Ветеринарно-санитарная оценка продуктов убоя цыплят-бройлеров при применении антибактериального комплекса тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Тимошенко Сергей Викторович

• Тимошенко Сергей Викторович
• кандидат наук
• 2025

Оглавление диссертации кандидат наук Тимошенко Сергей Викторович

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 История создания антибиотиков и их использования в птицеводстве

1.2 Воздействие антибиотиков

1.3 Ограничение и рекомендации использования антибиотиков в птицеводстве

1.4 Фармакология азитромицина и флорфеникола

1.5 Антибиотикорезистентность

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

3.1 I Этап. Обоснование состава комплекса Азитромицин 10%+Флорфеникол 10% и определение его антимикробной активности на культурах микоплазм

3.1.1. Оценка эффективности комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% на культурах клинически значимых микроорганизмов и его сравнительная антимикоплазменная характеристика с Азитромицин-О

3.1.2. Оценка антимикробной активности препаратов и комплексов на основе азитромицина, флорфеникола, их сочетаний и сравнительная характеристика

3.2 II Этап. Изучение токсичности комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% для ветеринарного применения на лабораторных и целевых животных

и определение сроков выведения из организма сельскохозяйственной птицы

3.2.1. Определение параметров острой токсичности лекарственного средства

для ветеринарного применения комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10%

3.2.2. Определение субхронической токсичности лекарственного средства

для ветеринарного применения комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10%

3.2.3. Изучение переносимости лекарственного препарата для ветеринарного применения комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10%

на цыплятах-бройлерах

3.2.4 Изучение влияния комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% на рост,

развитие цыплят-бройлеров и определение сроков выведения комплекса

из организма сельскохозяйственной птицы

3.3 III Этап. Апробация применения комплекса на птицефабриках ООО «ТПК Балтптицепром» Калининградской области и ОО «Равис -птицефабрика Сосновская» Челябинской области

3.3.1. Апробация комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% в условиях птицефабрики ООО «ТПК Балтптицепром», Калининградская область, бройлерные площадки, с определением остаточного содержания антибиотиков в мясе, субпродуктах и сроков их выведения

3.3.2. Апробация комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% в условиях птицефабрики ООО «Равис - птицефабрика Сосновская», Челябинская область, бройлерные площадки, с определением остаточного содержания антибиотиков в мясе, субпродуктах и сроков их выведения

3.4 Экономическая эффективность применения комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10%

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ НАУЧНЫХ ВЫВОДОВ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК

ПРИЛОЖЕНИЯ

ВВЕДЕНИЕ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Ветеринарно-санитарная оценка продуктов убоя цыплят-бройлеров при применении антибактериального комплекса»

Актуальность темы.

Использование антибиотиков в промышленном птицеводстве сопряжено с чрезмерным и неконтролируемым применением их и может привести к развитию антибиотикорезистентных бактерий как у самих птиц, так и в окружающей среде. Это создает серьезные угрозы и для здоровья животных, и для человечества в целом, поскольку антибиотикорезистентные инфекции становятся все более распространенными и трудно поддающимися лечению. Однако вследствие интенсификации сельскохозяйственного производства применение антибиотиков в птицеводстве и животноводстве в ближайшее время не будет прекращено. Главные причины использования антибиотиков у сельскохозяйственных животных заключаются в лечении инфекций и повышении их продуктивности [50]. Некоторые микроорганизмы обладают множественной антибактериальной устойчивостью, поэтому правильный выбор самого эффективного противомикробного средства определяет оптимальную стратегию лечения и, в конечном счете, обеспечивает успешный исход, позволяя сохранить здоровье животного, его продуктивные качества, а также гарантировать безопасность продукции для потребителей [28].

Следовательно, в настоящее время существует потребность в поиске эффективных альтернатив для борьбы с инфекционными заболеваниями и мероприятий по сдерживанию распространения устойчивых бактерий к антибактериальным веществам, но еще более важным является сохранение антибактериальных веществ различных фармакологических групп для лечения бактериальных инфекций.

Поэтому проведение исследований по безопасности и эффективности применения новых антибактериальных веществ для ветеринарного применения в птицеводстве актуально.

Степень разработанности темы: Изучению влияния антибиотиков на живой организм, их применение для лечения сельскохозяйственных животных посвятили свои работы многие российские и зарубежные исследователи (Акчурин С.В., 2021, Задера М.И, Груздева А.К., 2018, Игнатова И.Д., 2007, Егорова С.А., 2011, Поломодьялов Д., 2019, Нитяга С.А., Телегина Д.П., 2022, Резниченко А.А., 2023, Руденко С.А, 2020, Сунцова и др., 2019, Щепеткина С.В., 2019, Aljumaah M. R., 2020, Apata D. F., 2009, Christian A., 201S, González Ronquillo, 2017, Lockwood S., Said N., 2019).

Исследования по определению ветеринарно-санитарной безопасности продуктов убоя сельскохозяйственных животных изложены в работах таких ученых, как: Бачинская В.М., 2021, Варнавский С.Н., 2010, Василевич Ф.И., 2020, Фисинин В.И., 2017, Закревский В.В., 2020, Капитонова Е.А., 2022, Криштанович В.И. и др., 2024, Сатимирова А.Ж., 2020, Addo K. K., 2011, Darwish W. S., 201З, Duc V.M., 2019, Goetting V., Lee K. A., Tell L. A., 2011, Mehdi Y. and others, 201S, Mehdizadeh S., Kazerani H. R., Jamshidi A. , 2010 и многих других.

Но появляются новые формы антибактериальных препаратов и определение эффективности, а главное безопасности их применения необходимо изучать и контролировать.

Цель и задачи исследований.

Цель: изучить эффективность и безопасность применения нового антибактериального комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% при выращивании цыплят-бройлеров и дать ветеринарно-санитарную оценку продуктов убоя.

Задачи:

1. Определить антимикробную активность комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10%.

2. Изучить токсичность комплекса для ветеринарного применения на лабораторных и целевых животных.

3. Определить влияние комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% на рост, развитие и сроки выведения препарата из организма цыплят-бройлеров.

4. Дать ветеринарно-санитарную оценку продуктам убоя цыплят-бройлеров при применении изучаемого комплекса на производстве.

5. Определить экономическую эффективность применения комплекса.

Научная новизна работы.

На основании проведенных исследований впервые определена и научно обоснована безопасность продуктов убоя цыплят-бройлеров после применения нового антибактериального комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10%. Впервые определена дозировка, составлена схема его применения и установлены сроки выведения препарата из организма птицы для безопасного употребления продуктов убоя в пищу людям.

Впервые представлены данные о влиянии комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% на рост и развитие цыплят-бройлеров.

Впервые проведена апробация комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% на птицефабриках ООО «ТПК Балтптицепром» Калининградской области и ООО «Равис - птицефабрика Сосновская» Челябинской области. Определена экономическая эффективность его применения. А также проведена оценка качества и безопасности продуктов убоя птицы после применения комплекса на птицефабриках.

На основании данных опыта подготовлены документы по регистрации комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10%, подтверждено справкой полученной от компании АО «Мосагроген».

Теоретическая и практическая значимость работы.

Проведена ветеринарно-санитарная оценка продуктов убоя цыплят-бройлеров после применения нового антибактериального комплекса на основе азитромицина и флорфеникола. Новый комплекс применяется для лечения в ветеринарии в виде раствора для перорального использования.

Предварительно перед использованием определена его антимикробная активность, установлены сроки хранения и разработана схема применения комплекса. Выявлены периоды выведения комплекса из организма птицы и использования. Разработана нормативная документация - инструкция по применению антибактериального комплекса на основе азитромицина и флорфеникола для лечения инфекционных заболеваний цыплят-бройлеров. Рассчитана экономическая эффективность применения данного комплекса в производственных условиях на современных мясных кроссах

Реализация результатов исследований.

Результаты апробированы в условиях птицефабрик ООО «ТПК Балтптицепром» Калининградской области и ООО «Равис - птицефабрика Сосновская» Челябинской области, что подтверждается Актами испытания комплекса.

Результаты исследований использованы при формировании регистрационного досье и включены в инструкцию по применению данного комплекса, подтверждается справкой от АО «Мосагроген» (№ 147-24 от 17 января 2024 г).

Полученные научно-исследовательские данные используются в учебном процессе кафедры паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВПО МГАВМиБ, что подтверждается справкой о внедрении (утв. Ректором 20.05.2024 г.).

Методология и методы исследования.

Методологическим подходом в достижении цели и решении поставленных задач является системное изучение объектов исследования, анализ и обобщение полученных результатов.

В работе использованы как традиционные, так и современные методы, применяемые в ветеринарно-санитарной экспертизе: анализ, обобщение, проведение экспериментальных исследований путем постановки научно-

хозяйственных опытов, а также зоотехнические, морфологические, биохимические и биометрические методы.

Объектом исследования являлись цыплята-бройлеры кроссов Росс-308 и Кобб 500.

Предмет исследования - антибактериальный комплекс Азитромицин 10% + Флорфеникол 10%, сыворотка крови и продукты убоя цыплят-бройлеров.

Результаты, полученные при исследовании, статистически обработаны с использованием программ Мю1ШОЙЕхсе1 с определением достоверности полученных данных по критерию Стьюдента.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Применение рекомендуемой дозы комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% не оказывает токсического воздействия на физиологическое состояние цыплят-бройлеров, что выражается в улучшении их клинического состояния, а также в морфо-биохимических показателях крови, гистологических показателях внутренних органов.

2. Положительная ветеринарно-санитарная оценка продуктов убоя цыплят-бройлеров, и определение времени полного вывода остатков комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% из организма цыплят-бройлеров.

3. Экономическое обоснование применения антибактериального комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% при выращивании цыплят-бройлеров в производственных условиях.

4. Практические рекомендации по использованию антибактериального комплекса на основе азитромицина и флорфеникола при выращивании цыплят-бройлеров.

Степень достоверности и апробации работы.

Достоверность полученных результатов подтверждается использованием общепринятых методик и сертифицированного оборудования и программного обеспечения при обработке данных; исследованием достаточного количества поголовья цыплят-бройлеров, позволяющем объективно оценить полученные

результаты; определением критерия достоверности по таблице Стьюдента. Исследования проводили в соответствии с нормативно-техническими документами (ГОСТами), в аккредитованных лабораториях и центрах.

Основные положения и результаты исследований диссертационной работы доложены и получили положительную оценку на заседаниях кафедры паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы, на производственном совещании специалистов АО «МОСАГРОГЕН», на межкафедральном совещании ФГБОУ ВПО МГАВМиБ-МВА имени К.И. Скрябина.

Результаты экспериментальных и клинических исследований были представлены на:

- Научно-практическом семинаре по решению актуальных проблем в области птицеводства с использованием современных методов и технологий. Академия наук Республики Таджикистан. Институт ветеринарной медицины. Республика Таджикистан. г. Душанбе. 22.05.2024 г.

- Международном форуме птицеводов «БРОЙЛЕР&ЯЙЦО 2024». Евразийская ассоциация птицеводов. Россия, г. Москва. 18.06.2024 г.

- XI Казахстанском международном форуме птицеводов. Союз птицеводов Казахстана. Республика Казахстан. г. Астана. 27.06.2024 г.

- Международной научно-практической конференции «Актуальные вопросы современной эпизоотологии», посвящённой 150-летию со дня рождения основателя Московской школы эпизоотологов Вышелесского С.Н. ФГБОУ ВО МГАВМИБ - МВА имени К.И. Скрябина. Россия. г. Москва. 2425 октября 2024 г.

Личный вклад соискателя ученой степени. Цель и задачи исследования были определены диссертантом самостоятельно. Соискатель участвовал на всех этапах исследований: разработка нового антибактериального комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникола 10%; исследования антимикробной активности комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% в сравнении с другими

антибактериальными препаратами; разработка нормативной документации -технические условия и инструкция по применению антибактериального комплекса; исследования препарата на нецелевых и целевых животных в условиях вивария академии; организация апробация комплекса в производственных условиях на современных кроссах Росс-308, Кобб 500 на птицефабриках ООО «ТПК Балтптицепром» Калининградской области и ООО «Равис - птицефабрика Сосновская» Челябинской области; проведение ветеринарно-санитарной оценка продуктов убоя; подготовка документации для регистрации комплекса Азитромицин 10% + Флорфеникол 10%.

Соискатель лично подбирал, изучал и анализировал литературные источники по теме диссертации, публиковал статьи по теме исследований, участвовал в конференциях, семинарах, международных форумах.

Выводы и рекомендации по практическому применению результатов были сформулированы с учетом консультаций научного руководителя -доктора биологических наук, доцента Бачинской В.М.

Публикации результатов исследований.

Основные научные выводы по теме диссертации опубликованы в специализированных журналах: «Ветеринария, Зоотехния и Биотехнология» и «Зоотехния». Общее количество публикаций составило 6 статей, из которых 5 были размещены в рецензируемых изданиях, рекомендуемых ВАК РФ.

Объем и структура работы.

Диссертация представлена на 147 страницах машинописного текста и состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы, методы исследования, обсуждение результатов, заключение, практические рекомендации и список использованной литературы. Текст сопровождается 37 таблицами и 17 рисунками. Библиографический список включает 130 наименований, из которых 73 являются иностранными источниками. Содержит 4 приложения.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1 История создания антибиотиков и их использования

в птицеводстве

Применение антибиотиков в промышленном птицеводстве сыграло значительную роль в улучшении здоровья и производительности птицы [129,130]. Этот процесс имел свою историю развития, начиная с первых экспериментов и заканчивая современными методами применения антибиотиков.

Использование противомикробных препаратов в животноводстве восходит к 1910 году, когда из-за нехватки мясных продуктов рабочие проводили протесты и беспорядки по всей Америке [114]. В то время ученые начали искать способы производства большего количества мяса при относительно более дешевых затратах; что приводит к использованию антибиотиков и других противомикробных средств [75].

Первые эксперименты по применению антибиотиков в птицеводстве начались в середине 20 века. Ученые обратили внимание на потенциал антибиотиков в борьбе с инфекционными заболеваниями, которые часто поражали стада птицы, приводя к снижению производительности и экономическим потерям. Первым антибиотиком, который стал широко использоваться в птицеводстве, стал пенициллин.

Александр Флеминг, шотландский бактериолог, в 1928 году обнаружил пенициллин. Он заметил, что плесень Pénicillium notatum, случайно попавшая в его лабораторию, обладала способностью убивать бактерии. Это открытие стало основой для разработки первых антибиотиков. Его открытие в начале 20 века открыло новые возможности для борьбы с бактериальными инфекциями как у людей, так и у птиц. Пенициллин позволял успешно лечить инфекции и предотвращать их распространение в стаде. С течением времени были открыты и синтезированы новые антибиотики с более широким спектром действия.

В 1940-х годах Владимир Фёдорович Беклемишев и его команда начали работать над антибиотиками, полученными из грибов и бактерий, что привело к созданию новых препаратов.

В 1950-х и 1960-х годах в СССР начались активные исследования по созданию синтетических антибиотиков, таких как стрептомицин и тетрациклин, которые стали широко использоваться для лечения инфекций [24].

Российские исследователи изучали природные ресурсы, включая растения и микроорганизмы, чтобы обнаружить новые антибиотики [24,26].

Это помогло значительно улучшить борьбу с разнообразными бактериями, которые вызывают инфекционные заболевания у птицы. Применение антибиотиков стало более целенаправленным и эффективным. Важным этапом в развитии применения антибиотиков в птицеводстве стало их профилактическое использование. Вместо лечения уже заболевших животных начали применять антибиотики для предотвращения возникновения инфекций в стаде. Это позволило снизить заболеваемость, смертность и улучшить общее здоровье птиц [129,130].

Развитию птицеводства до современного уровня в течении последних 50 лет способствовало использование антибактериальных веществ в сочетании со строжайшими мерами безопасности и зоогигиены. Все эти меры способствовали сокращению негативного воздействия заболеваний бактериальной этиологии на здоровье, а также зоотехнические (производственные) показатели птицеводства [26,27].

Одним из основных вызовов, с которым столкнулось применение антибиотиков в промышленном птицеводстве, является проблема антибиотикорезистентности. В 1980-1990-е годы устойчивость к антибиотикам стала серьезной проблемой.

В связи с интенсификацией отрасли птицеводства, часто использовались такие антибиотики, как тетрациклин, бацитрацин, тилозин, салиномицин,

виргиниамицин, бамбермицин и некоторые другие. Например, в США применение препаратов тетрациклинового ряда составляло более 2/3 от всего количества противомикробных препаратов, используемых в животноводстве, а в Европейском союзе - 37%. В 2015 г. антибактериальных препаратов в Европейском союзе продали 8 361 т., и это без учета стимуляторов роста для животных [21,83,93].

Пути введения антибиотиков, применяемых в животноводстве, в %

6,3 0

0,1 1,6

7,6 Ч

в кормах с.-х, животных с водой

интерцистернально

орально

инъекционно

84,4

Рисунок 1 - Количество противомикробных препаратов (% от общей массы в кг), распределенных для ветеринарного применения, по пути введения в Канаде [71]

В Канаде в 2014 г. было использовано 1,5 млн кг антибактериальных средств в животноводстве, и это на 5% больше, чем в 2013 г. Из этого количества антибактериальных препаратов 99% было применено на сельскохозяйственных животных и меньше 1% на домашних животных. В Канаде в 2014 г. в профилактических целях использовали 81% противомикробных препаратов на птицефабриках по выращиванию бройлеров [21,83]. Из этого количества 84% давали в кормах (рис. 1). И в основном они предназначались для терапии некротического энтерита, вызванного С^^Мшт регйг^еш, и кокцидиоза [21,71].

В связи с глобальной угрозой антибиотикорезистентности и увеличением количества неэффективных методов лечения в некоторых

странах было запрещено не терапевтическое использование антибиотиков в животноводстве [67,68,84].

В ответ на растущие опасения по поводу использования антибиотиков в животноводстве, многие страны начали вводить строгие регуляции. Первой страной, запретившей использование антибиотиков для стимуляции роста (1986 г) и для профилактики (1988 г) болезней животных стала Швеция [69]. Впоследствии к Швеции присоединились Дания, Нидерланды, Великобритания и другие страны Европейского союза [21,69]. С 2006 года и в Европейском Союзе запретили использование всех классов антибактериальных средств для стимуляции роста животных, а в 2011 г и для профилактики заболеваний. В некоторых других странах был издан запрет на использование нескольких классов антибактериальных средств и были созданы структуры, регламентирующие и регулирующие использование этих в животноводстве [21,107].

На данный момент, несмотря на ограничения и запреты использования антибактериальных средств в животноводстве и птицеводстве, установлено, что в агропромышленном комплексе продолжается использование антибиотиков и их количество составляет более 60% от всех производимых [21,123,124].

Фермерам экономически выгодно использовать антибиотики в птицеводстве и животноводстве, поскольку в целом улучшается продуктивность птицы и прибыль увеличивается. Но в то же время возрастает риск распространения в окружающей среде устойчивых к антибиотикам штаммов патогенных и непатогенных организмов и их дальнейшая передача человеку по пищевой цепи. А, следовательно, возникновения антибиотикорезистентности у людей [21,63].

Больше всего антибиотиков в животноводстве в 2010 году использовалось в Китае, Индии, США, Бразилии и Германии. К 2030 году эти страны, кроме Германии, предположительно, останутся основными

потребителями антибиотиков. По прогнозам Организации экономического сотрудничества и развития, с 2010 по 2030 год использование антибиотиков для животных увеличится на 67% [47].

1.2 Воздействие антибиотиков Современные интенсивные методы ведения птицеводства представляют потенциальный риск для здоровья, как птицы, так и людей [25].

Высокая концентрация птицы приводит к снижению сохранности и среднесуточного прироста живой массы птицы, достоверно снижаются гуморальные факторы естественной резистентности [25,41].

Высокая плотность поголовья вызывает повышенную чувствительность птицы к патогенным микроорганизмам, при этом значительно возрастает вероятность массовой вспышки инфекционного заболевания. Некоторые инфекции часто регистрируются на территории Российской Федерации. Так, в 2017 году произошли три вспышки болезни Ньюкасла, выявлен 31 пункт, неблагополучный по птичьему гриппу [53,54]. Актуальной проблемой в птицеводстве остаются острые кишечные инфекции. Они характеризуются полиэтиологичностью, вариабельностью антигенного состава возбудителей, длительной антигенной и токсической стимуляцией иммунокомпетентных клеток хозяина. На долю колибактериоза (эшерихиоза) приходится около 5060% всего падежа птиц [53,54]. Колибактериоз в виде самостоятельного заболевания проявляется редко и чаще наблюдается в сочетании с респираторным микоплазмозом, инфекционным бронхитом, пуллорозом (тиф кур), инфекционным ларинготрахеитом. Еще одно опасное инфекционное заболевание — сальмонеллез птиц. В первую очередь он поражает желудочно-кишечный тракт, а при подостром и хроническом течении вызывает осложнения в виде пневмонии и артрита. Заболеваемость цыплят сальмонеллезом обычно составляет примерно 5%, но именно этот микроорганизм становится причиной массовых вспышек пищевых отравлений человека [53,54].

Инфекционные заболевания представляют серьезную угрозу для промышленного птицеводства, поскольку они могут привести к значительным потерям в производстве и угрожать здоровью и благополучию животных. Антибиотики играют ключевую роль в борьбе с инфекционными заболеваниями сельскохозяйственной птицы [41,45].

Применение антибиотиков особенно актуально в условиях высокой плотности содержания птицы, где риск инфекций значительно возрастает. Например, антибиотики могут применяться в качестве добавок к корму или воде для лечения бактериальных инфекций, таких как сальмонеллез, колибактериоз, стафилококкоз и др. Такой подход помогает поддерживать здоровье стада и предотвращать развитие эпидемий.

Эффективное использование антибиотиков в промышленном птицеводстве зависит от правильного выбора препарата, точной дозировки и правильного графика применения, а также от качества и стабильности лекарств. Контроль за антибиотикорезистентностью, наблюдение за чувствительностью бактерий, соблюдение гигиенических стандартов и улучшение условий содержания птицы также играют важную роль.

Ключевое влияние на эффективность использования антибиотиков в промышленном птицеводстве оказывают следующие факторы:

1. Выбор антибиотика. Правильный выбор антибиотика основан на типе бактериальной инфекции, чувствительности микроорганизмов к препарату и его способности проникать в ткани птицы.

2. Дозировка и режим применения. Недостаточная дозировка или неправильный режим применения антибиотиков могут привести к развитию антибиотикорезистентности и снижению эффективности лечения.

3. Качество и стабильность препаратов. Качество антибиотиков, их стабильность и соответствие стандартам важны для обеспечения правильной концентрации препарата в организме птицы.

Полный отказ от антибиотиков привёл к увеличению распространенности заболеваний, оказывающих пагубное влияние на продуктивность и здоровье животных [60].

Таким образом, антибиотики играют важную роль в борьбе с инфекционными заболеваниями сельскохозяйственной птицы, обеспечивая эффективное лечение и профилактику различных инфекций. Правильное использование антибиотиков, как для лечения, так и для профилактики, помогает поддерживать здоровье птицы, обеспечивать высокую производительность и снижать риски распространения инфекций [56,57].

Влияние на рост цыплят, пищеварительный тракт и иммунную систему В птицеводстве антибиотики используются для лечения заболеваний. Одновременно с этим увеличивается производство мяса, повышается конверсия корма, происходит стимулирование скорости роста и развития птицы [46]. Это в основном связано с контролем желудочно-кишечных инфекций и модификацией состава микробиоты в кишечнике [2, 21,110,128].

Вероятно, что антибиотики обеспечивают оптимальную микробиоту для роста макроорганизма птиц путем ремоделирования микробного разнообразия и относительной численности в кишечнике. Например, подходы к секвенированию метагенома продемонстрировали, что диеты с салиномицином (60/1 000 000) влияют на динамику микробиома в слепых кишках кур. Точно так же использование виргиниамицина (100/1 000 000) в качестве стимулятора роста было связано с увеличением количества видов Lactobacillus в петле двенадцатиперстной кишки бройлеров, в проксимальном отделе подвздошной кишки. Что в свою очередь указывает на то, что виргиниамицин изменяет состав микробиоты кишечника кур. Популяции Lactobacillus spp. в подвздошной кишке цыплят, получавших бактериостатический корм, содержащий тилозин, значительно ниже, чем у цыплят, не получающих его [2, 21,47,110].

Кроме того, многие исследователи Акчурин С.В., 2002, Дубровин А.В., 2021, Тимофеева С.С., 2021, Mehdi. Y. и др., 2018, отмечают в своих трудах, что актобактерии являются основными комменсальными бактериями для синтеза фермента солей желчной гидролазы. Уменьшение популяции Lactobacillus у животных, получавших антибиотики, вероятно, снижает кишечную активность бактериальной гидролазы солей желчных кислот, что увеличивает относительное количество конъюгированных солей желчи, что способствует метаболизму липидов и сбору энергии, а также увеличению веса животных [2, 21,110].

В конечном счете, на иммунитет и здоровье цыплят-бройлеров влияет и изменение кишечной микробиоты. Но на изменения кишечной микробиоты цыплят влияют и условия содержания, стресс-факторы, воздействие патогенов, состав рациона и наличие антибиотиков в кормах [110,113].

Воздействие антибиотиков на здоровье потребителей и окружающую среду

Ежегодно во всем мире регистрируются десятки миллионов случаев бактериальных инфекций у людей.

Например, ежегодно в США регистрируется около 76 миллионов заболеваний пищевого происхождения. Практически 325 000 случаев заканчиваются госпитализацией, 5 000 случаев - летальным исходом [110,128].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Тимошенко Сергей Викторович, 2025 год

БИБИЛИОГРАФЧЕСКИЙ СПИСОК

1. Азарнова, Т. О. Научно-практические аспекты профилактики оксидативного стресса, как способа оптимизации условий инкубации и акселерации эмбрионов кур: специальность 06.02.05 "Ветеринарная санитария, экология, зоогигиена и ветеринарно-санитарная экспертиза", 03.01.04 "Биохимия": диссертация на соискание ученой степени доктора биологических наук / Азарнова Татьяна Олеговна. - Москва, 2013. - 317 с. -EDN SVAOHJ.

2. Акчурин, Сергей Владимирович. Патоморфология и дифференциальная диагностика инфекционного бронхита кур: диссертация ... кандидата ветеринарных наук: 16.00.02. - Саратов, 2002. - 122 с.: ил.

3. Арсланова, Э. Ф. Антибиотики в сточных водах - проблема XXI в / Э. Ф. Арсланова // Система знаний: образовательные инициативы и развитие творческого потенциала современной науки: Сборник научных трудов. -Казань : ООО "СитИвент", 2021. - С. 169-174. - EDN HFBTTM.

4. Бачинская, Валентина Михайловна. Получение биологически безопасной и полноценной продукции животноводства при применении белковых гидролизатов: диссертация ... доктора биологических наук: 06.02.05 / Бачинская Валентина Михайловна; [Место защиты: ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина»]. - Москва, 2021. - 342 с.: ил.

5. Борьба с устойчивостью к антибиотикам с позиций безопасности пищевых продуктов в Европе [Текст] / [Pierre-Alexandre Beloeil et al.] ; Всемирная орг. здравоохранения, Европейское региональное бюро. - [Copenhagen] : Всемирная орг. здравоохранения, cop. 2011. - XIX, 80, [1] с. : цв. ил.; 24 см.; ISBN 978-92-890-4421-9

6. Бочарова, Полина Александровна. Микроморфологические показатели мышечной ткани и внутренних органов перепелов при применении в рационе

кормовой добавки на основе рыбьего жира / П. А. Бочарова, В. М. Бачинская, Ф. И. Василевич, Д. В. Гончар // Иппология и ветеринария. - 2024. - № 2(52). - С. 137-145. - 001 10.52419/2225-1537.2024.2.137-145. - БЭК УиЛИХО.

7. Бочарова, Полина Александровна. Ветеринарно-санитарная оценка продукции перепеловодства при применении в рационе кормовых добавок отечественного производства: автореферат дис. ... кандидата биологических наук: 4.2.2. / Бочарова Полина Александровна; [Место защиты: ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина»; Диссовет 35.2.023.04 (35.2.023.04)]. - Москва, 2024. - 24 с.: ил.

8. Бочарова, П. А. Опыт применения кормовой добавки на основе рыбьего жира в перепеловодстве / П. А. Бочарова, В. М. Бачинская, Д. В. Гончар // АПК России. - 2023. - Т. 30, № 5. - С. 665-670. - Э01 10.55934/10.55934/2587-88242023-30-5-665-670. - БЭК ОХКТКО.

9. Бурмистрова, М. И. Влияние инсекто-акарицидного препарата Дельцид 7,5® на организм кроликов / М. И. Бурмистрова, Ф. И. Василевич, А. А. Дельцов // Ветеринария и кормление. - 2021. - № 2. - С. 10-12. - Э01 10.30917/ЛТТ-УК-1814-9588-2021-2-2. - БЭК РБУУШ.

10. Варнавский, С. Н. Изучение острой токсичности седимина^Е+ и седимина^Е+ / С. Н. Варнавский, А. А. Дельцов, Д. Н. Уразаев // Ветеринарная медицина. - 2010. - № 3-4. - С. 70-72. - БЭК КСРБМ!

11. Василевич, Ф. И. Результаты исследования острой токсичности кормовой добавки АбиоТоник на лабораторных животных / Ф. И. Василевич, А. А. Дельцов, В. М. Бачинская // Иппология и ветеринария. - 2020. - № 3(37). - С. 78-84. - БЭК /МКЯСБ.

12. Вериго, Ю. В. Оценка острой токсичности опытных образцов нового микроэлементного препарата на лабораторных животных / Ю. В. Вериго // Экология и животный мир. - 2008. - № 2. - С. 64-72. - БЭК /ТОиШ.

13. ГОСТ 12.1.007-76 Система стандартов безопасности труда. Вредные вещества. Классификация и общие требования безопасности. - М.: Стандартинформ, 2007. - 7 с.

14. ГОСТ Р 53434-2009 - Принципы надлежащей лабораторной практики. -М.: Стандартинформ, 2010. - 12 с.

15. ГОСТ Р 54374-2011 Мясо птицы, субпродукты и полуфабрикаты из мяса птицы. Методы выявления и определения количества бактерий группы кишечных палочек (колиформных бактерий) - М.: Стандартинформ, 2012. - 8 с.

16. ГОСТ 31468-2012 Мясо птицы, субпродукты и полуфабрикаты из мяса птицы. Метод выявления сальмонелл. - М.: Стандартинформ, 2013. - 10 с.

17. ГОСТ 32031-2012 Продукты пищевые. Методы выявления бактерий Listeria monocytogenes (ISO 11290-1:1996/Amd.1:2004, NEQ). - М.: Стандартинформ, 2014. - 27 с.

18. ГОСТ 31962-2013 - Мясо кур (тушки кур, цыплят-бройлеров и их части). Технические условия. - М.: Стандартинформ, 2016. - 10 с.

19. ГОСТ 34136-2017 - Продукты пищевые, продовольственное сырье. Метод определения остаточного содержания макролидов, линкозамидов и плевромутилинов с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием. - М.: Стандартинформ, 2018. - 14 с.

20. ГОСТ 34533-2019 - Продукты пищевые, продовольственное сырье. Метод определения остаточного содержания сульфаниламидов, нитроимидазолов, пенициллинов, амфениколов с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрическим детектором. - М.: Стандартинформ, 2019. - 17 с.

21. Дубровин, Андрей Валерьевич. Микробиом желудочно-кишечного тракта и экспрессия генов иммунного ответа промышленной птицы при применении препарата на основе эфирных масел в условиях заражения Salmonella

119

Enteritidis : автореферат дис. ... кандидата ветеринарных наук: 06.02.02 / Дубровин Андрей Валерьевич; [Место защиты: Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина]. - Москва, 2021. - 22 с.

22. Европейская конвенция о защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и иных научных целей. Страсбург, 18 марта 1986 года. https://docs.cntd.ru/document/901909691

23. Егорова, С. А. Многообразие механизмов антибиотикорезистентности сальмонелл / С. А. Егорова, М. А. Макарова, А. В. Забровская [и др.] // Инфекция и иммунитет. - 2011. - Т. 1, № 4. - С. 303-310. - EDN NXERVL.

24. Ефременкова, О. Антибиотики: жизнь продолжается / О. Ефременкова ; фот. Е. Ершовой, О. Ефременковой. Наука и жизнь : ежемесячный научно-популярный журнал. Москва. 2006. №8. С. 4854. ISSN 0028-1263. Ил.: 9 фот., 2 табл., 2 рис.

25. Журавчук, Е. В. Применение бактерицидных ультрафиолетовых облучателей амальгамного типа при выращивании цыплят-бройлеров : специальность 06.02.10 "Частная зоотехния, технология производства продуктов животноводства" : диссертация на соискание ученой степени кандидата сельскохозяйственных наук / Журавчук Евгения Владимировна, 2019. - 142 с. - EDN TQONYS.

26. Задера, М. И. Применение антибиотиков при выращивании сельскохозяйственных животных. Антибиотики в сельскохозяйственной продукции / М. И. Задера, А. К. Груздева // Молодой ученый. - 2018. - № 19(205). - С. 20-23. - EDN XOMTRR.

27. Закревский, В. В. Гигиенические проблемы использования в питании населения мяса и мясопродуктов, содержащих антибиотики и нитрофураны / В. В. Закревский, С. Н. Лелеко // Евразийское Научное Объединение. - 2020. -№ 6-1(64). - С. 52-56. - EDN YKGGJA.

28. Игнатова, Ирина Дмитриевна. Фармако-токсикологические свойства и терапевтическая эффективность антибактериального препарата на основе флорфеникола : автореферат дис. ... кандидата биологических наук : 16.00.04 / Всерос. гос. центр качества и стандар. лек. средств для живот. и кормов. — Москва, 2007. — 22 с.

29. Изменение N 1 к ГОСТ Р 52306-2005 "Мясо птицы (тушки цыплят, цыплят-бройлеров и их разделанные части) для детского питания. Технические условия" (утв. приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 29 ноября 2012 г. N 1638-ст). https://base.garant.ru/70355052/

30. Ильясов, О.Р. и др. Санитарно-гигиеническая проблема загрязнения окружающей среды отходами животноводческих и птицеводческих комплексов / О. Р. Ильясов, О. П. Неверова, Г. В. Зуева, П. В. Шаравьев // Вестник Южно-Уральского государственного университета. Серия: Пищевые и биотехнологии. - 2017. - Т. 5, № 3. - С. 59-65. - DOI 10.14529/food170308. -EDN ZGQBTH.

31. Капитонова, Елена Алевтиновна. Эффективность использования адсорбентов нового поколения при производстве мяса цыплят-бройлеров : диссертация ... доктора биологических наук : 06.02.05 / Капитонова Елена Алевтиновна; [Место защиты: ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина»]. — Москва, 2022. — 344 с. : ил..

32. Кармолиев, Р. Х. Современные биохимические методы исследования в ветеринарии и зоотехнии / Р. Х. Кармолиев, канд. биол. наук ; Под ред. проф. С. И. Афонского. — Москва : Колос, 1971. — 288 с. : ил. : 22 см.

33. Кондрахин И. П. и др. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: справочник / [И. П. Кондрахин и др.]; под общ. ред. И. П. Кондрахина. - Москва: КолосС, 2004. - ISBN 5-9532-0165-6. - EDN QKWKND.

34. Криштафович В. И. и др. Товароведение и экспертиза мясных и мясосодержащих продуктов: Учебник / В. И. Криштафович, В. М. Позняковский, О. А. Гончаренко, Д. В. Криштафович. - 2-е издание, стереотипное. - Санкт-Петербург: ООО "Издательство "ЛАНЬ", 2024. - 432 с. - ISBN 978-5-507-51969-9. - EDN TOZHSZ.

35. Методическими указаниями по применению антибиотиков в ветеринарии. Главное управление ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР. М., 1973.

36. Насонов, И. В. Методические рекомендации по гематологическим и биохимическим исследованиям у кур современных кроссов / И.В. Насонов, Н.В. Буйко, Р.П. Лизун [и др.] // Минск: РУП «ИЭВ им. И.Н. Вышелесского НАН Беларуси». - 2014. - 32 с.

37. Наставление по применению препарата «Пневмостоп - О». https://www.mosagrogen.ru/catalog/pnevmostop-o/

38. Наставление по применению препарата «Энромаг - О». https://www.mosagrogen.ru/catalog/enromag-o/?ysclid=m5jj5f8jmi348553101

39. Нитяга, И. М. Мониторинг антибиотиков тетрациклиновой группы в мясе и мясопродуктах из птицы с целью предотвращения их загрязнения / И. М. Нитяга, С. А. Телегина, Д. П. Галушко // Научные известия. - 2022. - № 26. -С. 284-288. - EDN VKAIYH.

40. Пломодьялов, Д. Эффективность флорфеникола в лечении цыплят / Д. Пломодьялов // Животноводство России. - 2019. - № 10. - С. 44-45. - EDN WAFPGM.

41. Резниченко, Алексей Александрович. Фармако-токсикологические свойства и эффективность применения пребиотиков и новых биологически-активных веществ в бройлерном птицеводстве: диссертация ... доктора биологических наук: 4.2.1. / Резниченко Алексей Александрович; [Место защиты: ФГБОУ ВО «Кубанский государственный аграрный университет

имени И.Т. Трубилина»; Диссовет Д 220.038.XX (35.2.019.02)]. — Москва, 2023. — 320 с. : ил..

42. Руденко, С.А. Антибиотики: практикам к размышлению / С.А. Руденко // БИО. - 2020. - № 3(234). - С. 8-12. - EDN EAEJBY.

43. Сатимирова, А. Ж. Показатели качества мяса птиц различного термического состояния / А. Ж. Сатимирова, И. А. Ивкова, И. Г. Четвергова // Актуальные вопросы ветеринарии: Материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 100-летию кафедры ветеринарной микробиологии, инфекционных и инвазионных болезней факультета ветеринарной медицины ИВМиБ, Омск, 29 июня 2020 года. - Омск: Омский государственный аграрный университет имени П.А. Столыпина, 2020. - С. 441-445. - EDN WTSQZB.

44. Смирнов, А.М. Научно-методологические аспекты исследования токсических свойств фармакологических лекарственных средств для животных: монография / А.М. Смирнов, В.И. Дорожкин. - М.: Россельхозакадемия, 2008. - 18-22 с.

45. Сунцова О.А., Задорожная М.В., Лыско С.Б., Портянко А.В. Активность антибиотиков к культурам микроорганизмов, выделенных из погибших эмбрионов // Ветеринарный врач. 2019. №5. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/aktivnost-antibiotikov-k-kulturam-mikroorganizmov-vydelennyh-iz-pogibshih-embrionov (дата обращения: 25.02.2024).

46. Технический регламент Евразийского экономического союза "О безопасн ости мяса птицы и продукции его переработки" (ТР ЕАЭС 051/2021).

47. Тимофеева, С.С. Антибиотики в окружающей среде: состояние и проблемы / С.С. Тимофеева, О.С. Гудилова // XXI век. Техносферная безопасность. - 2021. - Т. 6. - № 3(23). - С. 251-265. - DOI 10.21285/2500-15822021-3-251-265. - EDN DIORQU.

48. Тимошенко, С.В. Безопасность мяса цыплят-бройлеров при применении антибиотика нового поколения / С. В. Тимошенко, В. М. Бачинская, Ю. И. Тимошенко, А. И. Грудев // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2023. - № 10. - С. 43-50. - DOI 10.36871/vet.zoo.bio.202310005. - EDN FEKBIH.

49. Тимошенко, С. В. Применение антибиотика нового поколения в птицеводстве / С. В. Тимошенко, В. М. Бачинская, Ю. И. Тимошенко // Зоотехния. - 2023. - № 8. - С. 26-29. - DOI 10.25708/ZT.2023.88.81.007. - EDN MDBPAV.

50. Тимошенко, С.В. Оценка антимикробной активности препаратов на основе азитромицина, флорфеникола, их сочетаний и сравнительная характеристика / С. В. Тимошенко, М. Г. Теймуразов, В. М. Бачинская, Ю. И. Тимошенко // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2024. - № 5. - С. 104-112. - DOI 10.36871/vet.zoo.bio.202405011. - EDN QVGPES.

51. Тимошенко, С. В. Изучение переносимости лекарственного препарата для ветеринарного применения азитромицин 10 % + флорфеникол 10 % на цыплятах-бройлерах / С. В. Тимошенко, В. М. Бачинская, Ю. И. Тимошенко // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2024. - № 7. - С. 6-15. - DOI 10.36871/vet.zoo.bio.202407001. - EDN BCWQAC.

52. Фармакорецептурный справочник врача-педиатра / сост. А. В. Сукало, А. А. Козловский. - Минск : Белорусская наука, 2013. - 374 с. - Режим доступа: по подписке. - URL: https://biblioclub.ru/index.php?page=book&id=231207 (дата обращения: 01.02.2025). - ISBN 978-985-08-1616-0. - Текст : электронный.

53. Фисинин, В.И. Получение продукции птицеводства без антибиотиков с использованием перспективных программ кормления на основе пробиотических препаратов / В. И. Фисинин, И. А. Егоров, Г. Ю. Лаптев [и др.] // Вопросы питания. - 2017. - Т. 86, № 6. - С. 114-124. - EDN ZVZHND.

54. Фисинин, В.И. Микробиологические риски в промышленном птицеводстве и животноводстве / В. И. Фисинин, В. И. Трухачев, И. П. Салеева

[и др.] // Сельскохозяйственная биология. - 2018. - Т. 53, № 6. - С. 1120-1130. - DOI 10.15389/agrobiology.2018.6.1120rus. - EDN VVEXZK.

55. Чернова О.А., Бевзюк Е.А. Комментарий к Федеральному закону от 02.01.2000 N 29-ФЗ "О качестве и безопасности пищевых продуктов". -Специально для системы ГАРАНТ, 2013 г.

56. Щепеткина, С. В. Современные принципы антибиотикотерапии в птицеводстве / С. В. Щепеткина, О. Б. Новикова, А. В. Забровская [и др.]. -Санкт-Петербург: Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины, 2015. - 160 с. - EDN XIXITG.

57. Щепеткина, С. В. Антибиотики в птицеводстве: запретить нельзя нормировать / С. В. Щепеткина // Эффективное животноводство. - 2019. - № 4(152). - С. 80-84. - DOI 10.24411/9999-007A-2019-1039. - EDN NJHHJC.

58. Aarestrup FM, Wegener HC, Collignon P. Resistance in bacteria of the food chain: epidemiology and control strategies. Expert Rev Anti Infect Ther. 2008 0ct;6(5):733-50. doi: 10.1586/14787210.6.5.733. PMID: 18847409.

59. Addo K. K., Mensah G. I., Aning K. G., Nartey N., Nipah G. K., Bonsu S., Akye M. L., Smits H. L. Microbiological quality and antibiotic residues in raw cow's milk sold informally in the coastal savannah region of Ghana. Trop Med Int Health. 2011 Feb;16(2):227-32. doi: 10.1111/j.1365-3156.2010.02666.x. Epub 2010 Nov 10. PMID: 21070512.

60. Aljumaah M. R., Alkhulaifi M. M., Abudabos A. M. In vitro Antibacterial Efficacy of Non-Antibiotic Growth Promoters in Poultry Industry. J Poult Sci. 2020 Jan 25;57(1):45-54. doi: 10.2141/jpsa.0190042. PMID: 32174764; PMCID: PMC7063082.

61. Antimicrobial resistance: global report on surveillance. Geneva: World Health Organization; 2014: 256. World Health Organization. (2014). DO -10.13140/RG.2.2.28068.55688. https://apps.who.int/iris/handle/10665/112642

62. Antonelli A., D'Andrea M. M., Brenciani A., Galeotti C. L., Morroni G., Pollini S., Varaldo P. E., Rossolini G. M. Characterization of poxtA, a novel

125

phenicol-oxazolidinone-tetracycline resistance gene from an MRSA of clinical origin. J Antimicrob Chemother. 2018 Jul 1;73(7): 1763-1769. doi: 10.1093/jac/dky088. PMID: 29635422.

63. Apata D. F. Antibiotic resistance in poultry. International Journal of Poultry Farming, 2009, 8: 404-408. DOI: 10.3923/ijps.2009.404.408. URL: https://scialert.net/abstract/?doi=ijps.2009.404.408

64. Baucheron S., Tyler S., Boyd D., Mulvey M. R., Chaslus-Dancla E., Cloeckaert A. AcrAB-TolC directs efflux-mediated multidrug resistance in Salmonella enterica serovar typhimurium DT104. Antimicrob Agents Chemother. 2004 0ct;48(10):3729-35. doi: 10.1128/AAC.48.10.3729-3735.2004. PMID: 15388427; PMCID: PMC521921.

65. Boamah V. E., Odoi H., Dalsgaard A. (2016). Practices and Factors Influencing the Use of Antibiotics in Selected Poultry Farms in Ghana. Journal of Antimicrobial Agents, 2(2), [1000120]. https: //doi.org/10.4172/2472-1212.1000120

66. Carvalho I. T., Santos L. Antibiotics in the aquatic environments: A review of the European scenario. Environ Int. 2016 Sep;94:736-757. doi: 10.1016/j.envint.2016.06.025. Epub 2016 Jul 15. PMID: 27425630.

67. Castanon J. I. History of the use of antibiotic as growth promoters in European poultry feeds. Poult Sci. 2007 Nov;86(11):2466-71. doi: 10.3382/ps.2007-00249. PMID: 17954599.

68. Christian Agyare, Vivian Etsiapa Boamah, Crystal Ngofi Zumbi and Frank Boateng Osei. Antibiotic Use in Poultry Production and Its Effects on Bacterial Resistance. Submitted: 20 March 2018 Reviewed: 07 June 2018 Published: 05 November 2018. DOI: 10.5772/intechopen.79371

69. Cogliani C., Goossens H., Greko C. (2011) Restricting Antimicrobial Use in Food Animals: Lessons from Europe: Banning Nonessential Antibiotic Uses in Food Animals Is Intended to Reduce Pools of Resistance Genes. https://doi.org/10.1128/microbe.6.274.1

70. Coke R. L., Hunter R. P., Isaza R., Koch D. E., Goatley M. A., Carpenter JW. Pharmacokinetics and tissue concentrations of azithromycin in ball pythons (Python regius). Am J Vet Res. 2003 Feb;64(2):225-8. doi: 10.2460/ajvr.2003.64.225. PMID: 12602593.

71. CSCRA. Systeme canadien de surveillance de la resistance aux antimicrobiense rapport De 2016. Gouvernement du Canada; 2016. https://www.canada.ca/fr/sante-publique/services/publications/medicaments-et-produits-sante/systeme-canadien-surveillance-resistance-antimicrobiens-rapport-2016.html

72. Darwish W. S., Eldaly E. A., El-Abbasy M. T., Ikenaka Y., Nakayama S., Ishizuka M. Antibiotic residues in food: the African scenario. Jpn J Vet Res. 2013 Feb;61 Suppl:S 13-22. PMID: 23631148.

73. Davila D., Kolacny-Babic L., Plavsic F. Pharmacokinetics of azithromycin after single oral dosing of experimental animals. Biopharm Drug Dispos. 1991 0ct;12(7):505-14. doi: 10.1002/bdd.2510120704. PMID: 1657238.

74. Davis J. L., Gardner S. Y., Jones S. L., Schwabenton B. A., Papich M. G. Pharmacokinetics of azithromycin in foals after i.v. and oral dose and disposition into phagocytes. J Vet Pharmacol Ther. 2002 Apr;25(2):99-104. doi: 10.1046/j.1365-2885.2002.00387.x. PMID: 12000529.

75. De Leener E., Martel A., De Graef E. M., Top J., Butaye P., Haesebrouck F., Willems R., Decostere A. Molecular analysis of human, porcine, and poultry Enterococcus faecium isolates and their erm(B) genes. Appl Environ Microbiol. 2005 May;71 (5):2766-70. doi: 10.1128/AEM.71.5.2766-2770.2005. PMID: 15870371; PMCID: PMC1087536.

76. Diarra, M. S., Rempel, H., Champagne, J., Masson, L., Pritchard, J., Topp, E. (2010). Distribution of antimicrobial resistance and virulence genes in Enterococcus spp: characterization of isolates from broiler chickens. Appl. Environ. Microbiol. 76, 8033-8043. doi: 10.1128/AEM.01545-10. https://irishvetjournal.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13620-021-00201-6

77. Dibner J. J., Richards J. D. Antibiotic growth promoters in agriculture: history and mode of action. Poult Sci. 2005 Apr;84(4):634-43. doi: 10.1093/ps/84.4.634. PMID: 15844822.

78. Drew R. H., Gallis H. A. Azithromycin--spectrum of activity, pharmacokinetics, and clinical applications. Pharmacotherapy. 1992;12(3): 161-73. PMID: 1319048.

79. Drusano G. L., Craig W. A. Relevance of pharmacokinetics and pharmacodynamics in the selection of antibiotics for respiratory tract infections. J Chemother. 1997 May;9 Suppl 3:38-44. PMID: 9248979.

80. Duc, V.M., Nakamoto, Y., Fujiwara, A. et al. Prevalence of Salmonella in broiler chickens in Kagoshima, Japan in 2009 to 2012 and the relationship between serovars changing and antimicrobial resistance. BMC Vet Res 15, 108 (2019). https://doi.org/10.1186/s12917-019-1836-6

81. Escudero E., Fernández-Varón E., Marín P., Espuny A., Nájera M. D., Cárceles C. M. Pharmacokinetics and tissue tolerance of azithromycin after intramuscular administration to rabbits. Res Vet Sci. 2006 Dec;81(3):366-72. doi: 10.1016/j.rvsc.2006.01.006. Epub 2006 Mar 10. PMID: 16530237.

82. EMA Committee for Medicinal Products for Veterinary Use (CVMP) and EFSA Panel on Biological Hazards (BIOHAZ); Murphy D, Ricci A, Auce Z, Beechinor JG, Bergendahl H, Breathnach R, Bures J, Duarte Da Silva JP, Hederová J, Hekman P, Ibrahim C, Kozhuharov E, Kulcsár G, Lander Persson E, Lenhardsson JM, Maciulskis P, Malemis I, Markus-Cizelj L, Michaelidou-Patsia A, Nevalainen M, Pasquali P, Rouby JC, Schefferlie J, Schlumbohm W, Schmit M, Spiteri S, Srcic S, Taban L, Tiirats T, Urbain B, Vestergaard EM, Wachnik-Swi<?cicka A, Weeks J, Zemann B, Allende A, Bolton D, Chemaly M, Fernandez Escamez PS, Girones R, Herman L, Koutsoumanis K, Lindqvist R, Norrung B, Robertson L, Ru G, Sanaa M, Simmons M, Skandamis P, Snary E, Speybroeck N, Ter Kuile B, Wahlstrom H, Baptiste K, Catry B, Cocconcelli PS, Davies R, Ducrot C, Friis C, Jungersen G,

More S, Muñoz Madero C, Sanders P, Bos M, Kunsagi Z, Torren Edo J, Brozzi R,

128

Candiani D, Guerra B, Liebana E, Stella P, Threlfall J, Jukes H. EMA and EFSA Joint Scientific Opinion on measures to reduce the need to use antimicrobial agents in animal husbandry in the European Union, and the resulting impacts on food safety (RONAFA). EFSA J. 2017 Jan 24;15(1):e04666. doi: 10.2903/j.efsa.2017.4666. PMID: 32625259; PMCID: PMC7010070.

83. ESVAC. Sales of veterinary antimicrobial agents in 30 european countries in 2015. Trends from 2010 to 2015. Seventh Esvac Report. Ema/184855/2017. 2017. https://www.ema.europa.eu/system/files/documents/report/wc500236750_en.pdf

84. European Union. Ban on antibiotics as growth promoters in animal feed enters into effect. Regulation. Brussels: European Union. 2006. 1P:05:1687. https: //www.academia.edu/27550766/The_European_ban_on_antibiotic_growth_p romoters_in_animal_feed_From_challenges_to_opportunities

85. Fiese E. F., Steffen S. H. Comparison of the acid stability of azithromycin and erythromycin A. J Antimicrob Chemother. 1990 Jan;25 Suppl A:39-47. doi: 10.1093/jac/25.suppl_a.39. PMID: 2154437.

86. Food and Agricultural Organization. FAO Publications Catalogue 2017. United Nations: Food and Agricultural Organization; 2017. http: //www.fao.org/3/b-i6407e.

87. Foulds G., Johnson R. B. Selection of dose regimens of azithromycin . J Antimicrob Chemother. 1993 Jun;31 Suppl E:39-50. doi: 10.1093/jac/31.suppl_e.39. PMID: 8396095.

88. Foulds G., Shepard R. M., Johnson R. B. The pharmacokinetics of azithromycin in human serum and tissues. J Antimicrob Chemother. 1990 Jan;25 Suppl A:73-82. doi: 10.1093/jac/25.suppl_a.73. PMID: 2154441.

89. Girard D., Finegan S. M., Dunne M. W., Lame M. E. Enhanced efficacy of single-dose versus multi-dose azithromycin regimens in preclinical infection models. J Antimicrob Chemother. 2005 Aug;56(2):365-71. doi: 10.1093/jac/dki241. Epub 2005 Jul 7. PMID: 16002421.

90. Gladue R. P., Snider M. E. Intracellular accumulation of azithromycin by cultured human fibroblasts. Antimicrob Agents Chemother. 1990 Jun;34(6):1056-60. doi: 10.1128/AAC.34.6.1056. Erratum in: Antimicrob Agents Chemother 1990 0ct;34(10):2041. PMID: 2168141; PMCID: PMC171758.

91. Gladue R. P., Bright G. M., Isaacson R. E., Newborg M. F. Uptake of azithromycin (CP-62,993) by phagocytic cells in vitro and in vivo: possible mechanism of delivery and release at sites of infection. Antimicrob Agents Chemother. 1989 Mar;33(3):277-82. doi: 10.1128/AAC.33.3.277. PMID: 2543276; PMCID: PMC171479.

92. Goetting V., Lee K. A., Tell L. A. Pharmacokinetics of veterinary drugs in laying hens and residues in eggs: a review of the literature. J Vet Pharmacol Ther. 2011 Dec;34(6):521-56. doi: 10.1111/j.1365-2885.2011.01287.x. Epub 2011 Jun 17. PMID: 21679196

93. González Ronquillo, M., and Ángeles Hernández, J. C. (2017). Antibiotics and synthetic growth promoters in animal diets: a review of effects and analytical methods. Food Control, 72, 255-267. doi:10.1016/j.foodcont.2016.03.00

94. Hannan PC. Guidelines and recommendations for antimicrobial minimum inhibitory concentration (MIC) testing against veterinary mycoplasma species. International Research Programme on Comparative Mycoplasmology. Vet Res. 2000 Jul-Aug;31(4):373-95. doi: 10.1051/vetres:2000100. PMID: 10958240.

95. Hugo W. B., Russel A. D. Pharmaceutical Microbiology. 6thed. Oxford: Blackwell Science Ltd; 1998. p. 514. https: //www.drhazhan.com/Pharmaceutical%20Microbiology%206th%20ed%20-%20W.%20Hugo,%20A.%20Russell%20(Blackwell,%201998)%20WW.pdf

96. Hunter R. P., Lynch M. J., Ericson J. F., Millas W. J., Fletcher A. M., Ryan N. I., Olson J. A. Pharmacokinetics, oral bioavailability and tissue distribution of azithromycin in cats. J Vet Pharmacol Ther. 1995 Feb;18(1):38-46. doi: 10.1111/j.1365-2885.1995.tb00549.x. PMID: 7752305.

97. Jakobsen L., Kurbasic A., Skjot-rasmussen L., Ejrn^s K., Porsbo L. J., Pedersen K., Jensen L. B., Emborg H., Agers0 Y., Olsen KEP, Aarestrup F. M, Frimodt-moller N., Hammerum A. M. Escherichia coli isolates from broiler chicken meat, broiler chickens, pork and pigs share phylogroups and antimicrobial resistance with community-dwelling. Foodborne Pathogens and Disease. 2010;7:537-547. https://www.semanticscholar.org/paper/Escherichia-coli-isolates-from-broiler-chicken-and-Jakobsen-Kurbasic/407aa807f6e60ade4a8106b113d71f95da734525

98. Landers T. F., Cohen B., Wittum T. E., Larson E. L. A review of antibiotic use in food animals: perspective, policy, and potential. Public Health Rep. 2012 Jan-Feb;127(1):4-22. doi: 10.1177/003335491212700103. PMID: 22298919; PMCID: PMC3234384.

99. Laxminarayan R., Duse A., Wattal C., Zaidi A. K., Wertheim H. F., Sumpradit N., Vlieghe E., Hara G. L., Gould I. M., Goossens H., Greko C., So A. D., Bigdeli M., Tomson G., Woodhouse W., Ombaka E., Peralta A. Q., Qamar F. N., Mir F., Kariuki S., Bhutta Z. A., Coates A., Bergstrom R., Wright G. D., Brown E. D., Cars O. Antibiotic resistance-the need for global solutions. Lancet Infect Dis. 2013 Dec;13(12): 1057-98. doi: 10.1016/S1473-3099(13)70318-9. Epub 2013 Nov 17. Erratum in: Lancet Infect Dis. 2014 Jan;14(1):11. Erratum in: Lancet Infect Dis. 2014 Mar;14(3):182. PMID: 24252483.

100. Leverstein-van Hall M. A., Dierikx C. M., Cohen Stuart J., Voets G. M., van den Munckhof M. P., van Essen-Zandbergen A., Platteel T., Fluit A. C., van de Sande-Bruinsma N., Scharinga J., Bonten M. J., Mevius D. J.; National ESBL surveillance group. Dutch patients, retail chicken meat and poultry share the same ESBL genes, plasmids and strains. Clin Microbiol Infect. 2011 Jun;17(6):873-80. doi: 10.1111/j.1469-0691.2011.03497.x. Epub 2011 Apr 4. PMID: 21463397.

101. Liu P, Allaudeen H, Chandra R, Phillips K, Jungnik A, Breen JD, Sharma A. Comparative pharmacokinetics of azithromycin in serum and white blood cells of healthy subjects receiving a single-dose extended-release regimen versus a 3-day immediate-release regimen. Antimicrob Agents Chemother. 2007 Jan;51(1):103-9.

doi: 10.1128/AAC.00852-06. Epub 2006 Oct 23. PMID: 17060516; PMCID: PMC1797671.

102. Lockwood S., Said N. Options for a strategic approach to pharmaceuticals in the environment. Final Report. Luxembourg: Publ. Office of the European Union, 2019. 289 p. https://www.readkong.com/page/options-for-a-strategic-approach-to-pharmaceuticals-in-the-3232017

103. Long K. S., Poehlsgaard J., Kehrenberg C., Schwarz S., Vester B. The Cfr rRNA methyltransferase confers resistance to Phenicols, Lincosamides, Oxazolidinones, Pleuromutilins, and Streptogramin A antibiotics. Antimicrob Agents Chemother. 2006 Jul;50(7):2500-5. doi: 10.1128/AAC.00131-06. PMID: 16801432; PMCID: PMC1489768.

104. Lu J., Zhang J., Xu L., Liu Y., Li P., Zhu T., Cheng C., Lu S., Xu T., Yi H., Li K., Zhou W., Li P., Ni L., Bao Q. Spread of the florfenicol resistance floR gene among clinical Klebsiella pneumoniae isolates in China. Antimicrob Resist Infect Control. 2018 Nov 1;7:127. doi: 10.1186/s13756-018-0415-0. PMID: 30410748; PMCID: PMC6211440.

105. Lucas M. F., Errecalde J. O., Mestorino N. Pharmacokinetics of azithromycin in lactating dairy cows with subclinical mastitis caused by Staphylococcus aureus. J Vet Pharmacol Ther. 2010 Apr;33(2):132-40. doi: 10.1111/j.1365-2885.2009.01128.x. PMID: 20444037.

106. Manzetti S., Ghisi R. The environmental release and fate of antibiotics. Mar Pollut Bull. 2014 Feb 15;79(1-2):7-15. doi: 10.1016/j.marpolbul.2014.01.005. Epub 2014 Jan 20. PMID: 24456854.

107. Maron D. F., Smith T. J., Nachman K. E. Restrictions on antimicrobial use in food animal production: an international regulatory and economic survey. Global Health. 2013 Oct 16;9:48. doi: 10.1186/1744-8603-9-48. PMID: 24131666; PMCID: PMC3853314.

108. Marshall B. M., Levy S. B. Food animals and antimicrobials: impacts on human health. Clin Microbiol Rev. 2011 0ct;24(4):718-33. doi: 10.1128/CMR.00002-11. PMID: 21976606; PMCID: PMC3194830.

109. Mathew A. G., Liamthong S., Lin J., Hong Y. Evidence of class 1 integron transfer between Escherichia coli and Salmonella spp. on livestock farms. Foodborne Pathog Dis. 2009 0ct;6(8):959-64. doi: 10.1089/fpd.2009.0263. PMID: 19630513.

110. Mehdi Y, Létourneau-Montminy MP, Gaucher ML, Chorfi Y, Suresh G, Rouissi T, Brar SK, Côté C, Ramirez AA, Godbout S. Use of antibiotics in broiler production: Global impacts and alternatives. Anim Nutr. 2018 Jun;4(2):170-178. doi: 10.1016/j.aninu.2018.03.002. Epub 2018 Apr 3. PMID: 30140756; PMCID: PMC6103476.

111. Mehdizadeh S., Kazerani H. R., Jamshidi A. Screening of chloramphenicol residues in broiler chickens slaughtered in an industrial poultry abattoir in Mashhad, Iran. Iranian Journalof Veterinary Scienceand Technology. 2010;2:25-32. DOI: 10.22067/veterinary.v2i1.3948

112. Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically; Approved Standard-Ninth Edition, CLSI, 2012

113. Mirlohi M., Aalipour F., Jalali M. Prevalence of antibiotic residues in commercial milk and its variation by season and thermal processing methods. International Journal of Environmental Health Engineering. 2013;2:41. https://www.researchgate.net/publication/290615098_Prevalence_of_antibiotic_res idues_in_commercial_milk_and_its_variation_by_season_and_thermal_processing _methods

114. Ogle M. In Meat We Trust: An Unexpected Historyof Carnivore America. New York: Houghton Mifflin Harcourt Publishing Company; 2013. p. 384. https://books.google.ru/books?id=QWKiAQAAQBAJ&hl=ru&source=gbs_navlin

ks_s

115. Pan M., Chu L. M. Fate of antibiotics in soil and their uptake by edible crops. Sci Total Environ. 2017 Dec 1;599-600:500-512. doi: 10.1016/j.scitotenv.2017.04.214. Epub 2017 May 5. PMID: 28482307.

116. Piggott T., Moja L., Huttner B., Okwen P., Raviglione M. C. B., Kredo T., Schunemann H. J. WHO Model list of essential medicines: visions for the future. Bull World Health Organ. 2024 Oct 1;102(10):722-729. doi: 10.2471/BLT.24.292359. Epub 2024 Aug 29. PMID: 39318894; PMCID: PMC11418853.

117. Sahoo K. C., Tamhankar A. J., Johansson E., Lundborg C. S. Antibiotic use, resistance development and environmental factors: a qualitative study among healthcare professionals in Orissa, India. BMC Public Health. 2010 Oct 21;10:629. doi: 10.1186/1471-2458-10-629. PMID: 20964815; PMCID: PMC2973940.

118. Sally Chan. The Chinese learner - a question of style / Sally Chan // Education + Training. - 1999. - Vol. 41, No. 6-7. - P. 294-305. - DOI 10.1108/00400919910285345. - EDN EBHEAB.

119. Schwarz S., Kehrenberg C., Doublet B., Cloeckaert A. Molecular basis of bacterial resistance to chloramphenicol and florfenicol. FEMS Microbiol Rev. 2004 Nov;28(5):519-42. doi: 10.1016/j.femsre.2004.04.001. PMID: 15539072.

120. Sharkey L. K., Edwards T. A., O'Neill A. J. ABC-F Proteins Mediate Antibiotic Resistance through Ribosomal Protection. mBio. 2016 Mar 22;7(2):e01975. doi: 10.1128/mBio.01975-15. PMID: 27006457; PMCID: PMC4807367.

121. Tao W., Lee M. H., Wu J., Kim N. H., Kim J. C., Chung E., Hwang E. C., Lee S. W. Inactivation of chloramphenicol and florfenicol by a novel chloramphenicol hydrolase. Appl. Environ. Microbiol. 2012, 78, 6295-6301. https://scholar.google.co.uk/citations7view op=view citation&hl=en&user=q7VN sLMAAAAJ&citation for view=q7VNsLMAAAAJ:gI9wzKcniAoC

122. Tao W., Lee M. H., Yoon M. Y., Kim J. C., Malhotra S., Wu J., Hwang E. C., Lee S. W. Characterization of two metagenome-derived esterases that reactivate

134

chloramphenicol by counteracting chloramphenicol acetyltransferase. J. Microbiol. Biotechnol. 2011, 21, 1203-1210. DOI: 10.4014/imb.ll07.07034. 2-s2.0-84855237706

123. Van Boeckel T. P., Brower C., Gilbert M., Grenfell B. T., Levin S. A., Robinson T. P., Teillant A., Laxminarayan R. Global trends in antimicrobial use in food animals. Proc Natl Acad Sci US A. 2015 May 5;112(18):5649-54. doi: 10.1073/pnas.1503141112. Epub 2015 Mar 19. PMID: 25792457; PMCID: PMC4426470.

124. Van Boeckel T. P., Gandra S., Ashok A., Caudron Q., Grenfell B. T., Levin S. A., Laxminarayan R. Global antibiotic consumption 2000 to 2010: an analysis of national pharmaceutical sales data. Lancet Infect Dis. 2014 Aug;14(8):742-750. doi: 10.1016/S1473-3099(14)70780-7. Epub 2014 Jul 9. Erratum in: Lancet Infect Dis. 2017 Sep;17(9):897. doi: 10.1016/S1473-3099(17)30241-4. PMID: 25022435.

125. Van Hoek A. H., Mevius D., Guerra B., Mullany P., Roberts A. P., Aarts H. J. Acquired antibiotic resistance genes: an overview. Front Microbiol. 2011 Sep 28;2:203. doi: 10.3389/fmicb.2011.00203. PMID: 22046172; PMCID: PMC3202223.

126. Van den Bogaard A. E., Stobberingh E. E. Epidemiology of resistance to antibiotics. Links between animals and humans. Int J Antimicrob Agents. 2000 May;14(4):327-35. doi: 10.1016/s0924-8579(00)00145-x. PMID: 10794955.

127. Womble A. Y., Zhiger S., Lee E. A., Vikoy T. V. Pharmacokinetics of clarithromycin and its concentration in body fluids and bronchoalveolar cells of foals. Am J Net Rus. 2006 0ctober;67(10):1681-6. doi: 10.2460/ajvr.67.10.1681. PMID: 17014316.

128. Yulistiani R., Praseptiangga D., Supyani Sudibya Raharjo D., Shirakawa, T. (2017). Prevalence of Antibiotic-resistance Enterobacteriaceae strains Isolated from Chicken Meat at Traditional Markets in Surabaya, Indonesia. In IOP Conference Series: Materials Science and Engineering (Vol. 193). Institute of Physics Publishing. https://doi.org/10.1088/1757-899X/193A/012007.

129. Zeinab M. S. Amin Girh, Nagwa S. Rabie and Mona S. Zaki. Antibiotic Use in Poultry Production and Its Effects on Bacterial Resistance. Researcher 2020;12(7):18-22. ISSN 1553-9865 (print); ISSN 2163-8950 (online). http://www.sciencepub.net/researcher. 4. doi: 10.7537/marsrsj120720.04.

130. Zeinab M. S. Amin Girh, Nagwa S. Rabie and Mona S. Zaki. Control of bacterial diseases. Rep Opinion 2019;12(1):12-16. ISSN 1553-9873 (print); ISSN 2375-7205 (online). http://www.sciencepub.net/report. 3. doi:10.7537/marsroj120119.03.

ПРИЛОЖЕНИЯ

Акт по изучению терапевтической эффективности антибиотика Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% в условиях птицефабрики ООО «ТТ1К Ьалтптицепром», Калининградская оОласть, ороилерные площадки, с

определением остаточного содержания антибиотиков в мясе и субпродуктах опытной группы и сроков их выведения.

Мы, пителодписа&шиесй - йСПйГ.пИТвЛЬлый директор ООО »ТПК Балтптицепром» Гулиев Р.Д., директор по выращиванию • главный ветеринарный врач ООО «ТПК Балтптицепром» - Кузнецов P.A., ветеринарный врач АО «Мосагроген» - Тимошенко СВ., составили настоящий акт о том, что из птнцефзбрмке ООО "ТПК Бзлттггкцбпром», s период сентябрь - октябрь 2022 года, при выращивании цыплят бройлеров, применялся опытный препарат Азитромицин 10% ♦ Флорфеникол 10% серия оп040721 , годен до 08.2023г., производства АО «Мосагроген», в течении 5 дней с 16 по 20 дни выоашивания. в дозе 300 мл поепарата на tohhv воды (птичники Nff№ 71,72,73), согласно наставлению по применению, разработанному АО «Мосагроген». В контрольной группе применялся препарат Левобром производства ООО «Ветлайн» для ООО НПК «Фарминдустрия» серия RU0 80322, годен 03.2025г., в дозе 500 мл/тонну воды (птичники №№ 74,75,76), согласно схемы, утвержденной на предприятии. Выпойку препаратов проводили через медикаторы.

Опытная и контрольная группы птицы (кроссы Росс - 308, Кобб - 500), содержались в трехзальных птичниках с поголовьем 119854 голов в опытной и 112659 голов в контрольной группах. В качестве подстилочного материала использовалась стружка хвойных пород деревьев. Условия содержания, кормление и поение на протяжении всего опыта были одинаковыми. Корма поступали со своего комбикормового завода, согласно срокам выращивания. Вид«! со CKtMWMHW, прихиди! синему иб«зжеж:*иы<*мин. Схемы ueiepnMdpHwx лечебно-профилактических мероприятий были одинаковыми, кроме применения антибиотиков на вторую выпойку в возрасте 16-20 суток. В контрольной группе применялся препарат Левобром в дозе 500 мл/т воды, согласно утвер»кд21*нсй схемы из предприятии, s ояыпюй препарат Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% в дозе 300 мл/т воды.

За птицей опытной и контрольной групп вели ежедневное клиническое наблюдение, учитывая их состояние, аппетит, поведение, количество павших.

За несь период наблюдения не было птмечано отоииателкного влияния препарата на клиническое состояние опытной группы птицы. Цыплята активно потребляли корм и воду, не было отклонений от нормы в поведении.

Схема применения препарата Азитромицин 10% ♦ Флорфеникол 10% приведена в Таблице!:

Таблица 1

Азитромицин 10% ♦ Флорфеникол 10%

Возраст в днях Доза, в мл/л воды

16 день 0,3м л/л

17 день 0,3мл/л

18 день 0,3мл/л

19 день 0,3мл/л

20 день 0,3мл/л

Препарат готовился перед непосредственной выпойкой птице. Медикатор выставляли 0,1% - суточную дозу выпаивали в течении 4-6 часов методом пульс-дозинг.

Примерный расчет расхода препарата Азитромицин 10% 4 Флорфенииол 10% на 10 тысяч голов, кроссы Росс - 308, Кобб - 500 (Таблица

2).

_________Таблица 2

Возраст, дней Живая масса, кг Поголовье, гол Расход воды, TfWM й гугми Количество препарата, мл

16 0,72 10000 1.8 540

17 0,79 10000 2.0 600

18 0,86 10000 2.1 630

19 0,95 10000 2.3 690

20 1.03 10000 2.5 750

Итого: 3120 мл.

Основными проблемами на площадках выращивания ООО «ТПК Bd/птицепром», сейчас являются - колибактериоз, поражение суставов, некроз головки бедренной кости (НГБК).

Причинами проявления колибактериоза могут являться циркуляции полевых вирусов и иммуносупресия у цыплят. В ходе бактериологических исследований отделялся стафилококк (мгжпозйсмсчиа* жидкость).

Некроз головни бедренной кости в большинстве случаев обусловлено очаговой бактериальной инфекцией. В этих случаях в качестве возбудителя чаще всего выделяют - Staphylococcus aureus, Enterococcus и Mycoplasma

*ynnvia Р«>ппмпугмяя имфркммя w нарушений «мтлминно-мимйпапкмпго

обмена, нехватка Са, Р и витамина D3, для их нормального усвоения.

При убое птицы исследовались сыворотки крови - на напряженность иммунитета к основным вирусным заболеваниям (НБ, ИББ, ИБК> - результаты в норме-

В процессе выращивания птицы на корпусах, где применялся опытный препарат Азитромицин 10% ♦ Ф/юрфеникол 10% с 16 по 20 сутки не было отмечано резкого роста падежа птицы в последний дни выращивания. Дипампло надето риёпсж не оСст С|А>п«г и&фвщимпиЯ. пГБК ОТтёЧвДИСь лишь единичные случаи.

На корпусах контрольной группы, где применяли Левобром, отмечался резкий рост падежа на последних сроках выращивания Количество случаев НГБК сущостзенчое.

Результаты проведенного опыта представлены в Таблице 3:

Таблица 3

№ опыт контроль

11Г Коопуг. 71 77 73 среднее 74 74 76 грелмрр

— I 2. Посажено, гол. 37651 40320 41883 39951 42210 35889 34560 37Б53

3. Сохранность, % %,7% 96,7% 97,0% 96,8 94,4% 91,3% 94,6% 93,4

4. Среднесуточный привес, гр. 61,3 58,2 64,0 61,2 58,6 59,0 59,6 59,1

I5- Конверсия корма 1,66 1,65 1,64 1,65 1,7 1,71 1,7 1,7

Из ТабЛПцо« 3 6пДг>0, 470 Не ОПшГмыл КОрЛуСал - СОлрёппСгСТо о СрвДНсМ

выше на 3,4 %, среднесуточный привес выше на 2,1 гр. конверсия корма ниже на 0,05 единицы, что говорит о правильности выбора антибиотика и его терапевтической зффективности на данной птицефабрике.

по по3упЬтэт2м Таблицы 3, «ложно сделать заключение что иренэргт Азитромицин 10% * Флорфеникол 10% является высокоэффективным средством при лечении желудочно-кишечных и респираторных заболеваний бактериальной этиологии у цыплят бройлеров.

В пооцессе пооведенин опыта на птицефабрике производили отбор проб для определения остаточного содержания антибиотиков в мясе и субпродуктах птицы:

Для установления остаточного содержания антибиотиков в мясе и субпродуктах птицы (тушка цыпленка бройлера, печень, мышечный желудок, сердце) провели отбор проб продукции согласно плана приведенного ниже. Отбор проб был произведен в соответствие с ГОСТ 31467— 2012 (МЯСО ПТИЦЫ. СУБПРОДУКТЫ И ПОЛУФАБРИКАТЫ ИЗ МЯСА ПТИЦЫ Методы отбора проб и подготовка их к испытаниям).

1. Первую пробу отбирали на 7 сутки после окончания выпойки антибиотика - возраст 27 дней.

2. Вторая пробу отбирали на 10 сутки, в возрасте 30 дней.

Акт по изучению терапевтической эффективности антибиотика Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% в условиях птицефабрики ООО «Равис - птицефабрика Сосновская», Челябинская область, бройлерные площадки, с определением остаточного содержания антибиотиков в мясе и субпродуктах опытной группы и сроков их выведения.

Мы, нижеподписавшиеся - главный ветеринарный врач ООО «Равис -птицефабрика Сосновская» - Стенникова И.А., старший ветеринарный врач бройлерного цеха №1 Гурименко A.A., ветеринарный врач АО «Мосэгроген» -Тимошенко C.B.. составили настоящий акт о том, что на птицефабрике ООО «Равис - птицефабрика Сосновская», в период январь - март 2023 года, при выращивании цыплят бройлеров, применялся опытный препарат Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% серия оп040721, годен до 08.2023г., производства АО «Мосагроген», в течении 5 дней с 16 по 20 дни выращивания, в дозе 300 мл препарата на тонну воды (птичники NsN« 45,46), согласно наставлению по применению, разработанному АО «Мосагроген». В контрольной группе применялись зэрегестрированные препараты 13-15 дни Тилмикозин в дозе 300 мл/тонну воды, 19-23 дни препараты группы Фторхинолонов в дозе 500 мл/тонну воды (птичники №N«49,50), согласно схемы, утвержденной на предприятии. Выпойку препаратов проводили через медикаторы.

Опытная и контрольная группы птицы (кросс Росс - 308), содержались в птичниках с трехярусным клеточным оборудованием производства Big Dutchman и поголовьем 146000 голов в опытной и 148480 голов в контрольной группах. Условия содержания, кормление и поение на протяжении всего опыта были одинаковыми, Корма поступали со своего комбикормового завода, согласно срокам выращивания. Вода со скважины, проходит систему обезжелезивания. Схемы ветеринарных лечебно-профилактических мероприятий были одинаковыми, кроме применения антибиотиков на вторую выпойку.

За птицей опытной и контрольной групп вели ежедневное клиническое наблюдение, учитывая их состояние, аппетит, поведение, количество павших.

За весь период наблюдения не было отмечано отрицательного влияния препарата на клиническое состояние опытной группы птицы. Цыплята активно потребляли корм и воду, не было отклонений от нормы в поведении.

Схема применения препарата Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% приведена в Таблице!:

Таблица 1

Азитромицин 10% + Флорфеникол 10%

Возраст в днях

Доза, в мл/л воды

16 день

О, Змл/л

17 день

0,3мл/л

Таблица 3

№ опыт конт роль

1. Корпус, № 45 46 среднее 49 50 среднее

2. Посажено, гол. 73280 72720 73000 76480 72000 Г"'"-*- 74240

3. Сохранность, % 90,4 91,9 91.2 87.44 90.06 88.8

4. Среднесуточный привес, гр. 52,69 51,80 52,2 48,46 49,08 48,8

Б. Конверсия корма 1,55 1,58 1,57 1,59 1,56 1,58

Ь. Индекс продуктивности | 324 1 316 320 285 296 291

Из Таблицы 3 видно, что на опытных корпусах - сохранность в среднем выше на 2,4 %, среднесуточный привес выше на 3.4 гр. конверсия корма ниже на 0,01 единицы, индекс продуктивности на 29 единиц выше, что говорит о правильности выбора антибиотика и его терапевтической эффективности на данной птицефабрике.

По результатам Таблицы 3, можно сделать заключение что препарат Азитромицин 10% + Флорфеникол 10% является высокоэффективным средством при лечении желудочно-кишечных и респираторных заболеваний бактериальной этиологии у цыплят бройлеров

В процессе проведения опыта на птицефабрике производили отбор проб для определения остаточного содержания антибиотиков в мясе и субпродуктах птицы:

Для установления остаточного содержания антибиотиков в мясе и субпродуктах птицы (тушка цыпленка бройлера, печень, мышечный желудок, сердце) провели отбор проб продукции согласно плана приведенного ниже. Отбор проб был произведен в соответствие с ГОСТ 31467— 2012 (МЯСО ПТИЦЫ, СУБПРОДУКТЫ И ПОЛУФАБРИКАТЫ ИЗ МЯСА ПТИЦЫ Методы отбора проб и подготовка их к испытаниям).

1. Первую пробу отбирали на 6 сутки после окончания выпойки антибиотика в возрасте 26 дней.

2. Вторая пробу отбирали на 10 сутки после окончания выпойки антибиотика в возрасте 30 дней.

3. Третья пробу отбирали на 13 сутки после окончания выпойки антибиотика в возрасте 33 дня.

4. Четвертая пробу отбирали на 17 сутки после окончания выпойки антибиотика в возрасте 37 дней,

Отобранный материал был упакован в пакеты с указанием даты отбора пробы, количества дней после окончания выпойки препарата, возраста птицы и замороживали.

Отобранный материал был доставлен в лабораторию для проведения исследования на остаточное содержание антибиотиков в мясе и органах птицы.

Результаты исследований на остаточное содержание антибиотиков в мясе и органах птицы прилагаются.

Старший ветеринарный врач бройлерного цеха N81

Главный ветеринарный врач ООО «Равис - птицефабрика Сосно

Стенникова И.А.

Гурименко А.А.

Ветеринарный врач АО «Мосагроген»

Тимошенко С.В.