Биоразнообразие мицелиальных грибов - ассоциантов двустворчатых моллюсков залива Петра Великого Японского моря тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.08, кандидат биологических наук Борзых, Олег Геннадьевич

• Борзых, Олег Геннадьевич
• кандидат биологических наук
• 2013

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Борзых, Олег Геннадьевич

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. МИЦЕЛИАЛЬНЫЕ ГРИБЫ - КОМПОНЕНТЫ МОРСКИХ СООБЩЕСТВ

1. Мицелиальные грибы в морских сообществах

1.1. Морские грибы как экологическая группа

1.2. Видовое богатство морских грибов

1.3. Размеры морских грибов

1.4. Образ жизни морских грибов

1.5. Географическое распространение морских грибов

1.6. Вертикальная зональность грибов на литорали

1.7. Экологическая роль грибов в морских местообитаниях

2. Морские грибы на субстратах животного происхождения

3. Взаимоотношение грибов и морских животных

3.1. Взаимоотношения грибов и двустворчатых моллюсков

3.2. Взаимоотношения грибов с амфиподами

3.3. Взаимоотношения грибов и нематод

3.4. Взаимоотношение грибов и морских клещей

3.5. Взаимоотношение грибов и кораллов

3.6. Микобиота голотурий

3.7. Грибные болезни гидробионтов

3.7.1. Инфекции, вызываемые представителями рода Fusarium

3.7.2. Инфекции, вызываемые представителями рода Ochroconis

3.7.3. Инфекции, вызываемые представителями рода Exophiala

3.7.4. Инфекции, вызываемые представителями рода Scytalidium

3.7.5. Грибные инфекции креветки - богомола

ГЛАВА 2. КРАТКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАЙОНА

ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Краткая физико-географическая и гидрологическая храктеристика залива Петра Великого Японского моря (Лоция, 1972)

2.2. Краткая характеристика районов исследования

ГЛАВА 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1. Материалы исследования

3.1.1. Краткая характеристика обследованных двустворчатых моллюсков

3.2. Методы исследования

ГЛАВА 4. ВИДОВОЕ РАЗНООБРАЗИЕ МИЦЕЛИАЛЬНЫХ ГРИБОВ, АССОЦИИРОВАННЫХ С ДВУСТВОРЧАТЫМИ МОЛЛЮСКАМИ ИЗ ЗАЛИВА ПЕТРА ВЕЛИКОГО ЯПОНСКОГО МОРЯ

4.1. Видовое разнообразие мицелиальных грибов, ассоциированных с двустворчатыми моллюсками из залива Петра Великого Японского

моря

4.2. Эколого - биологическая характеристика грибов - ассоциантов

обследованных моллюсков

ГЛАВА 5. РАСПРЕДЕЛЕНИЕ МИЦЕЛИАЛЬНЫХ ГРИБОВ НА ПОВЕРХНОСТИ РАКОВИНЫ И ВО ВНУТРЕННИХ ОРГАНАХ ОБСЛЕДОВАННЫХ МОЛЛЮСКОВ

5.1. Распределение мицелиальных грибов на поверхности раковины

и во внутренних органах обследованных двустворчатых моллюсков из акватории о. Рикорда

5.2. Распределение мицелиальных грибов на поверхности раковин и во внутренних органах двустворчатых моллюсков из Амурского залива

5.3. Распределение мицелиальных грибов во внутренних органах двустворчатых моллюсков из Уссурийского залива

5.4. Распределение мицелиальных грибов на поверхности раковин и во внутренних органах двустворчатых моллюсков из залива Восток

5.5. Общие закономерности распределения мицелиальных грибов на поверхности раковины и во внутренних органах обследованных моллюсков из залива Петра Великого Японского моря

5.6. Миколого-гистологические исследования двустворчатых

моллюсков

ГЛАВА 6. КОМПЛЕКСЫ МИЦЕЛИАЛЬНЫХ ГРИБОВ - АССОЦИАНТОВ

ДВУСТВОРЧАТЫХ МОЛЛЮСКОВ ИЗ РАЗЛИЧНЫХ ПО СТЕПЕНИ АНТРОПОГЕННОЙ НАГРУЗКИ РАЙОНОВ ЗАЛИВА ПЕТРА ВЕЛИКОГО ЯПОНСКОГО МОРЯ

6.1. Комплексы грибов - ассоциантов двустворчатых моллюсков из акватории о. Рикорда

6.2. Комплексы грибов - ассоциантов двустворчатых моллюсков из Амурского залива

6.3. Комплексы грибов - ассоциантов двустворчатых моллюсков из Уссурийского залива

6.4. Комплексы грибов - ассоциантов двустворчатых моллюсков из

залива Восток

6.5. Сравнение грибных комплексов приморского гребешка из различных

по степени антропогенной нагрузки районов залива Петра Великого

6.6. Экологическое разнообразие комплексов грибов, ассоциированных с

двустворчатыми моллюсками

ГЛАВА 7. МИКОЛОГО-ТОКСИКОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ДВУСТВОРЧАТЫХ МОЛЛЮСКОВ

7.1.Адаптация метода иммуно-ферментного анализа с помощью системы «RIDERSCREENFast (Aflatoxin)», разработанного для определения микотоксинов в зерне, кормах, орехах, для определения афлатоксинов в штаммах мицелиальных грибов из рода Aspergillus, выделенных из двустворчатых моллюсков и токсикологического

обследования мягких тканей моллюсков

7.2. Определение содержания микотоксинов (афлатоксинов) в штаммах мицелиального гриба Aspergillus flavus, выделенных из двустворчатых моллюсков из природных популяций и

марикультуры (морепродуктов)

7.3. Сравнительное миколого - токсикологическое обследование двустворчатых моллюсков из природных популяций с разной степенью

антропогенной нагрузки и марикультуры (морепродуктов)

ВЫВОДЫ

Список используемой литературы

Приложение 1. Общий список мицелиальных грибов - ассоциантов

двустворчатых моллюсков залива Петра Великого японског моря

Приложение 2. Виды мицелиальных грибов, впервые отмеченные для

Российских вод Японского моря

Приложение 3. Анализ морепродуктов из двустворчатых моллюсков на

содержание афлатоксинов

Приложение 4. Анализ морепродуктов на содержание афлатоксинов (пробы №№ 1-9)

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Биоразнообразие мицелиальных грибов - ассоциантов двустворчатых моллюсков залива Петра Великого Японского моря»

Введение

Необходимость научного исследования комплексов морских грибов как структурных компонентов морских сообществ прибрежной зоны Японского моря и установление их роли в функционировании морских сообществ в условиях антропогенного воздействия имеет важное теоретическое значение и продиктовано практикой хозяйственного освоения морских акваторий дальневосточного региона России, а также обусловлено экологической политикой государства в области охраны окружающей среды.

Актуальность темы заключается в следующем:

• конец прошлого и начало этого тысячелетия в мировой биологической науке проходят под лозунгом всестороннего изучения биологического разнообразия, приоритеты которого определены Международной конвенцией по биоразнообразию в Рио-де-Жанейро в 1992 г.;

• мицелиальные грибы являются гетеротрофным компонентом в структурно-функциональной организации морских сообществ, играют важную роль в деструкции и трансформации органического вещества и энергии,

• исследование мицелиальных грибов — ассоциантов гидробионтов, в том числе двустворчатых моллюсков, имеет теоретическое значение в области биоценотических отношений компонентов биологических систем «макроорганизм - микроорганизмы», в частности «двустворчатый моллюск — мицелиальные грибы»;

• исследования патогенных и токсикогенных грибов, заселяющих внутренние органы промысловых и культивируемых морских организмов могут служить основой миколого-токсикологический мониторинга гидробионтов, а также для разработки нормативов допустимого уровня зараженности их грибами и контроля за накоплением микотоксинов в морепродуктах.

• в условиях антропогенного загрязнения грибы совместно с бактериями имеют решающее значение в поддержании гомеостаза морских экосистем, в процессах биологического самоочищения морских вод;

• морские грибы представляют значительный научный и практический интерес во всем мире как перспективный, но малоизученный источник биологически активных веществ, имеющих большое фармакологическое значение.

Несмотря на столь существенную роль грибов в морских экосистемах, они остаются слабо изученой группой морских микроорганизмов как в Мировом океане, так и в дальневосточном регионе России.

Теоретическое значение данного исследования. Исследование мицелиальных грибов, ассоциированных с двустворчатыми моллюсками, имеет большое теоретическое значение. С одной стороны, изучение таксономического состава мицелиальных грибов и их распределения на поверхности раковины и во внутренних органах моллюсков является основой для выяснения характера взаимоотношений грибов с моллюсками, установления их трофических и топических связей и, в конечном итоге, определения роли мицелиальных грибов в метаболизме двустворчатых моллюсков. Исследование взаимоотношений в биологической системе «двустворчатый моллюск - мицелиальные грибы» - фундаментальные проблемы экологии и биоценологии. С другой стороны, многие виды мицелиальных грибов являются условно-патогенными организмами, вызывая микозы растений, животных и человека. Кроме того, многие штаммы мицелиальных грибов продуцируют микотоксины, способные вызывать микотоксикозьт животных и человека.

Практическое значение обусловлено тем, что двустворчатые моллюски - важнейший объект промысла и марикультуры, используются в пищевых, лечебно-профилактических и других коммерческих целях. В связи с этим, исследование патогенных и токсикогенных грибов, заселяющих внутренние органы съедобных моллюсков, необходимо при проведении

миколого-токсикологического мониторинга их зараженности микроскопическими грибами, для предотвращения токсикоинфекций при употреблении зараженных грибами и их токсинами морепродуктов, а также для успешного развития хозяйств марикультуры.

Цель исследования - изучить видовое разнообразие мицелиальных грибов - ассоциаитов двустворчатых моллюсков из залива Петра Великого Японского моря, а также токсические свойства некоторых изолятов Aspergillus flavus Link.

Задачи исследования

1. Изучить таксономический состав мицелиальных грибов — ассоциантов двустворчатых моллюсков Mizuhopecten yessoensis, Mytilus trossulus, Crenomytilus grayanus, Modiolus modiolus, Crassostrea gigas и Anadara broughtoni из залива Петра Великого Японского моря.

2. Изучить распределение мицелиальных грибов на поверхности раковины и во внутренних органах моллюсков: в мантии, жабрах, мускуле, пищеварительной железе, почках, гонадах.

3. Изучить комплексы мицелиальных грибов - ассоциантов двустворчатых моллюсков в акваториях залива Петра Великого с разной степенью антропогенного воздействия.

4. Определить содержание афлатоксинов в тканях двустворчатых моллюсков, а также в штаммах патогенного и токсинообразующего гриба Aspergillus flavus Link, выделенных из внутренних органов гидробионтов.

Научная новизна. В последнее время возрос интерес ученых к взаимоотношениям двустворчатых моллюсков и микроорганизмов. Изучены болезни моллюсков, вызываемые бактериями, простейшими и другими паразитами, низшими грибами. Большое внимание уделяется симбиотическим отношениям двустворчатых моллюсков и бактерий. Однако, о взаимоотношениях мицелиальных грибов и двустворчатых моллюсков

крайне мало ииформации. В Дальневосточных морях России такие исследования практически не проводились.

В результате данного исследования:

1. Впервые установлен таксономический состав мицелиальных грибов — ассоциантов двустворчатых моллюсков Mizuhopecten yessoensis, Mytilns trossiiliis, Crenomytilus grayanus, Modiolus modiolus, Crassostrea gigas и Anadara broughtoni из залива Петра Великого Японского моря.

2. Впервые установлен характер распределения мицелиальных грибов на поверхности раковины и во внутренних органах моллюсков: в мантии, жабрах, мускуле, пищеварительной железе, почках, гонадах.

3. Впервые изучены комплексы мицелиальных грибов -ассоциантов двустворчатых моллюсков в акваториях залива Петра Великого с разной степенью антропогенного воздействия.

4. Впервые проведены миколого-гистологические исследования двустворчатых моллюсков, в результате которых показан рост мицелиальных грибов в тканях обследованных гидробионтов.

5. Впервые определено содержание афлатоксинов в тканях двустворчатых моллюсков, а также в штаммах гриба Aspergillus flavus Link, выделенных из внутренних органов гидробионтов.

Апробация работы

Результаты исследований были доложены на Годичных научных конференциях ИБМ ДВО РАН (2010, 2011, 2012, 2013), на Конференции молодых ученых ТОЙ ДВО РАН (2011 г.), на Российско-Китайском билатеральном симпозиуме "Marine Ecosystems under the Global Change in the Northwestern Pacific", Vladivostok, Russia (2012 г.), на Объединенном гидробиологическом, экологическом и ихтиологическом семинаре ИБМ им. A.B. Жирмунского ДВО РАН (2012), на заседании Отдела зоологии Биолого-почвенного института ДВО РАН (2013), материалы исследований представлены на III Международную конференцию «Происхождение биосферы и эволюция», Крит, Греция (2011 г.), на Международную конференцию «Экология водных беспозвоночных», посвященную 100-летию Ф.Д. Мордухай-Болтовского. Борок. (2010 г.), на Российско- Китайский билатеральный симпозиум "Comparison on Marine Biodiversity in the

Northwest Pacific Ocean". Qingdao, China. (2010 г.), на XV международную научно-практическую конференцию "Фундаментальные и прикладные исследования, разработка и применение высоких технологий в промышленности и экономике". Санкт-Петербург (2013).

По результатам исследований опубликовано:

Публикации в рецензируемых журналах:

1. Борзых О. Г., Зверева JT. В. Микобиота гигантской устрицы Crassostrea gigas (Thunberg, 1787) (Bîvalvia) из залива Петра Великого Японского моря // Микробиология. 2012. Т. 81. № 1. С. 117-119.

Borzykh. O.G., Zvereva L.V Mycobiota of the giant oyster Crassostrea gigas (Thunberg, 1787) (Bivalvia) from the Peter the Great Bay of the Sea of Japan // Microbiology. 2012. Vol.81. l.Pp. 117-119. DOI: 10.1134/50026261712010031.

2. Борзых О.Г., Зверева JT.B. Мицелиальные грибы в эпибиозе приморского гребешка Mizuhopecíen yessoerisis в заливе Петра Великого Японского моря //Биология моря. 2012. Т.38. № 6. С. 483-484.

3. Зверева JT.B., Борзых О.Г. Комплексные миколого-токсикологические и гистопатологические исследования двустворчатых моллюсков // Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2010. № 1. С. 103-104.

Работы, опубликованные в сборниках материалов международных

конференций

4. Борзых О. Г., Зверева JI. В. Комплексы мицелиальных грибов -ассоциантов приморского гребешка Mizuhopecíen yessoensis из различных по степени антропогенной нагрузки акваторий залива Петра Великого Японского моря // Высокие технологии, исследования, финансы. Т. 2: сборник статей XV международной научно-практической конференции "Фундаментальные и прикладные исследования, разработка и применение высоких технологий в промышленности и экономике". 25D26 апреля 2013 года, Санкт-Петербург, Россия / под ред. А.П. Кудинова. — СПб.: Изд-во Политехи, ун-та, 2013. С. 217 - 221.

5. Oleg G. Borzykh and Lubov V. Zvereva. Filamentous fungi associated with the Giant Oyster Crassostrea Gigas (Bivalvia) from the Peter the Great Bay of the Sea of Japan // Proceeging of the Russia - China Bilateral Symposium "Marine Ecosystems under the Global Change in the Northwestern Pacific", Vladivostok, Russia. October 8-9. 2012 .Vladivostok: Dalnauka. P. 71-74.

6. Lubov V. Zvereva, Oleg G. Borzykh. Biostructure of Assemblages of Filamentous Fungi Associated with Bivalves in the Sea of Japan// III International conference BIOSPHERE ORIGIN AND EVOLUTION. Rethymno, Crete, Greece. October 16-20, 2011. Novosibirsk. 2011. Pp. 251-252.

7. Зверева JI.B., Борзых О.Г. Комплексы мицелиальных грибов -ассоциантов двустворчатых моллюсков приморского гребешка Mizuhopecten yessoensis и тихоокеанской мидии Mytilus trossnhis в различных районах залива Петра Великого Японского моря // «Экология водных беспозвоночных». Сборник трудов Международной конференции, посвященной 100-летию Ф.Д. Мордухай-Болтовского. Борок. Ноябрь, 2010. С. 101-103.

8. L.V. Zvereva, O.G. Borzykh. Filamentous fungi in the epigrowth of the Pacific oyster Crassostrea gigas (Bivalvia) in Peter the Great Bay, Sea of Japan // Proceedings of the China - Russia Bilateral Symposium on "Comparison on Marine Biodiversity in the Northwest Pacific Ocean". 10—11 October 2010. Qingdao, China P. 215-219.

9. L.V. Zvereva, O.G. Borzykh. Fungal complexes associated with the Primorsky Scallop Mizuhopecten yessoensis and the Mussel Mytilus trossulus (Bivalvia) from polluted and clean areas of Peter the Great Bay, Sea of Japan // Proceedings of the China - Russia Bilateral Symposium on "Comparison on Marine Biodiversity in the Northwest Pacific Ocean". 10-11 October, 2010 Qingdao, China. P. 220-224.

Заключение диссертации по теме «Экология (по отраслям)», Борзых, Олег Геннадьевич

выводы

1. В результате микологического обследования двустворчатых моллюсков Mizuhopecten yessoensis, Mytilus trossulus, Crenomytilus grayanus, Modiolus modiolus, Crassosfrea gigas и Anadara broughtoni из залива Петра Великого Японского моря обнаружено 110 видов из 32 родов мицелиальных грибов, в том числе 14 видов из 6 родов сумчатых грибов (Ascomycota), 86 видов из 23 родов группы анаморфных грибов (Anamorphic fungi), 6 видов из 3 родов зигомицетов (Zygomycota) и 4 вида Mycelia Sterilia.

2. Максимальные показатели видового богатства комплексов мицелиальных грибов - ассоциантов Mizuhopecten yessoensis составляют 39 видов, Mytilus trossulus — 11 видов, Crenomytilus grayanus — 22 вида, Modiolus modiolus — 22 вида, Crassostrea gigas — 21 вид, Anadara broughtoni — 3 вида. Видовой состав комплексов мицелиальных грибов — ассоциантов двустворчатых моллюсков зависит от видовой принадлежности моллюска-хозяина.

3. В распределении мицелиальных грибов в органах двустворчатых моллюсков прослеживается определённая закономерность: большинство видов грибов обнаружено на поверхности раковины, в мантии, пищеварительной железе и в, меньшей степени, в жабрах; наименьшее количество грибов обнаружено в почках двустворчатых моллюсков.

4. Максимальные показатели видового богатства комплексов мицелиальных грибов - ассоциантов двустворчатых моллюсков в Амурском заливе, загрязненном промышленно - бытовыми стоками, составляют 38 видов из 17 родов, в акватории Уссурийского залива, загрязненной тяжелыми металлами - 34 вида из 9 родов, в акватории размещения хозяйства марикультуры моллюсков у о. Рикорда - 57 видов из 20 родов, в относительно чистом заливе Восток - 27 видов из 10 родов. Это свидетельствует о зависимости видового богатства грибов от степени и характера антропогенного воздействия.

5. Видовое богатство комплексов мицелиальных грибов -ассоциантов приморского гребешка в Амурском заливе и акватории о. Рикорда выше, чем в наименее загрязненном заливе Восток.

6. Качественный состав комплексов мицелиальных грибов -ассоциантов двустворчатых моллюсков главным образом определяется средой обитания двустворчатого моллюска-хозяина, а также его видом. Для микобиоты двустворчатых моллюсков выявлены существенные различия качественной и количественной структуры комплексов мицелиальных грибов, связанные с различными экологическими условиями обитания моллюсков в изученных районах зал. Петра Великого, в том числе разным качеством и степенью антропогенной нагрузки на изученные акватории.

7. В штаммах Aspergillus flavus, выделенных из моллюсков из открытых вод залива Петра Великого, выработка афлатоксинов выше, чем в загрязненных водах Амурского залива, вероятно, вследствие реакции гриба на более высокую защиту моллюсков от токсикологического воздействия микобионта.

8. Микотоксины преимущественно накапливаются в жабрах, пищеварительной железе, мантии, мускуле моллюсков. Содержание афлатоксинов во внутренних органах Mizuhopecten yessoensis, собранного в загрязненных биотопах Амурского залива выше, чем в моллюсках из открытых вод зал. Петра Великого.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Борзых, Олег Геннадьевич, 2013 год

Список используемой литературы

1. Артемчук Н.Я. Микофлора морей СССР. М.: Наука. 1981. 192 с.

2. Арзамасцев И.С., Яковлев Ю.М., Евсеев Г.А., Гульбии В.В. Клочкова Н.Г., Селин Н.И., Ростов И.Д., Юрасов Г.И., Жук А.П., Буяновский А.И. 2001. Атлас промысловых беспозвоночных и водорослей морей Дальнего Востока России. Владивосток: Аванте. 192 с.

3. Барыкина Р.П., Веселова Т.Д., Девятов А.Г. Справочник по ботанической микротехнике. Основы и методы. М.: МГУ. 2004. 312 с.

4. Бирюлина М.Г. Современные запасы мидии в заливе Петра Великого // Вопросы гидробиологии некоторых районов Тихого океана. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1972. С. 11-21.

5. Билай В. И., Коваль Э. 3. Аспергиллы. Киев: Наукова Думка. 1988. 204 с.

6. Брегман Ю.Э. Взаимосвязь роста и энергетического обмена у некоторых промысловых донных беспозвоночных залива Посьета (Японское море)//Автореф. дис. ...канд. биол. наук. Владивосток. 1973. 33 с.

7. Великанов JT.JT., Сидорова И.И. Некоторые биохимические аспекты в экологии грибов // Успехи микробиологии. Т 18. Москва: Наука. 1983. С.112- 132.

8. Губанов В.В. Пораженность устриц раковинной болезнью на марихозяйствах и естественных банках в различных районах Черного моря // 111 Всесоюзная конференция по морской биологии: Тез. Докл. Севастополь, окт. 1988. Киев. 1988. Ч. II. С. 58-59.

9. Дудка И.А. Водные несовершенные грибы СССР. Киев: Наукова думка. 1985. 188 с.

10. Егорова JI. Н. Почвенные грибы Дальнего Востока. Гифомицеты. Л.: Наука. 1986. 191 с.

11. Жюбикас И.И Некоторые данные по биологии Pecten yessoensis Jay в Курило - Сахалинском районе// Вести. ЛГУ. Сер. Биология. 1969. № 21. Вып. 4. С. 21-32.

12. Звалинский В.И., Тищенко П.П., Михайлик Т.А., Тищенко П.Я. Эвтрофикация Амурского залива // Современное экологическое состояние залива Петра Великого Японского моря. Владивосток: Издательский дом Дальневост. федерал, ун-та. 2012. С. 76 - 113.

13. Зенкович В.П. Основы учения о развития морских берегов. М. : Изд-во АН СССР. 1962. 710 с.

14. Зверева Л.В. Экологическое разнообразие морских грибов залива Петра Великого Японского моря // Биология моря. 1999. Т. 25. № 1. С. 21-25.

15. Зверева Л.В. Микобиота загрязненных акваторий залива Петра Великого (Японское море) // Морская экология - 2002. Междунар. научно-практич. конф. Владивосток: МГУ, 16—18 окт. 2002. С. 153- 159.

16. Зверева Л.В., Высоцкая М.А. Мицелиальные грибы - ассоцианты двустворчатых моллюсков из загрязненных биотопов Уссурийского залива // Биология моря. 2005. Т. 3 1 . № 6. С. 443 -446.

17. Зверева Л.В., Высоцкая М.А. Микобиота ресурсных видов двустворчатых моллюсков российских вод Японского моря// Морские прибрежные экосистемы. Материалы второй Международной научно-практической конференции. М.: Изд-во ВНИРО. 2005. С. 42-44.

18. Зверева Л.В., Высоцкая М.А. Биоразнообразие мицелиальных грибов залива Петра Великого (Японское море) и его динамика под действием природных и антропогенных факторов // В кн.: Реакция морской биоты на изменения природной среды и климата. Владивосток: Дальнаука. 2007. С. 104-129.

19. Зверева Л.В., Стоник И.В., Орлова Т.Ю., Чикаловец И.В. Миколого-токсикологические исследования двустворчатых моллюсков // Бюллетень Московского общества испытателей природы. Отдел биологический. 2009. Т. 114. Вып. 3. Прил. 1. Ч. 1. Экология. Природные ресурсы. Рациональное природопользование. Охрана окружающей среды.-2009. С. 322-324.

20. Кобзарь А.Д., Христофорова ТТ.К. Оценка загрязнения вод залива

Петра Великого тяжелыми металлами по их содержанию в бурых водрослях-макрофитах // Современное экологическое состояние залива Петра Великого Японского моря. Владивосток: Издательский дом Дальневост. федерал, ун-та. 2012. С. 362 -381.

21. Лебедева Е.В. Микромицеты - индикаторы техногенного загрязнения почв // Микология и криптогамная ботаника в России: традиции и современность. Труды международной конференции. СПб, 24 - 28 апр. 2000 г. Санкт-Петербург. 2000. С. 173 - 176.

22. Лоция Японского моря. Часть I. Изд. ГУНИО. 1972. 287 с

23. Литвинов М.А., Дудка И. А. Методы исследования микроскопических грибов пресных и соленых (морских) водоемов. Наука. Ленинград. 1975. 151 с.

24. ЛуппаХ. Основы гистохимии. М.: Мир. 1980. 343 с.

25. Лымарев В.И. Некоторые данные по геоморфологии и вертикальным движениям берегов Уссурийского залива в Японском море // Развитие морских берегов в условиях колебательных движений земной коры. Таллин. 1966. С. 138- 143.

26. Методы экспериментальной микологии / Под ред. В.И. Билай. Справочник. Киев: Наукова Думка. 1982. 550 с.

27. Михайлик Т.А., Тищенко П.Я., Колтунов A.M., Тищенко П.П., Швецова М.Г. Влияние реки Раздольной на экологическое состояние вод Амурского залива (Японское море) // Водные ресурсы. 2011. Т. 38. № 4. С. 474 - 484.

28. Мэгарран Э. Экологическое разнообразие и его измерение. М.: Мир. 1992. 184 с.

29. Нигматулина Л.В. Воздействие сточных вод контролируемых выпуском на экологическое состояние Амурского залива// Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Владивосток: ТИНРО-центр. 2005. 19 с.

30. Огородникова A.A. Эколого-экономическая оценка воздействия береговых источников загрязнения на природную среду и биоресурсы залива

Петра Великого. Владивосток: ТИНРО-центр. 2001. 193 с.

31. Петренко В.С., Мануйлов В.А. Физическая география залива Петра Великого. Владивосток: ДВГУ. 1988. 147 с.

32. Пивкин М.В. Вторичные морские грибы Японского и Охотского морей// Диссертация ... доктора биол. наук. Владивосток. 2010. 407 с.

33. Пивкин М. В., Худякова Ю. В., Сметанина О. Ф., Кузнецова Т. А. Штамм гриба Penicillium simplicissimum (Oudem.) Thom - продуцент шерининов. Патент № 2422508 И.Б. 27. 06. 2011.

34. Пивкин М.В., Алешко С.А., Красохин В.Б., Худякова Ю.В. Комплексы грибов губок южного побережья острова Сахалин // Биол. моря. 2006. Т. 32. № 4. С. 249-254.

35. Пивкин М.В., Зверева J1.B. Грибы родов Alternaría и Ulocladíum в акватории залива Петра Великого (Японское море) // Микология и фитопатология. 2000. Т. 34. Вып. 6. С. 38- 44.

36. Пивкин М.В., Худякова Ю.В., Полохин О.В. Влияние антропогенной нагрузки на биоразнообразие грибов аквапочв южной части Приморского края. // Микробиологические особенности биогеохимии, генезиса, плодородия, мониторинга и санации почв Дальнего Востока России. Труды Дальневосточного отделения Докучаевского общества почвоведов РАН. Т. 3. Владивосток. 2005. С. 26-32.

37. Пивкин М.В., Кузнецова Т.А., Сова В.В. Морские грибы и их метаболиты. Владивосток: Дальнаука. 2006. 247 с.

38. Пивкин М. В., Худякова Ю. В., Кузнецова Т. А., Сметанина О.Ф., Полохин О.В. Грибы аквапочв прибрежных акваторий Японского моря в южной части Приморского края // Микология и фитопатология. 2005. Т. 39. Вып. 6. С. 50-61.

39. Пиркова А.В., Дёменко Д.П. Случаи раковинной болезни у гигантской устрицы Crassostrea gigas (Bivalvia), культивируемой в Черном море // Биология моря. 2008. Т.34. № 5. С. 351-359.

40. Подорванова Н.Ф, Ивашинникова Т.С. Петренко В.С., Хомичук

JT.C. Основные черты гидрохимии залива Петра Великого (Японское море). Владивосток: ДВО АН СССР. 1989. 114 с.

41. Правила рыболовства для Дальневосточного рыбохозяйственного бассейна. ТИНРО. 2007.

42. Рыбаков A.B., Буторина Т.Е., Кулепанов В.Н., Зверева J1.B. Болезни и паразиты культивируемых и промысловых беспозвоночных и водорослей. Владивосток: Дальрыбвтуз. 2004. 150 с.

43. Слинкина H.H., Пивкин М.В. Биоразнообразие грибов аквапочв южной части острова Сахалин // Микология и фитопатология. 2007. Т. 41. Вып. 1.С. 48-55.

44. Скалкин В.А. Биология и промысел приморского гребешка. Владивосток: Дальневосточное книжное издательство. 1966. 30 с.

45. Скарлато O.A. Двустворчатые моллюски дальневосточных морей СССР (отряд Dysodonta). Определитель по фауне СССР. Л.: ЗИН АН СССР. 1960. Т. 71. 150 с.

46. Скарлато O.A. Двустворчатые моллюски умеренных широт западной части Тихого океана. Л.: Наука. 1981. 479 с.

47. Ушева Л.Н., Зверева Л.В. Гистопатологические и гистохимические методы идентификации грибных структур в тканях двустворчатых моллюсков// Проблемы иммунологии, патологии и охраны здоровья рыб. Расширенные материалы III Международной конференции. Борок - Москва. 2011. С. 159 - 162.

48. Христофорова Н.К. Биоиндикация и мониторинг загрязнения морских вод тяжелыми металлами. Л.: Наука. 1989. 192 с.

49. Христофорова Н. К. Залив Петра Великого: природные условия и биоразнообразие // Современное экологическое состояние залива Петра Великого Японского моря. Владивосток: Издательский дом Дальневост. федерал, ун-та. 2012. С. 12 - 30.

50. Худякова Ю.В., Пивкин М.В., Кузнецова Т.А., Светашев В.И. Грибы грунтов Японского моря (Российское побережье) и их биологически

активные метаболиты // Микробиология. 2000. Т. 69. № 5. С. 722-726.

51. Явнов С. В. Атлас двустворчатых моллюсков дальневосточных морей России// Атласы промысловых и перспективных для промысла гидробионтов дальневосточных морей России. Владивосток: «Дюма». 2000. 168 с.

52. Ajello L, McGinnis M.R., Camper J. An outbreak of phaeohyphomycosis in rainbow trout caused by Scolecobasidium humicolall Mycopathologia. 1977. 62. P. 15-22.

53. Anastasiou C.J. Fungi from salt lakes. I. A new species of Clavariopsis II Mycologia. 1961. V. 53. P. 11-16.

54. Anastasiou C.J. Fungi from salt lakes. II. Ascomycetes and Fungi Imperfecti from the Salton Sea //Nova Hedwigia. 1963. V. 6. 243-276.

55. Ahearn D.G., Crow S.A. Fungi and hydrocarbons in the marine environment. The biology of marine fungi. (S.T. Moss ed.). Cambridge University Press. 1986. Cambridge London New York New Rochelle Melbourne Sydney. P. 11-18.

56. Alderman D.J. Fungal diseases of marine animals // Recent Advances in Aquatic Mycology (Ed. E.B.G. Jones). N. Y.: Wiley. 1976. P. 223-260.

57. Alderman D. J. Fungal diseases of aquatic animals. Microbial diseases offish. (Ed. Roberts R.J. Academic Press. London. 1982. P. 189-202.

58. Alderman D.J. Fungal infection of crawfish (Palinurus elephas) exoskeleton // Trans. Brit, mycol. Soc. 1973. V. 61. P. 595-597.

59. Aleem A. Distribution and ecology of marine fungi in Sierra Leone (Tropical West Africa) // Botanica Marina. 1980. V. 23. P. 679-688.

60. Ames L.M. A monograph of the Chaetomiaceae. Army Research Office. 1961.310 р.

61. Barlocher F, Kendrick B. Fungi in the diet of Gammarus pseudolimnaeus (Amphipoda) // Oikos. 1973. V. 24. P. 295-300.

62. Barlocher F., Kendrick B. Assimilation efficiency of Gammarus pseudolimnaeus (Amphipoda) feeding on fungal mycelium or autumn-shed leaves

// Oikos. 1975 a. V. 26. P. 55-59.

63. BarlocherF., KendrickB. Leaf-conditioning by microorganisms // Oecologia. 1975 b. V. 20. P. 359-362.

64. Becker G. Biological investigations on marine borers in BerlinDahlem // Marine Boring and Fouling Organisms (Ed. D.L. Ray). Univ. of Washington Press. Seattle. 1959. P. 62-83.

65. Becker G., Kampf W.-D., Kohlmeyer J. Zur Ernährung der Holzbohrasseln der Gattung Limnoria // Naturwissenschaften. 1957. Bd 44. S. 473-474.

66. Booth C. The genus Fusarium. Commonwealth Mycological Institute. Kew, Surrey. 1971.

67. Booth C. Fusarium. Commonwealth Mycological Institute. Kew. Surrey. 1977.

68. Benito B., Garciadebläs B.,Rodriguez-Navarro A. Potassium-or sodium-efflux ATPase, a key enzyme in the evolution of fungi// Microbiology. 2002. № 148. P. 933-941.

69. Blomberg A., Adler L. Physiology of osmotolerance in fungi// Advances in Microbial Physiology. 1992. V. P. 33.P. 145-212.

70. Brooks R.D. The presence of dolipore septa in Nia vibrissa and Digitatisporu marina II Mycologia. 1975. V. 67. P. 172 - 174.

71. Carmichael J.W. Cerebral mycetoma of trout due to a Phialophora-like fungus. Sabouraudia 1966. № 6. P. 120-123.

72. Carriker M.R., Smith E.H., Wilce R.T. Penitration of calcium carbonate substrates by lower plants and invertebrates. An international multidisciplinary symposium // Am. Zool. 1969. V. 9. P. 629-1020.

73. Cavalière A.R. Marine fungi of Iceland: A preliminary account of Ascomycetes // Mycologia. 1968. V. 60. P. 475-479.

74. Campbell J., Volkmann-Kohlmeyer B., Gräfenhan T., Spatafora J., Kohlmeyer J. A re-evaluation 335 of Lulworthiales: relationships based on 18S and 28S rDNA // Mycol. Res. 2005. V. 109 (5) P. 556-568.

75. Corte A.M. Osservazioni sul genere Lidworthia Suth. E sui suoi rapporti con Limnoria Menzies e segnalazioni di alter specie // Bot. Ital. 1975. V. 109. P. 227-237.

76. Durve V. S., Bal D. V. Shell disease in Crassostrea giyphoides (Schlotheim)// Curr. Sci.1960. № 29. P. 489-490.

77. Dick M.W. Straminipilous Fungi. Systematics of the Peronosporomycetes including accounts of the marine straminipilous protists, the plasmodiophorids and similar organisms. Kluwer Academic Publishers. Dordrecht. The Netherlands. 2001. 670 p.

78. Due P.M., Wada S., Kurata O., Hatai K. Pathogenicity of Plectosporium oratosquillae and Acremonium sp. isolated from mantis shrimp Oratosquilla oratoria against kuruma prawn Penaeus japónicas// Fish Pathol. 2010 a. 45. P. 133-136.

79. Due P.M., Wada S., Kurata O., Hatai K. In vitro and in vivo efficacy of antifungal agents against Acremonium sp. //Fish Pathol. 2010 b. 45.P. 109-114.

80. Due P.M., Hatai K. Pathogenicity of anamorphic fungi Plectosporium oratosquillae and Acremonium sp. to mantis shrimp Oratosquilla oratoria // Fish Pathol. 2009. 44. P. 81-85.

81. Due P.M., Hatai K., Kurata O., Tensha K, Yoshitaka U., Yaguchi T., Udagawa S.-I. Fungal infection of mantis shrimp (Oratosquilla oratoria) caused by two anamorphic fungi found in Japan// Mycopathologia. 2009. 167. P. 229-247.

82. Damare S., Raghukumar C., Muraleedharan U.D., Raghukumar S. Deep-sea fungi as a source of alkaline and cold-tolerant proteases// Enzyme and Microbial Technology. 2006. 39. P. 172-181.

83. Dowman E.A. Conservation in field archaeology. Methuen Co. London. 1970. 170 p.

84. Doguet G. Influence de la température et de la salinité sur la croissance et la fertilité du Digitatispora marina Doguet II Bull. Soc. Fr. Physiot. Vég. 1964. V. 10. P. 285-292.

85. Ellis M.B. Dematiaceous hyphomycetes. Kew, Surrey, England. 1971.

608p.

86. Egusa S., Ueda T. A. Fusarium sp. associated with black gill disease of the kuruma prawn, Penaeus japonicus Bate// Bull. Jap. Soc. Sei. Fish. 1972. 38. P. 1253-1260.

87. Fijan N Systemic mycosis in channel catfish. Bull Wildl Dis Associat 1969. 5:pp., 109-110.

88. Fenchel F. Aspects of decomposer food chains in marine benthos. // Verhandlingen der Deutischen zoologischen Gesellschaft. 1972. H. 65. S.14-23.

89. Grovel O., Pouchus Y.F., Verbist J.-F. Accumulation of gliotoxin, a cytotoxic mycotoxin from Aspergillus fumigatus, in blue mussel (Mytilus edulis) // Toxicon. 2003. N 42. P.297-300.

90. Gerlach W., Nirenberg H.I. The genus Fusarium: a pictorial atlas// Mitt. Biol. Bundesanst. Land u Forstwirtsch. 1982. 209. P. 155-161.

91. Gaskins J.E., Cheung P.J. Exophiala pisciphila, a study of its development//Mycopathologia. 1986. V. 93. P. 173-184.

92. Golubic S., Perkins R.D., Lukas K.J. Boring microorganisms and microbormgs in carbonate substrates / In: The Study of Trace Fossils (R.W. Frey, ed ). Springer-Verlag. Berlin and New York. 1975. P. 229-259.

93. Golubic S., Radke G., Le-Campion-Alsumard T. Endolithic fungi in marine ecosystem // Trends in Microbiology. 2005. V.13. P. 229-235.

94. Gessner R.V., Kohlmeyer J. Geographical distribution and taxonomy of fungi from salt marsh Spartina II Can. J. Bot. 1976. V. 4. P. 2023-2037.

95. Gessner R.V. Seasonal occurrence and distribution of fungi associated with Spartina altemiflora from a Rhode Island estuary // Mycologia. 1977. V. 69. P. 477-491.

96. Gessner R. V., Goos R.D., Sieburth J.M. The fungal microcosm of the internodes of Spartina altermflora //Mar. Biol. 1972. V. 16. P. 269-273.

97. Hatai K., Kubota S.S., Kida N., Udagawa S.-I. Fusarium oxysporum in red sea bream (Pagrus sp.) // J. Wildl. Dis. 1986. V. 22. P. 570-571.

98. Hatai K., Furuya K., Egusa S. Studies on the pathogenic fungus

associated with black gill disease of kuruma prawn, Penaeus japonicus - I. Isolation and identification of the BG-Fusarium // Fish Pathol. 1978. V.12. P. 219224.

99. Hernändez-Saavedra N.Y., Ochoa J.L., Vazquez- Dulhalt R. Osmotic adjustment in marine yeast // Journal of Plankton Research. 1995. V. 17. P. 59-69.

100. Hawthorne B.T., Rees-George J., Boradhurst P.G. Mating behavior and pathogenicity of New Zealand isolates of Nectria haematococca {Fusarium solani) //N.Z. J. Crop. Hort. Sei. 1992. V. 20. P. 51-57.

101. Hawksworth D.L. The magnitude of fungal diversity: the 1.5 million species estimate revisited //Mycol. Res. 2001. V. 105 P. 1422-1432.

102. Hawksworth D.L., Rossman A.Y. Where are all the undescribed fungi? //Phytopathology. 1997. V. 87 P. 888-891.

103. Hyde K.D., Allias S.A. Biodiversity and distribution of fungi associated with decomposing Nypa fruticans. II Biodiversity and Conservation. 2000. V. 9. P. 393^02.

104. Hanjavanit C, Wada S, Kurata O, Hatai K Mycotic disease of juvenile red sea bream, Pagrus major, caused by Scytalidium infestans. Suisanzoshoku 2004, 52:pp., 421^122.

105. Hyde K.D. Where are the missing fungi? Does Hong Kong have any answers?//Mycol. Res. 2001. V. 105. P. 1514-1518.

106. Hohnk W. Ober die submersen Pilze an der rumänischen Schwarzmeerkiiste nahe Constanza//Veroff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1967. Suppl. 10. P. 149-158.

107. Hohnk W. Uber den pilzlichen Befall kalkiger Hartteile von Meerestieren // Ber. Dtsch. Wiss. Komm. Meeresforsch. 1969. Bd. 20. S. 129140.

108. Höller U., Wright A.D., Matthee G.F., Konig G.M., Draeger S., Aust H.J., Schulz B. Fungi from marine sponges: diversity, biological activity and secondary metabolites // Mycological research.2000. Vol. 104. pp. 1354-1365.

109. Hughes G.C. Geographical distribution of the higher marine fungi. // Veroff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1974. S. 5. S. 419-441.

110. Hughes G.C. Studies of fungi in oceans and estuaries since 1961. I. Lignicolous, caulicolous and foliicolous species. // Oceanogr. Mar. Biol. Annu. Rev. 1975. V. 13. P. 69-180.

111. Iwatsu T., Udagawa S.-I., Hatai K. Scytalidium infestans sp. nov., isolated from striped jack (Pseudocaranx dentex) as a causal agent of systemic mycosis //Trans. Mycol. Soc. Jpn. 1990. V. 31. P. 389-397.

112. Jones E.B.G. The forgotten fungi: facultative marine fungi / Abstracts of the 8th International Marine and Freshwater Mycology Symposium. 7-12 July 2001. Hurghada. Egypt. 2001. P. 13.

113. Johnson T.W. . Aquatic fungi of Iceland: Introduction and preliminary account //J. Elisha Mitchell Sri. Soc. 1968. V. 84. P. 179-183.

114. Jennings D.H. Fungal growth in the sea. In: The Biology of Marine Fungi (ed. S.T. Moss) Cambridge University Press. London. 1986. P. 1-10.

115. Jennings D.H. Some aspects of the physiology and biochemistry of marine fungi// Biological Review 1983. V. 58. P. 423-459.

116. Johnson R.G. Paniculate matter at the sediment-water interface in coastal environments//J. Mar. Res. 1974. V. 32. P. 313-330.

117. Johnson T.W., Sparrow F.K. Fungi in Oceans and Estuaries. N.Y.: Weinheim. 1961. 668 p.

118. Kirk P.M., Cannon P.F., David J.C., Stalpers J.A., Dictionary of the fungi: 9th ed. Egham, Surrey, UK: CABI Bioscience. 2001. 656 p.

119. Kinne O. (ed.). Diseases of marine animals. Biologische Anstalt Helgoland. Hamburg. 1983. Vol. 11.

120. Khoa L., Hatai K., Aoki T. Fusarium incarnatum isolated from black tiger shrimp, Penaeus monodon Fabricius, with black gill disease cultured in Vietnam// J. FishDis. 2004. № 27. P. 507-515.

121. Khoa L.V., Hatai K., Yuasa A., Sawada K. Morphology and molecular phylogeny of Fusarium solani isolated from kuruma prawn Penaeus japonicus

with black gills//Fish Pathol. 2005. V. 40. P. 103-109.

122. Kohlmeyer J. Higher fungi as parasites and symbionts of algae. // Veröff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1974. S. 5. S. 339-356.

123. Kohlmeyer J. Beobachtungen über mediterrane Meerespilze sowie das Vorkommen von marinen Moderfaule-Erregern in Aquariumszuchten holzzerstorender Meerestiere//Ber. Dtsch. Bot. Ges. 1958. V. 71. P. 98-116.

124. Kohlmeyer J. Halophile Pilze von den Ufern Frankreichs // Nova Hedwigia. 1962a. V. 4. P. 389-420.

125. Kohlmeyer J. Uber Pleospora gandefroyi Patouillard // Willdenowia. 1962b. V.3.P. 315-324.

126. Kohlmeyer J. Intertidal and phycophilous fungi from Tenerife (Canary Islands) // Trans. Br. Mycol. Soc. 1967. V. 50. P. 137 - 147.

127. Kohlmeyer J. Ecological notes on fungi in mangrove forests // Trans. Br. Mycol. Soc. 1969. V. 53. P. 237-250.

128. Kohlmeyer J. The role of marine fungi in the penetration of calcareous substances // Am. Zool. 1969. V. 9. P. 741-746.

129. Kohlmeyer J. Ein neuer Ascomycet auf Hydrozoen im Südatlantik // Ber. Dtsch. Bot. Ges. 1970. B. 83. S. 505-509.

130. Kohlmeyer J. Marine fungi deteriorating chitin of hydrozoa and keratin-like annelid tubes//Mar. Biol. 1972. V. 12. P. 277-284.

131. Kohlmeyer J., Becker G, Kampf W. D. Versuche zur Kenntnis der Ernährung der Holzbohrassel Limnoria tripunctata und ihre Beziehung zu holzzerstorenden Pilzen // Z. Angew. Zool. 1959. V. 46. P. 457-89.

132. Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. On the life history of marine Ascomycetes: Halosphaeria mediosetigera and H. circumvestita //Nova Fledwigia. 1966. V. 12. P. 189-202.

133. Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Bermuda marine fungi // Trans. Br. Mycol. Soc. 1977. V. 68. P. 207-219.

134. Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Biology and geographical distribution of Spathulospora species // Mycologia 1975. V. 67. 629-637.

135. Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Marine mycology. The Higher Fungi. N.Y. 1979. 690 p.

136. Kohlmeyer J., Spatafora J. W., Volkmann-Kohlmeyer B. Lulworthiales, a new order of marine Ascomycota. // Mycologia. 2000. V. 92. P. 453-458.

137. Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Koralionastetaceae fam. nov. (Ascomycetes) from coral rock//Mycologia. 1987. V. 79 P. 764-778.

138. Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Halographis (Opegraphales), a new endolithic lichenoid from coral and snails. // Canadian J. Bot. V. 66. 1988. P. 1138-1141.

139. Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Hawaiian marine fungi, including two new genera of Ascomycotina // Mycol. Res. 1989. V. 92. P. 410421.

140. Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. A new Lulworthia (Ascomycotina) from corals //Mycologia. 1989a. V. 81 P. 289-292.

141. Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. New species of Koralionastes (Ascomycota) from the Caribbean and Australia// Canadian Journal of Botany. 1990. Vol.68. P. 1554-1559.

142. Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. Two Ascomycotina from coral reefs in the Caribbean and Australia // Cryptogamic Botany. 1992. V. 2. P. 367374.

143. Kolliker A. On the frequent occurence of vegetable parasites in the hard tissues of the lower animals // Q. J. Microasc. Sci. 1860. V. 8. P. 171-187.

144. Kolliker A. On the frequentocurence of vegetable parasites in the hard stucture of animals // Proc. Roy. Soc. London. 1860a. P. 95-99.

145. Kolliker A. Uber das ausgebreitete Vorkommen von pflanzlichen Parasiten in den Hartgebilden niederer Thiere // Z. Wiss. Zool. 1860 b. V. 10. P. 215-232.

146. Kurata O., Munchan C., Wada S., Hatai K., Miyoshi Y., Fukuda Y. Novel Exophiala infection involving ulcerative skin lesions in Japanese flounder

Pamlichthys olivaceus II Fish Pathol. 2008. V. 43. P. 35-44.

147. Lorenz R., Molitoris H.P. Cultivation of fungi under simulated deep-sea conditions// Mycological Research. 1997. V. 101. P. 1355-1365.

148. Lane C.E. The teredo // Sci. Am. 1961. V. 204. P. 132-142.

149. Langdon J.S., McDonald W.L. Cranial Exophiala pisciphila infection in Salmo salar in Australia // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. 1987. № 7. P. 35-37.

150. Masuma R., Yamaguchi Y., Noumi M., Omura S., Namikoshi M. Effect of sea water on hyphal growth and antimicrobial metabolite production in marine fungi //Mycoscience. 2001. V. 42 P. 455-459.

151. Matuo T., Snyder W.C. Use of morphology and mating populations in the identification of formae specials in Fusarium solani // Phytopathology. 1973. V. 63. P. 562-565.

152. McGinnis M.R., Ajello L. A new species of Exophiala isolated from channel catfish //Mycologia. 1974. V. 66. P. 518-520.

153. McGladdery S.E., Bower S.M., Getchell R.G. Diseases and Parasites of Scallops. 11.3. Mycota // In.: Scallop: Biology, Ecology and Aquaculture. (Ed. S.E. Shumway and G.J. Parsons). Developments in Aquaculture and Fisheries Science. Vol. 35. Elsevier Science Publishers. 2006. P. 612-613.

154. Mueller G.M., Schmit J.P. Fungal biodiversity: what do we know? What can we predict? // Biodivers. Conserv. 2007. V. 16. P. 1-5.

155. Meyers S.P., Feder W.A., Tsue K.M. Nutritional relationships among certain filamentous fungi and a manne nematode // Science. 1963. V. 141. P. 520522.

156. Meyers S.P., Feder W.A., Tsue K.M. Studies of relationships among nematodes and filamentous fungi in the marine environment // Dev. Ind. Microbiol. 1964. V. 5. P. 354-364.

157. Meyers S.P, Hopper B.E. Attraction of the marine nematode, Metoncholaimus sp., to fungal substrates // Bull. Mar. Sci. 1966. V. 16. P. 142150.

158. Meyers S.P, Hopper B.E. Studies on manne fungal nematode

associations and plant degradation // I-Ielgol. Wiss. Meeresunfers. 1967. V. 15. P. 270-281.

159. Munchan C., Hatai K., Takagi S., Yamashita A. In vitro and in vivo effectiveness of itraconazole against Ochroconis humicola isolated from fish // Aquacul. Sci. 2009. V. 57. P. 399-404.

160. Munchan C., Kurata O., Hatai K., Hashiba N., Nakaoka N., Kawakami H. Mass mortality of young striped jack Pseudocaranx dentex caused by a fungus Ochroconis humicola II Fish Pathol. 2006. V. 41. P. 179-182.

161. Namikoshi M., Akano K., Kobayashi II., Koike Y., Kitazawa A., Rondonuwu A.B., Pratasik S.B. Distribution of marine filamentous fungi associated with marine sponges in coral reefs of Palau and Bunaken Island, Indonesia//Journal of Tokyo University of Fisheries. 2002. V. 88. P. 15-20.

162. Newell S.Y. Established and potencial impact of eucariotic mycelial decomposers in marine / terrestrial ecotones // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1996. V. 200. P. 187-206.

163. Newell S. Y, Fell J. W. Preliminary experimentation in the development of natuial food analogues for culture of detritivorous shrimp // Univ. Miami Sea Grant. Tech. Bull. 1975. V. 30. Pt. 1-9. P. 1-115.

164. O'Donnell K., Gray L.E. Phylogenetic relationships of the soybean sudden death syndrome pathogen Fusarium solani f. sp. phaseoli from rDNA sequence data and PCR primer for its identification // Mycologia. 1995. V. 90. P. 465-493.

165. O'Donnell K. Molecular phylogeny of the Nectria haematococca -Fusarium solani species complex // Mycologia. 2000. V. 95. P. 919-938.

166. Onofri S., Selbmann S., Zuconni L., Pagano S. Antarctic microfungi as models for exobiology// Planetary and Space Science. 2004. V. 52. P. 229-237.

167. Otis E. J., Wolke R.E. Infection of Exophiala salmonis in Atlantic salmon {Salmo salar L.) // J. Wildl. Dis. 1985. V. 21. P. 61-64.

168. Pawar V.H., Thirumalachar M.J. Studies on halophilic soil fungi from Bombay // Nova Hedwigia. 1966. V. 12. P. 497-508.

169. Pitt J.I. The genus Penicillium and its teleomorphic states Eupenicillium and Talaromyces. London, N.Y., Toronto, Sydney, San Francisco, 1979. 634 p.

170. Pivkin M. V. Filamentous fungi associated with holothurians from the Sea of Japan, off the Primorye coast of Russia // Bioligical Bulletin. 2000. V. 198. P. 101-109.

171. POMRAC Technical Report No 4. Regional overview on river and direct inputs of contaminants into the marine and coastal environment in NOWPAP region. POMRAC. Vladivostok. Russian Federation. 2006. 64 p.

172. POMRAC Technical Report No 4. Regional overview on river and direct inputs of contaminants into the marine and coastal environment in NOWPAP region. With Special Focus on the Land Based Sources of Pollution. POMRAC. Vladivostok. Russian Federation. 2009. 104 p.

173. Ramirez C. Manual and atlas of the Penicillia. N.Y., Amsterdam. 1982. P. 874.

174. Ross A.J., Yasutake W.T. Scolecobasidium humicola, a fungal pathogen offish // J. Fish Res. Board. Can. 1973. V. 30. P. 994-995.

175. Richard R.H., Holliman A., Helgason S. Exophiala salmonis infection in Atlantic salmon Salmo salar L. // J. Fish. Dis. 1978. V. 1. P. 357-368.

176. Rhoobunjongde W., Hatai K., Wada S., Kubota S.S. Fusarium moniliforme (Sheldon) isolated from gills of kuruma prawn Penaeus japonicus (Bate) with black gill disease //Nippon Suisan Gakkaishi. 1991. V. 57. P. 629-635.

177. Raghukumar C., D'Souza T.M., Thorn R.G., Reddy A. Lignin modifying enzymes of Flavodon flavus, a basidiomycete isolated from a coastal marine environment // Applied and Environmental Microbiology. 1999. V. 65. P. 2100-2111.

178. Raghukumar C., Raghukumar S., Chinnaraj A., Chandramohan D., D'Souza T.M., Reddy C.A. Laccase and other lignocellulose modifying enzymes of marine fungi isolated from the coast of India//Botanica Marina. 1994. V. 37. P. 515-523.

179. Raghukumar C., Raghukumar S., Sharma S., Chandramohan D. Endolithic fungi from deep-sea calcareous substrata: isolation and laboratory studies. In: Oceanography of the Indian Ocean. (Ed. B.N. Desai). Oxford IBH Publ., New Delhi. 1992. P. 3-9.

180. Raghukumar C., Muraleedharan U., Gaud V.R., Miishra R. Xylanases of marine fungi of potential use for biobleaching of paper pulp // J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2004. V. 31. № 9. P. 433-441.

181. Raghukumar C., Lande V. Shell disease of rock oyster Crassostrea cucullata //Diseases of Aquatic Organisms. 1988. V. 4. P. 77-81.

182. Raghukumar S. The role of fungi in marine detrital processes. In: Marine Microbiology: Facets and Opportunities. (Ed. N. Ramaiah). National Institute of Oceanography. Goa. 2004.

183. Ritchie D. A fungus flora of the sea // Science. 1954. V. 120. P. 578579.

184. Sallenave-Namont C., Pouchus Y.F., Robiou du Pont T., Lassus P., Verbist J.F. Toxigenic saprophytic fungi in marine shellfish farming areas// Mycopathol. 2000. Vol.149, pp.21-25.

185. Slattery M. Fungal pathogenesis of the sea fan Gorgonia ventalina: direct and indirect consequences // Chemoecology. 1999. Vol. 9. P. 97-104.

186. Schaumann K. , Priebe K. Ochroconis humicola causing muscular black spot disease of Atlantic salmon (Salmo salar) // Can. J. Bot. 1994. V. 72. P. 1629-1634.

187. Schaumann K. Marine höhere Pilze (Ascomycetes und Fungi imperfecti) aus dem Weser-Ästuar // Veroeff. Inst. Meeresforsch. Bremerhaven. 1968. S. U.S. 93-117.

188. Schaumann K. Über marine höhere Pilze von Holzsubstraten der Nordsee-Insel Helgoland //Ber. Dtsch. Bot. Ges. 1969. B. 82. S. 307-327.

189. Schaumann K. Vergleich der Pilzbesiedlung treibender und ortsfester Holzsubstrate im Meer bei Helgoland (Deutsche Bucht) // Veröff. Inst. Meeresforsch. Bremerhaven 1975a. S. 15. S. 13-26.

190. Schaumann K. Ökologische Untersuchungen über höhere Pilze im Meer und Brackwasser der Deutschen Bucht unter besonderer Berücksichtigung der holzbesiedelnden Arten. // Veröff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1975 b. S. 15. S. 79-182.

191. Snyder W.C., Hansen H.N. The species concept in Fusarium with reference to section Martiella // Am. J. Bot. 1941. V. 28. P.738-742.

192. Schuster R. Hornmilben (Oribatei) als Bewohner des marinen Literals // Veröff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1966. S. 2. S. 319-327.

193. Shearer C.A., Descals E., Kohlmeyer B., Kohlmeyer J., Marvanova L., Padgett D., Porter D., Raja LI.A., Schmit J.P., Thorton H.A., Voglymayr H. Fungal biodiversity in aquatic habitats // Biodivers. Conserv. 2007. V. 16 P. 49-67.

194. Stoeck T., Taylor G.T., Epstein S. Novel eukaryotes from the permanently anoxic Cariaco Basin (Caribbean Sea) // Applied and Environmental Microbiology. 2003. V. 69. P. 656-663.

195. Spatafora J.W., Volkmann-Kohlmeyer B., Kohlmeyer J. Independent terrestrial origins of the Halosphaeriales (marine Ascomycota) // Am. J. Bot. 1998. V. 85 P. 1569-1580.

196. Steele C.W. Fungus population in marine waters and coastal sands of the Hawaiian, Line, and Phoenix islands // Pacific Science. V. 21. 1967. P. 315331.

197. Steiman R., Ford L., Ducros V., Lafond J.L., Guiraud. P. First survey of fungi in hypersaline soil and water of Mono Lake area (California) // Antonie van Leeuwenhoek. 2004. V. 85. P. 69-83.

198. Sridhar K.R. Diversity of fungi in mangrove ecosystems. In: Microbial Diversity: Current Perspectives and Potential Applications (Eds. T. Satyanarayana and B.N. Johri) I.K. International Pvt. Ltd., New Delhi. 2005. P. 129-147.

199. Sterflinger K., Hain M., Scholz J., Wasson K. Fungal infections of a colonial marine invertebrate: diversity and morphological consequences// Facies № 45. Erlangen. 2001. P. 31-38.

200. Suga H., Ilasegawa T., Mitsui H., Kageyama K., Hyakumachi M. Phylogenetic analysis of the phytopathogenic fungus Fusarium solani based on the rDNA-ITS region // My col. Res. 2000. V. 104. P. 1175-1183.

201. Strongman D.B., Morrison C.M., McClelland G. Lesions in the musculature of captive American plaice Hippoglossoides platessoides caused by the fungus Honnoconis resinae (Deuteromycetes) // Dis. Aquat. Org. 1997. V.28. P. 107-113.

202. Tresner H.D., Hayes J.A. Sodium chloride tolerance of terrestrial fungi // Appl. Microbiol. 1971. V. 22 (2). P. 210-213.

203. Tubaki K. Marine fungi from Japan. Lignicolous T. // Trans. Mycol. Soc. Jap. 1966. V. 7. P. 73-87.

204. Tubaki K. Studies on the Japanese marine fungi. Lignicolous group // Annu. Rep. Inst. Ferment. Osaka. 1969. №4. P. 12-41.

205. Turner R.D. Identification of marine wood-boring mollusks // Marine Borers, Fungi and Fouling Organisms of Wood (Eds. E.B.G. Jones, S.K. Eitringham) // Org. Econ. Coop. Dev. P. 1971. P. 17-64.

206. Usheva L. N., Odinsova N. A. Hyperplastic growth of mucous cells in mantle of the mussel Modiolus kurilensis from a heavily polluted area of Amursky Bay, Sea of Japan // Dis. Aquat. Org. 1998. V. 33, N. 3. P.235-238.

207. Usheva L. N., Odinsova N. A. Tumor-like lesions in the mantle of the mussel Modiolus difficilis from the Sea of Japan // Dis. Aquat. Org. 1999. V. 35. P. 63 - 69.

208. Van den Hoek C. Phytogeographic provinces along the coasts of the northern Atlantic Ocean //Phycologia. 1975. V. 14. P. 317-330.

209. Vishwakiran Y., Thakur N.L., Raghukumar S., Yennawar P.L., Anil A. C. Spatial and Temporal Distribution of Fungi and Wood-Borers in the Coastal Tropical Waters of Goa, India // Botanica Marina. 2001. V. 44. P. 47-56.

210. Vitellaro-Zuccarello L. Infrastructure of the byssal apparatus of Mytilus galloprovincialis associated fungal hyphae // Mar. Biol. 1973. V. 22. P. 225-230.

211. Wada S., Hanjavanit C., Kurata O., Hatai K. Ochroconis humicola infection in red sea bream Pagrus major and marble rockfish Sebastiscus marmoratus cultured in Japan // Fish. Sei. 2005. V. 71. P. 682-684.

212. Wada S., Nakamura K., Hatai K. First case of Ochroconis humicola infection in marine cultured fish in Japan // Fish. Pathol. 1995. V. 30. P. 125-126.

213. Wollenweber H.W, Reinking O.A, Die Fusarien, ihre Beschreibung, Schadwirkung und Bekämpfung. Paul Pare. Berlin. 1935.