Биохимические и морфологические особенности хрусталика гидробионтов при воздействии неблагоприятных факторов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.18, кандидат биологических наук Горбунов, Александр Вячеславович

• Горбунов, Александр Вячеславович
• кандидат биологических наук
• 2007

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Горбунов, Александр Вячеславович

введение.

глава 1. морфология и биохимия хрусталика гидробионтов.

1.1. Морфология хрусталика низших позвоночных животных.

1.2. Эмбриогенез хрусталика.

1.3. Некоторые аспекты биохимии хрусталика.

1.4. Изменения, происходящие в хрусталике при катарактах различной этиологии.

глава 2. материал и методика исследований.

2.1. Исследования динамики накопления макро и микроэлементов при развитии хрусталика (на примере амфибий).

2.2. Исследования микроэлементного состава хрусталика (атомноабсорбционной спектрометрия).

2.3. Исследования пространственного распределения химических элементов хрусталика гидробионтов.

2.4. Исследование изменений пространственного распределения химических элементов в хрусталике рыб под влиянием токсикантов

2.5. Изучение помутнений различной этиологии хрусталика гидробионтов.

2.6. Статистическая обработка экспериментального материала.

глава 3. динамика накопления макро и микроэлементов при развитии хрусталика (на примере амфибий).

глава 4. микроэлементарный состав хрусталика некоторых видов рыб и его изменение под влиянием различных факторов (методы атомно-абсорбционной спектрометрии).

4.1. Видовые различия в микроэлементарном составе хрусталика некоторых видов рыб.

4.2. Различия в микроэлементарном составе хрусталика в зависимости от массы тела.

4.3. Изменения микроэлементарного состава хрусталика рыб при развитии паразитарной катаракты.

глава 5. пространственное распределение химических элементов в хрусталике гидробионтов и его изменение под влиянием различных факторов (методы рентгеновского спектрального анализа).

5.1. Пространственное распределение химических элементов в нормально развивающемся хрусталике гидробионтов.

5.2. Изменение пространственного распределение химических элементов в хрусталике гидробионтов при катарактах различной этиологии.

5.3. Изменение пространственного распределение химических элементов в хрусталике рыб под влиянием тяжелых металлов.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Биохимические и морфологические особенности хрусталика гидробионтов при воздействии неблагоприятных факторов»

Зрительной системе гидробионтов принадлежит значительная, а у многих видов - ведущая роль в осуществлении важнейших поведенческих реакций. У большинства видов низших позвоночных животных зрение является одним из основных дистантных рецепторов. Оптомоторная реакция - врожденная, зрительно-обусловленная форма поведения отчетливо выражена у многих видов рыб (Павлов, 1979). Уже на самых ранних этапах онтогенеза зрение играет существенную роль в общей ориентации в окружающей среде, являясь доминирующим каналом (Крыжановский, 1959; Дислер, 1960; Бабурина, 1972; Гирса, 1981). Хрусталик гидробионтов играет ведущую роль в формировании изображения на сетчатке глаза. От рефракционных характеристик хрусталика в значительной мере зависит функционирование всей зрительной системы гидробионтов в целом.

При появлении оптических аномалий хрусталика и развитии катаракты, у гидробионтов (в частности у рыб) нарушаются процессы питания, роста организма и увеличивается процент их гибели. Патогенез катаракты у высших и у низших позвоночных имеет однотипный биохимический базис -окислительное повреждение липидов и белков, деструкция мембран хрусталиковых волокон. Но у рыб ввиду их филогенетических особенностей он заметно специфичен (Нефедова, Тойвонен, 1997). Хрусталик лишен кровообращения, и питание его осуществляется за счет диффузии метаболитов из камерной влаги через капсулу, состояние которой оказывает влияние на обменные процессы и предопределяет развитие болезней хрусталика. При этом важную роль в метаболизме хрусталика играют макро- и микроэлементы. С возрастом и при катарактогенезе наблюдается увеличение концентрации ряда микроэлементов в хрусталике (Stanojevic-Paovic et al., 1987; Rasi et al., 1992; Srivastava et al., 1992). В тоже время недостаток некоторых микроэлементов может приводить к экзофтальмии и развитию катаракты (Ketola, 1979; Barash et al., 1982; Richardson et al., 1985; Waagbo et al., 1996;

Козлов и др., 2004). Несмотря на большое разнообразие факторов, приводящих к возникновению катаракты, наиболее существенным является то, что при катаракте всегда происходит уменьшение общего количества белков в хрусталике, прежде всего низкомолекулярных. Эти процессы сопровождаются перестройкой основных ферментных систем и существенными изменениями микроэлементного состава хрусталика. Таким образом, микроэлементный состав хрусталика может служить индикатором "благополучия" хрусталика.

Выявление основных закономерностей изменения макро- и микроэлементного состава хрусталика при катарактогенезе и под воздействием неблагоприятных факторов позволило бы найти решение ряда актуальных рыбохозяйственных проблем, а также некоторых прикладных вопросов водной экологии.

Заключение диссертации по теме «Гидробиология», Горбунов, Александр Вячеславович

Основные выводы

1. В процессе эмбрионального развития в хрусталике амфибий происходят существенные изменения макро- и микроэлементного состава и пространственного распределения макро- и микроэлементов. Отмечаются следующие закономерности: уже на ранних стадиях развития происходит заметное увеличение содержания железа, главным образом в эмбриональном ядре хрусталика; с 44 по 48-ю стадию развития происходит двукратное увеличение содержание магния; с 40 по 52-ю стадию развития происходит существенное (десятикратное) увеличение содержание свинца; в процессе развития хрусталика происходит существенное увеличение содержания кальция, при этом отмечается значительный градиент пространственного распределения кальция: содержание кальция в коре хрусталика в 7 раз превосходит содержание в ядре.

2. В хрусталике исследованных видов рыб в наибольших количествах содержится Ъ\, Си, и N1. При этом в наименьшей степени варьируют содержания таких физиологически значимых металлов, как Zn и Си. В тоже время, в наибольшей степени в хрусталиках исследованных видов рыб вариациям был подвержен РЬ - величина коэффициента вариации в этом случае составляла для карпа 49 % и 35 % для форели. По степени вариации в хрусталике тяжелые металлы можно расположить в следующем ряду: для карпа - РЬ>Аз>Сг>№>Си>7п>С(1, для толстолобика - РЬ>Сг>№>Аз>Си>Сс1>2п, и для форели -РЬ>№>Аз>Сг>2п>Сс1>Си.

3. Уже на ранних стадиях развития паразитарной катаракты микроэлементный состав хрусталика рыб претерпевает значительные изменения. Происходят значимые изменения в содержании Сг, 2п, Ав и

РЬ. При этом содержание Сг и РЬ в хрусталике увеличивается, а также происходит уменьшение содержания 2п и Ав. Между изменениями уровней цинка и мышьяка, а также никеля и кадмия существует значимая положительная корреляция. Аналогичным образом коррелируют уровни меди и цинка, меди и хрома. В тоже время, между изменениями уровней хрома и никеля, хрома и кадмия, свинца и цинка, а также свинца и мышьяка выявлена значимая обратная корреляция.

4. Пространственное распределение макро- и микроэлементов в хрусталике рыб и амфибий - неоднородно. Наименьшим вариациям в хрусталике подвержено распределение кислорода. Наибольшим - пространственное распределение физиологически значимых элементов: магния, меди и цинка. Общей закономерностью для этих элементов является их наличие в верхних слоях коры при практически полном их отсутствии (в пределах чувствительности метода) в более глубоких слоях хрусталика.

5. Характерной особенностью для изученных видов рыб и амфибий является увеличение содержания серы к центру хрусталика. Данная закономерность не является видоспецифичной. Более существенными являются возрастные различия в характере распределения серы в хрусталике.

6. При катарактогенезе в хрусталике рыб и амфибий происходят существенные изменения в пространственном распределении макро- и микроэлементов. Выявлены значимые различия в пространственном распределении Иа, К, Са, Си и Ъп в прозрачном и катарактальном хрусталике вне зависимости от этиологии катаракты. При зрелой катаракте в хрусталике значимо повышается содержание М§, Са и Си. По степени увеличения содержания в катарактальном хрусталике данные элементы располагаются в ряду Са > № > Си > Mg. В отличии от амфибий, при катаракте у рыб в хрусталике значимо меняется содержание цинка, а также происходит повышение уровня К и 8.

7. Под воздействием тяжелых металлов в хрусталике рыб происходят существенные изменения в пространственном распределении макро- и микроэлементов. По степени накопления в хрусталике исследуемые металлы можно расположить в ряду: Сё > РЬ > Ъп > Си. Медь и цинк накапливаются хрусталиком в меньшей степени, чем кадмий и свинец, что указывает на наличие механизмов, регулирующих содержание в хрусталике физиологически значимых элементов. Наиболее высокая степень накопления Сё, Тп и Си наблюдается в переднем секторе коры хрусталика и экваториальной области. Содержание Си, Хп, Сё и РЬ во внутренних слоях коры и в ядре хрусталика экспоненциально уменьшается с уменьшением к центру хрусталика.

8. Проведенные экспериментальные исследования и их теоретическое обобщение могут лечь в основу методики ранней диагностики развития катаракты у рыб на основе изменения макро- и микроэлементного состава хрусталика. Полученные результаты могут быть использованы при исследовании динамики развития помутнения хрусталика под действием антропогенных и иных факторов, в частности недоброкачественных кормов.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Горбунов, Александр Вячеславович, 2007 год

1. Абросимова А.Н., Шафиркин А.В., Федоренко Б.С. Вероятностьразвития помутнений хрусталика и образования зрелых катаракт придействии излучений с различными значениями ЛПЭ. // Авиакосм, и экол.мед., 2000, т. 3, с. 33-41.

2. Аверкина Р.Ф. Специфические антигены в тканевых зачатках глаза куриных эмбрионов. // Бюлл. экспер. биол. и мед., 1964, т. 58, вып. 11, с.111-115.

3. Азнабаев М.Т., Авхадеева СР., Азнабаев Р.А., Суркова В.К. Некоторые аспекты изучения наследственных врожденных катаракт. // Новыетехнологии в офтальмологии., 2000, с. 87-90.

4. Аникин А.В. Морфологическое обоснование индукции хрусталика глазной чашей. // Труды 6-го Всесоюз. Съезда анатомов, гистологов иэмбриологов. Харьков, 1961, т. 1, с. 511-513.

5. Архангельский В.Н. Практическое руководство по патологистологической технике для офтальмологов. -М.; Медгиз., 1957,110 с.

6. Бабурина Е.А. Развитие глаз у круглоротых и рыб в связи с экологией. - М.: Наука., 1972, 145 с.

7. Балдин Д., Реффи Д. Динамика разрушения в стеклах, вызванного действием лазерного излучения. -М.: Мир., 1968, с. 383-387.

8. Бауэр О.Н., Мусселиус В.А., Стрелков Ю.А. Болезни прудовых рыб. - 2-е изд., переработ, и доп. —М.: Легкая и пиш;евая промышленность., 1981,320 с.

9. Бигел А.К. Действие высоковольтного излучения бетатрона на глаза (экспериментальные данные). // В сб. Лучевые катаракты. -М.: Медгиз.,1959, с. 55-56.

10. Бодемер Ч. Современная эмбриология. -М.: Мир., 1971, 446 с. 87и , Божкова В,П. Современное состояние проблемы щелевых контактов ипредставление об их роли в развитии. Сборник тезисов II Съездабиофизиков России, Москва, 23-27 августа., 1999, с. 226-227.

11. Бородин А.Л. Воздействие лазерного излучения на хрусталик гидробионтов. // Сб. научных трудов молодых ученых МГТА. -М.:МГТА., 2001, вып. 1, с. 56-59.

12. Бородин А.Л., Горбунов А.В. Особенности формирования хрусталика в процессе индукции у гидробионтов, относящихся к низшимпозвоночным. // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии и ихтиологии"МГТА. - -М.: МГТА, 2003, вып. 18, 16-18.

13. Бородин А.Л., Горбунов А.В., Никифоров-Никишин А.Л. Изменения микроэлементного состава хрусталика рыб в процессе развитиякатаракты. //Вопросы рыболовства, 2007, том 1, JVb 1(29), стр. 138-141.

14. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л. Системная экология. -М.: МГТА., 2004,372 с.

15. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А.Л., Горбунов А.В. Изменение элементного состава хрусталика радужной форели под влияниемтяжелых металлов. // Научн.-техн. бюлл. каф. "Биоэкологии иихтиологии" МГТА. - -М.: МГТА, 2002, вып. 17, 26-34.

16. Бородин А.Л., Никифоров-Никишин А. Л., Симаков Ю.Г. Моделирование оптических характеристик хрусталика гидробионтов. //Вестник Московского Государственного Университета Технологий иУправления, Сер. "Биология". -М.: МГУТУ., 2005, вып. 5, с. 7-16.88

17. Бузунов В.А., Федирко Н.А., Прикащикова Е.Е. Особенности структуры и распространенность офтамопатологии у эвакуированных из зоныотчуждения ЧАЭС в различном возрасте. // Офтальмол. ж., 1999, т. 2, с.65-69.

18. Бяков В.М., Степанов СВ. О механизме первичного радиобиологического действия. // Радиац. биол. Радиоэкол., 1997, с. 469-474.

19. Вишневский Н.А., Абдулаимов В.М., Иванова Е.А., Котова Э.С., Кротова Н.С., Стиксова В.Н. К критической оценке значения "начальныхпризнаков" лучевой катаракты. // Мед. радиология., 1960, т. 5(11), с. 77-81.

20. Войнар А.О. Биологическая роль микроэлементов в жизни человека и животных. -М.: Советская наука., 1960,494 с.

21. Гексли Дж., де Бер Р. Основы экспериментальной эмбриологии. М.-Л.: Биомедгиз., 1936,467 с.

22. Гинецецинская Т.А. Трематоды, их жизненные циклы, биология и эволюция. Л.: Наука., 1968,406 с.

23. Гирберт Биология развития. -М.: Мир., 1993,228 с.

24. Гирса И.И. Освещенность и поведение рыб. -М.: Наука., 1981, 164 с.

25. Головина Н.А., Стрелков Ю.А., Воронин В.Н., Головин П.П., Евдокимова Е.Б., Юхименко Л.Н. Ихтиопаталогия. -М.: Мир., 2003, 448с.89Растровая электронная микроскопия и рентгеновский микроанализ. -М.:Мир., 1984, т. 2,348 с.

26. Грызунов Ю.А., Добрецов Г.Е. Свойства связывающих центров альбумина в норме и при заболеваниях: изучение флуоресцентнымметодом. // 2-й Съезд биофизиков России, Москва, 23-27 авг., 1999 г.,1999, с. 661.

27. Гудвин Б. Аналитическая физиология клеток развивающихся организмов. -М.: Мир., 1979,285 с.

28. Гулиано К. Разрушение диэлектрических материалов под действием лазерного излучения. // В сб. Действие лазерного излучения. -М.: Мир.,1968,0.355-363.

29. Гуртовой Г.К. Качество изображения в глазе и его оптические причины. // Проблемы физиологической оптики. - -М.: Изд. АН СССР, 1968, т. 6,С. 214-219.

30. Гуртовой Г.К. Сферическая аберрация и дифракция в глазе. // Проблемы физиологической оптики. - М.-Л.: Изд. АН СССР, 1950, т. 9, 165-178.

31. Деев А.И., Асейчев А.В., Владимиров Ю.А. Свободнорадикальные аспекты катарактогенеза. // Вестн. РАМН., 1999а, т. 2, с. 22-26.

32. Деев А.И., Асейчев А.В., Ситарчук И.А., Владимиров Ю.А. Физико- химические механизмы помутнения хрусталика. // 2-й Съезд биофизиковРоссии, Москва, 23-27 авг., 1999 г., 19996, с. 668-675.

33. Деев А.И., Бабижаев М.А., Асейчев А.В. Возможно ли задержать развитие катаракты?. // Цитология., 1997, т. 6, с. 468.

34. Диденко Т.Н., Смолякова Г.П., Сорокин Е.Л. Применение биорегулятора эпиталамина после экстракции катаракты у больных сахарным диабетом.// Офтальмохирургия., 2001, т. 1, с. 14-19.

35. Дислер Н.Н. Органы чувств системы боковой линии и их значение в поведении рыб. -М.: Изд. АН СССР., 1960, 309 с.90

36. Догель В.А. Общая паразитология. Д.: Изд. ЛГУ., 1962,461 с.

37. Ефет В.А. Липопротеиды хрусталика ири эксперименттальной реитгеновской катаракте у кроликов. // Сборник иаучных работСталииградского медицинского института. Волгоград, 1960, т. XII, с.141-145.

38. Жабоедов Г.Д., Бондарева Г.С., Курилина Е.И., Скрипник Р.Л. Катаракта и ее фармакотерапия. // Комбикорма., 2000, т. 2, с. 11-13.

39. Заллманн Л. Экспериментальные исследования ранних изменений хрусталика после рентгеновского облучения. // В сб. Лучевые катаракты.- -М.: Медгиз, 1959, 65-77.

40. Заллманн Л., Локк Б.Д. Обмен радиоактивных изотопов в нормальных и облученных хрусталиках кроликов. // В сб. Лучевые катаракты. -М.:Медгиз., 1959, с. 77-78.

41. Кадыров М.Г. Действие ионизирующей радиации на живой организм. // На путях к духовно-экол. цивилиз., 1996, с. 96-100.

42. Кауфман З.С. Эмбриология рыб. -М.: Агропромиздат., 1990, 270 с.

43. Киселева Т.Н., Гревцова И.А., Земская Е.А. Особенности патологии органа зрения у ликвидаторов последствий аварии на ЧернобыльскойАЭС. // Избр. вопр. клин, мед., 1996, с. 98-99.

44. Ковалев Н.Ф. Закономерности постравмационой регенерации эпителия ценральной зоны передней капсулы хрусталика. // Офтальмологическийжурнал., 1966(7), с. 520-525.

45. Козлов В.А., Никифоров-Никишин А.Л., Бородин А.Л. Аквакультура. - М.:МГУТУ.,2004,433с.

46. Комфорт А. Биология старения. -М.: Мир., 1967, 395 с.

47. Краузе А.К., Бонд Ж.О. Нейтронные катаракты. // В сб. Лучевые катаракты. -М.: Медгиз., 1959, с. 125-137.

48. Кремер Н.Ш. Теория вероятностей и математическая статистика. -М.: ЮНИТИ-ДАНА., 2003, 543 с.91

49. Кривандин А.В., Муратов К.О. Сравнительное исследование надмолекулярной структуры кристаллинов в хрусталиках карпа,лягушки и крысы методом малоуглового рассеяния рентгеновскихлучей. // Биофизика., 1999, т. 44(6), с. 1088-1093.

50. Крыжановский Г. Эколого-морфологические закономерности развития карновых, вьюновых и сомовых. // Тр. Ин-та морф. Животных АНСССР., 1959, ВЫН.1, с. 3-332.

51. Кузнецов А.Л. Вонросы натогенеза и экспериментальная терапия отравлений 3,4 - дихлорнитробензолом. Л.: Медицина., 1969,105 с.

52. Лищенко В.Б. Особенности помутнения хрусталика у лиц, проживающих на территориях, пострадавших в результате аварии наЧАЭС. // Офтальмол. ж., 1997, т. 3, с. 187-191.

53. Макеева А.П. Эмбриология рыб. -М.: Изд. МГУ., 1992, 216 с.

54. Марков А.Е. Длительное применение ингаляций кортикостероидов у больных бронхиальной астмой. // Врач, дело., 1998, т. 4, с. 101-105.

55. Мартин Р. Введение в биофизическую химию. -М.: Мир., 1966, 383 с.

56. Метелицына И.П. Метаболические нарушения в крови больных возрастной катарактой с сопутствующими соматическимизаболеваниями. // Укр. биохим. ж., 1998, т. 2, с. 110-115.

57. Метелицына И.П. Особенности развития экспериментальной световой катаракты как модели возрастных изменений хрусталика в условияхдействия ионизирующей радиации. // Пробл. старения и долголетия.,2000, т. 4, с. 340-347.

58. Мучник С Р . Катаракта. Киев: Здоров,я., 1987,21 с.

59. Нефедова З.А., Тайвонен Л.В. Биохимические особенности катарактогенеза у молоди семги. Липидный состав хрусталика рыб. //Конгресс ихтиологов России. Астрахань, 1997, с. 232-233.

60. Олтер А.И., Лайнфейдр П.И. Рентгеновская катаракта. // В сб. Лучевые катаракты. -М.: Медгиз., 1959, с. 35-39.

61. Определитель паразитов пресноводных рыб. Под. ред. Скарлотто О.А. - М.: Наука., 1987, т. 3, 583 с.

62. Павлов Д.С. Биологические основы управления поведением рыб в потоке воды. -М.: Наука., 1979, 320 с.

63. Павлюченко К.П., Акимова О.Г., Борзенко Б.Г. Активность некоторых ферментов периферической крови, камерной влаги и хрусталика послеэкстракции возвратной катаракты, осложненной вторичной катарактой.// Офтальмол. ж., 1999, т. 4, с. 253-257.

64. Павлюченко К.П., Акимова О.Г., Борзенко Б.Г. Особенности углеводного обмена у больных с возрастной катарактой. // Офтальмол.ж., 1998, т. 3, с. 217-220.

65. Панченко Н.В., Дурас И.Г. Осложненные катаракты при увеитах и дистрофиях сетчатки у лиц, подвергшихся радиационному воздействиюв результате аварии на ЧАЭС. // Врачеб. практ., 2000, т. 2, с. 76-78.

66. Пейве Я.В. Микроэлементы и ферменты. Рига: Изд. АН ЛАТ. СССР., 1960, 286 с.

67. Пири А., ван Гейнинген Р. Биохимия глаза. -М.: Медицина., 1968, 400 с.

68. Пири А., ван Гейнинген Р., Боаг И.В. Изменения в хрусталике кроликов в процессе образования рентгеновских катаракт. // В сб. Лучевыекатаракты. -М.: Медгиз., 1959, с. 90-99.

69. Попов В.В. Лучевая катаракта как проблема радиационной физиологии развития. //Биологические науки., 1966(4), с. 7-17.

70. Попов В.В. Провоцирование лучевой катаракты путем травматизации облученного хрусталика. // Докл. АН СССР., 1962, т. 143(2), с. 947-951.

71. Попов В.В., Всеволодов Э.Б., Соколова З.А. Опыты по травматизации хрусталика после перерезки зрительного нерва у взрослых лягушек. //Докл. АН СССР., 1962, т. 147(6), с. 1503-1506.94

72. Попов В.В., Голиченков В.А. Устойчивость хрусталика тритона к лучевым и травмирующим воздействиям. // Биологические науки.,1964(3), с. 23-26.

73. Попов В.В., Голиченков В.А., Всеволодов Э.Б., Фарберов А.И., Соколова З.А. О механизме ускоренного развития лучевых катаракт,спровоцированных уколом облученного хрусталика. // Докл. АН СССР.,1964, т. 155(4), с. 2436-2439.

74. Пучковская Н.А. Эффективные методы диагностики и лечения катаракты и вопросы ее патогенеза. // Междунар. конф. офтальмологов,Одесса, СССР, 8-10 сент. 1987 г. Одесса, 1987, 235 с.

75. Рева И.В., Никитенко В.А., Рева Г.В., Холоденко Г.М. Строение дефинитивного хрусталика глаза человека. // Морфология., 2000, т. 3, с.101.

76. Робертис Э., Новицкий В., Саэс Ф. Биология клетки. -М.: Мир., 1967,473 с.

77. Ромер А., Парсонс Т. Анатомия позвоночных. -М.: Мир., 1992, 358 с.

78. Садовников В.Н. Функциональная морфология органа зрения. // Нижегор. мед. ж., 1999, т. 2, с. 74-79.

79. Сахарова Н.Ю., Голиченков В.А. Сезонные изменения регенерационной способности эпителия хрусталика лягушки. // Цитология. М., 1968, т.10(7), с. 896-899.

80. Сергиенко Н.М., Воргул Б.В., Медведовская И.П., Пархоменко Г.Я., Рубан А.Н. Исследование катарактогенного влияния радиации у лиц,участвовавших в ликвидации последствий аварии на ЧАЭС(предварительное сообщение). // Офтальмол. ж., 1998, т. 1, с. 56-59.

81. Сергиенко Н.М., Рубан А.Н. Роль факторов риска в динамике развития помутнений хрусталика у ликвидаторов аварии на ЧАЭС. // Офтальмол.ж., 2000, т. 5, с. 39-43.95

82. Симаков Ю.Г. Накопление некоторых макро- и микроэлементов в развиваюш;емся хрусталике травяной лягушки. // Вестник Московскогоуниверситета., 1969а(5), с. 22-26.

83. Симаков Ю.Г. О некоторых макроэлементах и микроэлементах в развивающемся хрусталике. // Симпозиум "Регуляция процессов роста идифференцировки". Автореф. Бюлл. МОИП., 19696, с. 28-31.

84. Симаков Ю.Г. Регенерация различных зон эпителия хрусталика после травматизации. // Изв. АН СССР, серия биологическая., 1974(2), с. 295-298.

85. Симаков Ю.Г., Бородин А.Л. Световодные свойства хрусталиковых волокон при лазерном исследовании. // Нроблемы биовалиотехнологии. -М.: МГТА., 2001(1), с. 48-54.

86. Симаков Ю.Г., Никифоров-Никишин А.Л. Биомикроскопия хрусталика карпа при наличие метацеркарий диплостом. // В сб. Водныебиоресурсы, воспроизводство и экология гидробионтов. -М.: ВНИНРХ.,1993, с. 153-155.

87. Симаков Ю.Г., Никифоров-Никишин А.Л., Кулаев Н. Митотическая активность в эпителии хрусталика окуня в норме и при травматизации. //В сб. "Вопросы экологии гидробионтов". -М.: ВЕИНРХ., 1991, с. 127-130.96

88. Симаков Ю.Г., Полуэтова Л.М,, Нопов В.В. Влияние больших доз радиации на содержание липидов в хрусталике травяной лягушки, //Радиобиология., 1969а, с. 784-785.

89. Симаков Ю.Г., Полуэтова Л.М., Попов В.В. Влияние лазерного излучения на содержание липидов в хрусталике травяной лягушки. -М.:Изд. АН СССР., 19706(4), с. 609-610.

90. Симаков Ю.Г., Полуэтова Л.М., Попов В.В. Изменение содержания свинца в хрусталиках, пораженных лазерным излучением, // Биофизика,,19696, с, 554-556.

91. Симаков Ю.Г., Полуэтова Л.М,, Попов В,В, Изменения в хрусталике глаза, вызванные воздействием лазерного излучения. // Журн. общ.биол,, 1970а, т. 31(3), с, 353-360.

92. Симаков Ю.Г,, Полуэтова Л,М,, Попов В.В, О некоторых аномалиях хрусталика и роговицы травяной лягушки, // Вестник Московскогоуниверситета., 1969в(3), с, 23-26,

93. Симаков Ю,Г,, Полуэтова Л,М,, Попов В,В, Уменьшение содержания кальция в хрусталиках, пораженных лазерным излучением. // Докл. АНСССР., 1969г, с. 2672-2678,

94. Симаков Ю,Г,, Попов В,В, Миграция кальция из сетчатки в хрусталик в развивающемся глазу травяной лягушки, // Вестник Московскогоуниверситета., 1969(4), с, 17-19,

95. Смеловский А,С. Микрохирургия возрастной катаракты, -М,: Медицина,, 1985,127 с.97п о , Стрижижовский А.Д. Факторы индивидуальной чувствительности культрафиолетовой радиации. // Успехи физиол. наук., 1998, т. 3, с. 130-143.

96. Строганов Л.М. Содержание микроэлементов в тканях нормального глаза. // Матер, к научной конф. по теме "Спектральные методыисследований в биологии и медицине"., 1967, с. 70-71.

97. Тойвонен Л.В., Нефедова З.А. Биохимические особенности катарактогенеза у молоди семги. Липидный состав печени. // Первыйконгресс ихтиологов России: Тезисы докладов. -М.: Изд-во ВНИРО.,1997, с. 242-243.

98. Трон Е.Ж., Тартаковсая Р.В. Влияние реакции среды на химический состав отдельных слоев хрусталика. // Офтальмологический журнал.,1955(5), с. 262-267.

99. Трумен Д. Биохимия клеточной дифференцировки. -М.: Мир., 1976, 168 с.

100. Узбеков Г.А. Химические и физико-химические основы прозрачности и помутнений оптического аппарата глаза. // Вопр. мед. химии., 1961, т. 7,вып. 2, с. 190-196.

101. Федирко П.А. Влияние ионизирующей радиации на глаз. // Офтальмол., 1995, т. 5-6, с. 325-331.

102. Харпер Д. Разрушение в стеклах, вызываемое лазерным излучением. - М.: Мир., 1968, с. 364-366.

103. Хватова А.В. Микрохирургическое лечение врожденных катаракт при аномалиях глаз. // М-во здравоохранения РСФСР. М., 1991,21 с.

104. Хэй Э. Регенерация. -М.: Мир., 1969,153 с.

105. Черняева Н., Вит В.В., Павлюченко К.П., Мальцев Э.В. Клинико- экспериментальное изучение механизмов и проявлений хроническогодействия ионизирующей и световой радиации на ткани глаза. //Офтальмол. ж., 1999, т. 2, с. 83-87.98

106. Чудинова О.И., Поволоцкая В.А., Чайка Л.А. Изучение антикарактальной активности аминокислотно-витаминной смеси. //Офтальмол. ж., 1998, т. 1, с. 73-77.

107. Чупров А.Д., Абрамова Т.В., Плотникова Ю.А. Имплантация эластичных интраокулярных линз нри травматических катарактах. //Вестн. офтальмол., 1997, т. 5, с. 10-13.

108. Шлопак Т.В. Микроэлементы в офтальмологии. // Труды 4-го съезда офтальмологов Укр. ССР. Киев, 1964, с. 408-411.

109. Шлоиак Т.В. Химизм хрусталика (в норме и патологии). Послесловие к книге Пири и Гейнингена "Биохимия глаза". -М.: Медицина., 1968, с. 5-6.

110. Шубик В.М., Квасова М.Д. Иммунологические исследования при катарактах в условиях действия малых доз ионизирующего излучения. //Вестн. офтальмол., 1996, т. 4, с. 21-23.

111. Шульпина Н.Б., Гудова И.В. Факогенные глаукомы, осложняющие созревание старческой катаракты. -М.: ЦОЛИУВ., 1984, 12 с.

112. Эптон А., Кристенберри К., Ферт Ж. Значение местного и общего облучения для образования лучевых катаракт. // В сб. Лучевыекатаракты. -М.: Медгиз., 1959, с. 53-56.

113. Яценко О.В. Роль липидов хрусталика в патогенезе возрастной катаракты. // Врач, дело., 1998, т. 4, с. 50-53.

114. Abrosimova A.N., Shafirkin A.V., Fedorenko B.S. Probability of lens opacity and mature Cataracts due to irradiation at various LET values AviakosmEkolog Med., 2000, 34(3), p. 33-41.

115. Anwar M.M., Moustafa M.A. The effect of melatonin on eye lens of rats exposed to ultraviolet radiation. // Сотр. Biochem. Physiol С ToxicolPharmacol., 2001,129(1), p. 57-63.

116. Arey L.B. Developmental Anatomy. 7-th ed. Philadelphia: W.B. Saunders Company., 1974,674 р.

117. Argirov O.K., Lin В., Ortwerth B.J. 2-ammonio-6-(3-oxidopyridinium-l- yl)hexanoate (OP-lysine) is a newly identified advanced glycation endproduct in Cataractous and aged human lenses. // J. Biol. Chem., 2004, v. 20,279(8), p. 6487-6495.

118. Auffarth G.U., Rabsilber T.M., Reuland A.J. New methods for the prevention of posterior capsule opacification. // Ophthalmologe., 2005, 102(6), p. 579-586.

119. Azuma M., Shearer T.R., Matsumoto Т., David L.L., Murachi T. Calpain II in two in vivo models of sugar Cataract. // Exp. Eye Res., 1990, 51(4), p. 393-401.

120. Babizhaev M.A., Brikman I.V., Deev A.I. Cataract induction by products of lipid peroxidation. // Biofizika., 1987,32(1), p. 121-124.100

121. Balasubramanian D. Ultraviolet radiation and Cataract. // J. Ocul. Pharmacol. Ther.,2000, 16(3), p. 285-297.

122. Baldysiak-Figiel A., Jong-Hesse Y.D., Lang G.K., Lang G.E. Octreotide inhibits growth factor-induced and basal proliferation of lens epithelial cells invitro. // J. Cataract Refract Surg., 2005, 31(5), p. 1059-1064.

123. Bando M., Obazawa H. Calcium-induced opacification of rat lens beta- crystallin solution: its susceptibility to H2O2 oxidation. // Jpn J. Ophthalmol.,1989, 33(2), p. 204-211.

124. Bantseev V., Sivak J.G. Confocal laser scanning microscopy imaging of dynamic TMRE movement in the mitochondria of epithelial and superficialcortical fiber cells of bovine lenses. // Mol. Vis., 2005, v. 14,11, p. 518-523.

125. Bardak Y., Cekic O., Totan Y., Cengiz M. Effect of verapamil on lenticular Calcium, magnesium and iron in radiation exposed rats. // Int. Ophthalmol.,1998,22(5), p. 285-288.

126. Baruch A., Greenbaum D., Levy E.T., Nielsen P.A., Gilula N.B., Kumar N.M., Bogyo M. Defining a link between gap junction communication,proteolysis, and Cataract formation. // J. Biol. Chem., 2001, v. 3, 276(31), p.28999-29006.

127. Baslow M.H., Yamada S. Identification of N-acetylaspartate in the lens of the vertebrate eye: a new model for the investigation of the function of N-acetylated amino acids in vertebrates. // Exp. Eye Res., 1997, 64(2), p. 283-286.

128. Bassnett S. The fate of the Golgi apparatus and the endoplasmic reticulum during lens fiber cell differentiation. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci., 1995, v.36, p. 1793-1803.101

129. Bassnett S. Three-dimensional reconstruction of cells in the living lens. The relationship between cell length and volume. // Exp. Eye Res., 2005, v. 15, p.1243-1251.

130. Beaulieu C.F., Clark J.I. 31P nuclear magnetic resonance and laser spectroscopic analyses of lens transparency during Calcium-inducedopacification. //Invest. Ophthalmol. Vis. Sci., 1990, 31(7), p. 1339-1347.

131. Beebe D.C., Vasiliev O., Guo J., Shui Y.B., Bassnett S. Changes in adhesion complexes define stages in the differentiation of lens fiber cells. // Invest.Ophthal. & Visual Sci., 2001, v. 42(3), p. 727-734.

132. Behrens M., Wilkens H., Schmale H. Cloning of the alphaA-crystallin genes of a blind cave form and the epigean form of Astyanax fasciatus; acomparative analysis of structure, expression and evolutionary conservation. //Gene., 1998,216(2), p. 319-326.

133. Belkacemi Y., Rat P., Piel G., Christen M.O., Touboul E., Wamet J.M. Lens epithelial cell protection by aminothiol WR-1065 and anetholedithiolethionefrom ionizing radiation. // Int. J. Cancer., 2001, 96, p. 15-26.

134. Bender C.J. A hypothetical mechanism for toxic Cataract due to oxidative damage to the lens epithelial membrane. // Med. Hypotheses., 1994, 43(5), p.307-311.

135. Bentley P.J., Grubb B.R. Effects of zinc deficient diet on tissue zinc concentrations in rabbits. // J. Anim. Sci., 1991, v. 69, p. 4876-4882.

136. Berg J.M., Shi Y. The galvanization of biology: a growing appreciation for the roles of zinc. // Science., 1996, v. 271, p. 1081-1085.

137. Bettger W.J., O'Dell B.L. Physiological roles of zinc in the plasma membrane of mammalian cells. // J. Nutr. Biochem., 1993, v. 4, p. 194-207.

138. Beyzadeoglu M., Dirican В., Oysul K., Arpaci F., Рак Y. Evaluation of fractionated total body irradiation and dose rate on Cataractogenesis in bonemarrow transplantation. // Haematologia (Budap)., 2002, 32(1), p. 25-30.102

139. Bishop R.M. Contraindication to capsule staining. // J. Cataract Refract Surg., 2005, 31(7), p. 1272.

140. Bjerkas E. The fish eye and cataract in farm-raised. // 9-th Jnt. Conf. "Diseases Fish and Shellfish". lUiodes 19-24 sept. 1999 Book Abstr. Rhodes,1999, p. 5.

141. Bloemendal H. The Vertebrate eye lens. // Science., 1977, v. 197, p. 127-138.

142. Breck O., Bjerkas E., Campbell P., Rhodes J.D., Sanderson J., Waagbo R. Histidine nutrition and genotype affect cataract development in Atlanticsalmon, Salmo salar L. // J. Fish Dis., 2005, 28(6), p. 357-371.

143. Buehl W., Findl O., Neumayer Т., Georgopoulos M., Sacu S. Short-term changes in the Morphology of posterior capsule opacification. // J. CataractRefract Surg., 2005, 31(5), p. 962-968.

144. Bullough W.S. Ageing of mamals. //Nature., 1971, v. 229, p. 608-610.

145. Byshneva L.N., Senchuk V.V. Effect of UV-radiation on the level of ascorbic acid, SH-groups, and activity of glutathione reductase in the eye lens. // Vop.Med. Khim., 2002, 48(5), p. 455-460.

146. Cason N., White T.W., Cheng S., Goodenough D.A., Valdimarsson G. Molecular cloning, expression analysis, and functional characterization ofconnexin44.1: a zebrafish lens gap junction protein. // Dev. Dyn., 2001,221(2), p. 238-247.

147. Chang P.Y., Bjomstad K.A., Chang E., McNamara M., Barcellos-Hoff M.H., 1.in S.P., Aragon G., Polansky J.R., Lui G.M., Blakely E.A. Particleirradiation induces FGF2 expression in normal human lens cells. // RadiatRes., 2000, 154(5), p. 477-484.

148. Chiang C.C, Lin J.M., Bair P.J., Chen W.L., Tseng S.H., Tsai Y.Y. Effects of laser in situ keratomileusis on the comeal endothelium. // Kaohsiung J. Med.Sci., 2005, 21(6), p. 272-276.

149. Choi J., Na K., Bae S., Roh G. Anterior lens capsule abnormalities in Alport syndrome. // Korean J. OphthalmoL, 2005, 19(1), p. 84-89.

150. Chung C.F., Liang C.C, Lai J.S., Lo E.S., Lam D.S. Safety of trypan blue 1% and indocyanine green 0.5% in assisting visualization of anterior capsuleduring phacoemulsification in mature Cataract. // J. Cataract Refract Surg.,2005, 31(5), p. 938-942.

151. Clark J.L, Danford M.E. Low temperature and acrylamide inhibit lens opacification caused by Calcium. // Ophthalmic Res., 1985, 17(4), p. 246-250.

152. Clouser S. Toxic anterior segment syndrome: how one surgery center recognized and solved its problem. // Insight., 2004,29(1), p. 4-7.

153. CoUinge J.E., Simirskii V.N., Duncan M.K. Expression of tissue plasminogen activator during eye development. // Exp. Eye Res., 2005, 81(1), p. 90-96.

154. Cornish K.M., Williamson G., Sanderson J. Quercetin metabolism in the lens: role in inhibition of hydrogen peroxide induced Cataract. // Free Radic Biol.Med., 2002, V.I, 33(1), p. 63-70.

155. Costagliola C, Balestrieri P., Fioretti F., Frunzio S., Rinaldi M., Scibelli G., Sebastiani A., Rinaldi E. ArF 193 nm excimer laser comeal surgery as apossible risk factor in Cataractogenesis. // Exp. Eye Res., 1994, 58(4), p. 453-457.

156. Costagliola C, Balestrieri P., Fioretti F., Frunzio S., Rinaldi M., Scibelli G. Arf 193nm excimer laser comeal surgery and photo-oxidation stress in104aqueous humor and lens of rabbit: one-month follow-up, // Curr, Eye Res.,1996, 15(4), p. 355-361.

157. Craghill J., Cronshaw A.D., Harding J.J. The identification of a reaction site of glutathione mixed-disulphide formation on gammaS-crystallin in humanlens. // Biochem. J., 2004, 379, pt. 3, p. 595-600.

158. Cucinotta F.A., Manuel F.K., Jones J., Iszard G., Murrey J., Djojonegro В., Wear M. Space radiation and Cataracts in astronauts. // Radiat Res., 2001,156(5), pt .1, p. 460-466.

159. Davis-Silberman N., Kalich Т., Oron-Kami V., Marquardt Т., Kroeber M., Tamm E.R., Ashery-Padan R. Genetic dissection of Pax6 dosage requirementsin the developing mouse eye. // Hum. Mol. Genet., 2005, v. 1, 14(15), p.2265-2276.

160. Deveze L. Mycoses et parasitoses de l'gil. // Eurobiologiste., 1998, v. 233, p. 63-82.

161. Dietl В., Hunner S., Herrmann W., Marienhagen J., Muller M., Lohmann C, Gabel V.P. The influence of ionizing radiation on the development ofposterior capsule opacification in vitro. // Strahlenther OnkoL, 2005, 181(8),p. 515-519.

162. Dov S.C. Ontogenical changes in the cristallin compositions of the eye lenses of the territorial damselfish Parma microlepis and their possible effects ontrance-metal accumulation. //Mar. Biol., 1999, v. 134(4), p. 653-663.

163. Dovrat A., Berenson R., Bormusov E., Lahav A., Lustman Т., Sharon N., Schachter L. Localized effects of microwave radiation on the intact eye lensin culture conditions. // Bioelectromagnetics., 2005, 26(5), p. 398-405.

164. Dykens J.A. Mitochondrial free radical production and the etiology of neurodegenerative disease. New York: John Wiley & Sons., 1997, p. 29-55.

165. Eckhert C D , Elemental concentrations in ocular tissues of various species. // Exp. Eye Res., 1983, v. 37, p. 639-647,105

166. Ehlers N., Hjortdal J. Are Cataract and iris atrophy toxic complications of medical treatment of acanthamoeba keratitis?. // Acta Ophthalmol. Scand.,2004, 82(2), p. 228-231.

167. Ersdal F., Jarp D., Jordn A., Midtlyng S,, Paul D. Cataract in seawater farmed Atlantic salmon salar L. Rhodes, 1999, p. 24.

168. Fabe J., Grahn B.H., Paterson P.G. Zinc concentrations of selected ocular tissues in zinc-deficient rats. // Biol. Trace Elem Res., 2000, v. 75, p. 43-52.

169. Ferguson H.W., Hawkins L., MacPhee D.D., Bouchard D. Choroiditis and cataracts in Atlantic salmon (Salmo salar L) recovering from subzero watertemperatures. // Vet. Rec, 2004,155(11), p. 333-334.

170. Flugel C, Lutjen-DrecoU E., Zadunaisk J.A., Wiederholt M. Regional differences in the Morphology and enzyme distribution of the spiny dogfish(Squalus acanthias) ciliary epithelium. // Exp. Eye Res., 1989, 49(6), p. 1097-1114.

171. Fraunfelder F.T., Bums R.P. Acute reversible lens opacity: caused by drugs, cold, anoxia, asphyxia, stress, death and dehydration. // Exp. Eye Res., 1970,10(1), p. 19-30.

172. Galin M.A., Chowchuvech E., Galin A. Tissue culture methods for testing the toxicity of ocular plastic materials. // Am. J. Ophthalmol., 1975, 79(4), p. 665-669.

173. George S., Jyothi M., Mathew В., Shashidhar S. Changes in glutathione, glutathione-linked enzymes and hexose monophosphate shunt enzymes insenile Cataract. // Indian J. Physiol Pharmacol, 2003, 47(2), p. 191-196.

174. Giasson C.J., Bleau G., Brunette I. Short-term oxidative status of lens and aqueous humor after excimer laser photorefractive keratectomy. // J. RefractSurg., 1999, 15(6), p. 673-678.

175. Giessmann D., Theiss C , Breipohl W., Meller K. Decreased gap junctional communication in neurobiotin microinjected lens epithelial cells after taxoltreatment. // Anat Embryol (Berl)., 2005, 209(5), p. 391-400.106

176. Gittinger J.W.Jr. Radiation and Cataracts: cause or cure? Arch. Ophthalmol., 2001, 119(1), p. 112-116.

177. Goode D., Lewis M.E., Crabbe M.J. Accumulation of xylitol in the mammalian lens is related to glucuronate metabolism. // FEBS Lett., 1996, v.21, 395(2-3), p. 174-178.

178. Grahn B.H., Paterson P.G., Gottschall-Pass K.T., Zhang Z. Zinc and the Eye. // Journal of the American College of Nutrition., 2001, v. 20(2), p. 106-118.

179. Grevtseva M.A. Change in the fish crystalline lens in experimental diplostomatosis. // Parazitologiia., 1977,11(3), p. 260-263.

180. Groff J.L., Gropper S.S. Advanced Nutrition and Human Metabolism. // Belmont: Wadsworth/Thompson Learning., 2000, p. 419-430.

181. Gupta S.K., Mohanty L, Trivedi D., Tandon R., Srivastava S., Joshi S. Pyruvate inhibits galactosemic changes in cultured cat lens epithelial cells. //Ophthalmic Res, 2002, 34(1), p. 23-28.

182. Halfter W., Dong S., Schurer В., Ring C, Cole G.J., EUer A. Embryonic synthesis of the inner limiting membrane and vitreous body. // Invest.Ophthalmol. Vis. Sci., 2005,46(6), p. 2202-2209.

183. Ham W.T. Radiation cataract. // Arch. Ophthalmol., 1953, v. 50(5), p. 618- 648.

184. Hansen S.O., Apple D.J., Tetz M.R., Piest K.L., Gwin T.D., Wilbrandt Т.Н., Cohen D.B. Comparative histopathologic study of various lens biomaterials inprimates after Nd:YAG laser treatment. // J. Cataract Refract Surg., 1987,13(6), p. 657-661.

185. Hawkes J.W. The effects of xenobiotics on fish tissues: Morphological studies. // Fed. Proc, 1980, 39(14), P. 3230-3236.

186. Hegde K.R., Varma S.D. Protective effect of Ascorbate against oxidative stress in the mouse lens. // Biochim Biophys. Acta., 2004, v. 5,1670(1), p. 12-18.107

187. Heisterkamp A., Maxwell I.Z., Mazur E., Underwood J.M,, Nickerson J.A., Kumar S., Ingber D.E. Pulse energy dependence of subcellular dissection byfemtosecond laser pulses. // Opt. Express., 2005, v. 16, 13(10), p. 3690-3696.

188. Huang Q.L. Clinical observations and Calcium determinations in hypocalcemic Cataract. // Zhonghua Yan Ke Za Zhi., 1989,25(5), p. 268-270.

189. Hughes S.G., Riis R.C., Nickum J.G., Rumsey G.L. Biomicroscopic and histologic pathology of the eye in riboflavin deficient rainbow trout(Salmogairdneri). // Cornell Vet., 1981, 71(3), P. 269-279.

190. Hughes S.G., Riis R.C., Nickum J.G., Rumsey G.L. Biomicroscopic and histologic pathology of the eye in riboflavin deficient rainbow trout(Salmogairdneri). // Cornell Vet., 1981, 71(3), P. 269-279.

191. Hunn J.B. Role of calcium in gill function in freshwater fishes. // Сотр. Biochem. and physiol., 1985, v. 82A(3), p. 543-547.

192. Hyer J. Looking at an oft-overlooked part of the eye: a new perspective on ciliary body development in chick. // Dev. Neurosci., 2004, 26(5-6), p. 456-465.

193. Ilgit Б.Т., Meric N., Bor D., Oznur L, Konus 0., Isik S. Lens of the eye: radiation dose in balloon dacryocystoplasty. // Radiology., 2000, 217(1), p.54-57.

194. Ishida Н., Mitamura Т., Takahashi Y., Hisatomi A., Fukuhara Y., Murato K., Ohara K. Cataract development induced by repeated oral dosing with FK506(tacrolimus) in adult rats,//Toxicology., 1997, 123(3), p. 167-175.

195. Ivancic D., Mandic Z., Barac J., Kopic M. Cataract surgery and postoperative complications in diabetic patients. // Coll AntropoL, 2005, v. 29, 1, p. 55-58.

196. Iwata J.L., Bardygula-Nonn L.G., Glonek Т., Greiner J.V. Interspecies comparisons of lens phospholipids. // Curr. Eye Res., 1995, 14(10), p. 937-941.

197. Kalakonda S., Hegde K.R., Varma S.D. Ophthalmoscopic and Morphogenetic changes in rat lens induced by galactose: attenuation by pyruvate. // DiabetesObes Metab., 2004, 6(3), p. 216-222.

198. Kamei A., Iwase H., Masuda K. Cleavage of amino acid residue(s) from the N-terminal region of alpha A- and alpha B-crystallins in human crystallinelens during aging. // Biochem. Biophys. Res. Commun., 1997, v. 13, 231(2),p. 373-378.

199. Karslioglu I., Ertekin M.V., Taysi S., Kocer I., Sezen O., Gepdiremen A., Кос M., Bakan N. Radioprotective effects of melatonin on radiation-inducedCataract. // J. Radiat Res. (Tokyo)., 2005,46(2), p. 277-282.

200. Karvonen A., Seppala O., Valtonen E.T. Eye fluke-induced Cataract formation in fish: quantitative analysis using an ophthalmological microscope.// Parasitology., 2004,129, pt. 4, p. 473-478.

201. Katakura K., Kishida K., Hirano H. Changes in rat lens proteins and glutathione reductase activity with advancing age. // Int. J. VitAm. Nutr Res.,2004, 74(5), p. 329-333.

202. Ketola H.G. Influence of dietary zinc on cataracts in rainbow trout (Salmo gairdneri). // J. Nutr., 1979, v. 109, p. 965-969.

203. Khng C, Snyder M.E. Indocyanine green-emitted fluorescence as an aid to anterior capsule visualization. // J. Cataract Refract Surg., 2005, 31(7), p.1454-1455.109

204. Kiss A.J., Mirarefi A.Y., Ramakrishnan S., Zukoski C.F., Devries A.L., Cheng C.H. Cold-stable eye lens crystallins of the Antarctic nototheniidtoothfish Dissostichus mawsoni Norman. // J. Exp. Biol., 2004, 207, pt, 26, p.4633-4649.

205. Kothari K., Jain S.S., Shah N.J. Anterior capsular staining with trypan blue for capsulorhexis in mature and hypermature Cataracts. A preliminary study.// Indian J. Ophthalmol., 2001,49(3), p. 177-180.

206. Koumantakis E., Alexiou D., Grimanis A., Kaskarelis D., Bouzas A. Zinc, cobalt and selenium concentrations in the premature and full term newborneye. // Ophthalmologica, Basel, 1983, v. 186, p. 41-46.

207. Krause A.C. The biochemistry of eye. Baltimore: John Hopkins Press., 1934, 245 p.

208. Kuck J.F., Kuck K.D. The Emory mouse Cataract: loss of soluble protein, glutathione, protein sulfhydryl and other changes. // Exp. Eye Res., 1983,36(3), p. 351-362.

209. Laycock N.L., Schirmer K., Bols N.C., Sivak J.G. Optical properties of rainbow trout lenses after in vitro exposure to polycyclic aromatichydrocarbons in the presence or absence of ultraviolet radiation. // Exp. EyeRes., 2000, 70(2), p. 205-214.

210. Lee C.J., Blumenkranz M.S., Fishman H.A., Bent S.F. Controlling cell adhesion on human tissue by soft lithography. // Langmuir., 2004, v. 11,20(10), p. 4155-4161.

211. Lee H.Y., Wroblewski E., Philips G.T., Stair C.N., Conley K., Reedy M., Mastick G.S., Brown N.L. Multiple requirements for Hes 1 during early eyeformation. // Dev. Biol., 2005, v. 15, 284(2), p. 464-478.

212. Lim J., Lam Y.C., Kistler J., Donaldson P.J. Molecular characterization of the cystine/glutamate exchanger and the excitatory amino acid transporters in therat lens. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci., 2005, 46(8), p. 2869-2877.110

213. Linetsky М., Hill J.M., Chemoganskiy V.G., Hu F., Ortwerth B.J. Studies on the mechanism of the UVA light-dependent loss of glutathione reductaseactivity in human lenses. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci., 2003, 44(9), p.3920-3926.

214. Lo W.K., Mills A., Kuck J.F. Actin filament bundles are associated with fiber gap junctions in the primate lens. // Exp. Eye Res., 1994, 58(2), p. 189-196.

215. Loewenstein M.A., Bettelheim F.A. Pressure induced turbidity in fish lenses. //Exp. Eye Res., 1980, 30(3), P. 315-317.

216. Lovicu F.J., Ang S., Chorazyczewska M., McAvoy J.W. Deregulation of lens epithelial cell proliferation and differentiation during the development ofTGFbeta-induced anterior subcapsular Cataract. // Dev. Neurosci., 2004,26(5-6), p. 446-455.

217. Maarouf M., Treuer H., Kocher M., Voges J., Gierich A., Sturm V. Radiation exposure of extracranial organs at risk during stereotactic linac radiosurgery.// Strahlenther Onkol., 2005,181(7), p. 463-467.

218. Maddala R., Rao V.P. alpha-Crystallin localizes to the leading edges of migrating lens epithelial cells. // Exp. Cell Res., 2005, v. 15, 306(1), p. 203-215.

219. Matsukura S., Bando M., Obazawa H., Oka M., Takehana M. Ascorbate Free Radical Reductase Activity in Vertebrate Lenses of Some Species. // Jpn J.Ophthalmol., 2000, v. 1,44(6), p. 694.

220. McCarty С A., Taylor H.R. A review of the epidemiologic evidence linking ultraviolet radiation and Cataracts. // Dev. Ophthalmol., 2002, v. 35, p. 21 -31.HI

221. McDevitt D., Brahma S., Courtois Y., Jeanny J.C. Fibroblast growth factor receptors and rageneration of the eye lens. // Dev. Dyn., 1997, v. 208, 2, p.220-226.

222. McMahon R.J., Cousins R.J. Mammalian zinc transporters. // J. Nutr., 1998, V. 128, p. 667-670.

223. Meecham W.J, Char D.H., Kroll S., Castro J.R., Blakely E.A. Anterior segment complications after helium ion radiation therapy for uveal melanoma.Radiation Cataract. // Arch. Ophthalmol., 1994, 112(2), p. 197-203.

224. Merriam J.C, Lofgren S., Michael R., Soderberg P., Dillon J., Zheng L., Ayala M. An action spectrum for UV-B radiation and the rat lens. // Invest.Ophthalmol. Vis. Sci., 2000,41(9), p. 2642-2647.

225. Michael J., Hogan M.D., Jorge A., Alvarado A.B. Histology of the human eye. Philadelphia-London-Toronto: W.B. Saunders Company., 1971, 820 p.

226. Michael R., Brismar H. Lens growth and protein density in the rat lens after in vivo exposure to ultraviolet radiation. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci., 2001,42(2), p. 402-408.

227. Mitton K.P., Hess J.L., Bunce G.E. Free amino acids reflect impact of selenite-dependent stress on primary metabolism in rat lens. // Curr. Eye Res.,1997, 16(10), p. 997-1005.

228. Mizuno N., Ueda Y., Kondoh H. Requirement for betaBl-crystallin promoter of Xenopus laevis in embryonic lens development and lens regeneration. //Dev. Growth Differ., 2005,47(3), p. 131-140.

229. Monson M.C., Mamalis N., Olson R.J. Toxic anterior segment inflammation following Cataract surgery. // J. Cataract Refract Surg., 1992, 18(2), p. 184-189.

230. Nihalani B.R., Jani U.D., Vasavada A.R., Auffarth G.U. Cataract surgery in relative anterior microphthalmos. // Ophthalmology., 2005, 112(8), p. 1360-1367.112

231. Obstbaum S.A. Radiation Cataracts: what have we learned?. // Arch. Ophthalmol.,2001, 119(1), p. 119.

232. O'Dell B.L. Personal reflections on a galvanizing trail. // Ann. Rev Nutr., 1998(18), p. 1-18.

233. Oharazawa H., Ibaraki N., Ohara K., Reddy V.N. Inhibitory effects of Arg- Gly-Asp (RGD) peptide on cell attachment and migration in a human lensepithelial cell line. // Ophthalmic Res., 2005, 37(4), p. 191-196.

234. Ostadalova I., Babicky A. Toxic effect of various selenium compounds on the rat in the early postnatal period. // Arch. ToxicoL, 1980, 45(3), p. 207-211.

235. Palmieri J.R., Heckmann R.A., Evans R.S. Life history and habitat analysis of the eye fluke Diplostomum spathaceum (trematoda: diplostomatidae) in Utah.// J. Parasitol., 1977, 63(3), p. 427-429.

236. Pan F.M., Chuang M.H., Chiou S.H. Characterization of gamma S-crystallin isoforms from lip shark (Chiloscyllium colax); evolutionary comparisonbetween gamma S and beta/gamma crystallins. // Biochem. Biophys. Res.Commun., 1997,240(1), p. 51-56.

237. Paterson P.G., Grahn B.H., Fabe J.S. Retinal and lens zinc concentration in the zinc-deficient rat. // FASEB J., 1998,12A, p. 521.

238. Patton D., Craig J. Cataract Development, diagnosis and management. // Ciba Clin. Symp., 1974,26(3), p. 2-32.

239. Patwardhan V.G., Jaswaney V.L., Pal J.K., Modak S.P. Lens protein phylogeny; immunocrossreactivity of vertebrate lens antigens to anti-sharkcrystallin antibody. // Indian J. Biochem. Biophys., 1995, 32(1), p. 21-31.

240. Preet A., Gupta B.L., Yadava P.K., Baquer N.Z. Efficacy of lower doses of vanadium in restoring altered glucose metabolism and antioxidant status indiabetic rat lenses. // J. Biosci., 2005,30(2), p. 221-230.

241. Racz P., Hargitai C, Alfoldy В., Banki P., Tompa K. lH spin-spin relaxation in normal and Cataractous human, normal fish and bird eye lenses. // Exp. EyeRes., 2000, 70(4), p. 529-536.113

242. Rasi V., Costantini S., Moramarco A., Giordano R., Giustolisi R., Gabrieli C.B. Inorganic element concentrations in cataractous human lenses. // Arm.OphthalmoL, 1992(24), p. 459-464.

243. Rastegar N., Eckart P., Mertz M. Radiation-induced Cataract in astronauts and cosmonauts. // Graefes Arch. Clin. Exp. OphthalmoL, 2002, 240(7), p. 543-547.

244. Ritland J.S., Eide N., Tausjo J. External beam irradiation therapy for choroidal haemangiomas. Visual and anatomical results after a dose of 20 to

245. Gy. // Acta OphthalmoL Scand., 2001, 79(2), p. 184-186.

246. Rosenthal A.R., Eckhert С Copper and zinc in ophthalmology. In Karcioglu Z.A., Sarper R.M. (eds): Zinc and Copper in Medicine. // Springfield: CharlesC. Thomas., 1980, p. 579-633.

247. Schaal S., Beiran I., Rubinstein I., Miller В., Dovrat A. Lenticular oxygen toxicity. // Invest. OphthalmoL Vis. Sci., 2003, 44(8), p. 3476-3484.

248. Schmitt C , Schmidt J., Wegener A., Hockwin O. Effect of an aldose reductase inhibitor, AL-1576, on the development of UV-B and X-rayCataract. // Graefes Arch. Clin. Exp. OphthalmoL, 1988,226(5), p. 455-460.

249. Seitzman G.D. Cataract surgery in Fuchs dystrophy. // Curr. Opin OphthalmoL, 2005,16(4), p. 241-245.

250. Shkoliarenko N.I., Yusef N.Y. Cataract extraction-induced changes in the capsular sac of the lens. // Vestn. OftalmoL, 2005,121(3), p. 40-43.

251. Shortland G.J., Losty H.C. Galactosaemia. // Curr. Paediat., 1997, v. 2, p. 135-138.

252. Sippel Т.О. Energy metabolism in the lens during aging. // Invest. OphthaL, 1965, V. 4, p. 502-515.114

253. Sliney D.H. Geometrical gradients in the distribution of temperature and absorbed ultraviolet radiation in ocular tissues. // Dev. Ophthalmol., 2002, v.35, p. 40-59.

254. Soderberg P.G., Lofgren S., Ayala M., Dong X., Kakar M., Mody V. Toxicity of ultraviolet radiation exposure to the lens expressed by maximum tolerabledose. // Dev. Ophthalmol., 2002, v. 35, p. 70-75.

255. Spector A., Kuszak J.R., Ma W., Wang R.R. The effect of aging on glutathione peroxidase-i knockout mice-resistance of the lens to oxidativestress. // Exp. Eye Res., 2001, 72(5), p. 533-545.

256. Srivastava V.K., Srivastava S.K., Garg M., Chaturvedi N., Afaq Z., Seth N.M. Endocrine regulation of Calcium and phosphate in rat eye lens and itssignificance in Cataract formation. // Indian J. Exp. Biol., 1990, 28(4), p. 365-368.

257. Srivastava V.K., Varshney N., Pandey D.C. Role of trace elements in senile cataract. // Acta Ophthalmologica., 1992, v. 70, p. 839-841.

258. Stankiewicz A. Disorders of water and electrolyte metabolism in the lenses with Cataract. // Klin. Oczna., 1974,44(1), p. 9-13.

259. Stanojevic-Paovic A., Hristic V., Cuperlovic M., Jovanovic S., Kxsmanovic J. Macro- and microelements in the cataractous eye lens. // Ophthalmic. Res.,1987, V. 19, p. 230-234.

260. Suryanarayana P., Krishnaswamy K., Reddy G.B. Effect of curcumin on galactose-induced Cataractogenesis in rats. // Mol. Vis., 2003, v. 9, 9, p. 223-230.

261. Tadros A., Bhatt U.K., Abdul Karim M.N., Zaheer A., Thomas P.W. Removal of lens epithelial cells and the effect on capsulorhexis size. // J. CataractRefract Surg., 2005, 31(8), p. 1569-1574.

262. Takamura Y., Kubo E., Tsuzuki S., Yagi H., Sato M., Akagi Y. Increased expression of p21(WAF-l/CIP-l) in the lens epithelium of rat sugar Cataract.// Exp. Eye Res., 2002, 74(2), p. 245-254.115

263. Takikawa О. Biochemical and medical aspects of the indoleamine 2,3- dioxygenase-initiated 1-tryptophan metabolism. // Biochem. Biophys. Res.Commun., 2005, p. 19.

264. Toivonen L.V., Nefedova Z.A., Sidorov V.S., Iurovitskii I.G. Age-related characteristics of Cataractogenesis in salmon fiy. I.I. Biochemicalcharacteristics of eye lens during Cataractogenesis. // Ontogenez., 2004,35(1), p. 61-69.

265. Toivonen L.V., Nefedova Z.A., Sidorov V.S., Iurovitskii I.G. Age-related characteristics of cataractogenesis in salmon fry. II. Biochemicalcharacteristics of eye lens during cataractogenesis. // Ontogenez., 2004b,35(1), p. 61-69.

266. Toivonen L.V., Sidorov V.S., Nefedova Z.A., Iurovitskii I.G. Age-related features of Cataractogenesis in salmon fiy. I. Lipid composition of the lens innormal development. // Ontogenez., 2003, 34(1), p. 24-27.

267. Tomarev S.I., Piatigorsky J. Lens crystallins of invertebrates-diversity and recruitment fi-om detoxification enzymes and novel proteins. // Eur J.Biochem., 1996,235(3), p. 449-465.

268. Truscott R.J. Age-related nuclear Cataract-oxidation is the key. // Exp. Eye Res., 2005, 80(5), p. 709-725.

269. Uchikawa M., Kamachi Y., Kondoh H. Understanding lens differentiation from the analysis of crystallin gene regulation. // Tanpakushitsu KakusanKoso., 2005, 50(6), p. 655-663.

270. Vigh В., Debreceni К., Fejer Z., Vigh-Teichmann I. Immunoreactive excitatory amino acids in the parietal eye of lizards, a comparison with thepineal organ and retina. // Cell Tissue Res., 1997,287(2), p. 275-283.

271. Waagbo R., Bjerkas E., Sveier H., Breck O., Bjomestad E., Maage A. Nutritional status assessed in groups of smolting Atlantic salmon (Salmo salar1..), developing cataracts. // J. Fish Dis., 1996, v. 19, p. 365-373.

272. Waagbo R., Bjerkas E., Sveier H., Breck 0., Bjomestad E., Maage A. Nutritional status assessed in groups of smolting Atlantic salmon (Salmo salar1..), developing cataracts. //J. Fish Dis., 1996, v. 19, p. 365-373.

273. Waagbo R., Hamre K., Bjerkas E., Berge R., Wathne E., Lie 0., Torstensen B. Cataract formation in Atlantic salmon, Salmo salar L., smolt relative todietary pro- and antioxidants and lipid level. // J. Fish Dis., 2003, 26(4), p.213-229.

274. Wall A.E. Cataracts in farmed Atlantic salmon (Salmo salar) in Ireland, Norway and Scotland from 1995 to 1997. // Vet. Rec, 1998b, 142(23),P. 626-631.

275. Wall A.E. Cataracts in farMed. Atlantic salmon (Salmo salar) in Ireland, Norway and Scotland from 1993 to 1995. // Vet. Rec, 1998a, 6, 142(23), P.621-626.

276. Wang K., Li D., Sun F. Dietary caloric restriction, delay the development of Cataract by attenuating the oxidative stress in the lenses of Brown Norwayrats.//Exp. Eye Res., 2004, 78(1), p. 151-158.

277. Weder J.K., Hinkers S.C. Complete amino acid sequence of the lentil trypsin- chymotrypsin inhibitor LCI-1.7 and a discussion of atypical binding sites ofBowman-Birk inhibitors. // J. Agric Food Chem., 2004, v. 30, 52(13), p.4219-4226.

278. Wen G.Y., Sturman J.A., Wisniewski H.M., McDonald A., Niemann W.H. Chemical and ultrastructural changes in the tapetum of beagles with ahereditary abnormality. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci., 1982, v. 23, p. 733-742.

279. Werner L., Pandey S.K., Izak A.M., Hickman M.S., LeBoyer R.M., Mamalis N. Evaluation of the Cataractogenic effect of viscoanesthetic solutions on therabbit crystalline lens. // J. Cataract Refract Surg., 2005, 31(7), p. 1414-1420.

280. Wistow G., Wyatt K., David L., Gao C, Bateman O., Bernstein S., Tomarev S., Segovia L., Slingsby C, Vihtelic T. gammaN-crystallin and the evolutionof the betagamma-crystallin superfamily in vertebrates. // FEBS J., 2005,272(9), p. 2276-2291.

281. Worgul B.V., Medvedovsky C, Wu B. Use of non-subjective analysis of lens transparency in experimental radiation Cataract research. // Ophthalmic Res.,1995,v.27,l, p. 110-115.

282. Worgul B.V., Smilenov L., Brenner D.J., Junk A., Zhou W., Hall E.J. Atm heterozygous mice are more sensitive to radiation-induced Cataracts than aretheir wild-type counterparts. // Proc. Natl Acad Sci. U S A., 2002, v. 23,99(15), p. 9836-9839.

283. Ye J., Yao K., Zeng Q., Lu D. Changes in gap junctional intercellular communication in rabbits lens epithelial cells induced by low power densitymicrowave radiation. // Clin. Med. J., 2002,115(12), p. 1873-1876.

284. Zandy A.J., Lakhani S., Zheng Т., Flavell R.A., Bassnett S. Role of the executioner caspases during lens development. // J. Biol. Chem., 2005, v. 26,280(34), p. 30263-30272.

285. Zecchin E., Conigliaro A., Tiso N., Argenton F., Bortolussi M. Expression analysis of jagged genes in zebrafish embryos. // Dev. Dyn., 2005, 233(2), p.638-645.118

286. Ziebarth N.M., Manns F., Uhlhom S.R., Venkatraman A.S., Parel J.M. Noncontact optical measurement of lens capsule thickness in human, monkey,and rabbit postmortem eyes. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci., 2005, 46(5), p.1690-1697.