quiros, L. Barbosa-Pereira// Foods. - 2019. - Vol. 8. - № 10. -P. 1-16.

280. Venturelli, S. Prenylated chalcones and flavonoids for the prevention and treatment of cancer / S. Venturelli, M. Burkard, M. Biendl // Nutrition. - 2016. - Vol. 32. - P.1171-1178.

281. Verma, S. Lead toxicity induces lipid peroxidation and alters the activities of antioxidant enzymes in growing rice plants / S. Verma, R.S. Dubey // Plant Science. -2003. - Vol. 64. - P. 645-655.

282. Vessey, J.K. Plant growth promoting rhizobacteria as biofertilizers / J.K. Vessey // Plant and Soil. - 2003. - Vol. 255. - № 2. - P. 571-586.

283. Vicente, O. Flavonoids: antioxidant compounds for plant defence... and for a healthy human diet / O. Vicente, M. Boscaiu // Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca. - 2018. - Vol. 46. - № 1. - P. 14-21.

284. Vitalini, S. Volatile and non-volatile content determination and biological activity evaluation of fresh Humulus lupulus L. (cv. Chinook) leaves and inflorescences / S. Vitalini, M. Di Martile, V. Cicaloni, M. Iannone, L. Salvini, D. Del Bufalo, M. Iriti, S. Garzoli// Separations. - 2023. - Vol. 10. - № 2. - P. 1-19.

285. Vuolo, M.M. Phenolic compounds: structure, classification, and antioxidant power / M.M. Vuolo, V.S. Lima, M.R.M. Junior // In: Bioactive Compounds. -Woodhead Publishing. - 2019. - P. 33-50.

286. Wallace, T.C. Anthocyanins / T.C. Wallace, M.M. Giusti // Advances in Nutrition. - 2015. - Vol. 6. - № 5. - P. 620-622.

287. Wang, G. Terpene biosynthesis in glandular trichomes of hop / G. Wang, L. Tian, N. Aziz, P. Broun, X. Dai, J. He, A. King, P.X. Zhao, R.A. Dixon // Plant Physiology. - 2008. - Vol. 148. - № 3. - P. 1254-1266.

288. Wang, X. Advance on isolation and purification of xanthohumol from hops (Humulus lupulus L.) / X. Wang, X. Li, L. Yang, X. Yang // Food Fermentation Industry. - 2013. - Vol. 39. - P. 143-148.

289. Wang, Y. Xanthohumol, a prenylated chalcone derived from hops, suppresses cancer cell invasion through inhibiting the expression of CXCR4 chemokine receptor / Y. Wang, Y. Chen, J. Wang, J. Chen, B.B. Aggarwal, X. Pang, M. Liu // Current Molecular Medicine. - 2012. - Vol. 12. - P. 153-162.

290. Wang, Z. Translational incorporation of modified phenylalanines and tyrosines during cell-free protein synthesis / Z. Wang, H. Matthews // RSC Advances. - 2020. -Vol. 10. - P. 11013-11023.

291. Waszczak, C. Reactive oxygen species in plant signaling / C. Waszczak, M. Carmody, J. Kangasjarvi // Annual Review of Plant Biology. - 2018. - Vol. 69. - P. 209.

292. Wen, Y. Foliar spraying of brassinolide affects leaf quality and secondary metabolite profiles of cold-stressed tea plants / Y. Wen, A. Lei, A. Hashem, E.F. Abd Allah, Q. Wu, X. Gao // Horticulturae. - 2024. - Vol. 10. - P. 14.

293. Wong, J.W.C. Improving compost quality by controlling nitrogen loss during composting / J.W.C. Wong, X. Wang, A. Selvam // In: Current Developments in Biotechnology and Bioengineering. - Elsevier. -2017.- P. 59-82.

294. Wurtzel, E.T. Changing form and function through carotenoids and synthetic biology / E.T. Wurtzel // Plant Physiology. - 2019. - Vol. 179. - № 3. - P. 830-843.

295. Yakhin, O.I. Antistress activity of plant growth regulator Epin-extra / O.I. Yakhin, A.A. Lubyanov, Z.F. Kalimullina, I.A. Yakhin, V.A. Vakhitov, A.V. Chemeris, F.R. Gimalov, R.T. Matniyazov // Russian Agricultural Sciences. - 2009. -Vol. 35. - № 3. - P. 163-165.

296. Yan, D. Assessment of the phytochemical profiles of novel hop (Humulus lupulus L.) cultivars: a potential route to beer crafting / D. Yan, Y.F. Wong, R.A. Shellie, P.J. Marriott, S.P. Whittock, A. Koutoulis// Food Chemistry. - 2019. - Vol. 275. - P. 15-23.

297. Yan, H. Exploration and development of artificially synthesized plant growth regulators / H. Yan, Z. Yang, S. Chen, J. Wu // Advanced Agrochem. - 2024. - Vol. 3. - P. 47-56.

298. Yan, Y.-F. The antifungal mechanism of isoxanthohumol from Humulus lupulus Linn. / Y.-F. Yan, T.-L. Wu, S.-S. Du // International Journal of Molecular Sciences. - 2021. - Vol. 22. - P.15.

299. Yang, J.-Y. Effect of xanthohumol and isoxanthohumol on 3T3-L1 cell apoptosis and adipogenesis / J.-Y. Yang, M. Della-Fera, S. Rayalam, C. Baile // Apoptosis. - 2007. - Vol. 12. - P. 1953-1963.

300. Yang, L. Advances in pharmacological activities of terpenoids / L. Yang, X. Wang, Q. Zhang // Natural Product Communications. - 2020. - Vol. 15. - № 7. - P.13.

301. Yasmeen, T. Pseudomonas as plant growth-promoting bacteria and its role in alleviation of abiotic stress / T. Yasmeen, A. Aziz, M. Tariq, M.S. Arif, S.M. Shahzad, M. Riaz, A. Javed, S. Ali, M. Rizwan // In: Plant Growth-Promoting Microbes for Sustainable Biotic and Abiotic Stress Management. - Springer. - 2021. - P. 157-185.

302. Yildiz, M. Editorial: Bio-based strategies for biotic and abiotic stress management in sustainable agriculture / M. Yildiz, G. Romanazzi, M.C. Oguz // Frontiers in Plant Science. - 2025. - Vol. 15. - P.3.

303. Zanoli, P. Pharmacognostic and pharmacological profile of Humulus lupulus L. / P. Zanoli, M. Zavatti // Journal of Ethnopharmacology. - 2008. - Vol. 116. - P. 383396.

304. Zhang, G. Hop bitter acids: resources, biosynthesis, and applications / G. Zhang, N. Zhang, A. Yang, J. Huang, X. Ren, M. Xian, H. Zou// Applied Microbiology and Biotechnology. - 2021. - Vol. 105. - P. 4343-4356.

305. Zhang, J. Flavones and flavonols play distinct critical roles during nodulation of Medicago truncatula by Sinorhizobium meliloti/ J. Zhang, S. Subramanian, G. Stacey, O. Yu // Plant Journal. - 2009. - Vol. 57. - P. 171-183.

306. Zhang, X.-L. Evaluation on antioxidant effect of xanthohumol by different antioxidant capacity analytical methods / X.-L. Zhang, Y.-D. Zhang, T. Wang, H.-Y. Guo, Q.-M. Liu, H.-X. Su // Journal of Chemistry. - 2014. - P.1-6.

307. Zhao, F. Inhibitors of nitric oxide production from hops (Humulus lupulus L.) / F. Zhao, H. Nozawa, A. Daikonnya, K. Kondo, S. Kitanaka// Biological and Pharmaceutical Bulletin. - 2003. - Vol. 26. - P. 61-65.

308. Zheljazkov, V.D. Drying and shade effects on spearmint oil yields and composition / V.D. Zheljazkov, T. Astatkie, E. Jeliazkova // HortScience. - 2014. -Vol. 49. - № 3. - P. 306-310.

309. Zhou, S. Suitable concentrations of brassinolide application enhances growth performance and saikosaponin biosynthesis by transcriptional activation of triterpenoid pathway genes in Bupleurum chinense DC / S. Zhou, L. Yang, J. Wan, L. Chen, X. Gu, L. Qiao// Frontiers in Plant Science. - 2025. - Vol. 16. - P. 13.

310. Zwenger, S. Plant terpenoids: applications and future potentials / S. Zwenger, C. Basu // Biotechnology and Molecular Biology Reviews. - 2008. - Vol. 3. - № 1. -P. 1-7.

311. Бычкова, О.В. Адаптации регенератов Humulus lupulus L. к условиям ex vitro / О.В. Бычкова, О.Н. Мироненко, А.В. Небылица, Ю.Р. Желонкина, Е.П. Мякишева // Вестник КрасГАУ. - 2024. - № 5. - С. 27-33.

312. Будыкина, Н.П. Влияние Эпин-Экстра на стрессоустойчивость и продуктивность огурца (Cucumis sativus L.) / Н.П. Будыкина, Т.Г. Шибаева, А.Ф. Титов // Труды Карельского научного центра РАН. - 2012. - № 2. - С. 47-55.

313. Буданцев, А.Л. Ресурсоведение лекарственных растений: методическое пособие к производственной практике для студентов фармацевтического факультета / А.Л. Буданцев, Н.П. Харитонова // Санкт-Петербургская государственная химико-фармацевтическая академия. - Санкт-Петербург, 1999. - 87 с.

314. Володина, Е.Н. Фитотоксичность куриного помета, полученного при разных способах содержания птицы / Е.Н. Володина, В.И. Титова, Е.Г. Белоусова // Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия. - 2022. - № 39. - С.12-19.

315. Воробьев, В.Н. Практикум по физиологии растений / В.Н. Воробьев, Ю.Ю. Невмержицкая, Л.З. Хуснетдинова, Т.П. Якушенкова. - Казань: Казанский Федеральный университет, 2013. - 80 с.

316. Газданова, И.О. Эффективность биостимуляторов «Эпин-экстра» и «Циркон» на картофеле / И.О. Газданова, Ф.Т. Гериева, Т.А. Моргоев //Аграрный вестник Урала. - 2020. -№ 08 (199). - С. 2-8.

317. Гамаюрова, В.С. Пищевая химия / В.С. Гамаюрова, Л.Э. Ржечицкая. - М.: КДУ, Добросвет, 2018. - 140 с. -ISBN: 978-5-7913-1042-2.

318. Телеснина, В.М. Особенности динамики растительного покрова при естественном постагрогенном лесовосстановлении (флористический состав и экологические группы растений) / В.М. Телеснина // Бюллетень Брянского отделения РБО. - 2014. - № 1(3). -С. 55-66.

319. Ермаков, А.И. Методы биохимического исследования растений [Текст] / А.И. Ермаков, В.В. Арасимович, Н.П. Ярош - Л.: Агропромиздат, 1987. - 430 с.

320. Елагина, Е.М. Влияние гибберсиба на метаболические составляющие дыхания листьев томатов / Е.М. Елагина // Биологические науки в школе и вузе. - 2015. - № 16. - С. 42-46.

321. Иванов, А.А. Синантропизация врановых и особенности их адаптаций к антропогенным ландшафтам // Acta Biologica Sibirica. - 2016. -Т. 2.- №2 1. -С.150-199.

322. Иванова, Е.П. Всхожесть семян и продуктивность растений амаранта под влиянием гибберсиба / Е.П. Иванова, Л.Л. Кириллова, Г.Н. Назарова // Сельскохозяйственная биология. - 2014. - № 1. - С. 91-97.

323. Киреева, Т.Б. Экологически-онтогенетические особенности накопления дубильных веществ в траве душицы обыкновенной в условиях Удмуртии / Т.Б. Киреева, Е.А. Китова // Биология. - 2006. - Vol. 19. -№ 10. - С. 85-96.

324. Красноярский ГАУ. Эффективность двухэтапной адаптации хмеля с применением регуляторов роста // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. - 2024. - Т .5. - С. 32-37.

325. Колмыкова, Т.С. Динамика активности аскорбатпероксидазы листьев томата в условиях пониженных температур и после их действия / Т.С. Колмыкова, Э.Ш. Шаркаева // Инженерные технологии и системы. - 2013. - №. 3-4. - С. 100-103.

326. Либацкий, Е.П. Хмелеводство / Е.П. Либацкий. - М.: Колос, 1984. - 287 с.

327. Мальцев, М.Д. Определение дубильных веществ в корневище Bergenia crass folia (L.) Fritsch. / М.Д. Мальцев // Биология. - 2023. - 105с.

328. Милоста, Г.М. Влияние микроудобрений на продуктивность хмеля в производственных условиях / Г.М. Милоста, А.А. Регилевич // Москва: Редакция журнала «Агрохимия», 2007. - Вып. 6. - С. 45-48.

329. Мыскин, В.А. Универсальная безотходная технология и средства переработки птичьего помета в органическое удобрение и добавку в корм животным / В.А. Мыскин, В.П. Капустин, Ю.В. Родионов, И.В. Иванова // Промышленные биотехнологии, Journal of VNIIMZH. - 2018. - Т. 3. - №. 31. — С. 61-65.

330. Полиуянов, А.М. Количественное определение дубильных веществ в сырье рода Rumex / А.М. Полуянов, А.Е.Савельева, А. Койнова, А.Г.Полухина, Ф.И.Гаджиева, А.Ю.Соколова, А.М.Анцышкина, Н.В.Бобкова // Разработка и регистрация лекарственных средств. - 2024. - Т. 13. - № 4. С. 148-160.

331. Пушкина, Г.П. Эффективность регуляторов роста и микроудобрений на эфиромасличных культурах / Г.П.Пушкина, Е.Л.Маланкина, Р.Р. Тхаганов, А.И. Морозов// Достижения науки и техники АПК. - 2010. - № 7. C. 42-44.

332. Савельев, А.С. Влияние регулятора роста на продуктивность озимой ржи и устойчивость растений к стрессорам / А.С. Савельев, Н.В. Смолин, А.А. Синьков // Агро XXI. - 2009. - № 10. - С. 19-20.

333. Сергеева, А.А. Экосистемный подход к возделыванию травосмесей с применением пудрета / А.А.Сергеева, Г.А.Гасимова // Казанская Госуда рственнаяакадемия ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. - 2020. - 5с.

334. Сибгатуллина, Г.В. Методы определения редокс-статуса культивируемых клеток растений / Г.В. Сибгатуллина, Л.Р. Хаертдинова, Е.А. Гумерова, А.Н. Акулов, Ю.А. Костюкова, Н.А. Никонорова, Н.И. Румянцева // Казань: Казанский федеральный университет. - 2011. - 61с.

335. Силантьева, Н.В. Экологическая пластичность Humulus lupulus L. в Восточной Европе / Н.В. Силантьева, А.А. Иванов, Е.М. Петрова // Москва: Вестник экологии и ботаники, 2025. - Т.32.- № 2. - 12 с.

336. Соколов, Ю.А. Элиситоры и их применение в растениеводстве / Ю.А. Соколов // Минск: Бел. Навука. - 2016. - 201 с.

337. Сулейманов, Ф.Ш. Определение дубильных веществ в траве золотарника канадского (Solidago canadensis L.) / Ф.Ш. Сулейманов // Health and Education Millennium. - 2017. - Т. 19. - № 12. - С. 302-306.

338. Сырмолот, О.В. Применение биопрепаратов и стимуляторов роста при возделывании сои в Приморском крае / О.В. Сырмолот, Е.С. Байделюк, Н.С. Кочева // Вестник сельскохозяйственной науки. - 2020. - Т. 8. - № 12. - С. 7074.

339. Тараканов, И.Г. Научно-производственная оценка ароматических и горьких сортов хмеля отечественной и зарубежной селекции / И.Г. Тараканов, Е.В. Козлова, Н.А. Соловьёва // Современные проблемы и перспективы развития сельского хозяйства: сб. науч. тр. - Гродно: ГГАУ, 2021. -Т.55.-С. 74-83.

340. Тимофеева, О. А.Практикум по физиологии и биохимии растений / О.А. Тимофеева. - Казань: Казанский Федеральный университет,1998. -24 с.

341. Хасанова, С.Р. Сравнительное изучение антиоксидантной активности растительных сборов / С.Р. Хасанова, Т.И.Плеханова, Д.Т.Гашимова Э. Х.Галиахметова, Е.А.Клыш // Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. - 2007. - № 1. - С. 161-164.

342. Хмелеводство: Учебно-методический комплекс / Горно-Алтайск: РИО ГАГУ. - 2010. - 47 с.

343. Чистяков, Ф.Е. Полифенолы Camellia sinensis L.: накопление и регуляция / Ф.Е. Чистяков. - Выпускная квалификационная работа. - МГПУ, Москва, 2016.

- 42 с.

344. Шафикова, С.Ф. Фармакогностическое изучение листьев хмеля обыкновенного (Humulus lupulus L.) / С.Ф. Шафикова. - Дисс. ... канд. фарм. наук. - Самара: СамГМУ, 2013. - 181 с.

345. Яхин, О.И. Протекторная роль биорегулятора стифуна при действии кадмия / О.И. Яхин, А.А. Лубянов, И.А. Яхин, В.А. Вахитов// Доклады РАСХН.

- 2007. - № 4. - С. 19-21.