Топографо-анатомическое обоснование оперативных доступов к мочеточникам у кошек тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Аверочкин Алексей Николаевич

• Аверочкин Алексей Николаевич
• кандидат наук
• 2025

Оглавление диссертации кандидат наук Аверочкин Алексей Николаевич

ВВЕДЕНИЕ

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Координатно-фигурная мерометрия, как способ стандартизации топографических ориентиров

1.2 К вопросу об актуальности оперативной анатомии мочеполовой системы кошек

1.3 Анатомия брюшной полости и забрюшинного пространства - общие вопросы

1.4 Мочевыделительные органы ретроперитонеального пространства и полости малого таза

1.5 Обоснование практической значимости изучения топографии мочевыделительной системы кошек

1.6 Доступы к мочеточникам

1.7 Органы малого таза

1.8 Доступы к мочевому пузырю

1.9 Предпосылки к распространению инфекции в топографических областях малого таза, пути их предотвращения

2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Методика построения координатно-фигурной сетки гипогастрия кошки

2.2 Протоколы хирургических вмешательств

2.3 Послеоперационный период

2.4 Методы статистической обработки данных

3 РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1 Координатно-фигурная мерометрия живота кошек

3.2 Стереометрический анализ брюшной стенки

3.3 Морфометрический анализ мочеточников у кошек

3.4 Стереометрический анализ стенки мочеточников у кошек

3.5 Характеристика и предоперационные данные прооперированных животных

3.6 Сравнение интра- и послеоперационных результатов при хирургии из забрюшинного доступа

3.7 Ранние послеоперационные результаты

3.8 Сравнение интра- и послеоперационных результатов при хирургии из доступа к малому тазу

3.9 Ранние послеоперационные результаты при вмешательствах на малом

тазу

4 ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ И ПЕРСПЕКТИВЫ ДАЛЬНЕЙШЕЙ

РАЗРАБОТКИ ТЕМЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Топографо-анатомическое обоснование оперативных доступов к мочеточникам у кошек»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования. Выявление общих принципов структурной организации и анатомо-топографических связей органов мочевыделительной системы является одной из актуальных проблем современной ветеринарной морфологии и хирургии мелких домашних животных (Татаринцев С.А., 2024). В ветеринарной практике заболевания мочевыводящих путей у кошек широко распространены: по разным оценкам, на них приходится порядка 6-7 % случаев от общего числа больных животных (Вилковыский И.Ф. и соавт., 2015).

У кошек даже в домашних условиях развивается полная картина мочекаменной болезни. Основными факторами, способствующими ее возникновению, являются высокобелковое питание и гиподинамия, а также естественно низкое потребление жидкости, приводящее к гипогидратации организма и повышению осмолярности мочи. В связи с этим хирургические вмешательства на мочеточниках и мочевом пузыре широко применяются как в лечебных, так и в диагностических целях (Стекольников А.А., 2007). Они выполняются, например, для удаления конкрементов (оксалатов, уратов, струвитов), тромбов, опухолей, а также для взятия биопсийного материала (Kopecny et al., 2021). Инфекционно-воспалительные процессы в уротелии, особенно в области устьев мочеточников, сопровождающиеся отеком, приводят к уростазу и нарушению уродинамики, создавая условия для развития острой постренальной обструкции, опасной для жизни. Часто встречаются и воспалительные патологии мочевого пузыря, вызывающие отек слизистой в области «тригона мочевого пузыря» где находятся два устья мочеточников (Clark H., Lasarev M., Wood M., 2023). Описанные состояния нередко переходят в хронические заболевания, при которых консервативное лечение оказывается малоэффективным и возникает необходимость оперативного вмешательства при уропатологии. При этом выбор адекватного хирургического доступа к

мочевыводящим путям играет решающую роль, так как от него зависят экспозиция оперируемых структур, глубина и степень хирургической травмы, а также вероятность ранних и отдаленных послеоперационных осложнений (Segev G., 2010; Lulich J.P., 2016)

Мировой опыт вмешательств на мочеточниках и мочевом пузыре у кошек пока весьма ограничен и разрознен: отсутствуют систематизированные данные, позволяющие оценить безопасность и оптимальность различных доступов. Так, в ветеринарной клинике Сеула (Республика Корея) за 2018-2022 годы было выполнено лишь около 70 операций по поводу уретролитиаза, а в другом центре за 2006-2014 годы - 117 операций на мочеточниках (включая установку стента); при этом смертность от уретролитиаза составила примерно 8,5 %. Приведенные статистические данные подчеркивают актуальность изучения оптимальных хирургических подходов при патологиях мочевыделительной системы у кошек. При оценке эффективности различных доступов необходимо учитывать такие их характеристики, как удобство выполнения, глубина доступа до оперативного поля, топография важных анатомических структур и риск их повреждения (что может привести к развитию парезов переднебоковой брюшной стенки) (Yan GY et al., 2020). Изучение и сравнение разных хирургических подходов с позиций указанных критериев важно для оптимизации техники операций и обеспечения наилучших непосредственных и отдаленных результатов при хирургическом лечении заболеваний мочеточников и мочевого пузыря у кошек (Hsu et al., 2022).

Степень разработанности темы исследования. Несмотря на длительную историю хирургии органов брюшной полости у мелких домашних животных, вопросы рационального доступа к мочеточникам у кошек освещены в литературе фрагментарно и неоднородно. Описания вмешательств нередко ограничиваются техникой срединной лапаротомии, тогда как внебрюшинные варианты доступа рассматриваются эпизодически и без детального морфологического обоснования. Вследствие этого в практической работе хирурга сохраняется значительный элемент эмпирики: выбор разреза и глубины операционного поля часто определяется индивидуальными предпочтениями, а не

стандартизированными критериями, что затрудняет сопоставимость результатов и воспроизводимость методик (Kaul et al., 2020). Топографическая анатомия мочеточников кошки описана преимущественно в контексте общего строения мочевыделительной системы, без системного картирования проекций на брюшную стенку.

Недостаточно разработан вопрос координатного ориентирования, позволяющего заранее прогнозировать зону безопасного и кратчайшего доступа к целевому сегменту мочеточника и воротам почки (Wormser et al., 2016). В отдельных публикациях упоминаются анатомические ориентиры, однако им редко сопоставляются унифицированные внешние реперные линии, пригодные для планирования разреза в клинических условиях. Морфометрические характеристики мочеточников представлены разрозненно; выявленные авторами разных работ различия между правой и левой сторонами обычно описываются качественно, без единых количественных индексов, которые могли бы служить объективной основой для хирургической тактики. Особенно недостаточно освещены участки предрасположенные к патологиям и обструкциям (Hsu et al., 2022). Гистологические данные, хотя и подтверждают типичную трёхслойную организацию стенки мочеточника, редко интерпретируются в прикладном хирургическом ключе (толщина и архитектоника мышечной оболочки, уязвимость адвентиции в месте наложения швов и т. п.).

Сравнительные клинико-хирургические исследования

трансперитонеального и ретроперитонеального доступов у кошек немногочисленны и, как правило, сфокусированы на непосредственных исходах отдельных вмешательств. В них редко проводится сопоставление интраоперационных параметров (время формирования доступа, глубина раны, особенности экспозиции, объём инфузионной терапии) с ранними послеоперационными событиями (парез кишечника, перитонит, раневая инфекция, сепсис, летальность) в единой методологической рамке. Отсутствие единой схемы отбора клинического материала и стандартизированных критериев эффективности затрудняет формулирование практических

рекомендаций по выбору оптимального доступа ^огтБег е1 а1., 2016; МеЫ е1 а1., 2005; ЬиНеИ е1 а1., 2016).

Материалы автореферата и диссертации частично закрывают эти пробелы. В них предложена координатно-фигурная схема ориентирования на брюшной стенке, позволяющая определить точную локализацию мочеточников и мочевого пузыря и тем самым стандартизировать область разреза. Представлены данные морфометрии и гистологии мочеточников с указанием функционально значимых различий между правой и левой сторонами, а также отмечены сегментарные особенности просвета, имеющие прямое прикладное значение для техники вмешательств (1еЫ1 е1 а1., 2022). Параллельно выполнено клиническое сопоставление трансперитонеального и ретроперитонеального доступов, что позволило оценить не только технические аспекты, но и ранние послеоперационные исходы (Аверочкин А. Н., Ветошкина Г.А., Селезнев С.Б. 2023). Необходимо развернуть интерпретацию морфометрии и гистологии в логике хирургических рисков (осложнения, предпочтительные линии рассечения и ушивания); детализировать тактику оперативного вмешательства и его связь с течением раннего послеоперационного периода; выстроить алгоритм выбора доступа, связывающий топографию, объём вмешательства и прогноз по осложнениям (ЬиЛ^ et а1., 2016; Каи1 et а1., 2020; Оеюих et а1., 2017).

Цель исследования. Целью данного исследования является разработка морфологического обоснования для доступа к мочеточникам у кошек на основе анатомо- топографических данных.

Для достижения этой цели мы поставили перед собой следующие задачи:

1. Определить с помощью координатно-фигурной мерометрии оптимальные доступы к мочеточникам у кошек;

2. Изучить анатомо-топографические особенности строения брюшной стенки у кошек в области гипогастрия;

3. Изучить структурную организацию мочеточников и выявить отделы наиболее предрасположенные к обструкции;

4. Описать трансперитонеальный и ретроперитонеальный доступы к

мочеточникам и выявить частоту возникновения осложнений после его проведения;

5. Провести сравнительный анализ трансперитонеального и ретроперитонеального доступов к мочеточникам у кошек и на основе этого разработать оптимальный подход.

Научная новизна. Впервые дано морфологическое обоснование к рациональным оперативным доступам при лапаротомии, выполняемой в случае операций на мочеточниках у кошек с учетом особенностей их строения; проведен сравнительный анализ трансперитонеального и ретроперитонеального доступов к мочеточникам у кошек и на основе этого разработан наиболее рациональный доступ, основанный на топографической анатомии гипогастрия брюшной стенки у кошек с применением методов послойного препарирования, гистологических и стереометрических исследований; фотографирования и зарисовок.

Теоретическая и практическая значимость исследования. В работе впервые предложен комплексный топографо-анатомический подход к обоснованию оперативных доступов к мочеточникам у кошек. Разработана методика координатно-фигурной мерометрии гипогастрия передней стенки, которая стандартизирует систему анатомических ориентиров при планировании операций. Систематизирован обширный массив анатомических данных, полученных в ходе клинических вмешательств и морфологических исследований, и детально описана топография брюшины и слоистая структура передней стенки живота. Выявлены ключевые зоны оперативного вмешательства, нарушения в которых могут приводить к появлению ранних послеоперационных осложнений. Полученные результаты существенно дополняют морфологическую базу знаний об анатомии кошек и формируют теоретическую основу для дальнейших исследований в абдоминальной хирургии. Сформированная координатно-фигурная мерометрическая сетка имеет важное методическое значение: она может служить основой для подготовки разделов учебников, атласов, справочных руководств и учебных

пособий по топографической анатомии и оперативной хирургии кошек. Включение разработанных топографических ориентиров в учебные материалы и клиническую практику позволит повысить точность планирования операций и унифицировать описание оперативных доступов. Практическая значимость работы определяется разработкой и апробацией новых методик хирургического доступа к органам мочевыделительной системы у кошек. В ходе исследования выявлены пути распространения гнойно-септических процессов по забрюшинным клетчаточным пространствам, что позволяет прогнозировать и предотвращать генерализацию инфекции после оперативных вмешательств. Подробно описаны этапы выполнения трансперитонеального и внебрюшинного доступов, что обеспечивает минимизацию хирургической травмы. Экспериментальные данные подтвердили, что ретроперитонеальный (внебрюшинный) доступ сопровождается меньшей травматичностью, более коротким послеоперационным восстановлением и статистически значимо более низкой летальностью по сравнению с трансперитонеальным. Разработанные методики уже внедрены в клиническую практику кафедры ветеринарии РУДН и успешно применяются при решении реальных хирургических задач. Основные положения исследования также используются при обучении студентов и аспирантов по направлению «Ветеринария». Это подтверждает прикладную ценность результатов работы как для ветеринарной клиники, так и для образовательного процесса.

Методология и методы исследования. Исследование морфологического обоснования оперативных доступов к мочеточникам у кошек проводилось комплексно. На первом этапе в качестве материала использовали трупный (кадаверный) материал 30 домашних кошек (возраст 2-6 лет). Второй этап реализовывали на 20 клинических случаях кошек с заболеваниями мочевыделительной системы, поступивших в ветеринарные клиники Москвы. Диагноз животным ставили на основании анамнеза, клинического обследования, лабораторных и инструментальных исследований. Все животные были разделены на группы случайным образом; кошек с ранее перенесенными

хирургическими вмешательствами или онкологией исключали из исследования.

При исследовании топографии передней брюшной стенки применяли координатно-фигурную мерометрию. Этот метод основан на нанесении на переднюю брюшную стенку двух взаимно перпендикулярных нулевых линий. В данной работе построена мерометрическая сетка гипогастрия: сагиттальная линия проводилась по белой линии живота (от мечевидного отростка до лонного сочленения), а сегментальная - поперечно через пупок. Дополнительно наносили парамедианные и горизонтальные линии (например, по нижним краям ребер и через подвздошные кости). Такая система делила переднюю брюшную стенку на квадранты, упрощая ориентировку при выборе оптимальной области доступа к внутренним органам. Образцы тканей (участки передней брюшной стенки и мочеточников) фиксировали в 5-7% растворе нейтрального формалина, затем заливали в парафин. С помощью микротома нарезали серию тонких срезов (5-10 мкм), которые окрашивали гематоксилином и эозином для выявления общего гистологического строения.

Для стереометрического анализа применяли метод точечного счета: на гистосрез накладывали окулярную сетку (стереомикроскоп МБС-9) и подсчитывали количество узлов сетки, попадающих на различные структурные компоненты тканей. Отношение числа точек, попавших на каждый компонент, к общему числу точек на срезе давало относительную площадь соответствующей структуры. В клинической части исследования наблюдали 20 кошек, разделенных на две группы по типу доступа (по 10 животных в каждой). Первой группе выполняли трансперитонеальную лапаротомию, второй -ретроперитонеальный доступ. До операции всем животным проводили общий клинический осмотр: измеряли температуру тела, частоту сердечных сокращений, частоту дыхания, оценивали состояние видимых слизистых оболочек, тургор кожи и массу тела. Кроме того, каждому животному выполняли общий клинический анализ крови, биохимический анализ сыворотки и анализ мочи. Для визуализации органов мочевыделительной системы и выявления конкрементов проводили рентгенографию брюшной полости (аппарат

VetRaySys iSmart-32Pro). Все операции проводили под общей ингаляционной анестезией (пропофол 2-3 мг/кг, севофлуран 1,0-2,0%) и эпидуральным введением лидокаина (2 мг/кг) (Бетшарт-Вольфенсбергер., 2010). Трансперитонеальный доступ выполняли через срединный разрез по белой линии живота с вскрытием брюшины. Этот классический доступ обеспечивал широкую экспозицию органов брюшной полости, позволяя визуализировать почки, мочеточники, мочевой пузырь и другие структуры. Ретроперитонеальный доступ осуществляли через боковой (фланговый) разрез в подвздошной области, не нарушая целостности брюшины. Такой доступ позволял работать в забрюшинном пространстве, минуя полость живота, что снижало риск внутрибрюшных осложнений. Статистический анализ результатов исследования выполняли с помощью пакета IBM SPSS Statistics (версия 26). Нормальность распределения количественных данных проверяли критерием Шапиро-Уилка; при ненормальном распределении результаты выражали медианой (Ме) и интерквартильным диапазоном (Q1-Q3). Сравнение количественных показателей между двумя независимыми группами проводили с помощью непараметрического U-критерия Манна-Уитни, а качественных признаков - с помощью точного критерия Фишера (или критерия %2 Пирсона при больших объемах выборок). Для множественных сравнений применяли критерий Краскела-Уоллиса, для зависимых выборок - критерий Вилкоксона. Корреляционные связи между признаками оценивали с помощью ранговой корреляции Спирмена, а влияние факторов на вероятность развития событий -методом логистической регрессии (результаты выражали отношением шансов с 95%-м доверительным интервалом).

Использованные средства. Для первого этапа работы использовались следующие методы: меро-метрический метод по А.Ф. Ханжину, макро-микропрепарирование с послойным описанием, морфометрия с учетом линейных показателей и стереометрический анализ на основе световой микроскопии. Для второго этапа во время оперативного вмешательства мы использовали премедикацию которая проводилась всем животным, за 6 часов до

оперативного вмешательства рекомендовалось не кормить животное, ограничить прием жидкости. Для индукции анестезии использовали пропофол (2-3 мг/кг) в сниженной дозировке, для поддержания общей анестезии ингаляционный анестетик севофлуран 1,0 - 2,0 об %. В ряде случаев для индукции и поддержания анестезии использовали только пропофол. У ряда животных эпидуральную анестезию не применяли, но использовали пропофол (2-3 мг/кг) и севофлуран. В раннем послеоперационном периоде проводился мониторинг сатурации, показателей газового состава крови, кислотно -щелочного равновесия, исследовали биохимические показатели, оценивали показатели центральной гемодинамики.

Степень достоверности и апробация результатов исследования. Исследования выполнялись в экспериментальной научно-исследовательской лаборатории департамента ветеринарной медицины аграрно- технологического института Российского университета дружбы народов и ряде ветеринарных центров города Москвы («Медвет», «Биоконтроль», «Лебеди») в период с 2021 по 2025 г. на достаточном количестве животных, полученный материал обработан с помощью статистического пакета анализа данных Microsoft Office 2022 и достоверно подтвержден полнотой рассмотрения предмета исследований в процессе работы. Заключение, выводы и рекомендации обоснованы данными, которые представлены в таблицах и рисунках диссертации. Основные положения и выводы по результатам данной работы внедрены в учебный и научно-исследовательский процесс при обучении студентов и аспирантов по направлениям подготовки «Ветеринария», «Зоотехния», «Ветеринарно-санитарная экспертиза» в ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов», ФГБОУ ВО «Башкирский государственный аграрный университет», ФГБОУ ВО «Крымский федеральный университет имени В.И. Вернадского», ФГБОУ ВО «Великолукская государственная сельскохозяйственная академия».

Достоверность информации подтверждается апробацией материалов на научно-практических конференциях: XIV-XVI Международной научно-практической конференции «Инновационные процессы в сельском хозяйстве»

(Москва, 2022-2025), Ш-1У Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины, зоотехнии, биотехнологии и экспертизы сырья и продуктов животного происхождения» (Москва, 20242025), «Роль ветеринарной науки и образований в современном обществе: к 100-летию Витебской ГАВМ» (Витебск, 2024).

Личный вклад соискателя. Автор принимал участие в планировании исследования, в разработке целей и задач исследования. Автором лично проведен поиск и анализ литературы по проблеме диссертации, отбор животных, организация исследований, сбор клинических данных, выполнение функциональных тестов, формирование базы данных, проведение статистического анализа методами описательной статистики, анализ результатов исследования, оформление работы. В соавторстве участвовал в подготовке статей к публикации.

Соответствие работы паспорту научной специальности. Диссертация соответствует паспорту научной специальности 4.2.1. Патология животных, морфология, физиология, фармакология и токсикология, пунктам 1, 2, 6.

Публикации по теме диссертации. По материалам диссертации опубликовано 7 научных публикаций, в том числе 5 статей в рецензируемых журналах, рекомендованных Высшей аттестационной комиссией Министерства науки и высшего образования Российской Федерации.

Объем и структура работы. Диссертационная работа изложена на 117 страницах компьютерного текста. Включает общую характеристику работы (введение), обзор литературы, описание материала и методов исследований, результаты собственных исследований, обсуждение полученных результатов, заключение (выводы), практические предложения и перспективы дальнейших исследований, список использованной литературы, включающий 148 источников, в том числе 95 иностранных авторов. Научно-квалификационная работа иллюстрирована 29 рисунками и 11 таблицами.

Положения, выносимые на защиту

1. Координатно-фигурная мерометрия живота кошек;

2. Анатомо-топографические особенности брюшной стенки гипогастрия с целью доступа к мочеточникам кошек;

3. Морфологический анализ мочеточников у кошек

4. Сравнительная клинико-морфологическая оценка трансперитонеального и ретроперитонеального доступов к мочеточникам у кошек;

5. Алгоритм действий для определения оптимального доступа к мочеточникам у кошек.

В виду того, что обширное вмешательство в области живота ассоциировано с достаточно длительным периодом заживления кожного разреза, следует найти надежный способ предотвращения генерализации септического процесса. Одним из решений является топографо-анатомический подход к доступу - вскрытие минимального количества клетчаточных пространств.

Внедрение результатов исследования в практику. Основные положения и выводы по результатам данной работы внедрены в учебный и научно -исследовательский процесс при обучении студентов и аспирантов по направлениям подготовки «Ветеринария», «Зоотехния», «Ветеринарно-санитарная экспертиза» в ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов», ФГБОУ ВО «Башкирский государственный аграрный университет», ФГБОУ ВО «Крымский федеральный университет имени В.И. Вернадского», ФГБОУ ВО «Великолукская государственная сельскохозяйственная академия».

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1 Координатно-фигурная мерометрия, как способ стандартизации топографических ориентиров

Вместе с тем анализ литературных данных и практического опыта показывает, что описания хирургических доступов к мочеточникам у кошек зачастую носят фрагментарный характер и опираются на субъективные ориентиры хирурга. Это существенно затрудняет стандартизацию оперативных техник и сопоставимость результатов различных исследований. Для преодоления данной проблемы нами предложен метод координатно-фигурной мерометрии гипогастрия брюшной стенки кошек, позволяющий задать единую систему топографических ориентиров.

Рис.1 Схема строения брюшной полости тела кошки при дорсо-вентральном положении: 1-1- нулевая сагиттальная линия; 2-2-нулевая сегментальная линия; I, II, III, IV - квадранты.

Построение координатной сетки основывается на проведении нулевых сагиттальной и сегментальной линий с последующим делением живота на квадранты и ячейки, каждая из которых имеет фиксированное положение относительно анатомических ориентиров. Таким образом, на латеральной поверхности живота кошки образуются 4 самостоятельно мерометрируемых зон (Рисунки 1, 2) которые называются «квадрантами» и имеют определенные топографо-анатомические ориентиры. Подробная методика построения и применения координатно-фигурной сетки приведена в главе 3 «Материалы и методы исследования».

Рис. 2 Мерометрическая сетка для ориентировки в топографии органов брюшной полости тела кошки: 1- правая парамедианная линия; 2- нулевая сагиттальная линия; 3- левая парамедианная линия; 4- реберная сегментальная линия; 5- нулевая сегментальная линия; 6- подвздошная сегментальная линия

1.2 К вопросу об актуальности оперативной анатомии мочеполовой

системы кошек

Выявление общих принципов структурной организации мочевыводящих органов и их анатомо-топографических взаимосвязей с целью разработки обоснованных методов оперативного вмешательства является одной из актуальных проблем современной ветеринарной морфологии и хирургии мелких домашних животных. Заболевания мочевыводящих путей у кошек регистрируются в ветеринарной практике относительно часто - по разным оценкам на них приходится порядка 6-7 % случаев от общего числа больных животных (Ноздрачев А. Д.; Поляков Е. Л. 1998). Среди главных факторов риска нарушения уродинамики и образования уролитов у домашних кошек отмечают: высокобелковое питание, способствующее повышенной экскреции аммиака и образованию оксалатных солей; гиподинамия, особенно выраженная у пожилых и старых животных. Естественно низкое потребление жидкости, приводящее к гипогидратации организма и повышению осмолярности вторичной мочи.

В результате перечисленных факторов создаются условия для формирования камней в почках и мочеточнике. Одновременно у кошек широко распространены воспалительные патологии мочеполовой системы. Наиболее частой причиной оперативного вмешательства является мочекаменная болезнь. В ветеринарной практике хирургические операции на мочеточниках и мочевом пузыре выполняют для решения следующих задач: удаления конкрементов (оксалаты, ураты, струвиты); удаления тромбов и опухолевых образований; коррекции проходимости и взятия биопсийного материала в зонах сужения или обструкции (БсИтеш^ е1 а1., 2008). Кроме того, острые воспалительные процессы уротелия и восходящие инфекции сопряжены с выраженным отёком слизистой оболочки в области устьев мочеточников. Это ведёт к уростазу и жизнеугрожающей постренальной обструкции почек. В частности, восходящие инфекции почек (например, пиелонефрит) без своевременной хирургической коррекции могут приводить к формированию гидронефроза и острым

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Аверочкин Алексей Николаевич, 2025 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Аверочкин А.Н., Ветошкина Г.А., Кротова Е.А., Селезнев С.Б. Оценка трансмуральной миграции нефро-везикулярного стента в пищеварительный тракт при обструкции мочеточника у кошек. Теоретические и прикладные проблемы АПК, № 3, 2023 стр. 56-59.

2. Аверочкин А.Н., Ветошкина Г.А., Селезнев С.Б. Морфологический анализ мочеточников у домашних кошек. Теоретические и прикладные проблемы АПК, № 2, 2025, стр. 46-49.

3. Аверочкин А.Н., Ветошкина Г.А., Селезнев С.Б. Оценка осложнений после трансплантации почек по методу карреля (Сагге1 patch) у кошек. Теоретические и прикладные проблемы АПК, № 3, 2023 стр. 60-64.

4. Аверочкин А.Н., Ветошкина Г.А., Селезнев С.Б. Результаты хирургического лечения эктопии мочеточников у собак. Теоретические и прикладные проблемы АПК, № 4, 2023 стр. 64-68.

5. Андреева Е. А. Развитие обструктивной уропатии вследствие острой задержки мочи у котов. Методы коррекции. -Ветеринарный Петербург № 2-2017.

6. Андреева Е.А. Идиопатический цистит у кошек // Ветеринарный Петербург. — 2020. — № 5.

7. Андреева Е.А. Пионефроз у кошек и собак // Ветеринарный Петербург. — 2023. — № 2.

8. Андреева Е.А. Развитие обструктивной уропатии вследствие острой задержки мочи у котов. Начало // Ветеринарный Петербург. — 2017. — № 2.

9. Андреева Е.А. Развитие обструктивной уропатии вследствие острой задержки мочи у котов. Продолжение // Ветеринарный Петербург. — 2018.

10. Андреева Е.А. Формы хронического цистита // Ветеринарный Петербург. — 2019. — № 5.

11. Ашуркова, И. В. Эффективность углеводного комплекса на основе фруктозы и ее полимеров (фруктоолигосахариды и инулин) при лечении мочекаменной

болезни кошек / И. В. Ашуркова, К. К. Мурзагулов, Г. Т. Есжанова, А. А. Волков, С. А. Староверов // Ветеринарная патология. — 2012. — Т. 41. № 3. — С. 25-28.

12. Байнбридж, Д. Нефрология и урология собак и кошек (Manual of Canine and Feline Nephrology and Urology) / Д. Байнбридж, Д. Элиот. — Москва : Аквариум. — 2014. — 272 с.

13. Бетшарт-Вольфенсбергер, Р. Ветеринарная анестезиология : учебное пособие / Р. Бетшарт-Вольфенсбергер, А. А. Стекольников, А. Ю. Нечаев. — СанктПетербург : СпецЛит, 2010. — 270 с.

14. Бридак О.С. Уретростомия у котов с пластикой препуцием // Ветеринарный Петербург. — 2021. — № 5.

15. Ватников, Ю. А. Факторы риска развития струвитного уролитиаза у домашних кошек / Ю. А. Ватников, А. А. Руденко, П. А. Руденко, В. И. Кузнецов, С. А. Ягников // Ветник КРАСГАУ. — 2020. — № 11 (164). — С. 122-129.

16. Вилковский, И. Ф. Операции на органах мочевыделительной системы собак и кошек / И. Ф. Вилковский, Д. В. Трофимцов, К. А. Жукова // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. — 2015. — №2 4. — С. 43-49.

17. Зеленевский, Н. В. Анатомия и физиология животных : учебник / Н. В. Зеленевский, М. В. Щипакин, К. Н. Зеленевский. — Санкт-Петербург : Лань. — 2018. — 368 с.

18. Йин С. Полный справочник по ветеринарной медицине мелких домашних животных/ Пер. с англ. - М.: Аквариум Принт, 2008. - 1024 с.

19. Костянко Н.О., Шантыз А.Х., Жолобова И.С., Марченко Е.Ю., Лысенко Ю.А. Габитабс — новый подход к лечению идиопатического цистита кошек // Ветеринарный фармакологический вестник. — 2023. — № 1 (22). — С. 47-62.

20. Кочергин И.А., Симаков М.С., Орлова М.Е., Соколенко С.С. Клинический случай субсерозного подтекания мочи в результате хронического геморрагического цистита у кота // Ветеринарный Петербург. — 2016. — № 1..

21. Кудряшов, А. А. Патологоанатомическая диагностика болезней собак и кошек: учебное пособие / А. А. Кудряшов, В. И. Балабанова. — Санкт-Петербург

: Институт Ветеринарной Биологии. — 2016. — 328 с.

22. Лапшин А.Н. Клинический случай мочеполовой дисплазии у молодой кошки // Ветеринарный Петербург. — 2016.

23. Листова О.В. Эктопия мочеточников: методы диагностики и малоинвазивного лечения // Ветеринарный Петербург. — 2019. — № 5

24. Лунегов А.М., Селиванова И.Р., Лунегова И.В., Матвеев В.М., Шпаковская Ю.С. Анализ и оценка промышленной ветеринарной диеты «brit veterinary Diet cat grain free struvite» в комплексном лечении струвитного уролитиаза // Международный вестник ветеринарии. 2020;(1):57-62.

25. Мартусевич А.К., Русских А.П., Гришина А.А. Биокристаллодиагностика уролитиаза у котов // Вестник РУДН. Серия: Агрономия и животноводство. — 2009. — № 4. — С. 64-71

26. Медведева, Л. В. Применение биоклея при операции на мочевом пузыре у кошек. / Л. В. Медведева, П. Б. Макарова // Ветеринария. — 2012. — № 10. — С. 53-54.

27. Мелешков, С. Ф. Динамика функциональных расстройств мочеиспускания и их клинико-морфологические параллели при урологическом синдроме у кошек / С. Ф. Мелешков // Ветеринарная практика. — 2008. — № 1. — С. 57-63.

28. Миколенко О.Н. Особенности коррекции мочекаменной болезни кошек. / О.Н. Миколенко // Материалы международной научно-практической конференции «Теоретические и прикладные проблемы современной науки и образования» (Курск, 24 - 25 марта 2016 г.) Часть I. Курск. - С. 218-221.

29. Миншагаева, Ф. И. Разработка метода анестезии при хирургическом вмешательстве на органах тазовой полости кота / Ф. И. Миншагаева, Н. В. Шамсутдинова // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. — 2015. — Том 224, № 4. — С. 138141.

30. Нечипоренко Н. А. Неотложные состояния в урологии: учеб. пособие. -Минск: Выш. шк., 2012. - 400 с.

31. Ноздрачев А. Д. Экспериментальная хирургия лабораторных животных : учебное пособие по напр. "Биология" / А. Д. Ноздрачев, Е. Л. Поляков, В. А. Багаев. - Санкт-Петербург [и др.] : Лань, 1998. - 225 с.

32. Пенник, Д. Атлас по ультразвуковой диагностике. Исследования у собак и кошек / Д. Пенник, М. А. д'Анжу. — Москва : «Аквариум Принт», 2015. - 504 с

33. Петров И.Б. Рентгеноконтрастные методы исследования почек и мочевого пузыря в нашей клинической практике // Ветеринарный Петербург. - 2012. - №2 2.

34. Романова Е.Н. Актуальные вопросы лечения идиопатического цистита кошек // Ветеринарный Петербург. — 2023. — № 1.

35. Семёнов Б.С., Назарова А.В. Перинеальная уретростомия у котов: «за» и «против» // Международный вестник ветеринарии. — 2018. - № 2. - С. 130-135.

36. Скрипник, В. И. Лечение мочекаменной болезни у котов / В. И. Скрипник // Ветеринарные науки. — 2012. — № 144. — С. 204-209

37. Смелова, Ю. А. Диагностика и лечение мочекаменной болезни у мелких домашних животных / Ю. А. Смелова, С. Ф. Мелешков // Современные инновационные подходы к решению актуальных ветеринарных проблем в животноводстве. — 2017. — С. 284-287.

38. Стекольников, А. А. Комплексная терапия и терапевтическая техника в ветеринарной медицине : учеб. пособие / А. А. Стекольников. — СПб. : Лань, 2007. — 288 с.

39. Стекольников, А. А. Результаты пилотного исследования влияния бовгиалуронидазы азоксимера на частоту возникновения осложнений после хирургического вмешательства на уретре и мочевом пузыре у кошек / А. А. Стекольников, А. В. Назарова, Б. С. Семёнов, Т. Ш. Кузнецова // Международный вестник ветеринарии. — 2019. — № 4. — С. 158-165.

40. Татаринцев С.А. Хирургический метод коррекции интрамуральной эктопии мочеточников у собак: дис. ... канд. вет. наук: 4.2.1 — Ветеринарная медицина и зоотехния / Санкт-Петербургский государственный университет ветеринарной медицины. — СПб., 2024.

41. Тиктинский О.Л., Калинина С.Н. Пиелонефриты. - СПб.: МедиаПресс, 1996.256 с.

42. Тилли Л., Смит Ф. мл. Болезни кошек и собак: справ; пер. с англ. Под ред. Е. П. Копенкина. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2010.- 848 с.

43. Тимофеев С.В., Филиппов Ю.И., Концевая С.Ю. Общая хирургия животных: учебник / С.В. Тимофеев, Ю.И. Филиппов, С.Ю. Концевая [и др.] ; под ред. С.В. Тимофеева. — М.: Зоомедлит, 2007. — 687 с.: ил. — (Учебники и учеб. пособия для студентов высш. учеб. заведений). — ISBN 978-5-91223-001-1.

44. Тюняев И.В., Ткаченко Л.В. Анализ статистических данных случаев мочекаменной болезни у котов и кошек в городе Барнауле // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. — 2023. — № 9 (227). — С. 81-84. — DOI: 10.53083/1996-4277-2023-227-9-81-84.

45. Уша Б.В., Концевая С.Ю., Луцай В.И. Основы хирургической патологии.-М:Инфра-М, 2023.- 449 с.

46. Ушакова Т.М., Дерезина Т.Н., Чичиленко В.С. Исследование метаболизма и функционирования антиоксидантной системы у кошек с трипельфосфатным уролитиазом // Международный вестник ветеринарии. 2023. №4. C.515-526.

47. Хауни Н., Шакирова Ф.В. усовершенствование техники цистостомии для мелких домашних животных // Международный вестник ветеринарии. 2022. №3. С.264-268.

48. Цветкова К.Н., Чабрикова Т.Д. Результаты терапии идиопатического цистита кошек // Известия Великолукской государственной сельскохозяйственной академии. — 2022. — № 1 (38). — С. 57-63.

49. Чубарова, Е. А. Инцидентность рака мочевого пузыря у собак и кошек в условиях современного мегаполиса / Е. А. Чубарова, С. А. Ягников, Я. А. Кулешова // Международный вестник ветеринарии. — 2012. — № 2. — С. 14-19.

50. Шмакова О.В., Концевая С.Ю. Сравнительные аспекты информативности ультразвуковой и рентген диагностики при уролитиазе у мелких домашних животных // General question of world science. 2021. - №10. - С.47-59.

51. Штагер, И. В. Частота встречаемости и клиническое проявление уролитиаза у домашних животных республики Хакасия. / И. В. Штагер // Международный исследовательский журнал. — 2017. — № 12 (66). — С. 44-47.

52. Щуров И.В., Лудин И.Е. Диагностические возможности компьютерной томографии в патологии органов брюшной полости у мелких домашних животных // Вестник РУДН. Серия: Агрономия и животноводство. — 2010. — №

2. — С. 51-58.

53. Эллиот Дж., Гроер Г Нефрология и урология собак и кошек. 2-е издание/ Пер. с англ. - М.: Акваиум Принт, 2014 -352 с.

54. Aronson LR, Cooper ML. Seasonal variation in mating behavior in cats after desensitization of glans penis. Science. 1966 Apr 8;152(3719):226-30. doi: 10.1126/science.152.3719.226. PMID: 12325355.

55. Bartges JW, Callens AJ. Urolithiasis. Vet Clin North Am Small Anim Pract.2015 Jul;45(4):747-68. doi: 10.1016/j.cvsm.2015.03.001. PMID: 26002797.

56. Binder C, Aurich C, Reifinger M, Aurich J. Spontaneous ovulation in cats-Uterine findings and correlations with animal weight and age. Anim Reprod Sci. 2019 0ct;209:106167. doi: 10.1016/j.anireprosci.2019.106167. Epub 2019 Aug PMID: 31514917.

57. Borges NC, Pereira-Sampaio MA, Pereira VA, Abidu-Figueiredo M, Chagas MA. Effects of castration on penile extracellular matrix morphology in domestic cats. J Feline Med Surg. 2017 Dec;19(12):1261-1266. doi: 10.1177/1098612X16689405. Epub 2017 Feb 8. PMID: 28176530.

58. Borjesson DL. Renal cytology. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2003 Jan;33(1):119-34. doi: 10.1016/s0195-5616(02)00086-4. PMID: 12512379.

59. Bristol-Gould S, Woodruff TK. Folliculogenesis in the domestic cat (Felis catus). Theriogenology. 2006 Jul 1;66(1):5-13. doi: 10.1016/j.theriogenology.2006.03.019. Epub 2006 Apr 18. PMID: 16620931.

60. Buffington CA, Chew DJ, DiBartola SP. Interstitial cystitis in cats. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 1996 Mar;26(2):317-26. doi: 10.1016/s0195- 5616(96)50212-

3. PMID: 8711867.

61. Buffington CA, Chew DJ. Calcium oxalate urolithiasis in cats. J Endourol. 1999 Nov;13(9):659-63. doi: 10.1089/end.1999.13.659. PMID: 10608518.

62. Chatdarong K, Kampa N, Axner E, Linde-Forsberg C. Investigation of cervical patency and uterine appearance in domestic cats by fluoroscopy and scintigraphy. Reprod Domest Anim. 2002 Oct;37(5):275-81. doi: 10.1046/j.1439-0531.2002.00348.x. PMID: 12354179.

63. Chatdarong K, Lohachit C, Kiartmanakul S, Axner E, Forsberg CL. Cervical patency during non-ovulatory and ovulatory estrus cycles in domestic cats. Theriogenology. 2006 Sep 1;66(4):804-10.doi:

10.1016/j.theriogenology.2006.01.053. Epub 2006 Mar 9. PMID: 16529804.

64. Chew DJ, Buffington T, Kendall MS, Osborn SD, Woodsworth BE. Urethroscopy, cystoscopy, and biopsy of the feline lower urinary tract. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 1996 May;26(3):441-62. doi: 10.1016/s0195- 5616(96)50077-x. PMID: 9157646.

65. Clark H, Lasarev M, Wood M. Risk factors of enterococcal bacteriuria in cats:A retrospective study. Can Vet J. 2023 Jan;64(1):40-44. PMID: 36593937; PMCID:PMC9754127.

66. Cleroux A, Alexander K, Beauchamp G, Dunn M. Evaluation for association between urolithiasis and chronic kidney disease in cats. J Am Vet Med Assoc. 2017 Apr 1;250(7):770-774. doi: 10.2460/javma.250.7.770. PMID: 28306489.

67. Coeuriot C, Pontarrasse J, Bouhsina N, Lazard M, Bertrand A, Fusellier M. Ultrasound appearance of the duodenal papilla in clinically healthy cats. J Feline Med Surg. 2022 Dec;24(12): 1267-1273. doi: 10.1177/1098612X221078783. Epub 2022 Mar 7. PMID: 35254144.

68. Correa LM, Demetriou JL. Retrospective assessment of the clinical relevance of surgical biopsies of abdominal lymph nodes in cats: 51 cases (2014-2018). J Feline Med Surg. 2020 Dec;22(12): 1168-1175. doi: 10.1177/1098612X20916387. Epub 2020 May 18. PMID: 32419573.

69. Culp WT, Holt DE. Septic peritonitis. Compend Contin Educ Vet. 2010 0ct;32(10):E1-14; quiz E15. PMID: 21308660.

70. Darawiroj D, Choisunirachon N. Morphological assessment of cat kidneys using computed tomography. Anat Histol Embryol. 2019 Jul;48(4):358-365. doi: 10.1111/ahe.12448. Epub 2019 May 20. PMID: 31106459.

71. Davidson AP, Baker TW. Reproductive ultrasound of the dog and tom. Top Companion Anim Med. 2009 May;24(2):64-70. doi: 10.1053/j.tcam.2008.11.003. PMID: 19501344.

72. de Groat WC. Anatomy of the central neural pathways controlling the lower urinary tract. Eur Urol. 1998;34 Suppl 1:2-5. doi: 10.1159/000052265. PMID: 9705544.

73. Debruyn K, Paepe D, Daminet S, Combes A, Duchateau L, Peremans K, Saunders JH. Renal dimensions at ultrasonography in healthy Ragdoll cats with normal kidney morphology: correlation with age, gender and bodyweight. J Feline Med Surg. 2013 Dec;15(12):1046-51. doi: 10.1177/1098612X13487361. Epub 2013 May 1. PMID: 23635414.

74. Dickerson VM, Rissi DR, Brown CA, Brown SA, Schmiedt CW. Assessment of Acute Kidney Injury and Renal Fibrosis after Renal Ischemia Protocols in Cats. Comp Med. 2017 Feb 1;67(1):56-66. PMID: 28222840; PMCID: PMC5310626.

75. Dos Santos LG, Ferreira PI, Krause A. Mesenchymal stem cell transplantation: Systematic review, meta-analysis and clinical applications for acute kidney injury and chronic kidney disease in dogs and cats. Res Vet Sci. 2024 Aug;175:105313. doi: 10.1016/j.rvsc.2024.105313. Epub 2024 May 31. PMID: 38851051.

76. Drost WT, Henry GA, Meinkoth JH, Woods JP, Lehenbauer TW. Quantification of hepatic and renal cortical echogenicity in clinically normal cats. Am J Vet Res. 2000 Sep;61(9):1016-20. doi: 10.2460/ajvr.2000.61.1016. PMID: 10976729.

77. Drost WT, Henry GA, Meinkoth JH, Woods JP, Payton ME, Rodebush C. The effects of a unilateral ultrasound-guided renal biopsy on renal function in healthy sedated cats. Vet Radiol Ultrasound. 2000 Jan-Feb;41(1):57-62. doi: 10.1111/j.1740-8261.2000.tb00428.x. PMID: 10695882.

78. Fink G, Schofield GC. Experimental studies on the innervation of the ovary in cats. J Anat. 1971 May;109(Pt 1):115-26. PMID: 4104150; PMCID: PMC1270968.

79. Finn-Bodner ST, Hudson JA. Abdominal vascular sonography. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 1998 Jul;28(4):887-942. doi: 10.1016/s0195- 5616(98)50083-6. PMID: 9698620.

80. Franfa LR, Godinho CL. Testis morphometry, seminiferous epithelium cycle length, and daily sperm production in domestic cats (Felis catus). Biol Reprod. 2003 May;68(5): 1554-61. doi: 10.1095/biolreprod.102.010652. Epub 2002 Nov 27. PMID: 12606460.

81. Garcia PH, Feliciano MA, Carvalho CF, Crivellenti LZ, Maronezi MC, Almeida VT, Uscategui RR, Vicente WR. Acoustic radiation force impulse (ARFI) elastography of kidneys in healthy adult cats: preliminary results. J Small Anim Pract. 2015 Aug;56(8):505-9. doi: 10.1111/jsap.12373. Epub 2015 Jun 4. PMID: 26046229.

82. Gatel L, Rault DN, Chalvet-Monfray K, De Rooster H, Levy X, Chiers K, Saunders JH. Ultrasonography of the normal reproductive tract of the female domestic cat. Theriogenology. 2020 Jan 15;142:328-337. doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.10.015. Epub 2019 Oct 14. PMID: 31711706.

83. Gregory CR, Lirtzman RA, Kochin EJ, Rooks RL, Kobayashi DL, Seshadri R, Scott D. A mucosal apposition technique for ureteroneocystostomy after renal transplantation in cats. Vet Surg. 1996 Jan-Feb; 25(1):13-7. doi: 10.1111/j.1532-950x.1996.tb01372.x. PMID: 8719082.

84. Gregory CR, Lirtzman RA, Kochin EJ, Rooks RL, Kobayashi DL, Seshadri R, Scott D. A mucosal apposition technique for ureteroneocystostomy after renal transplantation in cats. Vet Surg. 1996 Jan-Feb;25(1):13-7. doi: 10.1111/j.1532-950x.1996.tb01372.x. PMID: 8719082.

85. Griffin DW, Gregory CR, Kitchell RL. Preservation of striated- muscle urethral sphincter function with use of a surgical technique for perineal urethrostomy in cats. J Am Vet Med Assoc. 1989 Apr 15;194(8):1057-60. PMID: 2708107.

86. Haase-Berglund ML, Yang C, Premanandan C. Histologic evaluation of parovarian nodules in the cat. J Feline Med Surg. 2020 Jun;22(6):571- 574. doi: 10.1177/1098612X19867166. Epub 2019 Aug 14. PMID: 31411532.

87. Hardie RJ, Schmiedt C, Phillips L, McAnulty J. Ureteral papilla implantation as a technique for neoureterocystostomy in cats. Vet Surg. 2005 Jul- Aug;34(4):393-8. doi: 10.1111/j.1532-950X.2005.00060.x. PMID: 16212596.

88. Hardie RJ, Schmiedt C, Phillips L, McAnulty J. Ureteral papilla implantation as a technique for neoureterocystostomy in cats. Vet Surg. 2005 Jul- Aug;34(4):393-8. doi: 10.1111/j.1532-950X.2005.00060.x. PMID: 16212596.

89. Hecht S, Lane IF, Daniel GB, Morandi F, Sharp DE. Diuretic renal scintigraphy in normal cats. Vet Radiol Ultrasound. 2008 Nov-Dec;49(6):589-94. doi: 10.1111/j.1740-8261.2008.00422.x. PMID: 19051652.

90. Hennet JM, Williams J. Traumatic abdominal wall rupture in cats: Decision-making and recommended repair techniques. J Feline Med Surg. 2021 Mar;23(3):234-240. doi: 10.1177/1098612X21993659. PMID: 33627001.

91. Henriksson A, Hamersky J, Kuo K, Gerken K, Moon R. Estimation of percent body surface area in cats with use of computed tomography. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio). 2022 Nov;32(6):743-747. doi: 10.1111/vec.13251. Epub 2022 Sep 25. PMID: 36156372.

92. Hsu HH, Ueno S, Miyakawa H, Ogawa M, Miyagawa Y, Takemura N. Upper urolithiasis in cats with chronic kidney disease: prevalence and investigation of serum and urinary calcium concentrations. J Feline Med Surg. 2022 Jun;24(6):e70-e75. doi: 10.1177/1098612X221089856. Epub 2022 Apr 26. PMID: 35471088.

93. Ichii O, Oyamada K, Mizukawa H, Yokoyama N, Namba T, Otani Y, Elewa YHA,Sasaki N, Nakamura T, Kon Y. Ureteral morphology and pathology duringurolithiasis in cats. Res Vet Sci. 2022 Dec 10;151:10-20. doi: 10.1016/j.rvsc.2022.06.029. Epub 2022 Jul 11. PMID: 35850013.

94. Ichii O, Oyamada K, Mizukawa H, Yokoyama N, Namba T, Otani Y, Elewa YHA, Sasaki N, Nakamura T, Kon Y. Ureteral morphology and pathology during urolithiasis in cats. Res Vet Sci. 2022 Dec 10;151:10-20. doi: 10.1016/j.rvsc.2022.06.029. Epub 2022 Jul 11. PMID: 35850013.

95. Inomata T, Ariga M, Sakita K, Kashiwazaki N, Ito J, Yokoh K, Ichikawa M, Ninomiya H, Inoue S. Development of external genitalia in fetal and neonatal domestic

cats. J Vet Med Sci. 2009 Feb;71(2):139-45. doi: 10.1292/jvms.71.139. PMID: 19262023.

96. Isaya R, Ciccarelli S, Enache D, Specchi S, Pesaresi M, Ferri F, Porporato F, Auriemma E, Contiero B, Coppola LM, Zini E. Gastrointestinal ultrasonographic findings in cats with Feline panleukopenia: a case series. BMC Vet Res. 2021 Jan 7;17(1):20. doi: 10.1186/s12917-020-02720-w. Erratum in: BMC Vet Res. 2021 Apr 2;17(1): 143. PMID: 33413382; PMCID: PMC7791690.

97. Izumi T, Sakakida S, Muranishi Y, Nagai T. Allometric study on the relationship between the growth of ovarian follicles and oocytes in domestic cats. J Reprod Dev. 2012;58(4):484-9. doi: 10.1262/jrd.2012-030. Epub 2012 May 18. PMID: 22673008.

98. Jewell DE, Tavener SK, Hollar RL, Panickar KS. Metabolomic changes in cats with renal disease and calcium oxalate uroliths. Metabolomics. 2022 Aug 13;18(8):68. doi: 10.1007/s11306-022-01925-4. PMID: 35962261; PMCID: PMC9374649.

99. Kaul E, Hartmann K, Reese S, Dorsch R. Recurrence rate and long -term course of cats with feline lower urinary tract disease. J Feline Med Surg. 2020 Jun;22(6):544-556. doi: 10.1177/1098612X19862887. Epub 2019 Jul 19. PMID: 31322040; PMCID: PMC7252222.

100. King MD, Waldron DR, Barber DL, Larson MM, Saunders GK, Troy GC, Zimmerman-Pope N, Ward DL. Effect of nephrotomy on renal function and morphology in normal cats. Vet Surg. 2006 Dec;35(8):749-58. doi: 10.1111/j.1532-950X.2006.00219.x. PMID: 17187637.

101. Kochin EJ, Gregory CR, Wisner E, Cain G, Gourley IM. Evaluation of a method of ureteroneocystostomy in cats. J Am Vet Med Assoc. 1993 Jan 15;202(2):257-60. PMID: 8428831.

102. Kopecny L, Palm CA, Segev G, Larsen JA, Westropp JL. Urolithiasis in cats: Evaluation of trends in urolith composition and risk factors (2005-2018). J Vet Intern Med. 2021 May;35(3):1397-1405. doi: 10.1111/jvim.16121. Epub 2021 May 6.PMID: 33955071; PMCID: PMC8162610.

103. Kovarikova S, Marsalek P, Vrbova K. Cystinuria in Dogs and Cats: What Do WeKnow after Almost 200 Years? Animals (Basel). 2021 Aug 19;11(8):2437. doi: 10.3390/ani11082437. PMID: 34438894; PMCID: PMC8388795.

104. Kurtz M, Desquilbet L, Maire J, Da Riz F, Canonne-Guibert M, Benchekroun G,Maurey C. Alendronate treatment in cats with persistent ionized hypercalcemia: A retrospective cohort study of 20 cases. J Vet Intern Med. 2022 Nov;36(6): 1921-1930. doi: 10.1111/jvim.16508. Epub 2022 Oct 1. PMID: 36181368; PMCID: PMC9708413.

105. Lane IF. Feline urodynamic procedures. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 1996 May;26(3):423-39. doi: 10.1016/s0195-5616(96)50076-8. PMID: 9157645.

106. Lisciandro GR, Fosgate GT. Use of urinary bladder measurements from a point-of-care cysto-colic ultrasonographic view to estimate urinary bladder volume in dogs and cats. J Vet Emerg Crit Care (San Antonio). 2017 Nov;27(6):713- 717. doi: 10.1111/vec.12670. Epub 2017 Sep 26. PMID: 28950423.

107. Lopez Merlo M, Faya M, Blanco PG, Carranza A, Barbeito C, Gobello C. Failure of a single dose of medroxyprogesterone acetate to induce uterine infertility in postnatally treated domestic cats. Theriogenology. 2016 Mar 1;85(4):718-23. doi: 10.1016/j.theriogenology.2015.10.013. Epub 2015 Oct 23. Erratum in: Theriogenology. 2017 May; 94:120. Carransa, A [corrected to Carranza, A]. PMID: 26534826.

108. Lulich JP, Berent AC, Adams LG, Westropp JL, Bartges JW, Osborne CA. ACVIM Small Animal Consensus Recommendations on the Treatment and Prevention of Uroliths in Dogs and Cats. J Vet Intern Med. 2016 Sep;30(5):1564- 1574. doi: 10.1111/jvim.14559. Epub 2016 Sep 9. PMID: 27611724; PMCID: PMC5032870.

109. Maeta N, Kutara K, Saeki K, Hoshi F. Modified Toyoda technique for total cystectomy and cutaneous ureterostomy in a cat. Vet Surg. 2022 Nov;51 (8): 1280-1286. doi: 10.1111/vsu.13865. Epub 2022 Jul 25. PMID: 35877776.

110. Maeta N, Kutara K, Saeki K, Hoshi F. Modified Toyoda technique for total cystectomy and cutaneous ureterostomy in a cat. Vet Surg. 2022 Nov;51 (8): 1280-1286. doi: 10.1111/vsu.13865. Epub 2022 Jul 25. PMID: 35877776.

111. Mantziaras G. Imaging of the male reproductive tract: Not so easy as it looks like. Theriogenology. 2020 Jul 1;150:490-497. doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.03.009. Epub 2020 Mar 14. PMID: 32241560.

112. Mario LC, Morais MP, Borghesi J, Favaron PO, Oliveira FD, Anunciafao ARA, Agopian RG, Gomes SA, Miglino MA. Development of urinary organs in domestic cat during the embryonic and fetal periods. Microsc Res Tech. 2018 Nov;81(11):1286-1294. doi: 10.1002/jemt.23135. Epub 2018 Oct 20. PMID: 30341968.

113. McCarthy TC. Cystoscopy and biopsy of the feline lower urinary tract. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 1996 May;26(3):463-82. doi: 10.1016/s0195-5616(96)50078-1. PMID: 9157647.

114. McLeland S, Quimby J, Lappin MR. Alpha-enolase staining patterns in the renal tissues of cats with and without chronic kidney disease. Vet Immunol Immunopathol. 2019 Jun;212:23-26. doi: 10.1016/j.vetimm.2019.04.009. Epub 2019 May 1. PMID: 31213248.

115. Mehl ML, Kyles AE, Pollard R, Jackson J, Kass PH, Griffey SM, Gregory CR. Comparison of 3 techniques for ureteroneocystostomy in cats. Vet Surg. 2005 Mar-Apr; 34(2):114-9. doi:10.1111/j.1532-950X.2005.00008.x. PMID: 15860101.

116. Nickel RF, Venker-van Haagen AJ. Functional anatomy and neural regulation of the lower urinary tract in female dogs: a review. Vet Q. 1999 Jun;21(3):83-5. doi: 10.1080/01652176.1999.9694999. PMID: 10427632.

117. Nie R, Zhou Q, Jassim E, Saunders PT, Hess RA. Differential expression of estrogen receptors alpha and beta in the reproductive tracts of adult male dogs and cats. Biol Reprod. 2002 Apr;66(4):1161-8. doi: 10.1095/biolreprod66.4.1161. PMID: 11906937.

118. Novellas R, Ruiz de Gopegui R, Espada Y. Assessment of renal vascular resistance and blood pressure in dogs and cats with renal disease. Vet Rec. 2010 May 15;166(20):618-23. doi: 10.1136/vr.b4820. PMID: 20472873.

119. Park IC, Lee HS, Kim JT, Nam SJ, Choi R, Oh KS, Son CH, Hyun C. Ultrasonographic evaluation of renal dimension and resistive index in clinically healthy

Korean domestic short-hair cats. J Vet Sci. 2008 Dec;9(4):415-9. doi: 10.4142/jvs.2008.9.4.415. PMID: 19043318; PMCID: PMC2811784.

120. Perlini M, Bugbee A, Secrest S. Computed tomographic appearance of abdominal lymph nodes in healthy cats. J Vet Intern Med. 2018 May;32(3):1070-1076. doi: 10.1111/jvim.15088. Epub 2018 Mar 23. PMID: 29572939; PMCID: PMC5980431.

121. Poli A, Tozon N, Guidi G, Pistello M. Renal alterations in feline immunodeficiency virus (FIV)-infected cats: a natural model of lentivirus-induced renal disease changes. Viruses. 2012 Sep;4(9):1372-1389. doi: 10.3390/v4091372. Epub 2012 Aug 27. PMID: 23170163; PMCID: PMC3499810.

122. Pritchard E, Samaha G, Mizzi K, Boland L; 99Lives Consortium; Haase B. Candidate causative variant for xanthinuria in a Domestic Shorthair cat. Anim Genet. 2023 Aug;54(4):576-580. doi: 10.1111/age.13318. Epub 2023 Mar 27. PMID: 36970934.

123. Queau Y. Nutritional Management of Urolithiasis. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2019 Mar;49(2):175-186. doi: 10.1016/j.cvsm.2018.10.004. Epub 2018 Dec 21. PMID: 30583809.

124. Richter KP. Laparoscopy in dogs and cats. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 2001 Jul;31(4):707-27, ix. doi: 10.1016/s0195-5616(01)50067-4. PMID: 11487952.

125. Sadeghinezhad J, Nyengaard JR. Cat Kidney Glomeruli and Tubules Evaluated by Design-Based Stereology. Anat Rec (Hoboken). 2019 0ct;302(10):1846-1854. doi: 10.1002/ar.24144. Epub 2019 May 22. PMID: 31087775.

126. Schmiedt CW, Brainard BM, Hinson W, Brown SA, Brown CA. Unilateral Renal Ischemia as a Model of Acute Kidney Injury and Renal Fibrosis in Cats. Vet Pathol. 2016 Jan;53(1):87-101. doi: 10.1177/0300985815600500. Epub 2015 Aug 28. PMID: 26319781.

127. Schreurs E, Vermote K, Barberet V, Daminet S, Rudorf H, Saunders JH. Ultrasonographic anatomy of abdominal lymph nodes in the normal cat. Vet Radiol Ultrasound. 2008 Jan-Feb;49(1):68-72. doi: 10.1111/j.1740- 8261.2007.00320.x. PMID: 18251298.

128. Segev G, Livne H, Ranen E, Lavy E. Urethral obstruction in cats: predisposing factors, clinical, clinicopathological characteristics and prognosis. J Feline Med Surg. 2011 Feb;13(2):101-8. doi: 10.1016/j.jfms.2010.10.006. Epub 2010 Dec 9. PMID: 21145768

129. Sendag S, Alan M, Eski F, Uslu S, Uslu BA, Wehrend A. Postpartum uterus involution observed by real-time ultrasound scanning and vaginal cytology in Van cats. J Feline Med Surg. 2016 Dec;18(12):954-958. doi: 10.1177/1098612X15598546. Epub 2015 Aug 21. PMID: 26297021.

130. Stock E, Duchateau L, Saunders JH, Volckaert V, Polis I, Vanderperren K. Repeatability of Contrast-Enhanced Ultrasonography of the Kidneys in Healthy Cats. Ultrasound Med Biol. 2018 Feb;44(2):426-433. doi: 10.1016/j.ultrasmedbio.2017.09.019. Epub 2017 Nov 22. PMID: 29174044.

131. Stornelli MA, Reyna JC, Stornelli MC, Nunez Favre R, Savignone CA, Tittarelli CM, de la Sota RL. Seasonal changes in testicular cell morphology in domestic male cats (Felis catus). Reprod Domest Anim. 2009 Jul;44 Suppl 2:287-90. doi: 10.1111/j.1439-0531.2009.01448.x. PMID: 19754588.

132. Sugisawa R, Hiramoto E, Matsuoka S, Iwai S, Takai R, Yamazaki T, Mori N, Okada Y, Takeda N, Yamamura KI, Arai T, Arai S, Miyazaki T. Impact of feline AIM on the susceptibility of cats to renal disease. Sci Rep. 2016 Oct 12;6:35251. doi: 10.1038/srep35251. PMID: 27731392; PMCID: PMC5059666.

133. Tanvetthayanont P, Ponglowhapan S, Thanaboonnipat C, Choisunirachon N. Impact of gonadal status on ultrasonographic renal parenchymal dimensions in healthy cats. J Feline Med Surg. 2020 Dec;22(12):1148-1154. doi: 10.1177/1098612X20910541. Epub 2020 Mar 20. PMID: 32195615.

134. Taugner F, Baatz G, Nobiling R. The renin-angiotensin system in cats with chronic renal failure. J Comp Pathol. 1996 Oct;115(3):239-52. doi: 10.1016/s0021-9975(96)80082-x. PMID: 8923235.

135. Tefft KM, Byron JK, Hostnik ET, Daristotle L, Carmella V, Frantz NZ. Effectof a struvite dissolution diet in cats with naturally occurring struvite urolithiasis. J Feline

Med Surg. 2021 Apr;23(4):269-277. doi:10.1177/1098612X20942382. Epub 2020 Jul 24. PMID: 32705911; PMCID: PMC8008402.

136. Torres JA, Kruger SL, Broderick C, Amarlkhagva T, Agrawal S, Dodam JR, Mrug M, Lyons LA, Weimbs T. Ketosis Ameliorates Renal Cyst Growth in Polycystic Kidney Disease. Cell Metab. 2019 Dec 3;30(6):1007-1023.e5. doi: 10.1016/j.cmet.2019.09.012. Epub 2019 Oct 17. PMID: 31631001; PMCID: PMC6904245.

137. Tsutsui T, Kuwabara S, Kuwabara K, Kugota Y, Kinjo T, Hori T. Development of spermatogenic function in the sex maturation process in male cats. J Vet Med Sci. 2004 Sep;66(9):1125-7. doi: 10.1292/jvms.66.1125. PMID: 15472478.

138. Tsutsui T, Oba H, Fujimoto S, Toyonaga M. Spermatogenic function in cats. Reprod Domest Anim. 2012 Dec;47 Suppl 6:247-9. doi: 10.1111/rda.12074. PMID: 23279511.

139. Uchikura K, Nagano M, Hishinuma M. Evaluation of follicular development and oocyte quality in pre-pubertal cats. Reprod Domest Anim. 2010 Dec;45(6):e405-11. doi: 10.1111/j.1439-0531.2010.01590.x. PMID: 20210881.

140. Veraguas D, Gallegos PF, Velasquez AE, Castro FO, Rodriguez- Alvarez L. FSH stimulation of anestrous cats improves oocyte quality and development of parthenogenetic embryos. Theriogenology. 2017 Jan 1;87:25-35. doi: 10.1016/j.theriogenology.2016.08.008. Epub 2016 Aug 13. PMID: 27616216.

141. Vercellini R, Gobello C, D'Francisco F, Olguin S, Arizmendi A, Rodriguez R, Arias DO, Blanco PG. Ultrasonographic evaluation of ovarian morphology and blood flow in prepubertal and pubertal cats. Reprod Domest Anim. 2018 Nov;53 Suppl 3:7478. doi: 10.1111/rda.13355. PMID: 30474334.

142. Villaverde AI, Fioratti EG, Ramos RS, Neves RC, Ferreira JC, Cardoso GS, Padilha PM, Lopes MD. Blood and seminal plasma concentrations of selenium, zinc and testosterone and their relationship to sperm quality and testicular biometry in domestic cats. Anim Reprod Sci. 2014 Nov 10;150(1-2):50-5. doi: 10.1016/j.anireprosci.2014.08.004. Epub 2014 Aug 19. PMID: 25201769.

143. Walter PA, Johnston GR, Feeney DA, O'Brien TD. Renal ultrasonography in healthy cats. Am J Vet Res. 1987 Apr;48(4):600-7. PMID: 3296882.

144. Wormser C, Clarke DL, Aronson LR. Outcomes of ureteral surgery and ureteral stenting in cats: 117 cases (2006-2014). J Am Vet Med Assoc. 2016 Mar 1;248(5):518-25. doi: 10.2460/javma.248.5.518. PMID: 26885594.

145. Wormser C, Clarke DL, Aronson LR. Outcomes of ureteral surgery and ureteral stenting in cats: 117 cases (2006-2014). J Am Vet Med Assoc. 2016 Mar 1;248(5):518-25. doi: 10.2460/javma.248.5.518. PMID: 26885594.

146. Yabuki A, Endo Y, Sakamoto H, Nagayoshi T, Matsumoto M, Suzuki S. Quantitative assessment of renal cortical echogenicity in clinically normal cats. Anat Histol Embryol. 2008 Oct;37(5):383-6. doi: 10.1111/j.1439- 0264.2008.00866.x. Epub 2008 May 29. PMID: 18513275.

147. Yan GY, Chen KY, Wang HC, Ma TY, Chen KS. Relationship between ultrasonographically determined renal dimensions and International Renal Interest Society stages in cats with chronic kidney disease. J Vet Intern Med. 2020 Jul;34(4): 1464-1475. doi: 10.1111/jvim.15814. Epub 2020 Jun 25. PMID: 32585054; PMCID: PMC7379047.

148. Yang CHK, Bateman SW, Yiew XT, Willms AR. Validation of 3- dimensional mathematical computation of feline bladder volume using orthogonal ultrasonographic bladder images. Can J Vet Res. 2022 Jul;86(3):209-217. PMID:35794975; PMCID: PMC9251796.