Клеточные механизмы постнатального развития мозгового вещества надпочечника тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.23, кандидат биологических наук Кемоклидзе, Константин Гербертович

  • Кемоклидзе, Константин Гербертович
  • кандидат биологических науккандидат биологических наук
  • 1999, ЯрославльЯрославль
  • Специальность ВАК РФ14.00.23
  • Количество страниц 117
Кемоклидзе, Константин Гербертович. Клеточные механизмы постнатального развития мозгового вещества надпочечника: дис. кандидат биологических наук: 14.00.23 - Гистология, цитология, эмбриология. Ярославль. 1999. 117 с.

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Кемоклидзе, Константин Гербертович

I. ВВЕДЕНИЕ.

II. ЭМБРИОНАЛЬНОЕ И ПОСТНАТАЛЬНОЕ РАЗВИТИЕ МОЗГОВОГО ВЕЩЕСТВА НАДПОЧЕЧНИКА обзор литературы).

II. 1. Современные представления о структуре и функциях мозгового вещества надпочечника.

II.2. Цитологические механизмы роста мозгового вещества надпочечника.

III. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

IV. КОЛИЧЕСТВЕННАЯ ДИНАМИКА РОСТА НАДПОЧЕЧНИКА КРЫСЫ.

IV.l. Масса тела животного.

IV.2. Объем надпочечника и его коркового вещества.

IV.3. Объем мозгового вещества.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Гистология, цитология, эмбриология», 14.00.23 шифр ВАК

Заключение диссертации по теме «Гистология, цитология, эмбриология», Кемоклидзе, Константин Гербертович

VIII. ВЫВОДЫ

1. Рост мозгового вещества надпочечника крыс в первые 7 мес. постнатальной жизни определяется преимущественным увеличением абсолютного и относительного объемов хромаффинной ткани (главным образом за счет субпопуляции эпинефроцитов), а на более поздние сроки - соответствующих объемов кровеносных сосудов. Закономерной динамики объемных фракций соединительнотканной стромы и нейроцитов на протяжении постнатального развития не выявлено.

2. Хромаффиноциты могут быть классифицированы, как растущая популяция, состоящая из обратимых постмитотических диплоидных клеток.

3. Ведущим цитологическим механизмом онтогенетического роста популяции хромаффинных клеток является их митотическое деление, обеспечивающее около 80% суммарного прироста объема хромаффинной ткани. Митотическая активность железистых клеток наиболее выражена в первые 2 недели после рождения, после снижения к 30 дню она стабилизируется на достаточно высоком уровне (суточный пролиферативный пул = 0,3%) в течение всей последующей жизни животного. Герминативные зоны в MBH отсутствуют.

4. Выраженность процессов гиперплазии эпинефроцитов и но-рэпинефроцитов различна в разные возрастные периоды. Наибольший прирост процентного содержания и количества норэпинефроци-тов происходит в период 12-30 сут., эпинефроцитов - у взрослых и старых (15-30 мес.) крыс.

5. Клеточный состав железистой паренхимы равных по объему наружной и внутренней зон мозгового вещества неодинаков на протяжении жизни животного: к 30 дню процентное содержание норэпи-нефроцитов в наружных отделах MBH становится существенно выше, чем во внутренних, к старости (30 мес.) соотношение эпинефроцитов и норэпинефроцитов в обех зонах у большинства животных постепенно выравнивается.

6. Внемитотическая гипертрофия железистых клеток развивается только во время полового созревания и в раннем репродуктивном периоде (первые 7 мес. постнатальной жизни) асинхронно для разных субпопуляций (12-30 сут. - для норэпинефроцитов и 5-7 мес. -для эпинефроцитов).

7. Количественный вклад клеточного размножения и гипертрофии в онтогенетический рост субпопуляций эпинефроцитов и норэпинефроцитов (в расчете на весь постнатальный онтогенез) одинаков.

8. Временная динамика постнатального развития мозгового вещества надпочечника крыс имеет закономерный фазовый характер и включает: период усиленной пролиферации и фенотипической диф-ференцировки хромаффиноцитов (1-15 сут.), период преимущественного развития субпопуляции норэпинефроцитов (15-30 сут.), период стабилизации основных количественных параметров MBH (1-5 мес.), период преимущественого развития субпопуляции эпинефроцитов (515 мес.) и период зрелости MBH (15-30 мес.).

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Кемоклидзе, Константин Гербертович, 1999 год

1. Автандилов Г.Г., Яблучанский Н.И., Губенко В.Г. Системная стереометрия в изучении патологического процесса,- М.: Медицина, 1981.

2. Безруков В.В., Шапошников В.М. Морфофункциональные особенности реактивности надпочечников крыс разного возраста // Арх.анат., 1987,- Т.93,- N.II.- С.76-78.

3. Белушкина H.H., Хасан Хамад А., Северин С.Е. Молекулярные основы апоптоза // Вопросы биол.химии, 1998. В.4,- С. 15-24.

4. Бродский В.Я., Урываева И.В. Клеточная полиплоидия. Пролиферация и дифференцировка. М.: Наука, 1981.

5. Вейбель Э.Р. Морфометрия легких человека.- М.: Медицина,1970.

6. Гансбургский А.Н., Павлов A.B. Цитологические механизмы постнатального роста эндотелия аорты // Онтогенез. 1994. Т.25. В.5. - С.33-39.

7. Голуб Д.М. Развитие надпочечных желез и их иннервации у человека и некоторых животных // Дисс. докт. мед. наук,- Минск: Изд. АН БССР, 1936.

8. Гордиенко В.М., Козырицкий В.Г. Ультраструктура желез эндокринной системы. Киев: Здоров'я, 1978.

9. Делоне Г.В., Урываева И.В., Корецкий В.Ф., Бродский В.Я. Анализ постнатального роста печени мыши на основе учета числа ге-патоцитов, их массы и плоидности // Онтогенез, 1987,- Т.18. В.З.1. С.304-307.

10. Доброхотов В.Н., Никанорова Р.И. Суточная периодичность митотического деления клеток в надпочечниках белых крыс // Бюлл. эксп. биол. мед., 1962,- Т. 54,- В.9,- С.91-96.

11. Епифанова О.И., Полуновский В.А., Терских В.В. Регуля-торные механизмы пролиферации клеток. Общие проблемы физико-химической биологии // Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР, 1988. Т.10,-С.1-164.

12. Зеленина Н.В., Марьянович А.Т., Цыган В.Н. Гуморальная регуляция апоптоза // Программированная клеточная гибель. С-Пб.: Наука, 1996. - С.89-103.

13. Катинас Г.С., Быков B.JI. Метод естественной периодизации прцессов //Арх.анат., 1976,- Т.71.- В.4.- С.98-103.

14. Кацнелльсон З.С. Некоторые итоги исследований по развитию и гистофизиологии надпочечника млекопитающих // Сборник работ Ленинградского ветеринарного института. Л., 1967. -Т.29,-С.172-187.

15. Кацнельсон З.С.,Стабровский Е.М. Гистология и биохимия хромаффинной ткани надпочечников,- Л.: Медицина, 1975.

16. Копаев Ю.Н. Международная гистологическая номенклатура. Киев: Вища школа, 1980.

17. Павлов A.B. Цитологические механизмы роста и регенерации околощитовидных желез // Онтогенез, 1988,- Т. 19,- В.4,- С.394-399.

18. Павлов A.B. Пролиферативная и функциональная активность паратироцитов м парафолликулярных (С-) клеток в регенерирующих околощитовидных и щитовидной железах // Дисс. докт. мед. наук. Ярославль: ЯГМИ, 1990.

19. Павлов A.B., Соколова М.М., Кемоклидзе К.Г., Миро Т.Л. Клеточная гипертрофия и соматическая полиплоидия в железах внутренней секреции // Морфология, 1993,- Т.105,- В.9-10,- С.125.

20. Пийпер Э.О. К вопросу о росте и размножении клеток в надпочечнике человека // Арх. анат., 1957,- Т.34,- В.4,- С.54-63.

21. Подгорная Г.Я. Морфологические и гистохимические исследования мозгового вещества надпочечников у млекопитающих // Арх. анат., 1967,- Т.52,- N.2.- С.22-30.

22. Приймак Э.Х. Электронная микроскопия тонких механизмов выделения катехоламинов при стимуляции секреторного процесса // ДАН СССР, 1965а,- Т.162,- В.З.- С.678-680.

23. Приймак Э.Х. Субмикроскопическая структура хромаффин-ных клеток надпочечника крыс в фазе выделения секрета // ДАН СССР, 19656,- Т.162,- В.5,- С.1171-1174.

24. Приймак Э.Х. О некоторых формах секреции катехоламинов в межклеточные и субэндотелиальные пространства // Цитология, 1967,- Т.9,- В.2,- С.169-174.

25. Пужака Х.Я, Клеточная дифференцировка в медулярной части надпочечников белых крыс // Морфологические и химические изменения в процессе развития клетки. Рига, 1967.- С. 65-69.

26. Романов Ю.А., Кетлинский С.А., Антохин А.И., Окулов В.Б. Кейлоны и регуляция деления клеток.- М.: Медицина, 1984.

27. Романова Л.К. Регуляция восстановительных процессов. М.: Изд. МГУ, 1984.

28. Рябинина З.А., Бенюш В.А. Полиплоидизация и гипертрофия клеток в процессах роста и восстановления.- М.: Медицина, 1973.

29. Саркисов Д.С. Очерки по структурным основам гомеостаза,-М.: Медицина, 1977.

30. Сапин М.Р. Некоторые спорные вопросы анатомии внутри-органного венозного русла надпочечника человека //Тр. I конференции молодых научных сотрудников Московской морфологическойлаборатории M., 1959,- С.107-109.

31. Семашко M.И. К вопросу о выявлении норадреналин- и ад-реналинсекретирующих клеток мозгового вещества надпочечников лабораторных животных и человека // Арх. анат.,1977,- Т.73,- В.7.-С.37-41.

32. Смиттен Н.А. Симпатоадреналовая система в фило- и онтогенезе позвоночных,- М.: Наука, 1972.

33. Сухова З.И., Чечулин Ю.С., Электронномикроскопическое исследование элементов нервной ткани мозгового вещества надпочечников собак // Цитология, 1976,- Т.18,- В.7,- С.807-810.

34. Трахтенберг И.М., Сова Р.Е., Штефель В.О., Оникиенко Ф.А. Показатели нормы лабораторных животных в токсикологическом эксперименте. М.: Медицина, 1978.

35. Шапошников В.В. Морфофункциональные особенности секреторных клеток аденогипофиза и надпочечных желез при старении // Арх. анат., 1986,- Т.90,- В.5,- С.71-77.

36. Anderson D.J., Axel R. A bipotential neuroendocrine precursor whose choice of cell fate is determined by NGF and glucocorticoids // Cell., 1986,- Y.47.- N.6.- P.1079-1090.

37. Anderson D.J. Molecular control of cell fate in the neural crest: the sympathoadrenal lineage // Annu. Rev. Neurosci., 1993,- V. 16,-P.129-158.

38. Backman S.B., Sequeira-Martinho H., Henry J.L. Adrenal versus nonadrenal sympathetic preganglionic neurones in the lower thoracic intermediolateral nucleus of the cat: physiological properties //

39. Can. J. Physiol. Pharmacol., 1990.-N.-11.-V.68.-P. 1447-1456.

40. Bänder A. Über zwei verschiedene chromaffine Zelltypenin Nebennierenmark und ihre Bezielung zum Adrenalin- und Arterenolgehalt // Verh. Anat. Ges. Jena, 1950,- V.48.- P. 172-176.

41. Banerjee D.K. Ornberg R.L. Youdim M.B. Heldman E. Pollard H.B. Endothelial cells from bovine adrenal medulla develop capillary-like growth patterns in culture // Proc. Nat. Acad. Sei. USA, 1985,- V.- 82.-N.- 14,- P.4702-4706.

42. Benedetti A. Mitotic activity of adrenal medullary cells in the mouse at different ages and following unilateral adrenalectomy Experientia, 1976,- V. 32,- P.108-109.

43. Boarder M.R., Marriott D.B. Characterization of endothelin-1 stimulation of catecholamine release from adrenal chromaffin cells // J. Cardiovasc. Pharmacol., 1989,- V.13.- N.5.- P.223-224.

44. Bornstein S.R., Ehrhart-Bornstein M., Scherbaum W.A. Morphological and functional studies of the paracrine interaction between cortex and medulla in the adrenal gland // Microsc. Res. Tech., 1997.-V.36.- N.6.- P.520-533.

45. Breidert M., Bottner A., Moller S., Herberg L., Bornstein S. Apoptosis in the adrenal gland of non-obese diabetic (NOD) mice // Exp. Clin. Endocrinol. Diabetes., 1998,-V.106,-N.6.-P.478-483.

46. Brodsky V.Y. Uryvaeva I.V. Genome multiplication in growth and development.- Cambrige: Univ.press.- 1985.

47. Brodsky V.Y., Tsirekidze N.N., Arefyeva A.M. Mitotic-cyclic and cycle-independent growth of cardiomiocytes // J. Mol. and Cell Cardiol., 1985,- V.17.- P.445-455.

48. Brodsky V.Y. Cell ploidy in the mammalian heart // Development and regenerative potential of cardiac muscle.- New York: Harwood Acad.Press, 1991,- P.253-292.

49. Cameron I.L. Cell proliferation and renewal in the mammalianbody 11 Cellular and molecular renewal in the mammalian body.- New York London: Acad. Press.- 1971,- P.45-85.

50. Chen-Pan C., Yamamoto Y., Yto Y., Pan I.J., Hayashi Y. A new type of cell death, the protruded type, observed in the adrenal gland of normal rats // J. Vet. Med. Sci., 1996,- V.58.- N.4.- P.373-376.

51. Colombo-Benkmann M., Klimaschewski L., Heym C. Immuno-histochemical heterogeneity of nerve cells in the human adrenal gland with special reference to substance P // J. Histochem. Cytochem., 1996,-v. 44. N.4.-P. 369-375.

52. Coupland R.E. The natural history of chromaffin cell.- London: Longmans, 1965a.

53. Coupland R.E. Electron microscopic observation on the structure of the rat adrenal medulla. I. The ultrastructure and organization of chromaffin cells in the normal medulla // J. Anatom., 19656,- V.99.-N.2.- P.231-154.

54. Coupland R.E. Electron microscopic observation on the structure of the rat adrenal medulla. II. Normal innervation //J. Anat., 1965b.- V.99.- N.2.- P.255-272.

55. Coupland R.E. Corticosterone and metilation of noradrenaline by extra-adrenal chromafin tissue // J. Endocr.,1968.- V.41.- P.487-490.

56. Coupland R.E. Ultrastrucrural features of the mammalian adrenal medulla // In: Motta P.M. Ultrastructure of endocrin tissues.-Boston: Nijhoff, 1984,- P.168-188.

57. Coupland R.E. The natural history of the chromaffin cell -twenty-five years on the beginning // Arch. Histol. Cytol., 1989,- V.52.-P.331-341.

58. Coupland R.E., Pyper A.S., Hopwood D., A method for differentiating between adrenaline and noradrenaline storing cell in the lihgt and electron microscope // Nature (London), 1964,- V.201.- P.1240-1242.

59. Coupland R.E., MacDougall J.B. Adrenaline formation in noradrenaline storing cell in vitro induced by corticosterone // J. Endocr., 1966,- V.36.- P. 317-324.

60. Coupland R.E., Weakley B.S. Developing chromaffin tissue in the rabbit: an electron microscopic study // J. Anat., 1968.- V.102.- N.3.-P.425-455.

61. Coupland R.E., Kobayashi S., Tomlison A. On the presence of small granule chromaffin (SGC) cells in the rodent adrenal medulla // J. Anat., 1977,- V.124.- P.488-489.

62. Coupland R.E., Tomlison A., Crowe J., Brindley D.N. Effects of hypophysectomy and metyrapone on the catecholamine content and volumes of adrenaline and noradrenaline storing cell in the rat adrenal medulla//J. Endocr., 1984,-V.101.-P.345-352.

63. Coupland R.E., Tomlinson A. The development and maturation of adrenal medullary chromaffin cells of the rat in vivo : a descriptive and quantitative study // Int. J. Dev. Neurosci. ,1989,- V.7.- N.5.- P.419-438.

64. DeRobertis E.,Sabatini D.D. Submicroscopic analysis of the secretory process in the adrenal medulla // Fed. Proc. Suppl., I960,- V.5.-P.70-78.

65. Diderholm H., Helimann B. The cell renewal in the cell adrenals studied with tritiated thymidine // Acta Patol. Microbiol. Scandinav., I960,- V.49.- P.82-88.

66. Donaldson J.C. The relative volumes of the cortex and medulla of adrenal gland in the albino rat // Am. J .Anat., 1919,- V.25.- N.3.-P.291-298.

67. Doupe A.J., Landis S.C., Patterson P.H. Environmental influences in the development of neural crest derivatives: glucocorticoids, growth factors, and chromaffin cell plasticity // J. Neurosci., 1985,- V.5 .-N.8.-P. 2119-2142.

68. Elfvin L.G. The development of the secretory granules in the ratadrenal medulla // J. Ultrastruct. Res, 1967,- V.17.- P.45-62.

69. Ellison J.P. Clark M.G. Retrograde axonal transport of horseradish peroxidase in peripheral autonomic nerves // J. Comp. Neurol., 1975,- V.161.-N.1.-P.103-113.

70. El-Maghraby M., Lever J.D. Typification and differenciation of medulläre cells in the developing rat adrenal. A histochemical and electron microscopic study // J. Anat., 1980,- V.131.- P.- 103-120.

71. El-Maghraby M.Z. Differentiation of adreno-chromaffin cells in the newborn rat, as detected by formaldehyde-induced fluorescence, compared with the chromaffin reaction // Acta Anat. (Basel), 1988,- V. 131,- N.2.- P.103-107.

72. Eränkö O. Histohemical evidens of the presence of acidphos-photase-positive and negative cell islets in the adrenal medulla of the rat //Nature, 1951,- V.168.-N. 4267,- P. 250-251.

73. Eränkö O. On the histochemistry of the adrenal medulla of the rat, with special reference to acid phosphatase // Acta Anat., 1952.-V.16.-N.17.-P.1-60.

74. Eränkö O. Distribution of adrenalin and noradrenalin in the adrenal medulla // Nature, 1955,- V.175.- P.88-89.

75. Garrido M.R., Israel A. Endothelin ETA receptors subtype mediates phosphoinositide hydrolysis in adrenal medulla // Arch. Physiol. Biochem., 1997.-V.105,- N.5.- P.467-72.

76. Gorgas K., Böck P. Morphology and histochemistry of the adrenal medulla. I. Various types of primary catecholamine-storing cells in the mouse adrenal medulla // Histochemistry, 1976,- V.50.- N.I.- P.17-31.

77. Gorne R.C., Pfister C., Rathsack R., Oehme P. Zur zellularen Verteilung von Substanz P im Nebennierenmark der Ratte // Biomed. Biochim. Acta, 1984,- V.43.-N.l.-P.135-137.

78. Grothe C., Hofmann H.D., Verhofstad A.A., Unsicker K. Nervegrowth factor and dexamethasone specify the catecholaminergic phenotype of cultured rat chromaffin cells: dependence on developmental stage. // Brain Res., 1985,- V.353.- N.I.- P.125-132.

79. Hillarp N. A. Further observations on the state of the catecholamines stored in adrenal medullary cells // Acta Fisiol. Scand., 1959,-V.47.- P.271-279.

80. Hillarp N. A., Hokfelt B. Evidens of adrenaline and noradrenaline in separate adrenal medullary cells // Acta Fisiol. Scand., 1953,-V.30.-P.55-68.

81. Hofmann H.D., Seidl K., Unsicker K. Development and plasticity of adrenal chromaffin cells: cues based on in vitro studies // J. Electron. Microsc. Tech., 1989,- V.12.- N.4.- P.397-407.

82. Holgert H., Dagerlind A., Hokfelt T. Phenotype of intraadrenal ganglion neurons during postnatal development in rat // J. Comp. Neurol., 1996a.- V.371.- N.4.- P.603-620.

83. Holgert H., Lagercrantz H., Dagerlind A., Hartman B.K., Cozzari C,. Brimijoin S., Hokfelt T. Effects of immunological sympathectomy on postnatal peptide expression in the rat adrenal medulla // Brain Res. Dev. Brain Res., 19966,- V.97.- N.I.- P. 88-95.

84. Honore L.H. A light microscopic method for the differentiation of noradrenaline and adrenaline producing cells of the rat adrenal medulla // J.Histochem. and Cytochem., 1972,- V.19.- N.8.- P.483-486.

85. Jackson C.M. The postnatal development of the suprarenal qland and the effects of inanion apon its growth and stracture in the rats // Am. J. Anat., 1919,- V.25.- N.3.- P.221-289.

86. Jousselin-Hosaja M. Ultrastructural evidence for the development of adrenal medullary grafts in the brain // Exp. Brain Res., 1988,- V.73.- N.3.- P.637-647.

87. Jousselin-Hosaja M. Effects of transplantation on mouse adrenal chromaffin cells // J. Endocrinol., 1988. -V.116.-N.1.-P. 149-153.

88. Jurecka W., Lassmann H., Horandner H. The proliferation of adrenal medullary cells in newborn and adult mice // Cell Tissue Res., 1978,-V.189,-N. 2,-P. 305-312.

89. Kast A., Peil H., Weisse I. Calcified foci at the junction between adrenal cortex and medulla of rhesus monkeys // Lab. Anim., 1994,- V.28.- N.I.- P.80-89.

90. Kemppainen R.J., Behrend E.N. Adrenal physiology // Vet. Clin. North Am. Small Anim. Pract., 1997,- V.27.- N.2.- P.173-186.

91. Kesse W.K., Parker T.L., Coupland R.E. The innervation of the adrenal gland. I. The sourse of pre- and postganglionic nerve fibres to the rat adrenal // J. Anat., 1988,- V.157.- P.33-41.

92. Kikuta A., Murakami T. Relationship between chromaffin cells and blood vessels in the rat adrenal medulla: A transmission electron microscopic study combined with blood vessel reconstructions // Amer. J. Anat., 1984,- V.170.- N.I.- P.73-81.

93. Kikuta A., Ohtani O., Murakami T. Three-dimensional organization of the collagen fibrillar framework in the rat adrenal gland // Arch. Histol. Cytol., 1991 .- V.54.- P.133-144.

94. Leblond C.P. Classification of cell populations on the basis oftheir proliferative behavior // Nat.Cancer Inst. Monogr.,1964.- V.14.-P.119-150.

95. Leeman L. Deoxiribonucleic acid countent of the cell-nuclei in the adrenal medulla after exposure to low temperature // Nature, 1959.-V.183.-P.1188-1192.

96. Lever I.D. Electron microscopic oservation on the normal and denervated adrenal medulla of the rat // Endocrinology, 1955,- V.57.-N.3.-P.621-635.

97. Lillien L.E., Claude P. Nerve growth factor and glucocorticoids regulate phenotypic expression in cultured chromaffin cells from adult rhesus monkeys // Exp. Cell. Res., 1985,- V.161.- N.2.- P.255-268.

98. Malvaldi G., Mencacci P., Viola-Magni M.P., Mitoses in the adrenal medullary cells // Experientia, 1968,- V. 24,- P.475-476.

99. Malvaldi G., Viola-Magni M.P. DNA turnover in adrenal medullary cells of different strains of rats and its enhansement after intermittent exposure to cold // Cell. Tissue Kinet., 1972,- V.5.- P. 103113.

100. Mathison Y., Israel A. Endothelin ET(B) receptor subtype mediates nitric oxide/cGMP formation in rat adrenal medulla // Brain Res. Bull., 1998,- V.45.- N.I.- P.15-19.

101. Mestdagh J. Quantitativ study of DNA in the adrenal medulla in various conditions // Bull.Micr.Appl., 1961,- V. 11. P.5-12.

102. Messier B., Leblond C.P. Cell proliferation and migration as revealed by radioautography after injection of thymidine-H3 into male rats and mise // Amer. J. Anat., I960,- V.106.- N.3.- P. 247.

103. Millar T.J., Unsicker K. Catecholamine-storing cells in the adrenal medulla of the pre- and postnatal rat. Acetylcholinesterase as a means for early discrimination of cell types // Cell Tissue Res., 1981,-V.217.- N.155-170.

104. Michel-Bechet M., Cotte G., Haon A.M., Etude ultrastructural de la medullo-surrenale du hamster // Microscop., 1963,- T.2.- N.4., P.449-460.

105. Mitchell R.M. Histological changes and mitotic activity in the rat adrenal during postnatal development // Anat. Rec., 1948,- V.101.-P. 161-185.

106. Mizrachi Y., Naranjo J.R., Levi B.Z., Pollard H.B. Lelkes P.O. PC 12 cells differentiate into chromaffin cell-like phenotype in coculture with adrenal medullary endothelial cells // Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1990,- V.87.- N.16.- P.6161-6165.

107. Mohamed A.A., Parker T.L., Coupland R E. The innervation of the adrenal gland. II. The sourse of spinal afferent nerve fibres to the guinea-pig adrenal gland // J. Anat., 1988,- V.60.- P.51-58.

108. Monkhouse W.S. The effect of in vitro hidrocortisone administration on the labelling index and size of the chromaffin tissue in the postnatal and adult mouse // J.Anat, 1986,- V.144.- P.133-144.

109. Monkhouse W.S., Coupland R.E. The effect of in vitro hidrocortisone administration on the labelling index and size of the intra- and exstra-adrenal chromaffin tissue of the fetal and perinatal mouse // J. Anat., 1985,- V.140.- P.679-696.

110. Nemes Z. The cytoarchitecture of the adrenal medulla in the rat // Acta Morphol. Acad. Sci. Hung., 1976,- V.24.- P.47-61.

111. Nordmann J.J. Combined stereological and biochemical analysis of storage and release of catecholamines in the adrenal medulla of the rat // J. Neurochem., 1984,- V.42.- P.439-437.

112. Prentice F.D., Wood J.G. Adrenergic innervation of cat adrenal medulla//Anat. Rec., 1975,-V.181,-N.4,-P.689-703.

113. Schueler S.B., Sagen J., Pappas G.D., Kordower J.H. Long-term viability of isolated bovine adrenal medullary chromaffin cells following intrastriatal transplantation // Cell Transplant., 1995,- V. 4,1. N.I.- P.55-64.

114. Seidl K., Unsicker K. Survival and neuritic growth of sympathoadrenal (chromaffin) precursor cells in vitro // Int. J. Dev. Neurosci., 1989,- Y.7.-N.5.- P.465-473.

115. Suzuki T., Kachi T. Similarities and differences in supporting and chromaffin cells in the mammalian adrenal medullae: an immuno-histochemical study // Anat. Rec., 1996,- V.244. N.3.- P. 358-365.

116. Teitelman G., Bakeret H., Joh H., Reis D.J. Appearence of catecholamine-synthezing enzymes during development of rat sympathetic nervous system; possible role of tissue environment // Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1979,- V.- 76,- P.509-513.

117. Tischler A.S., DeLellis R.A., Nunnemacher G., Wolfe H.J. Acute stimulation of chromaffin cell proliferation in the rat adrenal medulla // Lab. Invest., 1988,- V.58.- N.6.- P. 733-735.

118. Tomlinson A., Durbin J., Coupland R.E. A morphometric and biochemical study on the effect of unilateral adrenalectomy in neonatal and adult rats // Exp. Brain Res. Ser., 1987a.- V.16.- P.255-268.

119. Tomlinson A., Durbin J., Coupland R.E. A quantitative analysis of tissue : morphometric analisis at tissue and cellular level correlated with catecholamine content // Neuroscience, 19876. V.20. -N.3. - P.895-904.

120. Tokunaga H. Postnatal development of the blood vasculature in the rat adrenal gland: a scanning electron microscope study of microcorrosion casts // Arch. Histol. Cytol., 1996,- V.59.- N.4.- P.305-315.

121. Unsicker K., Krisch B., Otten U., Thoenen H. Nerve growthfactor-induced fiber outgrowth from isolated rat adrenal chromaffin cells: impairment by glucocorticoids // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1978,-V.75.-N.7.- P.3498-3502.

122. Unsicker K., Millar T.J., Muller T.H., Hofmann H.D. Embryonic rat adrenal glands in organ culture: effects of dexamethasone, nerve growth factor and its antibodies on pheochromoblast differentiation // Cell Tissue Res., 1985,- V.241.- N.I.- P.207-217.

123. Verhofstad A.A. Kinetiks of adrenalmedullary cells // J. Anat., 1993,- V.183(Pt.2).- P.315-326.

124. Viola-Magni M.P. Changes in the DNA content of adrenal medulla nuclei of rats intermittenli exposed to cold // J. Cell. Biol., 1965,-V.25.- N.3.- P.415-433.

125. Wetzshtein R.Z. Elektronenmikroscopische Untersuchungen Nebennierenmark von Maus, Meerschweinchen und Katze // Z. Zellforsch. mikrosk-anat., 1957,- V.46.- N.5.- P.517-576.

126. Zelander T. Endocrine Organs: The Adrenal Gland // In: Electron Microscopic Anatomy.- New York and London, 1964.117

127. Zhou X.F., Oldfield B.J., Livett B.G. Substance P-containing sensory neurons in the rat dorsal root ganglia innervate the adrenal medulla // J. Auton. Nerv. Syst., 1991,- V.33.- N.3.- P.247-254.

128. Yeakel E.M. Medullary hyperplasia of the adrenal gland in aged Wistar albino rat and gray Norway rats // Arch. Path, 1947,- V.44.-N.I.- P.71-77.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.