Сравнительный анализ механизмов адаптации крыс к предельной физической нагрузке в модели принудительного плавания тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Корф Екатерина Андреевна

• Корф Екатерина Андреевна
• кандидат наук
• 2025

Оглавление диссертации кандидат наук Корф Екатерина Андреевна

Список сокращений

Введение

Глава 1. Обзор литературы

1.1 Выбор и построение экспериментальной модели физической нагрузки: ключевые проблемы и пути решения

1.2 Нутрицевтики (экстракт зеленого чая и соли аммония): состав, механизмы действия и влияние на здоровье и физическую выносливость

1.3 Заключение

Глава 2. Материалы и методы

2.1. Реагенты и экстракт зеленого чая

2.2. Модель принудительного плавания и схема эксперимента

2.3. Иммунофенотипирование лимфоцитов периферической крови

2.4. Определение биохимических показателей плазмы крови

2.5. Определение биохимических показателей эритроцитов

2.6. Выделение и очистка РНК

2.7. ПЦР в реальном времени после обратной транскрипции

2.8. Трансмиссионная электронная микроскопия (ТЭМ) и морфометрия

2.9. Статистика

Глава 3. Результаты

3.1. Разработка и апробация методики принудительного плавания

3.2. Апробация эффективности экстрактов зеленого чая в разных моделях плавательной нагрузки

3.3. Функциональные параметры и уровень лактата в крови после нагрузки

3.4. Биохимические показатели плазмы крови через сутки после нагрузки

3.5. Биохимические показатели эритроцитов через сутки после нагрузки

3.6. Гематологические показатели крыс через сутки после нагрузки

3.7. Иммунологические показатели крыс через сутки после нагрузки

3.8. Влияние ЭЗЧ и низких доз солей аммония на экспрессию генов в мышцах крыс через сутки после нагрузки

3.9. Влияние ЭЗЧ и малых доз солей аммония на ультраструктуру и морфометрические показатели мышц крыс через сутки после нагрузки

Глава 4. Обсуждение

Заключение

Выводы

Список литературы

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

АД артериальное давление

АФК активные формы кислорода

АКТГ адренокортикотропный гормон

ВИИТ высокоинтенсивные интервальные тренировки

ВЭЖХ высокоэффективная жидкостная хроматография

ДНК дезоксирибонуклеиновая кислота

ИПК ишемическое прекондиционирование

ОТ обратная транскрипция

ПЦР полимеразная цепная реакция

РНК рибонуклеиновая кислота

ТЭМ трансмиссионная электронная микроскопия

ЭЗЧ экстракт зеленого чая

ЭMC электромеханическое сопряжение

ЭДТА этилендиаминтетрауксусная кислота

ACL хлорид аммония

ACR карбонат аммония

ALB альбумин

ALP щелочная фосфатаза

ALT аланиновая трансаминаза

AMP, АМФ аденозинмонофосфат

AMPK 5'-аденозинмонофосфат-активируемая протеинкиназа

AST аспартатаминотрансфераза

ATP, АТФ аденозинтрифосфат

AQ Аквапорины

BPG 2,3-бисфосфоглицерат

CACNA1S дигидропиридиновый рецептор, кальциевый канал L-типа

CASQ кальсеквестрин

Chol холестерин

CICR кальций-опосредованное высвобождение кальция

COX циклооксигеназа

CRP

CYB5R

DICR

DNT cells

DRP

EC

ECG

EDL EGC

EGCG

ERK

GAPD

GOT GP

G6PD

GR Gran

GSH

GSSG

GST

Hb

HCT

HDL

HNE

HSL

ICR

IF

IL

JNK LDH LDL

C-реактивный белок цитохром-Ь5 редуктаза

индуцированное деполяризацией высвобождение кальция

двойные отрицательные Т-клетки

динамин-подобный белок

эпикатехин

эпикатехина галлат

m. extensor digitorum longus

эпигаллокатехин

эпигаллокатехин-3 -галлат

внеклеточная сигнал-регулируемая киназа

глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназа

глутамат оксалоацетат трансаминаза

глутатионпероксидаза

глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа

глутатионредуктаза

гранулоцит

восстановленный глутатион

окисленный глутатион

глутатион^-трансфераза

гемоглобин

гематокрит

липопротеины высокой плотности 4-гидрокси-2-ноненаль гормоночувствительная липаза

лабораторные нелинейные мыши международного ракового ценра

Интерферон

Интерлейкин

c-Jun-N-терминальная киназа лактатдегидрогеназа липопротеины низкой плотности

Lymph лимфоциты

MAPK митоген активируемая протеинкиназа

MCH средняя концентрация гемоглобина

MCHC средняя концентрация корпускулярного гемоглобина

MCP моноцитарный хемотаксический белок

MCT монокарбоксилатный транспортер

MCV средний объем эритроцита

MDA малоновый диальдегид

MET метаболический эквивалент

metHb метгемоглобин

MLSS максимальное устойчивое состояние лактата

MPV средний объем тромбоцита

MRP1 белок множественной лекарственной устойчивости

MyHC тяжелая цепь миозина

NEFAs неэтерифицированные жирные кислоты

ОТ-кВ ядерный фактор усилитель-каппа-легкой цепи активированных В-

клеток

ж естественные киллеры

ЖТ Т-клетки естественные киллеры

РСТ тромбокрит

PDW ширина распределения тромбоцитов

РЕРСК фосфоенолпируваткарбоксикиназа

PGC-1a коактиватор-1а рецептора, активируемого пероксисомным

пролифератором гамма

PGK фосфоглицерат киназа

PLT количество тромбоцитов

РОШ параоксоназа-1

PPAR рецептор, активируемый пероксисомным пролифератором

ЯВС количество эритроцитов

RDW ширина распределения эритроцитов

ЯУЯ рианодиновый рецептор

SB бикарбонат натрия

SC цитрат натрия

SERCA кальциевая АТФаза

SHR спонтанная гипертензия

SIRT сиртуин

SOD супероксиддисмутаза

SOL m. soleus

SR саркоплазматический ретикулум

TC поперечный срез Т-трубочки

TCR рецептор Т-клеток

Tcyt цитотоксические Т-клетки

Th Т-хелперы

TL продольный срез Т-трубочки

TMET трансмембранный перенос электронов

TNF фактор некроза опухоли

TP общий белок

Transf трансферрин

Tregs регуляторные Т-клетки

Trigs триглицериды

RAMP ступенчатый тест

UA мочевая кислота

WBC количество лейкоцитов

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Сравнительный анализ механизмов адаптации крыс к предельной физической нагрузке в модели принудительного плавания»

ВВЕДЕНИЕ

В настоящее время отсутствует общепринятая теория, объясняющая утомление мышц в условиях целостного организма. Исследования молекулярно-клеточных механизмов электромеханического сопряжения (ЭМС) показали, что ключевую роль в развитии утомления играют нарушения в работе субклеточных структур (Т-трубочек, митохондрий, саркоплазматического ретикулума, миофибрилл), а также посттрансляционные изменения рецепторов, ионных каналов и регуляторных белков (Allen et al., 2008; Debold, 2015; Huang et al., 2016; Aisyah et al., 2024). Изучение механизмов воздействия природных препаратов, способствующих повышению выносливости и снижению утомляемости, представляет собой одно из ключевых направлений в спортивной физиологии и медицине. Нутрицевтики, к которым относятся пищевые добавки, компоненты натуральных продуктов, минералы и природные

метаболиты, могут повышать физическую выносливость благодаря влиянию на баланс сигнальных и метаболических процессов в клетках и тканях организма (Goncharov et al., 2016; Vahabzadeh et al., 2020).

Лактат и аммиак ранее считались побочными продуктами метаболизма, транспорт и нейтрализация которых исключительно в печени осуществлялись в циклах Кори и Кэхилла (аланина). Переоценка роли лактата произошла достаточно давно, и теперь он рассматривается как важнейший межклеточный энергетический челнок и сигнальный агент (Ferguson et al., 2018). В быстрых мышцах увеличивается экспрессия монокарбоксилатного переносчика 4-го типа (MCT4) для увеличения экспорта лактата, который поступает в эритроциты и медленные мышцы через MCT1 (Maciejewski et al., 2016). Эритроциты помогают транспортировать лактат от клеток-продуцентов к клеткам-потребителям, эта функция эритроцитов у тренированных спортсменов возрастает (Opitz et al., 2015). Однако роль аммиака в адаптационных процессах остается малоизученной, отношение к аммиаку как токсичному агенту за последние десятилетия почти не изменилось, хотя механизмы его транспорта эритроцитами хорошо изучены и сопряжены с потоками ионов (Sudnitsyna et al., 2024). В отличие от нетренированных лиц, у спортсменов повышение выносливости обусловлено преимущественно не увеличением VO2max и окислительного потенциала мышц, а адаптивными изменениями в системе поддержания гомеостаза ионов Ca2+, K+, Na+, Cl", H+ и лактата (Hostrup, Bangsbo, 2017). Среди биохимических механизмов адаптации, находящихся в реципрокных отношениях с ионами Ca2+, процессы генерации и потребления АТФ имеют решающее значение в условиях как аэробной, так и анаэробной нагрузки. Поскольку у мотивированных индивидов развитие утомления обусловлено прежде всего периферическими причинами (Merton, 1954), существует проблема обеспечения предельной нагрузки у животных, по определению не имеющих мотивации.

Степень разработанности темы исследования. Эффект некоторых нутрицевтиков, включая экстракт зеленого чая (ЭЗЧ), обусловлен активацией жирового катаболизма, повышением чувствительности к инсулину и толерантности к глюкозе (Venables et al., 2008). Данные эффекты могут способствовать повышению выносливости животных в экспериментальных моделях беговых и плавательных нагрузок (Murase et al., 2006; Nieri et al., 2022). Показана эффективность ЭЗЧ при синдроме хронической усталости (Sachdeva et al., 2010), дисфункции жировой ткани (Rondanelli et al., 2022) и мышечной дистрофии Дюшенна (Dorchies et al., 2009), установлены иммуномодулирующие свойства ЭЗЧ при интенсивных физических нагрузках (Lin et al., 2014; Ruiz-Iglesias et al., 2021; Kruk et al., 2022). Существенный недостаток этих и других исследований - они не были комплексными, проведенными в рамках модели предельной (истощающей) нагрузки. Иммуномодулирующие свойства ЭЗЧ исследовали на людях, а перечень иммунологических показателей был минимальным, как и перечень

7

биохимических, гематологических и гистологических показателей крыс в случае наиболее адекватной модели плавательной нагрузки (Nieri et al., 2022). Исследования влияния ЭЗЧ на дисфункции мышечной и жировой тканей напрямую не были связаны с изучением механизмов повышения выносливости: некоторые из них проводили с больными ожирением пациентами, другие - с мышами линии mdx, третьи - с культурами клеток.

В мышцах при интенсивной нагрузке аммиак образуется в результате гидролитического дезаминирования АМФ и непрямого окислительного дезаминирования разветвленных аминокислот (Wilkinson et al., 2010). Аммиак представляет собой высокотоксичное соединение, что обусловливает необходимость его обезвреживания в тканях посредством образования глутамата, глутамина, аспарагина и карбамоилфосфата. Применение компонентов цикла мочевины (аргинина и цитруллина) для детоксикации аммиака может повышать выносливость марафонцев (Cheng et al., 2016). В то же время, в исследованиях с участием добровольцев было показано, что прекондиционирование малыми дозами аммония способствует повышению выносливости при субмаксимальных нагрузках (Mindukshev et al., 2021).

Таким образом, несмотря на многочисленные исследования механизмов действия нутрицевтиков и эндогенных продуктов метаболизма, проблема эффективности их влияния на выносливость в рамках адекватной модели предельной нагрузки далека от решения. Комплексный подход к изучению этой проблемы позволит получить новую информацию о принципах адаптации организма к экстремальным физическим нагрузкам, что будет способствовать внедрению новых научно обоснованных препаратов для повышения выносливости и эффективности восстановления организма.

Цели и задачи исследования

Цель представленного исследования - разработка экспериментальной модели принудительного плавания крыс и проведение комплексного сравнительного анализа механизмов адаптации животных к предельной нагрузке при введении декофеинизированного экстракта зеленого чая (ЭЗЧ) и малых доз солей аммония (хлорида и карбоната).

Для достижения данной цели были поставлены и решены следующие задачи:

1. Разработать экспериментальную модель принудительного плавания крыс.

2. Исследовать функциональный статус и механизмы адаптации к предельным нагрузкам крыс группы положительного контроля.

3. Исследовать функциональный статус и механизмы адаптации к предельным нагрузкам крыс при введении ЭЗЧ.

4. Исследовать функциональный статус и механизмы адаптации к предельным нагрузкам крыс при введении хлорида и карбоната аммония.

5. Исследовать функциональный статус и механизмы адаптации к предельным нагрузкам крыс при введении ЭЗЧ с хлоридом или карбонатом аммония.

Соответствие работы паспорту специальности 1.5.4.

Биохимические/ метаболические/энергетические процессы в тканях и органах организма в норме и при патологиях. Метаболомика. (п. 11); Клиническая биохимия человека и животных. (п. 13); Биохимия спорта. (п. 18).

Соответствие работы паспорту специальности 1.5.5.

Закономерности функционирования основных систем организма (нервной, внутренней секреции, иммунной, сенсорной, двигательной, крови, кровообращения, лимфообращения, дыхания, выделения, пищеварения, репродуктивной и др.) при различных состояниях организма. (п. 4); Физиологические механизмы адаптации к различным формам, видам и условиям деятельности, в том числе экстремальным. Разработка технологий адаптивного управления физиологическими функциями человека в экстремальных природно-климатических условиях. (п. 9); Разработка новых методов исследований функций животных и человека. (п. 12).

Научная новизна

Обосновано применение простых метаболитов, являющихся конечными продуктами обмена, в качестве адаптогенов и стимуляторов физической выносливости. Впервые в рамках масштабного эксперимента с применением разработанной модели принудительного плавания проведен сравнительный анализ адаптивных изменений и выявлены биохимические, иммунологические и морфометрические показатели, свидетельствующие о триггерной функции экзогенных ионов аммония. Предложен механизм прекондиционирования солями аммония, суть которого состоит в подготовке эритроцитов для работы в условиях максимальной нагрузки не в скелетных мышцах, как во время нагрузки, а преимущественно в сосудах брюшины, воротной и нижней полой вене. Эффект солей аммония является самодостаточным, однако имеются основания для дальнейшего поиска оптимального сочетания природных нутрицевтиков и солей аммония с целью повышения эффективности последних.

Теоретическая и практическая значимость работы

Разработанная модель принудительного плавания крыс представляет собой комплексную платформу для изучения динамики физиологических, биохимических и морфофункциональных

параметров, а также анализа их взаимосвязи с показателями физической выносливости.

9

Полученные данные углубляют понимание интегративных механизмов мышечного утомления и адаптационных процессов при экстремальных физических нагрузках, охватывающих функциональные, метаболические, иммунные и ультраструктурные аспекты. Эффект аммонийного прекондиционирования может иметь перспективы практического применения в спортивной медицине, в частности при разработке тренировочных программ для профессиональных спортсменов, подготовке специалистов спецподразделений, а также реабилитационных программ после интенсивных физических нагрузок.

Методология

В ходе данной работы был использован широкий спектр методов, включающих экспериментальную модель принудительного плавания крыс, определение основных биохимических показателей плазмы крови на биохимическом анализаторе, определение биохимических показателей эритроцитов спектрофотометрическим методом, экстракцию и очистку РНК с использованием коммерческих наборов, ПЦР в реальном времени после обратной транскрипции, трансмиссионную электронную микроскопию, морфометрию с помощью программы анализа изображений, статистические методы обработки экспериментальных данных.

Положения диссертации, выносимые на защиту

1. Разработанная экспериментальная модель принудительного плавания с поэтапной нагрузкой является эффективным инструментом для сравнительного анализа влияния биологически активных веществ на выносливость и адаптацию к экстремальным нагрузкам.

2. В группе положительного контроля не наблюдается повышения выносливости, спектр адаптивных изменений минимален.

3. Полифенолы зеленого чая демонстрируют умеренный иммуномодулирующий и восстановительный эффект, однако не оказывают значимого влияния на выносливость.

4. Малые дозы солей аммония обеспечивают адаптивный эффект и повышают выносливость.

5. Применение экстракта зеленого чая с солями аммония не усиливает эффект солей аммония в рамках данного исследования, однако полученные результаты свидетельствуют о целесообразности поиска оптимальных схем сочетанного применения этих веществ.

Степень достоверности и апробация работы

Достоверность данных, полученных в ходе представленного исследования, подтверждается применением современных методов, хорошей согласованностью и воспроизводимостью результатов. Материалы диссертации были представлены на следующих конференциях: Международная конференция «Рецепторы и внутриклеточная сигнализация», Пущино, 2017, 2019; 5-я Междисциплинарная конференция «Молекулярные и биологические аспекты химии, фармацевтики и фармакологии», Судак, 2019; 7-я научная конференция с международным участием «Современные тенденции развития технологий здоровьесбережения», Москва, 2019; 6-я Междисциплинарная конференция «Молекулярные и биологические аспекты химии, фармацевтики и фармакологии», Нижний Новгород, 2020; Всероссийская конференция с международным участием «Интегративная физиология», Санкт-Петербург, 2023.

Личный вклад

Автор принимала участие во всех экспериментах, описанных в представленной работе, обрабатывала данные, презентовала результаты исследований на конференциях, участвовала в написании статей. Ряд экспериментов проведен при участии сотрудников Института эволюционной физиологии и биохимии им. И.М. Сеченова РАН, а также сотрудников НИИ акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д. О. Отта и Института цитологии РАН. По теме диссертации опубликовано 24 печатные работы, в том числе 11 статей в рецензируемых журналах, 2 главы в монографиях, 5 статей в реферируемых сборниках и 6 тезисов докладов.

Финансовая поддержка работы

Работа выполнена в рамках государственного задания Министерства науки и высшего образования РФ, тема «Механизмы адаптации человека и животных к экстремальным воздействиям природного и антропогенного характера».

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Выбор и построение экспериментальной модели физической нагрузки: ключевые проблемы и пути решения

Принятие решения относительно экспериментальной модели физической нагрузки для тестирования препаратов, влияющих на выносливость организма, часто сопряжено со сложным выбором, включающим следующие аспекты: 1) доступность и стоимость животных для данной экспериментальной модели (например, если требуется генетический нокаут, исследователь может быть ограничен мышами и крысами); 2) способность животного переносить физические нагрузки согласно выбранному протоколу, доступность необходимого оборудования; 3) подходящий размер животного для отбора необходимых проб в зависимости от используемых для исследований тканей и органов и методов их исследования; 4) реакция животного на основные хирургические и экспериментальные процедуры; 5) наличие (или отсутствие) дискретных структур или физиология/патофизиология у различных видов животных; 6) понимание протоколов физической нагрузки местным этическим комитетом по использованию животных и соблюдение выдвигаемых комитетом требований; 7) экспериментальная модель, с которой исследователь хочет сравнить свои результаты (Poole et al., 2020) Эксперименты с применением физической нагрузки проводятся с использованием лошадей, собак, кроликов, свиней, крупного рогатого скота, уток, гусей, верблюдов и данио-рерио (Kiley, Fedde, 1983; Fedde et al., 1989; Kayar et al., 1994; Knight et al., 1994; Hammond et al., 2001; Liu et al., 2002; Palstra et al., 2014; Poole et al., 2016; Tharp et al., 2019). Наиболее часто используемыми в моделях физической нагрузки животными, а также рекомендованными для исследований большинством организаций и руководств по работе с лабораторными животными, являются грызуны, в частности крысы и мыши, за счет доступности, достаточно малых размеров для содержания в вивариях, но достаточно больших для хирургических манипуляций, короткой продолжительности жизни, короткого гестационного периода, многочисленности потомства, изученности и предсказуемости характеристик благодаря генетической однородности (Lowe, Always, 2002; National Research Council (US) Committee on Guidelines for the Use of Animals in Neuroscience and Behavioral Research, 2003; Kregel et al., 2006; Ghosh et al., 2010; Wang et al., 2010; Arida et al., 2011; Koch et al., 2012; Nicastro et al., 2011, 2012; Cholewa et al., 2013). Еще одним важным преимуществом крыс являются разработанные способы моделирования человеческих заболеваний. К ним относятся, например, сердечная недостаточность (Hirai et al., 2018), диабет типа I (Behnke et al., 2002)) и типа II (Copp et al., 2010), гипертония (Braun et al., 2018) и легочная гипертензия (Brown et al., 2017). Не менее важным является выбор среди животных необходимой возрастной группы: так, мыши в возрасте до 20 месяцев могут выполнять сходную беговую

нагрузку, однако у старых мышей (свыше 24 месяцев) снижается толерантность (Reynolds, Lee, 2020). Хотя некоторые исследования показали, что беговая нагрузка вызывает схожую адаптацию скелетных мышц у самцов и самок крыс, изолированные сердца самцов имели более высокие показатели ударного объема, коронарного кровотока и потребления кислорода миокардом (Schaible et al., 1981). Самки мышей показали лучшую физическую выносливость, чем самцы, в моделях бега на тредмиле и произвольного бега в колесе; также самки мышей показали более выраженную физиологическую гипертрофию сердца после бега в колесе (Konhilas et al., 2004; Foryst-Ludwig, Kintscher, 2013). Таким образом, в большинстве исследований на животных самки и самцы различаются по степени реакции в ответ на физическую нагрузку, поэтому результаты не могут быть обобщены для обоих полов и представляются важными дополнительные исследования половых различий (Balci, Pepe, 2012; Coimbra et al., 2008).

Физическую нагрузку, моделируемую на грызунах, можно разделить на преимущественно аэробную динамическую и преимущественно анаэробную статическую. Статическая нагрузка -это силовые тренировки животных, так называемые упражнения на сопротивление, осуществляемые с помощью моделей приседания с подъемом утяжеленного рычага, поднятия тяжести и подъема по лестнице (Seo et al., 2014; Bei et al., 2021). Физическая нагрузка, моделирующая приседания, требует специально разработанного аппарата, впервые описанного Tamaki et al. (Tamaki et al., 1992). Крыса помещается в захватывающее устройство, соединенное с деревянной перекладиной и грузом на ней. Когда хвост крысы подвергается электрической стимуляции, она подпрыгивает и многократно поднимает рычаг с грузом аппарата. Эта модель неоднократно использовалась для анализа адаптации скелетных мышц и метаболических изменений в ответ на силовые тренировки (Notomi et al., 2000; Yaspelkis et al., 2002; Cholewa et al., 2013), а также анализа физиологической гипертрофии сердца и сердечных заболеваний (Barauna et al., 2007; Melo et al., 2018; Gomes et al., 2020). Модель поднятия тяжести предполагает, что животное закреплено и стоит прямо на задних конечностях с весом, прикрепленным к поясу, жилету или плечевому ремню, а для стимуляции разгибания конечностей хвост грызуна стимулируется электрошоком. Эта модель нагрузки сходна с упражнением пауэрлифтинга для человека (Ahmadiasl et al., 2012; Aguiar et al., 2010). По сравнению со специальными аппаратами, необходимыми для тренировки приседаний и поднятия тяжести, оборудование, используемое для подъема по лестнице или решетке, менее сложное. Для модели физической нагрузки подъема по лестнице длина лестницы составляет около 1 м с наклоном 80°-85°, а интервал между ступенями обычно составляет 0,5-1,0 см. Обычно животных адаптируют к подъему заранее, а количество подходов в день, частота подъемов в неделю и продолжительность эксперимента

могут варьироваться в зависимости от типа проводимого исследования, как и вес груза, прикрепляемого к хвосту (Ahles et al., 2013; Sanches et al., 2013; Bei et al., 2021).

Существует три наиболее популярных способа моделирования динамической физической нагрузки у грызунов — это плавание, произвольный бег в колесе и «принудительный» бег в колесе или на беговой дорожке. Каждая из них использовалась для изучения молекулярной основы ответов на истощающую или нормированную физическую нагрузку (Massett et al., 2021). Модель добровольного бега в колесе представляет собой произвольную беговую нагрузку для крыс и мышей (De Waard et al., 2010; Calvert et al., 2011). Аппарат для бега в колесе для каждого животного устанавливается в отдельной клетке, он подключается к датчику и счетчику оборотов для расчета и записи параметров бега. Поскольку животные могут бегать с желаемой скоростью, продолжительностью и частотой, добровольный бег в колесе требует меньших временных затрат от исследователя, что особенно актуально для долгосрочных исследований, а также не вызывает у животных хронического стресса. Помимо этого, очевидным преимуществом добровольного бега в колесе является отсутствие аверсивных стимулов (например, электрошока или воздушных струй) для мотивации животных. Являясь ночными животными, грызуны обычно бегают во время своего темного цикла, поэтому важно способствовать правильному циклу смены дня и ночи (света и темноты) у экспериментальных животных, т.к. любое неожиданное воздействие света может изменить их беговые характеристики. Это же, однако, является достоинством данного вида нагрузки: в отличие от плавания или принудительного бега, произвольный бег в колесе выполняется животными соответственно своему естественному циркадному ритму (Hastings et al., 2022). Это особенно важно в свете появления доказательств того, что тканеспецифические и системные метаболические реакции различаются в зависимости от времени выполнения нагрузки (Sato et al., 2022). Помимо вышеперечисленного, при использовании беговых колес необходимо тщательно проверять состояние здоровья животных, в особенности наличие травм лап или когтей, а колеса необходимо своевременно очищать (Bei et al., 2021). При физической нагрузке в модели бега в колесе существует вероятность существенной гипертрофии мышц задних конечностей и миокарда, особенно у молодых крыс (Rodnick et al., 1990), что обычно не наблюдается в большинстве исследований на тредмиле. Это может быть как преимуществом, если исследуются адаптивные механизмы, так и недостатком. Метод бега в колесе не может быть использован в исследованиях, требующих наступления усталости или истощения, поскольку из-за добровольной активности животного бег редко длится дольше 2 минут. Таким образом, бег в колесе неприменим для унифицированных исследований физической активности из-за отсутствия контроля за продолжительностью и интенсивностью нагрузки и систематического искажения результатов, в том числе в результате прокручивания

экспериментальными животными колеса «вхолостую», без бега, находясь при этом снаружи (Poole et al., 2020; Hastings et al., 2022).

Бег на тредмиле - одна из самых часто используемых методологий выполнения физической нагрузки у грызунов. Хотя протоколы бега различаются в разных исследовательских группах, их можно отнести либо к умеренно интенсивному непрерывному бегу, либо к интервальному высокоинтенсивному (Fewell et al., 1997; Kemi et al., 2005). Категоризация интенсивности нагрузки, как правило, зависит от VO2max, который представляет собой максимально возможный объем кислорода, который экспериментальное животное потребляет в единицу времени. Как правило, нагрузка, при которой потребление кислорода достигает 50%-70% от VO2max, определяется как нагрузка средней интенсивности, а если потребление кислорода достигает 85%-90% от VO2max, то это нагрузка высокой интенсивности (Kemi et al., 2005; Bei et al., 2021). Бег с контролируемой интенсивностью у крыс и мышей показывает, что наклон беговой дорожки значительно влияет на VO2max. Для непрерывного бега крыс наиболее часто используется наклон дорожки 0°-30° (Gibb et al., 2016, 2017; Yal^n et al., 2019). При наклоне 25° выявлен наибольший VO2max у крыс (Wisl0ff et al., 2001). Наиболее эффективным с точки зрения стимуляции сердечно-сосудистой реакции также оказался наклон 25° (Wisl0ff et al., 2001; Kemi et al., 2005). Интервальный бег высокой интенсивности требует адаптивной подготовки экспериментальных животных, чтобы они бегали при 50%-60% от VO2max в течение как минимум 30 минут. Хотя в литературе описаны различные протоколы бега на тредмиле, исследователи всегда должны контролировать беговое поведение мышей или крыс, используя ершики для мытья бутылок, потоки воздуха или электрошок. Животные, которые не смогли освоить правильные протоколы бега, должны быть исключены из исследования (Bei et al., 2021). Возраст мышей, выбираемых исследователями для данной модели физической нагрузки, как правило больше возраста крыс; отличия также состоят в выборе цикла программы физической нагрузки и максимальной скорости бега (Yan et al., 2022).

В отличие от других видов физической нагрузки, например, плавания или бега в колесе, бег на тредмиле облегчает расчеты и точное установление объемов совершенной работы, ее скорость, а также интенсивность и продолжительность. Однако эта модель не лишена недостатков. Прежде всего нужно упомянуть принудительный характер активности и необходимость применения болезненных стимулов, таких как воздух под высоким давлением или электрошок (10-30 В, 0.5 А). Чрезмерное использование электрошока (>4 в минуту) указывает на то, что следует либо снизить интенсивность нагрузки, либо следует исключить животное из исследования. Некоторые животные предпочитают терпеть боль, но не продолжают бег под воздействием болевого стимула. Относительно безболезненные стимулы включают в

себя касания хвоста ершиком для бутылок, а также громкие звуки, например, постукивание ключами, однако они далеко не всегда дают необходимый результат. Бег животных, особенно на низких скоростях, может быть не движением с требующейся для эксперимента скоростью, но активностью с периодическими остановками и возобновлением только после стимуляции. Также проблему может представлять из себя стоимость тредмилов, отсутствие гибкости в настройке скоростей, сложности с поиском тредмила с оптимальным для целей конкретного исследования угла наклона. При этом поверхность беговой дорожки должна обеспечивать хорошее сцепление, быть непористой и достаточно мягкой (Poole et al., 2020). До 10% животных могут отказаться от бега несмотря на стимуляцию и должны быть исключены из исследования (Koch et al., 2001). Чтобы свести потери к минимуму и уменьшить травматизацию конечностей, животных следует приучать к бегу на тредмиле. Нагрузку для мышей можно осуществлять на тредмиле для крыс, но это не идеальный вариант, так как мыши могут убегать в сторону, а пространство между барьерами дорожек может создавать дополнительный риск травмирования мышей (Poole et al., 2020). Помимо технических проблем, существуют вопросы к экспериментальному дизайну. Во многих исследованиях с использованием тредмила не измеряют VO2max и описывают только скорость бега, что недостаточно для контроля активности в случае интервального высокоинтенсивного бега (H0ydal et al., 2007). Часто используют бег на тредмиле для количественной оценки выносливости грызунов без доказательства истощения биохимическими методами. Истощение определяется как «неспособность продолжать выполнение упражнений» (Costill, Wilmore J, 2007). Критерии усталости включают неспособность животного удерживаться на лапах (Terjung et al., 1972; Aoi et al., 2008), неспособность бежать со скоростью, соответствующей движению ленты (Wisl0ff et al., 2001; Rodrigues et al., 2003), уровень глюкозы в крови менее 76 мг/100 мл крови (Fitts et al., 1975), низкая концентрация гликогена в скелетных мышцах и печени (Hickson et al., 1977). Часто критерием усталости грызунов является количество контактов с электрошоковым аппаратом, хотя нет доказательств взаимосвязи с вышеупомянутыми критериями истощения (Booth et al., 2010). По мнению других исследователей, критерии, предложенные Бутом и др., являются инвазивными, терминальными или этически необоснованными. Стимуляция же электрическим током в сочетании с контролируемыми компьютером критериями прерывания, является прагматичным решением для сравнения выносливости различных экспериментальных групп, а проблемы могут быть преодолены с помощью адаптации и формирования группы оптимального размера (Handschin et al., 2010). На практике условия нагрузки не стандартизированы и сильно различаются. В двух основных вариантах нагрузки - с постоянной скоростью и RAMP протоколе - выбор скорости, ускорения и угла наклона беговой дорожки охватывают широкий диапазон. Трудно сравнивать

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Корф Екатерина Андреевна, 2025 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Байдюк Е.В., Соболев В.Е., Корф Е.А., Миндукшев И.В., Кривченко А.И., Гончаров Н.В. Ультраструктурные характеристики медленных и быстрых мышечных волокон крыс после цикла принудительного плавания на фоне введения экстракта зеленого чая и солей аммония. // Цитология. - 2019. - 61(9). - 740-749. - doi: 10.1134/S0041377119090037.

2. Ваизов В.Х., Плотникова Т.М., Якимова Т.В., Ваизова О.Е., Саратиков. А.С. Сукцинат аммония - эффективный корректор циркуляторной гипоксии мозга. // Бюлл эксп биол и мед. - 1994. - 118(9). - 276-278.

3. Гончаров Н.В., Миндукшев И.В., Новожилов A.B., Корф Е.А., Тавровская Т.В., Терпиловский М.А., Хмелевской Д.А., Скверчинская Е.А., Кривченко А.И. Адаптивные биохимические изменения эритроцитов крысы после цикла принудительного плавания с применением зеленого чая и аммонийного прекондиционирования. // Рос Физиол Журн им И.М. Сеченова. - 2018. - 104(12). - 1428-1441. - doi: 10.1134/S086981391812004X.

4. Гончаров Н.В., Новожилов А.В., Тавровская Т.В., Войтенко Н.Г. Сравнительный анализ эффективности декофеинизированного экстракта зеленого чая в различных моделях плавательной нагрузки. // «Новые подходы к изучению классических проблем». Материалы VIII Всерос с междунар уч конф с элементами шк по физиол мышц и мышечной деятельности. (Москва, 2-4 февраля 2015 г.). - М: ООО «Альфа-Принт», 2015. - 90.

5. Маевский Е. И., Учитель М.Л., Гришина Е.В. Сукцинат аммония - "альтернатива" антиоксидантам? // Росс биомед журн. - 2010. - 11. - 78-92.

6. Минигалин А.Д., Войтенко Н.Г., Воробьев А.А., Корф Е.А., Новожилов А.В., Петухова О.В., Баранова Т.И., Гончаров Н.В. Исследование взаимосвязей физиологических и биохимических показателей человека в динамике после выполнения предельной физической нагрузки. // Леч физкульт и спорт мед. - 2015a. - 6(132). - 14-18.

7. Минигалин А.Д., Войтенко Н.Г., Новожилов А.В., Баранова Т.И., Гончаров Н.В. Влияние предельной силовой нагрузки на функциональное состояние и маркеры повреждения скелетных мышц человека. // «Новые подходы к изучению классических проблем». Материалы VIII Всерос с междунар уч конф с элементами шк по физиол мышц и мышечной деятельности. (Москва, 2-4 февраля 2015 г.). - М: ООО «Альфа-Принт», 2015b. - 32.

8. Минигалин А.Д., Войтенко Н.Г., Новожилов А.В., Баранова Т.И., Гончаров Н.В. Поиск новых маркеров повреждения скелетных мышц человека при физической нагрузке. //

«Рецепторы и внутриклеточная сигнализация». Сборн статей. Том 2 (ред. Зинченко В.П., Бережнов А.В.). - Пущино: «Fix-Print», 2015c. - 651-654.

9. Минигалин А.Д., Корф Е.А. Разработка альтернативных маркеров повреждения мышц после выполнения интенсивной физической нагрузки. // Здоровье - осн человеч потенц: проблемы и пути их решения. - 2015. - 10(1). - 307-308.

10. Минигалин А.Д., Корф Е.А., Заварина Л.Б., Баранова Т.И., Гончаров Н.В. О возможных механизмах отставленного мышечного повреждения после интенсивных физических нагрузок у человека. // Материалы VI Росс с международн уч конф по управлению движением (Казань, 14-16 апреля 2016 г.). - Казань: Изд-во Казан ун-та, 2016. - 142.

11. Новожилов А.В., Миндукшев И.В., Корф Е.А., Кривченко А.И., Гончаров Н.В. Соли аммония способствуют функциональной адаптации эритроцитов крысы в модели принудительного плавания. // Бюлл эксп биол и мед. - 2019. - 168(10). - 425-429.

12. Новожилов А.В., Тавровская Т.В., Войтенко Н.Г., Гончаров Н.В., Маслова М.Н., Морозов В.И. Влияние антиоксидантов на состояние эритроцитов крыс в условиях истощающей беговой нагрузки. // Росс Физиол Журн им. И.М. Сеченова. - 2013. - 99(10). - 1223-1232.

13. Новожилов А.В., Тавровская Т.В., Войтенко Н.Г., Маслова М.Н., Гончаров Н.В., Морозов В.И. Эффективность экстракта зеленого чая в эксперименте с использованием двух моделей физической нагрузки. // Бюлл эксп биол и мед. - 2014a. - 158(9). - 327332.

14. Новожилов А.В., Тавровская Т.В., Морозов В.И., Гончаров Н.В. Восстановление гомеостазиса эритроцитов крыс после истощающей плавательной нагрузки. // В мире научных открытий. - 2014b. - 2(50). - 250-256.

15. Розенфельд А.С. Теоретико-методологические аспекты действия сукцината при спортивных нагрузках и гипоксии. / Розенфельд А.С., Маевский Е.И. - Екатеринбург: Издательство РГППУ, 2007. - 173 с. - ISBN 978-5-8050-0242-8.

16. Тавровская Т.В., Новожилов А.В., Войтенко Н.Г., Гончаров Н.В., Маслова М.Н., Морозов В.И. Сравнительное исследование эффективности препарата зеленого чая в эксперименте с использованием двух моделей физической нагрузки. // Фундаментальные науки - медицине: материалы Международной науч конф (Минск, 17 мая 2013 г.). -Минск: Беларус. наука, 2013. - 299-303.

17. Трушина Э.Н., Мустафина О.К., Аксенов И.В., Красуцкий А.Г., Никитюк Д.Б., Тутельян В.А. Биологически активные вещества - антоцианины как фактор алиментарного восстановления адаптационного потенциала организма после

интенсивной физической нагрузки в эксперименте: оценка иммунологических и гематологических показателей адаптации. // Вопр Питан. - 2023. - 92(1). - 6-15. - doi: 10.33029/0042-8833-2023-92-1-6-15.

18. Хазанов В.А. Фармацевтические композиции на основе нестероидных противовоспалительных средств. Патент № 2191582 C2 Российская Федерация, МПК A61K 36/484, A61K 9/20, A61K 9/48. № 2000108267/14; заявл. 05.04.00; опубл. 27.10.2002.

19. Abdo A.A. An evidence-based update on hepatic encephalopathy. // Saudi J Gastroenterol. - 2006. - 12(1). - 8-15.

20. Addison P.D., Neligan P.C., Ashrafpour H., Khan A., Zhong A., Moses M., Forrest C.R., Pang C.Y. Noninvasive remote ischemic preconditioning for global protection of skeletal muscle against infarction. // Am J Physiol Heart Circ Physiol. - 2003. - 285(4). - H1435-H1443. - doi: 10.1152/ajpheart.00106.2003.

21. Adeva M.M., Souto G., Donapetry C., Portals M., Rodriguez A., Lamas D. Brain edema in diseases of different etiology. // Neurochem Int. - 2012. - 61. - 166-174. - doi: 10.1016/j.neuint.2012.05.007.

22. Afzalpour M., Ghasemi E., Zarban A. Effects of 10 weeks of high intensity interval training and green tea supplementation on serum levels of Sirtuin-1 and peroxisome proliferator-activated receptor gamma co-activator 1-alpha in overweight women. // Sci Sports. - 2017. -32. - 82-90. - doi: 10.1016/j.scispo.2016.09.004.

23. Aguiar A.F., Aguiar D.H., Felisberto A.D., Carani F.R., Milanezi R.C., Padovani C.R., Dal-Pai-Silva M. Effects of creatine supplementation during resistance training on myosin heavy chain (MHC) expression in rat skeletal muscle fibers. // J Strength Cond Res. - 2010. -24(1). - 88-96. - doi: 10.1519/JSC.0b013e3181aeb103.

24. Ahles C.P., Singh H., Joo W., Lee Y., Lee L.C., Colazas W., Pierce R.A., Prakash A., Jaque S.V., Sumida K.D. High volumes of resistance exercise are not required for greater bone mineral density during growth. // Med Sci Sports Exerc. - 2013. - 45(1). - 36-42. - doi: 10.1249/MSS.0b013e31826a5710.

25. Ahmad N., Mukhtar H. Green tea polyphenols and cancer: biologic mechanisms and practical implications. // Nutr Rev. - 1999. - 57(3). - 78-83. - doi: 10.1111/j.1753-4887.1999.tb06927.x.

26. Ahmadiasl N., Najafipour H., Soufi F.G., Jafari A. Effect of short- and long-term strength exercise on cardiac oxidative stress and performance in rat. // J Physiol Biochem. - 2012. -68(1). - 121-128. - doi: 10.1007/s13105-011-0125-z.

27. Ahmadzadeh A.M., Pourali G., Mirheidari S.B., Shirazinia M., Hamedi M., Mehri A., Amirbeik H., Saghebdoust S., Tayarani-Najaran Z., Sathyapalan T., Forouzanfar F., Sahebkar A. Medicinal Plants for the Treatment of Neuropathic Pain: A Review of Randomized Controlled Trials. // Curr Pharm Biotechnol. - 2024. - 25(5). - 534-562. - doi: 10.2174/1389201024666230714143538.

28. Ahn W.S., Yoo J., Huh S.W., Kim C.K., Lee J.M., Namkoong S.E., Bae S.M., Lee I.P. Protective effects of green tea extracts (polyphenon E and EGCG) on human cervical lesions. // Eur J Cancer Prev. - 2003. - 12(5). - 383-390. - doi: 10.1097/00008469-200310000-00007.

29. Aisyah R., Ohshima N., Watanabe D., Nakagawa Y., Sakuma T., Nitschke F., Nakamura M., Sato K., Nakahata K., Yokoyama C., Marchioni C.R., Kumrungsee T., Shimizu T., Sotomaru Y., Takeo T., Nakagata N., Izumi T., Miura S., Minassian B.A., Yamamoto T., Wada M., Yanaka N. GDE5/Gpcpd1 activity determines phosphatidylcholine composition in skeletal muscle and regulates contractile force in mice. // Commun Biol. - 2024. - 7(1). - 604. - doi: 10.1038/s42003 -024-06298-z.

30. Alcain F.J., Villalba J.M. Sirtuin activators. // Expert Opin Therap Patents. - 2009. - 19(4). - 403-414. - doi: 10.1517/13543770902762893.

31. Alessio H.M., Hagerman A.E., Romanello M., Carando S., Threlkeld M.S., Rogers J., Dimitrova Y., Muhammed S., Wiley R.L. Consumption of green tea protects rats from exercise-induced oxidative stress in kidney and liver. // Nutr Res. - 2002. - 22. - 1177-1188. - doi: 10.1016/S0271-5317(02)00421 -9.

32. Allen D.G., Lamb G.D., Westerblad H. Skeletal muscle fatigue: Cellular mechanisms. // Physiol Rev. - 2008. - 88(1). - 287-332. - doi: 10.1152/physrev.00015.2007.

33. Alomari M.A., Alzoubi K.H., Khabour O.F. Swimming exercise improves short- and long-term memories: Time-course changes. // Physiol Rep. - 2021 - 9(11). - e14851. - doi: 10.14814/phy2.14851.

34. Andersen C.L., Jensen J.L., Orntoft T.F. Normalization of real-time quantitative reverse transcription-PCR data: A model-based variance estimation approach to identify genes suited for normalization, applied to bladder and colon cancer data sets. // Cancer Res. - 2004. - 64. -5245-5250. - doi: 10.1158/0008-5472.CAN-04-0496.

35. Aoi W., Naito Y., Takanami Y., Ishii T., Kawai Y., Akagiri S., Kato Y., Osawa T., Yoshikawa T. Astaxanthin improves muscle lipid metabolism in exercise via inhibitory effect of oxidative CPT I modification. // Biochem Biophys Res Commun. - 2008. - 366(4). - 892897. - doi: 10.1016/j.bbrc.2007.12.019.

36. de Araujo G.G., Papoti M., Delbin M.A., Zanesco A., Gobatto C.A. Physiological adaptations during endurance training below anaerobic threshold in rats. // Eur J Appl Physiol.

- 2013a. - 113(7). - 1859-1870. - doi: 10.1007/s00421-013-2616-9.

37. de Araujo G.G., Papoti M., Dos Reis I.G., de Mello M.A., Gobatto C.A. Physiological responses during linear periodized training in rats. // Eur J Appl Physiol. - 2012. - 112(3). -839-852. - doi: 10.1007/s00421-011-2020-2.

38. de Araujo G.G., Papoti M., Dos Reis I.G., de Mello M.A., Gobatto C.A. Short and Long Term Effects of High-Intensity Interval Training on Hormones, Metabolites, Antioxidant System, Glycogen Concentration, and Aerobic Performance Adaptations in Rats. // Front Physiol. - 2016. - 7. - 505. - doi: 10.3389/fphys.2016.00505.

39. de Araujo G.G., Papoti M., Manchado F.B., de Mello M.A., Gobatto C.A. Protocols for hyperlactatemia induction in the lactate minimum test adapted to swimming rats. // Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. - 2007. - 148. - 888-892. - doi: 10.1016/j.cbpa.2007.09.002.

40. de Araujo G.G., Papoti M., Manchado-Gobatto F. de B., de Mello M.A., Gobatto C.A. Monitoring chronic physical stress using biomarkers, performance protocols and mathematical functions to identify physiological adaptations in rats. // Lab Anim. - 2013b. - 47(1). - 36-42.

- doi: 10.1177/0023677212473715.

41. Arida R.M., Scorza F.A., Gomes da Silva S., Cysneiros R.M., Cavalheiro E.A. Exercise paradigms to study brain injury recovery in rodents. // Am J Phys Med Rehabil. - 2011. - 90(6).

- 452-465. - doi: 10.1097/PHM.0b013e3182063a9c.

42. Arif A., Salam S., Mahmood R. Bioallethrin-induced generation of reactive species and oxidative damage in isolated human erythrocytes. // Toxicol In Vitro. - 2020. - 65. - 104810.

- doi: 10.1016/j.tiv.2020.104810.

43. Awasthi S., Sharma R., Singhal S.S., Zimniak P., Awasthi Y.C. RLIP76, a novel transporter catalyzing ATP-dependent efflux of xenobiotics. // Drug Metab Dispos. - 2002. -12. - 1300-1310. - doi: 10.1124/dmd.30.12.1300.

44. Ayissi V.B.O., Ebrahimi A., Schluesenner H. Epigenetic effects of natural polyphenols: A focus on SIRT1-mediated mechanisms. // Mol Nutr Food Res. - 2013. - 58(1). - 22-32. - doi: 10.1002/mnfr.201300195.

45. Bag A., Bag N. Tea Polyphenols and Prevention of Epigenetic Aberrations in Cancer. // J Nat Sci Biol Med. - 2018. - 9(1). - 2-5. - doi: 10.4103/jnsbm.JNSBM_46_17.

46. Bagheri R., Rashidlamir A., Ashtary-Larky D., Wong A., Grubbs B., Motevalli M.S., Baker J.S., Laher I., Zouhal H. Effects of green tea extract supplementation and endurance training on irisin, pro-inflammatory cytokines, and adiponectin concentrations in overweight

117

middle-aged men. // Eur J Appl Physiol. - 2020. - 120(4). - 915-923. - doi: 10.1007/s00421-020-04332-6.

47. Bailey T.G., Jones H., Gregson W., Atkinson G., Cable N.T., Thijssen D.H. Effect of ischemic preconditioning on lactate accumulation and running performance. // Med Sci Sports Exerc. - 2012. - 44(11). - 2084-2089. - doi: 10.1249/MSS.0b013e318262cb17.

48. Baker M.A., Horvath S.M. Influence of water temperature on O2 uptake of swimming rats. // J Appl Physiol. - 1964. - 19. - 1215-1218. - doi: 10.1152/jappl.1964.19.6.1215.

49. Balci S.S., Pepe H. Effects of gender, endurance training and acute exhaustive exercise on oxidative stress in the heart and skeletal muscle of the rat. // Chin J Physiol. - 2012. - 55(4). -236-244. - doi: 10.4077/CJP.2012.BAA021.

50. Baptista S., Piloto N., Reis F., Teixeira-de-Lemos E., Garrido A.P., Dias A., Louren9o M., Palmeiro A., Ferrer-Antunes C., Teixeira F. Treadmill running and swimming imposes distinct cardiovascular physiological adaptations in the rat: focus on serotonergic and sympathetic nervous systems modulation. // Acta Physiol Hung. - 2008. - 95(4). - 365-381. - doi: 10.1556/APhysiol.2008.0002.

51. Barauna V.G., Rosa K.T., Irigoyen M.C., de Oliveira E.M. Effects of resistance training on ventricular function and hypertrophy in a rat model. // Clin Med Res. - 2007. - 5(2). - 114120. - doi: 10.3121/cmr.2007.707.

52. Beard N.A., Laver D.R., Dulhunty A.F. Calsequestrin and the calcium release channel of skeletal and cardiac muscle. // Prog Biophys Mol Biol. - 2004. - 85. - 33-69. - doi: 10.1016/j.pbiomolbio.2003.07.001.

53. Beaton J.R., Feleki V. Effect of diet and water temperature on exhaustion time of swimming rats. // Can J Physiol Pharmacol. - 1967. - 45(2). - 360-363. - doi: 10.1139/y67-042.

54. Behnke B.J., Kindig C.A., McDonough P., Poole D.C., Sexton W.L. Dynamics of microvascular oxygen pressure during rest-contraction transition in skeletal muscle of diabetic rats. // Am J Physiol Heart Circ Physiol. - 2002. - 283(3). - H926-H932. - doi: 10.1152/ajpheart.00059.2002.

55. Bei Y., Wang L., Ding R., Che L., Fan Z., Gao W., Liang Q., Lin S., Liu S., Lu X., Shen Y., Wu G., Yang J., Zhang G., Zhao W., Guo L., Xiao J. Animal exercise studies in cardiovascular research: Current knowledge and optimal design - A position paper of the Committee on Cardiac Rehabilitation, Chinese Medical Doctors' Association. // J Sport Health Sci. - 2021. - 10(6). - 660-674. - doi: 10.1016/j.jshs.2021.08.002.

56. Beltz L.A., BayerD.K., Moss A.L., Simet I.M. Mechanisms of cancer prevention by green and black tea polyphenols. // Anticancer Agents Med. Chem. - 2006. - 6. - 389-406. - doi: 10.2174/187152006778226468.

57. Bergmeyer H.U., Bernt E. Lactate dehydrogenase. UV-assay with pyruvate and NADH. / In Methods of Enzymatic Analysis. - Bergmeyer, H.U., Ed.. - New York, NY, USA: Academic Press, 1974. - pp. 574-578.

58. Bernatoniene J., Kopustinskiene D.M. The Role of Catechins in Cellular Responses to Oxidative Stress. // Molecules. - 2018. - 23(4). - 965. - doi: 10.3390/molecules23040965.

59. Beutler E. Red Cell Metabolism: A Manual of Biochemical Methods. / New York, NY, USA: Grune & Stratton, 1975. - 160 p.

60. Bi Y., Liu X., Liu Y., Wang M., Shan Y., Yin Y., Meng X., Sun F., Li H., Li Z. Molecular and biochemical investigations of the anti-fatigue effects of tea polyphenols and fruit extracts of Lycium ruthenicum Murr. on mice with exercise-induced fatigue. // Front Mol Biosci. -2023. - 10. - 1223411. - doi: 10.3389/fmolb.2023.1223411.

61. Bian A.L., Hu H.Y., Rong Y.D., Wang J., Wang J.X., Zhou X.Z. A study on relationship between elderly sarcopenia and inflammatory factors IL-6 and TNF-a. // Eur J Med Res. -2017. - 22. - 25. - doi: 10.1186/s40001-017-0266-9.

62. Billat V.L., Sirvent P., Py G., Koralsztein J.P., Mercier J. The concept of maximal lactate steady state: a bridge between biochemistry, physiology and sport science. // Sports Med. -2003. - 33(6). - 407-426. - doi: 10.2165/00007256-200333060-00003.

63. Bingöl Diedhiou A., Milanovic Z., Can Eser M., §ahin F.N., Hamlin M., Can Yildirim U. The effects of taurine ingestion on anaerobic and physiological performance in female rugby players. // Res Sports Med. - 2024. - 32(4). - 621-630. - doi: 10.1080/15438627.2023.2198129.

64. Binik Y.M., Deikel S.M., Theriault G., Shustack B., Balthazard C. Sudden swimming deaths: cardiac function, experimental anoxia, and learned helplessness. // Psychophysiology -1979. - 16(4). - 381-391. - doi: 10.1111/j.1469-8986.1979.tb01483.x.

65. Birnbaumer P., Müller A., Tschakert G., Sattler M.C., Hofmann P. Performance Enhancing Effect of Metabolic Pre-conditioning on Upper-Body Strength-Endurance Exercise. // Front Physiol. - 2018. - 9. - 963. - doi: 10.3389/fphys.2018.00963.

66. Bishop D., Edge J., Davis C., Goodman C. Induced metabolic alkalosis affects muscle metabolism and repeated-sprint ability. // Med Sci Sports Exerc. - 2004. - 36(5). - 807-813. -doi: 10.1249/01.mss.0000126392.20025.17.

67. Bizjak D.A., Tomschi F., Bales G., Nader E., Romana M., Connes P., Bloch W., Grau M. Does endurance training improve red blood cell aging and hemorheology in moderate-trained

119

healthy individuals? // J. Sport Health Sci. - 2020. - 9. - 595-603. - doi: 10.1016/j.jshs.2019.02.002.

68. Bloemberg D., Quadrilatero J. Rapid determination of myosin heavy chain expression in rat, mouse, and human skeletal muscle using multicolor immunofluorescence analysis. // PLoS ONE 2012. - 7. - e35273. - doi: 10.1371/journal.pone.0035273.

69. Boix-Castejón M., Herranz-López M., Pérez Gago A., Olivares-Vicente M., Caturla N., Roche E., Micol V. Hibiscus and lemon verbena polyphenols modulate appetite-related biomarkers in overweight subjects: A randomized controlled trial. // Food Funct. - 2018. - 9. -3173-3184. - doi: 10.1039/c8fo00367j.

70. Bojarczuk A., Dzitkowska-Zabielska M. Polyphenol Supplementation and Antioxidant Status in Athletes: A Narrative Review. // Nutrients. - 2022. - 15(1). - 158. - doi: 10.3390/nu15010158.

71. Booth F.W., Laye M.J., Spangenburg E.E. Gold standards for scientists who are conducting animal-based exercise studies. // J Appl Physiol (1985). - 2010. - 108(1). - 219-221. - doi: 10.1152/japplphysiol.00125.2009.

72. Bosoi C.R., Rose C.F. Identifying the direct effects of ammonia on the brain. // Metab Brain Dis. - 2009. - 24(1). - 95-102. - doi: 10.1007/s 11011 -008-9112-7.

73. Braissant O., McLin V.A., Cudalbu C. Ammonia toxicity to the brain. // J Inherit Metab Dis. - 2013. - 36(4). - 595-612. - doi: 10.1007/s10545-012-9546-2.

74. Braun K., Atmanspacher F., Schreckenberg R., Grgic I., Schlüter K.D. Effect of free running wheel exercise on renal expression of parathyroid hormone receptor type 1 in spontaneously hypertensive rats. // Physiol Rep. - 2018. - 6(17). - e13842. - doi: 10.14814/phy2.13842.

75. Bromberg P.A., Robin E.D., Forkner C.E. Jr. The existence of ammonia in blood in vivo with observations on the significance of the NH4 plus minus NH3 system. // J Clin Invest. -1960. - 39(2). - 332-341. - doi: 10.1172/JCI104044.

76. Brown M.B., Neves E., Long G., Graber J., Gladish B., Wiseman A., Owens M., Fisher A.J., Presson R.G., Petrache I., Kline J., Lahm T. High-intensity interval training, but not continuous training, reverses right ventricular hypertrophy and dysfunction in a rat model of pulmonary hypertension. // Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. - 2017. - 312(2). - R197-R210. - doi: 10.1152/ajpregu.00358.2016.

77. Bruder-Nascimento T., Silva S.T., Boer P.A., Cordellini S. Effects of exercise training on stress-induced vascular reactivity alterations: role of nitric oxide and prostanoids. // Braz J Phys Ther. - 2015. - 19(3). - 177-185. - doi: 10.1590/bjpt-rbf.2014.0088.

78. Brusilow S.W., Koehler R.C., Traystman R.J., Cooper A.J. Astrocyte glutamine synthetase: importance in hyperammonemic syndromes and potential target for therapy. // Neurotherapeutics. - 2010. - 7(4). - 452-470. - doi: 10.1016/j.nurt.2010.05.015.

79. Butterworth R.F. Pathophysiology of hepatic encephalopathy: a new look at ammonia. // Metab Brain Dis. - 2002. - 17(4). - 221-227. - doi: 10.1023/a:1021989230535.

80. Cabrera C., Artacho R., Giménez R. Beneficial effects of green tea - A review. // J Am Coll Nutr. - 2006. - 25. - 79-99. - doi: 10.1080/07315724.2006.10719518.

81. Calani L., Del Rio D., Luisa Callegari M., Morelli L., Brighenti F. Updated bioavailability and 48 h excretion profile of flavan-3-ols from green tea in humans. // Int J Food Sci Nutr. -2012. -63(5). - 513-521. - doi: 10.3109/09637486.2011.640311.

82. Calkosinski I., Majda J., Terlecki G., Gostomska-Pampuch K., Malolepsza-Jarmolowska K., Sobolewska S., Calkosinska A., Kumala A., Gamian A. Dynamic Analysis of Changes of Protein Levels and Selected Biochemical Indices in Rat Serum in the Course of Experimental Pleurisy. // Inflammation. - 2016. - 39. - 1076-1089. - doi: 10.1007/s10753-016-0339-x.

83. Calvert J.W., Condit M.E., Aragón J.P., Nicholson C.K., Moody B.F., Hood R.L., Sindler A.L., Gundewar S., Seals D.R., Barouch L.A., Lefer D.J. Exercise protects against myocardial ischemia-reperfusion injury via stimulation of P(3)-adrenergic receptors and increased nitric oxide signaling: role of nitrite and nitrosothiols. // Circ Res. - 2011. - 108(12). - 1448-1458. -doi: 10.1161/CIRCRESAHA.111.241117.

84. Carr A.J., Hopkins W.G., Gore C.J. Effects of acute alkalosis and acidosis on performance: a meta-analysis. // Sports Med. - 2011. - 41(10). - 801-814. - doi: 10.2165/11591440000000000-00000.

85. Carr A.J., McKay A.K.A., Burke L.M., Smith E.S., Urwin C.S., Convit L., Jardine W.T., Kelly M.K., Saunders B. Use of Buffers in Specific Contexts: Highly Trained Female Athletes, Extreme Environments and Combined Buffering Agents-A Narrative Review. // Sports Med. -2023. - 53(Suppl 1). - 25-48. - doi: 10.1007/s40279-023-01872-7.

86. Casuso R.A., Martínez-Amat A., Martínez-Romero R., Camiletti-Moiron D., Hita-Contreras F., Martínez-López E. Plasmatic nitric oxide correlates with weight and red cell distribution width in exercised rats supplemented with quercetin. // Int J Food Sci Nutr. - 2013.

- 64. - 830-835. -doi: 10.3109/09637486.2013.803521.

87. Chatzizisis Y.S., Misirli G., Hatzitolios A.I., Giannoglou G.D. The syndrome of rhabdomyolysis: complications and treatment. // Eur J Intern Med. - 2008. -19(8). - 568-574.

- doi: 10.1016/j.ejim.2007.06.037.

88. Chen D., Milacic V., Chen M.S., Wan S.B., Lam W.H., Huo C., Landis-Piwowar K.R., Cui Q.C., Wali A., Chan T.H., Dou Q.P. Tea polyphenols, their biological effects and potential

121

molecular targets. // Histol Histopathol. - 2008. - 23(4). - 487-496. - doi: 10.14670/HH-23.487.

89. Chen L., Lee M.J., Li H., Yang C.S. Absorption, distribution, elimination of tea polyphenols in rats. // Drug Metab. Dispos. - 1997. - 25. - 1045-1050.

90. Chen S., Minegishi Y., Hasumura T., Shimotoyodome A., Ota N. Involvement of ammonia metabolism in the improvement of endurance performance by tea catechins in mice. // Sci Rep.

- 2020. - 10(1). - 6065. - doi: 10.1038/s41598-020-63139-9.

91. Chen S., Osaki N., Shimotoyodome A. Green tea catechins enhance norepinephrine-induced lipolysis via a protein kinase A-dependent pathway in adipocytes. // Biochem Biophys Res Commun. - 2015. - 461(1). - 1-7. - doi: 10.1016/j.bbrc.2015.03.158.

92. Cheng I.S., Wang Y.W., Chen I.F., Hsu G.S., Hsueh C.F., Chang C.K. The supplementation of branched-chain amino acids, arginine, and citrulline improves endurance exercise performance in two consecutive days. // J Sports Sci Med. - 2016. - 15. - 509-515.

93. Cho J., King J.S., Qian X., Harwood A.J., Shears S.B. Dephosphorylation of 2,3-bisphosphoglycerate by MIPP expands the regulatory capacity of the Rapoport-Luebering glycolytic shunt. // Proc Natl Acad Sci USA. - 2008. - 105. - 5998-6003. -doi:10.1073/pnas.071098010.

94. Choi K.C., Jung M.G., Lee Y.H., Yoon J.C., Kwon S.H., Kang H.B., Kim M.J., Cha J.H., Kim Y.J., Jun W.J., Lee J.M., Yoon H.G. Epigallocatechin-3-gallate, a histone acetyltransferase inhibitor, inhibits EBV-induced B lymphocyte transformation via suppression of RelA acetylation. // Cancer Res. - 2009. - 69. - 583-592. - doi: 10.1158/0008-5472.CAN-08-2442.

95. Cholewa J., Guimaraes-Ferreira L., da Silva Teixeira T., Naimo M.A., Zhi X., Dal Ponte de Sa R.B., Lodetti A., Cardozo M.Q., Zanchi N.E. Basic Models Modeling Resistance Training: An Update for Basic Scientists Interested in Study Skeletal Muscle Hypertrophy. // J Cell Physiol. - 2014. - 229(9). - 1148-1156. - doi: 10.1002/jcp.24542.

96. Chow H.H., Cai Y., Alberts D.S., Hakim I., Dorr R., Shahi F., Crowell J.A., Yang C.S., Hara Y. Phase I pharmacokinetic study of tea polyphenols following single-dose administration of epigallocatechin gallate and polyphenon E. // Cancer Epidemiol. Biomark. Prev. - 2001. -10. - 53-58.

97. Chycki J., Golas A., Halz M., Maszczyk A., Toborek M., Zajac A. Chronic Ingestion of Sodium and Potassium Bicarbonate, with Potassium, Magnesium and Calcium Citrate Improves Anaerobic Performance in Elite Soccer Players. // Nutrients. - 2018. - 10(11). - 1610.

- doi: 10.3390/nu10111610.

98. Clarac F., Vinay L., Cazalets J.R., Fady J.C., Jamon M. Role of gravity in the development of posture and locomotion in the neonatal rat. // Brain Res Brain Res Rev. - 1998. - 28(1-2). -35-43. - doi: 10.1016/s0165-0173(98)00024-1.

99. Coimbra R., Sanchez L.S., Potenza J.M., Rossoni L.V., Amaral S.L., Michelini L.C. Is gender crucial for cardiovascular adjustments induced by exercise training in female spontaneously hypertensive rats? // Hypertension. - 2008. - 52(3). - 514-521. - doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.108.114744.

100. Collett G.P., Campbell F.C. Curcumin induces c-jun Nterminal kinase-dependent apoptosis in HCT116 human colon cancer cells. // Carcinogenesis. - 2004. - 25(11). - 2183-2189. - doi: 10.1093/carcin/bgh233.

101. Contarteze R.V.L., Manchado F.B., Gobatto C.A., De Mello M A R. Stress biomarkers in rats submitted to swimming and treadmill running exercises. // Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. - 2008. - 151(3). - 415-422. - doi: 10.1016/j.cbpa.2007.03.005.

102. Copp S.W., Hageman K.S., Behnke B.J., Poole D.C., Musch T.I. Effects of type II diabetes on exercising skeletal muscle blood flow in the rat. // J Appl Physiol (1985). - 2010. - 109(5). - 1347-1353. - doi: 10.1152/japplphysiol.00668.2010.

103. Costill D.L., Dalsky G.P., Fink W.J. Effects of caffeine ingestion on metabolism and exercise performance. // Med Sci Sports. - 1978. - 10(3). - 155-158.

104. Crane F.L., Low H., Sun I., Navas P., Gvozdjakova A. Plasma membrane coenzyme Q: Evidence for a role in autism. // Biologics. - 2014. - 8. - 199-205. - doi: 10.2147/BTT.S53375.

105. Dawson C.A., Horvath S.M. Swimming in small laboratory animals. // Med Sci Sports. -1970. -2(2). - 51-78.

106. Dayan A., Feinberg M.S., Holbova R., Deshet N., Scheinowitz M. Swimming exercise training prior to acute myocardial infarction attenuates left ventricular remodeling and improves left ventricular function in rats. // Ann Clin Lab Sci. - 2005. - 35(1). - 73-78.

107. Dean S., Braakhuis A., Paton C. The effects of EGCG on fat oxidation and endurance performance in male cyclists. // Int J Sport Nutr Exerc Metab. - 2009. - 19. - 624-644. - doi: 10.1123/ijsnem.19.6.624.

108. Debold E.P. Potential molecular mechanisms underlying muscle fatigue mediated by reactive oxygen and nitrogen species. // Front Physiol. - 2015. - 6. - 1-7. - doi: 10.3389/fphys.2015.00239.

109. Derelanko M.J. Determination of erythrocyte life span in F-344, Wistar, and Sprague-Dawley rats using a modification of the [3H]diisopropylfluorophosphate ([3H]DFP) method. // Fundam Appl Toxicol. - 1987. - 9(2). - 271-276.

110. Dorchies O.M., Wagner S., Buetler T.M., Ruegg U.T. Protection of dystrophic muscle cells with polyphenols from green tea correlates with improved glutathione balance and increased expression of 67LR, a receptor for (-)-epigallocatechin gallate. // Biofactors. - 2009. - 35. -279-294. - doi: 10.1002/biof.34.

111. Dorchies O.M., Wagner S., Vuadens O., Waldhauser K., Buetler T.M., Kucera P., Ruegg U.T. Green tea extract and its major polyphenol (-)-epigallocatechin gallate improve muscle function in a mouse model for Duchenne muscular dystrophy. // Am J Physiol Cell Physiol. -2006. - 290(2). - C616-C625. - doi: 10.1152/ajpcell.00425.2005.

112. Duncan M.J., Weldon A., Price M.J. The effect of sodium bicarbonate ingestion on back squat and bench press exercise to failure. // J Strength Cond Res. - 2014. - 28(5). - 1358-1366.

- doi: 10.1519/JSC.0000000000000277.

113. Edwards J.G. Swim training increases ventricular atrial natriuretic factor (ANF) gene expression as an early adaptation to chronic exercise. // Life Sci. - 2002. - 70(23). - 2753-2768.

- doi: 10.1016/s0024-3205(02)01518-7.

114. Eichenberger P., Colombani P.C., Mettler S. Effects of 3-week consumption of green tea extracts on wholebody metabolism during cycling exercise in endurancetrained men. // Int J Vitam Nutr Res. - 2009. - 79(1). - 24-33. - doi: 10.1024/0300-9831.79.1.24.

115. El-Bakry H.A., El-Sherif G., Rostom R.M. Therapeutic dose of green tea extract provokes liver damage and exacerbates paracetamol-induced hepatotoxicity in rats through oxidative stress and caspase 3-dependent apoptosis. // Biomed Pharmacother. - 2017. - 96. - 798-811. -doi: 10.1016/j.biopha.2017.10.055.

116. Elahian F., Sepehrizadeh Z., Moghimi B., Mirzaei S.A. Human cytochrome b5 reductase: Structure, function, and potential applications. // Crit Rev Biotechnol. - 2014. - 34. - 134-143.

- doi: 10.3109/07388551.2012.732031.

117. Elliott A.J., Scheiber S.A., Thomas C., Pardini R.S. Inhibition of glutathione reductase by flavonoids. A structure-activity study. // Biochem Pharmacol. - 1992. - 44. - 1603-1608. - doi: 10.1016/0006-2952(92)90478-2.

118. Ellman G.L. Tissue sulfhydryl groups. // Arch Biochem Biophys. - 1959. - 82. - 70-77. -doi: 10.1016/0003 -9861(59)90090-6.

119. Emoto Y., Souza Torsoni A., Torsoni M.A., Gobatto C.A., Barros Manchado-Gobatto F. Effect of acute swimming exercise at different intensities but equal total load over metabolic and molecular responses in swimming rats. // J Muscle Res Cell Motil. - 2022. - 43(1). - 3544. - doi: 10.1007/s10974-022-09614-4.

120. Forte L.D.M., Rodrigues N.A., Cordeiro A.V., de Fante T., Simino L.A.P., Torsoni A.S., Torsoni M.A., Gobatto C.A., Manchado-Gobatto F.B. Periodized versus non-periodized

124

swimming training with equal total training load: Physiological, molecular and performance adaptations in Wistar rats. // PLoS One. - 2020. - 15(9). - e0239876. - doi: 10.1371/journal.pone.0239876.

121. Foryst-Ludwig A., Kintscher U. Sex differences in exerciseinduced cardiac hypertrophy. // Pflugers Arch. - 2013. - 465(5). - 731-737. - doi: 10.1007/s00424-013-1225-0.

122. Foss C.R., Horvath S.M. Reactions of wild and albino mice in response to forced swimming. // Proc Soc Exp Biol. - 1965. - 120. - 588-592. - doi: 10.3181/00379727-12030598.

123. Franco R.S. Measurement of red cell lifespan and aging. // Transfus Med Hemother. -2012. - 39. - 302-307. - doi: 10.1159/000342232.

124. de Freitas M.C., Gerosa-Neto J., Zanchi N.E., Lira F.S., Rossi F.E. Role of metabolic stress for enhancing muscle adaptations: Practical applications. // World J Methodol. - 2017. - 7(2). - 46-54. - doi: 10.5662/wjm.v7.i2.46.

125. Gariballa S., Forster S., Powers H. Riboflavin status in acutely ill patients and response to dietary supplements. // JPEN J Parenter Enter Nutr. - 2009. - 33. - 656-661. - doi: 10.1177/0148607109336602.

126. Gatto C., Milanick M. Red blood cell Na pump: Insights from species differences. // Blood Cells Mol Dis. - 2009. - 42(3). - 192-200. - doi: 10.1016/j.bcmd.2009.01.011.

127. Geenen D., Buttrick P., Scheuer J. Cardiovascular and hormonal responses to swimming and running in the rat. // J Appl Physiol (1985). - 1988. - 65(1). - 116-123. - doi: 10.1152/jappl.1988.65.1.116.

128. Ghosh S., Golbidi S., Werner I., Verchere B.C., Laher I. Selecting exercise regimens and strains to modify obesity and diabetes in rodents: an overview. // Clin Sci (Lond). - 2010. -119(2). - 57-74. - doi: 10.1042/CS20090389.

129. Giannaki A., Georgatzakou H.T., Fortis S.P., Anastasiadi A.T., Pavlou E.G., Nomikou E.G., Drandaki M.P., Kotsiafti A., Xydaki A., Fountzoula C., Papageorgiou E.G., Tzounakas V.L., Kriebardis A.G. Stratification of PSP+ Compound Heterozygotes Based on L-Glutamine Administration and RDW: Focusing on Disease Severity. // Antioxidants. - 2023. - 12. - 1982. -doi: 10.3390/antiox12111982.

130. Gibb A.A., Epstein P.N., Uchida S., Zheng Y., McNally L.A., Obal D., Katragadda K., Trainor P., Conklin D.J., Brittian K.R., Tseng M.T., Wang J., Jones S.P., Bhatnagar A., Hill B.G. Exercise-Induced Changes in Glucose Metabolism Promote Physiological Cardiac Growth. // Circulation. - 2017. - 136(22). - 2144-2157. - doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.117.028274.

131. Gibb A.A., McNally L.A., Riggs D.W., Conklin D.J., Bhatnagar A., Hill B.G. FVB/NJ Mice Are a Useful Model for Examining Cardiac Adaptations to Treadmill Exercise. // Front Physiol. - 2016. -7. - 636. - doi: 10.3389/fphys.2016.00636.

132. Gleeson M., Nieman D.C., Pedersen B.K. Exercise, nutrition and immune function. // J Sports Sci. - 2004. - 22. - 115-125. - doi: 10.1080/0264041031000140590.

133. Glisic M., Nikolic Turnic T., Zivkovic V., Pindovic B., Chichkova N.V., Fisenko V.P., Nikolic M., Stijak L., Yurievna L.E., Veselinovic M., Jovicic M., Mihajlovic K., Bolevich S., Jakovljevic V. The Enhanced Effects of Swimming and Running Preconditioning in an Experimental Model of Myocardial Ischemia/Reperfusion Injury. // Medicina (Kaunas). - 2023. -59(11). - 1995. - doi: 10.3390/medicina59111995.

134. Gmada N., Bouhlel E., Mrizak I., Debabi H., Ben Jabrallah M., Tabka Z., Feki Y., Amri M. Effect of combined active recovery from supramaximal exercise on blood lactate disappearance in trained and untrained man. // Int J Sports Med. - 2005. - 26. - 874-879. - doi: 10.1055/s-2005-837464.

135. Gobatto C.A., Mello M.A.R., Sibuya C.Y., Azevedo J.R.M., Santos L.A., Kokubum E. Maximal lactate steady state in rats submitted to swimming exercise. // Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. -2001. - 130. - 21-27. - doi: 10.1016/S1095-6433(01)00362-2.

136. Gomes M.J., Pagan L.U., Lima A.R.R., Reyes D.R.A., Martinez P.F., Damatto F.C., Pontes T.H.D., Rodrigues E.A., Souza L.M., Tosta I.F., Fernandes A.A.H., Zornoff L.A.M., Okoshi K., Okoshi M.P. Effects of aerobic and resistance exercise on cardiac remodelling and skeletal muscle oxidative stress of infarcted rats. // J Cell Mol Med. - 2020. - 24(9). - 5352-5362. -doi: 10.1111/jcmm.15191.

137. Gomes S.G., Silva L.G., Santos T.M., Totou N.L., Souza P.M., Pinto K.M.C., Coelho D.B., Becker L.K: Elderly hypertensive subjects have a better profile of cardiovascular and renal responses during water-based exercise. // J Exerc Physiol Online. - 2016. - 19. - 21-31.

138. Gomez-Cabrera M.C., Borrás C., Pallardó F.V., Sastre J., Ji L.L., Viña J. Decreasing xanthine oxidase-mediated oxidative stress prevents useful cellular adaptations to exercise in rats. // J Physiol. - 2005. - 567. - 113-120. - doi: 10.1113/jphysiol.2004.080564.

139. Gonçalves A.C., Gaspar D., Flores-Félix J.D., Falcäo A., Alves G., Silva L.R. Effects of Functional Phenolics Dietary Supplementation on Athletes' Performance and Recovery: A Review. // Int J Mol Sci. - 2022. - 23(9). - 4652. - doi: 10.3390/ijms23094652.

140. Goncharov N., Maevsky E., Voitenko N., Novozhilov A., Kubasov I., Jenkins R., Avdonin P. Nutraceuticals in sports activities and fatigue. / In Nutraceuticals: Efficacy, Safety and Toxicity, 2nd ed. - Gupta R.C., Lall R., Srivastava A. Eds.; Amsterdam, The Netherlands: Academic Press/Elsevier, 2016. - pp. 177-188. - ISBN 978-0-12-821038-3.

141. Graham H.N. Green tea composition, consumption, and polyphenol chemistry. // Prev Med. - 1992. - 21. - 334-350. - doi: 10.1016/0091-7435(92)90041-F.

142. Grassi D., Desideri G., Di Giosia P., De Feo M., Fellini E., Cheli P., Ferri L., Ferri C. Tea, flavonoids, and cardiovascular health: endothelial protection. // Am J Clin Nutr. - 2013. - 98(6 Suppl). - 1660S-1666S. - doi: 10.3945/ajcn.113.058313.

143. Greenberg A.S., Shen W.J., Muliro K., Patel S., Souza S.C., Roth R.A., Kraemer F.B. Stimulation of lipolysis and hormone-sensitive lipase via the extracellular signal-regulated kinase pathway. // J Biol Chem. - 2001. - 276(48). - 45456-45461. - doi: 10.1074/jbc.M104436200.

144. Gupta D.A., Bhaskar D.J., Gupta R.K. Karim B., Jain A., Dalai D.R. Green tea: A review on its natural anti-oxidant therapy and cariostatic benefits. // Biol Sci Pharm Res. - 2014. - 2. - 8-12.

145. Gupta S.K., Halder N., Srivastava S., Trivedi D., Joshi S., Varma S.D. Green tea (Camellia sinensis) protects against selenite-induced oxidative stress in experimental cataractogenesis. // Ophthalmic Res. - 2002. - 34. - 258-263. - doi: 10.1159/000063881.

146. Gurd B.J. Deacetylation of PGC-1a by SIRT1: Importance for skeletal muscle function and exercise-induced mitochondrial biogenesis. // Appl Physiol Nutr Metab. - 2011. - 36. - 589597. - doi: 10.1139/h11-070.

147. Gutiérrez-Merino C., Martínez-Costa O.H., Monsalve M.; Samhan-Arias A.K. Structural Features of Cytochrome b5-Cytochrome b5 Reductase Complex Formation and Implications for the Intramolecular Dynamics of Cytochrome b5 Reductase. // Int J Mol Sci. - 2021. - 23. -118. - doi: 10.3390/ijms23010118.

148. Hadi A., Pourmasoumi M., Kafeshani M., Karimian J., Maracy M.R., Entezari M.H. The Effect of Green Tea and Sour Tea (Hibiscus sabdariffa L.) Supplementation on Oxidative Stress and Muscle Damage in Athletes. // J Diet Suppl. - 2017. - 14(3). - 346-357. - doi: 10.1080/19390211.2016.1237400.

149. Halestrap A.P., Wilson M.C. The monocarboxylate transporter family - Role and regulation. // IUBMB Life. - 2012. - 64. - 109-119. - doi: 10.1002/iub.572.

150. Hall R., Yuan S., Wood K., Katona M., Straub A.C. Cytochrome b5 reductases: Redox regulators of cell homeostasis. // J Biol Chem. - 2022. - 298. - 102654. - doi: 10.1016/j.jbc.2022.102654.

151. Hammond R.L., Augustyniak R.A., Rossi N.F., Lapanowski K., Dunbar J.C., O'Leary D.S. Alteration of humoral and peripheral vascular responses during graded exercise in heart failure. // J Appl Physiol (1985). - 2001. - 90(1). - 55-61. - doi: 10.1152/jappl.2001.90.1.55.

152. Handschin C., Summermatter S., LeBrasseur N.K., Lin J., Spiegelman B.M. For a pragmatic approach to exercise studies. // J Appl Physiol (1985). - 2010. - 108(1). - 223. - doi: 10.1152/japplphysiol.01233.2009.

153. Haramizu S., Ota N., Hase T., Murase T. Catechins attenuate eccentric exercise-induced inflammation and loss of force production in muscle in senescence-accelerated mice. // J Appl Physiol (1985). - 2011. - 111(6). - 1654-1663. - doi: 10.1152/japplphysiol.01434.2010.

154. Haramizu S., Ota N., Hase T., Murase T. Catechins suppress muscle inflammation and hasten performance recovery after exercise. // Med Sci Sports Exerc. - 2013. - 45(9). - 16941702. - doi: 10.1249/MSS.0b013e31828de99f.

155. Hastings M.H., Herrera J.J., Guseh J.S., Atlason B., Houstis N.E., Abdul Kadir A., Li H., Sheffield C., Singh A.P., Roh J.D., Day S.M., Rosenzweig A. Animal Models of Exercise From Rodents to Pythons. // Circ Res. - 2022. - 130(12). - 1994-2014. - doi: 10.1161/CIRCRESAHA.122.320247.

156. Hegesh E., Gruener N., Cohen S., Bochkovsky R., Shuval H.I. A sensitive micromethod for the determination of methemoglobin in blood. // Clin Chim Acta - 1970. - 30. - 679-682.

- doi: 10.1016/0009-8981(70)90260-3.

157. Heibel A.B., Perim P.H.L., Oliveira L.F., McNaughton L.R., Saunders B. Time to Optimize Supplementation: Modifying Factors Influencing the Individual Responses to Extracellular Buffering Agents. // Front Nutr. - 2018. - 5. - 35. - doi: 10.3389/fnut.2018.00035.

158. Herrlinger K.A., Chirouzes D.M., Ceddia M.A. Supplementation with a polyphenolic blend improves post-exercise strength recovery and muscle soreness. // Food Nutr Res. - 2015.

- 59. - 30034. - doi: 10.3402/fnr.v59.30034.

159. Hickson R.C., Rennie M.J., Conlee R.K., Winder W.W., Holloszy J O. Effects of increased plasma fatty acids on glycogen utilization and endurance. // J Appl Physiol. - 1977. - 43. -829-833. - doi: 10.1152/jappl.1977.43.5.829.

160. Higdon J.V., Frei B. Tea catechins and polyphenols: health effects, metabolism, and antioxidant functions. // Crit Rev Food Sci Nutr. - 2003. - 43(1). - 89-143. - doi: 10.1080/10408690390826464.

161. Hillhouse E.E., Lesage, S. A comprehensive review of the phenotype and function of antigen-specific immunoregulatory double negative T cells. // J Autoimmun. - 2013. - 40. -58-65. - doi: 10.1016/j.jaut.2012.07.010.

162. Hirai DM., Copp S.W., Ferguson S.K., Holdsworth C.T., Hageman K.S., Poole D.C., Musch T.I. Neuronal nitric oxide synthase regulation of skeletal muscle functional hyperemia: exercise training and moderate compensated heart failure. // Nitric Oxide. - 2018. - 74. - 1-9.

- doi: 10.1016/j.niox.2017.12.008.

163. Hodgson A.B., Randell R.K., Jeukendrup A.E. The effect of green tea extract on fat oxidation at rest and during exercise: evidence of efficacy and proposed mechanisms. // Adv Nutr. - 2013. - 4(2). - 129-140. - doi: 10.3945/an.112.003269.

164. Hoffman M.D., Valentino T.R., Stuempfle K.J., Hassid B.V. A Placebo-Controlled Trial of Riboflavin for Enhancement of Ultramarathon Recovery. // Sports Med Open. - 2017. - 1.

- 14. - doi: 10.1186/s40798-017-0081-4.

165. Hoh J.F.Y. Developmental, physiologic and phylogenetic perspectives on the expression and regulation of myosin heavy chains in mammalian skeletal muscles. // J Comp Physiol B. -2023. - 193. - 355-382. - doi: 10.1007/s00360-023-01499-0.

166. Hollidge-Horvat M.G., Parolin M.L., Wong D., Jones N.L., Heigenhauser G.J. Effect of induced metabolic acidosis on human skeletal muscle metabolism during exercise. // Am J Physiol. - 1999. - 277. - E647-E658. - doi: 10.1152/ajpendo.1999.277.4.E647.

167. Hollidge-Horvat M.G., Parolin M.L., Wong D., Jones N.L., Heigenhauser G.J. Effect of induced metabolic alkalosis on human skeletal muscle metabolism during exercise. // Am J Physiol Endocrinol Metab. - 2000. - 278(2). - E316-E329. - doi: 10.1152/ajpendo.2000.278.2.E316.

168. Hostrup M., Bangsbo J. Limitations in intense exercise performance of athletes - Effect of speed endurance training on ion handling and fatigue development. // J Physiol. - 2017. - 595.

- 2897-2913. - doi: 10.1113/JP273218.

169. Hou Z., Qin X., Hu Y., Zhang X., Li G., Wu J., Li J., Sha J., Chen J., Xia J., Wang L., Gao F. Longterm Exercise-Derived Exosomal miR-342-5p: A Novel Exerkine for Cardioprotection. // Circ Res. - 2019. - 124(9). - 1386-1400. - doi: 10.1161/CIRCRESAHA.118.314635.

170. Housh T.J., deVries H.A., Johnson G.O., Evans S.A., McDowell S. The effect of ammonium chloride and sodium bicarbonate ingestion on the physical working capacity at the fatigue threshold. // Eur J Appl Physiol Occup Physiol. - 1991. - 62(3). - 189-192. - doi: 10.1007/BF00643740.

171. Howitz K.T., Bitterman K.J., Cohen H.Y., Lamming D.W., Lavu S., Wood J.G., Zipkin R.E., Chung P., Kisielewski A., Zhang L.L., Scherer B., Sinclair D.A. Small molecule activators of sirtuins extend Saccharomyces cerevisiae lifespan. // Nature. - 2003. - 425(6954).

- 191-196. - doi: 10.1038/nature01960.

172. H0ydal M.A., Wisl0ff U., Kemi O.J., Ellingsen O. Running speed and maximal oxygen uptake in rats and mice: practical implications for exercise training. // Eur J Cardiovasc Prev Rehabil. - 2007. - 14(6). - 753-760. - doi: 10.1097/HJR.0b013e3281eacef1.

173. Hu G., Bidel S., Jousilahti P., Antikainen R., Tuomilehto J. Coffee and tea consumption and the risk of Parkinson's disease. // Mov Disord. - 2007. - 22(15). - 2242-2248. - doi: 10.1002/mds.21706.

174. Huang C.C., Wang T., Tung Y.T., Lin W.T. Effect of exercise training on skeletal muscle SIRT1 and PGC-1a expression levels in rats of different age. // Int J Med Sci. - 2016. - 13. -260-270. - doi: 10.7150/ijms.14586.

175. Hultquist D.E., Passon P.G. Catalysis of methaemoglobin reduction by erythrocyte cytochrome B5 and cytochrome B5 reductase. // Nat New Biol. - 1971. - 229. - 252-254. -doi: 10.1038/newbio229252a0.

176. Hunter A.M., De Vito G., Bolger C., Mullany H., Galloway S.D. The effect of induced alkalosis and submaximal cycling on neuromuscular response during sustained isometric contraction. // J Sports Sci. - 2009. - 27(12). - 1261-1269. - doi: 10.1080/02640410903165077.

177. Ichinose T., Nomura S., Someya Y., Akimoto S., Tachiyashiki K., Imaizumi K. Effect of endurance training supplemented with green tea extract on substrate metabolism during exercise in humans. // Scand J Med Sci Sports. - 2011. - 21(4). - 598-605. - doi: 10.1111/j.1600-0838.2009.01077.x.

178. Iivonen H., Nurminen L., Harri M., Tanila H., Puolivali J. Hypothermia in mice tested in Morris water maze. // Behav Brain Res. - 2003. - 141(2). - 207-213. - doi: 10.1016/s0166-4328(02)00369-8.

179. Ikeda I., Kobayashi M., Hamada T., Tsuda K., Goto H., Imaizumi K., Nozawa A., Sugimoto A., Kakuda T. Heat-epimerized tea catechins rich in gallocatechin gallate and catechin gallate are more effective to inhibit cholesterol absorption than tea catechins rich in epigallocatechin gallate and epicatechin gallate. // J Agric Food Chem. - 2003. - 51(25). -7303-7307. - doi: 10.1021/jf034728l.

180. Incognito A.V., Burr J.F., Millar P.J. The Effects of Ischemic Preconditioning on Human Exercise Performance. // Sports Med. - 2016. - 46(4). - 531-544. - doi: 10.1007/s40279-015-0433-5.

181. Isbrucker R.A., Bausch J., Edwards J.A., Wolz E. Safety studies on epigallocatechin gallate (EGCG) preparations. Part 1: Genotoxicity. // Food Chem Toxicol. - 2006. - 44. - 626-635. -doi: 10.1016/j.fct.2005.07.005.

182. Ishizuk H., Eguchi H., Oda T., Ogawa S., Nakagawa K., Honjo S., Kono S. Relation of coffee, green tea, and caffeine intake to gallstone disease in middle-age Japanese men. // Eur J Epidemiol. - 2003. - 18. - 401-405. - doi: 10.1023/a:1024237927985.

183. Iwasaki M., Inoue M., Sasazuki S., Sawada N., Yamaji T., Shimazu T., Willett W.C., Tsugane S., Japan Public Health Center-Based Prospective Study Group. Green tea drinking and subsequent risk of breast cancer in a population-based cohort of Japanese women. // Breast Cancer Res. - 2010. - 12(5). - R88. - doi: 10.1186/bcr2756.

184. Iwatsuki Y., Kitamura K., Suzuki K. Shortened Lifespan of Red Blood Cells and the Effects of Erythropoietin in Rats with Nephrogenic Anemia. // Blood. - 2009. - 114. - 1977. -doi: 10.1182/blood.V114.22.1977.1977.

185. Jankun J., Skrzypczak-Jankun E. Binding site of amiloride to urokinase plasminogen activator depends on species. // Int J Mol Med. - 2001. - 8(4). - 365-371. - doi: 10.3892/ijmm.8.4.365.

186. Jatoi A., Ellison N., Burch P.A., Sloan J.A., Dakhil S.R., Novotny P., Tan W., Fitch T.R., Rowland K.M., Young C.Y., Flynn P.J. A phase II trial of green tea in the treatment of patients with androgen independent metastatic prostate carcinoma. // Cancer. - 2003. - 97. - 1442-1446.

- doi: 10.1002/cncr.11200.

187. Jensen F.B. Red blood cell pH, the Bohr effect, and other oxygenation-linked phenomena in blood O2 and CO2 transport. // Acta Physiol Scand. - 2004. - 182. - 215-227. - doi: 10.1111/j.1365-201X.2004.01361.x.

188. Johnson D.E., Casey J.R. Cytosolic H+ microdomain developed around AE1 during AE1-mediated Cl7HCO3- exchange. // J Physiol. - 2011. - 589. - 1551-1569. - doi: 10.1113/jphysiol.2010.201483.

189. Jowko E., Dlugol^cka B., Makaruk B., Cieslinski I. The effect of green tea extract supplementation on exercise-induced oxidative stress parameters in male sprinters. // Eur J Nutr. - 2015. -54(5). - 783-791. - doi: 10.1007/s00394-014-0757-1.

190. Jowko E., Plaszewski M., Cieslinski M., Sacewicz T., Cieslinski I., Jarocka M. The effect of low level laser irradiation on oxidative stress, muscle damage and function following neuromuscular electrical stimulation. A double blind, randomised, crossover trial. // BMC Sports Sci Med Rehabil. - 2019. - 11. - 38. - doi: 10.1186/s13102-019-0147-3.

191. Jowko E., Sacharuk J., Balasinska B., Ostaszewski P., Charmas M., Charmas R. Green tea extract supplementation gives protection against exercise-induced oxidative damage in healthy men. // Nutr Res. - 2011. - 31(11). - 813-821. - doi: 10.1016/j.nutres.2011.09.020.

192. Jowko E., Sacharuk J., Balasinska B., Wilczak J., Charmas M., Ostaszewski P., Charmas R. Effect of a single dose of green tea polyphenols on the blood markers of exercise-induced oxidative stress in soccer players. // Int J Sport Nutr Exerc Metab. - 2012. - 22(6). - 486-496.

- doi: 10.1123/ijsnem.22.6.486.

193. Kamei Y., Hatazawa Y., Uchitomi R., Yoshimura R., Miura S. Regulation of Skeletal Muscle Function by Amino Acids. // Nutrients. - 2020. - 12(1). - 261. - doi: 10.3390/nu12010261.

194. Kang C., Ji L.L. Role of PGC-1a signaling in skeletal muscle health and disease. // Ann N Y Acad Sci. - 2012. - 1271. - 110-117. - doi: 10.1111/j.1749-6632.2012.06738.x.

195. Kanwar J., Taskeen M., Mohammad I., Huo C., Chan T.H., Dou Q.P. Recent advances on tea polyphenols. // Front Biosci (Elite Ed). - 2012. - 4(1). - 111-131. - doi: 10.2741/363.

196. Kayar S.R., Hoppeler H., Jones J.H., Longworth K., Armstrong R.B., Laughlin M.H., Lindstedt S.L., Bicudo J.E., Groebe K., Taylor C.R., Weibel. E.R. Capillary blood transit time in muscles in relation to body size and aerobic capacity. // J Exp Biol. - 1994. - 194. - 69-81. - doi: 10.1242/jeb.194.1.69.

197. Kemi O.J., Haram P.M., Loennechen J.P., Osnes J.B., Skomedal T., Wisl0ff U., Ellingsen 0. Moderate vs. high exercise intensity: differential effects on aerobic fitness, cardiomyocyte contractility, and endothelial function. // Cardiovasc Res. - 2005. - 67(1). - 161-172. - doi: 10.1016/j.cardiores.2005.03.010.

198. Kenney W.L., Wilmore J.H., Costill D.L. Physiology of Sport and Exercise. / 7th Edition With Web Study Guide. - IL, USA: Human Kinetics, Inc., 2019. - 648 p. - ISBN: 9781492572299.

199. Khan N., Mukhtar H. Tea and health: studies in humans. // Curr Pharm Des. - 2013. -19(34). - 6141-6147. - doi: 10.2174/1381612811319340008.

200. Kiley J.P., Fedde M.R. Exercise hyperpnea in the duck without intrapulmonary chemoreceptor involvement. // Respir Physiol. - 1983. - 53(3). - 355-365. - doi: 10.1016/0034-5687(83)90125-1.

201. Kim JA., Formoso G., Li Y., Potenza M.A., Marasciulo F.L., Montagnani M., Quon M.J. Epigallocatechin gallate, a green tea polyphenol, mediates NO-dependent vasodilation using signaling pathways in vascular endothelium requiring reactive oxygen species and Fyn. // J Biol Chem. - 2007. - 282. - 13736-13745. - doi: 10.1074/jbc.M609725200.

202. Kim S., Lee M.J., Hong J., Li C., Smith T.J., Yang G.Y., Seril D.N., Yang C.S. Plasma and tissue levels of tea catechins in rats and mice during chronic consumption of green tea polyphenols. // Nutr Cancer. - 2000. - 37(1). - 41-48. - doi: 10.1207/S15327914NC3701_5.

203. Kingwell B.A. Nitric oxide-mediated metabolic regulation during exercise: Effects of training in health and cardiovascular disease. // FASEB J. - 2000. - 14. - 1685-1696. - doi: 10.1096/fj.99-0896rev.

204. Knight P.K., Rose R.J., Evans D.L., Cluer D., Henckel P., Saltin B. Metabolic responses to maximal intensity exercise in the racing camel. // Acta Physiol Scand Suppl. - 1994. - 617.

- 61-77.

205. Koch L.G., Britton S.L. Artificial selection for intrinsic aerobic endurance running capacity in rats. // Physiol Genomics. - 2001. - 5(1). - 45-52. - doi: 10.1152/physiolgenomics.2001.5.1.45.

206. Koch L.G., Britton S.L., Wisloff U. A rat model system to study complex disease risks, fitness, aging, and longevity. // Trends Cardiovasc Med. - 2012. - 22(2). - 29-34. - doi: 10.1016/j.tcm.2012.06.007.

207. Komatsu Y., Suematsu S., Hisanobu Y., Saigo H., Matsuda R., Hara K. Effects of pH and temperature on reaction kinetics of catechins in green tea infusion. // Biosci Biotechnol Biochem. - 1993. - 57. - 907-910. - doi: 10.1271/bbb.57.907.

208. Konhilas J.P., Maass A.H., Luckey S.W., Stauffer B.L., Olson E.N., Leinwand L A. Sex modifies exercise and cardiac adaptation in mice. // Am J Physiol Heart Circ Physiol. - 2004.

- 287(6). - H2768-H2776. - doi: 10.1152/ajpheart.00292.2004.

209. Korf E.A., Kudryavtsev I.V., Serebryakova M.K., Novozhilov A.V., Mindukshev I.V., Goncharov N.V. Ammonium Salts Promote Adaptive Changes of Rat Immune System to Ultimate Load in the Forced Swimming Model. // Bull Exp Biol Med. - 2021. - 170(6). - 714718. - doi: 10.1007/s10517-021-05139-x.

210. Korf E.A., Mindukshev I.V., Novozhilov A.V., Krivchenko A.I., Goncharov N.V. Ammonium Salts Increase Physical Performance and Reduce Blood Lactate Level in Rats in a Model of Forced Swimming. // Bull Exp Biol Med. - 2020. - 168(5). - 610-613. - doi: 10.1007/s 10517-020-04762-4.

211. Korf E.A., Novozhilov A.V., Mindukshev I.V., Glotov A.S., Kudryavtsev I.V., Baidyuk E.V., Dobrylko I.A., Voitenko N.G., Voronina P.A., Habeeb S., Ghanem A., Osinovskaya N.S., Serebryakova M.K., Krivorotov D.V., Jenkins R.O., Goncharov N.V. Testing Green Tea Extract and Ammonium Salts as Stimulants of Physical Performance in a Forced Swimming Rat Experimental Model. // Int J Mol Sci. - 2024. - 25(19). - 10438. - doi: 10.3390/ijms251910438.

212. Kregel K.C. Resource Book for the design of animal exercise protocols. / Kregel K.C., Allen D.L., Booth F.W., Fleshner M.R., Henriksen E.J., Musch T.I., O'Leary D.S., Parks C.M., Poole D C., Ra'anan A.W., Sheriff D.D., Sturek M.S., Toth L A. MA, USA: American Physiological Society (APS), Bethesda, 2006. - 152 p.

213. Kruk J., Aboul-Enein B.H., Duchnik E., Marchlewicz M. Antioxidative properties of phenolic compounds and their effect on oxidative stress induced by severe physical exercise. // J Physiol Sci. - 2022. - 72(1). - 19. - doi: 10.1186/s12576-022-00845-1.

214. Kubik A.K., Zatloukal P., Tomasek L., Pauk N., Havel L., Krepela E., Petruzelka L. Dietary habits and lung cancer risk among non-smoking women. // Eur J Cancer Prev. - 2004. - 13. - 471-480. - doi: 10.1097/00008469-200412000-00002.

215. Kuga G.K., Gaspar R.C., Muñoz V.R., Nakandakari S.C.B.R., Breda L., Sandoval B.M., Caetano F.H., Leme J.A.C.A., Pauli J.R., Gomes R.J. Physical training reverses changes in hepatic mitochondrial diameter of Alloxan-induced diabetic rats. // Einstein (Sao Paulo). -2018. - 16(3). - eAO4353. - doi: 10.1590/S1679-45082018A04353.

216. Kumar D., Kasukurti P., Murthy S. Erythrocytes and Platelets: A Critical Analysis of their Ontogenic Relationship through Automated Parameters. // J Clin Diagn Res. - 2017. - 11. -EC05-BC08. - doi: 10.7860/JCDR/2017/25153.9807.

217. Kumar D., Rizvi S.I. Markers of oxidative stress in senescent erythrocytes obtained from young and old age rats. // Rejuven Res. - 2014. - 17. - 446-452. - doi: 10.1089/rej.2014.1573.

218. Kumar N., Kant R., Maurya P.K., Rizvi S.I. Concentration dependent effect of (-)-Epicatechin on Na+/K+-ATPase and Ca2+-ATPase inhibition induced by free radicals in hypertensive patients: Comparison with L-ascorbic acid. // Phytother Res. - 2012. - 26. - 16441647. - doi: 10.1002/ptr.4624.

219. Kuo Y.C., Lin J.C., Bernard J.R., Liao Y.H. Green tea extract supplementation does not hamper endurance training adaptation but improves antioxidant capacity in sedentary men. // Appl Physiol Nutr Metab. - 2015. - 40. - 990-996. - doi: 10.1139/apnm-2014-0538.

220. Kurahashi N., Sasazuki S., Iwasaki M., Inoue M., Tsugane S. Green tea consumption and prostate cancer risk in Japanese men: a prospective study. // Am J Epidemiol. -2008. - 167. -71-77. - doi: 10.1093/aje/kwm249.

221. Kurtz J.A., VanDusseldorp T.A., Doyle J.A., Otis J.S. Taurine in sports and exercise. // J Int Soc Sports Nutr. - 2021. - 18(1). - 39. - doi: 10.1186/s12970-021-00438-0.

222. Kwon I., Kim K.S., Lee Y. Relationships between endurance exercise training-induced muscle fiber-type shifting and autophagy in slow- and fast-twitch skeletal muscles of mice. // Phys Act Nutr. - 2024. - 28. - 23-34. -doi: 10.20463/pan.2024.0013.

223. Lai C.C., Tang C.Y., Fu S.K., Tseng W.C., Tseng K.W. Effects of swimming training on myocardial protection in rats. // Biomed Rep. - 2022. - 16(3). - 19. - doi: 10.3892/br.2022.1502.

224. Larson L., Lioy J., Johnson J., Medler S. Transitional Hybrid Skeletal Muscle Fibers in Rat Soleus Development. // J Histochem Cytochem. - 2019. - 67. - 891-900. - doi: 10.1369/0022155419876421.

225. Laughlin M.H., Mohrman S.J., Armstrong R.B. Muscular blood flow distribution patterns in the hindlimb of swimming rats. // Am J Physiol. - 1984. - 246(3 Pt 2). - H398-H403. - doi: 10.1152/ajpheart.1984.246.3.H398.

226. Laurent X., Bertin B., Renault N., Farce A., Speca S., Milhomme O., Millet R., Desreumaux P., Henon E., Chavatte P. Switching invariant natural killer T (iNKT) cell response from anticancerous to anti-inflammatory effect: Molecular bases. // J Med Chem. - 2014. - 57. - 5489-5508. - doi: 10.1021/jm4010863.

227. Lee M.J., Maliakal P., Chen L., Meng X., Bondoc F.Y., Prabhu S., Lambert G., Mohr S., Yang C.S. Pharmacokinetics of tea catechins after ingestion of green tea and (-)-epigallocatechin-3-gallate by humans: Formation of different metabolites and individual variability. // Cancer Epidemiol Biomark Prev. - 2002. - 11. - 1025-1032.

228. Lee M.S., Kim C.T., Kim Y. Green tea ( )-epigallocatechin-3-gallate reduces body weight with regulation of multiple genes expression in adipose tissue of dietinduced obese mice. // Ann Nutr Metab. - 2009. - 54. - 151-157. - doi: 10.1159/000214834.

229. Leff J A., Oppegard M.A., Curiel T.J., Brown K.S., Schooley R.T., Repine J.E. Progressive increases in serum catalase activity in advancing human immunodeficiency virus infection. // Free Radic Biol Med. - 1992. - 13. - 143-149. - doi: 10.1016/0891-5849(92)90076-s.

230. Leone M., Zhai D., Sareth S., Kitada S., Reed J.C., Pellecchia M. Cancer prevention by tea polyphenols is linked to their direct inhibition of antiapoptotic Bcl-2-family proteins. // Cancer Res. - 2003. - 63(23). - 8118-8121.

231. Li C., Du X., Shen Z., Wei Y., Wang Y., Han X., Jin H., Zhang C., Li M., Zhang Z., Wang S., Zhang D., Sun G. The Critical and Diverse Roles of CD4-CD8- Double Negative T Cells in Nonalcoholic Fatty Liver Disease. // Cell Mol Gastroenterol Hepatol. - 2022. - 13(6). - 18051827. - doi: 10.1016/j.jcmgh.2022.02.019.

232. Li G., Xu K., Xing W., Yang H., Li Y., Wang X., Zhou J., An J., Dong L., Zhang X., Wang L., Li J., Gao F. Swimming Exercise Alleviates Endothelial Mitochondrial Fragmentation via Inhibiting Dynamin-Related Protein-1 to Improve Vascular Function in Hypertension. // Hypertension. - 2022. - 79(10). - e116-e128. - doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.122.19126.

233. Li S., Qian X., Gong J., Chen J., Tu W., Chen X., Chu M., Yang G., Li L., Jiang S. Exercise Training Reverses Lipotoxicity-induced Cardiomyopathy by Inhibiting HMGCS2. // Med Sci Sports Exerc. - 2021. - 53(1). - 47-57. - doi: 10.1249/MSS.0000000000002453.

234. Li T.G., Shui L., Ge D.Y., Pu R., Bai S.M., Lu J., Chen Y.S. Moxibustion Reduces Inflammatory Response in the Hippocampus of a Chronic Exercise-Induced Fatigue Rat. // Front Integr Neurosci. - 2019. - 13. - 48. - doi: 10.3389/fnint.2019.00048.

235. Lim K., Ryu S., Suh H., Ishihara K., Fushiki T. (-)-Hydroxycitrate ingestion and endurance exercise performance. // J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo). - 2005. - 51(1). - 1-7. - doi: 10.3177/jnsv.51.1.

236. Lima A.A., Gobatto C.A., Messias L.H.D., Scariot P.P.M., Forte L.D.M., Santin J.O., Manchado-Gobatto F.D.B. Two water environment adaptation models enhance motor behavior and improve the success of the lactate minimum test in swimming rats. // Motriz Rev Educ Fis.

- 201723. - e101607. - doi: 10.1590/s1980-6574201700si0009.

237. Lima F.D., Stamm D.N., Della-Pace I.D., Dobrachinski F., de Carvalho N.R., Royes L.F., Soares F.A., Rocha J.B., González-Gallego J., Bresciani G. Swimming training induces liver mitochondrial adaptations to oxidative stress in rats submitted to repeated exhaustive swimming bouts. // PLoS One. - 2013. - 8(2). - e55668. - doi: 10.1371/journal.pone.0055668.

238. Lima W.G., Martins-Santos M.E., Chaves V.E. Uric acid as a modulator of glucose and lipid metabolism. // Biochimie. - 2015. - 116. - 17-23. - doi: 10.1016/j.biochi.2015.06.025.

239. Limmer M., de Marées M., Platen P. Effects of daily ingestion of sodium bicarbonate on acid-base status and anaerobic performance during an altitude sojourn at high altitude: a randomized controlled trial. // J Int Soc Sports Nutr. - 2020a. - 17(1). - 22. - doi: 10.1186/s12970-020-00351-y.

240. Limmer M., Sonntag J., de Marées M., Platen P. Effects of an Alkalizing or Acidizing Diet on High-Intensity Exercise Performance under Normoxic and Hypoxic Conditions in Physically Active Adults: A Randomized, Crossover Trial. // Nutrients. - 2020b. - 12(3). - 688.

- doi: 10.3390/nu12030688.

241. Lin D., Nussbaum M.A., Seol H., Singh N.B., Madigan M.L., Wojcik L A. Acute effects of localized muscle fatigue on postural control and patterns of recovery during upright stance: Influence of fatigue location and age. // Eur J Appl Physiol. - 2009. - 106. - 425-434. - doi: 10.1007/s00421 -009-1026-5.

242. Lin H., Zhang X., Liu J., Yuan L., Liu J., Wang C., Sun J., Chen J., Jing S., Li H. Schisantherin A improves learning and memory abilities partly through regulating the Nrf2/Keap1/ARE signaling pathway in chronic fatigue mice. // Exp Ther Med. - 2021. - 21(4).

- 385. - doi: 10.3892/etm.2021.9816.

243. Lin S.P., Li C.Y., Suzuki K., Chang C.K., Chou K.M., Fang S.H. Green tea consumption after intense taekwondo training enhances salivary defense factors and antibacterial capacity. // PLoS ONE - 2014. - 9. - e87580. - doi: 10.1371/journal.pone.0087580.

244. Lintz J.A., Dalio M.B., Joviliano E.E., Piccinato C.E. Ischemic pre and postconditioning in skeletal muscle injury produced by ischemia and reperfusion in rats. // Acta Cir Bras. - 2013. - 28(6). - 441-446. - doi: 10.1590/s0102-86502013000600007.

245. Liu J.L., Kulakofsky J., Zucker I.H. Exercise training enhances baroreflex control of heart rate by a vagal mechanism in rabbits with heart failure. // J Appl Physiol (1985). - 2002. -92(6). - 2403-2408. - doi: 10.1152/japplphysiol.00039.2002.

246. Liu L., Fu Q., Zhang D., Chen D., Wang F., Guo R., Xie X., Jiang Z., Yu J., Li Y. Analysis of Mean Corpuscular Volume and Red Cell Distribution Width in Patients with Aplastic Anemia. // Hemoglobin. - 2023. - 47. - 31-35. - doi: 10.1080/03630269.2023.2206575.

247. Liu L., Wu X., Zhang B., Yang W., Li D., Dong Y., Yin Y., Chen Q. Protective effects of tea polyphenols on exhaustive exercise-induced fatigue, inflammation and tissue damage. // Food Nutr Res. - 2017. - 61(1). - 1333390. - doi: 10.1080/16546628.2017.1333390.

248. Liu S.M., Ou S.Y., Huang H.H. Green tea polyphenols induce cell death in breast cancer MCF-7 cells through induction of cell cycle arrest and mitochondrial-mediated apoptosis. // Univ Sci B. - 2017. - 18. - 89-98. - doi: 10.1631/jzus.B1600022.

249. Liu W., Xue X., Xia J., Liu J., Qi Z. Swimming exercise reverses CUMS-induced changes in depression-like behaviors and hippocampal plasticity-related proteins. // J Affect Disord. -2018. - 227. - 126-135. - doi: 10.1016/j.jad.2017.10.019.

250. Liu X., Xiao J., Zhu H., Wei X., Platt C., Damilano F., Xiao C., Bezzerides V., Bostrom P., Che L., Zhang C., Spiegelman B.M., Rosenzweig A. miR-222 is necessary for exercise-induced cardiac growth and protects against pathological cardiac remodeling. // Cell Metab. -2015. - 21(4). - 584-595. - doi: 10.1016/j.cmet.2015.02.014.

251. Liu Y., Lange R., Langanky J., Hamma T., Yang B., Steinacker J.M. Improved training tolerance by supplementation with a-Keto acids in untrained young adults: a randomized, double blind, placebo-controlled trial. // J Int Soc Sports Nutr. - 2012. - 9(1). - 37. - doi: 10.1186/1550-2783-9-37.

252. Llaha F., Zamora-Ros R. The Effects of Polyphenol Supplementation in Addition to Calorie Restricted Diets and/or Physical Activity on Body Composition Parameters: A Systematic Review of Randomized Trials. // Front Nutr. - 2020. - 7. - 84. - doi: 10.3389/fnut.2020.00084.

253. Lowe D.A., Alway S.E. Animal models for inducing muscle hypertrophy: are they relevant for clinical applications in humans? // J Orthop Sports Phys Ther. - 2002. - 32(2). - 36-43. -doi: 10.2519/jospt.2002.32.2.36.

254. Luczaj W., Zapora E., Szczepanski M., Wnuczko K., Skrzydlewska E. Polyphenols action against oxidative stress formation in endothelial cells. // Acta Pol Pharm. - 2009. - 66(6). -617-624.

255. Ma W., Lee K.H., Yang S., Irving T.C., Craig R. Lattice arrangement of myosin filaments correlates with fiber type in rat skeletal muscle. // J Gen Physiol. - 2019. - 151. - 1404-1412.

- doi:10.1085/jgp.201912460.

256. Machado A.S., da Silva W., Souza M.A., Carpes F.P. Green tea extract preserves neuromuscular activation and muscle damage markers in athletes under cumulative fatigue. // Front Physiol. - 2018. - 9. - 1137. - doi: 10.3389/fphys.2018.01137.

257. Maciejewski H., Bourdin M., Feasson L., Dubouchaud H., Denis C., Freund H., Messonnier L.A. Muscle MCT4 content is correlated with the lactate removal ability during recovery following all-out supramaximal exercise in highly-trained rowers. // Front Physiol. -2016. - 7. - 223. - doi: 10.3389/fphys.2016.00223.

258. Maevsky E.I. Biochemical effects and mechanism of action in succinate-containing substances for improving working capacity and recovery after loading. // Cardiometry. - 2019.

- 15. - 303-331.

259. Maevsky E.I., Vasilieva A.A., Grishina E.V., Uchitel M.L., Bogdanova L.A., Kozhurin M.V. The metabolism rationale for applying of succinate-based compositions to maintain high performance in a human organism. // Cardiometry - 2020. - 16. - 15-25.

260. Maheshwari N., Qasim N., Anjum R., Mahmood R. Fluoride enhances generation of reactive oxygen and nitrogen species, oxidizes hemoglobin, lowers antioxidant power and inhibits transmembrane electron transport in isolated human red blood cells. // Ecotoxicol Environ Saf. - 2021. - 208. - 111611. - doi: 10.1016/j.ecoenv.2020.111611.

261. Mairbaurl H. Red blood cells in sports: Effects of exercise and training on oxygen supply by red blood cells. // Front Physiol. - 2013. - 4. - 332. - doi: 10.3389/fphys.2013.00332.

262. Malaguti M., Angeloni C., Hrelia S. Polyphenols in exercise performance and prevention of exercise-induced muscle damage. // Oxid Med Cell Longev. - 2013. - 2013. - 825928. -doi: 10.1155/2013/825928.

263. Malavolta M., Bracci M., Santarelli L., Sayeed M.A., Pierpaoli E., Giacconi R., Costarelli L., Piacenza F., Basso A., Cardelli M., Provinciali M. Inducers of Senescence, Toxic Compounds, and Senolytics: The Multiple Faces of Nrf2-Activating Phytochemicals in Cancer Adjuvant Therapy. // Mediators Inflamm. - 2018. - 2018. - 4159013. - doi: 10.1155/2018/4159013.

264. Manore M.M. Effect of physical activity on thiamine, riboflavin, and vitamin B-6 requirements. // Am J Clin Nutr. - 2000. - 72. - 598S-606S. - doi: 10.1093/ajcn/72.2.598S.

138

265. Mariño M.M., Grijota F.J., Bartolomé I., Siquier-Coll J., Román V.T., Muñoz D. Influence of physical training on erythrocyte concentrations of iron, phosphorus and magnesium. // J Int Soc Sports Nutr. - 2020. - 17. - 8. - doi: 10.1186/s12970-020-0339-y.

266. Marocolo M., Billaut F., da Mota G.R. Ischemic Preconditioning and Exercise Performance: An Ergogenic Aid for Whom? // Front Physiol. - 2018. - 9. - 1874. - doi: 10.3389/fphys.2018.01874.

267. Marocolo M., Hohl R., Arriel R.A., Mota G.R. Ischemic preconditioning and exercise performance: are the psychophysiological responses underestimated? // Eur J Appl Physiol. -2023. -123(4). - 683-693. - doi: 10.1007/s00421-022-05109-9.

268. Marocolo M., Simim M.A.M., Bernardino A., Monteiro I.R., Patterson S.D., da Mota G.R. Ischemic preconditioning and exercise performance: shedding light through smallest worthwhile change. // Eur J Appl Physiol. - 2019. - 119(10). - 2123-2149. - doi: 10.1007/s00421 -019-04214-6.

269. Marriott M., Krustrup P., Mohr M. Ergogenic effects of caffeine and sodium bicarbonate supplementation on intermittent exercise performance preceded by intense arm cranking exercise. // J Int Soc Sports Nutr. - 2015. - 12. - 13. - doi: 10.1186/s12970-015-0075-x.

270. Masek A., Chrzescijanska E., Latos M., Zaborski M., Podsedek A. Antioxidant and antiradical properties of green tea extract compounds. // Int J Electrochem Sci. - 2017. - 12. -6600-6610. - doi: 10.20964/2017.07.06.

271. Maslova M.N., Kazennov A.M., Katiukhin L.N., Novozhilov A.V., Skverchinskaia E.A., Tavrovskaia T.V. Changes of physiological and biochemical characteristics of rat erythrocytes after blood loss. // Zh Evol Biokhim Fiziol. - 2007. - 43(5). - 414-418.

272. Mason S.A., Trewin A.J., Parker L., Wadley G.D. Antioxidant supplements and endurance exercise: Current evidence and mechanistic insights. // Redox Biol. - 2020. - 35. - 101471. -doi: 10.1016/j.redox.2020.101471.

273. Massett M.P., Matejka C., Kim H. Systematic Review and Meta-Analysis of Endurance Exercise Training Protocols for Mice. // Front Physiol. - 2021. - 12. - 782695. - doi: 10.3389/fphys.2021.782695.

274. Matteucci E., Giampietro O. Electron Pathways through Erythrocyte Plasma Membrane in Human Physiology and Pathology: Potential Redox Biomarker? // Biomark Insights. - 2007. -2. - 321-329.

275. McArdle W.D., Montoye H.J. Reliability of exhaustive swimming in the laboratory rat. // J Appl Physiol. - 1966. - 21(4). - 1431-1434. - doi: 10.1152/jappl.1966.21.4.1431.

276. McKay D.L., Blumberg J.B: The role of tea in human health: An update. // J Am Coll Nutr. - 2002. - 21. - 1-13. - doi: 10.1080/07315724.2002.10719187.

277. McMullen J.R., Shioi T., Huang W.Y., Zhang L., Tarnavski O., Bisping E., Schinke M., Kong S., Sherwood M.C., Brown J., Riggi L., Kang P.M., Izumo S. The insulin-like growth factor 1 receptor induces physiological heart growth via the phosphoinositide 3-kinase(p110alpha) pathway. // J Biol Chem. - 2004. - 279(6). - 4782-4793. - doi: 10.1074/jbc.M310405200.

278. Melo S.F.S., da Silva Júnior N.D., Barauna V.G., Oliveira E.M. Cardiovascular Adaptations Induced by Resistance Training in Animal Models. // Int J Med Sci. - 2018. -15(4). - 403-410. - doi: 10.7150/ijms.23150.

279. Merton P.A. Voluntary strength and fatigue. // J Physiol. - 1954. - 123(3). - 553-564. -doi: 10.1113/jphysiol.1954.sp005070.

280. Mikkelsen U., Couppé C., Karlsen A., Grosset J., Schjerling P., Mackey A., Klausen H., Magnusson S., Kj^r M. Life-long endurance exercise in humans: Circulating levels of inflammatory markers and leg muscle size. // Mech Ageing Dev. - 2013. - 134. - 531-540. -doi: 10.1016/j.mad.2013.11.004.

281. Miller P., Robinson A.L., Sparks S.A., Bridge C.A., Bentley D.J., McNaughton L.R. The Effects of Novel Ingestion of Sodium Bicarbonate on Repeated Sprint Ability. // J Strength Cond Res. - 2016. - 30(2). - 561-568. - doi: 10.1519/JSC.0000000000001126.

282. Min S.Y., Yang H., Seo S.G., Shin S.H., Chung M.Y., Kim J., Lee S.J., Lee H.J., Lee K.W. Cocoa polyphenols suppress adipogenesis in vitro and obesity in vivo by targeting insulin receptor. // Int J Obes. - 2013. - 37. - 584-592. - doi: 10.1038/ijo.2012.85.

283. Mindukshev I., Sudnitsyna J., Goncharov N.V., Skverchinskaya E., Dobrylko I., Nikitina E., Krivchenko A.I., Gambaryan S. Low-Dose Ammonium Preconditioning Enhances Endurance in Submaximal Physical Exercises. // Sports (Basel). - 2021. - 9(2). - 29. doi: 10.3390/sports9020029.

284. Moatamedi Pour L., Farahnak A., Molaei Rad M., Golmohamadi T., Eshraghian M. Activity Assay of Glutathione S-Transferase (GSTs) Enzyme as a Diagnostic Biomarker for Liver Hydatid Cyst in Vitro. // Iran J Public Health. - 2014. - 43. - 994-999.

285. Mohammadi-Sartang M., Mazloom Z., Sherafatmanesh S., Ghorbani M., Firoozi D. Effects of supplementation with quercetin on plasma C-reactive protein concentrations: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. // Eur J Clin Nutr. - 2017. - 71(9). -1033-1039. - doi: 10.1038/ejcn.2017.55.

286. da Mota G.R., Marocolo M. The Effects of Ischemic Preconditioning on Human Exercise Performance: A Counterpoint. // Sports Med. - 2016. - 46(10). - 1575-1576. - doi: 10.1007/s40279-016-0595-9.

287. Murase T., Haramizu S., Shimotoyodome A., Nagasawa A., Tokimitsu I. Green tea extract improves endurance capacity and increases muscle lipid oxidation in mice. // Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. - 2005. - 288. - R708-R715. - doi: 10.1152/ajpregu.00693.2004.

288. Murase T., Haramizu S., Shimotoyodome A., Tokimitsu I., Hase T. Green tea extract improves running endurance in mice by stimulating lipid utilization during exercise. // Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. - 2006. - 290. - R1550-R1556. - doi: 10.1152/ajpregu.00752.2005.

289. Murase T., Misawa K., Haramizu S., Hase T. Catechin-induced activation of the LKB1/AMP-activated protein kinase pathway. // Biochem Pharmacol. - 2009. - 1. - 78-84. -doi: 10.1016/j.bcp.2009.03.021.

290. Murase T., Nagasawa A., Suzuki J., Hase T., Tokimitsu I. Beneficial effects of tea catechins on dietinduced obesity: stimulation of lipid catabolism in the liver. // Int J Obes Relat Metab Disord. - 2002. - 26. - 1459-1464. - doi: 10.1038/sj.ijo.0802141.

291. Musial C., Kuban-Jankowska A., Gorska-Ponikowska M. Beneficial Properties of Green Tea Catechins. // Int J Mol Sci. - 2020. - 21(5). - 1744. - doi: 10.3390/ijms21051744.

292. Nabilpour M., Zouita A., Mayhew J., Mohammad Rahimi G.R., Alikhajeh Y., Taheri M., Irandoust K., Youzbashi L., Granacher U., Zouhal H. Acute effects of sodium citrate supplementation on competitive performance and lactate level of elite fitness challenge athletes: A crossover, placebo-controlled, double-blind study. // J Exerc Sci Fit. - 2024. -22(2). - 140144. - doi: 10.1016/j.jesf.2024.02.001.

293. Nasledov G.A., Katina I.E., Zhitnikova Y.V. Changes in the functioning of the electromechanical connection during tetanic contraction. // Neurosci Behav Physiol. - 2007. -37. - 153-159. - doi: 10.1007/s11055-007-0163-8.

294. National Research Council (US) Committee on Guidelines for the Use of Animals in Neuroscience and Behavioral Research. Guidelines for the Care and Use of Mammals in Neuroscience and Behavioral Research. / Washington (DC), USA: National Academies Press (US), 2003.

295. Natsume M., Osakabe N., Oyama M., Sasaki M., Baba S., Nakamura Y., Osawa T., Terao J. Structures of (-)-epicatechin glucuronide identified from plasma and urine after oral ingestion of (-)-epicatechin: differences between human and rat. // Free Radic Biol Med. - 2003. - 34. -840-849. - doi: 10.1016/S0891-5849(02)01434-X.

296. Navarro F., Bacurau A.V., Pereira G.B., Araujo R.C., Almeida S.S., Moraes M.R., Uchida M.C., Costa Rosa L.F., Navalta J., Prestes J., Bacurau R.F. Moderate exercise increases the metabolism and immune function of lymphocytes in rats. // Eur J Appl Physiol. - 2013. - 113. - 1343-1352. - doi: 10.1007/s00421-012-2554-y.

297. Negah S.S., Ghazavi H., Vafaee F., Rashidi R., Aminian A.R., Forouzanfar F. The Potential Role of Green Tea and its Main Constituent (Epigallocatechin -3-Gallate) in Pain Relief: A Mechanistic Review. // Curr Drug Discov Technol. - 2021. - 18(6). - e130921189586. - doi: 10.2174/1570163817666201229121033.

298. Nguyen M.M., Ahmann F.R., Nagle R.B., Hsu C.H., Tangrea J.A., Parnes H.L., Sokoloff M.H., Gretzer M.B., Chow H.H. Randomized, double-blind, placebo-controlled trial of polyphenon E in prostate cancer patients before prostatectomy: evaluation of potential chemopreventive activities. // Cancer Prev Res (Phila). - 2012. - 5. - 290-298. - doi: 10.1158/1940-6207.CAPR-11-0306.

299. Nicastro H., Zanchi N.E., da Luz C.R., Chaves D.F., Lancha A.H. Jr. An experimental model for resistance exercise in rodents. // J Biomed Biotechnol. - 2012. - 2012. - 457065. -doi: 10.1155/2012/457065.

300. Nicastro H., Zanchi N.E., da Luz C.R., Lancha A.H. Jr. Functional and morphological effects of resistance exercise on disuse-induced skeletal muscle atrophy. // Braz J Med Biol Res. - 2011. - 44(11). - 1070-1079. - doi: 10.1590/s0100-879x2011007500125.

301. Nielsen M.S., Weber R.E. Antagonistic interaction between oxygenation-linked lactate and CO2 binding to human hemoglobin. // Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. - 2007.

- 146. - 429-434. - doi: 10.1016/j.cbpa.2006.12.004.

302. Nieri V., de Souza J.F., Segato T.C.M., Caetano É.L.A., Leite F.G., Chaud M.V., Grotto D. Effects of Green Tea and Green Tea Incorporated in Nanoparticle Lyotropic Liquid Crystal on Exercise Adaptations: A High-Intensity Interval Training Pre-Clinical Study. // Nutrients. -2022. - 14(15). - 3226. doi: 10.3390/nu14153226.

303. Nikawa T., Ulla A., Sakakibara I. Polyphenols and Their Effects on Muscle Atrophy and Muscle Health. // Molecules. - 2021. - 26(16). - 4887. - doi: 10.3390/molecules26164887.

304. Nikinmaa M. Haemoglobin function in vertebrates: Evolutionary changes in cellular regulation in hypoxia. // Respir Physiol. - 2001. - 128. - 317-329. - doi: 10.1016/s0034-5687(01)00309-7.

305. Nobari H., Saedmocheshi S., Chung L.H., Suzuki K., Maynar-Mariño M., Pérez-Gómez J. An Overview on How Exercise with Green Tea Consumption Can Prevent the Production of Reactive Oxygen Species and Improve Sports Performance. // Int J Environ Res Public Health.

- 2021. - 19(1). - 218. - doi: 10.3390/ijerph19010218.

306. Nonato L.F., Rocha-Vieira E., Tossige-Gomes R., Soares A.A., Soares B.A., Freitas D.A., Oliveira M.X., Mendoza V.A., Lacerda A.C., Massensini A.R., Leite H.R. Swimming training attenuates oxidative damage and increases enzymatic but not non-enzymatic antioxidant

defenses in the rat brain. // Braz J Med Biol Res. - 2016. - 49(10). - e5310. - doi: 10.1590/1414-431X20165310.

307. Notomi T., Lee S.J., Okimoto N., Okazaki Y., Takamoto T., Nakamura T., Suzuki M. Effects of resistance exercise training on mass, strength, and turnover of bone in growing rats. // Eur J Appl Physiol. - 2000. - 82(4). - 268-274. - doi: 10.1007/s004210000195.

308. Novozhilov A.V., Mindukshev I.V., Korf E.A., Krivchenko A.I., Goncharov N.V. Ammonium Salts Promote Functional Adaptation of Rat Erythrocytes on the Model of Forced Swimming. // Bull Exp Biol Med. - 2020. - 168(4). - 444-448. - doi: 10.1007/s10517-020-04728-6.

309. Novozhilov A.V., Tavrovskaya T.V., Voitenko N.G., Maslova M.N., Goncharov N.V., Morozov V.I. Efficacy of green tea extract in two exercise models. // Bull Exp Biol Med. -2015. - 158(3). - 342-345. - doi: 10.1007/s10517-015-2757-4.

310. Ogasawara Y., Funakoshi M., Ishii K. Glucose metabolism is accelerated by exposure to t-butylhydroperoxide during NADH consumption in human erythrocytes. // Blood Cells Mol Dis. - 2008. - 41. - 237-243. - doi: 10.1016/j.bcmd.2008.05.007.

311. Ogunleye A.A., Xue F., Michels K.B. Green tea consumption and breast cancer risk or recurrence: a meta-analysis. // Breast Cancer Res Treat. - 2010. - 119(2). - 477-484. - doi: 10.1007/s 10549-009-0415-0.

312. Okabe S., Ochiai Y., Aida M., Park K., Kim S.J., Nomura T., Suganuma M., Fujiki H. Mechanistic aspects of green tea as a cancer preventive: effect of components on human stomach cancer cell lines. // Jpn J Cancer Res. - 1999. - 90(7). - 733-739. - doi: 10.1111/j.1349-7006.1999.tb00808.x.

313. Okushio K., Suzuki M., Matsumoto N., Nanjo F., Hara Y. Identification of (-)-epicatechin metabolites and their metabolic fate in the rat. // Drug Metab Dispos. - 1999. - 27(2). - 309316.

314. de Oliveira L.F., Dolan E., Swinton P.A., Durkalec-Michalski K., Artioli G.G., McNaughton L.R., Saunders B. Extracellular Buffering Supplements to Improve Exercise Capacity and Performance: A Comprehensive Systematic Review and Meta-analysis. // Sports Med. - 2022. - 52(3). - 505-526. - doi: 10.1007/s40279-021-01575-x.

315. Opitz D., Lenzen E., Opiolka A., Redmann M., Hellmich M., Bloch W., Brixius K., Brinkmann C. Endurance training alters basal erythrocyte MCT-1 contents and affects the lactate distribution between plasma and red blood cells in T2DM men following maximal exercise. // Can J Physiol Pharmacol. - 2015. - 93. - 413-419. - doi: 10.1139/cjpp-2014-0467.

316. Ota N., Soga S., Haramizu S., Yokoi Y., Hase T., Murase T. Tea catechins prevent contractile dysfunction in unloaded murine soleus muscle: a pilot study. // Nutrition. - 2011. -27(9). - 955-959. - doi: 10.1016/j.nut.2010.10.008.

317. Ozan M., Buzdagli Y., Eyipinar C.D., Baygutalp N.K., Yüce N., Oget F., Kan E., Baygutalp F. Does Single or Combined Caffeine and Taurine Supplementation Improve Athletic and Cognitive Performance without Affecting Fatigue Level in Elite Boxers? A Double-Blind, Placebo-Controlled Study. // Nutrients. - 2022. - 14(20). - 4399. - doi: 10.3390/nu14204399.

318. Ozturk N., Olgar Y., Er H., Kucuk M., Özdemir S. Swimming exercise reverses aging-related contractile abnormalities of female heart by improving structural alterations. // Cardiol J. - 2017. - 24(1). - 85-93. - doi: 10.5603/CJ.a2016.0069.

319. Özyurt H., Luna C., Estevez M. Redox chemistry of the molecular interactions between tea catechins and human serum proteins under simulated hyperglycemic conditions. // Food Funct.

- 2016. - 7. - 1390-1400. - doi: 10.1039/C5FÖ01525A.

320. Page L.K., Jeffries O., Waldron M. Acute taurine supplementation enhances thermoregulation and endurance cycling performance in the heat. // Eur J Sport Sci. - 2019. -19(8). - 1101-1109. - doi: 10.1080/17461391.2019.1578417.

321. Pallotti F., Bergamini C., Lamperti C., Fato R. The Roles of Coenzyme Q in Disease: Direct and Indirect Involvement in Cellular Functions. // Int J Mol Sci. - 2021. - 23. - 128. doi: 10.3390/ijms23010128.

322. Palmowski J., Reichel T., Boßlau T.K., Krüger K. The effect of acute running and cycling exercise on T cell apoptosis in humans: A systematic review. // Scand J Immunol. - 2020. - 91.

- e12834. - doi: 10.1111/sji.12834.

323. Palstra A.P., Rovira M., Rizo-Roca D., Torrella J.R., Spaink H.P., Planas J.V. Swimming-induced exercise promotes hypertrophy and vascularization of fast skeletal muscle fibres and activation of myogenic and angiogenic transcriptional programs in adult zebrafish. // BMC Genomics. - 2014. - 15(1). - 1136. - doi: 10.1186/1471-2164-15-1136.

324. Panza V.S.P., Wazlawik E., Schütz G.R., Comin L., Hecht K.C., da Silva EL. Consumption of green tea favorably affects oxidative stress markers in weight-trained men. // Nutrition. - 2008. - 24(5). - 433-442. - doi: 10.1016/j.nut.2008.01.009.

325. Passon P.G., Reed D.W., Hultquist D.E. Soluble cytochrome b5 from human erythrocytes. // Biochim Biophys Acta Bioenergy. - 1972. - 275. - 51-61. - doi: 10.1016/0005-2728(72)90024-2.

326. Patel S.S., Molnar M.Z., Tayek J.A., Ix J.H., Noori N., Benner D., Heymsfield S., Kopple J.D., Kovesdy C.P., Kalantar-Zadeh K. Serum creatinine as a marker of muscle mass in chronic

144

kidney disease: Results of a cross-sectional study and review of literature. // J Cachexia Sarcopenia Muscle. - 2013. - 4. - 19-29. - doi: 10.1007/s13539-012-0079-1.

327. Peart D.J., Siegler J.C., Vince R.V. Practical recommendations for coaches and athletes: a meta-analysis of sodium bicarbonate use for athletic performance. // J Strength Cond Res. -2012. - 26(7). - 1975-1983. - doi: 10.1519/JSC.0b013e3182576f3d.

328. Pellegrin M., Miguet-Alfonsi C., Bouzourene K., Aubert J.F., Deckert V., Berthelot A., Mazzolai L., Laurant P. Long-term exercise stabilizes atherosclerotic plaque in ApoE knockout mice. // Med Sci Sports Exerc. - 2009. - 41(12). - 2128-2135. - doi: 10.1249/MSS.0b013e3181a8d530.

329. Peluso I., Raguzzini A., Serafini M. Effect of flavonoids on circulating levels of TNF-a and IL-6 in humans: a systematic review and meta-analysis. // Mol Nutr Food Res. - 2013. -57(5). - 784-801. - doi: 10.1002/mnfr.201200721.

330. Periasamy M., Bhupathy P., Babu G.J. Regulation of sarcoplasmic reticulum Ca2+ ATPase pump expression and its relevance to cardiac muscle physiology and pathology. // Cardiovasc Res. - 2008. - 77. - 265-273. -doi: 10.1093/cvr/cvm056.

331. Pervin M., Unno K., Takagaki A., Isemura M., Nakamura Y. Function of green tea catechins in the brain: Epigallocatechin gallate and its metabolites. // Int J Mol Sci. - 2019. -20. - 3630. - doi: 10.3390/ijms20153630.

332. Peters U., Poole C., Arab L. Does tea affect cardiovascular disease? A meta-analysis. // Am J Epidemiol. - 2001. - 154(6). - 495-503. - doi: 10.1093/aje/154.6.495.

333. Pfaffl M.W., Horgan G.W., Dempfle L. Relative expression software tool (REST) for group-wise comparison and statistical analysis of relative expression results in realtime PCR. // Nucleic Acids Res. - 2002. - 30. - e36. - doi: 10.1093/nar/30.9.e36.

334. Pfaffl M.W., Tichopad A., Prgomet C., Neuvians T.P. Determination of stable housekeeping genes, differentially regulated target genes and sample integrity: BestKeeper— Excel-based tool using pair-wise correlations. // Biotechnol Lett. - 2004. - 26. - 509-515. -doi: 10.1023/b:bile.0000019559.84305.47.

335. Plaideau C., Lai Y.C., Kviklyte S., Zanou N., Lofgren L., Andersen H., Vertommen D., Gailly P., Hue L., Bohlooly-Y.M., Hallen S., Rider M.H. Effects of pharmacological AMP deaminase inhibition and Ampd1 deletion on nucleotide levels and AMPK activation in contracting skeletal muscle. // Chem Biol. - 2014. - 21(11). - 1497-1510. - doi: 10.1016/j.chembiol.2014.09.013.

336. Plecevic S., Jakovljevic B., Savic M., Zivkovic V., Nikolic T., Jeremic J., Milosavljevic I., Srejovic I., Tasic N., Djuric D., Jakovljevic V. Comparison of short-term and medium-term swimming training on cardiodynamics and coronary flow in high salt-induced hypertensive and

145

normotensive rats. // Mol Cell Biochem. - 2018. - 447(1-2). - 33-45. - doi: 10.1007/s11010-018-3291-2.

337. Plotkin D.L., Roberts M.D., Haun C.T., Schoenfeld B.J. Muscle Fiber Type Transitions with Exercise Training: Shifting Perspectives. // Sports. - 2021. - 9. - 127. - doi: 10.3390/sports9090127.

338. Poole D C., Copp S.W., Colburn T.D., Craig J.C., Allen D.L., Sturek M., O'Leary D.S., Zucker I.H., Musch T.I. Guidelines for animal exercise and training protocols for cardiovascular studies. // Am J Physiol Heart Circ Physiol. - 2020. - 318(5). - H1100-H1138.

- doi: 10.1152/ajpheart.00697.2019.

339. Poole D.C., Erickson H.H. Exercise-induced pulmonary hemorrhage: where are we now? // Vet Med (Auckl). - 2016. - 7. - 133-148. - doi: 10.2147/VMRR.S120421.

340. Potenza M.A., Marasciulo F.L., Tarquinio M., Tiravanti E., Colantuono G., Federici A., Kim J.-a., Quon M.J., Montagnani M. EGCG, a green tea polyphenol, improves endothelial function and insulin sensitivity, reduces blood pressure, and protects against myocardial I/R injury in SHR. // Am J Physiol-Endocrinol Metab. - 2007. - 292. - E1378-E1387. - doi: 10.1152/ajpendo.00698.2006.

341. Prokic V., Plecevic S., Bradic J., Petkovic A., Srejovic I., Bolevich S., Jeremic J., Bolevich S., Jakovljevic V., Zivkovic V. The impact of nine weeks swimming exercise on heart function in hypertensive and normotensive rats: role of cardiac oxidative stress. // J Sports Med Phys Fitness. - 2019. - 59(12). - 2075-2083. - doi: 10.23736/S0022-4707.19.09798-6.

342. Puigserver P., Spiegelman B.M. Peroxisome proliferators-activated receptor gamma coactivator 1a (PGC-1a): Transcriptional coactivator and metabolic regulator. // Endocr Rev.

- 2003. - 24. - 78-90. - doi: 10.1210/er.2002-0012.

343. Pullikotil P., Chen H., Muniyappa R., Greenberg C.C., Yang S., Reiter C.E., Lee J.W., Chung J.H., Quon M.J. Epigallocatechin gallate induces expression of heme oxygenase-1 in endothelial cells via p38 MAPK and Nrf-2 that suppresses proinflammatory actions of TNF-a. // J Nutr Biochem. - 2012. -23(9). - 1134-1145. - doi: 10.1016/j.jnutbio.2011.06.007.

344. Purge P., Hofmann P., Merisaar R., Mueller A., Tschakert G., Maestu J., Jurimae J. The Effect of Upper Body Anaerobic Pre-Loading on 2000-m Ergometer-Rowing Performance in College Level Male Rowers. // J Sports Sci Med. - 2017. - 16(2). - 264-271.

345. Qian L., Zhu Y., Deng C., Liang Z., Chen J., Chen Y., Wang X., Liu Y., Tian Y., Yang Y. Peroxisome proliferator-activated receptor gamma coactivator-1 (PGC-1) family in physiological and pathophysiological process and diseases. // Signal Transduct Target Ther. -2024. - 9. - 50. - doi: 10.1038/s41392-024-01756-w.

346. Qin L., Lu T., Qin Y., He Y., Cui N., Du A., Sun J. In Vivo Effect of Resveratrol-Loaded Solid Lipid Nanoparticles to Relieve Physical Fatigue for Sports Nutrition Supplements. // Molecules. - 2020. - 25. - 5302. - doi: 10.3390/molecules25225302.

347. Rakita S.M., Colovicl D.S., Levart A.R., Banjac V.V., Colovic R.R., Dragojlovic D.M., Buragic O.M. A rapid spectrophotometric method for determination of thiobarbituric acid reactive substances in rainbow trout feed. // Food Feed Res. - 2020. - 47. - 43-53. - doi: 10.5937/ffr2001043r.

348. Rangroo Thrane V., Thrane A.S., Wang F., Cotrina M.L., Smith N.A., Chen M., Xu Q., Kang N., Fujita T., Nagelhus E.A., Nedergaard M. Ammonia triggers neuronal disinhibition and seizures by impairing astrocyte potassium buffering. // Nat Med. - 2013. - 19(12). - 16431648. - doi: 10.1038/nm.3400.

349. Ras R.T., Zock P.L., Draijer R. Tea consumption enhances endothelial-dependent vasodilation, a meta-analysis. // PLoS ONE. - 2011. - 6. - e16974. - doi: 10.1371/journal.pone.0016974.

350. Razygraev A.V., Baziyan E.V., Polyanskikh L.S., Petrosyan M.A. Experience of measuring glutathione peroxidase activity in surgically induced endometrial-like lesions in rats. // J Obstet Women's Dis. - 2021. - 70. - 55-61. - doi: 10.17816/jowd52877.

351. dos Reis I.G.M., de Araujo G.G., Gobatto C.A. Maximal lactate steady state in swimming rats by a body density-related method of workload quantification. // Comp Exerc Physiol. -2011a. - 7. - 179-184. - doi: 10.1017/S1755254011000134.