Внутривенное ультрафиолетовое облучение крови у кардиохирургических больных с инфекционным эндокардитом тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.37, кандидат медицинских наук Колесников, Сергей Васильевич

• Колесников, Сергей Васильевич
• кандидат медицинских наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Колесников, Сергей Васильевич

Введение.

Глава I Перспективы использования ультрафиолетового облучения крови у кардиохирургических больных с инфекционным эндокардитом: современное состояние проблемы

Обзор литературы).

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Внутривенное ультрафиолетовое облучение крови у кардиохирургических больных с инфекционным эндокардитом»

эндокардитом.11

1.1.1. Этиопатогенез, иммунопатология и диагностика инфекционного эндокардита.13

Возбудители инфекционного эндокардита.13

Предрасполагающие факторы.14

Роль антисарколеммалъных антител в патогенезе ИЭ.15

Роль нарушений клеточного и гуморального иммунитета в патогенезе ИЭ. 15

Роль иммунных комплексов и комплемента в патогенезе ИЭ.17

Роль патогенных факторов микроорганизмов в активации ИЭ.18

Цитокины и механизмы воспаления при ИЭ.19

Вопросы диагностики ИЭ.22

1.1.2. Взаимосвязи инфекционного воспаления и факторов операционно-перфузионного стресса у больных ИЭ.24

1.1.3. Применение квантовой фотогемотерапии у кардиохирургических больных с целью коррекции иммунных и метаболических нарушений.29

Моделирование УФО лейкоцитарно - эндотелиального взаимодействия

Молекулы адгезии.31

Окись азота пероксидация липидов и У ФОК.33

Воздействие ультрафиолета на клеточный и гуморальный иммунитет.

Роль цитокинов.34

Влияние ультрафиолета на апоптоз иммунных клеток.

Иммунная толерантность и гшмуносупрессия.36

Заключение.38

1.1.4. Резюме.40

Заключение диссертации по теме «Анестезиология и реаниматология», Колесников, Сергей Васильевич

ВЫВОДЫ

1. В послеоперационном периоде у больных приобретенными пороками сердца с инфекционным эндокардитом защитный иммуновоспалительный ответ имеет гетерогенный характер: с длительным напряжением или ранним угнетением реактивного нейтропоэза, и метаболической дисфункцией нейтрофилов. Характерным нарушением клеточного звена иммунитета является пролонгированная депрессия Т-лимфоцитов.

2. Сохранение активности процессов перекисного окисления липидов у больных приобретенными пороками сердца с инфекционным эндокардитом в послеоперационном периоде сопровождается умеренным напряжением системы антиоксидантной защиты, с возрастанием уровня церулоплазмина до 40%.

3. Внутривенное ультрафиолетовое облучение крови в применявшемся режиме не увеличивает исходную активность перекисных процессов и способствует восстановлению антиоксидантной защиты: на второй неделе — за счет антирадикального, а на третьей - и антиперекисного звена.

4. Ранний курс внутривенного ультрафиолетового облучения крови у больных приобретенными пороками сердца с инфекционным эндокардитом в послеоперационном периоде уменьшает частоту инфекционно-септических осложнений более чем в 4 раза. Иммуномодулирующие механизмы ВУФОК заключаются в улучшении фагоцитирующей функции нейтрофилов и пролиферативного статуса Т - клеточного звена на фоне сбалансированных процессов перекисного окисления липидов.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОММЕНДАЦИИ

1. У больных с ИЭ любой степени активности с 3-4 суток после операции с целью немедикаментозной иммунокоррекции при отсутствии противопоказаний рекомендуется курс внутривенного УФОК средне- и длинноволнового спектра (№ 5 -7).

2. Дополнительными показаниями для ВУФОК независимо от исходной степени активности ИЭ являются периоперационные осложнения, интраоперационные находки (абсцессы, вегетации), положительные микробиологические результаты посевов крови и интракардиальных структур, сниженные показатели НСТ-теста, тенденция к лимфопении на протяжении нескольких суток после операции.

3. В качестве сосудистого доступа могут использоваться локтевая, подключичная или бедренная вена, с расчетом времени лечения по средней скорости кровотока в указанных сосудах (для взрослого: 30-40, 120-140 и 160-180 мл/мин, соответственно).

4. При использовании комбинации второго и третьего режима ВУФОК, обладающих максимальными иммуномодулирующими свойствами, средний объем облучаемой крови должен быть не менее 20% ОЦК для каждого (суммарно 40% ОЦК).

5. В качестве лабораторных критериев длительности и эффективности курса ВУФОК информативна динамика следующих иммунологических параметров: показатели НСТ-теста, динамика регенеративных форм нейтрофилов и абсолютного числа лимфоцитов.

149

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Колесников, Сергей Васильевич, 2004 год

1. Анисимов A.A. Основы биохимии. М. «Высшая школа». 1986. 441-459 С.

2. Берлиен Х-П., Мюллер Г.Й.(пер.с нем. Коротеева Н.И.) Прикладная лазерная медицинам. «Интерэксперт». 1997. С. 88-89.

3. Биленко М.В. Ишемические и реперфузионные повреждения органов. М. «Медицина», 1989. 45-68С.

4. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М. «Наука», 1972. 35-51 С.

5. Волчегорский И.А., Налимов А.Г., Яровинский Б.Г., Лившиц Р.И. Сопоставление различных подходов к определению продуктов ПОЛ в гептанизопропальных экстрактах крови.// Вопросы медицинской химии. 1989. №1. С. 127-131.

6. Воробьева A.M., Погребняк А.Н., Руденко A.B. // Пероксидация липидов и активность антиоксидантной системы у пациентов с инфекционным эндокардитом. //Клин. Хирургия. 1996. № 8 . С. 23-25.

7. Воробьева A.M., Баланник З.Т., Списаренко С.П. Механизмы иммунологических нарушений при инфекционном эндокардите // Клиническая хирургия. 1996. №10. С. 19-21.

8. Вельтмандер H.H., Бушманова Г.М., Блок A.A. Иммунологические аспекты первичного септического эндокардита при приобретенных пороках сердца. Подходы к лечению.// Кардиология. 1993.№ 33. С. 3-4, 22-24.

9. Гичев Ю. П. Печень: адаптация, экология. Новосибирск: «Наука», 1993. 92-131С.

10. Гладкова Н.Д., Королева Е.Б. Иммунологические нарушения при различных клинических вариантах инфекционного эндокардита.// Септические эндокардиты в хирургии пороков сердца: тезисы Респ. конфер. Новосибирск, 1988. С. 20-22.

11. Демин А. А., Демин Ал. А. Бактериальные эндокардиты. М., 1978. С.22-35.

12. Никитин A.B., Есауленко И.Э., Васильева JIB. Низкоинтенсивное лазерное излучение в практической медицине. Воронеж:« ВГУ», 2000.120-158С.

13. Карандашов В.И., Петухов Е.Б. Ультрафиолетовое облучение крови. М. «Медицина». 1997. 188-201, 210-212 С.

14. Караськов A.M. Примение в кардиохирургии врожденных пороков сердца эндоваскулярного лазерного облучения. //Автореф. дисс. к.м.н. Новосибирск, 1989. С. 1-21.

15. Караськов A.M., Щукин B.C. и соавт. Принципы взаимоотношения хирургических технологий при коррекции приобретенных пороков на фоне септического эндокардита. // Патол. кровообр. и кардиохирургия. 1999. №1. С. 20-24.

16. Кетлинский С.А., Калинина Н.М. Иммунология для врача. С.-Петербург. «Гиппократ». 1998. 3-39 С.

17. Кнышов Г.В., Бендет Я.А. Приобретенные пороки сердца. Киев, 1997. 91128 С.

18. Кнышов Г.В., Воробьева А.М, Баланник З.Т., и соавт. Инфекционный эндокардит заболевание иммунной системы // Патол. Кровооб. и Кардиохирургия. 1999. №1. С. 24-28.

19. Кнышов Г.В, Воробьева A.M., Максименко В.Б., и соавт. Изменения иммунного статуса у пациентов с инфекционным эндокардитом при хурургическом лечении в условиях искусственного кровообращения. // Клин. Хирургия. 2001. №12. С. 5-7.

20. Колб В.Г., Камышников B.C. Справочник по клинической химии. Минск. Беларусь. 1982. С.198-200.

21. Кремер Л.Г, Кулешова Р.Г., Щукин B.C. и др. Клинико-хирургические критерии инфекционного эндокардита у кардиохирургических больных. //Патология кровообращения и кардиохирургия. 2003. № 2. С. 4-9.

22. Криштоф А.Н., Кушко О.В., Василенко Л.И. и соавт. УФО аутокрови в комплексном лечении бактериального эндокардита. //Применение ультрафиолетового облучения крови в медицине. Саранск, 1992. С. 121-123.

23. Крысов C.B., Курамшин Д.Х., Силков С.А., Сенников C.B. и соавт. Использование электрохемилюминисцентного метода для количественного определения цитокинов в различных средах. //Клин. лаб. диагностика.2000. №12. С. 39-43.

24. Леган М.В. Динамика некоторых иммунологических показателей и гормонов гипофизарно-надпочечниковой системы у больных с приобретенными пороками сердца. //Автореф. дисс. к.м.н. Новосибирск, 1999. С. 1-20.

25. Литасова Е.Е., Леган М.В., Караськов A.M. и соавт. Фактор иммунологических нарушений в патогенезе развития хрониосептического процесса у больных сердечно-сосудистыми заболеваниями //Патология кровообращения и кардиохирургия.2000. № 1-2. С. 85-88.

26. Литасова Е.Е. Системообразующая роль факторов риска при разработке и выборе кардиохирургических технологий //Патология кровообращения и кардиохирургия. 2000. № 1-2. С. 4-21.

27. Литасова Е.Е., Яснова Л.Н. и соавт. Роль инфекции в развитии сердечнососудистой патологии // Патология кровообращения и кардиохирургия. 2000. № 2. С. 76-84.

28. Лудиновскова P.A., Громова Г.В., Цыганова С.Т. и соавт. Характеристика иммунологического гомеостаза в позднем периоде после реконструктивных операций на клапанах сердца.// Вестник Акад. Мед. Наук СССР. 1990. №10. С.26-28.

29. Марченко A.B., Дуткевич И.Г. Новые методы фотогемотерапии. СПб. 1993. 42 С.

30. Марченко A.B., Дуткевич И.Г., Жахов В.В. Универсальная аппаратура для фотомодификации крови // Материалы конфер. «Новая медицинская техника и медицинские технологии». Новосибирск, 1994. С.23-24.

31. Марченко A.B., Дуткевич И.Г., Марченко И.А. Некоторые механизмы лечебного действия внутрисосудистой фотомодификации крови. // Материалы семин. «Лазеры для медицины и биологии». СПб. 1995. С.13-20.

32. МаянскийА.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. Новосибирск. «Наука». 1989. 190 -234 С.

33. Мешалкин E.H., Сергиевский B.C. Альперин Л.И и соавт. Эффекты световой энергии на функциональную емкость легких, пересаженных от донора реципиенту.// Грудн. Хирургия. 1984. №6. С. 62-65.

34. Мороз В.В., Молчанова Л. В., Щербакова Л. В. и соавт. Показатели метаболизма липидов у больных в критическом состоянии //Анест. и реанимат. 2001. №6. С. 4-6.

35. Мухоедова Т.В. Кинетика иммуновоспалительного ответа после операций на открытом сердце. //Автореф. дисс. д.м.н. Новосибирск, 2002. С. 1-26.

36. Панин Л. Е. Биохимические механизмы стресса. Новосибирск: «Наука», 1983. 190-234 С.

37. Поташов Л.В., Чеминава Р.В. Ультрафиолетовое облучение собственной крови. // Вестн. Хир.1989. №12. С. 51-60.

38. Прохоров М.Ю., Тиунов Н.П., Шакалис Д.А. Простой колориметрический микрометод определения свободных жирных кислот. // Лабор. Дело. 1977. №3. С. 535-536.

39. Савельев B.C. Проблема ангиогенного сепсиса. //Грудная хирургия. 1988. №1. С. 8-12.

40. Самойлова К.А. и соавт. Изменения поверхности и активация циркулирующих лейкоцитов при аутотрансфузиях УФ облученной крови. // Вестн. Хирур. 1990. №6. С. 99-105.

41. Стальная И.Д., Гаришвили Т.Г. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты. // Современные методы биохимии. М. Мед. 1977. С. 66 -68.

42. Стентон Гланц Медико-биологическая статистика (пер.Ю.А. Данилова) //Москва, «Практика». 1999. 139-155, 354-364, 402-423 С.

43. Хазанов Е.А., Зайратьянц О.В., Ляпин Д.О. Первичный подострый инфекционный эндокардит как проявление хирургического сепсиса // Терапевтический архив. М.: «Медицина», 1990. Т.62. №11. С.123-125.

44. Цветовская Г.А., Караськов A.M., Князькова Л.Г. Возможность прогнозирования критических состояний после коррекции врожденных пороков сердца: /Пособие для врачей. Новосибирск, 2000. 1- 22 С.

45. Цеханович В.Н., Морозова H.A. Самойлов В.А. и соавт. Прогнозирование хирургического риска у больных с пороками сердца с учетом их естественного развития: материал, сессии. Новосибирск. 1995. С. 121-122.

46. Цукерман Г.И., Дубровский B.C. и соавт. Возможности кардиохирургии в лечении клапанного активного эндокардита. // Кардиология. 1988. №9. С.31-35.

47. Черешнев В.А., Гусев Е.Ю. Иммунология воспаления: роль цитокинов. //Мед. Иммунология. 2001.№3 (т.З). С. 361-368.

48. Шмерко Н.П. Вторичная иммунная недостаточность у кардиохирургических больных и возможности ее коррекции. Автореф. . к.м.н. Москва, 1996. С.1-15.

49. Шевченко Ю.Л., Шихвердиев H.H., Матвеев С.А. и соавт. Инфекционный эндокардит правых камер сердца // Клин. Мед. 1992. №1. С.37-47.

50. Шевченко Ю.Л., Данильченко В.В., Жибурт Е.Б. и соавт. Иммуногенетический статус больных инфекционным эндокардитом // Вестник хирургии. 1995 . №1. С. 58-63.

51. Alard P., Kurimoto I., Niizeki H. et al. Hapten-specific tolerance induced by acute, low-dose ultraviolet B radiation of skin requires mast cell degranulation. //Eur. J. Immunol. 2001. V.6. P.1736-1746.

52. American College of Chest Phisicians /Society of Critical Care Medicine Consensus Conferens: definition for sepsis and organ failure and guidelines for use of innovative Therapies in sepsis. //Crit. Care Med. 1992.V. 20. P.864-874.

53. Barr R., Walker S., Tsang W. et al. Suppressed alloantigen presentation, increased TNF-alpha, IL-1, IL-IRa, IL-10, and modulation of TNF-R in UV-irradiated human skin. //J. Invest. Dermatol. 1999. V. 112. P.692-698.

54. Barry A., Mizock M. Metabolic derangements risk prediction in sepsis. //Crit. Care Med. 2000. V.16.P. 734-739.

55. Bayer A., Theofilopoulos A. Immunopathogenetic aspects of infective endocarditis.// Chest 1990.V.97. P.204-212.

56. Beal A., Cerra F. Multiple organ failure syndrome in the 1990s. Systemic inflammatory response and organ disfunction. // JAMA. V.19. P. 226-233.

57. Beissert S., Schwarz T. Mechanisms involved in ultraviolet light-induced immunosuppression. //J. Investig. Dermatol. Symp. Proc. 1999. V. 4. P.61-64.

58. Bereiss P. Endocarditis infectius with etiologic physiopatologic diagnostic evolution et prognostic treiment//Rev. Prat. Paris. 1989. V.39. P. 2629-2636.

59. Bone R.C., Newton I. Sepsis, SIRS, and CARS. //Critical Care Med. 1996. V.24. P.l 125-1128.

60. Bone R.C. Immunologic dissonance: a continuing evolution in our understanding of the systemic inflammatory response syndrome (SIRS) and the multiple organ dysfunction syndrome. //Ann. Intern. Med. 1996. V.125. P.680-687.

61. Boonstra A., van Oudenaren A., Barendregt B. et al. UVB irradiation modulates systemic immune responses by affecting cytokine production of antigen-presenting cells. //Int. Immunol. 2000. V.12. P.1531-1538.

62. Braun S., Escalona A., Chamorro G. et al. Infective endocarditis: short and long-term results in 261 cases managed by a multidisciplinary approach //Rev. Med. Chir. 2000. V.128. P.708-720

63. Bota P., Melot C., Ferreira L. et al. The Multiple Organ Dysfunction Score (MODS) versus the Sequential Organ Failure Assessment (SOFA) score in outcome prediction. //Intensive Care Med. 2002. V.28. P. 1619-1924.

64. Brown E., Rivas J., Ullrich S. et al. Modulation of immunity to Borrelia burgdorferi by ultraviolet irradiation: differential effect on Thl and Th2 immune responses.//Eur. J. Immunol. 1995. V.25. P.3017-3022.

65. Brown M., Griffin G. Immune responses in endocarditis. //Heart 1998. V.79. P. 1-2.

66. Campen D., Horwitz D., Quismorio F. Jr, et al. Serum levels of interleukin-2 receptor and activity of rheumatic diseases characterized by immune system activation.//Arthritis .Rheum. 1988. V.ll. P. 1358-1364.

67. Ceriani R., Mazzoni M., Bortone F. et al. Application of the sequential organ failure assessment score to cardiac surgical patients // Chest. 2003. V.123. P. 12291239.

68. Cerra F., Siegel J. et al. Septic autocanibalism. //Ann. Surg. 1970. V. 192. P. 570-577.

69. Cerra F.B. Multiple organ failure syndrome. 1989. P. 11-34.

70. Cetinkaya Y., Akova M., Akalin H. et al. A retrospective review of 228 episodes of infective endocarditis where rheumatic valvular disease is still common. //Int. J. Antimicrob. Agents. 2001. V.18. P. 1-7.

71. Chung K., Chang N., Park Y., Lee K. Effect of ultraviolet light on the expression of adhesion molecules and T lymphocyte adhesion to human dermal microvascular endothelial cells. //Yonsei Med. J. 2002. V.43. P. 165-174.

72. Danforth J., Strieter R., Kunkel S. et al. Macrophage inflammatory protein-1 alpha expression in vivo and in vitro: the role of lipoteichoic acid. //Clin. Immunol. Immunopathol. 1995 . V.74. P.77-83.

73. Deliconstantinos G., Villiotou V., Stavrides J. Nitric oxide and peroxynitrite released by ultraviolet B-irradiated human endothelial cells are possibly involved in skin erythema and inflammation. //Exp. Physiol. 1996. V. 81. P.1021-1033.

74. Dinarello C. The biological properties of interleikin-1. //Eur. Cytokin. Netw. 1994. V. 5. P. 517.

75. Dinarello C. The role of the interleukin-1 -receptor antagonist in blocking inflammation mediated by interleukin-1.//N. Engl. J. Med. 2000. V.10. P.732-734.

76. Djavaheri-Mergny M., Gras M., Mergny J., Dubertret L. UV-A-induced decrease in nuclear factor-kappaB activity in human keratinocytes. // Biochem. J. 1999. V.338 (Pt. 3). P.607-613.

77. Dries D. Interferon-gamma in trauma related infection. // In: 8th Eur. Cong. Of Inten. Care Med. I. Main lectures. Ed. C. Roussos. Greece. 1995. P. 665-669.

78. Dupont B. Choice and use of antifungal drugs. //Rev. Prat. 2001.V.51. P.752-757.

79. Durack D., Lukes A., Bright D. New criteria for diagnosis of infective endocarditis: utilization of specific echocardiographic findings. Duke Endocarditis Service.// Am. J. Med. 1994. V. 96. P.200-209.

80. Edmunds L., Richard E. Surgery for acquired heart disease guidelines for reporting morbidity and mortality after cardiac valvular operations. //J. Thorac. And Cardiovasc. Surg. 1996. V. 112. P. 708 -712.

81. Eichler O., Sies H., Stahl W. Divergent optimum levels of lycopene, beta-carotene and lutein protecting against UVB irradiation in human fibroblastst. //Photochem. Photobiol. 2002. V.75. P.503-506.

82. Ellis M., Al-Abdely H., Sandridge A., et al. Fungal endocarditis: evidence in the world literature, 1965-1995. //Clin. Infect. Dis. 2001. P.50-62.

83. Engel J., Junger A., Zimmer M. et al. Correlation of a computerized SOFA score and derived measures with length of stay at an operative ICU //Anesthesiol. Intensivmed. Notfallmed. Schmerzther. 2003. V.38. P.397-402.

84. Evora P., Brasil J., Elias M. et al. Surgical extension of the vegetation as treatment of tricuspidal valve endocarditis // Cardiology. 1988. V.198. P. 208-212.

85. Ford I., Douglas C., Preston F., et al. Mechanisms of platelet aggregation by Streptococcus sanguis, a causative organism in infective endocarditis. //Br. J. Haematol. 1993. V.84. P. 95-100.

86. Forte W., Mario A., da Costa A. et al. Immunologic evaluation in infective endocarditis. //Arq. Bras. Cardiol. 2001. V.76. P.43-52.

87. Fraunberger P., Pilz G., Cremer P., et al. Association of serum tumor necrosis factor Levels with decrease of cholesterol during septic shock. //Shock. 1998. N. 10. P. 359-363.

88. French L., Rook A. T cell clonality and the effect of photopheresis in systemic sclerosis and graft versus host disease. //Transfus. Apheresis Sci. 2002. V.26. P.191-196.

89. Funk J., Holler E., Kohlhuber F. et al. Protein kinase C activation is involved in ultraviolet B irradiation-induced endothelial cell ICAM-1 up-regulation and lymphocyte-endothelium interaction in vitro. // Scand. J. Immunol. 1996. V.44.1. P.354-360.

90. Gessler P., Pfenninger J., Pfammatter J. et al. Inflammatory response of neutrophil granulocytes and monocytes after cardiopulmonary bypass in pediatric cardiac surgery. //Intensive Care Med. 2002 .V.28. P. 1786-1791.

91. Goris R. MODS/SIRS: Results of an Overwelming inflammatory Response.// World J. Surg. 1996. V20. P.418-421.

92. Gu Y., van Oeveren W., Boonstra P. Leukocyte activation with increased expression of CR3 receptors during cardiopulmonary bypass. //Ann. Thorac. Surg. 1992. V.53. P.839-843.

93. Hack C., Hart M., Strack van Schijndel R. et al. Interleukin-8 in sepsis: relation to shock and inflammatory mediators. // Infect. Immun. 1992. V.60. P. 2835-2842.

94. Harada M., Nishi Y., Tamura S. et al. Infective endocarditis with a huge mitral vegetation related to atopic dermatitis and high serum level of infection-related antiphospholipid antibody: a case report //J. Cardiol. 2003. V.42. P. 135140.

95. Heckmann M., Pirthauer M., Plewig G. Adhesion of leukocytes to dermal endothelial cells is induced after single-dose, but reduced after repeated doses of UVA. //J. Invest. Dermatol. 1997. V.109. P.710-715.

96. Hirao T., Aoki H., Ichikawa H., Sato Y. Characterization of an interleukin 1 receptor antagonist protein released from ultraviolet-irradiated epidermal sheet. //J. Dermatol. Sci.1997. V.14. P.189-198.

97. Holmes J.4th, Connolly N., Paull D. et al. Magnitude of the inflammatory response to cardiopulmonary bypass and its relation to adverse clinical outcomes. //Inflamm. Res. 2002. V.51. P.579-586.

98. Hubner J., Kropec A. Cross infections due to coagulase-negative staphylococci in high-risk patients. //Zentralbl. Bakteriol. 1995. V.283. P.169-174.

99. Ibuki Y., Goto R. Antiapoptotic effects induced by different wavelengths of ultraviolet light. //Photochem. Photobiol. 2002. V. 75. P.495-502.

100. Isoherranen K., Punnonen K., Jansen C., Uotila P. Ultraviolet irradiation induces cyclooxygenase-2 expression in keratinocytes. //Br. J. Dermatol. 1999. V. 140. P.1017-1022.

101. Jalal S., Khan K., Alai M. et al. Clinical spectrum of infective endocarditis: 15 years experience. //Indian Heart J. 1998. V. 50. P. 516-519.

102. Jault F., Gandjbakhch I., Rama A. et al. Active native valve endocarditis: determinants of operative death and late mortality. //Ann. Thorac. Surg. 1997. V.63. P.1737-1741.

103. Kanariou M., Petridou E., Vrachnou E., Trichopoulos D. Lymphocyte alterations after prolonged sunlight exposure. //J. Epidemiol. Biostat. 2001.V.6. P.463-465.

104. Kao K., Huang E., Donahue S. Characterization of immunologic tolerance induced by transfusion of UV-B~irradiated allogeneic mononuclear leukocytes. //Blood. 2001. V.98. P.1239-1245.

105. Karthaus M., Comely O. Ceftriaxone in febrile neutropenia. //J. Chemother. 2003. V.15.P.211-219.

106. Kern P., Keilholz L., Kalden J., Herrmann M. Apoptotic UV-irradiated lymphocytes undergo protease mediated shedding of L-selectin in vitro. //Transfus. Apheresis Sci. 2001. V. 24. P.99-101.

107. Khanal B., Harish B., Sethuraman K. et al. Infective endocarditis: report of a prospective study in an Indian hospital.// Trop. Doct. 2002. V. 32. P. 83-85.

108. Kim N., Lazar J., Cunha B. et al. Multi-valvular endocarditis. //Clin. Microbiol. Infect. 2000. V.6. P.207-212.

109. Kimura H., Minakami H., Shoji A. Ultraviolet B irradiation modulates susceptibility to tumour necrosis factor-alpha-induced apoptosis via induction of death receptors in murine fibroblasts. //Cell. Biol. Int. 200l.V. 25. P. 1221-1228.

110. Kirali K., Guler M., Tuncer A. et al. Experience With the Biocorporcine Bioprostheses in the Mitral Position. //Ann. Thorac. Surg. V.71. P.807-810.

111. Kitajima T., Takashima A. Langerhans cell responses to ultraviolet B radiation. //J. Dermatol. Sci. 1999. V.19. P.153-160.

112. Koch C., Higgins T., Capdevill M. et al. The risk of coronary artery in women: a matched comparison using preoperative severity of illness scoring. // J. Cardivasc. Anesth. 1996. V.10. P. 839 843.

113. Kollef M., Sharpless L. et al. The impact of nosocomial infections on patients outcomes following cardiac surgery.// Chest. 1997.V. 112. P.666-675.

114. Korkmaz S., Ileri M., Hisar I. et al. Increased levels of soluble adhesion molecules, E-selectin and P-selectin, in patients with infective endocarditis and embolic events. // Eur. Heart J. 2001. V. 22. P. 874-878.

115. Krutmann J. Therapeutic photoimmunology: photoimmunological mechanisms in photo(chemo)therapy. //J. Photochem. Photobiol. B. 1998. V. 44. P.159-164.

116. Kucharz E. The collagens: biochemistry and pathophysiology. «SpringerVerlag». Berlin. Heidilberg. 1992. P.430.

117. Kupferwasser L., Darius H., Muller A. et al. Diagnosis of culture-negative endocarditis: the role of the Duke criteria and the impact of transesophageal echocardiography. //Am Heart J. 2001. V.142. P. 146-152.

118. Lee S., Lee J., Jung J. et al. Protective role of nitric oxide-mediated inflammatory response against lipid peroxidation in ultraviolet B-irradiated skin. // Br. J. Dermatol. 2000. V.142. P.653-659.

119. Legrand-Poels S., Schoonbroodt S., Matroule J. et al. Nf-kappa B: an important transcription factor in photobiology. //J. Photochem. Photobiol. B. 1998. V. 45. P. 1-8.

120. Li G., Ho V. p53-dependent DNA repair and apoptosis respond differently to high- and low-dose ultraviolet radiation. //Br. J. Dermatol. 1998. V.139. P.3-10.

121. Li J., Sexton D., Mick N. et al. Proposed modifications to the Duke criteria for the diagnosis of infective endocarditis. // Clin. Infect. Dis. 2000. V.30. P.633-638.

122. Lu Q., Lan H., Cai J., Sun Z. Effect of cardiopulmonary bypass on the specific immunity of the host. //J. Tong. J. Med. Univ. 1993. V.13. P.231-233.

123. Maisch B. Autoreactive mechanisms in infective endocarditis.//Springer Semin Immunopathol. 1989. V.l 1. P.439-456.

124. Markewitz A., Lante W., Franke A. et al. Alterations of cell-mediated immunity following cardiac operations: clinical implications and open questions. //Shock. 2001. V.16. Suppl. 1. P.10-15.

125. Meddens M., Thompson J., Bauer W., et al. Role of granulocytes and monocytes in experimental Escherischia coli endocarditis. //Infect. Immun. 1984. V.43. P.491-496.

126. Meine T., Nettles R., Anderson D. et al. Cardiac conduction abnormalities in endocarditis defined by the Duke criteria. //Am. Heart J. 2001. V.142. P.280-285.

127. Mercier R., Rybak M., Bayer A., Yeaman M. Influence of platelets and platelet microbicidal protein susceptibility on the fate of Staphylococcus aureus in an in vitro model of infective endocarditis. //Infect. Immun. 2000. V. 68. P. 46994705.

128. Messias-Reason I., Hayashi S., Nisihara R., Kirschfink M. Complement activation in infective endocarditis: correlation with extracardiac manifestations and prognosis. //Clin. Exp. Immunol. 2002. V.127. P.310-315.

129. Millar B., Moore J., Mallon P. et al. Molecular diagnosis of infective endocarditis-a new Duke's criterion. // Scand. J. Infect. Dis. 2001. V.33. P.673-680.

130. Moat N., Shore D., Ewans T. Organ disfunction and cardiopulmanory bypass: the role of complement. //Cardiothorac. Surg. 1993. V. 7. P. 563-573.

131. Moore M., Stolfi R., Martin D. Hematologic effect of IL-lbeta, granulocyte colony-stimulating factor, and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor in tumot-bearing mice treated with 5-fluouracil. //J. Nat. Cancer. Inst. 1990. V.82. P.1031.

132. Mylonakis E., Calderwood S. Infective Endocarditis in Adults. // The New Eng. J. of Med. 2001. V.345. P.1318-1330.

133. Miyakawa Y., Matsushime H. Rapid downregulation of cyclin D1 mRNA and protein levels by ultraviolet irradiation in murine macrophage cells. //Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001. V. 284. P.71-76.

134. Naber C., Bartel Т., Eggebrecht H., Erbel R. Diagnosis of endocarditis today: Duke criteria or clinical judgment? //Herz, (нем.) 2001. V. 26. P.379-390.

135. Nicolau D., Freeman C., Nightingale C. et al. Reduction of bacterial titres by low-dose aspirin in experimental aortic valve endocarditis. //Infect. Immun. 1993. V.61. P.1593-1595.

136. Norval M. What's new in photoimmunology? //Photodermatol. Photoimmunol. Photomed. 2002. V.18. P.50-51.

137. Olaison L., Hogevik H., Alestig K. Fever, C-reactive protein, and other acute-phase reactants during treatment of infective endocarditis. // Arch. Intern. Med. 1997. V.157. P.885-892.

138. Pentland A. Active oxygen mechanisms of UV inflammation. //Adv. Exp. Med. Biol. 1994. V. 366 P.87-97.

139. Perez-Vazquez A., Farinas M., Garcia-Palomo J. et al. Evaluation of the Duke criteria in 93 episodes of prosthetic valve endocarditis: could sensitivity be improved? //Arch. Intern. Med. 2000. V.160. P.l 185-1191.

140. Planas M., Garsia A. et al. Lipid peroxidation in critical patients. //Nutric. Hosp. 1997. V.12. P.233-236.

141. Plitnick L., Jordan R., Banas J. et al. Lipoteichoic acid inhibits interleukin-2 (IL-2) function by direct binding to IL-2.//Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2001. V.8. P.972-979.

142. Podhaisky H., Klapperstuck Т., Riemschneider S., Wohlrab W. Evidence for a role of nitric oxide in the mediation of antiproliferative UVA effects in keratinocytes. //Pharmacol. Res. 2002. V. 45. P.229-233.

143. Presterl E., Rokita E., Graninger W. et al. Dysregulation of monocyte oxidative burst in streptococcal endocarditis. //Eur. J. Clin. Invest. 2001. V.31. P.902-906.

144. Provenchere S., Plantefeve G., Hufnagel G. et al. Renal dysfunction after cardiac surgery with normothermic cardiopulmonary bypass: incidence, riskfactors, and effect on clinical outcome. //Anesth. Analg. 2003 .V. 96. P. 12581264.

145. Radziszewska E., Piwocka K., Skierski J., Sikora E. UVC-induced cell death of IL-2-dependent human lymphocytes. //Cell. Biol. Int. 1999.V. 23. P.97-103.

146. Redl H., Shlag G. «Mediators of injury and inflammation» World J. Surg. 1996. V.20. P.406-410.

147. Reeve V., Bosnic M., Nishimura N. Interferon-gamma is involved in photoimmunoprotection by UVA (320-400 nm) radiation in mice. //J. Invest. Dermatol. 1999. V. 112. P. 945-950.

148. Ridker P., Cushman M., Stampfer M. et al. Inflammation, aspirin, and risk of cardiovascular disease in apparently healthy men.//N. Engl. J. Med. 1997. V.336. P.973-979.

149. Ridker P., Hennekens C. Buring J. C-reactive protein and Other Markers of Inflammation in the Prediction of Cardiovascular Disease in Women. //N. Engl. J. Med. 2000. V. 342. P.836-843.

150. Robbins M., Frater R., Soeiro R. et al. Influence of vegetation size on clinical outcome of right-sided infective endocarditis. // Am. J. Med. 1986. V.80. P. 165171.

151. Roelandts R. The history of phototherapy: something new under the sun? //J. Am. Acad. Dermatol. 2002. V. 46. P.926-930.

152. Rothenburger M., Soeparwata R., Deng M. et al. The impact of anti-endotoxin core antibodies on endotoxin and cytokine release and ventilation time after cardiac surgery. //J. Am. Coll. Cardiol. 2001. V.38. P. 124-130.

153. Rothenburger M., Trosch F., Markewitz A. et al. Leukocyte activation and phagocytotic activity in cardiac surgery and infection. //Cardiovasc. Surg. 2002. V.10. P.470-475.

154. Rothenburger M., Tjan T., Schneider M. et al. The impact of the pro- and anti-inflammatory immune response on ventilation time after cardiac surgery. // Cytometry. 2003. 53. Bull. (1) P.70-74.

155. Roth-Isigkeit A., Hasselbach L., Ocklitz E. et al. Inter-individual differences in cytokine release in patients undergoing cardiac surgery with cardiopulmonary bypass. //Clin. Exp. Immunol. 2001. V.125. P. 80-88.

156. Sands K. Epidemiology of Sepsis Syndrom in 8 Academic Medical Centers. //JAMA. 1997. V.278. P.261-268.

157. Satch M., Tamura G. et al. Expression of cytokines genes and presence of enteroviral genomic RNA in endomyocardial biopsy tissues of miocarditis and dilated cardiomiopathy. //Virchov Arch. 1996. V. 427. P.503-539.

158. Schell H. The immunocompromised host and risk for cardiovascular infection.//J. Cardiovasc. Nurs. 1999. V.13. P.31-48.

159. Sheikh M., Antinore M., Huang Y., Fornace A. Ultraviolet-irradiation-induced apoptosis is mediated via ligand independent activation of tumor necrosis factor receptor 1. //Oncogene. 1998. V. 17. P. 2555-2563.

160. Shiraishi M., Nakaji S., Sugawara K. The effects of UVA irradiation on human neutrophil function. //Nippon Eiseigaku Zasshi. 1996. V. 50. P. 1093-1102.

161. Shlag G., Redl H. Mediators of injury and inflammation. //World J. Surg. 1996. V. 20. P. 406-410.

162. Shreedhar V., Pride M., Sun Y. et al. Origin and characteristics of ultraviolet-B radiation-induced suppressor T lymphocytes. //J. Immunol. 1998. V. 161.1. P.1327-1335.

163. Simon-Vermont I., Altwegg M., Zimmerli W., Fluckiger U. Duke criteria-negative endocarditis caused by Bartonella quintana.// Infection 1999. V.27. P. 283-285.

164. Slungaard A., Vercellotti G., Walker G. et al. Tumor necrosis factor alpha/cachectin stimulates eosinophil oxidant production and toxicity towards human endothelium. //J. Exp. Med. 1990. V. 171. P. 2025-2041.

165. Soter N. Acute effects of ultraviolet radiation on the skin. //Semin. Dermatol. 1990. V. 9. P. 11 -15.

166. Stachon A., Boning A., Weisser H. et al. Prognostic significance of low serum cholesterol after cardiothoracic surgery. //Clin. Chem. 2000. V. 46. P.l 114 -1120.

167. Standiford T., Arenberg D., Danforth J. et al. Lipoteichoic acid induces secretion of interleukin-8 from human blood monocytes: a cellular and molecular analysis.// Infect. Immun. 1994. V. 62. P.l 19-125.

168. Suschek C., Bruch-Gerharz D., Kleinert H. et al. Ultraviolet Al radiation induces nitric oxide synthase-2 expression in human skin endothelial cells in the absence of proinflammatory cytokines. //Invest. Dermatol. 2001. V. 117. P. 12001205.

169. Swank G., Deicth E. Role of the gut in multiple organ failure: bacterial translocation and permeability changes. // World of Surgery. 1996. V.20. P.411-417.

170. Sweeney J., Nguyen P., Omann G. et al. Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor rescues human polymorphonuclear leukocytes from ultraviolet irradiation-accelerated apoptosis. //J. Surg. Res. 1999. V. 81. P. 108112.

171. Taniuchi S., Masuda M., Yamamoto A. et al. Two cases of autoimmune neutropenia possibly induced by beta-lactam antibiotics in infants //J. Pediatr.Hematol. Oncol. 2000. V.22. P.533-538.

172. Tarnok A., Schneider P. Pediatric cardiac surgery with cardiopulmonary bypass: pathways contributing to transient systemic immune suppression. //Shock. 2001.V.16. Supp. 1. P.24-32.

173. Terui T., Tagami H. Mediators of inflammation involved in UVB erythema. //J. Dermatol. Sci. 2000. Suppl. l.P. 1-5.

174. Terui T., Takahashi K., Funayama M. et al. Occurrence of neutrophils and activated Thl cells in UVB-induced erythema. //Acta Derm. Venereol. 2001. V. 81. V. 8-13.

175. Tomimori Y., Ikawa Y., Oyaizu N. Ultraviolet-irradiated apoptotic lymphocytes produce interleukin-10 by themselves. //Immunol. Lett. 2000. V. 71. P. 5448-5449.

176. Tripp C., Beckerman K., Unanue E. Immune complexes inhibit antimicrobial responses through interleukin-10 production. // J. Clin. Invest. 1995. V. 95.1. P. 1628-1634.

177. Valer G. Khoschsorur G., Almdahl S. et al. Lipid peroxidation in open-heart surgery.// Perfusion. 1994. V.9. P.277-283.

178. Veltrop M., Beekhuizen H., Thompson J. et al. Bacterial species- and strain-dependent induction of tissue factor in human vascular endothelial cells. //Infect. Immun. 1999. V. 67. P.6130-6138.

179. Veltrop M., Thompson J., Beekhuizen H. et al. Monocytes augment bacterial species- and strain-dependent induction of tissue factor activity in bacterium-infected human vascular endothelial cells. //Infect. Immun. 2001. V.69. P.2797-2807.

180. Volk H., Docke W. et al. Pathomechanism of monocit disfunction: the conception of immunoparalisis. // 8 Europ. Congress of Intens. Care Med. Greece. 1995. abstracts.

181. Von Reyn C., Levy B., Arbeit R. et al. Infective endocarditis: an analysis based on strict case definitions. //Ann. Intern. Med. 1981. V.94. P.505-518.

182. Walsh L. Ultraviolet B irradiation of skin induces mast cell degranulation and release of tumour necrosis factor-alpha. //Immunol. Cell. Biol. 1995. V.73. P.226-233.

183. Wu Ch.-Y., Wang K. Prostoglandin E2 and Dexametasone Inhibit IL-12 Receptor Expression and IL-12 Responsiveness. //J. Of Immunol. 1998. V. 161. P. 2723-2730.

184. Yee E.S., Khonsari S. Right-sided infective endocarditis: Valvuloplasty, valvectomy or replasment // J. Cardiovascular. Surg.l989.V.30. №5. P.744-748.

185. Yaron I., Yaron R., Oluwole STet al. UVB irradiation of human-derived peripheral blood lymphocytes induces apoptosis but not T-cell anergy: additive effects with various immunosuppressive agents. // Cell. Immunol. 1996. V. 168. P. 258-266.

186. Yoshida Y., Kang K., Chen G. et al. Cellular fibronectin is induced in ultraviolet-exposed human skin and induces IL-10 production by monocytes/macrophages. //J. Invest. Dermatol. 1999. V.113. P. 49-55.

187. Yu H. Comparative studies of magnetic particle-based solid phase fluorogenic and electrochemiluminescent immunoassay. //J. Immunol. Methods. 1998. V.218. P. 1-8.

188. Yuen K., Nearn M., Halliday G. Nitric Oxide-Mediated Depletion of Langerhans Cells from the Epidermis May Be Involved in UVA Radiation-Induced Immunosuppression. //Nitric Oxide. 2002. V.6. P. 313-318.

189. Zacharowski K., Olbrich A. Membrane-permeable radical scavenger, tempol reduces multiple organ injury in a rodent model of Gramm-positive shock. //Crit. Care Med. 2000. V.28. P. 1953-1961.