Разработка технологии одновременной мойки и дезинфекции овечьей шерсти с применением электрохимически активированных растворов хлоридов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.06, кандидат ветеринарных наук Джабарова, Гульнара Абакаровна

• Джабарова, Гульнара Абакаровна
• кандидат ветеринарных наук
• 2008

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Джабарова, Гульнара Абакаровна

Введение.

1. Обзор литературы

1.1 Шерсть, как фактор передачи инфекционных и инвазионных болезней животных и человека.

1.2 Способы промывки шерсти овец на фабриках первичной обработки.

1.3 Методы и режимы обеззараживания шерсти овец.

1.4 Новые моющие и антимикробные препараты на основе электрохимии для обработки сырья животного происхождения.

1.5 Токсикологическая характеристика электрохимически 40 активированных растворов.

1.6 Применение нейтрального анолита в ветеринарной и медицинской практике.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Разработка технологии одновременной мойки и дезинфекции овечьей шерсти с применением электрохимически активированных растворов хлоридов»

Актуальность. В условиях реформирования сельскохозяйственного производства Российской федерации широкое распространение получило предпринимательство в сфере заготовки и реализации сырья животного происхождения, в том числе шерсти тонкорунных и грубошёрстных овец.

В основных направлениях экономического и социального развития России поставлена задача, увеличить производство шерсти, шубно-мехового сырья и повысить их качество [86].

Одним из основных мер эффективного использования шерсти является сохранение её ценных свойств на всех стадиях производства в период заготовки, хранения и первичной обработки. При современных масштабах производства шерсти, даже незначительное повсеместное улучшение качества этой продукции при строгом соблюдении всех технологических процессов переработки даёт возможность стабильно получать больше прибыли [76].

Шерсть, как сложный волокнистый материал, обладает способностью легко окрашиваться, удерживать тепло и влагу при высокой прочности и низкой пожароопасности. Её используют при производстве костюмных и пальтовых тканей, валяной обуви, ковров, ковровых изделий и т.д.

Различают несколько видов шерсти: тонкая, полутонкая, полугрубая, грубая. Тонкая шерсть отличается высокой извитостью, прочностью и другими техническими свойствами. Получают тонкую шерсть от чистопородных тонкорунных овец, лучшая тонкая шерсть — мериносовая. Из неё изготавливают наиболее высококачественные изделия.

К полутонкой относится шерсть, состоящая из более грубого пуха или из смеси волокон трудно различимых по диаметру. Средний диаметр всех волокон больше 25 мкм. Полугрубая шерсть состоит из пуха, переходного волокна и сравнительно тонкой ости. Грубая шерсть состоит из смеси всех типов волокон, при большей их толщине.

Доля шерсти в структуре мирового производства волокон составляет 57%. Объём вырабатываемой шерсти в России обеспечивает функционирование отраслей народного хозяйства и удовлетворяет потребность населения в одежде первой необходимости. Поэтому шерсть занимает особое место на рынке сбыта готовой продукции. В структуре мирового производства шерсти на долю тонкой и полутонкой приходится 2/3, а грубой и полугрубой — 1/3 её объёмов. В России соответственно 66 и 34% [116].

Основными экономическими районами производства шерсти в России являются Северо-Кавказский (32% общего объёма), Восточно-сибирский (12%), Уральский (11%) и Западно-Сибирский (10%) [132].

Наряду с этим овечья шерсть, как основное сырьё шерстеперерабатывающей промышленности, может служить источником распространения многих инфекционных заболеваний людей и животных, таких как бруцеллёз, сибирская язва, оспа, ящур, листериоз, дерматомикозы и др. [11, 12, 45, 65, 97, 98, 99, 100, 101, 137, 138]. Как отмечает Поляков A.A. (1964) — контакт работников с инфицированной шерстью сопровождается заболеванием рабочих предприятий шерстеперерабатывающей промышленности сибирской язвой, бруцеллёзом, туляремией и др. Поэтому обеспечение санитарного благополучия на фабриках ПОШ и в шерстеперерабатывающих хозяйствах, способствует предупреждению возникновения инфекционных болезней человека и животных. Одной из важных сторон профилактики инфекционных заболеваний является одновременная мойка и дезинфекция шерсти при её первичной обработке, так как возбудитель заболевания может длительное время сохранять вирулентные свойства.

В нашей стране и за рубежом разработано множество методов первичной обработки шерсти. Однако они не позволяют совместить одновременную мойку и дезинфекцию с технологическим процессом первичной обработки шерсти. Незавершённая технология первичной обработки шерсти приводит к огромным потерям шерстяного волокна, как на фабрике первичной обработки, так и на шерстеперерабатывающих предприятиях. Кроме того, повреждение волокон шерсти при переработке сырья влияет на качество готовых изделий [42, 43, 44, 108].

Исходя из вышеизложенного, изыскание эффективных, экологически безопасных моющих и дезинфицирующих средств и на их основе разработка технологии одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки является актуальной проблемой.

Существующие технологии мойки и дезинфекции шерсти не всегда удовлетворяют требованиям практики, связаны с большими материальными и трудовыми затратами, снижают качество сырья, загрязняют окружающую среду сточными водами производства и не вполне отвечают требованиям действующей «Инструкции по дезинфекции сырья животного происхождения и предприятий по её заготовке и переработке» (1981).

Так, по данным Полякова A.A., Андрюнина Ю.И., Григановой Н.В. (1985), после дезинфекции шерсти текущими паром в камерах Крупина шерсть желтеет, понижается прочность волокна, в результате чего оно становится ломким. Количество повреждённых волокон при этом достигает до 60%. Дезинфекция шерсти 2,5% раствором формальдегида трудоёмка и небезопасна в экологическом отношении. Обработка шерсти газом и гамма-излучением не применяется из-за отсутствия гамма-установок и прекращения выпуска газовой смеси и полиамидной плёнки [57, 103].

При замочке и мойке шерсти повышенная концентрация соды вызывает частичное растворение шерстяного волокна, а пониженная -приводит к плохому отмыванию жиропота и загрязнению шерсти. Длительность нахождения шерсти в растворах также отрицательно влияет на её качество [147].

Предназначенные для целей мойки и дезинфекции шерсти препараты должны быть с широким спектром антимикробного действия при отсутствии запаха и маркости, экологически безопасными и способными быстро разрушаться во внешней среде без образования токсичных соединений, малотоксичными и безопасными в работе, не снижающими товарное качество сырья [45, 98, 137].

В поиске эффективных экологически безопасных моющих и дезинфицирующих средств перспективным является использование биоцидов на основе униполярной электрохимической активации (ЭХА) водных растворов хлоридов в проточных электрохимических реакторах ПЭМ-3 установок СТЭЛ [Бахир В.М., Задорожний Ю.Г., Закомырдин A.A. 1975-1980, Ваннер Н.Э., 1985-2002; Бутко М.П., Царукян С.С., 2005].

В настоящее время ЭХА растворы хлорида натрия применяются в качестве моющих, дезинфицирующих и стерилизующих средств на объектах здравоохранения [49] для дезинфекции молочных, убойных цехов, скорлупы яиц [55] в технологическом процессе переработки птицы [Бутко М.П., Царукян С.С., 2006]; в профилактике и борьбе с основными микозами пчёл [78]. Положительные результаты по одновременной мойке и дезинфекции овечьей шерсти ЭХА растворами NaCI были получены в опытах Григановой Н.В., Закомырдина A.A., Ваннер Н.Э., (2000).

Повышенный интерес к ЭХА растворам хлорида натрия связан с тем, что действующие компоненты препарата являются короткоживущими пероксидными соединениями, обладающими высокой бактерицидной и вирулицидной активностью при отсутствии токсичности и отрицательного влияния на обрабатываемые объекты.

Цель и задачи исследований. Цель - научно обосновать, разработать и внедрить технологию применения униполярно электрохимически активированных растворов хлорида натрия (анолит, католит) в сочетании с традиционными моющими средствами при одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки в условиях овцеводческих хозяйств и фабрик ПОШ (первичная обработка шерсти).

В задачи наших исследований входило:

1. Изучить устойчивость санитарно-показательных тест-микроорганизмов (Е. coli штамм - 1257; St. aureus штамм - 209-Р и вируса Ньюкаслской болезни птиц штамм - «Ла-Сота») к воздействию нейтрального анолита АНК при его раздельном и сочетанном применении с уксусной кислотой, перманганатом калия, йодом, формальдегидом и др.

2. Изучить влияние ЭХА растворов хлорида натрия в сочетании с традиционными моющими средствами на инактивацию Е. coli штамм - 1257; St. aureus штамм - 209-Р овечьей шерсти в лабораторных условиях.

3. Разработать оптимальные бактерицидные композиции сочетанного применения ЭХА растворов хлорида натрия с традиционными моющими средствами при одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе первичной обработке.

4. Изучить влияние некоторых физических факторов и химических средств на остаточное содержание жира, растительного сора, минеральных примесей, естественной микрофлоры в образцах шерсти после её промывки и ополаскивания.

5. Разработать технологию одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец на фабриках её первичной обработки.

6. Провести производственное испытание разработанной технологии одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки.

7. Определить основные качественные показатели шерсти после её одновременной мойки и дезинфекции ЭХА растворами хлорида натрия в сочетании с традиционными моющими средствами.

8. Определить экономическую эффективность одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец в процессе её первичной обработки.

I. Обзор литературы 1.1. Шерсть как фактор передачи инфекционных и инвазионных болезней животных и человека

Продукты животного происхождения и сырьё (молоко, брынза, шерсть, пушно-меховое сырьё и др.), получаемые от больных животных, могут быть факторами распространения инфекционных болезней, в частности бруцеллеза, сибирской язвы, оспы, ящура туляремии и др.

Исследованиями установлены многочисленные случаи заражения людей бруцеллезом через молоко, сыр, брынзу и другие продукты, приготовленные из необезвреженного молока. Кроме того, бруцеллезом можно заразиться при обработке мясных продуктов, кож и шерсти от бруцеллезных животных [129, 150]. Источником распространения возбудителей бруцеллеза могут быть и собаки, которые, поедая последы, абортированные плоды и т.д. становятся разносчиками инфекции. В распространении заболевания могут быть причастны грызуны, особенно крысы и мыши, а также клещи, мухи, слепни и другие насекомые. Грызуны не только механически распространяют бруцеллез, но и сами восприимчивы к нему. Клещи служат резервуаром инфекции, в них бруцеллы способны сохраняться длительное время. Мухи и другие насекомые в основном являются механическими переносчиками бруцелл [128].

При многих инфекционных и инвазионных заболеваниях (сибирская язва, бруцеллез, оспа, ящур, чесотка, туляремия и др.) возбудители попадают в шерсть вместе с калом, мочой, слюной, часто с кровью при убое и снимании шкур с трупов животных. Содержание в шерсти более 17% влаги, и плюсовая температура благоприятствуют сохранению жизнеспособности микроорганизмов в шерсти [94, 99].

Шерсть овец, коз, верблюдов, происходящая из пунктов, неблагополучных и карантинированных по сибирской язве, эмфизематозному карбункулу, бродзоту, ящуру, оспе овец, считается зараженной. Отечественная шерсть, поступающая из неблагополучных по сибирской язве не карантинированных пунктов, рассматривается как подозрительная по заражению. Верблюжья шерсть и пух, поступающие из пунктов, карантинированных по сапу, инфекционному энцефаломиелиту и инфекционной анемии лошадей, а также из маллеиновых хозяйств, рассматриваются как заведомо заражённые.

Стрижка, заготовка и вывозка шерсти в хозяйствах, неблагополучных по сибирской язве, воспрещается на все время карантина; после снятия карантина шерсть должна быть подвергнута дезинфекции или горячей мойке при температуре не ниже 55°С.

Импортная шерсть, независимо от наличия ветеринарных сертификатов, подвергается выборочному бактериологическому исследованию на сибирскую язву. При отрицательном результате шерсть подвергается горячей мойке, а при положительном - дезинфекции.

Стрижку овец и коз, неблагополучных по бруцеллезу, производят на брезентовой подстилке или деревянном помосте, ежедневно подвергаемых влажной дезинфекции; остриженную шерсть хранят изолированно в течение двух месяцев.

Дезинфекция шерсти подозрительной в сибирской язве производится:

1) насыщенным паром (100°С) или водяным паром (110-111°С) под давлением 0,5 атм. в течение 2,5 час в камерах системы Крупина;

2) 1,8 - 2,0 % водным раствором формалина с предварительной мойкой в мыльно-щелочном растворе и последующей 15-20 минутной сушкой при температуре не ниже 70°С в специальных ваннах с механическими приспособлениями для перемешивания, выемки и отжимания шерсти;

3) пароформалиновым способом, в стационарных или в передвижных пароформалиновых камерах.

При невозможности изоляции зараженной бруцеллезом шерсти её дезинфицируют: и

1) текучим паром в камерах системы Крупина, при 105-115°С 30 минут: шерсть рыхло укладывают в мешках, емкостью не более 50 кг, из расчета 50 кг на 1 м3 полезной емкости камеры;

2) мойкой в горячем мыльно-щелочном растворе при температуре не ниже 55°С, с последующим высушиванием при 75-80°С.

Шерсть, подозреваемую в происхождении от животных, больных оспой, ящуром, туляремией, а также чесоткой, дезинфицируют так же, как и шерсть, зараженную бруцеллезом.

В странах производителей шерсти в настоящее время регистрируется значительное количество заболеваний, при которых необходимо проводить её дезинфекцию. К таким заболеваниям, наносящим огромный социально-экономический ущерб, относятся: бруцеллез, лептоспироз, листериоз, туляремия, эмфизематозный карбункул, сибирская язва, паратиф, паратуберкулез, оспа, псороптоз (чесотка), ящур, болезнь Ауески.

Кроме того, многие страны — поставщики животного сырья являются неблагополучными по инфекционным заболеваниям, и не исключается возможность завоза с шерстью возбудителей различных инфекций: бруцеллеза, ящура, сибирской язвы и др. [14].

По сообщениям ряда авторов (Коромыслова Г.Ф., 1983, Керимова Ч., 1966-1967; Садыкова С.Ж., Таршис М.Г., 1984; Радионова C.B.,. 1983, Яковлева И.Н., Беспалова B.JL, 1988; Джупиной С.И., 1985) бруцеллез регистрируется на всей территории России и прилегающих государств СНГ.

Стационарно неблагополучными территориями по бруцеллезу являются Волгоградская, Ростовская, Оренбургская области, Ставропольский край, Калмыкия, Дагестан и др. В целом ряде хозяйств Прикаспийского региона России, считавшихся благополучными по бруцеллезу, в последнее время выделяются положительно реагирующие животные, и имеется угроза дальнейшего осложнения эпизоотической ситуации по данной болезни. При этом анализ динамики заболеваемости показывает, что в регионе отмечается устойчивая тенденция к росту случаев заболеваемости людей бруцеллезом, которая в 2004 году достигла 238 случаев (10,4 случаев на 100 тыс. населения) [64].

Бруцеллез регистрируется во многих странах мира, таких как Аргентина [152], Германия [159], Великобритания [153, 155, 156], США

164], Канада (Forbes Y.B.,1989), Италия (Romasko H.,1980), Турция [161], Куба [157], Аляска [162], Бангладеш [163], Греция (Vautsis D., 1933), Польша

165], Франция (Festerbauk R., 1987), Индия (Chang P.U., 1968), Иран (Zeughi Е., Ecadi А., 1938). В настоящее время род бруцелл принято подразделять на следующие виды: Br. abortus, Br. melitensis, Br. suis, Br.neotomae, Br. ovis, Br. canis.

Основные виды возбудителей бруцеллеза, т.е. бруцеллы вида мелитензис (козье-овечий вид), вида абортус (бычий вид) и вида суис (свиной вид) в соответствии с определенными их свойствами принято подразделять на биотопы, согласно решению Международного комитета по бактериологической номенклатуре.

Учитывая, что шерсть служит фактором передачи возбудителя бруцеллеза, необходимо принять во внимание свойства устойчивости бруцелл и их способность сохраняться во внешней среде, в том числе и шерсти.

Как отмечают Голубев И.Е., (1939), Николаев В.А., (1954), Селиванов A.B., (1969) виды бруцелл, вызывающие заболевание человека, обладают значительной устойчивостью к неблагоприятным физико-химическим воздействиям. Так, например, во влажной почве они не погибают в течение 72-100 дней, в навозе инфицированных помещений сохраняются 45 дней, в коровьем навозе при низкой температуре - до 160 дней; в условиях сибирской зимы в сенной трухе - до 5 месяцев, в воде - от 76 до 300 дней, в лужах мочи - до 45 дней, на одежде, загрязненной выделениями или испражнениями больных животных — 15-30 дней, на загрязненной овечьей шерсти — 80-115 дней.

Возбудители бруцеллеза остаются жизнеспособными в молоке при нагревании до 55°С в течение 2 часов, до 65°С - 15 минут, до 70°С — 5 минут. При кипячении бруцеллы погибают моментально. Сухой жар действует слабее: при температуре 90-95°С и при пониженной влажности бруцеллы погибают только через час [84].

Исследованиями Тараканова Ю.И. и др. (1969) установлено, что в грязной овечьей шерсти возбудители бруцеллеза Br.abortus 19, Br.melitensis 25 и Br.melitensis 16 Ма выживают 121 день, а Br.abortus - 544, Br.suis - 1 и Br.suis 1330 - 110 дней.

Выяснением сроков сохранения вакцинных бруцелл на шерстном покрове овец занимались Селиванов A.B. и Гриницина Г.А. в 1966. Для этого исследователями было поставлено два опыта на двух нестриженных овцах породы советский меринос. В первом опыте выживаемость бруцелл вакцинного штамма на шерстном покрове определялась после аэрозольной иммунизации овцы. Животное находилось в камере 1 час, где создавалась концентрация 100 млн. вакцинных бруцелл на 1 л воздуха. Во втором опыте инфицирование шерстного покрова животного проводилось путем нанесения на различные участки тела вакцинной культуры из расчета 1 мл 10 млрд. взвеси бруцелл на 10 см2 шерстного покрова.

В результате установлено, что вакцинный штамм № 19, в зависимости от погодных условий и режима содержания овец, погибает в первые часы или сутки после нанесения на шерстный покров животных.

На основании опытов в условиях Узбекистана Даминова Л.Д. (1966) сообщает, что бруцеллы, заключенные в прессованную шерсть и на ее поверхности в июне сохраняли жизнеспособность в течение 27 дней, в то время как в рыхлой шерсти при аналогичных условиях - в течение 15 дней. В шерсти при комнатной температуре бруцеллы сохраняются 44-48 дней, а в жиропоте шерсти - свыше трех месяцев. Сливко В.В. и Воробьева М.В. (1940) отмечают, что бруцеллы в чистой шерсти сохраняются до 65 - 85 дней, в шерсти с примесью крови — 85- 105 и в загрязнениях фекалиями — 105-125 [96].

Как отмечает Онацкий И.И. (1968), бруцеллы выживают в тонкорунной овечьей шерсти в течение двух месяцев при инфицированности 10 микробных тел на 1 г шерсти и хранении ее в темном месте при температуре 13-25°С. Многие исследователи - Сафронов Н.В., Третьяков Ю.К. (1969) и другие отмечают, что бруцеллы могут сохраняться на шерсти от 15 до 115 дней. Различные сроки выживаемости бруцелл, по-видимому, объясняются тем, что эксперименты проводились при различных температурных и влажностных режимах, применялись различные методики и плотности инфицирования, а также использовалась шерсть неодинакового качества. Например, шерсть грубошерстных пород овец содержит меньше жиропота, чем шерсть тонкорунных овец, а жиропот препятствует высыханию шерсти, тем самым гибели бруцелл. По Яковлеву Л.А. (1939-1940) бруцеллы в жиропоте сохранялись более трех месяцев.

Наряду с выживаемостью исследователями изучены также культуральные и вирулентные свойства возбудителя бруцеллеза, длительно хранившегося на шерсти. Установлено, что в условиях хранения шерсти при комнатной температуре в течение двух месяцев возбудитель бруцеллеза теряет свою вирулентность, а к третьему месяцу - жизнеспособность.

Следующим особо опасным заболеванием, распространяющимся с сырьем животного происхождения, в частности с шерстью овец, является ящур. Тенденция к глобальному распространению, высокая контагиозность болезни, множество иммунологических типов и подтипов возбудителя, разнообразие путей выделения и распространения, способность длительное время сохраняться как во внешней среде, так и в организме животных характерны возбудителю данного заболевания. Эпизоотии ящура не знают географических и климатических границ и могут распространяться в очень короткое время на огромные территории [16, 70, 71, 112, 139, 143]. Число животных ежегодно заболевающих ящуром, в ряде стран превышает общее количество переболевших всеми другими заразными болезнями [65]. Ящур сопровождается большими потерями молока, мяса, шерсти и других видов животноводческой продукции, достигающими 30-40%.

Анализ эпизоотической ситуации в СНГ свидетельствует о том, что в последние годы значительные территории его свободны от ящура, а единичные случаи его распространения регистрируются, в основном, в Средней Азии, Казахстане и Закавказье [17].

Исследованиями установлено, что спонтанно невосприимчивые животные — собаки, кошки, лошади, и домашняя птица - при тесном контакте с больными животными и контаминированными вирусом навозом, предметами ухода за скотом, кормами, могут быть промежуточно-пассивными носителями вируса и механически распространять его за пределы эпизоотического очага. Ряд авторов полагает, что птицы могут переносить вирус пассивно на перьевом покрове или после заглатывания выделять его с пометом. В то же время с этим не согласуются множество других наблюдений, и эпизоотологическое значение птиц и их перелётов является спорным, а крысы и мыши только в исключительных случаях могут чисто механически перенести возбудителя на небольшое расстояние [168].

Второстепенная роль в распространении ящура принадлежит также мухам, клещам и другим насекомым, как механическим переносчикам вируса. Мясо и субпродукты животных, убитых в инкубационном периоде заболевания и в период генерализации ящурного процесса, также могут быть источником распространения болезни.

В странах Европы (Бельгии, Греции, Италии, ФРГ и Швейцарии) зарегистрировано 14 случаев заноса вируса ящура с импортированным из Южной Америки мороженым мясом. В Великобритании в период 1939-1950 гг. насчитывалось 355 первичных вспышек, из которых в 243 случаев источником возбудителя явилось импортированное мясо, шерсть.

Роль транспортных средств в распространении вируса ящура и тесная связь между появлением вторичных вспышек болезни и транспортными магистралями отмечается многими исследователями. Это относится в первую очередь к тем транспортным средствам, которые непосредственно связаны с перевозками животных и животноводческой продукции на рынки, мясокомбинаты, молокозаводы, шерстеперерабатывающие фабрики и др.

Отмечая многообразие путей распространения ящура, Селлерс и др. подчёркивают, что аэрогенное распространение заболевания зависит от действия различных факторов на аэрозоль вируса. При этом, как отмечают исследователи, решающее значение имеют относительная влажность, солнечная радиация, конвенционные потоки, направление ветра и дожди.

Источником аэрогенного заболевания могут быть животные, активные и пассивные выделители вируса, и контаминированные предметы и продукты животноводства, генерирующие при определенных условиях, вторичные вирусные аэрозоли [166]. Точку зрения о том, что основным механизмом передачи вируса ящура является алиментарный путь, разделяют многие авторы [4, 12, 64, 115, 137, 142, 148, 157, 158].

Действие на вирус ящура физических и химических факторов вызывает разрушение и инактивацию при сохранении целостности вириона. При этом низкие температуры, высушивание, глицерин оказывают на вирус консервирующее действие, а высокие температуры, УФ Л, высокие и низкие значения рН - разрушающее [112].

Устойчивость вируса ящура к различным химическим веществам различная. Такие вещества, как хлорная известь, креолин, крезол, фенол, сулема мало эффективны против вируса ящура [159]. Химические вещества, которые создают в окружающей вирус-среде концентрацию водородных ионов ниже 6,0 или выше 11,0, вызывают разрушение вируса [160].

Выживание вируса тесно связано с условиями среды, в которой он находится: рН, влажностью, температурой и другими факторами. Например, при рН фосфатного раствора, в котором взвешен ящурный вирус, равном 4.0 - 6,2, разрушается вирус примерно за 4 дня; при рН, равном 6.4 — 7,0, разрушение идет быстро, но не регулярно; при рН, равном 7,4, вирус остается живым в течение 71-73 дней. При температуре 37°С вирус независимо от рН раствора, едва выживает от 4 до 20 дней [21].

Особенно устойчивым вирус ящура становится после высыхания. Высушенный вирус на коже, шерсти и каучуке сохраняет свою вирулентность 80-100 дней (Поляков А.А., 1964). В шерсти и щетине, хранившейся в тюках при комнатной температуре в течение 31 дня, вирус ящура теряет свои вирулентные свойства [20]. По сообщениям Полякова А.А., Андрюнина Ю.И., Григановой Н.В. (1985) вирус ящура в сырье животного происхождения (шкуры, пушно-меховое сырье, шерсть, пух и перо) остается жизнеспособным от 20 до 352 суток.

Среди других источников заболевания сырье животного происхождения (шерсть, шкуры и др.) является доминирующим в распространении сибиреязвенной инфекции. Возбудитель заболевания Вас. апШгаыэ обладает выраженными вирулентными свойствами и способен вызывать у животных и человека болезнь со смертельным исходом. Шкура и шерсть, снятая с павшего от сибирской язвы или вынужденно убитого животного - опасный фактор распространения возбудителя данной болезни. Поэтому при заготовке, хранении, транспортировке, первичной обработке кожевенного и другого сырья необходимо строго проводить ветеринарно-санитарные и профилактические мероприятия против сибирской язвы. Чаще бывают инфицированы шкуры сухого консервирования [61, 62 63].

Споры сибирской язвы очень устойчивы и сохраняются в почве годами. Засолка и сушка мяса, кож способствует сохранению спор. Отмечена разница в восприимчивости к возбудителю сибирской язвы у животных разных пород одного и того же вида, например, алжирские овцы более устойчивы, чем овцы европейских пород. Ягнята 2-3-х месячного возраста более устойчивы к заражению возбудителем сибирской язвы, чем взрослые овцы.

Для сибирской язвы характерна сезонность проявления. Массовое распространение болезни наблюдается в пастбищный период. Эпизоотии сибирской язвы чаще наблюдаются в засушливые, неурожайные годы [65].

Джупина С.И. (1981) считает, что роль летающих кровососов в распространении болезни незначительна, поэтому современные особенности эпизоотической ситуации можно объяснить усиленным размножением клещей-кровососов. На это указывают совпадение сезона активации клещей с усилением распространения болезни, а также особенности изменения структуры вспышек сибирской язвы.

Люди, занимающиеся переработкой животного сырья, также заболевают сибирской язвой. В конце 70-х годов на Боровскую суконную фабрику поступили две партии шерсти и козьего пуха из Ирана и Афганистана, неблагополучные по сибирской язве. В результате 8 работников фабрики заболело. Заражение возможно даже через готовые изделия из шерсти, если шерсть инфицирована [116]. Для обеспечения санитарной безопасности при ввозе шерстяного сырья из-за рубежа, необходима его дезинфекция [14, 23].

Поступление шерсти на шерстомойные фабрики без предварительной дезинфекционной обработки, в том числе и из овцеводческих неблагополучных хозяйств, может служить источником заноса инфекции на шерстемоечное производство. Данные Степанова H.H. (1939), Ярового JI.B., Рыбасова H.A. и Шаферштейна Д.Л. (1963) подтверждают возможность заражения рабочих фабрик первичной обработки шерсти [89].

В настоящее время считается установленным, что болезнью Ауески переболевают люди, соприкасающиеся с инфицированным материалом - как в легкой, так и в тяжелой формах [8, 79].

Наиболее продолжительное время вирус сохраняется в объектах, находящихся в животноводческих помещениях. Фураж, подстилка, вода обезвреживаются к 60-му дню после их загрязнения вирусом [80]. Сохраняемость вируса в меховом сырье зависит от температуры окружающей среды [141]: в кроличьих шкурках зимой при 5-6°С вирус погибает через 46-49 дней; летом при 16-18°С - 24-28 дней.

Для обеззараживания кроличьих шкурок, инфицированных вирусом Ауески, применяют сухой посол смесью солей, состоящей из 5% алюминиевых квасцов, 5% хлористого аммония и 90% поваренной соли при 24 часовой экспозиции и температуре 5-8°С. В этих условиях вирус инактивируется через 41-49 дней [82, 83, 139, 140, 141, 142, 143].

Полученные экспериментальные данные показывают необходимость нового подхода при решении вопроса проведения текущей и заключительной дезинфекции объектов ветеринарного надзора. Хорошо проводимые ветеринарно-санитарные меры, сочетаемые с зоотехнической работой, являются средством, позволяющим успешно бороться с болезнью Ауески.

В шерстеперерабатывающих предприятиях рабочие могут заболеть и туляремией. Для профилактики заболевания применяют специальные правила, регламентирующие получение шерсти в неблагополучном хозяйстве. Овец, прежде всего, освобождают от переносчиков туляремии — клещей, для чего обрабатывают одним из существующих инсектицидов. Полученную после стрижки овец шерсть упаковывают в двойную мягкую плотную тару и отправляют на склады для дезинфекции и последующего 4-х месячного выдерживания в условиях, исключающих возможность заражения туляремийными грызунами.

При отправлении шерсти овец и шкурок грызунов из мест неблагополучных по туляремии, выдается специальное свидетельство, где указывают вид сырья, место и дату отправки, а также способ обеззараживания и количество мест [99].

По сообщению Малеченко Б.И. (1965) возбудитель паратифа овец (Salmonella abortus ovis) сохраняется под белковой защитой (сыворотка крови) на мездре 30-40, на коже с шерстью - 51, на шерсти после стрижки овец - 110 дней.

В шерсти больных оспой овец возбудитель заболевания сохраняется два месяца и более [101].

Многочисленные литературные данные показывают, что сырье животного происхождения: шкуры, шерсть, пух, перо и др. играют большую роль в распространении инфекционных заболеваний людей и сельскохозяйственных животных. Поэтому дезинфекция шерсти и другого животного сырья в большинстве случаев является обязательным профилактическим мероприятием, обеспечивающим благополучие предприятий по переработке животного сырья и обслуживающего персонала.

Заключение диссертации по теме «Ветеринарная санитария, экология, зоогигиена и ветеринарно-санитарная экспертиза», Джабарова, Гульнара Абакаровна

Выводы:

1. Впервые разработана эффективная экологически безопасная технология одновременной мойки и дезинфекции шерсти овец с применением электрохимически активированных растворов хлорида натрия (поваренной соли).

2. Электрохимически активированные растворы хлорида натрия (нейтральный анолит и католит) в сочетании с мыльно-содовым раствором при одновременной мойке и дезинфекции обеспечивают 99-100% обеззараживание шерсти овец; при этом мыльно-содовый раствор применяется в половинной дозе, рекомендуемой действующей инструкцией.

3. Изучена устойчивость неспорообразующих тест-культур (Е. coli -1257; St. aureus -209-Р) к воздействию нейтрального анолита (Сах=0,12мг/мл) с уксусной кислотой в соотношении 1000:1; разработано новое дезинфекционное средство на основе ЭХА нейтрального анолита в комбинации с уксусной кислотой. Получен патент РФ на изобретение № 2251416.

4. Установлено, что сочетание мыльно-содового раствора с ЭХА растворами хлорида натрия в соотношении 5:1:1 соответственно обеспечивает одновременную мойку и дезинфекцию шерсти овец в процессе первичной обработки при экспозиции 30 мин и температуре раствора 45-52°С.

5. Обработка шерсти по разработанной технологии (одновременная мойка и дезинфекция) не оказывает отрицательного влияния на качество шерсти и соответствует действующим ГОСТам.

6. Проведённой технико-экономической оценкой затрат на синтез анолита и католита нами установлено, что стоимость получения 1 л анолита или католита на установках СТЭЛ с учётом материальных и трудовых затрат составляет 7 коп., а применение разработанной технологии первичной обработки шерсти овец позволяет предотвратить экономический ущерб в размере 12 руб. 56 коп. на 1 рубль затрат на каждые 100 кг обработанной шерсти.

7. Применение разработанной технологии по сравнению с известной сокращает трудозатраты на 8-10%, повышает выход чистой шерсти на 0,51,2%, вымывание растительного сора и минеральных примесей на 0,5-2,0% при исключении загрязнения окружающей среды шерстеперерабатывающих предприятий вредными химикатами.

Практические предложения:

На основании результатов проведённых исследований разработано:

- Временное наставление по применению электрохимически активированных растворов хлорида натрия (хлористого натрия) в сочетании с традиционным мыльно-содовым раствором при одновременной мойке и дезинфекции шерсти овец в процессе ёё первичной обработки (утверждено НТС Комитета Правительства Республики Дагестан по ветеринарии протокол 3 от 14 октября 2005 г.);

- Наставление по применению электрохимически активированного нейтрального анолита в сочетании с уксусной кислотой в аэрозоле при респираторных заболеваниях птиц" (утверждено НТС Комитета

Правительства Республики Дагестан по ветеринарии протокол 3 от 14 октября 2005 г.).

В заключении приношу глубокую благодарность профессору A.A. Закомырдину за оказанную помощь в процессе выполнения работы с униполярно электрохимически активированными растворами и техническими средствами.

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Джабарова, Гульнара Абакаровна, 2008 год

1. Абрамов К. Санитарная обработка оборудования в цехах переработки мяса птицы. /К. Абрамов// Тез. докл. Всеросс. конф. молодых учёных т аспирантов по птицеводству. -Сергиев Пасад. 1999. - С.35-36.

2. Андрюнин Ю.И. Обеззараживание сырья животного происхождения лучами Сабо. /Андрюнин Ю.И.// Автореферат диссертации на соискание учёной степени. -Москва, -1970.

3. Андрюнин Ю.И. Ионизирующие излучения в ветеринарии. /Ю.И. Андрюнин , A.A. Поляков // Вестник с/х жизни, -1973. -№16.

4. Архипов В.В. Применение гамма-лучей для обеззараживания сибиреязвенного кожевенного сырья. /В.В. Архипов// Тр. ВНИИВС, -М. -1963.-т. 22.

5. Барсамян И.И. Качество шерстяного сырья в СССР. /И.И. Барсамян, О.Я. Шейфер// -М., ЦИНТИ лёгк. пром, 1963.

6. Базылев П.М. Случаи заболевания людей болезнью Ауески. /П.М. Базылев, Е.И. Скалинский, A.C. Фоменко// Сборник работ по вопросам производства и применения биопрепаратов, № 1. -1963. С.39.

7. Базылев П.М. Об изменчивости биологических свойств вируса болезни Ауески. /П.М. Базылев, Э.М. Прохорова// Актуальные вопросыветеринарной вирусологии (Материалы II ветеринарной вирусологической конференции 24-27 января, 1968) Часть I. -М. -1968.

8. Бакулов И.А. Эпизоотический мониторинг за листериозом животных. / И.А. Бакулов, В.М. Котнеров, В.В. Белулов// Ветеринария, -1989. -т.5. -С.43- 46.

9. Бакулов И.А. Листериоз у животных в РФ. /И.А. Бакулов, В.М. Копнеров// 35-летний период наблюдения Материалы научной конф. ВНИИВВиМ 13-18 апреля 1992. -Покров, -С. 206-211.

10. Бахир В.М. Проточные электрохимические модульные элементы ПЭМ и реакторы РПЭ для технических электрохимических систем. /В.М. Бахир, Ю.Г. Задорожний// Второй международный симпозиум "Электрохимическая активация".- часть 2. -1999. -С. 304-315.

11. Беляев H.H. Дезинфекция немытой шерсти. /H.H. Беляев, А.И. Князев// Серия текстильной промышленности СССР. -М. -1978. Министерство лёгкой промышленности СССР.

12. Бойко A.A. Ящур и его искоренение. /A.A. Бойко// -М. -1964.

13. Бурдов А.Н. Ящур. /А.Н. Бурдов// -М., ВО "Агропромиздат" -1990.

14. Ваннер Н.Э. Дезинфекция птицеводческих помещений аэрозолями электроактивированных растворов хлоридов. /Н.Э. Ваннер// Автореферат диссертации на соискание учёной степени. -М. -2001.

15. Вашков В.И. Дезинфицирующие моющие средства, перспективные для применения на предприятиях пищевой промышленности. / В.И. Вашков, Е.К. Скворцова// Тр. ЦНИДИ, -М. -1971, -вып. 21. -т. 1.

16. Воинов С.И. К вопросу о сохраняемости вируса ящура в кормах, шерсти и шкурах в условиях Средней Азии. /С.М. Воинов// Вопросы профилактики и искоренения ящура, -Новосибирск. -1966.

17. Воинов С.И. О сохраняемости вируса ящура в воде в условиях средней Азии. /С.М. Воинов// Тр. ВНИИВС, -М. -1967.

18. Волковский Г.В. Обеззараживание шерсти при сибирской язве смесью окиси этилена с бромистым метилом. /Г.В. Волковский// Тр. ВУНИИВС, -М. -1982 -т.74. -С. 110-116.

19. Голубев И.Е. Восприимчивость лошадей к различным типам бруцеллёза. /И.Е. Голубев// "Советская ветеринария" -№2. -1939.

20. Голубев И.Е. Бруцеллёз у лошадей. /И.Е. Голубев// Сельхозгиз,194 с.

21. ГОСТ 7763-71. Шерсть тонкая мериносовая. -М. -1975

22. ГОСТ 8488-57. Шерсть грубая весенняя. -М. -1984

23. ГОСТ 20576-88. Шерсть натуральная сортированная. Правила приемки и методы отбора проб. -М. -1993

24. ГОСТ 20270-84. Шерсть натуральная сортированная. Методы определения содержания подстриги, перхоти и растительных примесей. -М. -1997.

25. ГОСТ 21244-75. Шерсть натуральная сортированная. Метод определения длины. -М. -1997.

26. ГОСТ 20269-69. Шерсть. Метод определения разрывной нагрузки. -М. -1995 И.П.К.

27. ГОСТ 21008-75. Шерсть натуральная сортированная мытая. Метод определения содержания жира. -М. -1993.

28. ГОСТ 21008-93. Шерсть натуральная мытая. Метод определения массовой длины жира. -М. -1995.

29. ГОСТ 17514-93. Шерсть натуральная сортированная. Метод определения тонины. -М. -1995.

30. ГОСТ 26383-84. Шерсть тонкая сортированная мытая. Технические условия. -М. -1997.

31. ГОСТ 25590-83. Шерсть. Нормы остаточных нешёрстных компонентов и влаги в кондиционно-чистой массе. -М. -1983.

32. ГОСТ 26588-85. Шерсть полугрубая и грубая мытая. Сортированная. Технические условия. -М. -1997.

33. ГОСТ 6614-84. Шерсть полутонкая и полугрубая. Однородная, мытая, сортированная. Технические условия. -М. -1996.

34. ГОСТ 9764-74. Шерсть овечья немытая цигайская и однородна, цигай-грубошёрстная. Классированная. Технич. условия И.П.К. -М. -1999.

35. Григанова Н.В. Некоторые аспекты действия ионизирующей радиации на коллаген дермы. /Н.В. Григанова// В кн.: Ветеринарная микробиология. Ветеринарно-санитарное качество молока и мяса. -М. -1979. -С. 38-40.

36. Григанова Н.В. Радиационное обеззараживание пушно-мехового сырья при стригущем лишае. /Н.В. Григанова, В.Д. Бубнов// Тр. ВНИИВС, -М.-1980. -т. 67.-С. 111-114.

37. Григанова Н.В. Опытно-промышленные испытания новых экологически чистых для дезинфекции-консервирования кожевенного сырья. /Н.В. Григанова, Т.В. Колчанова// Сб. науч. тр. "Проблемы ветеринарной санитарии и экологии" -М. -1995. -т.100. -С. 8-15.

38. Григанова Н.В. Новые экологически чистые антисептики для обработки мехового сырья. /Н.В. Григанова, 3.JI. Лазневая// Журнал "Меха мира",-М.-1998.-С. 18-19.

39. Григанова Н.В. Испытание бактерицидных свойств композиций на основе солей низкомолекулярных кислот. /Н.В. Григанова, С.М. Саидова// Сб. научных трудов ВНИИВСГЭ "Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии" -М. -2000. -т. 107. -С. 41-45.

40. Гусев В.В. Рациональные методы переработки шерсти и химических волокон. /В.В. Гусев// -М. -1962.

41. Гусев В.В. Сырьё для шерстяных тканей, нетканых материалов и первичная обработка шерсти. / В.В. Гусев// -М.: "Лёгкая индустрия". -1965.

42. Гусев В.В. Новая технология промывки шерсти и её влияние на прядильную способность. /В.В. Гусев, Г.А. Мушикова // -М. -1967.

43. Девятов В. А. Активированная вода и её применение в хирургической клинике. /В.А. Девятов, С.Б. Петров// Изобретатель и рационализатор. -1988. -№ 5.

44. Джупина С.И. Пути заражения животных сибирской язвой. /С.И. Джупина, Б.Х. Шумаев// Инфекционные и паразитарные болезни сельскохозяйственных животных, Научно-технический бюллетень, Новосибирск. -1981. -Вып. 33.

45. Дорофеев В.И. Влияние электроактивированной воды на микроорганизмы /В.И. Дорофеев// Сб. научн. тр. Ставропольской ГСХА, Ставрополь. -1996.

46. Дорофеев В.И. Влияние электроактивированной воды на микроорганизмы и практическое использование её в ветеринарной медицине. /В.И. Дорофеев//Автореф. дисс. докт. вет. наук Ставрополь: СГСХА. -1997.

47. Закомырдин A.A. О применении электрохимически активированных растворов в ветеринарии и животноводстве. /A.A. Закомырдин, Н.Э. Ваннер, Ф.Ф. Скворцов// Второй международный симпозиум "Электрохимическая активация" часть 1. -1999. -С. 208-211.

48. Закомырдин A.A. Методические рекомендации по применению электрохимически активированных растворов хлоридов натрия с целью дезинфекции животноводческих объектов. /A.A. Закомырдин// Российская академия сельскохозяйственных наук, -Москва. -1995.

49. Иванова В.И. Обеззараживание неблагополучной по бруцеллёзу шерсти окисью этилена. /В.И. Иванова// Тр. ВНИИВС, -М. -1986. -т. 25. -С. 272-276.

50. Инструкция по дезинфекции сырья животного происхождения и предприятий по его заготовке, переработке и хранению. —М.: "Колос". -1981.

51. Инструкция по дезинфекции шерсти, неблагополучной по бруцеллёзу и ящуру бромистым метилом. Ветеринарное законодательство, -М.: "Колос" -1972. -т. 2. -С. 469-470.

52. Инструкция по дезинфекции сырья животного происхождения и предприятий по его переработке и заготовке. -М. -1981.

53. Ипатенко Н.Г. Сибирская язва крупного рогатого скота. /Н.Г. Ипатенко, B.C. Зелепукин// Инфекционные болезни крупного рогатого скота -М.: "Колос", 1974.

54. Ипатенко Н.Г. Сибирская язва сельскохозяйственных животных. /Н.Г. Ипатенко, В.А. Седов, B.C. Зелепукин// -М., ВО "Агропромиздат", -1987

55. Кабардиев С.Ш. Комплексная система ветеринарно-санитарных и гигиенических мероприятий при некоторых зооантропонозах в животноводстве Прикаспийского региона России. /С.Ш. Кабардиев// Автореферат диссертации на соискание учёной степени, -М. -2006

56. Кадымов P.A. Инфекционные болезни овец. /P.A. Кадымов, A.A. Кунаков, В.А. Седов// -М. "Агропромиздат", 1987.

57. Керимов Ч. Результаты исследований диких грызунов в бывших очагах бруцеллёза мелкого рогатого скота. /Ч. Керимов// Зооветеринарная наука в режиме производственной программы. -Ашхабад. -1984. С. 79-82.

58. Керимов Ч. Выживаемость бруцелл и эшерехий в навозе. /Ч. Керимов// Ветеринария. -1983. -№ 12. -23 с.

59. Керимов Ч. Дезинфекция шерсти и шкур при брадзоте овец. /Ч. Керимов//-Ветеринария. -1966. -№3.

60. Керимов Ч. Выживаемость возбудителя брадзота овец во внешней среде и разработка средств и режимов дезинфекции овчарен при этом заболевании. /Ч. Керимов// Тр. ВНИИВС -М. -1967. -т. 28.

61. Киндяков В.И. Изменчивость вируса ящура. /В.И. Киндяков, А.Н. Баядинов, С.М. Филлипович// Ветеринария -29. -№8, 21. -1952.

62. Киндяков В.И. Ящур и борьба с ним. /В.И. Киндяков// -Алма-Ата.-1965.

63. Князев А.И. Организация производства и реализации шерсти в основных шерстепроизводящих капиталистических странах. /А.И. Князев, Т.Н. Аленин//-М.-1986.

64. Ковалёв В.И. Дезинфекция моющейся спецодежды по поводу сибирской язвы. /В.И. Ковалёв// Тр. научно-иссл. дезинфекционного института. -1957. -Вып. 10.

65. Коромыслов Г.Ф. Современные особенности эпизоотологии и научные основы борьбы с туберкулёзом и бруцеллёзом сельскохозяйственных животных. /Г.Ф. Коромыслов// Новое в инфекционной патологии сельскохозяйственных животных. Тр. ВИЭВ -М. -1983. -т. 58. 3-4с.

66. Купрашевич В.И. Общая технология шерстяного производства. /В.И. Купрашевич// -М. "Лёгкая и пищевая промышленность" -1981.

67. Магомедов М.Э. Краткий курс технологии и переработки шерсти и кожсырья. /М.Э. Магомедов, Б.М. Ибрагимов// -Махачкала. -2002. -ДГСХА.

68. Марасинская Е.И. Возможность и результативность применения электрохимически активированных растворов в ветеринарной практике. /Е.И. Марасинская// Второй международный симпозиум "Электрохимическая активация" часть 1. -1999. -С. 211-213.

69. Мукминов М.Н. Интегрированная система профилактики и борьбы с основными микозами пчёл. /М.Н. Мукминов, A.M. Смирнов// Автореферат диссертации на соискание учёной степени, -М. -2006.

70. Никитин М.Г. Вирусоносительство и вирусовыделение у свиней при болезни Ауески. /М.Г. Никитин// Диссертация. -Харьков. -1947.

71. Никитина B.C. Изучение сохраняемости вируса болезни Ауески в условиях внешней среды. /B.C. Никитина// Диссертация. -Харьков. -1951.

72. Никитин М.Г. Новое в эпизоотологии и мероприятиях против болезни Ауески. /М.Г. Никитин// Борьба с болезнями сельскохозяйственных животных. Научн. тр. ветфака Харьковск. зоо-вет. института. -№ 1 (25). -1969. -С. 11-16.

73. Никитин М.Г. Меры борьбы против болезни Ауески свиней. /М.Г. Никитин// "Соц. твариниацтво" № 6. -1953. -С. 40-43.

74. Никитин М.Г. К комплексу мероприятий в хозяйствах, неблагополучных по болезни Ауески. /М.Г. Никитин// Сб. тр. Харьковского вет института, -т. 23. -1958. -273 с.

75. Николаев В.А. Бруцеллёз. /В.А. Николаев// Государственное издательство сельскохозяйственной литературы. -Москва. -1954.

76. Николаев А.И. Овцеводство. /А.И. Николаев// -Москва, "Агропромиздат" 1987.

77. Николаев А.И. Овцеводство. /А.И. Николаев, А.И. Ерёхин// -Москва, "Агропромиздат" 1981. -С. 94-95.

78. Овсянников А. Методические указания по определению вида и качества шерсти. /А. Овсянников// -Москва. -1973.

79. Ожигов JI.M. Овцы породы советский меринос и их совершенствование в условиях интенсификации отрасли. /JI.M. Ожигов// -Краснодар. -1989.

80. Онацкий И.И. Значение овечьей шерсти в эпидемиологии бруцеллёза на шерстомойных производствах. /И.И. Онацкий// Автореферат диссертации на соискание учёной степени кандидата медицинских наук, -Ереван. -1966.

81. ОСТ 17-720-77. Шерсть мериносовая и импортная, сортированная, мытая. -М. -1978.

82. ОСТ 17-767-78. Шерсть натуральная мытая. Метод определения содержания минеральных примесей. Утв. Министерство с/х, -М. -1993.

83. Отраслевые нормы расхода химических материалов для промывки шерсти. -М. -1984 г.

84. Отраслевой стандарт. Шерсть, первичная обработка. Термины и определения ОСТ 17-794-79. Министерство лёгкой промышленности, СССР, -М. -1979 г.

85. Павлова И.Б. Исследования механизмов инактивации бактерий при воздействии патогенного поверхностно-активного вещества. /И.Б. Павлова, И.И. Самойленко// Антибиотики и медицинская биотехнология. -1985.-№3.-С. 181-186.

86. Поляков A.A. Дезинфекция при бруцеллёзе животных. /A.A. Поляков// "Ветеринария" -№6. -1949.

87. Поляков A.A. Оценка существующих методов дезинфекции сырья животного происхождения и научно-исследовательской работы в этой области. /A.A. Поляков// Тр. ВНИИВС -т.12. -М. -1958. -С. 3-21.

88. Поляков A.A. Ветеринарная дезинфекция в СССР и пути её развития. /A.A. Поляков// Тр. ВНИИВС т.19. -М. -1961. -С. 10-22.

89. Поляков A.A. Ветеринарная дезинфекция. /A.A. Поляков// "Колос",-М.-1964.-15 с.

90. Поляков A.A. О путях передачи инфекции через насекомых и мерах профилактики болезней. /A.A. Поляков, A.A. Розов// "Вестник сельскохозяйственной науки" -1969. -№3.

91. Поляков A.A. Основы ветеринарной санитарии. /A.A. Поляков// -М.: "Колос", -969.

92. Поляков A.A. Газовый метод дезинфекции грунтов сибиреязвенных скотомогильников. /A.A. Поляков, Г.Д. Волковский// Вопросы эффективности противосибиреязвенных мероприятий, -М. -1974.

93. Поляков A.A. Спорицидные свойства бромистого метила с применением его для дезинфекции. /A.A. Поляков, В.Н. Пилипенко, Г.Д. Волковский// Док. ВАСХНИЛ -1980. -№2. -С. 27-29.

94. Поляков A.A. Радиационно-биологическая технология в животноводстве и ветеринарии. /A.A. Поляков, Ю.И. Андрюнин, Н.В. Григанова// Тр. ВНИИВС -т.68. -1985. -С. 22-30.

95. Поляков A.A. Теоретические и прикладные аспекты использования окиси этилена в качестве спорицидного агента. /A.A. Поляков, В.Н. Пилипенко, A.B. Куликовский// Тр. ВНИИВС -т.68. -1985. -С. 57-63.

96. Ровинская В.Б. Опыт применения электрохимически активированных растворов многопрофильном стационаре. /В.Б. Ровинская, О.И. Сухова// Тез. докл. «Первого международного симпозиума по электрохимической активации». Москва. 1997. -С.70-71.

97. Родионов C.B. Динамика эпизоотического процесса при бруцеллёзе крупного рогатого скота. /C.B. Родионов// -Бюлл. Всесс. НИВИ эсперим. ветеринарии им. Я.Р. Коваленко. -М. -1983. -Вып 51. Хронические инфекции сельскохозяйственных животных -С. 60-61.

98. Рогачёв Н.В. Первичная обработка шерсти. /Н.В. Рогачёв// Изд. "Лёгкая индустрия", -М. -1967.

99. Рогачёв Н.В. Механизация трудоёмких процессов на фабриках первичной обработки шерсти. /Н.В Рогачёв// -М. -1970.

100. Рогачёв Н.В. Мойка шерсти растворителями. /Н.В. Рогачёв// Министерство лёгкой промышленности СССР, -М. -1974.

101. Рогачёв Н.В. Некоторые вопросы первичной обработки шерсти. /Н.В. Рогачёв// -М.: "Лёгкая индустрия" -1980.

102. Румянцев Н.П. Новый метод дезинфекции кожевенного сырья при ящуре. /Н.П. Румянцев// -Тр. Каз.НИВИ -1955. -С. 7-25.

103. Садыков С.М. Прогнозирование эпизоотической обстановки по бруцеллёзу сельскохозяйственных животных в регионе. /С.М. Садыков, М.Г. Таршис// МСХ, Каз. ССР, Управл. пропаганды и НТИ -Алма-Ата, Кайнар. -1984.-11 с.

104. Садыков С.М. Оптимизация мер борьбы с бруцеллёзом животных на основе живых комплексных программ. /С.М. Садыков, М.Г. Таршис//Кайнар. -1991

105. Саидова С.М. Изыскание препаратов и разработка технологии дезинфекции шерсти в процессе её первичной обработки. /С.М. Саидова// Автореферат диссертации на соискание учёной степени, -М. -2000 г.

106. Сафронов Н.В. Изучение свойств вакцинного штамма Вг. melitensis Rev-1 на лабораторных животных. /Н.В. Сафронов, Ю.К. Третяков// -Алма-Ата. "Вестник сельскохозяйственной науки". -1969. -№2, 3,

107. Селиванов A.B. Испытание метода аэрозольной иммунизации против бруцеллёза. /A.B. Селиванов, В.В. Маринкова// Ветеринария. -1969. -№12.

108. Селиванов A.B. Иммунизация животных живой противобруцеллёзной вакциной через неповреждённые слизистые оболочки. /A.B. Селиванов// Автореферат докторской диссертации, -М. -1963 г.

109. Селиванов A.B. Влияние относительной влажности воздуха на устойчивость бруцелл вакцинного штамма в состоянии аэрозоля. (Вг. abortus, № 19). /A.B. Селиванов// Сб. науч. работ СибНИВИ. -Вып. 12. -Омск. -1964.

110. Селиванов A.B. Локализация вакцинных бруцелл и сроки нахождения их в организме овец при аэрозольной иммунизации. /A.B. Селиванов // Сб. науч. работ СибНИВИ. -Вып. 12. -Омск. -1964.

111. Селиванов A.B., Устойчивость бруцелл штамма №19 на шёрстном покрове овец. /A.B. Селиванов, Г.А. Гриницина// -В кн.: Бруцеллёз сельскохозяйственных животных и его профилактика. Западно-Сибирское книжное издательство, Омское отделение. -1966.

112. Сливко В.В. Дезинфекция аммиачными растворами бруцеллёзной грубой шерсти. /В.В. Сливко, М.В. Воробьёв// -В кн.: Бруцеллёз сельскохозяйственных животных, Сельхозиздат. -1940.

113. Соколова Н.Ф. Проверка эффективности рекомендованных способов обеззараживания спецодежды и рук для лиц обслуживающих бруцеллёзных животных. /Н.Ф. Соколова// Тр. научн.-иссл. дезинфекционного института. -1957. -Вып. 10.

114. Спирина С.И. Использование электроактивированной воды в птицеводстве /С.И. Спирина, Г.В. В остряков, Е.А. Карасёва// ж. Зоотехния. -2001.-№2. С. 26-30.

115. Спирина С.И., Использование электроактивированного солевого раствора в птицеводстве /С.И. Спирина, В.Г. Шоль, В.И. Филоненко. И.И. Садеева// Проблемы экологической безопасности агропромышленного комплекса. — Сергиев Пасад. -1996. вып. 2. - С. 144-145.

116. Студенцов К.П. Некоторые вопросы диагностики и специфической профилактики бруцеллёза в Казахской ССР. /К.П. Студенцов// В кн.: Бруцеллёз и туберкулёз сельскохозяйственных животных. -М.: "Колос", 1967.

117. Студенцов К.П. Бруцеллёз животных. Научные и практические основы борьбы. /К.П. Студенцов// -Алма-Ата, Кайнар, -1975. -238 с.

118. Студенцов К.П. О диагностике латентного бруцеллёза и дифференциации больного и вакцинированного крупного рогатого скота. /К.П. Студенцов// -Бюллетень, ВИЭВ, Т.Х., 1971.

119. Тараканов Ю.И. Дезинфекция шерсти бромистым метилом под полиамидной плёнкой. /Ю.И. Тараканов// Сб. "Проблемы ветеринарной санитарии", -Москва: "Колос", 1968.

120. Тараканов Ю.И. Исследования по дезинфекции шерсти при бруцеллёзе бромистым метилом. /Ю.И. Тараканов// Автореферат диссертации на соискание учёной степени кандидата ветеринарных наук, -М. -1969, Министерство с/х СССР.

121. Тимошенко И.К. Организационно-экономические проблемы формирования рынка шерсти в стране и их решение. /И.К. Тимошенко// Автореферат диисертации, -М. -1995.

122. Тимошенко И.К. Рынок шерсти проблемы становления. /И.К. Тимошенко// АПК. Экономика управления. -1994. -№6. -С. 41-44.

123. Тимошенко И.К. Проблемы становления рынка шерсти. /И.К. Тимошенко// -РАСХН. -1994. -№5. -С. 4-6.

124. Тимошенко И.К. Проблемы развития первичной обработки шерсти. /И.К. Тимошенко// Российская академия с/х наук (АгроНиТЭКПП), -М.-1994.

125. Тимошенко И.К. Новое в технологии первичной обработки шерсти. /И.К. Тимошенко, Л.Е. Деникина// -Невинномысск. -1999.

126. Тржецецкая Т.А. Степень устойчивости споровой формы микроба в шерсти под влиянием бромистого метила. /Т.А. Тржецецкая// Тр. ВНИИВС -т.42, 7. -М. -1972. -С. 144-151.

127. Тржецецкая Т.А. Обеззараживание шерсти при сибирской язве неочищенной смесью окиси этилена. /Т.А. Тржецецкая// Сб. "Проблемы ветеринарной санитарии". -М.: "Колос", 1992.

128. Устенко B.C. Ветеринарная обработка животных в очаге ящура. /B.C. Устенко// Тр. ВНИИВС. -М. -1969. -т.32.

129. Устенко B.C. Изыскание средств и разработки методов и режимов обеззараживания кожного покрова животных в очаге инфекции. /B.C. Устенко// Тр. ВНИИВС, -М. -1969. -т.32.

130. Устенко B.C. Сохраняемость вируса болезни Ауески во внешней среде. /B.C. Устенко// Тр. ВНИИВС. -т. 13. -М. -1958.

131. Устенко B.C. Изучение эффективности различных химических средств для дезинфекции животноводческих помещений при болезни Ауески. /B.C. Устенко// Тр. ВНИИВС, -М. -т. 15. -1959.

132. Устенко B.C. Обеззараживание кожевенного сырья, неблагополучного по ящуру. /B.C. Устенко, A.B. Стефанов, Д.С. Линулина// Тр. ВНИИВС. -Т.22. -М. -1963.

133. Фисинин В.М. Электроактивированная вода в птицеводстве /В.М. Фисинин, В.И. Филоненко, С.К. Спирина// Аграрная наука. 1999. -№8. -С.18-19.

134. Царукян С.С. Применение электрохимически активированных растворов натрия хлорида в технологическом процессе переработки птицы. /С.С. Царукян// Автореферат диссертации на соискание учёной степени. -2005.

135. Чурбанов Г.В. Развитие техники и технологии в первичной обработке шерсти за рубежом. /Г.В. Чурбанов, М.Б. Эммануэль// -М. -1969 ЦНИИТЭН.

136. Шейфер О .Я. Производство и оценка качества шерсти. /О.Я. Шейфер// -М.: "Росагропромиздат" 1988. -29 с.

137. Щур A.B. Подготовка воды в бассейне ясли-сада №34 Красногвардейского РОНО г. Санкт-Петербург при помощи анолита, синтезируемого установкой СТЭЛ-МТ-1 /A.B. Щур, И.Г. Лужецкая, O.A.

138. Иващук// Тез. докл. «Первого международного симпозиума по электрохимической активации». -Москва. 1997. — С.145.

139. Эпизоотология и инфекционные болезни сельскохозяйственных животных. A.A. Конопаткин и др. -М. -1984.

140. Юсковец М.К. Бруцеллёз сельскохозяйственных животных. /М.К. Юсковец//-М.: "Сельхозгиз" -1980.

141. Яковлев JI.A. Длительность сохранения микробов группы Brucella на питательных средах. /Л.А. Яковлев// "Советская ветеринария". -№11-12.-194 с.

142. Akakpo I.A. La brucellose bovine an Togo: Premiere enguete serelogigue/ / L.A. Akakpo, I. Chantal, P. Bornarel// Rev. Med. vet. 1981.-vol/ 132. -№4.-Р/ 269-278.

143. Anon. Abortions in 200 beagles. I. Am. vet med. Ass. -1966. -№49/

144. Burrows R. e.a. /I. Hyg. -1971. -v. 69. -№2. -P. 307-321/

145. Corbel M.I. International committee on systematic bacteriology. Subcommittee on texonamy of Brucella. /M.I. Corbel// Intern. learn. Syst. Bacteriol. 1984. -Vol. 34. -№3. -P. 366-367.

146. Corbel M.I. Classification of Brucella. / M.I. Corbel, W.I.B. Morgan// Handbukh der bacterially Infectionon bei Tieren. Herausgaber H. Blobel, Th. Schliaser. lena; Veb Custav Fischer Verlag. -1982. -P. 17-52. -Band 4.

147. Cotrina N. Expreziencia do la vacunación con dosis reduciola en ganade abelte lechero en on fon de brucellosis bovina. Rev. Cub. cienc. Vet. -1984. -Vol. 15.-№1.-P. 25-31.

148. Fegedby E. Review of epizootology and central of FMD in Europe from 1937 to 1961. -Rome 1962.

149. Hermann H. Enrim immunoassay zum Nachweis von Antikörpern gegen Brucella abortus in seren von Rindern. /Н. Hermann, I. Detek// Arch, exper. vet. med. - 1982. -Vol. 36. -№6. -P. 871-880.

150. Ioubert Z. Za fievre aphteuse. /Z. Ioubert, C. Mackowiak// Zyon. -1968. -V. 1-3

151. Istanbulluoglu E. Brucella, canis tiserinde seroloyik inceloneler. /E. . Istanbulluoglu, S. Diker// Ankara Univ. vet. Fak. Derg. -1983. -Vol. 30. -№ 1. -P. 14-18.

152. Meyer M. Identification end virulence studies of Brucella strains isolated from eskimos and reindur in Alaska, Canada and Russia. /M. Meyer// Am. I. vet. Res. -1966. -27. -№6. -353 c.

153. Mustafa A.H. Brucella, antibodies in the sera of domestic livestock in Bangladesh. /A.H. Mustafa// Trop. Anim. Herlth. Prad. 1984. -Vol. 16. -№4. -212p.

154. Niroletti P. Indirect hemolysis test in the serodiagnosis of bovine brucellosis. /P. Niroletti, W.B. Carlsen// Amer. Iuork. Vet. Res. -1981.-Vol. 42. -№9.-P. 1494-1497.

155. Parnas I. Weitere Beobachtungen iiber die Variabilitit von Bracellaphagen. /1. Parnas, S. Zalichta// Arch. Hyg., Bakr. -1965,.-149. -7/8. -757.

156. Parep X. Acta Virol. IX. ParepII -1983. -n. 27. -№4. -P. 370-374/

157. Report of the twenty-fourth Session of the European Commission for the Control at F.M.D. -Rome. -1981.

158. Rohrer H. Olichnowite A.F. /H. Rohrer// Maul und Klaucnseuche -Iena, -1980.

159. Sellers R.F. Vet. Ball. 1971. -v.41. -№6 -P. 431-439.

160. Sellers R.F. e.a. Airborne transmission and airborne infection. IIR.F. Sellers// Vith Intern. Symp. on Aerobiology-Utrecht, Netherlands. -1973. -P. 405412.

161. Trautwein K. Ergebn. Hyg. 1929. -Bd. 10. -P. 561-596.

162. Waldmann O. Handbuch dtr Viruskrankeiten. /0. Waldmann, H.C. Nagel// Iena. -1939. -Bd. 1. -P. 385-486.