Влияние биологически активных добавок из водорослей на микробиоту кишечника и экспрессию генов продуктивности и резистентности кур тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Зимин Евгений Евгеньевич

• Зимин Евгений Евгеньевич
• кандидат наук
• 2024

Оглавление диссертации кандидат наук Зимин Евгений Евгеньевич

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Микробиота желудочно-кишечного тракта птицы

1.2 Характеристика макро- и микроводорослей

1.3 Применение макро- и микроводорослей в кормлении сельскохозяйственных животных

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1 Эффективность применения бурой водоросли Фукуса Пузырчатого в кормлении кур-несушек (1 эксперимент)

3.1.1. Интенсивность яйцекладки кур-несушек

3.1.2 Масса яиц

3.1.3 Живая масса птицы

3.1.4 Качество яиц

3.1.5 Биохимический анализ сыворотки крови

3.1.6 Анализ микробиоты ЖКТ

3.1.7 Экспрессия генов продуктивности и резистентности

3.2 Эффективность применения бурых водорослей Ламинарии и

Фукуса Пузырчатого в кормлении кур-несушек (2 эксперимент)

3.2.1 Интенсивность яйцекладки кур-несушек

3.2.2 Масса яиц

3.2.3 Живая масса птицы

3.2.4 Качество яиц

3.2.5 Биохимический анализ сыворотки крови

3.2.6 Экспрессия генов продуктивности и резистентности

3.3 Результаты производственной проверки

3.3.1 Яичная продуктивность при скармливании Фукуса Пузырчатого

3.3.2 Экспрессия генов продуктивности и резистентности

ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ

4.1 Эффективность применения бурой водоросли Фукуса Пузырчатого в кормлении кур-несушек (1 эксперимент)

4.2 Эффективность применения бурых водорослей Ламинарии и

Фукуса Пузырчатого в кормлении кур-несушек (2 эксперимент)

ГЛАВА 5. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ НАУЧНЫХ ПОЛОЖЕНИЙ

ПЕРСПЕКТИВЫ ДАЛЬНЕЙШЕЙ РАЗРАБОТКИ ТЕМЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЯ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

БАД - Биологически активные добавки ЖКТ - Желудочно-кишечный тракт СВ - Сухое вещество

ПЦР-РВ - Полимеразная цепная реакция в реальном времени

NGS - Секвенирование нового (следующего) поколения

OCX-36 - Ген овокаликсин-36

OCX-32 - Ген овокаликсин-32

OC-116 - Ген овоклеидин-116

CALB1 - Ген кальбиндин

IL8 - Ген интерлейкин-8

PENK - Ген проэнкефалин

Gal-10 - Ген галлинацин-10

AvBD9 - Ген бета-дефензин

ПТГ - Паратиреоидный гормон

ГГТ - Гамма-глутамилтрансфераза

АЛТ - Аланинаминотрансфераза

ДНК - Дезоксирибонуклеиновая кислота

РНК - Рибонуклеиновая кислота

ОС - Основной рацион

ФП - Фукус Пузырчатый

КРС - Крупный рогатый скот

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Влияние биологически активных добавок из водорослей на микробиоту кишечника и экспрессию генов продуктивности и резистентности кур»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Птицеводство является одной из ведущих отраслей сельского хозяйства благодаря высоким показателям производства яиц и мяса птицы. Россия занимает 4-е место в мире по производству мяса птицы и 7-е место по производству яиц [63]. В настоящее время актуальной проблемой в промышленном птицеводстве является поиск кормовых добавок и технологий, способствующих реализации генетического потенциала сельскохозяйственной птицы. Одним из решений данной проблемы являются молекулярно-генетические методы исследований уровней экспрессии генов продуктивности и резистентности, позволяющие оценить влияние кормовых добавок на здоровье, продуктивность и качество продукции на молекулярном уровне [32].

Современные технологии, направленные на реализацию максимальной продуктивности, нередко приводят к ухудшению здоровья животных и качества продукции. Бесконтрольное применение кормовых антибиотиков с целью увеличения продуктивности привело к переносу антибиотикорезистентности от животного к человеку [9, 10]. Современная сельскохозяйственная наука требует более совершенных и новых подходов в получении экологически чистой и высококачественной продукции [7].

К препаратам, которые позволяют увеличить продуктивность и сохранность, обеспечить более полную реализацию генетического потенциала птицы относят пробиотики, пребиотики, симбиотики, фитобиотики, органические кислоты и др. [1, 19, 29, 117].

В условиях промышленного птицеводства значительно возрастает

микробиологическая нагрузка на организм птицы. Применение биологически

активных кормовых добавок, поддерживающих развитие нормальной микрофлоры

кишечника и направленных на стимуляцию защитных сил организма,

рассматривается как один из наиболее перспективных подходов при решении

проблемы противостояния инфекционным процессам. Пробиотические и

пребиотические препараты улучшают функционирование кишечника и

5

нормализуют процессы переваривания корма у животных. Состояние кишечника определяет здоровье птицы, эффективность использования питательных и биологически активных веществ, что связано с ростом и развитием, конверсией корма. Микробиота кишечника птиц способна синтезировать аминокислоты, ферменты, витамины и другие ценные метаболиты [33, 59].

Ввод в рацион птицы кормовых добавок из местных растительных ресурсов способствует повышению уровня естественной резистентности организма, продуктивности кур-несушек, качества яиц, экономии корма на единицу произведенной продукции [10].

Морская среда - перспективный источник биологически активных соединений. Морские водоросли выступают в качестве пребиотика, являются важнейшим источником витаминов, способны синтезировать большое количество биологически активных веществ, не встречающихся в растениях на суше, содержат широкий спектр микроэлементов [106, 146]. Способность к синтезу полисахаридов является уникальным свойством морских водорослей. Наряду с широко известной альгиновой кислотой, водоросли содержат полисахариды - ламинаран и фукоидан, которым принадлежит основная роль в биологическом действии водорослей [46, 89, 147].

Степень разработанности темы. Научной основой для исследований по теме послужили работы Алиевой С.М. и др. [2, 3]; Наумовой Л.И. [46, 47]; Игнатович Л.С. и др. [24, 25].

Алиева С.М. и др. [2, 3] изучали влияние 3 % зеленых морских водорослей и 2 % крапивы двудомной на качественные и количественные характеристики мяса цыплят-бройлеров.

Наумова Л.И. и др. [46, 47] провели опыт по скармливанию бурых водорослей 2,5 %, шелухи кедрового ореха 1,2 %, экстракта патринии 0,5 % с целью увеличения продуктивных показателей кур-несушек.

Игнатович Л.С. и др. [24, 25] в своих работах рассматривали вопрос скармливания 3-5 % бурых водорослей и их совместного применения с другими дикорастущими растениями для повышения продуктивных качеств кур-несушек.

С учетом вышеизложенных данных, в нашей стране изучалось влияние водорослей на зоотехнические показатели, но исследования, посвященные изучению влияния бурых водорослей на экспрессию генов яичной продуктивности и резистентности кур-несушек, вообще не проводились.

Цель и задачи исследования. Цель исследования - изучить эффективность применения БАД различных водорослей на микробиоту кишечника и экспрессию генов продуктивности и резистентности кур.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Определить оптимальный уровень ввода в корма БАД из водорослей;

2. Изучить влияние добавок на яйценоскость, качество яиц и сохранность птицы;

3. Определить влияние БАД на некоторые биохимические показатели крови;

4. Изучить динамику изменения микрофлоры ЖКТ с помощью N08 секвенирования;

5. Оценить уровень экспрессии генов, связанных с яичной продуктивностью и резистентностью кур под влиянием водорослей с помощью ПЦР-РВ.

6. Определить экономический эффект от применения БАД.

Научная новизна работы. Впервые изучено влияние биологически активных добавок из бурых водорослей на микробиоту кишечника с использованием современных молекулярно-генетических методов исследования, так как большинство сведений о микрофлоре, населяющий кишечник птицы, получено с использованием классических методов микробиологии. Также впервые в нашей стране рассмотрено влияние различных водорослей на экспрессию генов яичной продуктивности и резистентности птицы.

Молекулярно-генетические методы исследования позволяют определить, как реакцию организма на уровне экспрессии генов в тканях, так и изменение состава микробиома кишечника под воздействием на него активных компонентов.

Научная новизна исследовательской работы подтверждена патентом РФ на изобретение № 2819250 «Способ повышения продуктивности кур-несушек» от 10.12.2023 г. (Приложение 1).

Теоретическая и практическая значимость работы. Пребиотическая добавка бурых водорослей способствует увеличению массы яиц и улучшению их качества. Благодаря молекулярно-генетическим методам, было установлено, что Фукус Пузырчатый и Ламинария способствуют активации генов продуктивности, связанных с качеством скорлупы куриного яйца. Результаты исследований могут быть применены на практике, в кормлении кур-несушек высокопродуктивных кроссов.

Материалы исследований вошли в «Методические рекомендации по применению антимикробной кормовой добавки для профилактики стрессов у промышленных кроссов кур-несушек» [31].

Методология и методы исследования. Для достижения цели и выполнения поставленных задач использовали зоотехнические, биохимические, молекулярно-генетические, экономические и биометрические методы исследований. Полученные экспериментальные данные обработаны на персональном компьютере с использованием программ «Microsoft Excel» и «Jamovi версии 2.3.28.0» с вычислением основных статистических параметров.

Степень достоверности и апробация результатов. Исследования были

проведены с использованием современных методик и специализированного

оборудования в Международной лаборатории молекулярной генетики и геномики

птицы кафедры зоогигиены и птицеводства им. А.К. Даниловой ФГБОУ ВО

МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина. Научные выводы основаны на анализе и

обработке данных с использованием методов вариационной статистики, что

8

позволяет подтвердить степень достоверности полученных результатов и обеспечить надежность и объективность исследований.

Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на:

• Юбилейной 25-ой Пущинской школе-конференции молодых ученых с международным участием «Биология - наука XXI века» (г. Пущино, 2022);

• IV Международной конференции «Биотехнологии - драйвер развития территорий» (г. Вологда, 2022);

• VII Всероссийском конкурсе научно-исследовательских работ студентов и аспирантов (г. Новосибирск, 2022);

• I этапе Всероссийского конкурса на лучшую научную работу среди студентов, аспирантов и молодых ученых вузов Минсельхоза России (г. Москва, 2022);

• II этапе Всероссийского конкурса на лучшую научную работу среди студентов, аспирантов и молодых ученых вузов Минсельхоза России (г. Иваново, 2022);

• Научно-практической конференции для молодых ученых «Молодежная наука в современной ветеринарии, зоотехнии и биотехнологии: традиции, инновации и приоритеты» (г. Москва, 2023);

• Всероссийской научной конференции «Биологические ресурсы и цифровизация» (г. Санкт-Петербург, 2023);

• Международном научном форуме «Современные достижения и проблемы физиологии и кормления животных» (г. Подольск, 2024);

• Межкафедральном совещании ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА им. К.И. Скрябина (2020-2024).

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

1. Оценка влияния кормовых добавок из бурых водорослей на яйценоскость,

массу и качество яиц, сохранность и живую массу птицы.

2. Молекулярно-генетическая оценка уровня экспрессии генов продуктивности и резистентности в результате скармливания БАД из водорослей Фукуса Пузырчатого и Ламинарии.

3. Анализ микробиоты ЖКТ кур в результате скармливания БАД из водорослей Фукуса Пузырчатого.

4. Биохимический анализ сыворотки крови кур-несушек в результате скармливания БАД из морских водорослей.

Личный вклад автора. Диссертация является результатом исследований автора с 2020 по 2024 гг. Диссертантом самостоятельно поставлена цель и определены задачи исследований, проанализирована специальная литература по теме диссертации. Ему принадлежит постановка экспериментов, анализ полученных данных, написание статей и диссертационной работы. Личный вклад соискателя при выполнении диссертации составляет более 85 %.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 11 работ, из них 3 в журналах Перечня ВАК РФ, в т.ч. 1 международной базы Scopus, 1 патент РФ и 1 методические рекомендации.

Благодарность. Особую благодарность и признательность за поддержку и неоценимую помощь в научно-исследовательской работе хочу выразить своему научному руководителю: д.с.-х.н., профессору, академику РАН Кочишу И.И. Также хочется выразить благодарность сотрудникам кафедры зоогигиены и птицеводства им. А.К. Даниловой ФГБОУ ВО МГАВМиБ-МВА имени К.И. Скрябина.

Объем и структура диссертации. Диссертационная работа изложена на 120 страницах компьютерного текста, состоит из: введения, обзора литературы, материалов и методов исследований, результатов собственных исследований и их обсуждения, заключения и рекомендаций по использованию научных положений, списка использованной литературы, включающего 173 источника, из них 66 отечественных и 107 зарубежных авторов. Работа содержит 28 таблиц, 12 рисунков и 3 приложения.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

В настоящее время наряду с внедрением прогрессивных энергосберегающих технологий, в комбикормовой промышленности широко применяют нетрадиционные виды сырья и вторичные ресурсы, получаемые при производстве пищевых продуктов. Отмечается, что содержание вторичных ресурсов достигает 60-80 % по массе комбикорма, и может достигать 95 %. Переработка вторичных ресурсов способствует повышению рентабельности, позволяет снизить затраты на зерно при производстве комбикормов [71].

По прогнозам ученых, в 2050 году миру потребуется на 60-70 % больше продукции животного происхождения, чем потребляется в настоящее время из-за постоянного роста населения и изменения климата [96]. Животноводство будет нуждаться в большем количестве кормов, что будет достаточно большой проблемой с учетом деградации земель из-за ранее использовавшихся методов интенсификации, включая климатические проблемы [162]. Расширение базы кормовых ресурсов путем выявления новых кормов или разработки новых добавок, повышающих эффективность их использования, сыграло бы жизненно важную роль в развитии животноводства [123].

Использование природных кормовых ресурсов - перспективный и эффективный способ полноценного кормления животных, способствующий улучшению производственных функций и повышению продуктивности [56]. Морская среда - неиспользованный источник биологически активных соединений [141]. Водоросли считаются перспективными источниками питательных веществ, но они недостаточно используются в качестве сельскохозяйственной культуры [1 9, 27]. Исследования in vivo на жвачных, свиньях, птице и кроликах показывают, что некоторые морские водоросли способны удовлетворить потребность в белке и энергии, в то время как другие содержат ряд биологически активных соединений, которые могут быть использованы для повышения продуктивности и здоровья животного [21, 23, 107]. У морских водорослей выход белка на единицу площади составляет 2,5-7,5 т/га/год и 4-15 т/га/год по сравнению с соей, бобовыми,

11

пшеницей (0,6-1,2 т/га/год; 1-2 т/га/год и 1,1 т/га/год), стоит также отметить, что водоросли не требуют пресноводных или пахотных земель [74, 101, 111, 138].

Использование антибиотиков - вторая немаловажная проблема текущего и будущего животноводства. Антибиотики обладают рядом нежелательных побочных действий: угнетается микрофлора ЖКТ, ослабляется иммунитет, а в случае неправильного их использования, возможно развитие устойчивости у бактерий к используемому препарату. Возможен перенос антибиотикорезистентности от животного к человеку из-за неконтролируемого применения антибиотиков [9], это и послужило причиной запрета большинства антибактериальных препаратов в США и странах Западной Европы [16].

К препаратам, которые являются альтернативой кормовым антибиотикам относят пробиотики, пребиотики, симбиотики, органические кислоты и др. [29]. Данные добавки исключают негативные последствия и не уступают антибиотикам по эффективности [19]. К такому виду сырья относится коллекторная марикультура - морские водоросли с уникальной химической структурой и повышенной биологической активностью, не имеющая аналогов среди соединений, содержащихся в наземных растениях [50, 60, 161].

Мир водорослей разнообразен, уникален, огромен. По прошествии многих лет водоросли приобрели совершенные физиологические и морфологические формы, приспособились к различным условиям среды. Все это привело к их широкому распространению [149, 154]. Водоросли являются биологическими фильтрами для очистки загрязненных вод, а также продуцируют значительную долю мирового кислорода, роль которого трудно переоценить для всего живого. Известно, что 80 % кислорода выделяется морскими водорослями и микроводорослями и только 20 % наземными растениями [102, 103, 106].

1.1 Микробиота желудочно-кишечного тракта птицы

Микробиом кишечника представляет собой совокупность микроорганизмов,

включая бактерии, археи, вирусы, грибы и их общую генетическую информацию.

Кишечная микробиота оказывает широкое влияние на здоровье и благополучие сельскохозяйственных животных, влияя на их иммунную систему и обмен веществ, выводя токсины из различных потребленных компонентов и даже влияя на поведенческие реакции [163].

Изменения в составе микробиоты коррелируют с различными возрастными этапами, составом рациона, условиями содержания, применением антибиотиков и состоянием здоровья. На начальных этапах жизни, на состав флоры кишечника большее влияние оказывает возраст и генетика, а не внешние факторы [26, 98, 153].

Известно, что состав кормов оказывает непосредственное влияние на качественные и количественные характеристики микробного сообщества желудочно-кишечного тракта. Несбалансированное кормление кур приводит к нежелательным изменениям, что является причиной снижения продуктивности и возникновения ряда заболеваний вследствие нарушения процессов пищеварения [118, 166].

Изначально исследование микробного состава кишечника ограничивалось использованием классических методов посева на питательную среду. С введением в массы молекулярных методов исследования в области микробиоты кишечника, позволило пересмотреть и расширить представления о разнообразии кишечной флоры. Последние исследования кишечника позволили сделать предположение, что желудочно-кишечный тракт птицы содержит около 640 разновидностей бактериальных микроорганизмов. Численность и разнообразие кишечной микрофлоры варьируют в разных отделах кишечника [30, 110].

По данным RycЫik I. в проксимальном отделе пищеварительного тракта птицы (зоб) преобладают лактобациллы и галлибактерии (семемейство Ра81еиге11асеае, филум Рго1еоЪас1впа), которые участвуют в переваривании пищевой массы и обеспечивают образование молочной кислоты [152]. В железистом и мускульном желудке доминируют лактобациллы и протеобактерии, предположительно из-за их устойчивости к кислой среде. По мере удаления от

желудка и с повышением pH микрофлора тонкого кишечника постепенно меняется. В тонком кишечнике довольно низкое разнообразие микробиоты, а в подвздошной кишке в среднем выделяют около 5 различных родов бактерий. В 12-перстной кишке птицы главенствуют лактобациллы, энтерококки и энтеробактерии. В тонком кишечнике присутствуют бактерии из филума Firmicutes, а именно Lactobacillus, Enterococcus, Turicibacter, Clostridium, также довольно часто в этом отделе фиксируют присутствие E.coli или Helicobacter из филума Proteobacteria. В подвздошной и ободочной кишках превалирующее положение остается за лактобактериями, однако постепенно существенную роль в микробиологическом процессе начинают играть энтерококки и пропионово-кислые бактерии. По мере продвижения вниз, по ЖКТ, состав и сложность микробиоты значительно возрастает в дистальных отделах кишечника. Отмечается, что в слепых отростках содержится примерно 1000 различных видов микроорганизмов, которые принадлежат двум основным филумам, грамположительным Firmicutes и грамотрицательным Bacteroidetes, за которыми следуют два второстепенных филума Actinobacteria (грамположительные) и Proteobacteria (грамотрицательные). В этих филумах выделяют бактерии, которые потенциально связаны с продуктивностью: Lactobacillus salivarius, Lactobacillus aviarius, Lactobacillus crispatus, Clostridium lactatifermentans, различные члены семейства Ruminococcaceae, Bacteroides vulgatus, Akkermansia, Faecalibacterium. В толстом кишечнике преобладают бифидобактерии, лактобактерии и бактероиды [86, 124, 142, 159].

Микробиота кишечника действует как противоинфекционный барьер, подавляя прикрепление патогенов и их последующую колонизацию, а также продукцию бактерицинов и других токсичных метаболитов, исключая патогенные микроорганизмы, ферментируя сложные полисахариды и обеспечивая организм хозяина энергией. Бета-дефензины - это небольшие антимикробные пептиды, которые присутствуют на поверхности эпителия кишечника и составляют важную часть врожденного иммунитета. Эти пептиды продуцируются в ответ на

воздействие липополисахарида, вовлекая TOLL-подобные рецепторы. С увеличением микробов, увеличивается количество бета-дефензинов. Данные реакции врожденного иммунитета играют роль в формировании микробиоты и приводят к последующему адаптивному иммунному ответу, который может быть либо B-клеточно-зависимым, либо Т-клеточно-зависимым [148, 157, 158, 169].

Концепция «здорового кишечника» включает морфологическую целостность, физиологические функции ЖКТ (переваривание и всасывание питательных веществ), метаболизм тканей и энергетический баланс, здоровую микробиоту и барьерные функции (иммунные реакции) [99].

Морские водоросли содержат сложные полисахариды, которые включают: альгинат, фукоидан, ламинарин в бурых; ксилан, агар, каррагинан и порфиран в красных; ульван и ксилан в зеленых. Фукоиданы бурых водорослей характеризуются широким спектром биологической активности: антибактериальной, противовирусной, антикоагулянтной, иммуномодулирующей, противовоспалительной, противоопухолевой [74]. Морские водоросли выступают в качестве пребиотика из-за их низкой усвояемости, ферментируемости и способности усиливать рост полезных бактерий, при этом уменьшая количество патогенных бактерий. [109, 117].

Макроводоросли, при небольшом (<2 %) уровне включения в рационы КРС способны проявить мощную пребиотическую активность, в 5,5 раз большую, чем пребиотики из ФОС или инулина. В результате применения водорослей, снижается патогенная нагрузка, улучшается состояние ЖКТ, повышается продуктивность, улучшается иммунная система, увеличивается устойчивость животных к стрессу. Из-за положительных изменений в составе микробиоты ЖКТ, Evans F.D. также отмечает повышенную усвояемость всего рациона, и сокращение выделения метана [91]. Erickson P.S. et al. [90] утверждают, что практика использования добавки водорослей уже достаточно давно используется на многих органических молочных фермах в США.

1.2 Характеристика макро- и микроводорослей

Существует два основных типа водорослей: макроводоросли (морские

водоросли, в основном представленные красными (Rhodophyceae), бурыми (Phaeophyceae) и зелеными видами (Chlorophyceae)) и микроводоросли в виде фитопланктона для аквакультуры. Из 10000 видов морских водорослей, только некоторые представляют интерес в кормлении животных [123].

Макроводоросли. Бурые водоросли в основном обитают на мелководье или на прибрежных скалах, имеют гибкие стебли, которые позволяют выдерживать постоянные удары волн [60, 73]. Из-за большого размера и простоты сбора наиболее изучены и больше всего используются в кормлении животных, чем другие типы водорослей. К наиболее распространенным родам относятся: Ascophyllum, Laminaria, Saccharina, Macrocystis, Nereocystis, и Sargassum [95, 136].

Красные водоросли имеют характерный ярко-розовый цвет, обусловленный пигментами (R-фикоцианина и R-фикоэритрина). Большинство морских красных водорослей встречаются на глубине до 100 метров. Основные роды красных водорослей: Pyropia, Porphyra, Chondrus и Palmaria. Мертвые коралловые красные водоросли, особенно Phymatolithon и Lithothamnion, образуют известковые отложения, которые используются во всем мире в качестве источника карбоната кальция [88].

Цвет зеленых водорослей обусловлен хлорофиллом в хлоропластах. Окраска может меняться из-за различий в балансе пигментов. Основные роды зеленых водорослей: Ulva, Codium, Enteromorpha, Chaetomorpha и Cladophora. Данные водоросли распространены в хорошо освещенных местах на мелководье [72].

Морские водоросли характеризуются высоким содержанием макро- и микроэлементов, а их концентрация может превышать показатели наземных растений. Высокое содержание минеральных веществ связано с способностью поглощать неорганические вещества из окружающей среды, водоросли также содержат полисахариды и небольшое количество жиров, которые в основном

представлены полиненасыщенными жирными кислотами. В водорослях также отмечено высокое содержание витаминов, а именно: А, В 1, В 12, С, D, Е, B 2, B 3, B 5, B 9 [128]. Среди морских организмов, водоросли - это один из богатейших источников природных антиоксидантов и противомикробных препаратов [135].

Из-за содержания большого количества воды (70-90 %), морские водоросли необходимо высушивать или быстро реализовывать из-за риска заплесневения. Для производства водорослевой муки, влажные водоросли пропускают через молотковые дробилки с ситами все меньшего размера с целью измельчения до мелких частиц. Затем высушивают в барабанной сушилке при температуре от 700 до 800 ОС и в конце при 70 ОС для достижения влажности на уровне 15 % и дальнейшего хранения в запечатанной таре [123].

Морские водоросли содержат ряд сложных углеводов и полисахаридов. Бесконтрольное добавление водорослей может отрицательно сказаться на продуктивности животного. Макроводоросли богатые полисахаридами могут быть потенциально использованы в качестве пребиотических ингредиентов для человека и животных [141].

Микроводоросли. Из 30000 видов предположительно существующих микроводорослей, только несколько используются и выращиваются в промышленных масштабах. Наиболее важными микроводорослями с

биотехнологической точки зрения являются зеленые водоросли Chlorella vulgaris, Haematococcus pluvialis, Dunaliella salina и цианобактрия Spirulina Maxima. Согласно модельным расчетам, основанным на культивировании микроводорослей в открытых бассейнах и на экспериментальных установках, годовой урожай биомассы составляет 15 тонн сухого вещества на гектар [42, 149]. С применением фитобиореактора производство можно увеличить в два раза. Данные различия также зависят от климата, а именно от фотосинтеза [156].

Состав микроводорослей зависит от питательной среды, времени года, интенсивности освещения, температуры. Биореакторы позволяют регулировать

условия культивирования, а, следовательно, и состав. Содержание витаминов зависит от окружающей среды, обработки после сбора и метода сушки биомассы [42, 130]. Приблизительный состав макро- и микроводорослей представлен в таблице 1.

По сравнению с морскими водорослями, содержание золы в микроводорослях значительно ниже 7-14 %. Содержание нуклеиновых кислот выше, чем у морских водорослей (около 5 %), что также зависит от условий культивирования. Как и в случае с макроводорослями, стоит обращать внимание на содержание тяжелых металлов. Содержание витаминов зависит от окружающей среды, обработки после сбора и метода сушки биомассы, особенно это относится к В 1, В 2, С и никотиновой кислоте. Спирулина содержит более высокие уровни Р-каротина, витамина В 12 по сравнению с морковью или зелеными растениями. Спирулина также является богатым источником витамина Е, тиамина, кобаламина, биотина и инозита по сравнению с зелеными водорослями, шпинатом. Некоторые виды микроводорослей продуцируют а-токоферол (органическая активная форма витамина Е) в высоких концентрациях [156].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Зимин Евгений Евгеньевич, 2024 год

- 23 с.

65. Шацких, Е.В. Показатели крови и продуктивность кур при использовании в рационе фитобиотических препаратов // Аграрный вестник Урала. - 2023. -№8(237). - С. 78-88.

66. Штеле, А.Л. Яичное птицеводство: учебное пособие для вузов / А.Л. Штеле, А.К. Османян, Г.Д. Афанасьев // Спб.: Лань. - 2022. - 272 с.

67. Abudabos, A.M. Nutritional value of green seaweed (ulva lactuca) for broilers / A.M. Abudabos, A. Okab, R.S. Aljumaah et al. // Italian Journal of Animal Science.

- 2016. - 12(28). - P. 177-181.

68. Al-Harthi, M.A. Effect of different dietary concentrations of brown marine algae (Sargassum dentifebium) prepared by different methods on plasma and yolk lipid profiles, yolk total carotene and lutein plus zeaxanthin of laying hens / M.A. Al-Harthi, El-Deek A.A. // Italian Journal of Animal Science. - 2012. - 11. - P. 347353.

69. Al-Harthi, M.A. Sexual maturity and performance of pullets fed different preparations and concentrations of brown marine algae in pre-laying and early laying periods / M.A. Al-Harthi // Italian Journal of Animal Science. - 2016. №2.

- 9 p.

70. Al-Harthi, M.A. The effect of natural and synthetic antioxidants on performance, egg quality and blood constituents of laying hens grown under high ambient temperature / M.A. Al-Harthi // Italian Journal of Animal Science. - 2016. - №2. -6 p.

71. Alisha, R.P.D. Nutritional value of seaweed / R.P.D Alisha, H. Alisha // The Pharma Innovation Journal. - 2019. - 8(8). - P. 80-83.

72. Al-Soufi, S. Marine macroalgae in rabbit nutritional - a valuable feed in sustainable farming / S. Al-Soufi, J. Garcia, A. Muinos et al. // Animals. - 2022. -12(18). - 16 p.

73. Arapetyan, O.N. Antibacterial Properties of Fucoidans from the Brown Algae Fucus vesiculosus L. of the Barents Sea / O.N. Arapetyan, Obluchinskaya E.D., Zhurishkina E.V. et al. // Biology. - 2021. - 10(1). - 17 p.

74. Atashrazm, F. Fucoidan and cancer: a multifunctional molecule with anti-tumor potential / F. Atashrazm, R.M. Lowenthal, G.M. Woods et al. // Marine Drugs. -2015. - 13(4). - P. 2237-2346.

75. Azizi, A.F.N. Effect of maternal supplementation with seaweed powder on immune status of liver and lymphoid organs of piglets / A.F.N. Azizi, R. Miyazaki, T. Yumito, Y. Ohashi et al. // The Journal of Veterinary Medical Science. - 2017.

- №11. - P. 8-12.

76. Borzouie, S. Effects of dietary inclusion of seaweed, heat stress and genetic strain on performance, plasma biochemical and hematological parameters in laying hens // S. Borzouie, B.M. Rathgeber, C.M. Stupart et al. // Animals. - 2020. - № 10(9).

- 17 p.

77. Bradbury, E. The effect of marine calcium source on broiler leg integrity / E. Bradbury, S.J. Wilkinson, G.M. Gronin et al. // Australian Poultry Science Symposium. - 2012. - P. 85-88.

78. Bussy, F. Immunomodulating effect of a seaweed extract from Ulva armoricana in pig: Specific IgG and total IgA in colostrum, milk and blood / F. Bussy, L.G. Matthieu, H. Salmon et al. / Veterinary and Animal Science. - 2019. - №6. - 5 p.

79.Chen, G. Effects of Spirulina algae as a feed supplement on nutritional value and flavor components of silkie hens eggs / G. Chen, Y. Cai, Y. Su // J. of Animal Physiology and Animal Nutrition. - 2019. - №5. -10 p.

80. Chen, Wei. Dietary calcium deficiency in laying ducks impairs eggshell quality by suppressing shell biomineralization / Wei Chen, Fei Zhao, Tian Zhi Mei et al. // Journal of Experimental Biology. - 2015. - P. 3336-3343.

81. Choi, Y. Effects of Ecklonia cava as fucoidan-rich algae on growth performance, nutrient digestibility, intestinal morphology and caecal microflora in weanling pigs / Y. Choi, A. Hosseindoust, A. Goel at al. // Asian-Australasian Journal of Animal Science. - 2017. - №1. - P. 64-70.

82. Corino, C. Seaweeds in pig nutrition / C. Corino, S.C. Modina, A.D. Giancamillo et al. // Animals. - 2019. - 9(12). - 26 p.

83. Dell'Anno, M. In vitro evaluation of antimicrobial and antioxidant activities of algal extracts / M. Dell'Anno, S. Sotira, R. Rebucci // Italian Journal of Animal Science. - 2020. - P. 103-113.

84. Diaz Carrasco, J.M. Microbiota, gut health and chicken productivity: what is the connection? / J.M. Diaz Carrasco, N.A. Casanova, M.E. Fernandez Miyakawa // Microorganisms. - 2019. - 7(10). - 15 p.

85. Dijk, A. Avian defensins / A. Dijk, E.J.A. Veldhuizen, H.P. Haagsman // Veterinary Immunology and Immunopathology. - 2018. - 15. - P. 1-18.

86. Dittoe, D.K. Impact of the gastrointestinal microbiome and fermentation metabolites on broiler performance / D.K. Dittoe, E.G. Olson, S.C. Ricke // Poultry Science. - 2022. - 101(5). - 14 p.

87. Du, K. A literature survey on antimicrobial and immune-modulatory effects of butyrate revealing non-antibiotic approaches to tackle bacterial infections / K. Du, S. Bereswill, M.M. Heimesaat // European Journal of Microbiology and Immunology. - 2021. - 11(1). - 1-9 p.

88. Edwards, M. Macroalgae Fact-sheets / M. Edwards, D. Hanniffy, S. Heesch et al. // Irish Seaweed Research Group. - 2012. - 40 p.

89. El Gamal, A.A. Biological importance of marine algae / A.A. El Gamal // Saudi Pharmaceutical Journal. - 2012. - 18(1). - P. 1-25.

90. Erickson, P.S. Short communication: Kelp taste preferences by dairy calves / P.S. Erickson, S. Marston, M. Gemmel et al. // Journal of Dairy Science. - 2012. - 95(2). - P. 856-858.

91. Evans, F.D. Seaweeds for animal production use / F.D. Evans, A.T. Critchley // Journal of Applied Phycology. - 2014. - P. 891-899.

92. Gaafar, H.M.A. Effect of spirulina on productive and reproductive performance of Friesian cows / H.M.A. Gaafar, W.A. Riad, A.Y. Elsadany et al. // Archiva zootechnica. - 2017. - №1. - P. 19-36.

93. Garces, C.N. Spirulina supplementation during the transition period by grazing dairy cattle at tropical highland conditions / C.N. Garces, D. Vela, A. Mullo et al. // Tropical Animal Health and Production. - 2019. - №8. - 4 p.

94. Gautron, J. Avian eggshell biomineralization: an update on its structure,

mineralogy and protein tool kit / J. Gautron, L. Stapane, N. Le Roy et al. // BMC

Molecular and Cell biology. - 2021. - 22(11). - 17 p.

106

95. Ghost, R. Eco-biochemical studies of common seaweeds in the lower gangetic delta / R. Ghost, K. Banerjee, A. Mitra // Biotechnology and Applied Phycology. -2012. - P. 45-57.

96. Godfray, H.C.J. Food security: the challenge of feeding 9 billion people / H.C.J. Godfray, J.R. Beddington, I.R. Crute et al. // Science. - 2010. - 327(5967). - P. 812-818.

97. Guo, Y. New insights into the role of dietary marine-derived polysaccharides on productive performance, egg quality, antioxidant capacity, and jejunal morphology in late-phase laying hens / Y. Guo, Zhao Zhi-Hui, Pan Zi-Yi et al. // Poultry Science. - 2019. - 99(4). - P. 2100-2107.

98. Hadar, N. The gut microbiome / N. Hadar, K. Omry // Encyclopedia of Cell Biology. - 2016. - 3. - P. 395-410.

99. Han, Z. Differences in host breed and diet influence colonization by Campylobacter jejuni and induction of local immune responses in chicken / Z. Han, T. Willer, C. Pielsticker et al. // Gut Pathogens. - 2016. - 8. - 14 p.

100. Harlap, S.Y. Dynamics of correlations between thyroid hormones and biochemical parameters of the laying hens blood in the age aspect / S.Y. Harlap, M.A. Derkho, N.A. Fomina et al. // IOP Conf. Series: Earth an Environmental Science. - 2021. - 677. - 7 p.

101. Hayes, M. Food proteins and bioactive peptides: new and novel sources, characterisation strategies and applications / M. Hayes / Foods. - 2018. - 7(3). - 38 p.

102. Heffernan, N. Phenolic content and antioxidant activity of fractions obtained from selected Irish macroalgae species (Laminaria digitata, Fucus serratus, Gracilaria gracilis and Codium fragile) / N. Heffernan, T.J. Smyth, A. Soler-Villa et al. // Journal of Applied Phycology. - 2015. - 27(1). - P. 519-530.

103. Heffernan, N. Profiling of the molecular weight and structural isomer abundance of macroalgae-derived phlorotannins / N. Heffernan, N.P. Brunton, R.J. Fitz Gerald et al. // Marine Drugs. - 2015. - 13(1). - P. 509-528.

104. Heim, G. Maternal supplementation of seaweed-derived polysaccharides improve intestinal health and immune status of sucking piglets / G. Heim, J.V. O'Doherty, C.J. O'Shea et al. // J. of Nutritional Science. - 2015. - №6. - 12 p.

105. Khan, S. RNA-sequencing analysis of shell gland shows differences in gene expression profile at two time-points of eggshell formation in laying chickens / S. Khan, S.B. Wu, J. Roberts // BMC Genomics. - 2019. - 20(89). - 20 p.

106. Kilinc, B. Seaweeds for food and industrial applications / B. Kilinc, S. Cirik, G. Turan et al. // Food Industry. - 2013. - 31. - P. 735-748.

107. Kim, Se-Kwon. Handbook of marine microalgae / Se-Kwon Kim // Elsevier, London. - 2015. - 604 p.

108. Kochish, I. Fucus algae of the white sea in feeding hens / I. Kochish, E. Zimin, I. Nikonov et al. // 26th World's Poultry Congress: abstracts 2022. - Paris. - 2022. - 605 p.

109. Kojima-Yuasa, A. Biological and pharmacological effects of polyphenolic compounds from Ecklonia cava. In: Polyphenols: mechanisms of action in human health and disease, 2nd edn. / A. Kojima-Yuasa, R.R. Watson, V.R. Preedy et al. // Academic Press, London. - 2018, - P. 41-52.

110. Kollarcikova M. Use of 16S rRNA gene sequencing for prediction of new opportunistic pathogens in chicken ileal and cecal microbiota / M. Kollarcikova, T. Kubasova, D. Karasova et al. // Journal of Poultry Science. - 2019. - 98(6). - P. 2347-2353.

111. Krimpen, M.M. Cultivation, processing and nutritional aspects for pigs and poultry of European protein sources as alternatives for imported soybean products / M.M. Krimpen, P. Bikker, I.M. Meer et al. // Wageningen UR Livestock Research. - 2013. - 66. - 48 p.

112. Kulshreshtha, G. A review of the varied uses of macroalgae as dietary supplements in selected poultry with special reference to laying hen and broiler chickens // G. Kulshreshtha, M.T. Hincke, B. Prithiviraj et al. // Journal of Marine Science and Engineering. - 2020. - 8(7). - 28 p.

113. Kulshreshtha, G. Feed supplementation with Red Seaweeds, Chondrus crispus and Sarcodiotheca gaudichaudii, Reduce Salmonella Enteritidis in Laying Hens / G. Kulshreshtha, B, Rathgeber, J. Maclsaac et al. // Frontiers in Microbiology. - 2017. - 8(28). - 12 p.

114. Kulshreshtha, G. Feed supplementation with red seaweeds, Chondus crispus and Sarcodiotheca gaudichaudii, affects performance, egg quality, and gut microbiota of layer hens / G. Kulshreshtha, B. Rathgeber, G. Stratton et al. // Poultry Science. - 2014. - 93(12). - P. 2991-3001.

115. Kulshreshtha, G. Red Seaweeds Sarcodiotheca gaudichaudii and Chondrus crispus down Regulate Virulence Factors of Salmonella Enteritidis and Induce Immune Responses in Caenorhabditis elegans / G. Kulshreshtha, T. Borza, B. Rathgeber et al. // Frontiers in Microbiology, 2016. - 7. - 12 p.

116. Le Roy, N. Evolution of the Avian Eggshell Biomineralization Protein Toolkit - New Insights From Multi-Omics / N. Le Roy, L. Stapane, J. Gautron et al. // Frontiers in Genetics. - 2021. - 12. - 21 p.

117. Lezcano, V. Antitumor and antioxidant activity of the freshwater macroalga Cladophora surera / V. Lezcano, C. Fernandez, E.R. Parodi et al. // Journal of Applied Phycology. - 2017. - 30. - P. 2913-2921.

118. Lillehoj, H. Phytochemicals as antibiotic alternatives to promote growth and enhance host health / H. Lillehoj, Y. Liu, S. Calsamiglia et al. // Veterinary Research. - 2018. - 49(76). - 18 p.

119. Livak, K.J. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method / K.J. Livak, T.D. Schmittgen // Methods. - 2001. - 25(4). - P. 402-408.

120. Lopez, C.C. Effect of diet supplementation with Ascophyllum nodosum on cow milk composition and microbiota / C.C. Lopez, A. Serio, C. Rossi // J. Dairy Sci. - 2016. - №4. - 13 p.

121. Ma, Y. Improvement of eggshell quality by dietary N-carbamylglutamate supplementation in laying chickens / Y. Ma, J. Yao, S. Zhou et al. // Poultry Science. - 2020. - 99(8). - P. 4085-4095.

122. Maghin, F. Biological functions and health promoting effects of brown seaweeds in swine nutrition / F. Maghin, S. Ratti, C. Corino // J. of Dairy, Veterinary & Animal Research. - 2014. - 1(1). - P. 14-16.

123. Makkar, H. Seaweeds for livestock diets: a review / H. Makkar, G. Tran, V. Heuze et al. // Animal Feed Science and Technology. - 2015. - 212. - P. 1-17.

124. Mancabelli, L. Insights into the biodiversity of the gut microbiota of broiler chickens / L. Mancabelli, C. Ferrario, C. Milani et al. // Environmental Microbiology. - 2016. - 18(12). - P. 4727-4738.

125. Mann, K. The proteome of the calcified layer organic matrix of turkey (meleagris gallopavo) eggshell / K. Mann, M. Mann // Proteome Science. - 2013. - 11(1). - 15 p.

126. Manor, M.L. Inclusion of Dietary Defatted Microalgae Dose-Dependently Enriches ®-3 Fatty Acids in Egg Yolk and Tissues of Laying Hens / Journal of Nutrition. - 2019. - 149(6). - P. 942-950.

127. Marie, P. Quantitative proteomics provides new insights into chicken eggshell matrix protein functions during the primary events of mineralisation and the active calcification phase / P. Marie, V. Labas, A. Brionne et al. // Journal of Proteomics. - 2015. - №8(3). - 45 p.

128. Mariey, Y.A. Effect of using spirulina platensis algae as feed additive for poultry diets / Y.A. Mariey, H.R. Samak, M.A. Ibrahem // Egyptian poultry science journal. - 2012. - P. 201-215.

129. Matsushima, K. Interleukin-8: an evolving chemokine / K. Matsushima, Yang De, Oppenheim J.J. // Cytokine. - 2022. - 153. - 7 p.

130. Metsoviti, M.N. Comparison of Growth Rate and Nutrient Content of Five Microalgae Species Cultivated in Greenhouses / M.N. Metsoviti, G. Papapolymerou, I.T. Karapanagiotidis, N. Katsoulas // Plants. - 2019. - №8. - 13 p.

131. Michalak, I. Seaweeds, intact and processed, as a valuable component of poultry feeds / I. Michalak, K. Mahrose // Journal of Marine Science and Engineering. - 2020. - 8(8). - 28 p.

132. Mowbray, C.A. Gene expression of AvBD6-10 in broiler chickens is independent of AvBD6, 9, and 10 peptide potency / C.A. Mowbray, S.S. Niranji, Cadwell K et al. // Veterinary Immunology and Immunopathology. - 2018. - P. 3140.

133. Muhammad, A.I. Effect of organic and inorganic dietary selenium supplementation of gene expression in oviduct tissues and, antioxidant capacity of laying hens / A.I. Muhammad, A.M. Dalia, T.C. Loh et al. // Research Square. -2020. - 17(1). - 25 p.

134. Muhammad, A.I. Effect of organic and inorganic dietary selenium supplementation on gene expression in oviduct tissues and Selenoproteins gene expression in Lohman Brown-classic laying hens / A.I. Muhammad, A.M. Dalia, T.C. Loh // BMC Veterinary Research. - 2021. - 17(1). - 15 p.

135. Murphy, E.J. Polysaccharides - naturally occurring immune modulators / E.J. Murphy, G.W. Fehrenbach, I.Z. Abidin et al. // Polymers. - 2023. - 15(10) -41 p.

136. Murty, U.S. Seaweed: the wealth of oceans / U.S. Murty, A.K. Banerjee // Handbook of Marine Macroalgae: Biotechnology and Applied Phycology. - 2012. - P. 36-43.

137. Nedeva, R. Effect of the addition of Spirulina platensis on the productivity and some blood parameters on growing pigs / R. Nedeva, G. Jordanova, E. Kistanova et al. // Bulgarian Journal of Agricultural Science. - 2014. - P. 680-684.

138. Neupane, S. Initial evaluation of six different brown algae species as source for crude bioactive fucoidans / S. Neupane, K.S. Bittkau, S.P. Alban // Algal Research. - 2020. - 45(6). - 10 p.

139. Ngo, Dai-Hung. Sulfated polysaccharides as bioactive agents from marine algae / Dai-Hung Ngo, Kim Se-Kwon // International Journal of Biological Macromolecules. - 2013. - 62. - P. 70-75.

140. O'Shea, C.J. Effect of the interaction of seaweed extracts containing laminarin and fucoidan with zinc oxide on the growth performance, digestibility

and faecal characteristics of growing piglets / C.J. O'Shea, P. McAlpine, T. Sweeney et al. // British Journal of Nutrition. - 2014. - №3. - P. 798-807.

141. O'Sullivan, L. Prebiotics from marine macroalgae for human and animal health application / L. O'Sullivan, B. Murphy, P. McLoughlin et al. // Marine Drugs. - 2010. - 8(7). - P. 2038-2064.

142. Oakley, B.B. The chicken gastrointestinal microbiome / B.B. Oakley, H.S. Lillehoj, M.H. Kogut et al. // FEMS Microbiology Letters. - 2014. - 360(2). - P. 100-112.

143. Park Ji Ae. Histological change of uterus endometrium and expression of the eggshell-related genes according to hen age / Park Ji Ae, Cho Eun Jung, Park Jung Yeon et al. // Korean journal of poultry science. - 2017. - P. 19-28.

144. Poveda-Castillo, G.C. Bioactivity of fucoidan as an antimicrobial agent in a new functional beverage / G.C. Poveda-Castillo, Rodrigo D, Marinez A et al. // Beverages. - 2018. -4. - 13 p.

145. Poyatos-Pertinez, S. Transcriptome analysis of the uterus of hens laying eggs differing in cuticle deposition / S. Poyatos-Pertinez, P.W. Wilson, W. Icken et al. // BMC Genomics. - 2020. - 21(516). - 15 p.

146. Pozharitskaya, O.N. Mechanisms of bioactivities of Fucoidan from the Brown Seaweed Fucus vesiculosus L. of the Barents Sea / O.N. Pozharitskaya, E.D. Obluchinskaya, A.N. Shikov // Marine Drugs. - 2020. - 18(5). - 275 p.

147. Puspita, M. Total phenolic content and biological activities of enzymatic extracts from Sargassum muticum (Yendo) Fensholt / M. Puspita, M. Daniel, I. Widowati et al. // Journal of Applied Phycology. - 2017. - 29. - P. 2521-2537.

148. Qi, Z. Comparative metagenomics sequencing analysis of cecum microbiotal diversity and function in broilers and layers / Z. Qi, S. Shi, J. Tu et al. // 3 Biotech. - 2019. - 9. - 10 p.

149. Renuka, N. Exploring the efficacy of wastewater-grown microalgal biomass as a biofertilizer for wheat / N. Renuka, R. Prasanna, A. Sood et al. // Environmental Science and Pollution Research. - 2016. - 23(7). - P. 6608-6620.

150. Roque, B.M. Effect of the macroalgae Asparagopsis taxiformis on methane production and rumen microbiome assemblage / B.M. Roque, C.G. Brooke, J. Ladau et al. // Animal Microbiome. - 2019. - 14 p.

151. Ruiz, A.R. Supplementing nursery pig feed with seaweed extracts increases final body weight of pigs / A.R. Ruiz, P. Gadicke, S.M. Andrades et al. // Austral journal of veterinary science. - 2018. - P. 83-87.

152. Rychlik, I. Composition and function of chicken gut microbiota / I. Rychlik // Animals. - 2020. - 10(1). - 20 p.

153. Sagova-Mareckova, M. Microbial communities show parallels at sites with distinct litter and soil characteristics / M. Sagova-Mareckova, M. Omelka, L. Cermak et al. // Applied and Environmental Microbiology. - 2011. - 77(21). - P. 7560-7567.

154. Schneider, T. Interference with the CXCL12/CXCR4 axis as potential antitumor strategy: superiority of a sulfated galactofucan from the brown alga Saccharina latissima and fucoidan over heparins / T. Schneider, K. Ehrig, I. Liewert et al. // Glycobiology. - 2015. - 25(8). - P. 812-824.

155. Shelley, J.R. The Dichotomous Responses Driven by P-Defensins / J.R. Shelley, D.J. Davidson, J.R. Dorin // Frontiers in Immunology. - 2020. - 11(6). -15 p.

156. Spruijt, J. Opportunities for microalgae as ingredient in animal diets / J. Spruijt, R. Weide, M. Krimpen // ACRRES. - 2016. -№11. - 48 p.

157. Stanley, D. Bacteria within the gastrointestinal tract microbiota correlated with improved growth and feed conversion: challenges presented for the identification of performance enhancing probiotic bacteria / D. Stanley, R.J. Hughes, M.S. Geier et al. // Frontiers in Microbiology. - 2016. - 7(187). - 13 p.

158. Stanley, D. Composition of fecal and cecal microbiotas reveals qualitative similarities but quantitative differences / D. Stanley, M.S. Geier, H. Chen et al. // BMC Microbiology. - 2015. - 15(51). - 11 p.

159. Stanley, D. Identification of chicken intestinal microbiota correlated with the efficiency of energy extraction from feed / D. Stanley, M.S. Geier, S.E. Denman et al. // Veterinary Microbiology. - 2013. - 1(2). - P. 85-92.

160. Sweeney, T. Extract of laminarin and laminarin/fucoidan from the marine macroalgal species Laminaria digitata improved growth rate and intestinal structure in young chicks, but does not influence Campylobacter jejuni collonisation / T. Sweeney, H. Meredith, S. Vigors et al. // Animal Feed Science and Technology. - 2017. - 232(4). - P. 71-79.

161. Swiatkiewicz, S. Application of microalgae biomass in poultry nutrition / S. Swiatkiewicz, A. Arczewska-Wlosek, D. Jozefiak // World's Poultry Science. -2015. - 71. - P. 663-672.

162. Tilman, D. Global food demand and the sustainable intensification of agriculture / D. Tilman, C. Balzer, J. Hill et al. // PNAS. - 2011. - 108(50). - P. 20260-20264.

163. Videnska, P. Chicken faecal microbiota and disturbances induced by single of repeated therapy with tetracycline and streptomycin / P. Videnska, M. Faldynova, H. Juricova et al. // BMC Veterinary Research. - 2013. - 9(30). - 9 p.

164. Walsh, A.M. Effect of dietary laminarin and fucoidan on selected microbiota, intestinal morphology and immune status of the newly weaned pig / A.M. Walsh, T. Sweeney, C.J. O'Shea et al. // British Journal of Nutrition. - 2013. - №11. - P. 1630-1638.

165. Wan, J. Alginic acid oligosaccharide accelerates weaned pig growth through regulating antioxidant capacity, immunity and intestinal development / J. Wan, F. Jiang, Q. Xu et al. // RSC Advances. - 2016. - №9. - 10 p.

166. Wang, J. Pyrosequencing of the broiler chicken gastrointestinal tract reveals the regional similarity and dissimilarity of microbial community / J. Wang, H. Fan, Y. Han et al. // Canadian Journal of Animal Science. - 2016. - 97. - P. 302-313.

167. Wang, S.B. Enteromorpha prolifera supplemental level: effects on laying performance, egg quality, immune function and microflora in feces of laying hens

/ S.B. Wang, Y.H. Jia, L.H. Wang et al. // Chinese Journal of Animal Nutritional. - 2013. - 25(6). - P. 1346-1352.

168. Wang, S.B. Enteromorpha prolifera: effects on performance, carcass quality and small intestinal digestive enzyme activities of broilers / S.B. Wang, X.P. Shi, C.F. Zhou et al. // Chinese Journal of Animal Nutritional. - 2013. - 25(6). - P. 1346-1352.

169. Wilson, N.L. Correlations between intestinal innate immune genes and cecal microbiota highlight potential for probiotic development for immune modulation in poultry / N.L. Wilson, G.S. Nattrass, R.J. Hughes et al. // Applied Microbiology and Biotechnology. - 2018. - 102. - 13 p.

170. Yoshimura, Y. Avian ß-defensins expression for the innate immune system in hen reproductive organs / Y. Yoshimura // Poultry Science. - 2015. - 94(4). - P. 804-809.

171. Zhang, G. Avian Antimicrobial Host Defense Peptides: From Biology to Therapeutic Applications / G. Zhang, L.T. Sunkara // Pharmaceuticals. - 2014. -7(3). - Pp. 220-247.

172. ZhongTao, Y. The transcriptome landscapes of ovary and three oviduct segments during chicken (Gallus gallus) egg formation / Y. ZhongTao, L. Ling, Zhu Feng et al. // Genomics. - 2020. - 112. - P. 243-251.

173. Zhou, M. Effects of the seaweed Ascophyllum nodosum on the rumen microbiome and fecal pathogenic Escherichia coli serotypes in sheep / M. Zhou, M. Huenerberg, Y. Chen et al. // Journal of Animal Science. - 2017. - 95. - P. 299300.

ПРИЛОЖЕНИЯ

АО «Птицефабрика Синявинская» 187326, Россия, Ленинградская область. Кировский район, гп. Приладожский

УТВЕРЖДАЮ Проректор по науке и инновациям

ФЩЮУ ВО МГАВМиБ -МВА

«19» августа 2024 г.

им. К.И. Скрябина

А.А. Дельцов

АКТ

Испытание пребиотической кормовой добавки «Сагарва» (Фукус Пузырчатый) в условиях производственного опыта на

Мы нижеподписавшиеся: заместитель директора ООО «Надвоицкий завод ТДМ» Зубков Денис Геннадьевич, научный консультант ООО «Надвоицкий завод ТДМ» Климов Александр Анатольевич, заведующий кафедрой зоогигиены и птицеводства им. А.К. Даниловой ФГВОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина Кочиш Иван Иванович, аспирант кафедры зоогигиены и птицеводства им. А.К. Даниловой ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина Зимин Евгений Евгеньевич составили настоящий акт о том, что в период с 22.11.2023 по 15.02.2024 был проведен производственный опыт по эффективности применения пребиотической кормовой добавки «Сагарва» (Фукус Пузырчатый) производства ООО «Надвоицкий завод ТДМ» (Республика Карелия) на родительском стаде кросса «Декалб Уайт» при клеточном содержании. Добавка была введена в состав комбикорма в количестве 3 кг/т (0,3 %). Продолжительность скармливания добавки составила 86 суток.

родительском стаде

Таблица 1 - Схема производственного опыта

Группа Количество голов Особенности кормления

(1) Контрольная 19300 Основной рацион (ОР)

(2) Опытная 19300 ОР и нребиотическая кормовая добавка «Сагарва» (Фукус Пузырчатый) 3 кг/т (0,3 %)

Результаты производственного опыта приведены в таблице 2.

Валовое производство яиц за период опыта в контрольной группе составило 1 297,4 тыс., а в опытной 1 370,3 тыс. шт.

Таблица 2 - Результаты производственного опыта

Показатель Группа

(1)Контрольная (2) Опытная 0,3 %

Количество голов:

в начале опыта 19 300 19 300

в конце опыта 18 694 18 768

Сохранность, % 96,86 97,24

Валовое производство яиц, UIT 1 297 401 1 370 327

Стоимость израсходованных комбикормов, руб 5 311 788 5 475 657

Валовый доход, полученный от реализации яиц, руб 27 245 421 28 776 862

Прибыль от реализации яиц, руб 21 933 633 23 301 205

Дополнительная прибыль, руб 1 367 572

Бурые водоросли «Фукус Пузырчатый» и «Ламинария» в виде крупки

(фракция 0,2-0,8 мм).