Разработка средств и методов серологического мониторинга классической чумы свиней на основе твердофазного иммуноферментного анализа тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.03, кандидат ветеринарных наук Живодеров, Сергей Петрович
- Специальность ВАК РФ16.00.03
- Количество страниц 122
Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Живодеров, Сергей Петрович
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.
1. ВВЕДЕНИЕ.
1.1. Актуальность работы.
1.2. Цель и задачи исследований.
1.3. Основные положения диссертационной работы, выдвигаемые на защиту.
1.4. Научная новизна исследований.
1.5. Практическая значимость исследований.
1.6. Апробация работы.
1.7. Публикации.
1.8. Личный вклад соискателя.
1.9. Структура и объём работы.
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
2.1. Современная таксономия, патогенность вируса.
2.2. Культивирование вируса КЧС in vitro.
2.3. Патогенез, течение и симптомы болезни.
2.4. Природная очаговость.
2.5. Специфическая профилактика.
2.6. Достижения молекулярной биологии вируса и их роль в развитии методов лабораторной диагностики КЧС.
2.7. Средства и методы дифференциальной лабораторной диагностики классической чумы свиней.
2.7.1. Прямое обнаружение вирусных антигенов.
2.7.2. Изоляция и идентификация инфекционного вируса КЧС.
2.7.3. Обнаружение вирусспецифических антител.
2.7.4. Моноклональные антитела - получение и использование для прямого обнаружения вируса.
2.8.1. Гистохимические методы иммуноферментного анализа.
2.8.2. Методы твердофазного иммуноферментного анализа (ELISA) для обнаружения антител к вирусу КЧС в пробах сывороток крови.
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», 16.00.03 шифр ВАК
Разработка и совершенствование методов иммуноферментной диагностики классической чумы свиней2002 год, кандидат биологических наук Бьядовская, Ольга Петровна
Разработка твердофазного иммуноферментного анализа для прямого обнаружения антигенов вируса классической чумы свиней2005 год, кандидат биологических наук Васильев, Александр Павлович
Разработка иммуноферментной тест-системы для выявления антител к цирковирусу свиней второго типа2006 год, кандидат биологических наук Шкаева, Мария Александровна
Разработка методов иммуноферментного анализа для выявления антител к вирусу репродуктивно-респираторного синдрома свиней2004 год, кандидат ветеринарных наук Каньшина, Анжелика Владимировна
Эпизоотологический мониторинг и разработка средств диагностики бешенства, болезни Ауески и бруцеллеза2013 год, доктор биологических наук Чернов, Альберт Николаевич
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Разработка средств и методов серологического мониторинга классической чумы свиней на основе твердофазного иммуноферментного анализа»
1.1. Актуальность темы. Классическая чума свиней (КЧС) особо опасная, высоко контагиозная болезнь свиней, эпизоотии и вспышки которой регистрируют как в России, так и за рубежом. Несмотря на тенденцию к снижению количества вспышек болезнь наносит значительный экономический ущерб (6, 76,139,). Противоэпизоотические мероприятия при классической чуме свиней включают диагностику болезни, вакцинацию поголовья, в том числе в повышенных дозах, полное или частичное уничтожение животных в эпизоотическом очаге. Однако, несмотря на проводимые мероприятия в некоторых свинокомплексах установлена стационарность эпизоотических очагов этой болезни (3, 6, 9). Эффективность современной системы защиты свиноводческих хозяйств от классической чумы свиней и меры борьбы с болезнью постоянно подвергаются углубленному анализу и усовершенствованию. В настоящее время в качестве основных звеньев совершенствования противоэпизоотических мероприятий при классической чуме свиней эффективных выдвигаются средств высокоспецифические специфической методы диагностики, оценка профилактики, поствакцинального иммунитета и серологический мониторинг болезни (14, 72, 140). Природная очаговость классической чумы свиней среди диких кабанов представляет опасность возможностью вовлечения домашних свиней в цепь циркуляции возбудителя и угрозу промышленному свиноводству. В связи с этим оценка эффективности специфической профилактики, а именно, определение популяционного иммунитета диких свиней в природе также является актуальным (9,12, 19). В нашей стране основными методам серологического мониторинга, при определении напряженности иммунитета служит реакция нейтрализации (10, 41). Однако, несмотря на ее важное значение, использование реакции нейтрализации для широкомасштабного мониторинга классической чуме свиней и онределения напряженности иммунитета при массовых обследованиях крайне затруднительно ц виду длительности ее постановки, высокой стоимости, необходимостью в специально оснащенных лабораториях стерильные условия, поддержание КК, наличие живого эпизоотического вируса. В настоящее время при решении аналогичных задач предложены методы, основанные на использовании моноклональных антител (Wensvoort G. и др. 1988), имеются коммерческие наборы для определения специфических к вирусу КЧС антител (Ceditest ELISA), SYNBIOTICS (Франция), IDEXX, CYPRESS (Бельгия), однако, эти методы пригодны для качественного определения антител, но не позволяют оценивать напряженность иммунитета. Разработан ряд методов ТФ ИФА, в которых в качестве антигена использовали целую вирусную частицу (73). Несмотря на их высокие чувствительность и специфичность, возможны проблемы, связанные с интерпретацией результатов (134). Также имеются сложности при очистке вируса КЧС. Применение в качестве антигена в методах ТФ ИФА рекомбинантного белка Е2 вируса КЧС исключает эти проблемы. На основании вышеизложенного совершенствование и разработка высокопроизводительных средств и методов на основе рекомбинантного белка Е2 ВКЧС для широкомасштабного серологического обследования большого количества свиноводческих хозяйств и определения напряженности иммунитета при классической чуме свиней является актуальным. 1.2. Цели и задачи. Основная цель наших исследований заключалась в разработке средств и методов для проведения серологического мониторинга и определения напряженности иммунитета при классической чуме свиней на основе ТФ ИФА. Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи: 10 Определить оптимальные условия получения антигенов вируса классической чумы свиней, их концентрирования и очистки для использования в методах ТФ ИФА. Разработать тест-систему на основе моноклональных антител (МЛ) для технологического контроля активности протективных антигенов вируса классической чумы свиней. Разработать тест-систему с использованием рекомбинантного белка Е2 вируса классической чумы свиней, экспрессируемого вирусом осповакцины для выявления антител к вирусу классической чумы свиней в сыворотках крови свиней. Определить чувствительность, специфичность и коэффициент корреляции результатов разработанного непрямого метода ТФ ИФА на основе рекомбинантного белка Е2 по отношению к результатам РН. Оценить эффективность разработанного "Набора препаратов для выявления специфических антител к вирусу классической чумы свиней непрямым методом ТФ ИФА на основе рекомбинантного белка Е2 вируса КЧС" при проведении серологического мониторинга и определения напряженности иммунитета свиней при классической чуме свиней в условиях свинокомплексов и охотхозяйств. 1.3. Основные положения диссертационной работы, выдвигаемые на защиту: Прямой метод ТФ ИФА на основе моноклональных антител для технологического контроля при получении протективных антигенов вируса классической чумы свиней и определение условий оптимального накопления, концентрирования, очистки рекомбинантного белка Е2 вируса классической чумы свиней. Непрямой метод ТФ ИФА для выявления специфических антител к вирусу классической чумы свиней в сыворотках крови свиней с 11 использованием в качестве антигена рекомбинантного белка Е2 вируса классической чумы свиней, экспрессируемого вирусом осповакцины и конъюгата моноклональных антител к Ig G свиней. Чувствительность и специфичность разработанного непрямого метода ТФ ИФА и определение корреляции его результатов полученными с использованием РН. "Набора препаратов для выявления специфических антител к вирусу классической чумы свиней непрямым методом ТФ ИФА на основе с результатами рекомбинантного белка Е2 вируса КЧС" при проведении серологического мониторинга классической чумы свиней в практике полевых исследований на свинокомплексах и в охотхозяйствах. 1.4.. Научная новизна исследований. Разработан метод концентрирования и очистки рекомбинантного белка Е2 вируса КЧС на основе вектора вируса осповакцины. Разработан непрямой метод ТФ ИФА для обнаружения специфических к ВКЧС антител в сыворотках крови свиней, пригодный для проведения серологического мониторинга КЧС. Показана корреляция между результатами выявления антител с помощью разработанного непрямого метода ТФ ИФА на основе рекомбинантного белка Е2 вируса КЧС и РН, изучена диагностическая ценность разработанного непрямого метода ТФ ИФА. 1.5. Практическая значимость исследований. На основании результатов проведенных экспериментов, апробации при проверке полевых материалов и результатов комиссионных испытаний разработанный непрямой метод ТФ ИФА рекомендован для определения напряженности иммунитета при КЧС после вакцинации животных на 12 свинокомплексах проведения серологического мониторинга КЧС в свиноводческих хозяйствах и дикой природе. 1.6. Апробация работы. Результаты исследований, выполненных по теме диссертационной и обсуждены на заседаниях ученого совета ГНУ работы, доложены ВНИИВВиМ (г.Покров) 2002-2005гг. и Международной научно-практической конференции ВНИТИБП (Щелково, 2005г.) 1.7. Публикации. По теме диссертации опубликовано 6 научных работ, в т.ч. одна статья в журнале «Ветеринария». 1.8. Личный вклад соискателя Представленные в диссертационной работе экспериментальные исследования, теоретический и практический анализ полученных результатов проведены автором самостоятельно. В выполнении работы по
Похожие диссертационные работы по специальности «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», 16.00.03 шифр ВАК
Промышленные технологии изготовления компонентов моно- и комплексных диагностикумов инфекционных заболеваний животных2008 год, доктор биологических наук Матвеева, Ирина Николаевна
Разработка технологии иммуноферментной тест-системы для выявления антител к аденовирусам крупного рогатого скота2001 год, кандидат биологических наук Третьякова, Ирина Владимировна
Серологический мониторинг вирусных респираторных болезней крупного рогатого скота методом иммуноферментного анализа2011 год, кандидат биологических наук Сивков, Георгий Викторович
Разработка набора реагентов для оценки эффективности поствакцинального иммунитета к вирусу бешенства в серологических реакциях2005 год, кандидат биологических наук Акиньшина, Татьяна Викторовна
Иммуноферментный анализ в диагностике вирусной диареи крупного рогатого скота2004 год, кандидат ветеринарных наук Амиров, Акмал Холмуродович
Заключение диссертации по теме «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», Живодеров, Сергей Петрович
6. Выводы
1. Установлено, что оптимальными условиями получения антигена рекомбинаншою белка вируса КЧС, экспрессируемою вектором осповакцины являются: время культивирования зараженной культуры клеток CV-1 - 48 часов, множеавенносп» заражения - 0,001 ТЦД^кл. Указанный способ позволяет получить вируссодержащее сырье с шфом 8,25 lg Т11Д50/см3.
2. Полученный специфический антиген вируса КЧС при введении животным вызывает образование вируснейфализующих ашшел к вирусу КЧС в титре более 1:128 и приюден для использования при исследовании напряженности иммунитета при КЧС методами ТФ ИФЛ.
3. Разрабошнный прямой метод ТФ ИФА на основе моноклональных антител позволяет определи п> ак1ивносп> рекомбинантного белка Е2 вируса КЧС при ею параболе в перевиваемой культуре клеток. Максимальный уровень накопления указанною белка в перевиваемой культуре клеток CV-1 составляет 1:400 через 48 часов культивирования при дозе заражения 0,001 ПЩ50/кл.
4. Разработанный меюд очисти и конценфирования рекомбинантного белка путем фракционирования высаливанием с использованием сульфата аммония и последующей очисткой методом гельнроникающей хромаю!рафии позволяет получать белок Е2 вируса КЧС с активностью в прямом ГФ ИФА 1:3200.
5. Разрабошнный непрямой меюд ТФ ИФА позволяет выявлять специфические антитела к вирусу КЧС в сыворо1ках крови свиней и кабанов через 7 дней после иммунизации или заражения животного. Максимальный уровень антител к вирусу КЧС (1:2500) данный метод обнаруживает на 28 cyiKH после заражения или иммунизации.
6. Сенсибилизированный на планшеi рекомбинангный белок Е2 ВКЧС при температуре 4°С сохраняет активность в гечение 12 месяцев (срок наблюдения). Разработанный непрямой метод ТФ ИФА при использовании одного планшета позволяет исследован» на наличие анiиiе,i к ВКЧС 46 проб сывороюк крови методом одного разведения в двух повгорностях.
7. Апробация разрабо шиною непрямою метда ГФ ИФА в нолевых условиях при выявлении антител к ВКЧС в сыворотках крови свиней свидетельствуат, чю меюд приюден для применения на практике при определении напряженноеiи иммуншеш к вирусу КЧС после вакцинации свиней и проведения серологическою мониюритна заболевания на свинокомплексах и в дикой природе. По отношению к PII диагностическая чувствительность и диатоешческая снецифичносп. непрямого метода ТФ ИФА сосшвила 94% и 92,4% соответственно. Коэффициент корреляции результатов РН и разработанною непрямою метода ТФ ИФА составил г=0,93.
7. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
Для применения в вегеринарной пракшке с целыо проведения серологическою мониюриша и определения напряженносж иммуншега при классической чуме свиней на основе '1Ф ИФА разработан и предложен «Набора препаратов для выявления специфических антител к вирусу классической чумы свиней непрямым методом иммуноферменжого анализа на основе рекомбинашною белка Е2 ВКЧС». Подготовлена и утверждена директором ГНУ ВНИИВВиМ временная норма!ивная документация: "Инструкция по изготовлению и кош ролю набора препаратов для выявления специфических антител к вирусу классической чумы свиней непрямым методом иммунофермешною анализа на основе рекомбинашною белка Е2 ВКЧС", "СТО 00495549-0019-2006 на набор ирепараюв для выявления специфических ашшел к вирусу классической чумы свиней непрямым методом иммуноферментною анализа на основе рекомбинантного белка Е2 ВКЧС", "Нааавление по применению набора ирепараюв для выявления специфических антител к вирусу классической чумы свиней непрямым меюдом иммуноферментною анализа на основе рекомбинашною белка Е2 ВКЧС".
Приюднос1ь для иракшческого использования разрабспанною «Набора.» подтверждена комиссионными исиьпаниями и при проведении диашосшческих исследований в ГНУ ВНИИВВиМ.
Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Живодеров, Сергей Петрович, 2007 год
1. Васильев, Л.П. Разработка твердофа зног о иммуноферментного анализа для прямою обнаружения антигена вируса классической чумы свиней: автореф. дис.канд.биол. наук : 03.00.06 / Васильев Александр Павлович.- Покров, 2005.-28с.
2. Вишняков, И.Ф. Имм>нофлуоресцешное выявление разных штаммов вируса чумы свиней / Вишняков И.Ф. и др. // Ветеринария.- 1984.-№3.- С. 34 36
3. Вишняков, И.Ф. Некоторые особенноеIи классической чумы свиней, затрудняющие ее диагностику / Вишняков И.Ф. // Вегеринария,-1985.- №9.- С. 29-31.
4. Джонс, Э.И., Грегори Дж. Иммунопероксидазные меюды / под ред. Кэтти Д.- М.,- 1991.- С. 239-267.
5. Джупина, С.И. Классическая чума свиией. Эпизоотический процесс и его контроль.- М.-2001.- р. 172.
6. Джупина, С.И. Некоторые особенности проявления эпизоотическою процесса классической чумы свиней / Джупина С.И. и др. // Меюдология мероприятий по профилактике и ликвидации болезней с.-х. животных.-Новосибирск,- 1995.-С. 177-183.
7. Коломыцев, A.A. К вопросу формирования природных очагов классической чумы свиней / Коломыцев A.A. и др. // Вопросы ветеринарной вирусологи, микробиологии и эпизоотологии.-1992.-Ч. 1.-С. 113-115.
8. Куриннов, В.В. Эпиюоюлошческие, патогенетические и диагностические особенности классической чумы свиней / Куриннов В.В. и др. // Ве1еринария.- 1993.- № 11-12.- С. 6-12.
9. Куриннов, В.В. Эгшзоотологические проблемы, клиническое проявление и джиностка классической чумы свиней / Куриннов В.В. и др. // Актуальные вопросы вегеринарной вирусоло1ии: труды Междунар. науч.- практ. конф.- Покров, 1995.- С. 50-54; 63-69.
10. Кузнецов, A.B. Изучение условий получения кулыуральных комилемешсвязывающих ашигенов вируса классической чумы (КЧС)/ Кузнецов A.B., Попов В.И. // Актуальные вопросы ве1еринарной вирусоло!ии.- Покров, 1976.- №. 1.-С.130-132.
11. Макаров, В.В. Классическая чума свиней- особенности эпизоо1ическо1 о процесса и проблемы на современном этапе / Макаров В.В. и др. // Аграрная Россия.- 2001.- №3.- С.-42-48.
12. Меюдические указания по лабораторной диагностике классической чумы свиней № 13-7-2/809 от 30.12.96 г. ГНУ ВНИИВВиМ.
13. Peine тиков, Г.Г. Сишез, антигенные и иммунотенные свойства пептидов- фрагменюв белка Е2 ВКЧС / Решетников Г.Г. и др. // Актуальные проблемы иатолопш свиней, крупною и мелкого рогатогоскога: сборник сiaiейВладимир, 2002.
14. Середа, В.А. Классическая ч>ма свиней в промышленном свиноводстве/Середа В.А. и др. //Ветеринария,- 2001.-№9.-С. 10-15.
15. Совершенствование профилактических и нрогивоэии юогических мероприятий при классической чуме свиней // Отчет по НИР ВНИИВВиМ.- Покров, 1988.-С.6-12.
16. Сюрин, В.II. Диапюсшка вирусных болезней животных / В.II. Сюрин и др.- М.: Агропромиздат, 1991.- 258 с.
17. Скупый, М.Ф. О роли диких свиней в распространении чумы / Скуный М.Ф., Тихонов Л.И.//Ветеринария.- 1973.-№ 11.-С.59-60.
18. Фримель, X. Иммунологические меюды/ Фримель X. М.: Мир, 1992.-С. 9-18.
19. Ченчев, И.Е. Доказване на вируса на чумата по свинете чрез шразяване на клетъчни культури с лимфоцити лизарини червени кръвни клетки / Ченчев И.Н. и др. // Вегеринарные Медицинские Науки.- 1985.- Т. 22, № 12.-С. 16-19.
20. Чермашенцев, В.И., Меюдические указания но обнаружению, идентификации и титрованию вируса классической чумы свиней в кулыуре JIC свиней-доноров/ Чермашенцев В.И., Юрков С.Г. -Покров, 1988.-С. 21.
21. Adams, P. Methods of culture of cells / Adams P.- 1983.- P.210.
22. Anderson, Jan. Fetal calf serum brought hits cell kulture laboratories // Nature.- 1980.-Vol. 285, „V» 5760.- P. 63.
23. Bakkali, Z. Preparation of diagnostic of pestiviruses by biomolecular methods. / Bakkali Z. et al. // In. Proc. Sec. Symp. On Pestiviruses .- Lion,1992.- P. 227-229.
24. Barnaure, G. Recherches concernant la valeur immunogene dune souche vaccinale attenuee antipeste porcine, cultivi sue cellules tripsinesees/ Barnaure G. et al. // Lucr. Inst. eecr. vet. Dioprep: "Pasteur", 1977. -№ 13. P. 15-22.
25. Baumgartner, W. A simple method for histochemical demonstration of viral inclusion bodies in cell monolautrs in microtitration plates/ Baumgartner W., Krakowka S. // Stain. Iechnol.- 1986.- Vol. 61, №4.- P. 215-218.
26. Becher, P. Futher characterization of Border Disease Virus isolates: evidence for the more than three species within the genus pestivirus / Becher P. et al.J // Virology.- 1995.-Vol. 209.- P. 200-261.
27. Biront, P. Vaccines// Classical Swine Fever and Related Viral Infections / edited by Liess B.- Boston, 1988.- P. 181-200.
28. Boynton, W. II. Preliminary report of the propagation of hog cholera virus in vitro// Vet. Med.- 1946.- Vol. 41.- P. 364.
29. Bouma, A. Efficacy and stability of a subunit vaccine based on glycoprotein E2 of classical swine fever virus / Bouma A. et al.J // Vet. Microbiol.-1999.- Vol.66.- P. 101- 114.
30. Bruderer, U. Combined testing of serum samples for antigen and antibody yields optimal detection of classical swine fever / Bruderer U. et al. // Thid ESVV Symposium on Pestivirus Infections.- Lelystad, 1996.- P. 144147.
31. Caji, A. Potential use of monoclonal antibodies recognizing structural and non-structural hog cholera virus proteins as diagnostics tools / Caji A. et al. // Proc. Sec. Symp. on Pestiviruses.- Lion, 1992.- P. 219-222.
32. Caji, A., Muyldermans G., Smet A., et al. Production and characterization of monoclonal antibodies against hog cholera virus (Alfort 187 Strain) / Caji A. et al. // Arch. Virol.- 1993.- Vol. 131.- P. 185 - 192.
33. Canal, C.W. Differentiation of classical swine fever virus from ruminant pesti viruses by ieverse transcription and polymerase chain reaction (RT
34. OCR) / Canal C.W. et al. // Vet. Microbiol.- 1996.- Vol. 48.- P.373- 379.
35. Canal, C.W. '1 he role of immune tolerance in transmission of hog cholera // J. Am. Vet. Med. Assoc.- 1965.- Vol. 146.- P. 233-237.
36. Carbrey, E. A. Routine laboratory' diagnosis of hog cholera employing the ilyorescent antibody tissue culture technique // FAO/OIE International Meeting on Hog Cholera and African Swine Fever.- Rome, 1965.
37. Carbrey, E. A. Diagnosis of hog cholera / Carbrey E.A., Ericson G., Metz C. // Prev. Vet. Med.- 1984,- № 2,- P. 103-108.
38. Carbrey, E.A. Diagnostic procedures // Classical Swine Fever and Related Viral Infactions/ ed.by Liess B.- Boston, 1988.- P.99-114.
39. Clavijo, A. Development of a competition ELISA using a truncated E2 recombinant protein as antigen for detection of antibodies to classical swine fever virus./ Clavijo A. et al. // Res. Vet. Sc. -2001.-Vol-70.-p. 1 -7.
40. Collett, M.S. Recent Advances in Pestivirus Research / Collett M.S. et al. // J.Gen.Virol.- 1989.- Vol.70, part 2.- P. 253-260.
41. Corthier, G. Activité antigenique comparée de deux togavirus: le virus de la peste porcine et le virus de la maladie des muqueuses / Corthier G. et al. // Ann. Rech. Vet.- 5. 1974.- P. 373-393.
42. Crevât, D. Five hours to identify immunotolerant cattle, persistently infected with bowine virus diarrhoea virus. In biotechnology applied to the diagnoses / Crevât D. et al. // Rev. sei. tech. Off. Int. Epi/.- 12(2).- P. 483492.
43. Dahle, J. Neutralizing antibody development following sequential inoculation of pigs with strains of bovine viral diarrhea vitus and hog cholera virus / Dahle J., Liess B., Frey I l.R. // J. Vet. Med.- 1987.- B 34.- P. Dahle J.729-739.
44. Darbyshire, J.II. A serological relationship between swine fever and mucosal disease of cattle // Vet. Rec.- I960.- № 72,- P.331.
45. De las Muías, J.M. Immunohistochemical detection of hog cholera viral glycoprotein 55 in paraffin-embedded tissues / De las Mulas J.M. et al.J // J. Vet. Diagn. Invest.- 1997.- Vol 9.- P. 20-16.
46. Dekker, A. Six antigenic groups within the genus pestivirus as identified by cross-neutralisation assay / Dekker A., Wensvoort G., Terpstra C. // Vet. Microbiol.- 1995.- Vol. 47(3-4).- P.317-329.
47. Depner, K.R. Sensitivity of antigen EUSA in used in the CSF diagnostics / Depner K.R. et al. // Diagnostic procedures and measures to control classical swine fever in domestic pigs and the european wild boar.- Pulawy, 1996.- P. 61-63.
48. Depner, K.R. Evaluation of the enzyme-linked immunosorbent assay for the rapid screening and detection of classical swine fever virus antigen in blood of pigs / Depner K.R. fet al. // Rev. sci.tech. Off.int. Kpi/.- 1995.- №14.-P. 677-689.
49. Diderholm, H. I he use of SV 40-transformed cell for titration of bovine viral dirroea and hog cholera viruses / Diderholm 11., Dinter Z. // Zbl. Vet. Med.- 1965.- Vol. 12.-P. 469-475.
50. Donaldson, A.J. Persistent viral infections // Proc. Pig veterinary society.-1987.- Vol. 19.- P. 69-78.
51. Dre, T. The application of novel techniques to bovine viral diarrhoea antigen detection / Dre T., Frost K., Edwards S. // Proc. Second Symposium on Pestiviruses (S. Edwards, ed.). / Annecy. Switzerland, 1-3 October 1992.
52. Fondation Marsel Mereux. France.- Lyons, 1992.- P. 193-198.
53. Dunne, II.W. Field and laboratory diagnosis of hog cholera // Vet. Med.-1963.- Vol.53.- P. 222-239.
54. Edvards, S. 'I he development of an international referens panel of monoclonal antibodies for the differentiation of hog cholera virus from pestiviruses / Edvards S., Moenning V., Wensvoort G. // Vet. Microbiol.-1991.- № 29.- P. 101 -108.
55. Edwards, S. Antigenic differences among pestiviruses / Edwards S., Paton D. // Vet. Clin. North. Am. Food Anim. Pract.- 1995.- № 11(3).- P. 563577.
56. Edwards, S. Antigenic comparisons of hog cholera virus isolates from Europe, America and Asia using monoclonal antibodies / Edwards S., Sands J. J. // Dtsch. Tierarztl. Wochenschr.- 1990.- Bd. 97. P. 79 - 81.
57. Edwards, S. 'I he application of monoclonal antibody panels to characterize pestivirus isolates from ruminants in Great Britain / Edwards S., Sands J. J. Harkness J.//Arch. Virol.- 1989.-Vol.102. P. 197 -206.
58. Engvall, E., Perlmann P. Immunochemistry.- 1971.- Vol. 8,- P. 871.
59. En/niann, P.J. Quantitative and rapid assays of togaviruses bu immunofluorecence // Acta Virol.- 1979,- Vol. 23, № 4,- P. 329-330.
60. Ericson, G. Hog cholera (Swine fever) / Ericson G., Eds A. E., Castro W. P. // Heushele Veterinary Diagnostic Virology, St Louis.- 1992,- P. 228-230.
61. Fenton, A. An ELISA for detecting pestivirus antigen in the blood of sheep persistently infected with border desis virus. / Fenton A. et al. // J. Virol Meth.- 1992.- Vol. 27.-P. 253-260.
62. Fenton, A. Identification of cattle infected with bovine virus diarrhoea virus using a monoclonal antibody capture ELISA / Fenton A. fet al. // Arch Virol. Suppl.- 1998.- Vol 3. -P. 169-174.
63. Francki, R.I.B. Classification and nomenclature of viruses/ Francki R.I.B. et al. // Fifth Report of the Intenational Committee on Taxonomy of viruses: Wien & New Yoik, 1991.
64. Gay, B. Comparative analysis of monoclonal antibodies against pestiviruses: report of an international workshop / Clay B. et al.J // Vet. Microbiol.- 1989.- Vol. 20.- P. 123 129.
65. Goldman, R. Heterogeneity of antigenic-sidechain ength in lipopolysaccharide from Escherichia coli 0111 and salmonella typhimurium LT2 / Goldman R., Lieve L. // Eur. J. Biochem.- Vol. 107,- P. 145-153.
66. Greiner, M. Principles and practical application of the receiver operating characteristic (ROC) analysis for diagnostic tests. / Greiner M. et al. // Vet. Prev. Med.-2000.- Vol. 45.- P. 23-41.
67. Harcness, J.W. Classical swine fever and its diagnosis: A cut rent view // Vet. Rec. 1985.- Vol. 116, N 11.- P. 288-293.
68. Have, P. Detection antibodies against swine fever virus by enzyme-linked immunosorbent assay (BUSA) // Acta. vet. Scand.- 1984.- Vol. 25, № 3-. P. 462-465.
69. Herting, C. Genetic heterogeneity within the coding regions of E2 and NS3 in strains of bovine diarrhea virus / 1 lerting C., Staldei H., Peterhans E. // Gene.- 1995.- Vol. 153, №2.- P. 191-195.
70. I less, R.G. Identification of hog cholera viral isolates by use of monoclonal antibodies to pestiviruses / Hess R.G., Coulibaly G.O., Greiser-Wilke 1. // Vet. Microbiol.- 1988.- Vol.16.- P. 315-321.
71. Hor/inek M.C. Pestiviruses taxonomic perspectives // Arch. Virol. 1991.-Vol.3.- Suppl.- P. 1-5.
72. Holm-Jensen, M. Detection of antibodies against hog cholera virus and bovine viral diarrhoea virus in porcine serum. A comparative examination using CF, PLA and NPLA assays // Acta vet. Scand.- 1981.- Vol.22.- P. 8598.
73. Hülst, M.M. Glycoprotein El of hog cholera virus expressed in insect cells protects swine from hog cholera / Hülst M.M. et al.j // J. Virol.- 1993.-Vol.67.- P. 5435-5442.
74. König, M. Classical swine fever virus: Independent induction of protective immunity by two structural glycoproteins / König M. et al.J // J. Virol.-1995.-Vol. 69.- P. 6479-6486.
75. Kaden, V. Detection of low-virulent classical swine fever virus in blood of experimentally infected animals: comparison of different methods / Kaden V. et al. // Acta Virol.- 1999.- Dec. 43(6).- P. 373-80.
76. Karass/on, D. Demonstration of the swain fever virus in tissue culture by immunofluorescence / Karass/on D., Bodon L. // Acta Mikrobiol. Acad. Sei. Hung.- 1963.- Vol. 3,№ 10.- P. 287-291.
77. Komaniwa, H. Micro Method for Performing Titration and Neutralization Test of Hog Cholera Virus Established Porcine Kidney Cell Strain / Komaniwa H., Fukusho A., Himizu Y. // Natl. Inst. Anim. Health Q.- 1981.-Vol.21.- P. 153-158.
78. Kosmidou, A. Differentiation of classicsl swine fever virus (CSFV) strains using monoclonal antibodies against structural glicoproteins / Kosmidou A. et al. // Vet. Microbiol.- 1995.- Vol. 47.- P. 111-118.
79. Krassnig, R. Wien fierarztl.// Monatsschr -1993,-Vol.-8,-P. 229.
80. Laud,e H. Diagnostic serologique de la peste porcine classique utilisation d'une souche cytolytique pour la recherche des anticorps neutralisants en microplaque / Laude II., Gelfi J. // Ann. Rech. Vet.- 1980.- №3.- P. 313319.
81. Laude, II. Hog holera virus: arts and facts // Ann Rech Vet.- 1987.- Vol. 18.- P. 127-138.
82. Leforban, Y. A blocking ELISA to differentiate hog cholera virus antibodies in pig sera from those due to other pestiviruses / Leforban Y. et al. // Ann. Rech.Vet.- 1990.- Vol. 21.- P. 119-129.
83. Liess, B. Courses of hog cholera virus infection // Regional biotechnology workshop on diagnosis of classical swine fever: Pulawv.- 1994.- P. 1-6.
84. Liess, B. Persistent infections of hog cholera: a review // Preventive Vetrinary Medicine.- 1984.- Vol. 2.- P. 109-113.
85. Liess, B. Untersuchungen über die Europaische Schweinepest. V. Ermittlung inapparent infizierten Schweine in der Ferkelerzeugenbestanden in drei Ortschaften / Liess B. et al. // Berl. Munch. Tierarztl. Wschr.-1975.- Vol.88.- P. 397-409.
86. Liu, S.T. Rapid detection of hog cholera virus in tissues by the polymerase chain reaction / Liu, S.T et al.J // J. Virol. Meth.- 1991.- Vol.35(2).- P.-227-236.
87. Lowry, O.H. Protein measurement with the Folin phenol reagent / Lowry O.I I., Farr A.J., Paudall R.Y. // J. Biol. Chem.- 1951.- Vol. 193.- P. 265275.
88. Lowing, P. Classical swine fever v irus diversity and evaluation / Lowing P., et al.//J. Gen. Virol.- 1996.- Vol.77.- P. 1311-1321.
89. Lowings, P. Detection of classical swine fever virus in blood: a comparison between virus isolation, antigen ELISA and RT PCR / Lowing P., et al. // Therd ESVV Symposium on Pestivirus Infections.- Lelystad, 1996.- P. 130134.
90. Matschullat, G. Feldinfektion mit BVD-Virus bein Schwein: Epidemiologie und Diagnostik / Matschullat G. et al. // Deutsche Tierarztliche
91. Wochenschrift.- 1994-Vol. 101, №1.- P. 22-26.
92. Mengeling W. Evaluationof the Fluorescent Antibody-Cell Culture Test for Hog Cholera Diagnosis / Mengeling W. Iorray J. // Am. J. Vet. Res.- 1967.-Vol. 127, №28.- P. 1653-1659.
93. Mengeling, W.L., Packer R.A. Pathogenesis of chronic hog cholera. Hostresponse / Mengeling W.L., Packer R.A. // Am. J. Vet. Res.- 1969.-Vol. 30.- P. 409-417.
94. Meyers, G. C>topathogenicity of Classical Swine Fever Virus Caused Defective Interfering Particles / Meyers G. 'Ihiel H.J. // J. Virology.- 1995.-Vol. 69, № 6.- P. 3683-3689.
95. Mignon, B. A monoclonal ELISA for bovine viral diarrhoea pestivirus antigen detection in persistently infected cattle / Mignon B. et ah. // J. Virol. Meth.- 1992.-Vol.35.-P. 177-188.
96. Mignon, B. Epidemiological evaluation of a monoclonal ELISA detecting bovine viral diarrhoea pestivirus antigens in Held blood samples of persistently infected cattle / Mignon B. et al. // J. Virol. Meth.- 1992.-Vol.40.- P. 85-94.
97. Moennig, V. Pestivirus// Vet. Microb.- 1990.- Vol.23.- P. 35-54.
98. Moennig, V. 'I he pestiviruses / Moennig V., Plagemann G.W. // Adv. Virus Res.- 1992.- Vol.41.- P. 53-98.
99. Mojzis, M. Proceedings of the seminar on the control of classical swine fever and the evaluation of the inter-laboratory comparison test / Moj/is M. // Latvian National Veterinary Laboratory', 30 November 1 December.-1999.- P. 40-53.
100. Moormann, R.J.M. Molecular cloning and nucleotide sequence of hog cholera virus, strain Brescia and mapping the genomic region encoding envelope protein LI / Moormann R.J.M. et al. // Virology.- 1990.- Vol. 177.- P. 184-198.
101. Nishimori, T. Production of monoclonal antibodies against classical swine fever virus and their use for antigenic characterization of Japanese isolates /
102. Nishimori T., Yamada S., Chimi/u M. // J. Vet. Sci.- 1996,- Vol. 58.- P. 707 -710.
103. Paton, D.J. Congenital infection of pigs with ruminant-type pestiviruses / Paton D.J., Done S.H.//J. Comp. Pathol.- 1994.- Vol.111, №2.- P. 151-163.
104. Paton, D.J. An ELISA detecting antibody to conserved pestivirus epitopes / Paton D.J., Edwards S., Wensvoort G. Hi. Virol. Meth.- 1991.- Vol. 31.- P. 315-324.
105. Paton, D.J. BVD monoclonal antibodies: relationship between viral protein specificity and viral strain specificity. / Paton D.J., Sands J.J., Roehe P.M. // Arch. Virol.- 1991.- Vol. 3.- P. 47-54.
106. Paton, D.J. Infection of pigs and cattle with bovine viral diarrhea virus on a farm in England / Paton D.J., Simpson V., Done S.H. // Vet. Rec.- 1994.-Vol. 131.- P. 185-188.
107. Paton, D.J. A proposed division of the pestivirus genus using monoclonal antibodies, suppored by cross-neutralisation assay and genetic sequencing / Paton D.J. et al.J // Vet. Res.- 1995.- Vol. 26.- P. 92-109.
108. Paton, D.J. Classical Swine fever \irus: a ring test to evaluate RT-PCR detection methods / Paton D.J. et al. // Vet. Microbiol.- №73.- P. 159-174.
109. Paul, J. Cell and tissue culture // 5th ed Edinbinburgh e.a. Churchill Livingstone.- 1975.- P. 484.
110. Pearson, J. Hog cholera diagnostic techniques // Comp. Immun. Microbiol. Infect. Dis.- 1992.- Vol. 15.-P. 213 219.
111. Perlmann, D. Use of antibiotices in cell culture media Meth // En/ymol.-1979.- Vol.58.- P. 104-112.
112. Plant, I.W. Immunological relationship between Border disease, mucosal disease and swine feve /r Plant I.W. fet al. // Vet. Rec.- 1973,- Vol. 92.-P.80-87.
113. Prados, F.J. Sequence and characterization of the major early phosphoprotein p32 of African swine fe\er virus / Prados F.J., Vinuela E., Alcami A. //J. Virol.- 1993.- Vol. 67.- P. 2475-2485.
114. Proceeding of the I bird Symposium on Pestiviruses / 'I he Netherlands. Lelystad, 1996.- P. 192.
115. Ridpath, J.F. Segregation of Bovine Viral Diarrhea Virus into Genotypes / Ridpath J.F., Bolin S.R., Dubovi E.J. // Virology.- 1994.- Vol. 205, №1.- P. 66-74.
116. Ressang, A. The diagnosis of hog cholera in the Netherlands. / Ressang A., Boer J. // Bull. of. int. epiz.- 1971,- Vol. 75.- P. 519-531.
117. Ruinenapf, T. Molecular characterization of hog holera virus / Rumenapf T. et al. //Arch. Virol. Supp.- 1991,- Vol. 1, № 3.- P. 7-18.
118. Saunders, G.C. Application of the indirect enzyme-labeled antibody microtest to detection and surveillance of animal diseases / Saunders G.C. et al.//Am. J. Vet. Res.- 1977.- Vol. 18,№ 1.-P. 104-112.
119. Saunders, G.C. Development and Evaluated of an Enz>me-Labeled Antibody Test for the Rapid Detection og I log Cholera Antibodies // Am. J. Vet. Res.- 1976.- Vol. 38, № 1.- P. 21-25.
120. Shannon, A.D. Detection of hog cholera virus antigens in experimentally infected pigs using an antigen-capture ELISA / Shannon A.D. et al. // Vet. Microbiol.- 1993.- Vol. 34.- P. 233-248.
121. Shannon, A. D. An antigen-capture ELISA detects pestivirus antigens in blood and tissues of immunotolerant carrier cattle / Shannon A.D. et al. // J. virol. Meth.- 1991.- Vol.34.- P. 233-248.
122. Shih-Tung Liu. Rapid detection of hog cholera virus in tissues by the polymerase chain reaction. J / Shih-Tung Liu. et al. // Virol. Methods.-1991.- Vol.35.- P. 227-236.
123. Steiger, Y. Diagnosis of ASF b> PCR / Steiger Y. et al. // J. of Clin.
124. Microbiol.- 1992.- Vol. 30,- P. 1-8.
125. Tabares, E. A reliable enzyme-linked immunosorbent assay for ASF using the major structural protein as antigenic reagent / Iabares I:., Fernandes M. //Arch. Viril.- 1981.- Vol. 70.- P .297-300.
126. Fen Broeck C. Cultivation of hog cholera virus // J Exp. Med.- 1941.- Vol. 74. p. 427-432.
127. Terpstra, C. Antibody Response against Swine Fever Following Vaccination with C-Strain Vitus / Terpstra C., Tielen J.M. // Zbl. Vet. Med B.- 1976.-Bd. 23,1 left 10.- P. 809-821.
128. Ihibault, J.C. Principle and use of antigen capture ELISA for the diagnosis of classical swine fever//JCT 109, NM.- 1994.
129. Trautwein, G. Pathology and pathogenesis of the disease // Classical Swine Fever and Related Viral Infections / edited by B. Liess.- Boston, 1988.- P. 27-54.
130. Van Oirchot, J.F. A congenital persistent swine fever infaction. I.Clinical and virological observations / Van Oirchot J.T., Terpstra C. // Vet. Microbiol.- 1977.- Vol. 2.- P. 121-132.
131. Van Oirschot, G. Hog cholera // Diseases of Swine.- Ames: Iowa, 1994,- P. 274-285.
132. Vannier, P. Study of the origin of an epizootic of classical swine fever// J. Vet. Med. S. B. 1986.- Bd. 35, Vol. 11.- S. 297
133. Van Rijn, P. Classical swine fever virus (CSFV) envelope glycoprotein E2 containing one structural antigenic unit protects pigs from lethal CSFV challenge / van Rijn P., Bossers A., Wensvoort G. // J. Gen. Virol.- 1996.-Vol. 77.- P. 2737-2745.
134. Van Rijn, P. Epitope mapping of envelop glicoprotein El of hog cholera virus strain Brescia / van Rijn P., de Meijer J., van Gennip II. // J. Gen. Virol.- 1993.- Vol. 74.- P. 2053 2060.
135. Van Rijn, P. Antigenic structure of envelope glicoprotein El of hog cholera virus / van Rijn P., Miedema G., Wensvoort G. // J. Gen. Virol.- 1994.- Vol. 68.- P. 3934-3942.
136. Vasic, B. Umnozavanje virusa svinjske kuge a celijkim kulturama Bubrega /amoraca i svinja / Vasic B., Kesic Z., Vasic N. // Vet. Glasnik.- 1972,- Vol. 26, № 10.- P. 739-744.
137. Vigairo, J.D. Tecnicas Virologicas em uso no Diagnostico da Peste Suine Africana / Vigaiio J.D. fet al. // Rep. Trab. J. N. Y.- 1980.-№ XII.- P.59-64.
138. Vilcek, S. Genetic identification of pestivirus strain Frijters as a border disease virus from pigs / Vilcek S., Belak S. // J. Virol. Meth.- 1996.- Vol. 60,-P. 103-108.
139. Vilcek, S. Pestiviruses isolated from pigs, cattle and sheep can be allocated into at least three genogrours using polymerase chain reaction and restriction endonuclease analysis / Vilcek S. et al.J // Arch. Virol.- 1994.-Vol. 36.- P. 309- 323.
140. Virus infections of porcines/ Ed. M.B. Pensert.- Amsterdam,- 1989.- p. 121
141. Voller, A. The Enzyme Linked Immunosorbent Assay (ELISA) / Voller A., Bidwell D.E., Baitlett A. London, 1979.- P. 58.
142. Waters Mary, J. Editorial rapid viral diagnosis / Waters Mar) J., Gust I.D. // Pathology.- 1986.- Vol. 18.- P. 3-4.
143. Weiland, E. A second envelope glycoprotein mediates neutralization of a pestivirus, hog cholera virus / Weiland E. et al. // J. Virol.- 1992,- Vol.66.- P. 3677-3682.
144. WeiIand, E. Pestivirus glycoprotein which induces neutralizing antibodies from part of a disulfide-linked heterodimer. / Weiland E. et al. //J. Virol.-1990.- Vol. 64.-P. 3563-3569.
145. Wensvoort G. Bovine viral diarrhoea infections in piglets from sows vaccinated against swine fever with contaminated vaccine / Wensvoort G., Ferpstra C. // Res. Vet. Sci.- 1988.- Vol.45.- P. 143-148.
146. Wensvoort, G. Topographical and functional mapping of epitopes on hog cholera virus with monoclonal antibodies// J. Gen. Virol.- 1989.- Vol. 70.-P. 2865-2876.
147. Wensvoort, G. Classical swine fever. A Changing clinical picture / Wensvoort G., Terpstra C. // Tijdschr. Diergeneesk.- 1985.- Vol. 110.- P. 263-269.
148. Wensvoort, G. An Enzyrn Immunoassay Employing Monoclonal Antibodies and Detecting Specifically Antibodies to Classical Swine Fever Virus / Wensvoort G. et al. // Vet. Microbiol.- 1988.- Vol.17.- P. 129 140.
149. Wensvoort, G. Antygenic Differentiation of Pestivirus Strains with Monoclonal Antibodies Against Hog Cholera Virus / Wensvoort G. et al. //Vet. Microbiol.- 1989.- Vol.21-. P. 9-20,
150. Westergaard, J.M. Epidemiology of classical swine fever // Diagnostic procedures and measures to control classical swine fever in domestic pigs and the European wild boar.- Pulawy, 1996.- P. 119-130.
151. Wong, M-L. Expression of the glycoprotein E2 of the classical swine fever virus in Escherichia coli Wong M-L et al. // Veterinary Medical Science.-1988.-60.-P. 541-544.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.