Новые подходы к созданию ксеноперикардиальных биопротезов для сердечно-сосудистой хирургии: экспериментальное исследование тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.01.24, кандидат биологических наук Глушкова, Татьяна Владимировна

• Глушкова, Татьяна Владимировна
• кандидат биологических наук
• 2012

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Глушкова, Татьяна Владимировна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА I БИОПРОТЕЗЫ В СЕРДЕЧНО-СОСУДИСТОЙ ХИРУРГИИ:

СОВРЕМЕННОЕ СОСТОЯНИЕ ПРОБЛЕМЫ (обзор литературы).

1.1. Проблемы выбора протеза в кардиохирургии.

1.2. Причины и механизмы кальцификации биологических протезов клапанов сердца.

1.3. Пути профилактики кальцификации кардиоваскулярных биологических протезов.

1.3.1. Использование дифосфонатов для профилактики кальцификации кардиоваскулярных биопротезов.

1.4. Перспективы использования лазерных технологий в изготовлении биопротезов клапанов сердца.

1.4.1. Применение лазерных технологий в медицине. Классификация лазеров и их характеристики.

1.4.2.Взаимодействие лазерного излучения с биологическими объектами.

ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Биоматериалы и методы консервации.

2.2. Определение аминокислотного состава биологической ткани методом аминокислотного анализа.

2.3. Способы антикальциевой модификации биоматериала.

2.4. Количественное определение дифосфоната, иммобилизованного на биоматериале.

2.5. Изучение кальций-связывающей активности биоматериала.

2.6. Изучение физико-механических свойств биоматериала.

2.7. Изучение гемосовместимых свойств биологического материала.

2.7.1. Моделирование взаимодействия биоматериала с кровью in vitro.

2.7.2. Оценка параметров агрегации тромбоцитов.

2.7.3 Оценка тромборезистентности эпоксиобработанного ксеноперикарда, модифицированного аминодифосфонатом.

2.7.4. Определение величины гемолиза, индуцированного биоматериалом.

2.8. Исследование структуры биоматериала методом световой микроскопии.

2.8.1. Исследование структуры биоматериала после антикальциевой модификации.

2.8.2. Исследование структуры ксеноперикарда при использовании различных методов раскроя.

2.9. Методы статистической обработки материала.

ГЛАВА III СРАВНИТЕЛЬНЫЙ АНАЛИЗ СВОЙСТВ БИОМАТЕРИАЛА

РАЗЛИЧНОЙ ВИДОВОЙ И ТКАНЕВОЙ ПРИНАДЛЕЖНОСТИ

3.1. Сравнительный анализ аминокислотного состава перикарда

КРС, стенки аорты, и створок АК после консервации ДЭЭ.

3.2. Сравнительная оценка физико-механических свойств перикарда

КРС, стенки аорты и створок АК свиньи, консервированных ДЭЭ.

3.3. Сравнительная оценка кальций-связывающей активности перикарда КРС, стенки аорты и створок АК свиньи.

3.4. Оценка свойств эпоксиобработанных биоматериалов, модифицированных З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислотой.

3.4.1. Кальций-связывающая активность эпоксиобработанного биоматериала, модифицированного АОПДФК.

3.4.2. Влияние модификации АОПДФК на структуру биологического материала.

3.4.3.Физико-механические свойства биологического материала, обработанного З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислотой.

3.4.4. Гемосовместимые свойства эпоксиобработанного биоматериала, модифицированного АОПДФК.

ГЛАВА IV РАСКРОЙ БИОМАТЕРИАЛА ПРИ ИЗГОТОВЛЕНИИ КАР

ДИОВАСКУЛЯРНЫХ БИОПРОТЕЗОВ ИЗ КСЕНОПЕРИКАРДА.

4.1. Сравнительная оценка способов раскроя биоматериала.

4.1.1. Раскрой ксеноперикарда с помощью ножниц, скальпеля и вырубной матрицы.

4.1.2. Раскрой ксеноперикарда Nd:YAG лазером с различными параметрами излучения.

4.1.3. Раскрой ксеноперикарда Er:YAG лазером.

4.2. Установка для раскроя ксеноперикарда с использованием лазерного излучения.

4.1.4. Раскрой ксеноперикарда С02-лазером.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Новые подходы к созданию ксеноперикардиальных биопротезов для сердечно-сосудистой хирургии: экспериментальное исследование»

Актуальность работы

Для коррекции врожденных и приобретенных пороков сердечнососудистой системы созданы десятки моделей биологических протезов из аортального клапана свиньи и перикарда крупного рогатого скота. Наиболее распространенным консервантом для стабилизации биологической ткани остается раствор глутарового альдегида (ГА). Одной из основных причин дисфункций ГА-обработанных биопротезов является первичная тканевая несостоятельность, связанная с кальцификацией (Gross J.M., 2001). Существует гипотеза, согласно которой структурные трансформации коллагеновой матрицы под действием ГА определяют способность биоматериала к накоплению кальциевых солей. Замена глутарового альдегида на диглицидиловый эфир этиленгликоля (ДЭЭ) способствует снижению риска кальцификации биопротезов клапанов сердца у взрослых пациентов, однако у детей частота развития кальцификации остается высокой (Латыпов А.К., 2005). Это требует поиска новых путей решения данной проблемы. Одним из известных способов снижения кальций-связывающей активности является модификация биоматериала различными веществами, ингибирующими процесс кальцификации. Наиболее эффективные методики, нашли применение в коммерческих моделях биопротезов, консервированных ГА: обработку гепарином в дополнение к ПАВ использует компания Shelhigh,Inc в технологии No-React (Abolhoda А., 1996), альфа-амино-олеиновую кислоту использует компания Medtronic, Ltd. при изготовлении клапанов Mosaic и Freestyle (Chen, W., 1994), гомоцистеиновую кислоту применяет компания Sorin Biomedica Cardio S.R.L (Stacchino G., 1998), обработку AICI3 и этанолом использует компания St. Jude Medical, Inc. в технологии BiLinx (Levy R.J. 2003). Однако количество кальция в биоматериале, обработанном в соответствии с данными технологиями, составляет от 6 до 30 мг/г сухой ткани при подкожной имплантации крысам на 60 - 150 суток (Webb C.L., 1992, Connolly J.M., 2004, Ozaki S., 2004, Clark

J.N., 2005). Это превышает уровень кальцификации биоматериала, консервированного ДЭЭ без дополнительных обработок при аналогичных сроках имплантации (Шапошников А.Н., 1992, Бураго А.Ю., 1993, Журавлева И.Ю., 1995, Барбараш Л.С., 1996). В связи с этим в настоящей работе не проводили сравнительную оценку эффективности антикальциевой модификации эпоксиобработанного биоматериала и известных обработок на основе консервации ГА. Настоящее исследование направлено на изучение возможности улучшения свойств эпоксиобработанного биоматериала. С целью максимального подавления его кальций-связывающей активности может быть использована технология иммобилизации соединений из класса дифосфонатов, предложенная и апробированная в эксперименте для биоматериала, консервированного ГА (Dewanjee М.К., 1985, Webb C.L., 1988, Эльгудин Я.Л., 1995). Дифосфонаты являются аналогами пирофосфата -природного ингибитора кальция, и в иммобилизованном состоянии в значительной степени препятствуют кальцификации биоматериала (Fleisch Н., 1998).

По результатам клинического применения биологических протезов была отмечена различная интенсивность кальцификации биоматериалов, в зависимости от тканевой принадлежности. При реоперациях по поводу дисфункций клапансодержащих кондуитов, имеющих в своем составе перикард, створки АК и стенку аорты, кальциевые депозиты отмечены в основном в стенке аорты, реже — в створках АК, перикардиальная часть практически всегда остается интактной (Акатов B.C., 2002, Латыпов А.К., 2005). Данный факт послужил предпосылкой для изучения возможности использования ксеноперикарда в качестве основного биоматериала при изготовлении эпоксиобработанных биопротезов клапанов сердца и клапансодержащих кондуитов.

При моделировании кардиоваскулярных биопротезов из ксеноперикарда необходимо учитывать строгое соблюдение геометрических параметров каждого элемента при раскрое. При использовании как обычных режущих инструментов (скальпеля, ножниц), так и вырубных матриц, происходит отклонение от формы лекал, что усложняет процесс моделирования биопротеза. Возможны надсечки, являющиеся негативным фактором для клапана, функционирующего в условиях длительной циклической нагрузки. В настоящее время для высокоточного раскроя различных материалов небиологического происхождения используют лазерные технологии (Вейко В.П., 2001). В связи с этим представляется перспективным изучить возможности применения лазерных технологий для раскроя биологического материала.

Потенциальная устойчивость ксеноперикарда к кальцификации, выявленная в клинической практике, нуждается во всестороннем экспериментальном подтверждении. Данный феномен может быть усилен дополнительной модификацией З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислотой. В этом случае представляется целесообразным создание клапанных биопротезов из эпоксиобработанного ксеноперикарда. Использование лазерных технологий может явиться перспективным подходом в разработке методов высокоточного раскроя для перевода плоских деталей в объемные конструкции.

Цель настоящего исследования - обосновать в эксперименте применение новой технологии антикальциевой обработки и лазерного раскроя при изготовлении ксеноперикардиальных эпоксиобработанных биопротезов для сердечно-сосудистой хирургии.

Задачи исследования:

1. Выполнить сравнительную оценку кальций-связывающей активности перикарда крупного рогатого скота, стенки аорты и створок аортального клапана свиньи, консервированных диглицидиловым эфиром этиленгликоля;

-92. Оценить влияние иммобилизованной З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислоты на кальций-связывающую активность эпоксиобработанных биоматериалов различной видовой и тканевой принадлежности;

3. Изучить влияние антикальциевой обработки на структуру, физико-механические свойства и гемосовместимость биоматериала, консервированного диглицидиловым эфиром этиленгликоля;

4. Оценить воздействие излучения различных лазеров на структуру биоматериала в области среза. Выбрать оптимальные параметры лазерного излучения для создания промышленной установки картирования и раскроя биоматериала.

Новизна исследования

Впервые проведена оценка сшивающей активности диглицидилового эфира этиленгликоля в отношении стенки аорты.

Впервые проанализирована в сравнительном аспекте кальций-связывающая активность перикарда крупного рогатого скота, створок аортального клапана и стенки аорты свиньи, консервированных глутаровым альдегидом и диглицидиловым эфиром этиленгликоля.

Впервые исследован антикальциевый эффект З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислоты, иммобилизованной на биоматериале, консервированном диглицидиловым эфиром этиленгликоля.

Впервые изучено воздействие З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислоты на структуру, физико-механические свойства и гемосовместимость биоматериала, консервированного диглицидиловым эфиром этиленгликоля.

Впервые изучена возможность использования лазерных технологий для раскроя эпоксиобработанного биоматериала.

Впервые в мировой практике лазерное излучение применено для раскроя ксеноперикарда при изготовлении кардиоваскулярных биопротезов.

Практическая значимость работы. Экспериментально обоснован выбор биоматериала для изготовления кардиоваскулярных биопротезов с низкой кальций-связывающей активностью. Разработан способ антикальциевой модификации биоматериала, консервированного диглицидиловым эфиром этиленгликоля.

Определены оптимальные режимы лазерного излучения для раскроя биоматериала при моделировании кардиоваскулярных биопротезов из ксеноперикарда. На основе полученных результатов совместно с Институтом лазерной физики Сибирского отделения РАН созданы установки «МЕЛАЗ» и «МЕЛАЗ-1» для раскроя биоматериала.

Разработанная технология антикальциевой модификации биоматериала, консервированного диглицидиловым эфиром этиленгликоля, и раскрой биоматериала с использованием лазерных технологий внедрены ЗАО «НеоКор» (Россия) в серийное производство ксеноперикардиальных биопротезов клапанов сердца с 2008г. (Протез клапана сердца ксеноперикардиальный биологический консервированный монтированный на гибком опорном каркасе «ЮниЛайн» по ТУ 9444-010-57628698-2008).

Положения, выносимые на защиту:

1. Перикард крупного рогатого скота и створки аортального клапана свиньи, консервированные диглицидиловым эфиром этиленгликоля, обладают более низкой кальций-связывающей активностью, по сравнению с эпоксиобработанной стенкой аорты свиньи.

2. З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновая кислота в иммобилизованном состоянии достоверно снижает кальций-связывающую активность перикарда крупного рогатого скота и створок аортального клапана свиньи, консервированных диглицидиловым эфиром этиленгликоля.

3. Использование лазерного раскроя ксеноперикарда делает процесс изготовления кардиоваскулярных биопротезов более технологичным. В качестве активной среды лазера для раскроя ксеноперикарда могут быть использованы алюмоиттриевый гранат, легированный эрбием и углекислый газ.

Апробация материалов диссертации. Материалы диссертации доложены на:

1. Региональной научно-практической конференции с Международным участием «Актуальные проблемы сердечно-сосудистой хирургии» (Кемерово, 23-25 сентября, 2006 г).

2. XIII Всероссийском съезде сердечно-сосудистых хирургов (Москва, 23-28 ноября 2007 г).

3. XVII Международной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов» (Москва, 12-15 апреля 2010 г).

4. Международном конгрессе «Кардиология на перекрестке наук» совместно с V Международным симпозиумом по эхокардиографии и сосудистому ультразвуку, XVII ежегодной научно-практической конференцией «Актуальные вопросы кардиологии» (Тюмень 19-21 мая 2010 г).

5. Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные проблемы сердечно-сосудистой патологии» (Кемерово 24-25 сентября 2010 г).

6. XVI Всероссийском съезде сердечно-сосудистых хирургов (Москва, 28 ноября - 1 декабря 2010 г).

Публикации. По результатам диссертационного исследования опубликовано 19 работ в форме научных статей и тезисов в журналах, материалах научных съездов и конференций (из них 2 статьи в журналах, рецензируемых ВАК), а также получен патент РФ на изобретение.

Работа выполнена в ФГБУ «Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний» Сибирского отделения РАМН (директор - д.м.н., профессор О.Л. Барбараш).

Автор благодарит научного руководителя работы д.м.н., профессора И.Ю. Журавлеву за консультативную помощь в подготовке диссертации, а также выражает искреннюю признательность за практическую помощь и дружеское участие коллективу лаборатории химии и технологии материалов для сердечно-сосудистой хирургии ФГБУ «Научный центр сердечнососудистой хирургии им. А.Н. Бакулева» РАМН под руководством д.б.н., профессора С.П. Новиковой (г. Москва), заведующему лабораторией лазерных медицинских технологий Института лазерной физики Сибирского отделения РАН А.П. Майорову (г. Новосибирск) и коллективу лаборатории новых биоматериалов отдела экспериментальной и клинической кардиологии ФГБУ «Научно-исследовательский институт комплексных проблем сердечно-сосудистых заболеваний» Сибирского отделения РАМН (г. Кемерово).

Заключение диссертации по теме «Трансплантология и искусственные органы», Глушкова, Татьяна Владимировна

- 124-ВЫВОДЫ:

1. Новые подходы к изготовлению кардиоваскулярных биологических протезов из эпоксиобработанного ксеноперикарда, заключающиеся в модификации его З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислотой, а также в применении лазеров для его раскроя, являются перспективными.

2. Перикард крупного рогатого скота и створки аортального клапана свиньи, консервированные диглицидиловым эфиром этиленгликоля, имеют значительно (р<0,05) меньший кальций-связывающий потенциал (5 мг/г сухой ткани к 180 суткам подкожной имплантации), чем стенка аорты, консервированная диглицидиловым эфиром этиленгликоля (157,9±1,03 мг/г к этому же сроку).

3. Модификация З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислотой эпоксиобработанного ксеноперикарда и створок аортального клапана достоверно (р<0,05) снижает их кальций-связывающую активность до уровня неимплантированных образцов (менее 1 мг/г). Модификация З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислотой стенки аорты обеспечивает менее выраженный антикальциевый эффект: к 180 суткам имплантации количество кальция составляет 91,28±13,01 мг/г.

4. Модификация эпоксиобработанных створок аортального клапана и ксеноперикарда З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислотой не оказывает негативного влияния на микроструктуру, физико-механические свойства и гемосовместимость биоматериала.

5. Излучение Nd:YAG лазера с 1= 1,06 мкм вызывает деструктивные изменения биоматериала в виде разрушения фиброцитов, гомогенизации и разволокнения коллагена глубиной до 80 мкм от зоны среза, что делает его непригодным для раскроя ксеноперикарда при изготовлении кардиоваскулярных биопротезов.

6. Для раскроя биологического материала при изготовлении кардиоваскулярных биопротезов оптимально использование лазеров, хромофорами для которых является вода. Излучение Er:YAG лазера с 1= 2,9 мкм и С02 лазера с Х= 10,6 мкм при рассечении биоматериала не оказывает деструктивного воздействия на биологическую ткань за границей среза.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Биологические протезы клапанов сердца и клапаносодержащие кондуиты, предназначенные для пациентов с высоким риском кальцификации, рекомендуется изготавливать из эпоксиобработанного перикарда крупного рогатого скота, что позволит исключить из их конструкции стенку аорты, имеющую высокий кальций-связывающий потенциал.

2. Для максимального снижения кальций-связывающей активности биоматериала, консервированного диглицидиловым эфиром этиленгликоля, эффективна его дополнительная обработка З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислотой в одну стадию: с однократным помещением биоматериала в модифицирующий 0,15% раствор З-амино-1-оксипропилиден-дифосфоновой кислоты на 4 часа при комнатной температуре (22 - 25°С) с последующей двукратной отмывкой в физиологическом растворе и помещением в раствор консерванта.

3. При изготовлении ксеноперикардиальных биопротезов с целью повышения точности раскроя и минимизации деструктивных изменений за зоной среза целесообразно для раскроя биоматериала использовать излучение Er:YAG лазера с 1= 2,9 мкм, средней мощностью 3 Вт, временем воздействия импульса излучения 14 нсек, а также излучение С02 лазера с ~к= 10,6 мкм, средней мощностью 50 Вт в режиме непрерывного излучения.

4. С целью повышения производительности раскроя биоматериала следует использовать излучение С02 лазера, так как скорость раскроя биоматериала с использованием данного лазера составляет 400 мм/мин, что в 5 раз выше, чем при использовании Er:YAG лазера.

- 126

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Глушкова, Татьяна Владимировна, 2012 год

1. Алешкевич, Н.П. Преклиническая оценка функции биопротезов "КемКор" для атрио-вентрикулярных позиций: экспериментальное исследование : дис. . канд. биол. наук / Н. П. Алешкевич Кемерово, 2006.- 177 с.

2. Алло- и ксенографты в хирургии врожденных пороков сердца. Сравнительный анализ / Ю. Н. Горбатых, С. М. Иванцов, А. С. Касаткин и др. // Патология кровообращения и кардиохирургия. 2002. - № 4. - С. 28-33.

3. Астраханцева, Т. О. Результаты использования глиссоновой капсулы печени при коррекции сложных врожденных пороков сердца : автореф. дис. . д-ра мед. наук / Т. О. Астраханцева. М., 2009. - 42 с.

4. Аутотрансплантация клапана легочной артерии (операция Росса) в хирургическом лечении пороков аортального клапана / А. М. Караськов, Ю. Н. Горбатых, Ю. С. Синельников и др. Новосибирск : Изд-во СО РАН, филиал «Гео», 2005. - 239 с.

5. Барбараш, Л. С. Биологические протезы артерий / Л. С. Барбараш, А. С. Криковцов, И. Ю. Журавлева. Кемерово : Кемеровский полиграфкомбинат, 1996. -208 с.

6. Барбараш, Л. С. Биопротезы клапанов сердца, проблемы и перспективы / Л. С. Барбараш, Н. А. Барбараш, И. Ю. Журавлева. Кемерово, 1995. -400 с.

7. Барбараш, Л. С. Кальцификация ксенобиопротезов клапанов сердца и пути ее профилактики / Л. С. Барбараш, И. Ю. Журавлева // Грудная хирургия. 1989. - № 5. - С. 83-87.

8. Барбараш, Л. С. Эпоксидные соединения в консервации ксенопротезов кровеносных сосудов (сообщение I) / Л. С. Барбараш, И. Ю. Журавлева, А. А. Лучанкин // Ангиология и сосудистая хирургия. 1996. - № 2. - С. 86-92.

9. Белова, С. А. Промышленное применение лазеров: учеб. пособие / С. А. Белова. Пермь : Изд-во Перм. гос. техн. ун-та, 2007. - 288 с.

10. Берлиен, X. П. Прикладная лазерная медицина / X. П. Берлиен, Г. Й. Мюллер. М. : Изд-во Интерэксперт, 1997. - 356 с.

11. Бескаркасные биопротезы в хирургии пороков клапана аорты / Г. Г. Хубулава, Н. Н. Шихвердиев, В. И. Гавриленков и др. СПб., 2009. -180 с.

12. Биологически активные фосфоновые кислоты и их производные / Ю. Е. Вельтищев, Э. А. Юрьева, А. Н. Кудрин и др. // Хим.-фарм. журн. -1983.-№3,-С. 282-290.

13. Биологические протезы клапанов сердца / Н. Н. Малиновский, Б. А. Константинов, Л. С. Дземешкевич и др. М. : Медицина, 1988. - 256 с.

14. Биоматериалы в сердечно-сосудистой хирургии / Л. А. Бокерия, И. И. Каграманов, И. В. Кокшкнев и др. М., 2009. - 325 с.

15. Биопротезы в сердечно-сосудистой хирургии. Современное состояние проблемы / Л. А. Бокерия, В. П. Подзолков, А. И. Малашенков и др. // Грудная и сердечнососудистая хирургия. 2002. - № 1. - С. 4-12.

16. Биопротезы клапанов сердца в России: опыт трех клиник / Л. С. Барбараш, А. М. Караськов, М.Л. Семеновский и др. Патология кровообращения и кардиохирургия. - 2011. - № 2. - С. 21-26.

17. Биосовместимость / Под ред. В. И. Севастьянова. М.: Медицина, 1999. -368 с.

18. Бок, Р. Методы разложения в аналитической химии / Р. Бок. М. : Химия, 1984.-432 с.

19. Бокерия, Л. А. Новые биологические материалы и методы лечения в кардиологии / Л. А. Бокерия, И. И. Каргаманов, И. В. Кокшенев. М. : Изд. НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН, 2002. - 125 с.

20. Бокерия, Л. А. Сердечно-сосудистая хирургия 2006. Болезни и врожденные аномалии системы кровообращения / Л. А. Бокерия, Р. Г. Гудков.-М., 2009,- 162 с.

21. Борисов, В. В. Антибактериальная модификация ксенобиопротезов клапанов сердца, консервированных эпоксисоединениями : автореф. дис. . канд. биол. наук / В. В. Борисов. М., 2000. - 21 с.

22. Бритиков, Д. В. Криосохраненные аллографты для сердечно-сосудистой хирургии: автореф. дис. . д-ра мед. наук / Д. В. Бритиков. М., 2004. -22 с.

23. Бритиков, Д. В. Оптимизация технологии изготовления криосохраненных аллографтов и первый опыт их клинического применения: автореф. дис. . канд. мед. наук / Д. В. Бритиков. М., 1999.-22 с.

24. Бураго, А. Ю. Морфология ксеноаортальных биопротезов клапанов сердца после применения новых методов консервации / А. Ю. Бураго // Биопротезы в сердечно-сосудистой хирургии : материалы симп. -Кемерово : Кемеровский полиграфкомбинат, 1996. С. 169-174.

25. Валиухин, А. Г. Исследование газолазерной резки металлов с целью получения деталей с высокими характеристиками точности и воспроизведения контура / А. Г. Валиухин, С. Г. Горный, А. М. Григорьев. СПб. : Изд-во СПБ ГТУ, 1999. - 35 с.

26. Гантимурова, И. Л. Молекулярные механизмы взаимоотношений коллагеновых ксеноимплантатов и организма реципиента : автореф. дис. . канд. биол. наук / И. Л. Гантимурова. Кемерово, 1996. - 22 с.

27. Гейниц, А. В. Аналитический обзор о НИР, выполненных к 1 января 2008 года в учреждениях / А. В. Гейниц, Г. И. Цыганова // Лазерная медицина. 2008. - Т. 12, вып. 4. - С. 47-54.

28. Гистология / под ред. В. Г. Елисеева, Ю. И. Афанасьева, Н. А. Юриной. М. : Медицина, 1983. - 592 с.

29. Дземешкевич, С. Л. Болезни аортального клапана. Функция, диагностика, лечение / С. Л. Дземешкевич, Л. У. Стивенсон, В. В. Алексии-Месхишвили. М. : Геотармед, 2004 - 328 с.

30. Диэпоксиды и их производные в консервации биопротезов клапанов сердца / И. Ю. Журавлева, П. В. Кузнецов, И. Л. Гантимурова и др. // Биосовместимость. 1994. — Т. 2, № 1. - С. 13-22.

31. Журавлева, И. Ю. Патогенетическое обоснование и разработка новых способов консервации ксенобиопротезов клапанов сердца : автореф. дис. . д-ра мед. наук / И. Ю. Журавлева. М., 1995. - 39 с.

32. Искусственные клапаны сердца / П. И. Орловский, В. В. Гриценко, А. Д. Юхнев и др. СПб. : ЗАО «ОЛМА Медиа Групп», 2007. - 448 с.

33. Использование лазеров в сердечно-сосудистой хирургии: от эксперимента к практике / В. М. Шипулин, С. Л. Андреев, Ю. Ю. Вечерский и др. Томск : 8ТТ, 2010. - 239 с.

34. Кальцификация бесклеточных ксенотрансплантатов клапанов сердца / В. С. Акатов, В. В. Соловьев, Н. И. Рындина и др. // Вестн. трансплантологии и искусственных органов 2002. - № 4. - С. 39-42.

35. Клинико-морфологические изменения при дисфункциях биологических протезов сердца / А. М. Караськов, С. И. Железнев, В. М. Назаров и др. // Патология кровообращения и кардиохирургия 2006. - № 2. - С. 21-26.

36. Ковалев, Д. В. Реконструкция путей оттока правого желудочка с помощью ксеноперикардиального кондуита с бескаркасным трехстворчатым клапаном при коррекции ВПС : автореф. дис. . канд. мед. наук / Д. В. Ковалев. -М., 2003. 133 с.

37. Кондратенко, Ж. Е. Физико-механические и функциональные характеристики ксеноткани при различных видах стабилизации и обработки / Ж. Е. Кондратенко, В. Т. Костава, Н. П. Бакулева и др. // Мед. техника. 1998. - № 4. - С. 20-23.

38. Константинов, Б. А. Протезирование клапанов сердца / Б. А. Константинов, С. Л. Дземешкевич // Большая медицинская энциклопедия. М. : Сов. Энциклопедия, 1983.-Т. 21.-С. 177-180.

39. Красников, И. В. Температурное воздействие лазерного излучения на многослойную биологическую ткань : автореф. дис. . канд. физ-матем. наук / И. В. Красников. Хабаровск, 2007. - 22 с.

40. Кудрявцева, Ю. А. Влияние различных консервантов и антикоагулянтов на гемосовместимость кардиоваскулярных биопротезов : дис. . д-ра биол. наук / Ю. А. Кудрявцева Кемерово, 2010. - 259 с.

41. Кудрявцева, Ю. А. Новые подходы к созданию тромборезистентного биоматериала для сердечно-сосудистой хирургии : автореф. дис. . канд. биол. наук / Ю. А. Кудрявцева. М., 1997. - 21 с.

42. Латыпов, А. К. Клинико-функциональная оценка биологических клапаносодержащих кондуитов в послеоперационном периоде у детей : автореф. дис. . канд. мед. наук / А. К. Латыпов. Новосибирск, 2005. -23 с.

43. Лурье, Ю. Ю. Аналитическая химия промышленных сточных вод / Ю. Ю. Лурье. М. : Химия, 1984. - 448 с.

44. Маслевцов, Д. В. Обработка биологических протезов клапанов сердца эпоксисоединениями (экспериментальное исследование) : автореф. дис. . канд. мед. наук / Д. В. Маслевцов. СПб., 2005. - 22 с.

45. Механизм минерализации сердечных клапанов / А. Т. Титов, П. М. Ларионов, В. С. Щукин и др. // Поверхность. Рентгеновские, синхротронные и нейтронные исследования. 2001. - № 3. - С. 74-79.

46. Мищенко, Б. П. Кальциноз биоклапанов сердца; биохимические и метаболические факторы развития и пути профилактики : автореф. дис. . канд. мед. наук / Б. П. Мищенко. М., 1993. - 22 с.

47. Непосредственные и среднеотдаленные результаты операции фонтена в модификации экстракардиального кондуита / В. П. Подзолков, М. Р. Чиурели, М. М. Зеленкин и др. // Грудная и сердечно-сосудистая хирургия.-2005,-№4.-С. 10-13.

48. Первый опыт выполнения процедуры Росса у детей / Ю.С. Синельников, А. М. Караськов, Ю. Н. Горбатых и др. // Патология кровообращения и кардиохирургия. 2002. - № 4. - С. 23-25.

49. Поворознюк, В. В. Бисфосфонаты: роль ибандроновой кислоты в лечении постменопаузального остеопороза / В. В. Поворознюк // Здоров'я Украши. 2007. - № 5. - С. 57-58.

50. Подзолков, В. П. Экстракардиальные кондуиты в хирургическом лечении сложных врожденных пороков сердца / В. П. Подзолков, М. А. Зеленкин, К. В. Шаталов. М. : Изд. НЦССХ им. А.Н. Бакулева, 2000. -244 с.

51. Практикум по гистологии, цитологии и эмбриологии : учеб. пособие / под ред. Н. А. Юриной, А. И. Радостиной. М. : Изд-во УДН, 1989. -253 с.

52. Промышленное применение лазеров / под ред. Г. Кёбнера. М. : Машиностроение, 1988. -280 с.

53. Пушкарева, А. Е. Методы математического моделирования в оптике биоткани / А. Е. Пушкарева. СПб. : Изд-во СПбГУ ИТМО, 2008. -103с.

54. Рассел Дж. Бисфосфонаты. Нарушения обмена кальция / Рассел Дж. -М. : Медицина, 1985.-С. 139-150.

55. Реброва, О. Ю. Статистический анализ медицинских данных. Применение пакета прикладных программ 81ай8Нса / О. Ю. Реброва. -М. : МедиаСфера, 2002. 312 с.

56. Результаты протезирования трикуспидального клапана механическими и биологическими протезами у детей / Ю. Н. Горбатых, Л. Ю. Наберухин, Е. В. Жалнина и др. // Патология кровообращения и кардиология. 2008. - № 2. - С. 8-12.

57. Розанова, И. Б. Кальцификация имплантатов / И. Б. Розанова, С. Л. Васин ; под ред. В. И. Севастьянова // Биосовместимость. М., 1999. -С. 246-294.

58. Рындина, Н. И. Исследование механизма инициации кальциноза трансплантатов клапанов сердца и разработка способов его предотвращения : автореф. дис. . канд. биол. наук / Н. И. Рындина. -Пущено, 2006. 22 с.

59. Сазоненков, М. А. Анатомо-физиологическое обоснование биопротезирования и реконструктивных операций на клапанах сердца : автореф. дис. . д-ра мед. наук / М. А. Сазоненков. М., 2010. - 47 с.

60. Сборник методических рекомендаций по оценке биосовместимых свойств искусственных материалов, контактирующих с кровью / Под ред. Н. Б. Добровой, Т. И. Носковой, С. П. Новиковой, В. И. Севастьянова М : ВНИТИПРИБОР, 1991. - 70 с.

61. Сванидзе, Э. Н. Технологические лазеры. Экономичность и границы эффективности / Э. Н. Сванидзе, О. Я. Харлампович. М. Машиностроение, 1990. - 77 с.

62. Серов, В. В. Соединительная ткань / В. В. Серов, А. Б. Шехтер. М. : Медицина, 1981. - 312 с.

63. Сравнительный анализ применения различных гепаринов для антитромботической модификации биоматериала / И. Ю. Журавлева, Ю.А. Кудрявцева, В. В. Борисов // Медицина в Кузбассе. 2010. - № 3. -С. 17-22.

64. Структурная трансформация ксеноперикарда после имплантации в сонную артерию (проспективное исследование) / А. М. Чернявский, П. М. Ларионов, М. С. Столяров и др. // Патология кровообращения и кардиохирургия. 2007. - № 4. - С. 37-40.

65. Технический анализ / К. И. Городовская, Л. В. Рябина, Г. Ю. Новик и др. М. : Высшая школа, 1979. - 464 с.

66. Тучин, В. В. Взаимодействие лазерного излучения с биологическими тканями / В. В. Тучин // Лазерная физика. Российский центр лазерной физики. СПб., 1992. - Вып. 3 - С. 87-108.

67. Федоров, Б. Ф. Лазеры. Основы устройства и применение / Б. Ф. Федоров. М., 1988. - 190 с.

68. Федорова, В. Н. Краткий курс медицинской и биологической физики с элементами реабилитологии / В. Н. Федорова, Л. А. Степанова. М., 2008.-622 с.

69. Химический анализ сложных молибдато-фосфатов редкоземельных элементов в сочетании с натрием / М. А. Рюмин, А. В. Неведимов, Н. В. Шведене и др. // Вестн. Московского университета. Серия 2. Химия. -2004. Т. 45, № 4. - С. 258-266.

70. Шапошников, А. Н. Эпоксисоединения в консервации биологических протезов клапанов сердца : автореф. дис. . канд. мед. наук / А. Н. Шапошников. Кемерово, 1992. - 20 с.

71. Шипулин, В. М. Применение полупроводникового лазера «Лазон 10-П» для непрямой реваскуляризации миокарда / В. М. Шипулин, И. В. Суходоло, Н. В. Коровин // Восьмой Всероссийский съезд сердечнососудистых хирургов. М., 2002. - 80 с.

72. Шумаков, В. И. Трансплантация органов и тканей // Большая медицинская энциклопедия. М. : Сов. Энциклопедия, 1985. - Т. 25. - С. 212-213.

73. Экспериментальные биопротезы для сердечно-сосудистой хирургии / Ю. М. Чеснов, Л. С. Станишевский, М. М. Швед и др. // Тезисы докладов Всеросийской конференции с международным участием. Новосибирск : ЦЭРИС, 2001.-С. 71-72.

74. Эльгудин, Я. Л. Ксеноаортальные биопротезы в хирургии клапанных пороков сердца : автореф. дис. . д-ра мед. наук / Я. Л. Эльгудин М., 1995.-42 с.

75. Юнкеров, В. И. Математико-статистическая обработка данных медицинских исследований / В. И. Юнкеров, С. Г. Григорьев. СПб. : ВМедА, 2002.-266 с.

76. A multi-step approach in anti-calcification of glutaraldehyde-preserved bovine pericardium / W. M. Neethling, A. J. Hodge, P. Clode, et al. // J. Cardiovasc. Surg. (Torino). 2006. - Vol.47, № 6. - P. 711-718.

77. A natural compound (reuterin) produced by Lactobacillus reuteri forbiological-tissue fixation / H. W. Sung, C. N. Chen, H. F. Liang et al. // Biomaterials. 2003. - Vol. 24, № 8. - P. 1335-1347.

78. Aminodiphosphonate or Al preincubation inhibits calcification of aortic homografts in the rat subdermal model / C. L. Webb, L. L. Phelps, F. J. Schoen et al. // ASAIO Trans. 1988. - Vol. 34 (3). - P. 851-854.

79. Biocompatibility study of biological tissues fixed by a natural compound (reuterin) produced by Lactobacillus reuteri / H. W. Sung, C. N. Chen, Y. Chang et al. // Biomaterials. 2002. - Vol.23, № 15. - P. 3203-3214.

80. Biocor No- React stentless aortic valve-short-term results / Von U. O. Oppell, F. Stemmet, B. Levetan et al. // Cardiovasc. J. S. Afr. 2001. - Vol. 12 (3). -P. 152-158.

81. Biological factors affecting long-term results of valvular heterografts / A. Carpentier, G. Lemaigre, L. Robert et al. // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. -1969. Vol. 58, № 4. - P. 467-483.

82. Biomechanical and structural properties of the explanted bioproshetic valve leaflets / B. Purinya, V. Kasyanov, J. Volkolakov et al. // Biomech. 1994. -Vol.27, № 1.-P. 1-11.

83. Bornstein P. The Biosynthesis of Collagen / P. Bornstein // Ann. Rev. Biochem. 1974. - Vol. 43. - P. 567-603.

84. Bostrom, K. Insights into the mechanism of vascular calcification / K. Bostrom // Am. J. Cardiol. 2001. - Vol. 88 (suppl) - 20E-22E.

85. Calcific deposits in porcine bioprostheses: structure and pathogenesis / V. J. Ferrans, S. W. Boyce, M. E. Billingham et al. // Am. J. Cardiology. 1980. -Vol. 46 (5).-P. 721-734.

86. Calcification and degeneration characteristics of the Biocor No-React bovine internal mammary artery (BIMA) in vivo evaluation in a sheep model / R. Jasharia, P. Herijgersa, E. Verbekenb et al. // Cardiovascular Surg. - 2001. -Vol. 9, № 1. - P. 44-49.

87. Calcification resistance with aluminum-ethanol treated porcine aortic valve bioprostheses in juvenile sheep / M. F. Ogle, S. J. Kelly, R. W. Bianco et al. // Ann. Thorac. Surg. 2003. - Vol. 75 (4). - P. 1267-1273.

88. Calcification tendency of various biological aortic valves in an experimental animal model / M. Mirzaie, T. Meyert, B. Schorn et al. // Cardivasc. Surgery. 1999. - Vol. 7, № 7. - P. 735-741.

89. Calcium mitigation in bioprosthetic tissues by iron pretreatment: the challenge of iron leaching / S. M. Carpentier, A. F. Carpentier, L. Chen et al. // Ann. Thorac. Surg. 1995. - Vol. 60, № 2. - P. 332-338.

90. Carbodiimide Treatment Dramatically Potentiates the Anticalcific Effect of Alpha-Amino Oleic Acid on Glutaraldehyde-Fixed Aortic Wall Tissue / Peter Zilla, Deon Bezuidenhout, Paul Human et al. // Cardiovascular. 2003. -Vol. 10.

91. Caulfield, J. B. Electron microscopy study of renal calcification / J. B. Caulfield, P. E. Schrag // Am. J. Pathol. 1964. - Vol. 44 - P. 365-381.

92. Chemical modification of biomedical materials with genipin // US Patent № 6608040. Publication Date 19.08.2003.

93. Chen, W. Mechanism of efficacy of 2-amino oleic acid for inhibition of calcification of glutaraldehyde-pretreated porcine bioprosthetic heart valves / W. Chen, F. J. Schoen, R. J. Levy // J. Circulation. 1994. - Vol. 90. - P. 323-329.

94. Critical role of the sinuses of Valsalva in the durability of valved conduits / S. P. Kumar, M. N. Kumar, M. L. Ali et al. // J. Heart Valve Dis. 1996. - Vol. 5 (2).-P. 160-167.

95. Cross-linking characteristics and mechanical properties of bovine pericardium fixed with a naturally occurring cross-linking agent / H. W. Sung,

96. Y. Chang, C. T. Chuit, et al. // J. Biomed. Mater. Res. 1999. - Vol. 47, № 2. -P. 116-126.

97. Detoxiffied glutaraldehyde cross-linked pericardium: tissue preservation and mineralization mitigation in a subcutaneous rat model / M. Valente, E. Pettenazzo, G. Thiene et al. // J. Heart. Valve. Dis. 1998. - Vol. 7, № 3 - P. 283-291.

98. Detoxification process for glutaraldehy de-treated bovine pericardium: biological, chemical and mechanical characterization / C. Stacchino, G. Bona, F. Bonetti et al. // J. Heart Valve Dis. 1998. - Vol. 7, № 2. - P. 190-194.

99. Development of bioprosthetic heart valve calcification in vitro and in animal models: morphology and composition / D. Mavrilas, A. Apostolaki, J. Kapolos et al. // J. Crystal Growth. 1999. - Vol. 205. - P. 554-562.

100. Dewanjee, M. Treatment of Collagenous Tissue with Glutaraldehyde and Aminodiphosphonate Calcification Inhibitor / M. Dewanjee // Us Pat. 4.553.974.- 1985.

101. Dynamic in vitro calcification of bioprosthetic porcine valves: Evidence of apatite crystallization / E. Pettenazzo, M. Deiwick, G. Thiene et al. // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2001. - Vol. 121, № 3. - P. 500-509.

102. Early failure of the Shelhigh pulmonary valve conduit in infants / J. M. Pearl, D. S. Cooper, K. E. Bove et al. // Ann. Thorac. Surg. 2002. - Vol. 74 (2). -P. 542-549.

103. Early graft failure of small-sized porcine valved conduits in reconstruction of the right ventricular outflow tract / C. Schreiber, S. Sassen, M. Kostolny et al. // Ann. Thorac. Surg. 2006. - Vol. 82 (1). - P. 179-85.

104. Effect of diphosphonate binding to collagen upon inhibition of calcification and promotion of spontaneous endothelial cell coverage on tissue valve prostheses / M. K. Dewanjee, E. Solis, J. Lanker et al. // ASAIO Trans. -1986,- Vol. 32 (l).-P. 24-29.

105. Effects of collagen fiber orientation on the response of biologically derived soft tissue biomaterials to cyclic loading / Tiffany L. Sellaro, Daniel

106. Hildebrand, Qijin Lu, et al. // Biomedical Materials Research. 2006. - P. 194-204.

107. Epoxy compounds as a new cross-linking agent for porcine aortic leaflets: subcutaneous implant studies in rats / E. Imamura, O. Sawatani, H. Koyanagi et al.//J. Card. Surg. 1989. - Vol. 4, № l.-P. 50-57.

108. Ethanol inhibition of porcine bioprosthetic heart valve cusp calcification is enhanced by reduction with sodium borohydride / J. M. Connolly, I. Alferiev, A. Kronsteiner et al. // J. Heart Valve Dis. 2004. - Vol. 13 (3). - P. 487493.

109. Experimental study of calcification of the xenopericardia / H. Masumoto, T. Watanabe, Y. Sakai et al. // Kyobu Geka. 2000. - Vol. 53 (6) - P. 468-471.

110. Extracardiac Fontan operation for complex cardiac anomalies: seven years experience / A. Amodeo, L. Galletti, S Marianeschi et al. // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 1997. - Vol. 114 (6)-P. 1020-1031.

111. Feasibility study using a natural compound (reuterin) produced by Lactobacillus reuteri in sterilizing and crosslinking biological tissues / C. N. Chen, H. W. Sung, H. F. Liang et al. // J. Biomed. Mater. Res. 2002. - Vol. 61, №3.-P. 360-369.

112. Fleisch, H. Bisphosphonates: Mechanisms of Action / H. Fleisch // Endocrine Reviews. 1998. - Vol. 19 (1). - P. 80-100.

113. Frommelt, P. C. Natural history of apical left ventricular to aortic conduits in pediatric patients / P. C. Frommelt, A. P. Rocchini, E. L. Bove // Circulation. 1991. - Vol. 84, № 5. - P. 213-8.

114. Girardot, M. N. Effect of AOA® on Glutaraldehyde-Fixed Heart Valve Cusps and Walls; Binding and Calcification Studies / M. N. Girardot, M. Torrianni, J. M. Girardot // Int. J. Artif. Org. 1994. - Vol. 17, № 2. - P. 7682.

115. Glutaraldehyde-Fixed Bioprosthetic Heart Valve Conduits Calcify and Fail From Xenograft Rejection / R. A. Manji, L. F. Zhu, N. K. Nijjar et al. // Valvular Heart Disease. 2006. - Vol. 114.-P. 318-327.

116. Gross, J. M. Calcification of bioprosthetic heart valves and its assessment / J. M. Gross // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2001. - Vol.121, № 3. - P. 428430.

117. Hancock, W. D. Preparing natural tissue for implantation so as to provide improved flexibility / W. D. Hancock, T. J. Fogarty // US patent № 3966401. 1976.-June 29.

118. Harkness, R. D. Mechanical properties collagenous tissues / R. D. Harkness // Intern. Review of connect. Tiss. Res. 1968. - Vol. 54. - P. 255-263.

119. Helin, P. Aortic glycosaminoglycans and collagen related to biomechanical properties / P. Helin, H. Oxlund, I. Lorenzen // Symp. Biol. Connect. Tissue Uppsala. 1977,- 134 p.

120. Heparinized bovine pericardium as a novel cardiovascular bioprosthesis / W. K. Lee, K. D. Park, D. K. Han et al. // Biomaterials. 2000. - Vol. 21 (22).-P. 2323-2330.

121. Impact of glutaraldehyde on calcification of pericardial bioprosthetic heart valve material / M. Grabenwôger, J. Sider, F. Fitzal et al. // Ann. Thorac. Surg. 1996. - Vol. 62 (3) - P. 772-777.

122. Inhibition by diphosphonate compounds of calcification of porcine bioprosthetic heart valve cusps implanted subcutaneously in rats / R. J. Levy, M. A. Hawley, F. J. Schoen et al. // Circulation. 1985. - Vol. 71. - P. 349356.

123. Inhibition of bioprosthetic heart valve calcification with aminodiphosphonate covalently bound to residual aldehyde groups / C. L. Webb, J. J. Benedict, F. J. Schoen et al. // Ann. Thorac. Surg. 1988. - Vol. 46 (3). - P. 309-316.

124. Intermediate-term results of Medtronic freestyle valve for right ventricular outflow tract reconstruction in the Ross procedure / M. S. Bilal, N. A. Aydemir, N. Cine et al. // J. Heart Valve Dis. 2006. - Vol. 15 (5). - P. 696701.

125. Kathuria, Y. P. Laser Precision Processing in Microtehnology / Y. P.th

126. Kathuria // Proceedings of the 30 International CIRP Seminar on Manufacturing Systems LANE. - 1997. - P. 267-272.

127. Kim, K. M. Cellular mechanism of calcification and its prevention in glutaraldehyde treated vascular tissue / K. M. Kim // Z. Kardiol. 2001. -Vol. 90, Suppl 3. -111/99 - III/105.

128. Hellenic Symposium with International participation. 2010. - Heraklion, Crete-Greece. - P. 50-51.

129. Lentz, D. J. Metod for inhibiting mineralization of natural tissue during implantation / D. J. Lentz, E. M. Pollock // US Pat. № 4323358. 1982.

130. Levy, R. J. Bioprosthetic heart valve calcification: clinical features, pathology and prospects for prevention / R. J. Levy, F. J. Schoen, G. Golomb // CRC Crit. Rev. Biocompat. 1986. - Vol. 2. - P. 147-187.

131. Liao, K. Improved biocompatibility of bovine pericardium using a new method of cross linking / K. Liao, E. Seifter, G. Gong // ASAIO Trans. -1991,-Vol. 37.-P. 175-176.

132. Marked thrombosis and calcification of porcine heterograft valves / M. R. Piatt, L. J. Mills, A. S. Estrera et al. // Circulation. 1980. - Vol. 62, № 4. -P. 862-869.

133. Maxwell, L. Differences between heart valve allografts and xenografts in the incidence and initiation of dystrophic calcification / L. Maxwell, J. B. Gavin, B. G. Barratt-Boyes // Pathology 1989. - Vol. 21. - P. 5-10.

134. Medical use of reuterin // US Patent № 20050123583 Publication Date 09.06.2005.

135. Methods for measuring a biomaterial for use in an implant / C. R. Ekholm, Jr., S. Nguyen, R. Peloquin et al. // Patent US006553681 B2 Date of Patent 29.04.2003.

136. Niemz, M. H. Laser Tissue Interactions: Fundamentals and Applications / M. H. Niemz. - Berlin, 1996. - 305 p.

137. Niwaya, K. Medium-term results of aortic valve replacement with cryopreserved homograft valves: importance of a domestic homograft valvebank / K. Niwaya, J. Kobayashi // Nippon Geka Gakkai Zasshi. 2007. - Vol. 108 (2).-P. 85-88.

138. No-React Detoxification Process: A Superior Anticalcification Method for Bioprostheses / Amir Abolhoda, Sumei Yu, J. Rodrigo Oyarzun et al. // Ann. Thorac. Surg. 1996. - Vol. 62 - P. 1724-1730.

139. Onset and progression of experimental bioprosthetic heart valve calcification / F. J. Schoen, R. J. Levy, A. C. Nelson et al. // Lab. Invest. 1985. - Vol. 52 (5)-P. 523-532.

140. Ozaki, S. A new model to the calcification characteristics of bioprosthetic heart valves / S. Ozaki, P. Herijgers, W. Flameng // Ann. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2004. - Vol. 10 (1). - P. 23-28.

141. Porcine stentless bioprostheses: Prevention of aortic wall calcification by dye-mediated photooxidation / B. Meuris, R. Phillips, M. A. Moore et al. // Artif. Organs. 2003. - Vol. 27, № 6. - P. 537-543.

142. Premature failure of small-sized Shelhigh No-React porcine pulmonic valve conduit model NR-4000 / T. Ishizaka, R. G. Ohye, C. S. Goldberg et al. // Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2003. - Vol. 23(5). - P. 715-718.

143. Prevention of Bioprosthetic Heart Valve Calcification by Ethanol Preincubation Efficacy and Mechanisms / Narendra Vyavahare, Danielle Hirsch, Eyal Lerner et al. // Circulation. 1997. - Vol. 95. - P. 479-488

144. Prevention of calcification of bioprosthetic heart valve cusp and aortic wall with ethanol and aluminum chloride / J. N. Clark, M. F. Ogle, P. Ashworth et al. // Ann. Thorac. Surg. 2005. - Vol. 79 (3). - P. 897-904.

145. Refinement of the alpha amino oleic acid bioprosthetic valve anticalcification technique / J. P. Gott, M. Girardot, J. Girardot et al. // Ann. Thorac. Surg. -1997.-Vol. 64.-P. 50.

146. Rolle, A. Laser Applications in Lung Parenchyma Surgery / A. Rolle // Medical Laser Application 2003. - Vol. 18. - P. 271-280.

147. Sacks, M. S. Collagen fiber disruption occurs independent of calcification in clinically explanted bioprosthetic heart valves / M. S. Sacks, F. G. Schoen // J. Biomed. Mater. Res. 2002. - Vol. 62 (3). - P. 359-371.

148. Schmidt, C. E. Acellular vascular tissues: natural biomaterials for tissue repair and tissue engineering / C. E. Schmidt, J. M. Baier // Biomaterials. 2000. -Vol. 21 (22).-P. 2215-2230.

149. Schoen, F. J. Calcification of tissue heart valve substitutes: progress toward understanding and prevention / F. J. Schoen, R. J. Levy // Ann. Thorac. Surg. 2005. - Vol. 79 (3). - P. 1072-1080.

150. Schoen, F. J. Tissue heart valves: current challenges and future research perspectives / F. J. Schoen, R. J. Levy // J. Biomed Mater. Res. 1999. - Vol. 47, №4.-P. 439-465.

151. Sellaro, T. L. Effects of collagen orientation on the medium-term fatigue response of heart valve biomaterials / T. L. Sellaro. Pittsburgh, 2003. - 93p.

152. Shelhigh No-React porcine pulmonic valv conduit: a new alternative to the homograft / S. M. Marianeschi, G. M. Iacona, F. Seddio et al. // Ann. Thorac. Surg. Feb.-2001.-Vol. 71, №2.-P. 619-623.

153. Stelzer, P. I. Stentless aortic Valve Replacement: Porcine and Pericardial / P. I. Stelzer; Lh. Cohn // Cardiac Surgery in the Adult. New York: McGraw-Hill, 2008.-P. 915-934.

154. Structure and classification of cuspal tears and perforations in porcin bioprosthetic cardiac valves implanted in patients / T. Ishihara, V. J. Ferrans, S. W. Boyce et al. // Am. J. Cardiol. 1981. - Vol. 48, № 4. - P. 665-678.

155. Systems and methods for mapping and marking the thickness of bioprosthetic sheet / C. R. Ekholm, Jr., S. Nguyen, R. Peloquin et al. // Patent US006378221 B1 Date of Patent 30.04.2002.

156. Techniques for prevention of calcification of valvular bioprostheses / A. Carpentier, A. Nashef, S. Carpentier et al. // Circulation. 1984. - Vol. 70, № l.-P. 165-168.

157. The role of glutaraldehyde-induced cross-links in calcification of bovine pericardium used in cardiac valve bioprostheses / G. Golomb, F. J. Schoen, M.S. Smith etal.//Am. J. Pathol.- 1987.-Vol. 127(1).-P. 122-130.

158. The Ross procedure: clinical and echocardiographic follow-up in 219 consecutive patients / B. Chiappini, B. Absil, J. Rubay et al. // Ann. Thorac. Surg. 2007. - Vol. 83 (4). - P. 1285-1289.

159. The ultrastructure and mechanics of elastic ligaments / A. Serafini-Fracassini, J. M. Field, J. M. Smith et al. // Adv. Exp. Med. Biol. 1977. - Vol. 79. - P. 97-103.

160. Time-dependent effect of glutaraldehyde on the tendency to calcify of both autografts and xenografts / K. Liao, R. W. Fratar, La A. Pietra et al. // Ann. Thorac. Surg. 1995. - Vol. 60, № 2. - P. 343-347

161. Tissue characterization and calcification potential of commercial bioprosthetic heart valves / C. M. Cunanan, C. M. Cabiling, T. T. Dinh et al. // Ann. Thorac. Surg.-2001.-Vol.71, №5, Suppl. P. 417-421.

162. Total cavopulmonary connection with an extracardiac conduit experience with 100 patients / S. Tokunaga, H. Kado, Y. Imoto et al. // Ann. Thorac. Surg. 2002. - Vol. 73 (1). - P. 76-80.

163. Valve prostheses in cardiac surgery: categories and particularities / R. Prêtrea, M. Combera, A. Kadnerc et al. // Kardiovaskuläre Medizin. 2006. - Vol. 9. -P. 393-399.

164. Vasin, S. L. The role of proteins in the nucleation and formation of calcium-containing deposits on biomaterials surface / S. L. Vasin, I. B. Rosanova, V. I. Sevastianov // J. Biomed. Mater. Res. 1998. - Vol. 39 - P. 491-498.

165. Woodroof, E. A. Use of glutaraldehyde and formaldehyde to process tissue heart valves / E. A. Woodroof// J. Bioeng. 1978. - Vol. 2, № 1-2. - P. 1-9.

166. Yi, D Calcification mechanism and anticaicification on cardial bioprostheses / D. Yi, W. Liu, J. Yang // Zhonghua Wai Ke Za Zhi. 1996. - Vol. 34 (10). -P.631-633.