Пластичность скелетных мышц: Эффекты тренировки и гравитационной разгрузки тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.13, доктор биологических наук Шенкман, Борис Стивович
Шенкман, Борис Стивович
доктор биологических наук
1999
- Специальность ВАК РФ03.00.13
- Количество страниц 258
Оглавление диссертации доктор биологических наук Шенкман, Борис Стивович
1.Введени е.
2.Методика обработки и анализа материала.
3.Структурно-метаболическая пластичность мышц в условиях тренировки
3.1.Литературный обзор.
3.2.Постановка задачи.
3.3 .Организация исследований.
3.4 .Результаты.
3.5 .Обсуждение.
4.Структурно-метаболическая пластичность мышц в условиях гравитационной разгрузки.
4.1.Введени е.
4.2.Литературный обзор.
4.3.Постановка задачи и общая организация исследований.
4.4.Изменения структуры и функции сократительного аппарата мышц в условиях гравитационной разгрузки.
4.5.Работоспособность, капилляризация и энергетика мышц в условиях гравитационной разгрузки.
4.6.Окислительный и гликолитический потенциал мышц в условиях гравитационной разгрузки.,.
4.7.0бщие закономерности адаптации мышц в условиях гравитационной разгрузки.
5.Общие закономерности мышечной пластичности в условиях тренировки и гравитационной разгрузки (заключение).*.
5.1.Динамика адаптации скелетных мышц в условиях тренировки и гравитационной разгрузки.
5.2.Биомеханические факторы, определяющие характер адаптации мышц
6.Вывод ы.
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Физиология», 03.00.13 шифр ВАК
Влияние гравитационной разгрузки и тренировки на характеристики кальций-механической связи в изолированных волокнах скелетных мышц2005 год, кандидат биологических наук Литвинова, Карина Сергеевна
Системные и клеточные механизмы пластичности скелетных мышц при различных режимах их сократительной активности2003 год, доктор биологических наук Немировская, Татьяна Леонидовна
Функциональные свойства нервно-мышечного аппарата человека при повышенной и пониженной нагрузке2006 год, доктор биологических наук Коряк, Юрий Андреевич
Биофизические механизмы изменения механических свойств волокон скелетных мышц при опорной разгрузке2011 год, доктор физико-математических наук Огнева, Ирина Владимировна
Специфические изменения скоростно-силовых возможностей скелетных мышц под влиянием тренировки в изотоническом и изокинетическом режимах мышечного сокращения и при гипокинезии2007 год, кандидат биологических наук Нетреба, Алексей Иванович
Заключение диссертации по теме «Физиология», Шенкман, Борис Стивович
6. ВЫВОДЫ
1.Повышение аэробной выносливости в ходе тренировки сопровождается изменениями всех структурных компонентов кислород-транспортной и утилизирующей системы скелетных мышц; о чем свидетельствует рост капилляров, изменение размеров мышечных волокон и содержания миоглобина, увеличение активности окислительных ферментов. Скорость изменений каждого из компонентов на разных стадиях адаптационного процесса неодинакова и определяется механическими характеристиками предъявляемых мышце тренировочных нагрузок. Динамика структурно-метаболической адаптации скелетных мышц в условиях тренировки характеризуется наличием трех основных стадий, а именно: стадии функциональной, характеризующейся повышением эффективности энергетиче
218 ского обеспечения мышечной работы при почти неизменных структурно-метаболических параметрах; стадии экстенсивной (структурных перестроек), в ходе которой развивается гипертрофия волокон рабочих мышц, увеличивающаяся активность окислительных ферментов, возрастает число капилляров, и стадии стабилизационной, на протяжении которой у людей, имеющих высокий уровень аэробной выносливости, как правило, не происходит дальнейшего роста размеров волокон, наблюдается повышение эффективности работы митохондрий, снижение уровня миоглобина.
2. Стратегия структурно-метаболических изменений мышц при тренировке выносливости определяется в значительной степени совокупностью механических условий работы мышцы и прежде всего объемом выполняемой данной мышцей силовой (резистивной) нагрузки: при большом объеме такой нагрузки на стабилизационной стадии наблюдается дальнейшее развитие рабочей гипертрофии волокон с пропорциональным увеличением объема митохондриального аппарата. При относительно небольшом объеме резистивной работы стратегия адаптации характеризуется улучшением условий аэробной энергопродукции.
3. На направленность и выраженность структурно-метаболических изменений в скелетно-мышечных волокнах при тренировке оказывают влияние исходные значения структурно-метаболических показателей. При этом их индивидуальные колебания за время тренировки приводят к формированию стационарного уровня этих параметров.
4. Снижение максимальных сократительных возможностей мышцы при гравитационной разгрузке сопровождается уменьшением ее объема, в основе которого лежит атрофия мышечных волокон. Размеры волокон, как правило, уменьшаются в большей степени, чем объем целой мышцы, что может быть результатом замещения сократительного компонента мышц несократительным. В основе атрофии мышечных волокон в свою очередь лежит уменьшение содержания миофибриллярных белков. Нарушения целостности миофибриллярного аппарата в условиях микрогравитации, являются неотъемлемой частью процесса гипогра-витационной атрофии.
219
5. Снижение статической и динамической работоспособности после пребывания в условиях гравитационной разгрузки сопровождается снижением метаболической эффективности мышечной работы (повышение расхода АТФ и/или повышением накопления лактата в крови), природа которого не всегда связана со структурными изменениями окислительного потенциала волокон.
6. Динамика структурно-метаболической адаптации скелетных мышц при гравитационной разгрузке также характеризуется наличием трех основных стадий, а именно, функциональной стадии, стадии общей атрофии, в ходе которой уменьшается площадь поперечного сечения волокон обоих типов, уровень капил-ляризации и интегральная активность окислительных ферментов, осуществляются изменения миозинового фенотипа волокон и перестройка миофибриллярного аппарата, и стадии стабилизационной, на протяжении которой уменьшается атрофия волокон только того типа, на который в данной мышце в нормальных условиях приходилась наибольшая функциональная нагрузка, активно развивается процесс «замещения» сократительных элементов мышцы несократительными, стабилизируются значения окислительного потенциала и показатели метаболической напряженности работы.
7. При коротких сроках экспозиции в условиях реальной и моделируемой невесомости на фоне глубокого снижения сократительных возможностей мышц, очевидно функциональной природы, наблюдается появление первых признаков атрофических изменений в структуре мышечных волокон, достоверное снижение площади поперечного сечения волокон на 7-17%, развитие деструкции миофиб-рилл и снижение количества капилляров регистрируется на 3-7 сутки иммерсионного воздействия. В условиях антиортостатической гипокинезии изменения такой выраженности обычно не наблюдаются даже при больших (до 30 суток) сроках экспозиции. Последний факт свидетельствует об особой значимости фактора опорной разгрузки в процессах развития атрофических процессов в мышце в условиях микрогравитации.
8. Применение в условиях моделируемой невесомости резистивных и локомоторных нагрузок предотвращает развитие атрофии медленных волокон и уве
220 личение метаболической напряженности работы. Это позволяет считать степень механической разгрузки важным условием, влияющим на глубину развития ат-рофических процессов.
9. Снижение объема двигательной активности сопровождается закономерным снижением окислительного потенциала быстрых мышечных волокон. Это свидетельствует о значимости моторной разгрузки для атрофии митохондрий волокон фазной системы.
10. Степень атрофии мышечных капилляров в условиях моделируемой невесомости значительно меньше, чем в условиях реальной невесомости, что может быть связано с более глубокими сдвигами жидкостных объемов в невесомости, чем в ее моделях.
11. Характер адаптации позно-тонических и локомоторных мышц к условиям гравитационной разгрузки различен: в позно-тонических мышцах снижение сократительной активности (запускаемое инактивацией опорного входа) приводит к одновременной и сходной по амплитуде атрофии миофибриллярного и ми-тохондриального аппаратов, что определяет отсутствие изменений окислительного потенциала (выраженных в удельных единицах); в локомоторных мышцах при уменьшении сократительной активности степень атрофии миофибриллярного аппарата не столь велика, как степень уменьшения окислительного потенциала.
221
5. ОБЩИЕ ЗАКОНОМЕРНОСТИ МЫШЕЧНОЙ ПЛАСТИЧНОСТИ В УСЛОВИЯХ ТРЕНИРОВКИ И ГРАВИТАЦИОННОЙ РАЗГРУЗКИ (ЗАКЛЮЧЕНИЕ)
Данные настоящего исследования позволили сформировать ряд наиболее общих представлений о закономерностях адаптации мышц к различным условиям их механической деятельности.
5.1. Динамика адаптации скелетных мышц в условиях тренировки и гравитационной разгрузки.
При анализе динамики адаптационных процессов в условиях тренировки и гравитационной разгрузки обнаруживается определенное сходство. На начальном этапе при первом контакте системы с новыми условиями деятельности изменения затрагивают функциональные и в определенной степени регуляторно-метаболические процессы в рамках ранее сформированной и почти интактной структуры мышечных волокон. В условиях тренировки наблюдается повышение эффективности субстратно-энергетического обеспечения мышечной работы («жировой сдвиг» и уменьшение продукции лактата при субмаксимальных на
212 грузках) [190,191], повышение эффективности митохондриального окисления [49], повышение сосудистой проводимости при интактной капиллярной сети [48].
В условиях разгрузки на этом этапе наблюдается изменение характера рекрутирования двигательных единиц [27], снижение тонуса и вследствие этого снижение силовых характеристик мышц-разгибателей [9, 28].
При сохранении (или усугублении) действия измененных условий деятельности структурные характеристики мышечных волокон уже не отвечают функциональному запросу и подлежат изменению. Это изменение на втором этапе носит неспецифический характер, вероятно, вследствие небольшой длительности воздействия, не позволяющей выявить наиболее важные и стабильные факторы изменившихся условий. По нашим данным и данным литературы, в условиях тренировки у новичков наблюдается гипертрофия волокон рабочих мышц, независимо от направленности тренировочных упражнений (силовых, скоростных или выносливостных), рост активности окислительных ферментов, рост капилляров. При этом такие экстенсивные изменения вполне обеспечивают увеличение работоспособности на данном (относительно низком уровне) (см. раздел 3).
Результаты настоящего исследования и данные других авторов (см. выше) свидетельствуют об аналогичных событиях при адаптации к условиям гравитационной разгрузки. Снижается площадь поперечного сечения волокон обоих типов, уровень капилляризации, интегральная активность окислительных ферментов, наблюдаются изменения миозинового фенотипа волокон, перестройка мио-фибриллярного аппарата. В основе этих изменений, по-видимому, лежит снижение уровня синтеза белковых молекул.
При дальнейшем сохранении измененных условий существования мышечного аппарата адаптация приобретает специфический характер. При тренировке людей, находящихся на высоком уровне развития аэробной выносливости, дальнейшего увеличения размеров волокон, количества мышечных капилляров и окислительного потенциала не наблюдается (см. выше). В то же время, обнаруживается некоторое уменьшение размеров волокон, повышение эффективности митохондриального дыхания в рамках его прежних структурных характеристик,
213 снижение содержания миоглобина. Именно люди, у которых эти тенденции проявляются в наибольшей степени, проявляют наибольшую аэробную работоспособности.
После длительного пребывания в условиях гравитационной разгрузки, продолжается атрофия волокон только того типа, на который в данной мышце приходилась наибольшая функциональная нагрузка в нормальных условиях, оказывается наиболее выраженным своеобразное «замещение» сократительных элементов мышцы несократительными, стабилизируются значения окислительного потенциала, показатели метаболической напряженности работы.
Таким образом, на этом этапе при минимальных структурных изменениях, происходит определенная перестройка, позволяющая достигнуть максимальной степени соответствия структурно-функциональных параметров мышцы предъявляемому характеру сократительной деятельности.
5.2. Биомеханические факторы, определяющие характер адаптации мышц.
Биомеханические и физиологические условия тренировки и гравитационной разгрузки кардинально отличны друг от друга. В ходе тренировки в нормальных гравитационных условиях на фоне нормальной работы постуральных антигравитационных механизмов происходит произвольно запускаемое и регулируемое повышение объема и/или интенсивности сократительной деятельности мышц главным образом в динамическом режиме. Поэтому повышение динамической активности мышц и изменение уровня резистивной нагрузки, преодолеваемой мышцей, являются основными биомеханическими факторами тренировки. Судя по результатам, полученным в настоящем исследовании и известным из литературы, эти факторы стимулируют развитие различных адаптационных изменений в скелетных мышечных волокнах.
214
Табл.5.1. Необходимость и достаточность действия различных биомеханических факторов для развития адаптационных изменений мышц при тренировке
Повышенный объем сократительной активности (время) Повышенный уровень резистивной механической нагрузки Повышенная скорость движений
Рабочая гипертрофия (увеличение размеров волокон, т.е. объема миофибриллярного аппарата) Необходим, но не достаточен Необходим существенный уровень Несущественна
Рабочий ангиогенез (новообразование капилляров) Необходим, но не достаточен Необходим определенный уровень, вызывающий пост-констрикционную гиперемию Несущественна
Увеличение окислительного потенциала Необходим большой объем Необходим уровень мощности, соответствующий анаэробному порогу
Из таблицы видно, что для развития различных адаптационных изменений в ходе тренировки необходимы различные биомеханические условия. Каждое тренировочное упражнение представляет собой комбинацию вышеупомянутых биомеханических условий, обычно неодинаковых для разных мышц (см. ниже). Повторение таких упражнений и приводит к развитию (на этапе специфической адаптации) соответствующих структурно-метаболических (и функциональных) изменений скелетных мышц.
В настоящем исследовании были получены вышеописанные данные, подтверждающие эмпирическую картину действия биомеханических условий работы мышц при тренировке на характер их структурно-метаболической адаптации.
При этом характер такой адаптации для разных мышц разный, что, вероятно, определяется уровнем изменения механической нагрузки для данной мышцы. Так, активация экстензоров голеностопного сустава, как правило, сопряжена с преодолением высокого уровня резистивной нагрузки, поэтому увеличение объема сократительной активности этих мышц сопровождается развитием рабочей гипертрофии волокон. Эти механические условия работы не являются обязатель
215 ными для локомоторных мышц бедра. Поэтому при аэробной тренировке с небольшим уровнем резиетивноети, рабочая гипертрофия волокон не является обязательным следствием тренировки на специфическом этапе адаптации.
В условиях гравитационной разгрузки биомеханические условия деятельности двигательного аппарата оказываются совершенно иными. Микрогравитация оказывает влияние на двигательную систему организму через 4 биомеханических фактора: отсутствие опоры, устранение механической (прежде всего эксцентрической) резистивной нагрузки на мышцы, уменьшение объема двигательной активности и изменение кинематики движений (см. выше). Действие этих факторов на структурно-метаболические характеристики мышечных волокон представлено в таблице.
Табл.5.2. Необходимость и достаточность действия биомеханических факторов для развития адаптационных изменений мышц при гравитационной разгрузке
Устранение опоры Устранение механической нагрузки Снижение объема движений Изменение кинематик и движений
Атрофия мышечных волокон Необходимо Необходимо Необходимо для фазных мышц ?
Снижение капилляризации Недостаточно Недостаточно Не имеет значения ?
Снижение окислительного потенциала Необходимо для тонических мышц ? Необходимо для фазных мышц ?
Фенотипическая трансформация волокон Вероятно, необходимо Не имеет значения ? ?
Из таблицы видно, что значение различных биомеханических факторов для реализации различных структурно-метаболических изменений мышечных волокон неодинаково.
Вероятно, на уровне отдельной мышцы система механических стимулов в этом случае может быть сведена к редукции объема, скорости и нагруженности (резиетивноети) сокращений. Если значение кинетических характеристик сократительной активности для развития тех или иных структурно-метаболических
216 изменений мышечных волокон является предметом дальнейших исследований, то в настоящее время есть некоторые основания считать, что редукция нагружен-ности сокращений является необходимым и достаточным условием для развития атрофии миофибриллярного аппарата. Для изменений окислительного потенциала и миозинового фенотипа решающим, очевидно, является само снижение объема сократительной активности.
На системном уровне активация волокон тонической системы осуществляется через механизмы опорной афферентации [256]. Поэтому устранение опоры является необходимым пусковым событием для большинства структурно-функциональных изменений волокон постуральных мышц в условиях гравитационной разгрузки. При этом степень редукции механической нагрузки определяет глубину атрофии сократительного аппарата.
Наши и литературные данные свидетельствуют о том, что развитие изменение волокон фазной системы также запускается снижением сократительной активности, что в свою очередь определяется снижением объема движений и особенностями их кинематики в условиях микрогравитации. Однако атрофия сократительного аппарата также будет зависеть от степени редукции механической нагрузки при данном уровне сократительной активности.
Таким образом, изменения волокон фазной системы в условиях тренировки и гравитационной разгрузки не только представляют собой события, противоположные друг другу по знаку, но и запускаются сходными противоположно направленными механизмами.
Иная картина наблюдается для волокон постуральных мышц. Адаптация к физическим нагрузкам на Земле развертывается на фоне близкой к постоянной и высокой непроизвольной активности и нагруженности постуральной системы. При гравитационной разгрузке в результате устранения опорных влияний посту-ральные мышцы полностью отключены, что приводит к их атрофии и другим событиям, описанным выше. Хотя эти события в значительной степени напоминают те, которые происходят при тренировке, но с обратным знаком, но разви
217 ваются они гораздо быстрее, и, что самое важное, очевидно, запускаются системными механизмами (опорно-зависимыми).
Таким образом, на наш взгляд, гравитационная разгрузка является особым случаем функциональной разгрузки мышц, при котором триггерные механизмы развития структурно-функциональных изменений волокон тонической системы качественно иные.
Еще одна особенность структурно-функциональной пластичности скелетных мышц требует теоретического рассмотрения. Наши исследования выявили зависимость выраженности структурно-метаболических изменений мышечных волокон в условиях как тренировки, так и гравитационной разгрузки от исходных значений изучаемых параметров. Этот феномен позволяет предположить, что выраженность изменений определяется не абсолютными значениями градиента функциональной активности мышц (отрицательного или положительного), а соотношением такого градиента и количественной характеристики вовлеченных структур.
Итак, в настоящей работе выявлен ряд базисных закономерностей структурно-функциональной пластичности скелетных мышц в условиях тренировки и гравитационной разгрузки.
Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Шенкман, Борис Стивович, 1999 год
1. Барер А.С., Савинов А.П., Северин Г.И., Стаклицкий А.Ю., Тихомиров Е.П. Физиолого-гигиеническое обоснование некоторых индивидуальных средств профилактики неблагоприятного действия невесомости. Косм. биол. и авиакосм. мед. 1975, № 1, с. 41-47.
2. Бараньски С., Годлевска-Енджейчик Я., Мартыняк М. Морфометрические и цитохимические исследования нервно-мышечных синапсов. В книге "Влияние динамических факторов космического полета на организм животных." М.Наука, 1979, с. 92-95.
3. Виру М.А.Влияние физической тренировки на анаэробный обмен в скелетных мышцах разного типа.Автореф.дисс.канд. биол. наук.Тарту, 1990.
4. Гаевская М.С.,Вересотская Н.А., Колганова Н.С., Колчина Е.В., Куркина Л.М., Носова Е.А. Изменения метаболизма ткани камбаловидной мышцы у крыс после полета на биоспутнике "КОСМОС-690". Косм.биол. и авиакосм. мед. 1979, № 1, с. 16-19.
5. Гаевская М.С., Белицкая Р.А., Колганова Н.С., Колчина Н.С., Куркина Л.М., Носова Е.А. Метаболизм ткани смешанных по типу волокон скелетных мышц у крыс после полета на биоспутнике "КОСМОС-690". Косм.биол. и авиа-косм.мед., 1979, № 3, с. 28-31.
6. Газенко О.Г., Генин A.M., Малкин В.Б. Невесомость изучается на земле. Наука и жизнь, 1972, № 4, с. 92-97.
7. Генин A.M., Сорокина П.А. Длительное ограничение подвижности как модель влияния невесомости на организм человека. В кн.: Проблемы космической биологии, Наука, Москва, 1969, т. 13, с. 9-16.222
8. Григорьева Л.С., Козловская И.Б. Влияние семисуточной опорной разгрузки на скоростно-силовые свойства скелетных мышц. Косм, биол, мед., 1983, № 4, с. 21-25.
9. Ильина-Какуева Е.И., Португалов В.В., Кривенкова Н.П. Влияние факторов космического полета на скелетную мускулатуру крыс. Косм.биол. авиа-косм.мед., 1977, т. 11, № 1, с. 20-25.
10. Ильина-Какуева Е.И., Петрова Н.В., Португалов В.В. Влияние космического полета на скелетную мускулатуру и нервный аппарат мышц.В кн. Влияние динамических факторов космического полета на организм животных. М.Наука 1979, с. 95-104.
11. Ильина-Какуева Е.И., Португалов В.В.Влияние искусственной силы тяжести на скелетную мускулатуру крыс в условиях космического полета. Арх.анат.гистол .эмбриол., 1979, т. 76, № 3, с. 22-27.
12. Ильина-Какуева Е.И., Португалов В.В. Структурные изменения камбаловид-ной мышцы крыс, экспонированных на биоспутниках серии "КОСМОС" и при гипокинезии. Косм.биол. и авиакосм.мед., 1981, т. 15, № 3, с. 37-40.
13. Ильина-Какуева Е.И., Савик З.Ф.Влияние длительной гипокинезии на рост и скелетную мускулатуру крыс. Арх.анат.гистол.эмбриол.,1983,т.85,№.8,с.27-33.223
14. Ильина-Какуева Е.И. Морфологическое исследование мышечных волокон и микроциркуляторного русла мышц обезьян при антиортостатической гипоки-незии.Косм.биол.авиакосм.мед.1984, т. 18, № 2, с. 71-73.
15. Ильина-Какуева Е.И., Новиков В.Е. Скелетная мускулатура крыс при моделировании физиологических эффектов невесомости. Косм.биол. авиакосм.мед., 1985, т. 19, №3, с. 56-60.
16. Ильина-Какуева Е.И. Исследование мышц крыс после кратковременного космического полета на биоспутнике "Космос-1667". Косм.биол. и авиакосм.мед., 1987, т. 21, №6, с. 31-35.
17. Ильини-Какуева Е.И., Бабакова JI.JL, Деморжи М.С., Поздняков О.М. Морфологическое исследование мышц крыс, экспонированных на борту амере-канской космической лаборатории SLS-2. Косм.биол. авиакосм.мед., 1995, т. 29, №6, с. 12-18.
18. Ильина-Какуева Е.И., Краснов И.Б., Динамика атрофического процесса в мышцах крыс при дефиците опорных нагрузок. Авиакосм.и эколог.медицина., 1998, т. 32, №3, с. 41-44.
19. Какурин Л.И. Влияние ограниченной мышечной деятельности на физиологические системы организма,Косм.биол.,мед., 1968, т. 2, № 2, с. 59-71.
20. Какурин Л.И.,Черепахин М.А.,Первушин В.Н.Влияние факторов космического полета на мышечный тонус у человека. Косм. биол. и мед., 1971, т. 5, № 2, с. 63-68.
21. Какурин'Л.И., Черепахин М.А., Первушин В.И. Влияние кратковременных космических полотов на состояние нервно-мышечного аппарата человека. Косм. биол. и мед., 1971, т. 5, № 6, с. 53-56.
22. Карпман В.Л., Белоцерковский 3., Гудков И. Определение физической работоспособности спортсменов. Лекция для студентов института физической культуры. М.ГЦОЛИФК, 1978, с. 23.
23. Киренская А.В., Козловская И.Б., Сирота М.Г.Влияние иммерсионной гипокинезии на характеристики ритмической активности двигательных единиц камбаловидной мышцы.Физиол.человека, 1986, т. 12, № 1, с. 617-632.224
24. Козловская И.Б.,Григорьева Л.С.,Гевлич Г.И.Сравнительный анализ влияния невесомости и ее моделей на скоростно-силовые свойства и тонус скелетных мышц человека. -Косм. биол. и авиакосм, мед., 1984, т. 18, № 6, с. 22-26.
25. Колчинская А.З.Представления о вторичной тканевой гипоксии и механизмах ее развития. Вторичная тканевая гипоксия.Под ред. А.З. Колчинской.Киев, Наукова думка. 1983, с. 30-42.
26. Кондашевская М.В., Кошелев В.Б., Родионов И.М. Формирование новых микрососудов в скелетных мышцах крыс, подвергнутых недельному влиянию гипобарической гипоксии. ДАН СССР., 1984, т. 277, № 3, с.748-751.
27. Коц Я.М., Кузнецов C.JL, Шенкман Б.С., Чикина М.С. Композиция мышц и размеры мышечных волокон у бегунов на средние дистанции и неспортсменов. Науч.-спорт. вестник., 1990, № 2, с. 23-24.
28. Кузнецов С.Л.,Горячкина В Л., Лебедева Н.Б.Особенности реакции исчерченного волокна скелетной мышцы человека при гипокинезии в сочетании с физической нагрузкой. Архив анат., гистол., эмбриол., 1987, т. 92, № 2, с.32-35.
29. Кузнецов С.Л., Шенкман Б.С. Изменчивость соотношения типов волокон в биопсиях скелетной мышцы человека. Республ. Сборник науч.трудов., М. II-МОЛГМИ., 1987, с. 107-112.
30. Кузнецов С.Л., Степанцов В.В.Реакция исчерченного волокна скелетной мышцы человека при длительной антиортостатической гипокинезии. Арх. анат., гистол.,эмбриол. 1989, т. 97, № 7, с.53-58.
31. Кузнецов С.Л.,Талис В.Л. К вопросу о моделировании физиологических эффектов невесомости методом "антиортостатического вывешивания" мелких лабораторных животных. Косм.биол. и авиакосм, мед., 1989, № 1, с. 74-76.225
32. Кузнецов С.Л.,В.В.Степанцов.Реакции волокон скелетных мышц человека на 370-суточную антиортостатическую гипокинезию, сочетанную с физическими нагрузками.Косм.биол.и авиакосм.мед., 1990, т. 24,№ 5, с.34-38.
33. Кузнецов C.JI., Талис B.JI. Состояние скелетных мышечных волокон у крыс при физических нагрузках на фоне "антиортостатического вывешивания" при моделировании невесомости. Косм.биол. авиакосм.мед., 1990, № 6, с. 31-34.
34. Кулаков А.А. Влияние физической тренировки и детренированности на функциональное состояние сосудов конечностей человека. Автореф.дис. канд.биол.наук. М., 1974.
35. Лойда 3., Госсрау Р., Шиблер Т. Гистохимия ферментов. Лабораторные методы (пер.с англ.). М.Мир, 1982, 272 е.
36. Маилян Э.С., Коваленко Е.А.Влияние космического полета на биоэнергетику скелетных мышц крыс. В кн."Влияние динамических факторов космического полета на организм животных.М.Наука., 1979, с. 109-111.
37. Маньковская И.Н., Филиппов М.М. Влияние гипоксии различного происхождения на кислородный режим мышечной ткани и механизмы его регуляции. Физиол.журн., 1988, т. 34, № 2, с. 56-63.
38. МеньшиковВ.В,Методические указания по применению унифицированных клинических лабораторных методов исследования.М.Медицина, 1973, с. 59.
39. Морозов С.А., Язвиков В.В., Сергеев Ю.П. Количественное гистохимическое исследование окосления жирных кислот в миокарде и скелетной мышце крыс при физических нагрузках. Вопросы мед.химии, 1976, т. 22, № 5, с. 625-628.
40. Моруков Б.В., Воробьев Д.В., Степанцов В.И., Павлов Б.А. 120-суточная ан-тиортостатическая гипокинезия с участием женщин: задачи и структура исследований. Авиакосм.и эколог, мед., 1997, т. 31, № 1, с. 40-47.
41. Некрасов А.Н. Реакция систем синтеза РНК в сердце и скелетной мышце на физическую нагрузку (гистохимическое исследование).Дисс.канд.биол.наук М. 1982.
42. Немировская Т.Д., Тарасова О.С., Шенкман Б.С., Кошелев В.Б. Влияние десятидневной тренировки аэробной направленности на энергетический потенциал и систему кровоснабжения скелетных мышц у крыс. Бюлл.эксп.биол.и мед., 1994, т. 117, № 1, с. 33-35.
43. Немировская Т.Л., Шенкман Б.С. Является ли гипоксия стимулом для структурно-метаболических изменений в скелетной мышце? Физиол. человека., 1997, т. 23, № 1, с. 123-130.
44. Панов А.Г., Лобзин B.C., Белянкин В.А. Изменения функций нервной и мышечной систем под влиянием длительной гиподинамии. В книге: Проблемы космической биологии,Наука, Москва, 1969, т. 13, с. 133-147.
45. Поздняков О.М., Бабакова Л.Л., Деморжи М.С., Ильина-Какуева Е.И. Изменения ультраструктуры нервно-мышечных синапсов у крыс под влиянием факторов космического полета. Бюлл.эксп.биол.и мед.,1988,т.105(6),с.752-755.
46. ПоздняковО.М., Бабакова Л.Л., Деморжи М.С., Ильина-Какуева Е.И. Изменение ультраструктуры поперечно-полосатых мышц и нервномышечных синапсов крыс под влиянием 13-суточного космического полета. Косм. биол. авиакосм, мед., 1990, т. 24, № 5, с. 38-42.
47. Поляков И.В., Лоури О., Эджертон В.Р.,Краснов И.Б. Гистохимия и морфология передних рогов спинного мозга крыс после 9-суточного космического полета. Авиакосм, и эколог, мед., 1995, т. 29, № 1, с. 30-32.
48. Рохленко К.Д.,Савик З.Ф.Влияние факторов космического полета на ультраструктуру скелетных мышц. Косм.биол.авиакосм.мед. 1981, т. 15, №1, с.72-77.
49. Тхоревский В.И. Кровоснабжение мышц человека при различных режимах их функциональной активности. Автореф.дис на соиск. д.м.н., М. 1975, с. 45.
50. Хернандец Р'., Корво У., Козловская И.Б., Крейдич Ю.В.,Мартинец-Фернандец, Рахманов А.С. Влияние семисуточного космического полета на структуру и функцию двигательной системы. Косм.биол. авиакосмич.мед., 1983, №2, с. 37-44.
51. Христова Л.Г., Гидиков А.А., Асланова И.Ф., Беляева М.Г., Киренская А.В., Козлова В.Г., Козловская И.Б. Влияние иммерсионной гипокинезии на потен228циалы двигательных единиц мускулатуры человека. Косм.биол. авиакосм, мед., 1986, т. 20, № 6, с. 27-33.
52. Шенкман Б.С., Некрасов А.Н., Мартиросов Э.Г. Половой диморфизм характеристик скелетной мышечной ткани у спортсменов. Архив анат.,гистол., эм-бриол., 1992, т. 103, № 7-8, с. 143-149.
53. Шенкман Б.С., Немировская T.JI. Реактивный (рабочий) ангиогенез в скелетных мышцах. В книге: "Ангиогенез. Образование, рост и развитие кровеносных сосудов" М.НИО "Квартет", 1993 , с. 120-122.
54. Шульженко Е.Б., Виль-Вильямс И.Ф. Имитация детренированности орга низма методом "сухого"погружения.В кн.:Х чтения К.Э. Циолковского, 1975, секц. Пробл.косм.мед.биол., с. 39-47.
55. Шульженко Е.Б.,Виль-Вильямс И.Ф.Реакции сердечно-сосудистой системы в условиях 56-суточной иммерсии в сочетании с профилактическими средства-ми.В:Тр. XI чтений К.Э.Циолковского, 1976, секц.Пробл.косм. мед. с. 153-159.
56. Язвиков В.В. Состав мышечных волокон скелетных мышц спортсменов, выполняющих работу различной длительности и мощности. Арх. анат., гис-тол.,эмбриол., 1989, т. 96, № 2, с. 49-54.229
57. Язвиков В.В., Невзоров В.И. Типы мышечных волокон в скелетных мышцах людей, не занимающихся физическим трудом и спортом. Арх. анат., гис-тол.,эмбриол., 1990, т. 98, № 4, с.67-70.
58. Abe T.,Kawakami Y.,Suzuki Y.,Haruna Y.,Gunji A.,Fukunaga T.Effects of 20 days bed rest on muscle morphology J.Gravit.Physiol., 1997, v. 4(1), p. S10-14.
59. Aboudrar S., Desplanches D., Graber-von-Bergen F., Favier R., Okyayauz-Baklouti I. and Hoppeler H. Effects of torbafilline on muscle atrophy: prevention and recovery.Can.J.Physiol.Pharmacol. 1992, v.70, № 6, p.814-820.
60. Aboudrar S., Sempore В., Koubi H., Dechaud H., Desplanches D. Effects of adrenal-ectomy or RU-486 on rat muscle fibres during hind-limb suspension. J.Appl.Physiol. 1993, v. 75, № 6, p. 2767-2773.
61. Adolffson O.J.The time dependence of training-induced increase in skeletal muscle capillarization and the spatial capillary to fiber relationship in normal and neo-vascularized skeletal muscle of rats.Acta Physiol.Scand.l986.v.l28,№2,p. 259-266.
62. Akima H.,Kuno S.,Suzuki Y.,Cunji A.,Fukunaga T.Effects of 20 days bed rest on physiological cross-sectional area of human thigh and leg muscle evaluted by magnetic resonance imaging. J.Gravit.Physiol., 1997, v. 4(1), p. S15 S-21.
63. Almon R.R.,Dubois D.Fiber type discrimination in disuse and glucocorticoid-induced atrophy.Med.Sci.Sports Exerc.,1990, v.22, № 3, p. 304-311.
64. Alway S.E, Grumbt W.H., Gonyea W.J. and Stray-Gundersen J. Contrasts in muscle and myofibers of elite male and female bodybuilders. J.Appl.Physiol. v. 67, №1, p. 24-31.
65. Alway S.E., MacDougall J.D., Sale D.G., Sutton J.R., and McComas A.J. Functional and structural adaptations in skeletal muscle of trained athletes., J.Appl.Physiol., 1988, v. 64(3), p. 1114-1120.230
66. Alway S.E., MacDougall J.D.,Sale D.G. Contractile adaptations in the human triceps surae after isometric exercise.J.Appl.Physiol,1989,v.66(6), p. 2725-2789.
67. Alway S.E., Sale D.G., and MacDougall J.D.Twitch contractile adaptations are not dependent on the intensity of isometric exercise in the human triceps surae. J.Appl. Physiol., 1990, v. 60, p. 346-352.
68. Alway S.E. Is fiber mitochondrial volume density a good indicator of muscle fatigability to isometric exercise? J.Appl.Physiol., 1991, v. 70, № 5, p.2111-2119.
69. Andersen P. Capillary density in skeletal muscle on man. Acta Pysiol.Scand., 1975, v. 95, p. 203-205.
70. Andersen P.,J.Henriksson.Capillary supply of the quadriceps femoris muscle of man:Adaptive response to exercise. J.Physiol.(Lond), 1977, v. 270, №3, p.677- 690.
71. Anzil A.P.,Sancesario G.,Massa R.,Bernardi G. Myofibrillar disruption in the rabbit soleus muscle after one-week hindlimb suspension. Muscle Nerve.,1991,v.14,p. 358-369.
72. Appell J., Rogers M.A., Casal D.C. Creatine kinase-MB isoenzyme adaptations in stressed human skeletal muscle of maraphon runners. J.Appl. Physiol., 1985, v. 59, № 1, p. 149-153.
73. Appell J., Forsberg S. and Hollmann W. Satellite cell activation in human skeletal muscle after training: Evidence for 20 muscle fiber neoformation. Int.J.Sports Med., 1988, v. 9, №4, p. 296-298.
74. Armstrong B. Mechanisms of exercise-induced delayed onset muscular soreness: A brief review. Med.Sci.Sports Exerc., v. 16, № 6, p. 529-538.
75. Asmussen G.,Soukup T.Arrest of developmental conversion of type II to type I fibres after suspension hypokinesia Histochem.J.,1991, v. 23, № 7, p. 312-322.
76. Aunola S., Marniemi J., Alanen E. et al. Muscle metabolic profile and oxygen transport capacity as determinants of aerobic and anaerobic thresholds. Eur.J.Appl.Physiol., 1988, v. 57, p. 726-734.
77. Bachl N., Baron R., Mossaheb M., Bumba W., Albrecht R., Kozlovskaya I., Kharitonov N. Specific strength diagnostic in long term spaceflight. In: Proc. 5-th231
78. Eur. symp. on Life Sciences Researh in Space, Arcarshon, France, 1993, p. 401404.
79. Bachl N., Baron R., Tschan H., Massaheb M., Bumba W., Albrecht R., Kozlovskay I., Kharitonov N. Development and implementation of the Motomir experiments on the Mir station. In: Proc. Intern. Space Year Conf., 1992, Munich, Germany, ESA, p. 147-151.
80. Bachl N., Baron R., H. Tschan, M. Mossaheb, W. Bumba, F. Hildebrand, R. Albrecht, I. Kozlovskaya, N. Kharitonov Principles of muscular efficiency under Conditions of weightlessness. Wiener Medicinische Wochenschift, 1993, v. 143, № 23-24, p. 588-609.
81. Baldwin K.M., Winder W., Terjung R.L., Holloszy J.O.Glycolytic enzymes in different types of skeletal muscle: adaptation to exercise. Am.J.Physiol. 1973. v. 225, № 4.
82. Baldwin K.M.,Herrick R.,Ilyina-Kakueva E.I.,Oganov V.S.Effects of zero gravity on myofibril content and isomyosin distribution in rodent skeletal muscle. FASEB J. 1990, v. 4, p.79-83.
83. Baldwin K.M.,Herrick R.E.,McCue S.A.Substrate oxidation capacity in rodent skeletal muscle:effects of exposure to zero gravity.J.Appl.Physiol. 1993, v. 75, № 6, p. 2466-2470.
84. Baldwin K.M., Future research directions in seeking countermeasures to weightlessness. J.Gravit. Physiol., 1995, v. 2, № 1, p. 51-53.
85. Bell G.J.,Martin T.P.,Ilyina-Kakueva E.I.,Oganov V.S.,Edgerton V.R. Altered istribution of mitochondria in rat soleus muscle fibers after space-flight.J.Appl.Physiol., 1992, v. 73, № 2, p. 493-497.232
86. Benzi О. Endurance training and enzymatic activities in skeletal muscle. Med. Sport., 1981, v. 13, p. 165-174.
87. Berg H.E., Dudley G.A., Haggmark Т., Ohlsen H. and Tesch P.A.Effects of lower limb unloading on skeletal muscle mass and function in humans. J.Appl. Physiol., 1991, v. 70, №4, p.1882-1885.
88. Berg H. Effects of unloading on skeletal muscle mass and function in man. Karolinska Institut, Stockholm, 1996.
89. Berg H.E., Larsson L., andTesch P.A.Lower limd skeletal muscle function after 6 wk of bed rest. J.Appl.Physiol., 1997, v. 82(1), p.182-188.
90. Berger M., Gestenbrand F., Mossaheb M., Stainwender G., Kozlovskay I.B. Burlatchkova N.S.,Sokolov A.,Babaev B. Movement Disordes in weightlessness. Wiener medizinische Wochenschrift, 1993,h. 23/24, p. 614-619.
91. Bergstrom J. Muscle electroolites in man. Scand.J.Clin.Lad.Invest., 1962, Suppl. V. 14, p. 1-11.
92. Berry P., Berry I., Manelfe C. Magnetic resonance imaging evaluation of lower limb muscles during bed rest a microgravity simulation model. Aviat.Space and Environ.Med., 1993, v. 64, p. 212-218.
93. Berry Ch., Weightlessness A. In: Bioastronoutics data book, 2-nd ed., NASA, Wa shington, 1973, p. 349-416.
94. Bigard A.,Brunet A., Guezennec C-J., Monod H. Effects of chronic hypoxia endurance training on muscle capillarity in rats.Pflugers Arch.,1991,v.419,p.225-229.
95. Blomstrand E., Ekblom B. and Newsholme E.A. Maximum activities of key glycolytic and oxidative enzymes in human muscle from differently trained individuals. J.Physiol.(London)., 1986, v. 381, № 1, p. 111-118.
96. Bloomfield S.A.Changes in musculoskeletal structure and function with prolonged bed rest. Med.Sci.Sports Exerc., 1997, v. 29, №2, p. 197-206.
97. Bodine-Fowler S.C., Roy R.R., Rudolf W., Haque N., Kozlovskaya I.B., and Edgerton V.R. Spaceflight and growth effects of muscle fibres in the rhesus monkey .J.Appl.Physiol., 1992, v. 73, № 2, Suppl., p. 82S-89S.
98. Bodine-Fowler S.C.,Pierotti D.J.,Talmadge R.J.Functional and cellular adaptation to weightlessness in primates.J.Gravit.Physiol., 1995, v. 2, № 1, p. P43-P46.
99. Bonde-Petersen F., Suzuki Y., Kawakudo K., Gunji A. Effect of 20 days bed rest upon peripheral capillary filtration rate, venous compliance and blood flow in arms and legs. Acta Physiol.Scand., Suppl 1994, v. 616, p. 65-69.
100. Booth F.W. and Kirby C.R. Control of gene expression in adult skeletal muscle by changes in the inherent level of contractile activity. Biochem.Soc.Trans., 1991, v. 19, p. 374-378.
101. Booth F.W.,Kirby C.R.Changes in skeletal muscle gene expression consequent to altered weight bearing. Am J.Physiol., 1992, v. 262, p. R329 R332.
102. Brown M.D.,Eggington S.,Walter H.J. Hudlicka O.Increased capillary supply and localization of basic fibroblast growth factor in rat fast skeletal muscle after stretch-induced overload.Int.J.Microcirc.,1992, v. 11, Suppl. 1 S.181.
103. Brzank K.-D. and Pieper K.-S. Mitochondrienverteilung, Austauschstrecken und Versorgungsbedingungen im Skelett-Muskel von Ausdauer, Kraftausdauer sowie Schnellkraft-tranierten. Med. und Sport., 1987, v. 27, № 3, p. 65.
104. Buchtal P. and Schmalbruch H.Motor unit of mammalian muscle. Physiol.Rev., 1980, v. 60, p. 90-142.
105. Buravkova L.,Mailyan E.Oxidative phosphorylation in rat skeletal muscles after space fight on board biosatellites. J.Gravit.Physiol., 1997, v. 4(2), p. P127- P128.
106. Burton W.,Barclay J.Metabolic factors from exercising muscle and the proliferation of endothelial cells.Med.Sci.Sports Exerc.,1986, v. 18, № 4, p. 390-395.
107. Cagswell A.M., Stevens R.J., and Hood D.A. Properties of skeletal muscle mittochondria isolated from subsarcolemmal and intermyofibrillar regions. J.Appl.Physiol., 1993, v. 264, № 2, p. 383-389.
108. Caiozzo V.J., Haddad F., Baker M.J., and Baldwin K.M. Functional and cellular adaptations of rodent skeletal muscle to weightlessness. J.Gravit. Physiol., 1995, v. 2, № 1, p- 39-42.
109. Caiozzo V.,Haddad F.,Baker M.,Herrick R.,Prietto N., Baldwin K.M. Microgravity-induced transformations of myosin isoforms and contractile properties of skeletal muscle. J.Appl.Physiol., 1996, v. 81, № 1, p. 123-132.
110. Campione M., Ausoni S., Guezennec C., and Shiaffino S. Myosin and troponin changes in rat soleus muscle after hindlimb suspension. J.Appl.Physiol., 1993, v. 74, №3, p. 1156-1160.
111. Chi M., Hintz S., Coyle E. Effects of detraning on enzymes of energy metabolism in individual human muscle fibers. Am.J.Physiol., 1983, v. 72, p. C276-287.
112. Chi M.M.,Choksi R.,Nemeth P.,Krasnov I.,Ilyina-Kakueva E., Manchester J.K., Lowry O.H. Effects of microgravity and tail suspension on enzymes of individual soleus and tibialis. J.Appl.Physiol.,1992,v.73,№ 2,Suppl. p. S66-S73.
113. Chromiak J.A. and Vandenburgh H.H. Intermittent mechanical stretch\relaxation of cultured skeletal muscle reduces glucocorticoid- induced atrophy .Med.Sci.Sports Exerc.,1991, v. 23, № 4, Suppl. p. S3.
114. Clarke M.S.F., Bamman M.M., and Feeback D.L. Bed rest decreases mechanically induced myofiber wounding and consequent wound-mediated FGF release. J.Appl.Physiol., 1998, v. 85 (2), p. 593-600.
115. Convertino V.A. Neuromuscular aspects in development of exercise countermea-sures. The Physiologist, 1991, v. 34, № 1, p. 125-128.
116. Convertino V.A.Cardiovascular cjnseguences of bed rest: effekt on maximal oxygen uptake. Med.Sci.Sports Exerc., v. 29, № 2, p. 191-196.
117. Colliander B.,Tesch P.A.Effects of eccentric and concentric muscle actions in resistance training. ActaPhysiol.Scand., 1990, v. 140, № 1, p. 31-39.235
118. Conley E., Kayar S.R., Rossler К. et al.Adaptive variation in the mammalian respiratory system in relation to energetic demand:IV.Capillaries and their relationship to oxidative capacity. Respir.Physiol., 1987, v. 69, p. 47-64.
119. Costill D.L.,Fink W.J.and Pollock M. Muscle fiber composition and enzyme activities of elite distance runners.Med.Sci.Sports.,1976, v. 8, № 2, p. 96-100.
120. HO.Cote F., Simoneau J.-A., Lagarse P. et al. Isokinetic strength protocols: Do they induce skeletal muscle fiber hypertrophy?Arch.Phys.Med.Rehabil.,1988,v.69,p. 281-285.
121. Covell G. and Jaquez J.A. Does myoglobin contribute significantly to diffusion of oxygen in red skeletal muscle? Am.J.Physiol., 1987, v. 252 (Regulatory Integrative Comp.Physiol.21), p.R341-R347.
122. Coyle E.F., Feltner M.E., Kautz S.A. et. al Physiological and biomechanical factors associated with elite endurance cycling performance. Med.Sci Sports Exerc., 1991, v. 23, № 1, p. 93-107.
123. Crenshow A.G., Friden J., Thornell L.-E., Hargens A. Extreme endurance training: evidence of capillary and mitochondria compartmentalization in human skeletal muscle. Eur.J.Appl.Physiol., 1991, v. 63, p. 173-178.
124. Dahlstrom M., Esbjornsson M., Jansson E., Kaijser L. Muscle fibre characteristics in female dancers during an active and an inactive period. Int.J.Sports Med., 1987, v. 8, №2, p. 84-87.
125. D'Aunno D.S., Robinson R.R., Smith G.S., Thomason D.B., and Booth F.W. Intermittent acceleration as a countermeasure to soleus muscle atrophy. J.Appl.Physiol., 1992, v. 72, № 2, p. 428-433.
126. Day M.K., Allen D.L., Mohajerani L., Greenisen M.C., Roy R.R., Edgerton V.R. Adaptations of human skeletal muscle fibers to spaceflight. J. Gravit. Physiol., 1995, v. 2, № 1, p. 47-50.
127. Daub W.D., Green H.J., Houston M.E. et al.Cross-adaptive responses to different forms of leg training: Skeletal muscle biochemistry and histochemistry. Can.J.Physiol.Pharmacol., 1982, v. 60, № 5, p. 628-633.236
128. Denis Ch., Chatard J.-C., Dormois D. et al. Effects of endurance training on capillary supply of human skeletal muscle on two age groups(20 and 60 years). J.Physiol.(Paris)., 1986, v. 81, № 5. p. 379-383.
129. Denis Ch., Dormois D., Linossier M.-T. et al. Total muscle NADH during 30-min submaximal exercise: effects of endurance training. ActaPhysiol.Scand., 1991, v. 142, №2, p. 301-302.
130. Desplanches D.,Mayet M.H.,Sempore B.,Flandrois R.Structural and functional responses to prolonged hindlimb suspension in rat muscle. J.Appl. Physiol., 1987,v. 63, №2, p. 558-563.
131. Desplanches D., Mayet M.H., Ilyina-Kakueva E.I., Sempore В., Flandrois R. Skeletal muscle adaptation in rats flown on Cosmos 1667J.Appl.Physiol., 1990, v. 68, №1, p. 48-52.
132. Desplanches D., Kayar S.R., Sempore В., Flandrouis R. and Hoppeler H. Rat soleus muscle ultrastructure after hindlimb suspension. J.Appl.Physiol., 1990, v. 69, № 2, p. 504-508.
133. Desplanches D., Mayet M.H., Ilyina-Kakueva E.I., Frutoso J. and Flandrois R. Structural and metabolic properties of rat muscle exposed to weightlessness aboard Cosmos 1887. Eur J.Appl. Physiol., 1991, v. 63, p. 288-292.
134. Desplanches D. Structural and Functional Adaptations of Skeletal Muscle to Weightlessness. Int.Sports Med., 1997, v. 18 (Suppl.4), p. S259-S264.
135. Diffee G.M., Caiozzo V.J., McCue S.A, Herrick R.E., Baldwin K.M. Activity-induced regulation of myosin isoform distribution: comparison of two contractile activity programs. J.Appl.Physiol., 1993, v.74(5), p. 2509-2516.
136. Dudley G.A., Abraham W.M., and Terjung R.L. Influence of exercise intensity and duration on biochemical adaptations in skeletal muscle. J.Appl.Physiol., 1982, v. 53, №4, p. 844-850.
137. Dudley G.,Duvosin M.,Convertino V.,Buchanan P.Alterations of the in vivo torque-velocity relationship of human SKeletal muscle following30 days exposure to simulated microgravity.Aviat. Space, Environ.Med., 1989, № 60, p.659-663.237
138. Edgerton V.R., and Roy R.R. Neuromuscular adaptation to actual and simulated spacefight. Handbook of Physiology, Environmental Physiology, edited by M.J. Fregly and C.M. Blatteis, Oxford University Press, New York, 1995, p. 721-764.
139. Eggington S.,Turek Z.,Hoofd L.J.C.Differing patterns of capillary distribution in fish and mammalian skeletal muscle Respir.Physiol.,1988, v. 74, p. 383-396.
140. Eggington S., Hudlicka O. The effect of long-term activation of glycolytic fibres in rat skeletal muscle on the capillary supply and enzyme activities. J.Physiol.(London), 1989, v. 409, p. 7IP.
141. Eggington S., Hudlicka O., Brown M.D., Walter H., Weiss J.B., and Bate A. Capillary growth in relation to blood flow and performance in overlooaded rat skeletal muscle. J.Appl.Physiol., 1998, v. 85(6), p. 2025-2032.
142. Elander A., Idstrom J., Schersten Т., Bylund-Fellenius A. Metabolic adaptation to reduced muscle blood flow.I.Enzyme and metabolite alterations. Am.J.Physiol., 1985, v. 249(Endocrinol.Metabl2), p. E63-E65.
143. Esbjornsson M.,Holm I. Jansson E.Increase in muscle fibre size by sprint training in females but not in males.Acta Physiol.Scand., 1991, v. 143, № 1, p. 21A.
144. Essen В., Jansson E., Henriksson J. Metabolic characteristics of fibre types in human skeletal muscle. Acta Physiol.Scand., 1977, v. 95, № 2, p. 153-165.
145. Fabiato A. and Fabiato F. Calculator programs for computing the composition of the solutions contaning multiple metals and ligands userd for experiments in skinned muscle cells.J.Gen.Physiol.(Paris), 1979, v.75, p.463-505.238
146. Falempin M. and Fodili S. Effect of the elimination of neural influences in the rat soleus muscle during unweighting. BAM., 1995, v. 5, № 2, p. 155-161.
147. Ferrando A.A., Lane H.W., Stuart C.A., Davis-Street J., Wolfe R.R. Prolonged bed rest decreases skeletal muscle and whole body protein synthesis. Am.J.Physiol., 1996, v. 270 (4 Pt 1), p. E627-E633.
148. Ferrando A.,Tipton K.,Bamman M.,Wolfe R.Resistance exercise maintains skeletal muscle protein synthesis during bed rest.J.Appl.Physiol.,1997,v.82(3),p. 807-810.
149. Fitts R.H., Brimmer C.J., Heywood-Cooksey A., Timmerman R.J. Single muscle fiber enzyme shifts with hindlimb suspension and immobilisation.Am.J.Physiol., 1989, v. 256, № 5(Pt.l), p. C1082-C1091.
150. Fitts R.H., Bodine S.C., Romatowski J.G., and Widrick J.J. Velocity, force, power, and Ca2+ sensitivity of fast and slow monkey skeletal muscle fibers. J.Appl.Physiol., 1998, v. 84(5), p. 1776-1787.
151. Foster C., Costill D.L., Daniels J.T. and Fink W.J. Skeletal muscle enzyme activity,fiber composition and V02max in relation to distance running performance. Eur.J.Appl.Physiol., 1978, v. 39, № 2, p. 73-80.
152. Frontera W.R., Meredith C.N., O'Reilly K.P. and Evans W.J. Strength training and determinants of V02 max in older men. J.Appl.Physiol., 1990,v.68, №l,p. 329-333.
153. Furby A., Mounier Y., Stevens L., Leterme D., Falempin M. Effects of chronic electrostimulation on rat soleus skinned fibers during hindlimb suspension. Muscle Nerve, 1993, v. 16, p. 720-726.239
154. Gamrin L., Berg H.E., Essen P., Tesh P.A., Hultman E., Garlick P.J., McNurlan M.A., Wernerman J. The effect of unloading on protein synthesis in human skeletal muscle. J.Appl.Physiol., 1998, v. 163(4), p. 369-377.
155. Gardiner P.F., Favron M. and Corriveau P. Histochemical and contractile responses of rat medial gastrocnemius to 2 weeks of complete disuse. Can.J.Physiol.Pharmacol., 1992, v. 70, № 8, p. 1075-1081.
156. Gayeski Т.Е.J., Honig C.R. 02 gradients from sarcolemma to cell interior in red muscle at maximal V02. Am.J.Physiol., 1986, v. 251 (Heart, Circ.Physiol. 20), p. H789-H799.
157. Gerard E.S., Gajozzo V.J., Rubin B.D. Skeletal muscle profiles among elite long, middle and short distance swimmers. Amer.J.Sports Med., 1986,v. 14,№ 1, p. 77-82.
158. Gertsch H., Claassen H. Howald A. Mitochondrienvolumia und myouglobingehalt in einzelnen muskelfasernvon ausdauersportlern und untrainerten parsonen. Sportsmedizin. Aufgeben und Bedeu tung fur den Menschen in unserer Zeit., 1980, v. 41, p. S.104-105.
159. Goldspink D.F. The influence of immobilization and stretch on protein turnover of rat skeletal muscle. J.Physiol., 1977, v. 264, p. 267-282.
160. Gollnick P.D., Armstrong R.B., Saubert C.W. IV et al. Enzyme activity and fiber composition in skeletal muscle of untrained and trained men. J.Appl.Physiol., 1972, v. 33, №3, p. 312-319.
161. Gollnick P.D., Armstrong R.B., Saltin B. et al.Effect of training on enzyme activity and fibre composition of human skeletal muscle. J.Appl.Physiol., 1973, v. 34, № l,p. 107-111.
162. Graham Т.Е. Saltin B.Estimation of the mitochondrial redox state in human skeletal muscle during exercise. J.Appl.Physiol., 1989, v. 66, № 2, p. 561-566.
163. Green H.J., Thomson J.A., Daub W.D. Fiber composition, fiber size and enzyme activities in vastus lateralis of elite athletes involved in high intensity exercise. Eur.J.Appl.Physiol., 1979, v. 41, № 2, p. 109-117.240
164. Green H.J., Morrisey M., Smith D., and Fraser I. Relationship between microphotometric determinations of succinic dehydrogenase activity in single fibers using kinetics and end point criteria. Med.Sci.Sports Exercis., 1985, v. 17, p. 192.
165. Green H.J.,Sutton J.R., Cymerman A., et.al. Operation Everest II: adaptationin human skeletal muscle. J.Appl.Physiol., 1989, v. 66, № 5, p. 2454-2461.
166. Green H., Jones S., Ball-Burnett M., Smith D.,Livesey J.,Farrance B.W. Early muscular and metabolic adaptations to prolonged exercise training in humans. J.Appl.Physiol., 1991, v. 70, № 5, p. 2032-2038
167. Green H., Heliar R., Ball-Burnett M., et.al. Metabolic adaptations to training precede changes in muscle mitochondrial capacity. J.Appl.Physiol., 1992, v. 72, № 2, p. 484-491.
168. Greenleaf J.E. Intensive exercise training during bed rest attenuates deconditioning. Med.Sci.Sports Exerc., 1997., v. 29, № 2, p. 207-215.
169. Graham S.C., Roy R.R., Hauschka E.O. and Edgerton V.R. Effects of periodic weight support on medial gastrocnemius fibers of suspended rats. J.Appl. Physiol., 1989, v. 67, №3, p. 945-953.
170. Graham S.C., Roy R., West S.P., Thomason D.B., Baldwin K.M. Exercise effects on the size and metabolic properties of soleus fibers in hindlimb-suspended rats. Aviat.Space.Environ.Med., 1989, v. 60, p. 226-234.
171. Grigoriev A.I. Kozlovskaya I.B. Physiological responses jf skeletomuscuilar system to muscle exercises under long-term hypokinetic conditions. The Physiologist, 1988, v. 31, № 1, Suppl. p. S93-S103.
172. Guezennec C.Y., Gilson E. and Serrurier B. Comparative effects of hindlimb suspension and exercise on skeletal muscle myosin isozymes in rats Eur.J.Appl.Physiol., 1990, v. 60, № 6, p. 430-435.241
173. Guezennec C.Y.,Lienhard F., Louisy F. In.situ NADH laser fluorimetry during muscle contraction in humans. Eur J.Appl.Physiol., 1991, v. 63, № 1, p. 36-42.
174. Guth L., and Samaha F. Procedure for the histochemical demonstration of actomyosin ATPase. Exp.Neurol., 1970, v. 29, p. 365-367.
175. Hakkinen K. Neuromuscular and hormonal adaptations during strength and power training. J.Sports Med.Phys.Fitness., 1989, v. 29, № 1, p. 9-26.
176. Harmon M.,Nimmo M.Quantitative histochemical analysis of skeletal muscle adaptation to endurance training in man.J.Physiol.(Lond.), 1987, v. 394, p. 72.
177. Hather.B.M.,Adams G.R.,Tesch P.,Dudley G.A.Skeletal muscle responses to lower limb suspension in humans. J.Appl.Physiol., 1992, v.72, № 4, p. 1493-1498.
178. Hather В., Tesch P., Buchanan P. and Dudley G. Eccentric(ECC) actions and skeletal muscle adaptations to resistance training. Med.Sci.Sports.Exerc., 1991, v. 23, № 4, Suppl. p. S131.
179. Hauschka E.O., Roy R.R. andEdgerton V.R. Periodic weight support effects on rat soleus fibers after hindlimb suspension.J.Appl.Physiol.,1988,v.65,№3,p.l231-1237.
180. Henriksen E., Tischler M.E., Woodman C.R., Munoz K.A., Stump C.S. and Kirby C.R. Elevated interstitial fluid volume in soleus muscles unweighted by spaceflight or suspension.J.Appl.Physiol., 1993, v. 75, №4, p. 1650-1653.
181. Henriksson J.Training-induced adaptation of skeletal muscle and metabolism during submaximal exercise. J.Physiol.(London),1977, v. 270, p. 661-675.
182. Henriksson J., Reitman J. Time course of changes in human skeletal muscle succinate dehydrogenase and cytochrome oxidase activities and maximal oxygen uptake with physical activity and inactivity .Acta Physiol.Scand.,1977,v.99, p.91-97.
183. Henriksson J., Galbo H. and Blomstrand E.Role of the motor nerve in activity-induced enzymatic adaptation in skeletal muscle. Am.J.Physiol., 1982, v. 242, № 11, p. C272-C277.
184. Henriksson J., Svedenhag J., Richter E.A, Christensen N.J. and Galbo H. Skeletal muscle and hormonal adaptation to physical training in the rat.role of the sympathoadrenal system. Acta Physiol.Scand., 1985, v. 123, p. 127-138.242
185. O.Herbert M.E., Roy R.R. and Edgerton V.R. Influence of one-week hind-limb suspension and intermittent high load exercise on rat muscles. Exp.Neurol.,1988, v. 102, p. 190-198.
186. Hikida R.S., Gollnick P.D., Dudley G.A., Convertino V.A., Buchanan P. Structural and metabolic characteristics of human siceletal muscle following 3 0-days of simulated microgravity. Aviat, Space, Environ.Med., 1989, № 60, p. 664-670.
187. Hikida R.S., Van Nostran S., Murray J.D., Staron R.S., Gordon S.E., Kraemer W.J. Myonuclear loss in atrophied soleus muscle fibers. Anat.Rec., 1997, v.247(3), p. 350-354.
188. Holy X. and Mounier Y. Effects of short spaceflights on mechanical characteristics of rat muscles. Muscle Nerve., 1991, v. 14, p. 70-78.
189. Holloszy J.O. Muscle metabalism during exercise. Arch.Phys.Med.,1982,v.63, p. 231-233.
190. Holloszy J.O.,Coyle E.F.Adaptations of skeletal muscle to endurance exercise and their metabolic consequences.J.Appl.Physiol.,1984,v.56,p.831-838.
191. Hoppeler H., Howald H., Conley K., et.al. Enurance training in humans: aerobic capacity and structure of skeletal muscle. J.Appl.Physiol., 1985,v.59,№2,p.320-327.
192. Hoppeler H. Exercise-induced ultrastructural changes in skeletal muscle. Int, J.Sports Med., 1986, v. 7, p. 187-204.
193. Hoppeler H., Kleinert E., Schlegel C., et.al. Morfological adaptations of human skeletal mascle to chonic hipoxif. Int.J.Sports Med., 1990, v. 11, Suppl. 1, p. S3-S9.
194. Hoppeler H., Howald H. and Cerretelly P. Human muscle structure after exposure to extreme altitude. Experientia., 1990, v. 46, № 11-12, p. 1185-1187.
195. Hoppeler H., Desplanches D. Muscle structural modification in hypoxia. Int. J.Sports Med., 1992, v. 13, Suppl. 1, p. S166-168.
196. Howald H. Training-induce morphological and functional changes in skeletal muscle. Int.J.Sports Med., 1982, v. 3, p. 112.243
197. Hochachka P.W., Stanley С., Merkt J. and Sumar-Kalinowski J. Metabolic meaning of elevated levels of oxidative enzymes in high altitude adapted animals: an interpretative hypothesis. Respir.Physiol., 1983, v. 52, p. 303-313.
198. Hoffmann S.J., Roy R.R., Blanco C.E., and Edgerton V.R. Enzyme profilts of single muscle fibers never exposed to normal neuromuscular activity. J.Appl.Physiol., 1990, v. 69, № 3, p. 1150-1158.
199. Houston M.E., Wilson D.M., Green H.J., et al. Physiological and muscle enzyme adaptations in two different intensities of swim training. Eur.J.Appl.Physiol., 1981, v. 46, p. 283-291.
200. Hudlicka O. Growth of capillaries in skeletal and cardiac muscle. Circ.Res., 1982, v. 50, p. 451-461.
201. Hudlicka O. Developmet and adaptability of microvasculature in skeletal muscle. J.Exptl Biol., 1985, v. 115, p. 216-228.
202. Jackson C., Ratzin G., Dickinson A.L., Ringel S.P. Skeletal muscle fiber area alterations in two opposing modes of resistance exercise training in the same individual. Eur.J.Appl.Physiol., 1990, v. 61, № 1-2, p. 37-41.244
203. Jacobs I, Esbjornsson M., Sylven Ch, Holm J., Jannson E. Sprint training effects on muscle myoglobin,enzymes,fibre type and blood lactate. Med.Sci.Sports Exerc, 1987, v. 19, № 4, p. 368-374.
204. Jansson E,Sylven C.,Nordevang E.Myoglobin in the quadriceps femoris muscle of competitive cyclists and untrained men.Acta Physiol.Scand,1982,v.ll4,p.627-629.
205. Jansson E, Dudley G.A., Norman B.,Tesch P.A.Relationship of recovery from intense exercise to the oxidative potential of skeletal muscle. Acta Physiol.Scand., 1990, v. 139, № l,p. 147-152
206. Jaspers S., Tischler M. Role of glucocorticoids in the response of rat leg muscle to reduced activity. Muscle Nerve, 1986, v. 9, p. 554-561.
207. Jiang B,Roy R,Polyakov I,Krasnov I,Edgerton V.Ventral horm cell responses to spaceflight and hindlimb suspension, 1992, v.73,(2), Suppl. p. S107-111.
208. Jiang B, Roy R, Navarro Ch, and Edgerton V.R. Absence of a growth hormone effect on rat soleus atrophy during a 4-day spaceflight. J.Appl.Physiol, 1993, v. 74, №2, p. 527-531.
209. Jones D.P, Aw T.Y, Sillau A.H. Difining the resistance to oxygen transfer in tissue hypoxia. Experintia, 1990, v. 46, p. 1180-1185.
210. Kaijser L, Sundberg C.J, Siken O, Nygren A, Esbjornsson M, Sylven C, and Jansson E. Muscle oxidative capacity and work performance after training under lacal leg ischemia. J.Appl.Physiol, 1990, v. 69(2), p. 785-787.245
211. Kamiya A., Ando J., Shibata M., Wakayama H.The efficiency of the vascular-tissue system for oxygen transport in the skeletal muscles.Microvasc.Res., 1990, v. 39, p. 169-185.
212. Kandarian S.,Boushel R.,Shulte L.Elevated interstitial space of rat soleus muscle by hindlimb unweighting. Med.Sci.Sports Exerc., 1991, v.23, № 4, Suppl. p.23.
213. Kandarian S., O'Brien S., Thomas K., Schulte L., Navarro J. Regulation of skeletal muscle dihydropyridine receptor gene expression by biomechanical loading. J.Appl. Physiol., 1992, v. 72, № 6, p. 2510-2514.
214. Katsuta S., Kanao Y., Aoyagi Y.Is exhaustive training adequate preparation for endurance performance? Eur.J.Appl.Physiol., 1988, v. 58, p. 68-73.
215. Keul J.A., Berg M.L., and Chaver R.S. Ensimadaptacion in Muskel durch Training. Deutshe Z.Sportmed., 1982, № 12, p. 403-407.
216. Kirby C.,Ryan M.J.,Booth F.Eccentric exercise training as a countermeasure to non-weight-bearing soleus muscle atrophy.J.Appl.Physiol.l992,v.73(5)p. 1894-1899
217. Kirwan J.P., Costill, Flynn M.G. et al. Effects of increased training volume on the oxidative capacity, glycogen content and tension development of rat skeletal muscle. Int.J.Sports Med., 1990, v. 11, № 6, p. 479-482.
218. Koryak Yu. A. Contractile properties of the human triceps surae muscle during simulated weightlessness. Eur.J. Appl.Physiol., 1995, v. 70, p. 344-350.
219. Kozlovskaya I.B., Kreydich Yr.V., Oganov V.S., Kozerenko O.P. Pathophysiology of motor functions in prolonged manned space flights. Acta Astronautica., 1981, № 8, p. 1059 1072.
220. Kozlovskaya I.B., Kreydich Yr. V., Rakhmanov A.S.Mechanisms of the effects of weightlessness on the motor system of man. Physiologist., 198 l,v.24,№6,p.59-61.246
221. Kozlovskaya I.B., Aslanova I.F., Grigorieva L.S., Kreidych Yr. V. Experimental analysis of motor effects of weightlessness. Physiologist., 1982, v.25, № 6, p. 49-52.
222. Kozlovskaya I.B., Barmin V.A., Stepantsov V.I., Kharitonov N.M. Results of studies of motor functions in long-term space flight. The Physioligist.,1990, v. 33, №l,p. 1-3.
223. Kozlovskaya I.B., Grigoriev A.I., Stepantzov V.I. Countermeasure of the negative effects of weightlessness on physical systems in long-term space flights. Acta astronautica. 1995, v. 36, № 8-12, p. 661-668.
224. Krippendorf B.B, Riley D.A.Distinguishing unloading-versus reloading induced changes in rat soleus muscle.Muscle Nerve, 1993, v.16(1), p. 99-108.
225. Krippendorf B.Riley D. Temporal changes in sarcomere lesions of rat adductor longus muscles during hindlimb reloading.Anat.Rec., 1994, v.238, p. 304-310.
226. Krogh A. The number and distribution of capillaries in muscles with calculations of the oxygen pressure head necessary for supplying the tissue. J.Physiol.(London), 1919, v. 52, p. 409-415.
227. Kubis J.F., Mc Laughlin E.L., Jackson J.M., Rusnak R., Mc Bride G., Suxon S.V.Task and work performance on sky missions 2,3 and 4. In: Biomedical Results from Skylab., 1977, NASA, SP 377, p. 136 - 154.
228. Larsson L., Skosberg S, and Gur H. Influnce of the interval between removal reference to sample size and fibre type. Acta Physiol. Scand.,1990, v. 139, № 3, p. 451-458.
229. Larsson L., Li X, Berg H.E., Frontera W.R. Effects of removal of weight-bearing function on contractility and myosin isoform composition in single human skeletal muscle cells. Pflugers Arh., 1996, v. 432(2), p. 320-328.247
230. Laughlin M.H., Armstrong R.B. Muscle blood flow during locomotory exercise. Med.Sci.Exerc.Rev., 1985, v.13, p. 95-136.
231. LeBlanc A., Gogia P., Schneider V., Krebs J., Schonfeld E., Jhingram and Johnson P. Calf muscle area and strength changes after 5 weeks of horizontal bedrest. Am.J.Sports Medicine, 1988, v. 16, № 6, p. 624-629.
232. LeBlanc A.D., Schneider V.S., Evans H., Pientok C., Rowe R. and Spector E. Regional changes in muscle mass following 17 weeks of bed rest. J.Appl.Physiol. 1992, v.73,№ 5, p. 2172-2178.
233. LeBlanc A., Rowe R., Schneider V., Evans H., Hedrick T. Regional uscle loss after short duration spaceflight. Aviat Space Environ Med., 1995,v.66,p.l 151-1154.
234. Leterme D.,Falempin M.Compensatory effects of chronic electrostimulation on unweighted rat soleus muscle. Pflugers Arch., 1994, v. 426, p. 155-160.
235. Lindboe C.F. and Slattebo M. Are young female gymnasts malnourished? An anthropometric, electrophysiological and histological study. Eur.J.Appl.Physiol., 1984, v. 52, №4, p. 457-462.
236. MacDougall J.D., Green H.J., Sutton J.R., et.al. Operation Everest II: strucuctural adaptations in skeletal muskle in rasponse to extreme simulated altitude. Acta Physiol. Scand., 1991, v. 141, № 2p. 421-427.
237. Magnus R., Korperstelluing R. Springer, Verlag, Berlin., 1924, p. 540.273 .Martin T.P., Vailas A.C., Durivage J.B. Quantitative histochemical determination of muscle enzymes: biochemical verification. J.Histochem.Cytochem., 1985, v. 10, p. 1053-1059.
238. Martin T.P., Edgerton V.R. and Grindeland R.E.Influence of spaceflight on rat skeletal muscle.J.Appl.Physiol., 1988, v. 65, № 5, p. 2318-2325.
239. Martin W.H., Coggan A.R., Spina R.J., and Saffitz J.E. Effects of fiber type and traning on adrenoreceptor density in human skeletal muscle. AmJ.Physiol., 1989, v. 257, № 5Ptl, p. E736-E742.248
240. Manchester J.K., Chi M., Norris В., Ferrier В., Krasnov I., Nemeth P.M., McDougall D.B., Jr, Lowry O.L. Effect of microgravity on metabolic enzymes of individual muscle fibers. FASEB J., 1990, v. 4, p. 55-63.
241. Marsh D.R., Campbell C.B. and Spriet L.L. Effect of hindlimb unweighting on anaerobic metabolism in rat skeletal muscle. J.Appl.Physiol., 1992, v. 72, № 4, p. 1304-1310.
242. Matoba,T.Wakatuki,Y.Ohira.(3-guanidinpropionic acid suppresses suspension-induced changes in myosin expression in rat skeletal muscle.Med.Sci.Sports Exerc.,1993, v. 25, № 5, p. S157.
243. Mayet-Sornay M.H.,Desplanches D. Rat muscle plasticity in response to simulated or real microgravity. J.Gravit. Physiol., 1996, v. 3(2), p. P-50 P-53.
244. McAllister R.M., Ogilviti R.W., Terjung R.L. Impact of reduced cytochrome oxedase activity on peak oxygen consamption of muscle. J.Appl. Physiol., 1990, v. 69, № 1, p. 384-389.
245. McCall G.E., Goulet C., Grindeland R.E., Hodgson J.A., Bigbee A.J., and Edgerton V.R. Bed rest suppresses bioassayable growth hormone release in response to muscle activity.J.Appl. Physiol., 1997, v. 83 (6), p. 2086-2090.
246. McComas A.J. Neuromuscular functions and disorders. Butterworth.London -Boston., 1977, p. 360.
247. McDonald K.S., Delp M.D., Fitts R.H. Effect of hindlimb unweighting on tissue blood flow in the rat. J.Appl.Physiol., 1992, v. 72, № 6, p. 2210-2218.
248. Merrill A.H., Wang E., Mullins R.E., Grindeland R.E., and Popoval.A. Analyses of plasma for metabolic and hormonal changes in rast flown aboard COSMOS 2044. J.Appl. Physiol., 1992, v. 73, № 2, Suppl. p. S132-S135.
249. Mitarai, Mano Т., Mori H., Jamasaka J. Compensatory leg muscle function shift during adaptation to simulated weightlessness. XXVI Intern. Congress Aerosp.Med. London., 1978, p. 48.
250. Mizuno M., Juel C.,Bro-Rasmussen T. et al.Limb skeletal muscle adaptation in athletes after training at altitude. J.Appl.Physiol., 1990, v. 68, № 2, p. 496-502.
251. Mounier Y.,Bacou F.,Faiempin M.Changes in the neuromuscular junction of rat soleus muscle after hindlimb unweighting. BAM., 1995, v. 5 (2), p. 163-168.
252. Muller W.Subsarcolemmal mitochondria and cappillarization of soleus muscle fibers in young rats subjected to an endurance training. A morphometric study of semithin sections.Cell Tissue-Res., 1976,v. 174(3), p. 367-389.
253. Musacchia X.J., Steffen J.M., Fell R.D., Dombrovsky M.J. Comparative properties of fibers and capillaries in soleus following weightlessness (SL-3) and suspension. The Physiologist., 1988, v. 31, №, p. 28-29.
254. Musacchia X.J., Steffen J.M., Fell R.D. and Dombrovski M.J. Skeletal muscle response to spaceflight, wholebody suspension and recovery in rats J.Appl.Physiol., 1990, v. 69, № 6, p. 2248-2253.
255. Musacchia X., Steffen J., Fell R., Dombrovski M.J., Oganov V. and Ilyina-Kakueva E.I. Skeletal muscle atrophy in response to 14 days of weightlessness: vastus medialis.J.Appl.Physiol.,1992, v.73, № 2, Suppl.p.44S-50S.
256. Nemeth P.M., Lowry O.H. Myoglobin levels in individual human skeletal muscle fibers of different types. J.Histochem.and Cytochem.,1984,v.32,№ll, p. 1211-1216.
257. Nemirovskaya T.L., Shenkman B.S., Koshelev V.B., Nekrasov A.N. Effects of two regimes of hypobaric hypoxia on muscle vascularizationand fibre characteristics in rats. Hyp.Med., 1994, № 1, p. 11-14.
258. Phillips C.D, Schilb E.A., Fiegel V.D, Knighton D.R. A partially purified extract from skeletal muscle stimulates angiogenesis in vivo and in vitro. J.Cell.Biochem, 1991, Suppl.l5f, p. 242.
259. Pattengale P.K, Holloscy J.O. Augementation in skeletal muscle mioglobin by a program of treadmill running. Am. J.Physiol, 1967, v. 213, p. 783-785.
260. Popova I.A, Vetrova E.T, Zaitseva L.V,Larina O.N, Markin A.A, and Fedotova N. Metabolism in cosmonauts: results of blood biochemistry studies in crewmembers of 7 prime missions to the orbital mir station. Physiologist, 1992, v. 35, № l,p. 240-241.
261. Ralston M.A, Merola A.J. and Leier C.V.Depressed aerobic enzyme activity of skeletal muscle in severe chronic heart failure. J.Lab.Clin.Med, 1991, v. 117, № 5, p. 370-372.
262. Reichmann H. and Pette D. A comparative microphotometric study of succinate dehydrogenase activity levels in type I,IIA and IIB fibres of mammalian and human muscles. Histochemistry, 1982, v. 74, p. 27-41.
263. Ren J.M, Henriksson J, Katz A. Sahlin K.NADH content in type I and II human muscle fibres after dynamic exercise.Biochem.J, 1988, v. 251, p. 183-187.
264. Riley D.A, Slocum G.R., Bain J.L, Sedlak F.R, Sowa Т.Е., Mellender J.W. Rat hindlimb unloading: soleus histochemistry, ultrastructure, and electromyography. J.Appl.Physiol, 1990, v. 69(1), p. 58-66.251
265. Riley D.A., Ilyina-Kakueva E.I., Ellis S., W.Bain J.L., Slogum G.R. and Sedlak E.R. Skeletal muscle fiber, nerve, and blood vessel breakdown in space-flown rats. FASEB J., 1990, v. 4, p. 84-91.
266. Riley D.A., Tompson J.L., Krippendorf B.B. and Slocum G.R. Review of spaceflight and hindlimb suspension unloading induced sarcomere damage and repair. BAM, 1995, v. 5(2), p. 139-145.
267. Riley D.A., Bbain J.W., Tompson J.L., Fitts R.H., Widrick J.J.,Trappe S.W., Trappe T.A., and Costill D.L. Disproportionate loss of thin filaments in human soleus muscle after 17-day bed rest. Muscle Nerve, 1998, v. 21, p. 1280-1289.
268. Roy R., Bello M.A., Bouissou P., and Edgerton V.R. Size and metabolic properties of fiber of rat fast-twitch muscles after hindlimb suspension. J.Appl.Physiol., 1987, v. 62, p. 2348-2357.
269. Roy R.R., Pierotti D.J., Flores V., Rudolph W., Edgerton V.R. Fibre size and type adaptations to spinal isolation and cyclic passive stretch in cat hindlimb. J-Anat., 1992, Jun. 180 (Pt 3), p. 491-499.
270. Roy R., Hodgson J.A., Oganov V., Day M.K., Kozlovskaya I., and Edgerton V.R. Recruitment of the rhesus soleus and medial gastrocnemius before, during and after spaceflight. J.Gravit. Physiol., 1996, v. 3(1), p. 11-16.
271. Rusko H.,Havu M.,Karvinen E. Aerobic performance capacity in athletes. Eur.J.Appl.Physiol., 1978, v. 38, p. 151-159.252
272. Rusko H., Bosco С., Komulainen J. , Leinonen A.,Vihko V. Muscle enzyme adaptations to added load during training and non-training hours in rats. J.Appl.Physiol., 1991, v. 70, № 2, p. 764-769.
273. Sale D.G., Jacobs I., MacDougall J., and Garner S. Comparison of two regimens of concurrent srength and endurance training. Med.Sci.Sports Exerc., 1990, v. 22, № 3, p. 348-356.
274. Sale D.G., MacDougall J., Jacobs I., and Garner S. Interaction between concurrant strength and endurance training. J.Appl.Physiol., 1990, v. 68, № 1, p. 260-270.
275. Sancesario G., Massa R., Anzil A.P.,Bernardi G. Active muscle length reduction progressively damages soleus in hindlimb-suspended rabbits. Muscle-Nerve, 1992 Sep. 15(9), p. 1002-1015.
276. Saltin В., Kiens В., Saverd G. Role of hemoglobin and cappilarization for oxygen delivery and extraction in muscular exercise. Acta Physiol.Scand., 1986,Suppl. 556, v. 128, p. 21-32.
277. Schantz P. Capillary supply in hypertrophied human skeletal muscle. Acta Physiol.Scand., 1982, v. 114, p. 635-637.
278. Schantz P. Capillary supply in heavy-resistance trained non-postural human skeletal muscle. Acta Physiol.Scand., 1983, v. 117, p. 153-157.
279. Schantz P.G. Plasticity of human skeletal muscle. Acta Physiol.Scand., 1986, Suppl.558, p. 62.
280. Schultz E. Satellite cell behavior during skeletal muscle growth and regeneration. Med. Sci.Sports Exerc., 1989, v. 21, № 5, p. 181-186.
281. Schwerzmann.K., Hoppeler H.,Kayar S.R., Weibel E.R. Oxidative capacity of muscle and mitochondria: correlation of physiological, biochemical and morhometric characteristics.Proc.Natl.Acad.Sci USA, 1989, v. 86, p. 1583-1587.253
282. Schneider S.H., Komanicky P.M., Goodman M.N., and Ruderman N.B. Dichloroacetate: effects on exercise endurance in untrained rats. Metabolism, 1981, v. 30(6), p. 591-595.
283. Seaborne D., Taylor A.W. The effects isokinetic exersise on vastus lateralis fibre morphology and biochemistry. J.Sport Med., 1981, v. 21, p. 365-370.
284. Shaw S.R., Zernicke R.F., Vailas A.C.,DeLuna D.,Thomason D.B., Baldwin K.M. Mechanical,morphological and biochemical adaptations of bone and muscle to hindlimb suspension and exercise.J.Biomech.,1987, v. 20, p. 225-234.
285. Sjogaard G. Capillary supply and cross-sectional area of slow and fast-twitch muscle fibres in man.Histochemistry, 1982, v. 76, № 4, p. 547-555.
286. Sjogaard G. Muscle morphology and metabolic potential in elite road cyclists during a season. Int.J.Sports Med., 1984, v. 5, p. 250-254.
287. Sillau A.H., Banchero N. Effects of hypoxia on capillary density and fieber composition in rat skeletal muscle. Pfuger Arch., 1977, v. 370, p. 227-232.
288. Snyder G.K. Capillary growth and diffusion distances in muscle. Comp.Biochem. Physiol. A., 1987, v. 87, № 4 , p. 859-861.
289. Sousi В., Idstrom J.-P., Schersten T. Kinetic parameters of cytochrom C-oxidase in rat skeletal muscle: effect of endurance training. Acta Physiol.Scand., 1989, v. 135, p. 373-379.
290. Staron R.S., Hikida R.S., Hagerman F.C. et al. Human skeletal muscle fiber type adaptability to various workloads.J.Histochem.Cytochem.,1984,v.32,№2,p.l46-152.254
291. Stein T.P., Leskiw M.Y., Schluter M.D. Effect of spaceflight on human protein metabolism. Am.J.Physiol., 1993, v. 264(5 12.Pt.l), p. E824-E828.
292. Stein T.P.,Schluter M.D.Human skeletal muscle protein breakdown during spaceflight. Am.J.Physiol., 1997, v. 272 (4 Pt 1), p. E688-E695.
293. Stevens L., Monier Y., and Holy X. Functional adaptation of different rat skeletal muscles to weightlessness.Am.J.Physiol., 1993, v.264, p. R770-776.
294. Stevens L., Picquet F., Catinot M-P., and Monier Y. Differential adaptation to weightlessness of fenctional and structural characteristics of rat hindlimb muscles. J.Gravit. Physiol., 1996, v. 3(2), p. P-54 P. 57.
295. Stump C.S.,Overton J.,Tipton C.Influence of single hindlimb support during simulated weightlessness in the rat.J.Appl.Physiol.,1990,v. 68, № 2, p. 627-634.
296. Sylven C., Jansson E., and Book. Myoglobin content in human skeletal muscle fiber type adaptability to various workloads. J.Histochem.Cytochem., 1984, v. 32, №2, p. 146-152.
297. Swatland H.J. The radial distribution of succinate dehydrogenase activity in porcine muscle fibres. Histochem.J., 1984, v.16, p. 321-329.
298. Tacacs O., Oganov V.S., Hideg J., Szoor A., Rapcak M., Guba F., Szilagyi T. The effect of myofibrillar proteins. J. Muscle Res. Cell. Motility., 1980, v. 1. p. 276-248.
299. Taguchi S., Mori H. andlshihara A. Effects of body suspension on soleus muscle fibres and spinal motoneurones in the rat .Сотр. Biochem. Physiol. Part A. 1991,v. 100, №4, p. 801-803.
300. Taillander D., Bigard X., Desplanches D., Attaix D., Guezennec G.Y., and Arnal M. Role of protein synthesis and fiber distribution in the unweighted soleus muscle. J.Appl.Physiol., 1993, v. 75, № 3, p. 1226-1232.255
301. Takahashi H., Wada M. andKatsuta S. Expressions of myosin heavy chain lid isoform in rat soleus muscle during hindlimb suspension Acta Physiol. Scand. 1991 .v. 143, № l,p. 131-132.
302. Takekura H. and Yoshioka T. Ultrastructural and metabolic profiles of single muscle fibers of different types after hindlimb suspension in rats JapJ.Physiol., 1989, v. 39, p. 385-396.
303. Talmadge R.J., Roy R.R., and Edgerton V.R. Distribution of myosin hearvy chain isoforms in non-weight-bearing rat soleus muscle fibers. J.Appl.Physiol., 1996, v. 81 (6), p. 2540-2546.
304. Taylor R., and Weibel R. Design of the mammalian respiratory system. 1.Problem and strategy. Resp.Physiol., 1981, v. 44, № 1, p. 1-10.
305. Templeton G.H., Sweeney H.L., Timson B.F. et al. Changes in fiber composition of soleus muscle during rat hindlimb suspension. J.Appl.Physiol., 1988, v. 65, № 3, p. 1191-1195.
306. Terrados N.,Jansson E.,Sylven C.et al.Is hypoxia a stimulus for synthesis of oxidative enzymes and myoglobin. J.Appl.Physiol., 1990, v. 68, № 2, p. 2369-2372.
307. Terrados N., Melichna J., Sylven C. and Jansson E. Decrease in skeletal muscle myoglobin with intensive training in man. Acta physiol.Scand., 1986, v. 128, № 4, p. 651-652.
308. Tesch P.A., Sharp D.S. and Daniels W.J. Influence of fiber type composition and capillary density on onset of blood lactate accumulation. Int.J.Sports Med, 1981, v. 2, № 4, p. 252-255.
309. Tesch P.A. and Wright J.E. Recovery from short-term intense exercise: its relation to capillary supply and blood lactate concentration. Eur.J.Appl.Physiol., 1983, v. 52, p. 98-103.
310. Tesch P.A.,Kaiser P.Muscle capillary supply and fiber type characteristics in weight and power lifters. J.Appl.Physiol., 1984, v. 56, № 1, p.35-38.
311. Tesch P.A., Wright E., Vogel J.A. et al The influence of muscle metabolic characteristics on physical performance.Eur.J.Appl.Physiol., 1985, v. 54, № 3, p. 237-243.256
312. Tesch P.A. Skeletal muscle adaptations consequent to long-term heavy-resistance training.Med.Sci.Sports Exerc,1986,v.20,№ 5(Suppl.), p. S132-S134.
313. Tesch P.A, Thorsson A. and Essen-Gustavsson B. Enzyme activities of FT and ST muscle fibers in heavy-resistance trained athletes. J.Appl.Physiol, 1989, v. 67, № 1, p. 83-87.
314. Tesch P.A, Berg H.E, Haggmark T, Ohlsen H, Dudley G.A. Muscle strength and endurance following lowerlimb suspension in man. The Physiologist, 1991,v.34,№ 1, p. S-104 S-106.
315. Tesch P,Ploutz L,Dudley G.A.Effects of 5 weeks of lower limb suspension on muscle size and strength.J.Gravit.Physiol,1994, v. 1, № 1, p. 59-60.
316. Thomason D.B, Herrick R.E, Baldwin K.M. Activity influences on soleus muscle myosin during rodent hindlimb suspension. J.Appl.Physiol, 1987,v.63, p. 138-144.
317. Thornton W.E, Rummel M.D. Muscular deconditioning and its prevention in space flights.Prog. Skylab Life Sci. Symp, 1974, v. 11, p. 403-404.
318. Thornton W.E,Ord J.Physiological mass measurements in Skylab. Washington,DC:National Aeronautics and Space Administration, 1977, p. 377.
319. Thornton W.E, Hoffler G.W, Rummel I.A. Antropometric changes and fluid-shift. In: Biomedical Results of Skylab, 1977, R.S.Yohanson, L.F. Deetlein (eds), Wash. DC, NASA, p. 330-338.
320. Thornton W. Work, exercise and space flight. 1. Operations, environment and effects of spaceflight. In: Proc. JSC Exercise Conf; Houston, 1987, p. 1-8.
321. Thomason D.B, and Booth F.W. Atrophy of the soleus muscle by hindlimb unweighting.J.Appl.Physiol, 1990, v. 68, № 1, p. 1-12.
322. Thomason D, Morrison P.R, Oganov V, Ilyina-Kakueva E.I, Booth F.W. and Baldwin K.M. Altered actin and myosin expression in muscle during exposure to microgravity.J.Appl.Physiol, 1992, v. 73, № 2,Suppl. p. 90S-93S.
323. Tischler M.E, Rosenberg S, Satarug S, Henriksen E, Kirby C, Tome M, and Chase P. Different mechanisms of increased proteolysis in atrophy induced by257denervation or unweighting of rat soleus muscle.Metabolism, 1990, v. 39, № 7, p. 756-763.
324. Tischler M.E.,Henriksen E.J.,Munoz K.A., Stump C.S., Woodman C.R., Kirby C.R.Spaceflight on STS-48 and earth-based unweighting produce similar effects on skeletal muscle of young rats. J.Appl.Physiol., 1993, v. 74, № 5, p. 2161-2165.
325. Tsika R.W., Herrik R.E., Baldwin K.M. Effect of anabolic steroids on skeletal muscle mass during hindlimb suspension. J.Appl.Physiol., 1987, v. 63, № 5, p. 2122-2127.
326. Ullman M.,01dfors A.Effects of growth hormone on skeletal muscle. I.Studies on normal adult rats.Acta Physiol.Scand,1989, v. 135, p. 531-536.
327. Umnova M.M. and Seene P. The effect of increased functional load on the activation of satellite cells in the skeletal muscle of adult rats. Int.J.Sports Med., 1991, v. 12, №5, p. 501-504.
328. Vandenburgh H.H. Motion into mass:How does tension stimulate muscle growth? Med.Sci.Sports Exerc., 1987, v. 19, № 5(Suppl.), p. S142-S149.
329. Veksler V.I., Kuznetsov A.V., Sharov V.G. et.all.Mitochondrial reapiratory parameters in cardiac tissue: a novel method of assessment by using saponin-skinner fibers. Biochem. Bio-Phys. Acta., 1987, v. 892, p. 191.
330. Watt P., Kelly F.G., Goldspink D.F. and Goldspink G. Exercise-induced morphological and biochemical changes in skeletal muscles of the rat. J.Appl.Physiol., 1982, v. 53, №5, p. 1144-1151.
331. Weibel E.R. Stereological methods. New-York Academic., 1979, v. 1.
332. White T.P. and Esser K.A. Satellite cell and growth factor involvement in skeletal muscle growth.Med.Sci.Sports Exerc., 1989, v. 21, № 5, p. S158-S163.
333. Williams R.S., Caron M.G. and Daniel K. Skeletal muscle P-adrenergic receptors: variations due to fiber type and training. Am.J.Physiol., 1984, v. 246, p. E160-E167.
334. Williams R.,Salmons S.,Newsholme E.et al.Regulation of nuclear and mitochondrial gene expression by contractile activity in skeletal muscle. J. Biol. Chem., 1986, v. 261, № i, p. 376-380.
335. Withers P.T., Van Handel P.J., Elder D.H., Costill D.L. Muscle respiratory capacity and fiber type as determinants of the lactate threshold, J.Appl.Physiol., 1980, v. 48, №3, p. 523-527.
336. Wong T.S., and Booth F.W. Protein metabolism in rat tibialis anterior muscle, stimulated chronic eccentric exercise. J.Appl. Physiol., 1990,v.69,№5, p.1718-1724.
337. Wright J.E. Anabolic steroids and athletics.Exerc.Sports Sci Rev.,1980,v;8, p. 149-198.
338. Zhou M.-Y., Klitgaard H., Saltin В., Roy R.R., Edgerton V.R., and Gollnick P.D. Myosin heavy chain isoforms of human muscle after short-term spaceflight. J.Appl.Physiol., 1995, v. 78(5), p. 1740-1744.
339. Zhuang X.C., Sun Y.Z., Cui J., Zhu J.M., Jiang C., Xiang Q.L.,Li C.S. Studies on atrophic change of soleus muscle and its countermeasures in suspended rats.J.Gravit. Physiol. 1994, v. 1, № 1, p. P61-P63.
340. Ziada A., Hudlicka 0., Tyler K. and Wright A. The effect of long-term vasodilatation on capillary growth and performance in rabbit heart and skeletal muscle. Cardiovasc.Res., 1984, v. 18, p. 724-732.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.